WO2020045836A1 - 모유두 세포의 배양용 조성물 및 이를 이용한 모유두 세포의 배양 방법 - Google Patents

모유두 세포의 배양용 조성물 및 이를 이용한 모유두 세포의 배양 방법 Download PDF

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WO2020045836A1
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culturing
medium
growth factor
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성종혁
정매
장예지
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Definitions

  • the present invention particularly relates to a composition for culturing hair papilla cells and a method for culturing hair papilla cells using the same.
  • Dermal papilla cells are cells located at the base of hair follicles. They supply oxygen and nutrients to the cells of hair follicles and are responsible for hair growth and hair follicle cycle control. Therefore, promoting the growth of dermal papilla cells can make hair healthy, promote hair growth, and prevent hair loss. Hair growth plays an important role in regulating the division of epithelial cells because the epithelial cells surrounding the dermal papilla divide and form a hair shaft. In addition, the site where male hormone acts on hair follicles in male alopecia is also breast papilla, and papilla cells play a very important role in hair growth.
  • the hair growth continued, and the dermal papilla cells forming the hair root play a very important role in hair production and growth. Said.
  • One object of the present invention is to provide a medium composition for culturing the dermal papilla cells in large quantities.
  • Another object of the present invention is to provide a method for culturing the dermal papilla cells in large quantities.
  • Dulbecco's Modified Eagle's Medium DMEM
  • the "hair papilla cells” are mesenchymal cells located at the bottom of the hair follicle and send an activation signal to the hair follicle epithelial stem cells for self-renewal of hair follicles. In other words, it is the cell that is thought to play the role of the command tower.
  • the 'DMEM (Dulbecco's Modified Eagle's Medium)' is DMEM normally used in a medium
  • the B27 solution (Gibco® B-27® Supplements, Life Technologies) is biotin, DL alpha tocophenol acetate, DL alpha tocophenol , Vitamin A, BSA, Catalase, Insulin, Superoxide Dismutase, Corticosterone, D-galactose, Ethanolamine HCl, Glutathione, L-Carnitine HCl, Linoleteic Acid, Linolenic Acid, Progesterone, Putrescine 2HCl, Sodium selenite and triodo-l-tyronine.
  • Culture composition of the present invention is Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM); And a medium selected from MCDB104, MCDB105, MCDB153, MCDB201, and MCDB202; may be included in a volume ratio of 0.5 to 1.5: 1, preferably in a volume ratio of 0.75 to 1.25: 1, and more preferably 1 It may be included in a volume ratio of 1: 1.
  • DMEM Dulbecco's Modified Eagle's Medium
  • the culture composition of the present invention may include the Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) and MCDB202, more preferably the Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) and the MCDB202 in a volume ratio of 1: 1. It may include.
  • DMEM Dulbecco's modified Eagle's medium
  • MCDB202 more preferably the Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) and the MCDB202 in a volume ratio of 1: 1. It may include.
  • the culture composition of the present invention is a basic fibroblast growth factor (bFGF), dexamethasone (dexamethasone), human insulin recombinant, transferrin (selenous acid) and bovine serum albumin (bovine serum albumin) , BSA) may further include one or more selected from the group consisting of.
  • bFGF basic fibroblast growth factor
  • dexamethasone dexamethasone
  • human insulin recombinant human insulin recombinant
  • transferrin senous acid
  • bovine serum albumin bovine serum albumin
  • Culture composition of the present invention is a basic fibroblast growth factor (basic fibroblast growth factor, bFGF) 0.1 ⁇ 100ng / ml; Dexamethasone 10 -10 -10 -6 M; Insulin 0.5-50 ⁇ g / ml; Transferrin 0.5-50 ⁇ g / ml; Selenous acid 0.1-50 ng / ml; And bovine serum albumin (bovine serum albumin, BSA) may be further included one or more selected from the group consisting of 0.1 ⁇ 50mg / ml.
  • basic fibroblast growth factor basic fibroblast growth factor, bFGF
  • Dexamethasone 10 -10 -10 -6 M Insulin 0.5-50 ⁇ g / ml
  • Transferrin 0.5-50 ⁇ g / ml
  • Selenous acid 0.1-50 ng / ml
  • bovine serum albumin bovine serum albumin
  • the culture composition of the present invention may further comprise a lipid concentrate (Chemically defined lipid concentrate).
  • the culture composition of the present invention may further comprise a lipid concentrate (Chemically defined lipid concentrate) at a concentration of 0.001 to 0.1x.
  • a lipid concentrate Cosmetically defined lipid concentrate
  • the culture composition of the present invention may further comprise one or more selected from the group consisting of soybean lecithin, cholesterol lipid concentrate (cholestreol lipid concentrate, chol) and (+ ⁇ ) -tocopherol acetate.
  • Culture composition of the present invention is soybean lecithin 0.5 ⁇ 50 ⁇ g / ml; Cholesterol cholesterol lipid concentrate (chol) 0.1-30 ⁇ g / ml; And (+ ⁇ ) -tocopherol acetate 0.1 to 50 ⁇ g / ml.
  • the culture composition of the present invention is hepatocyte growth factor (HGF), transforming growth factor- ⁇ 3 (transforming growth factor- ⁇ 3, TGF- ⁇ 3) and platelet derived growth factor (platelet derived growth factor (PDGF-BB)) It may further comprise one or more selected from the group consisting of.
  • HGF hepatocyte growth factor
  • transforming growth factor- ⁇ 3 transforming growth factor- ⁇ 3, TGF- ⁇ 3
  • platelet derived growth factor platelet derived growth factor (PDGF-BB)
  • It may further comprise one or more selected from the group consisting of.
  • Culture composition of the present invention is liver growth factor (hepatocyte growth factor, HGF) 0.1 ⁇ 50ng / ml; Transforming growth factor- ⁇ 3 (TGF- ⁇ 3) 0.5-100 ng / ml; And platelet derived growth factor (platelet derived growth factor, PDGF-BB) may further comprise one or more selected from the group consisting of 0.5 ⁇ 100ng / ml.
  • HGF liver growth factor
  • TGF- ⁇ 3 Transforming growth factor- ⁇ 3
  • PDGF-BB platelet derived growth factor
  • the culture composition of the present invention is epidermal growth factor (EGF), ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt (ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt), phosphatidylcholine, phosphatidine sodium salt ( It may further include one or more selected from the group consisting of phosphatidic acid sodium salt), lithium chloride (lithium chloride) and L-glutathione (L-gluthathione).
  • EGF epidermal growth factor
  • ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt
  • phosphatidylcholine phosphatidine sodium salt
  • It may further include one or more selected from the group consisting of phosphatidic acid sodium salt), lithium chloride (lithium chloride) and L-glutathione (L-gluthathione).
  • Culture composition of the present invention is epidermal growth factor (epidermal growth factor, EGF) 0.5 ⁇ 200ng / ml; Ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt 0.5-200 ⁇ g / ml; Phosphatidylcholine 0.1-30 ⁇ g / ml; Phosphatidic acid sodium salt (0.1-30 ⁇ g / ml); Lithium chloride (Lithium chloride) 0.1 ⁇ 5mM and L-glutathione (L-glutathione) It may further comprise one or more selected from the group consisting of 0.1 ⁇ 10 ⁇ g / ml.
  • EGF epidermal growth factor
  • Ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt 0.5-200 ⁇ g / ml
  • Phosphatidylcholine 0.1-30 ⁇ g / ml
  • Phosphatidic acid sodium salt 0.1-30 ⁇ g / ml
  • Lithium chloride
  • the growth rate of the dermal papilla cells is more than two times as compared with the case of using the conventional general dermal papilla cell medium.
  • Dulbecco's Modified Eagle's Medium DMEM
  • DMEM Dulbecco's Modified Eagle's Medium
  • culturing the dermal papilla cells in a composition for culturing the dermal papilla cells the medium selected from MCDB104, MCDB105, MCDB153, MCDB201, and MCDB202.
  • the dermal papilla cell mass which is the origin of the dermal papilla cells of the present invention, can be prepared by a conventional manipulation per se in a biological sample, preferably in the scalp.
  • a biological sample preferably in the scalp.
  • cut the scalp into strips of about 5 mm wash it with phosphate buffered saline (PBS), etc. Only the subcutaneous fat layer is followed and the hair follicles are isolated by physical means, such as a pin set or the like.
  • the hair follicle is cut out of the hair follicle, and the dermal papilla is isolated from the hair follicle load to isolate the papillary cell mass.
  • the method for isolating one dermal papilla cell from the dermal papilla cell mass is not particularly limited.
  • the dermal papilla cell mass can be treated with an enzyme solution suitable for making the cells into a single floating cell, for example, Accumax (Chemicon), and then single dermal papilla cells can be taken out by a glass capillary or the like.
  • one isolated dermal papilla cells can be seeded and cultured on the feeder cells.
  • the type of feeder cells is not particularly limited, but preferably WT4 cells (cultured papillary cells), Swiss 3 T3 cells, MEF cells (mouse-like fibroblasts), and the like.
  • the amount of feeder cells per one papillary cell is preferably 100 to 10,000.
  • the culture of the isolated dermal papilla cells in the culture composition of the present invention can generally be incubated in a incubator at a temperature of 37 ° C. in a 5% CO 2 atmosphere using a culture plate.
  • the medium can be exchanged and passaging can be continued while continuing the culture.
  • the cultured cells thus obtained can be passaged over a more necessary passage number.
  • the passage may be performed until the desired amount of papillary cells is achieved, for example at least 10 passages, preferably at least 15 passages, and preferably at least 20 passages if the desired quantity is large. .
  • the dermal papilla cells are human dermal papilla cells and can be harvested from the scalp hair follicles, but are not limited to human origin and include all mammals other than humans, such as humans, chimpanzees, other primates, livestock animals, such as dogs. , Cats, rabbits, horses, sheep, goats, cattle, and other laboratory animals, for example, rats, mice, moles, more preferably nude mice, skid mice, and nude rats.
  • Human scalp can be used as a by-product of surgery.
  • the scalp may be derived from an adult male but not limited thereto, and may be derived from a child or a female.
  • the skin to be used may be selected from hair, etc., not limited to the hair, as long as the nipple supports normal menstruation. Generally, it is preferable to derive from the temporal or larynx of the scalp.
  • Culture composition of the present invention is Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM); And a medium selected from MCDB104, MCDB105, MCDB153, MCDB201, and MCDB202; may be included in a volume ratio of 0.5 to 1.5: 1, preferably in a volume ratio of 0.75 to 1.25: 1, and more preferably 1 It may be included in a volume ratio of 1: 1.
  • DMEM Dulbecco's Modified Eagle's Medium
  • the culture composition of the present invention may include the Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) and MCDB202, more preferably the Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) and the MCDB202 in a volume ratio of 1: 1. It may include.
  • DMEM Dulbecco's modified Eagle's medium
  • MCDB202 more preferably the Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) and the MCDB202 in a volume ratio of 1: 1. It may include.
  • the culture composition of the present invention is a basic fibroblast growth factor (bFGF), dexamethasone (dexamethasone), human insulin recombinant, transferrin (selenous acid) and bovine serum albumin (bovine serum albumin) , BSA) may further include one or more selected from the group consisting of.
  • bFGF basic fibroblast growth factor
  • dexamethasone dexamethasone
  • human insulin recombinant human insulin recombinant
  • transferrin senous acid
  • bovine serum albumin bovine serum albumin
  • Culture composition of the present invention is a basic fibroblast growth factor (basic fibroblast growth factor, bFGF) 0.1 ⁇ 100ng / ml; Dexamethasone 10 -10 -10 -6 M; Insulin 0.5-50 ⁇ g / ml; Transferrin 0.5-50 ⁇ g / ml; Selenous acid 0.1-50 ng / ml; And bovine serum albumin (bovine serum albumin, BSA) may be further included one or more selected from the group consisting of 0.1 ⁇ 50mg / ml.
  • basic fibroblast growth factor basic fibroblast growth factor, bFGF
  • Dexamethasone 10 -10 -10 -6 M Insulin 0.5-50 ⁇ g / ml
  • Transferrin 0.5-50 ⁇ g / ml
  • Selenous acid 0.1-50 ng / ml
  • bovine serum albumin bovine serum albumin
  • the culture composition of the present invention may further comprise a lipid concentrate (Chemically defined lipid concentrate).
  • the culture composition of the present invention may further comprise a lipid concentrate (Chemically defined lipid concentrate) at a concentration of 0.001 to 0.1x.
  • a lipid concentrate Cosmetically defined lipid concentrate
  • the culture composition of the present invention may further include one or more selected from the group consisting of soy lecithin, cholesterol lipid concentrate (cholesterol lipid concentrate, chol) and (+ ⁇ ) -tocopherol acetate.
  • Culture composition of the present invention is soybean lecithin 0.5 ⁇ 50 ⁇ g / ml; Cholesterol cholesterol lipid concentrate (chol) 0.1-30 ⁇ g / ml; And (+ ⁇ ) -tocopherol acetate 0.1 to 50 ⁇ g / ml.
  • the culture composition of the present invention is hepatocyte growth factor (HGF), transforming growth factor- ⁇ 3 (transforming growth factor- ⁇ 3, TGF- ⁇ 3) and platelet derived growth factor (platelet derived growth factor (PDGF-BB)) It may further comprise one or more selected from the group consisting of.
  • HGF hepatocyte growth factor
  • transforming growth factor- ⁇ 3 transforming growth factor- ⁇ 3, TGF- ⁇ 3
  • platelet derived growth factor platelet derived growth factor (PDGF-BB)
  • It may further comprise one or more selected from the group consisting of.
  • Culture composition of the present invention is liver growth factor (hepatocyte growth factor, HGF) 0.1 ⁇ 50ng / ml; Transforming growth factor- ⁇ 3 (TGF- ⁇ 3) 0.5-100 ng / ml; And platelet derived growth factor (platelet derived growth factor, PDGF-BB) may further comprise one or more selected from the group consisting of 0.5 ⁇ 100ng / ml.
  • HGF liver growth factor
  • TGF- ⁇ 3 Transforming growth factor- ⁇ 3
  • PDGF-BB platelet derived growth factor
  • the culture composition of the present invention is epidermal growth factor (EGF), ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt (ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt), phosphatidylcholine, phosphatidine sodium salt ( It may further include one or more selected from the group consisting of phosphatidic acid sodium salt), lithium chloride (lithium chloride) and L-glutathione (L-gluthathione).
  • EGF epidermal growth factor
  • ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt
  • phosphatidylcholine phosphatidine sodium salt
  • It may further include one or more selected from the group consisting of phosphatidic acid sodium salt), lithium chloride (lithium chloride) and L-glutathione (L-gluthathione).
  • Culture composition of the present invention is epidermal growth factor (epidermal growth factor, EGF) 0.5 ⁇ 200ng / ml; Ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt 0.5-200 ⁇ g / ml; Phosphatidylcholine 0.1-30 ⁇ g / ml; Phosphatidic acid sodium salt (0.1-30 ⁇ g / ml); Lithium chloride (Lithium chloride) 0.1 ⁇ 5mM and L- glutathione (L-gluthatione) may further comprise one or more selected from the group consisting of 0.1 ⁇ 10 ⁇ g / ml.
  • EGF epidermal growth factor
  • Ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt 0.5-200 ⁇ g / ml
  • Phosphatidylcholine 0.1-30 ⁇ g / ml
  • Phosphatidic acid sodium salt 0.1-30 ⁇ g / ml
  • Lithium chloride Li
  • the culturing composition of the present invention has an advantage of cultivating the dermal papilla cells using the serum-free medium and culturing the papilla cells more than twice as much as compared to the case of using the conventional serum papillary cells.
  • Figure 1 is a graph showing the results of measuring the number of cultured cells after culturing the dermal papilla cells in the medium or Promocell medium according to the present invention in Example 1.
  • Figure 2 shows a photograph of the cultured cells after culturing the dermal papilla cells in the medium or Promocell medium according to the present invention in Example 1.
  • Figure 3 shows the expression of VCAN (versican), CD133 and NES (nestin), the gene markers associated with dermal papilla cells in cells cultured using qPCR after culturing the dermal papilla cells in the medium or Promocell medium according to the present invention in Example 1 The result of measuring the level is shown in the graph.
  • NBCS newborn calf serum
  • FBS fetal bovine serum
  • the present invention after inoculating 2 ⁇ 10 6 cells of the dermal papilla cells into a 100 mm culture dish containing the medium having the composition of Table 1 (STK2 medium), and incubated in a 37% 5% carbon dioxide incubator.
  • a Promocell medium conventionally used as a dermal papilla cell medium was used as a control.
  • 4% fetal calf serum (FCS) 0.04 ml / ml
  • basic fibroblast growth factor 1 ng / ml
  • bovine pituitary extract 0.004 ml / ml
  • 5 ⁇ g / ml of human recombinant insulin as an additive in the Promocell medium.
  • Example 1 In order to compare the effect of the growth rate of the dermal papilla cells in the medium according to the present invention in Example 1, Promocell medium used as a comparative control in Example 1, and medium added with 10% NBCS (newborn calf serum) to DMEM medium; Or inoculated with the dermal papilla cells in the medium to which 10% FBS (fetal bovine serum) was added to the DMEM medium and cultured in the same manner as in Example 1 and then photographed the cultured dermal papilla cells for each medium is shown in FIG. .
  • NBCS newborn calf serum
  • the growth rate of dermal papilla cells in the medium compared with Promocell medium, the growth rate of dermal papilla cells in the medium added 10% newborn calf serum (NBCS) to DMEM medium and the medium added 10% FBS (fetal bovine serum) to DMEM medium Showed less than equal degree.
  • NBCS newborn calf serum
  • FBS fetal bovine serum

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Abstract

본 발명은 세포 중에서도 특히 모유두 세포의 배양용 조성물 및 이를 이용한 모유두 세포의 배양 방법에 관한 것으로, 보다 상세하게는 둘베코 변형 이글 배지(Dulbeco's Modified Eagle's Medium, DMEM); 및 MCDB104, MCDB105, MCDB153, MCDB201 및 MCBD202로부터 선택되는 배지;를 포함하는 모유두 세포의 배양용 조성물 및 이를 이용한 모유두 세포의 배양 방법에 관한 것이다. 본 발명의 배양용 조성물은 무혈청 배지임에도 이를 사용하여 모유두 세포를 배양하는 경우 종전의 일반적인 모유두 세포용 혈청 배지를 사용한 경우와 비교하여 모유두 세포의 배양 증식률이 2배 이상 뛰어난 장점이 있다.

Description

모유두 세포의 배양용 조성물 및 이를 이용한 모유두 세포의 배양 방법
본 발명은 세포 중에서도 특히 모유두 세포의 배양용 조성물 및 이를 이용한 모유두 세포의 배양 방법에 관한 것이다.
모유두 세포(dermal papilla cell, DPC)는 모낭의 기저부에 존재하는 세포로, 모낭을 구성하는 세포들에게 산소와 영양을 공급하여 모발의 성장과 모낭 주기 조절을 담당한다. 따라서 모유두 세포의 증식이 촉진되면 모발이 건강해지고 모발 성장이 촉진되며 탈모를 막을 수 있다. 모발의 성장은 모유두(dermal papilla)를 둘러싸고 있는 상피세포(epithelial cell)가 분열하여 모간(hair shaft)을 만들면서 진행되기 때문에 모유두 세포는 상피세포의 분열을 조절하는 중요한 역할을 한다. 또한 남성형 탈모증에서 남성호르몬이 모낭에 작용하는 부위 역시 모유두로서 모유두 세포는 발모에 있어 매우 중요한 역할을 하고 있다.
Jahoda(Jahoda CA, et al., Induction of hair growth by implantation of cultured dermal papilla cells., Nature, 311, pp.560-562, 1984) 등이 행한 연구에 따르면 쥐의 콧수염 모낭에서 모유두세포(dermal papilla cell)를 제거하자 모발의 성장이 일시적으로 중지하였다가 진피 근초로부터 세포가 이동하여 다시 모유두 세포를 형성하면서 모발의 성장이 다시 계속되었으며, 모낭의 아랫부분을 1/3 이하로 제거하면 진피 근초로부터 모유두 세포가 형성되고 외피 근초로부터 모기질 세포가 형성되어 모발의 성장이 계속되나 모낭의 아랫부분의 1/3 이상을 제거하면 모발의 성장이 중지된다고 보고하고 있다. 또한 모낭의 아랫부분 1/3 이상을 제거한 후, 분리된 모유두 세포를 다시 이식하자 모발의 성장이 계속되었다고 보고하면서, 모근을 형성하고 있는 모유두 세포는 모발의 생성 및 성장에 매우 중요한 역할을 하고 있다고 밝혔다.
한편, 이러한 연구 결과와 함께 모낭 및 모낭을 구성하는 다양한 세포들의 배양법 개발은 탈모기전 연구를 위한 중요한 단서를 제공하는 동시에 유용한 평가모델로 활용되고 있다.
본 발명의 일 목적은 모유두 세포를 대량으로 배양하기 위한 배지 조성물을 제공하는 것을 목적으로 한다.
본 발명의 다른 목적은 모유두 세포를 대량으로 배양하는 방법을 제공하는 것을 목적으로 한다.
본 발명의 다른 목적 및 이점은 하기의 발명의 상세한 설명, 청구범위 및 도면에 의해 보다 명확하게 된다.
본 발명의 일 구현 예에 따르면, 둘베코 변형 이글 배지(Dulbecco's Modified Eagle's Medium, DMEM); 및 MCDB104, MCDB105, MCDB153, MCDB201 및 MCDB202로부터 선택되는 배지;를 포함하는 모유두 세포의 배양용 조성물에 관한 것이다.
본 발명에서 상기 '모유두 세포'란, 간엽계 세포로서 모낭 최저부에 위치하고 모낭의 자기 재생을 위해 모낭 상피 줄기세포에 활성화 시그널을 보낸다. 말하자면 사령탑의 역할을 담당하고 있다고 생각되고 있는 세포를 말한다.
본 발명에서 상기 'DMEM(Dulbecco's Modified Eagle's Medium)'은 통상 배지에 사용하는 DMEM이며, 상기 B27 용액 (Gibco® B-27® Supplements, Life Technologies)은 비오틴, DL 알파 토코페놀 아세테이트, DL 알파 토코페놀, 비타민 A, BSA, 카탈라아제, 인슐린, 슈퍼옥사이드 디스뮤타제, 코티코스테론, D-갈락토오스, 에탄올아민 HCl, 글루타티온, L-카르니틴 HCl, 리놀테산, 리노레닉산, 프로게스테론, 푸트레신 2HCl, 나트륨 투석고(sodium selenite) 및 트리오도-1-티로닌을 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 둘베코 변형 이글 배지(Dulbecco's Modified Eagle's Medium, DMEM); 및 MCDB104, MCDB105, MCDB153, MCDB201 및 MCDB202로부터 선택되는 배지;를 0.5~1.5:1의 부피 비로 포함할 수 있고, 바람직하게는 0.75~1.25:1의 부피비로 포함할 수 있으며, 보다 바람직하게는 1:1의 부피비로 포함할 수 있다.
바람직하게는 본 발명의 배양용 조성물은 상기 둘베코 변형 이글 배지(DMEM) 및 MCDB202를 포함할 수 있고, 보다 바람직하게는 상기 둘베코 변형 이글 배지(DMEM) 및 상기 MCDB202를 1:1의 부피비로 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 염기성 섬유아세포성장인자(basic fibroblast growth factor, bFGF), 덱사메타손(dexamethasone), 인간 인슐린 재조합체, 트랜스페린(transferrin), 셀렌산(selenous acid) 및 우혈청 알부민(bovine serum albumin, BSA)으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 염기성 섬유아세포성장인자(basic fibroblast growth factor, bFGF) 0.1~100ng/ml; 덱사메타손(dexamethasone) 10-10~10-6M; 인슐린(insulin) 0.5~50㎍/ml; 트랜스페린(transferrin) 0.5~50㎍/ml; 셀렌산(selenous acid) 0.1~50ng/ml; 및 우혈청 알부민(bovine serum albumin, BSA) 0.1~50mg/ml으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 지질 농축물(Chemically defined lipid concentrate)을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 지질 농축물(Chemically defined lipid concentrate)을 0.001 내지 0.1x의 농도로 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 대두 레시틴, 콜레스테롤 지질 농축물(cholestreol lipid concentrate, chol) 및 (+α)-토코페롤 아세테이트로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 대두 레시틴 0.5~50㎍/ml; 콜레스테롤 지질 농축물(cholesterol lipid concentrate, chol) 0.1~30㎍/ml; 및 (+α)-토코페롤 아세테이트 0.1~50㎍/ml로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 간 성장 인자(hepatocyte growth factor, HGF), 변환 성장 인자-β3(transforming growth factor-β3, TGF-β3) 및 혈소판 유래 성장 인자(platelet derived growth factor, PDGF-BB)으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 간 성장 인자(hepatocyte growth factor, HGF) 0.1~50ng/ml; 변환 성장 인자-β3(transforming growth factor-β3, TGF-β3) 0.5~100ng/ml; 및 혈소판 유래 성장 인자(platelet derived growth factor, PDGF-BB) 0.5~100ng/ml으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 상피세포 성장 인자(epidermal growth factor, EGF), 아스코르브산 2-인산세스퀴마그네슘염(ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt), 포스파티딜콜린(phosphatidylcholine), 포스파티딘산소디움염(phosphatidic acid sodium salt), 염화 리튬(lithium chloride) 및 L-글루타티온(L-gluthathione)으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 상피세포 성장 인자(epidermal growth factor, EGF) 0.5~200ng/ml; 아스코르브산 2-인산세스퀴마그네슘염(ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt) 0.5~200㎍/ml; 포스파티딜콜린(phosphatidylcholine) 0.1~30㎍/ml; 포스파티딘산소디움염(phosphatidic acid sodium salt) 0.1~30㎍/ml; 염화 리튬(lithium chloride) 0.1~5mM 및 L-글루타티온(L-glutathione) 0.1~10㎍/ml으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물을 사용하여 모유두 세포를 배양하는 경우 종전의 일반적인 모유두 세포용 배지를 사용한 경우와 비교하여 모유두 세포의 배양 증식률이 2배 이상 뛰어난 장점이 있다.
본 발명의 다른 구현 예에 따르면, 둘베코 변형 이글 배지(Dulbecco's Modified Eagle's Medium, DMEM); 및 MCDB104, MCDB105, MCDB153, MCDB201 및 MCDB202로부터 선택되는 배지;를 포함하는 모유두 세포의 배양용 조성물에 모유두 세포를 배양하는 단계를 포함하는, 모유두 세포의 배양 방법에 관한 것이다.
본 발명의 모유두 세포의 기원이 되는 모유두 세포괴는 생체 시료, 바람직하게는 두피에서 그 자체 기존의 조작에 의해 조제할 수 있다. 예를 들면 Messenger, A. G., Br. J. Dermatol. 110, 685-689(1984)에 기재된 방법에 따를 수 있다. 예를 들면 두피 등을 5 mm 정도의 스트립형에 잘라, 인산 완충 생리 식염수(PBS) 등으로 세척한 후, 필요에 따라 단백질 분해 효소 등을 이용해 또는 외과적으로 처리하고 표피층 및 진피층을 제외해, 피하 지방층에만 하고 이어서 모낭을 물리적 수단, 예를 들면 핀 세트 등으로 단리한다. 모낭에서 모구부를 잘라내, 이 모구 부하부에서 모유두를 노출시켜 모유두 세포괴를 단리한다.
본 발명에서 상기 모유두 세포괴로부터 모유두 세포 1개의 단리 방법은 특별히 제한되는 것이 아니다. 바람직한 방법으로서는 상기 모유두 세포괴를 세포를 단일 부유 세포로 하는데 적당한 효소 용액, 예를 들면 Accumax(Chemicon사)로 처리하고 이어서 유리 캐필러리 등에 의해 단일 모유두 세포를 취출할 수 있다.
본 발명에서 상기와 같이 단리한 모유두 세포 1개는 피더 세포상에 파종해 배양할 수 있다. 피더 세포의 종류는 특히 제한되지 않지만 바람직하게는 WT4 세포(배양 마우스뺨히게 모유두 세포), Swiss 3 T3세포, MEF 세포(마우스태자성 섬유아세포) 등을 들 수 있다. 모유두 세포 1개에 대한 피더 세포의 양은 100~10,000개로 하는 것이 바람직하다.
본 발명에서 본 발명의 배양용 조성물에서의 단리 모유두 세포의 배양은 일반적으로 배양접시를 이용해 5% CO2 분위기, 37℃의 온도 하에서 배양기 내에 정치 배양할 수 있다. 성장 한계에 도달하면 배지를 교환해 또한 배양을 계속하며 계대 배양을 실시할 수 있다. 이렇게 하여 얻어진 배양 세포는 더욱 필요한 계대수에 걸쳐 계대 배양을 할 수 있다. 계대는 유두 세포가 원하는 양이 달성될 때까지 수행할 수 있고 예를 들어 10회 이상의 계대, 원하는 양이 많은 경우는 바람직하게는 15회 이상, 또한 바람직하게는 20회 이상까지 계대를 할 수 있다.
바람직하게는, 모유두 세포는 인간 모유두 세포이며 두피 모낭에서 채취할 수 있지만, 인간 유래로 한정될 것은 없고 인간 이외의 모든 포유 동물, 예를 들면 사람, 침팬지, 기타 영장류, 가축 동물, 예를 들면 개, 고양이, 토끼, 말, 양, 염소, 소, 그 밖에 실험용 동물, 예를 들면 래트, 마우스, 몰모트, 보다 바람직하게는 누드 마우스, 스키드 마우스, 누드 래트의 피부나 수염에서 유래해도 좋다. 사람 두피는 외과수술의 부산물로서 발생한 것을 사용할 수 있다. 두피는 본 발명의 목적에 비추어, 성인 남성 유래의 것을 사용하는 것이 망주위가 그에 한정될 것은 없고 아이 유래에서도 여성 유래라도 좋다. 사용하는 피부는 모유두가 정상적인 생리 가능을 지지하고 있는 한, 두발에 한정하지 않고 체모 등에 속하는 것을 선택해도 좋다. 일반적으로 바람직하게는, 두피 중 측두부나 후두부에서 유래하는 것이 좋다.
본 발명의 배양용 조성물은 둘베코 변형 이글 배지(Dulbecco's Modified Eagle's Medium, DMEM); 및 MCDB104, MCDB105, MCDB153, MCDB201 및 MCDB202로부터 선택되는 배지;를 0.5~1.5:1의 부피 비로 포함할 수 있고, 바람직하게는 0.75~1.25:1의 부피비로 포함할 수 있으며, 보다 바람직하게는 1:1의 부피비로 포함할 수 있다.
바람직하게는 본 발명의 배양용 조성물은 상기 둘베코 변형 이글 배지(DMEM) 및 MCDB202를 포함할 수 있고, 보다 바람직하게는 상기 둘베코 변형 이글 배지(DMEM) 및 상기 MCDB202를 1:1의 부피비로 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 염기성 섬유아세포성장인자(basic fibroblast growth factor, bFGF), 덱사메타손(dexamethasone), 인간 인슐린 재조합체, 트랜스페린(transferrin), 셀렌산(selenous acid) 및 우혈청 알부민(bovine serum albumin, BSA)으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 염기성 섬유아세포성장인자(basic fibroblast growth factor, bFGF) 0.1~100ng/ml; 덱사메타손(dexamethasone) 10-10~10-6M; 인슐린(insulin) 0.5~50㎍/ml; 트랜스페린(transferrin) 0.5~50㎍/ml; 셀렌산(selenous acid) 0.1~50ng/ml; 및 우혈청 알부민(bovine serum albumin, BSA) 0.1~50mg/ml으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 지질 농축물(Chemically defined lipid concentrate)을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 지질 농축물(Chemically defined lipid concentrate)을 0.001 내지 0.1x의 농도로 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 대두 레시틴, 콜레스테롤 지질 농축물(cholesterol lipid concentrate, chol) 및 (+α)-토코페롤 아세테이트로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 대두 레시틴 0.5~50㎍/ml; 콜레스테롤 지질 농축물(cholesterol lipid concentrate, chol) 0.1~30㎍/ml; 및 (+α)-토코페롤 아세테이트 0.1~50㎍/ml로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 간 성장 인자(hepatocyte growth factor, HGF), 변환 성장 인자-β3(transforming growth factor-β3, TGF-β3) 및 혈소판 유래 성장 인자(platelet derived growth factor, PDGF-BB)으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 간 성장 인자(hepatocyte growth factor, HGF) 0.1~50ng/ml; 변환 성장 인자-β3(transforming growth factor-β3, TGF-β3) 0.5~100ng/ml; 및 혈소판 유래 성장 인자(platelet derived growth factor, PDGF-BB) 0.5~100ng/ml으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 상피세포 성장 인자(epidermal growth factor, EGF), 아스코르브산 2-인산세스퀴마그네슘염(ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt), 포스파티딜콜린(phosphatidylcholine), 포스파티딘산소디움염(phosphatidic acid sodium salt), 염화 리튬(lithium chloride) 및 L-글루타티온(L-gluthathione)으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 상피세포 성장 인자(epidermal growth factor, EGF) 0.5~200ng/ml; 아스코르브산 2-인산세스퀴마그네슘염(ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt) 0.5~200㎍/ml; 포스파티딜콜린(phosphatidylcholine) 0.1~30㎍/ml; 포스파티딘산소디움염(phosphatidic acid sodium salt) 0.1~30㎍/ml; 염화 리튬(lithium chloride) 0.1~5mM 및 L-글루타티온(L-gluthatione) 0.1~10㎍/ml으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 배양용 조성물은 무혈청 배지임에도 이를 사용하여 모유두 세포를 배양하는 경우 종전의 일반적인 모유두 세포용 혈청 배지를 사용한 경우와 비교하여 모유두 세포의 배양 증식률이 2배 이상 뛰어난 장점이 있다.
도 1은 실시예 1에서 본 발명에 따른 배지 또는 Promocell 배지에 모유두 세포를 배양한 후 배양된 세포의 수를 측정한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 2는 실시예 1에서 본 발명에 따른 배지 또는 Promocell 배지에 모유두 세포를 배양한 후 배양된 세포를 촬영한 사진을 나타낸 것이다.
도 3은 실시예 1에서 본 발명에 따른 배지 또는 Promocell 배지에 모유두 세포를 배양한 후 qPCR을 이용하여 배양된 세포에서 모유두 세포와 관련된 유전자 마커인 VCAN(versican), CD133 및 NES(nestin)의 발현 수준을 측정한 결과를 그래프로 나타낸 것이다.
도 4는 비교예 1에서 Promocell 배지; DMEM 배지에 10% NBCS(newborn calf serum)를 첨가한 배지; 또는 DMEM 배지에 10% FBS(fetal bovine serum)를 첨가한 배지에 모유두 세포를 배양한 후 배양된 세포를 촬영한 사진을 나타낸 것이다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로서, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.
실시예
[실시예 1]
본 발명에 따라 하기 표 1의 조성을 갖는 배지(STK2 배지)가 포함된 100mm 배양 접시에 모유두 세포 2X106 세포를 접종한 뒤 37℃의 5% 이산화탄소 배양기에서 배양하였다. 단, 비교를 위하여 종래에 모유두 세포 배지로 사용되는 Promocell 배지를 대조군으로 사용하였다. 참고를 위하여, 상기 Promocell 배지에서 첨가 성분으로는 4% 소 태아 혈청(fetal calf serum, FCS) 0.04 ml/ml, 염기성 섬유아세포 성장인자 1 ng/ml, 소 뇌하수체 추출물(Bovine pituitary extract) 0.004 ml/ml, 및 인간 재조합 인슐린 5 μg/ml에 해당한다. 배양 후 각 배지 별 모유두 세포의 수를 측정하여 그 결과를 도 1에 그래프로 나타내었고, 각 배지 별 배양된 모유두 세포를 촬영한 사진을 도 2에 나타내었다 (이미지 확대배율: 40X). 또한, 배양 후 모유두 세포의 마커인 VCAN(versican), CD133 및 NES(nestin)의 발현 수준을 측정하여 그 결과를 도 3에 나타내었다.
Figure PCTKR2019009404-appb-T000001
도 1 및 2에서 보는 바와 같이, Promocell 배지에 비하여 본 발명에 따른 배지에 모유두 세포를 배양한 경우 1 계대(passage) 및 2 계대(passage) 배양된 세포의 수가 2배 이상 증가한 것을 확인할 수 있었다.
도 3에서 보는 바와 같이, Promocell 배지와 비교할 때, 본 발명의 배지에서 모유두 세포를 배양한 경우, 모유두 세포의 마커인 VCAN(versican), CD133 및 NES(nestin)의 발현 수준 또한 현저히 증가한 것을 확인할 수 있었다.
[비교예 1]
상기 실시예 1에서 본 발명에 따른 배지에서 모유두 세포의 증식률 효과를 비교하기 위하여, 상기 실시예 1에서 비교 대조군으로 사용한 Promocell 배지와, DMEM 배지에 10% NBCS(newborn calf serum)를 첨가한 배지; 또는 DMEM 배지에 10% FBS(fetal bovine serum)를 첨가한 배지에 모유두 세포를 접종하고 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 배양한 뒤 각 배지 별 배양된 모유두 세포를 촬영한 사진을 도 4에 나타내었다.
도 4에서 보는 바와 같이, Promocell 배지와 비교할 때, DMEM 배지에 10% NBCS(newborn calf serum)를 첨가한 배지와 DMEM 배지에 10% FBS(fetal bovine serum)를 첨가한 배지에서의 모유두 세포의 증식률은 동등 이하의 정도를 보였다. 상기 실시예 1에서 본 발명에 따른 배지에서 모유두 세포의 증식률이 상기 Promocell 배지에서의 모유두 세포의 증식률 보다 2배 이상 높은 것을 보았을 때, 본 발명에 따른 배지를 사용하는 경우 DMEM 배지에 10% NBCS(newborn calf serum)를 첨가한 배지; 또는 DMEM 배지에 10% FBS(fetal bovine serum)를 첨가한 배지 보다 모유두 세포의 배양 증식률이 현저히 뛰어날 것임을 용이하게 알 수 있었다.

Claims (10)

  1. 둘베코 변형 이글 배지(Dulbeco's Modified Eagle's Medium, DMEM); 및 MCDB104, MCDB105, MCDB153, MCDB201 및 MCDB202로부터 선택되는 배지;를 포함하는 모유두 세포의 배양용 조성물.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 배양용 조성물은 둘베코 변형 이글 배지; 및 상기 MCDB104, MCDB105, MCDB153, MCDB201 및 MCDB202로부터 선택되는 배지;를 0.5~1.5:1의 부피 비로 포함하는, 모유두 세포의 배양용 조성물.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 배양용 조성물은 둘베코 변형 이글 배지 및 MCDB201를 포함하는, 모유두 세포의 배양용 조성물.
  4. 제1항에 있어서,
    상기 배양용 조성물은 둘베코 변형 이글 배지 및 MCDB201를 1:1의 부피 비로 포함하는, 모유두 세포의 배양용 조성물.
  5. 제1항에 있어서,
    상기 배양용 조성물은 염기성 섬유아세포성장인자(basic fibroblast growth factor, bFGF) 0.1~100ng/ml; 덱사메타손(dexamethasone) 10-10~10-6M; 인슐린(insulin) 0.5~50㎍/ml; 트랜스페린(transferrin) 0.5~50㎍/ml; 셀렌산(selenous acid) 0.1~50ng/ml; 및 우혈청 알부민(bovine serum albumin, BSA) 0.1~50mg/ml으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함하는, 모유두 세포의 배양용 조성물.
  6. 제1항에 있어서,
    상기 배양용 조성물은 지질 농축물(Chemically defined lipid concentrate)을 0.001 내지 0.1x의 농도로 더 포함하는, 모유두 세포의 배양용 조성물.
  7. 제1항에 있어서,
    상기 배양용 조성물은 대두 레시틴 0.5~50㎍/ml; 콜레스테롤 지질 농축물(cholesterol lipid concentrate, chol) 0.1~30㎍/ml; 및 (+α)-토코페롤 아세테이트 0.1~50㎍/ml로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함하는, 모유두 세포의 배양용 조성물.
  8. 제1항에 있어서,
    상기 배양용 조성물은 간 성장 인자(hepatocyte growth factor, HGF) 0.1~50ng/ml; 변환 성장 인자-β3(transforming growth factor-β3, TGF-β3) 0.5~100ng/ml; 및 혈소판 유래 성장 인자(platelet derived growth factor, PDGF-BB) 0.5~100ng/ml으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함하는, 모유두 세포의 배양용 조성물.
  9. 제1항에 있어서,
    상기 배양용 조성물은 상피세포 성장 인자(epidermal growth factor, EGF) 0.5~200ng/ml; 아스코르브산 2-인산세스퀴마그네슘염(ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt) 0.5~200㎍/ml; 포스파티딜콜린(phosphatidylcholine) 0.1~30㎍/ml; 포스파티딘산소디움염(phosphatidic acid sodium salt) 0.1~30㎍/ml; 염화 리튬(lithium chloride) 0.1~5mM 및 L-글루타티온(L-glutathione) 0.1~10㎍/ml으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상을 더 포함하는, 모유두 세포의 배양용 조성물.
  10. 제1항 내지 제9항 중 어느 한 항의 배양용 조성물에 모유두 세포를 배양하는 단계를 포함하는, 모유두 세포의 배양 방법.
PCT/KR2019/009404 2018-08-29 2019-07-29 모유두 세포의 배양용 조성물 및 이를 이용한 모유두 세포의 배양 방법 WO2020045836A1 (ko)

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR102218727B1 (ko) * 2020-06-17 2021-02-23 한모바이오 주식회사 두피조직 유래 모유두세포의 분리 및 대량증식방법
KR102254911B1 (ko) 2020-08-12 2021-05-24 한모바이오 주식회사 천공을 통한 모유두세포 이식방법
KR102583168B1 (ko) * 2020-11-27 2023-09-26 (주)엑셀세라퓨틱스 로테논 및 알부민을 유효성분으로 포함하는 모유두 세포 성장용 배지 조성물
KR102376630B1 (ko) * 2021-12-20 2022-03-18 이효종 세포성장촉진 물질을 유효성분으로 함유하는 탈모 개선 또는 발모 촉진용 화장료 조성물
KR102453170B1 (ko) * 2022-03-22 2022-10-14 주식회사 프롬바이오 모유두세포를 배양하기 위한 무혈청 배지 조성물 및 이를 이용한 모유두세포의 배양 방법

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101022032B1 (ko) * 2007-07-20 2011-03-16 동국대학교 산학협력단 중간엽 줄기세포를 이용하여 모유두 조직을 제조하는 방법
WO2011159359A2 (en) * 2010-06-17 2011-12-22 Stemrd, Inc. Serum-free chemically defined cell culture medium
KR20120099686A (ko) * 2009-10-19 2012-09-11 트리스템 트레이딩 (사이프러스) 리미티드 재프로그래밍된 성숙 성체 세포를 이용한 치료
KR20120137404A (ko) * 2010-03-10 2012-12-20 가부시키가이샤 투셀 간엽계 줄기 세포를 포함한 세포 제제 및 그의 제조 방법

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101022032B1 (ko) * 2007-07-20 2011-03-16 동국대학교 산학협력단 중간엽 줄기세포를 이용하여 모유두 조직을 제조하는 방법
KR20120099686A (ko) * 2009-10-19 2012-09-11 트리스템 트레이딩 (사이프러스) 리미티드 재프로그래밍된 성숙 성체 세포를 이용한 치료
KR20120137404A (ko) * 2010-03-10 2012-12-20 가부시키가이샤 투셀 간엽계 줄기 세포를 포함한 세포 제제 및 그의 제조 방법
WO2011159359A2 (en) * 2010-06-17 2011-12-22 Stemrd, Inc. Serum-free chemically defined cell culture medium

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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WARREN, RAPHAEL ET AL: "Improved method for the isolation and cultivation of human scalp dermal papilla cells", JOURNAL OF INVESTIGATIVE DERMATOLOGY, vol. 98, no. 5, 1 May 1992 (1992-05-01), pages 693 - 699, XP009037059, ISSN: 0022-202X, DOI: 10.1111/1523-1747.ep12499909 *

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