WO2019194243A1 - 複合繊維及びその製造方法 - Google Patents

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WO2019194243A1
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acid sequence
motif
seq
fibroin
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佑之介 安部
翔太 冨樫
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Spiber株式会社
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    • D10B2211/20Protein-derived artificial fibres
    • D10B2211/22Fibroin

Definitions

  • the present invention relates to a composite fiber and a method for producing the same.
  • Crimpability is a very important property for spinning.
  • synthetic fibers having thermoplasticity such as nylon and polyester fibers
  • permanent crimpable fibers can be produced by utilizing heat.
  • raw silk obtained from silkworms is wrapped with sericin, and is converted into soft and glossy silk fibers (fibroin) by a scouring process.
  • an object of the present invention is to provide a new fiber having crimpability and a method for producing the same.
  • the present invention relates to the following inventions, for example.
  • a side-by-side type composite fiber in which a first component containing a modified fibroin and a second component containing a structural protein are joined and have latent crimping ability.
  • the structural protein is at least one selected from the group consisting of silk fibroin, spider silk fibroin, collagen, resilin, elastin, and keratin.
  • the modified fibroin is a modified fibroin (third modified fibroin) comprising a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m ,
  • the domain sequence has an amino acid sequence with a reduced content of n motif (A) corresponding to deletion of at least one or more (A) n motifs compared to naturally occurring fibroin,
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 2 to 27 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 2 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • the modified fibroin is a modified fibroin (fourth modified fibroin) comprising a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m , Compared with naturally-occurring fibroin, the content of glycine residues corresponding to at least one or more glycine residues in REP was replaced with another amino acid residue in the domain sequence was reduced.
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 2 to 27 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more. .
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 2 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • the modified fibroin is a modified fibroin (fifth modified fibroin) comprising a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m ,
  • the domain sequence has one or more amino acid residues in REP substituted with amino acid residues having a higher hydrophobicity index and / or one or more hydrophobicity in REP compared to naturally occurring fibroin.
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 2 to 27 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 2 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • the modified fibroin comprises a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m or Formula 2: [(A) n motif-REP] m- (A) n motif ( A sixth modified fibroin), Glutamine residue content corresponding to the domain sequence having one or more glutamine residues in REP deleted or substituted with other amino acid residues compared to naturally occurring fibroin
  • the composite fiber according to any one of [1] to [4], in which has a reduced amino acid sequence.
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 2 to 27 amino acid residues
  • (A) the number of alanine residues is 80% with respect to the total number of amino acid residues in n motif.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 2 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • [4-5] The composite fiber according to any one of [1] to [4], wherein the modified fibroin has a limiting oxygen index (LOI) value of 26.0 or more.
  • LOI limiting oxygen index
  • [4-6] The composite fiber according to any one of [1] to [4], wherein the modified fibroin has a maximum hygroscopic exotherm calculated in accordance with the following formula A of more than 0.025 ° C./g.
  • the concentration of the modified fibroin in the first dope solution is 5 to 40% by mass based on the total mass of the first dope solution;
  • the above solvents are hexafluoroisopropanol, hexafluoroacetone, dimethyl sulfoxide, N, N-dimethylformamide, N, N-dimethylacetamide, 1,3-dimethyl-2-imidazolidone, N-methyl-2-pyrrolidone, acetonitrile, N Selected from the group consisting of an aqueous solution containing methylmorpholine-N-oxide and formic acid and at least one selected from the group consisting of urea, guanidine, sodium dodecyl sulfate, lithium bromide, calcium chloride and lithium thiocyanate
  • the method according to any one of [5] to [7], comprising at least one kind.
  • the modified fibroin is a modified fibroin comprising a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m ,
  • the domain sequence has an amino acid sequence with a reduced content of n motif (A) corresponding to deletion of at least one or more (A) n motifs compared to naturally occurring fibroin, [5] The method according to any one of [11].
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 2 to 27 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 2 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • the modified fibroin comprises a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m , Compared with naturally-occurring fibroin, the content of glycine residues corresponding to at least one or more glycine residues in REP was replaced with another amino acid residue in the domain sequence was reduced.
  • the method according to any one of [5] to [11], which has an amino acid sequence.
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 2 to 27 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 2 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • the modified fibroin comprises a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m ,
  • the domain sequence has one or more amino acid residues in REP substituted with amino acid residues having a higher hydrophobicity index and / or one or more hydrophobicity in REP compared to naturally occurring fibroin.
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 2 to 27 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 83% or more.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 2 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • the modified fibroin comprises a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m or Formula 2: [(A) n motif-REP] m- (A) n motif; Glutamine residue content corresponding to the domain sequence having one or more glutamine residues in REP deleted or substituted with other amino acid residues compared to naturally occurring fibroin [5] to [11], wherein has a reduced amino acid sequence.
  • (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 2 to 27 amino acid residues
  • (A) the number of alanine residues is 80% with respect to the total number of amino acid residues in n motif. That's it.
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 2 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • [11-5] The method according to any one of [5] to [11], wherein the modified fibroin has a limiting oxygen index (LOI) value of 26.0 or more.
  • LOI limiting oxygen index
  • [11-6] The method according to any one of [5] to [11], wherein the modified fibroin has a maximum hygroscopic exotherm determined in accordance with the following formula A of more than 0.025 ° C./g.
  • a new fiber having crimpability can be provided. According to the present invention, it is possible to provide a composite fiber that is excellent in crimpability and is useful as a crimped yarn and a spun yarn. Moreover, according to this invention, high intensity
  • the conjugate fiber according to the first embodiment of the present invention the first component containing the modified fibroin and the second component containing the structural protein are joined side by side. That is, the cross-sectional shape of the conjugate fiber according to this embodiment is a shape in which the first component and the second component are joined to each other, for example, a semicircular first component and a semicircular second component are combined to form a circle. ing.
  • the ratio between the first component and the second component may not be 50:50, and may be appropriately changed such as 30:70, 20:80, and the like.
  • the 1st component and the 2nd component may be extended
  • the joining surface is gradually rotated and arranged in the left and right in another part.
  • the hydrophobicity of the modified fibroin and the hydrophobicity of the structural protein are different from each other.
  • the first component of the conjugate fiber according to this embodiment includes modified fibroin.
  • the modified fibroin contained in the first component has a property of contracting when brought into contact with an aqueous medium to be described later (hereinafter also referred to as “water shrinkability”). Further, for example, when the fiber containing the modified fibroin is brought into contact with an aqueous medium in a state where no tension is applied, the fiber is contracted and crimped (constricted). Thereby, the latent crimping ability is exhibited in the fiber containing the modified fibroin.
  • the modified fibroin is a protein comprising a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • an amino acid sequence (N-terminal sequence and C-terminal sequence) may be further added to either one or both of the N-terminal side and the C-terminal side of the domain sequence.
  • the N-terminal sequence and the C-terminal sequence are not limited to these, but are typically regions having no amino acid motif repeat characteristic of fibroin and consisting of about 100 amino acids.
  • the modified fibroin is a modified spider silk fibroin, the heat retention, moisture absorption heat generation and / or flame retardancy are more excellent.
  • modified fibroin means an artificially produced fibroin (artificial fibroin).
  • the modified fibroin may be a fibroin whose domain sequence is different from the amino acid sequence of naturally occurring fibroin, or may be a fibroin having the same amino acid sequence as that of naturally occurring fibroin.
  • Natural fibroin as used herein is also a protein comprising a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the amino acid sequence of naturally-occurring fibroin may be used as it is, depending on the amino acid sequence of naturally-occurring fibroin.
  • the amino acid sequence may be modified (for example, the amino acid sequence may be modified by modifying the gene sequence of the cloned natural fibroin), and may be artificially designed and used independently of the natural fibroin. It may be synthesized (for example, one having a desired amino acid sequence by chemically synthesizing a nucleic acid encoding the designed amino acid sequence).
  • domain sequence refers to a fibroin-specific crystal region (typically corresponding to the (A) n motif in the amino acid sequence) and an amorphous region (typically in the REP of the amino acid sequence). Is equivalent to the amino acid sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • (A) n motif represents an amino acid sequence mainly composed of alanine residues, and n is 2 to 20, preferably 4 to 20, more preferably 8 to 20, still more preferably 10 to 20, and even more. Preferably, it may be an integer of 4 to 16, still more preferably 8 to 16, particularly preferably 10 to 16.
  • the ratio of the number of alanine residues to the total number of amino acid residues in the n motif may be 40% or more, preferably 60% or more, more preferably 70% or more, and 80 % Or more, more preferably 90% or more, and may be 100% (meaning that it is composed of only alanine residues).
  • REP indicates an amino acid sequence composed of 2 to 200 amino acid residues, 10 to 40, 10 to 60, 10 to 80, 10 to 100, 10 to 120, 10 to 140, 10 to 160, or 10 to 180 amino acids. It may be an amino acid sequence composed of residues.
  • m represents an integer of 2 to 300, 8 to 300, 10 to 300, 20 to 300, 40 to 300, 60 to 300, 80 to 300, 10 to 200, 20 to 200, 20 to 180, 20 to 160, It may be an integer from 20 to 140 or 20 to 120.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REPs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • a protein containing the amino acid sequence (PRT410) represented by SEQ ID NO: 13 can be mentioned.
  • the modified fibroin is, for example, a modification of the amino acid sequence corresponding to, for example, substitution, deletion, insertion and / or addition of one or more amino acid residues to the cloned natural fibroin gene sequence. Can be obtained at Substitution, deletion, insertion and / or addition of amino acid residues can be carried out by methods well known to those skilled in the art such as partial-directed mutagenesis. Specifically, Nucleic Acid Res. 10, 6487 (1982), Methods in Enzymology, 100, 448 (1983), and the like.
  • Naturally-derived fibroin is a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m , and specific examples include fibroin produced by insects or spiders.
  • fibroin produced by insects include, for example, Bombyx mori, Kwako (Bombyx mandarina), Tenaea (Antheraea palaniii), and ⁇ ⁇ (Eriothyraminey). ), Silkworms (Samia cythia), chestnut worms (Caligura japonica), Chussa moth (Anthereaea mylitta), silkworms produced by silkworms such as Antheraea assamata, and vespasima worms Examples include silk proteins.
  • fibroin produced by insects include silkworm fibroin L chain (GenBank accession number M76430 (base sequence), AAA27840.1 (amino acid sequence)).
  • Fibroin produced by spiders includes, for example, spiders belonging to the genus spider (Araneus spp.) Such as the spider spider, the spider spider, the red spider spider, and the bean spider, the genus spiders of the genus Araneus, the spider spider spider, the spider spider genus e Spiders, spiders such as spiders, spiders belonging to the genus Spider, spiders belonging to the genus Pronos, spiders belonging to the genus Trinofunda, such as Torinofundamas (genus Cyrtarachne) Spiders belonging to the genus (Gasteracantha), spiders belonging to the genus Spider (Ordgarius genus), such as the spiders, the spiders, and the spiders belonging to the genus Ordgarius Spiders belonging to the genus Argiope, such as the genus Argiope, spiders belonging to the genus Arachnura, such as the white-tailed spider, spiders belonging to the
  • Spiders belonging to the genus Azumigumi (Menosira)
  • spiders belonging to the genus Dyschiriognatha (genus Dyschiriognatha) such as the common spider spider, the black spider spider, the genus Spider genus belonging to the genus Spider belonging to the genus and the genus Spider belonging to the genus Spider belonging to the genus
  • Produced by spiders belonging to the family Tetragnathidae such as spiders belonging to the genus Prostenops
  • Examples include spider silk protein.
  • the spider silk protein include dragline proteins such as MaSp (MaSp1 and MaSp2) and ADF (ADF3 and ADF4), MiSp (MiSp1 and MiSp2), and the like.
  • fibroin produced by spiders include, for example, fibroin-3 (adf-3) [derived from Araneus diadematus] (GenBank accession numbers AAC47010 (amino acid sequence), U47855 (base sequence)), fibroin- 4 (adf-4) [derived from Araneus diadematus] (GenBank accession number AAC47011 (amino acid sequence), U47856 (base sequence)), dragline silk protein spidrin 1 [derived from Nephila clavies (GenBank accession number AAC4, amino acid sequence A04) U37520 (base sequence)), major sample spidroin 1 [La rodectus hesperus derived] (GenBank accession number ABR68856 (amino acid sequence), EF595246 (base sequence)), dragline silk protein spidroin 2 [Nephila clavata derived] (GenBank accession number AAL32447, amino acid sequence 45, amino acid sequence) major ampulate s
  • Naturally derived fibroin include fibroin whose sequence information is registered in NCBI GenBank.
  • sequence information is registered in NCBI GenBank.
  • spidin, sample, fibroin, “silk and polypeptide”, or “silk and protein” is described as a keyword in DEFINITION from sequences including INV as DIVISION among the sequence information registered in NCBI GenBank. It can be confirmed by extracting a character string of a specific product from the sequence, CDS, and a sequence in which the specific character string is described from SOURCE to TISSUE TYPE.
  • the modified fibroin may be modified silk fibroin (modified from the amino acid sequence of silk protein produced by silkworm) or modified spider silk fibroin (modified from the amino acid sequence of spider silk protein produced by spiders). There may be.
  • modified fibroin a modified spider silk fibroin is preferable.
  • modified fibroin derived from a large sphincter bookmarker protein produced in a spider large bottle-like line
  • first modified fibroin modified fibroin with reduced glycine residue content
  • second modified fibroin modified fibroin with reduced content of n motif
  • third modified fibroin modified fibroin with reduced content of n motif
  • content of glycine residue and (A) content of n motif was reduced
  • a modified fibroin (4th modified fibroin) is mentioned.
  • modified fibroin is excellent in flame retardancy, moisture absorption heat generation, and heat retention, fireproof clothing (for example, for firefighting clothing, rescue), fireproof gloves (for example, laboratory, industrial, cooking), gloves It is also suitable for use in winter clothes such as mufflers, sweaters, outerwear and jackets, padding for winter clothes, innerwear, sportswear, shirts, bedding, and padding for bedding.
  • Examples of the first modified fibroin include a protein comprising a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • (A) the number of amino acid residues of the n motif is preferably an integer of 3 to 20, more preferably an integer of 4 to 20, still more preferably an integer of 8 to 20, and an integer of 10 to 20 Is more preferable, an integer of 4 to 16 is still more preferable, an integer of 8 to 16 is particularly preferable, and an integer of 10 to 16 is most preferable.
  • the number of amino acid residues constituting REP is preferably 10 to 200 residues, more preferably 10 to 150 residues, and 20 to 100 residues.
  • the total number of glycine residues, serine residues and alanine residues contained in the amino acid sequence represented by the formula 1: [(A) n motif-REP] m is an amino acid residue.
  • the total number is preferably 40% or more, more preferably 60% or more, and even more preferably 70% or more.
  • the first modified fibroin comprises an amino acid sequence unit represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m , and the C-terminal sequence is represented by any one of SEQ ID NOs: 1 to 3 or It may be a polypeptide that is an amino acid sequence having 90% or more homology with the amino acid sequence shown in any one of SEQ ID NOs: 1 to 3.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 is identical to the amino acid sequence consisting of 50 amino acids at the C-terminal of the amino acid sequence of ADF3 (GI: 1263287, NCBI), and the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 is the sequence
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 is identical to the amino acid sequence obtained by removing 20 residues from the C-terminal, and the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 has 29 residues removed from the C-terminal of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1. It is identical to the amino acid sequence.
  • modified fibroin As a more specific example of the first modified fibroin, (1-i) an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4 (recombinant spider silk protein ADF3KaiLargeNRSH1), or (1-ii) an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4 and 90 Mention may be made of modified fibroin comprising an amino acid sequence having a sequence identity of at least%. The sequence identity is preferably 95% or more.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4 is an amino acid sequence of ADF3 in which an amino acid sequence (SEQ ID NO: 5) consisting of a start codon, a His10 tag and an HRV3C protease (Human rhinovirus 3C protease) recognition site is added to the N-terminus.
  • the 13th repeat region was increased to approximately double, and the translation was mutated to terminate at the 1154th amino acid residue.
  • the C-terminal amino acid sequence of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 is identical to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3.
  • the modified fibroin (1-i) may be composed of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4.
  • the second modified fibroin has an amino acid sequence whose domain sequence has a reduced content of glycine residues compared to naturally occurring fibroin. It can be said that the second modified fibroin has an amino acid sequence corresponding to at least one or more glycine residues in REP substituted with another amino acid residue as compared with naturally occurring fibroin. .
  • the second modified fibroin has a domain sequence of GGX and GPGXX in REP (where G is a glycine residue, P is a proline residue, and X is an amino acid residue other than glycine) as compared to naturally occurring fibroin.
  • G is a glycine residue
  • P is a proline residue
  • X is an amino acid residue other than glycine
  • at least one glycine residue in at least one or more of the motif sequences is substituted with another amino acid residue. May be.
  • the ratio of the motif sequence in which the above glycine residue is replaced with another amino acid residue may be 10% or more with respect to the entire motif sequence.
  • the second modified fibroin comprises a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m , and is located on the most C-terminal side from the domain sequence (A) from the n motif to the domain sequence.
  • the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in the n motif may be 83% or more, preferably 86% or more, more preferably 90% or more, and 95% or more. More preferably, it is 100% (meaning that it is composed only of alanine residues).
  • the second modified fibroin is preferably one in which the content ratio of the amino acid sequence consisting of XGX is increased by substituting one glycine residue of the GGX motif with another amino acid residue.
  • the content ratio of the amino acid sequence consisting of GGX in the domain sequence is preferably 30% or less, more preferably 20% or less, still more preferably 10% or less, % Or less is even more preferable, 4% or less is even more preferable, and 2% or less is particularly preferable.
  • the content ratio of the amino acid sequence consisting of GGX in the domain sequence can be calculated by the same method as the method for calculating the content ratio (z / w) of the amino acid sequence consisting of XGX below.
  • a fibroin modified fibroin or naturally-occurring fibroin containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m , (A) n located closest to the C-terminal side from the domain sequence
  • An amino acid sequence consisting of XGX is extracted from all REPs included in the sequence excluding the sequence from the motif to the C-terminal of the domain sequence.
  • z / w (%) can be calculated by dividing z by w.
  • z / w is preferably 50.9% or more, more preferably 56.1% or more, further preferably 58.7% or more, and 70% or more. It is still more preferable that it is 80% or more. Although there is no restriction
  • the second modified fibroin is obtained by, for example, modifying a cloned natural fibroin gene sequence so as to encode another amino acid residue by substituting at least a part of a base sequence encoding a glycine residue.
  • a glycine residue in GGX motif and GPGXX motif may be selected as a glycine residue to be modified, or substitution may be performed so that z / w is 50.9% or more.
  • an amino acid sequence satisfying the above-described aspect can be designed from the amino acid sequence of naturally derived fibroin, and a nucleic acid encoding the designed amino acid sequence can be obtained by chemical synthesis.
  • one or more amino acid residues are further substituted or deleted.
  • the amino acid sequence corresponding to the insertion and / or addition may be modified.
  • the other amino acid residue is not particularly limited as long as it is an amino acid residue other than glycine residue, but valine (V) residue, leucine (L) residue, isoleucine (I) residue, methionine ( M) hydrophobic amino acid residues such as proline (P) residue, phenylalanine (F) residue and tryptophan (W) residue, glutamine (Q) residue, asparagine (N) residue, serine (S ) Residues, lysine (K) residues and hydrophilic amino acid residues such as glutamic acid (E) residues are preferred, and valine (V) residues, phenylalanine (F) residues, leucine (L) residues, isoleucine ( I) residue and glutamine (Q) residue are more preferred, and glutamine (Q) residue is more preferred.
  • fibroin More specific examples of fibroin include (2-i) SEQ ID NO: 6 (Met-PRT380), SEQ ID NO: 7 (Met-PRT410), SEQ ID NO: 8 (Met-PRT525) or SEQ ID NO: 9 (Met-PRT799).
  • a modified fibroin comprising the amino acid sequence shown or (2-ii) an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 or SEQ ID NO: 9 be able to.
  • the modified fibroin (2-i) will be described.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 is obtained by substituting GQX for all GGX in the REP of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 10 (Met-PRT313) corresponding to naturally occurring fibroin.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6, wherein every two (A) n motifs are deleted from the N-terminal side to the C-terminal side, and further before the C-terminal sequence.
  • One [(A) n motif-REP] is inserted into the.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8 has two alanine residues inserted at the C-terminal side of each (A) n motif of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7, and a part of glutamine (Q) residues. Substituted with a serine (S) residue and a part of the amino acid on the C-terminal side is deleted.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 9 is a region of 20 domain sequences present in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 (however, several amino acid residues on the C-terminal side of the region are substituted). The Hinge and His tags are added to the C-terminus of the sequence repeated 4 times.
  • the value of z / w in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 10 (corresponding to naturally occurring fibroin) is 46.8%.
  • the z / w values of the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 6, the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 7, the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 8, and the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 9 are 58.7%, 70.1%, 66.1% and 70.0%.
  • the value of x / y at the ratio of the amino acid sequences shown in SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 and SEQ ID NO: 9 (described later) 1: 1.8 to 11.3 is: 15.0%, 15.0%, 93.4%, 92.7% and 89.8%, respectively.
  • the modified fibroin (2-i) may be composed of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 or SEQ ID NO: 9.
  • the modified fibroin (2-ii) includes an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 or SEQ ID NO: 9.
  • the modified fibroin of (2-ii) is also a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the sequence identity is preferably 95% or more.
  • the modified fibroin of (2-ii) has 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 or SEQ ID NO: 9, and is contained in REP (XGX ( Where X is an amino acid residue other than glycine.) Z / w where z is the total number of amino acid residues of the amino acid sequence consisting of z and w is the total number of amino acid residues of REP in the domain sequence. Is preferably 50.9% or more.
  • the second modified fibroin may contain a tag sequence at one or both of the N-terminal and C-terminal. This makes it possible to isolate, immobilize, detect and visualize the modified fibroin.
  • tag sequences include affinity tags that use specific affinity (binding property, affinity) with other molecules.
  • affinity tag include a histidine tag (His tag).
  • His tag is a short peptide with about 4 to 10 histidine residues, and has the property of binding specifically to metal ions such as nickel. Therefore, the isolation of modified fibroin by metal chelating chromatography (chelating metal chromatography) Can be used.
  • Specific examples of the tag sequence include the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 11 (amino acid sequence including His tag sequence and hinge sequence).
  • GST glutathione-S-transferase
  • MBP maltose-binding protein
  • an “epitope tag” using an antigen-antibody reaction can also be used.
  • a peptide (epitope) exhibiting antigenicity as a tag sequence, an antibody against the epitope can be bound.
  • HA peptide sequence of hemagglutinin of influenza virus
  • myc tag peptide sequence of hemagglutinin of influenza virus
  • FLAG tag peptide sequence of hemagglutinin of influenza virus
  • a tag sequence that can be separated with a specific protease can also be used.
  • the modified fibroin from which the tag sequence has been separated can also be recovered.
  • modified fibroin containing a tag sequence (2-iii) the amino acid represented by SEQ ID NO: 12 (PRT380), SEQ ID NO: 13 (PRT410), SEQ ID NO: 14 (PRT525) or SEQ ID NO: 15 (PRT799)
  • Examples include (2-iv) modified fibroin comprising an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence shown in (2-iv) SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 or SEQ ID NO: 15. .
  • amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 16 are SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 and SEQ ID NO: 9, respectively.
  • amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 11 is added to the N-terminus of the amino acid sequence shown.
  • the modified fibroin may be composed of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 or SEQ ID NO: 15.
  • the modified fibroin (2-iv) includes an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 or SEQ ID NO: 15.
  • the modified fibroin of (2-iv) is also a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the sequence identity is preferably 95% or more.
  • the modified fibroin (2-iv) has an XGX (which has 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 or SEQ ID NO: 15 and is contained in REP ( Where X is an amino acid residue other than glycine.) Z / w where z is the total number of amino acid residues of the amino acid sequence consisting of z and w is the total number of amino acid residues of REP in the domain sequence. Is preferably 50.9% or more.
  • the second modified fibroin may contain a secretion signal for releasing the protein produced in the recombinant protein production system to the outside of the host.
  • the sequence of the secretion signal can be appropriately set according to the type of host.
  • the third modified fibroin has an amino acid sequence in which the domain sequence has a reduced content of (A) n motif compared to naturally occurring fibroin. It can be said that the domain sequence of the third modified fibroin has an amino acid sequence corresponding to the deletion of at least one or more (A) n motifs, as compared to naturally occurring fibroin.
  • the third modified fibroin may have an amino acid sequence corresponding to 10% to 40% deletion of the (A) n motif from naturally occurring fibroin.
  • the third modification fibroin its domain sequence, compared to the naturally occurring fibroin, at least from the N-terminal side toward the C-terminal one to three (A) n motif every one (A) n motif May have an amino acid sequence corresponding to deletion of.
  • the third modified fibroin has a domain sequence that is at least two consecutive from the N-terminal side to the C-terminal side compared to the naturally occurring fibroin (A) deletion of the n motif, and one (A ) It may have an amino acid sequence corresponding to the deletion of the n motif repeated in this order.
  • the third modified fibroin may have an amino acid sequence whose domain sequence corresponds to that at least every two (A) n motifs are deleted from the N-terminal side to the C-terminal side. .
  • the third modified fibroin includes a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m , and two adjacent [(A) n motifs from the N-terminal side toward the C-terminal side. -REP]
  • the ratio of the number of amino acid residues in the other REP is 1.8 to
  • x the maximum total value of the total number of amino acid residues of two adjacent [(A) n motif-REP] units that becomes 11.3
  • x the total number of amino acid residues in the domain sequence is y
  • it may have an amino acid sequence in which x / y is 20% or more, 30% or more, 40% or more, or 50% or more.
  • the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in the n motif may be 83% or more, preferably 86% or more, more preferably 90% or more, and 95% or more. More preferably, it is 100% (meaning that it is composed only of alanine residues).
  • FIG. 1 shows a domain sequence obtained by removing the N-terminal sequence and the C-terminal sequence from the modified fibroin.
  • the domain sequence is from the N-terminal side (left side): (A) n motif-first REP (50 amino acid residues)-(A) n motif-second REP (100 amino acid residues)-(A) n Motif-third REP (10 amino acid residues)-(A) n motif-fourth REP (20 amino acid residues)-(A) n motif-fifth REP (30 amino acid residues)-(A) It has a sequence called n motif.
  • FIG. 1 includes pattern 1 (comparison between the first REP and the second REP, and comparison between the third REP and the fourth REP), pattern 2 (comparison between the first REP and the second REP, and 4th REP and 5th REP), pattern 3 (2nd REP and 3rd REP comparison, 4th REP and 5th REP comparison), pattern 4 (first REP and Comparison of the second REP).
  • pattern 1 compare between the first REP and the second REP, and comparison between the third REP and the fourth REP
  • pattern 2 comparison between the first REP and the second REP, and 4th REP and 5th REP
  • pattern 3 (2nd REP and 3rd REP comparison, 4th REP and 5th REP comparison
  • pattern 4 first REP and Comparison of the second REP
  • the number of amino acid residues of each REP in the two adjacent [(A) n motif-REP] units selected is compared.
  • each pattern the number of all amino acid residues of two adjacent [(A) n motif-REP] units indicated by solid lines is added (not only REP but also (A) the number of amino acid residues of the n motif. is there.). Then, the total value added is compared, and the total value (maximum value of the total value) of the pattern having the maximum total value is set as x. In the example shown in FIG. 1, the total value of pattern 1 is the maximum.
  • x / y (%) can be calculated by dividing x by the total number of amino acid residues y of the domain sequence.
  • x / y is preferably 50% or more, more preferably 60% or more, still more preferably 65% or more, and even more preferably 70% or more. Preferably, it is still more preferably 75% or more, and particularly preferably 80% or more. There is no restriction
  • x / y is preferably 89.6% or more, and when the jagged ratio is 1: 1.8 to 3.4, x / y / Y is preferably 77.1% or more, and when the jagged ratio is 1: 1.9 to 8.4, x / y is preferably 75.9% or more, and the jagged ratio is 1 In the case of 1.9 to 4.1, x / y is preferably 64.2% or more.
  • a plurality of third modified fibroins are present in the domain sequence (A)
  • x / y is 46.4% or more It is preferably 50% or more, more preferably 55% or more, still more preferably 60% or more, still more preferably 70% or more, and more preferably 80% or more. It is particularly preferred.
  • x / y in naturally derived fibroin will be described.
  • 663 types of fibroin (of which 415 types were derived from spiders) were extracted.
  • x / y is calculated from the amino acid sequence of naturally derived fibroin composed of the domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m by the above-described calculation method.
  • FIG. 3 shows the results when the jagged ratio is 1: 1.9 to 4.1.
  • the horizontal axis indicates x / y (%), and the vertical axis indicates frequency.
  • x / y in naturally derived fibroin is less than 64.2% (the highest, 64.14%).
  • one or a plurality of sequences encoding the n motif is deleted so that x / y is 64.2% or more from the cloned gene sequence of naturally occurring fibroin.
  • an amino acid sequence corresponding to the deletion of one or more (A) n motifs is designed so that x / y is 64.2% or more from the amino acid sequence of naturally occurring fibroin. It can also be obtained by chemically synthesizing a nucleic acid encoding the amino acid sequence.
  • one or more amino acid residues are further substituted, deleted, inserted and / or added.
  • the amino acid sequence corresponding to this may be modified.
  • third modified fibroin examples include (3-i) SEQ ID NO: 17 (Met-PRT399), SEQ ID NO: 7 (Met-PRT410), SEQ ID NO: 8 (Met-PRT525), or SEQ ID NO: 9 (Met -PRT799), or (3-ii) an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 or SEQ ID NO: 9, Mention may be made of modified fibroin.
  • the modified fibroin (3-i) will be described.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 17 is derived from the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 10 (Met-PRT313) corresponding to naturally-occurring fibroin from the N-terminal side to the C-terminal side every two (A) n
  • the motif is deleted, and one [(A) n motif-REP] is inserted before the C-terminal sequence.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 or SEQ ID NO: 9 is as described in the second modified fibroin.
  • the value of x / y in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 10 (corresponding to naturally-occurring fibroin) at a jagged ratio of 1: 1.8 to 11.3 is 15.0%.
  • the value of x / y in the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 17 and the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 7 are both 93.4%.
  • the value of x / y in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8 is 92.7%.
  • the value of x / y in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 9 is 89.8%.
  • the z / w values in the amino acid sequences shown in SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 and SEQ ID NO: 9 are 46.8%, 56.2%, 70.1% and 66. respectively. 1% and 70.0%.
  • the modified fibroin (3-i) may consist of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 or SEQ ID NO: 9.
  • the modified fibroin (3-ii) includes an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 or SEQ ID NO: 9.
  • the modified fibroin of (3-ii) is also a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the sequence identity is preferably 95% or more.
  • the modified fibroin of (3-ii) has 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 or SEQ ID NO: 9, and from the N-terminal side to the C-terminal side
  • the number of amino acid residues of REP of two adjacent [(A) n motif-REP] units is sequentially compared, and the number of amino acid residues of REP having a small number of amino acid residues is 1, the other
  • x / y is 64.2% or more, where x is the maximum total value of the total number of bases and y is the total number of amino acid residues in the domain sequence.
  • the third modified fibroin may contain the tag sequence described above at one or both of the N-terminal and C-terminal.
  • modified fibroin containing a tag sequence 3-iii) amino acids represented by SEQ ID NO: 18 (PRT399), SEQ ID NO: 13 (PRT410), SEQ ID NO: 14 (PRT525) or SEQ ID NO: 15 (PRT799)
  • a modified fibroin comprising an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the sequence or (3-iv) the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 or SEQ ID NO: 15. .
  • amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 and SEQ ID NO: 15 are SEQ ID NO: 11 at the N-terminus of the amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8 and SEQ ID NO: 9, respectively. Are added to the amino acid sequence (including His tag sequence and hinge sequence).
  • the modified fibroin may be composed of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 or SEQ ID NO: 15.
  • the modified fibroin (3-iv) comprises an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 or SEQ ID NO: 15.
  • the modified fibroin of (3-iv) is also a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the sequence identity is preferably 95% or more.
  • the modified fibroin (3-iv) has a sequence identity of 90% or more with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 or SEQ ID NO: 15, and from the N-terminal side to the C-terminal side.
  • the other X is the maximum total value of the total number of amino acid residues of two adjacent [(A) n motif-REP] units with a ratio of the number of amino acid residues of REP of 1.8 to 11.3.
  • x / y is preferably 64.2% or more.
  • the third modified fibroin may contain a secretion signal for releasing the protein produced in the recombinant protein production system to the outside of the host.
  • the sequence of the secretion signal can be appropriately set according to the type of host.
  • the fourth modified fibroin has an amino acid sequence whose domain sequence has a reduced glycine residue content in addition to (A) a reduced content of the n motif compared to naturally occurring fibroin. It is what you have.
  • the domain sequence of the fourth modified fibroin has at least one or more (A) n motifs deleted as compared to naturally occurring fibroin, and at least one or more glycine residues in the REP. It can be said to have an amino acid sequence corresponding to the substitution with another amino acid residue. That is, it is a modified fibroin having the characteristics of the second modified fibroin described above and the third modified fibroin. Specific embodiments and the like are as described in the second modified fibroin and the third modified fibroin.
  • SEQ ID NO: 7 (Met-PRT410), SEQ ID NO: 8 (Met-PRT525), SEQ ID NO: 9 (Met-PRT799), SEQ ID NO: 13 (PRT410) ), SEQ ID NO: 14 (PRT525) or SEQ ID NO: 15 (PRT799), or (4-ii) SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 or SEQ ID NO: 15
  • a modified fibroin comprising an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by Specific embodiments of the modified fibroin comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14 or SEQ ID NO: 15 are as described above.
  • the structural protein contained in the second component may be a synthetic fiber or a hydrophobic modified fibroin.
  • Synthetic fibers are generally difficult to get wet with water and have poor water absorption and hygroscopic properties.
  • Examples of synthetic fibers include polyesters such as polyethylene terephthalate, polycaproamide (nylon 6), polyamides such as nylon 66, polyacryl, and polyvinyl formal (vinylon).
  • Synthetic fibers generally have the property of not easily shrinking even when brought into contact with an aqueous medium.
  • the second component may be a chemical fiber.
  • chemical fibers include natural polymers (natural fibers), semi-synthetic polymers (semi-synthetic fibers), and synthetic polymers (synthetic fibers).
  • natural polymers natural fibers
  • natural fibers include cellulose regenerated fibers such as rayon, cupra, polynosic, and lyocell.
  • semi-synthetic fiber examples include acetate fibers such as acetate (diacetate) and triacetate, and promix.
  • polyesters such as the above-mentioned polyethylene terephthalate, polycaproamide (nylon 6), polyamides such as nylon 66, polyacryl, polyvinyl formal (vinylon), and polyurethane (spandex). Can be mentioned.
  • cellulose regenerated fiber, acetate fiber, promix, polyacryl, polyvinyl formal, or polyurethane is used as the second component, it is dissolved in a known solvent (solution) to form a spinning solution (dope solution) and discharged from the spinneret. Then, the first component (modified fibroin) and the second component (chemical fiber) are solidified in the coagulating liquid, thereby making a side-by-side type composite fiber.
  • polyester or polyamide When polyester or polyamide is used as the second component, these raw materials are melted to form a liquid, discharged from the spinneret, joined to the first component, and the first component (modified fibroin) and the second component (chemical fiber). ) Can be made into a side-by-side type composite fiber.
  • hydrophobic modified fibroin means a modified fibroin fiber having poor water absorption or hygroscopicity, for example, a hydrophobicity index of each amino acid (hydropathic index, hereinafter also referred to as “HI”). You may judge using.
  • the high hydrophobicity index increases the hydrophobicity of the fiber itself, and the shrinkage rate can be reduced even when contacted with an aqueous medium.
  • the structural protein is not particularly limited, and may be a protein produced by a microorganism or the like by a gene recombination technique, or a protein produced by synthesis. Alternatively, the structural protein may be a product obtained by purifying a naturally derived structural protein.
  • the structural protein may be, for example, a structural protein and an artificial structural protein derived from the structural protein.
  • the structural protein means a structural protein that forms or maintains a structure and a form in a living body. That is, the structural protein may be a naturally derived structural protein, and a modified protein obtained by modifying a part of the amino acid sequence (for example, 10% or less of the amino acid sequence) based on the amino acid sequence of the naturally derived structural protein. It may be.
  • the structural protein include fibroin, keratin, collagen, elastin, and resilin.
  • the fibroin may be one or more selected from the group consisting of silk fibroin, spider silk fibroin, and hornet silk fibroin, for example.
  • the structural protein may be silk fibroin, spider silk fibroin or a combination thereof.
  • the ratio of silk fibroin may be, for example, 40 parts by mass or less, 30 parts by mass or less, or 10 parts by mass or less with respect to 100 parts by mass of spider silk fibroin.
  • the silk thread is a fiber (a silk thread) obtained from a silkworm made by a silkworm, Bombyx mori larva.
  • one silk thread is composed of two silk fibroins and glue quality (sericin) covering them from the outside.
  • Silk fibroin is composed of many fibrils.
  • Silk fibroin is covered with four layers of sericin. Practically, silk filaments obtained by dissolving and removing outer sericin by scouring are used for clothing.
  • a general silk thread has a specific gravity of 1.33, an average fineness of 3.3 decitex, and a fiber length of about 1300 to 1500 m.
  • Silk fibroin can be obtained from natural or domestic silkworms, or used or discarded silk fabrics.
  • the silk fibroin may be sericin-removed silk fibroin, sericin-unremoved silk fibroin, or a combination thereof.
  • Sericin-removed silk fibroin is purified by removing sericin covering silk fibroin and other fats.
  • the silk fibroin thus purified is preferably used as a lyophilized powder.
  • the sericin unremoved silk fibroin is an unpurified silk fibroin from which sericin and the like have not been removed.
  • the spider silk fibroin may contain a spider silk polypeptide selected from the group consisting of a natural spider silk structure protein and a polypeptide derived from the natural spider silk structure protein (artificial spider silk structure protein).
  • Examples of the natural spider silk structure protein include a large sphincter bookmark structure protein, a weft protein, and a small bottle-like gland structure protein. Since the large spout bookmarker has a repeating region composed of a crystalline region and an amorphous region (also referred to as an amorphous region), it has both high stress and stretchability.
  • the weft of spider silk has a feature that it does not have a crystalline region but has a repeating region consisting of an amorphous region. The weft thread is less stressed than the large spout bookmarker thread, but has high stretchability.
  • Large splint bookmarker structure protein is produced in spider large bottle-like glands and has a characteristic of excellent toughness.
  • Examples of the large sphincter dragline structure protein include large bottle-shaped gland spiders MaSp1 and MaSp2 derived from Nephila clavipes, and ADF3 and ADF4 derived from two spider spiders (Araneus diadematus).
  • ADF3 is one of the two main dragline proteins of the elder spider.
  • the polypeptide derived from the natural spider silk structure protein may be a polypeptide derived from these bookmarker thread structure proteins.
  • a polypeptide derived from ADF3 is relatively easy to synthesize and has excellent properties in terms of strength and toughness.
  • the weft structure protein is produced in the flagellate gland of the spider.
  • Examples of the weft structure protein include flagellum silk protein derived from the American spider (Nephila clavies).
  • the polypeptide derived from the natural spider silk structure protein may be a recombinant spider silk structure protein.
  • recombinant spider silk structure proteins include mutants, analogs or derivatives of natural spider silk structure proteins.
  • a preferred example of such a polypeptide is a recombinant spider silk structure protein (also referred to as “polypeptide derived from a large sphincter bookmark thread protein”).
  • Examples of the structural protein derived from the large sphincter bookmark thread that is a fibroin-like structural protein and the structural protein derived from silkworm silk include, for example, a protein comprising a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP1] m Is mentioned.
  • (A) n of the motif A represents an alanine residue, and n is preferably an integer of 2 to 27, 4 to 20, 8 to 20, 10 to 20, 4 to 16, 8 to 16 and an integer of 10 to 16, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in the n motif may be 40% or more, 60% or more, 70% or more, 80% or more 90% or more and 100% (meaning that it is composed of only alanine residues).
  • REP1 represents an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues.
  • m represents an integer of 10 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • Plural REP1s may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • (A) n protein in formula 1 may be deleted, and the structural protein whose industrial productivity is improved while maintaining the strength and elongation may be used.
  • the frequency of deletion for example, from the N-terminal side to the C-terminal side, the number of amino acid residues of REP of two adjacent [(A) n motif-REP1] units is sequentially compared, and amino acid residues When the number of amino acid residues of a small number of REP is 1, the ratio of the number of amino acid residues of the other REP is 1.8 to 11.3.
  • the two adjacent [(A) n motif-REP1] units include structural proteins in which x / y is 50% or more, where x is the maximum sum of the total number of amino acid residues and y is the total number of amino acid residues in the domain sequence.
  • An example of such a structural protein is a structural protein in which the ratio of a motif sequence in which a glycine residue is replaced with another amino acid residue is 10% or more based on the total motif sequence.
  • structural protein derived from the large sputum bookmarker thread include structural proteins including the amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 13 and SEQ ID NO: 15.
  • a structural protein derived from the weft structural protein for example, a structural protein containing a domain sequence represented by Formula 2: [REP2] o (where REP2 is derived from Gly-Pro-Gly-Gly-X in Formula 2). And X represents one amino acid selected from the group consisting of alanine (Ala), serine (Ser), tyrosine (Tyr), and valine (Val), and o represents an integer of 8 to 300. .).
  • a structural protein containing the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 13 can be exemplified.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 41 corresponds to a repeat portion and a motif of a partial sequence (NCBI accession number: AAF36090, GI: 7106224) of a partial sequence of flagellar silk structure protein of American spider spider obtained from the NCBI database.
  • PR1 sequence An amino acid sequence from the 1220th residue to the 1659th residue from the N-terminal (referred to as PR1 sequence), and a partial sequence of the flagellar silk structure protein of American spider spider obtained from the NCBI database (NCBI accession number: AAC38847, GI: 2833649), the C-terminal amino acid sequence from the 816th residue to the 907th residue from the C-terminal is linked, and the amino acid sequence (tag sequence and hinge sequence) represented by SEQ ID NO: 11 is at the N-terminal of the combined sequence With added ones That.
  • a structural protein derived from collagen for example, a structural protein containing a domain sequence represented by Formula 3: [REP3] p (wherein, in Formula 3, p represents an integer of 5 to 300.
  • REP3 represents Gly-X -Y represents an amino acid sequence composed of Y, and X and Y represent any amino acid residue other than Gly, and a plurality of REP3 may be the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • a structural protein including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 42 can be exemplified.
  • amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 42 corresponds to the repeat portion and motif of the partial sequence of human collagen type 4 (NCBI GenBank accession number: CAA56335.1, GI: 3702452) obtained from the NCBI database.
  • An amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 11 (tag sequence and hinge sequence) is added to the N-terminus of the amino acid sequence from the 301st residue to the 540th residue.
  • a structural protein derived from resilin for example, a structural protein containing a domain sequence represented by Formula 4: [REP4] q (wherein, q represents an integer of 4 to 300 in Formula 4.
  • REP4 represents Ser-J- An amino acid sequence composed of J-Tyr-Gly-U-Pro, wherein J represents an arbitrary amino acid residue, and is particularly preferably an amino acid residue selected from the group consisting of Asp, Ser, and Thr. Represents any amino acid residue, and is particularly preferably an amino acid residue selected from the group consisting of Pro, Ala, Thr and Ser.
  • Plural REP4s may have the same or different amino acid sequences. Good).
  • a structural protein including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 43 can be exemplified.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 43 is the amino acid sequence of resilin (NCBI GenBank accession number NP 611157, Gl: 24654243), wherein Thr at the 87th residue is replaced with Ser, and the Asn at the 95th residue.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 11 (tag sequence and hinge sequence) is added to the N-terminus of the amino acid sequence from the 19th residue to the 321st residue of the sequence in which is replaced with Asp.
  • structural proteins derived from elastin include structural proteins having amino acid sequences such as NCBI GenBank accession numbers AAC98395 (human), I47076 (sheep), and NP786966 (bovine).
  • a structural protein including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 44 can be exemplified.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 44 is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 11 at the N-terminus of the amino acid sequence of residues 121 to 390 of the amino acid sequence of NCBI GenBank accession number AAC98395 (tag sequence). And a hinge arrangement).
  • Examples of the keratin-derived structural protein include type I keratin of Capra hircus.
  • a structural protein including the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 45 can be exemplified.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 45 (PRT798) is obtained by adding the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 11 (tag sequence and hinge sequence) to the N-terminal of the amino acid sequence of NCBI GenBank accession number ACY30466. is there.
  • Structural proteins or structural proteins derived therefrom can be used singly or in combination of two or more. By combining two or more structural proteins, the overall hydrophobicity may be adjusted to a desired value.
  • the modified fibroin may be a fibroin whose domain sequence is different from the amino acid sequence of naturally-occurring fibroin, or may be a fibroin having the same amino acid sequence as that of naturally-occurring fibroin.
  • the modified fibroin used for the outermost layer may be, for example, an artificially modified domain sequence so as to impart hydrophobicity to naturally derived fibroin.
  • the modified fibroin used for the second component As a specific example of the modified fibroin used for the second component, the content of the modified fibroin having a domain sequence including a region having a large hydrophobic index locally (fifth modified fibroin) or glutamine residue is reduced. Modified fibroin (sixth modified fibroin) having a defined domain sequence. The hydrophobicity index of each amino acid will be described later.
  • the fifth modified fibroin has a domain sequence in which one or more amino acid residues in REP are replaced with amino acid residues having a higher hydrophobicity index and / or REP compared to naturally occurring fibroin. It may have an amino acid sequence including a region having a large hydrophobicity index corresponding to the insertion of one or more amino acid residues having a large hydrophobicity index.
  • the region where the hydrophobic index is locally large is preferably composed of 2 to 4 amino acid residues.
  • the above-mentioned “region with a large hydrophobicity index” means that the total or average of the hydrophobicity indices of 2 to 4 amino acid residues in succession is the hydrophobicity index of the amino acid residue at the same position in the corresponding naturally occurring fibroin. The area is larger than the total or average value.
  • amino acid residue having a large hydrophobicity index is an amino acid residue having a larger hydrophobicity index than the amino acid residue at the same position in the corresponding naturally occurring fibroin.
  • the amino acid residue having a large hydrophobicity index is an amino acid selected from isoleucine (I), valine (V), leucine (L), phenylalanine (F), cysteine (C), methionine (M) and alanine (A). More preferably, it is a residue.
  • the fifth modified fibroin has one or more amino acid residues in REP substituted with amino acid residues having a higher hydrophobicity index and / or one or more in REP compared to naturally occurring fibroin.
  • substitution, deletion, insertion and / or addition of one or more amino acid residues as compared with naturally occurring fibroin There may be amino acid sequence modifications corresponding to the above.
  • the fifth modified fibroin is obtained by removing one or more hydrophilic amino acid residues (for example, amino acid residues having a negative hydrophobicity index) in the REP from the cloned natural fibroin gene sequence. It can be obtained by substituting a group (for example, an amino acid residue having a positive hydrophobicity index) and / or inserting one or more hydrophobic amino acid residues in REP.
  • hydrophilic amino acid residues for example, amino acid residues having a negative hydrophobicity index
  • a group for example, an amino acid residue having a positive hydrophobicity index
  • one or more hydrophilic amino acid residues in REP are substituted with hydrophobic amino acid residues from the amino acid sequence of naturally occurring fibroin, and / or one or more hydrophobic amino acid residues in REP It can also be obtained by designing an amino acid sequence corresponding to insertion of, and chemically synthesizing a nucleic acid encoding the designed amino acid sequence.
  • one or more hydrophilic amino acid residues in REP have been replaced with hydrophobic amino acid residues from the amino acid sequence of naturally occurring fibroin and / or one or more hydrophobic amino acids in REP
  • the amino acid sequence corresponding to the substitution, deletion, insertion and / or addition of one or more amino acid residues may be further modified.
  • the fifth modified fibroin comprises a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m , and is located on the most C-terminal side (A) from the n motif to the C terminus of the domain sequence.
  • p is the total number of amino acid residues included in the region where the average value of the hydrophobicity index of four consecutive amino acid residues is 2.6 or more
  • (A) When the total number of amino acid residues contained in the sequence excluding the sequence from the n motif to the C terminus of the domain sequence, which is located at the most C-terminal side, from the domain sequence is q, p / q is 6 It may have an amino acid sequence that is 2% or more.
  • hydrophobicity index of amino acid residues As for the hydrophobicity index of amino acid residues, a known index (Hydropathy index: Kyte J, & Doolittle R (1982) “A simple method for displaying the hydropathic character of bio.p. 7”. 105-132). Specifically, the hydrophobicity index (hydropathic index, hereinafter also referred to as “HI”) of each amino acid is as shown in Table 1 below.
  • a sequence obtained by removing the sequence from the domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m to the most C-terminal side from the domain (A) n motif to the C terminus of the domain sequence. (Hereinafter referred to as “array A”).
  • array A the average value of the hydrophobicity index of four consecutive amino acid residues is calculated.
  • the average value of the hydrophobicity index is obtained by dividing the total HI of each amino acid residue contained in the four consecutive amino acid residues by 4 (number of amino acid residues).
  • the average value of the hydrophobicity index is obtained for all four consecutive amino acid residues (each amino acid residue is used for calculating the average value 1 to 4 times). Next, a region where the average value of the hydrophobicity index of four consecutive amino acid residues is 2.6 or more is specified. Even if a certain amino acid residue corresponds to a plurality of “four consecutive amino acid residues whose average value of hydrophobicity index is 2.6 or more”, it should be included as one amino acid residue in the region. become.
  • the total number of amino acid residues contained in the region is p.
  • the total number of amino acid residues contained in sequence A is q.
  • the average value of the hydrophobicity index of four consecutive amino acid residues is 2
  • p / q is preferably 6.2% or more, more preferably 7% or more, further preferably 10% or more, and preferably 20% or more. Even more preferably, it is still more preferably 30% or more.
  • the upper limit of p / q is not particularly limited, but may be 45% or less, for example.
  • the fifth modified fibroin is, for example, one or a plurality of hydrophilic amino acid residues (for example, a hydrophobicity index) in the REP so that the amino acid sequence of the naturally-derived fibroin thus cloned satisfies the above p / q condition. Is replaced with a hydrophobic amino acid residue (for example, an amino acid residue with a positive hydrophobicity index) and / or one or more hydrophobic amino acid residues are inserted in the REP By doing so, it can be obtained by locally modifying the amino acid sequence to include a region having a large hydrophobicity index.
  • hydrophilic amino acid residues for example, a hydrophobicity index
  • an amino acid sequence satisfying the above p / q conditions can be designed from the amino acid sequence of naturally derived fibroin, and a nucleic acid encoding the designed amino acid sequence can be obtained by chemical synthesis.
  • one or more amino acid residues in REP were replaced with amino acid residues having a higher hydrophobicity index and / or one or more amino acid residues in REP.
  • modifications corresponding to substitution, deletion, insertion and / or addition of one or more amino acid residues may be performed. .
  • the amino acid residue having a large hydrophobicity index is not particularly limited, but isoleucine (I), valine (V), leucine (L), phenylalanine (F), cysteine (C), methionine (M) and alanine (A ) are preferred, and valine (V), leucine (L) and isoleucine (I) are more preferred.
  • the fifth modified fibroin (5-i) the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 19 (Met-PRT720), SEQ ID NO: 20 (Met-PRT665) or SEQ ID NO: 21 (Met-PRT666), Or (5-ii) a modified fibroin comprising an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 20 or SEQ ID NO: 21.
  • the modified fibroin (5-i) will be described.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 19 is an amino acid sequence consisting of 3 amino acid residues for every other REP with respect to the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 (Met-PRT410) except for the terminal on the C-terminal side ( VLI) is inserted at two positions, a part of glutamine residue (G) is substituted with a serine residue (S), and a part of amino acids on the C-terminal side is deleted.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 20 is an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8 (Met-PRT525) with one amino acid sequence (VLI) consisting of 3 amino acid residues inserted every other REP. is there.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 21 is obtained by inserting two amino acid sequences (VLI) each consisting of 3 amino acid residues into the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 8 every other REP.
  • the modified fibroin (5-i) may be composed of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 20 or SEQ ID NO: 21.
  • the modified fibroin (5-ii) comprises an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 20 or SEQ ID NO: 21.
  • the modified fibroin of (5-ii) is also a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the sequence identity is preferably 95% or more.
  • the modified fibroin of (5-ii) has a sequence identity of 90% or more with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 20 or SEQ ID NO: 21, and is located on the most C-terminal side (A) n
  • the amino acids included in the region where the average value of the hydrophobicity index of 4 consecutive amino acid residues is 2.6 or more P is the total number of residues
  • P / q is preferably 6.2% or more.
  • the fifth modified fibroin may contain a tag sequence at one or both of the N-terminal and C-terminal.
  • modified fibroin containing the tag sequence examples include (5-iii) the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 22 (PRT720), SEQ ID NO: 23 (PRT665) or SEQ ID NO: 24 (PRT666), or (5-iv And a modified fibroin comprising an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 22, SEQ ID NO: 23 or SEQ ID NO: 24.
  • amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 22, SEQ ID NO: 23 and SEQ ID NO: 24 are the amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 11 (His tag) at the N-terminus of the amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 20 and SEQ ID NO: 21, respectively. Including a sequence and a hinge sequence).
  • the modified fibroin may be composed of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 22, SEQ ID NO: 23, or SEQ ID NO: 24.
  • the modified fibroin (5-iv) comprises an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 22, SEQ ID NO: 23 or SEQ ID NO: 24.
  • the modified fibroin of (5-iv) is also a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m .
  • the sequence identity is preferably 95% or more.
  • the modified fibroin of (5-iv) has a sequence identity of 90% or more with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 22, SEQ ID NO: 23 or SEQ ID NO: 24, and is located on the most C-terminal side (A) n
  • the amino acids included in the region where the average value of the hydrophobicity index of 4 consecutive amino acid residues is 2.6 or more P is the total number of residues
  • P / q is preferably 6.2% or more.
  • the fifth modified fibroin may contain a secretion signal for releasing the protein produced in the recombinant protein production system to the outside of the host.
  • the sequence of the secretion signal can be appropriately set according to the type of host.
  • the sixth modified fibroin has an amino acid sequence in which the content of glutamine residues is reduced compared to naturally occurring fibroin.
  • the sixth modified fibroin preferably contains at least one motif selected from GGX motif and GPGXX motif in the amino acid sequence of REP.
  • the content ratio of the GPGXX motif is usually 1% or more, may be 5% or more, and is preferably 10% or more.
  • the upper limit of GPGXX motif content rate 50% or less may be sufficient and 30% or less may be sufficient.
  • GPGXX motif content is a value calculated by the following method.
  • Formula 1 [(A) n motif-REP] m
  • Formula 2 [(A) n motif-REP] m- (A) fibroin (modified fibroin or naturally derived) containing a domain sequence represented by the n motif In fibroin), the number of GPGXX motifs contained in the region in all REPs contained in the sequence excluding the sequence from the domain sequence (A) n motif located at the most C-terminal side to the C-terminus of the domain sequence.
  • the number obtained by multiplying the total number by three is s, and is located at the most C-terminal side.
  • the sequence from the n motif to the C-terminal of the domain sequence is determined from the domain sequence.
  • the content ratio of the GPGXX motif is calculated as s / t, where t is the total number of amino acid residues of all REPs excluding the n motif. It is.
  • “A sequence located at the most C-terminal side (A) excluding the sequence from the n motif to the C-terminal of the domain sequence from the domain sequence” (A)
  • the sequence from the n motif to the C terminus of the domain sequence ”(sequence corresponding to REP) may include a sequence that is not highly correlated with the sequence characteristic of fibroin, and m is small In this case (that is, when the domain sequence is short), the calculation result of the content ratio of the GPGXX motif is affected, so this influence is excluded.
  • the “GPGXX motif” is located at the C-terminus of REP, even if “XX” is, for example, “AA”, it is treated as “GPGXX motif”.
  • FIG. 5 is a schematic diagram showing the domain sequence of the modified fibroin.
  • all REPs are “a sequence located at the most C-terminal side (A)
  • the sequence from the n motif to the C-terminal of the domain sequence is excluded from the domain sequence” (the sequence indicated by “region A” in FIG. ))
  • the sixth modified fibroin preferably has a glutamine residue content of 9% or less, more preferably 7% or less, still more preferably 4% or less, and particularly preferably 0%. .
  • the “glutamine residue content” is a value calculated by the following method.
  • Formula 1 [(A) n motif-REP] m
  • Formula 2 [(A) n motif-REP] m-
  • A) the sequence from the n- motif to the C-terminal of the domain sequence located on the most C-terminal side is included.
  • the total number of glutamine residues contained in the region is u
  • the sequence from the (A) n motif located at the most C-terminal side to the C-terminus of the domain sequence is excluded from the domain sequence
  • (A) n The glutamine residue content is calculated as u / t, where t is the total number of amino acid residues in all REPs excluding the motif.
  • the reason why "A sequence located at the most C-terminal side (A) excluding the sequence from the n motif to the C-terminus of the domain sequence from the domain sequence" is the reason described above. It is the same.
  • the sixth modified fibroin corresponds to its domain sequence having one or more glutamine residues in REP deleted or replaced with other amino acid residues compared to naturally occurring fibroin. It may have an amino acid sequence.
  • the “other amino acid residue” may be an amino acid residue other than a glutamine residue, but is preferably an amino acid residue having a larger hydrophobicity index than the glutamine residue. Table 1 shows the hydrophobicity index of amino acid residues.
  • amino acid residues having a larger hydrophobicity index than glutamine residues include isoleucine (I), valine (V), leucine (L), phenylalanine (F), cysteine (C), methionine (M ) Amino acid residues selected from alanine (A), glycine (G), threonine (T), serine (S), tryptophan (W), tyrosine (Y), proline (P) and histidine (H). it can.
  • an amino acid residue selected from isoleucine (I), valine (V), leucine (L), phenylalanine (F), cysteine (C), methionine (M) and alanine (A) is more preferable. More preferably, it is an amino acid residue selected from isoleucine (I), valine (V), leucine (L) and phenylalanine (F).
  • the hydrophobicity of REP is preferably ⁇ 0.8 or more, more preferably ⁇ 0.7 or more, still more preferably 0 or more, and 0.3 or more. It is still more preferable that it is and it is especially preferable that it is 0.4 or more.
  • the “hydrophobicity of REP” is a value calculated by the following method.
  • Formula 1 [(A) n motif-REP] m
  • Formula 2 [(A) n motif-REP] m-
  • A) the sequence from the n- motif to the C-terminal of the domain sequence located on the most C-terminal side is included.
  • the sum of the hydrophobicity index of each amino acid residue in the region is represented by v, and the sequence from the (A) n motif located at the most C-terminal side to the C-terminus of the domain sequence is excluded from the domain sequence, and ( A) The hydrophobicity of REP is calculated as v / t, where t is the total number of amino acid residues of all REPs excluding the n motif.
  • t is the total number of amino acid residues of all REPs excluding the n motif.
  • the sixth modified fibroin has its domain sequence deleted one or more glutamine residues in REP and / or one or more glutamine residues in REP compared to naturally occurring fibroin.
  • modifications corresponding to substitution of other amino acid residues there may also be amino acid sequence modifications corresponding to substitution, deletion, insertion and / or addition of one or more amino acid residues. .
  • the sixth modified fibroin is, for example, deleting one or more glutamine residues in REP from the cloned gene sequence of naturally occurring fibroin and / or other one or more glutamine residues in REP. It can obtain by substituting to the amino acid residue.
  • one or more glutamine residues in REP are deleted from the amino acid sequence of naturally occurring fibroin, and / or one or more glutamine residues in REP are replaced with other amino acid residues.
  • it can also be obtained by designing a corresponding amino acid sequence and chemically synthesizing a nucleic acid encoding the designed amino acid sequence.
  • sixth modified fibroin examples include (6-i) SEQ ID NO: 25 (Met-PRT888), SEQ ID NO: 26 (Met-PRT965), SEQ ID NO: 27 (Met-PRT889), SEQ ID NO: 28 (Met -PRT916), SEQ ID NO: 29 (Met-PRT918), SEQ ID NO: 30 (Met-PRT699), SEQ ID NO: 31 (Met-PRT698), SEQ ID NO: 32 (Met-PRT1009) or SEQ ID NO: 46 (Met-PRT966)
  • (6-ii) SEQ ID NO: 25, SEQ ID NO: 26, SEQ ID NO: 27, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 30, SEQ ID NO: 31, SEQ ID NO: 32 or SEQ ID NO: 46 An amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence shown Mention may be made of a non-modified fibroin.
  • the (6-i) modified fibroin will be described.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 25 is obtained by substituting VL for QQ in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 (Met-PRT410).
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 26 is obtained by substituting all QQs in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 with TS and replacing the remaining Q with A.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 27 is obtained by substituting all QQs in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 with VL and replacing the remaining Q with I.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 28 is obtained by replacing all QQs in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 with VI and replacing the remaining Q with L.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 29 is one in which all QQs in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 are substituted with VF, and the remaining Q is substituted with I.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 30 is obtained by substituting VL for all QQs in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 8 (Met-PRT525).
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 31 is obtained by substituting all QQs in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 8 with VL and replacing the remaining Q with I.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 32 is a region of 20 domain sequences present in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 (Met-PRT410) (provided that several amino acid residues on the C-terminal side of the region are substituted) QQ in the sequence obtained by repeating 4 times) is replaced with VF, and the remaining Q is replaced with I.
  • amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 25, SEQ ID NO: 26, SEQ ID NO: 27, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 30, SEQ ID NO: 31 and SEQ ID NO: 32 all have a glutamine residue content of 9% or less. Yes (Table 2).
  • the modified fibroin of (6-i) is an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 25, SEQ ID NO: 26, SEQ ID NO: 27, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 30, SEQ ID NO: 31, SEQ ID NO: 32 or SEQ ID NO: 46 It may consist of.
  • the modified fibroin of (6-ii) is an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 25, SEQ ID NO: 26, SEQ ID NO: 27, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 30, SEQ ID NO: 31, SEQ ID NO: 32 or SEQ ID NO: 46 And an amino acid sequence having a sequence identity of 90% or more.
  • the modified fibroin of (6-ii) is also represented by the formula 1: [(A) n motif-REP] m or the formula 2: [(A) n motif-REP] m- (A) n motif.
  • the sequence identity is preferably 95% or more.
  • the modified fibroin (6-ii) preferably has a glutamine residue content of 9% or less.
  • the modified fibroin (6-ii) preferably has a GPGXX motif content of 10% or more.
  • the sixth modified fibroin may contain a tag sequence at one or both of the N-terminal and C-terminal. This makes it possible to isolate, immobilize, detect and visualize the modified fibroin.
  • modified fibroin containing a tag sequence (6-iii) SEQ ID NO: 33 (PRT888), SEQ ID NO: 34 (PRT965), SEQ ID NO: 35 (PRT889), SEQ ID NO: 36 (PRT916), SEQ ID NO: 37 (PRT918), SEQ ID NO: 38 (PRT699), SEQ ID NO: 39 (PRT698), SEQ ID NO: 40 (PRT1009), or a modified fibroin comprising the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 47 (PRT966), or (6-iv) SEQ ID NO: 33 An amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 34, SEQ ID NO: 35, SEQ ID NO: 36, SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 40 or SEQ ID NO: 47
  • the modified fibroin containing can be mentioned.
  • amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 33, SEQ ID NO: 34, SEQ ID NO: 35, SEQ ID NO: 36, SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 40 and SEQ ID NO: 47 are SEQ ID NO: 25 and SEQ ID NO: 26, respectively.
  • SEQ ID NO: 27, SEQ ID NO: 28, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 30, SEQ ID NO: 31, SEQ ID NO: 32, and SEQ ID NO: 46 the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 11 (His tag sequence and (Including hinge sequence).
  • the amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 40 and SEQ ID NO: 47 all have a glutamine residue content of 9% or less (Table 3).
  • the modified fibroin of (6-iii) is an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 33, SEQ ID NO: 34, SEQ ID NO: 35, SEQ ID NO: 36, SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 40 or SEQ ID NO: 47 It may consist of.
  • the modified fibroin of (6-iv) is an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 33, SEQ ID NO: 34, SEQ ID NO: 35, SEQ ID NO: 36, SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 40 or SEQ ID NO: 47 And an amino acid sequence having a sequence identity of 90% or more.
  • the modified fibroin of (6-iv) is also a domain represented by Formula 1: [(A) n motif-REP] m or Formula 2: [(A) n motif-REP] m- (A) n motif.
  • the sequence identity is preferably 95% or more.
  • the modified fibroin (6-iv) preferably has a glutamine residue content of 9% or less.
  • the modified fibroin (6-iv) preferably has a GPGXX motif content of 10% or more.
  • the sixth modified fibroin may contain a secretion signal for releasing the protein produced in the recombinant protein production system to the outside of the host.
  • the sequence of the secretion signal can be appropriately set according to the type of host.
  • the modified (artificial) fibroin fiber has a limiting oxygen index (LOI) value of 18 or more, 20 or more, 22 or more, 24 or more, or 26 or more. It may be 28 or more, 29 or more, or 30 or more.
  • LOI limiting oxygen index
  • the above LOI value is measured in accordance with “Test method for powdered or low melting point synthetic resin” described in “Head of Fire and Disaster Management Agency, Hazardous Materials Regulation Section, Fire Hazard No. 50 (May 31, 1995)”. Value.
  • the maximum moisture absorption exotherm required for the modified (artificial) fibroin fiber according to the following formula A may be greater than 0.025 ° C./g, may be 0.026 ° C./g or more, and may be 0.027 ° C. / g or more, 0.028 ° C./g or more, 0.029 ° C./g or more, 0.030 ° C./g or more, 0.035 ° C / g or more may be sufficient and 0.040 ° C / g or more may be sufficient.
  • the upper limit of the maximum moisture absorption exotherm is not particularly limited, but is usually 0.060 ° C./g or less.
  • the heat retention index of the modified fibroin fiber may be 0.22 or more, may be 0.24 or more, may be 0.26 or more, may be 0.28 or more, and may be 0.30 or more. It may be 0.32 or more. Although there is no restriction
  • the modified fibroin fiber preferably has excellent heat retention, and the heat retention index determined according to the following formula C may be 0.20 or more.
  • Thermal insulation index Heat retention rate (%) / Sample weight (g / m 2 )
  • FIG. 7 shows an example of a composite fiber according to each embodiment of the present invention.
  • FIG. 7A is a schematic diagram showing a composite fiber 50 including a first component 51 and a second component 52.
  • the first component 51 includes a modified fibroin having water shrinkability, and can shrink by contact with an aqueous medium.
  • the second component 52 has reduced water shrinkage, and the shrinkage rate due to contact with water is smaller than that of the first component.
  • FIG.7 (b) is a schematic diagram which shows the composite fiber which changed the structure ratio of the 1st component and the 2nd component.
  • a composite fiber having a desired crimpability can be prepared by appropriately changing the combination of fibers used for the first component and the second component, or the composition ratio of the first component and the second component.
  • the composite fiber according to this embodiment is excellent in crimpability, and is useful as a crimped yarn and a spun yarn.
  • the crimped yarn is excellent in spinnability, bulkiness, stretchability, flexibility, and elasticity, and can impart a good texture, soft touch, and moisture retention.
  • the hydrophobicity of the modified fibroin contained in the first component and the hydrophobicity of the structural protein contained in the second component are different from each other.
  • the hydrophobicity of the modified fibroin or structural protein the total of each HI of each amino acid residue (excluding the amino acid residue corresponding to the tag sequence and the hinge sequence) constituting each is calculated, and the amino acid residue is calculated. The value divided by the radix.
  • the hydrophobicity of the modified fibroin contained in the first component is, for example, preferably ⁇ 0.8 or less, and more preferably ⁇ 0.55 or less.
  • the hydrophobicity of the structural protein contained in the second component is, for example, preferably more than ⁇ 0.8 and more preferably more than ⁇ 0.55.
  • the hydrophobicity of the component is calculated as the average value corresponding to the proportion of each component by calculating the hydrophobicity of each modified fibroin contained in the first component. May be. For example, the value obtained by multiplying the hydrophobicity of each modified fibroin by the content of the first component of the modified fibroin and summing them and dividing by the number of modified fibroins may be used.
  • the hydrophobicity of the component is calculated as the average value corresponding to the proportion of each component by calculating the hydrophobicity of each structural protein contained in the second component. May be. For example, the value obtained by multiplying the hydrophobicity of each structural protein by the content ratio in the second component of the structural protein may be added and divided by the number of structural proteins.
  • the modification is small (for example, the content is 10% or less). Since fibroin or structural protein has a sufficiently small contribution to the hydrophobicity of the entire component, the hydrophobicity of each component may be calculated without considering the hydrophobicity of the modified fibroin or structural protein.
  • the silk thread is composed of about 75% silk fibroin and about 25% sericin (UniProt database, Entry No. P07856).
  • Silk fibroin is composed of fibroin H chain (UniProt database, Entry No. P05790), fibroin L chain (UniProt database, Entry No.
  • the fibroin H chain occupies the majority.
  • the hydrophobicity of the silk fibroin is calculated by calculating the sum of each HI of each amino acid residue of the fibroin H chain, which is the main component. It is good also as hydrophobicity 0.216 which is the value which remove
  • the hydrophobicity of the amino acid sequence is as shown in Table 4. In calculating the degree of hydrophobicity of each amino acid sequence, it was calculated by excluding a sequence unrelated to the modified fibroin (that is, a sequence corresponding to the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 11).
  • Table 5 shows the degree of hydrophobicity of the amino acid sequences shown by SEQ ID NO: 42, SEQ ID NO: 43, SEQ ID NO: 44, and SEQ ID NO: 45.
  • the degree of hydrophobicity of each amino acid sequence it was calculated by excluding a sequence unrelated to the structural protein (that is, a sequence corresponding to the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 11).
  • the modified fibroin expresses the nucleic acid, for example, by a host transformed with an expression vector having a nucleic acid sequence encoding the modified fibroin and one or more regulatory sequences operably linked to the nucleic acid sequence. Can be produced.
  • the method for producing the nucleic acid encoding the modified fibroin is not particularly limited.
  • the nucleic acid is produced by a method such as amplification by polymerase chain reaction (PCR), cloning, modification by genetic engineering techniques, or chemical synthesis. can do.
  • the method for chemically synthesizing nucleic acids is not particularly limited. For example, based on the amino acid sequence information of fibroin obtained from the NCBI web database, etc., AKTA oligopilot plus 10/100 (GE Healthcare Japan Co., Ltd.) A gene can be chemically synthesized by a method of linking oligonucleotides that are synthesized automatically by PCR or the like.
  • a nucleic acid encoding the modified fibroin consisting of an amino acid sequence in which an amino acid sequence consisting of a start codon and a His10 tag is added to the N terminus of the above amino acid sequence is synthesized. May be.
  • Regulatory sequences are sequences that control the expression of modified fibroin in the host (for example, promoters, enhancers, ribosome binding sequences, transcription termination sequences, etc.), and can be appropriately selected depending on the type of host.
  • an inducible promoter that functions in the host cell and can induce expression of the modified fibroin may be used.
  • An inducible promoter is a promoter that can control transcription by the presence of an inducer (expression inducer), absence of a repressor molecule, or physical factors such as an increase or decrease in temperature, osmotic pressure or pH value.
  • the type of expression vector can be appropriately selected according to the type of host, such as a plasmid vector, virus vector, cosmid vector, fosmid vector, artificial chromosome vector, and the like.
  • a vector that can replicate autonomously in a host cell or can be integrated into a host chromosome and contains a promoter at a position where a nucleic acid encoding a modified fibroin can be transcribed is preferably used.
  • any of prokaryotes and eukaryotes such as yeast, filamentous fungi, insect cells, animal cells and plant cells can be preferably used.
  • prokaryotic hosts include bacteria belonging to the genus Escherichia, Brevibacillus, Serratia, Bacillus, Microbacterium, Brevibacterium, Corynebacterium, Pseudomonas and the like.
  • microorganisms belonging to the genus Escherichia include Escherichia coli.
  • microorganisms belonging to the genus Brevibacillus include Brevibacillus agri and the like.
  • microorganisms belonging to the genus Serratia include Serratia liqufaciens and the like.
  • microorganisms belonging to the genus Bacillus include Bacillus subtilis.
  • microorganisms belonging to the genus Microbacterium include microbacterium / ammonia film.
  • microorganisms belonging to the genus Brevibacterium include Brevibacterium divaricatam.
  • microorganisms belonging to the genus Corynebacterium include Corynebacterium ammoniagenes.
  • microorganisms belonging to the genus Pseudomonas include Pseudomonas putida.
  • vectors for introducing a nucleic acid encoding a modified fibroin include, for example, pBTrp2 (manufactured by Boehringer Mannheim), pGEX (manufactured by Pharmacia), pUC18, pBluescriptII, pSupex, pET22b, pCold, pUB110, pNCO2 (Japanese Patent Laid-Open No. 2002-238696) and the like can be mentioned.
  • Examples of eukaryotic hosts include yeast and filamentous fungi (molds, etc.).
  • yeast include yeasts belonging to the genus Saccharomyces, Pichia, Schizosaccharomyces and the like.
  • Examples of the filamentous fungi include filamentous fungi belonging to the genus Aspergillus, the genus Penicillium, the genus Trichoderma and the like.
  • examples of a vector into which a nucleic acid encoding a modified fibroin is introduced include YEp13 (ATCC37115) and YEp24 (ATCC37051).
  • a method for introducing the expression vector into the host cell any method can be used as long as it is a method for introducing DNA into the host cell.
  • a method using calcium ions [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 69, 2110 (1972)]
  • electroporation method electroporation method
  • spheroplast method protoplast method
  • lithium acetate method competent method, and the like.
  • a method for expressing a nucleic acid by a host transformed with an expression vector in addition to direct expression, secretory production, fusion protein expression, etc. can be performed according to the method described in Molecular Cloning 2nd edition, etc. .
  • the modified fibroin can be produced, for example, by culturing a host transformed with an expression vector in a culture medium, producing and accumulating the modified fibroin in the culture medium, and collecting from the culture medium.
  • the method for culturing a host in a culture medium can be performed according to a method usually used for culturing a host.
  • the culture medium contains a carbon source, nitrogen source, inorganic salts, etc. that can be assimilated by the host, and can efficiently culture the host. If so, either a natural medium or a synthetic medium may be used.
  • Any carbon source may be used as long as it can be assimilated by the above-mentioned transformed microorganism.
  • Examples thereof include glucose, fructose, sucrose, and carbohydrates such as molasses, starch and starch hydrolyzate, acetic acid and propionic acid, etc.
  • Organic acids and alcohols such as ethanol and propanol can be used.
  • the nitrogen source examples include ammonium salts of inorganic acids or organic acids such as ammonia, ammonium chloride, ammonium sulfate, ammonium acetate, and ammonium phosphate, other nitrogen-containing compounds, and peptone, meat extract, yeast extract, corn steep liquor, Casein hydrolyzate, soybean meal and soybean meal hydrolyzate, various fermented cells and digested products thereof can be used.
  • inorganic salts for example, monopotassium phosphate, dipotassium phosphate, magnesium phosphate, magnesium sulfate, sodium chloride, ferrous sulfate, manganese sulfate, copper sulfate and calcium carbonate can be used.
  • Cultivation of prokaryotes such as E. coli or eukaryotes such as yeast can be performed under aerobic conditions such as shaking culture or deep aeration and agitation culture.
  • the culture temperature is, for example, 15 to 40 ° C.
  • the culture time is usually 16 hours to 7 days.
  • the pH of the culture medium during the culture is preferably maintained at 3.0 to 9.0.
  • the pH of the culture medium can be adjusted using an inorganic acid, an organic acid, an alkaline solution, urea, calcium carbonate, ammonia, or the like.
  • antibiotics such as ampicillin and tetracycline may be added to the culture medium as necessary.
  • an inducer may be added to the medium as necessary.
  • isopropyl- ⁇ -D-thiogalactopyranoside is used when cultivating a microorganism transformed with an expression vector using the lac promoter
  • indole acrylic is used when culturing a microorganism transformed with an expression vector using the trp promoter.
  • An acid or the like may be added to the medium.
  • Isolation and purification of the expressed modified fibroin can be performed by a commonly used method.
  • the host cells are recovered by centrifugation after culturing, suspended in an aqueous buffer, and then subjected to an ultrasonic crusher, a French press, a manton.
  • the host cells are disrupted with a Gaurin homogenizer, dynomill, etc. to obtain a cell-free extract.
  • a method usually used for isolation and purification of modified fibroin that is, a solvent extraction method, a salting-out method using ammonium sulfate, a desalting method, an organic solvent Precipitation method by DE, anion exchange chromatography using a resin such as diethylaminoethyl (DEAE) -Sepharose, DIAION HPA-75 (manufactured by Mitsubishi Kasei), or a resin such as S-Sepharose FF (manufactured by Pharmacia) Electrophoresis such as cation exchange chromatography, hydrophobic chromatography using resins such as butyl sepharose and phenyl sepharose, gel filtration using molecular sieve, affinity chromatography, chromatofocusing, isoelectric focusing Use methods such as law alone or in combination It is possible to obtain a purified product.
  • a resin such as diethylaminoethyl (DEAE) -Sepharose, DIAION HPA
  • the modified fibroin when expressed by forming an insoluble substance in the cell, the host cell is similarly collected, crushed, and centrifuged to collect the modified fibroin insoluble substance as a precipitate fraction.
  • the recovered insoluble form of modified fibroin can be solubilized with a protein denaturant.
  • a purified preparation of modified fibroin can be obtained by the same isolation and purification method as described above.
  • the modified fibroin when secreted extracellularly, the modified fibroin can be recovered from the culture supernatant. That is, a culture supernatant is obtained by treating the culture with a technique such as centrifugation, and a purified preparation can be obtained from the culture supernatant by using the same isolation and purification method as described above.
  • the first dope solution includes a modified fibroin and a solvent.
  • the second dope solution contains a structural protein and a solvent.
  • the concentration of the modified fibroin in the first dope liquid is not particularly limited, and should be set as appropriate according to factors such as the crimpability and fiber diameter of the desired composite fiber and the combination with the structural protein contained in the second component. Can do.
  • the concentration of the modified fibroin is preferably 5 to 40% by mass, based on the total mass of the first dope solution (when the total mass of the first dope solution is 100% by mass), preferably 7 to 40% by mass More preferably, it is 10 to 40% by mass, more preferably 7 to 35% by mass, more preferably 10 to 35% by mass, and 12 to 35% by mass.
  • the concentration of the modified fibroin is 5% by mass or more, the productivity of the composite fiber tends to be further improved.
  • concentration of the modified fibroin is 40% by mass or less, the dope solution can be discharged more stably from the spinneret, and the productivity tends to be further improved.
  • the concentration of the structural protein in the second dope solution is not particularly limited, and is appropriately set according to factors such as the crimpability and fiber diameter of the desired composite fiber, the combination with the structural protein contained in the first component, and the like. Can do.
  • the concentration of the modified fibroin is preferably 5 to 40% by mass based on the total mass of the second dope solution (when the total mass of the second dope solution is 100% by mass), preferably 7 to 40% by mass More preferably, it is 10 to 40% by mass, more preferably 7 to 35% by mass, more preferably 10 to 35% by mass, and 12 to 35% by mass.
  • the concentration of the modified fibroin is 5% by mass or more, the productivity of the composite fiber tends to be further improved.
  • concentration of the modified fibroin is 40% by mass or less, the dope solution can be discharged more stably from the spinneret, and the productivity tends to be further improved.
  • the solvent of the first dope liquid may be any solvent that can dissolve the modified fibroin.
  • the solvent of 2nd dope liquid should just be a thing which can melt
  • solvents include hexafluoroisopropanol (HFIP), hexafluoroacetone (HFA), dimethyl sulfoxide (DMSO), N, N-dimethylformamide (DMF), N, N-dimethylacetamide (DMA), 1,3 -Dimethyl-2-imidazolidone (DMI), N-methyl-2-pyrrolidone (NMP), acetonitrile, N-methylmorpholine-N-oxide (NMO), formic acid and the like.
  • HFIP hexafluoroisopropanol
  • HFA hexafluoroacetone
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • DMF N-dimethylformamide
  • DMA N-dimethylacetamide
  • DMI 1,3 -Dimethyl
  • the solvent may be an aqueous solution, specifically, an aqueous solution containing at least one selected from the group consisting of urea, guanidine, sodium dodecyl sulfate (SDS), lithium bromide, calcium chloride, and lithium thiocyanate. Can be mentioned. These solvent may be used individually by 1 type, and may be used in combination of 2 or more type.
  • the method for preparing the dope solution may be a method well known to those skilled in the art, and the modified fibroin or structural protein and a solvent may be mixed in any order.
  • An inorganic salt may be added to the first dope liquid and the second dope liquid as necessary.
  • the inorganic salt can function as a dissolution promoter for the modified fibroin.
  • examples of inorganic salts include alkali metal halides, alkaline earth metal halides, alkaline earth metal nitrates, and the like.
  • Specific examples of inorganic salts include lithium carbonate, lithium chloride, calcium chloride, calcium nitrate, lithium bromide, barium bromide, calcium bromide, barium chlorate, sodium perchlorate, lithium perchlorate, barium perchlorate. , Calcium perchlorate and magnesium perchlorate.
  • the viscosity of the dope solution can be appropriately set according to the use of the composite fiber and the spinning method.
  • the viscosity of the dope solution may be, for example, 5000 to 40000 mPa ⁇ sec at 20 ° C., 7000 to 40000 mPa ⁇ sec, 10000 to 40000 mPa ⁇ sec, 7000 to 35000 mPa ⁇ sec, 10000 to 35000 mPa ⁇ sec, and 10000 to 30000 mPa ⁇ sec. sec, or 10,000 to 25000 mPa ⁇ sec.
  • the viscosity of the dope solution can be measured, for example, using a trade name “EMS viscometer” manufactured by Kyoto Electronics Industry Co., Ltd.
  • the dope solution may be stirred or shaken for a certain period of time in order to promote dissolution.
  • the dope solution may be heated to 30 ° C. or higher, 40 ° C. or higher, 50 ° C. or higher, 60 ° C. or higher, 70 ° C. or higher, 80 ° C. or higher, or 90 ° C. or higher.
  • the upper limit of the heating temperature is, for example, not more than the boiling point of the solvent.
  • the composite fiber can be produced by a known spinning method.
  • the composite fiber can be obtained by spinning using a first dope solution and a second dope solution by a known spinning method such as dry spinning, melt spinning, wet spinning, and dry wet spinning.
  • Preferred spinning methods include wet spinning or dry temperature spinning.
  • the first dope liquid and the second dope liquid are ejected from a spinneret (nozzle) and joined, and the first component (modified fibroin) and the second component (structural protein) are mixed in the coagulation liquid.
  • a composite fiber By solidifying, a composite fiber can be obtained in an undrawn yarn state.
  • FIG. 6 is an explanatory view schematically showing an example of a spinning device for producing a composite fiber.
  • a spinning device 10 illustrated in FIG. 6 is an example of a spinning device for dry and wet spinning, and includes an extrusion device 1, an undrawn yarn production device 2, a wet heat drawing device 3, and a drying device 4.
  • the dope solution 6 stored in the storage tank 7 is pushed out from the base 9 by the gear pump 8.
  • the dope solution may be filled into a cylinder and extruded from a nozzle using a syringe pump.
  • the extruded dope liquid 6 is supplied through the air gap 19 into the coagulation liquid 11 in the coagulation liquid tank 20, the solvent is removed, the protein is coagulated, and a fibrous coagulum is formed.
  • the fibrous solidified body is supplied into the hot water 12 in the drawing bath 21 and drawn. The draw ratio is determined by the speed ratio between the supply nip roller 13 and the take-up nip roller 14.
  • the stretched fibrous solidified body is supplied to the drying device 4 and dried in the yarn path 22, and the composite fiber 36 is obtained as the wound body 5.
  • Reference numerals 18a to 18g denote thread guides.
  • a spinneret (nozzle) for producing a composite fiber for example, a nozzle for producing a composite fiber having a side-by-side structure is known.
  • a first base for extruding the first dope liquid (corresponding to the first component of the composite fiber) is disposed in the center of the nozzle, and the second dope liquid is disposed in the vicinity thereof
  • a second die for extruding (corresponding to the second component of the composite fiber) is arranged.
  • the second base may be inclined toward the first base such that the second dope liquid is combined with the flux of the first dope liquid extruded from the first base.
  • the second base may be substantially in contact with the first base.
  • the nozzle may be a nozzle in which the first die and the second die are integrated and the discharge port for the first dope liquid and the discharge port for the second dope liquid are separated by a partition wall.
  • Each die is preferably designed so that the discharge amount is constant by size, temperature control and the like.
  • the second dope solution extruded from the second die is combined with the first dope solution extruded from the first die, and is brought into contact with the coagulating solution to form an undrawn yarn having a side-by-side structure.
  • the position of each die can be appropriately adjusted according to the spinning conditions such as the type of fiber raw material to be used, the viscosity of each dope solution, the extrusion speed, and the temperature.
  • the coagulation liquid 11 may be any solution that can be desolvated, and examples thereof include lower alcohols having 1 to 5 carbon atoms such as methanol, ethanol, and 2-propanol, and acetone.
  • the coagulation liquid 11 may appropriately contain water.
  • the temperature of the coagulation liquid 11 is preferably 0 to 30 ° C.
  • the distance that the coagulated protein passes through the coagulation liquid 11 (substantially, the distance from the yarn guide 18a to the yarn guide 18b) may be a length that allows efficient desolvation, for example, 200 to 500 mm. It is.
  • the residence time in the coagulation liquid 11 may be a time for removing the dope solvent from the undrawn yarn.
  • stretching may be performed in the coagulating liquid 11.
  • the coagulating liquid tank 20 may be provided in multiple stages, and the stretching may be performed in each stage or a specific stage as necessary.
  • the coagulation liquid may be kept at a low temperature and taken up in an undrawn yarn state. Further, the undrawn yarn may be drawn in the coagulation liquid (pre-drawing).
  • the undrawn yarn (or predrawn yarn) obtained by the above method can be in the state of drawn yarn (composite fiber) by the drawing process.
  • Examples of the stretching method include wet heat stretching and dry heat stretching.
  • Wet heat stretching can be performed in warm water, in a solution obtained by adding an organic solvent or the like to warm water, or in steam heating.
  • the temperature may be, for example, 40 to 200 ° C., 50 to 180 ° C., 50 to 150 ° C., or 75 to 90 ° C.
  • the draw ratio in the wet heat drawing may be, for example, 1 to 30 times, 2 to 25 times, or 2 to 20 times the undrawn yarn (or the predrawn yarn). It may be ⁇ 15 times, may be 2 to 10 times, may be 2 to 8 times, may be 2 to 6 times, and may be 2 to 4 times. However, the draw ratio is not limited as long as desired properties such as fiber thickness and mechanical properties are obtained.
  • the dry heat drawing can be performed using an apparatus such as a contact-type hot plate and a non-contact type furnace, but is not particularly limited, and the fiber is heated to a predetermined temperature, Any device capable of stretching at a magnification may be used.
  • the temperature may be, for example, 100 ° C. to 270 ° C., 140 ° C. to 230 ° C., 140 ° C. to 200 ° C., 160 ° C. to 200 ° C., 160 ° C. to 180 ° C. It may be in ° C.
  • the draw ratio in the dry heat drawing step may be, for example, 1 to 30 times, 2 to 30 times, or 2 to 20 times the undrawn yarn (or predrawn yarn). It may be 3 to 15 times, preferably 3 to 10 times, more preferably 3 to 8 times, and still more preferably 4 to 8 times. However, the draw ratio is not limited as long as desired properties such as fiber thickness and mechanical properties are obtained.
  • wet heat stretching and dry heat stretching may be performed independently, or may be performed in multiple stages or in combination. That is, as the stretching process, wet heat stretching is performed as the first stage stretching, dry heat stretching is performed as the second stage stretching, or wet heat stretching is performed as the first stage stretching, wet heat stretching is performed as the second stage stretching, and further the third stage stretching is performed. May be performed by dry heat stretching, and may be performed by appropriately combining wet heat stretching and dry heat stretching.
  • the lower limit value of the final draw ratio of the composite fiber that has undergone the drawing step is preferably 1 time, 2 times, 3 times, 4 times, 5 times, 6 times with respect to the undrawn yarn (or the predrawn yarn). , 7 times, 8 times, or 9 times.
  • the upper limit of the final draw ratio of the composite fiber that has undergone the drawing step may preferably be 40 times, 30 times, 20 times, 15 times, 14 times, 13 times, 12 times, 11 times, or 10 times. . Also, for example, it may be 3 to 40 times, 3 to 30 times, 5 to 30 times, 5 to 20 times, 5 to 15 times, 5 It may be up to 13 times.
  • the shape of the spinneret, the hole shape, the number of holes and the like are not particularly determined, and can be appropriately selected according to the desired fiber diameter and the number of single yarns.
  • an oil agent may be applied to the undrawn yarn (or predrawn yarn) or the drawn yarn for the purpose of imparting charge suppression, convergence, lubricity, and the like.
  • the kind of oil agent to be applied, the amount to be applied, and the like are not particularly limited, and can be appropriately adjusted in consideration of the use of the composite fiber, the handleability of the bonded fiber, and the like.
  • a hole diameter of 0.1 mm to 0.6 mm can be exemplified.
  • the hole diameter is 0.1 mm or more, pressure loss can be reduced, and equipment costs can be reduced.
  • the hole diameter is 0.6 mm or less, the stretching operation for reducing the fiber diameter can be omitted, and the possibility of tearing (stretching break) between ejection and take-up can be further reduced.
  • the temperature at the time of passing through the spinneret and the temperature of the spinneret are not particularly limited, and may be appropriately adjusted depending on the concentration and viscosity of the dope liquid to be used, the type of solvent, and the like.
  • the temperature of the spinneret is preferably 30 ° C. to 100 ° C. from the viewpoint of preventing deterioration of the modified fibroin and the structural protein.
  • the upper limit of the temperature may be lower than the boiling point of the solvent to be used from the viewpoint of further reducing the possibility of pressure increase due to volatilization of the solvent and clogging in the piping due to solidification of the dope solution. preferable. Thereby, process stability improves.
  • the method according to the present embodiment may further include a step of filtering the dope solution before discharging the dope solution (filtering step) and / or a step of defoaming the dope solution before discharging (defoaming step).
  • the crimping step is a step of crimping the composite fiber having latent crimping ability by bringing it into contact with an aqueous medium (hereinafter sometimes referred to as “water crimping”).
  • the aqueous medium is a liquid or gas (steam) medium containing water (including water vapor).
  • the aqueous medium may be water or a mixed solution of water and a hydrophilic solvent.
  • the hydrophilic solvent include volatile solvents such as ethanol and methanol, and vapors thereof.
  • the aqueous medium may be a mixed liquid of water and a volatile solvent such as ethanol or methanol, and is preferably water or a mixed liquid of water and ethanol.
  • the ratio of water to the volatile solvent or its vapor is not particularly limited, and for example, the water: volatile solvent may have a mass ratio of 10:90 to 90:10.
  • the water content is preferably 30% by mass or more based on the total mass of the aqueous medium, and may be 40% by mass or 50% by mass or more.
  • the aqueous medium is a liquid, it is preferable to disperse an oil agent in the aqueous medium. In this case, water crimping and oil adhesion can be performed simultaneously.
  • the oil agent may be, for example, a known oil agent used for general purposes such as process passability and functionality imparting such as antistatic, friction reducing, flexibility imparting, or water repellency imparting. Any of them can be used.
  • the amount of the oil agent is not particularly limited, and may be, for example, 1 to 10% by mass or 2 to 5% by mass with respect to the total mass of the oil agent and the aqueous medium.
  • the aqueous medium is preferably a liquid or gas at 10 to 230 ° C. containing water (including water vapor).
  • the temperature of the aqueous medium may be 10 ° C or higher, 25 ° C or higher, 40 ° C or higher, 60 ° C or higher, or 100 ° C or higher, and 230 ° C or lower, 120 ° C or lower, or 100 ° C or lower. More specifically, when the aqueous medium is a gas (steam), the temperature of the aqueous medium is preferably from 100 to 230 ° C, more preferably from 100 to 120 ° C. When the steam of the aqueous medium is 230 ° C. or lower, thermal denaturation of the composite fiber can be prevented.
  • the temperature of the aqueous medium is preferably 10 ° C. or higher, 25 ° C. or higher, or 40 ° C. or higher from the viewpoint of efficiently imparting crimp, and from the viewpoint of keeping the strength of the composite fiber high. C. or lower is preferable.
  • the time of contact with the aqueous medium is not particularly limited, but may be 30 seconds or more, may be 1 minute or more, or 2 minutes or more, and is preferably 10 minutes or less from the viewpoint of productivity. In the case of steam, it is considered that a large shrinkage rate can be obtained in a shorter time than liquid.
  • the contact with the aqueous medium may be performed under normal pressure or under reduced pressure (for example, vacuum).
  • Examples of the method of contacting the aqueous medium include a method of immersing the composite fiber in the aqueous medium, a method of spraying the aqueous medium with steam on the composite fiber, and a method of exposing the composite fiber to an environment filled with the aqueous medium of steam.
  • the aqueous medium is steam
  • the contact of the aqueous medium with the composite fiber can be performed using a general steam setting apparatus.
  • Specific examples of the steam setting device include devices such as product name: FMSA type steam setter (manufactured by Fukushin Kogyo Co., Ltd.) and product name: EPS-400 (manufactured by Sakurai Dyeing Machinery Co., Ltd.).
  • the composite fiber is accommodated in the predetermined storage chamber, while the aqueous medium steam is introduced into the storage chamber, and the temperature of the storage chamber is set to the predetermined temperature.
  • steam is brought into contact with the composite fiber while adjusting to (for example, 100 ° C. to 230 ° C.).
  • the crimping step of the composite fiber by contact with the aqueous medium is preferably performed in a state where no tensile force is applied to the composite fiber (no tension is applied in the fiber axis direction) or a predetermined amount (fiber). (Strained in the axial direction by a predetermined amount). In this case, the degree of crimp can be controlled by adjusting the tensile force applied to the composite fiber.
  • a method for adjusting the tensile force applied to the composite fiber for example, a method of adjusting the load applied to these fibers by suspending weights of various weights on the composite fiber, or the state where the fiber is loosened
  • the method of changing the amount of looseness, winding the fiber around a wound body such as a paper tube or bobbin, and the winding force (clamping force on the paper tube or bobbin) at that time The method etc. which change suitably are mentioned.
  • the composite fiber may be further dried after contacting with the aqueous medium.
  • the drying method is not particularly limited, and the drying may be natural drying or may be performed by a thermal storm or a hot roller.
  • the drying temperature is not particularly limited, and may be, for example, 20 to 150 ° C., preferably 40 to 120 ° C., and more preferably 60 to 100 ° C.
  • the first component containing the modified fibroin and the second component containing the structural protein have different degrees of hydrophobicity.
  • the difference in hydrophobicity between the first component and the second component (difference between the hydrophobicity of the modified fibroin and the hydrophobicity of the structural protein) in the composite fiber can be appropriately selected according to the desired crimpability.
  • the greater the difference in the degree of hydrophobicity the more stable the potential crimpability can be stably imparted.
  • the first component and the second component in the composite fiber have different shrinkage rates due to water shrinkage.
  • the modified fibroin used for the first component contracts upon contact with an aqueous medium.
  • the structural protein used for the second component does not shrink even when contacted with an aqueous medium, or has a smaller shrinkage rate than the first component.
  • Table 6 shows the shrinkage ratio of the modified fibroin fiber obtained by spinning the modified fibroin under the same conditions to the aqueous medium.
  • the shrinkage rate was calculated by the following method. ⁇ Shrinkage rate> A plurality of modified fibroin fibers having a length of about 30 cm are bundled into a fiber bundle having a fineness of 150 denier.
  • a 0.8 g lead weight is attached to the fiber bundle, and in that state, the fiber bundle is immersed in water at 40 ° C. for 10 minutes to be shrunk to remove shrinkage due to residual stress derived from the manufacturing process.
  • the fiber bundle is taken out of the water and dried at room temperature for 2 hours with a 0.8 g lead weight attached. After drying, the length of the fiber bundle is measured. Again, it is immersed in 40 ° C. water for 10 minutes to shrink, and the length of the fiber bundle is measured in water. These wetting and drying are repeated at least three times, and an average length when wet (Lwet) and an average length when drying (Ldry) are determined.
  • the composite ratio of the first component and the second component in the composite fiber is not particularly limited, and is appropriately set according to the combination of the first component and the second component, the desired crimpability, the composite form, and the like. I can do this.
  • the composite ratio of the first component and the second component may be, for example, in the range of 90:10 to 10:90, on the weight basis, in the range of 80:20 to 20:80, and 75:25 to 25 : 75 range, 75: 25-35: 65 range, 70: 30-30: 70 range, 65: 35-35: 65 range , 65:35 to 45:55, or 60:40 to 40:60.
  • the cross section of the composite fiber (the boundary surface between the first component and the second component) may be linear or curved.
  • the cross-sectional shape of the composite fiber is not particularly limited, and may be any of a round cross-section, a triangular cross-section, a multi-lopal cross-section, a daruma-shaped cross section, a flat cross-section, and other known cross-sectional shapes, but a crimp expression
  • a cross-sectional shape such as a round cross section or a semicircular side pie side mold having a daruma-shaped cross section is preferable.
  • the fiber diameter of the composite fiber is not particularly limited and can be set as appropriate according to the application, for example, 10 to 125 ⁇ m, 10 to 100 ⁇ m, or 10 to 80 ⁇ m. It may be 10 to 60 ⁇ m, may be 10 to 40 ⁇ m, may be 10 to 35 ⁇ m, and may be 10 to 30 ⁇ m. When the fiber diameter is 125 ⁇ m or less, the solvent removal rate in the spinning process is difficult to increase. When the fiber diameter is 10 ⁇ m or more, it becomes easy to obtain a composite fiber stably.
  • the number of crimps of the composite fiber can be appropriately set depending on the application, for example, the number of crimps may be 5/25 mm or more, the number of crimps may be 10/25 mm or more, and the number of crimps may be The number of crimps may be 15 pieces / 25 mm or more, the number of crimps may be 20 pieces / 25 mm or more, and the number of crimps may be 25 pieces / 25 mm or more.
  • the composite fiber may be further chemically cross-linked between the polypeptide molecules in the composite fiber depending on the application.
  • functional groups that can be crosslinked include amino groups, carboxyl groups, thiol groups, and hydroxy groups.
  • the amino group of the lysine side chain contained in the polypeptide can be crosslinked with an amide bond by dehydration condensation with the carboxyl group of the glutamic acid or aspartic acid side chain.
  • Crosslinking may be performed by performing a dehydration condensation reaction under vacuum heating, or may be crosslinked by a dehydration condensation agent such as carbodiimide.
  • Crosslinking between polypeptide molecules may be performed using a crosslinking agent such as carbodiimide or glutaraldehyde, or may be performed using an enzyme such as transglutaminase.
  • the carbodiimide is represented by the general formula R 1 N ⁇ C ⁇ NR 2 (wherein R 1 and R 2 each independently represents an organic group containing an alkyl group having 1 to 6 carbon atoms or a cycloalkyl group). It is a compound.
  • carbodiimide examples include 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (EDC), N, N′-dicyclohexylcarbodiimide (DCC), 1-cyclohexyl-3- (2-morpholinoethyl) carbodiimide. And diisopropylcarbodiimide (DIC).
  • EDC 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride
  • DCC N, N′-dicyclohexylcarbodiimide
  • DIC diisopropylcarbodiimide
  • EDC and DIC are preferable because they have a high ability to form an amide bond between polypeptide molecules and easily undergo a crosslinking reaction.
  • the crosslinking treatment is preferably performed by applying a crosslinking agent to the composite fiber and crosslinking by vacuum heating and drying.
  • a crosslinking agent a pure product may be imparted to the composite fiber, or a product diluted with a lower alcohol having 1 to 5 carbon atoms and a buffer solution to a concentration of 0.005 to 10% by mass may be imparted to the composite fiber.
  • the crosslinking treatment is preferably performed at a temperature of 20 to 45 ° C. for 3 to 42 hours. By the crosslinking treatment, higher stress (strength) can be applied to the composite fiber.
  • the crimpability of the composite fiber can be evaluated by, for example, confirming the number of crimps in a certain length of the composite fiber that has developed latent crimps through a crimping process.
  • the conjugate fiber according to this embodiment can be applied to various products.
  • examples of such products include fibers, yarns, fabrics, knitted fabrics, braids, nonwoven fabrics, paper, and cotton.
  • fibers include long fibers, short fibers, monofilaments, and multifilaments.
  • yarns include spun yarns, twisted yarns, false twisted yarns, processed yarns, mixed yarns, and mixed yarns.
  • fabrics such as woven fabrics, knitted fabrics, braided fabrics, nonwoven fabrics, paper, cotton, and the like can be produced from these fibers and yarns. These products can be produced by known methods.
  • modified fibroin and structural protein (1) Preparation of expression vector Based on the nucleotide sequence and amino acid sequence of fibroin derived from Nephila clavipes (GenBank accession numbers: P46804.1, GI: 1174415) as a modified fibroin SEQ ID NO: 12 (PRT380), SEQ ID NO: 13 (PRT410), SEQ ID NO: 18 (PRT399), SEQ ID NO: 15 (PRT799), SEQ ID NO: 37 (PRT918), SEQ ID NO: 47 (PRT966) and SEQ ID NO: 40 (PRT1009) Modified structural proteins having the amino acid sequences shown (hereinafter also referred to as “PRT799”, “PRT918”, “PRT966”, and “PRT1009”, respectively) were designed.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 15 has an amino acid sequence in which substitution, insertion and deletion of amino acid residues are performed for the purpose of improving productivity with respect to the amino acid sequence of fibroin derived from Nephila clapibes.
  • an amino acid sequence (tag sequence and hinge sequence) represented by SEQ ID NO: 11 is added to the N-terminus.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 40 (PRT1009) is an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 7 (amino acid sequence before the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 11 is added to the N-terminus) for the purpose of improving hydrophobicity.
  • nucleic acids encoding PRT380, PRT410, PRT399, PRT799, PRT918, PRT966 and PRT1009 (modified fibroin) and PRT798 (structural protein) were synthesized.
  • the nucleic acid was added with an NdeI site at the 5 'end and an EcoRI site downstream of the stop codon.
  • the nucleic acid was cloned into a cloning vector (pUC118). Thereafter, the nucleic acid was cleaved by restriction enzyme treatment with NdeI and EcoRI, and then recombined into the protein expression vector pET-22b (+) to obtain expression vectors.
  • the seed culture solution was added to a jar fermenter to which 500 mL of production medium (Table 8) was added so that the OD 600 was 0.05.
  • the culture solution temperature was maintained at 37 ° C., and the culture was performed at a constant pH of 6.9. Further, the dissolved oxygen concentration in the culture solution was maintained at 20% of the dissolved oxygen saturation concentration.
  • a feed solution (glucose 455 g / 1 L, Yeast Extract 120 g / 1 L) was added at a rate of 1 mL / min.
  • the culture solution temperature was maintained at 37 ° C., and the culture was performed at a constant pH of 6.9.
  • the dissolved oxygen concentration in the culture solution was maintained at 20% of the dissolved oxygen saturation concentration, and cultured for 20 hours.
  • 1M isopropyl- ⁇ -thiogalactopyranoside (IPTG) was added to the culture solution to a final concentration of 1 mM to induce expression of the modified fibroin and the structural protein, respectively.
  • the culture solution was centrifuged, and the cells were collected. SDS-PAGE was performed using the bacterial cells prepared from the culture solution before and after the addition of IPTG. Due to the appearance of the target modified fibroin size band depending on the addition of IPTG, and the appearance of the band of the structural protein size, The expression of the target modified fibroin and structural protein was confirmed, respectively.
  • the washed precipitate was suspended in 8M guanidine buffer (8M guanidine hydrochloride, 10 mM sodium dihydrogen phosphate, 20 mM NaCl, 1 mM Tris-HCl, pH 7.0) to a concentration of 100 mg / mL, and 60 ° C. And stirred for 30 minutes with a stirrer to dissolve. After dissolution, dialysis was performed with water using a dialysis tube (cellulose tube 36/32 manufactured by Sanko Junyaku Co., Ltd.).
  • the white aggregated protein obtained after dialysis is collected by centrifugation, the moisture is removed by a freeze dryer, and the freeze-dried powder is collected, whereby modified fibroin (PRT380, PRT410, PRT399, PRT799, PRT918, PRT966 and PRT1009) And a structural protein (PRT798) was obtained.
  • aqueous solution was placed in a cellulose dialysis membrane (Seamless Cellulose Tubing, 36/32 manufactured by VISKASESELESCOAP), and dialyzed for 3 to 4 days using distilled water.
  • the recovered solution after dialysis was centrifuged at 20 ° C. and 15000 rpm for 1 hour to remove undissolved residues and impurities. Furthermore, it diluted with Milli water so that a density
  • the silk fibroin aqueous solution was frozen at ⁇ 80 ° C. and freeze-dried overnight. After confirming that water was sufficiently removed, silk fibroin powder was obtained.
  • the second dope solution was prepared in the same manner as the first dope solution except that 24% by mass of the modified fibroin (PRT1009, hydrophobicity: 0.49) obtained in the production process of the modified fibroin was used. Prepared.
  • Dry and wet spinning Dry and wet spinning was performed using a table-top spinning device.
  • the prepared first dope liquid and second dope liquid were filled in reserve tanks, respectively.
  • the first dope solution is discharged from a mono-hole nozzle having a diameter of 0.2 mm using a gear pump, and then the second dope solution is discharged from the mono-hole nozzle having the same diameter.
  • Two dope solutions were joined and discharged into 100% by mass methanol in a coagulation bath.
  • the film is stretched in a coagulation liquid tank, further subjected to dry heat stretching, and then washed in a water washing bath to develop latent crimps, and a composite weight ratio of 1: 1 (first component: second Component) side-by-side type composite fiber was obtained and wound up.
  • the dry and wet spinning conditions are as follows. Extrusion nozzle diameter: 0.2 mm Dry heat draw ratio: 6 times Temperature of coagulation liquid (methanol): 5 ° C Drying temperature: 60 ° C
  • Example 2 (1) Preparation of stock solution for spinning
  • the first dope solution was prepared in the same manner as in Example 1.
  • the second dope solution was prepared in the same manner as in Example 1 except that 24% by mass of the structural protein (PRT798, hydrophobicity: 0.49) obtained in the structural protein production process was used as the second component. did.
  • Example 3 (1) Preparation of dope solution
  • the first dope solution was prepared in the same manner as in Example 1.
  • the second dope solution was prepared in the same manner as in Example 1 except that 24% by weight of silk fibroin obtained in the silk fibroin (structural protein) production process was used as the second component.
  • Reference Example 1 Flammability test of modified fibroin Addition of lyophilized powder of modified fibroin (PRT799) to a dimethyl sulfoxide solution of lithium chloride (concentration: 4.0 mass%) to a concentration of 24 mass%, and shaker Used and mixed for 3 hours to dissolve. Thereafter, insoluble matters and bubbles were removed to obtain a modified fibroin solution (spinning stock solution).
  • the obtained spinning dope is heated to 90 ° C., filtered through a metal filter having an opening of 5 ⁇ m, and then left to stand in a 30 mL stainless syringe and defoamed, and then 100 mass from a solid nozzle having a needle diameter of 0.2 mm.
  • the solution was discharged into a% methanol coagulation bath. The discharge temperature was 90 ° C. After coagulation, the obtained raw yarn was wound up and naturally dried to obtain modified fibroin fiber (raw fiber).
  • a knitted fabric (thickness: 180 denier, number of gauges: 18) was manufactured by circular knitting using a circular knitting machine using twisted yarn obtained by twisting raw material fibers. 20 g of the obtained knitted fabric was cut out and used as a test piece.
  • the flammability test was in accordance with “Test method for powdery granular or low melting point synthetic resin” described in “Fire Fighting No. 50 (May 31, 1995)”. The test was performed under conditions of a temperature of 22 ° C., a relative humidity of 45%, and an atmospheric pressure of 1021 hPa. Table 9 shows the measurement results (oxygen concentration (%), combustion rate (%), converted combustion rate (%)).
  • the critical oxygen index (LOI) value of the knitted fabric knitted with the modified fibroin (PRT799) fiber was 27.2.
  • the LOI value is 26 or more, it is known to be flame retardant. It can be seen that the modified fibroin is excellent in flame retardancy.
  • Reference Example 2 Hygroscopic exothermic evaluation of modified fibroin Add lyophilized powder of modified fibroin to a dimethyl sulfoxide solution of lithium chloride (concentration: 4.0% by mass) to a concentration of 24% by mass and use a shaker. And then mixed for 3 hours to dissolve. Thereafter, insoluble matters and bubbles were removed to obtain a modified fibroin solution (spinning stock solution).
  • the obtained spinning dope is heated to 60 ° C., filtered through a metal filter having an opening of 5 ⁇ m, and then left to stand in a 30 mL stainless syringe and defoamed, and then 100 mass from a solid nozzle having a needle diameter of 0.2 mm.
  • the solution was discharged into a% methanol coagulation bath. The discharge temperature was 60 ° C. After coagulation, the obtained raw yarn was wound up and naturally dried to obtain modified fibroin fiber (raw fiber).
  • Table 10 shows the thickness of the knitted fabric using PRT918 fiber or PRT799 fiber and the number of gauges. The thickness and the number of gauges of the knitted fabric using other raw material fibers were adjusted so as to have almost the same cover factor as that of the modified fibroin fiber knitted fabric. Specifically, it is as follows.
  • test piece 2 pieces of knitted fabric cut to 10 cm ⁇ 10 cm were put together, and four sides were sewn together to obtain a test piece (sample). After leaving the test piece in a low humidity environment (temperature 20 ⁇ 2 ° C., relative humidity 40 ⁇ 5%) for 4 hours or more, it is transferred to a high humidity environment (temperature 20 ⁇ 2 ° C., relative humidity 90 ⁇ 5%). The temperature was measured at intervals of 1 minute by a temperature sensor attached to the center of the interior for 30 minutes.
  • FIG. 8 is a graph showing an example of the results of the hygroscopic exothermic test.
  • the horizontal axis of the graph represents the time (minutes) left in the high humidity environment, with the time when the sample was transferred from the low humidity environment to the high humidity environment as 0.
  • the vertical axis of the graph indicates the temperature (sample temperature) measured by the temperature sensor.
  • the point indicated by M corresponds to the maximum value of the sample temperature.
  • Table 11 shows the calculation results of the maximum moisture absorption exotherm of each knitted fabric.
  • the modified fibroin (PRT918 and PRT799) has a higher maximum moisture absorption exotherm and superior moisture absorption exothermicity as compared with existing materials.
  • Reference Example 3 Evaluation of heat retention of modified fibroin To a dimethyl sulfoxide solution of lithium chloride (concentration: 4.0% by mass), a freeze-dried powder of modified fibroin was added to a concentration of 24% by mass, and a shaker was used. It was dissolved by mixing for 3 hours. Thereafter, insoluble matters and bubbles were removed to obtain a modified fibroin solution (spinning stock solution).
  • the obtained spinning dope is heated to 60 ° C., filtered through a metal filter having an opening of 5 ⁇ m, and then left to stand in a 30 mL stainless syringe and defoamed, and then 100 mass from a solid nozzle having a needle diameter of 0.2 mm.
  • the solution was discharged into a% methanol coagulation bath. The discharge temperature was 60 ° C. After coagulation, the obtained raw yarn was wound up and naturally dried to obtain modified fibroin fiber (raw fiber).
  • Each raw material fiber was used to produce knitted fabrics by flat knitting using a flat knitting machine.
  • Table 12 shows the count, the number of twists, the number of gauges, and the basis weight of the knitted fabric using the PRT966 fiber or the PRT799 fiber.
  • the knitted fabric using other raw material fibers was adjusted so as to have almost the same cover factor as that of the modified fibroin fiber knitted fabric. Specifically, it is as follows.
  • the heat retention was evaluated by using a KES-F7 Thermolab II tester manufactured by Kato Tech Co., Ltd., using a dry contact method (a method assuming that the skin and clothes are directly touched in a dry state).
  • a dry contact method a method assuming that the skin and clothes are directly touched in a dry state.
  • One knitted fabric cut into a 20 cm ⁇ 20 cm rectangle was used as a test piece (sample).
  • the test piece was set on a hot plate set at a constant temperature (30 ° C.), and the amount of heat (a) dissipated through the test piece was determined under the condition of the wind speed in the wind tunnel of 30 cm / second. With no test piece set, the amount of heat (b) dissipated under the same conditions as above was determined, and the heat retention rate (%) was calculated according to the following formula B.
  • Table 13 shows the calculation results of the heat retention index. It can be evaluated that the higher the heat retention index, the better the heat retention material.
  • the modified fibroin (PRT966 and PRT799) has a higher heat retention index than the existing materials and is superior in heat retention.
  • Reference Example 4 Production of raw fiber A lyophilized powder of modified fibroin (PRT380, PRT410, PRT399, or PRT799) in a dimethyl sulfoxide solution of lithium chloride (concentration: 4.0 mass%) at a concentration of 18 mass% or 24 mass%. % (See Table 14) and mixed for 3 hours using a shaker to dissolve. Thereafter, insoluble matters and bubbles were removed to obtain a modified fibroin solution (spinning stock solution).
  • spun and drawn raw fibers were produced by a dry and wet spinning method using a spinning device similar to the spinning device 10 shown in FIG.
  • the spinning device used is a spinning device 10 shown in FIG. 6, and a second undrawn yarn production device (a first bath) and a wet heat drawing device 3 (third bath) are further provided between the undrawn yarn production device 2 (first bath) and the wet heat drawing device 3 (third bath).
  • a second bath The conditions of the dry and wet spinning method are as follows. Extrusion nozzle diameter: 0.2 mm Liquid and temperature in the first to third baths: see Table 14 Total draw ratio: see Table 14 Drying temperature: 60 ° C.
  • a plurality of raw material fibers each having a length of 30 cm were cut out from the wound material of each raw material fiber obtained in Production Examples 1 to 19.
  • a plurality of raw fiber bundles were bundled to obtain a raw fiber bundle having a fineness of 150 denier.
  • a 0.8 g lead weight was attached to each raw fiber bundle, and in this state, each raw fiber bundle was immersed in water at a temperature shown in Tables 15 to 18 for 10 minutes (contact step). Thereafter, the length of each raw fiber bundle was measured in water. The measurement of the length of the raw fiber bundle in water was carried out with a 0.8 g lead weight attached to the raw fiber bundle in order to eliminate the shrinkage of the raw fiber bundle.
  • the shrinkage ratio A (%) was calculated according to the following formula D for each raw material fiber.
  • L0 indicates the length of the fiber after spinning and before contact with water, and here it is 30 cm.
  • Lw indicates the length of the fiber irreversibly contracted by contact with water after spinning, and here is the length of each raw fiber bundle measured in water.
  • Shrinkage rate A (%) ⁇ 1 ⁇ (Lw / L0) ⁇ ⁇ 100
  • the modified fibroin (PRT380, PRT410, PRT399, or PRT799) fiber has excellent contractility to moisture and has excellent latent crimping ability.
  • a modified fibroin as a side-by-side type composite fiber, a composite fiber excellent in crimpability, bulkiness and stretchability can be obtained.

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Abstract

本発明は、改変フィブロインを含む第1成分と、構造タンパク質を含む第2成分と、が接合しており、潜在性捲縮能を有する、サイドバイサイド型複合繊維を提供する。

Description

複合繊維及びその製造方法
 本発明は、複合繊維及びその製造方法に関する。
 捲縮性は、紡績を行うために極めて重要な性質である。ナイロンやポリエステル繊維など熱可塑性を有する合成繊維の場合、熱を利用することにより、恒久的な捲縮性繊維を製造することが可能である。また、カイコから得られる生糸は、セリシンで包まれており、精練工程によって、柔軟で光沢のある絹繊維(フィブロイン)へと変換される。
 一方、セリシンを完全に除去した絹繊維はコシがなく、撚糸にはあまり適していない。そのため、絹繊維から撚糸を製造するためには、セリシンを完全に除去せずに、80~90%のセリシンが残留するように精練することにより、適度なコシを残す方法が行われている。また、精練工程を糸の段階で実施する、精練工程を織物の段階で実施する、精練工程を実施しない、セリシン定着加工を施した糸と未加工の糸を織る等の種々の工夫がされている(例えば、特許文献1、非特許文献1)。近年、セリシンの除去を行わずに、セリシンを改質剤により不溶化させ、加撚加工を行う方法が報告されている(例えば、特許文献2)。
特開平5-93317号公報 特開2016-23389号公報
Ling Peng et al.Macromol.Mater.Eng.2016,301,48-55.
 しかし、セリシンの含有率を所望の範囲に調整する必要があった。
 そこで、本発明は、上記事情に鑑み、捲縮性を有する新たな繊維及びその製造方法を提供することを目的とする。
 本発明は、例えば、以下の各発明に関する。
[1]
 改変フィブロインを含む第1成分と、構造タンパク質を含む第2成分と、が接合しており、潜在性捲縮能を有する、サイドバイサイド型複合繊維。
[2]
 上記第1成分と前記第2成分の複合比率が、上記複合繊維の質量を基準として9:1~1:9である、[1]に記載の複合繊維。
[3]
 上記構造タンパク質が、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、コラーゲン、レシリン、エラスチン、及びケラチンからなる群より選ばれる少なくとも1種である、[1]又は[2]に記載の複合繊維。
[4]
 上記構造タンパク質が、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、及びケラチンからなる群より選ばれる少なくとも1種である、[1]~[3]のいずれかに記載の複合繊維。
[4-1]
 上記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含む改変フィブロイン(第3の改変フィブロイン)であって、
 上記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、少なくとも1又は複数の(A)モチーフが欠失したことに相当する、(A)モチーフの含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、[1]~[4]のいずれかに記載の複合繊維。
[式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
[4-2]
 上記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含む改変フィブロイン(第4の改変フィブロイン)であって、
 上記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、少なくともREP中の1又は複数のグリシン残基が別のアミノ酸残基に置換されたことに相当する、グリシン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、[1]~[4]のいずれかに記載の複合繊維。
[式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
[4-3]
 上記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]表されるドメイン配列を含む改変フィブロイン(第5の改変フィブロイン)であって、
 上記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列を有する、[1]~[4]のいずれかに記載の複合繊維。
[式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
[4-4]
 上記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]、又は式2:[(A)モチーフ-REP]-(A)モチーフで表されるドメイン配列を含む改変フィブロイン(第6の改変フィブロイン)であって、
 上記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のグルタミン残基を欠失したこと、又は他のアミノ酸残基に置換したことに相当する、グルタミン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、[1]~[4]のいずれかに記載の複合繊維。
[式1及び式2中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が80%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
[4-5]
 上記改変フィブロインが、26.0以上の限界酸素指数(LOI)値を有している、[1]~[4]のいずれかに記載の複合繊維。
[4-6]
 上記改変フィブロインが、0.025℃/g超の、下記式Aに従って求められる最高吸湿発熱度を有している、[1]~[4]のいずれかに記載の複合繊維。
 式A: 最高吸湿発熱度={(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移したときの試料温度の最高値)-(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移すときの試料温度)}(℃)/試料重量(g)
[式A中、低湿度環境は、温度20℃及び相対湿度40%の環境を意味し、高湿度環境は、温度20℃及び相対湿度90%の環境を意味する。]
[5]
 改変フィブロイン及び溶媒を含む第1ドープ液を調製する工程と、
 構造タンパク質及び溶媒を含む第2ドープ液を調製する工程と、
 第1ドープ液と第2ドープ液を紡糸口金から吐出して接合させ、凝固液中で未延伸の複合繊維を形成させる工程と、
 上記未延伸の複合繊維を水性媒体に接触させる工程と、を含む、複合繊維の製造方法。
[6]
 上記未延伸の複合繊維を延伸する工程を更に含む、[5]に記載の方法。
[7]
 上記第1ドープ液における改変フィブロインの濃度が、上記第1ドープ液の全質量を基準として、5~40質量%であり、
 上記第2ドープ液における構造タンパク質の濃度が、前記第2ドープ液の全質量を基準として、5~40質量%である、[5]又は[6]に記載の方法。
[8]
 上記溶媒が、ヘキサフルオロイソプロパノール、ヘキサフルオロアセトン、ジメチルスルホキシド、N,N-ジメチルホルムアミド、N,N-ジメチルアセトアミド、1,3-ジメチル-2-イミダゾリドン、N-メチル-2-ピロリドン、アセトニトリル、N-メチルモルホリン-N-オキシド、及びギ酸、並びに、尿素、グアニジン、ドデシル硫酸ナトリウム、臭化リチウム、塩化カルシウム及びチオシアン酸リチウムからなる群から選択される少なくとも一種を含む水溶液からなる群から選択される少なくとも一種を含む、[5]~[7]のいずれかに記載の方法。
[9]
 上記凝固液が、炭素数1~5の低級アルコール、及びアセトンからなる群から選択される少なくとも一種である、[5]~[8]のいずれかに記載の方法。
[10]
 上記構造タンパク質が、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、コラーゲン、レシリン、エラスチン、及びケラチンからなる群より選ばれる少なくとも1種である、[5]~[9]のいずれかに記載の方法。
[11]
 上記構造タンパク質が、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、及びケラチンからなる群より選ばれる少なくとも1種である、[5]~[10]のいずれかに記載の方法。
[11-1]
 上記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含む改変フィブロインであって、
 上記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、少なくとも1又は複数の(A)モチーフが欠失したことに相当する、(A)モチーフの含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、[5]~[11]のいずれかに記載の方法。
[式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
[11-2]
 上記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含み、
 上記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、少なくともREP中の1又は複数のグリシン残基が別のアミノ酸残基に置換されたことに相当する、グリシン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、[5]~[11]のいずれかに記載の方法。
[式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
[11-3]
 上記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]表されるドメイン配列を含み、
 上記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列を有する、[5]~[11]のいずれかに記載の方法。
[式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
[11-4]
 上記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]、又は式2:[(A)モチーフ-REP]-(A)モチーフで表されるドメイン配列を含み、
 上記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のグルタミン残基を欠失したこと、又は他のアミノ酸残基に置換したことに相当する、グルタミン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、[5]~[11]に記載の方法。
[式1及び式2中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が80%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
[11-5]
 上記改変フィブロインが、26.0以上の限界酸素指数(LOI)値を有している、[5]~[11]のいずれかに記載の方法。
[11-6]
 上記改変フィブロインが、0.025℃/g超の、下記式Aに従って求められる最高吸湿発熱度を有している、[5]~[11]のいずれかに記載の方法。
 式A: 最高吸湿発熱度={(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移したときの試料温度の最高値)-(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移すときの試料温度)}(℃)/試料重量(g)
[式A中、低湿度環境は、温度20℃及び相対湿度40%の環境を意味し、高湿度環境は、温度20℃及び相対湿度90%の環境を意味する。]
[12]
 [1]~[4]及び[4-1]~[4-6]のいずれかに記載の複合繊維を含み、
 繊維、糸、布帛、編み物、組み物、不織布、紙、及び綿からなる群から選択される、製品。
[13]
 第1成分と、第2成分と、が接合しており、第1成分及び第2成分のいずれか一方が改変フィブロインを含む、サイドバイサイド型複合繊維。
[14]
 第1成分と、第2成分と、が接合しており、第1成分及び第2成分のいずれか一方が潜在性捲縮能を有する改変フィブロインを含む、サイドバイサイド型複合繊維。
 本発明によれば、捲縮性を有する新たな繊維を提供できる。本発明によれば、捲縮性に優れ、捲縮糸、紡績糸として有用である複合繊維を提供できる。また、本発明によれば、複合繊維が改変フィブロインを含有することにより、高い強度及びタフネスを示す。
改変フィブロインのドメイン配列を示す模式図である。 天然由来のフィブロインのz/w(%)の値の分布を示す図である。 天然由来のフィブロインのx/y(%)の値の分布を示す図である。 一実施形態に係る改変フィブロインのドメイン配列を示す模式図である。 一実施形態に係る改変フィブロインのドメイン配列を示す模式図である。 複合繊維を製造するための紡糸装置の一例を概略的に示す説明図である。 本発明の一実施形態に係る複合繊維の模式図である。 吸湿発熱性試験の結果の一例を示すグラフである。
 以下、本発明を実施するための形態について詳細に説明する。ただし、本発明は以下の実施形態に限定されるものではない。
 本発明の第一実施形態に係る複合繊維は、改変フィブロインを含む第1成分と、構造タンパク質を含む第2成分と、がサイドバイサイド型に接合している。すなわち、本実施形態に係る複合繊維の断面形状は、第1成分と第2成分とが互いに接合した形状、例えば、半円形の第1成分と半円形の第2成分とが合わさって円形となっている。複合繊維の断面形状において、第1成分と第2成分の割合は、50:50でなくてもよく、30:70、20:80等、適宜変更してもよい。また、第1成分と第2成分は、複合繊維に沿って並行に延伸されていてもよく、螺旋状に撚れていてもよい。この場合、例えば、複合繊維のある部分では、第1成分と第2成分が上下に配置されているのに対し、徐々に接合面が回転していき、別の部分では左右に配置される。改変フィブロインの疎水性度と構造タンパク質の疎水性度は、互いに異なっている。
 本実施形態に係る複合繊維の第1成分は、改変フィブロインを含む。第1成分に含まれる改変フィブロインは、後述する水性媒体と接触させることにより収縮する性質を有する(以下、「水収縮性」ともいう。)。また、この改変フィブロインを含む繊維は、例えば、張力が付加されていない状態で水性媒体と接触させると、収縮すると共に、捲縮(縮れ)が発生する。これにより、改変フィブロインを含む繊維において潜在捲縮能が発揮される。
(改変フィブロイン)
 改変フィブロインは、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むタンパク質である。改変フィブロインは、ドメイン配列のN末端側及びC末端側のいずれか一方又は両方に更にアミノ酸配列(N末端配列及びC末端配列)が付加されていてもよい。N末端配列及びC末端配列は、これに限定されるものではないが、典型的には、フィブロインに特徴的なアミノ酸モチーフの反復を有さない領域であり、100残基程度のアミノ酸からなる。なお、本実施形態において、改変フィブロインが改変クモ糸フィブロインであると、保温性、吸湿発熱性及び/又は難燃性がより優れるものとなる。
 本明細書において「改変フィブロイン」とは、人為的に製造されたフィブロイン(人造フィブロイン)を意味する。改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列とは異なるフィブロインであってもよく、天然由来のフィブロインとアミノ酸配列と同一であるフィブロインであってもよい。本明細書でいう「天然由来のフィブロイン」もまた、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むタンパク質である。
 「改変フィブロイン」は、本発明で特定されるアミノ酸配列を有するものであれば、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列をそのまま利用したものであってもよく、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列に依拠してそのアミノ酸配列を改変したもの(例えば、クローニングした天然由来のフィブロインの遺伝子配列を改変することによりアミノ酸配列を改変したもの)であってもよく、また天然由来のフィブロインに依らず人工的に設計及び合成したもの(例えば、設計したアミノ酸配列をコードする核酸を化学合成することにより所望のアミノ酸配列を有するもの)であってもよい。
 本明細書において「ドメイン配列」とは、フィブロイン特有の結晶領域(典型的には、アミノ酸配列の(A)モチーフに相当する。)と非晶領域(典型的には、アミノ酸配列のREPに相当する。)を生じるアミノ酸配列であり、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるアミノ酸配列を意味する。ここで、(A)モチーフは、アラニン残基を主とするアミノ酸配列を示し、nは2~20、好ましくは4~20、より好ましくは8~20、更に好ましくは10~20、更により好ましくは4~16、更によりまた好ましくは8~16、特に好ましくは10~16の整数であってよい。また、(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数の割合は40%以上であればよく、60%以上であることが好ましく、70%以上であることがより好ましく、80%以上であることが更に好ましく、90%以上であることが更により好ましく、100%(アラニン残基のみで構成されることを意味する。)であってもよい。REPは2~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、10~40、10~60、10~80、10~100、10~120、10~140、10~160、又は10~180アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列であってもよい。mは2~300の整数を示し、8~300、10~300、20~300、40~300、60~300、80~300、10~200、20~200、20~180、20~160、20~140又は20~120の整数であってもよい。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。大吐糸管しおり糸由来のタンパク質の具体例としては、配列番号13で示されるアミノ酸配列(PRT410)を含むタンパク質を挙げることができる。
 改変フィブロインは、例えば、クローニングした天然由来のフィブロインの遺伝子配列に対し、例えば、1又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び/又は付加したことに相当するアミノ酸配列の改変を行うことで得ることができる。アミノ酸残基の置換、欠失、挿入及び/又は付加は、部分特異的突然変異誘発法等の当業者に周知の方法により行うことができる。具体的には、Nucleic Acid Res.10,6487(1982)、Methods in Enzymology,100,448(1983)等の文献に記載されている方法に準じて行うことができる。
 天然由来のフィブロインは、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むタンパク質であり、具体的には、例えば、昆虫又はクモ類が産生するフィブロインが挙げられる。
 昆虫が産生するフィブロインとしては、例えば、ボンビックス・モリ(Bombyx mori)、クワコ(Bombyx mandarina)、天蚕(Antheraea yamamai)、柞蚕(Anteraea pernyi)、楓蚕(Eriogyna pyretorum)、蓖蚕(Pilosamia Cynthia ricini)、樗蚕(Samia cynthia)、栗虫(Caligura japonica)、チュッサー蚕(Antheraea mylitta)、ムガ蚕(Antheraea assama)等のカイコが産生する絹タンパク質、スズメバチ(Vespa simillima xanthoptera)の幼虫が吐出するホーネットシルクタンパク質が挙げられる。
 昆虫が産生するフィブロインのより具体的な例としては、例えば、カイコ・フィブロインL鎖(GenBankアクセッション番号M76430(塩基配列)、AAA27840.1(アミノ酸配列))が挙げられる。
 クモ類が産生するフィブロインとしては、例えば、オニグモ、ニワオニグモ、アカオニグモ、アオオニグモ及びマメオニグモ等のオニグモ属(Araneus属)に属するクモ、ヤマシロオニグモ、イエオニグモ、ドヨウオニグモ及びサツマノミダマシ等のヒメオニグモ属(Neoscona属)に属するクモ、コオニグモモドキ等のコオニグモモドキ属(Pronus属)に属するクモ、トリノフンダマシ及びオオトリノフンダマシ等のトリノフンダマシ属(Cyrtarachne属)に属するクモ、トゲグモ及びチブサトゲグモ等のトゲグモ属(Gasteracantha属)に属するクモ、マメイタイセキグモ及びムツトゲイセキグモ等のイセキグモ属(Ordgarius属)に属するクモ、コガネグモ、コガタコガネグモ及びナガコガネグモ等のコガネグモ属(Argiope属)に属するクモ、キジロオヒキグモ等のオヒキグモ属(Arachnura属)に属するクモ、ハツリグモ等のハツリグモ属(Acusilas属)に属するクモ、スズミグモ、キヌアミグモ及びハラビロスズミグモ等のスズミグモ属(Cytophora属)に属するクモ、ゲホウグモ等のゲホウグモ属(Poltys属)に属するクモ、ゴミグモ、ヨツデゴミグモ、マルゴミグモ及びカラスゴミグモ等のゴミグモ属(Cyclosa属)に属するクモ、及びヤマトカナエグモ等のカナエグモ属(Chorizopes属)に属するクモが産生するスパイダーシルクタンパク質、並びにアシナガグモ、ヤサガタアシナガグモ、ハラビロアシダカグモ及びウロコアシナガグモ等のアシナガグモ属(Tetragnatha属)に属するクモ、オオシロカネグモ、チュウガタシロカネグモ及びコシロカネグモ等のシロカネグモ属(Leucauge属)に属するクモ、ジョロウグモ及びオオジョロウグモ等のジョロウグモ属(Nephila属)に属するクモ、キンヨウグモ等のアズミグモ属(Menosira属)に属するクモ、ヒメアシナガグモ等のヒメアシナガグモ属(Dyschiriognatha属)に属するクモ、クロゴケグモ、セアカゴケグモ、ハイイロゴケグモ及びジュウサンボシゴケグモ等のゴケグモ属(Latrodectus属)に属するクモ、及びユープロステノプス属(Euprosthenops属)に属するクモ等のアシナガグモ科(Tetragnathidae科)に属するクモが産生するスパイダーシルクタンパク質が挙げられる。スパイダーシルクタンパク質としては、例えば、MaSp(MaSp1及びMaSp2)、ADF(ADF3及びADF4)等の牽引糸タンパク質、MiSp(MiSp1及びMiSp2)等が挙げられる。
 クモ類が産生するフィブロインのより具体的な例としては、例えば、fibroin-3(adf-3)[Araneus diadematus由来](GenBankアクセッション番号AAC47010(アミノ酸配列)、U47855(塩基配列))、fibroin-4(adf-4)[Araneus diadematus由来](GenBankアクセッション番号AAC47011(アミノ酸配列)、U47856(塩基配列))、dragline silk protein spidroin 1[Nephila clavipes由来](GenBankアクセッション番号AAC04504(アミノ酸配列)、U37520(塩基配列))、major ampullate spidroin 1[Latrodectus hesperus由来](GenBankアクセッション番号ABR68856(アミノ酸配列)、EF595246(塩基配列))、dragline silk protein spidroin 2[Nephila clavata由来](GenBankアクセッション番号AAL32472(アミノ酸配列)、AF441245(塩基配列))、major ampullate spidroin 1[Euprosthenops australis由来](GenBankアクセッション番号CAJ00428(アミノ酸配列)、AJ973155(塩基配列))、及びmajor ampullate spidroin 2[Euprosthenops australis](GenBankアクセッション番号CAM32249.1(アミノ酸配列)、AM490169(塩基配列))、minor ampullate silk protein 1[Nephila clavipes](GenBankアクセッション番号AAC14589.1(アミノ酸配列))、minor ampullate silk protein 2[Nephila clavipes](GenBankアクセッション番号AAC14591.1(アミノ酸配列))、minor ampullate spidroin-like protein[Nephilengys cruentata](GenBankアクセッション番号ABR37278.1(アミノ酸配列)等が挙げられる。
 天然由来のフィブロインのより具体的な例としては、更に、NCBI GenBankに配列情報が登録されているフィブロインを挙げることができる。例えば、NCBI GenBankに登録されている配列情報のうちDIVISIONとしてINVを含む配列の中から、DEFINITIONにspidroin、ampullate、fibroin、「silk及びpolypeptide」、又は「silk及びprotein」がキーワードとして記載されている配列、CDSから特定のproductの文字列、SOURCEからTISSUE TYPEに特定の文字列の記載された配列を抽出することにより確認することができる。
 改変フィブロインは、改変絹フィブロイン(カイコが産生する絹タンパク質のアミノ酸配列を改変したもの)であってもよく、改変クモ糸フィブロイン(クモ類が産生するスパイダーシルクタンパク質のアミノ酸配列を改変したもの)であってもよい。改変フィブロインとしては、改変クモ糸フィブロインが好ましい。
 改変フィブロインの具体的な例として、クモの大瓶状線で産生される大吐糸管しおり糸タンパク質に由来する改変フィブロイン(第1の改変フィブロイン)、グリシン残基の含有量が低減された改変フィブロイン(第2の改変フィブロイン)、(A)モチーフの含有量が低減された改変フィブロイン(第3の改変フィブロイン)、グリシン残基の含有量、及び(A)モチーフの含有量が低減された改変フィブロイン(第4の改変フィブロイン)が挙げられる。これらの改変フィブロインは、難燃性、吸湿発熱性、保温性に優れており、防火服(例えば、消防服、レスキュー用)、防火手袋(例えば、実験室用、工業用、調理用)、手袋、マフラー、セーター、アウター及びジャケット等の防寒着(防寒衣料)、防寒衣料の中綿、インナーウェア、スポーツウェア、シャツ、寝具、並びに寝具の中綿等に使用するのにも適している。
 第1の改変フィブロインとしては、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むタンパク質が挙げられる。第1の改変フィブロインにおいて、(A)モチーフのアミノ酸残基数は、3~20の整数が好ましく、4~20の整数がより好ましく、8~20の整数が更に好ましく、10~20の整数が更により好ましく、4~16の整数が更によりまた好ましく、8~16の整数が特に好ましく、10~16の整数が最も好ましい。第1の改変フィブロインは、式1中、REPを構成するアミノ酸残基の数は、10~200残基であることが好ましく、10~150残基であることがより好ましく、20~100残基であることが更に好ましく、20~75残基であることが更により好ましい。第1の改変フィブロインは、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるアミノ酸配列中に含まれるグリシン残基、セリン残基及びアラニン残基の合計残基数がアミノ酸残基数全体に対して、40%以上であることが好ましく、60%以上であることがより好ましく、70%以上であることが更に好ましい。
 第1の改変フィブロインは、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるアミノ酸配列の単位を含み、かつC末端配列が配列番号1~3のいずれかに示されるアミノ酸配列又は配列番号1~3のいずれかに示されるアミノ酸配列と90%以上の相同性を有するアミノ酸配列であるポリペプチドであってもよい。
 配列番号1に示されるアミノ酸配列は、ADF3(GI:1263287、NCBI)のアミノ酸配列のC末端の50残基のアミノ酸からなるアミノ酸配列と同一であり、配列番号2に示されるアミノ酸配列は、配列番号1に示されるアミノ酸配列のC末端から20残基取り除いたアミノ酸配列と同一であり、配列番号3に示されるアミノ酸配列は、配列番号1に示されるアミノ酸配列のC末端から29残基取り除いたアミノ酸配列と同一である。
 第1の改変フィブロインのより具体的な例として、(1-i)配列番号4(recombinant spider silk protein ADF3KaiLargeNRSH1)で示されるアミノ酸配列、又は(1-ii)配列番号4で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロインを挙げることができる。配列同一性は、95%以上であることが好ましい。
 配列番号4で示されるアミノ酸配列は、N末端に開始コドン、His10タグ及びHRV3Cプロテアーゼ(Human rhinovirus 3Cプロテアーゼ)認識サイトからなるアミノ酸配列(配列番号5)を付加したADF3のアミノ酸配列において、第1~13番目の反復領域をおよそ2倍になるように増やすとともに、翻訳が第1154番目アミノ酸残基で終止するように変異させたものである。配列番号4で示されるアミノ酸配列のC末端のアミノ酸配列は、配列番号3で示されるアミノ酸配列と同一である。
 (1-i)の改変フィブロインは、配列番号4で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
 第2の改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、グリシン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する。第2の改変フィブロインは、天然由来のフィブロインと比較して、少なくともREP中の1又は複数のグリシン残基が別のアミノ酸残基に置換されたことに相当するアミノ酸配列を有するものということができる。
 第2の改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中のGGX及びGPGXX(但し、Gはグリシン残基、Pはプロリン残基、Xはグリシン以外のアミノ酸残基を示す。)から選ばれる少なくとも一つのモチーフ配列において、少なくとも1又は複数の当該モチーフ配列中の1つのグリシン残基が別のアミノ酸残基に置換されたことに相当するアミノ酸配列を有するものであってもよい。
 第2の改変フィブロインは、上述のグリシン残基が別のアミノ酸残基に置換されたモチーフ配列の割合が、全モチーフ配列に対して、10%以上であってもよい。
 第2の改変フィブロインは、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含み、上記ドメイン配列から、最もC末端側に位置する(A)モチーフから上記ドメイン配列のC末端までの配列を除いた配列中の全REPに含まれるXGX(但し、Xはグリシン以外のアミノ酸残基を示す。)からなるアミノ酸配列の総アミノ酸残基数をzとし、上記ドメイン配列から、最もC末端側に位置する(A)モチーフから上記ドメイン配列のC末端までの配列を除いた配列中の総アミノ酸残基数をwとしたときに、z/wが30%以上、40%以上、50%以上又は50.9%以上であるアミノ酸配列を有するものであってもよい。(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数は83%以上であってよいが、86%以上であることが好ましく、90%以上であることがより好ましく、95%以上であることが更に好ましく、100%であること(アラニン残基のみで構成されることを意味する)が更により好ましい。
 第2の改変フィブロインは、GGXモチーフの1つのグリシン残基を別のアミノ酸残基に置換することにより、XGXからなるアミノ酸配列の含有割合を高めたものであることが好ましい。第2の改変フィブロインは、ドメイン配列中のGGXからなるアミノ酸配列の含有割合が30%以下であることが好ましく、20%以下であることがより好ましく、10%以下であることが更に好ましく、6%以下であることが更により好ましく、4%以下であることが更によりまた好ましく、2%以下であることが特に好ましい。ドメイン配列中のGGXからなるアミノ酸配列の含有割合は、下記XGXからなるアミノ酸配列の含有割合(z/w)の算出方法と同様の方法で算出することができる。
 z/wの算出方法を更に詳細に説明する。まず、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むフィブロイン(改変フィブロイン又は天然由来のフィブロイン)において、ドメイン配列から、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列を除いた配列に含まれる全てのREPから、XGXからなるアミノ酸配列を抽出する。XGXを構成するアミノ酸残基の総数がzである。例えば、XGXからなるアミノ酸配列が50個抽出された場合(重複はなし)、zは50×3=150である。また、例えば、XGXGXからなるアミノ酸配列の場合のように2つのXGXに含まれるX(中央のX)が存在する場合は、重複分を控除して計算する(XGXGXの場合は5アミノ酸残基である)。wは、ドメイン配列から、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列を除いた配列に含まれる総アミノ酸残基数である。例えば、図1に示したドメイン配列の場合、wは4+50+4+100+4+10+4+20+4+30=230である(最もC末端側に位置する(A)モチーフは除いている。)。次に、zをwで除すことによって、z/w(%)を算出することができる。
 ここで、天然由来のフィブロインにおけるz/wについて説明する。まず、上述のように、NCBI GenBankにアミノ酸配列情報が登録されているフィブロインを例示した方法により確認したところ、663種類のフィブロイン(このうち、クモ類由来のフィブロインは415種類)が抽出された。抽出された全てのフィブロインのうち、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含み、フィブロイン中のGGXからなるアミノ酸配列の含有割合が6%以下である天然由来のフィブロインのアミノ酸配列から、上述の算出方法により、z/wを算出した。その結果を図2に示す。図2の横軸はz/w(%)を示し、縦軸は頻度を示す。図2から明らかなとおり、天然由来のフィブロインにおけるz/wは、いずれも50.9%未満である(最も高いもので、50.86%)。
 第2の改変フィブロインにおいて、z/wは、50.9%以上であることが好ましく、56.1%以上であることがより好ましく、58.7%以上であることが更に好ましく、70%以上であることが更により好ましく、80%以上であることが更によりまた好ましい。z/wの上限に特に制限はないが、例えば、95%以下であってもよい。
 第2の改変フィブロインは、例えば、クローニングした天然由来のフィブロインの遺伝子配列から、グリシン残基をコードする塩基配列の少なくとも一部を置換して別のアミノ酸残基をコードするように改変することにより得ることができる。このとき、改変するグリシン残基として、GGXモチーフ及びGPGXXモチーフにおける1つのグリシン残基を選択してもよいし、またz/wが50.9%以上になるように置換してもよい。また、例えば、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列から上記態様を満たすアミノ酸配列を設計し、設計したアミノ酸配列をコードする核酸を化学合成することにより得ることもできる。いずれの場合においても、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列からREP中のグリシン残基を別のアミノ酸残基に置換したことに相当する改変に加え、更に1又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び/又は付加したことに相当するアミノ酸配列の改変を行ってもよい。
 上記の別のアミノ酸残基としては、グリシン残基以外のアミノ酸残基であれば特に制限はないが、バリン(V)残基、ロイシン(L)残基、イソロイシン(I)残基、メチオニン(M)残基、プロリン(P)残基、フェニルアラニン(F)残基及びトリプトファン(W)残基等の疎水性アミノ酸残基、グルタミン(Q)残基、アスパラギン(N)残基、セリン(S)残基、リシン(K)残基及びグルタミン酸(E)残基等の親水性アミノ酸残基が好ましく、バリン(V)残基、フェニルアラニン(F)残基、ロイシン(L)残基、イソロイシン(I)残基及びグルタミン(Q)残基がより好ましく、グルタミン(Q)残基が更に好ましい。
 フィブロインのより具体的な例として、(2-i)配列番号6(Met-PRT380)、配列番号7(Met-PRT410)、配列番号8(Met-PRT525)若しくは配列番号9(Met-PRT799)で示されるアミノ酸配列、又は(2-ii)配列番号6、配列番号7、配列番号8若しくは配列番号9で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロインを挙げることができる。
 (2-i)の改変フィブロインについて説明する。配列番号6で示されるアミノ酸配列は、天然由来のフィブロインに相当する配列番号10(Met-PRT313)で示されるアミノ酸配列のREP中の全てのGGXをGQXに置換したものである。配列番号7で示されるアミノ酸配列は、配列番号6で示されるアミノ酸配列から、N末端側からC末端側に向かって2つおきに(A)モチーフを欠失させ、更にC末端配列の手前に[(A)モチーフ-REP]を1つ挿入したものである。配列番号8で示されるアミノ酸配列は、配列番号7で示されるアミノ酸配列の各(A)モチーフのC末端側に2つのアラニン残基を挿入し、更に一部のグルタミン(Q)残基をセリン(S)残基に置換し、C末端側の一部のアミノ酸を欠失させたものである。配列番号9で示されるアミノ酸配列は、配列番号7で示されるアミノ酸配列中に存在する20個のドメイン配列の領域(但し、当該領域のC末端側の数アミノ酸残基が置換されている。)を4回繰り返した配列のC末端にHinge及びHisタグが付加されたものである。
 配列番号10で示されるアミノ酸配列(天然由来のフィブロインに相当)におけるz/wの値は、46.8%である。配列番号6で示されるアミノ酸配列、配列番号7で示されるアミノ酸配列、配列番号8で示されるアミノ酸配列、及び配列番号9で示されるアミノ酸配列におけるz/wの値は、それぞれ58.7%、70.1%、66.1%及び70.0%である。また、配列番号10、配列番号6、配列番号7、配列番号8及び配列番号9で示されるアミノ酸配列のギザ比率(後述する)1:1.8~11.3におけるx/yの値は、それぞれ15.0%、15.0%、93.4%、92.7%及び89.8%である。
 (2-i)の改変フィブロインは、配列番号6、配列番号7、配列番号8又は配列番号9で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
 (2-ii)の改変フィブロインは、配列番号6、配列番号7、配列番号8又は配列番号9で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むものである。(2-ii)の改変フィブロインもまた、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むタンパク質である。上記配列同一性は、95%以上であることが好ましい。
 (2-ii)の改変フィブロインは、配列番号6、配列番号7、配列番号8又は配列番号9で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有し、かつREP中に含まれるXGX(但し、Xはグリシン以外のアミノ酸残基を示す。)からなるアミノ酸配列の総アミノ酸残基数をzとし、上記ドメイン配列中のREPの総アミノ酸残基数をwとしたときに、z/wが50.9%以上であることが好ましい。
 第2の改変フィブロインは、N末端及びC末端のいずれか一方又は両方にタグ配列を含んでいてもよい。これにより、改変フィブロインの単離、固定化、検出及び可視化等が可能となる。
 タグ配列として、例えば、他の分子との特異的親和性(結合性、アフィニティ)を利用したアフィニティタグを挙げることができる。アフィニティタグの具体例として、ヒスチジンタグ(Hisタグ)を挙げることができる。Hisタグは、ヒスチジン残基が4から10個程度並んだ短いペプチドで、ニッケル等の金属イオンと特異的に結合する性質があるため、金属キレートクロマトグラフィー(chelating metal chromatography)による改変フィブロインの単離に利用することができる。タグ配列の具体例として、例えば、配列番号11で示されるアミノ酸配列(Hisタグ配列及びヒンジ配列を含むアミノ酸配列)が挙げられる。
 また、グルタチオンに特異的に結合するグルタチオン-S-トランスフェラーゼ(GST)、マルトースに特異的に結合するマルトース結合タンパク質(MBP)等のタグ配列を利用することもできる。
 さらに、抗原抗体反応を利用した「エピトープタグ」を利用することもできる。抗原性を示すペプチド(エピトープ)をタグ配列として付加することにより、当該エピトープに対する抗体を結合させることができる。エピトープタグとして、HA(インフルエンザウイルスのヘマグルチニンのペプチド配列)タグ、mycタグ、FLAGタグ等を挙げることができる。エピトープタグを利用することにより、高い特異性で容易に改変フィブロインを精製することができる。
 さらにタグ配列を特定のプロテアーゼで切り離せるようにしたものも使用することができる。当該タグ配列を介して吸着したタンパク質をプロテアーゼ処理することにより、タグ配列を切り離した改変フィブロインを回収することもできる。
 タグ配列を含む改変フィブロインのより具体的な例として、(2-iii)配列番号12(PRT380)、配列番号13(PRT410)、配列番号14(PRT525)若しくは配列番号15(PRT799)で示されるアミノ酸配列、又は(2-iv)配列番号12、配列番号13、配列番号14若しくは配列番号15で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロインを挙げることができる。
 配列番号16(PRT313)、配列番号12、配列番号13、配列番号14及び配列番号15で示されるアミノ酸配列は、それぞれ配列番号10、配列番号6、配列番号7、配列番号8及び配列番号9で示されるアミノ酸配列のN末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列(Hisタグ配列及びヒンジ配列を含む)を付加したものである。
 (2-iii)の改変フィブロインは、配列番号12、配列番号13、配列番号14又は配列番号15で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
 (2-iv)の改変フィブロインは、配列番号12、配列番号13、配列番号14又は配列番号15で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むものである。(2-iv)の改変フィブロインもまた、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むタンパク質である。上記配列同一性は、95%以上であることが好ましい。
 (2-iv)の改変フィブロインは、配列番号12、配列番号13、配列番号14又は配列番号15で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有し、かつREP中に含まれるXGX(但し、Xはグリシン以外のアミノ酸残基を示す。)からなるアミノ酸配列の総アミノ酸残基数をzとし、上記ドメイン配列中のREPの総アミノ酸残基数をwとしたときに、z/wが50.9%以上であることが好ましい。
 第2の改変フィブロインは、組換えタンパク質生産系において生産されたタンパク質を宿主の外部に放出するための分泌シグナルを含んでいてもよい。分泌シグナルの配列は、宿主の種類に応じて適宜設定することができる。
 第3の改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、(A)モチーフの含有量が低減されたアミノ酸配列を有する。第3の改変フィブロインのドメイン配列は、天然由来のフィブロインと比較して、少なくとも1又は複数の(A)モチーフが欠失したことに相当するアミノ酸配列を有するものということができる。
 第3の改変フィブロインは、天然由来のフィブロインから(A)モチーフを10~40%欠失させたことに相当するアミノ酸配列を有するものであってもよい。
 第3の改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、少なくともN末端側からC末端側に向かって1~3つの(A)モチーフ毎に1つの(A)モチーフが欠失したことに相当するアミノ酸配列を有するものであってもよい。
 第3の改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、少なくともN末端側からC末端側に向かって2つ連続した(A)モチーフの欠失、及び1つの(A)モチーフの欠失がこの順に繰り返されたことに相当するアミノ酸配列を有するものであってもよい。
 第3の改変フィブロインは、そのドメイン配列が、少なくともN末端側からC末端側に向かって2つおきに(A)モチーフが欠失したことに相当するアミノ酸配列を有するものであってもよい。
 第3の改変フィブロインは、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含み、N末端側からC末端側に向かって、隣合う2つの[(A)モチーフ-REP]ユニットのREPのアミノ酸残基数を順次比較して、アミノ酸残基数が少ないREPのアミノ酸残基数を1としたとき、他方のREPのアミノ酸残基数の比が1.8~11.3となる隣合う2つの[(A)モチーフ-REP]ユニットのアミノ酸残基数を足し合わせた合計値の最大値をxとし、ドメイン配列の総アミノ酸残基数をyとしたときに、x/yが20%以上、30%以上、40%以上又は50%以上であるアミノ酸配列を有するものであってもよい。(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数は83%以上であってよいが、86%以上であることが好ましく、90%以上であることがより好ましく、95%以上であることが更に好ましく、100%であること(アラニン残基のみで構成されることを意味する)が更により好ましい。
 x/yの算出方法を図1を参照しながら更に詳細に説明する。図1には、改変フィブロインからN末端配列及びC末端配列を除いたドメイン配列を示す。当該ドメイン配列は、N末端側(左側)から(A)モチーフ-第1のREP(50アミノ酸残基)-(A)モチーフ-第2のREP(100アミノ酸残基)-(A)モチーフ-第3のREP(10アミノ酸残基)-(A)モチーフ-第4のREP(20アミノ酸残基)-(A)モチーフ-第5のREP(30アミノ酸残基)-(A)モチーフという配列を有する。
 隣合う2つの[(A)モチーフ-REP]ユニットは、重複がないように、N末端側からC末端側に向かって、順次選択する。このとき、選択されない[(A)モチーフ-REP]ユニットが存在してもよい。図1には、パターン1(第1のREPと第2のREPの比較、及び第3のREPと第4のREPの比較)、パターン2(第1のREPと第2のREPの比較、及び第4のREPと第5のREPの比較)、パターン3(第2のREPと第3のREPの比較、及び第4のREPと第5のREPの比較)、パターン4(第1のREPと第2のREPの比較)を示した。なお、これ以外にも選択方法は存在する。
 次に各パターンについて、選択した隣合う2つの[(A)モチーフ-REP]ユニット中の各REPのアミノ酸残基数を比較する。比較は、よりアミノ酸残基数の少ない方を1としたときの、他方のアミノ酸残基数の比を求めることによって行う。例えば、第1のREP(50アミノ酸残基)と第2のREP(100アミノ酸残基)の比較の場合、よりアミノ酸残基数の少ない第1のREPを1としたとき、第2のREPのアミノ酸残基数の比は、100/50=2である。同様に、第4のREP(20アミノ酸残基)と第5のREP(30アミノ酸残基)の比較の場合、よりアミノ酸残基数の少ない第4のREPを1としたとき、第5のREPのアミノ酸残基数の比は、30/20=1.5である。
 図1中、よりアミノ酸残基数の少ない方を1としたときに、他方のアミノ酸残基数の比が1.8~11.3となる[(A)モチーフ-REP]ユニットの組を実線で示した。本明細書中、この比をギザ比率と呼ぶ。よりアミノ酸残基数の少ない方を1としたときに、他方のアミノ酸残基数の比が1.8未満又は11.3超となる[(A)モチーフ-REP]ユニットの組は破線で示した。
 各パターンにおいて、実線で示した隣合う2つの[(A)モチーフ-REP]ユニットの全てのアミノ酸残基数を足し合わせる(REPのみではなく、(A)モチーフのアミノ酸残基数もである。)。そして、足し合わせた合計値を比較して、当該合計値が最大となるパターンの合計値(合計値の最大値)をxとする。図1に示した例では、パターン1の合計値が最大である。
 次に、xをドメイン配列の総アミノ酸残基数yで除すことによって、x/y(%)を算出することができる。
 第3の改変フィブロインにおいて、x/yは、50%以上であることが好ましく、60%以上であることがより好ましく、65%以上であることが更に好ましく、70%以上であることが更により好ましく、75%以上であることが更によりまた好ましく、80%以上であることが特に好ましい。x/yの上限に特に制限はなく、例えば、100%以下であってよい。ギザ比率が1:1.9~11.3の場合には、x/yは89.6%以上であることが好ましく、ギザ比率が1:1.8~3.4の場合には、x/yは77.1%以上であることが好ましく、ギザ比率が1:1.9~8.4の場合には、x/yは75.9%以上であることが好ましく、ギザ比率が1:1.9~4.1の場合には、x/yは64.2%以上であることが好ましい。
 第3の改変フィブロインが、ドメイン配列中に複数存在する(A)モチーフの少なくとも7つがアラニン残基のみで構成される改変フィブロインである場合、x/yは、46.4%以上であることが好ましく、50%以上であることがより好ましく、55%以上であることが更に好ましく、60%以上であることが更により好ましく、70%以上であることが更によりまた好ましく、80%以上であることが特に好ましい。x/yの上限に特に制限はなく、100%以下であればよい。
 ここで、天然由来のフィブロインにおけるx/yについて説明する。まず、上述のように、NCBI GenBankにアミノ酸配列情報が登録されているフィブロインを例示した方法により確認したところ、663種類のフィブロイン(このうち、クモ類由来のフィブロインは415種類)が抽出された。抽出された全てのフィブロインのうち、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列で構成される天然由来のフィブロインのアミノ酸配列から、上述の算出方法により、x/yを算出した。ギザ比率が1:1.9~4.1の場合の結果を図3に示す。
 図3の横軸はx/y(%)を示し、縦軸は頻度を示す。図3から明らかなとおり、天然由来のフィブロインにおけるx/yは、いずれも64.2%未満である(最も高いもので、64.14%)。
 第3の改変フィブロインは、例えば、クローニングした天然由来のフィブロインの遺伝子配列から、x/yが64.2%以上になるように(A)モチーフをコードする配列の1又は複数を欠失させることにより得ることができる。また、例えば、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列から、x/yが64.2%以上になるように1又は複数の(A)モチーフが欠失したことに相当するアミノ酸配列を設計し、設計したアミノ酸配列をコードする核酸を化学合成することにより得ることもできる。いずれの場合においても、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列から(A)モチーフが欠失したことに相当する改変に加え、更に1又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び/又は付加したことに相当するアミノ酸配列の改変を行ってもよい。
 第3の改変フィブロインのより具体的な例として、(3-i)配列番号17(Met-PRT399)、配列番号7(Met-PRT410)、配列番号8(Met-PRT525)若しくは配列番号9(Met-PRT799)で示されるアミノ酸配列、又は(3-ii)配列番号17、配列番号7、配列番号8若しくは配列番号9で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロインを挙げることができる。
 (3-i)の改変フィブロインについて説明する。配列番号17で示されるアミノ酸配列は、天然由来のフィブロインに相当する配列番号10(Met-PRT313)で示されるアミノ酸配列から、N末端側からC末端側に向かって2つおきに(A)モチーフを欠失させ、更にC末端配列の手前に[(A)モチーフ-REP]を1つ挿入したものである。配列番号7、配列番号8又は配列番号9で示されるアミノ酸配列は、第2の改変フィブロインで説明したとおりである。
 配列番号10で示されるアミノ酸配列(天然由来のフィブロインに相当)のギザ比率1:1.8~11.3におけるx/yの値は15.0%である。配列番号17で示されるアミノ酸配列、及び配列番号7で示されるアミノ酸配列におけるx/yの値は、いずれも93.4%である。配列番号8で示されるアミノ酸配列におけるx/yの値は、92.7%である。配列番号9で示されるアミノ酸配列におけるx/yの値は、89.8%である。配列番号10、配列番号17、配列番号7、配列番号8及び配列番号9で示されるアミノ酸配列におけるz/wの値は、それぞれ46.8%、56.2%、70.1%、66.1%及び70.0%である。
 (3-i)の改変フィブロインは、配列番号17、配列番号7、配列番号8又は配列番号9で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
 (3-ii)の改変フィブロインは、配列番号17、配列番号7、配列番号8又は配列番号9で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むものである。(3-ii)の改変フィブロインもまた、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むタンパク質である。上記配列同一性は、95%以上であることが好ましい。
 (3-ii)の改変フィブロインは、配列番号17、配列番号7、配列番号8又は配列番号9で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有し、かつN末端側からC末端側に向かって、隣合う2つの[(A)モチーフ-REP]ユニットのREPのアミノ酸残基数を順次比較して、アミノ酸残基数が少ないREPのアミノ酸残基数を1としたとき、他方のREPのアミノ酸残基数の比が1.8~11.3(ギザ比率が1:1.8~11.3)となる隣合う2つの[(A)モチーフ-REP]ユニットのアミノ酸残基数を足し合わせた合計値の最大値をxとし、ドメイン配列の総アミノ酸残基数をyとしたときに、x/yが64.2%以上であることが好ましい。
 第3の改変フィブロインは、N末端及びC末端のいずれか一方又は両方に上述したタグ配列を含んでいてもよい。
 タグ配列を含む改変フィブロインのより具体的な例として、(3-iii)配列番号18(PRT399)、配列番号13(PRT410)、配列番号14(PRT525)若しくは配列番号15(PRT799)で示されるアミノ酸配列、又は(3-iv)配列番号18、配列番号13、配列番号14若しくは配列番号15で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロインを挙げることができる。
 配列番号18、配列番号13、配列番号14及び配列番号15で示されるアミノ酸配列は、それぞれ配列番号17、配列番号7、配列番号8及び配列番号9で示されるアミノ酸配列のN末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列(Hisタグ配列及びヒンジ配列を含む)を付加したものである。
 (3-iii)の改変フィブロインは、配列番号18、配列番号13、配列番号14又は配列番号15で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
 (3-iv)の改変フィブロインは、配列番号18、配列番号13、配列番号14又は配列番号15で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むものである。(3-iv)の改変フィブロインもまた、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むタンパク質である。上記配列同一性は、95%以上であることが好ましい。
 (3-iv)の改変フィブロインは、配列番号18、配列番号13、配列番号14又は配列番号15で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有し、かつN末端側からC末端側に向かって、隣合う2つの[(A)モチーフ-REP]ユニットのREPのアミノ酸残基数を順次比較して、アミノ酸残基数が少ないREPのアミノ酸残基数を1としたとき、他方のREPのアミノ酸残基数の比が1.8~11.3となる隣合う2つの[(A)モチーフ-REP]ユニットのアミノ酸残基数を足し合わせた合計値の最大値をxとし、ドメイン配列の総アミノ酸残基数をyとしたときに、x/yが64.2%以上であることが好ましい。
 第3の改変フィブロインは、組換えタンパク質生産系において生産されたタンパク質を宿主の外部に放出するための分泌シグナルを含んでいてもよい。分泌シグナルの配列は、宿主の種類に応じて適宜設定することができる。
 第4の改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、(A)モチーフの含有量が低減されたことに加え、グリシン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有するものである。第4の改変フィブロインのドメイン配列は、天然由来のフィブロインと比較して、少なくとも1又は複数の(A)モチーフが欠失したことに加え、更に少なくともREP中の1又は複数のグリシン残基が別のアミノ酸残基に置換されたことに相当するアミノ酸配列を有するものということができる。すなわち、上述した第2の改変フィブロインと、第3の改変フィブロインの特徴を併せ持つ改変フィブロインである。具体的な態様等は、第2の改変フィブロイン、及び第3の改変フィブロインで説明したとおりである。
 第4の改変フィブロインのより具体的な例として、(4-i)配列番号7(Met-PRT410)、配列番号8(Met-PRT525)、配列番号9(Met-PRT799)、配列番号13(PRT410)、配列番号14(PRT525)若しくは配列番号15(PRT799)で示されるアミノ酸配列、又は(4-ii)配列番号7、配列番号8、配列番号9、配列番号13、配列番号14若しくは配列番号15で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロインを挙げることができる。配列番号7、配列番号8、配列番号9、配列番号13、配列番号14又は配列番号15で示されるアミノ酸配列を含む改変フィブロインの具体的な態様は上述のとおりである。
 第2成分に含まれる構造タンパク質は、合成繊維であってもよく、疎水性改変フィブロインであってもよい。
 合成繊維は、一般的に水に濡れにくく、吸水性及び吸湿性に乏しい性質を有している。合成繊維としては、例えば、ポリエチレンテレフタレート等のポリエステル、ポリカプロアミド(ナイロン6)、ナイロン66等のポリアミド、ポリアクリル、ポリビニルホルマール(ビニロン)が挙げられる。合成繊維は、一般的に、水性媒体と接触させても収縮しにくい性質を有する。
 第2成分は、化学繊維であってもよい。化学繊維としては、天然高分子(天然繊維)、半合成高分子(半合成繊維)、及び合成高分子(合成繊維)が挙げられる。天然高分子(天然繊維)としては、例えば、レーヨン、キュプラ、ポリノジック及びリヨセル等のセルロース再生繊維が挙げられる。
 半合成高分子(半合成繊維)としては、例えば、アセテート(ジアセテート)及びトリアセテート等のアセテート繊維、プロミックス等が挙げられる。
 合成高分子(合成繊維)としては、例えば、上述のポリエチレンテレフタレート等のポリエステル、ポリカプロアミド(ナイロン6)、ナイロン66等のポリアミド、ポリアクリル、ポリビニルホルマール(ビニロン)、及びポリウレタン(スパンデックス)等が挙げられる。
 第2成分としてセルロース再生繊維、アセテート繊維、プロミックス、ポリアクリル、ポリビニルホルマール、又はポリウレタン等を用いる場合は、公知の溶媒(溶液)に溶解させて紡糸液(ドープ液)とし、紡糸口金から吐出して第1成分と接合させ、第1成分(改変フィブロイン)及び第2成分(化学繊維)を凝固液中で固めることにより、サイドバイサイド型複合繊維とすることができる。
 第2成分としてポリエステル、又はポリアミドを用いる場合は、これらの原料を溶融させて液体とし、紡糸口金から吐出して第1成分と接合させ、第1成分(改変フィブロイン)及び第2成分(化学繊維)を固めることにより、サイドバイサイド型複合繊維とすることができる。
 本明細書において、「疎水性改変フィブロイン」とは、吸水性又は吸湿性に乏しい改変フィブロイン繊維を意味し、例えば、各アミノ酸の疎水性指標(ハイドロパシー・インデックス、以下「HI」とも記す。)を利用して判断してもよい。疎水性指標が高いことにより、繊維自体の疎水性度が高まり、水性媒体と接触させても収縮率が低減され得る。
 構造タンパク質は、特に限定されるものではなく、遺伝子組換え技術により微生物等で製造したものであってもよく、合成により製造されたものであってもよい。あるいは、構造タンパク質は、天然由来の構造タンパク質を精製したものであってもよい。
 構造タンパク質は、例えば、構造タンパク質及び当該構造タンパク質に由来する人造構造タンパク質であってもよい。構造タンパク質とは、生体内で構造及び形態等を形成又は保持する構造タンパク質を意味する。すなわち、構造タンパク質は、天然由来の構造タンパク質であってよく、天然由来の構造タンパク質のアミノ酸配列に依拠してそのアミノ酸配列の一部(例えば、当該アミノ酸配列の10%以下)を改変した改変タンパク質であってもよい。構造タンパク質としては、例えば、フィブロイン、ケラチン、コラーゲン、エラスチン及びレシリン等を挙げることができる。
 フィブロインは、例えば、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、及びホーネットシルクフィブロインからなる群より選択される1種以上であってよい。特に、構造タンパク質は、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン又はこれらの組み合わせであってもよい。絹フィブロインとクモ糸フィブロインとを併用する場合、絹フィブロインの割合は、例えば、クモ糸フィブロイン100質量部に対して、40質量部以下、30質量部以下、又は10質量部以下であってよい。
 絹糸は、カイコガ(Bombyx mori)の幼虫である蚕の作る繭から得られる繊維(繭糸)である。一般に、1本の繭糸は、2本の絹フィブロインと、これらを外側から覆うニカワ質(セリシン)とから構成される。絹フィブロインは、多数のフィブリルで構成される。絹フィブロインは、4層のセリシンで覆われる。実用的には、精練により外側のセリシンを溶解して取り除いて得られる絹フィラメントが、衣料用途に使用されている。一般的な絹糸は、1.33の比重、平均3.3decitexの繊度、及び1300~1500m程度の繊維長を有する。絹フィブロインは、天然若しくは家蚕の繭、又は中古若しくは廃棄のシルク生地を原料として得られる。
 絹フィブロインとしては、セリシン除去絹フィブロイン、セリシン未除去絹フィブロイン、又はこれらの組み合わせであってもよい。セリシン除去絹フィブロインは、絹フィブロインを覆うセリシン、及びその他の脂肪分などを除去して精製したものである。このようにして精製した絹フィブロインは、好ましくは、凍結乾燥粉末として用いられる。セリシン未除去絹フィブロインは、セリシンなどが除去されていない未精製の絹フィブロインである。
 クモ糸フィブロインは、天然クモ糸構造タンパク質、及び天然クモ糸構造タンパク質に由来するポリペプチド(人造クモ糸構造タンパク質)からなる群より選ばれるクモ糸ポリペプチドを含有していてもよい。
 天然クモ糸構造タンパク質としては、例えば、大吐糸管しおり糸構造タンパク質、横糸タンパク質、及び小瓶状腺構造タンパク質が挙げられる。大吐糸管しおり糸は、結晶領域と非晶領域(無定形領域とも言う。)からなる繰り返し領域を持つため、高い応力と伸縮性を併せ持つ。クモ糸の横糸は、結晶領域を持たず、非晶領域からなる繰り返し領域を持つという特徴を有する。横糸は、大吐糸管しおり糸に比べると応力は劣るが、高い伸縮性を持つ。
 大吐糸管しおり糸構造タンパク質は、クモの大瓶状腺で産生され、強靭性に優れるという特徴を有する。大吐糸管しおり糸構造タンパク質としては、例えば、アメリカジョロウグモ(Nephila clavipes)に由来する大瓶状腺スピドロインMaSp1及びMaSp2、並びに二ワオニグモ(Araneus diadematus)に由来するADF3及びADF4が挙げられる。ADF3は、ニワオニグモの2つの主要なしおり糸タンパク質の一つである。天然クモ糸構造タンパク質に由来するポリペプチドは、これらのしおり糸構造タンパク質に由来するポリペプチドであってもよい。ADF3に由来するポリペプチドは、比較的合成し易く、また、強伸度及びタフネスの点で優れた特性を有する。
 横糸構造タンパク質は、クモの鞭毛状腺(flagelliform gland)で産生される。横糸構造タンパク質としては、例えばアメリカジョロウグモ(Nephila clavipes)に由来する鞭毛状絹構造タンパク質(flagelliform silk protein)が挙げられる。
 天然クモ糸構造タンパク質に由来するポリペプチドは、組換えクモ糸構造タンパク質であってよい。組換えクモ糸構造タンパク質としては、天然型クモ糸構造タンパク質の変異体、類似体又は誘導体等が挙げられる。このようなポリペプチドの好適な一例は、大吐糸管しおり糸タンパク質の組換えクモ糸構造タンパク質(「大吐糸管しおり糸構造タンパク質に由来するポリペプチド」ともいう。)である。
 フィブロイン様構造タンパク質である大吐糸管しおり糸由来の構造タンパク質及びカイコシルク由来の構造タンパク質としては、例えば、式1:[(A)モチーフ-REP1]で表されるドメイン配列を含むタンパク質が挙げられる。ここで、式1中、(A)モチーフの、Aはアラニン残基を示し、nは2~27の整数が好ましく、4~20、8~20、10~20、4~16、8~16、10~16の整数であって良く、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数は40%以上であれば良く、60%以上、70%以上、80%以上、90%以上、100%(アラニン残基のみで構成されることを意味する)であってもよい。REP1は10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは10~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREP1は、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。
 上記において、式1中の(A)モチーフを欠失させることにより、強度と伸度を維持したまま、工業的生産性を向上させた構造タンパク質でもよい。欠失させる頻度としては、例えば、N末端側からC末端側に向かって、隣合う2つの[(A)モチーフ-REP1]ユニットのREPのアミノ酸残基数を順次比較して、アミノ酸残基数が少ないREPのアミノ酸残基数を1としたとき、他方のREPのアミノ酸残基数の比が1.8~11.3となる上記隣合う2つの[(A)モチーフ-REP1]ユニットのアミノ酸残基数を足し合わせた合計値の最大値をxとし、上記ドメイン配列の総アミノ酸残基数をyとしたときに、x/yが50%以上となる構造タンパク質があげられる。
 また、式1中のREPにおいて、少なくともREP中の1又は複数のグリシン残基を別のアミノ酸残基に置換したことに相当する、グリシン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する構造タンパク質でもよい。このような構造タンパク質として、グリシン残基が別のアミノ酸残基に置換されたモチーフ配列の割合が、全モチーフ配列に対して、10%以上である構造タンパク質があげられる。
 大吐糸管しおり糸由来の構造タンパク質の具体例としては、配列番号13及び配列番号15で示されるアミノ酸配列を含む構造タンパク質を挙げることができる。
 横糸構造タンパク質に由来する構造タンパク質としては、例えば、式2:[REP2]で表されるドメイン配列を含む構造タンパク質(ここで、式2中、REP2はGly-Pro-Gly-Gly-Xから構成されるアミノ酸配列を示し、Xはアラニン(Ala)、セリン(Ser)、チロシン(Tyr)及びバリン(Val)からなる群から選ばれる一つのアミノ酸を示す。oは8~300の整数を示す。)を挙げることができる。具体的には配列番号13で示されるアミノ酸配列を含む構造タンパク質を挙げることができる。配列番号41で示されるアミノ酸配列(PRT215)は、NCBIデータベースから入手したアメリカジョロウグモの鞭毛状絹構造タンパク質の部分的な配列(NCBIアクセッション番号:AAF36090、GI:7106224)のリピート部分及びモチーフに該当するN末端から1220残基目から1659残基目までのアミノ酸配列(PR1配列と記す。)と、NCBIデータベースから入手したアメリカジョロウグモの鞭毛状絹構造タンパク質の部分配列(NCBIアクセッション番号:AAC38847、GI:2833649)のC末端から816残基目から907残基目までのC末端アミノ酸配列を結合し、結合した配列のN末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列(タグ配列及びヒンジ配列)が付加されたものである。
 コラーゲン由来の構造タンパク質として、例えば、式3:[REP3]で表されるドメイン配列を含む構造タンパク質(ここで、式3中、pは5~300の整数を示す。REP3は、Gly-X-Yから構成されるアミノ酸配列を示し、X及びYはGly以外の任意のアミノ酸残基を示す。複数存在するREP3は、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。)を挙げることができる。具体的には、配列番号42で示されるアミノ酸配列を含む構造タンパク質を挙げることができる。配列番号42で示されるアミノ酸配列は、NCBIデータベースから入手したヒトのコラーゲンタイプ4の部分的な配列(NCBIのGenBankのアクセッション番号:CAA56335.1、GI:3702452)のリピート部分及びモチーフに該当する301残基目から540残基目までのアミノ酸配列のN末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列(タグ配列及びヒンジ配列)が付加されたものである。
 レシリン由来の構造タンパク質として、例えば、式4:[REP4]で表されるドメイン配列を含む構造タンパク質(ここで、式4中、qは4~300の整数を示す。REP4はSer-J-J-Tyr-Gly-U-Proから構成されるアミノ酸配列を示す。Jは任意のアミノ酸残基を示し、特にAsp、Ser及びThrからなる群から選ばれるアミノ酸残基であることが好ましい。Uは任意のアミノ酸残基を示し、特にPro、Ala、Thr及びSerからなる群から選ばれるアミノ酸残基であることが好ましい。複数存在するREP4は、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。)を挙げることができる。具体的には、配列番号43で示されるアミノ酸配列を含む構造タンパク質を挙げることができる。配列番号43で示されるアミノ酸配列は、レシリン(NCBIのGenBankのアクセッション番号NP 611157、Gl:24654243)のアミノ酸配列において、87残基目のThrをSerに置換し、かつ95残基目のAsnをAspに置換した配列の19残基目から321残基目までのアミノ酸配列のN末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列(タグ配列及びヒンジ配列)が付加されたものである。
 エラスチン由来の構造タンパク質として、例えば、NCBIのGenBankのアクセッション番号AAC98395(ヒト)、I47076(ヒツジ)、NP786966(ウシ)等のアミノ酸配列を有する構造タンパク質を挙げることができる。具体的には、配列番号44で示されるアミノ酸配列を含む構造タンパク質を挙げることができる。配列番号44で示されるアミノ酸配列は、NCBIのGenBankのアクセッション番号AAC98395のアミノ酸配列の121残基目から390残基目までのアミノ酸配列のN末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列(タグ配列及びヒンジ配列)が付加されたものである。
 ケラチン由来の構造タンパク質として、例えば、カプラ・ヒルクス(Capra hircus)のタイプIケラチン等を挙げることができる。具体的には、配列番号45で示されるアミノ酸配列を含む構造タンパク質を挙げることができる。配列番号45(PRT798)で示されるアミノ酸配列は、NCBIのGenBankのアクセッション番号ACY30466のアミノ酸配列のN末端に、配列番号11で示されるアミノ酸配列(タグ配列及びヒンジ配列)が付加されたものである。
 構造タンパク質又はそれに由来する構造タンパク質は、1種を単独で、又は2種以上を組み合わせて用いることができる。構造タンパク質を2種以上組み合わせることで、全体としての疎水性度を所望の値に調節してもよい。
 改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列とは異なるフィブロインであってもよく、天然由来のフィブロインとアミノ酸配列と同一であるフィブロインであってもよい。最外層に使用される改変フィブロインは、例えば、天然由来のフィブロインに疎水性を付与するように人為的にドメイン配列を改変したものであってもよい。
 第2成分に使用される改変フィブロインの具体的な例として、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むドメイン配列を有する改変フィブロイン(第5の改変フィブロイン)、又はグルタミン残基の含有量が低減されたドメイン配列を有する改変フィブロイン(第6の改変フィブロイン)が挙げられる。各アミノ酸の疎水性指標については、後述する。
 第5の改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列を有するものであってよい。
 局所的に疎水性指標の大きい領域は、連続する2~4アミノ酸残基で構成されていることが好ましい。上述の「疎水性指標の大きい領域」とは、連続する2~4アミノ酸残基の疎水性指標の合計または平均値が、対応する天然由来のフィブロインにおける同位置のアミノ酸残基の疎水性指標の合計または平均値よりも大きい領域である。
 「疎水性指標の大きいアミノ酸残基」とは、対応する天然由来のフィブロインにおける同位置のアミノ酸残基よりも大きな疎水性指標を有するアミノ酸残基である。上述の疎水性指標の大きいアミノ酸残基は、イソロイシン(I)、バリン(V)、ロイシン(L)、フェニルアラニン(F)、システイン(C)、メチオニン(M)及びアラニン(A)から選ばれるアミノ酸残基であることがより好ましい。
 第5の改変フィブロインは、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する改変に加え、更に、天然由来のフィブロインと比較して、1又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び/又は付加したことに相当するアミノ酸配列の改変があってもよい。
 第5の改変フィブロインは、例えば、クローニングした天然由来のフィブロインの遺伝子配列からREP中の1又は複数の親水性アミノ酸残基(例えば、疎水性指標がマイナスであるアミノ酸残基)を疎水性アミノ酸残基(例えば、疎水性指標がプラスであるアミノ酸残基)に置換すること、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性アミノ酸残基を挿入することにより得ることができる。また、例えば、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列からREP中の1又は複数の親水性アミノ酸残基を疎水性アミノ酸残基に置換したこと、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性アミノ酸残基を挿入したことに相当するアミノ酸配列を設計し、設計したアミノ酸配列をコードする核酸を化学合成することにより得ることもできる。いずれの場合においても、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列からREP中の1又は複数の親水性アミノ酸残基を疎水性アミノ酸残基に置換したこと、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性アミノ酸残基を挿入したことに相当する改変に加え、更に1又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び/又は付加したことに相当するアミノ酸配列の改変を行ってもよい。
 第5の改変フィブロインは、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含み、最もC末端側に位置する(A)モチーフから上記ドメイン配列のC末端までの配列を上記ドメイン配列から除いた配列に含まれる全てのREPにおいて、連続する4アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が2.6以上となる領域に含まれるアミノ酸残基の総数をpとし、最もC末端側に位置する(A)モチーフから上記ドメイン配列のC末端までの配列を上記ドメイン配列から除いた配列に含まれるアミノ酸残基の総数をqとしたときに、p/qが6.2%以上であるアミノ酸配列を有してもよい。
 アミノ酸残基の疎水性指標については、公知の指標(Hydropathy index:Kyte J,&Doolittle R(1982)“A simple method for displaying the hydropathic character of a protein”,J.Mol.Biol.,157,pp.105-132)を使用する。具体的には、各アミノ酸の疎水性指標(ハイドロパシー・インデックス、以下「HI」とも記す。)は、下記表1に示すとおりである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 p/qの算出方法を更に詳細に説明する。算出には、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列から、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列を除いた配列(以下、「配列A」とする)を用いる。まず、配列Aに含まれる全てのREPにおいて、連続する4アミノ酸残基の疎水性指標の平均値を算出する。疎水性指標の平均値は、連続する4アミノ酸残基に含まれる各アミノ酸残基のHIの総和を4(アミノ酸残基数)で除して求める。疎水性指標の平均値は、全ての連続する4アミノ酸残基について求める(各アミノ酸残基は、1~4回平均値の算出に用いられる。)。次いで、連続する4アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が2.6以上となる領域を特定する。あるアミノ酸残基が、複数の「疎水性指標の平均値が2.6以上となる連続する4アミノ酸残基」に該当する場合であっても、領域中には1アミノ酸残基として含まれることになる。そして、当該領域に含まれるアミノ酸残基の総数がpである。また、配列Aに含まれるアミノ酸残基の総数がqである。
 例えば、「疎水性指標の平均値が2.6以上となる連続する4アミノ酸残基」が20カ所抽出された場合(重複はなし)、連続する4アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が2.6以上となる領域には、連続する4アミノ酸残基(重複はなし)が20含まれることになり、pは20×4=80である。また、例えば、2つの「疎水性指標の平均値が2.6以上となる連続する4アミノ酸残基」が1アミノ酸残基だけ重複して存在する場合、連続する4アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が2.6以上となる領域には、7アミノ酸残基含まれることになる(p=2×4-1=7。「-1」は重複分の控除である。)。例えば、図4に示したドメイン配列の場合、「疎水性指標の平均値が2.6以上となる連続する4アミノ酸残基」が重複せずに7つ存在するため、pは7×4=28となる。また、例えば、図4に示したドメイン配列の場合、qは4+50+4+40+4+10+4+20+4+30=170である(C末端側の最後に存在する(A)モチーフは含めない)。次に、pをqで除すことによって、p/q(%)を算出することができる。図4の場合28/170=16.47%となる。
 第5の改変フィブロインにおいて、p/qは、6.2%以上であることが好ましく、7%以上であることがより好ましく、10%以上であることが更に好ましく、20%以上であることが更により好ましく、30%以上であることが更によりまた好ましい。p/qの上限は、特に制限されないが、例えば、45%以下であってもよい。
 第5の改変フィブロインは、例えば、クローニングした天然由来のフィブロインのアミノ酸配列を、上記のp/qの条件を満たすように、REP中の1又は複数の親水性アミノ酸残基(例えば、疎水性指標がマイナスであるアミノ酸残基)を疎水性アミノ酸残基(例えば、疎水性指標がプラスであるアミノ酸残基)に置換すること、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性アミノ酸残基を挿入することにより、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列に改変することにより得ることができる。また、例えば、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列から上記のp/qの条件を満たすアミノ酸配列を設計し、設計したアミノ酸配列をコードする核酸を化学合成することにより得ることもできる。いずれの場合においても、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する改変に加え、更に1又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び/又は付加したことに相当する改変を行ってもよい。
 疎水性指標の大きいアミノ酸残基としては、特に制限はないが、イソロイシン(I)、バリン(V)、ロイシン(L)、フェニルアラニン(F)、システイン(C)、メチオニン(M)及びアラニン(A)が好ましく、バリン(V)、ロイシン(L)及びイソロイシン(I)がより好ましい。
 第5の改変フィブロインのより具体的な例として、(5-i)配列番号19(Met-PRT720)、配列番号20(Met-PRT665)若しくは配列番号21(Met-PRT666)で示されるアミノ酸配列、又は(5-ii)配列番号19、配列番号20若しくは配列番号21で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロインを挙げることができる。
 (5-i)の改変フィブロインについて説明する。配列番号19で示されるアミノ酸配列は、配列番号7(Met-PRT410)で示されるアミノ酸配列に対し、C末端側の端末を除いて、REP一つ置きにそれぞれ3アミノ酸残基からなるアミノ酸配列(VLI)を2カ所挿入し、さらに一部のグルタミン残基(G)をセリン残基(S)に置換し、かつC末端側の一部のアミノ酸を欠失させたものである。配列番号20で示されるアミノ酸配列は、配列番号8(Met-PRT525)で示されるアミノ酸配列に対し、REP一つ置きにそれぞれ3アミノ酸残基からなるアミノ酸配列(VLI)を1カ所挿入したものである。配列番号21で示されるアミノ酸配列は、配列番号8で示されるアミノ酸配列に対し、REP一つ置きにそれぞれ3アミノ酸残基からなるアミノ酸配列(VLI)を2カ所挿入したものである。
 (5-i)の改変フィブロインは、配列番号19、配列番号20又は配列番号21で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
 (5-ii)の改変フィブロインは、配列番号19、配列番号20又は配列番号21で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むものである。(5-ii)の改変フィブロインもまた、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むタンパク質である。上記配列同一性は、95%以上であることが好ましい。
 (5-ii)の改変フィブロインは、配列番号19、配列番号20又は配列番号21で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有し、かつ最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれる全てのREPにおいて、連続する4アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が2.6以上となる領域に含まれるアミノ酸残基の総数をpとし、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれるアミノ酸残基の総数をqとしたときに、p/qが6.2%以上であることが好ましい。
 第5の改変フィブロインは、N末端及びC末端のいずれか一方又は両方にタグ配列を含んでいてもよい。
 タグ配列を含む改変フィブロインのより具体的な例として、(5-iii)配列番号22(PRT720)、配列番号23(PRT665)若しくは配列番号24(PRT666)で示されるアミノ酸配列、又は(5-iv)配列番号22、配列番号23若しくは配列番号24で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、改変フィブロインを挙げることができる。
 配列番号22、配列番号23及び配列番号24で示されるアミノ酸配列は、それぞれ配列番号19、配列番号20及び配列番号21で示されるアミノ酸配列のN末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列(Hisタグ配列及びヒンジ配列を含む)を付加したものである。
 (5-iii)の改変フィブロインは、配列番号22、配列番号23又は配列番号24で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
 (5-iv)の改変フィブロインは、配列番号22、配列番号23又は配列番号24で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むものである。(5-iv)の改変フィブロインもまた、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含むタンパク質である。上記配列同一性は、95%以上であることが好ましい。
 (5-iv)の改変フィブロインは、配列番号22、配列番号23又は配列番号24で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有し、かつ最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれる全てのREPにおいて、連続する4アミノ酸残基の疎水性指標の平均値が2.6以上となる領域に含まれるアミノ酸残基の総数をpとし、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれるアミノ酸残基の総数をqとしたときに、p/qが6.2%以上であることが好ましい。
 第5の改変フィブロインは、組換えタンパク質生産系において生産されたタンパク質を宿主の外部に放出するための分泌シグナルを含んでいてもよい。分泌シグナルの配列は、宿主の種類に応じて適宜設定することができる。
 第6の改変フィブロインは、天然由来のフィブロインと比較して、グルタミン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する。
 第6の改変フィブロインは、REPのアミノ酸配列中に、GGXモチーフ及びGPGXXモチーフから選ばれる少なくとも一つのモチーフが含まれていることが好ましい。
 第6の改変フィブロインが、REP中にGPGXXモチーフを含む場合、GPGXXモチーフ含有率は、通常1%以上であり、5%以上であってもよく、10%以上であるのが好ましい。GPGXXモチーフ含有率の上限に特に制限はなく、50%以下であってよく、30%以下であってもよい。
 本明細書において、「GPGXXモチーフ含有率」は、以下の方法により算出される値である。
 式1:[(A)モチーフ-REP]、又は式2:[(A)モチーフ-REP]-(A)モチーフで表されるドメイン配列を含むフィブロイン(改変フィブロイン又は天然由来のフィブロイン)において、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列に含まれる全てのREPにおいて、その領域に含まれるGPGXXモチーフの個数の総数を3倍した数(即ち、GPGXXモチーフ中のG及びPの総数に相当)をsとし、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除き、更に(A)モチーフを除いた全REPのアミノ酸残基の総数をtとしたときに、GPGXXモチーフ含有率はs/tとして算出される。
 GPGXXモチーフ含有率の算出において、「最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列」を対象としているのは、「最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列」(REPに相当する配列)には、フィブロインに特徴的な配列と相関性の低い配列が含まれることがあり、mが小さい場合(つまり、ドメイン配列が短い場合)、GPGXXモチーフ含有率の算出結果に影響するので、この影響を排除するためである。なお、REPのC末端に「GPGXXモチーフ」が位置する場合、「XX」が例えば「AA」の場合であっても、「GPGXXモチーフ」として扱う。
 図5は、改変フィブロインのドメイン配列を示す模式図である。図5を参照しながらGPGXXモチーフ含有率の算出方法を具体的に説明する。まず、図5に示した改変フィブロインのドメイン配列(「[(A)モチーフ-REP]-(A)モチーフ」タイプである。)では、全てのREPが「最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列」(図5中、「領域A」で示した配列。)に含まれているため、sを算出するためのGPGXXモチーフの個数は7であり、sは7×3=21となる。同様に、全てのREPが「最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列」(図5中、「領域A」で示した配列。)に含まれているため、当該配列から更に(A)モチーフを除いた全REPのアミノ酸残基の総数tは50+40+10+20+30=150である。次に、sをtで除すことによって、s/t(%)を算出することができ、図5の改変フィブロインの場合21/150=14.0%となる。
 第6の改変フィブロインは、グルタミン残基含有率が9%以下であることが好ましく、7%以下であることがより好ましく、4%以下であることが更に好ましく、0%であることが特に好ましい。
 本明細書において、「グルタミン残基含有率」は、以下の方法により算出される値である。
 式1:[(A)モチーフ-REP]、又は式2:[(A)モチーフ-REP]-(A)モチーフで表されるドメイン配列を含むフィブロイン(改変フィブロイン又は天然由来のフィブロイン)において、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列(図5の「領域A」に相当する配列。)に含まれる全てのREPにおいて、その領域に含まれるグルタミン残基の総数をuとし、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除き、更に(A)モチーフを除いた全REPのアミノ酸残基の総数をtとしたときに、グルタミン残基含有率はu/tとして算出される。グルタミン残基含有率の算出において、「最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列」を対象としている理由は、上述した理由と同様である。
 第6の改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のグルタミン残基を欠失したこと、又は他のアミノ酸残基に置換したことに相当するアミノ酸配列を有するものであってよい。
 「他のアミノ酸残基」は、グルタミン残基以外のアミノ酸残基であればよいが、グルタミン残基よりも疎水性指標の大きいアミノ酸残基であることが好ましい。アミノ酸残基の疎水性指標は表1に示すとおりである。
 表1に示すとおり、グルタミン残基よりも疎水性指標の大きいアミノ酸残基としては、イソロイシン(I)、バリン(V)、ロイシン(L)、フェニルアラニン(F)、システイン(C)、メチオニン(M)アラニン(A)、グリシン(G)、スレオニン(T)、セリン(S)、トリプトファン(W)、チロシン(Y)、プロリン(P)及びヒスチジン(H)から選ばれるアミノ酸残基を挙げることができる。これらの中でも、イソロイシン(I)、バリン(V)、ロイシン(L)、フェニルアラニン(F)、システイン(C)、メチオニン(M)及びアラニン(A)から選ばれるアミノ酸残基であることがより好ましく、イソロイシン(I)、バリン(V)、ロイシン(L)及びフェニルアラニン(F)から選ばれるアミノ酸残基であることが更に好ましい。
 第6の改変フィブロインは、REPの疎水性度が、-0.8以上であることが好ましく、-0.7以上であることがより好ましく、0以上であることが更に好ましく、0.3以上であることが更により好ましく、0.4以上であることが特に好ましい。REPの疎水性度の上限に特に制限はなく、1.0以下であってよく、0.7以下であってもよい。
 本明細書において、「REPの疎水性度」は、以下の方法により算出される値である。
 式1:[(A)モチーフ-REP]、又は式2:[(A)モチーフ-REP]-(A)モチーフで表されるドメイン配列を含むフィブロイン(改変フィブロイン又は天然由来のフィブロイン)において、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列(図5の「領域A」に相当する配列。)に含まれる全てのREPにおいて、その領域の各アミノ酸残基の疎水性指標の総和をvとし、最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除き、更に(A)モチーフを除いた全REPのアミノ酸残基の総数をtとしたときに、REPの疎水性度はv/tとして算出される。REPの疎水性度の算出において、「最もC末端側に位置する(A)モチーフからドメイン配列のC末端までの配列をドメイン配列から除いた配列」を対象としている理由は、上述した理由と同様である。
 第6の改変フィブロインは、そのドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のグルタミン残基を欠失したこと、及び/又はREP中の1又は複数のグルタミン残基を他のアミノ酸残基に置換したことに相当する改変に加え、更に1又は複数のアミノ酸残基を置換、欠失、挿入及び/又は付加したことに相当するアミノ酸配列の改変があってもよい。
 第6の改変フィブロインは、例えば、クローニングした天然由来のフィブロインの遺伝子配列からREP中の1又は複数のグルタミン残基を欠失させること、及び/又はREP中の1又は複数のグルタミン残基を他のアミノ酸残基に置換することにより得ることができる。また、例えば、天然由来のフィブロインのアミノ酸配列からREP中の1又は複数のグルタミン残基を欠失したこと、及び/又はREP中の1又は複数のグルタミン残基を他のアミノ酸残基に置換したことに相当するアミノ酸配列を設計し、設計したアミノ酸配列をコードする核酸を化学合成することにより得ることもできる。
 第6の改変フィブロインのより具体的な例として、(6-i)配列番号25(Met-PRT888)、配列番号26(Met-PRT965)、配列番号27(Met-PRT889)、配列番号28(Met-PRT916)、配列番号29(Met-PRT918)、配列番号30(Met-PRT699)、配列番号31(Met-PRT698)、配列番号32(Met-PRT1009)若しくは配列番号46(Met-PRT966)で示されるアミノ酸配列を含む改変フィブロイン、又は(6-ii)配列番号25、配列番号26、配列番号27、配列番号28、配列番号29、配列番号30、配列番号31、配列番号32若しくは配列番号46で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む改変フィブロインを挙げることができる。
 (6-i)の改変フィブロインについて説明する。配列番号25で示されるアミノ酸配列は、配列番号7で示されるアミノ酸配列(Met-PRT410)中のQQを全てVLに置換したものである。配列番号26で示されるアミノ酸配列は、配列番号7で示されるアミノ酸配列中のQQを全てTSに置換し、かつ残りのQをAに置換したものである。配列番号27で示されるアミノ酸配列は、配列番号7で示されるアミノ酸配列中のQQを全てVLに置換し、かつ残りのQをIに置換したものである。配列番号28で示されるアミノ酸配列は、配列番号7で示されるアミノ酸配列中のQQを全てVIに置換し、かつ残りのQをLに置換したものである。配列番号29で示されるアミノ酸配列は、配列番号7で示されるアミノ酸配列中のQQを全てVFに置換し、かつ残りのQをIに置換したものである。
 配列番号30で示されるアミノ酸配列は、配列番号8で示されるアミノ酸配列(Met-PRT525)中のQQを全てVLに置換したものである。配列番号31で示されるアミノ酸配列は、配列番号8で示されるアミノ酸配列中のQQを全てVLに置換し、かつ残りのQをIに置換したものである。
 配列番号32で示されるアミノ酸配列は、配列番号7で示されるアミノ酸配列(Met-PRT410)中に存在する20個のドメイン配列の領域(但し、当該領域のC末端側の数アミノ酸残基が置換されている。)を4回繰り返した配列中のQQを全てVFに置換し、かつ残りのQをIに置換したものである。
 配列番号25、配列番号26、配列番号27、配列番号28、配列番号29、配列番号30、配列番号31及び配列番号32で示されるアミノ酸配列は、いずれもグルタミン残基含有率は9%以下である(表2)。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
 (6-i)の改変フィブロインは、配列番号25、配列番号26、配列番号27、配列番号28、配列番号29、配列番号30、配列番号31、配列番号32又は配列番号46で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
 (6-ii)の改変フィブロインは、配列番号25、配列番号26、配列番号27、配列番号28、配列番号29、配列番号30、配列番号31、配列番号32又は配列番号46で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むものである。(6-ii)の改変フィブロインもまた、式1:[(A)モチーフ-REP]、又は式2:[(A)モチーフ-REP]-(A)モチーフで表されるドメイン配列を含むタンパク質である。上記配列同一性は、95%以上であることが好ましい。
 (6-ii)の改変フィブロインは、グルタミン残基含有率が9%以下であることが好ましい。また、(6-ii)の改変フィブロインは、GPGXXモチーフ含有率が10%以上であることが好ましい。
 第6の改変フィブロインは、N末端及びC末端のいずれか一方又は両方にタグ配列を含んでいてもよい。これにより、改変フィブロインの単離、固定化、検出及び可視化等が可能となる。
 タグ配列を含む改変フィブロインのより具体的な例として、(6-iii)配列番号33(PRT888)、配列番号34(PRT965)、配列番号35(PRT889)、配列番号36(PRT916)、配列番号37(PRT918)、配列番号38(PRT699)、配列番号39(PRT698)、配列番号40(PRT1009)若しくは配列番号47(PRT966)で示されるアミノ酸配列を含む改変フィブロイン、又は(6-iv)配列番号33、配列番号34、配列番号35、配列番号36、配列番号37、配列番号38、配列番号39、配列番号40若しくは配列番号47で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含む改変フィブロインを挙げることができる。
 配列番号33、配列番号34、配列番号35、配列番号36、配列番号37、配列番号38、配列番号39、配列番号40及び配列番号47で示されるアミノ酸配列は、それぞれ配列番号25、配列番号26、配列番号27、配列番号28、配列番号29、配列番号30、配列番号31、配列番号32及び配列番号46で示されるアミノ酸配列のN末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列(Hisタグ配列及びヒンジ配列を含む)を付加したものである。N末端にタグ配列を付加しただけであるため、グルタミン残基含有率に変化はなく、配列番号33、配列番号34、配列番号35、配列番号36、配列番号37、配列番号38、配列番号39、配列番号40及び配列番号47で示されるアミノ酸配列は、いずれもグルタミン残基含有率が9%以下である(表3)。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
 (6-iii)の改変フィブロインは、配列番号33、配列番号34、配列番号35、配列番号36、配列番号37、配列番号38、配列番号39、配列番号40又は配列番号47で示されるアミノ酸配列からなるものであってもよい。
 (6-iv)の改変フィブロインは、配列番号33、配列番号34、配列番号35、配列番号36、配列番号37、配列番号38、配列番号39、配列番号40又は配列番号47で示されるアミノ酸配列と90%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むものである。(6-iv)の改変フィブロインもまた、式1:[(A)モチーフ-REP]、又は式2:[(A)モチーフ-REP]-(A)モチーフで表されるドメイン配列を含むタンパク質である。上記配列同一性は、95%以上であることが好ましい。
 (6-iv)の改変フィブロインは、グルタミン残基含有率が9%以下であることが好ましい。また、(6-iv)の改変フィブロインは、GPGXXモチーフ含有率が10%以上であることが好ましい。
 第6の改変フィブロインは、組換えタンパク質生産系において生産されたタンパク質を宿主の外部に放出するための分泌シグナルを含んでいてもよい。分泌シグナルの配列は、宿主の種類に応じて適宜設定することができる。
 改変(人造)フィブロイン繊維の限界酸素指数(LOI)値は、18以上であってよく、20以上であってもよく、22以上であってもよく、24以上であってもよく、26以上であってもよく、28以上であってもよく、29以上であってもよく、30以上であってもよい。上記のLOI値は、「消防庁危険物規制課長 消防危50号(平成7年5月31日付け)」に記載の「粉粒状又は融点の低い合成樹脂の試験方法」に準拠して測定される値である。
 改変(人造)フィブロイン繊維の、下記式Aに従って求められる最高吸湿発熱度は、0.025℃/g超であってよく、0.026℃/g以上であってもよく、0.027℃/g以上であってもよく、0.028℃/g以上であってもよく、0.029℃/g以上であってもよく、0.030℃/g以上であってもよく、0.035℃/g以上であってもよく、0.040℃/g以上であってもよい。最高吸湿発熱度の上限に特に制限はないが、通常、0.060℃/g以下である。
 式A: 最高吸湿発熱度={(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移したときの試料温度の最高値)-(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移すときの試料温度)}(℃)/試料重量(g)
[式A中、低湿度環境は、温度20℃及び相対湿度40%の環境を意味し、高湿度環境は、温度20℃及び相対湿度90%の環境を意味する。]
 改変フィブロイン繊維の保温性指数は、0.22以上であってよく、0.24以上であってよく、0.26以上であってよく、0.28以上であってよく、0.30以上であってよく、0.32以上であってよい。保温性指数の上限に特に制限はないが、例えば、0.60以下、又は0.40以下であってよい。
 改変フィブロイン繊維は、優れた保温性を有することが好ましく、下記式Cに従って求められる保温性指数が0.20以上であってよい。
 式C: 保温性指数=保温率(%)/試料の目付け(g/m
 本発明の各実施形態に係る複合繊維の一例を図7に示す。図7(a)は、第1成分51と第2成分52を備える複合繊維50を示す模式図である。第1成分51は、水収縮性を有する改変フィブロインを含み、水性媒体との接触により収縮し得る。一方、第2成分52は、水収縮性が低減されており、水との接触による収縮率が第1成分と比較して小さい。図7(b)は、第1成分と第2成分の構成比を変更した複合繊維を示す模式図である。
 第1成分及び第2成分に使用する繊維の組み合わせ、或いは第1成分及び第2成分の構成比を適宜変更することにより、所望の捲縮性を有する複合繊維を調製することができる。
 第1成分と第2成分の水収縮性の違いにより、本実施形態に係る複合繊維を水性媒体に接触させると、第1成分が第2成分と比べて大きく収縮し、容易に捲縮加工及び紡績を行うことが可能である。すなわち、本実施形態に係る複合繊維は、捲縮性に優れており、捲縮糸、紡績糸として有用である。捲縮糸は、可紡性、かさ高性、伸縮性、柔軟性、及び弾力性に優れ、さらには良好な風合い、ソフトな触感、保湿性を付与し得る。
 第1成分に含まれる改変フィブロインの疎水性度と第2成分に含まれる構造タンパク質の疎水性度は、互いに異なっている。改変フィブロイン又は構造タンパク質の疎水性度は、それぞれを構成する各アミノ酸残基(但し、タグ配列及びヒンジ配列に相当するアミノ酸残基は除く。)の各HIの合計を算出し、それをアミノ酸残基数で除した値である。第1成分に含まれる改変フィブロインの疎水性度は、例えば、-0.8以下であることが好ましく、-0.55以下であることがより好ましい。また、第2成分に含まれる構造タンパク質の疎水性度は、例えば、-0.8超であることが好ましく、-0.55超であることがより好ましい。
 第1成分が複数の改変フィブロインを含む場合、当該成分の疎水性度は、第1成分中に含まれる各改変フィブロインの各疎水性度を算出し、各成分の割合に応じた平均値として算出してもよい。例えば、各改変フィブロインの疎水性度に、その改変フィブロインの第1成分における含有率をかけて得られる数値を合計し、改変フィブロインの数で除した値を用いてもよい。
 第2成分が複数の構造タンパク質を含む場合、当該成分の疎水性度は、第2成分中に含まれる各構造タンパク質の各疎水性度を算出し、各成分の割合に応じた平均値として算出してもよい。例えば、各構造タンパク質の疎水性度に、その構造タンパク質の第2成分における含有率をかけて得られる数値を合計し、構造タンパク質の数で除した値を用いてもよい。
 また、上述のように、第1成分が複数の改変フィブロインを含有する場合、又は第2成分が複数の構造タンパク質を含有する場合において、含有率が小さい(例えば、含有率が10%以下)改変フィブロイン又は構造タンパク質は、当該成分全体の疎水性度への寄与が十分に小さいため、その改変フィブロイン又は構造タンパク質の疎水性度を考慮せずに、各成分の疎水性度を算出してもよい。例えば、絹糸は約75%の絹フィブロインと約25%のセリシン(UniProtデータベース、Entry No.P07856)から構成される。絹フィブロインは、フィブロインH鎖(UniProtデータベース、Entry No.P05790)、フィブロインL鎖(UniProtデータベース、Entry No.P21828)、及びフィブロヘキサメリン(UniProtデータベース、Entry No.P04148)から構成されており、量的にフィブロインH鎖が大部分を占めている。天然の構造タンパク質として、セリシンを除去した家蚕の絹フィブロインを使用する場合、当該絹フィブロインの疎水性度は、主要成分であるフィブロインH鎖の各アミノ酸残基の各HIの合計を算出し、それをアミノ酸残基数で除した値である、疎水性度0.216としてもよい。
 配列番号13、配列番号14、配列番号15、配列番号33、配列番号34、配列番号35、配列番号36、配列番号37、配列番号38、配列番号39、配列番号40及び配列番号47で示されるアミノ酸配列の疎水性度は、表4に示すとおりである。各アミノ酸配列の疎水性度を算出するにあたり、改変フィブロインと無関係な配列(すなわち、配列番号11で示されるアミノ酸配列に相当する配列)を除いて算出した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
 配列番号42、配列番号43、配列番号44、及び配列番号45で示されるアミノ酸配列の疎水性度は、表5に示すとおりである。各アミノ酸配列の疎水性度を算出するにあたり、構造タンパク質と無関係な配列(すなわち、配列番号11で示されるアミノ酸配列に相当する配列)を除いて算出した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
<改変フィブロインの製造方法>
 改変フィブロインは、例えば、当該改変フィブロインをコードする核酸配列と、当該核酸配列に作動可能に連結された1又は複数の調節配列とを有する発現ベクターで形質転換された宿主により、当該核酸を発現させることにより生産することができる。
 改変フィブロインをコードする核酸の製造方法は、特に制限されない。例えば、天然のフィブロインをコードする遺伝子を利用して、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)などで増幅しクローニングし、遺伝子工学的手法により改変する方法、又は、化学的に合成する方法によって、当該核酸を製造することができる。核酸の化学的な合成方法も特に制限されず、例えば、NCBIのウェブデータベースなどより入手したフィブロインのアミノ酸配列情報をもとに、AKTA oligopilot plus 10/100(GEヘルスケア・ジャパン株式会社)などで自動合成したオリゴヌクレオチドをPCRなどで連結する方法によって遺伝子を化学的に合成することができる。この際に、改変フィブロインの精製及び/又は確認を容易にするため、上記のアミノ酸配列のN末端に開始コドン及びHis10タグからなるアミノ酸配列を付加したアミノ酸配列からなる改変フィブロインをコードする核酸を合成してもよい。
 調節配列は、宿主における改変フィブロインの発現を制御する配列(例えば、プロモーター、エンハンサー、リボソーム結合配列、転写終結配列等)であり、宿主の種類に応じて適宜選択することができる。プロモーターとして、宿主細胞中で機能し、改変フィブロインを発現誘導可能な誘導性プロモーターを用いてもよい。誘導性プロモーターは、誘導物質(発現誘導剤)の存在、リプレッサー分子の非存在、又は温度、浸透圧若しくはpH値の上昇若しくは低下等の物理的要因により、転写を制御できるプロモーターである。
 発現ベクターの種類は、プラスミドベクター、ウイルスベクター、コスミドベクター、フォスミドベクター、人工染色体ベクター等、宿主の種類に応じて適宜選択することができる。発現ベクターとしては、宿主細胞において自立複製が可能、又は宿主の染色体中への組込みが可能で、改変フィブロインをコードする核酸を転写できる位置にプロモーターを含有しているものが好適に用いられる。
 宿主として、原核生物、並びに酵母、糸状真菌、昆虫細胞、動物細胞及び植物細胞等の真核生物のいずれも好適に用いることができる。
 原核生物の宿主の好ましい例として、エシェリヒア属、ブレビバチルス属、セラチア属、バチルス属、ミクロバクテリウム属、ブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属及びシュードモナス属等に属する細菌を挙げることができる。エシェリヒア属に属する微生物として、例えば、エシェリヒア・コリ等を挙げることができる。ブレビバチルス属に属する微生物として、例えば、ブレビバチルス・アグリ等を挙げることができる。セラチア属に属する微生物として、例えば、セラチア・リクエファシエンス等を挙げることができる。バチルス属に属する微生物として、例えば、バチルス・サチラス等を挙げることができる。ミクロバクテリウム属に属する微生物として、例えば、ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム等を挙げることができる。ブレビバクテリウム属に属する微生物として、例えば、ブレビバクテリウム・ディバリカタム等を挙げることができる。コリネバクテリウム属に属する微生物として、例えば、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス等を挙げることができる。シュードモナス(Pseudomonas)属に属する微生物として、例えば、シュードモナス・プチダ等を挙げることができる。
 原核生物を宿主とする場合、改変フィブロインをコードする核酸を導入するベクターとしては、例えば、pBTrp2(ベーリンガーマンハイム社製)、pGEX(Pharmacia社製)、pUC18、pBluescriptII、pSupex、pET22b、pCold、pUB110、pNCO2(特開2002-238569号公報)等を挙げることができる。
 真核生物の宿主としては、例えば、酵母及び糸状真菌(カビ等)を挙げることができる。酵母としては、例えば、サッカロマイセス属、ピキア属、シゾサッカロマイセス属等に属する酵母を挙げることができる。糸状真菌としては、例えば、アスペルギルス属、ペニシリウム属、トリコデルマ(Trichoderma)属等に属する糸状真菌を挙げることができる。
 真核生物を宿主とする場合、改変フィブロインをコードする核酸を導入するベクターとしては、例えば、YEp13(ATCC37115)、YEp24(ATCC37051)等を挙げることができる。上記宿主細胞への発現ベクターの導入方法としては、上記宿主細胞へDNAを導入する方法であればいずれも用いることができる。例えば、カルシウムイオンを用いる方法〔Proc. Natl. Acad. Sci. USA,69,2110(1972)〕、エレクトロポレーション法、スフェロプラスト法、プロトプラスト法、酢酸リチウム法、コンピテント法等を挙げることができる。
 発現ベクターで形質転換された宿主による核酸の発現方法としては、直接発現のほか、モレキュラー・クローニング第2版に記載されている方法等に準じて、分泌生産、融合タンパク質発現等を行うことができる。
 改変フィブロインは、例えば、発現ベクターで形質転換された宿主を培養培地中で培養し、培養培地中に当該改変フィブロインを生成蓄積させ、該培養培地から採取することにより製造することができる。宿主を培養培地中で培養する方法は、宿主の培養に通常用いられる方法に従って行うことができる。
 宿主が、大腸菌等の原核生物又は酵母等の真核生物である場合、培養培地として、宿主が資化し得る炭素源、窒素源及び無機塩類等を含有し、宿主の培養を効率的に行える培地であれば天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。
 炭素源としては、上記形質転換微生物が資化し得るものであればよく、例えば、グルコース、フラクトース、スクロース、及びこれらを含有する糖蜜、デンプン及びデンプン加水分解物等の炭水化物、酢酸及びプロピオン酸等の有機酸、並びにエタノール及びプロパノール等のアルコール類を用いることができる。窒素源としては、例えば、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム及びリン酸アンモニウム等の無機酸又は有機酸のアンモニウム塩、その他の含窒素化合物、並びにペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカー、カゼイン加水分解物、大豆粕及び大豆粕加水分解物、各種発酵菌体及びその消化物を用いることができる。無機塩類としては、例えば、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅及び炭酸カルシウムを用いることができる。
 大腸菌等の原核生物又は酵母等の真核生物の培養は、例えば、振盪培養又は深部通気攪拌培養等の好気的条件下で行うことができる。培養温度は、例えば、15~40℃である。培養時間は、通常16時間~7日間である。培養中の培養培地のpHは3.0~9.0に保持することが好ましい。培養培地のpHの調整は、無機酸、有機酸、アルカリ溶液、尿素、炭酸カルシウム及びアンモニア等を用いて行うことができる。
 また、培養中、必要に応じて、アンピシリン及びテトラサイクリン等の抗生物質を培養培地に添加してもよい。プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、lacプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド等を、trpプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはインドールアクリル酸等を培地に添加してもよい。
 発現させた改変フィブロインの単離、精製は通常用いられている方法で行うことができる。例えば、当該改変フィブロインが、細胞内に溶解状態で発現した場合には、培養終了後、宿主細胞を遠心分離により回収し、水系緩衝液に懸濁した後、超音波破砕機、フレンチプレス、マントンガウリンホモゲナイザー及びダイノミル等により宿主細胞を破砕し、無細胞抽出液を得る。該無細胞抽出液を遠心分離することにより得られる上清から、改変フィブロインの単離精製に通常用いられている方法、すなわち、溶媒抽出法、硫安等による塩析法、脱塩法、有機溶媒による沈殿法、ジエチルアミノエチル(DEAE)-セファロース、DIAION HPA-75(三菱化成社製)等のレジンを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー法、S-Sepharose FF(Pharmacia社製)等のレジンを用いた陽イオン交換クロマトグラフィー法、ブチルセファロース、フェニルセファロース等のレジンを用いた疎水性クロマトグラフィー法、分子篩を用いたゲルろ過法、アフィニティークロマトグラフィー法、クロマトフォーカシング法、等電点電気泳動等の電気泳動法等の方法を単独又は組み合わせて使用し、精製標品を得ることができる。
 また、改変フィブロインが細胞内に不溶体を形成して発現した場合は、同様に宿主細胞を回収後、破砕し、遠心分離を行うことにより、沈殿画分として改変フィブロインの不溶体を回収する。回収した改変フィブロインの不溶体はタンパク質変性剤で可溶化することができる。該操作の後、上記と同様の単離精製法により改変フィブロインの精製標品を得ることができる。当該改変フィブロインが細胞外に分泌された場合には、培養上清から当該改変フィブロインを回収することができる。すなわち、培養物を遠心分離等の手法により処理することにより培養上清を取得し、その培養上清から、上記と同様の単離精製法を用いることにより、精製標品を得ることができる。
<ドープ液>
 第1ドープ液は、改変フィブロイン及び溶媒を含む。第2ドープ液は、構造タンパク質と溶媒を含む。
 第1ドープ液における改変フィブロインの濃度は、特に限定されず、所望の複合繊維の捲縮性及び繊維径、第2成分に含まれる構造タンパク質との組み合わせ等の要因に応じて、適宜設定することができる。例えば、改変フィブロインの濃度は、第1ドープ液の全質量に基づき(第1ドープ液の全質量を100質量%としたとき)、5~40質量%であることが好ましく、7~40質量%であることがより好ましく、10~40質量%であることがより好ましく、7~35質量%であることがより好ましく、10~35質量%であることがより好ましく、12~35質量%であることがより好ましく、15~35質量%であることがより好ましく、15~30質量%であることがさらに好ましく、20~35質量%であることがさらに好ましく、20~30質量%であることがさらに好ましい。改変フィブロインの濃度が5質量%以上であると、複合繊維の生産性がより向上する傾向がある。改変フィブロインの濃度が40質量%以下であると、紡糸口金からドープ液をより一層安定的に吐出させることができ、生産性がより向上する傾向がある。
 第2ドープ液における構造タンパク質の濃度は、特に限定されず、所望の複合繊維の捲縮性及び繊維径、第1成分に含まれる構造タンパク質との組み合わせ等の要因に応じて、適宜設定することができる。例えば、改変フィブロインの濃度は、第2ドープ液の全質量に基づき(第2ドープ液の全質量を100質量%としたとき)、5~40質量%であることが好ましく、7~40質量%であることがより好ましく、10~40質量%であることがより好ましく、7~35質量%であることがより好ましく、10~35質量%であることがより好ましく、12~35質量%であることがより好ましく、15~35質量%であることがより好ましく、15~30質量%であることがさらに好ましく、20~35質量%であることがさらに好ましく、20~30質量%であることがさらに好ましい。改変フィブロインの濃度が5質量%以上であると、複合繊維の生産性がより向上する傾向がある。改変フィブロインの濃度が40質量%以下であると、紡糸口金からドープ液をより一層安定的に吐出させることができ、生産性がより向上する傾向がある。
 第1ドープ液の溶媒は、改変フィブロインを溶解し得るものであればよい。また、第2ドープ液の溶媒は、構造タンパク質を溶解し得るものであればよい。このような溶媒としては、ヘキサフルオロイソプロパノール(HFIP)、ヘキサフルオロアセトン(HFA)、ジメチルスルホキシド(DMSO)、N,N-ジメチルホルムアミド(DMF)、N,N-ジメチルアセトアミド(DMA)、1,3-ジメチル-2-イミダゾリドン(DMI)、N-メチル-2-ピロリドン(NMP)、アセトニトリル、N-メチルモルホリン-N-オキシド(NMO)、ギ酸等が挙げられる。また、溶媒は水溶液であってもよく、具体的には、尿素、グアニジン、ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)、臭化リチウム、塩化カルシウム及びチオシアン酸リチウムからなる群から選択される少なくとも一種を含む水溶液が挙げられる。これらの溶媒は、1種を単独で使用してもよく、2種以上を組み合わせて使用してもよい。
 ドープ液の調製方法は、当業者に周知の方法でよく、改変フィブロイン又は構造タンパク質と、溶媒とを任意の順序で混合してもよい。
 第1ドープ液及び第2ドープ液には、必要に応じて無機塩を添加してもよい。無機塩は、改変フィブロインの溶解促進剤として機能し得る。無機塩としては、例えば、アルカリ金属ハロゲン化物、アルカリ土類金属ハロゲン化物、アルカリ土類金属硝酸塩等が挙げられる。無機塩の具体例としては、炭酸リチウム、塩化リチウム、塩化カルシウム、硝酸カルシウム、臭化リチウム、臭化バリウム、臭化カルシウム、塩素酸バリウム、過塩素酸ナトリウム、過塩素酸リチウム、過塩素酸バリウム、過塩素酸カルシウム、過塩素酸マグネシウムが挙げられる。
 ドープ液の粘度は、複合繊維の用途や紡糸方法に応じて、適宜設定できる。ドープ液の粘度は、例えば、20℃において、5000~40000mPa・secであってよく、7000~40000mPa・sec、10000~40000mPa・sec、7000~35000mPa・sec、10000~35000mPa・sec、10000~30000mPa・sec、又は10000~25000mPa・secであってよい。ドープ液の粘度は、例えば京都電子工業社製の商品名“EMS粘度計”を使用して測定することができる。
 ドープ液は、溶解を促進するために、ある程度の時間撹拌又は振とうしてもよい。その際、改変フィブロイン又は構造タンパク質が溶媒に溶解する温度まで加熱してもよい。ドープ液は、例えば、30℃以上、40℃以上、50℃以上、60℃以上、70℃以上、80℃以上、又は、90℃以上に加熱してもよい。加熱温度の上限は、例えば、溶媒の沸点以下である。
<紡糸>
 複合繊維は、公知の紡糸方法によって製造することができる。例えば、複合繊維は、第1ドープ液及び第2ドープ液を用いて、乾式紡糸、溶融紡糸、湿式紡糸、乾湿式紡糸等の公知の紡糸方法により紡糸することにより得ることができる。好ましい紡糸方法としては、湿式紡糸、又は乾温式紡糸を挙げることができる。
 湿式紡糸又は乾湿式紡糸では、第1ドープ液と第2ドープ液を紡糸口金(ノズル)から吐出して接合させ、凝固液中で第1成分(改変フィブロイン)及び第2成分(構造タンパク質)を固めることにより、未延伸糸の状態で複合繊維を得ることができる。
 図6は、複合繊維を製造するための紡糸装置の一例を概略的に示す説明図である。図6に示す紡糸装置10は、乾湿式紡糸用の紡糸装置の一例であり、押出し装置1と、未延伸糸製造装置2と、湿熱延伸装置3と、乾燥装置4とを有している。
 紡糸装置10を使用した紡糸方法を説明する。まず、貯槽7に貯蔵されたドープ液6が、ギアポンプ8により口金9から押し出される。ラボスケールにおいては、ドープ液をシリンダーに充填し、シリンジポンプを用いてノズルから押し出してもよい。次いで、押し出されたドープ液6は、エアギャップ19を経て、凝固液槽20の凝固液11内に供給され、溶媒が除去されて、タンパク質が凝固し、繊維状凝固体が形成される。次いで、繊維状凝固体が、延伸浴槽21内の温水12中に供給されて、延伸される。延伸倍率は供給ニップローラ13と引き取りニップローラ14との速度比によって決まる。その後、延伸された繊維状凝固体が、乾燥装置4に供給され、糸道22内で乾燥されて、複合繊維36が、巻糸体5として得られる。18a~18gは糸ガイドである。
 複合繊維製造用の紡糸口金(ノズル)としては、例えば、サイドバイサイド構造の複合繊維製造用のノズル等が知られている。サイドバイサイド構造の複合繊維製造用のノズルでは、ノズルの中央部に、第1ドープ液(複合繊維の第1成分に対応する)を押し出す第1の口金が配置され、それに近接して第2ドープ液(複合繊維の第2成分に対応する)を押し出す第2の口金が配置されている。第2の口金は、第2ドープ液が第1の口金から押し出された第1ドープ液の流束と合わさるように、第1の口金に向けて傾斜していてもよい。また、第1の口金の流束と第2の口金の流束とが並行となることが好ましい。第2の口金は、第1の口金と略接していてもよい。また、ノズルは、第1の口金と第2の口金が一体となり、第1ドープ液の吐出口と第2ドープ液の吐出口が隔壁で区切られたものであってもよい。各口金は、サイズ、温度制御等により吐出量が一定となるように設計されたものが好ましい。第2の口金から押し出された第2ドープ液は、第1の口金から押し出された第1ドープ液と合わさって一体化し、凝固液と接触することにより、サイドバイサイド構造の未延伸糸を形成させる。
 各口金の位置は、使用する繊維原料の種類、各ドープ液の粘度、押し出し速度、温度等の紡糸条件に応じて、適宜調整することができる。
 凝固液11としては、脱溶媒できる溶液であればよく、例えば、メタノール、エタノール及び2-プロパノール等の炭素数1~5の低級アルコール、並びにアセトン等を挙げることができる。凝固液11は、適宜水を含んでいてもよい。凝固液11の温度は、0~30℃であることが好ましい。凝固したタンパク質が凝固液11中を通過する距離(実質的には、糸ガイド18aから糸ガイド18bまでの距離)は、脱溶媒が効率的に行える長さがあればよく、例えば、200~500mmである。凝固液11中での滞留時間は、未延伸糸中からドープ溶媒が除去される時間であればよい。また、凝固液11中で延伸(前延伸)をしてもよい。凝固液槽20は多段設けてもよく、また延伸は必要に応じて、各段、又は特定の段で行ってもよい。低級アルコールの蒸発を抑えるために凝固液を低温に維持し、未延伸糸の状態で引き取ってもよい。また、凝固液中で未延伸糸を延伸してもよい(前延伸)。
 上記方法で得られた未延伸糸(又は前延伸糸)は、延伸工程により延伸糸(複合繊維)の状態となり得る。延伸方法としては、湿熱延伸、乾熱延伸等をあげることができる。
 湿熱延伸は、温水中、温水に有機溶剤等を加えた溶液中、又はスチーム加熱中で行うことができる。温度としては、例えば、40~200℃であってよく、50~180℃であってよく、50~150℃であってよく、75~90℃であってよい。湿熱延伸における延伸倍率は、未延伸糸(又は前延伸糸)に対して、例えば、1~30倍であってよく、2~25倍であってよく、2~20倍であってよく、2~15倍であってよく、2~10倍であってよく、2~8倍であってよく、2~6倍であってよく、2~4倍であってよい。ただし、延伸倍率は、所望する繊維の太さ、機械物性などの特性が得られる範囲であれば限定されるものではない。
 乾熱延伸は、接触型の熱板、及び非接触型の炉などの装置を用いて行うことができるが、特に限定されるものではなく、繊維を所定の温度まで昇温させ、かつ所定の倍率で延伸が可能な装置であればよい。温度としては、例えば、100℃~270℃であってよく、140℃~230℃であってよく、140℃~200℃であってよく、160℃~200℃であってよく、160℃~180℃であってよい。
 乾熱延伸工程における延伸倍率は、未延伸糸(又は前延伸糸)に対して、例えば、1~30倍であってよく、2~30倍であってよく、2~20倍であってよく、3~15倍であってよく、3~10倍であることが好ましく、3~8倍であることがより好ましく、4~8倍であることがさらに好ましい。ただし、延伸倍率は、所望する繊維の太さ、機械物性などの特性が得られる範囲であれば限定されるものではない。
 延伸工程は、湿熱延伸及び乾熱延伸を、それぞれ単独で行うものであってもよく、またこれらを多段で、又は組み合わせて行うものであってもよい。すなわち、延伸工程として一段目延伸として湿熱延伸を行い、二段目延伸として乾熱延伸を行うか、あるいは一段目延伸として湿熱延伸を行い、二段目延伸として湿熱延伸行い、更に三段目延伸として乾熱延伸で行ってもよく、湿熱延伸及び乾熱延伸を適宜組み合わせて行うことができる。
 延伸工程を経た複合繊維の最終的な延伸倍率の下限値は、未延伸糸(又は前延伸糸)に対して、好ましくは、1倍、2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、又は9倍であってよい。延伸工程を経た複合繊維の最終的な延伸倍率の上限値は、好ましくは40倍、30倍、20倍、15倍、14倍、13倍、12倍、11倍、又は10倍であってよい。また、例えば、3~40倍であってよく、3~30倍であってよく、5~30倍であってよく、5~20倍であってよく、5~15倍であってよく、5~13倍であってよい。
 紡糸工程において、紡糸口金の口金形状、ホール形状、ホール数などは特に眼定されるものではなく、所望の繊維径及び単糸本数等に応じて適宜選択できる。
 乾燥の前又は後に、必要に応じて、未延伸糸(若しくは前延伸糸)又は延伸糸に対して、帯電抑制性、収束性及び潤滑性等を付与する目的で油剤を付与してもよい。付与する油剤の種類及び付与する量等は、特に限定されるものではなく、複合繊維を使用する用途、被合繊維の取扱い性等を考慮して、適宜調整することができる。
 紡糸口金のホール形状が円形である場合は、0.1mm~0.6mmの孔径を例示できる。孔径が0.1mm以上であると、圧力損失を低減することができ、設備費用を抑えることができる。孔径が0.6mm以下であると、繊維径を細くするための延伸操作を省略することができ、吐出から引き取りまでの間で断裂(延伸切れ)を起こす可能性をより低減することができる。
 紡糸口金を通過する際の温度、及び紡糸口金の温度は、特に限定されるものではなく、使用するドープ液の濃度及び粘度、溶媒の種類等により適宜調整すればよい。紡糸口金の温度は、改変フィブロイン及び構造タンパク質の劣化等を防止するという観点から、30℃~100℃が好ましい。また、当該温度は、溶媒の揮発による圧力上昇、ドープ液の固形化による配管内の閉塞が発生する可能性をより低減するという観点から、用いる溶媒の沸点に満たない温度を上限とすることが好ましい。これにより工程安定性が向上する。
 本実施形態に係る方法は、ドープ液の吐出前にドープ液を濾過する工程(濾過工程)、及び/又は吐出前にドープ液を脱泡する工程(脱泡工程)を更に設けてもよい。
 捲縮工程は、潜在性捲縮能を有する複合繊維を水性媒体と接触させることで、捲縮させる(以下、「水捲縮」という場合がある)工程である。
 水性媒体に接触させることにより、外力によらずに、複合改変フィブロイン繊維を捲縮させることができる。水性媒体とは、水(水蒸気を含む。)を含む液体又は気体(スチーム)の媒体である。水性媒体は水であってもよく、水と親水性溶媒との混合液であってもよい。親水性溶媒としては、例えば、エタノール及びメタノール等の揮発性溶媒又その蒸気を挙げることができる。水性媒体は、水とエタノール、メタノールなどの揮発性溶媒との混合液体であってよく、水、又は水とエタノールとの混合液体であることが好ましい。揮発性溶媒又はその蒸気を含む水性媒体を使用することで、水捲縮後の乾燥速度が向上させることができ、更には最終的に得られる捲縮ステープル又は捲縮繊維に柔らかな風合いを付与し得る。
 水と揮発性溶媒又はその蒸気との比率は、特に限定されず、例えば、水:揮発性溶媒は、質量比で10:90~90:10であってもよい。水の含有量は、水性媒体の全質量を基準として、30質量%以上であることが好ましく、40質量%又は50質量%以上であってもよい。水性媒体が液体である場合、水性媒体には油剤を分散させることが好ましい。この場合は、水捲縮と油剤付着を同時に行うことができる。なお、油剤としては、例えば、帯電防止用、摩擦軽減用、柔軟性付与用、又は撥水性付与用等の工程通過性や機能性付与等の一般的な目的で使用される公知の油剤であればいずれも使用可能である。なお、油剤の量は、特に限定されず、例えば、油剤と水性媒体の全質量に対して1~10質量%であってもよく、或いは2~5質量%であってよい。
 水性媒体は、水(水蒸気を含む)を含む10~230℃の液体又は気体であることが好ましい。水性媒体の温度は、10℃以上、25℃以上、40℃以上、60℃以上、又は100℃以上であってよく、230℃以下、120℃以下、又は100℃以下であってよい。より具体的には、水性媒体が気体(スチーム)である場合、水性媒体の温度は100~230℃が好ましく、100~120℃がより好ましい。水性媒体のスチームが230℃以下であると、複合繊維の熱変性を防ぐことができる。水性媒体が液体である場合、水性媒体の温度は、効率良く捲縮を付与する観点から、10℃以上、25℃以上、又は40℃以上が好ましく、複合繊維の強度を高く保つ観点から、60℃以下が好ましい。
 水性媒体と接触する時間は、特に制限されないが、30秒以上であればよく、1分以上、又は2分以上であってよく、生産性の観点から10分以下であることが好ましい。またスチームの場合は、液体に比べて短い時間で大きな収縮率が得られると考えられる。水性媒体との接触は、常圧下で行ってもよく、減圧下(例えば、真空)で行ってもよい。
 水性媒体と接触させる方法としては、複合繊維を水性媒体に浸漬する方法、複合繊維に対して水性媒体のスチームを噴霧する方法、水性媒体のスチームが充満した環境に複合繊維を暴露する方法等が挙げられる。水性媒体がスチームである場合、複合繊維への水性媒体の接触は、一般的なスチームセット装置を使用して行うことができる。スチームセット装置の具体例としては、製品名:FMSA型スチームセッター(福伸工業株式会社製)、製品名:EPS-400(辻井染機工業株式会社製)等の装置を挙げることができる。水性媒体のスチームにより複合繊維を捲縮する方法の具体例としては、所定の収容室内に複合繊維を収容する一方、収容室内に水性媒体のスチームを導入して、収容室内の温度を上記所定温度(例えば、100℃~230℃)に調整しつつ、複合繊維にスチームを接触させることが挙げられる。
 水性媒体との接触による複合繊維の捲縮工程は、好ましくは複合繊維に対して引張力が何ら加えられない(繊維軸方向に何ら緊張されない)状態、若しくは所定の大きさだけ加えられた(繊維軸方向に所定量だけ緊張させられた)状態で実施される。その際に複合繊維に加えられる引張力を調整することで、捲縮の程度をコントロールすることも可能である。複合繊維に加えられる引張力の調製方法としては、例えば、複合繊維に様々な重さの重りを吊す等して、それら繊維に対して負荷される荷重を調整する方法、繊維を弛ませた状態で両末端を同定すると共に、その弛み量を種々変更する方法、繊維を紙管又はボビン等の被巻回体に巻き付けると共に、その際の巻き付け力(紙管やボビンへの締付力)を適宜に変更する方法等が挙げられる。
 複合繊維を水性媒体と接触させた後に、さらに乾燥させてもよい。乾燥方法は、特に限定されず、乾燥は、自然乾燥でもよく、熱嵐やホットローラーで乾燥しでもよい。乾燥温度としては、特に限定されず、例えば20~150℃であってよく、40~120℃であることが好ましく、60~100℃であることがより好ましい。
 本実施形態に係る複合繊維において、改変フィブロインを含む第1成分と、構造タンパク質を含む第2成分は、互いに疎水性度が異なる。
 複合繊維における、第1成分と第2成分の疎水性度の差(改変フィブロインの疎水性度と構造タンパク質の疎水性度の差)は、所望の捲縮性に応じて適宜選択することができ、0.1以上が好ましく、0.2以上がより好ましく、0.3以上がより好ましく、0.4以上がより好ましく、0.5以上がより好ましく、0.6以上がより好ましく、0.7以上がより好ましく、0.8以上がより好ましく、0.9以上がより好ましく、1.0以上がより好ましく、1.1以上がより好ましく、1.2以上がさらに好ましく、1.3以上が特に好ましい。疎水性度の差が大きいほど、より優れた潜在捲縮性を安定して付与し得る。
 複合繊維における第1成分と第2成分は、水収縮による収縮率が互いに異なっている。第1成分に使用される改変フィブロインは、水性媒体との接触により収縮する。一方、第2成分に使用される構造タンパク質は、水性媒体と接触しても収縮しないか、又は第1成分と比較して収縮率が小さい。
 改変フィブロインを同条件で紡糸して得られた改変フィブロイン繊維の水性媒体に対する収縮率を表6に示す。収縮率は、以下の方法で算出した。
<収縮率>
 長さ約30cmの複数本の改変フィブロイン繊維を束ね、繊度150デニールの繊維束とする。この繊維束に0.8gの鉛錘を取り付け、その状態で繊維束を40℃の水に10分間浸漬して収縮させ、製造工程由来の残留応力による収縮を除去する。繊維束を水中から取り出し、0.8gの鉛錘を取り付けたまま室温で2時間おいて乾燥させる。乾燥後、繊維束の長さを測定する。再度、40℃の水に10分間浸漬して収縮させ、水中で繊維束の長さを測定する。これら湿潤、乾燥を少なくとも3回繰り返し、湿潤時の平均の長さ(Lwet)、乾燥時の平均の長さ(Ldry)を求める。収縮率は下記式に従って算出される。
 式:収縮率(%)=(1-(Ldry/Lwet))×100
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
 複合繊維における第1成分と第2成分の複合比率は、特に限定されるものではなく、第1成分と第2成分の組み合わせや、所望の捲縮性、複合形態等に応じて、適宜設定するこができる。第1成分と第2成分の複合比率は、例えば、重量基準で90:10~10:90の範囲であってよく、80:20~20:80の範囲であってよく、75:25~25:75の範囲であってよく、75:25~35:65の範囲であってよく、70:30~30:70の範囲であってよく、65:35~35:65の範囲であってよく、65:35~45:55の範囲であってよく、60:40~40:60の範囲であってよい。
 複合繊維の複合形態がサイドバイサイド型であると、より優れた潜在捲縮性を付与し得る。複合繊維の横断面(第1成分と第2成分の境界面)は、直線状であってもよく、湾曲していてもよい。
 複合繊維の断面形状は、特に限定されるものではなく、丸断面、三角断面、マルチローパル断面、だるま型断面、扁平断面、その他公知の断面形状のいずれであっても良いが捲縮発現性と風合いのバランスを重視する場合は丸断面若しくはだるま型断面の半円状サイドパイサイド型等の断面形状が好ましい。
 複合繊維の繊維径は、特に限定されるものではなく、用途等に応じて適宜設定することができ、例えば、10~125μmであってよく、10~100μmであってよく、10~80μmであってよく、10~60μmであってよく、10~40μmであってよく、10~35μmであってよく、10~30μmであってよい。繊維径が125μm以下であると、紡糸工程における脱溶媒速度が大きくなりにくい。繊維径が10μm以上であると、複合繊維を安定して得られやすくなる。
 複合繊維の捲縮数は、用途等に応じて適宜設定することができ、例えば、捲縮数5個/25mm以上であってよく、捲縮数10個/25mm以上であってよく、捲縮数15個/25mm以上であってよく、捲縮数20個/25mm以上であってよく、捲縮数25個/25mm以上であってよい。
 複合繊維は、用途等に応じて、さらに複合繊維内のポリペプチド分子間で化学的に架橋させてもよい。架橋させることができる官能基は、例えば、アミノ基、カルボキシル基、チオール基及びヒドロキシ基等が挙げられる。例えば、ポリペプチドに含まれるリジン側鎖のアミノ基は、グルタミン酸又はアスパラギン酸側鎖のカルボキシル基と脱水縮合によりアミド結合で架橋できる。真空加熱下で脱水縮合反応を行なうことにより架橋しでもよいし、カルボジイミド等の脱水縮合剤により架橋させてもよい。
 ポリペプチド分子間の架橋は、カルボジイミド、グルタルアルデヒド等の架橋剤を用いて行ってもよく、トランスグルタミナーゼ等の酵素を用いて行ってもよい。カルボジイミドは、一般式RN=C=NR(式中、R及びRは、それぞれ独立に、炭素数1~6のアルキル基、シクロアルキル基を含む有機基を示す。)で示される化合物である。カルボジイミドの具体例として、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩(EDC)、N,N’-ジシクロヘキシルカルボジイミド(DCC)、1-シクロヘキシル-3-(2-モルホリノエチル)カルボジイミド、ジイソプロピルカルボジイミド(DIC)等が挙げられる。これらの中でも、EDC及びDICはポリペプチド分子間のアミド結合形成能が高く、架橋反応し易いことから好ましい。
 架橋処理は、複合繊維に架橋剤を付与して真空加熱乾燥で架橋するのが好ましい。架橋剤は純品を複合繊維に付与してもよいし、炭素数1~5の低級アルコール及び緩衝液等で0.005~10質量%の濃度に希釈したものを複合繊維に付与してもよい。架橋処理は、温度20~45℃で3~42時間行うのが好ましい。架橋処理により、複合繊維に更に高い応力(強度)を付与することができる。
(複合繊維の捲縮性評価)
 複合繊維の捲縮性は、捲縮工程を経て潜在性捲縮を発現させた複合繊維の一定の長さにおける捲縮数を確認すること等により、評価することができる。
〔製品〕
 本実施形態に係る複合繊維は、各種の製品に応用することができる。このような製品としては、例えば、繊維、糸、布帛、編み物、組み物、不織布、紙、及び綿等を挙げることができる。繊維としては、例えば、長繊維、短繊維、モノフィラメント、マルチフィラメント等を挙げることができ、糸としては、紡績糸、撚糸、仮撚糸、加工糸、混繊糸、混紡糸等を挙げることができる。さらに、これらの繊維や糸から、織物等の布帛、編み物、組み物、不織布等、紙、綿等を製造することができる。これらの製品は、公知の方法により製造することができる。
 以下、実施例等に基づいて本発明をより具体的に説明する。ただし、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
1.改変フィブロイン及び構造タンパク質の製造
(1)発現ベクターの作製
 改変フィブロインとして、ネフィラ・クラピベス(Nephila clavipes)由来のフィブロイン(GenBankアクセッション番号:P46804.1、GI:1174415)の塩基配列及びアミノ酸配列に基づき、配列番号12(PRT380)、配列番号13(PRT410)、配列番号18(PRT399)、配列番号15(PRT799)、配列番号37(PRT918)、配列番号47(PRT966)及び配列番号40(PRT1009)で示されるアミノ酸配列を有する改変構造タンパク質(以下、それぞれ「PRT799」、「PRT918」、「PRT966」及び「PRT1009」ともいう。)を設計した。なお、配列番号15で示されるアミノ酸配列は、ネフィラ・クラピベス由来のフィブロインのアミノ酸配列に対して、生産性の向上を目的としてアミノ酸残基の置換、挿入及び欠失を施したアミノ酸配列を有し、さらにN末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列(タグ配列及びヒンジ配列)が付加されている。配列番号40で示されるアミノ酸配列(PRT1009)は、疎水度の向上を目的として、配列番号7で示されるアミノ酸配列(N末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列が付加される前のアミノ酸配列)中に存在する20個のドメイン配列の領域4回繰り返した配列中のQQを全てVFに置換し、かつ残りのQをIに置換し、さらにN末端に配列番号11で示されるアミノ酸配列(タグ配列及びヒンジ配列)を付加したものである。また、構造タンパク質として、Caora hircus(GenBankアクセッション番号:NP001272643.1)の構造タンパク質の塩基配列及びアミノ酸配列に基づき、配列番号45で示されるアミノ酸配列を有する改変構造タンパク質(以下、「PRT798」ともいう。)を設計した。
 次に、PRT380、PRT410、PRT399、PRT799、PRT918、PRT966及びPRT1009(改変フィブロイン)、並びにPRT798(構造タンパク質)をコードする核酸を合成した。当該核酸には、5’末端にNdeIサイト及び終止コドン下流にEcoRIサイトを付加した。当該核酸をクローニングベクター(pUC118)にクローニングした。その後、同核酸をNdeI及びEcoRIで制限酵素処理して切り出した後、それぞれタンパク質発現ベクターpET-22b(+)に組換えて発現ベクターを得た。
(2)改変フィブロイン及び構造タンパク質の発現
 上記(1)で得られた発現ベクターで、大腸菌BLR(DE3)をそれぞれ形質転換した。当該形質転換大腸菌を、アンピシリンを含む2mLのLB培地で15時間培養した。当該培養液を、アンピシリンを含む100mLのシード培養用培地(表7)にOD600が0.005となるように添加した。培養液温度を30℃に保ち、OD600が5になるまでフラスコ培養を行い(約15時間)、シード培養液をそれぞれ得た。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
 当該シード培養液を500mLの生産培地(表8)を添加したジャーファーメンターにOD600が0.05となるようにそれぞれ添加した。培養液温度を37℃に保ち、pH6.9で一定に制御して培養した。また培養液中の溶存酸素濃度を、溶存酸素飽和濃度の20%に維持するようにした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
 生産培地中のグルコースが完全に消費された直後に、フィード液(グルコース455g/1L、Yeast Extract 120g/1L)を1mL/分の速度で添加した。培養液温度を37℃に保ち、pH6.9で一定に制御して培養した。また培養液中の溶存酸素濃度を、溶存酸素飽和濃度の20%に維持するようにし、20時間培養を行った。その後、1Mのイソプロピル-β-チオガラクトピラノシド(IPTG)を培養液に対して終濃度1mMになるよう添加し、改変フィブロイン及び構造タンパク質をそれぞれ発現誘導させた。IPTG添加後20時間経過した時点で、培養液を遠心分離し、菌体を回収した。IPTG添加前とIPTG添加後の培養液から調製した菌体を用いてSDS-PAGEを行い、IPTG添加に依存した目的とする改変フィブロインサイズのバンドの出現、及び構造タンパク質サイズのバンドの出現により、目的とする改変フィブロイン及び構造タンパク質の発現をそれぞれ確認した。
(3)改変フィブロイン及び構造タンパク質の精製
 IPTGを添加してから2時間後に回収した菌体を20mM Tris-HCl buffer(pH7.4)で洗浄した。洗浄後の菌体を約1mMのPMSFを含む20mM Tris-HCl緩衝液(pH7.4)に懸濁させ、高圧ホモジナイザー(GEA Niro Soavi社製)で細胞を破砕した。破砕した細胞を遠心分離し、沈殿物を得た。得られた沈殿物を、高純度になるまで20mM Tris-HCl緩衝液(pH7.4)で洗浄した。洗浄後の沈殿物を100mg/mLの濃度になるように8M グアニジン緩衝液(8M グアニジン塩酸塩、10mM リン酸二水素ナトリウム、20mM NaCl、1mM Tris-HCl、pH7.0)で懸濁し、60℃で30分間、スターラーで撹拌し、溶解させた。溶解後、透析チューブ(三光純薬株式会社製のセルロースチューブ36/32)を用いて水で透析を行った。透析後に得られた白色の凝集タンパク質を遠心分離により回収し、凍結乾燥機で水分を除き、凍結乾燥粉末を回収することにより、改変フィブロイン(PRT380、PRT410、PRT399、PRT799、PRT918、PRT966及びPRT1009)と構造タンパク質(PRT798)を得た。
2.絹フィブロイン(構造タンパク質)の製造
(1)絹フィブロイン粉末の作製
 天然の蚕(Bombvx mori)の繭を用い、中身を除去した蚕の繭を小さく切断した。沸騰した0.5質量%マルセル石鹸水(マルセル石鹸はおろし金で細かくしたものを使用)で約30分間煮た後、沸騰したお湯で30分間煮た。この手順をさらに2回繰り返した(計3回)。最後に沸騰したお湯で30分間煮て、絹フィブロインを覆うセリシンを完全に除去し、セリシン除去後の絹フィブロインを37℃の環境下で一晩乾燥させた。乾燥後の絹の重さを測り、10質量/体積%となるように、臭化リチウム水溶液(9mo1/L)を加え、40℃で2時間溶解させた。この水溶液をセルロース透析膜(VISKASESELESCOAP社製のSeamless Cellulose Tubing、36/32)に入れ、蒸留水を用いて3~4日間透析した。透析後の回収溶液を、20℃、15000rpm、1時間で遠心し、溶け残りや不純物などを除去した。更に濃度が2質量%以下になるようにMilli水で希釈した。希釈後、ADVANTEC社の150μmフィルターに通し、不純物を完全に除去した。絹フィブロイン水溶液を-80℃で凍結させ一晩かけて凍結乾燥した。十分に水分が抜けたことを確認し、絹フィブロイン粉末を得た。
3.複合繊維の製造及び評価
<実施例1>
(1)ドープ液の調製
 第1成分として、上記改変フィブロインの製造工程で得られた改変フィブロイン(PRT799、疎水性度:-0.80)24質量%と、溶媒としてのギ酸(純度98%)76質量%とを混合し40℃のアルミブロックヒーターで1時間加温し、溶解させた後、目開き1μmの金属フィルターで濾過し、脱泡して第1ドープ液を調製した。
 第2成分として、上記改変フィブロインの製造工程で得られた改変フィブロイン(PRT1009、疎水性度:0.49)24質量%を用いた他は、第1ドープ液と同様にして第2ドープ液を調製した。
(2)乾湿式紡糸
 卓上の紡糸装置を用いて乾湿式紡糸を行なった。調製した第1ドープ液と第2ドープ液とをそれぞれリザーブタンクに充填した。40℃に保持し、ギアポンプを用いて0.2mm径のモノホールノズルから第1ドープ液を吐出し、次に同径のモノホールノズルから第2ドープ液を吐出し、第1ドープ液に第2ドープ液を接合させて、凝固液槽内の100質量%メタノール中へ吐出させた。凝固後、凝固液槽中で延伸を行い、さらに乾熱延伸を行なった後、水洗浄浴中で洗浄して潜在性捲縮を発現させ、複合重量比1:1(第1成分:第2成分)のサイドバイサイド型の複合繊維を得、巻き取った。
 乾湿式紡糸の条件は以下のとおりである。
 押出しノズル直径:0.2mm
 乾熱伸倍率:6倍
 凝固液(メタノール)の温度:5℃
 乾燥温度:60℃
(3)捲縮性評価
 上記(2)で得られた複合繊維を、再度水浴中で水と接触させた後、乾燥させる工程を繰り返し行なったところ、上記(2)で確認された捲縮が維持されることが認められ、優れた嵩高性と捲縮能を示した。
<実施例2>
(1)紡糸原液の調製
 第1ドープ液は、実施例1と同様にして調製した。
 第2ドープ液は、上記構造タンパク質の製造工程で得られた構造タンパク質(PRT798、疎水性度:0.49)24質量%を第2成分として用いた他は、実施例1と同様にして調製した。
(2)乾湿式紡糸
 調製した第1ドープ液と第2ドープ液とをそれぞれリザーブタンクに充填した。実施例1と同様にして乾湿式紡糸を行い、潜在性捲縮を発現させた、複合質量比1:1(第1成分:第2成分)のサイドバイサイド型の複合繊維を得、巻き取った。
(3)捲縮性評価
 上記で得られた複合繊維を、再度水浴中で水と接触させた後、乾燥させる工程を繰り返し行なったところ、上記(2)で確認された捲縮が維持されることが認められ、優れた嵩高性と捲縮能を示した。
<実施例3>
(1)ドープ液の調製
 第1ドープ液は、実施例1と同様にして調製した。
 第2ドープ液は、上記絹フィブロイン(構造タンパク質)の製造工程で得られた絹フィブロイン24重量%を第2成分として用いた他は、実施例1と同様にして調製した。
(2)乾湿式紡糸
 調製した第1ドープ液と第2ドープ液とをそれぞれリザーブタンクに充填した。実施例1と同様にして乾湿式紡糸を行い、潜在性捲縮を発現させた、複合質量比1:1(第1成分:第2成分)のサイドバイサイド型の複合繊維を得、巻き取った。
(3)捲縮性評価
 上記で得られた複合繊維を、再度水浴中で水と接触させた後、乾燥させる工程を繰り返し行なったところ、上記(2)で確認された捲縮が維持されることが認められ、優れた嵩高性と捲縮能を示した。
参考例1:改変フィブロインの燃焼性試験
 塩化リチウムのジメチルスルホキシド溶液(濃度:4.0質量%)に、改変フィブロイン(PRT799)の凍結乾燥粉末を、濃度24質量%となるよう添加し、シェーカーを使用して3時間混合することにより、溶解させた。その後、不溶物と泡を取り除き、改変フィブロイン溶液(紡糸原液)を得た。
 得られた紡糸原液を90℃に加熱し、目開き5μmの金属フィルターで濾過し、次いで30mLのステンレスシリンジ内で静置し、脱泡させた後に、ニードル径0.2mmのソリッドノズルから100質量%メタノール凝固浴槽中へ吐出させた。吐出温度は90℃であった。凝固後、得られた原糸を巻き取り、自然乾燥させて改変フィブロイン繊維(原料繊維)を得た。
 原料繊維を撚り合せた撚糸を使用して、丸編機を使用した丸編みで編地(太さ:180デニール、ゲージ数:18)を製造した。得られた編地を20g切り出して、試験片として使用した。
 燃焼性試験は、「消防危50号(平成7年5月31日付け)」に記載の「粉粒状又は融点の低い合成樹脂の試験方法」に準拠した。試験は、温度22℃、相対湿度45%、気圧1021hPaの条件下で実施した。測定結果(酸素濃度(%)、燃焼率(%)、換算燃焼率(%))を表9に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
 燃焼性試験の結果、改変フィブロイン(PRT799)繊維で編んだ編地の限界酸素指数(LOI)値は27.2であった。一般にLOI値が26以上であると、難燃性であると知られている。改変フィブロインは、難燃性に優れていることが分かる。
参考例2:改変フィブロインの吸湿発熱性評価
 塩化リチウムのジメチルスルホキシド溶液(濃度:4.0質量%)に、改変フィブロインの凍結乾燥粉末を、濃度24質量%となるよう添加し、シェーカーを使用して3時間混合することにより、溶解させた。その後、不溶物と泡を取り除き、改変フィブロイン溶液(紡糸原液)を得た。
 得られた紡糸原液を60℃に加熱し、目開き5μmの金属フィルターで濾過し、次いで30mLのステンレスシリンジ内で静置し、脱泡させた後に、ニードル径0.2mmのソリッドノズルから100質量%メタノール凝固浴槽中へ吐出させた。吐出温度は60℃であった。凝固後、得られた原糸を巻き取り、自然乾燥させて改変フィブロイン繊維(原料繊維)を得た。
 比較のため、原料繊維として、市販されているウール繊維、コットン繊維、テンセル繊維、レーヨン繊維及びポリエステル繊維を用意した。
 各原料繊維を使用して、横編機を使用した横編みで編地をそれぞれ製造した。PRT918繊維又はPRT799繊維を使用した編地の太さ及びゲージ数を表10に示すとおりである。その他の原料繊維を使用した編地は、改変フィブロイン繊維の編地とほぼ同一のカバーファクターとなるように太さ及びゲージ数を調整した。具体的には、以下のとおりである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
 10cm×10cmに裁断した編地を2枚合わせにし、四辺を縫い合わせて試験片(試料)とした。試験片を低湿度環境(温度20±2℃、相対湿度40±5%)で4時間以上放置した後、高湿度環境(温度20±2℃、相対湿度90±5%)に移し、試験片内部中央に取り付けた温度センサーにより30分間、1分間隔で温度の測定を行った。
 測定結果から、下記式Aに従って、最高吸湿発熱度を求めた。
 式A: 最高吸湿発熱度={(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移したときの試料温度の最高値)-(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移すときの試料温度)}(℃)/試料重量(g)
 図8は、吸湿発熱性試験の結果の一例を示すグラフである。グラフの横軸は、試料を低湿度環境から高湿度環境に移した時点を0とし、高湿度環境での放置時間(分)を示す。グラフの縦軸は、温度センサーで測定した温度(試料温度)を示す。図8に示したグラフ中、Mで示した点が、試料温度の最高値に対応している。
 各編地の最高吸湿発熱度の算出結果を表11に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
 表11に示すとおり、改変フィブロイン(PRT918及びPRT799)は、既存の材料と比べて、最高吸湿発熱度が高く、吸湿発熱性に優れていることが分かる。
参考例3:改変フィブロインの保温性評価
 塩化リチウムのジメチルスルホキシド溶液(濃度:4.0質量%)に、改変フィブロインの凍結乾燥粉末を、濃度24質量%となるよう添加し、シェーカーを使用して3時間混合することにより、溶解させた。その後、不溶物と泡を取り除き、改変フィブロイン溶液(紡糸原液)を得た。
 得られた紡糸原液を60℃に加熱し、目開き5μmの金属フィルターで濾過し、次いで30mLのステンレスシリンジ内で静置し、脱泡させた後に、ニードル径0.2mmのソリッドノズルから100質量%メタノール凝固浴槽中へ吐出させた。吐出温度は60℃であった。凝固後、得られた原糸を巻き取り、自然乾燥させて改変フィブロイン繊維(原料繊維)を得た。
 比較のため、原料繊維として、市販されているウール繊維、シルク繊維、綿繊維、レーヨン繊維及びポリエステル繊維を用意した。
 各原料繊維を使用して、横編機を使用した横編みで編地をそれぞれ製造した。PRT966繊維又はPRT799繊維を使用した編地の番手、撚り本数、ゲージ数、目付けは、表12に示すとおりである。その他の原料繊維を使用した編地は、改変フィブロイン繊維の編地とほぼ同一のカバーファクターとなるように調整した。具体的には、以下のとおりである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
 保温性は、カトーテック株式会社製のKES-F7サーモラボII試験機を使用し、ドライコンタクト法(皮膚と衣服が乾燥状態で直接触れた時を想定した方法)を用いて評価した。20cm×20cmの矩形に裁断した編地1枚を試験片(試料)として使用した。試験片を、一定温度(30℃)に設定した熱板にセットし、風洞内風速30cm/秒の条件で、試験片を介して放散された熱量(a)を求めた。試験片をセットしない状態で、上記同様の条件で放散された熱量(b)を求め、下記式Bに従い保温率(%)を算出した。
 式B: 保温率(%)=(1-a/b)×100
 測定結果から、下記式Cに従って、保温性指数を求めた。
 式C: 保温性指数=保温率(%)/試料の目付け(g/m
 保温性指数の算出結果を表13に示す。保温性指数が高いほど、保温性に優れる材料と評価することができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
 表13に示すとおり、改変フィブロイン(PRT966及びPRT799)は、既存の材料と比べて、保温性指数が高く、保温性に優れていることが分かる。
参考例4:原料繊維の製造
 塩化リチウムのジメチルスルホキシド溶液(濃度:4.0質量%)に、改変フィブロイン(PRT380、PRT410、PRT399、又はPRT799)の凍結乾燥粉末を、濃度18質量%又は24質量%となるよう添加し(表14参照)、シェーカーを使用して3時間混合することにより、溶解させた。その後、不溶物と泡を取り除き、改変フィブロイン溶液(紡糸原液)を得た。
 得られた紡糸原液から、図6に示す紡糸装置10に準じた紡糸装置を用いた乾湿式紡糸法によって、紡糸及び延伸された原料繊維を製造した。用いた紡糸装置は、図6に示す紡糸装置10において、未延伸糸製造装置2(第1浴)及び湿熱延伸装置3(第3浴)の間に、更に第2の未延伸糸製造装置(第2浴)を備えるものである。乾湿式紡糸法の条件は以下のとおりである。
 押出しノズル直径:0.2mm
 第1浴~第3浴中の液体及び温度:表14参照
 総延伸倍率:表14参照
 乾燥温度:60℃
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
(3)改変フィブロイン繊維の製造、並びに収縮率A及び収縮率Bの評価
 製造例1~19で得た各原料繊維に対し、水に接触させる接触ステップを施すこと、又は当該接触ステップを施した後、室温で乾燥させる乾燥ステップを施すことにより、改変フィブロイン繊維(人造フィブロイン繊維)を製造した。
<接触ステップにおける収縮率Aの評価>
 製造例1~19で得た各原料繊維の巻回物から、それぞれ、長さ30cmの複数本の原料繊維を切り出した。それら複数本の原料繊維を束ねて、繊度150デニールの原料繊維束を得た。各原料繊維束に0.8gの鉛錘を取り付け、その状態で各原料繊維束を表15~18に示す温度の水に10分間浸漬した(接触ステップ)。その後、水中で各原料繊維束の長さを測定した。水中での原料繊維束の長さ測定は、原料繊維束の縮れを無くすために、原料繊維束に0.8gの鉛錘を取り付けたまま実施した。次いで、各原料繊維に対して、収縮率A(%)を、下記式Dに従って算出した。式D中、L0は、紡糸後、水と接触する前の繊維の長さを示し、ここでは30cmである。同様に、式D中、Lwは、紡糸後に水と接触することで不可逆的に収縮された繊維の長さを示し、ここでは水中で測定した各原料繊維束の長さである。
 式D: 収縮率A(%)={1-(Lw/L0)}×100
<乾燥ステップにおける収縮率Bの評価>
 接触ステップの後、原料繊維束を水中から取り出した。取り出した原料繊維束を、0.8gの鉛錘を取り付けたまま、室温で2時間おいて乾燥させて(乾燥ステップ)、改変フィブロイン繊維を得た。乾燥後、各改変フィブロイン繊維束の長さを測定した。次いで、各改変フィブロイン繊維に対して、収縮率B(%)を、下記式Eに従って算出した。式E中、L0は、紡糸後、水と接触する前の繊維の長さを示し、ここでは30cmである。同様に、式E中、Lwdは、紡糸後に水と接触することで不可逆的に収縮された後、乾燥により更に収縮された繊維の長さを示し、ここでは乾燥後に測定した各改変フィブロイン繊維束の長さである。
 式E: 収縮率B={1-(Lwd/L0)}×100(%)
 結果を表15~18に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000017
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000018
 表15~18に示したとおり、改変フィブロイン(PRT380、PRT410、PRT399、又はPRT799)繊維は、水分に対する収縮性に優れ、優れた潜在捲縮能を有することが分かる。改変フィブロインを用いてサイドバイサイド型の複合繊維とすることで、捲縮能、嵩高性、及び伸縮性に優れた複合繊維を得ることができる。
 1…押出し装置、2…未延伸糸製造装置、3…湿熱延伸装置、4…乾燥装置、6…ドープ液、9…紡糸口金、10…紡糸装置、11…凝固液、20…凝固液槽、21…延伸浴槽、36…複合繊維。

Claims (26)

  1.  改変フィブロインを含む第1成分と、構造タンパク質を含む第2成分と、が接合してなり、潜在性捲縮能を有する、サイドバイサイド型複合繊維。
  2.  前記第1成分と前記第2成分の複合比率が、前記複合繊維の質量を基準として9:1~1:9である、請求項1に記載の複合繊維。
  3.  前記構造タンパク質が、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、コラーゲン、レシリン、エラスチン、及びケラチンからなる群より選ばれる少なくとも1種である、請求項1又は2に記載の複合繊維。
  4.  前記構造タンパク質が、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、及びケラチンからなる群より選ばれる少なくとも1種である、請求項1~3のいずれか一項に記載の複合繊維。
  5.  前記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含む改変フィブロインであって、
     前記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、少なくとも1又は複数の(A)モチーフが欠失したことに相当する、(A)モチーフの含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、請求項1~4のいずれか一項に記載の複合繊維。
    [式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
  6.  前記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含み、
     前記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、少なくともREP中の1又は複数のグリシン残基が別のアミノ酸残基に置換されたことに相当する、グリシン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、請求項1~4のいずれか一項に記載の複合繊維。
    [式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
  7.  前記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]表されるドメイン配列を含み、
     前記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列を有する、請求項1~4のいずれか一項に記載の複合繊維。
    [式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
  8.  前記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]、又は式2:[(A)モチーフ-REP]-(A)モチーフで表されるドメイン配列を含み、
     前記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のグルタミン残基を欠失したこと、又は他のアミノ酸残基に置換したことに相当する、グルタミン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、請求項1~4のいずれか一項に記載の複合繊維。
    [式1及び式2中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が80%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
  9.  前記改変フィブロインが、26.0以上の限界酸素指数(LOI)値を有している、請求項1~4のいずれか一項に記載の複合繊維。
  10.  前記改変フィブロインが、0.025℃/g超の、下記式Aに従って求められる最高吸湿発熱度を有している、請求項1~4のいずれか一項に記載の複合繊維。
     式A: 最高吸湿発熱度={(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移したときの試料温度の最高値)-(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移すときの試料温度)}(℃)/試料重量(g)
    [式A中、低湿度環境は、温度20℃及び相対湿度40%の環境を意味し、高湿度環境は、温度20℃及び相対湿度90%の環境を意味する。]
  11.  改変フィブロイン及び溶媒を含む第1ドープ液を調製する工程と、
     構造タンパク質及び溶媒を含む第2ドープ液を調製する工程と、
     第1ドープ液と第2ドープ液を紡糸口金から吐出して接合させ、凝固液中で未延伸の複合繊維を形成させる工程と、
     前記未延伸の複合繊維を水性媒体に接触させる工程と、を含む、複合繊維の製造方法。
  12.  前記未延伸の複合繊維を延伸する工程を更に含む、請求項11に記載の方法。
  13.  前記第1ドープ液における改変フィブロインの濃度が、前記第1ドープ液の全質量を基準として、5~40質量%であり、
     前記第2ドープ液における構造タンパク質の濃度が、前記第2ドープ液の全質量を基準として、5~40質量%である、請求項11又は12に記載の方法。
  14.  前記溶媒が、ヘキサフルオロイソプロパノール、ヘキサフルオロアセトン、ジメチルスルホキシド、N,N-ジメチルホルムアミド、N,N-ジメチルアセトアミド、1,3-ジメチル-2-イミダゾリドン、N-メチル-2-ピロリドン、アセトニトリル、N-メチルモルホリン-N-オキシド、及びギ酸、並びに、尿素、グアニジン、ドデシル硫酸ナトリウム、臭化リチウム、塩化カルシウム及びチオシアン酸リチウムからなる群から選択される少なくとも一種を含む水溶液からなる群から選択される少なくとも一種を含む、請求項11~13のいずれか一項に記載の方法。
  15.  前記凝固液が、炭素数1~5の低級アルコール、及びアセトンからなる群から選択される少なくとも一種である、請求項11~14のいずれか一項に記載の方法。
  16.  前記構造タンパク質が、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、コラーゲン、レシリン、エラスチン、及びケラチンからなる群より選ばれる少なくとも1種である、請求項11~15のいずれか一項に記載の方法。
  17.  前記構造タンパク質が、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、及びケラチンからなる群より選ばれる少なくとも1種である、請求項11~16のいずれか一項に記載の方法。
  18.  前記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含む改変フィブロインであって、
     前記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、少なくとも1又は複数の(A)モチーフが欠失したことに相当する、(A)モチーフの含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、請求項11~17のいずれか一項に記載の方法。
    [式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
  19.  前記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]で表されるドメイン配列を含み、
     前記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、少なくともREP中の1又は複数のグリシン残基が別のアミノ酸残基に置換されたことに相当する、グリシン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、請求項11~17のいずれか一項に記載の方法。
    [式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
  20.  前記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]表されるドメイン配列を含み、
     前記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のアミノ酸残基が疎水性指標の大きいアミノ酸残基に置換されたこと、及び/又はREP中に1又は複数の疎水性指標の大きいアミノ酸残基が挿入されたことに相当する、局所的に疎水性指標の大きい領域を含むアミノ酸配列を有する、請求項11~17のいずれか一項に記載の方法。
    [式1中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が83%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
  21.  前記改変フィブロインが、式1:[(A)モチーフ-REP]、又は式2:[(A)モチーフ-REP]-(A)モチーフで表されるドメイン配列を含み、
     前記ドメイン配列が、天然由来のフィブロインと比較して、REP中の1又は複数のグルタミン残基を欠失したこと、又は他のアミノ酸残基に置換したことに相当する、グルタミン残基の含有量が低減されたアミノ酸配列を有する、請求項11~17のいずれか一項に記載の方法。
    [式1及び式2中、(A)モチーフは2~27アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ(A)モチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が80%以上である。REPは10~200アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。mは2~300の整数を示す。複数存在する(A)モチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するREPは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。]
  22.  前記改変フィブロインが、26.0以上の限界酸素指数(LOI)値を有している、請求項11~17のいずれか一項に記載の方法。
  23.  前記改変フィブロインが、0.025℃/g超の、下記式Aに従って求められる最高吸湿発熱度を有している、請求項11~17のいずれか一項に記載の方法。
     式A: 最高吸湿発熱度={(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移したときの試料温度の最高値)-(試料を、試料温度が平衡に達するまで低湿度環境下に置いた後、高湿度環境下に移すときの試料温度)}(℃)/試料重量(g)
    [式A中、低湿度環境は、温度20℃及び相対湿度40%の環境を意味し、高湿度環境は、温度20℃及び相対湿度90%の環境を意味する。]
  24.  請求項1~10のいずれか一項に記載の複合繊維を含み、
     繊維、糸、布帛、編み物、組み物、不織布、紙、及び綿からなる群から選択される、製品。
  25.  第1成分と、第2成分と、が接合しており、第1成分及び第2成分のいずれか一方が改変フィブロインを含む、サイドバイサイド型複合繊維。
  26.  第1成分と、第2成分と、が接合しており、第1成分及び第2成分のいずれか一方が潜在性捲縮能を有する改変フィブロインを含む、サイドバイサイド型複合繊維。
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