WO2018235441A1 - 連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置 - Google Patents

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WO2018235441A1
WO2018235441A1 PCT/JP2018/017808 JP2018017808W WO2018235441A1 WO 2018235441 A1 WO2018235441 A1 WO 2018235441A1 JP 2018017808 W JP2018017808 W JP 2018017808W WO 2018235441 A1 WO2018235441 A1 WO 2018235441A1
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WO
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cell
continuous culture
culture conditions
culture
cells
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PCT/JP2018/017808
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啓介 渋谷
聖 村上
近藤　健之
周太郎 石川
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株式会社日立製作所
エイブル株式会社
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M3/00—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor

Definitions

  • the present invention relates to a method for screening continuous culture conditions and a screening apparatus for continuous culture conditions.
  • Biopharmaceuticals such as antibody pharmaceuticals are manufactured by culturing cells producing pharmaceutical proteins and purifying the pharmaceutical proteins secreted from the cells.
  • a gene encoding a target pharmaceutical protein is introduced into cells, and the drug is released from the expanded and collected cell pool into the culture supernatant with high efficiency. We are sorting out highly efficient producers.
  • the culture methods of cells producing pharmaceutical proteins are classified into batch culture, fed-batch culture (or half-batch culture), and continuous culture (or perfusion culture).
  • Batch culture is a culture method in which a new culture medium is prepared each time, a cell line is planted there, and the culture medium is not added until harvest. Batch culture is characterized in that although the quality varies from culture to culture, it can disperse and reduce the risk of contamination.
  • the fed-batch culture is a culture method in which the medium itself or a specific component in the medium is added during the culture, and the product is not withdrawn until the end of the culture.
  • Continuous culture is a culture method in which the medium is supplied to the culture system continuously and at the same time the same amount of culture solution is withdrawn. Continuous culture is characterized in that the culture environment can be easily kept constant and productivity is stabilized.
  • screening selection / selection
  • screening of cell lines used for culture be performed using a culture screening apparatus in which the culture apparatus in real production is scaled down in accordance with each culture method used for actual production.
  • screening of cell lines is carried out by conducting culture tests for each clone library, and evaluating and determining the growth rate of each strain and the productivity of the target product as the total productivity.
  • Examples of cells (cell lines) used for culture include Chinese hamster ovary cells, which are adherent cultured cells. And, a culture method using this Chinese hamster ovary cell is described in, for example, Patent Document 1.
  • Patent Document 1 describes that in Chinese hamster ovary cells for protein production, the growth phase and the production phase are separated from each other. Moreover, in this patent document 1, the introduction of the genetic material is carried out after the cells cover the carrier surface confluently, and the cells have the maximum secretion of a specific product in the G1 phase (G1 phase (G1 phase). It is stated that it is excellent in that it is carried out. Furthermore, Patent Document 1 describes that it is important to carry out the introduction of the genetic material after trapping the cells by immobilizing the cells on the porous carrier material at the G1 phase of the cell cycle.
  • suspension-type cultured cells are also known as cells (cell lines) used for culture, in addition to adherent-system cultured cells. Since suspension-type cultured cells do not adhere on the carrier material as described above, it is impossible to control the cell cycle by immobilizing the cells.
  • cell culture is carried out to proliferate cells while producing a specific product. Therefore, in a culture system using suspension culture cells, in general, a culture solution containing cells is sampled during culture, and a change in cell number and survival rate over time is measured as a growth rate, and production is performed as a production capacity. The change over time of the concentration of the substance is measured. Then, cell lines are evaluated by converting them into cell growth rate and product production rate and using them as indexes.
  • Batch and fed-batch cultures collect the product after reaching a constant cell density while growing the cells. Therefore, screening of cell lines and culture conditions can be performed within the above culture period.
  • the continuous culture after the cell growth phase is over, the cell state and the production of the product become steady state (product production phase), and then the product recovery phase comes. Therefore, as compared with batch culture and fed-batch culture, it required a long period of time for screening of a cell line for continuous culture with good productivity and continuous culture conditions. Therefore, screening of cell lines suitably used for continuous culture, that is, screening of cell lines with low cell proliferation after reaching steady state and high product production rate with respect to cell growth rate (optimized cell line selection ) was practically difficult.
  • the present invention has been made in view of the above situation, and there is little cell proliferation after reaching a steady state, and a cell line for continuous culture having a high product production rate relative to the cell growth rate, and a continuous culture suitable therefor It is an object of the present invention to provide a method of screening continuous culture conditions capable of selecting conditions and a screening apparatus for continuous culture conditions.
  • the above-mentioned subject concerning the present invention is solved by the following means.
  • the screening method of continuous culture conditions according to the present invention is an index that ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) ⁇ is maximum, and an index that the total period of G0 phase and G1 phase of the cell cycle is the longest.
  • the floating cell line for continuous culture is selected based on at least one indicator selected from the indicators that the pathway in the metabolic flux is least.
  • the screening method of continuous culture conditions is a method of screening continuous culture conditions when culturing cells in a continuous culture apparatus used for actual production, wherein the continuous culture conditions are set to culture cells. And a culture step of sampling the culture solution cultured in the culture step and analyzing the concentration of the product and the medium components to obtain an analysis value, and the culture state of the cell from the analysis value in a steady state Analysis of at least one of product production rate, cell growth rate, cell cycle, and metabolic flux from the analysis value when the culture state is a steady state.
  • the screening apparatus for continuous culture conditions is an index that ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) ⁇ is maximum, and an index that the total period of the G0 phase and the G1 phase of the cell cycle is the longest.
  • the floating cell line for continuous culture is selected based on at least one indicator selected from the indicators that the pathway in the metabolic flux is least.
  • the screening apparatus for continuous culture conditions is an apparatus for screening continuous culture conditions when cells are cultured in a continuous culture apparatus used for actual production, and the culture for culturing cells by setting the continuous culture conditions Analysis means for sampling the culture solution cultured by the culture means and analyzing the concentration of the product and the medium components to obtain an analysis value, and whether the culture state of the cell is in a steady state from the analysis value Analysis means for analyzing at least one of product production rate, cell growth rate, cell cycle, and metabolic flux from the analysis value when the culture state is in a steady state And selection means for selecting optimal continuous culture conditions based on analysis results of at least one of the cell growth rate, the cell cycle, and the metabolic flux An indicator that ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) ⁇ is maximized by evaluating the cells cultured under the optimal continuous culture conditions, the total period of the G0 phase and the G1 phase of the cell cycle And the sorting means for sorting the cell line for continuous culture on the basis of at least one indicator selected from among the indicators that there is the least pathway in
  • a continuous cell line for continuous culture having a low rate of cell proliferation after reaching steady state and a high product production rate with respect to the cell growth rate and continuous culture conditions suitable therefor.
  • a screening method of culture conditions and a screening apparatus of continuous culture conditions can be provided.
  • Continuous culture is a culture method in which fresh culture medium is supplied continuously to the cell culture tank from the addition culture medium tank and at the same time culture medium of the same amount as the added fresh culture medium is removed from the cell separation device. It is different from fed-batch culture.
  • a cell separation device cells and waste products and a desired product are separated. The separated cells are returned to the cell culture tank, and the products and waste products are collected in the culture solution collection tank. Then, the recovered product is purified by a refiner to become a product.
  • the cell number density from the product production phase to the product recovery phase in continuous culture is Is desirable. That is, unlike the batch culture and the fed-batch culture, it is desirable that the growth rate of the cells be small from the product production phase to the product recovery phase in continuous culture. On the other hand, as a matter of course, it is desirable that the production rate of the target product be high from the viewpoint of enhancing the productivity from the product production period to the product recovery period in continuous culture.
  • equation 2 described later is newly defined as an index for selecting cell lines for continuous culture.
  • this index I selects the cell line that becomes the largest after the cells become confluent and reach the product production period, and the productivity in continuous culture is higher than in the past, and It can stabilize the quality of the product. That is, according to this index I, it is possible to select a continuous cell line for continuous culture and a continuous culture condition suitable for this, with less cell proliferation after reaching steady state, and high production rate with respect to the cell growth rate.
  • This index I can be suitably applied to both a continuous culture system using adherent culture cells and a continuous culture system using suspension culture cells.
  • This index I can also be used, for example, for selection of continuous culture conditions and breeding conditions to minimize undesirable by-products. In this case, "product production rate” is replaced with "byproduct production rate", and continuous culture conditions and breeding conditions are selected so that the index I becomes small.
  • cell cycle can be mentioned as an index for selecting cell lines for continuous culture.
  • the total period of G0 and G1 phases in which cell division is not performed is long in the cell cycle after the cells become confluent and reach the product production phase.
  • the longer the total period after the cells become confluent and reach the product production phase the longer the state in which the product is produced but the cell growth is not performed can be maintained. That is, this indicator also allows selection of cell lines for continuous culture having a high product production rate with respect to the cell growth rate and continuous culture conditions suitable therefor, with less cell proliferation after reaching a steady state.
  • metabolic flux can be mentioned as an index for selecting cell lines for continuous culture. Specifically, it can be mentioned that there is the least pathway in metabolic flux after the cells become confluent and reach the product production stage. The less pathways there are in the metabolic flux after the cells become confluent and reach the product production phase, the less is the production of by-products. Therefore, the production of the product is less likely to be suppressed by the by-products, and the production rate of the product is improved, or the production amount of the product is increased (the productivity is increased). Also, the quality of the product is stabilized. That is, this indicator also allows selection of cell lines for continuous culture having a high product production rate with respect to the cell growth rate and continuous culture conditions suitable therefor, with less cell proliferation after reaching a steady state.
  • FIG. 1 is a schematic view showing an example of a screening apparatus for continuous culture conditions according to the present embodiment.
  • the screening apparatus for continuous culture conditions according to the present embodiment (hereinafter sometimes simply referred to as "screening apparatus") is a continuous culture condition when culturing cells in a continuous culture apparatus (not shown) used for actual production. It is an apparatus to screen.
  • the screening apparatus 1 according to the present embodiment includes a culture means 2, an analysis means 3, a judgment means 4, an analysis means 5, a selection means 6 and a selection means 7. .
  • the culture means 2 in the present embodiment is a tank that sets (simulates) continuous culture conditions when culturing cells in a continuous culture apparatus (not shown) used for actual production, and performs cell culture. .
  • continuous culture conditions for example, temperature, dissolved oxygen concentration, medium composition, stirring rotation speed and the like can be mentioned.
  • culture means 2 cell lines to be screened are also set (selected).
  • the culture means 2 has a medium addition means 21, a cell separation means 22 and a recovery means 23 in addition to the culture means 2 as equipment necessary for cell culture.
  • the culture medium addition means 21 to the culture means 2 is a pipe T1
  • the culture means 2 to the cell separation means 22 is a pipe T2
  • the cell separation means 22 to the recovery means 23 is a pipe T3
  • the cell separation means 22 to a culture means 2 Are connected to each other by a pipe T4.
  • pumps P1 to P3 are installed at arbitrary positions of the pipes T1, T2 and T3.
  • the continuous culture apparatus used for actual production (not shown) described above is also configured to include medium addition means, culture means, cell separation means and recovery means. These components in the continuous culture apparatus correspond to the medium addition means 21, the culture means 2, the cell separation means 22 and the recovery means 23 of the screening device 1 respectively, and can have the same configuration.
  • the culture means 2 is provided with a stirring blade 24 and a stirring power 25 for stirring cells.
  • the culture means 2 includes a diffusion tube 26 for aeration in the liquid, a water jacket 27 for temperature control, and a culture environment such as pH, dissolved oxygen (DO), dissolved carbon dioxide (DCO 2 ) and temperature.
  • various sensors (not shown) for monitoring. A sensor is individually provided for each measurement target.
  • the culture means 2 is a pipe for adding an alkaline solution, a carbon dioxide gas, air, pure oxygen, nitrogen, etc. to control pH and DO within a predetermined setting range (liquid level, in liquid) It has a ventilation pipe. Also, although not shown, the culture means 2 is also equipped with a device for controlling alkali addition and gas ventilation to maintain the culture environment within a predetermined setting range based on the value obtained by the sensor described above. ing.
  • FIG. 2 is a schematic view showing a screening apparatus 1A provided with a plurality of lines of culture means 2.
  • FIG. 1 illustrates a screening system 1 of one system provided with only one culture means 2.
  • genetically modified cells are stored as multiple candidate cell lines (cell line pools). Therefore, in order to improve the screening efficiency, as shown in FIG. 2, it is desirable to use a screening apparatus 1A having a plurality of lines of culture means 2.
  • the screening apparatus 1A shown in FIG. 2 includes, for example, eight culture means 2 (specifically, cell culture vessels) each having a volume of 100 mL, which are respectively referred to as culture means 2a to 2h.
  • the screening apparatus 1A has a medium addition means 21, a cell separation means 22 and a recovery means 23 in addition to the respective culture means 2a to 2h as in the screening device 1. There is.
  • each of the culture means 2a to 2h includes, as culture control parameters, the number of rotations of stirring, temperature, pH, DO, DCO 2 and the like, which can be measured and controlled.
  • each of the culture means 2a to 2h is a culture control parameter, such as a circulation rate from the culture means 2 to the culture means 2 via the cell separation means 22 and a liquid delivery speed to send liquid from the cell separation means 22 to the
  • the addition rate and medium composition for adding fresh medium from the medium addition means 21 into the culture means 2 can be mentioned, and these can be measured and controlled.
  • the culture means 2a to 2h can use these culture control parameters as screening targets for continuous culture conditions.
  • the screening apparatus 1A shown in FIG. 2 can not only culture cell lines of one line by one of the culture means 2a to 2h, but also set continuous culture conditions of the cell lines of the one line. By changing the value, it is possible to measure the cell growth rate, product production rate, etc. under various continuous culture conditions.
  • the medium addition means 21 is a tank for temporarily storing fresh liquid medium in order to supplement the nutrient components in the liquid medium consumed by cells in the culture means 2.
  • the medium addition means 21 may be any tank as long as it can temporarily store fresh liquid medium.
  • the medium addition means 21 only needs to store fresh medium to be added to the culture means 2, and the number of tanks is not particularly limited.
  • the number of tanks in the medium addition means 21 may be one or more.
  • the medium addition means 21 can adjust the addition rate of fresh liquid medium by the output of the pump P1 and the opening / closing degree of the valve V.
  • the fresh liquid medium can be appropriately selected and prepared according to the cells to be cultured.
  • the cell separation means 22 is an apparatus for separating a cultured cell, a product and a waste from the culture solution of the culture means 2.
  • the cell separation unit 22 returns the cultured cells to the culture unit 2 through the pipe T4, and transfers the product and the waste products to the collection unit 23 through the pipe T3.
  • a gravity sedimentation method, a centrifugation method, an ultrasonic agglutination method, a filtration separation method and the like can be mentioned, and any method may be used in the present embodiment.
  • the product include antibody proteins and various physiologically active substances.
  • waste products include lactic acid and ammonia.
  • the recovery means 23 is a tank for temporarily storing the products and wastes separated by the cell separation means 22.
  • any tank can be used as long as it can temporarily store products and waste products.
  • ⁇ Analytical means> In the screening apparatus 1, for example, culture means at an appropriate timing, such as during the cell growth phase (logarithmic growth phase) of the cells or after the cell growth phase has passed and the product production phase has been reached (after reaching a steady state).
  • the culture solution is sampled from 2 and the concentration of the product and the medium components are analyzed by the analysis means 3 to analyze the cell condition.
  • the product production rate that reflects the state of the analyzed cell, cell growth rate, cell cycle, intracellular metabolic flow (metabolic flux), nutrient substrate consumption rate, waste products and other by-product secretion rates Analyze at least one etc.
  • Those items listed as the analysis target of the analysis means 3 can be arbitrarily selected, and at least one of them may be analyzed.
  • the analysis unit 3 transmits the obtained analysis value to the analysis control unit 8.
  • the analysis method etc. regarding these analysis objects which can be analyzed by the analysis means 3 are as follows.
  • the concentration of the product in the culture means 2 is analyzed.
  • the protein concentration can be analyzed as follows.
  • ELISA Enzyme-Linked Immuno Sorbent Assay
  • the ELISA method shows an antigen-antibody reaction with a protein to be measured and an antibody to which a fluorescent substance, an enzyme or the like is bound, and measures the fluorescence or enzyme activity of the antibody bound to the protein. Calculate the concentration.
  • ELISA methods include direct methods, indirect methods, sandwich methods, competitive methods, etc., and any method may be used.
  • the product production rate can be determined by measuring the change over time of the concentration of protein in culture and converting it to the amount produced per unit time and per unit number of cells.
  • Media components are analyzed to determine nutrient substrate consumption rates and by-product secretion rates. Specifically, the nutrient substrate concentration and by-product concentration in the culture means 2 are analyzed.
  • a nutrient substrate means what is required for the growth of a cell, or production of a product among culture medium components, for example, an inorganic component, a carbon source, vitamins, amino acids etc. are mentioned.
  • by-products are those produced as by-products in the process of cell growth and production of products, and examples include carbon dioxide, lactic acid, ammonia, pyruvic acid, citric acid and the like.
  • nutrient substrate concentration and by-product concentration for example, high performance liquid chromatograph (HPLC), liquid chromatograph mass spectrometer (LC / MS), liquid chromatograph-tandem mass spectrometer (LC / MS-MS), The components in the culture solution from which cells have been removed are measured using a gas chromatograph mass spectrometer (GC / MS), a gas chromatograph-tandem mass spectrometer (GC / MS-MS) or the like. All of these analysis methods can measure multiple components in the culture solution at one time. Nutrient substrate consumption rate and by-product secretion by measuring the time course of the culture medium component, specifically, nutrient substrate concentration and by-product concentration, respectively, and converting it into consumption amount and production amount per unit time The speed can be determined respectively.
  • FIG. 3 is an explanatory view showing the concept of a method of analyzing metabolic flux.
  • random metabolic flux values (metabolic reaction initial values (random numbers)) (R1 to R8 in FIG. 3) are given, and each intracellular state in steady state is based on the metabolic pathway model. Calculate the ratio of the number of isotope carbons contained in the metabolite. This calculated value is compared with the isotope carbon number ratio of intracellular metabolites measured in the experiment.
  • the value of isotope number carbon ratio in the metabolite by simulation is the isotope carbon number ratio in the metabolite by experiment Correct the metabolic flux value by simulation so that the mean square error with the value of is minimized. This correction can be performed, for example, by applying the QP (Quadratic Programming) subproblem method.
  • cell culture is performed in a liquid medium to which 13 C-labeled glucose is added. Then, cells are sampled from the culture vessel, the cells are fixed, and then intermediate metabolites necessary for analysis are extracted, 2% methoxyamine hydrochloride is added, and reaction is performed at 55 ° C. for 2 hours. After that, 45 ⁇ L each of MBTSTFA + 1% TBDMCS ((N-methyl-N- (tert-butyldimethylsilyl) trifluoroacetamide + 1% tertbutyldimetheylchlorosilane)) solution is added, reacted at 37 ° C. for 1 hour, and analyzed by GC / MS.
  • MBTSTFA + 1% TBDMCS ((N-methyl-N- (tert-butyldimethylsilyl) trifluoroacetamide + 1% tertbutyldimetheylchlorosilane)
  • a 30 m DB-35 MS capillary column can be used, and the analysis conditions include raising the column temperature from 100 ° C. to 300 ° C. with a gradient of 3.5 ° C./min. .
  • an inlet temperature is 270 degreeC and carrier gas analyzes with helium gas (flow volume of 1 mL / min).
  • Analytical subject 4 Cell growth rate
  • the number of cells in the culture means 2 is analyzed (measured). Measurement of the cell number can be performed by trypan blue staining and microscopic observation using a hemocytometer. In addition, the measurement of the number of cells can also be performed using other methods such as dry cell weight method, turbidity method, capacitance method, nicotinamide adenine dinucleotide (NAD) measurement, flow cytometry method and the like.
  • NAD nicotinamide adenine dinucleotide
  • the specific growth rate can be determined using Equation 3.
  • the culture solution growing logarithmically is sampled over time, and more data are The specific growth rate may be estimated.
  • the culture time is plotted on a scatter plot with the abscissa representing the logarithmic value of the number of living cells as the ordinate, and the slope thereof calculated by the least squares method. If this graph can not be obtained as a straight line, it means that the cells of interest are not growing exponentially, and that some restriction factor is present during the culture period.
  • FIG. 4 is an explanatory drawing showing the concept of the cell cycle of eukaryotic cells.
  • the cell cycle is a period necessary for one cell to divide into two cells, and as shown in FIG. 4, cell division (mitotic phase, M phase) and other cell divisions It consists of interphases (interphases).
  • the interphase consists of G1, S and G2.
  • Eukaryotic cells proliferate by repeating the cell cycle. In typical animal cells, the time taken for one cell cycle is 16 to 24 hours, M phase is 1 hour, G2 phase is 2 to 6 hours, and S phase is 6 to 8 hours.
  • the G1 phase differs depending on the type of cell line and continuous culture conditions.
  • the time ratio of the M period, the G1 period, the S period, and the G2 period is approximately 1: 5: 7: 3.
  • the cell cycle may leave the cell cycle and become quiescent. This is called G0 period.
  • the length and content ratio of the G0 phase are indefinite. Therefore, when cells in the G0 phase are included, the time ratio of the M phase, the G1 phase (and the G0 phase), the S phase, and the G2 phase is indefinite.
  • PI fluorescent staining is a fluorescent staining method using PI (Propidium iodide: Propidium Iodide), and is a method often used when measuring the cell cycle.
  • FIG. 5 is a conceptual diagram showing the results of fluorescently labeling live cell DNA by PI fluorescent staining and optically detecting it.
  • the vertical axis in FIG. 5 represents the number of cells, and the horizontal axis represents PI fluorescence intensity ( ⁇ DNA amount). The cell number increases as the vertical axis moves upward, and the PI fluorescence intensity increases as the horizontal axis moves to the right.
  • Curve C11 in FIG. 5 shows cells in the G0 and G1 phases. Relatively low intensity fluorescence is detected from G0 and G1 cells.
  • Curve C12 shows cells in S phase. A wide range of intensities of fluorescence are detected from S phase cells.
  • Curve C13 shows cells in G2 and M phases. Relatively high intensity fluorescence is detected from G2 and M phase cells.
  • Three curves C11, C12, and C13 of FIG. 5 are frequency distribution curves. Therefore, by integrating this curve over a given range, the number of cells in that range can be determined. That is, the area under the curves represents the cell number, and the area ratio represents the cell number ratio. For example, by measuring the area under curve C13, the number of cells in G2 and M phases can be obtained. Further, by comparing the area under the curve C13 with the area under the other curves, the ratio of the number of cells in the G2 and M phases to the number of cells in the other phases can be determined. Cell growth rate measurement needs to wait for cell growth, which takes several days, whereas cell cycle measurement can be analyzed in about one hour. Therefore, when measuring the cell cycle, the time for screening can be shortened. The number of cells can also be estimated from the cell cycle. The estimation of the number of cells from the cell cycle is performed as follows.
  • the area under the curves represents the cell number
  • the area ratio represents the cell number ratio. For example, by measuring the area under curve C13, the number of cells in G2 and M phases can be obtained. Further, by comparing the area under the curve C13 with the area under the other curves, the ratio of the number of cells in the G2 and M phases to the number of cells in the other phases can be determined.
  • FIG. 6 is a graph showing the growth curve of cells according to this experiment.
  • the vertical axis in FIG. 6 is the cell number density, and the unit is ⁇ 10 6 cells / mL.
  • the horizontal axis is culture time (days). As shown in FIG. 6, the cell number density also increased with the passage of culture time.
  • FIG. 7 is a graph which shows the measurement result of the cell cycle by the flow cytometer on the 2nd day of culture
  • the vertical axis in FIG. 7 indicates the number of cells, and the horizontal axis indicates PI fluorescence intensity ( ⁇ DNA amount).
  • the broken line indicates the number of cells on the second day of culture, and the solid line indicates the number of cells on the fourth day of culture.
  • FIG. 8 is a graph showing an estimated value of the number of proliferating cells estimated from the cell cycle described above and an actual value of the number of proliferating cells obtained by actual counting. It was confirmed that on the second day of culture and the fourth day of culture, the above-mentioned estimated value and the number of proliferating cells obtained by counting actually become equivalent values. That is, it was confirmed that the number of proliferating cells can be estimated from the cell cycle. That is, it was confirmed that the specific growth rate (cell growth rate) can be obtained by applying the above-described estimated value to the above-described equation 8.
  • the analysis control means 8 is a general-purpose computer or a personal computer provided with a storage medium such as a CPU or a hard disk drive.
  • the analysis control means 8 can make the analysis control means 8 (computer) function as a predetermined means by storing a predetermined program in the storage medium and reading it out. Examples of the predetermined means include the judging means 4, the analyzing means 5, the selecting means 6 and the selecting means 7. These means will be described later.
  • the analysis control means 8 controls the number of rotations of the stirring blade 24, the temperature of the water jacket 27, and the like. Further, the analysis control means 8 adjusts the pressure of the pumps P1 to P3 appropriately based on the above information to add a fresh medium to the culture means 2 from the medium addition means 21 or the cell separation means 22 from the culture means 2
  • the culture solution is sent from the cell separation means 22 to the collection means 23 (the culture solution from which the cultured cells are separated by the cell separation means 22) containing the product, waste products and the like.
  • the analysis control unit 8 functions as the determination unit 4 to determine from the analysis value obtained by the analysis unit 3 whether the culture state of the cell is in the steady state.
  • the above-mentioned steady-state discriminant index may be any one or a combination of nutrient substrate consumption rate of cells, secretion rate of by-products of cells, metabolic flux of cells, and cell respiration rate of cells. Are preferred. These indicators can be selected, for example, from specific nutrient components such as glucose and glutamine, specific metabolic secretions such as lactic acid and ammonia, and specific intracellular metabolites such as pyruvate and citric acid by the sensor and analysis means 3 described above. it can be grasped by appropriately measuring DO and DCO 2 in the culture unit 2. By using these discrimination indexes, it can be easily and accurately discriminated whether the cell is in a steady state.
  • the discrimination means 4 that is, after the product production stage, the ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) It is preferable to analyze the total period of the G0 phase and the G1 phase of the cell cycle, or the pathway of the metabolic flux. In this way, continuous culture conditions suitable for producing a product can be selected.
  • the analysis control means 8 functions as the analysis means 5 to analyze the cell proliferation rate, cell cycle, and the like from the analysis value which is analyzed and transmitted by the analysis means 3 when the culture state of the cell is in the steady state. And at least one analysis of metabolic flux. Performing these analyzes on cells in a steady state culture state makes it possible to select preferable continuous culture conditions in the product production phase.
  • the analysis control means 8 functions as the selection means 6 to select optimum continuous culture conditions based on the analysis result of at least one of cell growth rate, cell cycle, and metabolic flux. As described above, since the optimal continuous culture conditions are selected based on the analysis results for the plurality of cell lines set in the screening apparatus 1 and the continuous culture conditions related thereto, there is little cell proliferation after reaching the steady state. It becomes possible to obtain continuous culture conditions suitable for continuous culture cell lines in which the product production rate is high relative to the cell growth rate.
  • an index that ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) ⁇ is maximized in the selection means 6, and that the total period of the G0 phase and the G1 phase of the cell cycle is the longest. It is preferable to determine the medium composition based on the indicator and at least one indicator selected from the indicators that the pathway in the metabolic flux is least. As described above, since it is necessary to examine the candidate cell line and the continuous culture conditions suitable for the cell line as a set, the optimum continuous culture conditions can be selected by performing such a determination. The medium composition is determined from among the continuous culture conditions set in the culture means 2 described above.
  • to determine the cell metabolic pathway means to determine a group of metabolic fluxes suitable for various metabolic pathways included in the cell metabolic pathway. In this way, it is possible to screen cells in which the metabolic system is dominant in the production of the product relative to the metabolic system in relation to cell proliferation, so continuous culture conditions with less variation in quality and capable of producing the product with high productivity You can get
  • the cell growth rate shown in the above-mentioned formula 2 is a value obtained by measuring the cell cycle as an index. In this way, cell lines with less cell proliferation after reaching steady state can be selected more reliably. Moreover, since measurement of the cell cycle can be analyzed in about one hour, the time for screening can be shortened. In order to obtain the cell growth rate from the cell cycle, it is preferable to use the equation 8 as described above.
  • the analysis control means 8 functions as the sorting means 7 to evaluate the cell growth rate or cell cycle of the cells cultured under the optimum continuous culture conditions and the product production rate thereof, thereby performing continuous culture.
  • Select for cell lines Specifically, an index that ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) ⁇ is maximum, an index that the total period of the G0 phase and the G1 phase of the cell cycle is the longest, and the metabolic flux Cell lines for continuous culture are selected based on at least one indicator selected from the indicators that the pathway is least.
  • a plurality of cell lines set in the screening apparatus 1 and continuous culture conditions related thereto are evaluated based on these analysis results, there is little cell proliferation after reaching a steady state, and cell proliferation rate Cell lines with high product production rates can be selected.
  • an index that ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) ⁇ obtained for cell lines of a plurality of screened lines is maximized, G0 of the cell cycle
  • the cell line for continuous culture is selected based on at least one indicator selected from the indicator that the total period of the phase and the G1 phase is the longest and the indicator that the pathway in the metabolic flux is the least.
  • the cell line may be an adhesion cell line or a suspension cell line. In this way, it is possible to select cell lines (eg, suspension cell lines) in which the cell production rate after steady state is reached is low and the product production rate is high relative to the cell proliferation rate.
  • a cell line having a slow (cell growth rate) shown in the above-mentioned Formula 2 in the selecting means 7.
  • impurities due to the decomposition of surplus cells mutations due to an increase in the number of cell divisions, nutrient components and oxygenation of the medium for cell proliferation, waste products, carbon dioxide etc.can be suppressed.
  • ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) ⁇ tends to be large, which is preferable.
  • FIG. 9 is a flowchart illustrating the contents of the screening method.
  • the same components as those of the screening apparatus 1 are denoted by the same reference numerals, and the detailed description thereof is omitted.
  • the screening method according to the present embodiment is a method of screening continuous culture conditions when culturing cells in a continuous culture apparatus (not shown) used for actual production.
  • This screening method is, as shown in FIG. 9, performing the culture step S1, the analysis step S2, the discrimination step S3, and the analysis step S4 under a plurality of cultured cells and continuous culture conditions, and the selection step S5 and the sorting step S6 are included. It is preferable to perform culture
  • the culturing step S1 is a step of culturing cells by setting continuous culture conditions when culturing cells in a continuous culture apparatus (not shown). This culture step S1 is performed by the culture means 2 described above.
  • the analysis step S2 is a step of sampling the culture solution cultured in the culture step S1 and analyzing the concentration of the product and the medium components to obtain an analysis value.
  • the analysis step S2 is performed by the analysis means 3 described above.
  • Discrimination process S3 is a process of discriminating whether or not the culture state of the cells is in a steady state from the above-mentioned analysis value.
  • the discrimination step S3 is performed by the discrimination means 4 described above.
  • the analysis step S4 is a step of performing analysis of at least one of a product production rate, a cell growth rate, a cell cycle, and a metabolic flux from the analysis value when the culture state is a steady state.
  • the analysis step S4 is performed by the analysis means 5 described above.
  • the selection step S5 is a step of selecting optimal continuous culture conditions based on the analysis result of at least one of the cell growth rate, the cell cycle, and the metabolic flux.
  • the selection step S5 is performed by the selection means 6 described above.
  • the sorting step S6 evaluates the cells cultured under the above-mentioned optimal continuous culture conditions and measures that ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) ⁇ becomes maximum, G0 phase of the cell cycle and G1. It is a step of selecting a cell line for continuous culture based on at least one indicator selected from the indicator that the total period of the phase is the longest and the indicator that the pathway in the metabolic flux is the least. This sorting step S6 is performed by the sorting means 7 described above.
  • FIG. 10 is a flowchart for explaining an example of the detailed procedure of the screening method.
  • the sequential culture conditions temperature, dissolved oxygen concentration, medium composition, control values such as stirring number of rotations
  • the order of performing the culture test are set (culture conditions) Setting, step S11).
  • the first continuous culture conditions are set in the screening apparatus 1 (culture condition setting, step S11), and culture is started (step S12).
  • sampling of the cell culture solution is performed on a regular basis (step S13).
  • steps S11 and 12 are performed in the culture step S1, and step S13 is performed in the analysis step S2.
  • the product concentration and media components are then analyzed. Specifically, at least one analysis of product production rate, cell growth rate, cell cycle, metabolic flux, nutrient substrate consumption rate, by-product secretion rate, etc. reflecting the state of cells is performed (such as product production rate Analysis, step S14). This step S14 is also performed in the analysis step S2.
  • the analysis value in step S14 is regarded as a steady state when there is no change with time and the like and the value becomes substantially constant ("steady" in step S15).
  • steady if the values of product production rate, nutrient substrate consumption rate, by-product secretion rate, intracellular metabolic flux, etc. have changed over time as compared to the previous sampling, it is judged that the steady state has not been reached ( "Non-stationary" in step S15).
  • the consumption amount of nutrient substrate, the amount of by-product secretion, and the like change as the number of cells increases in the logarithmic growth phase.
  • step S16 when it becomes steady after past the logarithmic growth phase, nutrient substrate consumption and by-product secretion etc. are obtained by addition of fresh liquid medium from the medium addition means 21 and recovery of waste products by the cell separation means 22. It becomes almost constant, and the analysis value does not change much with time. Then, the non-stationary period is analyzed (step S16), and when the period exceeds the predetermined value, for example, when the steady state can not be obtained even after the set sampling frequency (or culture time) has passed (step S16) In step S16, "> set value”) displays an alert. In this case, the culture may be stopped manually or automatically, or may be shifted to the next continuous culture condition planned manually or automatically (in this case, although not shown, the process returns to step S11).
  • step S16 the non-stationary period is analyzed (step S16), and when the period is equal to or less than the predetermined value (" ⁇ predetermined value" in step S16), the process returns to step S12 to continue the culture.
  • steps S15 and S16 are performed in the determination step S3.
  • step S17 when in the steady state ("steady" in step S15), the product production rate, cell growth rate, cell cycle, metabolic flux and the like are analyzed (step S17). This step S17 is performed in the analysis step S4.
  • step S18 the experiment conditions are selected. At this time, when the plan is not completed and the next continuous culture condition is planned ("Plan not completed” in step S18), the setting of the continuous culture condition is changed, and a series of procedures from step S11 are performed again. I do. On the other hand, after recording the analysis result, if the plan is completed, the culture is ended ("plan completed" in step S18). This step S18 is also performed in the analysis step S4.
  • an indicator that cells cultured under optimal continuous culture conditions are evaluated to maximize ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) ⁇ , G0 and G1 phases of the cell cycle
  • FIG. 11 is a flowchart for explaining another example of the detailed procedure of the screening method.
  • step S17 after sampling of the cell culture solution (step S13), analysis of the product production rate, cell growth rate, cell cycle, metabolic flux and the like is performed (step S17). Then, after this step S17, the concentration of the product and the medium component are analyzed, and specifically, the product generation rate reflecting the condition of the cell, the nutrient substrate consumption rate, the by-product secretion rate, the intracellular metabolic flux Etc. is performing any one or more analysis (step S14). That is, another example shown in FIG. 11 is different from the example shown in FIG. 10 in that step S17 is performed between step S13 and step S14. In this way, since it is possible to analyze the product production rate during the non-stationary period, the cell growth rate, etc., it is possible to grasp the cell state under continuous culture conditions during the non-stationary period.
  • FIG. 12 is also a flowchart for explaining another example of the detailed procedure of the screening method.
  • step S17 is performed in the same manner as the example shown in FIG. 10, and the product production rate, cell growth rate, cell cycle, metabolic flux and the like are analyzed. Then, thereafter, an index that ⁇ (product production rate) / (cell growth rate) ⁇ is maximum, an index that the total period of the G0 phase and the G1 phase of the cell cycle is the longest, and the metabolic flux Selection of continuous culture conditions and selection of a cell line for continuous culture are performed based on at least one of the indicators selected from the indicators that the pathway is the least (Step S19).
  • step S20 it is determined whether or not the selected continuous culture conditions and the selected cell line for continuous culture have achieved the specification of the target conditions.
  • the setting of continuous culture conditions is changed, and a series of procedures are performed again from step S11.
  • the screening is ended without executing all the planned experiments designed in advance. That is, the other example shown in FIG. 12 is different from the example shown in FIG. 10 in that step S18 (see FIGS. 10 and 11) for selecting the experimental conditions is omitted. In this way, as soon as the specification of the target conditions is achieved, the screening is finished, so time and cost can be reduced.
  • the screening method for continuous culture conditions and the screening apparatus for continuous culture conditions according to the present embodiment described above it is possible to select cell lines with less unnecessary cell growth in continuous culture. As a result, it is possible to reduce the increase in impurities due to the decomposition of surplus cells, the mutation due to the increase in the number of cell decomposition, the nutrient components of the culture medium more than necessary for cell growth, oxygen supply, waste products, carbon dioxide removal.
  • the screening method for continuous culture conditions and the screening apparatus for continuous culture conditions according to the present embodiment are not only cell cycle control, but also for cells in which the metabolic system related to the production of a product is superior to the metabolic system related to cell proliferation. Screening is possible. Therefore, by using the cell line selected by the screening method according to the present embodiment and the screening apparatus under continuous culture conditions, the target substance can be obtained with high variation with little variation in quality.

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Abstract

定常状態に達した後の細胞増殖が少なく、細胞増殖速度に対して生産物生成速度が高い連続培養用細胞株とこれに適した連続培養条件を選別することができる連続培養条件のスクリーニング方法および装置を提供する。本発明に係るスクリーニング方法および装置は、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用浮遊系細胞株を選別する。

Description

連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置
　本発明は、連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置に関する。
　抗体医薬などのバイオ医薬品は、医薬品タンパクを産生する細胞を培養し、細胞から分泌された医薬品タンパクを精製することで製造される。医薬品タンパク製造用の細胞株の構築では、一般的に、対象となる医薬品タンパクをコードする遺伝子を細胞に導入し、増やして集めた細胞プールから、培養上清中に高効率で医薬品を放出する高効率産生細胞を選別している。
　医薬品タンパクを製造する細胞の培養方法は、回分培養、流加培養（もしくは半回分培養）、連続培養（もしくは灌流培養）に分類される。
　回分培養は、一回ごとに新たな培地を用意し、そこへ細胞株を植えて収穫まで培地を加えない培養法である。回分培養には、培養ごとに品質はバラつくが、コンタミネーションのリスクを分散・低減できるという特徴がある。
　流加培養は、培養中に、培地自体や培地中の特定の成分を添加し、培養終了時までその生産物を抜き取らない培養方法である。
　連続培養は、連続的に培養系に培地を供給すると同時に同量の培養液を抜き取る培養法である。連続培養には、培養環境を常に一定に保ちやすく、生産性が安定するという特徴がある。
　培養に用いられる細胞株のスクリーニング（選抜・選別）は、実生産に用いられるそれぞれの培養法に合わせ、かつ実生産での培養装置をスケールダウンした培養スクリーニング装置を用いて行うことが望ましい。一般的に、細胞株のスクリーニングは、クローンライブラリーごとに培養試験を行い、それぞれの株の生育率と、目的生産物の産生能力とをあわせたトータルの生産性で評価し、決定される。
　培養に用いられる細胞（細胞株）として、例えば、接着系培養細胞であるチャイニーズハムスター卵巣細胞がある。そして、このチャイニーズハムスター卵巣細胞を用いた培養法が、例えば、特許文献１に記載されている。
　具体的に、この特許文献１には、タンパク質の製造のためのチャイニーズハムスター卵巣細胞において、その増殖相と製造相とが互いに分離されていることを特徴とする旨が記載されている。また、この特許文献１には、前記細胞が担体表面を集密的に覆った後に遺伝物質の導入を実施する旨や、前記細胞は、特定の生産物の最大の分泌がＧ１相（Ｇ１期）に行われる点で優れている旨記載されている。さらに、この特許文献１には、細胞を多孔質の担体材料上に細胞周期のＧ１期で固定化することによってトラップした後に遺伝物質の導入を実施することが重要である旨記載されている。
　一方、培養に用いられる細胞（細胞株）として、接着系培養細胞とは別に、浮遊系培養細胞も知られている。浮遊系培養細胞は、前記したような担体材料上に接着しないので、細胞を固定化させることによる細胞周期の制御はできない。浮遊系培養細胞を用いた培養系では、細胞培養を行って細胞を増殖させつつ特定の生産物の生成が行われる。そのため、浮遊系培養細胞を用いた培養系では一般的に、培養中に細胞を含む培養液をサンプリングし、生育率として細胞数および生存率の経時変化を測定し、生産物の生成能力として生産物の濃度の経時変化を測定している。そして、それぞれ細胞増殖速度、生産物生成速度に換算して指標とすることで細胞株の評価を行っている。
　このような状況下、現在、接着系培養細胞および浮遊系培養細胞について、回分培養および流加培養に対応したスクリーニング用培養装置が各種開発され、広く使用されている。また、回分培養および流加培養では、細胞数密度の低い状態から高い状態まで細胞数を増殖させる。生産物生成速度が同じであれば、細胞増殖速度が速いほど生産性を示す式１の値が大きくなるので、生産物生成速度および細胞増殖速度ともに高い細胞株が好まれる。そのため、回分培養および流加培養では、細胞増殖速度および生産物生成速度の指標を用いた式１の生産性が最大となる細胞株を選別している。
 
（生産性）＝∫（生産物生成速度）×（細胞数）ｄｔ　　　・・・式１
 
特表２００２－５２７０５７号公報
　回分培養および流加培養は、細胞を増殖させながら一定の細胞密度に到達後、生産物を回収する。そのため、細胞株と培養条件のスクリーニングは上記培養期間内で行うことができる。一方、連続培養は、細胞増殖期が終わってから、細胞の状態および生産物の生成が定常状態となり（生産物生成期となり）、その後、生産物回収期が来る。従って、回分培養および流加培養と比較して、生産性のよい連続培養用細胞株と連続培養条件のスクリーニングに長期間を要していた。そのため、連続培養に好適に用いられる細胞株、すなわち、定常状態に達した後の細胞増殖が少なく、細胞増殖速度に対して生産物生成速度が高い細胞株のスクリーニング（最適化した細胞株の選別）は、事実上、困難であった。従って、連続培養の検討においては、前記細胞株の選別とこれに適した連続培養条件を選別する最適化は試みられていなかった。
　なお、連続培養において定常状態に達した後の細胞増殖には、余剰細胞の分解によって不純物が増加するだけでなく、細胞分裂回数増加によって変異が発生する可能性があるという問題がある。また、細胞増殖のために必要以上の培地栄養成分と酸素供給が要求される一方で、老廃物と二酸化炭素を除去する必要があるという問題がある。
　本発明は前記状況に鑑みてなされたものであり、定常状態に達した後の細胞増殖が少なく、細胞増殖速度に対して生産物生成速度が高い連続培養用細胞株とこれに適した連続培養条件を選別することができる連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置を提供することを課題とする。
　前記課題を解決するため本発明者等が鋭意検討した結果、生産物生成速度が最大で、かつ不要な細胞増殖を行わない性質を持つ連続培養用細胞株およびこれに適した連続培養条件を選別することで、連続培養による目的物質の生産において生産性が高く、かつ品質が安定している生産物を得ることができることを見出した。すなわち、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が大きいことや、細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いこと、代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないことなどをスクリーニング時の指標とすることで、連続培養による目的物質の生産において生産性が高く、かつ品質が安定している生産物を得ることができることを見出した。また、スクリーニングの際、定常状態となった後に上記指標を測定することで、製造で行われる培養でも同様の状態を再現させることが可能であることを見出した。本発明はこれらの知見を見出すことにより完成するに至ったものである。
　本発明に係る前記課題は以下の手段により解決される。
　本発明に係る連続培養条件のスクリーニング方法は、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用浮遊系細胞株を選別する。
　また、本発明に係る連続培養条件のスクリーニング方法は、実生産に用いられる連続培養装置内で細胞培養するときの連続培養条件をスクリーニングする方法であり、前記連続培養条件を設定して細胞を培養する培養工程と、前記培養工程で培養している培養液をサンプリングし、生産物の濃度と培地成分を分析して分析値を得る分析工程と、前記分析値から細胞の培養状態が定常状態であるか否かを判別する判別工程と、前記培養状態が定常状態であるときに、前記分析値から生産物生成速度、細胞増殖速度、細胞周期、および代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析を行う解析工程と、を複数の培養細胞および連続培養条件で実施し、前記細胞増殖速度、前記細胞周期、および前記代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析結果に基づいて最適な連続培養条件を選定する選定工程と、前記最適な連続培養条件で培養された細胞を評価して、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用細胞株を選別する選別工程と、を含む。
　本発明に係る連続培養条件のスクリーニング装置は、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用浮遊系細胞株を選別する。
　本発明に係る連続培養条件のスクリーニング装置は、実生産に用いられる連続培養装置内で細胞培養するときの連続培養条件をスクリーニングする装置であり、前記連続培養条件を設定して細胞を培養する培養手段と、前記培養手段で培養している培養液をサンプリングし、生産物の濃度と培地成分を分析して分析値を得る分析手段と、前記分析値から細胞の培養状態が定常状態であるか否かを判別する判別手段と、前記培養状態が定常状態であるときに、前記分析値から生産物生成速度、細胞増殖速度、細胞周期、および代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析を行う解析手段と、前記細胞増殖速度、前記細胞周期、および前記代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析結果に基づいて最適な連続培養条件を選定する選定手段と、前記最適な連続培養条件で培養された細胞を評価して、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用細胞株を選別する選別手段と、を含む。
　本発明によれば、定常状態に達した後の細胞増殖が少なく、細胞増殖速度に対して生産物生成速度が高い連続培養用細胞株とこれに適した連続培養条件を選別することができる連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置を提供することができる。
本実施形態に係る連続培養条件のスクリーニング装置の一例を示す概略図である。 培養手段を複数系統備えたスクリーニング装置を示す概略図である。 代謝フラックスの分析方法の概念を示す説明図である。 真核細胞の細胞周期の概念を示す説明図である。 生細胞のＤＮＡをＰＩ蛍光染色法で蛍光標識し、それを光学的に検出した結果を示す概念図である。 本実験による細胞の増殖曲線を示すグラフである。 培養２日目および培養４日目のフローサイトメータによる細胞周期の測定結果を示すグラフである。 細胞周期から推定した増殖細胞数の推定値と、実際に計数して求めた増殖細胞数の実測値を示すグラフである。 本実施形態に係る連続培養条件のスクリーニング方法の内容を説明するフローチャートである。 本実施形態に係る連続培養条件のスクリーニング方法の詳細な手順の一例を説明するフローチャートである。 本実施形態に係る連続培養条件のスクリーニング方法の詳細な手順の他の一例を説明するフローチャートである。 本実施形態に係る連続培養条件のスクリーニング方法の詳細な手順の他の一例を説明するフローチャートである。
　以下、適宜図面を参照して本発明に係る連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置の一実施形態について詳細に説明する。以下の説明では、まず、連続培養で必要とされる細胞株の特性について説明し、次いで、連続培養条件のスクリーニング装置の実施形態について説明した後、連続培養条件のスクリーニング方法の実施形態について説明する。
［連続培養で必要とされる細胞株の特性］
　前述したように、回分培養および流加培養では、細胞数密度の低い状態から高い状態まで細胞数を増殖させるので、生産物生成速度が同じであれば、細胞増殖速度が速いほど生産性を示す前記式１の値が大きくなる。そのため、回分培養および流加培養では、生産物生成速度および細胞増殖速度ともに高い細胞株が好まれる。
　連続培養は、添加培地槽から連続的に細胞培養槽に新鮮な培地を供給すると同時に、添加した新鮮な培地と同じ量の培養液を細胞分離装置から抜き取る培養法である点で、回分培養や流加培養と異なっている。細胞分離装置では、細胞と、老廃物および目的とする生産物と、が分離される。分離された細胞は細胞培養槽に戻され、生産物および老廃物などは培養液回収槽に回収される。そして、回収された生産物は精製装置で精製された後、製品となる。
　目的とする生産物の品質は、培養槽内の栄養成分の濃度や細胞から分泌される老廃物の濃度に依存するため、連続培養における生産物生成期から生産物回収期にかけては、細胞数密度が一定であることが望ましい。つまり、連続培養における生産物生成期から生産物回収期にかけては、回分培養および流加培養と違って、細胞の増殖速度が小さいことが望ましい。その一方で当然のことながら、連続培養における生産物生成期から生産物回収期にかけては、生産性を高める観点から目的とする生産物の生成速度が高いことが望ましい。
　そこで、連続培養用の細胞株を選別するための指標として、後記する式２を新たに定義した。スクリーニングした中で本指標Ｉが、細胞が集密的になって生産物生成期を迎えた後に最大となる細胞株を選別することで、従来と比較して連続培養における生産性が高く、かつ生産物の品質を安定させることができる。つまり、この指標Ｉによって、定常状態に達した後の細胞増殖が少なく、細胞増殖速度に対して生産物生成速度が高い連続培養用細胞株とこれに適した連続培養条件を選別できる。この指標Ｉは、接着系培養細胞を用いた連続培養系および浮遊系培養細胞を用いた連続培養系のいずれにおいても好適に適用できる。なお、この指標Ｉは、例えば、好ましくない副生産物を最小化するための連続培養条件や育種条件の選別に用いることもできる。この場合、「生産物生成速度」を「副生産物生成速度」に置き換え、指標Ｉが小さくなるように連続培養条件や育種条件を選別する。
 
Ｉ＝（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）　　　・・・式２
 
　また、連続培養用の細胞株を選別するための指標として、細胞周期が挙げられる。具体的には、細胞が集密的になって生産物生成期を迎えた後の細胞周期において、細胞分裂を行わないＧ０期およびＧ１期の合計期間が長いことが挙げられる。細胞が集密的になって生産物生成期を迎えた後の当該合計期間が長いほど、生産物は生成するが、細胞増殖は行わないという状態を長く維持できることになる。つまり、この指標によっても、定常状態に達した後の細胞増殖が少なく、細胞増殖速度に対して生産物生成速度が高い連続培養用細胞株とこれに適した連続培養条件を選別できる。
　さらに、連続培養用の細胞株を選別するための指標として、代謝フラックスが挙げられる。具体的には、細胞が集密的になって生産物生成期を迎えた後の代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないことが挙げられる。細胞が集密的になって生産物生成期を迎えた後の代謝フラックスにおけるパスウェイが少ないほど、副生成物の生成量が少なくなる。そのため、生産物の生成が、副生成物による抑制等を受け難くなり、生産物生成速度が向上したり、生産物の生成量が多くなったりする（生産性が高くなる）。また、生産物の品質も安定する。つまり、この指標によっても、定常状態に達した後の細胞増殖が少なく、細胞増殖速度に対して生産物生成速度が高い連続培養用細胞株とこれに適した連続培養条件を選別できる。
［連続培養条件のスクリーニング装置］
　図１は、本実施形態に係る連続培養条件のスクリーニング装置の一例を示す概略図である。
　本実施形態に係る連続培養条件のスクリーニング装置（以下、単に「スクリーニング装置」ということがある）は、実生産に用いられる連続培養装置（図示せず）内で細胞培養するときの連続培養条件をスクリーニングする装置である。
　図１に示すように、本実施形態に係るスクリーニング装置１は、培養手段２と、分析手段３と、判別手段４と、解析手段５と、選定手段６と、選別手段７とを含んでいる。
＜培養手段＞
　本実施形態における培養手段２は、実生産に用いられる連続培養装置（図示せず）内で細胞を培養するときの連続培養条件を設定して（模擬して）、細胞培養を行う槽である。設定される連続培養条件としては、例えば、温度、溶存酸素濃度、培地組成、攪拌回転数などが挙げられる。培養手段２では、スクリーニングされる細胞株も設定（選定）される。培養手段２は、細胞培養に必要な設備として当該培養手段２に付随して、培地添加手段２１、細胞分離手段２２および回収手段２３を有している。
　培地添加手段２１から培養手段２へは配管Ｔ１で、培養手段２から細胞分離手段２２へは配管Ｔ２で、細胞分離手段２２から回収手段２３へは配管Ｔ３で、細胞分離手段２２から培養手段２へは配管Ｔ４でそれぞれ接続されている。また、これらの配管のうち、配管Ｔ１、Ｔ２、Ｔ３の任意の箇所にポンプＰ１～Ｐ３が設置されている。
　ここで、前記した図示しない実生産に用いられる連続培養装置も、培地添加手段、培養手段、細胞分離手段および回収手段を有して構成されている。当該連続培養装置におけるこれらの構成要素は、スクリーニング装置１の培地添加手段２１、培養手段２、細胞分離手段２２および回収手段２３にそれぞれ相当し、同様の構成とすることができる。
　培養手段２には、細胞を攪拌するための攪拌翼２４および攪拌動力２５が設けられている。また、培養手段２は、液中通気のための散気管２６と、温度調整のためのウォータージャケット２７と、ｐＨ、溶存酸素（ＤＯ）、溶存二酸化炭素（ＤＣＯ２）、温度などの培養環境をモニタリングするための各種センサ（図示せず）と、を備えている。なお、センサは計測対象ごとに個別に備えられている。
　また、図示はしないが、培養手段２は、ｐＨ、ＤＯを所定の設定範囲に制御するためにアルカリ溶液添加用の配管や炭酸ガス、空気、純酸素、窒素などの（液面、液中）通気配管を備えている。また、同じく図示はしないが、培養手段２は、前記したセンサで得られた値に基づいて前記培養環境を所定の設定範囲に維持するためにアルカリ添加やガス通気を制御するための装置も備えている。
　ここで、図２は、培養手段２を複数系統備えたスクリーニング装置１Ａを示す概略図である。
　図１は、培養手段２を１つだけ備えた１系統のスクリーニング装置１を図示している。一般的に、遺伝子組換えを行った細胞は複数の候補細胞株（細胞株プール）として保存される。従って、スクリーニングの効率を向上させるため、図２に示すように、培養手段２を複数系統備えたスクリーニング装置１Ａとするのが望ましい。
　図２に示すスクリーニング装置１Ａは、例えば、容量が１００ｍＬである培養手段２（具体的には細胞培養槽）を８つ備えており、それぞれ培養手段２ａ～２ｈとしている。なお、図２において図示はしないが、スクリーニング装置１Ａは、スクリーニング装置１と同様、それぞれの培養手段２ａ～２ｈに付随して、培地添加手段２１、細胞分離手段２２および回収手段２３を有している。
　また、培養手段２ａ～２ｈは、いずれも図１に示す培養手段２の構成を有している。従って、培養手段２ａ～２ｈはそれぞれが培養制御パラメータとして、攪拌回転数、温度、ｐＨ、ＤＯ、ＤＣＯ２などが挙げられ、これらを測定して制御することが可能である。また、培養手段２ａ～２ｈはそれぞれが培養制御パラメータとして、培養手段２から細胞分離手段２２を経由して培養手段２に戻る循環速度、細胞分離手段２２から回収手段２３に送液する送液速度、培地添加手段２１から培養手段２内に新鮮な培地を添加する添加速度および培地組成が挙げられ、これらを測定して制御することが可能である。
　培養手段２ａ～２ｈは、これらの培養制御パラメータを連続培養条件のスクリーニング対象とすることができる。生産性の高い細胞株を選別するには、候補細胞株とその細胞株に適した連続培養条件とをセットで検討する必要がある。そのため、本実施形態においては、培養手段２ａ～２ｈは、１つの系統で１つの候補細胞株を種々の条件で培養することが望ましい。この点、図２に示すスクリーニング装置１Ａは、培養手段２ａ～２ｈのうちの１つの培養手段で１つの系統の細胞株を培養できるだけでなく、前記１つの系統の細胞株の連続培養条件の設定値を変えて種々の連続培養条件における細胞増殖速度や生産物生成速度などを計測できる。
＜培地添加手段＞
　培地添加手段２１は、培養手段２内において細胞が消費した液体培地中の栄養成分を補うため、新鮮な液体培地を一時的に貯留しておく槽である。培地添加手段２１は、新鮮な液体培地を一時的に貯留しておくことができる槽であればどのようなものも用いることができる。培地添加手段２１は、培養手段２に添加する新鮮な培地を貯留できればよく、槽の数は特に限定されない。培地添加手段２１における槽の数は１つでもよいし、複数でもよい。培地添加手段２１は、ポンプＰ１の出力とバルブＶの開閉・開度によって新鮮な液体培地の添加速度を調節することができる。なお、新鮮な液体培地は、培養しようとする細胞に応じて適宜に選択・調製することができる。
＜細胞分離手段＞
　細胞分離手段２２は、培養手段２の培養液から培養細胞と、生産物および老廃物と、を分離する装置である。細胞分離手段２２は、配管Ｔ４を通じて培養細胞を培養手段２に戻し、配管Ｔ３を通じて生産物および老廃物を回収手段２３へ移送する。細胞分離手段２２としては、例えば、重力沈降法、遠心分離法、超音波凝集法、ろ過分離法などが挙げられ、本実施形態ではいずれの手法を用いてもよい。なお、生産物としては、例えば、抗体タンパクや各種の生理活性物質などが挙げられ、老廃物としては、例えば、乳酸やアンモニアなどが挙げられる。
＜回収手段＞
　回収手段２３は、前記したように、細胞分離手段２２で分離された生産物および老廃物を一時的に貯留しておく槽である。回収手段２３は、生産物および老廃物を一時的に貯留しておくことができる槽であればどのようなものも用いることができる。
＜分析手段＞
　スクリーニング装置１では、例えば、細胞の細胞増殖期（対数増殖期）中や、細胞増殖期が過ぎて生産物生成期に入った後（定常状態に達した後）など、適宜のタイミングで培養手段２から培養液をサンプリングし、分析手段３で生産物の濃度と培地成分を分析して、細胞の状態を分析する。具体的には、分析した細胞の状態を反映する生産物生成速度、細胞増殖速度、細胞周期、細胞内の代謝の流れ（代謝フラックス）、栄養基質消費速度、老廃物などの副生成物分泌速度などを少なくとも１つ分析する。分析手段３の分析対象として挙げたこれらの項目は任意に選択可能であり、少なくとも一つを分析すればよい。ただし、後記する選別手段８で｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝、細胞周期、代謝フラックスのうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用細胞株を選別することから、生産物生成速度および細胞増殖速度と、細胞周期と、代謝フラックスとのうちの少なくとも一つは分析しておくのが好ましい。分析手段３は、得られた分析値を解析制御手段８に送信する。分析手段３で分析され得るこれらの分析対象に関する分析方法等は以下のようなものである。
（分析対象１：生産物の濃度および生産物生成速度）
　生産物生成速度を求めるために、まず培養手段２内の生産物の濃度を分析する。例えば、目的とする生産物がタンパク質である場合におけるタンパク質の濃度は以下のようにして分析することができる。
　タンパク質の定量ではＥＬＩＳＡ（Enzyme-Linked Immuno Sorbent Assay）法を用いることができる。ＥＬＩＳＡ法は、測定対象のタンパク質と抗原抗体反応を示すとともに蛍光物質や酵素などが結合された抗体を用い、タンパク質と結合した抗体の蛍光や酵素活性を測定することで、測定対象であるタンパク質の濃度を算出する。ＥＬＩＳＡ法には、直接法、間接法、サンドイッチ法、競合法などの方法があるが、いずれの方法で測定しても構わない。
　培養におけるタンパク質の濃度の経時変化を測定し、単位時間、単位細胞数あたりの生成量に換算することで、生産物生成速度を求めることができる。
（分析対象２：培地成分、栄養基質消費速度および副生成物分泌速度）
　栄養基質消費速度および副生成物分泌速度を求めるために培地成分を分析する。具体的には、培養手段２内の栄養基質濃度および副生成物濃度を分析する。なお、栄養基質とは、培地成分のうち、細胞の成長や生産物の生成に必要なものをいい、例えば、無機成分、炭素源、ビタミン類、アミノ酸類などが挙げられる。また、副生成物とは、細胞が成長したり、生産物を生成したりする過程において、副産物として生成されるものをいい、例えば、炭酸ガス、乳酸、アンモニア、ピルビン酸、クエン酸などが挙げられる。
　栄養基質濃度および副生成物濃度の測定は、例えば、高速液体クロマトグラフ（ＨＰＬＣ）、液体クロマトグラフ質量分析計（ＬＣ／ＭＳ）、液体クロマトグラフ－タンデム質量分析計（ＬＣ／ＭＳ－ＭＳ）、ガスクロマトグラフ質量分析計（ＧＣ／ＭＳ）、ガスクロマトグラフ－タンデム質量分析計（ＧＣ／ＭＳ－ＭＳ）等を用いて、細胞を除いた培養液中の成分を測定する。これらの分析法はいずれも、培養液中の多項目の成分を一度に測定することができる。
　培養における培地成分、具体的には、栄養基質濃度および副生成物濃度の経時変化をそれぞれ測定し、単位時間あたりの消費量および生成量に換算することで、栄養基質消費速度および副生成物分泌速度をそれぞれ求めることができる。
（分析対象３：代謝フラックス）
　代謝フラックスの分析方法の一例を以下に説明する。図３は、代謝フラックスの分析方法の概念を示す説明図である。図３に示すシミュレーションでは最初にランダムな代謝フラックスの値（代謝反応速度初期値（乱数））（図３のＲ１～Ｒ８）を与え、代謝経路モデルを基に、定常状態での細胞内の各代謝物質に含まれる同位体炭素の数の比を計算する。この計算値と実験で測定した細胞内代謝物質の同位体炭素数比との比較を行う。そして、同位体比率分布について統計学的に有意差がない場合（一致する場合）は、推定代謝フラックスと決定される（代謝反応速度決定）。一方、同位体比率分布について統計学的に有意に差がある場合（不一致となる場合）は、シミュレーションによる代謝物質中の同位体数炭素比の値を実験による代謝物質中の同位体炭素数比の値との平均自乗誤差が最小となるようにシミュレーションによる代謝フラックスの値を補正する。この補正は、例えば、ＱＰ（Quadratic Programming）部分問題法を適用することにより行うことができる。ＱＰ部分問題法は、生成された特定の代謝物１～３の同位体炭素数比と、シミュレーションによる特定の代謝物１～３の同位体炭素数比と間に統計学的な有意差が生じる場合に、両者間の平均自乗誤差が予め設定された所定範囲内に収まり、最小となるように、先にシミュレーションにより得た代謝経路Ｒ１～Ｒ８におけるそれぞれの代謝フラックスの値の中で、当該誤差に関係する代謝経路Ｒ１～Ｒ８における代謝フラックスの値を補正するというものである。前記したように、シミュレーションによる結果が不一致となる場合、補正した代謝フラックスで同位体炭素比を計算し、同位体比率分布について統計学的な有意差がなくなるまで実験による代謝物質中の同位体炭素数比の値を比較するという操作を繰り返す。シミュレーションによる結果が一致する場合、その結果により代謝反応速度（代謝フラックス）を決定する。
　同位体標識基質を用いた培養実験については、例えば、１３Ｃで標識したグルコースを添加した液体培地で細胞培養を行う。そして、培養槽から細胞をサンプリングし、細胞を固定した後、分析に必要な中間代謝物を抽出し、２％methoxyamine hydrochlorideを加え、５５℃で２時間反応させる。その後、ＭＢＴＳＴＦＡ＋１％ＴＢＤＭＣＳ（(N-methyl-N-(tert-butyldimethylsilyl)trifluoroacetamide + 1% tertbutyldimetheylchlorosilane)）溶液を４５μＬずつ加え、３７℃で１時間反応させた後、ＧＣ／ＭＳで分析する。ＧＣ／ＭＳで用いるカラムとしては、例えば、３０ｍ　ＤＢ－３５ＭＳ　キャピラリーカラムを使用することができ、分析条件はカラム温度を１００℃から３００℃に勾配３．５℃／ｍｉｎで昇温することが挙げられる。また、注入口温度を２７０℃とし、キャリアガスはヘリウムガス（流量１ｍＬ／ｍｉｎ）で分析を行うことが挙げられる。
（分析対象４：細胞増殖速度）
　細胞増殖速度を求めるために、まず培養手段２内の細胞数を分析（測定）する。細胞数の測定は、トリパンブルー染色法および血球計算盤を用いた顕微鏡観察により行うことができる。なお、細胞数の測定は、乾燥菌体重量法、濁度法、静電容量法、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（ＮＡＤ）測定、フローサイトメトリー法等の他の方法を用いて行うこともできる。
　ここで、生細胞数をＸ、比増殖速度をμ、時間をｔとすると、式３の関係になる。
 
μＸ＝ｄＸ／ｄｔ　　　・・・式３
 
　異なる時間の２点の生細胞数が分かれば、式３を用いて比増殖速度を求めることができる。なお、異なる時間の２点のデータから比増殖速度を求めた際に、誤差の影響が無視できなくなった場合は、対数増殖している培養液を経時的にサンプリングし、より多くのデータを基に比増殖速度を推定してもよい。例えば、培養時間を横軸、生細胞数の対数値を縦軸として散布図にプロットし、その傾きを最小二乗法により計算する。このグラフが直線で得られない場合は、対象の細胞は指数増殖しておらず、培養期間中に何らかの制限因子が存在することを意味している。
（分析対象５：細胞周期）
　図４は、真核細胞の細胞周期の概念を示す説明図である。細胞周期は、１つの細胞が分裂して２つの細胞になるために必要な期間であり、図４に示すように、細胞分裂期（有糸分裂期、Ｍ期）と、それ以外の細胞分裂間期（間期）からなる。間期は、Ｇ１期、Ｓ期、Ｇ２期からなる。真核細胞は細胞周期を繰り返すことで増殖する。典型的な動物の細胞では、１細胞周期にかかる時間は１６～２４時間であり、Ｍ期は１時間、Ｇ２期は２～６時間、Ｓ期は６～８時間である。なお、Ｇ１期は細胞株の種類や連続培養条件によって相違する。Ｍ期、Ｇ１期、Ｓ期、Ｇ２期の時間比はおよそ１：５：７：３である。また、連続培養条件等の様々な要因により、Ｇ１期において、細胞周期から離脱し静止状態になることがある。これをＧ０期という。Ｇ０期の長さおよび含有比は不定である。従って、Ｇ０期の細胞を含む場合には、Ｍ期、Ｇ１期（およびＧ０期）、Ｓ期、Ｇ２期の時間比は不定である。
　連続培養においては、細胞が集密的になって生産物生成期を迎えた後は、分裂をしないＧ０期およびＧ１期の割合が多い細胞を選別するのが好ましい。細胞周期の計測は、フローサイトメータを用いたＰＩ蛍光染色法で行うことができる。ＰＩ蛍光染色法は、ＰＩ（ヨウ化プロピジウム：Propidium Iodide）を用いる蛍光染色法であり、細胞周期を計測する際によく用いられている手法である。
　図５は、生細胞のＤＮＡをＰＩ蛍光染色法で蛍光標識し、それを光学的に検出した結果を示す概念図である。なお、図５の縦軸は細胞数を表し、横軸はＰＩ蛍光強度（∝ＤＮＡ量）を表している。縦軸は上にいくほど細胞数が多くなり、横軸は右にいくほどＰＩ蛍光強度が高くなる。
　図５中の曲線Ｃ１１は、Ｇ０期とＧ１期の細胞を示す。Ｇ０期とＧ１期の細胞からは比較的強度が低い蛍光が検出される。曲線Ｃ１２は、Ｓ期の細胞を示す。Ｓ期の細胞からは、広い範囲の強度の蛍光が検出される。曲線Ｃ１３は、Ｇ２期とＭ期の細胞を示す。Ｇ２期とＭ期の細胞からは比較的強度が高い蛍光が検出される。
　図５の３つの曲線Ｃ１１、Ｃ１２、Ｃ１３は度数分布曲線である。従って、この曲線を所定の範囲について積分することによって、その範囲の細胞数が求められる。すなわち、これらの曲線の下側の面積は細胞数を示し、面積比は細胞数比を表す。例えば、曲線Ｃ１３の下側の面積を測定することによって、Ｇ２期とＭ期の細胞数が得られる。また、曲線Ｃ１３の下側の面積を他の曲線の下側の面積と比較することにより、Ｇ２期とＭ期の細胞数と他の期の細胞数の比が求められる。
　細胞増殖速度の測定は、細胞の増殖を待つ必要があり、数日かかるのに対し、細胞周期の測定は１時間程度で解析できる。そのため、細胞周期を測定する場合、スクリーニングにおける時間短縮を図ることができる。
　なお、細胞周期から細胞数を推定することもできる。細胞周期からの細胞数の推定は以下のようにして行う。
（細胞周期から細胞数を推定する方法）
　細胞周期について、Ｍ期は１時間、Ｇ２期は２時間であると仮定する。ある時刻ｔ＝ｔ0で培養液をサンプリングすると生細胞数Ｎ0が得られ、そのときのＭ期の細胞の割合をＰMとする。Ｍ期の細胞は１時間後に分裂を完了するので、生細胞の増加数は、Ｎ0×ＰMとなる。従って、１時間後の生細胞数Ｎ1および細胞増殖速度μ1（ｈ-1）はそれぞれ式４、式５で表すことができる。
 
Ｎ1＝Ｎ0＋Ｎ0×ＰM＝Ｎ0×（１＋ＰM）　　　・・・式４
 
μ1＝ｌｎ Ｎ1－ｌｎ Ｎ0　　　・・・式５
 
　一般的に、Ｍ期の細胞の割合ＰMのみを計測することは困難であるが、Ｇ２期の細胞とＭ期の細胞の合計の割合ＰM+G2は計測することが可能である。そこで、Ｇ２期の細胞とＭ期の細胞の合計の割合ＰM+G2を用いて、サンプリングから数時間後の生細胞数を算出する。ある時刻ｔ＝ｔ0でサンプリングを行い、生細胞数Ｎ0が得られたとする。サンプリングした生細胞におけるＧ２期の細胞とＭ期の細胞の合計の割合をＰM+G2とする。サンプリング時にＭ期およびＧ２期であった細胞は、３時間後には、全てＭ期およびＧ２期を経て分裂を完了する。従って、３時間後における生細胞の増加数は、Ｎ0×ＰM+G2である。すなわち、３時間後の生細胞数Ｎ2および細胞増殖速度μ2（ｈ-1）はそれぞれ式６、式７で表すことができる。
 
Ｎ2＝Ｎ0＋Ｎ0×ＰM+G2＝Ｎ0×(１＋ＰM+G2)　　　・・・式６
 
μ2＝(ｌｎ Ｎ2－ｌｎ Ｎ0)／３＝ｌｎ(１＋ＰM+G2)／３　　　・・・式７
 
　なお、上記説明では、Ｍ期は１時間、Ｇ２期を２時間と仮定したが、より一般的にＭ期とＧ２期の合計の時間をＴM+G2時間で表すと、細胞増殖速度μ3（ｈ-1）は式８で表すことができる。
 
μ3＝(ｌｎ Ｎ2－ｌｎ Ｎ0)／ＴM+G2＝ｌｎ(１＋ＰM+G2)／ＴM+G2　　　・・・式８
 
　以下にＧ２期の細胞とＭ期の細胞の合計の割合ＰM+G2の計測方法および導出方法の一例について説明する。
　サンプリングした培養液中に含まれる細胞に対してＰＩで染色し、フローサイトメータで各細胞のＰＩ蛍光強度を計測すると、前述した図５と同じ結果を得ることができる。前述したように、図５中の曲線Ｃ１１はＧ０期とＧ１期の細胞を示し、曲線Ｃ１２はＳ期の細胞を示し、曲線Ｃ１３はＧ２期とＭ期の細胞を示す。３つの曲線Ｃ１１、Ｃ１２、Ｃ１３は度数分布曲線であるため、この曲線を所定の範囲について積分することによって、その範囲の細胞数が求められる。すなわち、これらの曲線の下側の面積は細胞数を示し、面積比は細胞数比を表す。例えば、曲線Ｃ１３の下側の面積を測定することによって、Ｇ２期とＭ期の細胞数が得られる。また、曲線Ｃ１３の下側の面積を他の曲線の下側の面積と比較することによって、Ｇ２期とＭ期の細胞数と他の期の細胞数との比が求められる。
（生細胞数の推定実験）
　前述した（細胞周期から細胞数を推定する方法）に基づいて、生細胞数の推定実験を行った。
　Chinese Hamster Ovary（ＣＨＯ）細胞の培養において、細胞周期測定により細胞増殖速度を推定した。ＣＤ－ＣＨＯ培地（Ｇｉｂｃｏ社製）を用い、ＣＨＯ細胞をスピナーフラスコ（１５０ｍｌ）で培養した。培養２日目と培養４日目はサンプリングを３時間おきに行い、それ以外の日は一日一度サンプリングを行った。サンプリングした細胞について、生細胞数およびＧ２期＋Ｍ期の細胞割合を測定した。生細胞数の計測には、製品名Ｖｉ－Ｃｅｌｌ（ベックマン・コールター社製）を用いた。Ｇ２期の細胞とＭ期の細胞の合計の割合の計測には、Cell Cycle Phase Determination Kitを用い、添付のプロトコルに従い細胞を蛍光色素で標識し、フローサイトメータ（ベックマン・コールター社製）により測定を行った。
　図６は、本実験による細胞の増殖曲線を示すグラフである。図６の縦軸は、細胞数密度であり、単位は×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍＬである。横軸は培養時間（日）である。図６に示すように、培養時間の経過に伴い、細胞数密度も高くなった。
　また、図７は、培養２日目および培養４日目のフローサイトメータによる細胞周期の測定結果を示すグラフである。図７の縦軸は細胞数を示し、横軸はＰＩ蛍光強度（∝ＤＮＡ量）を示す。破線の折れ線は、培養２日目の細胞数を示し、実線の折れ線は、培養４日目の細胞数を示す。これらの折れ線の左側の山はＧ０期とＧ１期の細胞を示し、中央部分の折れ線部分はＳ期の細胞を示し、右側の折れ線の山はＧ２期とＭ期の細胞を示す（図５参照）。図７の折れ線グラフから、培養２日目および培養４日目の単位時間あたりの増殖細胞数を推定した。
　図８は、前記した細胞周期から推定した増殖細胞数の推定値と、実際に計数して求めた増殖細胞数の実測値を示すグラフである。培養２日目も培養４日目も、前記推定値と実際に計数して求めた増殖細胞数とは同等の値となることが確認された。つまり、細胞周期から増殖細胞数を推定可能であることが確認された。すなわち、前記した推定値を前記した式８に適用することで比増殖速度（細胞増殖速度）を求められることが確認された。
＜解析制御手段＞
　図１に戻って説明を続ける。解析制御手段８は、ＣＰＵやハードディスクドライブなどの記憶媒体を備えた汎用コンピュータやパーソナルコンピュータなどである。解析制御手段８は、当該記憶媒体に所定のプログラムを記憶させておき、これを読み出すことで解析制御手段８（コンピュータ）を所定の手段として機能させることができる。所定の手段としては、判別手段４、解析手段５、選定手段６、選別手段７が挙げられる。これらの手段については後述する。
　また、解析制御手段８は、分析手段３から送られてきた前記情報（分析値）に基づいて、攪拌翼２４の回転数やウォータージャケット２７の温度などを制御する。また、解析制御手段８は、前記情報に基づいて、ポンプＰ１～Ｐ３の圧力を適宜調整して培地添加手段２１から培養手段２に新鮮な培地を添加したり、培養手段２から細胞分離手段２２に培養液を送ったり、細胞分離手段２２から回収手段２３に生産物や老廃物等を含む培養液（細胞分離手段２２によって培養細胞が分離された培養液）を送ったりする。
＜判別手段＞
　前記したように、解析制御手段８は、判別手段４として機能することで、分析手段３で得られた分析値から細胞の培養状態が定常状態であるか否かを判別する。前記した定常状態の判別指標としては、細胞の栄養基質消費速度、細胞の副生成物分泌速度、細胞の代謝フラックス、および細胞の細胞呼吸速度のうちのいずれか１つ、または２つ以上を組み合わせたものであることが好ましい。これらの指標は、前記したセンサと分析手段３によって、例えば、グルコースやグルタミンなどの特定の栄養成分、乳酸やアンモニアなどの特定の代謝分泌物、ピルビン酸やクエン酸などの特定の細胞内代謝物、培養手段２内のＤＯおよびＤＣＯ２を適宜測定することで把握することができる。これらの判別指標を用いれば、細胞が定常状態であるか否か容易に且つ的確に判別することができる。
　本実施形態においては、判別手段４で培養状態（細胞）が定常状態であると判別した後、すなわち、生産物生成期となった後に、前記｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間、または、前記代謝フラックスにおけるパスウェイの解析を行うのが好ましい。このようにすると、生産物を生成するのに好適な連続培養条件を選別することができる。
＜解析手段＞
　解析制御手段８は、解析手段５として機能することで、細胞の培養状態が定常状態であるときに、前記分析手段３で分析され、送信されてきた分析値から、細胞増殖速度、細胞周期、および代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析を行う。培養状態が定常状態であるときの細胞についてこれらの解析を行うことで、生産物生成期における好ましい連続培養条件を選別することが可能となる。
＜選定手段＞
　解析制御手段８は、選定手段６として機能することで、細胞増殖速度、細胞周期、および代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析結果に基づいて最適な連続培養条件を選定する。このように、スクリーニング装置１で設定した複数の細胞株とこれに関する連続培養条件について、これらの解析結果に基づいて最適な連続培養条件を選定するので、定常状態に達した後の細胞増殖が少なく、細胞増殖速度に対して生産物生成速度が高い連続培養用細胞株に適した連続培養条件を得ることが可能となる。
　ここで、本実施形態では、選定手段６において、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて培地組成を決定するのが好ましい。前記したように、候補細胞株とその細胞株に適した連続培養条件とをセットで検討する必要があるので、このような決定を行うことによって、最適な連続培養条件を選定することができる。なお、この培地組成は、前記した培養手段２で設定した連続培養条件の中から決定される。
　また、本実施形態では、選定手段６において、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて細胞代謝経路を決定することが好ましい。ここで、細胞代謝経路を決定するとは、細胞代謝経路に含まれる種々の代謝経路に対して適切な代謝フラックス群を決定することをいう。このようにすると、細胞増殖に関する代謝系に対して生産物の生成に関する代謝系が優位な細胞のスクリーニングが可能となるため、品質にばらつきが少なく、高い生産性で生産物を生成できる連続培養条件を得ることができる。
　さらに、本実施形態では、選定手段６において、前記式２に示す（細胞増殖速度）が、指標として細胞周期を測定したものであることが好ましい。このようにすると、より確実に定常状態に達した後の細胞増殖が少ない細胞株を選別することができる。また、このようにすると、細胞周期の測定は１時間程度で解析できるため、スクリーニングにおける時間短縮を図ることができる。なお、細胞周期から細胞増殖速度を求めるには、前記したように式８などを用いるとよい。
＜選別手段＞
　そして、解析制御手段８は、選別手段７として機能することで、最適な連続培養条件で培養された細胞の細胞増殖速度または細胞周期と、その生産物生成速度と、を評価して、連続培養用細胞株を選別する。具体的には、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用細胞株を選別する。このように、スクリーニング装置１で設定した複数の細胞株とこれに関する連続培養条件について、これらの解析結果に基づいて評価するので、定常状態に達した後の細胞増殖が少なく、細胞増殖速度に対して生産物生成速度が高い細胞株を選別することができる。
　本実施形態では、この選別手段７において、スクリーニングを行った複数の系統の細胞株について求めた｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大となるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用細胞株を選別する。なお、この細胞株は、接着系細胞株であってもよいし、浮遊系細胞株であってもよい。このようにすると、定常状態に達した後の細胞増殖が少なく、細胞増殖速度に対して生産物生成速度が高い細胞株（例えば、浮遊系細胞株）を選別することができる。
　また、本実施形態では、選別手段７において、前記式２に示す（細胞増殖速度）が遅い細胞株を選別するのが好ましい。このようにすると、定常状態に達した後の細胞増殖が少ないので、余剰細胞の分解による不純物、細胞分裂回数増加による変異、細胞増殖のための培地栄養成分と酸素供給、老廃物、二酸化炭素などを抑制できる。また、このようにすると、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が大きくなり易く、好適である。
［連続培養条件のスクリーニング方法］
　次に、図９を参照して本実施形態に係る連続培養条件のスクリーニング方法（以下、単に「スクリーニング方法」ということがある）について説明する。なお、図９は、スクリーニング方法の内容を説明するフローチャートである。以下の説明において、スクリーニング装置１と同じ要素については同じ符号を付して詳細な説明は省略する。
　本実施形態に係るスクリーニング方法は、実生産に用いられる連続培養装置（図示せず）内で細胞培養するときの連続培養条件をスクリーニングする方法である。
　本スクリーニング方法は、図９に示すように、培養工程Ｓ１と、分析工程Ｓ２と、判別工程Ｓ３と、解析工程Ｓ４と、を複数の培養細胞および連続培養条件で実施するものであり、選定工程Ｓ５と、選別工程Ｓ６と、を含んでいる。培養工程Ｓ１から選別工程Ｓ６はこの順で行うのが好ましい。
　培養工程Ｓ１は、図示しない連続培養装置内で細胞を培養するときの連続培養条件を設定して細胞を培養する工程である。この培養工程Ｓ１は、前記した培養手段２で行われる。
　分析工程Ｓ２は、培養工程Ｓ１で培養している培養液をサンプリングし、生産物の濃度と培地成分を分析して分析値を得る工程である。この分析工程Ｓ２は、前記した分析手段３で行われる。
　判別工程Ｓ３は、前記した分析値から細胞の培養状態が定常状態であるか否かを判別する工程である。この判別工程Ｓ３は、前記した判別手段４で行われる。
　解析工程Ｓ４は、培養状態が定常状態であるときに、前記分析値から生産物生成速度、細胞増殖速度、細胞周期、および代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析を行う工程である。この解析工程Ｓ４は、前記した解析手段５で行われる。
　選定工程Ｓ５は、前記した細胞増殖速度、前記した細胞周期、および前記した代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析結果に基づいて最適な連続培養条件を選定する工程である。この選定工程Ｓ５は、前記した選定手段６で行われる。
　選別工程Ｓ６は、前記した最適な連続培養条件で培養された細胞を評価して、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用細胞株を選別する工程である。この選別工程Ｓ６は、前記した選別手段７で行われる。
　次に、図１０を参照してスクリーニング方法の詳細な手順の一例を説明する。図１０は、スクリーニング方法の詳細な手順の一例を説明するフローチャートである。
　図１０に示すように、スクリーニング方法は、最初に、調査すべき連続培養条件（温度、溶存酸素濃度、培地組成、攪拌回転数などの制御値）と培養試験を行う順番を設定する（培養条件設定、ステップＳ１１）。そして、スクリーニング装置１に最初の連続培養条件を設定し（培養条件設定、ステップＳ１１）、培養を開始する（ステップＳ１２）。なお、培養開始直後は、細胞は非定常状態であるため、定刻ごとに細胞培養液のサンプリングを行う（ステップＳ１３）。これらステップＳ１１、１２は培養工程Ｓ１で行い、ステップＳ１３は分析工程Ｓ２で行う。
　そして、生産物の濃度と培地成分を分析する。具体的には、細胞の状態を反映する生産物生成速度、細胞増殖速度、細胞周期、代謝フラックス、栄養基質消費速度、副生成物分泌速度などを少なくとも１つ分析する（生産物生成速度などの分析、ステップＳ１４）。このステップＳ１４も分析工程Ｓ２で行う。
　ステップＳ１４における分析値について経時変化等がなく、ほぼ一定値となったときを定常状態と見なす（ステップＳ１５で“定常”）。一方、前回サンプリング時と比較して生産物生成速度、栄養基質消費速度、副生成物分泌速度、細胞内代謝フラックスなどの値が経時変化していれば、定常状態に達していないと判断する（ステップＳ１５で“非定常”）。なお、ステップＳ１４における分析値に関して、対数増殖期においては細胞数の増加に伴って栄養基質消費量や副生成物分泌量などが変化する。一方、対数増殖期を過ぎて定常状態となると、培地添加手段２１からの新鮮な液体培地の添加と細胞分離手段２２による老廃物の回収とにより、栄養基質消費量や副生成物分泌量などがほぼ一定となり、分析値について経時変化があまり生じない状態となる。そして、非定常の期間を分析し（ステップＳ１６）、当該期間が所定値を超えている場合、例えば、設定したサンプリング回数（もしくは培養時間）を経過しても定常状態が得られない場合（ステップＳ１６で“＞設定値”）、アラートを表示する。この場合、手動もしくは自動で培養を中止してもよく、または、手動もしくは自動で計画された次の連続培養条件に移行してもよい（この場合、図示はしないが、ステップＳ１１に戻る）。一方、非定常の期間を分析し（ステップＳ１６）、当該期間が所定値以下である場合（ステップＳ１６で“≦設定値”）ステップＳ１２に戻って培養を継続する。これらステップＳ１５、Ｓ１６は判別工程Ｓ３で行う。
　一方、定常状態である場合（ステップＳ１５で“定常”）、生産物生成速度、細胞増殖速度、細胞周期、代謝フラックスなどを解析する（ステップＳ１７）。このステップＳ１７は解析工程Ｓ４で行う。
　そして、解析結果を記録した後、実験条件の選定を行う。このとき、計画が未完であり、次の連続培養条件が計画されている場合には（ステップＳ１８で“計画未完”）、連続培養条件の設定を変更して、再度、ステップＳ１１から一連の手順を行う。
　一方、解析結果を記録した後、計画が完了していたら培養を終了する（ステップＳ１８で“計画完了”）。このステップＳ１８も解析工程Ｓ４で行う。
　次いで、例えば、最適な連続培養条件で培養された細胞を評価して、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大となるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて、連続培養条件の選定と、連続培養用細胞株の選別とを行う（ステップＳ１９）。このステップＳ１９は、選定工程Ｓ５および選別工程Ｓ６で行う。
　他の候補細胞株がある場合、さらに他の候補細胞株での結果と比較し、最終的に生産性が最も良い細胞株および連続培養条件を選定・選別し、スクリーニングを完了する。
　上記手順は一例である。ここで、図１１は、スクリーニング方法の詳細な手順の他の一例を説明するフローチャートである。図１１に示す他の一例では、細胞培養液のサンプリングを行った後に（ステップＳ１３）、生産物生成速度、細胞増殖速度、細胞周期、代謝フラックスなどの解析を行う（ステップＳ１７）。そして、このステップＳ１７の後に、生産物の濃度と培地成分を分析し、具体的には、細胞の状態を反映する生産物生成速度、栄養基質消費速度、副生成物分泌速度、細胞内代謝フラックスなどをいずれか１つ以上の分析を行っている（ステップＳ１４）。
　つまり、図１１に示す他の一例では、ステップＳ１３とステップＳ１４の間でステップＳ１７を行っている点で、図１０に示す一例とは相違している。このようにすると、非定常の期間の生産物生成速度、細胞増殖速度などの解析を行うことができるので、非定常の期間の連続培養条件での細胞状態を把握することができる。
　また、図１２もスクリーニング方法の詳細な手順の他の一例を説明するフローチャートである。図１２に示す他の一例では、図１０に示す例と同様にしてステップＳ１７までを行い、生産物生成速度、細胞増殖速度、細胞周期、代謝フラックスなどを解析する。
　そして、その後に、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大となるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養条件の選定と、連続培養用細胞株の選別とを行う（ステップＳ１９）。
　そして、その後、選定した連続培養条件と選別した連続培養用細胞株とが、目標条件の仕様を達成しているか否かを判断する（ステップＳ２０）。これらが目標条件の仕様を達成していない場合（ステップＳ２０で“未達”）、連続培養条件の設定を変更して、再度、ステップＳ１１から一連の手順を行う。
　一方、これらが目標条件の仕様を達成している場合（ステップＳ２０で“達成”）、予め計画された実験計画を全て実行しなくともスクリーニングを終了する。
　つまり、図１２に示す他の一例では、実験条件の選定を行うステップＳ１８（図１０、図１１参照）を省略している点で、図１０に示す一例とは相違している。このようにすると、目標条件の仕様を達成し次第、スクリーニングを終了するので、時間とコストを削減することができる。
　以上に説明した本実施形態に係る連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置によれば、連続培養における不必要な細胞増殖が少ない細胞株を選別することができる。これにより、余剰細胞の分解による不純物増加、細胞分解数増加による変異、細胞増殖のための必要以上の培地栄養成分、酸素供給、老廃物、二酸化炭素除去を低減することができる。本実施形態に係る連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置は、細胞周期の制御だけでなく、細胞増殖に関わる代謝系に対して生産物の生成に関わる代謝系が優位な細胞のスクリーニングが可能である。従って、本実施形態に係るスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置で選別された細胞株を利用することで品質にばらつきが少なく、高い生産性で目的物質を得ることができる。
　以上、本発明に係る連続培養条件のスクリーニング方法および連続培養条件のスクリーニング装置について実施形態により詳細に説明したが、本発明は前記した実施形態に限定されるものではなく、様々な変形例が含まれる。例えば、前記した実施形態は本発明を分かり易く説明するために詳細に説明したものであり、必ずしも説明した全ての構成を備えるものに限定されるものではない。また、ある実施形態の構成の一部を他の実施形態の構成に置き換えることが可能であり、また、ある実施形態の構成に他の実施形態の構成を加えることも可能である。また、それぞれの実施形態の構成の一部について、他の構成の追加・削除・置換をすることが可能である。
　さらに、制御線や情報線は説明上必要と考えられるものを示しており、製品上必ずしも全ての制御線や情報線を示しているとは限らない。実際には殆ど全ての構成が相互に接続されていると考えてもよい。
　Ｓ１　　培養工程
　Ｓ２　　分析工程
　Ｓ３　　判別工程
　Ｓ４　　解析工程
　Ｓ５　　選定工程
　Ｓ６　　選別工程
　１、１Ａ　連続培養条件のスクリーニング装置（スクリーニング装置）
　２　　　培養手段
　３　　　分析手段
　４　　　判別手段
　５　　　解析手段
　６　　　選定手段
　７　　　選別手段

Claims (16)

  1. 　｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用浮遊系細胞株を選別することを特徴とする連続培養条件のスクリーニング方法。
  2. 　請求項１において、
    　前記｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて培地組成を決定することを特徴とする連続培養条件のスクリーニング方法。
  3. 　請求項１において、
    　前記｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて細胞代謝経路を決定することを特徴とする連続培養条件のスクリーニング方法。
  4. 　請求項１において、
    　細胞が定常状態となった後に、前記｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間、または、前記代謝フラックスにおけるパスウェイの解析を行うことを特徴とする連続培養条件のスクリーニング方法。
  5. 　請求項４において、
    　前記定常状態の判別指標が、前記細胞の栄養基質消費速度、前記細胞の副生成物分泌速度、前記細胞の代謝フラックス、および前記細胞の細胞呼吸速度のうちのいずれか１つ、または２つ以上を組み合わせたものであることを特徴とする連続培養条件のスクリーニング方法。
  6. 　請求項１において、
    　前記（細胞増殖速度）が遅い細胞株を選択することを特徴とする連続培養条件のスクリーニング方法。
  7. 　請求項１において、
    　前記（細胞増殖速度）が、指標として細胞周期を測定したものであることを特徴とする連続培養条件のスクリーニング方法。
  8. 　実生産に用いられる連続培養装置内で細胞培養するときの連続培養条件をスクリーニングする方法であり、
    　前記連続培養条件を設定して細胞を培養する培養工程と、
    　前記培養工程で培養している培養液をサンプリングし、生産物の濃度と培地成分を分析して分析値を得る分析工程と、
    　前記分析値から細胞の培養状態が定常状態であるか否かを判別する判別工程と、
    　前記培養状態が定常状態であるときに、前記分析値から生産物生成速度、細胞増殖速度、細胞周期、および代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析を行う解析工程と、
    　を複数の培養細胞および連続培養条件で実施し、
    　前記細胞増殖速度、前記細胞周期、および前記代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析結果に基づいて最適な連続培養条件を選定する選定工程と、
    　前記最適な連続培養条件で培養された細胞を評価して、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用細胞株を選別する選別工程と、
    　を含むことを特徴とする連続培養条件のスクリーニング方法。
  9. 　｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用浮遊系細胞株を選別することを特徴とする連続培養条件のスクリーニング装置。
  10. 　請求項９において、
    　前記｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて培地組成を決定することを特徴とする連続培養条件のスクリーニング装置。
  11. 　請求項９において、
    　前記｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて細胞代謝経路を決定することを特徴とする連続培養条件のスクリーニング装置。
  12. 　請求項９において、
    　細胞が定常状態となった後に、前記｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間、または、前記代謝フラックスにおけるパスウェイの解析を行うことを特徴とする連続培養条件のスクリーニング装置。
  13. 　請求項１２において、
    　前記定常状態の判別指標が、前記細胞の栄養基質消費速度、前記細胞の副生成物分泌速度、前記細胞の代謝フラックス、および前記細胞の細胞呼吸速度のうちのいずれか１つ、または２つ以上を組み合わせたものであることを特徴とする連続培養条件のスクリーニング装置。
  14. 　請求項９において、
    　前記（細胞増殖速度）が遅い細胞株を選択することを特徴とする連続培養条件のスクリーニング装置。
  15. 　請求項９において、
    　前記（細胞増殖速度）が、指標として細胞周期を測定したものであることを特徴とする連続培養条件のスクリーニング装置。
  16. 　実生産に用いられる連続培養装置内で細胞培養するときの連続培養条件をスクリーニングする装置であり、
    　前記連続培養条件を設定して細胞を培養する培養手段と、
    　前記培養手段で培養している培養液をサンプリングし、生産物の濃度と培地成分を分析して分析値を得る分析手段と、
    　前記分析値から細胞の培養状態が定常状態であるか否かを判別する判別手段と、
    　前記培養状態が定常状態であるときに、前記分析値から生産物生成速度、細胞増殖速度、細胞周期、および代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析を行う解析手段と、
    　前記細胞増殖速度、前記細胞周期、および前記代謝フラックスのうちの少なくとも１つの解析結果に基づいて最適な連続培養条件を選定する選定手段と、
    　前記最適な連続培養条件で培養された細胞を評価して、｛（生産物生成速度）／（細胞増殖速度）｝が最大になるという指標、前記細胞周期のＧ０期およびＧ１期の合計期間が最も長いという指標、および、前記代謝フラックスにおけるパスウェイが最も少ないという指標のうちから選択される少なくとも一つの指標に基づいて連続培養用細胞株を選別する選別手段と、
    　を含むことを特徴とする連続培養条件のスクリーニング装置。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2019116772A1 (ja) * 2017-12-12 2019-06-20 株式会社日立製作所 細胞株及び培養条件のスクリーニング方法、及びその装置

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP7355498B2 (ja) * 2019-02-05 2023-10-03 株式会社日立製作所 培養方法
WO2022009672A1 (ja) * 2020-07-07 2022-01-13 株式会社島津製作所 細胞培養システム

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH07147991A (ja) * 1993-11-30 1995-06-13 Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd β−ヒドロキシ酸の製造方法
JP2002527057A (ja) * 1998-10-14 2002-08-27 フォルシュングスツェントルム ユーリッヒ ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツング タンパク質を製造するためのチャイニーズハムスター卵巣細胞
JP2007020430A (ja) * 2005-07-13 2007-02-01 Asahi Breweries Ltd 微生物培養条件の設定方法およびこの方法を利用したｒｎａ生産用微生物の製造方法
JP2008527991A (ja) * 2005-04-08 2008-07-31 コリア アドバンスド インスティチュート オブ サイエンス アンド テクノロジィ インシリコ分析に基づく菌株の改良方法

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7127379B2 (en) * 2001-01-31 2006-10-24 The Regents Of The University Of California Method for the evolutionary design of biochemical reaction networks
JP4883067B2 (ja) * 2008-09-29 2012-02-22 株式会社日立プラントテクノロジー 培養装置及び培養方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH07147991A (ja) * 1993-11-30 1995-06-13 Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd β−ヒドロキシ酸の製造方法
JP2002527057A (ja) * 1998-10-14 2002-08-27 フォルシュングスツェントルム ユーリッヒ ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツング タンパク質を製造するためのチャイニーズハムスター卵巣細胞
JP2008527991A (ja) * 2005-04-08 2008-07-31 コリア アドバンスド インスティチュート オブ サイエンス アンド テクノロジィ インシリコ分析に基づく菌株の改良方法
JP2007020430A (ja) * 2005-07-13 2007-02-01 Asahi Breweries Ltd 微生物培養条件の設定方法およびこの方法を利用したｒｎａ生産用微生物の製造方法

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2019116772A1 (ja) * 2017-12-12 2019-06-20 株式会社日立製作所 細胞株及び培養条件のスクリーニング方法、及びその装置

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