WO2018216841A1 - 항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 및 이를 유효성분으로 함유하는 피부 주름 개선용 화장료 조성물 - Google Patents

항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 및 이를 유효성분으로 함유하는 피부 주름 개선용 화장료 조성물 Download PDF

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fusion protein
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이성란
유한봉
김태현
최태원
최종남
정태화
권형일
노우연
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Definitions

  • Heat shock proteins are one of the proteins that are expressed to prevent damage to cells when they are exposed to extreme conditions. Most heat shock proteins have a chaperon function that prevents the protein from functioning under extreme environmental exposures and require large amounts of energy (ATP). For skin, high temperatures and ultraviolet light are typical extreme environments, especially ultraviolet light, which is a direct cause of skin aging. Recently, studies on heat shock proteins exhibiting a sunscreen effect are underway, and various attempts to use them as cosmetic ingredients are underway.
  • Brazzein is a sweet protein originally extracted from the fruit of Pentadiplandra brazzeana Baillon in West Africa. Brazein has a sweet taste of about 500 to 2,000 times more than sucrose, and the major mahor type of plant-derived brazein contains pyroglutamic acid residues at its amino terminal sites. It has 54 amino acids. On the other hand, minor type brazein has only 53 amino acid residues without pyroglutamic acid residues at the amino terminal portion, and has about twice as strong sweetness as the major type of brazein. Brazein is the smallest sweet protein, has a molecular weight of about 6.5 kDa, and is a monomer composed of one subunit.
  • Brazein consists of a single polypeptide and consists of one ⁇ -helix and two ⁇ -sheets. Brazein has eight cysteine residues to form four disulfide bonds in the molecule, resulting in very high thermal stability. In addition, the solubility in water and pH stability is very high.
  • Korean Laid-Open Patent No. 2016-0084825 discloses a composition for preventing and improving skin hypersensitivity reactions by ultraviolet exposure and cosmetics using the same, including onion blood fermentation extracts that inhibit the expression of Hsp70 as an active ingredient
  • Korean Patent No. 12 36969 discloses a recombinant expression vector for expression of brazein and a mass production method of brazein using the same, but the heat shock protein 10 and the brazein protein have increased antioxidant activity and skin cell proliferation effect of the present invention.
  • a fusion protein and a cosmetic composition for improving skin wrinkles containing the same as an active ingredient are examples of a fusion protein and a cosmetic composition for improving skin wrinkles containing the same as an active ingredient.
  • the present invention was derived from the above-described needs, and the present inventors fused a heat shock protein 10 coding gene optimized for E. coli codon and a brazein protein coding gene to prepare a novel fusion protein.
  • the fusion protein of the prepared heat shock protein 10 and the brazein protein was found to have an excellent antioxidant effect compared to the individual proteins.
  • the fusion protein was treated on the skin cell line, the cell proliferation effect was obtained when the fusion protein was treated rather than the individual protein treatment.
  • the present invention was completed by confirming that is more excellent.
  • the present invention is a fusion of heat shock protein 10 (brazzein) and heat shock protein 10 having increased antioxidant activity and skin cell proliferation effect consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4 Provide protein.
  • the present invention also provides a gene encoding the fusion protein.
  • the present invention also provides a recombinant vector comprising the gene.
  • the present invention also provides a host cell transformed with the recombinant vector.
  • the present invention also provides a method for producing a fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein in a host cell comprising the step of transforming the host cell with the recombinant vector.
  • the present invention also provides a fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein produced by the above method.
  • the present invention provides a cosmetic composition for improving skin wrinkles comprising a fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4 as an active ingredient.
  • the recombinant protein is expressed in aggregate form in E. coli to simplify the production process, mass production of recombinant protein
  • the fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein produced by the above method is excellent in antioxidant activity and skin regeneration effect, and thus may be useful as a novel functional cosmetic raw material for whitening or wrinkle improvement. will be.
  • pET22b shows a process for the production of recombinant plasmids (pET22b :: H10BRAZZEIN and pET22b :: BRAZZEINH10) comprising a gene encoding a fusion protein of heat shock protein 10 (HSP10) and Brazein protein, and transformation into Escherichia coli. It is a schematic diagram about.
  • HSP10 heat shock protein 10
  • Figure 2 is an SDS-PAGE gel photograph of the fusion protein finally isolated and purified after expression of the fusion protein of the present invention in E. coli.
  • M size markers; 1, fusion protein of brazein protein and heat shock protein 10 (BRAZZEIN-HSP10); 2, fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein (HSP10-BRAZZEIN).
  • Figure 3 shows the skin fibers after treatment of the fusion protein (BRAZZEIN-HSP10 and HSP10-BRAZZEIN) of the brazein protein (HSP10 and BRAZZEIN), the brazein protein and heat shock protein 10 used in the manufacture of the fusion protein, respectively, Cell proliferation of blasts was confirmed by crystal violet staining.
  • the present invention relates to the heat shock protein (10) and the brazein (Brazzein) protein of increased antioxidant activity and skin cell proliferation effect consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4 Provide a fusion protein.
  • the range of the fusion protein of the heat shock protein 10 and the brazein protein according to the present invention is SEQ ID NO: 2 (brazein protein is fused to the amino terminus of heat shock protein 10; BRAZZEIN-HSP10) or SEQ ID NO: 4 (brazein protein is heat) Fusion to the carboxy terminus of impact protein 10; HSP10-BRAZZEIN) and a functional equivalent of the protein.
  • “Functional equivalent” means at least 70%, preferably at least 80%, more preferably at least 90%, even more than the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4 as a result of the addition, substitution, or deletion of the amino acid Preferably it refers to a protein having a sequence homology of 95% or more, and exhibits substantially homogeneous activity with the protein represented by SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4. "Substantially homogeneous activity” means antioxidant and cellular regeneration effects.
  • the present invention also includes fragments, derivatives and analogues of fusion proteins of heat shock protein 10 and brazein protein. As used herein, the terms “fragment”, “derivative” and “analogue” refer to a polypeptide that retains a biological function or activity substantially the same as the fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein of the invention.
  • the fusion protein of the heat shock protein 10 and the brazein protein of the present invention preferably consists of an amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4, wherein the fusion protein consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 is 1 to A new protein produced by fusing the brazein protein consisting of the 55th amino acid sequence and the heat shock protein 10 consisting of the 56th to 157th amino acid sequences, and the fusion protein consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4 is the first of the amino acid sequences. It is a novel protein produced by fusing the heat shock protein 10 consisting of the 102rd amino acid sequence and the brazein protein consisting of the 103rd to 157th amino acid sequence.
  • the present invention also provides a gene encoding a fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein having increased antioxidant activity and skin cell proliferation effect.
  • the gene may be composed of E. coli codon optimized SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3, but is not limited thereto.
  • the gene encoding the fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein having increased antioxidant activity and skin cell proliferation effect according to the present invention is SEQ ID NO: 1 (Brazin protein is a protein fused to the amino terminus of heat shock protein 10). Coding gene) or SEQ ID NO: 3 (the coding gene of the protein in which the brazein protein is fused to the carboxy terminus of heat shock protein 10).
  • SEQ ID NO: 1 Brain protein is a protein fused to the amino terminus of heat shock protein 10
  • Coding gene or SEQ ID NO: 3 (the coding gene of the protein in which the brazein protein is fused to the carboxy terminus of heat shock protein 10).
  • homologues of the above nucleotide sequences are included within the scope of the present invention.
  • the gene is at least 70%, more preferably at least 80%, even more preferably at least 90%, most preferably at least each of the nucleotide sequences selected from the group consisting of the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3
  • it may include a base sequence having 95% or more sequence homology.
  • the "% sequence homology" for a polynucleotide is identified by comparing two optimally arranged sequences with a comparison region, wherein part of the polynucleotide sequence in the comparison region is the reference sequence (addition or deletion) for the optimal alignment of the two sequences. It may include the addition or deletion (ie, gap) compared to).
  • Codon optimization refers to changing the codon of a polynucleotide encoding a protein to be used preferentially in a particular organism so that the encoded protein is expressed more efficiently in the organism.
  • the genetic code is degenerate in that most amino acids are represented by several codons, called “synonyms” or “synonyms” codons
  • codon usage by certain organisms is not arbitrary and biases to certain codon triplets. Such codon usage bias may be higher with respect to certain genes, genes of common function or ancestor origin, highly expressed proteins versus low copy number proteins, and collective protein coding regions of the organism genome.
  • the base sequence of SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 of the present invention is a sequence optimized for codon coli so that the gene encoding the fusion protein of the heat shock protein 10 and the brazein protein can be expressed in E. coli.
  • the present invention also provides a recombinant vector comprising the gene and a host cell transformed with the recombinant vector.
  • recombinant refers to a cell in which a cell replicates a heterologous nucleic acid, expresses the nucleic acid, or expresses a protein encoded by a peptide, a heterologous peptide, or a heterologous nucleic acid.
  • Recombinant cells can express genes or gene fragments that are not found in their natural form in either the sense or antisense form.
  • Recombinant cells can also express genes found in natural cells, but the genes are modified and reintroduced into cells by artificial means.
  • the gene encoding the fusion protein of the heat shock protein 10 and the brazein protein may be inserted into a recombinant expression vector.
  • recombinant expression vector means a bacterial plasmid, phage, yeast plasmid, plant cell virus, mammalian cell virus, or other vector. In principle, any plasmid and vector can be used as long as it can replicate and stabilize in the host.
  • An important feature of the expression vector is that it has an origin of replication, a promoter, a marker gene and a translation control element.
  • Expression vectors comprising gene sequences encoding fusion proteins of heat shock protein 10 and brazein protein and appropriate transcriptional / translational control signals can be constructed by methods well known to those skilled in the art. Such methods include in vitro recombinant DNA techniques, DNA synthesis techniques, in vivo recombinant techniques, and the like. The DNA sequence can be effectively linked to a suitable promoter in the expression vector to drive mRNA synthesis. Expression vectors may also include ribosomal binding sites and transcription terminators as translation initiation sites.
  • the recombinant vector according to an embodiment of the present invention the gene encoding the fusion protein (SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3) of the heat shock protein 10 and the brazein protein synthesized in the pET22b vector ( Nde I restriction) Enzyme site) and 3 'terminal ( Xho I restriction enzyme site) were fused in-frame, and the gene was effectively expressed by a lac promoter and a lac I repressor. It may be a recombinant vector, which is characterized by preparing a fusion protein of heat shock protein 10 and a brazein protein, but is not limited thereto.
  • a host cell capable of continuously cloning and expressing the vector of the present invention in a prokaryotic cell while being stable can be used as any host cell known in the art, for example, E. coli Rosetta, E. coli JM109, E. coli BL21. Bacillus sp. Strains such as E. coli RR1, E. coli LE392, E. coli B, E. coli X 1776, E. coli W3110, Bacillus subtilis , Bacillus thuringiensis , And enterobacteria and strains such as Salmonella typhimurium , Serratia marcescens and various Pseudomonas species.
  • yeast Saccharomyce
  • human cells eg, CHO cell line (Chinese hamster ovary), W138, BHK, COS-7, HEK 293, HepG2, 3T3, RIN and MDCK cell lines
  • plant cells and the like can be used.
  • the transformed host cell of the present invention may be, but is not limited to, E. coli Rosetta2 (DE3) pLysS strain.
  • the method of transporting the vector of the present invention into a host cell includes a CaCl 2 method, one method (Hanahan, D., 1983 J. Mol. Biol. 166, 557-580) and electroporation when the host cell is a prokaryotic cell. It may be carried out by a method or the like.
  • the vector may be injected into the host cell by microinjection, calcium phosphate precipitation, electroporation, liposome-mediated transfection, DEAE-dextran treatment, gene bombardment, or the like. Can be.
  • the present invention also includes the step of transforming a host cell with the recombinant vector, overexpressing a gene encoding a fusion protein of heat shock protein 11 and brazein protein.
  • a fusion protein production method and a fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein produced by the method are provided.
  • the host cell may be preferably E. coli , more preferably E. coli Rosetta2 (DE3) pLysS strain, but is not limited thereto.
  • the present invention also provides a cosmetic composition for improving skin wrinkles comprising a fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4 as an active ingredient.
  • the content of the fusion protein of the heat shock protein 10 and the brazein protein may be included in an amount of 0.000001 to 0.00002% by weight relative to the total weight of the cosmetic composition, but is not limited thereto.
  • the cosmetic composition of the present invention includes components conventionally used in cosmetic compositions in addition to the active ingredient, and include, for example, fatty substances, organic solvents, solubilizers, thickeners and gelling agents, softeners, antioxidants, suspending agents, stabilizers, foaming agents ( foaming agents), fragrances, surfactants, water, ionic or nonionic emulsifiers, fillers, metal ion sequestrants and chelating agents, preservatives, vitamins, blocking agents, wetting agents, essential oils, dyes, pigments, hydrophilic or lipophilic active agents , Conventional adjuvants such as lipid vesicles, and carriers.
  • fatty substances organic solvents, solubilizers, thickeners and gelling agents, softeners, antioxidants, suspending agents, stabilizers, foaming agents ( foaming agents), fragrances, surfactants, water, ionic or nonionic emulsifiers, fillers, metal ion sequestrants and chelating agents, pre
  • compositions of the present invention can be prepared in any formulation commonly prepared in the art, for example, solutions, suspensions, emulsions, pastes, gels, creams, lotions, powders, oils, powder foundations, emulsion foundations It may be formulated as a wax foundation, a spray, and the like, but is not limited thereto. More specifically, Skin, Skin Softener, Skin Toner, Astringent, Lotion, Milk Lotion, Moisture Lotion, Nutrition Lotion, Massage Cream, Nutrition Cream, Eye Cream, Moisture Cream, Hand Cream, Essence, Nutrition Essence, Pack, Cleansing It can be prepared in cosmetic formulations of foams, cleansing water, cleansing lotions, cleansing creams, body lotions, body cleansers, soaps and powders.
  • the carrier component is animal oil, vegetable oil, wax, paraffin, starch, tracant, cellulose derivative, polyethylene glycol, silicone, bentonite, silica, talc or zinc oxide. This can be used.
  • the formulation of the cosmetic composition of the present invention is a powder or a spray
  • lactose, talc, silica, aluminum hydroxide, calcium silicate or polyamide powder may be used as the carrier component, and in particular, in the case of a spray, additionally chlorofluoro hydro Propellant such as carbon, propane / butane or dimethyl ether.
  • a solvent, solubilizing agent or emulsifying agent is used as the carrier component, such as water, ethanol, isopropanol, ethyl carbonate, ethyl acetate, benzyl alcohol, benzyl benzoate, propylene.
  • the formulation of the cosmetic composition of the present invention is a suspension
  • a liquid diluent such as water, ethanol or propylene glycol
  • suspending agents such as ethoxylated isostearyl alcohol, polyoxyethylene sorbitol ester and polyoxyethylene sorbitan ester as carrier components
  • Microcrystalline cellulose, aluminum metahydroxy, bentonite, agar or tracant and the like can be used.
  • the optimized gene, the recombinant expression vector, and the transformed recombinant microorganism encoding the fusion protein of the heat shock protein 10 and the brazein protein of the present invention were prepared by the following method.
  • a heat shock protein consisting of 157 amino acids optimized for expression in host microorganisms using as a template a gene encoding heat shock protein 10 and the Brazein protein used as a partner protein Fragments of genes (SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3) encoding a fusion protein of 10 and brazein protein were constructed and synthesized.
  • a forward primer (BAZZEIN-HSP10; SEQ ID NO: 2) is used to synthesize a gene encoding the fusion protein (BRAZZEIN-HSP10; SEQ ID NO: 2) of the brazein protein to the amino terminus (N-terminus) of the heat shock protein 10.
  • 1) (5'-CATATGCAGGATAAATGT-3 ', SEQ ID NO: 5)
  • reverse primer (1) (5'-ACCCGCCATGTATTCACA-3', SEQ ID NO: 6) using a 165 encoding a zebrain protein optimized for E. coli Nucleotides were synthesized and used for E.
  • coli using a forward primer (2) (5'-TGTGAATACATGGCGGGT-3 ', SEQ ID NO: 7) and a reverse primer (2) (5'-CTCGAGGTCAACGTATTT-3', SEQ ID NO: 8).
  • 306 nucleotides encoding optimized heat shock protein 10 were synthesized.
  • each of the brazein protein and the heat shock protein 10 synthesized by the above method were used as templates, and finally the N-terminal of the heat shock protein 10 was used.
  • a gene consisting of 471 nucleotides (SEQ ID NO: 1) encoding a fusion protein to which a brazein protein is bound was synthesized by polymerase chain reaction (PCR).
  • the gene fragment and the recombinant plasmid were cut and inserted with the same restriction enzymes (5 'terminal Nde I and 3' terminal Xho I) to prepare recombinant plasmids (pET22b :: H10BRAZZEIN and pET22b :: BRAZZEINH10) shown in FIG.
  • the recombinant plasmid thus prepared was transformed into E. coli TOP10 to obtain a large amount of gene construct from the host microorganism.
  • the prepared recombinant plasmid was transformed into E. coli Rosetta2 (DE3) pLysS (Novagen, Germany) to prepare a recombinant microorganism for the production of a fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein.
  • the cells were further cultured for 3-4 hours, and the cells were recovered by centrifugation.
  • the cells were completely immersed in phosphate buffered saline (8 g sodium chloride, 0.2 g potassium chloride, 1.44 g sodium diphosphate (Na 2 HPO 4 ), 0.24 g potassium dihydrogen phosphate (KH 2 PO 4 ) / L, pH 7.4).
  • phosphate buffered saline 8 g sodium chloride, 0.2 g potassium chloride, 1.44 g sodium diphosphate (Na 2 HPO 4 ), 0.24 g potassium dihydrogen phosphate (KH 2 PO 4 ) / L, pH 7.4
  • the cells were disrupted using an ultrasonic crusher and the solution containing the intracellular protein was separated.
  • the separated solutions were used as samples to confirm protein expression by 15% SDS-polyacrylamide gel electrophoresis.
  • the expression of the fusion protein of the heat shock protein 10 and the brazein protein was confirmed in the cell lys
  • the ultra solubilization method (0.45) after solubilizing the aggregate body with a solubilization buffer solution (5M urea, pH 11) (0.45) Refolding was performed using a micrometer microfiltration membrane and 1K ultrafiltration membrane), and finally, a fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein was separated using a storage buffer (PBS).
  • PBS storage buffer
  • the isolated fusion protein was passed through a nickel-agarose column at a rate of 1 to 3 ml / min. After washing the column several times with binding buffer, 50, 100 and 250 mM imidazole solution (pH 7.4) was applied to the column to fractionate and elute the fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein by 1 ml in the column. After removal of imidazole in the buffer using 10 mM potassium phosphate buffer, the fusion protein was finally purified purely, and 15% SDS-acrylamide gel electrophoresis was performed to determine the result. As a result, the final purified fusion protein could be confirmed near the expected size (including about 17-20 kDa heat tag) (FIG. 2).
  • the activity of the fusion protein was measured by selecting a sample in which the presence of the fusion protein of the heat shock protein 10 separated from the purified Example 2 and the brazein protein was confirmed.
  • Heat shock protein 10 HSP10
  • BRAZZEIN brazein protein
  • HSP10 brazein protein
  • BRAZZEIN brazein protein
  • the number of amino acids of the fusion protein is 157, and the number of amino acids of the heat shock protein 10 and the brazein protein, which are a single protein, is 103 and 54, respectively, so that a single protein and a fusion protein of the same concentration (for example, 0.02 ppm) were In this case, the number of moles of the fusion protein is about 1/3 to 2/3 of that of the single protein. Therefore, if a similar dermal fibroblast proliferation effect is observed for the same concentration, the fusion protein has a skin fibroblast proliferation effect of 1.5 to 3 times that of a single protein.
  • 1,1-diphenyl-2-picryl-hydrazyl (1,1-Diphenyl-2-), one of the methods of measuring the free radical scavenging effect, was used to determine the antioxidant efficacy of the fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein.
  • pycryl-Hydrazyl (DPPH) method was used.
  • L-ascorbic acid was used as a control to determine the antioxidant efficacy of the fusion protein between heat shock protein 10 and brazein protein.
  • heat shock protein 10, heat shock protein 10 and brazein protein fusion protein and L-ascorbic acid were prepared at a concentration of 1 ⁇ M, respectively, and DPPH was prepared at a concentration of 0.2 mM.
  • DPPH was prepared at a concentration of 0.2 mM.
  • Each was mixed 1: 1 and left at 37 ° C. for 30 minutes. Thereafter, the absorbance was measured at 520 nm with an ELISA reader. Free radical scavenging activity (%) was calculated by the following equation 1, the results are shown in FIG.
  • the fusion protein of heat shock protein 10 and brazein protein showed lower free radical scavenging activity than the positive control group L-ascorbic acid, but the free radicals increased by about five times compared to heat shock protein 10 single protein treatment group. It showed an scavenging effect. That is, the fusion protein of the heat shock protein 10 and the brazein protein of the present invention was inferred from having an anti-aging effect because it has a high antioxidant effect.

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Abstract

본 발명은 항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10(heat shock protein 10)과 브라제인(brazzein) 단백질의 융합단백질 및 이를 유효성분으로 함유하는 피부 주름 개선용 화장료 조성물에 관한 것으로, 본 발명의 화장료 조성물은 추후 기능성 화장품 소재로 유용하게 사용될 수 있을 것이다.

Description

항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 및 이를 유효성분으로 함유하는 피부 주름 개선용 화장료 조성물
항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 및 이를 유효성분으로 함유하는 피부 주름 개선용 화장료 조성물
열 충격 단백질(heat shock protein)은 극한 환경에 세포가 노출되었을 때 세포가 받는 피해를 막기 위해 발현되는 단백질 중 하나이다. 대부분의 열 충격 단백질은 극한 환경 노출에 따른 단백질의 기능 상실을 막아주는 샤페론(chaperon) 기능을 가지고 있으며, 다량의 에너지(ATP)를 필요로 한다. 피부에 있어서, 고온 및 자외선은 대표적인 극한 환경으로, 특히 자외선은 피부 노화의 직접적인 원인이 된다. 최근 자외선 차단 효과를 나타내는 열 충격 단백질에 대한 연구가 진행 중이며, 화장품 조성료로 사용하고자 하는 시도가 다양하게 진행 중이다.
브라제인(brazzein)은 서아프리카의 펜타디플란드라 브라제아나 바이론(Pentadiplandra brazzeana Baillon)의 열매에서 처음 추출된 감미 단백질이다. 브라제인은 수크로스(sucrose)와 비교했을 때 약 500배 내지 2,000배 이상의 단맛을 나타내며, 식물에서 추출한 브라제인의 대부분인 주(mahor) 타입은 아미노 말단 부위에 피로글루탐산(pyroglutamic acid) 잔기를 포함하여 54개의 아미노산을 가진다. 반면, 부(minor) 타입의 브라제인은 아미노 말단 부위의 피로글루탐산 잔기 없이 53개의 아미노산 잔기만을 가지며, 주 타입의 브라제인에 비해 약 2배 정도 강한 단맛을 보인다. 브라제인은 감미 단백질 중 가장 작은 크기로 약 6.5kDa의 분자량을 갖고 있으며, 1개의 서브유닛(subunit)으로 구성된 단량체(monomer)이다. 단일 폴리펩티드(single polypeptide)로 이루어져 있으며 1개의 α-나선(helix)과 2개의 β-병풍구조(sheet)로 구성된다. 브라제인은 8개의 시스테인(cysteine) 잔기를 가져 분자 내에 4개의 이황화 결합(disulfide bond)를 형성하고 있어 열 안정성이 매우 높다. 또한, 물에 대한 용해도 및 pH 안정성이 매우 높은 특징이 있다.
본 발명에서는 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질을 융합하여 피부재생 효과가 우수한 융합단백질을 개발하였으며, 이를 유효 성분으로 함유하는 피부 재생 및 주름 개선용 화장료 조성물을 개발하였다.
한편, 한국공개특허 제2016-0084825호에는 Hsp70의 발현을 억제하는 양파피 발효 추출물을 유효성분으로 포함하는 '자외선 노출에 의한 피부 과민 반응 예방 및 개선용 조성물과 이를 이용한 화장료'가 개시되어 있고, 한국등록특허 제1239669호에는 '브라제인 발현용 재조합 발현벡터 및 이를 이용한 브라제인의 대량 생산방법'이 개시되어 있으나, 본 발명의 항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 및 이를 유효성분으로 함유하는 피부 주름 개선용 화장료 조성물에 대해서는 기재된 바가 없다.
본 발명은 상기와 같은 요구에 의해 도출된 것으로서, 본 발명자들은 대장균 코돈에 최적화한 열 충격 단백질 10 코딩 유전자와 브라제인 단백질 코딩 유전자를 융합하여 신규의 융합 단백질을 제조하였다. 제조된 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질은 개별 단백질 대비 항산화 효과가 우수한 것으로 확인되었으며, 상기 융합단백질을 피부 세포주에 처리한 결과, 개별 단백질 처리보다 융합단백질을 처리한 경우에 세포 증식 효과가 보다 우수한 것을 확인함으로써, 본 발명을 완성하였다.
상기 과제를 해결하기 위해, 본 발명은 서열번호 2 또는 서열번호 4의 아미노산 서열로 이루어진 항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10(heat shock protein 10)과 브라제인(brazzein) 단백질의 융합단백질을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 융합단백질을 코딩하는 유전자를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 유전자를 포함하는 재조합 벡터를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 재조합 벡터로 형질전환된 숙주세포를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 재조합 벡터로 숙주세포를 형질전환시키는 단계를 포함하는 숙주세포에서 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 생산 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 방법에 의해 생산된 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 제공한다.
또한, 본 발명은 서열번호 2 또는 서열번호 4의 아미노산 서열로 이루어진 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 유효성분으로 포함하는 피부 주름 개선용 화장료 조성물을 제공한다.
본 발명의 대장균 코돈 최적화된 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 코딩 유전자를 이용한 대장균에서의 생산 방법은 대장균 내에서 재조합 단백질이 응집체 형태로 발현되어 생산공정을 간소화하였으며, 재조합 단백질의 대량생산을 가능하게 하였고, 상기 방법에 의해 생산된 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질은 항산화 활성 및 피부 재생 효과가 우수하여, 미백 또는 주름 개선을 위한 신규의 기능성 화장료 원료로 유용하게 사용될 수 있을 것이다.
도 1은 열 충격 단백질 10(HSP10)과 브라제인(Brazzein) 단백질의 융합단백질을 코딩하는 유전자를 포함하는 재조합 플라스미드(pET22b::H10BRAZZEIN 및 pET22b::BRAZZEINH10)의 제작 과정 및 대장균으로의 형질전환에 관한 모식도이다.
도 2는 대장균에서 본 발명의 융합단백질 발현시킨 후 최종 분리정제한 융합단백질의 SDS-PAGE 겔 사진이다. M, 크기 마커; 1, 브라제인 단백질과 열 충격 단백질 10의 융합단백질(BRAZZEIN-HSP10); 2, 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질(HSP10-BRAZZEIN).
도 3은 융합 단백질 제조에 사용된 브라제인 단백질(HSP10 및 BRAZZEIN), 브라제인 단백질과 열 충격 단백질 10의 융합단백질(BRAZZEIN-HSP10 및 HSP10-BRAZZEIN)을 피부섬유아세포에 각각 처리한 후, 피부섬유아세포의 세포 증식을 크리스탈 바이올렛 염색을 통해 확인한 결과이다.
도 4는 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 항산화 활성을 확인한 결과이다.
본 발명의 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호 2 또는 서열번호 4의 아미노산 서열로 이루어진 항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질(heat shock protein) 10과 브라제인(Brazzein) 단백질의 융합 단백질을 제공한다.
본 발명에 따른 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합 단백질의 범위는 서열번호 2(브라제인 단백질이 열 충격 단백질 10의 아미노 말단에 융합; BRAZZEIN-HSP10) 또는 서열번호 4(브라제인 단백질이 열 충격 단백질 10의 카복시 말단에 융합; HSP10-BRAZZEIN)의 아미노산 서열을 갖는 단백질 및 상기 단백질의 기능적 동등물을 포함한다. "기능적 동등물"이란 아미노산의 부가, 치환 또는 결실의 결과, 상기 서열번호 2 또는 서열번호 4의 아미노산 서열과 적어도 70% 이상, 바람직하게는 80% 이상, 더욱 바람직하게는 90% 이상, 더 더욱 바람직하게는 95% 이상의 서열 상동성을 갖는 것으로, 서열번호 2 또는 서열번호 4로 표시되는 단백질과 실질적으로 동질의 활성을 나타내는 단백질을 말한다. "실질적으로 동질의 활성"이란 항산화 효과 및 세포 재생 효과를 의미한다. 본 발명은 또한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 단편, 유도체 및 유사체(analogues)를 포함한다. 본 명세서에 사용된, 용어 "단편", "유도체" 및 "유사체"는 본 발명의 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질과 실질적으로 같은 생물학적 기능 또는 활성을 보유하는 폴리펩타이드를 말한다.
본 발명의 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질은 바람직하게는 서열번호 2 또는 서열번호 4의 아미노산 서열로 이루어지며, 서열번호 2의 아미노산 서열로 이루어진 융합단백질은 상기 아미노산 서열 중 1번째 내지 55번째 아미노산 서열로 이루어진 브라제인 단백질과, 56번째 내지 157번째 아미노산 서열로 이루어진 열 충격 단백질 10을 융합시켜 제작된 신규 단백질이며, 서열번호 4의 아미노산 서열로 이루어진 융합단백질은 상기 아미노산 서열 중 1번째 내지 102번째 아미노산 서열로 이루어진 열 충격 단백질 10과, 103번째 내지 157번째 아미노산 서열로 이루어진 브라제인 단백질을 융합시켜 제작된 신규 단백질이다.
본 발명은 또한, 상기 항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 코딩하는 유전자를 제공한다. 상기 유전자는 대장균 코돈 최적화된 서열번호 1 또는 서열번호 3의 염기서열로 이루어질 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명에 따른 상기 항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 코딩하는 유전자는 서열번호 1(브라제인 단백질이 열 충격 단백질 10의 아미노 말단에 융합된 단백질의 코딩 유전자) 또는 서열번호 3(브라제인 단백질이 열 충격 단백질 10의 카복시 말단에 융합된 단백질의 코딩 유전자)의 염기서열을 포함할 수 있다. 또한, 상기 염기서열의 상동체가 본 발명의 범위 내에 포함된다. 구체적으로는, 상기 유전자는 서열번호 1 또는 서열번호 3의 염기서열로 이루어진 군으로부터 선택되는 염기서열과 각각 70% 이상, 더욱 바람직하게는 80% 이상, 더 더욱 바람직하게는 90% 이상, 가장 바람직하게는 95% 이상의 서열 상동성을 가지는 염기서열을 포함할 수 있다. 폴리뉴클레오티드에 대한 "서열 상동성의 %"는 두 개의 최적으로 배열된 서열과 비교 영역을 비교함으로써 확인되며, 비교 영역에서의 폴리뉴클레오티드 서열의 일부는 두 서열의 최적 배열에 대한 참고 서열(추가 또는 삭제를 포함하지 않음)에 비해 추가 또는 삭제(즉, 갭)를 포함할 수 있다.
"코돈 최적화"는 코딩된 단백질이 유기체에서 보다 효율적으로 발현되도록 특정 유기체에서 우선적으로 사용되는 것으로 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드의 코돈을 변화시키는 것을 의미한다. 대부분의 아미노산이 "동의어" 또는 "동의" 코돈이라고 하는, 몇몇 코돈에 의해 표시된다는 점에서, 유전자 코드가 축퇴적이지만, 특정 유기체에 의한 코돈 용법은 임의적이지 않고 특정 코돈 트리플렛에 편향적이다. 이러한 코돈 용법 편향성은 소정 유전자, 공통 기능 또는 조상 기원의 유전자, 고도로 발현되는 단백질 대 낮은 복제수 단백질, 및 유기체 게놈의 집합적 단백질 코딩 영역과 관련하여 더 높을 수 있다. 본 발명의 상기 서열번호 1 또는 서열번호 3의 염기서열은 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 코딩하는 유전자가 대장균 내에서 발현될 수 있도록 대장균의 코돈에 최적화된 서열이다.
본 발명은 또한, 상기 유전자를 포함하는 재조합 벡터 및 상기 재조합 벡터로 형질전환된 숙주세포를 제공한다.
용어 "재조합"은 세포가 이종의 핵산을 복제하거나, 상기 핵산을 발현하거나 또는 펩티드, 이종의 펩티드 또는 이종의 핵산에 의해 암호된 단백질을 발현하는 세포를 지칭하는 것이다. 재조합 세포는 상기 세포의 천연 형태에서는 발견되지 않는 유전자 또는 유전자 절편을, 센스 또는 안티센스 형태 중 하나로 발현할 수 있다. 또한 재조합 세포는 천연 상태의 세포에서 발견되는 유전자를 발현할 수 있으며, 그러나 상기 유전자는 변형된 것으로서 인위적인 수단에 의해 세포 내 재도입된 것이다.
본 발명에서, 상기 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 코딩하는 유전자는 재조합 발현 벡터 내로 삽입될 수 있다. 용어 "재조합 발현 벡터"는 세균 플라스미드, 파아지, 효모 플라스미드, 식물 세포 바이러스, 포유동물 세포 바이러스, 또는 다른 벡터를 의미한다. 대체로, 임의의 플라스미드 및 벡터는 숙주 내에서 복제 및 안정화할 수 있다면 사용될 수 있다. 상기 발현 벡터의 중요한 특성은 복제 원점, 프로모터, 마커 유전자 및 번역 조절 요소(translation control element)를 가지는 것이다.
열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 코딩하는 유전자 서열 및 적당한 전사/번역 조절 신호를 포함하는 발현 벡터는 당업자에 주지된 방법에 의해 구축될 수 있다. 상기 방법은 시험관 내 재조합 DNA 기술, DNA 합성 기술 및 생체 내 재조합 기술 등을 포함한다. 상기 DNA 서열은 mRNA 합성을 이끌기 위해 발현 벡터 내의 적당한 프로모터에 효과적으로 연결될 수 있다. 또한 발현 벡터는 번역 개시 부위로서 리보좀 결합 부위 및 전사 터미네이터를 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구현 예에 따른 상기 재조합 벡터는, pET22b 벡터에 합성한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 코딩하는 유전자(서열번호 1 또는 서열번호 3)를 5' 말단(NdeI 제한효소 사이트)과 3' 말단 (XhoI 제한효소 사이트)에 인프레임(in frame)으로 융합하여 제조하였으며, 상기 유전자를 lac 프로모터(lac promoter)와 lacI 리프레서(lacI repressor)에 의하여 효과적으로 발현시켜 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 제조하는 것을 특징으로 하는 재조합 벡터일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 벡터를 원핵세포에 안정되면서 연속적으로 클로닝 및 발현시킬 수 있는 숙주세포는 당업계에 공지된 어떠한 숙주세포도 이용할 수 있으며, 예컨대, E. coli Rosetta, E. coli JM109, E. coli BL21, E. coli RR1, E. coli LE392, E. coli B, E. coli X 1776, E. coli W3110, 바실러스 서브틸리스(Bacillus subtilis), 바실러스 츄린겐시스(Bacillus thuringiensis)와 같은 바실러스 속 균주, 그리고 살모넬라 티피무리움(Salmonella typhimurium), 세라티아 마르세슨스(Serratia marcescens) 및 다양한 슈도모나스 종과 같은 장내균과 균주 등이 있다.
또한, 본 발명의 벡터를 진핵 세포에 형질전환시키는 경우에는 숙주세포로서, 효모(Saccharomyce cerevisiae), 곤충세포, 사람세포(예컨대, CHO 세포주(Chinese hamster ovary), W138, BHK, COS-7, HEK 293, HepG2, 3T3, RIN 및 MDCK 세포주) 및 식물세포 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 형질전환된 숙주세포는 E. coli Rosetta2 (DE3) pLysS 균주일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 벡터를 숙주세포 내로 운반하는 방법은, 숙주세포가 원핵 세포인 경우, CaCl2 방법, 하나한 방법(Hanahan, D., 1983 J. Mol. Biol. 166, 557-580) 및 전기천공 방법 등에 의해 실시될 수 있다. 또한, 숙주세포가 진핵세포인 경우에는, 미세주입법, 칼슘포스페이트 침전법, 전기천공법, 리포좀-매개 형질감염법, DEAE-덱스트란 처리법, 및 유전자 밤바드먼트 등에 의해 벡터를 숙주세포 내로 주입할 수 있다.
본 발명은 또한, 상기 재조합 벡터로 숙주세포를 형질전환시켜 열 충격 단백질 11과 브라제인 단백질의 융합백질을 코딩하는 유전자를 과발현시키는 단계를 포함하는, 숙주세포에서 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 생산 방법 및 상기 방법에 의해 생산된 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 제공한다.
본 발명의 일 구현 예에 따른 방법에 있어서, 상기 숙주세포는 바람직하게는 대장균일 수 있으며, 더욱 바람직하게는 E. coli Rosetta2(DE3) pLysS 균주일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명은 또한, 서열번호 2 또는 서열번호 4의 아미노산 서열로 이루어진 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 유효성분으로 포함하는 피부 주름 개선용 화장료 조성물을 제공한다.
본 발명의 일 구현 예에 따른 화장료 조성물에서, 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 함량은 화장료 조성물 총 중량 대비 0.000001 내지 0.00002 중량%로 포함될 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 화장료 조성물에는 상기 유효성분 이외에 화장품 조성물에 통상적으로 이용되는 성분들을 포함하며, 예컨대 지방 물질, 유기 용매, 용해제, 농축제 및 겔화제, 연화제, 항산화제, 현탁화제, 안정화제, 발포제(foaming agent), 방향제, 계면활성제, 물, 이온형 또는 비이온형 유화제, 충전제, 금속이온 봉쇄제 및 킬레이트화제, 보존제, 비타민, 차단제, 습윤화제, 필수 오일, 염료, 안료, 친수성 또는 친유성 활성제, 지질 소낭과 같은 통상적인 보조제, 그리고 담체를 포함한다.
본 발명의 조성물은 당업계에서 통상적으로 제조되는 어떠한 제형으로도 제조될 수 있으며, 예를 들어, 용액, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 크림, 로션, 파우더, 오일, 분말 파운데이션, 유탁액 파운데이션, 왁스 파운데이션 및 스프레이 등으로 제형화될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 보다 상세하게는, 스킨, 스킨 소프트너, 스킨토너, 아스트린젠트, 로션, 밀크로션, 모이스쳐로션, 영양로션, 마사지크림, 영양크림, 아이 크림, 모이스쳐 크림, 핸드크림, 에센스, 영양에센스, 팩, 클렌징폼, 클렌징 워터, 클렌징 로션, 클렌징 크림, 바디로션, 바디클렌져, 비누 및 파우더의 화장품 제형으로 제조될 수 있다.
본 발명의 화장료 조성물의 제형이 페이스트, 크림 또는 겔인 경우에는 담체 성분으로서 동물성유, 식물성유, 왁스, 파라핀, 전분, 트라칸트, 셀룰로오스 유도체, 폴리에틸렌 글리콜, 실리콘, 벤토나이트, 실리카, 탈크 또는 산화아연 등이 이용될 수 있다.
본 발명의 화장료 조성물의 제형이 파우더 또는 스프레이인 경우에는 담체 성분으로서 락토스, 탈크, 실리카, 알루미늄 히드록시드, 칼슘 실리케이트 또는 폴리아미드 파우더가 이용될 수 있고, 특히 스프레이인 경우에는 추가적으로 클로로플루오로 히드로카본, 프로판/부탄 또는 디메틸 에테르와 같은 추진체를 포함할 수 있다.
본 발명의 화장료 조성물의 제형이 용액 또는 유탁액인 경우에는 담체 성분으로서 용매, 용해화제 또는 유탁화제가 이용되고, 예컨대 물, 에탄올, 이소프로판올, 에틸 카보네이트, 에틸 아세테이트, 벤질 알코올, 벤질 벤조에이트, 프로필렌글리콜, 1,3-부틸글리콜 오일, 글리세롤 지방족 에스테르, 폴리에틸렌 글리콜 또는 소르비탄의 지방산 에스테르가 있다.
본 발명의 화장료 조성물의 제형이 현탁액인 경우에는 담체 성분으로서 물, 에탄올 또는 프로필렌글리콜과 같은 액상의 희석제, 에톡실화 이소스테아릴 알코올, 폴리옥시에틸렌 소르비톨 에스테르 및 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르와 같은 현탁제, 미소결정성 셀룰로오스, 알루미늄 메타히드록시드, 벤토나이트, 아가 또는 트라칸트 등이 이용될 수 있다.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다. 단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1. 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 생산을 위한 재조합 발현벡터 및 형질전환 재조합 미생물의 제조
본 발명의 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 코딩하는 최적화된 유전자, 재조합 발현벡터 및 형질전환 재조합 미생물은 다음의 방법으로 제작하였다.
열 충격 단백질 10(Heat shock protein 10)과 파트너 단백질로 사용되는 브라제인(Brazzein) 단백질을 코딩하는 유전자를 주형으로 사용하여 숙주 미생물 내에서 발현될 수 있도록 최적화된, 157개의 아미노산으로 이루어진 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합 단백질을 코딩하는 유전자(서열번호 1 또는 서열번호 3) 단편들을 제작 및 합성하였다.
열 충격 단백질 10의 아미노 말단(N-terminus)에 브라제인 단백질이 결합된 브라제인 단백질-열 충격 단백질 10의 융합단백질(BRAZZEIN-HSP10; 서열번호 2)을 코딩하는 유전자를 합성하기 위해 정방향 프라이머(1)(5'-CATATGCAGGATAAATGT-3', 서열번호 5)과 역방향 프라이머(1)(5'-ACCCGCCATGTATTCACA-3', 서열번호 6)을 사용하여 대장균에 적합하도록 최적화된 브라제인 단백질을 코딩하는 165개의 뉴클레오티드를 합성하였으며, 정방향 프라이머(2)(5'-TGTGAATACATGGCGGGT-3', 서열번호 7)와 역방향 프라이머(2)(5'-CTCGAGGTCAACGTATTT-3', 서열번호 8)를 사용하여 대장균에 적합하도록 최적화된 열 충격 단백질 10을 코딩하는 306개의 뉴클레오티드를 합성하였다. 상기의 방법으로 합성한 각각의 브라제인 단백질과 열 충격 단백질 10을 코딩하는 유전자를 주형으로 하여 상기 정방향 프라이머(1)과 역방향 프라이머(2)를 사용하여 최종적으로 열 충격 단백질 10의 N-말단에 브라제인 단백질이 결합된 융합단백질을 코딩하는 471개의 뉴클레오티드로 구성된 유전자(서열번호 1)를 중합효소 연쇄반응(PCR)을 통해 합성하였다.
열 충격 단백질 10의 카복시 말단(C-terminus)에 브라제인 단백질이 결합된 열 충격 단백질 10-브라제인 단백질의 융합단백질(HSP10-BRAZZEIN; 서열번호 4)을 코딩하는 유전자를 합성하기 위해 정방향 프라이머(3)(5'-CATATGGCGGGTCAGGCG-3', 서열번호 9)과 역방향 프라이머(3)(5'-ATCCTGCATGTCAACGTA-3', 서열번호 10), 정방향 프라이머(4)(5'-TACGTTGACATGCAGGAT-3', 서열번호 11)와 역방향 프라이머(4)(5'-CTCGAGGTATTCACAGTA-3', 서열번호 12)를 사용하여 전술한 방법과 동일하게 열 충격 단백질 10의 C-말단에 브라제인 단백질이 결합된 융합단백질을 코딩하는 471개의 뉴클레오티드로 구성된 유전자(서열번호 3)를 합성하였다.
상기 유전자 단편과 재조합 플라스미드를 동일한 제한효소(5' 말단 NdeI 및 3' 말단 XhoI)로 절단하고 삽입하여, 도 1에 나타낸 재조합 플라스미드(pET22b::H10BRAZZEIN 및 pET22b::BRAZZEINH10)를 제작하였다. 제조된 재조합 플라스미드를 E. coli TOP10에 형질전환시켜서, 숙주 미생물로부터 유전자 컨스트럭트를 대량 얻었다.
그 후, 제조된 재조합 플라스미드를 E. coli Rosetta2 (DE3) pLysS(Novagen, 독일)에 형질전환시켜서, 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 생산을 위한 재조합 미생물을 제작하였다.
실시예 2. 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 발현 유도, 분리 및 정제
실시예 1에서 제조한 E. coli Rosetta2 (DE3) pLysS를 각각 1ℓ LB 배지(10% 트립토판, 10% 염화나트륨 및 5% 효모 추출물) 혹은 BSB 배지(1% 트립토판, 0.5% 효모 추출물, 1% 글루코스 및 0.1% HEPES(pH 7.0), ㈜넥스젠바이오텍)를 사용하여 회분 배양(batch culture) 시 OD600=0.6~0.8이 될 때까지, 또는 20ℓ 발효기를 사용하여 연속 배양 시에는 OD600=15~20이 될 때까지 배양하였다. 이 후, 세포 배양 배지에 각각 최종 1~5mM IPTG 또는 2% 락토오즈를 가하여 재조합 대장균의 유전자 발현을 유도하였다. 유전자 발현 유도 후 3~4시간 더 배양하고 세포들을 원심분리방법으로 회수하였다. 이 세포들을 완충용액(Phosphate buffered saline, 8g 염화나트륨, 0.2g 염화칼륨, 1.44g 제2인산나트륨(Na2HPO4), 0.24g 인산이수소칼륨(KH2PO4)/ℓ, pH 7.4)에 완전히 현탁시킨 후, 초음파 파쇄기를 사용하여 세포를 파괴하고 세포 내 단백질을 포함하는 용액을 분리하였다. 상기 분리된 용액들을 시료로 하여 15% SDS-폴리아크릴아마이드 겔 전기영동으로 단백질 발현 여부를 확인하였다. 그 결과, IPTG 또는 락토오즈를 통해 발현 유도를 한 세포 조용해물에서 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 발현을 확인할 수 있었다.
발현이 확인된 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 분리, 정제하기 위해서 응집체(inclusion body)를 가용화 완충용액(5M 요소(urea), pH 11)으로 가용화한 후 초미세 여과방법(0.45㎛ 정밀여과막과 1K 초미세여과막)을 이용하여 재접힘(refolding) 과정을 수행하였으며, 저장용 완충용액(PBS)을 사용하여 최종적으로 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 분리하였다.
상기 융합단백질을 완전히 정제하기 위해 분리한 융합단백질을 니켈-아가로즈 컬럼에 1~3㎖/분의 속도로 통과시켰다. 이어 바인딩 완충용액으로 컬럼을 수 회 세척한 후 50, 100 및 250 mM 이미다졸 용액(pH 7.4)을 컬럼에 적용하여 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 컬럼에서 1㎖씩 분획, 용출시킨 후 10mM 인산칼륨(potassium phosphate) 버퍼를 사용하여 버퍼 내 이미다졸을 제거하여 최종적으로 융합단백질을 순수하게 정제하였고, 그 결과를 알아보기 위해 15% SDS-아크릴아마이드 겔 전기영동을 수행하였다. 그 결과, 최종 정제된 융합단백질을 예측된 크기 근처 (약 17~20kDa 히스 태그 포함)에서 확인할 수 있었다(도 2).
실시예 3. 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 활성 측정-피부섬유아세포의 세포 증식 효과
실시예 2에서 분리, 정제된 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 존재가 확인된 시료를 택하여 융합 단백질의 활성을 측정하였다.
피부섬유아세포(Human Dermal Fibroblasts adult, HDFa cell)를 배양한 후 세포에 각각 0, 0.02, 0.2, 2.0, 20ppm 농도의 융합단백질 제조에 사용된 열 충격 단백질 10(HSP10), 브라제인 단백질(BRAZZEIN), 또는 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질(BRAZZEIN-HSP10, HSP10-BRAZZEIN)을 각각 처리한 후 3일 동안 37℃에서 배양하였다. 이 후 크리스탈 바이올렛 염색법으로 피부섬유아세포의 증식 여부를 확인하였다.
그 결과 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 농도가 증가할수록 피부섬유아세포의 증식 효과가 우수함을 확인할 수 있었다(도 3). 또한, 단일 단백질 처리군(HSP10 또는 BRAZZEIN)과 비교하여 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질(BRAZZEIN-HSP10, HSP10-BRAZZEIN)의 세포 증식 효과가 우수한 것으로 관찰되었다. 융합단백질의 아미노산 개수는 157개이고, 단일 단백질인 열 충격 단백질 10 및 브라제인 단백질의 아미노산 개수는 각각 103개 및 54개이므로 동일한 농도(예를 들면, 0.02ppm)의 단일 단백질 및 융합단백질을 처리한 경우에 융합단백질의 몰수는 단일 단백질에 비해 대략 1/3~2/3 정도가 된다. 따라서, 동일한 농도에 대해 비슷한 피부섬유아세포 증식 효과가 나타난다면 융합단백질은 단일 단백질에 비해 1.5~3배 정도의 피부섬유아세포 증식 효과를 갖는 것이다. 도 3에서 알 수 있는 바와 같이, 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 처리한 경우가 단일 단백질 처리와 비교하여 피부섬유아세포 증식 효과가 우수한 것으로 확인되므로 적어도 1.5~3배 이상의 피부섬유아세포 증식 효과를 갖는다는 것을 알 수 있는 것이다. 상기 결과를 통해, 본 발명의 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질은 피부 세포 증식 효과가 우수함을 확인할 수 있었다.
실시예 4. 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 활성 측정-항산화 효과
열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 항산화 효능을 측정하기 위해 자유라디칼 소거 효과 측정 방법 중 하나인 1,1-디페닐-2-피크릴-히드라질(1,1-Diphenyl-2-pycryl-Hydrazyl; DPPH) 방법을 사용하였다.
열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 항산화 효능을 알아보기 위해 대조군으로 L-아스코르브산(ascorbic acid)을 사용하였다. 실험 방법은 열 충격 단백질 10, 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질 및 L-아스코르브산을 각각 1μM 농도로 준비하였으며 DPPH는 0.2mM 농도로 준비하였다. 각각을 1:1로 혼합한 후 37℃에서 30분 방치하였다. 이 후 ELISA reader로 520nm에서 흡광도를 측정하였다. 자유라디칼 소거 활성(%)은 하기 식 1로 계산하였으며, 그 결과는 도 4에 나타내었다.
자유라디칼 소거활성(%)=100-((B/A)*100) (식 1)
A: 시료를 처리하지 않은 대조군의 흡광도
B: 시료를 처리한 실험군의 흡광도
상기 결과, 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질은 양성대조군인 L-아스코르브산보다는 낮은 자유라디칼 소거 활성을 보였지만, 열 충격 단백질 10 단일 단백질 처리군과 비교하여 약 5배 이상 증가된 자유라디칼 소거 효과를 보였다. 즉, 본 발명의 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질은 높은 항산화 효능을 가지고 있으므로 피부 노화 방지 효과가 있음을 유추할 수 있었다.

Claims (8)

  1. 서열번호 2 또는 서열번호 4의 아미노산 서열로 이루어진 항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10(heat shock protein 10)과 브라제인(brazzein) 단백질의 융합단백질.
  2. 제1항의 항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 코딩하는 유전자.
  3. 제2항에 있어서, 상기 유전자는 대장균 코돈 최적화된 서열번호 1 또는 서열번호 3의 염기서열로 이루어진 것을 특징으로 하는 유전자.
  4. 제2항 또는 제3항의 유전자를 포함하는 재조합 벡터.
  5. 제4항의 재조합 벡터로 형질전환된 숙주세포.
  6. 제4항의 재조합 벡터로 숙주세포를 형질전환시켜 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 코딩하는 유전자를 과발현시키는 단계를 포함하는, 숙주세포에서 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 생산 방법.
  7. 제6항에 있어서, 상기 숙주세포는 대장균인 것을 특징으로 하는 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질의 생산 방법.
  8. 서열번호 2 또는 서열번호 4의 아미노산 서열로 이루어진 항산화 활성 및 피부 세포 증식 효과가 증가한 열 충격 단백질 10과 브라제인 단백질의 융합단백질을 유효성분으로 포함하는 피부 재생 및 주름 개선용 화장료 조성물.
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