WO2018052137A1 - 微粒子分注装置、微粒子解析装置、及び反応検出装置、並びにそれらを用いる方法 - Google Patents

微粒子分注装置、微粒子解析装置、及び反応検出装置、並びにそれらを用いる方法 Download PDF

Info

Publication number
WO2018052137A1
WO2018052137A1 PCT/JP2017/033551 JP2017033551W WO2018052137A1 WO 2018052137 A1 WO2018052137 A1 WO 2018052137A1 JP 2017033551 W JP2017033551 W JP 2017033551W WO 2018052137 A1 WO2018052137 A1 WO 2018052137A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
reservoir
dispensing
sample
flow path
fine particle
Prior art date
Application number
PCT/JP2017/033551
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
武田　一男
祐 藤村
真行 石毛
崇秀 稲生
洋輔 番所
仁 赤木
宏典 大澤
Original Assignee
株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ filed Critical 株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ
Priority to EP17851034.3A priority Critical patent/EP3514518A4/en
Priority to CN202211599219.9A priority patent/CN116429665A/zh
Priority to US16/333,528 priority patent/US20190339189A1/en
Priority to JP2018539200A priority patent/JP7020689B2/ja
Priority to CN201780057119.4A priority patent/CN109716102B/zh
Publication of WO2018052137A1 publication Critical patent/WO2018052137A1/ja
Priority to JP2022010572A priority patent/JP2022050698A/ja

Links

Images

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N35/00—Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor
    • G01N35/10—Devices for transferring samples or any liquids to, in, or from, the analysis apparatus, e.g. suction devices, injection devices
    • G01N35/1009—Characterised by arrangements for controlling the aspiration or dispense of liquids
    • G01N35/1016—Control of the volume dispensed or introduced
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/02—Burettes; Pipettes
    • B01L3/021—Pipettes, i.e. with only one conduit for withdrawing and redistributing liquids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/686—Polymerase chain reaction [PCR]
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume, or surface-area of porous materials
    • G01N15/10—Investigating individual particles
    • G01N15/14—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume, or surface-area of porous materials
    • G01N15/10—Investigating individual particles
    • G01N15/14—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers
    • G01N15/1404—Fluid conditioning in flow cytometers, e.g. flow cells; Supply; Control of flow
    • G01N15/1433—
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume, or surface-area of porous materials
    • G01N15/10—Investigating individual particles
    • G01N15/14—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers
    • G01N15/1434—Electro-optical investigation, e.g. flow cytometers using an analyser being characterised by its optical arrangement
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N35/00—Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor
    • G01N35/10—Devices for transferring samples or any liquids to, in, or from, the analysis apparatus, e.g. suction devices, injection devices
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N35/00—Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor
    • G01N35/10—Devices for transferring samples or any liquids to, in, or from, the analysis apparatus, e.g. suction devices, injection devices
    • G01N35/1009—Characterised by arrangements for controlling the aspiration or dispense of liquids
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N37/00—Details not covered by any other group of this subclass
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00—Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/06—Fluid handling related problems
    • B01L2200/0636—Focussing flows, e.g. to laminate flows
    • G01N15/149—
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume, or surface-area of porous materials
    • G01N15/10—Investigating individual particles
    • G01N2015/1006—Investigating individual particles for cytology
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N35/00—Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor
    • G01N35/10—Devices for transferring samples or any liquids to, in, or from, the analysis apparatus, e.g. suction devices, injection devices
    • G01N2035/1027—General features of the devices
    • G01N2035/1034—Transferring microquantities of liquid
    • G01N2035/1039—Micropipettes, e.g. microcapillary tubes

Definitions

  • the present invention relates to a fine particle dispensing apparatus, a fine particle analysis apparatus, a reaction detection apparatus, and a method using them.
  • Patent Document 2 describes a cell or fine particle separation method used in a general cell sorter. This method is a method in which a sample liquid is ejected as droplets from a droplet forming nozzle into the air, and the droplets containing cells to be separated are separated by an electric field.
  • Patent Document 4 describes a flow cytometer technique using a disposable exchange type micro flow channel cartridge that realizes the contamination free optimum for regenerative medicine.
  • Patent Document 5 describes a method of separating cells in a disposable exchange type microchannel cartridge. Further, Patent Document 6 describes a method improved so as to reduce the influence of the flow in the microchannel.
  • Patent Document 11 describes a technique in which a cell suspension is stirred by rotating a propeller in a sample reservoir connected to a microchannel.
  • Patent Document 7 discloses a technique for sucking up cells with a hollow pipette, moving them to different locations, and discharging and dispensing them.
  • Japanese Patent Application Laid-Open No. 2004-228688 discloses a technique of confirming the presence or absence of cells by image recognition and then dropping and dispensing the liquid droplets by pressure pulse driving using a piezo element.
  • a dispensing method in which the dispensing head can be replaced is described in Patent Document 10.
  • Patent Document 14 describes a technique in which a dispensing head is replaceable, the presence or absence of cells is confirmed by image recognition, and dispensing is performed in droplet units.
  • Non-Patent Document 1 describes a method of controlling the sample flow between different processes using a valve and a pump installed in a flow path. A method for controlling the flow of droplets in oil in a micro flow path using an electric field is described in US Published Patent No.
  • Patent Document 12 discloses a digital PCR technique in which a PCR reaction space is subdivided using an emulsion.
  • Patent Document 13 discloses a method of performing an isothermal growth reaction in a microchannel.
  • Patent Document 7 describes a technique for sucking up cells with a hollow pipette, moving them to different locations, discharging them, and dispensing them. However, it is not a technique for dispensing cells in units.
  • Patent Document 8 describes a technique in which the presence or absence of a cell is confirmed by image recognition, and is dropped and dispensed by a pressure pulse drive by a piezo element in units of droplets.
  • the hollow pipette for dispensing is a hollow container through which the dispensing liquid passes before dispensing, and refers to the tip part of the dispensing flow path, and is referred to as a dispensing pipette. To do.
  • the inventors examined a method that uses image recognition to dispense a single cell.
  • an object of the present invention is to provide a single cell dispensing technique that is free of contamination and damage.
  • the disposable exchange type micro flow path cartridge is important for a flow cytometer or a cell sorter for medical diagnosis in which contamination between samples is a problem.
  • the inventors of the present invention have used a microchannel cartridge, and in a microchannel having a small channel cross-sectional area, flow is caused by cell accumulation on the bottom surface of the sample reservoir and cell adsorption on the side surface of the channel. We found that it is easy to cause road clogging.
  • Patent Document 11 is a technique for preventing cells from being deposited on the bottom surface of the sample reservoir by gravity sedimentation, and is a technique for causing a constant cell concentration to flow through the microchannel.
  • This technique has an effect of preventing clogging of cells, but has no effect of releasing the clogged state. Accordingly, an object of the present invention is to provide a technique for preventing or eliminating clogging of cells in the flow path of the micro flow path cartridge, and further, the target cell for single cell dispensing is obtained from a contaminated cell group. It is to improve the technology of purification analysis.
  • the merit of the exchangeable micro-channel cartridge is that, in addition to contamination-free, the apparatus can be reduced in size by accommodating the entire channel system in a small cartridge. In this case, it is considered that there is a possibility that the sample obtained at the clinical site can be analyzed on the spot.
  • the clinical sample contains many contaminants that are an obstacle to the analysis.
  • Pretreatment for detecting the target gene with high sensitivity is required even in the presence of high-concentration impurities.
  • there is a method of detecting using droplets in oil such as a digital PCR method.
  • Non-Patent Document 1 is a technique for realizing a plurality of processes using a technique for incorporating a control element.
  • the products of Bio-Rad and RaindanceTechnologoes both of which are current PCR using emulsion droplets, consist of three processes: emulsion formation, gene amplification reaction, and analysis. It is not realized with one device. Accordingly, it is an object of the present invention to provide a technique for sequentially executing a plurality of different processes including specimen processing and detection in an exchangeable microchannel cartridge.
  • the present inventor has surprisingly photographed a dispensing solution in a dispensing pipette twice or more, It has been found that by distinguishing the moved fine particle-like substance from the fine particle-like substance that does not move as a floating particle, scratches or adhering foreign matter of the pipetting pipette can be distinguished from floating cells that can be easily moved.
  • the particles that do not move include not only the scratches of the pipetting pipette and the adhered foreign substances, but also cells that are the cells to be dispensed but do not move due to adhesion.
  • micro flow path cartridge also referred to as a micro flow path chip. It was found that the clogging of cells in the channel of the microchannel cartridge can be prevented or eliminated by making the pressure of the sheath reservoir higher than the pressure of the sample reservoir and causing the sheath fluid in the sheath reservoir to flow back to the sample reservoir. .
  • the present inventors have surprisingly found that the sample and the reagent From the mixture, an exchangeable form is formed by forming droplets with oil, performing a reaction in a droplet reservoir, and backflowing the droplets in the droplet reservoir through a flow path and detecting the reaction. It has been found that a plurality of different processes including sample processing and detection can be sequentially performed in the microchannel cartridge.
  • the present invention is based on these findings.
  • a fine particle dispensing apparatus having a transparent hollow pipette for dispensing a sample liquid containing fine particles and an image photographing means, Means for photographing the dispensing solution in the hollow pipette twice or more Compares two or more photographed images and floats the moving particulate-like object out of the photographed particulate-like substance from the non-moving particulate-like object Means for determining particles, and means for dispensing a sample liquid containing a desired number of suspended particles, Fine particle dispensing device, [2] The fine particle dispensing apparatus according to [1], further comprising means for forcibly moving the dispensing liquid in the hollow pipette.
  • the fine particle dispensing apparatus according to [1] or [2], further comprising means capable of adjusting the gas atmosphere to a carbon dioxide gas atmosphere of 0.03 to 50%.
  • the fine particle dispensing apparatus according to any one of [1] to [3], wherein data of the number of particles dispensed is recorded by storing a particle image in the hollow pipette immediately before dispensing.
  • the fine particle dispensing apparatus according to any one of [1] to [4], further including a dispensing preliminary chamber for supplying the sample solution from the upper part of the hollow pipette to the hollow pipette.
  • the fine particle dispensing apparatus is a fine particle dispensing apparatus further having means for forcibly moving the dispensing liquid in the hollow pipette, and the determination step (1) forcibly dispenses the dispensing liquid.
  • the fine particle dispensing apparatus is a fine particle dispensing apparatus further having means capable of adjusting the gas atmosphere to 0.03 to 50% carbon dioxide gas atmosphere, and the steps (1) to (3) are performed in 3 to
  • a sample solution of a quantity that can be dispensed a plurality of times is sucked into a dispensing reserve chamber at the top of the hollow pipette, and a certain amount of sample solution is hollowed out from the dispensing reserve chamber.
  • a flow path cartridge in which a flow path is formed on a transparent substrate, light irradiation means for irradiating light to the fine particles in the sample liquid flowing through the flow path, and generated from the fine particles when the light is irradiated
  • a particle analysis apparatus including detection means for detecting scattered light or fluorescence, identifying the particles based on their signal intensity, and detecting target particles;
  • a sample reservoir connected to the first flow path to the flow path cartridge, a sheath reservoir to which a second flow path and a third flow path are joined from both left and right sides of the first flow path, and a first after the merge
  • a waste liquid reservoir connected to the downstream side of the flow path is formed,
  • a fine particle analyzer comprising means for causing the sheath liquid in the sheath reservoir to flow back to the sample reservoir by making the pressure of the sheath
  • the force generation means generates a pulse flow that flows from the fourth branch flow path toward the fifth branch flow path, changes the flow of the fine particles toward the fifth branch flow path, and collects the fine particles in the collection reservoir
  • the fine particle separation device according to [11], [13] A method for preventing or removing flow path clogging of microparticles using the microparticle analysis apparatus according to [10] or the microparticle separation apparatus according to [11] or [12], wherein the pressure of the sheath reservoir is set to the sample reservoir
  • a reaction detection device for reacting a sample liquid in a microchannel cartridge and detecting a result of the reaction, having a sample reservoir, a reagent reservoir, an oil reservoir, and a droplet reservoir, and from the sample
  • the reaction is a gene amplification reaction
  • the reaction detection device has means for adjusting the temperature of the droplet reservoir
  • the reaction detection means is means for detecting fluorescence by light irradiation.
  • the reaction detector according to [15] [17]
  • the sample reservoir and the reagent reservoir are one sample reagent reservoir, and the first channel and the second channel are one third channel from the sample reagent reservoir.
  • a reaction detection device according to any one of [18] A reaction detection method using the reaction detection device according to any one of [14] to [17], wherein (1) a mixed solution of a sample and a reagent in a third channel is placed on both sides of the third channel To form oil droplets in the oil by supplying oil through the fourth channel and the fifth channel, (2) reacting the sample in the droplets, and (3) in the droplets Detecting the reaction of the sample of [19]
  • the reaction detection method wherein in the detection step (3), the reaction of the sample is detected after the liquid droplets flow backward from the liquid droplet reservoir to the third flow path, and [20]
  • the reaction detection method according to [18] or [19], wherein the reaction is a gene amplification reaction, and the detection is detection of an amplified gene, [21]
  • a flow path cartridge in which a flow path is formed on a transparent substrate, light irradiation means for irradiating light to the fine particles in the sample liquid flowing through the flow path,
  • a particle analysis or separation device including detection means for detecting scattered light or fluorescence, identifying the particles based on their signal intensities, and detecting target particles;
  • a fine particle analyzing or separating apparatus characterized by having means capable of adjusting a gas atmosphere around a carbon dioxide gas atmosphere of 0.03 to 50%, [22] The fine particle analyzing or separating apparatus according to [21], wherein the adjusting means covers the entire apparatus with a chamber and adjusts the carbon dioxide gas atmosphere, and [23] the adjusting means
  • the particulate analysis or separation device according to [21] which is a means for adjusting carbon dioxide in a gas atmosphere around the liquid in the path cartridge.
  • the cell sorting technology In the technology to analyze specific cells in high concentration of contaminated cells in one unit, the cell sorting technology, the technology to dispense a single cell, and the method of analyzing DNA and RNA contained in the cells are important It is.
  • the fine particle dispensing apparatus and the fine particle dispensing method of the present invention the non-movable brightness of the dispensing pipette such as scratches or adhering foreign matter or particles to be dispensed, but cells that adhere to the dispensing pipette cannot be dispensed. It becomes possible to distinguish the point from the movable floating cells to be dispensed, and the number of cells that can be dispensed in the dispensing pipette can be accurately measured.
  • the microparticle analysis apparatus the microparticle separation apparatus, and the microparticle flow path blockage prevention or removal method of the present invention
  • in the replaceable micro flow path cartridge clogging in the flow path of cells is prevented. It was possible to automatically execute the method for removing the clog later without removing the microchannel cartridge from the apparatus.
  • an emulsion formation process and amplification of a target gene in an emulsion are performed in an exchangeable flow path cartridge using a method for detecting genes with high sensitivity using an emulsion.
  • FIG. 7A is a diagram illustrating a state of a normal liquid flow in the exchange-type flow path cartridge for cell sorting, and a flow of sheath liquid for preventing or removing clogging of cells in the exchange-type flow path cartridge for cell sorting. It is a figure (B) shown.
  • FIG. B which shows a mode that it is stirred.
  • FIG. 5A is a diagram showing a process in which the sample liquid in the upstream reservoir of the exchange channel cartridge flows by pressure control through the channel connected to the downstream reservoir, in the upstream reservoir of the exchange channel cartridge.
  • particulate dispensing apparatus of the present invention shows an example of a dispensing unit in 5% CO 2 atmosphere.
  • the cell sorting of a CO 2 gas atmosphere a diagram illustrating a method implemented by placing the cell sorter into CO 2 gas chamber. This method realizes cell sorting in a CO 2 gas atmosphere without depending on the principle of cell sorting.
  • the cell sorting of a CO 2 gas atmosphere a view of the reservoir of the exchange microchannel cartridge shown in FIG. 2 shows a method of realizing by a CO 2 gas atmosphere.
  • Fine particle dispensing apparatus is a fine particle dispensing apparatus having a transparent hollow pipette for dispensing a sample liquid containing fine particles and an image photographing means.
  • FIG. 3 illustrates a method for distinguishing suspended particles moving in the pipetting pipette from scratches and attached foreign matter of the pipetting pipette.
  • FIG. 3A shows the distribution of the intensity of the bright spot of the image of the pipetting pipette taken at time T with light illumination with respect to the Z-direction position.
  • FIG. 3B shows a similar distribution taken at time T + ⁇ T.
  • FIG. 3C shows a difference distribution between time T and time T + ⁇ T. Only the suspended particles that move with time are detected by the above-mentioned time difference, with the intensity of the bright spot due to the scratches of the dispensing pipette and the adhering foreign matter not changing with time being zero. Since the cells move downward due to gravity sedimentation, floating cells can be detected only by the time difference.
  • hollow pipette and the image photographing means used in the present invention a hollow pipette and an image photographing means that are usually used in this field can be used without limitation.
  • the means for photographing the dispensing solution in the hollow pipette twice or more can define the number of times of photographing and the time interval between the photographing.
  • the number of times of photographing is not particularly limited as long as it is 2 times or more, but preferably 2 times.
  • the time interval between imaging is not particularly limited as long as cell movement can be detected.
  • imaging may be performed at a time interval of 0.1 to 60 seconds, and preferably 1 to 10 seconds. Yes, more preferably 2 to 5 seconds. This time interval is conveniently set so that the distance moved by gravity sedimentation is 20 ⁇ m or more when the size of the cells to be dispensed is 10 ⁇ m.
  • the suspended particle determining means of the present invention compares two or more captured images, and determines that the moved particulate-like object among the photographed particulate-like objects is a suspended particle by distinguishing it from the non-moving particulate-like object.
  • the particulate matter in the first photographed image is specified, and in the second photographed image or the third and subsequent photographed images, it is determined whether or not those particulate matter has moved, thereby moving the particulate matter. It is possible to discriminate between an object and a fine particle-like object that does not move.
  • Dispensing means As the dispensing means used in the present invention, a dispensing means usually used in this field can be used without limitation.
  • the fine particle dispensing apparatus of the present invention is a device that dispenses fine particles contained in a sample solution in a single unit.
  • the dispensing pipette is a transparent hollow pipette that can be automatically replaced, and the material is polypropylene or polystyrene.
  • the volume of dispensed liquid is 0.3 ⁇ L or less, and the presence / absence and number of particles of 4 ⁇ m or more are detected by image recognition of the entire dispensed volume of the hollow pipette for each dispensing, A specified number of particles can be dispensed into a multiwell plate.
  • the suspended particles that move due to gravity sedimentation in the hollow pipette are distinguished from scratches and adhering foreign matter in the hollow pipette, and the suspended particles are dispensed. be able to.
  • the fine particle dispensing apparatus of the present invention may have means for forcibly moving the dispensing liquid in the hollow pipette. Gravity sedimentation has a slow moving speed, so that it is possible to speed up the detection of suspended particles by forcibly moving the liquid in the pipetting pipette in a short time.
  • Specific examples of the forcible moving means include changing the air pressure applied to the dispensing liquid in the hollow pipette.
  • the fine particle dispensing apparatus of the present invention is a device that dispenses fine particles contained in a sample solution in a single unit, and the dispensing nozzle is a transparent hollow pipette that can be automatically replaced, and the amount of the dispensed liquid is 0.
  • the liquid is forcibly moved in the hollow pipette and the liquid is forcibly moved multiple times before and after the movement to identify the suspended particles in the hollow pipette and dispense suspended particles.
  • the amount of forced movement is set between 10 ⁇ m and 100 ⁇ m. For example, when the size of a cell to be dispensed is 10 ⁇ m, it is desirable to move it by 20 ⁇ m or more.
  • the pressure fluctuation is set by the movement amount of the piston of the cylinder pump.
  • the sample liquid may be supplied from the upper part of the pipette in addition to sucking up the sample liquid into the dispensing pipette for each dispensing unit.
  • the siphoning operation is not required for each dispensing unit and can be continuously supplied.
  • the area of the sample liquid to be dispensed and the area of the sample liquid newly supplied from the upper part are continuously connected. Therefore, the following improvement is added to the image recognition method based on the time difference. This improvement will be described with reference to FIG.
  • a sample solution is supplied from the upper part of the dispensing pipette 82 (hollow pipette) for each dispensing.
  • a recognition region 84 in the pipette and a preliminary recognition space 83 are set, and particles are detected in each region. Only when the number of particles to be dispensed is present in the recognition area and no particles are present in the spare area, dispensing is performed.
  • the liquid volume to be dispensed may be larger than the liquid volume in the recognition area and smaller than the liquid volume obtained by adding the liquid volume in the recognition area and the liquid volume in the spare area, thereby eliminating the mixing of the number of particles.
  • FIG. 1 An example of a dispensing system in the case where sample liquid is supplied into the pipette from above is shown in FIG.
  • the pipetting pipette is movable in the XYZ directions, and the sample liquid 71 is sucked in advance from the pipetting pipette 73 (hollow pipette) by the cylinder pump 89 and is put in the pipette preliminary chamber 87 at the upper part of the pipetting pipette 73.
  • a piezo pump 86 is connected upstream of the dispensing reserve chamber.
  • the image recognition for particle detection of the image obtained by the camera 76 inside the dispensing pipette 73 is the number of particles included in the region to be dispensed by setting the recognition region and the preliminary recognition region as described in FIG. Determine exactly.
  • the pulsed pressure of this pump droplets are dropped from the tip of the dispensing pipette 73 into the air. Fly and dispense into multi-well plates.
  • the liquid is returned to the sample container 71.
  • the droplet size is in the range of 100 ⁇ m to 300 ⁇ m.
  • the range shown by the broken line area 88 can be automatically replaced for each sample solution, and no carry-over between sample solutions occurs.
  • the fine particle dispensing apparatus for continuously supplying the sample liquid from the upper part of the hollow pipette has a dispensing preliminary chamber 87 for containing the sample liquid for a plurality of times of dispensing. By having the dispensing preliminary chamber, the sample liquid can be continuously supplied to the hollow pipette. Further, in order to continuously supply the sample liquid from the preliminary dispensing chamber to the hollow pipette, the fine particle dispensing apparatus preferably has a continuous dispensing means.
  • FIG. 15 and FIG. 16 are flowcharts showing the respective procedures for the above two types of dispensing methods.
  • FIG. 15 is a flowchart of a method for sucking a dispensing solution into a dispensing pipette for each dispensing.
  • the particles of the sample liquid in the sample container 71 sink to the bottom due to gravity sedimentation, after stirring, the particles are sucked into the dispensing pipette 73, and then a plurality of images in the dispensing pipette are captured by the camera 76. Get times. The pressure is changed to force the liquid in the dispensing pipette to move between image acquisitions.
  • FIG. 16 is a flowchart of a method for continuously supplying the sample liquid from the upper part of the pipetting pipette. This method also starts with stirring of the sample liquid in the sample container. Rather than sucking up the dispensing solution for each dispensing, the dispensing pipette is drawn by the camera 76 after sucking up the amount of the sample solution for a plurality of dispensing into the sample solution reserve chamber 87 installed upstream of the dispensing pipette 73.
  • the pressure is changed to force the liquid in the dispensing pipette to move between image acquisitions.
  • a pulse pressure is applied to the sample liquid preliminary chamber 87, and the liquid is discharged from the dispensing pipette into the atmosphere. Fly in drops and dispense to the dispensing destination. If the number of suspended particles does not satisfy the set value, return to the sample container without dispensing.
  • the contamination of cells that occurs when the cell group contained in sample B is dispensed into another multi-well plate is considered.
  • the cells of sample A are mixed in the multiwell plate into which the cells contained in sample B are dispensed.
  • a technique for eliminating this possibility will be described below. In this method, the sample liquid is sucked up and dispensed into a pipette that can be exchanged for each dispensing, and after dispensing the sample liquid A, the pipetting pipette may be replaced.
  • the portion in contact with the sample liquid is the sample liquid preliminary chamber downstream of the pump. It is possible to eliminate contamination by exchanging at the time of dispensing different sample liquids by making it possible to exchange up to a portion including 87 and the dispensing pipette 73.
  • the sample preparatory chamber is installed in order to first suck up the amount of sample liquid that does not need to be sucked up for every dispensing and secure the sample liquid upstream of the dispensing pipette.
  • the fine particle dispensing apparatus of the present invention may have means for adjusting the gas atmosphere to a carbon dioxide gas atmosphere of 0.03 to 50%.
  • the adjusting means is not particularly limited as long as it can be 0.03% or more of the atmospheric carbon dioxide concentration.
  • the carbon dioxide concentration used in the fine particle dispensing method described below is not particularly limited, but is preferably 2 to 10% by volume, more preferably 3 to 7% by volume, and further preferably 4 to 6% by volume. %, Most preferably 5% by volume.
  • the dispensing device is surrounded by a container that maintains an atmosphere in which the carbon dioxide gas concentration is adjusted.
  • the fine particle dispensing device of the present invention is a device that dispenses cells contained in a sample solution in units of one unit.
  • the dispensing nozzle is a transparent hollow pipette that can be automatically replaced, and the amount of the dispensing solution is 0.
  • the gas atmosphere in the apparatus can be maintained at 5% carbon dioxide gas during the dispensing process.
  • floating cells that move due to natural sedimentation in the hollow pipette may be detected separately from scratches and attached particles of the hollow pipette.
  • the suspended cells that move in the hollow pipette are removed from the scratches and attached particles of the hollow pipette. It may be detected separately.
  • the dispensing of cells is often aimed at dispensing a part of the target cells contained in the contaminating cell group.
  • the cell sorting process is also performed in an atmosphere in which the carbon dioxide concentration is adjusted in the same manner as the cell dispensing process, thereby reducing cell damage caused by exposure to the air as in the cell dispensing process.
  • a cell sorter may be installed and operated in a container having an atmosphere in which the carbon dioxide concentration is adjusted.
  • Container atmosphere to adjust the carbon dioxide concentration is obtained by hermetically connected to a CO 2 gas cylinder (300) and the pressure regulator (301) and air piping (303), the internal air pressure in the carbon dioxide gas is substantially atmospheric pressure It is a thing.
  • the cell sorter in this case may be an apparatus that uses a microchannel cartridge or a cell sorter that generally separates cells in units of droplets in the atmosphere called FACS.
  • the sample solution is a reservoir in the microchannel, and its volume remains in the range from 10 ⁇ L to several tens of mL, so the volume of gas around the sample solution is also in that range. Therefore, it can be said that a smaller capacity is suitable for controlling to a constant CO 2 gas concentration.
  • a smaller capacity is suitable for controlling to a constant CO 2 gas concentration.
  • a CO 2 gas cylinder (300), a pressure regulator (301), and an air pipe (305) are hermetically connected to the CO 2 gas pipe system of the cell sorter apparatus.
  • the CO 2 piping system in the apparatus is connected to a sample reservoir (corresponding to 11 in FIG. 2) and a recovery reservoir (17 in FIG. 2) in the microchannel cartridge via a peristaltic pump (304).
  • the air pressure control in the different reservoirs is connected in parallel with different peristaltic pumps because the timing of sending the CO 2 gas is different.
  • the merit of using a peristaltic pump here is that the amount of gas fed in and the amount of waste liquid are always the same, so that the CO 2 gas can be used more slowly than the air pressure control pressure adjustment for controlling the flow of cells in the airtight reservoir.
  • the inflow disposal control system has no effect.
  • the fine particle dispensing method of the present invention dispenses fine particles using a fine particle dispensing device having a transparent hollow pipette for dispensing a sample liquid containing fine particles and an image photographing means.
  • the fine particle dispensing method of the present invention is not limited, but can be performed using the fine particle dispensing apparatus of the present invention. Specifically, dispensing may be performed by the method described in the section “[1] Fine particle dispensing apparatus”.
  • the particle analysis apparatus includes a channel cartridge in which a channel is formed on a transparent substrate, and light irradiation that irradiates light to the particles in the sample liquid flowing through the channel. And a detection means for detecting scattered light or fluorescence generated from the fine particles when irradiated with the light, identifying the fine particles based on their signal intensities, and detecting target fine particles.
  • a device a sample reservoir connected to the first channel, a sheath reservoir to which a second channel and a third channel joined from the left and right sides of the first channel, A waste liquid reservoir connected to the downstream side of the first flow path after the merging is formed, and by making the pressure of the sheath reservoir higher than the pressure of the sample reservoir, the sheath reservoir Means for backflowing the sheath fluid therein to the sample reservoir.
  • the fine particle separation device of the present invention includes a flow channel cartridge in which a flow channel is formed on a transparent substrate, a light irradiation means for irradiating light to the fine particles in the sample liquid flowing through the flow channel, and Detecting scattered light or fluorescence generated from the fine particles, identifying the fine particles based on their signal intensity, detecting a target fine particle, and detecting the flow direction of the fine particles based on a signal from the detection means
  • a particle analysis apparatus including force generation means for applying a force to be changed, the sample reservoir connected to the first channel to the channel cartridge, and the second joined from the left and right sides of the first channel.
  • the flow path cartridge includes a fourth branch flow path and a fifth branch connected so that the second and third flow paths face both sides of the first flow path after joining.
  • a sorting reservoir connected to the flow path and the fourth branch flow path, and a recovery reservoir connected to the fifth branch flow path may be included.
  • the force generating means generates a pulse flow that flows from the fourth branch flow path toward the fifth branch flow path, and changes the flow of the fine particles toward the fifth branch flow path to collect the fine particles. It may be a means for sorting in.
  • means for applying pressure to the sheath reservoir for example, pump
  • means for applying pressure to the sample reservoir for example, pump
  • means for applying pressure to the sample reservoir for example, pump
  • one means This can be achieved by using separate means (pumps) rather than (pumps).
  • the particle analysis device or particle separation device of the present invention preferably has means (for example, a pump) for applying pressure to the waste liquid reservoir, the sorting reservoir, and / or the recovery reservoir.
  • means (pumps) are preferably means (pumps) different from the means (pumps) for applying pressure to the sheath reservoir.
  • the method for preventing or removing channel blockage of the present invention is a method using the particle analysis device or particle separation device. That is, in the microparticle analysis apparatus or microparticle separation apparatus, the pressure of the sheath reservoir is made higher than the pressure of the sample reservoir, and the sheath fluid in the sheath reservoir is caused to flow backward to the sample reservoir, thereby causing the first reservoir to Prevent or remove particulate clogging.
  • the means for applying pressure to the sheath reservoir for example, a pump
  • the means for applying pressure to the sample reservoir for example, a pump
  • the means for applying pressure to the sample reservoir for example, a pump
  • the means for applying pressure to the sample reservoir for example, a pump
  • the pressure applied to the sheath reservoir is not particularly limited as long as it is higher than the pressure applied to the sample reservoir, but is preferably 2 kPa to 50 kPa, and more preferably 5 kPa to 20 kPa.
  • the pressure applied to the sample reservoir is not particularly limited, but is preferably ⁇ 2 kPa to 1 kPa, more preferably ⁇ 1 kPa to 0 kPa.
  • the difference between the pressure applied to the sheath reservoir and the pressure applied to the sample reservoir is not particularly limited, but is preferably 4 kPa to 50 kPa, more preferably 7 kPa to 20 kPa.
  • the pressure applied to the waste liquid reservoir, the sorting reservoir, and / or the recovery reservoir is not particularly limited, but is preferably ⁇ 1 kPa to 0 kPa, more preferably ⁇ 0.5 kPa to 0 kPa.
  • the time for maintaining the pressure of the sheath reservoir higher than the pressure of the sample reservoir is not particularly limited as long as the clogging of the microparticles in the flow path can be prevented or removed, but is, for example, 1 to 1 minute, preferably 1 It is ⁇ 10 seconds, more preferably 2 to 5 seconds, and further preferably 2 to 4 seconds.
  • the timing for changing the pressure for the stirring is preferably a fixed time interval for preventing the clogging of the flow path.
  • the timing for detecting a sign of clogging of the flow path and generating the pressure change for stirring is the detection rate when the number of detected particles per unit time (detection rate) when the particles are flowing is below the set threshold. May have fallen below the set relative decline rate. For the purpose of both prevention of clogging of the flow path and elimination of clogging, it is desirable to generate a pressure change for stirring when any of the above conditions is satisfied.
  • FIG. 1A is a flow path pattern of an exchangeable micro flow path cartridge for sorting
  • FIG. 2A is a plan view of the cartridge.
  • the sorting method using this cartridge is a method of sorting necessary cells by the pulsed air pressure described in Patent Document 6 described above.
  • the sample liquid containing cells flows through the flow path 22 connected to the sample reservoir 11.
  • the flow path 23L and the flow path 23R through which the sheath liquid not containing cells flows from the left and right merge, so that the sample liquid converges and flows in the center of the flow path.
  • the channel 24L is a sorting region.
  • the target cells are sorted toward the flow path 24R, and the non-target cells Pass through and flow into the waste reservoir.
  • the above is the flow of the liquid during sorting. If this state is continued, it accumulates with time at the bottom of the sample reservoir 11 containing cells by gravity sedimentation. Therefore, it often occurs that cells are clogged at the connection port portion between the sample reservoir 11 and the flow path 22.
  • FIG. 1B schematically illustrates how the cells deposited from the bottom of the sample reservoir 11 are stirred by the reverse flow of the sheath flow.
  • the pressure applied to the sheath reservoir 12 is increased, the backflow increases, so that the stirring force increases.
  • this agitation prevents cells taken in by sorting from flowing out into the waste reservoirs, so that the cells can be agitated by simply changing the pressure applied to each reservoir during the sorting process. Can do.
  • the particle analysis apparatus includes a channel cartridge in which a channel is formed on a transparent substrate, a light irradiation unit that irradiates light to a particle in a sample solution that flows through the channel, and the light irradiation unit that emits the light when the light is irradiated.
  • Detection means for detecting scattered light or fluorescence generated from the fine particles, identifying the fine particles based on their signal intensity, and detecting the target fine particles, and for the fine particles flowing through the flow path of the cartridge, This is an apparatus for analyzing fine particles based on a signal from a detection means.
  • the microparticle analysis apparatus includes a reservoir (sample reservoir) connected to the first flow path and a reservoir (sample reservoir) connected to the second and third flow paths that merge from the left and right sides of the first flow path.
  • a reservoir sample reservoir
  • a reservoir sample reservoir
  • This is a particle analysis device using a flow channel chip in which a fourth reservoir (waste liquid reservoir) connected to the downstream side of the first flow channel after joining (sheath reservoir) is formed.
  • the pressure of various reservoirs is temporarily changed for a predetermined time while the sample is being flowed for the cell analysis process. That is, the pressure applied to the sample liquid in the sample reservoir is set to zero from the setting value A (positive pressure) for analysis processing.
  • the pressure applied to the sheath liquid in the sheath liquid reservoir increases the analysis processing set value B (positive pressure). Moreover, the change of the pressure applied to the waste liquid in the waste liquid reservoir changes the set value C for analysis processing (negative pressure) to zero.
  • the temporary pressure change stops the outflow of the cells in the sample reservoir to the outside, and backflow of the sheath liquid occurs from the bottom of the reservoir to which the flow path is connected in the sample reservoir. Cells deposited by sedimentation are agitated.
  • the fine particle separation apparatus includes a flow channel cartridge in which a flow channel is formed on a transparent substrate, light irradiation means for irradiating light to the fine particles in the sample liquid flowing through the flow channel, and Detection means for detecting scattered light or fluorescence generated from the fine particles, identifying the fine particles based on their signal intensity, and detecting the target fine particles, and for the fine particles flowing through the flow path of the cartridge, Force generating means for applying a force for changing the flow direction based on a signal from the detecting means.
  • a reservoir for a sample solution connected to the first channel, and a reservoir (sheath reservoir) to which the second and third channels joined from the left and right sides of the first channel are connected.
  • the fourth branch channel and the fifth branch channel connected so as to oppose both sides of the first channel after joining.
  • a 3A reservoir sorting reservoir for sending out a pulse flow connected to the fourth branch flow path, and a flow from the fourth branch flow path generated by the force generating means to the fifth branch flow path.
  • a third B reservoir (recovery reservoir) connected to the fifth branch flow path for separating and collecting the fine particles by changing the flow of the fine particles in the direction of the fifth branch flow path by the pulse flow, and the first flow
  • a fourth reservoir (waste liquid reservoir) for storing unsorted fine particles connected to the downstream side of the path is formed. Then, during the flow of the sample for the sorting process, the pressures of the various reservoirs are temporarily changed at the same time for a certain period of time. That is, the pressure applied to the sample liquid in the sample reservoir is set to zero from the setting value A (positive pressure) for the sorting process. The pressure applied to the sheath liquid in the sheath liquid reservoir increases the setting value B (positive pressure) for the sorting process.
  • the pressure applied to the waste liquid in the waste liquid reservoir may be a pressure that allows the sheath liquid to flow into the recovery reservoir. Due to the temporary pressure change described above, the sheath liquid not containing cells temporarily flows from the sheath liquid reservoir to the sample liquid reservoir, the sorting reservoir, the recovery reservoir, and the waste liquid reservoir. In the process, the cells in the sample reservoir stop flowing out, and the sheath liquid is flowed back from the bottom of the reservoir where the flow path is connected to the sample reservoir, so that the cells deposited by gravity sedimentation at the bottom of the sample reservoir are agitated. Is done. Further, since the sheath liquid flows into the collection reservoir, it is possible to prevent cells collected by sorting in the collection reservoir from flowing out to the waste liquid reservoir. As described above, the agitation of the cell in the flow channel chip is performed without affecting the sorting performance.
  • the reaction detection device of the present invention is a reaction detection device that reacts a sample liquid in a microchannel cartridge and detects the result of the reaction, and includes a sample reservoir, a reagent reservoir, an oil reservoir, and A droplet reservoir, the first flow path from the sample reservoir and the second flow path from the reagent reservoir merge to form a third flow path, and a fourth flow from the oil reservoir from both sides of the third flow path.
  • the third flow path is joined to the droplet reservoir downstream of the merge point, and the third flow channel is connected to the droplet reservoir. Means for backflow through the third flow path and means for detecting reaction in the third flow path.
  • the sample reservoir and the reagent reservoir may be one sample reagent reservoir
  • the first channel and the second channel may be one third channel from the sample reagent reservoir.
  • the reaction of the sample in the reaction detection apparatus of the present invention is not particularly limited, and can be used without limiting the reaction that is usually used in this field.
  • Examples thereof include gene amplification reaction, protein phosphorylation reaction, GPCR and peptide binding reaction.
  • Examples of the gene amplification reaction include a PCR method such as digital PCR, a LAMP method, and a SmartAmp method.
  • the reaction detection method in the reaction detection apparatus of the present invention can be appropriately selected according to the type of reaction.
  • a detection method corresponding to them can be used.
  • a means for detecting fluorescence emitted by light irradiation with a light source such as a laser or LED, a means for detecting chemiluminescence, and the like can be mentioned.
  • the reaction detection apparatus of the present invention preferably has means for adjusting the temperature of the droplet reservoir.
  • Various analyte reactions can be performed by means of adjusting the temperature of the droplet reservoir.
  • the adjustment of the temperature is not particularly limited, but it is preferable that the temperature can be increased (heating), the temperature can be decreased (cooling), and the temperature can be maintained.
  • a means for increasing the temperature (heating), decreasing the temperature (cooling), and maintaining the temperature a means usually used in this field can be used.
  • the means for causing the droplets to flow backward in the reaction detection device of the present invention is not particularly limited as long as the droplets can flow backward from the droplet reservoir to the flow path.
  • the pressure applied to the droplet reservoir A means for increasing the pressure applied to the reservoir, the reagent reservoir, and the oil reservoir can be used.
  • the liquid droplets are allowed to flow backward only to a specific reservoir upstream, there is an advantage that the emulsion after fluorescence detection can be recovered from one reservoir.
  • the diagnosis is completed only by detection.
  • a droplet having fluorescence must be collected, so that the droplet is placed in one reservoir.
  • the droplet reservoir may be positive pressure, the sample reservoir negative pressure, the oil reservoir positive pressure, and the reagent reservoir positive pressure.
  • Specific means for making the pressure of the droplet reservoir higher than the pressure of the sample reservoir or the like include means for applying pressure to the sheath reservoir (for example, a syringe pump or a combination of a positive pressure rotary pump and an electropneumatic regulator, negative pressure) A pressure rotary pump and electropneumatic regulator) and means for applying pressure to the sample reservoir, etc.
  • syringe pump for example, syringe pump, a combination of rotary pump and electropneumatic regulator
  • a syringe pump or a combination of a positive pressure rotary pump and an electropneumatic regulator, a combination of a negative pressure rotary pump and an electropneumatic regulator In the case of a syringe pump, the means that can adjust the pressure applied individually is a means that can handle both positive and negative pressure in the direction of piston movement.
  • an electropneumatic regulator connected to a rotary pump a positive pressure rotary pump By connecting in parallel with the electropneumatic regulator connected to the negative pressure rotary pump, it becomes a means to cope with both.
  • each (pump) is a separate means (pump).
  • the reaction detection method of the present invention is a reaction detection method using the reaction detection device. That is, the reaction detection method of the present invention uses the reaction detection device to (1) mix the sample and reagent mixture in the third flow path from both sides of the third flow path to the fourth flow path and the fifth flow path. And (2) reacting the sample in the droplet, and (3) detecting the reaction of the sample in the droplet.
  • a mixed solution in which a specimen and a reagent are mixed in advance can also be used.
  • the sample reservoir and the reagent reservoir are one sample reagent reservoir
  • the first channel and the second channel are one third channel from the sample reagent reservoir.
  • the reaction detection method can be performed by putting the mixed solution into the sample reagent reservoir.
  • the mixed liquid of the sample and the reagent in the third channel is supplied from both sides of the third channel through the fourth channel and the fifth channel.
  • droplets are formed.
  • droplets suitable for the reaction can be formed.
  • droplets can be formed by flowing, for example, 1 to 100 volumes, preferably 2 to 50 volumes, more preferably 3 to 10 volumes of oil with respect to 1 volume of the mixed solution.
  • the oil is not particularly limited as long as droplets can be formed, and examples thereof include fluorine oil such as mineral oil or fluorinate, or silicone oil.
  • the reaction in the sample reaction step is not particularly limited, and any reaction that is usually used in this field can be used without limitation. Examples thereof include gene amplification reaction, protein phosphorylation reaction, GPCR and peptide binding reaction.
  • Examples of the gene amplification reaction include a PCR method such as digital PCR, a LAMP method, and a SmartAmp method.
  • the temperature is increased (heating), the temperature is decreased (cooling), and the temperature is maintained. That is, a gene amplification reaction can be performed by alternately maintaining a high temperature (for example, 95 ° C.) and a medium temperature (for example, 65 ° C.) for a certain period of time.
  • a gene amplification reaction can be performed by maintaining the temperature at 65 ° C. or the like.
  • the detection method in the reaction detection step can be appropriately selected according to the type of reaction.
  • a detection method corresponding to them can be used.
  • a means for detecting fluorescence emitted by light irradiation with a light source such as a laser or LED, a means for detecting chemiluminescence, and the like can be mentioned. It is preferable that the liquid droplet after the reaction is caused to flow backward from the liquid droplet reservoir to the third flow path and the reaction is detected in the third flow path.
  • FIG. 4 shows that the most upstream reservoir 2 and the most downstream reservoir 3 formed in the disposable exchange type micro channel cartridge are connected by the channel 4, and the pressure 1 applied to the upper surface of the sample liquid in the reservoir 2 By controlling the pressure 2 applied to the reservoir 2, first, the process 1 for moving the sample liquid 1 in the reservoir 2 to the reservoir 3 is executed.
  • process 1 When the movement of all the sample liquid to the reservoir 3 is completed, the process 1 is completed, and the flow is automatically stopped and becomes stationary. This process is referred to as process 2. Next, the reservoir 3 is caused to flow backward to the reservoir 2. This process is referred to as process 3.
  • process 3 The above shows that different processes 1, 2 and 3 including flow and static can be executed sequentially only by controlling pressure 1 and pressure 2.
  • This embodiment is a means for sequentially executing a plurality of processes in the same flow path using a backflow by air pressure control, and can be applied to a method for detecting genes with high sensitivity using droplets in an emulsion. It is.
  • This embodiment is a method for performing three types of processes, a droplet formation process, a gene amplification reaction, and a detection, in the same microchannel cartridge.
  • three types of processing (1) droplet formation, (2) gene amplification, (3) detection
  • the droplet flow is stopped during the reaction time in the process of gene amplification. There is a need.
  • FIG. 5A is a plan view of the flow channel cartridge, and shows a flow channel pattern that forms droplets in an emulsion containing a gene.
  • a sample solution containing DNA or RNA such as cells, bacteria, or viruses is placed in the sample reservoir 102-1, and an aqueous solution containing a reagent necessary for gene amplification reaction is placed in the reagent reservoir 102-2.
  • the oil reservoir 102-3 is charged with oil for forming an emulsion of droplets in oil.
  • mineral oil or fluorine oil such as florinate can be selected.
  • air pressure greater than atmospheric pressure is applied to the sample reservoir 102-1, reagent reservoir 102-2, and oil reservoir 102-3, and air pressure smaller than atmospheric pressure or upstream is applied to the droplet reservoir 103-1.
  • a reaction for amplifying the target gene sequence contained in the droplet is performed.
  • the gene amplification reaction a method using an isothermal amplification method and a method using PCR are possible.
  • the temperature of the droplet reservoir 103-1 is changed between about 95 ° C. and about 65 ° C. alternately at a constant time interval by a predetermined number of times.
  • an amplification reaction is performed at 65 ° C., and two types of methods are known, a Lamp method and a SmartAmp method.
  • a sufficient amplification reaction is performed by maintaining the temperature of the droplet reservoir 103-1 at about 65 ° C. or more for about 30 minutes or more.
  • the emulsion containing the amplified gene emits fluorescence proportional to the gene amount by the fluorescent probe. After the gene amplification reaction, the emulsion is counted. This process is shown in FIG. By making the pressure applied to the droplet reservoir 103-1 larger than the pressure of the sample reservoir 102-1, the reagent reservoir 102-2, and the oil reservoir 102-3, the droplets in the emulsion flow backward from the droplet reservoir 103-1. And irradiating a laser 106 into the flow path, thereby detecting a droplet having fluorescence. As described above, the three types of processing of emulsion formation, gene amplification, and detection are realized in the same cartridge.
  • Example 1 the fine particle dispensing apparatus and the fine particle dispensing method of the present invention were performed. Specifically, the cells were dispensed in units of multiwell plates.
  • FIG. 9A schematically shows an apparatus for dispensing cells. The cell suspension before dispensing is in the tube 71. Since the cells are gravity settled on the bottom of the tube 71, stirring is required at a time interval of at least 5 minutes. If the agitation time interval becomes longer, the area where cells do not exist is enlarged in the upper layer portion of the cell suspension, so the time interval is strictly observed.
  • a dispensing pipette 73 which is a transparent hollow pipe attached to the tip of a syringe pump 74 that controls the air pressure, is moved into the cell suspension by moving it downward in the Z axis.
  • the piston of the syringe is lifted by an amount corresponding to the dispensing amount, and the cell suspension is sucked into the pipette 73.
  • the pipette 73 is raised above the Z axis, and an image of the entire amount dispensed in the pipette is acquired twice with the camera. In this case, if the time difference between image acquisitions is 3 seconds, the moving distance due to weight sedimentation of cells having a size of about 10 ⁇ m becomes 10 ⁇ m or more.
  • FIG. 10 shows an example of detecting the number of floating cells in a dispensing pipette containing cells by time difference image recognition.
  • FIG. 10A is an initial photographed image
  • FIG. 10B is a time difference image
  • FIG. 10C is an enlarged image of a cell portion detected by the time difference image.
  • FIG. 10 (A) there are many bright spots such as scratches on the pipetting pipette and adhered foreign substances.
  • FIG. 10 (B) the part changed in 3 seconds is extracted, and the number of floating cells is recognized as five.
  • FIG. 10C the bright spots of the cells before and after the movement for 3 seconds appear.
  • the above embodiment is a cell detection method based on the time difference before and after the movement due to the gravity sedimentation of the cell, but when the liquid in the pipetting pipette is forcibly moved up and down by the pressure, the movement speed is faster than the gravity sedimentation.
  • the time difference time interval can be shortened.
  • the number of cells in the pipetting pipette is evaluated by detecting the time difference image, and if there is one, it moves to a well at a predetermined address of the multiwell plate. As shown in FIG.
  • the pipette When the pipetting amount is 0.3 ⁇ L, if the inner diameter of the pipette is 400 ⁇ m, the pipette may be sucked by 2.4 mm. Next, considering whether it is possible to shoot the entire liquid volume of 0.3 ⁇ L with a single camera image in focus, the depth of field is 440 ⁇ m when a 1 ⁇ objective lens is used. The entire inner diameter of 400 ⁇ m inside the pipette can be photographed with focus. Considering the wide field of view, the 1/2 type camera covers 6.4 mm, so that the entire length of 2.4 mm in the pipette can be taken. Therefore, it can be determined that the entire dispensing amount of 0.3 ⁇ L can be taken with one image shot.
  • the light source for illuminating the cells in the pipette pipette is an LED light source, and illuminates downward from the upper periphery of the pipette pipette.
  • the detection optical system captures a cell having a particle diameter of 10 ⁇ m in a hollow pipette made of a transparent resin having an inner diameter of 400 ⁇ m with a 1 ⁇ objective lens and a 1 ⁇ 2 type camera, thereby setting the depth of field to 400 ⁇ m or more.
  • FIG. 9C is an overview of the dispenser.
  • the dispenser is of a size that can be installed in a safety cabinet, and the cell damage is reduced by covering the dispenser with a 5% CO 2 gas atmosphere container.
  • Example 2 In this example, a method for preventing or removing clogging of fine particles using the fine particle separation apparatus of the present invention was carried out. Specifically, using the exchangeable micro-channel cartridge for cell sorting shown in FIG. 2 (A), cell channel blockage was prevented or removed by stirring.
  • the substrate material of the flow path cartridge is a transparent resin, and is one of COP, COC, and PMMA.
  • the main channel 22 has a channel width of 80 ⁇ m and a depth of 80 ⁇ m.
  • the pressure applied to the sample reservoir 11 is 1.8 kPa
  • the pressure applied to the sheath reservoir 12 is 1.8 kPa
  • the pressure applied to the waste liquid reservoir 21 is ⁇ 0.8 kPa.
  • the reservoirs 16 and 17 for sorting do not apply pressure when the electromagnetic valve is closed.
  • the pressure applied to the sample reservoir 11 is 0 kPa
  • the pressure applied to the sheath reservoir 12 is 7 kPa
  • the pressure applied to the waste liquid reservoir 21 is 0 kPa.
  • a PBS buffer suspension of 10 8 cells / mL high-concentration cultured cells (cell line Molt 4) is placed in the sample reservoir.
  • the pressure applied to the sample reservoir 11 was 1.8 kPa
  • the pressure applied to the sheath reservoir 12 was 1.8 kPa
  • the pressure applied to the waste liquid reservoir 21 was ⁇ 0.8 kPa.
  • a laser beam having a wavelength of 488 nm was applied to the flow path 22 to count the flowing cells.
  • the cell count decreases to zero. This is thought to be because the cells settled and deposited on the bottom of the sample reservoir and the channel was clogged.
  • the stirring pressure is set for 3 seconds, the cell count increases from zero and the clogging of the cells is removed. It can be seen that the cell count increases even if the agitation pressure is set before the cell count reaches zero. From the above data, it can be seen that the stirring of the present invention is effective.
  • one of a plurality of conditions such as 1) automatically starting at regular time intervals and 2) automatically starting when the count rate falls below a certain value, etc. By starting when the conditions are satisfied, it is possible to cope with both prevention of clogging of cells and release after clogging.
  • Example 3 the reaction detection method was carried out using the reaction detection apparatus of the present invention. Specifically, three steps of droplet formation in an emulsion, gene amplification reaction, and detection were performed in one microchannel cartridge as an automatic multiple process in the exchangeable microchannel cartridge.
  • FIG. 5A is a plan view of the flow path cartridge and shows a flow path pattern for forming a droplet containing a gene.
  • a sample solution containing DNA is placed in a sample reservoir 102-1, and a reagent reagent 102-2 is filled with a reagent necessary for gene amplification reaction in the isothermal amplification method and a fluorescent reagent that emits fluorescence when bound to DNA.
  • a 488 nm laser and a 637 nm laser are used as irradiation light sources.
  • an intercalator-type Evergreen, CyberGreen, or TaqMan probe (FAM, Cy5, etc.) can be used as a fluorescent dye for gene detection.
  • Oil for forming droplets in the oil is placed in the oil reservoir 102-3.
  • mineral oil or fluorine oil such as florinate can be selected.
  • the emulsion forming conditions are such that the pressure applied to the oil reservoir 102-3 is 14 kPa, and the pressure applied to the sample reservoir 102-1 and the reagent reservoir 102-2 is 10 kPa.
  • the droplet reservoir 103-1 is at atmospheric pressure.
  • emulsion droplets having a size of about 55 ⁇ m are formed as shown in FIG. can do.
  • the channel width of the channel forming the emulsion is 40 ⁇ m.
  • the formed emulsion flows into the droplet reservoir 103-1.
  • the above is the droplet forming process.
  • the droplets in oil that have flowed into the droplet reservoir 103-1 accumulate in the droplet reservoir 103-1.
  • the target gene sequence contained in the emulsion droplets can be obtained. Amplify.
  • FIG. 12A is a photograph of a state in which an emulsion is formed in the microchannel
  • FIG. 12B is a photograph of a state in which an emulsion containing droplets is caused to flow backward from the droplet reservoir 103-1. It is.
  • a droplet having fluorescence By irradiating the laser 106 in the flow path that is flowing backward, a droplet having fluorescence is detected. In this detection, both a droplet having fluorescence and a droplet having no fluorescence are distinguished and counted. Detection of a droplet having fluorescence corresponds to detection of target DNA contained in the sample liquid. Further, the presence density of the target DNA is evaluated by the ratio of the number of droplets having fluorescence and the number of droplets not having fluorescence. As described above, in order to detect the target DNA in the sample solution, the three processes of droplet formation, gene amplification, and detection are processed in one cartridge.
  • FIG. 6 shows a chip for genetic testing corresponding to 8 specimens.
  • the flow path pattern structure of the cartridge 107 in FIG. 6 is a cartridge in which 8 flow path patterns in FIG. 5 are formed, and the emulsion PCR method or the emulsion isothermal amplification method corresponds to 8 samples with a single cartridge.
  • the merit of dealing with multiple samples with a single cartridge is that, in addition to reducing the running cost per sample, the test time can be shortened only in the process of processing multiple samples simultaneously.
  • the emulsion formation and the gene amplification reaction are simultaneously processed for 8 channels on a single cartridge at the same time, so that only the final fluorescence detection process sequentially tests the 8 channels.
  • the processing time per sample in the case of one flow path cartridge is Et + Dt + Ft.
  • the processing time per specimen is (Et + Dt) / 8 + Ft. That is, the emulsion formation time and gene amplification time are shortened to 1/8.
  • the time required to form 1 million emulsions is 20 minutes, and the gene amplification reaction time is 30 minutes.
  • the fluorescence detection processing time of the emulsion is 8 times 16.6 times per channel, so the total processing time is about 3 hours.
  • This processing time is for 1 million emulsions, but for 100,000, it takes 45 minutes.
  • An apparatus for testing with this multi-sample cartridge is shown in FIG. In this apparatus, in the eight-sample corresponding flow path cartridge 209, measurement is performed from the end flow path, and when the measurement is completed, the cartridge 209 is sequentially measured in the next adjacent flow path by moving the cartridge stage 210. Take.
  • This device processes the formation of an emulsion consisting of droplets in oil and the temperature control function for the gene growth reaction in the emulsion in a batch of eight channels, and then the flow cytometry of the emulsion droplets in the process of backflowing the emulsion. Measurement is performed sequentially for 8 channels by moving the stage in units of each channel. However, the entire eight channels are measured by moving the cartridge in a step-and-repeat manner sequentially between the eight channels with a light beam of a size that is applied to only one channel. By performing image recognition that detects both sides of the flow path with the camera 217, the positional accuracy of the flow path after the movement is confirmed.
  • each flow path scattered light and fluorescence generated when individual droplets pass through the light irradiation region are separated into light by wavelength by dichroic mirrors 214, 215, and 216 and bandpass filters 221, 222, and 223.
  • the scattered light is detected by the photodetector 217, and the fluorescence is detected by the photodetectors 218 and 219.
  • FAM can be used with a SyberGreen or EVAGGreen in the range of 500 nm to 550 nm, or a TaqMan probe.
  • Cy5 can be used with the TaqMan probe.
  • the present invention is intended for use in medical applications where cross-contamination between specimens is not allowed.
  • cancer immunotherapy single cell expression analysis of cancer cells is important in research on targets where immune cells attack cancer cells. Dispensing technology is required.
  • diagnosis by sensitive detection of oncogenes contained in the blood of cancer patients is important.
  • Waste reservoir (fourth reservoir); 22 ... main channel (first channel); 22-E ... main channel (first channel); 23L ... Sheath channel on the left side (second channel); 23R ... right sheath channel (third channel); 24L ... Pulse flow Push side sorting channel (fourth channel); 24R: Pulse flow Pull side sorting flow path (fifth flow path); 35 ... light irradiation region; 70 ... Multi-well plate for dispensing; 71 ... Suspension of sample particles such as cells before dispensing in a container; 72. Cleaning liquid in the container; 73 ... dispensing pipette (clear hollow pipe); 74 ... pneumatic syringe pump; 75 ...

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Computer Vision & Pattern Recognition (AREA)

Abstract

本発明の目的は、細胞を単一細胞として分注する技術を提供することである。　前記課題は、本発明の微粒子を含む試料液を分注するための透明な中空ピペット、及び画像撮影手段を有する微粒子分注装置であって、中空ピペット中の分注液を２回以上撮影する手段、２つ以上の撮影した画像を比較し、撮影された微粒子様物のうち移動した微粒子様物を、移動しない微粒子様物と区別して浮遊粒子と判定する手段、及び目的の個数の浮遊粒子を含む試料液を分注する手段を有する、微粒子分注装置、及びによって解決することができる。

Description

微粒子分注装置、微粒子解析装置、及び反応検出装置、並びにそれらを用いる方法
　本発明は、微粒子分注装置、微粒子解析装置、及び反応検出装置、並びにそれらを用いた方法に関する。
　がん研究においては、夾雑細胞群のなかの特定の細胞を一個単位で解析する方法が重要となってきている。例えば、がん免疫療法の治療薬の開発では、免疫細胞が、がん細胞を非自己細胞と認識することが重要である。この研究では、がん細胞の各種タンパク質の発現プロファイル解析が必要となる。この発現プロファイル解析のためには、単一細胞の分注技術が必要となる。
　まず、単一細胞分注技術に必要な従来技術を説明する。例えば、夾雑細胞のなかの特定の細胞を分取するセルソーターの技術が関連する。セルソーターは、目的の細胞を分取して濃縮する装置であるが、目的の細胞を識別するフローサイトメーターとしての解析機能を有する。フローサイトメーターの技術は特許文献１に記載されている。
　特許文献２には、一般的なセルソーターに使用されている細胞又は微粒子の分離方法が記載されている。この方法は液滴形成用ノズルから空気中に試料液を液滴として吐出し、分離対象の細胞を含む液滴に電荷を与えることで電場によって分離するという方法である。特許文献４は、再生医療に最適なコンタミネーションフリーを実現した使い捨て交換型のマイクロ流路カートリッジを用いるフローサイトメーター技術を記載している。特許文献５は使い捨て交換型のマイクロ流路カートリッジ内で細胞を分離する方式を記載している。さらにマイクロ流路内の流れの影響を低減するように改善した方式が特許文献６に記載されている。
　マイクロ流路に細胞を流す場合に、流路内で細胞が詰まるのを防止するための撹拌技術を説明する。特許文献１１は、マイクロ流路に接続しているサンプルリザーバー中で、プロペラを回転して細胞懸濁液を撹拌する技術を記載している。
　細胞を分注する技術に関連する従来技術を説明する。中空ピペットで細胞を吸い上げて異なる場所に移動して吐き出して分注する技術が特許文献７に記載されている。画像認識で細胞の有無を確認したのちに、液滴単位でピエゾ素子による圧力パルス駆動により滴下して分注する技術が、特許文献８に記載されている。また、分注ヘッドが交換可能な分注方法が、特許文献１０に記載されている。特許文献１４には、分注ヘッドが交換可能であり、画像認識で細胞の有無を確認し、液滴単位で分注する技術が、記載されている。
　交換型マイクロ流路カートリッジ内で、検体の処理や検出などを含む異なる複数の時間の異なる処理を順次実行する従来の技術は、流れをストップする仕組みが流路中に必要であり、その仕組みが不要な技術でない。使い捨て交換可能なカートリッジでは、特別な仕組みを組み込まない技術がカートリッジの量産に都合がよい。従来技術は、すべて特別な仕組みが必要な内容である。マイクロ流路内の遺伝子検出するために複数プロセス処理を行う従来技術としては、以下の技術が報告されている。岡田らの方法（非特許文献１）には、流路内に設置したバルブとポンプを利用して、異なる処理間のサンプル流を制御する方法が記載されている。マイクロ流路中でオイル中液滴の流れを、電場を利用して制御する方法が、米国公開特許ＵＳ２０１３０２８８２５４（特許文献１２）に記載されている。遺伝子増幅反応の方法としては、特許文献９は、エマルジョンを利用してＰＣＲ反応空間を小分けしたデジタルＰＣＲ技術を開示している。ＤＮＡを等温で増幅する方法については、マイクロ流路で等温増殖反応を行う方法が特許文献１３に記載され、ＳｍａｒｔＡｍｐ法に関する技術が非特許文献２に記載されている。
米国特許第３７１０９３３号明細書 米国特許第３８２６３６４号明細書 国際公開第９８／１０２６７号 米国特許第８２４８６０４号明細書 特許第５３８２８５２号明細書 国際公開第２０１１／０８６９９０号 米国特許出願公開第２００５／０１３６５２８号明細書 米国特許第８８３４７９３号明細書 米国特許第７９６８２８７号明細書 特開平１１－２９５３２３号公報 米国公開特許２０１５０３６７３４６号明細書 米国公開特許２０１３０２８８２５４号明細書 国際公開１９９８／０２２６２５号 特開２０１５－１５８４８９号公報
「ジャーナル・オブ・バイオセンス・バイオエレクトロン（J Biosens Bioelectron）」２０１２年（米国）第３巻、第４版、１０００１２６ 「ネイチャー・メソッズ（Nature Methods）」２００７年（英国）第４巻、ｐ．２５７－２６２
　細胞を単一細胞として分注する技術の課題は、分注する細胞の個数が一個であることの識別、細胞ダメージ、細菌汚染、及び異なるサンプル間のクロスコンタミネーションが考えられる。特許文献７は、中空ピペットで細胞を吸い上げて異なる場所に移動して吐き出して分注する技術を記載しているが、細胞一個単位で分注する技術ではない。特許文献８には、画像認識で細胞の有無を確認して、液滴単位でピエゾ素子による圧力パルス駆動により滴下して分注する技術が記載されている。しかし、サンプル液ごとにサンプル液が接触する流路系全体が交換可能でないため、サンプル分注後の細胞が、異なるサンプル液のキャリーオーバーの細胞である可能性を否定することができない。このことは異なる患者の医療用検体では誤診断につながる問題である。以下、分注用の中空ピペットとは、分注前に分注液が通過する内部が中空の容器であって、分注流路の先端部の部品をさしており、分注ピペットと呼ぶことにする。
　本発明者らは、単一の細胞を分注するために、画像認識を用いる方法を検討した。しかしながら、分注ピペット中の細胞の個数を、画像から測定しようとしたところ、分注ピペットのキズ又は付着異物を細胞と区別することが困難であることに気が付いた。すなわち、分注ピペット内の細胞数を画像認識によって測定する場合、分注ピペットのキズと細胞との区別が困難であり、認識した細胞数と分注された細胞数とが一致しないことになる。従って、細胞と分注ピペットのキズとを判別する技術が必要となることに気づいた。また、細胞ダメージに関しては、分注作業が長時間に及ぶ場合、細胞にダメージを与えることがある。すなわち、細胞の増殖に適した５％程度のＣＯ２存在下ではない大気中雰囲気に細胞を長時間晒すことにより、細胞がダメージを受ける。この細胞ダメージは細胞の種類に依存する。細菌汚染に関しては、分注装置の細胞が接する流路が固定された流路である場合、細菌がその流路で増殖するため、細菌汚染が発生する。細菌汚染を防止するために、防腐剤を入れたバッファーを使用することがある。しかしながら、防腐剤により細胞ダメージが生じることがある。更に、固定流路の場合、サンプル間のクロスコンタミネーションが生じるという問題がある。
　従って、本発明の目的は、コンタミネーションフリーかつダメージフリーである単一細胞分注技術を提供することである。
　単一細胞分注の前段階として、夾雑細胞群から目的の細胞を分取することが好ましい。このために、使い捨て交換型のマイクロ流路カートリッジ内の細胞分取が好ましい。使い捨て交換型のマイクロ流路カートリッジは、検体間コンタミネーションが問題となる医療診断用のフローサイトメーター又はセルソーターにとって重要である。本発明者らは、マイクロ流路カートリッジを使用していたところ、流路断面積の小さいマイクロ流路では、サンプルリザーバーの底面への細胞の堆積や流路側面への細胞吸着が原因で、流路詰まりを引き起こしやすいことを見出した。この課題に対して、特許文献１１の技術は、サンプルリザーバーの底面に細胞が重力沈降により堆積するのを防止する技術であって、一定の細胞濃度をマイクロ流路に流すための技術である。この技術は、細胞の詰まりの予防効果があるが、詰まった状態を解除する効果はない。
　従って、本発明の目的は、マイクロ流路カートリッジの流路における細胞の詰りを防止又は解消する技術を提供することであり、さらに、上記の単一細胞分注用の目的細胞を夾雑細胞群から純化解析する技術を改善することである。
　交換型マイクロ流路カートリッジのメリットは、コンタミネーションフリーの他に、流路系全体を小型カートリッジに収めることで、装置も小型にすることができることである。この場合、臨床現場で得たサンプルをその場で解析できる可能性があると考えられる。しかしながら、目的の細胞又は遺伝子などの解析において、臨床サンプルには解析の障害となる夾雑物が多く混在している。高濃度の夾雑物存在下でも高感度に目的の遺伝子を検出するための前処理が必要となる。高濃度の夾雑物存在下でも高感度に検出するためにはデジタルＰＣＲ法のようにオイル中液滴を利用して検出する方法がある。しかしながら、この方法を実行するためには、使い捨て交換型のマイクロ流路カートリッジ内ではサンプル液を流しながら、次々と異なる反応をシーケンシャルに実施するためには、処理時間が異なる複数の処理を同一の流路カートリッジで行う必要がある。現在、交換型マイクロ流路カートリッジ内で、検体の処理や検出などを含む異なる複数の処理を順次実行する技術として流路内に制御素子を組み込む技術のみで制御素子が不要な技術開発されていない。非特許文献１は、制御素子を組み込む技術を利用して複数の処理を実現する技術である。
　例えば、現在のエマルジョン液滴を利用するジタルＰＣＲのBio-Rad社の製品とRaindanceTechnologoes社の製品は、エマルジョン形成、遺伝子増幅反応、及び解析の３つのプロセスからなるが、それぞれ別の装置からなる構成となっており、一台の装置で実現されていない。
　従って、本発明の目的は、交換型マイクロ流路カートリッジ内で、検体の処理や検出などを含む異なる複数の処理を順次実行する技術を提供することである。
　本発明者は、細胞を単一細胞として分注する技術について、鋭意研究した結果、驚くべきことに、分注ピペット中の分注液を２回以上撮影し、撮影された微粒子様物のうち移動した微粒子様物を、移動しない微粒子様物と区別して浮遊粒子と判定することによって、分注ピペットのキズ又は付着異物を、容易に移動可能な浮遊状態の細胞と区別できることを見出した。ここで移動しない粒子としては、分注ピペットのキズや付着異物の他に、分注対象の細胞であるが付着して移動しない細胞も含まれる。付着した細胞は分注されないので、分注される細胞の数としてカウントすべきでないので、移動しない粒子をすべてカウントしないことは問題無い。
　また、本発明者らは、マイクロ流路カートリッジの流路における細胞の詰りを防止又は解消する技術について、鋭意研究した結果、驚くべきことに、マイクロ流路カートリッジ（マイクロ流路チップとも呼ぶ）において、シースリザーバーの圧力をサンプルリザーバーの圧力より高くし、そしてシースリザーバー中のシース液をサンプルリザーバーに逆流させることによって、マイクロ流路カートリッジの流路における細胞の詰りを防止する又は解消できることを見出した。
　更に、本発明者らは、交換型マイクロ流路カートリッジ内で、検体の処理や検出などを含む異なる複数の処理を順次実行する技術について、鋭意研究した結果、驚くべきことに、サンプル及び試薬の混合物から、オイルを用いて液滴を形成させ、液滴リザーバーにおいて反応を行い、そして前記液滴リザーバー中の液滴を、流路を介して逆流させ、そして反応を検出することによって、交換型マイクロ流路カートリッジ内で検体の処理や検出などを含む異なる複数の処理を順次実行できることを見出した。
　本発明は、こうした知見に基づくものである。
　従って、本発明は、
［１］微粒子を含む試料液を分注するための透明な中空ピペット、及び画像撮影手段を有する微粒子分注装置であって、
中空ピペット中の分注液を２回以上撮影する手段、２つ以上の撮影した画像を比較し、撮影された微粒子様物のうち移動した微粒子様物を、移動しない微粒子様物と区別して浮遊粒子と判定する手段、及び目的の個数の浮遊粒子を含む試料液を分注する手段を有する、
微粒子分注装置、
［２］前記中空ピペット中の分注液を強制的に移動させる手段を更に有する、［１］に記載の微粒子分注装置、
［３］ガス雰囲気を０．０３～５０％の二酸化炭素ガス雰囲気に調節できる手段を更に有する、［１］又は［２］に記載の微粒子分注装置、
［４］分注直前の中空ピペット内の粒子画像を保存することによって、分注した粒子数のデータを記録する、［１］～［３］のいずれかに記載の微粒子分注装置、
［５］試料液を、中空ピペットの上部から中空ピペットに供給するための分注予備室を有する、［１］～［４］のいずれかに記載の微粒子分注装置、
［６］微粒子を含む試料液を分注するための透明な中空ピペット、及び画像撮影手段を有する微粒子分注装置を用いて微粒子を分注する方法であって、（１）中空ピペット内の分注液を２回以上撮影する工程、（２）２つ以上の撮影した画像を比較し、撮影された微粒子様物のうち移動した微粒子様物を、移動しない微粒子様物と区別して浮遊粒子と判定する工程、及び（３）目的の個数の浮遊粒子を含む試料液を分注する工程、
を含む、微粒子分注方法、
［７］前記微粒子分注装置が、中空ピペット中の分注液を強制的に移動させる手段を更に有する微粒子分注装置であり、そして前記判定工程（１）が、分注液を強制的に移動させる手段によって、分注液を移動させる前後において、中空ピペット内の分注液を２回以上撮影する工程である、［６］に記載の微粒子分注方法、
［８］前記微粒子分注装置が、ガス雰囲気を０．０３～５０％二酸化炭素ガス雰囲気に調節できる手段を更に有する微粒子分注装置であり、そして前記工程（１）～（３）を３～１０％二酸化炭素ガス雰囲気で行う、［６］又は［７］に記載の微粒子分注方法、
［９］前記撮影工程（１）の前に、複数回の分注可能な量の試料液を中空ピペットの上部の分注予備室に吸引し、分注予備室から一定量の試料液が中空ピペットに供給された後に、工程（１）～（３）を実施することによって、連続的に分注液を分注する、［６］～［８］のいずれかに記載の微粒子分注方法、
［１０］透明基板に流路を形成してなる流路カートリッジと、前記流路を流れる試料液中の微粒子に光を照射する光照射手段と、前記光を照射した際に前記微粒子から発生する散乱光または蛍光を検出し、それらの信号強度に基づいて前記微粒子を識別し、目的の微粒子を検出する検出手段とを含む、微粒子解析装置であって、
前記流路カートリッジに、第１の流路に接続したサンプルリザーバー、前記第１の流路の左右両側から合流する第２流路及び第３流路が接続するシースリザーバー、及び合流後の第１流路の下流側に接続している廃液リザーバーが形成されており、
前記シースリザーバーの圧力をサンプルリザーバーの圧力より高くすることによって、シースリザーバー中のシース液をサンプルリザーバーに逆流させる手段を有することを特徴とする微粒子解析装置、
［１１］［１０］に記載の微粒子解析装置が、前記検出手段からの信号に基づいて微粒子の流れの方向を変化させる力を作用させる力発生手段を更に含む、微粒子分離装置、
［１２］前記流路カートリッジが、前記第２及び第３の流路が合流後の第１の流路の両側に対向するように接続した第４の分岐流路と第５の分岐流路及び前記第４分岐流路に接続するソーティングリザーバー及び第５の分岐流路に接続した回収リザーバーを有し、
前記力発生手段が、第４の分岐流路から第５の分岐流路の方向に流れるパルス流を発生させ、微粒子の流れを第５の分岐流路方向に変化させて微粒子を回収リザーバー分取する手段である、［１１］に記載の微粒子分離装置、
［１３］［１０］に記載の微粒子解析装置又は［１１］又は［１２］に記載の微粒子分離装置を用いる微粒子の流路詰りを防止又は除去する方法であって、シースリザーバーの圧力をサンプルリザーバーの圧力より高くし、そしてシースリザーバー中のシース液をサンプルリザーバーに逆流させることによって、サンプルリザーバーから第１の流路における微粒子の流路詰りを防止又は除去する方法、
［１４］マイクロ流路カートリッジにおいて、サンプル液を反応させ、その反応の結果を検出する反応検出装置であって、サンプルリザーバー、試薬リザーバー、オイルリザーバー、及び液滴リザーバーを有し、サンプルリザーバーからの第１流路及び試薬リザーバーからの第２流路が合流して第３流路を形成し、第３流路の両側からオイルリザーバーからの第４流路及び第５流路が合流し、前記第３流路は第４流路及び第５流路の合流点の下流で液滴リザーバーに結合しており、前記液滴リザーバーに流れ込んだ上記合流点で形成されたオイル中液滴を、第３流路を介して逆流させる手段を有し、そして第３流路において反応を検出する手段を有する、反応検出装置、
［１５］前記液滴を逆流させる手段が、液滴リザーバーに印加する圧力を、サンプルリザーバー、試薬リザーバー、及びオイルリザーバーに印加する圧力より高くする手段である、［１４］に記載の反応検出装置、
［１６］前記反応が遺伝子増幅反応であり、前記反応検出装置は液滴リザーバーの温度を調整する手段を有し、そして前記反応検出手段が光照射による蛍光を検出する手段である、［１４］又は［１５］に記載の反応検出装置、
［１７］前記サンプルリザーバー及び試薬リザーバーが１つのサンプル試薬リザーバーであり、前記第１流路及び第２流路がサンプル試薬リザーバーからの１つの第３流路である、［１４］～［１６］のいずれかに記載の反応検出装置、
［１８］［１４］～［１７］のいずれかに記載の反応検出装置を用いる反応検出方法であって、（１）第３流路のサンプル及び試薬の混合液を、第３流路の両側から第４流路及び第５流路を介して、オイルを供給することによって、オイル中液滴を形成する工程、（２）液滴中のサンプルを反応する工程、及び（３）液滴中のサンプルの反応を検出する工程、を含む、反応検出方法、
［１９］前記検出工程（３）において、液滴リザーバーから第３流路に液滴を逆流させた後に、サンプルの反応を検出する、［１８］に記載の反応検出方法、及び
［２０］前記反応が遺伝子増幅反応であり、前記検出が増幅した遺伝子の検出である、［１８］又は［１９］に記載の反応検出方法、
［２１］透明基板に流路を形成してなる流路カートリッジと、前記流路を流れる試料液中の微粒子に光を照射する光照射手段と、前記光を照射した際に前記微粒子から発生する散乱光または蛍光を検出し、それらの信号強度に基づいて前記微粒子を識別し、目的の微粒子を検出する検出手段とを含む、微粒子解析又は分離装置であって、微粒子が細胞の場合にサンプル液の周囲のガス雰囲気を０．０３～５０％の二酸化炭素ガス雰囲気に調節できる手段を有することを特徴とする微粒子解析又は分離装置、
［２２］前記調節手段が、チャンバーで装置全体をカバーし、そして二酸化炭素ガス雰囲気を調節する手段である、［２１］に記載の微粒子解析又は分離装置、及び
［２３］前記調節手段が、流路カートリッジ内の液体の周囲のガス雰囲気の二酸化炭素を調節する手段である、［２１］に記載の微粒子解析又は分離装置、
に関する。
　高濃度の夾雑細胞のなかの特定の細胞を一個単位で解析する技術において、細胞の分取技術、一個の細胞を分注する技術、及びその細胞に含まれるＤＮＡやＲＮＡを解析する方法が重要である。
　本発明の微粒子分注装置及び微粒子分注方法によれば、分注ピペットのキズ又は付着異物や分注対象の粒子であるが分注ピペットに付着した細胞などの分注不可能な移動しない輝点と、分注される移動可能な浮遊細胞とを区別することが可能となり、分注ピペット内の分注可能な細胞数を正確に測定することができる。従って、正確な細胞数の分注、特には単一細胞の分注が可能となった。
　また、本発明の微粒子解析装置、微粒子分離装置、及び微粒子の流路詰りを防止又は除去する方法によれば、交換可能なマイクロ流路カートリッジ内において、細胞の流路内の詰まり予防と詰まった後の詰まり除去する方法を、マイクロ流路カートリッジを装置から取り外すことなく、自動的に実行することを可能とした。
　更に、本発明の反応検出装置及び反応検出方法によれば、エマルジョンを利用して遺伝子を高感度検出する方法を用い、交換型流路カートリッジ内で、エマルジョン形成過程、エマルジョン内の目的遺伝子の増幅反応過程、及びエマルジョン液滴の蛍光検出過程を含む複数のプロセスを同一流路内で実現することで、目的の遺伝子の高感度検出の自動化を可能とした。
セルソーティング用の交換型流路カートリッジ内の通常の液体の流れの状態を示す図（Ａ）及びセルソーティング用の交換型流路カートリッジ内の細胞詰まりを防止又は除去するためのシース液の流れを示す図（Ｂ）である。 セルソーティング用の交換型流路カートリッジの平面図（Ａ）、及びセルソーティング用の交換型流路カートリッジのサンプルリザーバーの底に重力沈降で堆積した細胞が、シース液をサンプルリザーバーに逆流させることで撹拌される様子を示す図（Ｂ）である。 分注ピペット内輝点の時刻ＴにおけるＺ方向についての分布位置（Ａ）、分注ピペット内輝点の時刻Ｔ＋ΔＴにおけるＺ方向についての分布位置（Ｂ）、及び分注ピペット内輝点の時刻Ｔと時刻Ｔ＋ΔＴの差分のＺ方向についての分布位置（Ｃ）を示した図である。 交換型流路カートリッジの上流側リザーバー内のサンプル液が下流側リザーバーの方へ接続した流路を介して圧力制御により流れる過程を示した図（Ａ）、交換型流路カートリッジの上流側リザーバー内のサンプル液がすべて下流側リザーバーの方に流れた後に、サンプル液が静止している状態を示す図（Ｂ）、及び交換型流路カートリッジの下流側リザーバー内に静止した状態のサンプル液が、圧力を逆転させることで逆流する過程を示した図（Ｃ）である。 マイクロ流路カートリッジ内で、エマルジョン中の遺伝子を含む液滴を形成する過程を示す図（Ａ）、マイクロ流路カートリッジ内で、遺伝子を含む液滴を形成後に遺伝子増幅反応過程を示す図（Ｂ）、及びマイクロ流路カートリッジ内で、遺伝子増幅反応後に液滴を逆流させて、エマルジョン中の液滴の蛍光の有無を解析する過程を示す図（Ｃ）である。 本発明の反応検出装置に用いるマイクロ流路カートリッジの流路パターンが８本形成された、８検体対応の交換型流路カートリッジを示した図である。 ８検体対応交換型流路カートリッジを用いる反応検出装置の構成の概略を示した図である。 本発明の微粒子解析装置又は微粒子分離装置における逆流による撹拌の効果を示したグラフである。 本発明の微粒子分注装置の分注ヘッド部分を示した図（Ａ）、微粒子分注装置の分注ヘッドの動作を示した図（Ｂ）、及び微粒子分注装置の概観を示した図（Ｃ）である。 本発明の微粒子分注装置のおける分注ピペット内のサンプル液の画像（Ａ）、分注ピペット内のサンプル液の時間差分画像（Ｂ）、及び沈降粒子と認識された部分の拡大図（Ｃ）である。 エマルジョン中の液滴形成の圧力条件と、液滴サイズとの関係を示したグラフである。 液滴形成過程のマイクロ流路の写真（Ａ）、及び液滴リザーバーから液滴を含むエマルジョンを逆流させている写真（Ｂ）である。 本発明の微粒子分注装置において、５％ＣＯ２ガス雰囲気中で分注する手段の一例を示した図である。 本発明の微粒子分注装置において、分注ピペットの上流からサンプル液を供給する場合のサンプル液内の粒子の分注のシステムを示した図である。 分注毎に分注ピペット内に分注液を吸引する方法のフローチャートである。 分注ピペットの上部からサンプル液を連続して供給する方法のフローチャートである。 本発明の微粒子分注装置において、分注ピペットの上流からサンプル液を供給する場合のサンプル液内の粒子の画像認識方法を示した図である。 ＣＯ２ガス雰囲気中でのセルソーティングを、ＣＯ２ガスチャンバー内にセルソーターを設置することによって実現する方法を示した図である。この方法ではセルソーティングの原理によらずにＣＯ２ガス雰囲気中でのセルソーティングを実現する。 ＣＯ２ガス雰囲気中でのセルソーティングを、図２に示した交換型マイクロ流路カートリッジのリザーバー内をＣＯ２ガス雰囲気にすることで実現する方法を示した図である。
〔１〕微粒子分注装置
　本発明の微粒子分注装置は、微粒子を含む試料液を分注するための透明な中空ピペット、及び画像撮影手段を有する微粒子分注装置であって、中空ピペット中の分注液を２回以上撮影する手段、２つ以上の撮影した画像を比較し、撮影された微粒子様物のうち移動した微粒子様物を、移動しない微粒子様物と区別して浮遊粒子と判定する手段、及び目的の個数の浮遊粒子を含む試料液を分注する手段を有する。
　細胞を分注する場合、分注ピペット中の細胞数を認識する技術が必要である。細胞数を認識する技術においては、前記の通り分注ピペットなどの分注直前の容器のキズ、又は付着異物等が、細胞と区別できないという課題がある。この課題を解決した本発明の微粒子分注装置を、図を用いて説明する。
　図３は、分注ピペット内で移動する浮遊粒子を分注ピペットのキズや付着異物と区別する方法を図示したものである。図３（Ａ）は、光照明を行って時刻Ｔでカメラ撮影した分注ピペットの画像の輝点強度のＺ方向位置に対する分布を示したものである。図３（Ｂ）は時刻Ｔ＋ΔＴで撮影した同様の分布である。図３（Ｃ）は、時刻Ｔと時刻Ｔ＋ΔＴの差分の分布である。時間的に変化しない分注ピペットのキズや付着異物による輝点強度をゼロとして、時間的に移動する浮遊粒子のみを、前記の時間差分によって検出する。細胞は重力沈降によって下方向に移動するので、時間差のみで浮遊細胞を検出することができる。
　本発明に用いる中空ピペット、及び画像撮影手段は、本分野において通常用いられる中空ピペット及び画像撮影手段を、限定することなく用いることができる。
《中空ピペット中の分注液を２回以上撮影する手段》
　中空ピペット中の分注液を２回以上撮影する手段は、撮影回数及び撮影間の時間間隔を規定できる。撮影回数は、２回以上であれば特に限定されないが、好ましくは２回である。撮影間の時間間隔も、細胞の移動が検出できる限りにおいて、特に限定されるものではないが、例えば０．１～６０秒の時間間隔で撮影を実施すればよく、好ましくは１～１０秒であり、より好ましくは２～５秒である。この時間間隔は、分注する細胞のサイズが１０μｍの場合は重力沈降により移動する距離が２０μｍ以上となるように設定するのが都合がよい。
《浮遊粒子の判定手段》
　本発明の浮遊粒子の判定手段は、２つ以上の撮影した画像を比較し、撮影された微粒子様物のうち移動した微粒子様物を、移動しない微粒子様物と区別して浮遊粒子と判定する。第１の撮影画像中の微粒子様物を特定し、第２の撮影画像、又は第３以降の撮影画像において、それらの微粒子様物が移動したか否かを判定することによって、移動した微粒子様物と移動しない微粒子様物とを判別することが可能である。
《分注手段》
　本発明に用いる分注手段は、本分野において通常用いられる分注手段を、限定することなく用いることができる。
　例えば、本発明の微粒子分注装置は、試料液に含まれる微粒子を一個単位で分注する装置において、分注ピペットは、自動交換可能な透明な中空ピペットであって、素材は、ポリプロピレンやポリスチレンなどの透明樹脂製であって、分注液量は０．３μＬ以下であり、分注ごとに中空ピペットの分注液量全体の画像認識によって、４μｍ以上の粒子の有無と個数を検出し、粒子を指定した個数でマルチウェルプレートに分注することができる。そして、分注液量全体の画像を、異なる時間で複数回撮影することで、中空ピペット内で重力沈降により移動する浮遊粒子を中空ピペットのキズや付着異物と区別し、浮遊微粒子を分注することができる。
《強制移動手段》
　本発明の微粒子分注装置は、中空ピペット中の分注液を強制的に移動させる手段を有してもよい。重力沈降は移動速度が遅いので、強制的に分注ピペット内の液を短時間に移動させることで浮遊粒子の検出を高速化させる事もできる。強制移動手段としては、具体的には、中空ピペット中の分注液にかかる空気圧を変化させることを挙げることができる。
　例えば、本発明の微粒子分注装置は、試料液に含まれる微粒子を一個単位で分注する装置において、分注ノズルは、自動交換可能な透明な中空ピペットであって、分注液量は０．３μＬ以下であり、分注ごとに中空ピペットの分注液量全体の画像認識によって、サイズが４μｍ以上の粒子の有無と個数を検出し、粒子を指定した個数でマルチウェルプレートに分注することができる。そして、分注液量全体の画像取得を中空ピペット内で強制的に液を移動させて移動の前後で複数回行うことで、中空ピペット内の浮遊粒子を識別して、浮遊微粒子を分注することができる。強制的に移動させる量としては、１０μｍから１００μｍの間で設定する。例えば、分注する細胞のサイズが１０μｍの場合は２０μｍ以上移動させるのが望ましい。この場合の圧力変動の設定はシリンダーポンプのピストンの移動量で設定する。
　分注方式としては、サンプル液を分注単位ごとに分注ピペット内に吸い上げる場合のほかに、ピペットの上部からサンプル液を供給する場合がある。この場合は分注単位で吸い上げの動作が不要であり連続的に供給することが可能となる。この場合は分注されるサンプル液の領域と上部から新たに供給されるサンプル液の領域は連続に接続しているので、時間差による画像認識方法に以下の改良を追加する。この改良内容を図１７で説明する。分注ピペット８２（中空ピペット）の上部からサンプル液が分注毎に供給される。この場合、分注される液と上部から新たに供給される液とが接続しているためにその境界が明確でないため認識される細胞数が混在するという課題がある。この課題を解決するために、ピペット内の認識領域８４と予備認識空間８３の２種類の領域を設定して、其々の領域で粒子を検出する。認識領域に分注すべき数の粒子が存在し、予備領域内に粒子が存在しない場合にのみ分注するようする。但し、分注する液量は、認識領域の液量より多く、かつ認識領域の液量と予備領域の液量を加えた液量より少ない量とすることで、粒子数の混在を無くすことができ、認識領域内に含まれる粒子のみを分注することが可能となる。上部からサンプル液をピペット内に供給する場合の分注システムの例を図１４（Ａ）に記した。分注ピペットはＸＹＺ方向に移動可能であり、シリンダーポンプ８９による分注ピペット７３（中空ピペット）から事前にサンプル液７１を吸い上げ、分注ピペット７３の上部の分注予備室８７にいれる。その分注予備室の上流にピエゾポンプ８６が接続している。分注ピペット７３内部をカメラ７６で取得した画像の粒子検出のための画像認識は、図１７で説明したように認識領域と予備認識領域を設定することで分注される領域に含まれる粒子数を正確に決定する。分注する粒子数が目的の設定数の範囲と判定した場合は、図１４（Ｂ）に示すように、このポンプのパルス的な圧力により、分注ピペット７３の先端から空中に液滴単位に飛ばして、マルチウェルプレートに分注する。分注する粒子数が目的の設定数の範囲ではない場合は、その液をサンプル容器７１に戻す。液滴単位で分注する場合は、液滴サイズは、１００μｍから３００μｍの範囲である。図１４（Ｂ）で示したシステムは、破線領域８８でしめした範囲がサンプル液毎に自動交換可能であり、サンプル液間のキャリーオーバーが発生しない。
　中空ピペットの上部からサンプル液を連続して供給する微粒子分注装置は、複数回の分注のためのサンプル液を含有ための分注予備室８７を有する。分注予備室を有することにより、連続して、中空ピペットに試料液と供給することができる。また、分注予備室から、サンプル液を中空ピペットに連続的に供給するために、微粒子分注装置は連続分注手段を有することが好ましい。連続分注手段としては、限定されるものではないが、ピエゾポンプ８６を挙げることができる。
　上記の２種類の分注方法について、それぞれの手順を示すフローチャートを図１５と図１６に示す。図１５は、分注毎に分注ピペット内に分注液を吸引する方法のフローチャートである。この場合は、サンプル容器７１の中のサンプル液の粒子が重力沈降で底に沈むので撹拌を行った後に、分注ピペット７３に吸引して、その後にカメラ７６で分注ピペット内の画像を複数回取得する。画像取得間の間に分注ピペット内の液を強制移動させるために圧力を変化させる。複数の画像比較によって分注液内の浮遊粒子を検出し、浮遊粒子の数が設定値を満足する場合に、分注先に分注する。満足しない場合は、分注せずにサンプル溶液に戻す。図１６は、分注ピペットの上部からサンプル液を連続して供給する方法のフローチャートである。この方法でもサンプル容器中のサンプル液の撹拌からスタートする。分注毎に分注液を吸い上げるのではなく、分注ピペット７３の上流に設置したサンプル液予備室８７に、分注複数回分のサンプル液量を一度に吸い上げた後に、カメラ７６で分注ピペット内の画像を複数回取得する。画像取得間の間に分注ピペット内の液を強制移動させるために圧力を変化させる。複数の画像比較によって分注液内の浮遊粒子を検出し、浮遊粒子の数が設定値を満足する場合に、サンプル液予備室８７にパルス圧力を加えて、分注ピペットから、大気中に液滴状で飛ばして分注先に分注する。浮遊粒子の数が設定値を満足しない場合は、分注せずにサンプル容器に戻す。
　次に、分注前のサンプル液の分注後のコンタミネーションの問題とその防止技術について説明する。例えば、分注前に２種類のサンプル液AとサンプルB液があるとする。サンプルAに含まれる細胞群をマルチウェルプレートに分注した後に続いて、サンプルBに含まれる細胞群を、別のマルチウェルプレートに分注する場合に生じる細胞のコンタミネーションを考える。サンプルＢに含まれる細胞を分注したマルチウェルプレート内には、サンプルＡの細胞が混入している可能性がある。この可能性を無くすための技術を以下に説明する。分注毎に交換可能な分注ピペット内にサンプル液を吸い上げて分注する方式であって、かつサンプル液Ａの分注後は、分注ピペットを交換すれば良い。しかしながら、サンプル液から吸い上げて分注ピペットの内部の上流から分注液が供給される流路を使用する場合は、分注ピペットを吸い上げる流路からポンプを含む分注ピペットまでの全交換を行う必要があり、分注ピペットのみの交換ではコンタミネーションを防止することはできない。なぜならばサンプル液Ａの細胞がポンプ部に吸着し、サンプルＢ分注時に離れてコンタミネーションが発生する可能性を否定することは出来ないからである。したがって、サンプル液が接触する部分は交換型としなければならない。この部分に高価なポンプが含まれると、分注のランニングコストが高くなり実用的で無い。このため本発明では、分注ピペットの内部の上流から分注液が供給される流路を使用する場合でも、図１４に示すようにサンプル液が接する部分は、ポンプの下流のサンプル液予備室８７と分注ピペット７３を含む部分までとして交換可能とすることで、異なるサンプル液の分注時には交換することでコンタミネーションを無くすことを可能としている。サンプル予備室は、分注毎に吸い上げる必要の無い程度のサンプル液量を最初に吸い上げて分注ピペットの上流にサンプル液を確保するために設置している。
《二酸化炭素調節手段》
　細胞分注における細胞ダメージを解決するために、ＣＯ２インキュベーターと同じガス雰囲気の中で分注を行うという方法を挙げることができる。
　すなわち、本発明の微粒子分注装置は、ガス雰囲気を０．０３～５０％の二酸化炭素ガス雰囲気に調節できる手段を有してもよい。前記調節手段は、大気の二酸化炭素濃度である０．０３％以上にできる限りにおいて、特に限定されるものではない。後述の微粒子分注方法において用いる二酸化炭素濃度は、特に限定されるものではないが、好ましくは２～１０容量％であり、より好ましくは３～７容量％であり、更に好ましくは４～６容量％であり、最も好ましくは５容量％である。図１３は、細胞分注を、二酸化炭素ガス濃度を調節した雰囲気中で行う一例を示した図である。この図では二酸化炭素ガス濃度を調節した雰囲気を維持する容器で分注装置を囲む構成をとる。
　例えば、本発明の微粒子分注装置は、試料液に含まれる細胞を一個単位で分注する装置において、分注ノズルは、自動交換可能な透明な中空ピペットであって、分注液量は０．３μＬ以下であり、分注ごとに中空ピペットの分注液量全体の画像認識によって、サイズが４μｍ以上の粒子の有無と個数を検出し、細胞を指定した個数でマルチウェルプレートに分注することができる。そして、分注処理中に装置内のガス雰囲気を５％二酸化炭素ガスに維持することができる。ここで、分注液量全体の画像取得を、異なる時刻に複数回行うことで、中空ピペット内で自然沈降により移動する浮遊細胞を中空ピペットのキズや付着粒子と区別して検出してもよい。更に、分注液量全体の画像取得を中空ピペット内で強制的に液を移動させて移動の前後で複数回行うことで、中空ピペット内で移動する浮遊細胞を中空ピペットのキズや付着粒子と区別して検出してもよい。細胞の分注は、夾雑細胞群中に含まれる一部の目的の細胞を分注することを目的とすることが多い。この場合は、細胞分注用細胞をセルソーターにより夾雑細胞群から目的の細胞を純化させる前処理を行うことが好ましい。セルソーティング処理も、細胞分注の処理と同様に二酸化炭素濃度を調節した雰囲気中で行うことで、細胞分注と同様に大気中にさらされる事が原因の細胞ダメージを低減する事ができる。すなわち、細胞のバイオアビリティ低下を防止するために、細胞の解析、又は分離を行うことが好ましい。例えば、図１８に示すようにセルソーティングを行う場合に、二酸化炭素濃度を調節した雰囲気の容器内にセルソーターを設置し動作させればよい。この二酸化炭素濃度を調節する雰囲気の容器は、ＣＯ２ガスボンベ（３００）と圧力調整器（３０１）とエアー配管（３０３）で気密に接続したものであり、内部は炭酸ガスで気圧はほぼ大気圧にしたものである。この場合のセルソーターは、マイクロ流路カートリッジを利用する装置であっても、一般的にＦＡＣＳと呼ばれる大気中の液滴単位で細胞分離するセルソーターであってもよい。マイクロ流路カートリッジを利用する装置の場合は、サンプル液はマイクロ流路内のリザーバーであり、その容量が、１０μＬから数１０ｍＬまでの範囲にとどまるので、サンプル液の周囲の気体の容量もその範囲であるため、一定のＣＯ２ガス濃度に制御するには容量が小さい方が適していると言える。
　更に、図２に示した様に空気圧制御によってマイクロ流路カートリッジ内の液体の流れを制御するセルソーターにおいて、カートリッジ内のサンプル液を貯蔵するサンプルリザーバー内と必要な分取した細胞の貯蔵する回収リザーバー内にＣＯ２ガスを送る手段を図１９に示した。この場合は、ＣＯ２ガスボンベ（３００）と圧力調整器（３０１）とエアー配管（３０５）で、セルソーター装置のＣＯ２ガス配管系に気密に接続する。装置内のＣＯ２配管系は、ペリスターポンプ（３０４）を介して、マイクロ流路カートリッジ内のサンプルリザーバー（図２の１１に対応）とマイクロ流路カートリッジ内の回収リザーバー（図２の１７に対応）に気密に接続する。異なるリザーバー内の空気圧制御は、ＣＯ２ガスを送るタイミングが異なるので、並列に異なるペリスタポンプで接続する。ここでペリスタポンプを利用するメリットは、送り込んだガス量と廃液するガス量とが常に同じなので、気密なリザーバー内の細胞の流れ制御のための空気圧制御の圧力調整に対して、ＣＯ２ガスの緩やかな流入廃棄の制御系が影響を与えないことである。
〔２〕微粒子分注方法
　本発明の微粒子分注方法は、微粒子を含む試料液を分注するための透明な中空ピペット、及び画像撮影手段を有する微粒子分注装置を用いて微粒子を分注する方法であって、（１）分注ピペット内の分注液を２回以上撮影する工程、（２）２つ以上の撮影した画像を比較し、撮影された微粒子様物のうち移動した微粒子様物を、移動しない微粒子様物と区別して浮遊粒子と判定する工程、及び（３）目的の個数の浮遊粒子を含む試料液を分注する工程、を含む。
　本発明の微粒子分注方法は、限定されるものではないが、本発明の微粒子分注装置を用いて行うことができる。具体的に、前記「［１］微粒子分注装置」の項に記載の手法によって、分注を行ってもよい。
〔３〕微粒子解析装置及び微粒子分離装置
　本発明の微粒子解析装置は、透明基板に流路を形成してなる流路カートリッジと、前記流路を流れる試料液中の微粒子に光を照射する光照射手段と、前記光を照射した際に前記微粒子から発生する散乱光または蛍光を検出し、それらの信号強度に基づいて前記微粒子を識別し、目的の微粒子を検出する検出手段とを含む、微粒子解析装置であって、前記流路カートリッジに、第１の流路に接続したサンプルリザーバー、前記第１の流路の左右両側から合流する第２流路及び第３流路が接続するシースリザーバー、及び合流後の第１流路の下流側に接続している廃液リザーバーが形成されており、前記シースリザーバーの圧力をサンプルリザーバーの圧力より高くすることによって、シースリザーバー中のシース液をサンプルリザーバーに逆流させる手段を有する。
　本発明の微粒子分離装置は、透明基板に流路を形成してなる流路カートリッジと、前記流路を流れる試料液中の微粒子に光を照射する光照射手段と、前記光を照射した際に前記微粒子から発生する散乱光または蛍光を検出し、それらの信号強度に基づいて前記微粒子を識別し、目的の微粒子を検出する検出手段と、検出手段からの信号に基づいて微粒子の流れの方向を変化させる力を作用させる力発生手段を含む、微粒子解析装置であって、前記流路カートリッジに、第１の流路に接続したサンプルリザーバー、前記第１の流路の左右両側から合流する第２流路及び第３流路が接続するシースリザーバー、及び合流後の第１流路の下流側に接続している廃液リザーバーが形成されており、前記シースリザーバーの圧力をサンプルリザーバーの圧力より高くすることによって、シースリザーバー中のシース液をサンプルリザーバーに逆流させる手段を有する。
　前記微粒子分離装置は、前記流路カートリッジが、前記第２及び第３の流路が合流後の第１の流路の両側に対向するように接続した第４の分岐流路と第５の分岐流路及び前記第４分岐流路に接続するソーティングリザーバー及び第５の分岐流路に接続した回収リザーバーを有していてもよい。また、前記力発生手段が、第４の分岐流路から第５の分岐流路の方向に流れるパルス流を発生させ、微粒子の流れを第５の分岐流路方向に変化させて微粒子を回収リザーバー内に分取する手段であってもよい。
　前記シースリザーバーの圧力をサンプルリザーバーの圧力より高くする手段としては、シースリザーバーに圧力を付与する手段（例えば、ポンプ）と、サンプルリザーバーに圧力を付与する手段（例えば、ポンプ）と、１つの手段（ポンプ）ではなく、個別の手段（ポンプ）を用いることによって、達成することができる。
　また、本発明の微粒子解析装置又は微粒子分離装置は、廃液リザーバー、ソーティングリザーバー、及び／又は回収リザーバーに圧力を付与する手段（例えば、ポンプ）を有することが好ましい。これらの手段（ポンプ）は、シースリザーバーに圧力を付与する手段（ポンプ）とは別の手段（ポンプ）であることが好ましい。
〔４〕流路詰りの防止又は除去方法
　本発明の流路詰りの防止又は除去方法は、前記微粒子解析装置又は微粒子分離装置を用いる方法である。すなわち、前記微粒子解析装置又は微粒子分離装置において、シースリザーバーの圧力をサンプルリザーバーの圧力より高くし、そしてシースリザーバー中のシース液をサンプルリザーバーに逆流させることによって、サンプルリザーバーから第１の流路における微粒子の流路詰りを防止又は除去する。
　前記の通り、シースリザーバーに圧力を付与する手段（例えば、ポンプ）と、サンプルリザーバーに圧力を付与する手段（例えば、ポンプ）とを、個別の手段（ポンプ）を用いて、シースリザーバーの圧力を高くすることにより、シースリザーバー中のシース液をサンプルリザーバーに逆流させることができる。これによって、流路の微粒子の詰りを防止又は除去することができる。
　シースリザーバーに付与する圧力は、サンプルリザーバーに付与する圧力より高い限りにおいて、特に限定されるものではないが、好ましくは２ｋＰａ～５０ｋＰａであり、より好ましくは５ｋＰａ～２０ｋＰａである。また、サンプルリザーバーに付与する圧力も特に限定されるものではないが、好ましくは－２ｋＰａ～１ｋＰａであり、より好ましくは－１ｋＰａ～０ｋＰａである。
　シースリザーバーに付与する圧力とサンプルリザーバーに付与する圧力との差も、特に限定されるものではないが、好ましくは４ｋＰａ～５０ｋＰａであり、より好ましくは７ｋＰａ～２０ｋＰａである。
　更に、廃液リザーバー、ソーティングリザーバー、及び／又は回収リザーバーに付与する圧力も、特に限定されるものではないが、好ましくは－１ｋＰａ～０ｋＰａであり、より好ましくは－０．５ｋＰａ～０ｋＰａである。
　シースリザーバーの圧力をサンプルリザーバーの圧力より高く維持する時間は、流路の微粒子の詰りを防止又は除去できる限りにおいて、特に限定されるものではないが、例えば１～１分であり、好ましくは１～１０秒であり、より好ましくは２～５秒であり、更に好ましくは２～４秒である。また、この撹拌のために圧力を変化させるタイミングは、流路詰まりの予防用としては一定時間間隔が望ましい。流路詰まりの予兆を検出して撹拌用圧力変化を発生させるタイミングは、粒子を流している状態での単位時間当たりの粒子検出個数（検出レート）が設定した閾値を下回った場合、その検出レートが設定した相対的な低下率を下回った場合がある。流路詰まり予防および詰まり解消の両方を目的とする場合は、上記の何れかの条件を満足した場合に撹拌用圧力変化を発生させるのが望ましい。
　図１と図２を用いて、微粒子の流路詰りを防止又は除去するための、撹拌手段の１つの態様を説明する。図１（Ａ）は、ソーティング用の交換型マイクロ流路カートリッジの流路パターンであり、図２（Ａ）がカートリッジの平面図である。このカートリッジを用いるソーティング方法は、前述の特許文献６に記載されているパルス的な空気圧によって必要な細胞を分取する方法である。細胞を含むサンプル液は、サンプルリザーバー１１に接続する流路２２を流れる。この流路には、左右から細胞を含まないシース液が流れる流路２３Ｌと流路２３Ｒとが合流することで、サンプル液が流路中央部に収束して流れる。レーザー照射領域３５を通過した時に細胞から発生する散乱光や蛍光を検出することで必要な細胞か否かを判断し、必要な細胞と判断した場合は、その細胞がソーティング領域である流路２４Ｌと流路２４Ｒとの交差領域を通過するときに、流路２４Ｌから流路２４Ｒに流れるパルス流を発生させることで、目的の細胞を流路２４Ｒの方に分取し、目的外の細胞は通過して廃液リザーバーへ流れ込む。以上が、ソーティング時の液体の流れである。この状態を継続すると、細胞を含むサンプルリザーバー１１の底には重力沈降によって時間とともに堆積する。そのためサンプルリザーバー１１と流路２２との接続ポート部で細胞が詰まるということがしばしば発生する。そのため、サンプルリザーバー１１とシースリザーバー１２に印加する圧力を一時的に変化させて、図１（Ｂ）で示す様に、シースリザーバーのみに印加させてシース液を流路２３Ｌと流路２３Ｒから流して、サンプルリザーバー１１に印加する空気圧をゼロとすると、シース液はサンプルリザーバー１１へ逆流し、サンプルリザーバーの底に堆積している細胞がシース液で撹拌される。図２（Ｂ）はサンプルリザーバー１１の底からシース流の逆流によって堆積した細胞が撹拌される様子を模式的に説明したものである。シースリザーバー１２に印加する圧力を増加すると逆流が増大するので撹拌力は増大する。また、この撹拌により、ソーティングで取り込まれた細胞が廃液リザーバーに流出することはないので、ソーティング処理中に、各リザーバーに印加する圧力を一時的に変化させるだけで、細胞の撹拌を実現することができる。
　前記微粒子解析装置の撹拌手段の１つの態様を以下に説明する。すなわち、ソーティング機能がない流路における撹拌手段を説明する。例えば、微粒子解析装置は、透明基板に流路を形成してなる流路カートリッジと、前記流路を流れる試料液中の微粒子に光を照射する光照射手段と、前記光を照射した際に前記微粒子から発生する散乱光または蛍光を検出し、それらの信号強度に基づいて前記微粒子を識別し、目的の微粒子を検出する検出手段と、前記カートリッジの前記流路を流れる前記微粒子に対して、前記検出手段からの信号に基づいて微粒子を解析する装置である。そして、微粒子解析装置は、第１の流路に接続した試料液用のリザーバー（サンプルリザーバー）と、その第１の流路の左右両側から合流する第２、３の流路が接続するリザーバー（シースリザーバー）、合流後の第１の流路の下流側に接続している第４リザーバー（廃液リザーバー）が形成されている流路チップをもちいる微粒子解析装置である。前記微粒子解析装置において、細胞解析処理のためにサンプルを流している最中に、各種リザーバーの圧力を一定時間のみ一時的に変化させる。すなわち、サンプルリザーバー内のサンプル液に印加する圧力を解析処理用設定値Ａ（陽圧）からゼロとする。シース液リザーバー内のシース液に印加する圧力は解析処理用設定値Ｂ（陽圧）を増大させる。また、廃液リザーバー内の廃液に印加する圧力の変化は、解析処理用設定値Ｃ（陰圧）はゼロに変化させる。前記の一時的な圧力変化によって、サンプルリザーバー内の細胞の外部への流出がストップし、サンプルリザーバー内に流路が接続しているリザーバー底からシース液を逆流がおこり、サンプルリザーバーの底の重力沈降によって堆積した細胞が撹拌される。
　前記微粒子分離装置の撹拌手段の１つの態様を以下に説明する。例えば、微粒子分離装置は、透明基板に流路を形成してなる流路カートリッジと、前記流路を流れる試料液中の微粒子に光を照射する光照射手段と、前記光を照射した際に前記微粒子から発生する散乱光または蛍光を検出し、それらの信号強度に基づいて前記微粒子を識別し、目的の微粒子を検出する検出手段と、前記カートリッジの前記流路を流れる前記微粒子に対して、前記検出手段からの信号に基づいて流れの方向を変化させる力を作用させる力発生手段とを含む。前記流路カートリッジにおいて、第１の流路に接続した試料液用のリザーバー（サンプルリザーバー）、その第１の流路の左右両側から合流する第２、３の流路が接続するリザーバー（シースリザーバー）、合流後の第１の流路の両側に対向するように接続した第４の分岐流路と第５の分岐流路が接続する。また、前記第４分岐流路に接続するパルス流を送り出すための第３Ａリザーバー（ソーティングリザーバー）と、前記力発生手段により発生する第４の分岐流路から第５の分岐流路の方向に流れるパルス流によって微粒子の流れを第５の分岐流路方向に変化させて微粒子を分取しそして回収するための第５の分岐流路に接続した第３Ｂリザーバー（回収リザーバー）と、第１の流路の下流側に接続している分取されなかった微粒子を蓄える第４リザーバー（廃液リザーバー）とが形成されている。そして、ソーティング処理のためにサンプルを流している最中に、各種リザーバーの圧力を一定時間の間のみ一時的に同時に変化させる。すなわち、サンプルリザーバー内のサンプル液に印加する圧力をソーティング処理用設定値Ａ（陽圧）からゼロとする。シース液リザーバー内のシース液に印加する圧力はソーティング処理用設定値Ｂ（陽圧）を増大させる。また、廃液リザーバー内の廃液に印加する圧力は回収リザーバーへシース液が流れこむ条件の圧力であればよい。上記の一時的な圧力変化によって、細胞を含まないシース液はシース液リザーバーからサンプル液リザーバーとソーティングリザーバーと回収リザーバーと廃液リザーバーに一時的に流れ込む。その過程で、サンプルリザーバー内の細胞は流出がストップし、サンプルリザーバー内に流路が接続しているリザーバー底からシース液を逆流させることで、サンプルリザーバーの底の重力沈降によって堆積した細胞が撹拌される。また、シース液が回収リザーバー内に流入するので、回収リザーバー内のソーティングで回収した細胞が廃液リザーバーへの流出することが防止される。以上のように、細胞の流路チップ内の撹拌をソーティング性能に影響することなく実行する。
〔５〕反応検出装置
　本発明の反応検出装置は、マイクロ流路カートリッジにおいて、サンプル液を反応させ、その反応の結果を検出する反応検出装置であって、サンプルリザーバー、試薬リザーバー、オイルリザーバー、及び液滴リザーバーを有し、サンプルリザーバーからの第１流路及び試薬リザーバーからの第２流路が合流して第３流路を形成し、第３流路の両側からオイルリザーバーからの第４流路及び第５流路が合流し、前記第３流路は第４流路及び第５流路が合流点の下流で液滴リザーバーに結合しており、前記液滴リザーバー中の液滴を、第３流路を介して逆流させる手段を有し、そして第３流路において反応を検出する手段を有する。
　本発明の反応検出装置においては、あらかじめ検体及び試薬が混合された混合液を用いることもできる。この場合、前記サンプルリザーバー及び試薬リザーバーが１つのサンプル試薬リザーバーであってもよく、前記第１流路及び第２流路が前記サンプル試薬リザーバーからの１つの第３流路であってもよい。
《サンプル液の反応》
　本発明の反応検出装置における、検体の反応は特に限定されるものではなく、本分野において、通常用いられる反応を限定することなく利用することができる。例えば、遺伝子増幅反応、タンパク質のリン酸化反応、ＧＰＣＲとペプチド結合反応を挙げることができる。遺伝子増幅反応としては、デジタルＰＣＲなどのＰＣＲ法、ＬＡＭＰ法、又はＳｍａｒｔＡｍｐ法を挙げることができる。
《反応の検出》
　本発明の反応検出装置における反応の検出方法は、反応の種類に応じて、適宜選択することができる。例えば、反応産物が蛍光、発光、又は発色などの特徴を示す場合、それらに応じた検出方法を用いることができる。具体的には、レーザーやＬＥＤなどの光源による光照射で発光する蛍光を検出する手段、化学発光を検出する手段などを挙げることができる。
《液滴リザーバーの温度を調整する手段》
　本発明の反応検出装置は、好ましくは液滴リザーバーの温度を調整する手段を有する。液滴リザーバーの温度を調整する手段によって、様々な検体の反応を実施することができる。温度の調整は、特に限定されるものではないが、温度の上昇（加熱）、温度の低下（冷却）、及び温度の維持が可能であることが好ましい。温度の上昇（加熱）、温度の低下（冷却）、及び温度の維持を行う手段は、本分野で通常用いられている手段を用いることができる
《液滴を逆流させる手段》
　本発明の反応検出装置における液滴を逆流させる手段は、液滴リザーバーから、液滴を流路に逆流できる限りにおいて特に限定されるものではないが、例えば液滴リザーバーに印加する圧力を、サンプルリザーバー、試薬リザーバー、及びオイルリザーバーに印加する圧力より高くする手段を挙げることができる。特に、液滴を上流の特定のリザーバーのみに逆流させる場合は、蛍光検出後のエマルジョンを１箇所のリザーバーから回収することができるメリットがある。血液中のｃｔＤＮＡの検出の場合は、検出のみで診断が完了するが、さらに遺伝子配列を確認する場合は、蛍光を有する液滴を回収しなければならないので、１箇所のリザーバー内に液滴を逆流させるメリットがある。
　サンプルリザーバーにのみ液滴を逆流させる場合は、液滴リザーバーを陽圧、サンプルリザーバーを陰圧、オイルリザーバーを陽圧、試薬リザーバーを陽圧にすればよい。
　前記液滴リザーバーの圧力をサンプルリザーバー等の圧力より高くする具体的な手段としては、シースリザーバーに圧力を付与する手段（例えば、シリンジポンプあるいは、陽圧用ロータリーポンプと電空レギュレータとの組み合わせ、陰圧用ロータリーポンプと電空レギュレータとの組み合わせ）と、サンプルリザーバー等に圧力を付与する手段（例えば、シリンジポンプ、ロータリーポンプと電空レギュレータとの組み合わせ）とを、個別に印加する圧力を調整できる手段（シリンジポンプあるいは、陽圧用ロータリーポンプと電空レギュレータとの組み合わせ、陰圧用ロータリーポンプと電空レギュレータとの組み合わせ）を用いることによって、達成することができる。個別に印加する圧力を調整できる手段は、シリンジポンプの場合はピストン移動方向で陽圧と陰圧の両方に対応できる手段であり、ロータリーポンプに接続した電空レギュレータの場合は、陽圧用ロータリーポンプに接続した電空レギュレータと陰圧用ロータリーポンプに接続した電空レギュレータと並列に接続することで両方に対応する手段となる。
　好ましくは、液滴リザーバーに圧力を付与する手段（ポンプ）、試薬リザーバーに圧力を付与する手段（ポンプ）、オイルリザーバーに圧力を付与する手段（ポンプ）、及び液滴リザーバーに圧力を付与する手段（ポンプ）が、それぞれ個別の手段（ポンプ）であることが、最も好ましい。
〔６〕反応検出方法
　本発明の反応検出方法は、前記反応検出装置を用いる反応検出方法である。すなわち、本発明の反応検出方法は、前記反応検出装置を用いて、（１）第３流路のサンプル及び試薬の混合液を、第３流路の両側から第４流路及び第５流路を介して、オイルを供給することによって、液滴を形成する工程、（２）液滴中のサンプルを反応する工程、及び（３）液滴中のサンプルの反応を検出する工程、を含む。
　本発明の反応検出方法においては、あらかじめ検体及び試薬が混合された混合液を用いることもできる。この場合、前記反応検出装置において、前記サンプルリザーバー及び試薬リザーバーが１つのサンプル試薬リザーバーであって、前記第１流路及び第２流路が前記サンプル試薬リザーバーからの１つの第３流路であってもよく、混合液をサンプル試薬リザーバーに入れることによって反応検出方法を実施することができる。
《液滴形成工程》
　本発明の反応検出方法における液滴形成工程は、第３流路のサンプル及び試薬の混合液を、第３流路の両側から第４流路及び第５流路を介して、オイルを供給することによって、液滴を形成する。
　混合液の流量、及びオイルの流量を適宜調整することによって、反応に適した液滴を形成することができる。例えば、混合液の１容量に対して、例えばオイルを１～１００容量、好ましくは２～５０容量、更に好ましくは３～１０容量流すことによって、液滴を形成することができる。
　前記オイルは、液滴を形成できる限りにおいて、特に限定されるものではないが、ミネラルオイル又はフロリナートなどのフッ素オイル、又はシリコーンオイルなどを挙げることができる。
《サンプル反応工程》
　サンプル反応工程における反応は、特に限定されるものではなく、本分野において、通常用いられる反応を限定することなく利用することができる。例えば、遺伝子増幅反応、タンパク質のリン酸化反応、ＧＰＣＲとペプチド結合反応を挙げることができる。遺伝子増幅反応としては、デジタルＰＣＲなどのＰＣＲ法、ＬＡＭＰ法、又はＳｍａｒｔＡｍｐ法を挙げることができる。
　ＰＣＲ法の場合、温度の上昇（加熱）、温度の低下（冷却）、及び温度の維持を行う。すなわち、高温（例えば９５℃）と中程度の温度（例えば６５℃）とを交互に一定時間維持することによって、遺伝子の増幅反応を行うことができる。ＬＡＭＰ法又はＳｍａｒｔＡｍｐ法などの等温増幅法の場合は、６５℃などで温度を維持することによって、遺伝子の増幅反応を行うことができる。
《反応検出工程》
　反応検出工程における検出方法は、反応の種類に応じて、適宜選択することができる。例えば、反応産物が蛍光、発光、又は発色などの特徴を示す場合、それらに応じた検出方法を用いることができる。具体的には、レーザーやＬＥＤなどの光源による光照射で発光する蛍光を検出する手段、化学発光を検出する手段などを挙げることができる。
　反応が終了した液滴を、液滴リザーバーから第３流路逆流させ、第３流路において、反応を検出するのが好ましい。
　本発明の反応検出装置、及び反応検出方法における処理の機構を以下に説明する。使い捨て交換型のマイクロ流路カートリッジ内で、サンプル液を流しながら、次々と異なる反応及び／又は検出を連続的に実施する。そのために、処理時間が異なる複数の処理を同一の流路カートリッジで行う方法の１つの実施態様を、図４を用いて説明する。図４は、使い捨て交換型のマイクロ流路カートリッジに形成されている最上流側リザーバー２と最下流リザーバー３が流路４で接続してあり、リザーバー２内のサンプル液上面に印加する圧力１とリザーバー２に印加する圧力２の制御によって、最初リザーバー２内のサンプル液１をリザーバー３に移動させるプロセス１を実行する。サンプル液はすべてリザーバー３に移動を完了するとプロセス１が終了して、自動的に流れがストップして静止状態になる。このプロセスをプロセス２とする。次に、リザーバー３からリザーバー２へ逆流させる。このプロセスをプロセス３とする。以上のことは、流れと静止を含む異なるプロセス１、２、及び３を、圧力１と圧力２の制御のみで、順次実行できることを示している。
　前記反応検出装置、及び反応検出方法の具体的な１つの実施態様を以下に説明する。本実施態様は、空気圧制御による逆流を利用して複数プロセスを同一流路内で順次実行する手段であって、エマルジョン中の液滴を利用して遺伝子を高感度に検出する方法に適用できるものである。本実施態様は、液滴形成プロセス、遺伝子増幅反応、及び検出の３種類のプロセスを、同一マイクロ流路カートリッジ内で実施する方法となる。所要時間の異なる３種類の処理（（１）液滴形成、（２）遺伝子増幅、（３）検出）を順次行う場合は、遺伝子増幅の過程で、液滴の流れを反応時間の間ストップさせる必要がある。このため流路中にバルブなどによるストップ機構が必要になる。本発明では、ストップ機構を不要とするために、遺伝子増幅反応を液滴リザーバーで行うことによって、自然にストップさせる。反応終了後に、液滴を逆流させて検出を行う。このような制御は使い捨て交換マイクロ流路内に特別な素子を使用する必要がない。すなわち、空気圧の切り替えのみで可能であるため、ランニングコストを低くすることが可能であり、コストパフォーマンスが高いといえる。図５（Ａ）は、流路カートリッジの平面図であり、遺伝子を含むエマルジョン中の液滴を形成する流路パターンを示している。細胞、細菌、又はウイルスなどのＤＮＡやＲＮＡをふくむサンプル液をサンプルリザーバー１０２－１にいれ、試薬リザーバー１０２－２には遺伝子増幅反応に必要な試薬を含む水溶液を入れる。オイルリザーバー１０２－３には、オイル中液滴のエマルジョン形成用のオイルを入れる。このオイルとしてはミネラルオイルまたはフロリナートなどのフッ素オイルなどを選択することができる。この状態で、サンプルリザーバー１０２－１、試薬リザーバー１０２－２、オイルリザーバー１０２－３には大気圧より大きな空気圧を印加し、液滴リザーバー１０３－１には大気圧または上流側より小さい空気圧を印加することで流れを発生し、サンプルリザーバー１０２－１と試薬用リザーバー１０２－２にそれぞれ接続する流路を合流させて混合し、さらに引き続いてオイルリザーバー１０２－３からの左右からのオイルの流れと合流させることで、オイル中液滴が形成し、その液滴が液滴リザーバー１０３－１に流れ込む。以上がエマルジョン液滴形成プロセスである。このエマルジョン中の液滴形成は、サンプル液が無くなるまで十分な数の液滴が形成されることが望ましい。図５（Ｂ）では、液滴リザーバー１０３－１に流入したオイル中液滴群がそのまま液滴リザーバー１０３－１に蓄積するように、圧力の印加状態は（Ａ）と同じ圧力をキープするか、逆流しない程度の低い圧力を保持する。その状態で液滴中に含まれる目的の遺伝子配列を増幅するための反応を行う。遺伝子増幅反応としては等温増幅法を利用する方法とＰＣＲを利用する方法が可能である。ＰＣＲを利用する場合は液滴リザーバー１０３－１の温度を約９５℃と約６５℃とを交互に一定時間間隔で一定回数だけ変化させる。等温増幅法の場合は、６５℃で増幅反応を行う方法でありＬａｍｐ法またはＳｍａｒｔＡｍｐ法の２種類が知られている。何れの方法においても、液滴リザーバー１０３－１を約６５℃の保温状態で少なくとも約３０分程度以上温度を保持することで十分な増幅反応が行われる。この増幅した遺伝子を含むエマルジョンは蛍光プローブによって遺伝子量に比例した蛍光を発する。遺伝子増幅反応後はこのエマルジョンを計数する処理を行う。このプロセスを図５（Ｃ）に示す。液滴リザーバー１０３－１に印加する圧力をサンプルリザーバー１０２－１、試薬リザーバー１０２－２、オイルリザーバー１０２－３の圧力より大きくすることで、液滴リザーバー１０３－１からエマルジョン中の液滴を逆流させ、流路中にレーザー１０６を照射することで、蛍光を有する液滴を検出する。以上によって、エマルジョン形成、遺伝子増幅、検出の三種類の処理を同一カートリッジ内で処理することを実現する。
　以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。
《実施例１》
　本実施例では、本発明の微粒子分注装置及び微粒子分注方法を行った。具体的には、細胞をマルチウェルプレートに１個単位で分注した。図９（Ａ）は、細胞を分注する装置を模式的に示したものである。分注前の細胞懸濁液はチューブ７１に入っている。細胞はチューブ７１の底に重力沈降するため、少なくとも５分以内の時間間隔で撹拌が必要である。この撹拌時間の間隔が長くなると細胞懸濁液の上層部に細胞が存在しない領域が拡大するので、時間間隔は厳守する。この細胞懸濁液に空気圧を制御するシリンジポンプ７４の先に取り付けた透明な中空パイプである分注ピペット７３の先をＺ軸下方に移動して入れる。次に分注量分だけシリンジのピストンを上げて細胞懸濁液をピペット７３の中に吸引する。吸引後にＺ軸の上方にピペット７３を上げて、カメラでピペット内の分注量全量の画像を２回取得する。この場合、画像取得の時間差を３秒とすると、サイズ１０μｍ程度の細胞が重量沈降による移動距離が１０μｍ以上となるので、時間差分により浮遊細胞を、分注ピペットのキズや付着異物と区別することができる。図１０は、時間差分画像認識による細胞を含む分注ピペット内の浮遊細胞数の検出例を示している。図１０（Ａ）は最初の撮影画像、図１０（Ｂ）は時間差分画像、図１０（Ｃ）は時間差分画像で検出した細胞部分の拡大像である。図１０（Ａ）には分注ピペットの傷や付着異物など多くの輝点が存在している。図１０（Ｂ）には、３秒間で変化した部分が抽出され浮遊細胞数が５個と認識されている。図１０（Ｃ）には、３秒間の移動前と移動後の細胞の輝点が現れている。この２つの輝点は、図３（Ｃ）の時間差分の輝度分布のプラス部分とマイナス部分の２箇所に対応する画像である。以上の実施形態は細胞の重力沈降による移動前後の時間差分による細胞検出方法であるが、分注ピペット内の液を圧力によって上下方向に強制的に移動させる場合は、重力沈降より移動速度を早められるので、時間差の時間間隔を短縮できる。以上のように、時間差分画像検出によって、分注ピペット内の細胞数を評価し、もし一個存在する場合はマルチウェルプレートの所定のアドレスのウエルに移動する。Ｚ軸下方へ移動し、図９（Ｂ）に示すように、分注ピペット７３をすでに分注してある液体の上面８１より下におろして、シリンジポンプのピストン７５を押し出してピペット内の液滴を排出する。排出後もピストン７５を押し下げながら分注ピペットを上方に引き上げる。分注ピペット内の画像認識の結果、液滴の数がゼロか２個以上である場合は、チューブ７１に戻って分注ピペット７３内のエマルジョン液を排出して、再度吸引して、液滴が１個のみ存在する場合のみ分注する。分注量として０．３μＬの場合、ピペットの内径を４００μｍとすると、ピペット内に２．４ｍｍだけ吸引すれば良い。次に液量０．３μＬ全体をカメラの１ショットの画像でピントがあった状態で撮影可能かどうかを考察すると、対物レンズとして１倍のものを使用する場合は被写界深度が４４０μｍであり、ピペット内の内径４００μｍ全体をピントがあった状態で撮影することができる。視野の広さを考えると１／２型カメラの場合は６．４ｍｍをカバーするのでピペット内の長さ２．４ｍｍ全体の撮影が可能である。したがって、画像１ショットで分注量０．３μＬの全体を撮影が可能と判断することができる。但し、画像の分解能は１１μｍであるので、細胞１個の有無も個数も識別することができる。次に、光学系を説明する。分注ピペット内の細胞を照明する光源は、ＬＥＤ光源であり、分注ピペットの上部周囲から下方に照明している。検出光学系は、内径４００μｍの透明樹脂製の中空ピペット内の粒径が１０μｍの細胞を、１倍の対物レンズと１／２型カメラで撮影することで、被写界深度を４００μｍ以上としている。図９（Ｃ）は、分注機の概観である。分注機は安全キャビネット内に設置できるサイズであって、分注機を５％ＣＯ２ガス雰囲気の容器で覆って使用することで、細胞ダメージを低減する。
《実施例２》
　本実施例では、本発明の微粒子分離装置を用いて、微粒子の流路詰りを防止又は除去する方法を実施した。
　具体的には、図２（Ａ）に示したセルソーティング用の交換型マイクロ流路カートリッジを利用して、撹拌による細胞の流路詰りの防止又は除去を行った。流路カートリッジの基板素材は透明樹脂であって、ＣＯＰ、ＣＯＣ、ＰＭＭＡのいずれかの素材である。主流路２２の流路幅は８０μｍであって、深さは８０μｍである。ソーティング処理を行う場合は、サンプルリザーバー１１に印加する圧力は１．８ｋＰａ、シースリザーバー１２に印加する圧力は１．８ｋＰａ、廃液リザーバー２１に印加する圧力は－０．８ｋＰａである。ソーティングに関するリザーバー１６、１７は、電磁バルブが閉じている状態では圧力を印加しない。撹拌用の圧力設定は、サンプルリザーバー１１に印加する圧力は０ｋＰａ、シースリザーバー１２に印加する圧力は７ｋＰａ、廃液リザーバー２１に印加する圧力は０ｋＰａである。この圧力の維持時間の設定を３秒間だけ維持とした場合の撹拌効果を調べるために、１０８個／ｍＬの高濃度の培養細胞（セルラインＭｏｌｔ４）のＰＢＳバッファー懸濁液をサンプルリザーバーにいれて、サンプルリザーバー１１に印加する圧力は１．８ｋＰａ、シースリザーバー１２に印加する圧力は１．８ｋＰａ、廃液リザーバー２１に印加する圧力は－０．８ｋＰａの条件で流した。波長４８８ｎｍレーザーを流路２２に照射し、流れる細胞を計数した。開始後６分程度で細胞の計数が低下してゼロとなる。これは細胞がサンプルリザーバーの底に沈降して堆積して、流路が詰まった為と考えられる。この時に、撹拌用圧力を３秒間設定すると細胞の計数がゼロから上昇し、細胞の詰まりが除去されることが分かる。細胞の計数がゼロになる前に撹拌用圧力を設定しても細胞の計数が上昇することが分かる。以上のデータにより、本発明の撹拌が効果的であることが分かる。上記の撹拌をソーティング中に自動的に実施するためには、１）一定時間間隔で自動的に開始、２）計数レートが一定値以下になると自動的に開始など、複数の条件のいずれかの条件を満足した場合に開始することで、細胞の詰まりの防止、及び詰まった後の解除の両方に対応することができる。
《実施例３》
　本実施例では、本発明の反応検出装置を用いて、反応検出方法を実施した。具体的には、交換型マイクロ流路カートリッジ内での複数プロセス自動処理として、エマルジョン中の液滴形成、遺伝子増幅反応、及び検出の３つの工程を、１つのマイクロ流路カートリッジ内で行った。図５（Ａ）は、流路カートリッジの平面図であり、遺伝子を含む液滴を形成する流路パターンを示している。ＤＮＡを含むサンプル液をサンプルリザーバー１０２－１にいれ、試薬リザーバー１０２－２には等温増幅法におる遺伝子増幅反応に必要な試薬とともに、ＤＮＡと結合すると蛍光を発する蛍光試薬をいれる。このような蛍光試薬としては、照射光源として４８８ｎｍレーザーと６３７ｎｍレーザーを用いる。この場合は、インターカレータ方式のエバグリーン、サイバーグリーン、又はＴａｑＭａｎプローブ（ＦＡＭやＣｙ５など）を遺伝子検出用蛍光色素として利用することができる。オイルリザーバー１０２－３には、オイル中で液滴を形成するためのオイルを入れる。このオイルとしてはミネラルオイルまたはフロリナートなどのフッ素オイルなどを選択することができる。エマルジョン形成条件は、オイルリザーバー１０２－３に印加する圧力を１４ｋＰａ、サンプルリザーバー１０２－１と試薬リザーバー１０２－２に印加する圧力を１０ｋＰａとする。液滴リザーバー１０３－１は大気圧とする。この圧力条件により、オイルとしては複数の界面活性剤（Ｓｐａｎ　８０、Ｔｗｅｅｎ　８０、Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ－１００）を含むミネラルオイルを用いる場合は、図１１に示すようにサイズが約５５μｍのエマルジョン液滴を形成することができる。エマルジョンを形成する流路の流路幅は４０μｍである。形成したエマルジョンは、液滴リザーバー１０３－１に流れ込む。以上が液滴形成工程である。このエマルジョン中の液滴形成は、サンプル液が無くなるまでに、十分な数の液滴が形成されることが望ましい。図５（Ｂ）に示すように、液滴リザーバー１０３－１に流入したオイル中の液滴が、液滴リザーバー１０３－１内に蓄積する。そして、図５（Ａ）と同じ圧力を保持し、液滴リザーバー１０３－１の温度を６５度に保持し、そして少なくとも３０分放置することで、エマルジョンの液滴に含まれる目的の遺伝子配列を増幅する。
　遺伝子増幅反応に、このエマルジョン中の液滴を計数する処理を行う。この処理を図５（Ｃ）に示す。液滴リザーバー１０３－１に印加する圧力を１４ｋＰａとして、サンプルリザーバー１０２－１、試薬リザーバー１０２－２、オイルリザーバー１０２－３の圧力を大気圧として０ｋＰａにする。この圧力によって、液滴リザーバー１０３－１から液滴を含むエマルジョンを逆流させる。図１２（Ａ）はマイクロ流路内でエマルジョンを形成している状態の写真であって、図１２（Ｂ）は液滴を含むエマルジョンを液滴リザーバー１０３－１から逆流させている状態の写真である。逆流している流路中にレーザー１０６を照射することで、蛍光を有する液滴を検出する。この検出では蛍光を有する液滴と蛍光を有しない液滴の両方を区別して計数する。蛍光を有する液滴の検出がサンプル液に含まれる目的のＤＮＡの検出に対応する。また、蛍光を有する液滴数と蛍光を有しない液滴数の比率により、目的のＤＮＡの存在密度を評価する。以上により、サンプル液中の目的のＤＮＡを検出するために、液滴形成、遺伝子増幅、検出の３つの処理を１つのカートリッジ内で処理することが実現される。
　以上の処理のスループットを向上するために、カートリッジに図５の流路パターンを複数形成したものを利用する。図６は、８検体対応の遺伝子検査用チップを示したものである。図６のカートリッジ１０７の流路パターン構造は、図５の流路パターンを８本形成したカートリッジであり、エマルジョンＰＣＲ法、又はエマルジョン等温増幅法を単一カートリッジで８検体に対応するものである。単一カートリッジで多検体に対応するメリットは、１検体当たりのランニングコストの低減の他に、多検体同時に一括して処理する工程だけ検査時間の短縮化を実現することにある。その理由は、エマルジョン形成と遺伝子増幅反応は、単一カートリッジ上の８流路について同時に一括して処理するので、最後の蛍光検出の処理のみが８流路を逐次検査となるからである。このメリットを式で示すと、エマルジョン形成時間をＥｔ、遺伝子増幅反応時間をＤｔ、蛍光を検出する時間をＦｔとおくと、１流路カートリッジの場合の１検体当たりの処理時間はＥｔ＋Ｄｔ＋Ｆｔとなるが、８流路カートリッジの場合の１検体当たりの処理時間は（Ｅｔ＋Ｄｔ）／８＋Ｆｔとなる。すなわち、エマルジョン形成時間と遺伝子増幅時間は、８分の１に短縮化する。処理時間は、エマルジョン１００万個形成する所要時間は２０分であり、遺伝子増幅反応時間は３０分である。エマルジョンの蛍光検出処理時間は、検出レートを１０００個／秒と設定すると、１流路当たり１６．６分の８倍となるので、全体の処理時間の合計は約３時間となる。この処理時間は１００万個のエマルジョンの場合であるが、１０万個の場合は４５分となる。この多検体対応カートリッジで検査を行う装置を図７に示した。この装置は、８検体対応流路カートリッジ２０９において、端の流路から計測を行い計測が終了したら、次の隣の流路にカートリッジ２０９をカートリッジ用ステージ２１０の移動によって、順次計測するという方法をとる。この装置は、オイル中液滴からなるエマルジョンの形成機能と、エマルジョン内遺伝子増殖反応のための温度制御機能を８流路一括で処理した後に、エマルジョンを逆流させる過程でエマルジョン液滴のフローサイトメトリー計測を、各流路単位でステージ移動により８流路を順次行う。但し、１本の流路のみに照射されるサイズの光ビームを８流路間で順次ステップアンドリピート方式でカートリッジを移動させることで８流路全体を計測する。カメラ２１７で流路の両側面を検出する画像認識を行うことで、移動後の流路の位置精度を確認する。各流路では、光照射領域を個々の液滴が通過したときに発生する散乱光と蛍光を、ダイクロイックミラー２１４、２１５、２１６とバンドパスフィルター２２１、２２２、２２３によって、波長別に光を分離し、散乱光は光検出器２１７で検出し、蛍光は光検出器２１８、２１９で検出する。上記において照射光源として、波長４８８ｎｍのレーザーのみを用いる場合と他の波長のレーザー光を合わせて照射する場合がある。波長４８８ｎｍ励起による蛍光色素としては、５００ｎｍから５５０ｎｍの範囲のＳｙｂｅｒＧｒｅｅｎまたはＥＶＡＧｒｅｅｎや、ＴａｑＭａｎプローブでＦＡＭが利用できる。波長６３７ｎｍのレーザー（出力５０ｍＷ）も同時搭載する場合は、ＴａｑＭａｎプローブでＣｙ５を利用することができる。
　本発明は、検体間のクロスコンタミネーションが許されない医療用途での利用を目的としている。具体的には、がん免疫療法では、がん細胞を免疫細胞が攻撃するターゲットの研究において、がん細胞のシングル・セル発現解析が重要であり、その為にはがん細胞の単一細胞分注技術が必要となる。またがん診断においては、がん患者の血液中に含まれるがん遺伝子の高感度検出による診断が重要となっている。
　以上、本発明を特定の態様に沿って説明したが、当業者に自明の変法や改良は本発明の範囲に含まれる。
１…サンプル液；
２…上流側リザーバー；
３…下流側リザーバー；
４…流路；
１０…交換型マイクロ流路カートリッジの外枠；
１１…サンプルリザーバー（第１リザーバー）；
１２…シースリザーバー（第２リザーバー）；
１３…試料液の主流路と接続ポート；
１４…試料液とシース液との隔壁；
１５Ｌ…左側のシース液のシース流路との接続ポート；
１５Ｒ…右側のシース液のシース流路との接続ポート；
１６…ソーティングリザーバー（第３Ａリザーバー）；
１７…回収リザーバー（第３Ｂリザーバー）；
１８…ソーティングリザーバーのソーティング流路との接続ポート；
１９…回収リザーバーのソーティング流路との接続ポート；
２０…廃液の主流路との接続ポート；
２１…廃液リザーバー（第４リザーバー）；
２２…主流路（第１流路）；
２２－Ｅ…主流路（第１流路）；
２３Ｌ…左側のシース流路（第２流路）；
２３Ｒ…右側のシース流路（第３流路）；
２４Ｌ…パルス流Ｐｕｓｈ側のソーティング流路（第４流路）；
２４Ｒ…パルス流Ｐｕｌｌ側のソーティング流路（第５流路）；
３５…光照射領域；
７０…分注先のマルチウェルプレート；
７１…容器のなかの分注前の細胞などのサンプル粒子の懸濁液；
７２…容器のなかの洗浄液；
７３…分注ピペット（透明な中空パイプ）；
７４…空気圧シリンジポンプ；
７５…空気圧シリンジポンプのピストン部分；
７６…カメラ；
７７…分注機制御ＰＣ；
７８…粒子分注機；
８０…マルチウェルプレート内のウエル；
８１…事前に分注されているウエル内の液体；
８２…分注ピペット；
８３…予備認識領域；
８４…認識領域；
８５…浮遊粒子；
８６…ピエゾポンプ；
８７…サンプル液予備室；
８８…サンプル液ごとに交換する部分；
８９ …シリンジポンプ；
９０…分注ノズルから吐出される液滴；
１０４…流路；
１０２－１…サンプルリザーバー；
１０２－２…試薬リザーバー；
１０２－３…オイルリザーバー；
１０３－１…液滴リザーバー；
１０６…レーザー照射領域；
１０７…８検体対応チップ；
１０８…６５℃温度保持部；
２０８：照射光源；
２０６：照射光；
２０７：レンズ；
２０９：多検体流路カートリッジ；
２１０：カートリッジ用ステージ；
２１１：稼働ステージ用パルスモータードライバー；
２１３：ビームサンプラー；
２１４：ダイクロイックミラー；
２１５：ダイクロイックミラー；
２１６：ダイクロイックミラー；
２１７：カメラ；
２１８：光検出器；
２１９：光検出器；
２２０：光検出器；
３００：ＣＯ２ガスボンベ；
３０１；圧力調整器；
３０２：エアフィルター；
３０３：エアー配管；
３０４：ペリスタポンプ；
３０５：エアーチューブ配管（ＣＯ２ガス流入用）；
３０６：エアーチューブ配管（ＣＯ２ガス排出用）；
３０７：マイクロ流路カートリッジ内のサンプルリザーバー（図２の１１に対応）；
３０８：マイクロ流路カートリッジ内の回収リザーバー（図２の１７に対応）；
３０９：マイクロ流路カートリッジを用いるセルソーターの装置領域の範囲；
３１０：チャンバー；
３１１：セルソーター（マイクロ流路カートリッジを用いない装置でも用いる装置であってもよい）；
３１２：マイクロ流路カートリッジ領域の範囲

Claims (23)

  1. 　微粒子を含む試料液を分注するための透明な中空ピペット、及び画像撮影手段を有する微粒子分注装置であって、
    中空ピペット中の分注液を２回以上撮影する手段、２つ以上の撮影した画像を比較し、撮影された微粒子様物のうち移動した微粒子様物を、移動しない微粒子様物と区別して浮遊粒子と判定する手段、及び目的の個数の浮遊粒子を含む試料液を分注する手段を有する、
    微粒子分注装置。
  2. 　前記中空ピペット中の分注液を強制的に移動させる手段を更に有する、請求項１に記載の微粒子分注装置。
  3. 　ガス雰囲気を０．０３～５０％の二酸化炭素ガス雰囲気に調節できる手段を更に有する、請求項１又は２に記載の微粒子分注装置。
  4. 　分注直前の中空ピペット内の粒子画像を保存することによって、分注した粒子数のデータを記録する、請求項１～３のいずれか一項に記載の微粒子分注装置。
  5. 　試料液を、中空ピペットの上部から中空ピペットに供給するための分注予備室を有する、請求項１～４のいずれか一項に記載の微粒子分注装置。
  6. 　微粒子を含む試料液を分注するための透明な中空ピペット、及び画像撮影手段を有する微粒子分注装置を用いて微粒子を分注する方法であって、
    （１）中空ピペット内の分注液を２回以上撮影する工程、
    （２）２つ以上の撮影した画像を比較し、撮影された微粒子様物のうち移動した微粒子様物を、移動しない微粒子様物と区別して浮遊粒子と判定する工程、及び
    （３）目的の個数の浮遊粒子を含む試料液を分注する工程、
    を含む、微粒子分注方法。
  7. 　前記微粒子分注装置が、中空ピペット中の分注液を強制的に移動させる手段を更に有する微粒子分注装置であり、そして前記判定工程（１）が、分注液を強制的に移動させる手段によって、分注液を移動させる前後において、中空ピペット内の分注液を２回以上撮影する工程である、請求項６に記載の微粒子分注方法。
  8. 　前記微粒子分注装置が、ガス雰囲気を０．０３～５０％二酸化炭素ガス雰囲気に調節できる手段を更に有する微粒子分注装置であり、そして前記工程（１）～（３）を３～１０％二酸化炭素ガス雰囲気で行う、請求項６又は７に記載の微粒子分注方法。
  9. 　前記撮影工程（１）の前に、複数回の分注可能な量の試料液を中空ピペットの上部の分注予備室に吸引し、分注予備室から一定量の試料液が中空ピペットに供給された後に、工程（１）～（３）を実施することによって、連続的に分注液を分注する、請求項６～８のいずれか一項に記載の微粒子分注方法。
  10. 　透明基板に流路を形成してなる流路カートリッジと、前記流路を流れる試料液中の微粒子に光を照射する光照射手段と、前記光を照射した際に前記微粒子から発生する散乱光または蛍光を検出し、それらの信号強度に基づいて前記微粒子を識別し、目的の微粒子を検出する検出手段とを含む、微粒子解析装置であって、
    前記流路カートリッジに、第１の流路に接続したサンプルリザーバー、前記第１の流路の左右両側から合流する第２流路及び第３流路が接続するシースリザーバー、及び合流後の第１流路の下流側に接続している廃液リザーバーが形成されており、
    前記シースリザーバーの圧力をサンプルリザーバーの圧力より高くすることによって、シースリザーバー中のシース液をサンプルリザーバーに逆流させる手段を有することを特徴とする微粒子解析装置。
  11. 　請求項１０に記載の微粒子解析装置が、前記検出手段からの信号に基づいて微粒子の流れの方向を変化させる力を作用させる力発生手段を更に含む、微粒子分離装置。
  12. 　前記流路カートリッジが、前記第２及び第３の流路が合流後の第１の流路の両側に対向するように接続した第４の分岐流路と第５の分岐流路及び前記第４分岐流路に接続するソーティングリザーバー及び第５の分岐流路に接続した回収リザーバーを有し、
    前記力発生手段が、第４の分岐流路から第５の分岐流路の方向に流れるパルス流を発生させ、微粒子の流れを第５の分岐流路方向に変化させて微粒子を回収リザーバー分取する手段である、請求項１１に記載の微粒子分離装置。
  13. 　請求項１０に記載の微粒子解析装置又は請求項１１又は請求項１２に記載の微粒子分離装置を用いる微粒子の流路詰りを防止又は除去する方法であって、シースリザーバーの圧力をサンプルリザーバーの圧力より高くし、そしてシースリザーバー中のシース液をサンプルリザーバーに逆流させることによって、サンプルリザーバーから第１の流路における微粒子の流路詰りを防止又は除去する方法。
  14. 　マイクロ流路カートリッジにおいて、サンプル液を反応させ、その反応の結果を検出する反応検出装置であって、サンプルリザーバー、試薬リザーバー、オイルリザーバー、及び液滴リザーバーを有し、サンプルリザーバーからの第１流路及び試薬リザーバーからの第２流路が合流して第３流路を形成し、第３流路の両側からオイルリザーバーからの第４流路及び第５流路が合流し、前記第３流路は第４流路及び第５流路の合流点の下流で液滴リザーバーに結合しており、前記液滴リザーバーに流れ込んだ上記合流点で形成されたオイル中液滴を、第３流路を介して逆流させる手段を有し、そして第３流路において反応を検出する手段を有する、反応検出装置。
  15. 　前記液滴を逆流させる手段が、液滴リザーバーに印加する圧力を、サンプルリザーバー、試薬リザーバー、及びオイルリザーバーに印加する圧力より高くする手段である、請求項１４に記載の反応検出装置。
  16. 　前記反応が遺伝子増幅反応であり、前記反応検出装置は液滴リザーバーの温度を調整する手段を有し、そして前記反応検出手段が光照射による蛍光を検出する手段である、請求項１４又は１５に記載の反応検出装置。
  17. 　前記サンプルリザーバー及び試薬リザーバーが１つのサンプル試薬リザーバーであり、前記第１流路及び第２流路がサンプル試薬リザーバーからの１つの第３流路である、請求項１４～１６のいずれか一項に記載の反応検出装置。
  18. 　前記請求項１４～１７のいずれか一項に記載の反応検出装置を用いる反応検出方法であって、
    （１）第３流路のサンプル及び試薬の混合液を、第３流路の両側から第４流路及び第５流路を介して、オイルを供給することによって、オイル中液滴を形成する工程、
    （２）液滴中のサンプルを反応する工程、及び
    （３）液滴中のサンプルの反応を検出する工程、
    を含む、反応検出方法。
  19. 　前記検出工程（３）において、液滴リザーバーから第３流路に液滴を逆流させた後に、サンプルの反応を検出する、請求項１８に記載の反応検出方法。
  20. 　前記反応が遺伝子増幅反応であり、前記検出が増幅した遺伝子の検出である、請求項１８又は１９に記載の反応検出方法。
  21. 　透明基板に流路を形成してなる流路カートリッジと、前記流路を流れる試料液中の微粒子に光を照射する光照射手段と、前記光を照射した際に前記微粒子から発生する散乱光または蛍光を検出し、それらの信号強度に基づいて前記微粒子を識別し、目的の微粒子を検出する検出手段とを含む、微粒子解析又は分離装置であって、微粒子が細胞の場合にサンプル液の周囲のガス雰囲気を０．０３～５０％の二酸化炭素ガス雰囲気に調節できる手段を有することを特徴とする微粒子解析又は分離装置。
  22. 　前記調節手段が、チャンバーで装置全体をカバーし、そして二酸化炭素ガス雰囲気を調節する手段である、請求項２１に記載の微粒子解析又は分離装置。
  23. 　前記調節手段が、流路カートリッジ内の液体の周囲のガス雰囲気の二酸化炭素を調節する手段である、請求項２１に記載の微粒子解析又は分離装置。
PCT/JP2017/033551 2016-09-16 2017-09-15 微粒子分注装置、微粒子解析装置、及び反応検出装置、並びにそれらを用いる方法 WO2018052137A1 (ja)

Priority Applications (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP17851034.3A EP3514518A4 (en) 2016-09-16 2017-09-15 FINE PARTICLE DISTRIBUTION DEVICE, FINE PARTICLE ANALYSIS DEVICE, REACTION DETECTION DEVICE AND PROCESS USING SAID DEVICES
CN202211599219.9A CN116429665A (zh) 2016-09-16 2017-09-15 微粒分注装置、微粒分析装置、反应检测装置、以及使用它们的方法
US16/333,528 US20190339189A1 (en) 2016-09-16 2017-09-15 Fine particle dispensing device, fine particle analysis device, reaction detection device, and method using said devices
JP2018539200A JP7020689B2 (ja) 2016-09-16 2017-09-15 微粒子分注装置、微粒子解析装置、及び反応検出装置、並びにそれらを用いる方法
CN201780057119.4A CN109716102B (zh) 2016-09-16 2017-09-15 微粒分注装置、微粒分析装置、反应检测装置、以及使用它们的方法
JP2022010572A JP2022050698A (ja) 2016-09-16 2022-01-27 微粒子分注装置、微粒子解析装置、及び反応検出装置、並びにそれらを用いる方法

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2016-181447 2016-09-16
JP2016181447 2016-09-16

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2018052137A1 true WO2018052137A1 (ja) 2018-03-22

Family

ID=61619611

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2017/033551 WO2018052137A1 (ja) 2016-09-16 2017-09-15 微粒子分注装置、微粒子解析装置、及び反応検出装置、並びにそれらを用いる方法

Country Status (5)

Country Link
US (1) US20190339189A1 (ja)
EP (1) EP3514518A4 (ja)
JP (2) JP7020689B2 (ja)
CN (2) CN109716102B (ja)
WO (1) WO2018052137A1 (ja)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020153437A1 (ja) * 2019-01-25 2020-07-30 古河電気工業株式会社 検体識別分取装置および検体識別分取方法
WO2021090555A1 (ja) * 2019-11-05 2021-05-14 ソニー株式会社 微小粒子分取用マイクロチップのプライミング方法、微小粒子分取方法、微小粒子分取装置、及びプログラム
EP3960293A2 (en) 2020-08-25 2022-03-02 On-chip Biotechnologies Co., Ltd. Method for purifying particles, method for dispensing a single particle, method for analyzing cell cluster, and apparatus using the same
WO2023058401A1 (ja) * 2021-10-05 2023-04-13 ソニーグループ株式会社 生体試料分析装置及び異常判定方法

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3882633A1 (en) 2012-02-09 2021-09-22 MeMed Diagnostics Ltd. Signatures and determinants for diagnosing infections and methods of use thereof
US10303846B2 (en) 2014-08-14 2019-05-28 Memed Diagnostics Ltd. Computational analysis of biological data using manifold and a hyperplane
US11466331B2 (en) 2016-03-03 2022-10-11 Memed Diagnostics Ltd. RNA determinants for distinguishing between bacterial and viral infections
EP3482200B1 (en) 2016-07-10 2022-05-04 Memed Diagnostics Ltd. Protein signatures for distinguishing between bacterial and viral infections
US11353456B2 (en) 2016-09-29 2022-06-07 Memed Diagnostics Ltd. Methods of risk assessment and disease classification for appendicitis
EP3519833A4 (en) 2016-09-29 2020-06-03 MeMed Diagnostics Ltd. PROGNOSTIC AND TREATMENT METHODS
CN117058415A (zh) 2016-10-28 2023-11-14 贝克曼库尔特有限公司 物质准备评估系统
US11255770B2 (en) * 2018-01-30 2022-02-22 Kyocera Corporation Measurement apparatus
CN110124763B (zh) * 2019-05-15 2021-07-02 哈尔滨工大国际干细胞工程研究院有限公司 一种干细胞溶液全自动分装方法
CN111235023A (zh) * 2020-03-25 2020-06-05 梨薯(厦门)科技有限公司 基于多通道触发的单颗粒检测方法
CN115870027B (zh) * 2023-02-13 2023-09-29 深圳赛陆医疗科技有限公司 流体系统、分析仪器及流体输送方法

Citations (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3710933A (en) 1971-12-23 1973-01-16 Atomic Energy Commission Multisensor particle sorter
US3826364A (en) 1972-05-22 1974-07-30 Univ Leland Stanford Junior Particle sorting method and apparatus
JPH07308311A (ja) * 1994-05-17 1995-11-28 Ken Ishihara 非侵襲血液分析装置
WO1998010267A1 (en) 1996-09-04 1998-03-12 Technical University Of Denmark A micro flow system for particle separation and analysis
WO1998022625A1 (en) 1996-11-20 1998-05-28 The Regents Of The University Of Michigan Microfabricated isothermal nucleic acid amplification devices and methods
JPH11295323A (ja) 1998-04-13 1999-10-29 Matsushita Electric Ind Co Ltd 自動分注装置および分注方法
US20050136528A1 (en) 2001-10-26 2005-06-23 Bahnson Alfred B. Method and apparatus for monitoring of proteins and cells
WO2008132995A1 (ja) * 2007-04-12 2008-11-06 The University Of Electro-Communications 粒子計測装置、及び粒径計測装置
JP2008290027A (ja) * 2007-05-25 2008-12-04 Canon Inc 反応装置および反応方法
JP2010535511A (ja) * 2007-08-09 2010-11-25 セルラ・インコーポレイテッド 関連付け多パラメーター単一細胞測定および残留する生物学的材料の回収のための方法および装置
US7968287B2 (en) 2004-10-08 2011-06-28 Medical Research Council Harvard University In vitro evolution in microfluidic systems
WO2011086990A1 (ja) 2010-01-15 2011-07-21 株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ 使い捨てチップ型フローセルとそれを用いたセルソーター
JP2011521228A (ja) * 2008-05-15 2011-07-21 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー データ品質評価および制御機能を備える高スループットフローサイトメータ
WO2011099287A1 (ja) * 2010-02-09 2011-08-18 株式会社マイクロジェット 粒状体を含む液状体の吐出装置
JP2011237201A (ja) * 2010-05-06 2011-11-24 Sony Corp 微小粒子分取装置、マイクロチップ及びマイクロチップモジュール
US8248604B2 (en) 2009-09-24 2012-08-21 On-Chip Biotechnologies Co., Ltd Flow cytometer and flow cell for the same
US20130288254A1 (en) 2009-08-13 2013-10-31 Advanced Liquid Logic, Inc. Droplet Actuator and Droplet-Based Techniques
JP5382852B2 (ja) 2009-02-06 2014-01-08 株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ 使い捨てチップ型フローセルとそれを用いたフローサイトメーター
US8834793B2 (en) 2010-06-10 2014-09-16 Albert-Ludwigs-Universitaet Freiburg Apparatus and method for dispensing cells or particles confined in a free flying droplet
US20150367346A1 (en) 2013-10-01 2015-12-24 Owl biomedical, Inc. Cell sorting system using microfabricated components

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20140087412A1 (en) * 2011-04-20 2014-03-27 4Dx Pty Ltd Method and Device for Application of Fluid Forces to Cells
CN103008037B (zh) * 2012-12-31 2015-04-01 浙江大学 一种具有皮升级精度的自动化微液滴阵列筛选系统的使用方法
US10578633B2 (en) * 2013-03-15 2020-03-03 Fluidigm Corporation Methods and devices for analysis of defined multicellular combinations

Patent Citations (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3710933A (en) 1971-12-23 1973-01-16 Atomic Energy Commission Multisensor particle sorter
US3826364A (en) 1972-05-22 1974-07-30 Univ Leland Stanford Junior Particle sorting method and apparatus
US3826364B1 (ja) 1972-05-22 1984-09-25
JPH07308311A (ja) * 1994-05-17 1995-11-28 Ken Ishihara 非侵襲血液分析装置
WO1998010267A1 (en) 1996-09-04 1998-03-12 Technical University Of Denmark A micro flow system for particle separation and analysis
WO1998022625A1 (en) 1996-11-20 1998-05-28 The Regents Of The University Of Michigan Microfabricated isothermal nucleic acid amplification devices and methods
JPH11295323A (ja) 1998-04-13 1999-10-29 Matsushita Electric Ind Co Ltd 自動分注装置および分注方法
US20050136528A1 (en) 2001-10-26 2005-06-23 Bahnson Alfred B. Method and apparatus for monitoring of proteins and cells
US7968287B2 (en) 2004-10-08 2011-06-28 Medical Research Council Harvard University In vitro evolution in microfluidic systems
WO2008132995A1 (ja) * 2007-04-12 2008-11-06 The University Of Electro-Communications 粒子計測装置、及び粒径計測装置
JP2008290027A (ja) * 2007-05-25 2008-12-04 Canon Inc 反応装置および反応方法
JP2010535511A (ja) * 2007-08-09 2010-11-25 セルラ・インコーポレイテッド 関連付け多パラメーター単一細胞測定および残留する生物学的材料の回収のための方法および装置
JP2011521228A (ja) * 2008-05-15 2011-07-21 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー データ品質評価および制御機能を備える高スループットフローサイトメータ
JP5382852B2 (ja) 2009-02-06 2014-01-08 株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ 使い捨てチップ型フローセルとそれを用いたフローサイトメーター
US20130288254A1 (en) 2009-08-13 2013-10-31 Advanced Liquid Logic, Inc. Droplet Actuator and Droplet-Based Techniques
US8248604B2 (en) 2009-09-24 2012-08-21 On-Chip Biotechnologies Co., Ltd Flow cytometer and flow cell for the same
WO2011086990A1 (ja) 2010-01-15 2011-07-21 株式会社オンチップ・バイオテクノロジーズ 使い捨てチップ型フローセルとそれを用いたセルソーター
WO2011099287A1 (ja) * 2010-02-09 2011-08-18 株式会社マイクロジェット 粒状体を含む液状体の吐出装置
JP2015158489A (ja) 2010-02-09 2015-09-03 株式会社マイクロジェット 粒状体を含む液滴の吐出装置
JP2011237201A (ja) * 2010-05-06 2011-11-24 Sony Corp 微小粒子分取装置、マイクロチップ及びマイクロチップモジュール
US8834793B2 (en) 2010-06-10 2014-09-16 Albert-Ludwigs-Universitaet Freiburg Apparatus and method for dispensing cells or particles confined in a free flying droplet
US20150367346A1 (en) 2013-10-01 2015-12-24 Owl biomedical, Inc. Cell sorting system using microfabricated components

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"J Biosens Bioelectron", vol. 3, 2012, pages: 1000126
NATURE METHODS, vol. 4, 2007, pages 257 - 262

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020153437A1 (ja) * 2019-01-25 2020-07-30 古河電気工業株式会社 検体識別分取装置および検体識別分取方法
JP2020118621A (ja) * 2019-01-25 2020-08-06 古河電気工業株式会社 検体識別分取装置および検体識別分取方法
WO2021090555A1 (ja) * 2019-11-05 2021-05-14 ソニー株式会社 微小粒子分取用マイクロチップのプライミング方法、微小粒子分取方法、微小粒子分取装置、及びプログラム
EP3960293A2 (en) 2020-08-25 2022-03-02 On-chip Biotechnologies Co., Ltd. Method for purifying particles, method for dispensing a single particle, method for analyzing cell cluster, and apparatus using the same
US11826752B2 (en) 2020-08-25 2023-11-28 On-Chip Biotechnologies Co., Ltd. Method for purifying particles, method for dispensing a single particle, method for analyzing cell cluster, and apparatus using the same
WO2023058401A1 (ja) * 2021-10-05 2023-04-13 ソニーグループ株式会社 生体試料分析装置及び異常判定方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN116429665A (zh) 2023-07-14
JPWO2018052137A1 (ja) 2019-08-08
CN109716102A (zh) 2019-05-03
CN109716102B (zh) 2023-05-16
US20190339189A1 (en) 2019-11-07
JP7020689B2 (ja) 2022-02-16
EP3514518A1 (en) 2019-07-24
EP3514518A4 (en) 2020-09-02
JP2022050698A (ja) 2022-03-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2018052137A1 (ja) 微粒子分注装置、微粒子解析装置、及び反応検出装置、並びにそれらを用いる方法
US20230383240A1 (en) Single-particle analysis method, and system for performing said analysis
KR100746431B1 (ko) 셀 소터 칩
JP5712396B2 (ja) イメージングセルソーター
JP2022191270A (ja) システムおよび方法
US9109197B2 (en) Device for concentrating and separating cells
US9638636B2 (en) Microsieve diagnostic device in the isolation and analysis of single cells
JP5943521B2 (ja) 高濃度夾雑細胞群から低濃度の特定細胞を検出する方法と検出した細胞を回収し解析する方法
JP2020513576A (ja) マイクロ流体チャネルを使用してマイクロ粒子のバルク選別を行う方法及び装置
EP3427024A1 (en) System and method for characterizing particulates in a fluid sample
WO2015053393A1 (ja) イメージングセルソーター
US20120063664A1 (en) Inertial particle focusing flow cytometer
US9975125B2 (en) Microsieve diagnostic device in the isolation and analysis of single cells
CN114641450A (zh) 使用光力和拉曼光谱取样和分析细胞的微流体装置和方法
Zhao et al. Ensemble‐decision Aliquot Ranking (eDAR) for CTC Isolation and Analysis
JP2023553277A (ja) 粒子を分類するためのシステムおよび方法
CN116685403A (zh) 分选颗粒的系统和方法
NL1039638C2 (en) Diagnostic device with a filtration membrane for on spot microscopic diagnostic analysis and methods.
WO2022240656A1 (en) Methods of analyzing shaped particles containing cells using fluorescence activated cell sorting

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 17851034

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2018539200

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2017851034

Country of ref document: EP

Effective date: 20190416