WO2017188157A1 - 腸内細菌叢構成比率調整剤、医薬品、飲食品及び腸内細菌叢構成比率の調整方法 - Google Patents

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WO2017188157A1
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culture
composition ratio
intestinal
negative
clostridium
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PCT/JP2017/016071
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順博 戸田
康博 日高
源一郎 杣
孝志 西澤
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ティーエフケイ株式会社
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    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66—Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/74—Bacteria
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23L—FOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10—Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A23L33/135—Bacteria or derivatives thereof, e.g. probiotics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/14—Prodigestives, e.g. acids, enzymes, appetite stimulants, antidyspeptics, tonics, antiflatulents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K2035/11—Medicinal preparations comprising living procariotic cells

Definitions

  • the present invention relates to an intestinal flora constituent ratio adjusting agent, pharmaceuticals, foods and drinks, and a method for adjusting the intestinal flora constituent ratio.
  • Patent Literature 1 proposes a weight gain inhibitor, a neutral fat reducing agent, and a slimming agent that adjust the intestinal flora constituent ratio with an extract of a Salacia plant (Patent Literature 1).
  • an object of the present invention is to provide a new safe intestinal flora constituent ratio adjusting agent and a method for adjusting the intestinal flora constituent ratio.
  • the intestinal flora constituent ratio adjusting agent of the present invention is an intestinal flora constituent ratio adjusting agent that adjusts the constituent ratio of the intestinal microflora, It is characterized in that it contains at least one of Rhodobacter azotoforms BP0899 strain (Accession No. NITE BP-644) and its culture.
  • the method for adjusting the gut microbiota composition ratio of the present invention is a method for adjusting the gut microbiota composition ratio, It comprises a step of administering an intestinal flora constituent ratio adjusting agent comprising at least one of Rhodobacter azotoformans BP0899 strain (Accession No. NITE BP-644) and its culture.
  • Rhodobacter azotoformans (Accession No. NITE BP-644) BP0899 and its culture.
  • the intestinal flora constituent ratio was found to be adjustable, and the present invention was achieved.
  • At least one of Rhodobacter azo preparative folder performance (Rhodobacter azotoformans) BP0899 strain (Accession No. NITE BP-644) and the culture is highly safe and can be administered over a long period.
  • 1, in the embodiment, is a graph showing changes in Bacteroides (Bacteroides) genus composition ratio in the gut flora of mice.
  • 2, in the embodiment, is a graph showing a change in composition ratio of Lactobacillus (Lactobacillus) genus in the intestinal flora of mice.
  • 3, in the embodiment is a graph showing changes in Prevotella (Prevotella) genus composition ratio in the gut flora of mice.
  • 4, in the embodiment is a graph showing a change in composition ratio of Clostridium cluster XVIII (Clostridium claster XVIII) in the gut flora of mice.
  • 5 is a graph showing changes in the composition ratio of Clostridium subcluster XIVa ( Clostridium subcluster XIVa ) in the intestinal flora of mice in Examples.
  • 6, in the embodiment is a graph showing a change in composition ratio of Clostridium cluster XI (Clostridium claster XI) in the gut flora of mice.
  • 7, in the embodiment is a graph showing changes in Bacteroides (Bacteroides) genus composition ratio in the gut flora of mice.
  • 8, in the embodiment is a graph showing a change in composition ratio of Lactobacillus (Lactobacillus) genus in the intestinal flora of mice.
  • FIG. 9 is a graph showing changes in Prevotella (Prevotella) genus composition ratio in the gut flora of mice.
  • 10 in the embodiment, is a graph showing a change in composition ratio of Clostridium cluster XVIII (Clostridium claster XVIII) in the gut flora of mice.
  • FIG. 11 is a graph showing changes in the composition ratio of Clostridium subcluster XIVa ( Clostridium subcluster XIVa ) in the intestinal flora of mice in Examples.
  • 12, in the embodiment is a graph showing a change in composition ratio of Clostridium cluster XI (Clostridium claster XI) in the gut flora of mice.
  • Rhodobacter azotoformans BP0899 strain (Accession No. NITE BP-644) and its culture are the following (1) to (30): It is preferable to have mycological characteristics of The BP0899 strain was deposited under the accession number NITE P-644 at the Patent Organism Depositary Center of the National Institute of Technology and Evaluation (2-5-8 Kazusa-Kamashita, Kisarazu City, Chiba, Japan) (Accession date: 2008) In addition, the deposit was made internationally under the deposit number NITE BP-644 (transfer date: October 27, 2010).
  • the base sequence of 16S rRNA of the BP0899 strain is preferably the base sequence represented by SEQ ID NO: 1.
  • Bacteroides Bacteroides (Bacteroides) genus Lactobacillus (Lactobacillus) genus Prevotella (Prevotella) genus Clostridium cluster XVIII (Clostridium claster XVIII), Clostridium subcluster XIVa (Clostridium subclaster XIVa) and increase the component ratio of the at least one enteric bacteria selected from the group consisting of Clostridium cluster XI (Clostridium claster XI), or, it is preferable to suppress the reduction in component ratio.
  • the pharmaceutical product of the present invention is a pharmaceutical product for adjusting the intestinal flora constituent ratio, and includes the intestinal flora constituent ratio adjusting agent of the present invention.
  • the food / beverage product of the present invention is a food / beverage product having a function of adjusting the gut microbiota composition ratio, and includes the gut microbiota composition ratio regulator of the present invention.
  • the intestinal flora constituent ratio adjusting agent of the present invention is an intestinal flora constituent ratio adjusting agent that adjusts the constituent ratio of the intestinal flora, and is at least one of the BP0899 strain and its culture. It is characterized by including.
  • the intestinal flora constituent ratio adjusting agent of the present invention contains at least one of a red non-sulfur bacterium and a culture of the red non-sulfur bacterium, and the red non-sulfur bacterium is Rhodobacter azotoformans.
  • the Rhodobacter azotoformans may include the Rhodobacter azotoforms BP0899 strain (Accession Number NITE BP-644).
  • At least one of the BP0899 strain which is the red non-sulfur bacterium and the culture thereof have the following mycological characteristics (1) to (30).
  • At least one of the BP0899 strain which is the red non-sulfur bacterium, and its culture may further exhibit the properties shown in the following table (31), for example, under aerobic culture conditions in a dark place.
  • Table (31) for example, under aerobic culture conditions in a dark place.
  • “ ⁇ ” indicates no production
  • “+” indicates production.
  • the mycological characteristics may be evaluated, for example, from the result of further main culture after pre-culture.
  • the preculture may be performed, for example, by inoculating the BP0899 strain, which is the red non-sulfur bacterium, on a normal agar medium and culturing at 30 ° C. for 24 hours.
  • the conditions of the main culture can be appropriately set according to the evaluation method of each mycological feature.
  • the culture conditions of (1) to (5) are, for example, aerobic culture in a dark place at 30 ° C. using a normal agar medium, and the culture conditions of (6) to (7) Is, for example, an anaerobic culture at 30 ° C.
  • the culture conditions of (8) to (12) are, for example, each medium, preferably at 30 ° C. in a dark place.
  • (13), (14), (16), (17), (19) to (23), (25) oxidation test, (26), (29), (30) and (30) 31) is an aerobic culture in the dark, for example, the fermentation test of (15), (18), (24), (25), and (27) and (28) are, for example, in the dark Anaerobic culture.
  • the method for testing these mycological characteristics is not particularly limited, and a conventionally known method can be employed. Specifically, for example, Barrow G. et al. I. And Feltham R .; K. A.
  • Denitrification reaction is positive if growth and gas formation are observed under anaerobic culture conditions using 1% sodium nitrate broth.
  • a gas generation and a dark blue color determined under anaerobic culture conditions using the above-mentioned Giltay medium (pH 7.0 to 7.2) containing a Durham tube is positive as a denitrification reaction. To do.
  • the above-mentioned Giltay medium is composed of solution A (1 g of KNO 3, 1 g of asparagine, 5 mL of 1% bromothymol blue alcohol solution and 500 mL of distilled water) and solution B (8.5 g of sodium citrate, 1 g of MgSO 4 ⁇ 7H 2 O, FeCl 3 ⁇ 6H 2 O 0.05 g, KH 2 PO 4 1 g, CaCl 2 ⁇ 6H 2 O 0.2 g and distilled water 500 mL).
  • a commercially available bacteria identification kit for the said test method, for example. Although it does not restrict
  • At least one of the BP0899 strain, which is the red non-sulfur bacterium, and its culture may further have the following mycological characteristics (32) to (40).
  • the method for testing the mycological characteristics of (32) to (40) is not particularly limited, and a conventionally known method can be adopted. Specifically, for example, the methods described in the above-mentioned documents and the like can be mentioned. Moreover, you may use a commercially available bacteria identification kit for the said test method, for example. Although it does not restrict
  • the intestinal flora constituent ratio adjusting agent of the present invention may further contain other red non-sulfur bacteria other than at least one of the BP0899 strain and its culture.
  • the other purple non-sulfur bacteria is not particularly limited, for example, Rodosupirurimu (Rhodospirillum) genus Rodoshisuta (Rhodocista) genus Rodopira (Rhodopila) genus Rodomikurobiumu (Rhodomicrobium) genus, blasting black squirrel (Blastochloris) genus Rodopuranesu (Rhodoplanes ) genus Rodobiumu (Rhodobium) genus Rodoshikurusu (Rhodocyclus) genus Rodoferakusu (Rhodoferax) genus include Rhodopseudomonas (Rhodopseudomonas) genus bacteria such.
  • the other red non-sulfur bacteria include, for example, Rhodobacter azotoformans BP0899 strain (Accession No. NITE BP-644) and at least one of its cultures, Rhodobacter azotoformans ( Rhodobacter azotoformans), it may be the Rhodobacter azo preparative folder performance (Rhodobacter azotoformans) other than Rhodobacter (Rhodobacter) genus of bacteria.
  • red non-sulfur bacteria including the BP0899 strain
  • soil seawater, river water, lake water, swamp water, etc. Is mentioned.
  • soil include, but are not limited to, land, sea bottom, river bottom, lake bottom and marsh bottom soil, sand, and mud.
  • a method for isolating the red non-sulfur bacteria for example, a conventionally known collection method, culture method or the like can be used, and there is no particular limitation.
  • the isolation method for example, when the collection source is lake water, the collected lake water is filtered through a filter or the like, the filtrate is cultured on an agar medium or the like, and the red non-sulfur bacteria are isolated from the obtained colonies. May be.
  • the collection source is mud
  • the collected mud is suspended in a buffer solution, etc., and then the suspension is centrifuged, and the obtained supernatant is cultured on an agar medium or the like.
  • the red non-sulfur bacterium may be isolated.
  • the isolated red non-sulfur bacterium may be further cultured, for example, in a liquid medium.
  • the intestinal flora constituent ratio adjusting agent of the present invention may further contain other bacteria in addition to the red non-sulfur bacteria.
  • the other bacteria are not particularly limited, and examples thereof include lactic acid bacteria and yeasts, and preferably lactic acid bacteria.
  • lactic acid bacteria is not particularly limited, for example, Lactobacillus acidophilus (Lactobacillus acidphilus), Lactobacillus casei (Lactobacillus casei), Lactobacillus lactis (Lactobacillus lactis), Lactobacillus bulgaricus (Lactobacillus bulgaricus), Lactobacillus Bacillus helveticus (Lactobacillus helveticus), Lactobacillus Deruburyukki (Lactobacillus delbrueckii), Lactobacillus plantarum (Lactobacillus plantarum), Lactobacillus brevis (Lactobacillus brevi ), Lactococcus lactis (Lactococcus lactis), Bifidobacterium longum (Bifidobacterium longum), Bifidobacterium breve (Bifidobacterium breve), Enterococcus faecalis (Ent
  • Saccharomyces cerevisiae Saccharomyces cerevisiae
  • Saccharomyces carlsbergensis Saccharomyces carlsbergensis
  • Saccharomyces ellipsometry Lee Deus Saccharomyces ellipsoideus
  • Saccharomyces Roukishi Saccharomyces rouxii
  • the medium is not particularly limited.
  • a medium containing a lower fatty acid, a medium added with malic acid, a culture medium 802 “DAIGO” (manufactured by Nippon Pharmaceutical Co., Ltd.) (Hiraishi and Kitagawa, Bulletin of the Japan Society of Scientific Fisheries, 1984, 50, 11, p. 1929-1937), modified MYS medium, growth medium and the like preferably, a medium containing lower fatty acids, Malic acid-added medium, L-dried culture medium 802 “DAIGO” (manufactured by Nippon Pharmaceutical Co., Ltd.).
  • Examples of the lower fatty acid-added medium and malic acid-added medium include a medium obtained by adding biotin, vitamin B 1 , nicotinic acid, a lower fatty acid, or a sodium salt of malic acid to the basal medium shown in Table 1 below. Although it does not restrict
  • modified MYS medium and the growth medium include media having the compositions shown in Tables 2 and 3 below.
  • the temperature range is not particularly limited, but is, for example, 23 to 39 ° C. or 30 ° C.
  • the pH range is not particularly limited, but is, for example, pH 5.5 to 8.5, 6.0 to 8.5, or 7.0.
  • the culture may be performed, for example, under an aerobic condition or an anaerobic condition, and is not particularly limited, but is preferably an anaerobic condition.
  • the light conditions during the culture are not particularly limited, and may be, for example, dark conditions or illumination conditions, but preferably under an illuminance of 2000 lux to 10000 lux.
  • the culture may be performed, for example, in a sealed illumination type culture tank. Moreover, you may culture
  • the culture time is not particularly limited, and may be, for example, until the growth of the red non-sulfur bacteria reaches a stationary phase.
  • the culture time may be, for example, 72 hours.
  • red non-sulfur bacterium for example, only the red non-sulfur bacterium may be cultured, or other bacteria may be mixed and cultured at the same time. Although it does not restrict
  • the 16S rRNA base sequence of the BP0899 strain is preferably the base sequence represented by SEQ ID NO: 1.
  • the base sequence of the 16S rRNA can be determined, for example, by extracting DNA from the BP0899 strain isolated and cultured by the method described above and using a primer or the like.
  • the method for extracting the DNA and determining the base sequence can be, for example, a conventional method and is not particularly limited.
  • the primer is not particularly limited, and examples thereof include the following primers.
  • the culture of the red non-sulfur bacterium examples include, but are not particularly limited to, the cell body of the red non-sulfur bacterium, the culture supernatant of the red non-sulfur bacterium, and the cell extract of the red non-sulfur bacterium. .
  • the intestinal flora constituent ratio adjusting agent of the present invention may further contain a culture of bacteria other than the red non-sulfur bacteria.
  • the culture of bacteria other than the red non-sulfur bacteria is not particularly limited, and examples thereof include cells of other bacteria described above, culture supernatants of the other bacteria, cell extracts of the other bacteria, and the like. Can be mentioned.
  • Specific examples of the culture of bacteria other than the red non-sulfur bacterium include, for example, the aforementioned lactic acid bacteria, dry cells such as yeast, extracts and the like.
  • the culture may be, for example, a processed product of the bacterial cell, a processed product of the culture supernatant, a processed product of the bacterial cell extract, or the like, and is not particularly limited.
  • the treated product is not particularly limited.
  • the culture concentrate dried product, lyophilized product, solvent-treated product, surfactant-treated product, enzyme-treated product, protein fraction product, and sonicated product. , Milled products and the like.
  • the culture is, for example, a mixture of the cells, the culture supernatant, the cell extract, the processed product of the cell, the processed product of the culture supernatant, the processed product of the cell extract, etc. But you can.
  • the mixture can be mixed in any combination and ratio, and is not particularly limited.
  • the combination is not particularly limited, and examples thereof include a mixture of the cells and the culture supernatant.
  • the intestinal flora constituent ratio adjusting agent of the present invention may further contain other components such as additives.
  • the additive is not particularly limited, and examples thereof include a stabilizer.
  • the method for producing the intestinal flora constituent ratio adjusting agent is not particularly limited, and for example, a commonly used formulation technique can be adopted.
  • the intestinal bacterial flora composition ratio modifier of the present invention for example, Bacteroides (Bacteroides) genus Lactobacillus (Lactobacillus) genus Prevotella (Prevotella) genus Clostridium cluster XVIII (Clostridium claster XVIII), to increase the clostridial subcluster XIVa (Clostridium subclaster XIVa) and Clostridium cluster XI (Clostridium claster XI) component ratio enterobacteria such, or, it is possible to suppress the reduction in the component ratio .
  • Bacteroides Bacteroides
  • Lactobacillus Lactobacillus
  • Prevotella Prevotella
  • Clostridium cluster XVIII Clostridium claster XVIII
  • Clostridium cluster XI Clostridium claster XI
  • Clostridium subcluster XIVa Clostridium subcluster XIVa
  • the peroxisome proliferator-activated receptor ⁇ (Peroxisome Proliferator-Activated Receptor ⁇ ) activation improves cardiovascular and vascular diseases such as antivascular failure, lipid metabolism abnormality and arteriosclerosis, gastrointestinal diseases, renal diseases, malignant tumors and Alzheimer's disease, and immune regulation It has also been reported to have an effect.
  • the intestinal bacterial flora composition ratio regulator of the present invention for example, the composition ratio of intestinal bacteria producing such short-chain fatty acids such as butyric acid can be increased.
  • the composition ratio of Clostridium subcluster XIVa ( Clostridium subcluster XIVa ) that produces short-chain fatty acids such as butyric acid can be increased by administration of the intestinal flora constituent ratio regulator of the present invention. Therefore, the gut microbiota composition ratio adjusting agent of the present invention is, for example, diabetes, obesity, cardiovascular diseases such as antivascular failure or lipid metabolism abnormality / arteriosclerosis, digestive diseases, renal diseases, malignant tumors and Alzheimer's disease can be improved and has an immunomodulatory action. Further, according to Patent Document 1, at the time of obese humans, the component ratio of Bacteroides (Bacteroides) genus in the intestine has been reported to decrease.
  • Bacteroides Bacteroides
  • composition ratio modifier of the present invention by increasing the composition ratio of Bacteroides (Bacteroides) genus, for example, believed to be improved obesity.
  • composition ratio of Prevotella ( Prevotella ) genus and Clostridium subcluster XIVa ( Clostridium subcluster XIVa ) in the intestine decreases in patients with multiple sclerosis (Miyake S. et al. al (2015), PLOS One, 10. e0137429).
  • composition ratio of at least one of the Prevotella ( Prevotella ) genus and Clostridium subcluster XIVa ( Clostridium subcluster XIVa ) by the administration of the intestinal microbiota composition ratio adjusting agent of the present invention, for example, multiple sclerosis Can be improved. Furthermore, according to Filip et al., It is reported that the composition ratio of the Prevotella genus in Parkinson's disease patients decreases (Filip S. et al (2015), Movement Disorders, Vol. 30, No.3, p.350-358).
  • Parkinson's disease can be improved by increasing the constituent ratio of the genus Prevotella ( Prevotella ) by administering the intestinal flora constituent ratio adjusting agent of the present invention.
  • the genus Lactobacillus is also widely known as a good fungus.
  • administration of the intestinal flora composition ratio modifier of the present invention by increasing the composition ratio of Lactobacillus (Lactobacillus) genus, for example, believed to be improved constipation.
  • the pharmaceutical product of the present invention is a pharmaceutical product for adjusting the intestinal microflora constituent ratio, and is not limited except that it contains the intestinal microbiota constituent ratio adjusting agent of the present invention.
  • pharmaceutical products include pharmaceutical products and quasi drugs.
  • Examples of the pharmaceutical dosage form include powders, fine granules, granules, tablets, coated tablets, capsules, troches, liquids and the like, and are not particularly limited.
  • the composition of the pharmaceutical is not particularly limited, and includes, for example, various additives such as excipients, binders, lubricants, disintegrants, absorption promoters, emulsifiers, stabilizers, preservatives, and the like. May be.
  • the said pharmaceutical can be manufactured with the formulation technique etc. which are used normally.
  • the animal species to which the pharmaceutical is administered is not particularly limited, and examples thereof include humans, non-human mammals such as monkeys, cows, pigs, dogs, and cats, birds such as chickens, and seafood.
  • the administration method is not particularly limited, and examples thereof include oral administration and parenteral administration.
  • Examples of the parenteral administration include transdermal absorption, injection, and suppository administration.
  • the dosage of the pharmaceutical agent can be appropriately set according to, for example, animal species, age, etc., and is not particularly limited.
  • the administration method, the administration subject, and the like are the same, for example.
  • the food / beverage products of this invention are food / beverage products which have the adjustment function of an intestinal microflora composition ratio, Comprising: It does not restrict
  • the food and drink includes general foods and health functional foods. Although it does not specifically limit as said general food, For example, grain processed food, vegetable processed food, fruit processed food, meat processed food, marine products processed food, dairy product, drink, health food etc. are mentioned.
  • the food / beverage products of this invention may contain the said intestinal microflora constituent ratio regulator as a raw material, an additive, etc., for example.
  • the processed grain food is not particularly limited, and examples thereof include wheat flour, rice flour, cereal bar, rice cracker, hail, and cookies. Although it does not restrict
  • the fruit processed food is not particularly limited, and examples thereof include fruit puree and dried fruit.
  • the meat processed food is not particularly limited, and examples thereof include ham, bacon, sausage and the like. Although it does not restrict
  • the health functional food is also generally referred to as functional food.
  • the health functional foods include foods for specified health use, nutritional functional foods, and functional display foods.
  • the composition of the food and drink is not particularly limited, and examples thereof include various food materials, auxiliaries, stabilizers and the like in addition to the intestinal flora constituent ratio adjuster. Moreover, the said food-drinks can be manufactured by the formulation technique etc. which are used normally.
  • the target animal species of the food and drink is not particularly limited, and examples thereof include humans, non-human mammals such as monkeys, cows, pigs, dogs, and cats, birds such as chickens, and seafood.
  • mice 5-week-old male C57BL / 6J mice were fed with a normal diet (CE-2 solid sample, manufactured by CLEA Japan, Inc.) and water and reared for 2 days.
  • a normal diet (AIN-93M purified sample, manufactured by the National Nutrition Laboratory, USA) was given and the animals were raised for 5 days.
  • distilled water is added to 100 mg of the BP0899 strain to 10 mL, and a suspension is prepared by stirring with a vortex mixer. Further, 9 mL of distilled water is added to 1 mL of the suspension to make a total of 10 mL. A suspension was formed.
  • mice at 6 weeks of age were divided into a group (Example 1-1, 7 animals) in which the BP0899 strain intake was 10 mg / kg and a group (Example 1-2, 7 animals) in which 100 mg / kg was consumed. And divided. Then, the day after the grouping was set as the administration start date (day 1), and the BP0899 strain suspension was orally administered to each group daily from day 1 to day 14 using a sonde. In addition, instead of the BP0899 strain suspension, a control group in which the experiment was conducted in the same manner as in Example 1-1 and Example 1-2 except that distilled water was administered was compared with Comparative Example (Comparative Example 1, 7 animals). did. Then, feces analysis was performed on all three groups of Example 1-1, Example 1-2, and Comparative Example 1 as shown below.
  • Bacteroides (Bacteroides) genus component ratio Bacteroides (Bacteroides) genus component ratio (%) in 7 day, divided by Bacteroides in 3 day (Bacteroides) genus component ratio (%) The value was calculated. Then, the relative value (change rate) in Example 1-1 and Example 1-2 when the value in Comparative Example 1 was set to 1 was calculated. Bacteroides (Bacteroides) rate of change of the composition ratio of the enteric bacteria other than genus was also calculated in the same manner as Bacteroides (Bacteroides) genus.
  • 1 to 6 are graphs showing changes in the composition ratio of enteric bacteria in the mice of Example 1-1, Example 1-2, and Comparative Example 1 for each type of enteric bacteria.
  • Example 1-1 the rate of change was greater than 1, and the composition ratio of the genus Bacteroides was higher than in Comparative Example 1.
  • FIG. 2 in Example 1-1, the rate of change greatly exceeded 1, and the composition ratio of the genus Lactobacillus was extremely higher than that in Comparative Example 1.
  • Example 1-2 further exceeds the rate of change of the embodiment 1-1, an increase in composition ratio of Lactobacillus (Lactobacillus) genus in accordance with the dose of the BP0899 strain was confirmed.
  • FIG. 3 in Example 1-1, the rate of change was larger than 1, and the constituent ratio of the genus Prevotella was higher than that in Comparative Example 1.
  • Example 1-2 the rate of change of Example 1-1 was further exceeded, and an increase in the composition ratio of the genus Prevotella according to the dose of the BP0899 strain was confirmed.
  • the rate of change is greater than 1, the component ratio of Clostridium cluster XVIII (Clostridium claster XVIII), was higher than Comparative Example 1.
  • the rate of change was greater than 1, and the composition ratio of Clostridium subcluster XIVa ( Clostridium subcluster XIVa ) was higher than in Comparative Example 1.
  • Example 1-1 and Example 1-2 the rate of change is greater than 1, the proportions of Clostridium cluster XI (Clostridium claster XI), was higher than Comparative Example 1.
  • the rate of change was greater than 1, indicating that in Comparative Example 1, the composition ratio of the subject intestinal bacteria increased from the third day on the seventh day.
  • the degree of increase was larger than that in Comparative Example 1, and the composition ratio of the target enteric bacteria in Comparative Example 1 was 3 days on the 7th day.
  • the degree of decrease in Example 1-1 and Example 1-2 was smaller than that in Comparative Example 1 (that is, the intestine of the subject in Example 1-1 and Example 1-2).
  • Example 1 a value obtained by dividing the composition ratio (%) of intestinal bacteria on days 8 to 15 by the composition ratio (%) of intestinal bacteria on day 3 was calculated and compared.
  • the value in Example 1 was set to 1
  • the relative value (change rate) in Example 1-1 and Example 1-2 was calculated.
  • FIG. 7 to 12 are graphs showing changes in the composition ratio of enteric bacteria in the mice of Example 1-1, Example 1-2, and Comparative Example 1 for each type of enteric bacteria.
  • Figure 11 the results of Clostridium subcluster XIVa (Clostridium subclaster XIVa)
  • FIG. 12 shows the results of Clostridium cluster XI (Clostridium claster XI). 7 to 12, the vertical axis represents the rate of change.
  • Example 1-1 and Example 1-2 the rate of change was larger than 1, and the composition ratio of the genus Bacteroides was higher than that in Comparative Example 1.
  • the rate of change was greater than 1, and the composition ratio of the genus Lactobacillus was higher than that in Comparative Example 1.
  • the rate of change was greater than 1, and the composition ratio of the genus Prevotella was higher than that in Comparative Example 1.
  • the rate of change is greater than 1, the component ratio of Clostridium cluster XVIII (Clostridium claster XVIII), was higher than Comparative Example 1.
  • FIG. 10 the rate of change is greater than 1, the component ratio of Clostridium cluster XVIII (Clostridium claster XVIII), was higher than Comparative Example 1.
  • Example 1-1 in Example 1-1 and Example 1-2, the rate of change greatly exceeded 1, and the composition ratio of Clostridium subcluster XIVa ( Clostridium subcluster XIVa ) was significantly higher than that in Comparative Example 1.
  • Figure 12 in Example 1-1, the rate of change greatly exceeded 1, the component ratio of Clostridium cluster XI (Clostridium claster XI), was extremely higher than Comparative Example 1.
  • Example 1-2 further exceeds the rate of change of the embodiment 1-1, an increase in component ratio of the BP0899 strain Clostridium cluster XI in accordance with the dose of (Clostridium Claster XI) was observed.
  • the intestinal flora constituent ratio is adjusted by at least one of Rhodobacter azotoforms BP0899 strain (Accession No. NITE BP-644) and its culture, For example, obesity, multiple sclerosis and the like can be improved. Since the intestinal flora constituent ratio adjusting agent of the present invention is highly safe, it can be administered over a long period of time. Therefore, according to the present invention, it is possible to provide a useful and highly safe intestinal flora constituent ratio regulator, pharmaceuticals and foods and drinks, and its application range is not limited and is wide.

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Abstract

安全性の高い新たな腸内細菌叢構成比率調整剤を提供する。　本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤は、腸内細菌叢の構成比率を調整する腸内細菌叢構成比率調整剤であって、ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）及びその培養物の少なくとも一方を含むことを特徴とする。

Description

腸内細菌叢構成比率調整剤、医薬品、飲食品及び腸内細菌叢構成比率の調整方法
　本発明は、腸内細菌叢構成比率調整剤、医薬品、飲食品及び腸内細菌叢構成比率の調整方法に関する。
　近年、腸内細菌叢構成比率の調整により、肥満を改善可能なことが報告されている。例えば、特許文献１には、サラシア属植物の抽出物によって腸内細菌叢構成比率を調整する体重増加抑制剤、中性脂肪低減剤及び痩身剤が提案されている（特許文献１）。
特開２０１５－１２７３４０号公報
　しかしながら、腸内細菌叢構成比率の調整には、新たな素材を用いた、安全性に優れる新たな手法が求められている。
　そこで、本発明は、安全性の高い新たな腸内細菌叢構成比率調整剤及び腸内細菌叢構成比率の調整方法の提供を目的とする。
　前記目的を達成するために、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤は、腸内細菌叢の構成比率を調整する腸内細菌叢構成比率調整剤であって、
ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）及びその培養物の少なくとも一方を含むことを特徴とする。
　本発明の腸内細菌叢構成比率の調整方法は、腸内細菌叢の構成比率を調整する方法であって、
ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）及びその培養物の少なくとも一方を含む腸内細菌叢構成比率調整剤を投与する工程を含むことを特徴とする。
　前記目的を達成するために、本発明者は、一連の研究を重ねたところ、ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）ＢＰ０８９９株及びその培養物の少なくとも一方の投与により、腸内細菌叢構成比率を調整可能であることを見出し、本発明に到達した。ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）及びその培養物の少なくとも一方は、安全性が高く、長期にわたり投与可能である。
図１は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのバクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の構成比率の変化を示すグラフである。 図２は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属の構成比率の変化を示すグラフである。 図３は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのプレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属の構成比率の変化を示すグラフである。 図４は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのクロストリジウム　クラスター　ＸＶＩＩＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＶＩＩＩ）の構成比率の変化を示すグラフである。 図５は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのクロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）の構成比率の変化を示すグラフである。 図６は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのクロストリジウム　クラスター　ＸＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩ）の構成比率の変化を示すグラフである。 図７は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのバクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の構成比率の変化を示すグラフである。 図８は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属の構成比率の変化を示すグラフである。 図９は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのプレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属の構成比率の変化を示すグラフである。 図１０は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのクロストリジウム　クラスター　ＸＶＩＩＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＶＩＩＩ）の構成比率の変化を示すグラフである。 図１１は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのクロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）の構成比率の変化を示すグラフである。 図１２は、実施例における、マウスの腸内細菌叢でのクロストリジウム　クラスター　ＸＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩ）の構成比率の変化を示すグラフである。
　本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤において、前記ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）及びその培養物の少なくとも一方が、下記（１）～（３０）の菌学的特徴を有することが好ましい。なお、前記ＢＰ０８９９株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構　特許生物寄託センター（日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８）に受託番号　ＮＩＴＥ　Ｐ－６４４で寄託され（受託日：２００８年　９月１２日）、さらに、受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４で国際寄託されている（移管日：２０１０年１０月２７日）。
（１）細胞の形：桿状形又は卵形
（２）多形性：なし
（３）細胞の大きさ：０．８μｍ×１．０μｍ
（４）運動性の有無：あり
（５）胞子の有無：なし
（６）普通寒天培養における光沢：あり
（７）普通寒天培養における色素産生：あり
（８）普通ブイヨン培養における表面発育の有無：なし
（９）普通ブイヨン培養における培地の混濁の有無：あり
（１０）ゼラチン穿刺培養におけるゼラチン液化：陰性
（１１）リトマス・ミルク培養における凝固：なし
（１２）リトマス・ミルク培養における液化：なし
（１３）グラム染色性：陰性
（１４）硝酸塩の還元：なし
（１５）脱窒反応：なし又はあり
（１６）ＭＲテスト：陰性
（１７）インドール産生：なし
（１８）硫化水素の生成：なし
（１９）デンプンの加水分解：なし
（２０）クエン酸の利用（Ｃｈｒｉｓｔｅｎｓｅｎ）：なし
（２１）無機窒素源の利用（アンモニウム塩）：あり
（２２）カタラーゼの生成：陽性
（２３）オキシダーゼの生成：陽性
（２４）嫌気的生育性：あり
（２５）Ｏ－Ｆテスト（酸化／発酵）：陰性／陰性
（２６）β－ガラクトシダーゼ活性：陰性
（２７）アルギニンジヒドロラーゼ活性：陰性
（２８）リジンデカルボキシラーゼ活性：陰性
（２９）トリプトファンデアミナーゼ活性：陰性
（３０）ゼラチナーゼ活性：陰性
　本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤において、前記ＢＰ０８９９株の１６Ｓ　ｒＲＮＡの塩基配列が、配列番号１で表される塩基配列であることが好ましい。
　本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤において、バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属、ラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属、プレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属、クロストリジウム　クラスター　ＸＶＩＩＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＶＩＩＩ）、クロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）及びクロストリジウム　クラスター　ＸＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩ）からなる群から選択された少なくとも一つの腸内細菌の構成比率を増加させる、又は、構成比率の減少を抑制させることが好ましい。
　本発明の医薬品は、腸内細菌叢構成比率の調整のための医薬品であって、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤を含むことを特徴とする。
　本発明の飲食品は、腸内細菌叢構成比率の調整機能を有する飲食品であって、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤を含むことを特徴とする。
　本発明について、以下に詳細に説明する。
　本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤は、前述のように、腸内細菌叢の構成比率を調整する腸内細菌叢構成比率調整剤であって、前記ＢＰ０８９９株及びその培養物の少なくとも一方を含むことを特徴とする。なお、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤は、紅色非硫黄細菌及び前記紅色非硫黄細菌の培養物の少なくとも一方を含み、前記紅色非硫黄細菌が、ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）を含み、前記ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）が、ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）を含むものであってもよい。
＜細菌＞
　本発明において、前記紅色非硫黄細菌である前記ＢＰ０８９９株及びその培養物の少なくとも一方は、前述のように、下記（１）～（３０）の菌学的特徴を有することが好ましい。
（１）細胞の形：桿状形又は卵形
（２）多形性：なし
（３）細胞の大きさ：０．８μｍ×１．０μｍ
（４）運動性の有無：あり
（５）胞子の有無：なし
（６）普通寒天培養における光沢：あり
（７）普通寒天培養における色素産生：あり
（８）普通ブイヨン培養における表面発育の有無：なし
（９）普通ブイヨン培養における培地の混濁の有無：あり
（１０）ゼラチン穿刺培養におけるゼラチン液化：陰性
（１１）リトマス・ミルク培養における凝固：なし
（１２）リトマス・ミルク培養における液化：なし
（１３）グラム染色性：陰性
（１４）硝酸塩の還元：なし
（１５）脱窒反応：なし又はあり
（１６）ＭＲテスト：陰性
（１７）インドール産生：なし
（１８）硫化水素の生成：なし
（１９）デンプンの加水分解：なし
（２０）クエン酸の利用（Ｃｈｒｉｓｔｅｎｓｅｎ）：なし
（２１）無機窒素源の利用（アンモニウム塩）：あり
（２２）カタラーゼの生成：陽性
（２３）オキシダーゼの生成：陽性
（２４）嫌気的生育性：あり
（２５）Ｏ－Ｆテスト（酸化／発酵）：陰性／陰性
（２６）β－ガラクトシダーゼ活性：陰性
（２７）アルギニンジヒドロラーゼ活性：陰性
（２８）リジンデカルボキシラーゼ活性：陰性
（２９）トリプトファンデアミナーゼ活性：陰性
（３０）ゼラチナーゼ活性：陰性
　前記紅色非硫黄細菌である前記ＢＰ０８９９株及びその培養物の少なくとも一方は、暗所での好気培養条件下で、さらに、例えば、下記（３１）の表に示す性質を示してもよい。なお、同表において、「－」は産生なしを、「＋」は産生ありを示す。
（３１）糖類からの酸産生及びガス産生
　　基質　　　　　酸産生／ガス産生
Ｌ－アラビノース　　　－／－
Ｄ－グルコース　　　　－／－
Ｄ－フラクトース　　　－／－
マルトース　　　　　　－／－
ラクトース　　　　　　－／－
Ｄ－ソルビトール　　　－／－
イノシトール　　　　　－／－
Ｄ－キシロース　　　　－／－
Ｄ－マンノース　　　　－／－
Ｄ－ガラクトース　　　－／－
サッカロース　　　　　－／－
トレハロース　　　　　－／－
グリセリン　　　　　　－／－
　前記菌学的特徴は、例えば、前培養後、さらに本培養した結果から評価してもよい。前記前培養は、例えば、普通寒天培地に前記紅色非硫黄細菌である前記ＢＰ０８９９株を植菌し、３０℃で２４時間培養して行ってもよい。前記本培養の条件は、各菌学的特徴の評価方法に応じて、適宜設定できる。具体的には、前記（１）～（５）の培養条件は、例えば、普通寒天培地を用い、３０℃、暗所での好気培養であり、前記（６）～（７）の培養条件は、例えば、普通ブイヨン培地を用い、３０℃、明所での嫌気培養であり、前記（８）～（１２）の培養条件は、例えば、各培地を用い、３０℃、暗所での好気培養であり、前記（１３）、（１４）、（１６）、（１７）、（１９）～（２３）、（２５）の酸化テスト、（２６）、（２９）、（３０）及び（３１）は、例えば、暗所での好気培養であり、（１５）、（１８）、（２４）、（２５）の発酵テスト、（２７）及び（２８）は、例えば、暗所での嫌気培養である。これらの菌学的特徴の試験方法としては、特に制限されず、従来公知の方法を採用できる。具体的には、例えば、Ｂａｒｒｏｗ　Ｇ．Ｉ．及びＦｅｌｔｈａｍ　Ｒ．Ｋ．Ａ．著「Ｃｏｗａｎ　ａｎｄ　Ｓｔｅｅｌ‘ｓ　Ｍａｎｕａｌ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｂａｃｔｅｒｉａ．」（イギリス）３ｒｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ　Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　Ｐｒｅｓｓ　１９９３年、坂崎ら著「新　細菌培地学講座・下」（東京）第二版　近大出版　１９８８年、長谷川編著「微生物の分類と同定（下）」（東京）学会出版センター　１９８５年、土壌微生物研究会編「新編　土壌微生物学実験」（東京）養賢堂　１９９２年等に記載の方法が挙げられる。前記（１５）の試験方法は、例えば、前記「微生物の分類と同定（下）」記載の駒形らの方法、Ｇｉｌｔａｙ培地を用いた前記「新編　土壌微生物学実験」記載の方法、ＰＹＮ培地を用いた下水法等を採用できる。前記駒形らの方法は、１％硝酸ナトリウム肉汁を用いた嫌気培養条件下で、生育及びガス形成が認められたものを脱窒反応陽性と判定する。前記Ｇｉｌｔａｙ培地を用いた方法は、ダーラム管入り前記Ｇｉｌｔａｙ培地（ｐＨ７．０～７．２）を用いた嫌気培養条件下で、ガス発生及び濃青色に呈色したものを脱窒反応陽性と判定する。なお、前記Ｇｉｌｔａｙ培地は、Ａ液（ＫＮＯ３　１ｇ、アスパラギン１ｇ、１％ブロモチモールブルー・アルコール溶液５ｍＬ及び蒸留水５００ｍＬ）及びＢ液（クエン酸ナトリウム８．５ｇ、ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ　１ｇ、ＦｅＣｌ３・６Ｈ２Ｏ　０．０５ｇ、ＫＨ２ＰＯ４　１ｇ、ＣａＣｌ２・６Ｈ２Ｏ　０．２ｇ及び蒸留水５００ｍＬ）を混合した培地である。また、前記試験方法には、例えば、市販の細菌同定キットを使用してもよい。前記キットとしては、特に制限されないが、例えば、細菌同定キット　ＡＰＩ２０Ｅ（ビオメリュー社製）等を使用できる。
　前記紅色非硫黄細菌である前記ＢＰ０８９９株及びその培養物の少なくとも一方は、例えば、さらに、下記（３２）～（４０）の菌学的特徴を有してもよい。
（３２）コロニーの色：赤色
（３３）ゼラチン穿刺培養：生育しない
（３４）ＶＰテスト：陰性
（３５）クエン酸の利用（Ｋｏｓｅｒ）：あり
（３６）無機窒素源の利用（硝酸塩）：あり
（３７）ウレアーゼ活性：陰性
（３８）生育するｐＨ範囲：５～９
（３９）Ｄ－マンニトールからの酸産生：産生あり
（４０）Ｄ－マンニトールからのガス産生：産生なし
　前記（３２）～（４０）の菌学的特徴の試験方法としては、特に制限されず、従来公知の方法を採用できる。具体的には、例えば、前述の文献等に記載の方法が挙げられる。また、前記試験方法には、例えば、市販の細菌同定キットを使用してもよい。前記キットとしては、特に制限されないが、例えば、前述の細菌同定キット等を使用できる。
　本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤は、例えば、さらに、前記ＢＰ０８９９株及びその培養物の少なくとも一方以外の、他の紅色非硫黄細菌を含んでもよい。
　前記他の紅色非硫黄細菌は、特に制限されないが、例えば、ロドスピルリム（Ｒｈｏｄｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ）属、ロドシスタ（Ｒｈｏｄｏｃｉｓｔａ）属、ロドピラ（Ｒｈｏｄｏｐｉｌａ）属、ロドミクロビウム（Ｒｈｏｄｏｍｉｃｒｏｂｉｕｍ）属、ブラストクロリス（Ｂｌａｓｔｏｃｈｌｏｒｉｓ）属、ロドプラネス（Ｒｈｏｄｏｐｌａｎｅｓ）属、ロドビウム（Ｒｈｏｄｏｂｉｕｍ）属、ロドシクルス（Ｒｈｏｄｏｃｙｃｌｕｓ）属、ロドフェラクス（Ｒｈｏｄｏｆｅｒａｘ）属、ロドシュードモナス（Ｒｈｏｄｏｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属等の細菌が挙げられる。
　また、前記他の紅色非硫黄細菌は、例えば、前記ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）及びその培養物の少なくとも一方以外のロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）、前記ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）以外のロドバクター（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ）属の細菌であってもよい。
　前記ＢＰ０８９９株を含めた紅色非硫黄細菌（以下、「紅色非硫黄細菌」ということがある。）の採取源としては、特に限定されず、例えば、土壌、海水、川水、湖水、沼水等が挙げられる。また、前記土壌としては、例えば、陸地、海底、川底、湖底及び沼底の土、砂及び泥土等が挙げられ、特に限定されない。
　前記紅色非硫黄細菌の単離方法としては、例えば、従来公知の採取法、培養法等を用いることができ、特に制限されない。前記単離方法としては、例えば、採取源が湖水の場合、採取した湖水をフィルター等によりろ過し、このろ液を寒天培地等で培養し、得られたコロニーから前記紅色非硫黄細菌を単離してもよい。また、例えば、採取源が泥土の場合、採取した泥土を緩衝液等により懸濁後、この懸濁液を遠心分離し、得られた上清を寒天培地等で培養し、得られたコロニーから前記紅色非硫黄細菌を単離してもよい。前記単離した紅色非硫黄細菌は、さらに、例えば、液体培地中で培養してもよい。
　本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤は、前記紅色非硫黄細菌以外に、さらに、他の細菌等を含有してもよい。前記他の細菌としては、特に制限されず、例えば、乳酸菌、酵母等が挙げられ、好ましくは、乳酸菌である。
　前記乳酸菌としては、特に限定されないが、例えば、ラクトバチルス・アシドフィルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ａｃｉｄｐｈｉｌｕｓ）、ラクトバチルス・カゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｃａｓｅｉ）、ラクトバチルス・ラクティス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｌａｃｔｉｓ）、ラクトバチルス・ブルガリクス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）、ラクトバチルス・ヘルベティクス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ）、ラクトバチルス・デルブリュッキ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ）、ラクトバチルス・プランタラム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｐｌａｎｔａｒｕｍ）、ラクトバチルス・ブレビス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｒｅｖｉｓ）、ラクトコッカス・ラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ　ｌａｃｔｉｓ）、ビフィドバクテリウム・ロンガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｌｏｎｇｕｍ）、ビフィドバクテリウム・ブレーベ（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｂｒｅｖｅ）、エンテロコッカス・フェカリス（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ　ｆａｅｃａｌｉｓ）、ストレプトコッカス・サーモフィルス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ　ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）、ストレプトコッカス・ラクティス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ　ｌａｃｔｉｓ）等が挙げられ、好ましくは、ラクトバチルス・アシドフィルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ａｃｉｄｐｈｉｌｕｓ）、ラクトバチルス・ブルガリクス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ　ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）、ストレプトコッカス・サーモフィルス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ　ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）、ストレプトコッカス・ラクティス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ　ｌａｃｔｉｓ）等が挙げられる。
　前記酵母としては、特に限定されないが、例えば、サッカロマイセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、サッカロマイセス・カールスベルゲンシス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃａｒｌｓｂｅｒｇｅｎｓｉｓ）、サッカロマイセス・エリプソイデウス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｅｌｌｉｐｓｏｉｄｅｕｓ）、サッカロマイセス・ロウキシ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｒｏｕｘｉｉ）等が挙げられる。
　前記紅色非硫黄細菌の培養において、培地は、特に限定されず、例えば、低級脂肪酸添加培地、リンゴ酸添加培地、Ｌ－乾燥標品復元用培養基８０２「ダイゴ」（日本製薬社製）、ＭＹＳ培地（平石及び北川、Ｂｕｌｌｅｔｉｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｊａｐａｎｅｓｅ　Ｓｏｃｉｅｔｙ　ｏｆ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　Ｆｉｓｈｅｒｉｅｓ、１９８４年、５０巻、１１号、ｐ．１９２９－１９３７）、改変ＭＹＳ培地、生育用培地等が挙げられ、好ましくは、低級脂肪酸添加培地、リンゴ酸添加培地、Ｌ－乾燥標品復元用培養基８０２「ダイゴ」（日本製薬社製）である。
　前記低級脂肪酸添加培地及び前記リンゴ酸添加培地としては、例えば、下記表１の基礎培地に、ビオチン、ビタミンＢ１、ニコチン酸、低級脂肪酸又はリンゴ酸のナトリウム塩を添加した培地が挙げられる。前記低級脂肪酸としては、特に制限されないが、例えば、酢酸、プロピオン酸、乳酸等が好ましい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　前記改変ＭＹＳ培地、生育用培地としては、例えば、下記表２及び表３の組成の培地が挙げられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　前記培養において、温度範囲は、特に限定されないが、例えば、２３～３９℃、３０℃である。
　また、前記培養において、ｐＨ範囲は、特に限定されないが、例えば、ｐＨ５．５～８．５、６．０～８．５、７．０である。
　前記培養は、例えば、好気的条件下で行ってもよく、嫌気的条件下で行ってもよく、特に制限されないが、好ましくは、嫌気的条件下である。また、前記培養時の光条件も、特に制限されず、例えば、暗黒条件でもよく、照明条件でもよいが、好ましくは、２０００ルクス～１００００ルクスの照度下である。前記培養は、例えば、密閉照明式培養槽内で行ってもよい。また、前記密閉照明式培養槽内に備えられた撹拌装置を用いて、培養液を撹拌しながら培養してもよい。
　前記培養時間は、特に制限されず、例えば、前記紅色非硫黄細菌の増殖が定常期に達するまでであってもよい。前記紅色非硫黄細菌の増殖が、約７２時間以内に定常期に達する培養条件下の場合、前記培養時間は、例えば、７２時間であってもよい。
　なお、前記紅色非硫黄細菌の培養において、例えば、前記紅色非硫黄細菌のみを培養してもよく、さらに、他の細菌を同時に混合培養してもよい。前記他の細菌としては、特に制限されないが、例えば、前述の乳酸菌、酵母等が挙げられる。
　前述のように、前記ＢＰ０８９９株の１６Ｓ　ｒＲＮＡの塩基配列は、配列番号１で表される塩基配列であることが好ましい。
　前記１６Ｓ　ｒＲＮＡの塩基配列は、例えば、前述の方法等により、単離及び培養した前記ＢＰ０８９９株から、ＤＮＡを抽出し、プライマー等を用いて決定できる。前記ＤＮＡの抽出及び前記塩基配列の決定方法は、例えば、常法を用いることができ、特に制限されない。また、前記プライマーは、特に制限されないが、例えば、以下のプライマー等が挙げられる。
（プライマー）
９Ｆ　　　　（配列番号２）
　　５’－ＧＡＧＴＴＴＧＡＴＣＣＴＧＧＣＴＣＡＧ－３’
３３９Ｆ　　（配列番号３）
　　５’－ＣＴＣＣＴＡＣＧＧＧＡＧＧＣＡＧＣＡＧ－３’
７８５Ｆ　　（配列番号４）
　　５’－ＧＧＡＴＴＡＧＡＴＡＣＣＣＴＧＧＴＡＧＴＣ－３’
１０９９Ｆ　（配列番号５）
　　５’－ＧＣＡＡＣＧＡＧＣＧＣＡＡＣＣＣ－３’
５３６Ｒ　　（配列番号６）
　　５’－ＧＴＡＴＴＡＣＣＧＣＧＧＣＴＧＣＴＧ－３’
８０２Ｒ　　（配列番号７）
　　５’－ＴＡＣＣＡＧＧＧＴＡＴＣＴＡＡＴＣＣ－３’
１２４２Ｒ　（配列番号８）
　　５’－ＣＣＡＴＴＧＴＡＧＣＡＣＧＴＧＴ－３’
１５４１Ｒ　（配列番号９）
　　５’－ＡＡＧＧＡＧＧＴＧＡＴＣＣＡＧＣＣ－３’
＜培養物＞
　前記紅色非硫黄細菌の培養物としては、例えば、前記紅色非硫黄細菌の菌体、前記紅色非硫黄細菌の培養上清、前記紅色非硫黄細菌の菌体抽出物等が挙げられ、特に限定されない。また、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤は、さらに、前記紅色非硫黄細菌以外の細菌の培養物を含んでいてもよい。前記紅色非硫黄細菌以外の細菌の培養物としては、特に制限されず、例えば、前述の他の細菌の菌体、前記他の細菌の培養上清、前記他の細菌の菌体抽出物等が挙げられる。前記紅色非硫黄細菌以外の細菌の培養物としては、具体的には、例えば、前述の乳酸菌、酵母等の乾燥菌体、抽出物等が挙げられる。
　前記培養物は、例えば、前記菌体の処理物、前記培養上清の処理物、前記菌体抽出物の処理物等でもよく、特に限定されない。前記処理物としては、特に限定されないが、例えば、前記培養物の濃縮物、乾燥物、凍結乾燥物、溶媒処理物、界面活性剤処理物、酵素処理物、タンパク質分画物、超音波処理物、磨砕処理物等が挙げられる。また、前記培養物は、例えば、前記菌体、前記培養上清、前記菌体抽出物、前記菌体の処理物、前記培養上清の処理物、前記菌体抽出物の処理物等の混合物でもよい。前記混合物としては、任意の組み合わせ及び比率で混合することができ、特に制限されない。前記組み合わせとしては、特に制限されないが、例えば、前記菌体及び前記培養上清の混合物等が挙げられる。
　本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤は、さらに、例えば、添加剤等の他の成分を含んでいてもよい。前記添加剤としては、特に制限されず、例えば、安定化剤等が挙げられる。前記腸内細菌叢構成比率調整剤の製造方法は、特に制限されず、例えば、通常用いられる製剤化技術等を採用できる。
　後述の実施例で実証されているように、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤によれば、例えば、バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属、ラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属、プレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属、クロストリジウム　クラスター　ＸＶＩＩＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＶＩＩＩ）、クロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）及びクロストリジウム　クラスター　ＸＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩ）等の腸内細菌の構成比率を増加させる、又は、構成比率の減少を抑制させることが可能である。
　福田らにより、腸内細菌の中には、それによって産生された酪酸等の短鎖脂肪酸が、脂肪細胞のペルオキシソーム増殖因子活性化受容体γ（Peroxisome　Proliferator-Activated　Receptor　γ）を活性化し、その結果、糖尿病発症率を低下し、また、膵臓からのインスリン分泌や食欲抑制作用を促すものがあることが報告されており、具体的な腸内細菌として、クロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）が開示されている（福田ら（２０１４）、実験医学、３２（５）、ｐ．７２６－７３２「統合オミクスが解き明かす腸内細菌叢の機能」）。また、「特集　ＰＰＡＲγアゴニスト－基礎・臨床研究の最新動向－」、日本臨牀、２０１０年、第６８巻、第２号、第１７６頁－３６０頁によれば、前記ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体γ（Peroxisome　Proliferator-Activated　Receptor　γ）の活性化が、抗血管不全や脂質代謝異常・動脈硬化等の心・血管系疾患、消化器疾患、腎疾患、悪性腫瘍及びアルツハイマー病を改善すること並びに免疫調節作用を有することも報告されている。本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤によれば、例えば、このような酪酸等の短鎖脂肪酸を産生する腸内細菌の構成比率を増加することができる。具体的には、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤の投与により、例えば、酪酸等の短鎖脂肪酸を産生するクロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）の構成比率を増加させることができる。このため、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤は、例えば、糖尿病、肥満、抗血管不全や脂質代謝異常・動脈硬化等の心・血管系疾患、消化器疾患、腎疾患、悪性腫瘍及びアルツハイマー病を改善可能であり、また、免疫調節作用を有する。また、特許文献１によれば、ヒトの肥満時において、腸内におけるバクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の構成比率が減少することが報告されている。したがって、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤の投与により、バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の構成比率を増加させることで、例えば、肥満を改善可能であると考えられる。そして、Miyakeらによれば、多発性硬化症患者において、腸内におけるプレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属及びクロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）の構成比率が減少することが報告されている（Miyake　S.　et　al　(2015),　PLOS　One,10.　e0137429）。したがって、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤の投与により、プレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属及びクロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）の少なくとも一方の構成比率を増加させることで、例えば、多発性硬化症を改善可能であると考えられる。さらに、Filipらによれば、パーキンソン病患者において、腸内におけるプレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属の構成比率が減少することが報告されている（Filip　S.　et　al　(2015),　Movement　Disorders,　Vol.30,　No.3,　p.350-358）。したがって、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤の投与により、プレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属の構成比率を増加させることで、例えば、パーキンソン病を改善可能であると考えられる。さらに、ラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属も、善玉菌として広く知られている。したがって、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤の投与により、ラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属の構成比率を増加させることで、例えば、便秘等を改善可能であると考えられる。
＜医薬品＞
　本発明の医薬品は、腸内細菌叢構成比率の調整のための医薬品であって、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤を含んでいる以外は、何ら制限されない。本発明において、医薬品とは、医薬品、医薬部外品を含む。
　前記医薬品の剤形は、例えば、散剤、細粒剤、顆粒剤、錠剤、被覆錠剤、カプセル剤、トローチ剤、液剤等が挙げられ、特に制限されない。また、前記医薬品の組成は、特に制限されず、例えば、賦形剤、結合剤、滑沢剤、崩壊剤、吸収促進剤、乳化剤、安定化剤、防腐剤等の各種添加剤等を含んでいてもよい。また、前記医薬品は、通常用いられる製剤化技術等により製造可能である。前記医薬品を投与する動物種としては、特に制限されないが、例えば、ヒト、又は、サル、ウシ、ブタ、イヌ、ネコ等の非ヒトの哺乳類、ニワトリ等の鳥類、魚介類等が挙げられる。前記投与方法としては、特に制限されず、例えば、経口投与又は非経口投与が挙げられ、前記非経口投与は、例えば、経皮吸収、注射、座薬投与等が挙げられる。前記医薬品の投与量は、例えば、動物種、年齢等に応じて適宜設定でき、特に制限されない。本発明の腸内細菌叢構成比率の調整方法において、投与方法及び投与対象等は、例えば、同様である。
＜飲食品＞
　本発明の飲食品は、腸内細菌叢構成比率の調整機能を有する飲食品であって、本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤を含んでいる以外は、何ら制限されない。本発明において、飲食品とは、一般食品、保健機能食品を含む。前記一般食品としては、特に限定されないが、例えば、穀物加工食品、野菜加工食品、果物加工食品、食肉加工食品、水産物加工食品、乳製品、飲料、健康食品等が挙げられる。また、本発明の飲食品は、前記腸内細菌叢構成比率調整剤を、例えば、素材、添加剤等として含んでいてもよい。前記穀物加工食品としては、特に制限されないが、例えば、小麦粉、米粉、シリアルバー、せんべい、あられ、クッキー等が挙げられる。前記野菜加工食品としては、特に制限されないが、例えば、野菜ペースト、乾燥野菜、野菜スープ等が挙げられる。前記果物加工食品としては、特に制限されないが、例えば、果物ピューレ、乾燥果物等が挙げられる。前記食肉加工食品としては、特に制限されないが、例えば、ハム、ベーコン、ソーセージ等が挙げられる。前記水産物加工食品としては、特に制限されないが、例えば、佃煮、塩干物、魚肉ソーセージ、はんぺん、かまぼこ、ちくわ等が挙げられる。前記乳製品としては、特に制限されないが、例えば、乳飲料、ヨーグルト、アイスクリーム、チーズ等が挙げられる。前記飲料としては、特に制限されないが、例えば、清涼飲料、緑茶、紅茶、コーヒー等が挙げられる。また、前記保健機能食品は、一般に、機能性食品とも称される。前記保健機能食品としては、例えば、特定保健用食品、栄養機能食品、機能性表示食品等が挙げられる。
　前記飲食品の組成としては、特に制限されず、前記腸内細菌叢構成比率調整剤以外に、例えば、種々の食品素材、助剤、安定化剤等が挙げられる。また、前記飲食品は、通常用いられる製剤化技術等により製造可能である。前記飲食品の対象動物種は、特に制限されないが、例えば、ヒト、又は、サル、ウシ、ブタ、イヌ、ネコ等の非ヒトの哺乳類、ニワトリ等の鳥類、魚介類等が挙げられる。
　つぎに、本発明の実施例について説明する。ただし、本発明は、下記の実施例に限定されない。
（１）マウスへのＢＰ０８９９株懸濁液の投与
　５週齢の雄性Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスに、通常食（ＣＥ－２固形試料、日本クレア社製）及び水を与え、２日間飼育した。さらに、通常食（ＡＩＮ－９３Ｍ精製試料、米国国立栄養研究所製）を与え、５日間飼育した。つぎに、前記ＢＰ０８９９株１００ｍｇに蒸留水を加えて１０ｍＬとし、ボルテックスミキサーにより撹拌して懸濁液を調製し、さらに前記懸濁液１ｍＬに蒸留水９ｍＬを加え、計１０ｍＬとし、これをＢＰ０８９９株懸濁液とした。６週齢となった前記マウスを、前記ＢＰ０８９９株摂取量が１０ｍｇ／ｋｇとなる群（実施例１－１、７匹）と、１００ｍｇ／ｋｇとなる群（実施例１－２、７匹）とに分けた。そして、群分けした日の翌日を投与開始日（１日目）とし、１日目から１４日目まで毎日、各群に、前記ＢＰ０８９９株懸濁液をゾンデにより経口投与した。また、前記ＢＰ０８９９株懸濁液に代えて、蒸留水を投与した以外は実施例１－１及び実施例１－２と同様に実験を行うコントロール群を比較例（比較例１、７匹）とした。そして、実施例１－１、実施例１－２及び比較例１の３群すべてに関して、下記に示すとおり、糞解析を行った。
（２）糞解析１（３日目における腸内細菌の構成比率（％）と、７日目における腸内細菌の構成比率（％）との比較）
　３日目において、群内のマウス７匹すべての糞を集積し、検体数ｎ＝１としたものを、Ｔ－ＲＦＬＰ解析に供し、３日目における腸内細菌の構成比率（％）を測定した。また、７日目においても、同様にして群内のマウス７匹すべての糞を集積し、検体数ｎ＝１としたものを、Ｔ－ＲＦＬＰ解析に供し、７日目における腸内細菌の構成比率（％）を測定した。そして、以下のようにして、マウスの腸内細菌の構成比率の変化率を算出した。これらの結果を、図１～図６に示す。
　すなわち、バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の構成比率の変化については、７日目におけるバクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の構成比率（％）を、３日目におけるバクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の構成比率（％）で割った値を算出した。そして、比較例１における前記値を１としたときの、実施例１－１及び実施例１－２における相対値（変化率）を算出した。バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属以外の腸内細菌の構成比率の変化率も、バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属と同様にして算出した。
　図１～図６は、腸内細菌の種類毎に、実施例１－１、実施例１－２及び比較例１のマウスにおける腸内細菌の構成比率の変化を示したグラフである。図１は、バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の結果を、図２は、ラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属の結果を、図３は、プレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属の結果を、図４は、クロストリジウム　クラスター　ＸＶＩＩＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＶＩＩＩ）の結果を、図５は、クロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）の結果を、図６は、クロストリジウム　クラスター　ＸＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩ）の結果を示す。図１～図６において、縦軸は、前記変化率を示す。
　図１では、実施例１－１において、前記変化率が１より大きく、バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の構成比率が、比較例１よりも高くなった。図２では、実施例１－１において、前記変化率が１を大きく上回り、ラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属の構成比率が、比較例１よりも極めて高くなった。また、実施例１－２では、実施例１－１の変化率をさらに上回り、前記ＢＰ０８９９株の投与量に応じたラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属の構成比率の増加が確認された。図３では、実施例１－１において、前記変化率が１より大きく、プレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属の構成比率が、比較例１よりも高くなった。また、実施例１－２では、実施例１－１の変化率をさらに上回り、前記ＢＰ０８９９株の投与量に応じたプレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属の構成比率の増加が確認された。図４では、実施例１－１及び実施例１－２において、前記変化率が１より大きく、クロストリジウム　クラスター　ＸＶＩＩＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＶＩＩＩ）の構成比率が、比較例１よりも高くなった。図５でも、実施例１－１及び実施例１－２において、前記変化率が１より大きく、クロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）の構成比率が、比較例１よりも高くなった。図６では、実施例１－２において、前記変化率が１より大きく、クロストリジウム　クラスター　ＸＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩ）の構成比率が、比較例１よりも高くなった。なお、実施例１－１及び実施例１－２において前記変化率が１より大きかったことは、比較例１において対象の腸内細菌の構成比率が７日目において３日目より増加している場合、実施例１－１及び実施例１－２では、その増加の程度が比較例１より大きかったことを意味し、比較例１において対象の腸内細菌の構成比率が７日目において３日目より減少している場合、実施例１－１及び実施例１－２では、その減少の程度が比較例１より小さかった（すなわち、実施例１－１及び実施例１－２において対象の腸内細菌の減少が抑制された）、又は、実施例１－１及び実施例１－２では、比較例１では減少した対象の腸内細菌の構成比率が増加したことを意味する。
（３）糞解析２（３日目における腸内細菌の構成比率（％）と、８～１５日目における腸内細菌の構成比率（％）との比較）
　８～１５日目における腸内細菌の構成比率（％）を、下記のようにして測定した。すなわち、群内のマウス７匹を２匹のグループ×３（ｎ＝３）に分けた。そして、マウス２匹分の糞を、８～１５日目まで集積し（すなわち、２匹分のマウスの糞を、８日分集積したこととなる）、検体数ｎ＝３としたものを、Ｔ－ＲＦＬＰ解析に供し、８～１５日目における腸内細菌の構成比率（％）を測定した。そして、前記（２）と同様にして、８～１５日目における腸内細菌の構成比率（％）を、３日目における腸内細菌の構成比率（％）で割った値を算出し、比較例１における前記値を１としたときの、実施例１－１及び実施例１－２における相対値（変化率）を算出した。これらの結果を、図７～図１２に示す。
　図７～図１２は、腸内細菌の種類毎に、実施例１－１、実施例１－２及び比較例１のマウスにおける腸内細菌の構成比率の変化を示したグラフである。図７は、バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の結果を、図８は、ラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属の結果を、図９は、プレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属の結果を、図１０は、クロストリジウム　クラスター　ＸＶＩＩＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＶＩＩＩ）の結果を、図１１は、クロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）の結果を、図１２は、クロストリジウム　クラスター　ＸＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩ）の結果を示す。図７～図１２において、縦軸は、前記変化率を示す。
　図７では、実施例１－１及び実施例１－２において、前記変化率が１より大きく、バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属の構成比率が、比較例１よりも高くなった。図８では、実施例１－２において、前記変化率が１より大きく、ラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属の構成比率が、比較例１よりも高くなった。図９では、実施例１－１及び実施例１－２において、前記変化率が１より大きく、プレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属の構成比率が、比較例１よりも高くなった。図１０でも、実施例１－１及び実施例１－２において、前記変化率が１より大きく、クロストリジウム　クラスター　ＸＶＩＩＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＶＩＩＩ）の構成比率が、比較例１よりも高くなった。図１１では、実施例１－１及び実施例１－２において、前記変化率が１を大きく上回り、クロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）の構成比率が、比較例１よりも極めて高くなった。図１２では、実施例１－１において、前記変化率が１を大きく上回り、クロストリジウム　クラスター　ＸＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩ）の構成比率が、比較例１よりも極めて高くなった。また、実施例１－２では、実施例１－１の変化率をさらに上回り、前記ＢＰ０８９９株の投与量に応じたクロストリジウム　クラスター　ＸＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩ）の構成比率の増加が認められた。
　以上、実施形態及び実施例を参照して本発明を説明したが、本発明は、上記実施形態及び実施例に限定されるものではない。本発明の構成や詳細には、本発明のスコープ内で当業者が理解しうる様々な変更をすることができる。
　この出願は、２０１６年４月２６日に出願された日本出願特願２０１６－０８８０６８を基礎とする優先権を主張し、その開示の全てをここに取り込む。
　以上のように、本発明によれば、ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）及びその培養物の少なくとも一方により、腸内細菌叢構成比率を調整し、例えば、肥満、多発性硬化症等を改善することができる。本発明の腸内細菌叢構成比率調整剤は、安全性が高いため、長期にわたり投与できる。したがって、本発明によれば、有用かつ安全性の高い腸内細菌叢構成比率調整剤、医薬品及び飲食品を提供することができ、その適用範囲は制限されず広い。

Claims (7)

  1. 腸内細菌叢の構成比率を調整する腸内細菌叢構成比率調整剤であって、
    ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）及びその培養物の少なくとも一方を含むことを特徴とする腸内細菌叢構成比率調整剤。
  2. 前記ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）及びその培養物の少なくとも一方が、下記（１）～（３０）の菌学的特徴を有する、請求項１記載の腸内細菌叢構成比率調整剤。
    （１）細胞の形：桿状形又は卵形
    （２）多形性：なし
    （３）細胞の大きさ：０．８μｍ×１．０μｍ
    （４）運動性の有無：あり
    （５）胞子の有無：なし
    （６）普通寒天培養における光沢：あり
    （７）普通寒天培養における色素産生：あり
    （８）普通ブイヨン培養における表面発育の有無：なし
    （９）普通ブイヨン培養における培地の混濁の有無：あり
    （１０）ゼラチン穿刺培養におけるゼラチン液化：陰性
    （１１）リトマス・ミルク培養における凝固：なし
    （１２）リトマス・ミルク培養における液化：なし
    （１３）グラム染色性：陰性
    （１４）硝酸塩の還元：なし
    （１５）脱窒反応：なし又はあり
    （１６）ＭＲテスト：陰性
    （１７）インドール産生：なし
    （１８）硫化水素の生成：なし
    （１９）デンプンの加水分解：なし
    （２０）クエン酸の利用（Ｃｈｒｉｓｔｅｎｓｅｎ）：なし
    （２１）無機窒素源の利用（アンモニウム塩）：あり
    （２２）カタラーゼの生成：陽性
    （２３）オキシダーゼの生成：陽性
    （２４）嫌気的生育性：あり
    （２５）Ｏ－Ｆテスト（酸化／発酵）：陰性／陰性
    （２６）β－ガラクトシダーゼ活性：陰性
    （２７）アルギニンジヒドロラーゼ活性：陰性
    （２８）リジンデカルボキシラーゼ活性：陰性
    （２９）トリプトファンデアミナーゼ活性：陰性
    （３０）ゼラチナーゼ活性：陰性
  3. 前記ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）の塩基配列が、配列番号１で表される塩基配列である請求項１又は２記載の腸内細菌叢構成比率調整剤。
  4. バクテロイデス（Ｂａｃｔｅｒｏｉｄｅｓ）属、ラクトバシラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属、プレボテラ（Ｐｒｅｖｏｔｅｌｌａ）属、クロストリジウム　クラスター　ＸＶＩＩＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＶＩＩＩ）、クロストリジウム　サブクラスター　ＸＩＶａ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｓｕｂｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩＶａ）及びクロストリジウム　クラスター　ＸＩ（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ　ｃｌａｓｔｅｒ　ＸＩ）からなる群から選択された少なくとも一つの腸内細菌の構成比率を増加させる、又は、構成比率の減少を抑制させる請求項１から３のいずれか一項に記載の腸内細菌叢構成比率調整剤。
  5. 腸内細菌叢構成比率の調整のための医薬品であって、
    請求項１から４のいずれか一項に記載の腸内細菌叢構成比率調整剤を含む医薬品。
  6. 腸内細菌叢構成比率の調整機能を有する飲食品であって、
    請求項１から４のいずれか一項に記載の腸内細菌叢構成比率調整剤を含む飲食品。
  7. 腸内細菌叢の構成比率を調整する方法であって、
    ロドバクター・アゾトフォルマンス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ　ａｚｏｔｏｆｏｒｍａｎｓ）ＢＰ０８９９株（受託番号　ＮＩＴＥ　ＢＰ－６４４）及びその培養物の少なくとも一方を含む腸内細菌叢構成比率調整剤を投与する工程を含むことを特徴とする腸内細菌叢構成比率の調整方法。
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