WO2017112987A1 - PROCESSO DE PRODUÇÃO DE UMA GONADOTROFINA CORIÔNICA EQUINA RECOMBINANTE (reCG): COMPOSIÇÃO VETERINÁRIA E USO - Google Patents

PROCESSO DE PRODUÇÃO DE UMA GONADOTROFINA CORIÔNICA EQUINA RECOMBINANTE (reCG): COMPOSIÇÃO VETERINÁRIA E USO Download PDF

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recg
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ecg
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Mari Cleide Sogayar
Ana Claudia OLIVEIRA CARREIRA NISHIYAMA
Marcos Angelo ALMEIDA DEMASI
Lauren CAMARGO
Tatiane MALDONADO COELHO
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Ouro Fino Saúde Animal Participações S.A.
Universidade De São Paulo - Usp
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    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
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    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
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    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
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    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation

Definitions

  • the present invention relates to the process of producing recombinant equine chorionic gonadotropin, referred to herein as reCG or reCG, to reCG produced by the process of the present invention, a veterinary composition comprising reCG, and the use of reCG or composition comprising reCG.
  • the produced reCG has a glycosylation profile similar to that of commercially available chorionic gonadotropins and exhibits a level of activity in vivo similar to that of luteinizing hormone (LH) and follicle stimulating hormone (FSH). Follicle Stimulating Hormone).
  • the present invention has application in the field of biotechnology, more specifically in the field of veterinary assisted reproduction, and is especially suited for use in the treatment of veterinary conditions related to mammalian reproduction and ovulation, for the manufacture of diagnostic kits. or as a supplement for cell culture.
  • Equine chorionic gonadotropin improves the efficacy of a timed artificial insemination protocol in buffalo during the nonbreeding season Theriogenology 2013; 79 (3): 423-8; BARRIERS et al., Dynamics of follicular growth and progesterone concentrations in cyclic and anestrous suckling Nellore cows ( Bos indicus) treated with progesterone, equine chorionic gonadotropin, or temporary calf removal Theriogenology 2014; 81 (5): 651-6).
  • eCG is especially used in extensively managed beef cows and has also been used in cow and heifer superovulatory treatments as an effective treatment option for irascible animals (MAPLETOFT et al., Recent advances in the superovulation).
  • Reprod Nutr Dev 2002; 42 (6): 601 -1 1) as conventional hormone treatments in cattle use the use of eight doses of purified commercial porcine FSH preparations - Folltropin-V ® , Bioniche ® (data obtained from the product leaflet).
  • the eCG is secreted by the equine uterus, more specifically by the endometrial calyxes, which are formed around the fortieth day of gestation, remaining until around the eighty-fifth day.
  • the secretion of this hormone which has a biological action similar to both FSH and LH, stimulates the development of ovarian follicles in the pregnant mare. Some of these follicles ovulate, but most turn into luteinized follicles due to LH-like action.
  • Such accessory luteal bodies produce the progesterone necessary to maintain pregnancy in the mare (HAFEZ AND HAFEZ, Animal Reproduction. Manole Publishing House 2004; single volume).
  • ECG currently used for animal reproduction is purified from pregnant mares plasma (CHRISTAKOS AND BAHL, Pregnant mare serum Gonadotropin. Purification and physicochemical, biological, and immunological characterization. J Biol Chem 1979; 254 (10): 4253-61; MAPLETOFT et al., Recent advances in superovulation in cattle. Reprod Nutr Dev 2002; 42 (6): 601-1), being marketed as Folligon (Intervet); SincroeCG (Ourofino) and Novormon (Coopers), there is no commercially available recombinant eCG.
  • This single gonadotropin has the ability, in heterologous species, to bind to both FSH and LH receptors, and to stimulate folliculogenesis (STEWART et al., Pregnant mare serum gonadotrophin: ratio of follicle-stimulating hormone and luteinizing hormone activities measured by radioreceptor assay J Endocrinol 1976; 71 (3): 471-82; COMBARNOUS, Original hypothesis on the binding of glycoprotein hormones to their receptors (CR Seances Acad Sci III 1981). Its prolonged plasma half-life, due to its high amount of sugars (MCINTOSH et al., Pregnant mare serum gonadotropin: rate of clearance from the circulation of sheep.
  • Recombinant gonadotropins exhibit maximum biosafety, better performance on results, no interference from other hormones and few contaminants, and are thus widely used in human reproductive medicine, representing great interest for assisted veterinary reproduction. Recombinant technology has proved to be possible to reproducibly complex protein production.
  • the structure of gonadotropins is difficult to reproduce because, in addition to the presence of several post-translational modifications, gonadotropins are composed of two independently translated transcribed chains, which are subsequently combined (LOUMAGEL et al., Human follicle-stimulating hormone produced by recombinant DNA technology: a review for clinicians (Human Reproduction 1995; v. 1 pp. 188-199).
  • the process of the present invention may also be applied to other non-fused forms of eCG, such as, separately expressed chains, or protein changes to increase the circulating time of the molecule, such as, for example, modifications. as PEGIation.
  • the eCG ⁇ -subunit composed of 96 amino acids, exhibits two complex N-linked oligosaccharide chains located at the residues of asparagines 56 and 82.
  • the carbohydrate chains of the two hormones exhibit differences in their structures: the subunit of the H_H has two biantenary N-glycans terminated in sulfated N-acetylgalactosamines (SO4-4-GalNAc), while the N-glycans attached to the eCG ⁇ -subunits are terminated in sialic acid at the ⁇ 2,3 and ⁇ 2,6 linkages (DAMM et al., Structure determination of the major N-and O-linked carbohydrate chains of the beta subunit from equine chorionic gonadotropin.
  • Both ⁇ subunits have up to 12 sialized poly N-acetyl lactosamine ( ⁇ 2,3) extended O-glycans located on the 28 amino acid residue terminal carboxy-peptide (CTP) serines or threonines (HOKKE et al., Structure determination of the disialylated poly- (N-acetyllactosamine) -containing O-linked carbohydrate chains of equine chorionic gonadotropin Glycoconj J.
  • CTP carboxy-peptide
  • eCG Since el_H and eCG have identical polypeptide chains, the difference between the structure of N- and O-glycans explains the difference between molecular weights and biological activity of these two hormones: eCG has an exceptional circulatory half-life compared to el_H (BOUSFIELD et al., Identification of twelve O-glycosylation sites in equine chorionic gonadotropin beta and equine luteinizing hormone ss by solid-phase Edman degradation. Biol Reprod. 2001 Jan; 64 (1): 136-47).
  • HESSER A survey of heterologous expression systems for the production of bovine follicle stimulating hormone and luteinizing hormone. AM Dissertations 201 1; Paper 692) describes the production of gonadotropins, more specifically, follicle stimulating hormones in CHO cells.
  • SUGAHARA et al. (SUGAHARA et al., Expression of biological active fusion genes by concealing the common alpha subunit and the follicle stimulating hormone beta subunit: Role of a linker sequence. J Biol Chem 1996; 271: 10445-10448) described the conversion of a heterodimer of FSH for a single stranded structure, and the impact of the absence of the linker sequence on the secretion and binding rate of said protein. Moreover, it shows that the alignment of the ⁇ and ⁇ domains differ from that presented in the heterodimer form.
  • NARA YAN et al. (NARA YAN et al., Functional expression of yoked human chorionic gonadotropin in baculovirus-infected insect cells. Mol Endocrinol. 1995; 9 (12): 1720-6) describes the simultaneous expression of eCG ⁇ and ⁇ subunits in insect cells. , whose expression is controlled by different promoters in the same recombinant baculovirus, giving rise to proteins that are biologically active in vitro.
  • SHIOTA et al. (SHIOTA et al., Production of recombinant eCG with potent FSH-like activity by site-directed mutagenesis. Nippon Yakurigaku Zasshi 1997; 110 (1): 59P-62P) describes recombinant gonadotropins with different structures in view of the coupled oligosaccharides, and relates the biological activity of mutants or variants.
  • EP0974599 describes a variant of the recombinant eCG and its corresponding DNA sequence, as well as a pharmaceutical composition of said recombinant eCG for use as a veterinary drug.
  • the disclosed recombinant eCG variant form has the eCG ⁇ and ⁇ chains fused to a single polypeptide chain, having FSH and LH-like activity in vitro.
  • the inventors suggest its use as a medicament for animals, but do not demonstrate: a) the similarity between the glycosylation profile of the recombinant form obtained and that of the wild form; and b) the in vivo biological activity of the form of the obtained recombinant eCG.
  • US 5,767,251 describes methods for generating recombinant human gonadotropins, including hCG, hI_H and hFSH, wherein hormones composed of two different subunits are synthesized in the same cell by at least one expression vector, in which Each subunit's expression is controlled by a different promoter.
  • hCG hCG, hI_H and hFSH
  • the biological activity of hCG is easily differentiated from the activity of LH because, unlike in horses, the ⁇ chains of these two gonadotropins are encoded by distinct genes.
  • US 5,047,335 describes a process for controlling glycosylation of recombinant proteins involving the use of genetically engineered CHO cells to produce sialyltransferases, a class of glycosyltransferases. This additional production of sialyltransferases allows, for example, that recombinant glycoproteins produced in this genetically engineered CHO cell line have a glycan structure closer to natural human glycoproteins.
  • US 5,047,335 does not describe which combination of glycosyltransferases would be required to obtain recombinant eCG with biological activity.
  • US 2010/120677 describes methods for producing biologically active recombinant eFSH analogs and methods for enhancing mammalian reproduction with the use of recombinant eFSH analogs.
  • CA 2183564 describes methods for enhancing fertility by reducing the activity or levels of LH-acting hormones, and methods for selecting antibodies to specific portions of certain proteins, including LH and hCG, to reduce their biological activity. .
  • the cell containing gene expression of the following glycosylation pathway enzyme transcripts allows obtaining biologically active reCG in the target species: UDP-GlnNAc-2-epimerase, CMP-SA-synthetase, CMP-SA-transporter ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 3 (ST3-GalTIII), ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 4 (ST3-GalTIV), ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 6 (ST3-GalTVI), Sialidase I, Sialidase II.
  • the present invention relates to a process for producing a recombinant equine chorionic gonadotropin, wherein said reCG has a glycosylation profile similar to that of chorionic gonadotropins. commercially available. This process comprises the steps of:
  • step (b) co-transfecting the vector from step (a) with a selection vector into DHFR gene negative double-expression cells;
  • a recombinant equine chorionic gonadotropin produced from the process of the present invention.
  • Said reCG is produced from a fused cDNA chain containing either the equine chorionic gonadotropin (eCG) ⁇ and ⁇ chain coding sequences or cDNA chains containing the ⁇ and ⁇ chain coding sequences separately.
  • eCG equine chorionic gonadotropin
  • the present invention relates to a veterinary composition
  • a veterinary composition comprising:
  • the present invention relates to the use of the inventive reCG or the inventive composition comprising said reCG in manufacture of a medicament for the treatment of medical conditions related to the reproduction and ovulation of mammalian animals as an optimizing agent for in vitro fertilization; in the manufacture of kits for diagnosis of veterinary conditions and protocols related to ovulation of mammals; and in the manufacture of cell culture supplement.
  • Figure 1 shows the illustrative scheme used for the construction of fused DNA encoding reCG by PCR.
  • Figure 2 illustrates SEQ ID NO: 1 in FASTA format.
  • Figure 3 illustrates the expression of reCG by CHO-DG44 cell populations transfected with plasmid pNU0-eCG throughout the process of gene amplification of this plasmid by treatment with increasing doses of MTX chemotherapy.
  • Figure 4 illustrates the kinetics of reCG expression by the CHO 2.5 ⁇ population following growth adaptation in the absence of MTX over three days in the presence of fetal bovine serum (FCS) or in its presence. absence (SFM).
  • FCS fetal bovine serum
  • SFM presence. absence
  • Figure 5 illustrates the in vitro biological activity of eCG assessed from the progesterone response secreted by MLTC-1 cells following treatment with increasing doses of Folligon or reCG produced in the presence (A) or absence (B) of fetal serum. bovine.
  • Figure 6 illustrates the in vivo biological activity assessed from the uterine response of prepubertal rats from 23 to 25 days following treatment with increasing doses of Folligon or reCG produced in the absence of fetal bovine serum.
  • Figure 7 illustrates the linear regression for data obtained from the in vivo biological activity assay assessed from the uterine response of prepubertal rats from 23 to 25 days following treatment with increasing doses of Folligon or reCG produced in the absence of fetal bovine serum.
  • Figure 8 illustrates the in vivo biological activity of partially purified reCG by the HiTrap TM Con A. column from the uterine response of 25-day prepubertal rats following treatment with Folligon or reCG produced in the absence of fetal bovine serum and partially purified by HiTrap TM Con A.
  • Figure 9 illustrates N-glycan structures obtained for the commercial Folligon eCG following digestion performed with combinations of exoglycosities.
  • Figure 10 illustrates the putative structures of N-glycans obtained in reCG-enriched fractions.
  • Figure 11 illustrates the gene expression profile obtained for enzyme transcripts corresponding to glycosylation pathway enzymes in cells cultured in the presence and absence of fetal bovine serum: UDP-GlnNAc-2-epimerase, CMP-AS- synthetase, CMP-SA-transporter, ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 3 (ST3-GalTIII), ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 4 (ST3-GalTIV), ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 6 (ST3-GalTVI), Sialidase I, Sialidase II.
  • the present invention is a process for producing a recombinant equine chorionic gonadotropin (reCG), wherein said recombinant equine chorionic gonadotropin has a glycosylation profile similar to that of the natural equine chorionic gonadotropin and exhibits the same level of in vitro activity. Vo of the hormones FSH and LH.
  • said process comprises the steps of:
  • step (b) co-transfecting the vector from step (a) with a selection vector into DHFR gene negative double-expression cells;
  • the DNA sequence encoding eCG according to the present invention preferably comprises a fused cDNA strand SEQ ID NO. 1, containing both sequences encoding the equine chorionic gonadotropin (eCG) ⁇ and ⁇ chains.
  • the sequence of the reCG coding gene has been designed to preferably contain the coding sequences of both eCG ⁇ and ⁇ units in such a way that they are fused, as seen in Figure 1 and Figure 2.
  • Figure 2 illustrates SEQ ID NO: 1 in FASTA format obtained after subjecting the sequencing chromatograms of one of the bacterial clones containing the ⁇ construct to automated sequencing using the Sanger method.
  • oligonucleotides represents the site for the restriction enzyme Not ⁇ .
  • the total length of the construction is 822bp.
  • Primers used for cDNA sequence amplification were designed from the complete coding sequences of each eCG subunit contained in the NCBI database (http://www.ncbi.nlm.nih.gov; National Center for Biotechnology Information, US NLM - US National Library of Medicine, Bethesda, USA (NM_access number a: 001099763.1, ⁇ : 001490342.2) No computer program was used for the design of oligonucleotides.
  • Amplification of the coding chains can be performed by PCR (Polymerase Chain Reactiori) technique and the products obtained are separated and purified by techniques usually known and employed in the state of the art.
  • the obtained amplicons are detected on agarose gel, isolated and purified by the GFX PCR DNA and Gel Band Purification Kit (GE Healtcare, Carlsbad, CA, USA).
  • sequences of the coding gene may be designed comprising only one of the coding sequences of the eCG, ⁇ or ⁇ units.
  • the construction of the fusion gene encoding reCG occurs from a sequence of PCR reactions, divided into 3 stages, with the purified product. Between each round of PCR the product obtained was purified on agarose gel.
  • the first round of PCR is responsible for adding restriction sites to the end of the eCGa sequence and the beginning of the eCGp sequence.
  • complementary gene fragments are added to the counter-subunit sequence. A complementary fragment was added to the beginning of both eCGa and eCGp chains, allowing subunits to be joined through these fragments.
  • the third round is responsible for joining the mutated eCGa and eCGp chains into a single eCGp chain.
  • the obtained amplicons were detected on agarose gel and purified with the GFX PCR DNA and Gel Band Purification Kit (GE Healtcare, Carlsbad, CA, USA). Following purification of the agarose gel-fused gene, the gene was digested with restriction enzymes EcoRI and A / oI and subcloned into a plasmid vector.
  • the gene may be cloned into any plasmid vector containing one or more strong promoters, including the chicken ⁇ -actin promoter and cytomegalovirus promoter, multiple bacterial cloning site, antibiotic resistance sequence for bacterial cloning, recombination sites, and the cDNA encoding the enzyme dihydrofolate reductase (DHFR) downstream from an internal ribosome entry site (IRES).
  • the suitable expression plasmid vector for the invention is the pNU0 vector, constructed by the depositor itself.
  • the pNU0 vector is derived from the pUC18 vector (MESSING AND VIEIRA, The pUC plasmids, an M13mp7-derived system for insertion mutagenesis and sequencing with synthetic universal primers. Gene. 1982 Oct; 19 (3): 259-68) and has an MCS cloning cassette containing several restriction enzyme sites under the control of a hybrid promoter containing cytomegalovirus enhancer element and chicken ⁇ -actin promoter, as well as the dihydrofolate reductase (DHFR) encoding enzyme downstream of a internal site for ribosome entry.
  • MESSING AND VIEIRA The pUC plasmids, an M13mp7-derived system for insertion mutagenesis and sequencing with synthetic universal primers. Gene. 1982 Oct; 19 (3): 259-68
  • MCS cloning cassette containing several restriction enzyme sites under the control of a hybrid promoter containing cytomegalovirus enhancer element and chicken ⁇ -actin promoter, as well as
  • This structure allows concomitant expression of the cloned insert in the MCS, in this case eCGpa, and DHFR, aiming at gene complementation of double-negative CHO cells to the DHFR gene, which in turn allows selection of cells expressing high amounts of the product of interest after gene amplification performed by treatment with increasing doses of DHFR inhibitors.
  • the constructed plasmid was then cotransfected into the cells of interest with a selection vector for generation of cell clones stably expressing the fused eCGpa protein.
  • Plasmid insertion into the cell of interest can be accomplished by various techniques usually employed in the state of the art. Among them, several types of transfection, such as through cationic molecules, calcium-mediated transfection, PEI, electroporation, nucleofection, provided that the rate of transfectability is maintained in the same order of magnitude.
  • cotransfection is performed by selection vector lipofection.
  • the selection vector provides resistance to the hygromycin B antibiotic.
  • the suitable selection vector is the pX343 vector (ARMELIN et al., Functional role for c-myc in mitogenic response to platelet-derived growth factor. Nature. 1984 Aug 23-29; 310 (5979): 655-60).
  • Co-transfection of the ⁇ construct into cells of interest with the pX343 vector was performed at a ratio of pX343 vector to the ⁇ construct ranging from 1: 1 to 1: 5000. Preferably cotransfection was performed at a ratio of 1: 120. Therefore, few copies of the resistance vector are required to provide resistance to transfected cells when the process of the present invention is employed.
  • transfected cells selected for being hygromycin resistant due to the presence of at least one copy of the pX343 vector, have the advantage of containing a much larger amount of the construct of interest and, consequently, a high expression of the reCG protein. .
  • eCG is a complex molecule, presenting around 45% of its molecular mass consisting of post-translational modifications (glycosylation), it is necessary to use a robust expression system that allows the production of an eCG. recombinant as similar as possible compared to wild-type eCG.
  • the heterologous expression system according to the present invention was chosen for the production of reCG because it allows the correct processing of newly synthesized polypeptide chains, the folding and assembly of their ⁇ and ⁇ subunits, and the addition of glycosylated type chains. complex, which is crucial for the recombinant eCG produced to have biological activity.
  • the cells used for reCG expression are mammalian lineage cells or insect cells, or any cell line that has a gene expression profile determined for glycosylation pathway enzyme transcripts. Therefore, any other cell line capable of adding post-translational modifications similar to that obtained for the reCG profile defined for the present invention, with the majority presence of peaks corresponding to di- or tri-galactosylated N-glycans being subsequently mono -, di- or tri-sialylated added by the enzymes UDP-
  • GlnNAc-2-epimerase CMP-SA-synthetase, CMP-SA-transporter, ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 3 (ST3-GalTIII), ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 4 (ST3-GalTIV), ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 6 (ST3-GalTVI), Sialidase I, Sialidase II, and have the same behavior when cultured in vitro, such as replication capacity, protein expression capacity, simple transfectability, among others, it can be used.
  • mammalian lineage cells were chosen; more preferably, cells of, or derived from, the CHO lineage. Even more preferably, is used to CHO-DG44 cells-DHFR line v ⁇
  • other cell types such as CHO lineage cells, BHK, 293, Vero or derivatives thereof, are suitable for the invention and can replace the CHO-DG44-DHFR v .
  • the selection step of resistant transfected cells was performed by treating the transfected cells with the antibiotic to which they should be resistant for two weeks.
  • CHO-DG44 cells according to the invention were treated with between 10 ⁇ g / ml to 2,000 ⁇ g / ml hygromycin B (Life Technologies TM).
  • surviving cells were treated with increasing concentrations of DHFR inhibitors in nucleoside-free culture for plasmid gene amplification and selection of reCG overproducing cells.
  • DHFR inhibitors are known in the prior art and may be suitable for use in the invention.
  • the DHFR inhibitor suitable for the invention is Methotrexate (MTX).
  • Cells deficient in DHFR enzyme production such as CHO-DG44 DHFR - / - cells, preferably used in the present invention, are suitable as they cannot survive when cultured in the absence of nucleosides, as this enzyme catalyzes the reduction of dihydrofolate to tetrahydrofolate.
  • these cells are transfected with constructs obtained from the vector of the invention, which has the gene sequence corresponding to the DHFR enzyme, they become capable of growth in the absence of nucleosides.
  • ReCG overproducing cells can be grown in monolayer production batches or in suspension. Different reservoirs can be employed, such as different size culture bottles, plates, T-bottles, spinners, disposable culture bags, and other types of bioreactors with round blades or propellers, among other configurations.
  • the culture media employed may vary as long as they are able to meet the metabolic needs of cells.
  • reCG overproducing cells may be cultured in the presence or absence of fetal bovine serum (FCS).
  • FCS fetal bovine serum
  • the proportion of fetal bovine serum may be adapted according to culture conditions to maintain cell viability and protein expression levels (from 1 to 100 mg / ml) within the same order of magnitude as the original standard.
  • the cells of the invention are cultured in medium containing about 2 to 10% FCS. More preferably, the cells of the invention are cultured in medium containing 7% FCS.
  • FCS substitutes such as peptide factors of cell growth and proliferation of various types, albumin, insulin, among others; or fetal or adult serum of other species, and supplemented with precursors used in the glycosylation pathways, are also suitable for use in reCG production. Cultivation should occur under defined environmental conditions such as cultivation temperature between 25 and 40 ° C, relative proportion of CO 2 between 1 and 10%, and pH between 5.0 and 8.0.
  • the rotation employed may vary between 10 and 200 rpm.
  • the product obtained can be partially purified using known protein purification techniques, and the conditioned culture media containing collected reCG are subjected to at least one of the following techniques: precipitation of proteins using solvents such as ammonium sulfate; ultrafiltration; tangential filtration; or to two distinct types of chromatography, ion exchange chromatography and affinity chromatography.
  • a recombinant equine chorionic gonadotropin produced from the process of the present invention.
  • the recombinant equine chorionic gonadotropin of the invention is produced through industrial scale biotechnological mechanisms offering an alternative option to those obtained from equine plasma and involving bioethical factors.
  • the reCG of the invention will not address the problems encountered in the prior art related to source source shortage, and advantageously constitute a new uninterrupted supply of reCG supply.
  • the present invention relates to a veterinary composition
  • a veterinary composition comprising:
  • composition of the present invention may comprise, in addition to the invention's recCG, adjuvants, preservatives, diluents, emulsifiers, stabilizers and other pharmacologically acceptable ingredients which are employed in preparations of animal gonadotropins.
  • the present invention relates to the use (a) of reCG or (b) of the veterinary composition of the invention, comprising said reCG, in the manufacture of a medicament for the treatment of reproductive and ovulation-related veterinary conditions. of mammalian animals as an optimizing agent for in vitro fertilization; in the manufacture of kits for diagnosis of veterinary conditions and protocols related to mammal ovulation; and in the manufacture of cell culture supplement.
  • nanospectrophotometer ND-1000 Spectrophotometer, NanoDrop Technologies Inc., Wilmington, USA
  • Example 2 Amplification of the coding chains for eCG ⁇ and 3 from this cDNA library by PCR
  • Primers used for cDNA sequence amplification were designed based on the complete coding sequences of each of the two eCG subunits contained in the NCBI database (http://www.ncbi.nlm.nih.gov). ; National Center for Biotechnology Information, US NLM - US National Library of Medicine, Bethesda, USA (NM_access number a: 001099763.1, ⁇ : 001490342.2) and synthesized by Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, USA TM / Thermo Fisher Scientific Inc.
  • the lyophilized primers were reconstituted in 10mM Tris-CI buffer (pH 8.0) to generate a 100 ⁇ stock solution and 10 ⁇ usage solutions.
  • the sequences of the primers used in amplifying these strands and their intermediates obtained in the Genetic Engineering steps are broken down in Table 1.
  • Table 1 Primer sequences for amplification of reCGa and reCG coding sequences and genetic engineering for generation of the eCG fused sequence.
  • Total cDNA from equine pituitary tissue was used for amplification of the coding sequences of both eCG subunits.
  • a single chain coding for both eCG subunits has been created (JABLONKA-SHARIFF et al., Expression and bioactivity of a single chain recombinant equine luteinizing hormone (reLH). Theriogenology. 2007 Jan 15; 67 (2): 31 1 -20 ) so that the subunits would be fused.
  • Primers (1) and (2) were used to amplify the eCGp coding sequence without the stop codon and the eCGa coding sequence was amplified without the signal peptide using primes (3) and (4).
  • PCR polymerase chain reactions
  • Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, USA High Fidelity Platinum Taq DNA Polymerase enzyme
  • the reaction was conducted under the following conditions: 94 Q C for 1 minute; 35 cycles of: 94 C for 30 seconds Q 55 Q C (AECG) or 58 C Q (eCGP) for 30 seconds and 68 Q C for 1 min; Q final extension at 68 C for 2 min.
  • Amplicons were detected by 2.0% agarose gels, stained with ⁇ g / ml ethidium bromide, and the expected size product was isolated with scalpel and purified by GFX DNA and Band Purification Kit. (GE Healtcare, Carlsbad, CA, USA) according to manufacturer's recommendations.
  • Example 3 Obtaining a fused cDNA strand containing both eCG (eCG3a) coding sequences
  • the first PCR reaction step ( Figure 1A) adds restriction sites at the end of the eCGa sequence (A / oIL) using primers (3) and (5) and at the beginning of the eCGp sequence (EcoRI). using primers (2) and (6).
  • PCR reactions were performed using the Long Range enzyme (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, USA), where 1 X High Fidelity PCR Buffer buffer (1 X High Fidelity PCR Buffer (1 ⁇ g) of plasmid preparations containing the eCGp or eCGa sequences was added.
  • Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, USA 0.2mM dNTPs (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, USA), 2mM MgSO 4 (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, USA), 400nM Forward Primer (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, USA), 400nM Reverse Primer (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, USA), 1.0 U Enzyme DNA polymerase described above and deionized water to complete 50.0 ⁇ _ reaction volume.
  • the reaction was conducted under the following conditions: Q 94 C for 1 min; 35 cycles of: 94 C for 30 seconds Q 55 Q C (AECG) or 58 C Q (eCGP) for 30 seconds and 68 Q C for 1 min; Q final extension at 68 C for 2 min.
  • the products obtained were fractionated on agarose gel and then, in a procedure similar to that described in the paragraph above, purified from agarose gel to serve as a template in the next step of mutagenic reactions.
  • the third step of mutagenic PCRs aimed to join the two previously mutated strands into a single chain, eCGp.
  • the templates purified from the previous step were added in a PCR reaction performed with primers (5) and (6) and the same reagents and concentrations described under the following conditions: 94 Q C for 1 minute; Q 35 cycles of 94 C for 30 seconds, 65 C for 30 seconds Q 68 and Q is C 1 minute; final extension at 68 Q C for 2 minutes.
  • Amplicons were detected by ethidium bromide-stained 2.0% agarose gels, and the expected size product was isolated with a scalpel and purified by the GFX PCR DNA and Gel Band Purification Kit (GE Healthcare, Carlsbad, CA, USA).
  • sequences of interest were checked on the bacterial clones by automated sequencing (BigDye Sequencing Kit, Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, USA, on the ABI3700 I377 sequencer (Perkin Élmer)). Sequences obtained from sequencing were analyzed and aligned using the PhredPhrap programs (EWING, HILLIER et al., Base-calling of automated sequencer traces using Phred I. Accuracy assessment. Genome Res. 1998 Mar; 8 (3): 175-85) and BLAST
  • Bacterial clones were then expanded in LB medium lysogenic (Becton, Dickinson and Company) and stored at -80 Q C in freezing medium with 15% glycerol.
  • Plasmid pGEM ® -eCG was isolated from the bacterial clone selected by the GeneJET Plasmid Miniprep Kit (Thermo Fisher Scientific Inc, Waltham, USA), digested with restriction enzymes EcoH ⁇ and Not ⁇ (Thermo Fisher Scientific Inc. ). The digested insert was purified from the agarose gel and then subcloned into a plasmid vector specially constructed by our group called pNU0.
  • T4 DNA Ligase New England Biolabs ® Inc.
  • the reaction took place at 16 C for 18h and Q gave the pNU0-called vector eCGp.
  • CHO-DG44-DHFR v cells from Chinese Hamster Ovary CHO-DG44-DHFR v" were purchased as a donation and grown in HamF12 medium (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, USA TM) supplemented with 10% (v / v) FCS (Vitrocell Embriolife, Campinas, Brazil) in adherent culture.
  • the cells were always incubated in humid atmosphere at 37 Q C and 2% CO 2/98% air and maintained in T-flasks or culture plates treated, suitable for adherent cell culture (Thermo Fisher Scientific Inc.; Becton, Dickinson and Company; Corning Inc., Corning, USA; or TPP Techno Plastic Products, Trasadingen, Switzerland) .
  • the culture medium was changed every two to three days. When they reached a confluence greater than or equal to 80%, the cells were subcultured, washed with PBSA, followed by the addition of 0.1% trypsin solution and inactivation with culture medium containing FCS. freezing in culture medium supplemented with 10% DMSO (Sigma-A ldrich Co., St. Louis, MO, USA) and storage in liquid nitrogen.
  • CHO-DG44 cells grown in 60 mm diameter (P60) plates were cotransfected with the pNUO-eCGp construct and with the selection vector pX343, which confers resistance to the hygromycin B antibiotic, using a DNA mass ratio of 120: 1 ⁇ g of the plasmid of interest to 66.7ng of the hygromycin resistance plasmid), as previously described (ARMELIN et al., Functional role for mycogenesis in mitogenic response to platelet-derived growth factor (Nature, 1984 Aug 23-29; 310 (5979): 655-60).
  • Plasmids were first mixed with 16 ⁇ _ of the FuGENE HD Transfection Reagent (Hoffmann-La Roche Ltd.) transfection reagent in culture medium in the absence of FCS for formation of DNA-liposome complexes. The cells were incubated with the complexes and the culture medium was changed after 24h.
  • FuGENE HD Transfection Reagent Hoffmann-La Roche Ltd.
  • CHO-DG44 cells 48h after transfection, CHO-DG44 cells were treated with 200 g / ml hygromycin B (Life TehnologiesTM) for selection of resistant cells in the transfected population for two weeks until selection of a subunit. -resistant population.
  • the cell surviving hygromycin treatment must have integrated at least one copy of the resistance plasmid (in this case, pX343), so it must have a much larger copy number of the plasmid of interest (pNU0) -eCGpcc.
  • Example 7 Chemical amplification of the pNU-0-eCG3 construct in CHO-DG44 cells by treatment with increasing methotrexate (MTX) doses
  • Example 8 Analysis of reCG expression in specific ELISA conditioned culture media
  • Figure 3 shows in its abscissa the values for CHO-DG44 cell populations overexpressing reCG which are resistant to increasing doses of methotrexate (MTX); and in its order the values related to the concentration of reCG (Uls / mL) present in the conditioned culture medium during 48h for each cell population.
  • MTX methotrexate
  • the CHO-DG44 population with the highest reCG expression was subjected to a reCG expression dynamic in which 10 6 cells of these cells were plated in trays B6, as described in the previous procedure, for 10 additional passages, with addition of culture medium containing or not FCS (fetal bovine serum).
  • Conditioned media were collected 24, 48 and 72h after exchange, diluted (1: 10, 1: 25 and 1: 50) and subjected to PMSG ELISA in exactly the same manner as in the previous procedure.
  • the level of reCG expression over time was again determined by a 4-parameter logistic analysis performed by GraphPad Prism 5.0 software.
  • Figure 4 illustrates the kinetics of reCG expression by the CHO 2.5 ⁇ population after growth adaptation in the absence of MTX over three days in the presence or absence of fetal bovine serum.
  • the graph shows in its abscissa the values relative to the points (24h, 48h or 72h) of determination of the concentration of reCG present in the conditioned medium, with or without FCS (fetal calf serum) and in its order the values related to the concentration of reCG ( Uls / ml_) present in the conditioned culture medium 48h for each condition, with FCS (fetal calf serum) being the conditioned culture medium in the presence of fetal bovine serum, and SFM (serum free media) the conditioned culture medium in the absence of dFCS.
  • FCS fetal calf serum
  • SFM serum free media
  • FCS condition presented higher reCG expression that could be determined by ELISA.
  • Example 9 In vitro Biological Activity Assays Using Responsive Cell Line MLTC-1
  • the MLTC-1 Mae Leydig Tumoral Celi - ATCC-CRL2065 cell line obtained from ATCC ® , which overexpresses gonadotropin receptors (hCG and hFSH), and a protocol adapted from LEGARDINIER et al. (LEGARDINIER et al., Involvement of equine chorionic gonadotropin (eCG) carbohydrate side chains in its bioactivity; lessons from recombinant hormone expressed in insect cells. Reprod Nutr Dev. 2005 May-Jun; 45 (3): 255-9).
  • This cell responds to eCG treatment by producing and secreting progesterone in a dose-dependent manner.
  • In vitro biological activity was determined by the amount of progesterone contained in the samples, which was measured by the high performance chromatography technique performed by the company Nanocore Biotecnologia S / A. Two independent experiments were performed for each sample. The two-way ANOVA variance test was used, with post-Hoc Bonferroni analysis, and the analysis was performed using GraphPad Prism version 5.0 software. The in vitro biological activity obtained for each condition tested can be seen in Figure 5.
  • Figure 5 illustrates the in vitro biological activity of eCG assessed from the progesterone response secreted by MLTC-1 cells following treatment with increasing doses of Folligon or reCG of the present invention produced in the presence (A) or absence (B). of fetal bovine serum.
  • the abscissa axis shows the values for the treatments performed, which consisted of increasing doses (0.25 IU, 0.5 IU, 1 IU, 2 IU and 4 IU) of reCG of the present invention or Folligon; and the ordinate axis shows the values for progesterone concentration (ng / mL) secreted in the culture medium conditioned by MLTC-1 cells.
  • Example 10 In vivo biological activity assays using Cole & Erwav assay
  • the animals were divided into negative control groups (receiving PBSA or culture media conditioned by non-reCGpa producing cells), positive control group (receiving Folligon ® ) and experimental groups, the latter containing FCS conditions (media reCG overproducing cell conditioned culture media of the present invention containing 7% dFCS) or SFM (reCGp overproducing cell conditioned culture media in the absence of FCS).
  • negative control groups receiving PBSA or culture media conditioned by non-reCGpa producing cells
  • positive control group receiving Folligon ®
  • experimental groups the latter containing FCS conditions (media reCG overproducing cell conditioned culture media of the present invention containing 7% dFCS) or SFM (reCGp overproducing cell conditioned culture media in the absence of FCS).
  • Each experimental group as well as the positive control, comprises five points (2.5Uls; 5.0UIS; 10UIs; 20Uls and 40Uls) with five animals. The experiment was repeated three times. Each animal received a single 200 ⁇ _ dose via subcutaneous injection of a filtered preparation through 0.22 ⁇ pore filters containing any of the treatments described above.
  • Figure 6 illustrates the in vivo biological activity assessed from the uterine response of prepubertal rats from 23 to 25 days following treatment with increasing doses of Folligon or reCG of the present invention produced in the absence of fetal bovine serum.
  • the increase in uterine weight of treated animals was evaluated consisting of a direct response of the animals to the stimulus.
  • the values for the treatments performed which consisted of increasing doses (2.5 IU, 5 IU, 10 IU, 20 IU and 40 IU) of reCG of the present invention or Folligon, as well as the negative controls PBSA (phosphate buffered saline without Ca 2+).
  • Step 11 Purification of reCG of the present invention by chromatography
  • the column was equilibrated with 3VC Buffer A (500mM NaCl, 20mM Tris-HCl, 1mM MgC, 1mM CaC, pH 7.4). Then 50 VC of conditioned medium containing reCGpa diluted 2X in dilution buffer (890mM NaCl, 40mM Tris-HCl, 2mM MgCl 2 , 0.2mM CaCl 2 , pH 7.4) filtered through 0 pore filters, 45 ⁇ were applied to the column followed by washing the column (5 VC) with buffer A.
  • 3VC Buffer A 500mM NaCl, 20mM Tris-HCl, 1mM MgC, 1mM CaC, pH 7.4
  • 50 VC of conditioned medium containing reCGpa diluted 2X in dilution buffer 890mM NaCl, 40mM Tris-HCl, 2mM MgCl 2 , 0.2mM CaCl 2 , pH 7.4 filtered through 0
  • a linear concentration gradient of methyl- ⁇ D-glucopyranoside (Sigma-Aldrich ® ) was applied starting at 20 mM and ending at 300 mM (diluted in buffer A) over a range of 8 VC.
  • the fractions of permeate were collected and washed, and fractions of the eluates, and kept at 4 Q C.
  • the column was equilibrated with 3 CV of Buffer A (10 mM NaCl, 100 mM Sodium Acetate, pH 4.5). Then 20VC of conditioned media containing reCGpa 10X were diluted in buffer A, filtered through 0.45 ⁇ filters and applied to the column, followed by column washing (5 VC) with buffer A. For elution, different isocratic regimes of buffer B (1 M NaCl, 100mM Acetate Sodium, pH 4.5) were applied: 0-1 1 mM NaCl; 1 1 -19mM NaCl; 19-40mM NaCI and terminated in 1 M NaCI over a 12 VC range. The fractions of permeate were collected and washed, and fractions of the eluates, were adjusted to pH 7.4 and kept at 4 Q C.
  • Buffer A 10 mM NaCl, 100 mM Sodium Acetate, pH 4.5.
  • 20VC of conditioned media containing reCGpa 10X were diluted in buffer A, filtered
  • fractions, permeate, washes and eluates were diluted and subjected to reCGpa detection by ELISA (PMSG ELISA Kit, ALPCO) following the manufacturer's protocol.
  • the active fractions were concentrated using 10kDa cut filters (CentriconTM - Millipore ® ) and used for the following analyzes: analysis of the purification process on polyacrylamide gels using Coomassie Brilliant Blue dye and in vivo assay ( Figure 8).
  • Figure 8 illustrates the in vivo biological activity of the reCG of the invention partially purified by the HiTrap TM Con A column from the uterine response of prepubertal rats 25 days after Folligon or reCG treatment produced in the absence of fetal serum. partially purified by the HiTrap TM Con A. column.
  • the abscissa axis shows the values for the treatments performed, which consisted of doses (5, 10, 20 and 40 Ul) of the Folligon or reCG positive control of the invention produced by CHO cells.
  • -DG44 is partially purified, and the negative control PBSA; the ordinate axis shows the weight (mg) values of the dissected reproductive organs on the fourth day after treatment.
  • Example 12 NP-HPLC study of NP-HPLC of 2-AB-labeled N-cyclicans and exo-glycosidase digestion
  • the reCGp-enriched fractions obtained in Example 11 were concentrated around 100X using the 10kDa Centricon shear (Millipore ® ) and applied to SDS-PAGE gels as described in Example 11. Samples of 20Uls of Folligon and 20Uls of the international eCG standard were also applied to SDS-PAGE gels to perform the Proposed comparison. The gels containing the samples to be analyzed were stained by Comassie Blue (1.25g of Coomassie R-250 Brilliant Blue diluted in 250ml of methanol, 50ml of glacial acetic acid and 200ml of distilled water) for 16h.
  • Comassie Blue (1.25g of Coomassie R-250 Brilliant Blue diluted in 250ml of methanol, 50ml of glacial acetic acid and 200ml of distilled water
  • the protocol consists of releasing glycans with a gel digestion performed with PNGaseF and labeling them with 2-aminobenzene (Glyko Signal 2-AB labeling kit, Prozyme ® ). These labeled glycan samples were then applied to an amide column (Waters X-Bridge 3.5a 4.6 X 250mm amide column) coupled to a pump (Waters Binary pump 1525u) and subjected to normal phase chromatography using the system. Waters 2475, being detected by a fluorescence detector (Waters multi wavelength fluorescent detector, excitation at 330nm and emission at 420nm).
  • Table 2 - NP-HPLC program used to analyze recombinant eCGp glycans of the invention and commercial eCG.
  • Buffer A 50mM Ammonium Formate, pH 4.4.
  • Buffer B Acetonitrile. Column volume: 1 ml.
  • Sialidase (Glyko Sialidase A TM-A. Urefaciens - Prozyme);
  • FIG. 9 shows the putative structures selected for each peak after comparison with the pattern of digestion performed with exoglycosities.
  • GU glucose units
  • EU eluted peak intensities
  • panel A In panel A are undigested structures, and in panels B, C and D are structures obtained after digestion with sialidase, sialidase + galactosity + fucosidase and sialidase + galactosidase + fucosidase + hexosaminidase, respectively.
  • Figure 10 shows the putative structures of N -glycans obtained in reCG-enriched fractions of the invention.
  • On the abscissa axis are the relative values of glucose units (GU) obtained for each chromatography, while on the ordinate axis are the eluted peak intensities (EU).
  • Arrows indicate possible N-glycan structures attributed to each peak obtained for reCG expressed in the CHO-DG44 strain.
  • Figure 11 shows the gene expression results obtained for the transcripts corresponding to glycosylation pathway enzymes in control cells (non-eCG-producing CHO cells, called Crtl) and eCG-producing cells (called eCG), both. cultured in the presence of fetal bovine serum (FCS) or in its absence (SFM - serum free medium). Gene expression was analyzed by quantitative real-time PCR (Polymerase Chain Reactiori) (qRT-PCR) using the GAPDH (Glyceraldehyde-3-Phosphate Dehydrogenase) gene as a normalizer.
  • FCS fetal bovine serum
  • SFM serum free medium
  • the targets analyzed were: UDP-GlnNAc-2-epimerase, CMP-AS-synthetase, CMP-SA-transporter, ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 3 (ST3-GalTIII), ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3-sialyltransferase 4 (ST3-GalTIV), ⁇ -galactosidase ⁇ 2,3- sialyltransferase 6 (ST3-GalTVI), Sialidase I, Sialidase II.
  • Animals in the groups treated with formulations CB050, prepared by concentrating the protein contained in the cell culture supernatant by ultrafiltration, lactose concentrate formulation, mannitol and methylparaben; and lyophilization, and Positive Control received a single dose of 300 IU / animal intramuscularly 8 days after initiation of the ovulation synchronization protocol. While animals in the Negative Control group received a single dose of 1.5ml of sterile saline.
  • Table 3 Clinical study of reCG of the invention in anestrus Nellore cows.

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Abstract

A presente invenção se refere à produção de uma gonadotrofina coriônica equina recombinante (reCG), à uma composição veterinária compreendendo a reCG, e ao uso da reCG ou da composição compreendendo reCG. A reCG da presente invenção possui perfil de glicosilação semelhante àquele das gonadotrofinas coriônicas comercialmente disponíveis e exibe nível de atividade in vivo correspondente ao eCG e semelhante ao dos hormônios FSH e LH. A presente invenção tem aplicação no campo da biotecnologia, mais especificamente, no campo de reprodução assistida veterinária, sendo especialmente adequada para ser utilizada para o tratamento de condições veterinárias relacionadas à reprodução e à ovulação de mamíferos, para a fabricação de kits de diagnóstico ou como suplemento para o cultivo de células.

Description

"PROCESSO DE PRODUÇÃO DE UMA GONADOTROFINA CORIÔNICA EQUINA RECOMBINANTE (reCG): COMPOSIÇÃO VETERINÁRIA E USO"
Campo Técnico
[0001] A presente invenção se refere ao processo de produção da gonadotrofina coriônica equina recombinante, aqui referidas como reCG ou reCG , à reCG produzida através do processo da presente invenção, a uma composição veterinária compreendendo a reCG, e ao uso da reCG ou da composição compreendendo reCG.
[0002]A reCG produzida apresenta perfil de glicosilação semelhante ao das gonadotrofinas coriônicas comercialmente disponíveis e exibe nível de atividade in vivo semelhante ao do hormônio luteinizante (LH, acrónimo em inglês para Luteinizing Hormone) e hormônio folículo-estimulante (FSH, acrónimo em inglês para Follicle Stimulating Hormone).
[0003]A presente invenção tem aplicação no campo da biotecnologia, mais especificamente, no campo de reprodução assistida veterinária, sendo especialmente adequada para ser utilizada no tratamento de condições veterinárias relacionadas à reprodução e à ovulação de mamíferos, para a fabricação de kits de diagnóstico ou como suplemento para o cultivo de células.
Histórico da Invenção
[0004]Atualmente, o Brasil encontra-se na privilegiada posição de maior produtor e exportador mundial de carne bovina, tornando a pecuária uma das atividades económicas nacionais mais importantes e rentáveis. Este dado enfatiza a importância da pesquisa básica e tecnológica em reprodução bovina, especialmente na área de hormônios estimuladores da ovulação, tais como a gonadotrofina coriônica equina (eCG).
[0005] Diversos hormônios são utilizados em técnicas de reprodução assistida veterinária e, nos últimos anos, a gonadotrofina coriônica equina desponta como primeira opção na indução da ovulação em vacas em anestro gestacional, nos protocolos de Inseminação Artificial em Tempo Fixo (IATF), visando melhorar os índices de fertilidade de fêmeas bovinas criadas em regime extensivo (SÁ FILHO et al., Equine chorionic gonadotropin and gonadotropin-releasing hormone enance fertility in a norgestomet-based, timed artifical insemination protocol in sucked Nelore (Bos Indicus) cows. Theriogenology 2010; 73(5):651 -8; FERREIRA eí a/.,Effect of different doses of equine chorionic gonadotropin on follicular and lutteal dynamics and P/Al of high-producing Holstein cows. Anim Reprod Sei 2013; 140(1 -2) 26-33; CARVALHO eí al. Equine chorionic gonadotropin improves the efficacy of a timed artificial insemination protocol in buffalo during the nonbreeding season. Theriogenology 2013;79(3):423-8; BARREIROS eí al., Dynamics of follicular growth and progesterone concentrations in cyclic and anestrous suckling Nelore cows (Bos indicus) treated with progesterone, equine chorionic gonadotropin, or temporary calf removal. Theriogenology 2014; 81 (5):651 -6).
[0006]A eCG é especialmente utilizada em vacas de corte criadas em manejo extensivo e vem sendo utilizada, também, em tratamentos superovulatórios de vacas e novilhas como uma opção eficaz de tratamento em animais irascíveis (MAPLETOFT et al., Recent advances in the superovulation in cattle. Reprod Nutr Dev 2002; 42(6):601 -1 1 ), visto que os tratamentos hormonais convencionais em bovinocultura adotam a utilização de oito doses de preparações comerciais purificadas do FSH porcino - Folltropin-V®, Bioniche® (dados obtidos na bula do produto).
[0007]A eCG é secretada pelo útero equino, mais especificamente pelos cálices endometriais, que são formados ao redor do quadragésimo dia de gestação, permanecendo até ao redor do octogésimo quinto dia. A secreção deste hormônio, que possui ação biológica semelhante tanto ao FSH quanto ao LH, estimula o desenvolvimento de folículos ovarianos na égua gestante. Alguns destes folículos ovulam, mas a maioria transforma-se em folículos luteinizados devido à ação semelhante ao LH. Tais corpos lúteos acessórios produzem a progesterona necessária para manter a prenhez na égua (HAFEZ E HAFEZ, Reprodução Animal. Editora Manole 2004; volume único).
[0008]A eCG utilizada atualmente para reprodução animal é purificada a partir de plasma de éguas gestantes (CHRISTAKOS E BAHL,Pregnant mare serum gonadotropin. Purification and physicochemical, biological, and immunological characterization. J Biol Chem 1979; 254(10):4253-61 ; MAPLETOFT et al., Recent advances in the superovulation in cattle. Reprod Nutr Dev 2002; 42(6):601 -1 1 ), sendo comercializada como Folligon (Intervet); SincroeCG (Ourofino) e Novormon (Coopers), não existindo uma eCG recombinante comercialmente disponível.
[0009] Esta gonadotrofina única possui a capacidade de, em espécies heterólogas, ligar-se aos receptores tanto de FSH quanto de LH, e provocar o estímulo da foliculogênese (STEWART et al., Pregnant mare serum gonadotrophin: ratio of follicle-stimulating hormone and luteinizing hormone activities measured by radioreceptor assay. J Endocrinol 1976; 71 (3):471 -82; COMBARNOUS, Original hypothesis on the specificity of the binding of glycoprotein hormones to their receptors. C R Seances Acad Sci III 1981 ). Sua prolongada meia-vida plasmática, decorrente de sua alta quantidade de açúcares (MCINTOSH et al., Pregnant mare serum gonadotrophin: rate of clearance from the circulation of sheep. J Reprod Fértil 1975; 44(1 ):95-100), permite que uma única aplicação deste hormônio seja eficiente para induzir ovulação, poupando, deste modo, o tempo gasto com manejo, e, ainda, diminuindo possíveis estresses dos animais submetidos ao tratamento superovulatório (KIMURA et al., Successful superovulation of cattle by a single administration of FSH in aluminum hydroxide gel. Theriogenology 2007; 68(4):633-9).
[0010] Além da extração de gonadotrofinas ser uma tarefa laboriosa e dispendiosa, a falta de biossegurança do material resultante é bastante preocupante, visto que qualquer tentativa de purificação que preserve os hormônios glicoproteicos demonstra uma limitada capacidade de destruição de vírus resistentes (THARASANIT et al., Effects of recombinant human follicle stimulating hormone on follicle development and ovulation in the mare. Theriogenology 2006; 65(6):1071 -81 ). Além disso, pelo fato de ser um extrato biológico, existe uma grande variabilidade na atividade da glicoproteína entre os lotes de eCG, contribuindo, desta maneira, para a variabilidade na resposta e na qualidade dos embriões obtidos (WILSON et al., Superovulation of cattle with a recombinant-DNA bovine follicle stimulating hormone. Animal Reproduction Science 1993;33(1 -4):71 -82).
[0011]Considerando-se o que foi exposto acima, e tomando-se em consideração o fato de que a fonte de origem da eCG é limitada (sangue de éguas prenhes), e, ainda, que existem fatores bioéticos relacionados à obtenção deste material, procura-se uma fonte de eCG que seja ilimitada, ética, e de obtenção mais prática e reprodutível, assegurando o fornecimento ininterrupto a um mercado consumidor crescente deste hormônio.
[0012] As gonadotrofinas recombinantes apresentam máxima biossegurança, melhor performance nos resultados, nenhuma interferência de outros hormônios e poucos contaminantes, sendo, desta maneira, usadas amplamente na Medicina Reprodutiva humana, representando grande interesse para a reprodução assistida veterinária. A tecnologia recombinante provou ser possível a produção de proteínas complexas de modo reprodutível. No entanto, a estrutura das gonadotrofinas é de difícil reprodução, pois, além da presença de várias modificações pós-traducionais, as gonadotrofinas são compostas por duas cadeias transcritas e traduzidas de maneira independente, as quais são combinadas subsequentemente (LOUMAGEL et al., Human follicle-stimulating hormone produced by recombinant DNA technology: a rewiew for clinicians. Human Reproduction 1995; v. 1 p. 188-199).
[0013]O processo da presente invenção também pode ser aplicado a outras formas de eCG que não são fusionadas, como, por exemplo, as cadeias expressas separadamente, ou alterações da proteína para aumentar o tempo circulante da molécula, como, por exemplo, modificações como PEGIação.
[0014] A subunidade α da eCG, composta de 96 aminoácidos, exibe duas complexas cadeias oligossacarídicas N-ligadas, localizadas nos resíduos das asparaginas 56 e 82. Entretanto, as cadeias de carboidratos dos dois hormônios exibem diferenças em suas estruturas: a subunidade do el_H possui dois N-glicanos biantenários finalizados em N-acetilgalactosaminas sulfatadas (SO4-4-GalNAc), enquanto que os N-glicanos anexados à subunidade α da eCG são finalizados em ácido siálico nas ligações a2,3 e a2,6 (DAMM et al., Structure determination of the major N- and O-linked carbohydrate chains of the beta subunit from equine chorionic gonadotropin. Eur J Biochem. 1990 Apr 20;189(1 ):175-83.), possivelmente estendido com repetições de lactosamina (BOUSFIELD et al., Differential effects of alpha subunit Asparagine56 oligosaccharide structure on equine lutropin and follitropin hybrid conformation and receptor-binding activity. Biochemistry. 2004 Aug 24;43(33):10817-33). A subunidade β da eCG, composta de 149 resíduos de aminoácidos (SUGINO et al., Structural studies on equine glycoprotein hormones. Amino acid sequence of equine chorionic gonadotropin beta-subunit. J Biol Chem. 1987 Jun 25;262(18):8603-9), possui uma única cadeia de N-glicano localizada na Asn13, terminando com GaINAc sulfatada em el_H e a2,3Gal sializada em eCG (SMITH et al., Equine lutropin and chorionic gonadotropin bear oligosaccharides terminating with SO4-4-GalNAc and Sia alpha 2,3Gal, respectively. J Biol Chem. 1993 Jan 15;268(2):795-802; MATSUI et al., Structural analysis of N-linked oligosaccharides of equine chorionic gonadotropin and lutropin beta-subunits. Biochemistry. 1994 Nov 29;33(47):14039-48). Ambas subunidades β possuem até 12 O-glicanos estendidos com poli N-acetil-lactosamina sializada (a2,3) localizados nas serinas ou treoninas do carboxi-peptídeo terminal (CTP) de 28 resíduos de aminoácidos (HOKKE et al., Structure determination of the disialylated poly-(N- acetyllactosamine)-containing O-linked carbohydrate chains of equine chorionic gonadotropin. Glycoconj J. 1994 Feb;1 1 (1 ):35-41 ; BOUSFIELD et al., Identification of twelve O-glycosylation sites in equine chorionic gonadotropin beta and equine luteinizing hormone ss by solid-phase Edman degradation. Biol Reprod. 2001 Jan;64(1 ):136-47.). Como o el_H e a eCG possuem cadeias polipeptídicas idênticas, a diferença entre a estrutura dos N- e O-glicanos explica a diferença entre os pesos moleculares e a atividade biológica destes dois hormônios: eCG apresenta uma excepcional meia-vida circulatória em comparação ao el_H (BOUSFIELD et al., Identification of twelve O-glycosylation sites in equine chorionic gonadotropin beta and equine luteinizing hormone ss by solid-phase Edman degradation. Biol Reprod. 2001 Jan;64(1 ):136-47). A remoção dos resíduos terminais de ácido siálico das cadeias de glicanos da eCG diminui dramaticamente a atividade in vivo desta glicoproteína, visto que sua meia-vida é reduzida de seis dias para aproximadamente 1 -2 horas (MARTINUK et al., Effects of carbohydrates on the pharmacokinetics and biological activity of equine chorionic gonadotropin in vivo. Biol Reprod. 1991 Oct;45(4):598-604).
[0015] Na literatura, diversos autores tentaram obter a gonadotrofina coriônica equina recombinante, sendo que esta foi clonada e expressa em células de inseto (LEGARDINIER et al., Biological activities of recombinant equine luteinizing hormone/chorionic gonadotropin (eLH/CG) expressed in Sf9 and Mimic insect cell lines. Journal of Molecular Endocrinology 2005; 34:47-60); secretada em leite de coelhas transgênicas (GALET et al., Expression of an in vitro biologically active equine LH/CG without C-terminal peptide (CTP) and/or beta26-1 10 disulphide bridge. J Endocrinol, 2001 ; 167(1 ):1 17-24); expressa em células de camundongos (GALET et al., Expression of a single betaalpha chain protein of equine LH/CG in milk of transgenic rabbits and its biological activity. Mol Cell Endocrinol, 2001 ; 174(1 -2):31 -40); e modificada e expressa como formas desglicosiladas em células CHO (células de ovário de Hamster Chinês). Somente para os dois primeiros sistemas foram realizados ensaios de atividade biológica in vivo, resultando em nenhuma atividade, fato este decorrente da diferença nas cadeias de glicanos adicionados à eCG por estes sistemas de expressão.
[0016] Adicionalmente, o estado da técnica ensina métodos de produção de gonadotrofinas recombinantes, mas carece em propor uma maneira eficaz de se obter a reCG em grandes quantidades, e, ao mesmo tempo, com o perfil de glicosilação similar à eCG selvagem que garanta atividade in vivo da reCG similar àquela observada para a eCG selvagem.
[0017]HESSER (HESSER, A survey of heterologous expression systems for the production of bovine follicle stimulating hormone and luteinizing hormone. AM Dissertations 201 1 ; Paper 692) descreve a produção de gonadotrofinas, mais especificamente, de hormônios folículo-estimulante em células CHO.
[0018JFURUHASHI eí al. (FURUHASHI eí al., Fusing the carboxyterminal peptide of the chorionic gonadotropin (CG) betasubunit to the common alphasubunit:retention of Olinked glycosylation and enhanced in vivo bioactivity of chimeric human CG. Mol Endocrinol. 1995 Jan;9(1 ):5463) descreve um análogo de hCG com uma cauda polipeptídica do tipo CTP (acrónimo em inglês para Carboxy Terminal Peptide), e relaciona a importância da glicosilação para a atividade biológica do análogo.
[0019JSUGAHARA et al. (SUGAHARA et ai, Biosynthesis of a biological active single peptide chain containing the human common α and chorionic gonadotropin β subunits in tandem. Proc Natl Acad Sei USA 1995; 92:2041 - 2045) descreve a atividade biológica de uma cadeia polipeptídica única com atividade biológica, contendo uma subunidade β da hCG fusionada a uma subunidade α das gonadotrofinas.
[0020] Posteriormente, SUGAHARA eí al. (SUGAHARA eí al., Expression of biological active fusion genes enconding the common alpha subunit and the follicle-stimulating hormone beta subunit: Role of a linker sequence. J Biol Chem 1996; 271 :10445-10448) descreveu a conversão de um heterodímero de FSH para uma estrutura de cadeia única, e o impacto da ausência da sequência ligante na taxa de secreção e de ligação da dita proteína. Ainda, mostra que o alinhamento dos domínios α e β diferem do apresentado na forma de heterodímero.
[0021] NARA YAN eí al. (NARA YAN eí al., Functional expression of yoked human chorionic gonadotropin in baculovirus-infected insect cells. Mol Endocrinol. 1995; 9(12):1720-6) descreve a expressão simultânea das subunidades α e β da eCG em células de insetos, cuja expressão é controlada por diferentes promotores, em um mesmo baculovirus recombinante, dando origem a proteínas que são biologicamente ativas in vitro.
[0022]SHIOTA eí al. (SHIOTA eí al., Production of recombinant eCG with potent FSH-like activity by site-directed mutagenesis. Nippon Yakurigaku Zasshi 1997; 1 10(1 ):59P-62P) descreve gonadotrofinas recombinantes com estruturas diferentes em vista dos oligossacarídeos acoplados, e relaciona a atividade biológica dos mutantes ou variantes.
[0023]O documento EP0974599 descreve uma variante da eCG recombinante e sua sequência de DNA correspondente, além de uma composição farmacêutica da dita eCG recombinante para utilização como droga veterinária. A forma variante da eCG recombinante revelada possui as cadeias α e β da eCG fusionadas em uma única cadeia polipeptídica, possuindo atividade do tipo FSH e LH in vitro. Os inventores sugerem a sua utilização como um medicamento para animais, mas não demonstram: a) a similaridade entre o perfil de glicosilação da forma recombinante obtida e aquele da forma selvagem; e b) a atividade biológica in vivo da forma da eCG recombinante obtida.
[0024]O documento US 5.767.251 descreve métodos para gerar gonadotrofinas humanas recombinantes, dentre as quais hCG, hl_H e hFSH, em que os hormônios compostos por duas subunidades diferentes são sintetizados na mesma célula por pelo menos um vetor de expressão, no qual a expressão de cada subunidade é controlada por um promotor diferente. Neste caso, a atividade biológica de hCG é facilmente diferenciada da atividade de LH, pois, diferentemente do que ocorre em equinos, em humanos, as cadeias β destas duas gonadotrofinas são codificadas por genes distintos.
[0025]O documento US 5.047.335 descreve um processo para controlar a glicosilação de proteínas recombinantes envolvendo a utilização de células da linhagem CHO geneticamente modificadas de modo a passarem a produzir sialiltransferases, uma classe de glicosiltransferases. Esta produção suplementar de sialiltransferases permite, por exemplo, que glicoproteínas recombinantes, produzidas nesta linhagem das células CHO modificadas geneticamente, possuam uma estrutura de glicanos mais próxima das glicoproteínas humanas naturais. Entretanto, o documento US 5.047.335 não descreve qual combinação de glicosiltransferases seria necessária para a obtenção da eCG recombinante com atividade biológica.
[0026]Os documentos US 6.103.501 , US 6.238.890 e US 6.987.172 descrevem variantes artificiais de cadeia única de gonadotrofinas que são naturalmente encontradas sob a forma de heterodímeros, como, por exemplo, CG, TSH, LH e FSH, e que podem fornecer efeitos ou funções, ou podem se comportar como agonistas ou antagonistas dos hormônios nativos. Também neste caso, a atividade biológica da CG humana é facilmente diferenciada da atividade do LH humano, pois, diferentemente do que ocorre em equinos, em humanos as cadeias β destas duas gonadotrofinas são codificadas por genes distintos. Adicionalmente, esses documentos não descrevem qual combinação de glicosiltransferases seria necessária para obtenção da eCG recombinante com atividade biológica.
[0027]O documento US 2010/120677 descreve métodos para a produção de análogos de eFSH recombinante biologicamente ativo e métodos para melhorar a reprodução em mamíferos com o uso de análogos de eFSH recombinante.
[0028]O documento CA 2183564 descreve métodos para aumentar a fertilidade através da redução da atividade ou dos níveis dos hormônios com atividade LH, e métodos para selecionar anticorpos para porções específicas de certas proteínas, incluindo LH e hCG, para reduzir a sua atividade biológica.
[0029]O estado da técnica citado acima mostra os constantes esforços direcionados para o desenvolvimento de novas gonadotrofinas recombinantes e de processos para produzi-las com segurança, qualidade e de forma ilimitada, enfatizando, ainda mais, a necessidade de novas soluções e a importância da Pesquisa & Desenvolvimento nesse campo de atuação.
[0030] Permanece, desta forma, a necessidade de aprimoramentos no processo de produção da eCG recombinante, de forma que esta seja produzida em grandes quantidades, e, ao mesmo tempo, possua o perfil de glicosilação necessário para sua atividade biológica in vivo. De maneira surpreendente, a Depositante verificou que é possível aliar alta produtividade da eCG recombinante e obtenção de um perfil de glicosilação similar àquele encontrado na eCG selvagem, garantindo, desta forma, que a eCG recombinante assim obtida possua atividades biológicas in vivo similares aos hormônios FSH e LH. Este efeito técnico é inesperado já que, até então, desconhecia-se qual sistema de expressão heterólogo baseado em células de mamífero seria capaz de promover as modificações pós-traducionais do tipo glicosilação N-ligada e O- ligada em grandes quantidades da eCG recombinante, necessárias para se diferenciar a atividade biológica da eCG daquela do el_H. Como discutido em detalhe acima, não é possível antecipar, com precisão, quais fatores estão associados à obtenção de tal perfil de glicosilação compatível com uma atividade do tipo eCG, destacando-se: 1 ) qual sistema de expressão heterólogo mimetizaria a combinação de enzimas e fatores encontrados nas células do cálice endometrial, que são as células que naturalmente produzem de forma específica o eCG; ou ainda 2) quais são as condições de geração de um sistema heterólogo e quais são as condições de cultivo do sistema heterólogo associadas com a obtenção de tal perfil de glicosilação, Assim, a partir deste conhecimento, na presente invenção foi possível aprimorar métodos para produção da eCG recombinante, garantindo a produção de grandes quantidades da eCG recombinante apresentando um perfil de glicosilação semelhante àquele das gonadotrofinas coriônicas comercialmente disponíveis, e consequentemente, apresentando atividade biológica também semelhante àquela da eCG selvagem. Tais gonadotrofinas coriônicas recombinantes são produzidas através de um sistema biotecnologicamente preparado para a alta expressão dessas estruturas.
[0031] A célula contendo expressão gênica dos transcritos de enzimas da via de glicosilação citadas a seguir permite a obtenção de reCG com atividade biológica na espécie alvo: UDP-GlnNAc-2-epimerase, CMP-SA-sintetase, CMP- SA-transporter, β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 3 (ST3-GalTIII), β- galactosidase α 2,3-sialiltransferase 4 (ST3-GalTIV), β-galactosidase α 2,3- sialiltransferase 6 (ST3-GalTVI), Sialidase I, Sialidase II.
Sumário da Invenção
[0032]A presente invenção diz respeito a um processo de produção de uma gonadotrofina coriônica equina recombinante, no qual dita reCG apresenta perfil de glicosilação semelhante àquele das gonadotrofinas coriônicas comercialmente disponíveis. Dito processo compreende as etapas de:
(a) inserção de uma sequência de DNA que codifica uma eCG em um vetor de expressão que inclui o cDNA codificador da enzima diidrofolato redutase (DHFR);
(b) co-transfecção do vetor da etapa (a) com um vetor de seleção em células de expressão duplo negativas para o gene DHFR;
(c) Seleção das células transfectadas resistentes por tratamento com o antibiótico ao qual devem apresentar resistência;
(d) Amplificação gênica do vetor de expressão e seleção das células super-produtoras de reCG por tratamento com concentrações crescentes de inibidor de DHFR;
(e) cultivo das células super-produtoras de reCGap com perfil de expressão gênica determinado para os transcritos das enzimas das vias de glicosilação para expressão da reCGaP;
(f) purificação da reCGap obtida.
[0033] De acordo com um segundo aspecto da presente invenção, é provida uma gonadotrofina coriônica equina recombinante, produzida a partir do processo da presente invenção. Sendo dita reCG produzida a parir de uma cadeia de cDNA fusionada contendo ambas as sequências codificadoras das cadeias de gonadotrofina coriônica equina (eCG) α e β ou de cadeias de cDNA contendo as sequências codificadoras das cadeias α e β separadamente.
[0034] Em um terceiro aspecto, a presente invenção diz respeito a uma composição veterinária compreendendo:
(a) uma quantidade veterinariamente eficaz da reCG produzida de acordo com a presente invenção;
(b) opcionalmente aditivos; e
(c) um veículo farmaceuticamente aceitável.
[0035] Em um quarto aspecto, a presente invenção se refere ao uso da reCG da invenção ou da composição da invenção, compreendendo a dita reCG, na fabricação de um medicamento para o tratamento de condições médicas relacionadas à reprodução e ovulação de animais mamíferos, como agente otimizador da fertilização in vitro; na fabricação de kits para diagnósticosde condições veterinárias e protocolos relacionados à ovulação de mamíferos; e na fabricação de suplemento para o cultivo de células.
Breve Descrição das Figuras
[0036]A Figura 1 mostra o esquema ilustrativo utilizado para a construção do DNA fusionado que codifica a reCG por PCR.
[0037]A Figura 2 ilustra a SEQ ID NO:1 em formato FASTA.
[0038]A Figura 3 ilustra a expressão de reCG por populações de células CHO-DG44 transfectadas com o plasmídeo pNU0-eCG ao longo do processo de amplificação gênica deste plasmídeo pelo tratamento com doses crescentes do quimioterápico MTX.
[0039]A Figura 4 ilustra a cinética de expressão de reCG pela população CHO 2,5μΜ após adaptação ao crescimento na ausência de MTX, ao longo de três dias, na presença de soro fetal bovino (FCS, fetal caif serum) ou na sua ausência (SFM, serum free media).
[0040]A Figura 5 ilustra a atividade biológica in vitro de eCG avaliada a partir da resposta de progesterona secretada pelas células MLTC-1 após tratamento com doses crescentes de Folligon ou reCG produzido na presença (A) ou ausência (B) de soro fetal bovino.
[0041] A Figura 6 ilustra a atividade biológica in vivo avaliada a partir da resposta uterina de ratas pré-púberes de 23 a 25 dias após tratamento com doses crescentes de Folligon ou reCG produzido na ausência de soro fetal bovino.
[0042]A Figura 7 ilustra a regressão linear referente aos dados obtidos no ensaio de atividade biológica in vivo avaliada a partir da resposta uterina de ratas pré-púberes de 23 a 25 dias após tratamento com doses crescentes de Folligon ou reCG produzido na ausência de soro fetal bovino. [0043]A Figura 8 ilustra a atividade biológica in vivo do reCG parcialmente purificado pela coluna HiTrap™ Con A. a partir da resposta uterina de ratas pré-púberes de 25 dias após tratamento com Folligon ou reCG produzido na ausência de soro fetal bovino e parcialmente purificado pela coluna HiTrap™ Con A.
[0044]A Figura 9 ilustra estruturas de N-glicanos obtidas para o eCG comercial Folligon após digestão realizada com combinações de exoglicosidades.
[0045]A figura 10 ilustra as estruturas putativas de N-glicanos obtidas em frações enriquecidas em reCG .
[0046]A figura 1 1 ilustra o perfil de expressão gênica obtido para os transcritos das enzimas correspondentes às enzimas das vias de glicosilação em células cultivadas na presença e ausência de soro fetal bovino: UDP-GlnNAc-2- epimerase, CMP-AS-sintetase, CMP-SA-transporter, β-galactosidase α 2,3- sialiltransferase 3 (ST3-GalTIII), β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 4 (ST3- GalTIV), β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 6 (ST3-GalTVI), Sialidase I, Sialidase II.
Descrição Detalhada da Invenção
[0047]A presente invenção trata de um processo de produção de uma gonadotrofina coriônica equina recombinante (reCG), no qual dita gonadotrofina coriônica equina recombinante apresenta perfil de glicosilação semelhante ao da gonadotrofina coriônica equina natural e apresenta o mesmo nível de atividade in v/Vo dos hormônios FSH e LH.
[0048] De acordo com um primeiro aspecto da invenção, dito processo compreende as etapas de:
(a) inserção de uma sequência de DNA que codifica uma eCG em um vetor de expressão que inclui o cDNA codificador da enzima diidrofolato redutase (DHFR);
(b) co-transfecção do vetor da etapa (a) com um vetor de seleção em células de expressão duplo negativas para o gene DHFR;
(c) Seleção das células transfectadas resistentes por tratamento com o antibiótico ao qual devem apresentar resistência; (d) Amplificação gênica do vetor de expressão e seleção das células super-produtoras de reCG por tratamento com concentrações crescentes de inibidor de DHFR;
(e) cultivo das células super-produtoras de reCGap com perfil de expressão gênica determinado para os transcritos das enzimas das vias de glicosilação para expressão da reCGaP;
(f) purificação da reCGap obtida.
[0049]A sequência de DNA que codifica a eCG, de acordo com a presente invenção, compreende, preferencialmente uma cadeia de cDNA fusionada SEQ ID NO. 1 , contendo ambas as sequências codificadoras das cadeias de gonadotrofina coriônica equina (eCG) α e β.
SEQ ID NO.1 :
CGGAATTCGCCACCATGGAGACGCTCCAGGGGCTGCTGCTGTGGATGCTGCTGAGTGTTGGCGG GGTCTGGGCATCCAGGGGGCCACTGCGGCCACTGTGCCGGCCCATCAACGCCACTCTGGCTGCT GAGAAGGAGGCCTGCCCCATCTGCATCACCTTCACCACCAGCATCTGTGCCGGCTACTGCCCCA GCATGGTGCGGGTGATGCCAGCTGCCCTGCCGGCCATTCCCCAGCCAGTGTGCACCTACCGTGA GCTGCGCTTTGCTTCCATCCGGCTCCCCGGCTGCCCGCCTGGTGTGGACCCCATGGTCTCCTTC CCCGTGGCCCTCAGTTGTCACTGCGGGCCCTGCCAGATCAAGACCACTGACTGCGGGGTTTTCA GAGACCAGCCCTTGGCCTGTGCCCCCCAGGCCTCCTCTTCCTCTAAGGATCCCCCATCCCAACC TCTCACATCCACATCCACCCCAACTCCTGGGGCCAGCAGACGTTCCTCTCATCCCCTCCCAATA AAGACTTCTTTTCCTGATGGAGAGTTTACAACGCAGGATTGCCCAGAATGCAAGCTAAGGGAAA ACAAGTACTTCTTCAAACTGGGCGTCCCGATTTACCAGTGTAAGGGCTGCTGCTTCTCCAGAGC GTACCCCACTCCAGCAAGGTCCAGGAAGACAATGTTGGTCCCAAAGAACATCACCTCAGAATCC ACATGCTGTGTGGCCAAAGCATTTATCAGGGTCACAGTGATGGGAAACATCAAGTTGGAGAACC ACACCCAGTGCTATTGCAGCACTTGCTATCACCACAAGATTTAAGCGGCCGCGC
[0050]A sequência do gene codificador da reCG foi desenhada para conter, preferencialmente, as sequências codificadoras de ambas as unidades da eCG, α e β, de uma maneira que elas fossem expressas de forma fusionada, como pode ser visto na Figura 1 e na Figura 2. A Figura 2 ilustra a SEQ ID NO:1 em formato FASTA, obtida após submeter os cromatogramas do sequenciamento de um dos clones bacterianos contendo a construção ρΝΙΙΘβΟΘβα ao sequenciamento automatizado, utilizando-se o método de Sanger.
[0051 ] Na figura 2, a sequência tracejada
GAATTC
representa o sítio para a enzima de restrição EcoRI; a sequência contornada
GCCACC
representa o fragmento de kozac; a sequência sublinhada
ATGGAGACGCTCCAGGGGCTGCTGCTGTGGATGCTGCTGAGTGTTGGCGGGGTCTGGGC ATCCAGGGGGCCACTGCGGCCACTGTGCCGGCCCATCAACGCCACTCTGGCTGCTGAGA AGGAGGCCTGCCCCATCTGCATCACCTTCACCACCAGCATCTGTGCCGGCTACTGCCCC AGCATGGTGCGGGTGATGCCAGCTGCCCTGCCGGCCATTCCCCAGCCAGTGTGCACCTA CCGTGAGCTGCGCTTTGCTTCCATCCGGCTCCCCGGCTGCCCGCCTGGTGTGGACCCCA TGGTCTCCTTCCCCGTGGCCCTCAGTTGTCACTGCGGGCCCTGCCAGATCAAGACCACT GACTGCGGGGTTTTCAGAGACCAGCCCTTGGCCTGTGCCCCCCAGGCCTCCTCTTCCTC TAAGGATCCCCCATCCCAACCTCTCACATCCACATCCACCCCAACTCCTGGGGCCAGCA GACGTTCCTCTCATCCCCTCCCAATAAAGACTTCTTTT
representa a cadeia β sem o stop codon; a sequência destacada
Figure imgf000017_0001
G-Q.A.C? i¾ -¾.ζ^^ C ^ÃC? X Q GX ¾ *F X C? C G? X X G- ' X ¾ X ^Ã C G¾ ¾Q ¾X X TÃ-A- representa a cadeia sem o peptídeo sinal; e a sequência pontilhada
GCGGCCGC
representa o sítio para a enzima de restrição Not\. O comprimento total da construção é de 822pb. [0052]Os primers utilizados para a amplificação das sequências de cDNAs foram desenhados a partir das sequências codificadoras completas de cada subunidade de eCG contidas na base de dados NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov; National Center for Biotechnology Information, U. S. NLM - U. S. National Library of Medicine, Bethesda, EUA (NM_access number a: 001099763.1 , β: 001490342.2). Não se fez uso de um programa computacional para o desenho dos oligonucleotídeos.
[0053]A amplificação das cadeias codificadoras pode ser realizada através da técnica de PCR {Polymerase Chain Reactiorí) e os produtos obtidos são separados e purificados por técnicas usualmente conhecidas e empregadas no estado da técnica. Preferencialmente, os amplicons obtidos são detectados em gel de agarose, isolados e purificados através do lllustra GFX PCR DNA and Gel Band Purification Kit (GE Healtcare, Carlsbad, CA, EUA).
[0054] Em outro aspecto da invenção podem ser desenhadas sequências do gene codificador compreendendo apenas uma das sequências codificadoras das unidades da eCG, α ou β.
[0055] Mais especificamente, a construção do gene fusionado que codifica a reCG ocorre a partir de uma sequência de reações de PCR, dividida em 3 estágios, com o produto purificado. Entre cada round de PCR o produto obtido foi purificado em gel de agarose.
[0056]O primeiro round de PCR é responsável por adicionar os sítios de restrição ao final da sequência eCGa e ao início da sequência eCGp. No segundo round, fragmentos gênicos complementares são adicionados à sequência da contra-subunidade. Um fragmento complementar foi adicionado ao início de ambas as cadeias eCGa e eCGp, permitindo a união das subunidades através desses fragmentos. O terceiro round é responsável por unir as cadeias eCGa e eCGp mutadas em uma cadeia única, eCGp . Os amplicons obtidos foram detectados em gel de agarose e purificados com o lllustra GFX PCR DNA and Gel Band Purification Kit (GE Healtcare, Carlsbad, CA, EUA). [0057]Após a purificação do gene fusionado em gel de agarose, o gene foi digerido com as enzimas de restrição EcoRI e A/oíl e subclonado em um vetor plasmideal.
[0058]O gene pode ser clonado em qualquer vetor plasmideal que contenha um ou mais promotores fortes, incluindo o promotor de β-actina de galinha e o promotor de citomegalovírus, sítio múltiplo de clonagem bacteriana, sequência de resistência a antibiótico para clonagem bacteriana, sítios de recombinação, e o cDNA codificador da enzima diidrofolato redutase (DHFR) à jusante de um sítio interno para entrada de ribossomos (IRES- international ríbosomal entry site). Preferencialmente, o vetor plasmidial de expressão adequado para a invenção é o vetor pNU0, construído pela própria depositante.
[0059]O vetor pNU0 é derivado do vetor pUC18 (MESSING E VIEIRA, The pUC plasmids, an M13mp7-derived system for insertion mutagenesis and sequencing with synthetic universal primers. Gene. 1982 Oct;19(3):259-68) e possui um cassete de clonagem MCS contendo diversos sítios para enzimas de restrição sob o controle de um promotor híbrido contendo elemento enhancer de citomegalovírus e promotor de β-actina de galinha, bem como o cDNA codificador da enzima diidrofolato redutase (DHFR) à jusante de um sítio interno para entrada de ribossomos.
[0060] Esta estrutura permite a expressão concomitante do inserto clonado no MCS, no caso a eCGpa, e do DHFR, visando a complementação gênica de células CHO duplo negativo para o gene DHFR, que, por sua vez, permite a seleção de células expressando altas quantidades do produto de interesse após amplificação gênica, realizada através de tratamento com doses crescentes de inibidores de DHFR.
[0061 ]O plasmídeo construído foi, então, cotransfectado para as células de interesse junto a um vetor de seleção para a geração de clones celulares expressando estavelmente a proteína fusionada eCGpa.
[0062]A inserção do plasmídeo na célula de interesse (cotransfecção) pode ser realizada por diversas técnicas usualmente empregadas no estado da técnica. Dentre elas, diversos tipos de transfecção, como por exemplo, por meio de moléculas catiônicas, transfecção mediada por cálcio, PEI, eletroporação, nucleofecção, desde que a taxa de transfectabilidade seja mantida na mesma ordem de grandeza.
[0063] Preferencialmente, a cotransfecção é realizada por lipofecção com vetor de seleção. Preferencialmente, o vetor de seleção fornece resistência ao antibiótico higromicina B. Mais preferivelmente, o vetor de seleção adequado é o vetor pX343 (ARMELIN et al., Functional role for c-myc in mitogenic response to platelet-derived growth factor. Nature. 1984 Aug 23-29;310(5979):655-60).
[0064]A cotransfecção da construção ρΝΙΙΘβΟΘβα nas células de interesse com o vetor pX343 foi realizada em uma proporção de vetor pX343 para a construção ρΝΙΙΘβΟΘβα variando de 1 :1 a 1 :5000. Preferencialmente a cotransfecção foi realizada em uma proporção de 1 :120. Portanto, poucas cópias do vetor de resistência são necessárias para oferecer resistência às células transfectadas quando o processo da presente invenção é empregado.
[0065]Ainda, as células transfectadas, selecionadas por serem resistentes à higromicina devido à presença de pelo menos uma cópia do vetor pX343, possuem a vantagem de conter uma quantidade muito maior da construção de interesse e, consequentemente, uma alta expressão da proteína reCG.
[0066]Como a eCG é uma molécula complexa, apresentando em torno de 45% de sua massa molecular consistindo de modificações pós-traducionais (glicosilação), faz-se necessário o uso de um sistema de expressão robusto que permita a produção de uma eCG recombinante o mais similar possível em comparação com a eCG do tipo selvagem. O sistema de expressão heterólogo de acordo com a presente invenção foi escolhido para a produção de reCG por permitir o processamento correto de cadeias polipeptídicas recém-sintetizadas, o dobramento e a montagem de suas subunidades α e β, além da adição de cadeias glicosiladas do tipo complexo, o que é fundamental para que o eCG recombinante produzido tenha atividade biológica. No entanto, existe muita variabilidade nos padrões de glicosilação entre diferentes células de mamíferos devido ao fato da maquinaria enzimática de adição de oligossacarídeos às proteínas diferir entre as linhagens celulares, gerando glicoformas com diferentes graus e tipos de glicosilação e atividades biológicas distintas.
[0100] As células utilizadas para a expressão da reCG são células de linhagem mamífera ou células de insetos, ou ainda qualquer linhagem celular que possua perfil de expressão gênica determinado para os transcritos das enzimas das vias de glicosilação. Portanto, qualquer outra linhagem celular que seja capaz de adicionar modificações pós-traducionais semelhantes ao obtido para o perfil de reCG definido para a presente invenção, com a presença majoritária de picos correspondentes a N-glicanos di- ou tri-galactosilados sendo estes posteriormente mono-, di- ou tri-sialilados, adicionados pelas enzimas UDP-
GlnNAc-2-epimerase, CMP-SA-sintetase, CMP-SA-transporter, β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 3 (ST3-GalTIII), β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 4 (ST3-GalTIV), β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 6 (ST3-GalTVI), Sialidase I, Sialidase II, e que tenha o mesmo comportamento quando cultivada in vitro, como por exemplo, capacidade de replicação, capacidade de expressão da proteína, transfectabilidade simples, dentre outros, pode ser utilizada.
[0067] Preferencialmente, foram escolhidas células de linhagem mamífera; mais preferencialmente, células da linhagem CHO, ou delas derivadas. De maneira ainda mais preferida, é utilizada a linhagem CHO-DG44-DHFRv\ Todavia, outros tipos celulares, como por exemplo, células da linhagem CHO, BHK, 293, Vero ou seus derivados, são adequados para a invenção e podem substituir as células da linhagem CHO-DG44-DHFRv". .
[0068]A etapa de seleção de células transfectadas resistentes foi realizada através do tratamento das células transfectadas com o antibiótico ao qual elas devem apresentar resistência por duas semanas. Preferencialmente, as células CHO-DG44, de acordo com a invenção, foram tratadas com entre 10 μg/mL a 2.000 μg/mL de higromicina B (Life Technologies™).
[0069]Após o tratamento com higromicina B, as células sobreviventes foram tratadas com concentrações crescentes de inibidores de DHFR em meio de cultura sem nucleosídeo para amplificação gênica do plasmídeo e seleção das células superprodutoras de reCG.
[0070] Diversos inibidores de DHFR são conhecidos no estado da técnica e podem ser adequados para uso na invenção. Preferencialmente, o inibidor de DHFR, adequado para a invenção é o Metotrexato (MTX).
[0071]Células deficientes na produção da enzima DHFR, como as células CHO-DG44 DHFR-/-, preferencialmente utilizadas na presente invenção, são adequadas pois elas não conseguem sobreviver quando cultivadas na ausência de nucleosídeos, visto que esta enzima catalisa a redução de diidrofolato a tetraidrofolato. Assim, quando estas células são transfectadas com construções obtidas a partir do vetor da invenção, que possui a sequência gênica correspondente à enzima DHFR, elas se tornam capazes de crescer na ausência de nucleosídeos.
[0072]As células foram submetidas a uma concentração inicial do inibidor de DHFR e cultivadas por aproximadamente 2 ou 3 semanas, com troca do meio a cada 48 horas para remoção de células mortas. Quando 90% de confluência foi alcançado, a concentração do inibidor de DHFR foi aumentada e o ciclo foi repetido, sempre aumentando a concentração do inibidor de DHFR.
[0073]As células superprodutoras de reCG podem ser cultivadas em bateladas de produção em monocamadas ou em suspensão. Podem ser empregados diferentes reservatórios, tais como garrafas de cultivo de diferentes tamanhos, placas, frascos T, spinners, bolsas de cultivo descartáveis {bags) e outros tipos de biorreatores com hélices ou pás arredondadas, dentre outras configurações.
[0074]Os meios de cultivo empregados podem variar desde que eles sejam capazes de suprir as necessidades metabólicas das células. Além disso, as células superprodutoras de reCG podem ser cultivadas na presença ou ausência de soro fetal bovino (FCS). A proporção de soro fetal bovino pode ser adaptada de acordo com as condições de cultivo para manter a viabilidade celular e os níveis de expressão da proteína (de 1 a 100 mg/ml_) dentro da mesma ordem de magnitude do padrão original. Preferencialmente, as células da invenção são cultivadas em meio contendo cerca de 2 a 10% de FCS. Mais preferivelmente, as células da invenção são cultivadas em meio contendo 7% de FCS.
[0075] Meios quimicamente definidos ou livres de soro e proteínas, contendo substitutos do FCS, tais como fatores peptídicos de crescimento e proliferação celular de diversos tipos, albumina, insulina, entre outros; ou soro fetal ou adulto de outras espécies, e suplementados com precursores utilizados nas vias de glicosilação, também são adequados para serem utilizados na produção de reCG. O cultivo deve ocorrer em condições ambientais definidas, tais como, temperatura de cultivo entre 25 e 40 °C, proporção relativa de CO2 entre 1 e 10%, e pH entre 5,0 e 8,0.
[0076]Quando o cultivo for realizado em spinners, bags e biorreatores a rotação empregada pode variar entre 10 e 200 rpm.
[0077] Para alcançar maior massa e pureza da proteína de interesse, o produto obtido pode ser parcialmente purificado empregando técnicas conhecidas para purificação de proteínas, sendo que os meios de cultura condicionados contendo reCG coletados são submetidos a pelo menos uma das seguintes técnicas: precipitação de proteínas utilizando solventes, como por exemplo, sulfato de amónio; ultrafiltração; filtração tangencial; ou a dois tipos distintos de cromatografia, cromatografia de troca iônica e cromatografia de afinidade.
[0078] De acordo com um segundo aspecto da presente invenção, é provida uma gonadotrofina coriônica equina recombinante, produzida a partir do processo da presente invenção. Ao contrário das opções comercialmente disponíveis, a gonadotrofina coriônica equina recombinante da invenção é produzida através de mecanismos biotecnológicos em escala industrial oferecendo uma opção alternativa àquelas que são obtidas do plasma equino e envolvem fatores bioéticos. Além disso, a reCG da invenção não enfrentará os problemas encontrados no estado da técnica relacionados à escassez da fonte de origem, constituindo vantajosamente uma nova fonte de fornecimento ininterrupto de reCG.
[0079]Ao produzirmos uma reCG com padrão de glicosilação similar ao das gonadotrofinas coriônicas comercialmente disponíveis e que apresente o mesmo nível de atividade in vivo dos hormônios FSH e LH proporcionamos a obtenção de um produto com atividade biológica, ao menos, semelhante. Essa característica também não é apresentada pelas gonadotrofinas corionicas recombinantes conhecidas no estado da técnica, as quais sequer apresentavam atividade biológica in vivo.
[0080] Em um terceiro aspecto, a presente invenção diz respeito a uma composição veterinária compreendendo:
a) uma quantidade veterinariamente eficaz da reCG produzida de acordo com a presente invenção;
(b) opcionalmente aditivos; e
(c) um veículo farmaceuticamente aceitável.
[0081] A composição da presente invenção pode compreender, além da reCG da invenção, adjuvantes, preservativos, diluentes, emulsificantes, estabilizantes e outros ingredientes farmacologicamente aceitáveis e que são empregados em preparações de gonadotrofinas para uso animal.
[0082] Em um quarto aspecto, a presente invenção se refere ao uso (a) da reCG ou (b) da composição veterinária da invenção, compreendendo dita reCG, na fabricação de um medicamento para o tratamento de condições veterinárias relacionadas à reprodução e ovulação de animais mamíferos, como agente otimizador da fertilização in vitro; na fabricação de kits para diagnóstico de condições veterinárias e protocolos relacionados à ovulação de mamíferos; e na fabricação de suplemento para o cultivo de células.
EXEMPLOS
Exemplo 1 : Extração de RNA e síntese de cDNA a partir de uma hipófise equina
[0083] Uma glândula hipófise foi obtida através da necropsia de um cavalo {Equus caballus), macho, raça meio-sangue árabe, de 19 anos e imediatamente acondicionada em RNAholder (Bioagency® Biotecnologia), a 4°C, até ser macerada em nitrogénio líquido, utilizando-se cadinho e pistilo. O RNA total foi extraído deste macerado de hipófise utilizando-se o lllustra RNAspin Mini RNA Isolation Kit (GE Healthcare®, Buckinghamshire, England), seguindo as recomendações do fabricante. A concentração e pureza do RNA obtido foram determinadas através de quantificação em nanoespectrofotômetro (ND-1000 Spectrophotometer, NanoDrop Technologies Inc., Wilmington, EUA) e leitura da relação de absorbância Abs260/Abs280 e Abs260/Abs230 nm.
[0084] Uma alíquota de 1 ,0pg de RNA total de hipófise equina foi utilizado como molde para uma reação de transcrição reversa, utilizando o kit da enzima lmProm™-ll RT (Promega Corporation, Madison, EUA); Super Script II (Invitrogen), sendo as reações realizadas de acordo com as recomendações do fabricante. Ao final, as amostras foram diluídas 3 vezes em água deionizada, obtendo-se um volume final de 60μΙ_ e estocadas a - 80QC.
Exemplo 2: Amplificação das cadeias codificantes para eCG α e 3, a partir desta biblioteca de cDNA, por PCR
[0085]Os primers utilizados para amplificação das sequências de cDNA foram desenhados baseando-se nas sequências codificadoras completas de cada uma das duas subunidades de eCG contidas na base de dados do NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov; National Center for Biotechnology Information, U. S. NLM - U. S. National Library of Medicine, Bethesda, EUA (NM_access number a: 001099763.1 , β: 001490342.2) e sintetizados pela empresa Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA™ /Thermo Fisher Scientific Inc. Os primers liofilizados foram reconstituídos em solução tampão 10mM Tris-CI (pH 8,0) para gerar uma solução estoque a 100μΜ e soluções de uso a 10μΜ. As sequências dos primers utilizados na amplificação dessas cadeias e seus intermediários obtidos nos passos de Engenharia Genética estão discriminadas na Tabela 1 .
Tabela 1 . Sequências dos primers para amplificação das sequências codificadoras de reCGa e reCG e engenharia genética para geração da sequência fusionada eCG .
Oligonucleotídeos Sequências (5'- 3')
1 - eCGb F 5'-ATGGAGACGCTCCAGGGGCT- 3'
2 - eCGb R 5'-AGAAGTCTTTATTGGGAGGGGATGAGAG- 3'
3 - eCGa F 5'-TTTCCTGATGGAGAGTTTACAACGCAG- 3' 4 - eCGa R 5'-TTAAATCTTGTGGTGATAGCACGTGCTG-3'.
5 - Mut eCGa R Not\ 5'-GCGCGGCCGCTTAAATCTTGTTGTGGTG-3'
6 - Mut eCGb F EcoR\ 5'-CGGAATTCGCCACCATGGAGACGCTC-3'
7 - union F 5'-CCCAATAAAGACTTCTTTTCCTGATGGAGAG-3'
8 - union R 5'- CTCTCCATCAGGAAAAGAAGTCTTTATTGGG-3'.
Negrito: sítios de restrição para as enzimas EcoRI (primer forward) e Not\ (primer reverse); Sublinhado: sequência consenso de Kozak.
[0086]O cDNA total de tecido hipofisário equino foi utilizado para a amplificação das sequências codificadoras de ambas as subunidades de eCG. Uma cadeia única codificadora para ambas as subunidades de eCG foi criada (JABLONKA-SHARIFF et al., Expression and bioactivity of a single chain recombinant equine luteinizing hormone (reLH). Theriogenology. 2007 Jan 15;67(2):31 1 -20) para que as subunidades fossem expressas de forma fusionada. Os prímers (1 ) e (2) foram utilizados para amplificar a sequência codificadora de eCGp sem o códon de parada e a sequência codificadora de eCGa foi amplificada sem o peptídeo sinal, utilizando-se os prímers (3) e (4).
[0087] Para a amplificação, as reações de polimerase em cadeia (PCR) foram realizadas utilizando-se a enzima High Fidelity Platinum Taq DNA Polymerase (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA™). A 100 ng de amostras de cDNA de hipófise equina foram adicionados 1 X tampão High Fidelity PCR Buffer (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA), 0,2 mM de dNTPs (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA), 2mM de MgSO4 (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA), 400 nM de primer Forward (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA), 400 nM de primer Reverse (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA), 1 ,0 U da enzima DNA polimerase descrita acima e água deionizada para completar 50,0μΙ_ de volume de reação. A reação foi conduzida sob as seguintes condições: 94QC por 1 minuto; 35 ciclos de: 94QC por 30 segundos, 55QC (eCGa) ou 58QC (eCGP) por 30 segundos e 68QC por 1 min; extensão final a 68QC por 2 min. [0088]Os amplicons foram detectados através de géis de agarose a 2,0%, corados com O^g/mL de brometo de etídeo, e o produto de tamanho esperado foi isolado com bisturi e purificado através do GFX DNA and Band Purification Kit (GE Healtcare, Carlsbad, CA, EUA), segundo recomendações do fabricante.
Exemplo 3: Obtenção de uma cadeia de cDNA fusionada contendo ambas as sequências codificadoras para eCG (eCG3a)
[0089]Os produtos purificados foram utilizados como templates para a obtenção da sequência eCGp , através de três etapas de reações de PCR mutagênicas subsequentes, conforme esquematizados na Figura 1 ,na qual, (A) amplificação da sequência codificadora de eCGa sem o peptídeo sinal (a: 288 pb) e da sequência codificadora de eCGp sem o stop codon (β: 510 pb) / (B) construções intermediárias, a-b e c-d, obtidas, respectivamente, no primeiro e no segundo round de PCRs mutagênicos / (C) Diagrama esquemático representando os passos de Engenharia Genética realizados para a obtenção do inserto final eCGp - (1 ): representação da Figura 1 A; (2): representação da Figura 1 B (a e b); (3): representação da Figura 1 B (c e d); (4): representação do produto final eCG / (D) Digestão do plasmídeo pNU0-eCGp com as enzimas de restrição EcoRI e A/oíl, onde é possível visualizar o vetor pNU0 (7.6 Kbp) e o inserto (822 pb), presente em clones bacterianos distintos (SP: Peptídeo sinal. TAA: stop codon. EcoRI e A/oíl: sítio para as enzimas de restrição EcoRI e A/oíl).
[0090] A primeira etapa de reação de PCR (Figura 1 A) adiciona sítios de restrição ao final da sequência eCGa (A/oíl), utilizando os primers (3) e (5), e ao início da sequência eCGp (EcoRI), utilizando os primers (2) e (6). As reações de PCR foram realizadas utilizando-se a enzima Long Range (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA), em que à 100ng das preparações plasmideais, contendo as sequências eCGp ou eCGa, foram adicionados 1 X tampão High Fidelity PCR Buffer (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA), 0,2mM de dNTPs (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA), 2mM de MgSO4 (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA),400nM de primer Forward (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA), 400nM de primer Reverse (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA), 1 ,0 U da enzima DNA polimerase descrita acima e água deionizada para completar 50,0 μΙ_ de volume de reação. A reação foi conduzida sob as seguintes condições: 94QC por 1 min; 35 ciclos de: 94QC por 30 segundos, 55QC (eCGa) ou 58QC (eCGP) por 30 segundos e 68QC por 1 min; extensão final a 68QC por 2 min. Os produtos obtidos foram fracionados em gel de agarose e então, em procedimento similar ao descrito no parágrafo acima, purificados do gel de agarose para servirem de template na próxima etapa de reações mutagênicas.
[0091] Na segunda etapa de reação de PCR, Figura 1 B, foram adicionados, a ambos amplicons, fragmentos gênicos complementares à sequência da contra- subunidade, de maneira que ambas as subunidades pudessem ser unidas através destes fragmentos. O fragmento complementar inicial da cadeia eCGa foi adicionado ao final da cadeia eCGp modificada em uma reação que utilizou os primers (6) e (7), enquanto que o fragmento complementar final da cadeia eCGp foi adicionado ao início da cadeia eCGa e ao início da sequência eCGp (EcoRI), utilizando-se os primers (5) e (8). Para esta segunda etapa de reações de PCR mutagênicos, os mesmos reagentes e concentrações da primeira etapa foram utilizadas, nas seguintes condições de ciclagem: 94QC por 1 min; 35 ciclos de 94QC por 30 segundos, 62QC por 30 segundos e 68QC por 1 min; extensão final a 68QC por 2 min. Novamente, os produtos destas reações foram purificados do gel de agarose utilizando o lllustra GFX PCR DNA and Gel Band Purification Kit e usados como template para a última etapa de mutações.
[0092]A terceira etapa de PCRs mutagênicos, Figura 1 B e 1 C, teve, como objetivo, unir as duas cadeias previamente mutadas em uma cadeia única, eCGp . Os templates purificados da etapa anterior foram adicionados em uma reação de PCR realizada com os primers (5) e (6) e os mesmos reagentes e concentrações descritos, sob as seguintes condições: 94QC por 1 minuto; 35 ciclos de 94QC por 30 segundos, 65QC por 30 segundos e 68QC for 1 minuto; extensão final a 68QC por 2 minutos. [0093]Os amplicons foram detectados através de géis de agarose a 2,0% corados com brometo de etídeo, e o produto de tamanho esperado foi isolado com bisturi e purificado através do lllustra GFX PCR DNA and Gel Band Purification Kit (GE Healthcare, Carlsbad, CA, EUA). Em seguida, foram clonados no vetor pGEM®-T, utilizando os reagentes fornecidos pelo Promega pGE /P-T Easy System (Promega Corporation, Madison, EUA) em bactérias Escherichia coli, cepa XL-1 Blue (genótipo: recA1 endA1 gyrA96 thi-1 hsdR17 supE44 relA1 lac [F' proAB laclqZAM15 Tn10 (Tetr)], Agilent Technologies, Santa Clara, EUA).
[0094]As sequências de interesse foram checadas nos clones bacterianos por sequenciamento automatizado {BigDye Sequencing Kit, Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA, no sequenciador modelo ABI3700 I377 (Perkin Élmer)). As sequências obtidas nos sequenciamentos foram analisadas e alinhadas através dos programas PhredPhrap (EWING, HILLIER et al., Base- calling of automated sequencer traces using Phred I. Accuracy assessment. Genome Res. 1998 Mar;8(3):175-85) e BLAST
(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/), respectivamente.
[0095]Os clones bacterianos foram, então, expandidos em meio lisogênico LB (Becton, Dickinson and Company) e estocados a -80QC em meio de congelamento com 15% de glicerol.
Exemplo 4: Clonagem de eCG3a no vetor de expressão para células de mamífero
[0096]O plasmídeo pGEM®-eCG foi isolado do clone bacteriano selecionado através do GeneJET Plasmid Miniprep Kit (Thermo Fisher Scientific Inc, Waltham, EUA.), digerido com as enzimas de restrição EcoH\ e Not\ (Thermo Fisher Scientific Inc.). O inserto digerido foi purificado do gel de agarose e então subclonado em um vetor plasmideal especialmente construído por nosso grupo denominado pNU0.
[0097] Para a subclonagem, o vetor foi previamente linearizado por ação das enzimas EcoRI e Noti, gerando extremidades 5' e 3' coesivas e complementares ao inserto eCGp , utilizando-se a razão molar inserto:vetor de 3:1 (Ml = 3 x MV x Tl/TV, onde Ml = massa inserto, MV = massa vetor, Tl = tamanho inserto e TV = tamanho vetor). Para a reação de ligação dos fragmentos de DNA, utilizou-se a enzima T4 DNA Ligase (New England Biolabs® Inc.), de acordo com o recomendado pelo fabricante. A reação se deu a 16QC por 18h e deu origem ao vetor denominado pNU0-eCGp . A obtenção de clones bacterianos positivos de Escheríchia coli, cepa XL-1 Blue, contendo este vetor, foram mantidos em soluções glicerinadas a -80 °C, conforme descrito anteriormente. Preparações plasmideais em média escala de um clone positivo foram obtidas, através do QIAGEN Plasmid Midi Kit (QIAGEN), seguindo-se as orientações do fabricante, sendo a concentração das amostras determinada por quantificação em nanoespectrofotômetro a 260 nm.
Exemplo 5: Transfeccão da construção de interesse em células CHO-DG44 por lipofecção
[0098]Células da linhagem CHO-DG44-DHFRv", de ovário de Hamster Chinês, foram adquiridas como doação e cultivadas em meio HamF12 (Thermo Fisher Scientific Inc., Waltham, EUA™) suplementado com 10% (v/v) FCS (Vitrocell Embriolife, Campinas, SP, Brasil) em cultura aderente. As células foram sempre incubadas em atmosfera úmida a 37QC e 2% CO2 / 98% ar e mantidas em frascos T ou placas de cultivo tratadas, próprias para o cultivo de células em aderência (Thermo Fisher Scientific Inc.; Becton, Dickinson and Company; Corning Inc., Corning, EUA; ou TPP Techno Plastic Products, Trasadingen, Suíça). O meio de cultura foi trocado a cada dois ou três dias. Ao atingirem confluência maior ou igual a 80%, as células foram subcultivadas, sendo lavadas com PBSA, seguida de adição de solução de 0,1 % tripsina e inativação da mesma com meio de cultivo contendo FCS. O estoque de células foi mantido através do congelamento em meio de cultura suplementado com 10% DMSO (Sigma-Aldrich Co., St. Louis, MO, EUA) e armazenamento em nitrogénio líquido.
[0101] Para a geração de clones celulares expressando estavelmente a proteína fusionada eCGpa, células CHO-DG44 cultivadas em placas de 60 mm de diâmetro (P60) foram cotransfectadas com a construção pNUO-eCGp e com o vetor de seleção pX343, que confere resistência ao antibiótico higromicina B, usando uma razão de massa de DNA de 120:1 ^g do plasmídeo de interesse para 66,7ng do plasmídeo de resistência à higromicina), como previamente descrito (ARMELIN et al., Functional role for c- myc in mitogenic response to platelet-derived growth factor. Nature. 1984 Aug 23-29;310(5979):655-60). Os plasmídeos foram primeiramente misturados com 16μΙ_ do reagente de transfecção FuGENE HD Transfection Reagent (Hoffmann-La Roche Ltd.) em meio de cultura na ausência de FCS para formação dos complexos DNA-lipossomo. As células foram incubadas com os complexos e o meio de cultura foi trocado depois de 24h.
Exemplo 6: Seleção de uma população mista de células CHO-DG44 transfectadas
[0102]48h após a transfecção, as células CHO-DG44 passaram a ser tratadas com 200 g/mL higromicina B (Life TehnologiesTM) para seleção de células resistentes em meio à população transfectada, por duas semanas, até que a seleção de uma sub-população resistente.
[0103] A célula sobrevivente ao tratamento com higromicina deve ter integrado pelo menos uma cópia do plasmídeo de resistência (no caso, o pX343), portanto, deve possuir um número de cópias muito maior do plasmídeo de interesse (pNU0)-eCGpcc.
Exemplo 7: Amplificação qênica da construção pNU-0- eCG3 nas células CHO-DG44 através de tratamento com doses crescentes de metotrexato (MTX)
[0104] A amplificação gênica se deu através de tratamento com metotrexato, iniciado com 30nM desta droga adicionada ao meio de cultivo sem nucleosídeos e 7% FCS dialisado (dFCS).
[0105] As células foram cultivadas por aproximadamente duas semanas, com troca de meio a cada 48h para remoção de células mortas, até que a cultura atingisse 90% de confluência, quando, então, aumentava-se a concentração de MTX. O tratamento seguiu por aproximadamente seis meses, com aumento gradual da concentração de MTX a cada vez que a cultura atingia 90% de confluência, sendo que cada fase do tratamento durou de duas a três semanas. Exemplo 8: Análise da expressão de reCG nos meios de cultura condicionado por ELISA específico
[0106] 106 células das populações de CHO-DG44 superprodutores de reCGp foram plaqueadas em 1 ml_ de meio de cultura específico, na presença de dFCS, em bandejas de seis poços (B6). O plaqueamento foi realizado em duplicata, e as bandejas foram mantidas nas condições de cultivo descritas no Exemplo 5. 24h após o plaqueamento, o meio de cultura foi descartado, as culturas aderentes foram lavadas com PBSA e receberam meio de cultura fresco. O meio de cada clone/população foi coletado após 48h de condicionamento e utilizado para dosagem de reCGp através de um ELISA específico (PMSG ELISA - ALPCO Diagnostics), seguindo o manual provido pelo fabricante. Foram realizadas algumas diluições do meio condicionado coletado (1 :10, 1 :25, 1 :50 e 1 :100), de modo a obter valores de reCGp dentro da curva de calibração do kit. Após o procedimento, os valores de absorbância foram determinados a 460nm por leitura em um espectrofotometro de placa (SpectraMax M2 - Molecular Devices). Uma curva padrão, fornecida pelo kit, foi utilizada como referência para uma análise logística de 4-parâmetros, realizada pelo software GraphPad Prisma 5.00 for Windows (GraphPad Software, San Diego Califórnia USA, www.graphpad.com). Os valores obtidos para cada população foram considerados na seleção de um candidato para a continuação dos experimentos referentes a este projeto.
[0107]O nível de expressão de reCG no meio de cultura ao longo do tratamento com doses crescentes de MTX pode ser observado na Figura 3. A Figura 3 apresenta em sua abscissa os valores relativos às populações de células CHO-DG44 superexpressando reCG as quais são resistentes a doses crescentes de metotrexato (MTX); e em sua ordenada os valores relativos à concentração de reCG (Uls/mL) presente no meio de cultura condicionado durante 48h por cada população celular.
[0108] Através do gráfico, é possível verificar que a expressão de reCG mantem-se em níveis similares até o tratamento com 500nM de MTX, aumentando dramaticamente para 23,1 Uls e 41 ,3Uls de reCG sendo expressos nas populações de células CHO-DG44 transfectantes submetidas ao crescimento na presença de 1 μΜ e 2,5μΜ de MTX, respectivamente.
[0109] A população de CHO-DG44 com maior expressão de reCG foi submetida a uma dinâmica de expressão de reCG na qual, 106 células destas células foram plaqueadas em bandejas B6, da mesma maneira descrita no procedimento anterior, por 10 passagens adicionais, com adição de meio de cultura contendo ou não FCS (soro fetal bovino). Os meios condicionados foram coletados 24, 48 e 72h após a troca, diluídos (1 :10, 1 :25 e 1 :50) e submetidos ao ELISA para PMSG, exatamente da mesma forma realizada no procedimento anterior. O nível de expressão de reCG ao longo do tempo foi determinado novamente por uma análise logística de 4-parâmetros, realizada pelo software GraphPad Prism 5.0.
[0110] A Figura 4 ilustra a cinética de expressão de reCG pela população CHO 2,5μΜ após adaptação ao crescimento na ausência de MTX, ao longo de três dias, na presença ou ausência de soro fetal bovino. O gráfico apresenta em sua abscissa os valores relativos aos pontos (24h, 48h ou 72h) de determinação da concentração de reCG presente no meio condicionado, com ou sem FCS {fetal calf serum) e em sua ordenada os valores relativos à concentração de reCG (Uls/ml_) presente no meio de cultura condicionado 48h por cada condição, sendo FCS {fetal calf serum) o meio de cultura condicionado na presença de soro fetal bovino, e SFM {serum free media) o meio de cultura condicionado em ausência dFCS.
[0111]Através dos dados fornecidos pelas Figuras 3 e 4 podemos verificar que a expressão de reCG pela população resistente a 2,5μΜ de MTX diminuiu após 10 passagens da remoção da pressão seletiva exercida pelo MTX. Tomando o ponto 48h como parâmetro de comparação, esta diminuição foi na ordem de 2X, de ~40Uls/ml_ com MTX (Figura 3) para ~20Uls sem MTX (Figura 4) quando as células foram cultivadas na condição FCS, e na ordem de 4X (de ~40Uls com MTX para ~1 OUIs sem MTX) quando as células foram cultivadas na condição SFM. Comparando o nível de expressão da proteína de interesse entre as condições FCS e SFM, é possível afirmar que a condição FCS apresentou maior expressão de reCG passível de ser determinada por ELISA. Uma análise estatística dos dados, realizada por Two-Way ANOVA (GraphPad Prism), seguido de teste pós-Hoc Bonferroni, mostrou significância estatística (p<0,05) para este fenómeno no ponto 24h e uma diferença com significância mais estringente (p<0,01 ) entre as condições FCS e SFM foi observada nos pontos 48h e 72h desta população.
Exemplo 9: Ensaios de atividade biológica in vitro utilizando a linhagem celular responsiva MLTC-1
[0112] Para determinar a atividade biológica in vitro da reCGpa produzida pelas células superprodutoras, utilizou-se a linhagem celular MLTC-1 {Mouse Leydig Tumoral Celi - ATCC-CRL2065), obtida da ATCC®, que superexpressa receptores de gonadotrofinas (hCG e hFSH), e um protocolo adaptado de LEGARDINIER et al. (LEGARDINIER et al., Involvement of equine chorionic gonadotropin (eCG) carbohydrate side chains in its bioactivity; lessons from recombinant hormone expressed in insect cells. Reprod Nutr Dev. 2005 May- Jun;45(3):255-9). Esta célula responde ao tratamento com eCG produzindo e secretando progesterona de maneira dose-dependente.
[0113] 105 células MLTC-1 foram plaqueadas em bandejas de 24 poços, utilizando-se 500μί de meio de cultura RPMI (Gibco®) suplementado com 10% FCS. Ao alcançarem 80% de confluência, estas culturas foram lavadas 2X com PBSA e carenciadas de FCS por 2h, para, então, serem tratadas por mais 2h com diversas diluições de meios de cultura condicionados contendo doses crescentes de reCGpa e de eCG comercial (Folligon - Intervet®). Após os tratamentos, estes meios de cultura condicionados pelas células MLTC-1 foram coletados e estocados a -20 °C até serem encaminhados para dosagem de progesterona por HPLC. A dosagem também pode ser realizada através de kits de ELISA.
[0114] Foram utilizadas preparações contendo doses crescentes de reCG advindo de células CHO-DG44 cultivadas nas condições na presença (FCS) ou na ausência (SFM) de soro fetal bovino, como condições experimentais. Como controle negativo, utilizamos meio de cultura condicionado por células CHO- DG44 não produtoras de reCG , e como controle positivo utilizamos o eCG comercial Folligon (Intervet).
[0115] A atividade biológica in vitro foi determinada pela quantidade de progesterona contida nas amostras, que foi mensurada pela técnica de cromatografia de alta performance, realizada pela empresa Nanocore Biotecnologia S/A. Dois experimentos independentes foram realizados para cada amostra. Foi empregado o teste de variância two-way ANOVA, com análise pós-Hoc Bonferroni, sendo que a análise foi feita no programa GraphPad Prism versão 5.0. A atividade biológica in vitro obtida para cada condição ensaiada pode ser verificada na Figura 5.
[0116] A Figura 5 ilustra a atividade biológica in vitro de eCG avaliada a partir da resposta de progesterona secretada pelas células MLTC-1 após tratamento com doses crescentes de Folligon ou reCG da presente invenção produzida na presença (A) ou ausência (B) de soro fetal bovino. O eixo das abscissas apresenta os valores relativos aos tratamentos realizados, que consistiram em doses crescentes (0,25UI; 0,5UI; 1 Ul; 2UI e 4UI) de reCG da presente invenção ou Folligon; e o eixo das ordenadas apresenta os valores relativos à concentração de Progesterona (ng/mL) secretada no meio de cultura condicionado pelas células MLTC-1 .
[0117]Os resultados apresentados na Figura 5 evidenciam não haver diferença na resposta a uma mesma dose de eCG advinda de diferentes preparações (FCS ou SFM; CHO-DG44 ou Folligon). No entanto, ao observar-se cautelosamente os gráficos, é possível notar uma tendência a uma resposta menos robusta nas condições de meio sem soro (condição SFM), quando comparadas às mesmas doses na presença de soro (condição FCS). Este resultado é muito positivo, pois indica que a reCG produzida pelas células transfectantes superprodutora de reCG possui atividade biológica in vitro similar ao produto comercialmente disponível, Folligon, mesmo quando produzida na ausência de soro fetal bovino. Todos os pontos apresentaram diferença estatística (p < 0,001 ) em relação ao controle negativo.
Exemplo 10: Ensaios de atividade biológica in vivo utilizando o ensaio de Cole & Erwav
[0118]Todos os experimentos envolvendo animais, bem como métodos adotados para criação e formas de manutenção e experimentação, seguiram as normas do Comité de Ética em Experimentação Animal (CEUA) do Instituto de Química da USP. O estudo foi conduzido através do ensaio recomendado pela Farmacopeia Britânica, descrito por Cole & Erway (Cole and Erway, 1941 ).
[0119]60 Ratas Sprague-Dawley de 25 dias de idade, obtidas no Biotério de Experimentação Animal do Instituto de Química-Faculdade de Ciências Farmacêuticas da Universidade de São Paulo, foram organizadas em grupos de 5 a 10 animais por caixa, recebendo água e ração at libitum e mantidas em períodos de 12h de luz e 12h de escuridão, a 22 °C constantes.
[0120]Os animais foram divididos entre grupos controle negativo (que receberam PBSA ou meio de cultura condicionado por células não-produtoras de reCGpa), grupo controle positivo (que receberam Folligon®) e grupos experimentais, estes últimos contendo as condições FCS (meios de cultura condicionados por células superprodutoras de reCG da presente invenção contendo 7% dFCS) ou SFM (meios de cultura condicionados por células superprodutoras de reCGp na ausência de FCS).
[0121]Cada grupo experimental, bem como o controle positivo, compreende cinco pontos (2,5Uls; 5,0UIS; 10UIs; 20Uls e 40Uls) com cinco animais. O experimento foi repetido três vezes. Cada animal recebeu uma única dose de 200μΙ_, via injeção subcutânea, de uma preparação filtrada, através de filtros com poros de 0,22μιη, contendo algum dos tratamentos descritos acima.
[0122]Três dias após a injeção, os animais foram eutanasiados, utilizando-se câmara de C02, e os ovários e úteros de cada animal foram removidos, dissecados e pesados. O aumento no peso destes órgãos, comparativamente aos controles negativos, corresponde à resposta biológica do animal ao estímulo com eCG. [0123] A resposta final para cada dose foi obtida através da média aritmética do peso dos órgãos (ovários ou úteros) dos cinco animais de cada ponto. A comparação da resposta entre as doses do controle positivo (Folligon®) e da reCG da presente invenção nos permitiu traçar um paralelo entre as potências do primeiro e do último. Foi empregado o teste de variância One-way ANOVA, com análise pós-Hoc Tukey, sendo que a análise foi feita no programa GraphPad Prism versão 5.0. Os dados também foram analisados por regressão linear.
[0124] A Figura 6 ilustra a atividade biológica in vivo avaliada a partir da resposta uterina de ratas pré-púberes de 23 a 25 dias após tratamento com doses crescentes de Folligon ou reCG da presente invenção produzido na ausência de soro fetal bovino. No experimento ilustrado pela Figura 6, foi avaliado o aumento no peso dos úteros dos animais tratados consistindo em uma resposta direta dos animais ao estímulo. Os valores relativos aos tratamentos realizados, que consistiram em doses crescentes (2,5UI; 5UI; 10UI; 20UI e 40UI) de reCG da presente invenção ou Folligon, bem como os controles negativos PBSA (tampão fosfato em solução salina, sem Ca2+ e Mg2+) e CHO-DG44 não produtora de β estão representados no eixo das abscissas, e os valores relativos ao peso (mg) dos órgãos reprodutores dissecados no quarto dia após o tratamento estão apresentados no eixo das ordenadas. A resposta uterina observada quando do tratamento com reCG produzida por células CHO-DG44, de acordo com a presente invenção, foi, de fato, bastante similar àquela observada para Folligon.
[0125] Na Figura 7 verificou-se a regressão linear referente à resposta uterina aos tratamentos hormonais administrados. O eixo das abscissas apresenta os valores relativos às doses injetadas (2,5UI; 5UI; 10UI; 20UI e 40UI) de reCG da presente invenção ou Folligon, ou controles negativos PBSA e CHO-DG44 não produtora de β e o eixo das ordenadas apresenta os valores relativos ao peso (mg) dos órgãos reprodutores dissecados no quarto dia após o tratamento. Nesta análise, o slope da curva obtido para Folligon, 0,7263 ± 0,3767 (p=0,0718) não foi considerada significante, enquanto que o slope obtido para a resposta a reCG da presente invenção produzida por células CHO-DG44 foi mais consistente, 2,415 ± 0,4049 (p<0,0001 ). Os controles não apresentaram slopes significativos. Foi observado que, o hormônio recombinante produzido pelas células CHO-DG44 apresentou uma tendência de dose-resposta melhor do que o produto comercial, Folligon. A última dose (40UI) de reCG da presente invenção apresentou uma resposta similar ao Folligon.
Etapa 1 1 : Purificação de reCG da presente invenção através de cromatografia
[0126] Duas estratégias foram utilizadas para a purificação da reCG da presente invenção contida nos meios de cultura condicionados de células superprodutoras, a saber: a) cromatografia de afinidade Concanavalina A (HiTrap™ ConA 4B, GE Healthcare); b) cromatografia de troca aniônica (HiTrap™ Capto Q, GE Healthcare). O sistema Àkta Purifier UPC-100 (GE Healthcare), de cromatografia líquida de alta performance (HPLC, High Performance Liquid Chromatography), associado a cada uma das colunas de cada vez, foi utilizado na otimização da purificação da reCG da presente invenção, em procedimentos independentes. O fluxo constante de 1 VC/min foi utilizado durante todo o processo, para ambas as colunas.
[0127] Para as purificações realizadas com a coluna HiTrap™ ConA 4B, equilibrou-se a coluna com 3VC do tampão A (500 mM NaCI, 20 mM tris-HCI, 1 mM MgC , 1 mM CaC , pH 7,4). Em seguida, 50 VC de meio condicionado contendo reCGpa diluídos 2X em tampão de diluição (890mM NaCI, 40mM Tris-HCI, 2mM MgCI2, 0,2mM CaCI2, pH 7,4), filtrados através de filtros com poros de 0,45μιη foram aplicados à coluna, seguido de lavagem da coluna (5 VC) com o tampão A. Para a eluição, um gradiente linear de concentração de metil-a-D-glucopiranosídeo (Sigma-Aldrich®) foi aplicado, iniciando-se em 20 mM e finalizando-se em 300 mM (diluído em tampão A), em um intervalo de 8 VC. As frações de permeado e de lavado foram coletadas, bem como as frações dos eluatos, e mantidas a 4QC.
[0128] Para as purificações realizadas com a coluna HiTrap™ Capto Q, equilibrou-se a coluna com 3VC do tampão A (10 mM NaCI, 100 mM Acetato de Sódio, pH 4,5). Em seguida, 20VC de meio condicionado contendo reCGpa foram diluídos 10X em tampão A, filtrados em filtros de 0,45μιτι e aplicados à coluna, seguido de lavagem da coluna (5 VC) com o tampão A. Para a eluição, diferentes regimes isocráticos de tampão B (1 M NaCI, 100mM Acetato de Sódio, pH 4,5) foram aplicados: 0-1 1 mM NaCI; 1 1 -19mM NaCI; 19-40mM NaCI e finalizado em 1 M NaCI, em um intervalo de 12 VC. As frações de permeado e de lavado foram coletadas, bem como as frações dos eluatos, tiveram o pH ajustado para 7,4 e foram mantidas a 4QC.
[0129] Para os dois tipos de cromatografia realizadas, as frações, permeado, lavagens e eluatos foram diluídas e submetidas à detecção de reCGpa por ELISA {PMSG ELISA Kit, ALPCO), seguindo-se o protocolo do fabricante. As frações ativas foram concentradas, utilizando-se filtros com corte de 10kDa (CentriconTM - Millipore®) e utilizadas para as seguintes análises: análise do processo de purificação em géis de poliacrilamida, utilizando-se o corante Coomassie Brilliant Blue, e ensaio in vivo (Figura 8).
[0130] A Figura 8 ilustra a atividade biológica in vivo da reCG da invenção parcialmente purificada pela coluna HiTrap™ Con A, a partir da resposta uterina de ratas pré-púberes de 25 dias após tratamento com Folligon ou reCG produzido na ausência de soro fetal bovino e parcialmente purificado pela coluna HiTrap™ Con A. O eixo das abscissas apresenta os valores relativos aos tratamentos realizados, que consistiram em doses (5, 10, 20 e 40 Ul) do controle positivo Folligon ou de reCG da invenção produzido pelas células CHO-DG44 e parcialmente purificado, e o controle negativo PBSA; o eixo das ordenadas apresenta os valores relativos ao peso (mg) dos órgãos reprodutores dissecados no quarto dia após o tratamento.
Exemplo 12: Estudo de N-qlicosilação através de NP-HPLC de N-qlicanos marcados com 2-AB e digestão com exoqlicosidases
[0131] As frações enriquecidas em reCGp obtidas no Exemplo 1 1 foram concentradas em torno de 100X utilizando-se o dispositivo Centricon com corte de 10kDa (Millipore®) e aplicadas em géis de SDS-PAGE, conforme descrito no Exemplo 1 1 . Amostras de 20Uls de Folligon e 20Uls do padrão internacional de eCG também foram aplicados em géis de SDS-PAGE de modo a realizar a comparação proposta. Os géis contendo as amostras a serem analisadas foram destinados à coloração por Comassie Blue (1 ,25g de Coomassie R-250 Brilliant Blue diluído em 250ml_ de metanol, 50ml_ de ácido acético glacial e 200ml_ de água destilada) por 16h. Estes géis foram lavados e descorados com solução de contendo 7,5% ácido acético e 15% metanol em água destilada. Após a descoloração, as bandas presentes na faixa de tamanho do eCG foram excisadas do gel, cortadas individualmente com um bisturi, secas por 8h em centrífuga à vácuo a 30 °C (SpeedVac) e processadas através de um protocolo adaptado de ROYLE et al. (ROYLE et al., Determining the structure of oligosaccharides N- and O-linked to glycoproteins. Curr Protoc Protein Sei. 2006 Mar;Chapter 12:Unit 12.6).
[0132]O protocolo consiste na liberação dos glicanos com uma digestão em gel realizada com PNGaseF e marcação destes com 2-aminobenzeno {Glyko Signal 2-AB labeling kit, Prozyme®). Estas amostras de glicanos marcados foram então aplicadas em uma coluna de amida { Waters X-Bridge 3.5um amide column de 4.6 X 250mm), acoplada a uma bomba { Waters Binary pump 1525u) e submetidas à cromatografia de fase normal utilizando-se o sistema Waters 2475, sendo detectadas através de um detector de fluorescência (Waters multi wavelength fluorescent detector, excitação a 330nm e emissão a 420nm). Todas as amostras marcadas a serem analisadas, bem como o padrão de unidades de glicose {2-AB glucose ladder - Prozyme®) e o branco (Água Ultrafiltrada, Milli-Q - Millipore®) foram diluídos 5X em Acetonitrila antes da aplicação na coluna de amida. O programa utilizado encontra-se sumarizado na Tabela 2.
Tabela 2 - Programa de NP-HPLC utilizado para analisar glicanos de eCGp recombinante da invenção e eCG comercial.
Figure imgf000040_0001
63 0,86 20 80
64 0 20 80
Tampão A: Formato de Amónio 50mM, pH 4.4.
Tampão B: Acetonitrila. Volume da coluna: 1 ml_.
[0133]O cálculo de unidades de glicose (GU) correspondentes a cada pico obtido foi realizado comparando-se o tempo de retenção destes contra a curva do padrão de glicose (nove pontos), em uma distribuição de quinta ordem polinomial. Desta forma, foi possível determinar GUs para cada tempo de retenção obtido correspondente a cada pico de cada amostra.
[0134]Alíquotas do pool de glicanos obtidos para cada amostra foram secos por centrifugação avácuo e ressuspendidos em 2μΙ_ do tampão 5X de glicosidases (Prozyme®), adicionados de 1 μΙ_ de um array de glicosidases e água q.s.p.até 10μΙ_. A seguinte combinação de glicosidases, em uma incubação a 37°C por 16h, foi utilizada para digerir as amostras de glicanos até suas estruturas basais:
1 . Sialidase {Glyko Sialidase A TM- A. Urefaciens - Prozyme);
2. Sialidase + Fucosidase {Glyko β-Fucosidase™ - Bovine Testis - Prozyme);
3. Sialidase + Fucosidase + Galactosidase {Glyko β-Fucosidase™- Bovine Testis - Prozyme) e
4. Sialidase + Fucosidase + Galactosidase + Hexosaminidase {Glyko Hexosaminidase™ - Jack Bean - Prozyme).
[0135] Após a digestão, estas amostras foram purificadas em cartucho de purificação de glicanos {Glyko clean S - Prozyme) e submetidas novamente à HPLC, nas mesmas condições descritas acima.
[0136]Comparações entre estruturas putativas de glicanos presentes em eCG descritas na literatura, estruturas pré-caracterizadas disponíveis em um banco on Une {Glycobase 3.2) e as GUs obtidas por HPLC permitiram uma análise quantitativa e qualitativa dos glicanos liberados pelas sucessivas digestões realizadas. [0137] A Figura 9 mostra as estruturas putativas selecionadas para cada pico, após comparação com o padrão da digestão realizada com exoglicosidades. No eixo das abscissas encontram-se os valores relativos de unidades de glicose (GU) obtidos para cada cromatografia, enquanto que no eixo das ordenadas encontram-se as intensidades dos picos eluídos (EU). No painel A, encontram-se as estruturas não digeridas, e nos painéis B, C e D encontram-se as estruturas obtidas após digestão com sialidase, sialidase + galactosidade + fucosidase e sialidase + galactosidase + fucosidase + hexosaminidase, respectivamente.
[0138] A Figura 10 mostra as estruturas putativas de N-glicanos obtidas em frações enriquecidas em reCG da invenção. No eixo das abscissas encontram- se os valores relativos de unidades de glicose (GU) obtidos para cada cromatografia, enquanto que no eixo das ordenadas encontram-se as intensidades dos picos eluídos (EU). As setas indicam possíveis estruturas de N-glicanos atribuídas a cada pico obtido para reCG expresso na linhagem CHO-DG44. Após análise do perfil de N-glicosilação de reCG, foi possível verificar a presença majoritária de picos correspondentes a N-glicanos di- ou tri-galactosilados sendo estes posteriormente mono-, di- ou tri-sialilados. Isto está de acordo com o perfil de N-glicanos observado para o eCG comercial Folligon (Figura 9).
[0139] A figura 1 1 mostra os resultados de expressão gênica obtidos para os transcritos correspondentes às enzimas das vias de glicosilação em células controle (células CHO não-produtoras de eCG, denominadas Crtl) e células produtoras de eCG (denominadas eCG), ambas cultivadas na presença de soro fetal bovino (FCS) ou na sua ausência (SFM - serum-free médium). A expressão gênica foi analisada através de PCR {Polymerase Chain Reactiorí) quantitativa em tempo real (qRT-PCR), utilizando o gene GAPDH {Glyceraldehyde-3-Phosphate Dehydrogenase) como normalizador. Os alvos analisados foram: UDP-GlnNAc-2-epimerase, CMP-AS-sintetase, CMP-SA- transporter, β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 3 (ST3-GalTIII), β- galactosidase α 2,3-sialiltransferase 4 (ST3-GalTIV), β-galactosidase α 2,3- sialiltransferase 6 (ST3-GalTVI), Sialidase I, Sialidase II. Foi possível obter o aumento da expressão dos transcritos de UDP-GlnNAc-2-epimerase, CMP-AS- sintetase, CMP-SA-transporter, β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 3 (ST3- GalTIII), β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 4 (ST3-GalTIV), β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 6 (ST3-GalTVI) e Sialidase I
Exemplo 12: Ensaio clínico realizado em vacas em anestro
[0140] Um ensaio clínico foi realizado em vacas em anestro com o produto reCG . O estudo envolveu 45 fêmeas bovinas Bos indicus clinicamente saudáveis, com peso entre 350 e 600 kg e em idade reprodutiva entre 3 e 10 anos. Os animais foram mantidos em piquete de Bracharia brízantha com lotação de 1 UA/ha em sistema de pastejo contínuo durante o período experimental e tiveram acesso livre a água e ao sal mineral.
[0141] Foram incluídos no estudo animais que não apresentavam doenças reprodutivas; não receberam nenhum tipo de procedimento reprodutivo (inseminação, cobertura ou colheita de embriões) 20 dias antes do início do experimento; estavam clinicamente saudáveis ao início do período experimental e não receberam quaisquer tratamentos de doenças nos 10 dias anteriores ao estudo; não tinham recebido administração de qualquer produto hormonal nos 30 dias precedentes ao estudo; apresentavam escore de condição corporal acima de 2,0 (escala de 1 a 5, AYRES et. al., Validation of body condition score as a predictor of subcutaneous fat in Nelore (Bos indicus) cows. Livest. Sei. 2009; 123:175-179). Para ser incluído no estudo um dos ovários do animal deveria apresentar folículo dominante.
[0142] As 45 fêmeas recrutadas, distribuídas em três grupos de tratamentos (reCG -CHO-DG44, Controle Negativo e Controle Positivo Folligon), de forma que cada grupo continha 15 animais. A distribuição do tratamento foi realizada ao acaso por delineamento em blocos casualizado (DBC), dentro de cada categoria de diâmetro folicular (< 8mm, entre 8 e 10mm, entre 10 e 12mm e > 12mm). Os animais dos grupos tratados com as formulações CB050, preparada através da concentração da proteína contida no sobrenadante da cultura de células por ultrafiltração, formulação do concentrado com lactose, manitol e metilparabeno; e liofilização, e Controle positivo receberam uma única dose de 300UI/animal, por via intramuscular, 8 dias após o início do protocolo de sincronização da ovulação. Enquanto os animais do grupo Controle Negativo receberam uma única dose de 1 ,5ml_ de solução fisiológica estéril.
[0143] No dia do início do estudo (DO), os animais foram avaliados quanto ao escore de condição corporal, estado geral de saúde e avaliação reprodutiva via ultrassonografia. Nesse mesmo dia (DO), as fêmeas foram previamente sincronizadas. A sincronização consistiu na administração intramuscular de 2mg de benzoato de estradiol e inserção de um dispositivo intravaginal de progesterona. Oito dias depois (D8), o dispositivo intravaginal de progesterona foi removido e todos os animais receberam por via intramuscular, 500μg de Cloprostenol (PGF) e 1 mg de cipionato de estradiol. Nesse momento, os animais foram distribuídos em grupos, onde receberam os tratamentos (300UI de reCG da invenção; 300UI de Folligon ou 1 ,5 mL de controle negativo).
[0144]As avaliações ultrassonográficas (Kai Xin, KX 5100, Xuzhou KaiXin Electronic Instrument Company Ltd, China; Figura 6) foram realizadas em todos os animais do estudo, nos momentos: seleção dos animais (DO), no D8 para avaliação do folículo dominante e separação dos grupos de tratamento; no D10 para avaliação do crescimento folicular entre o D8 e D10; e no D18 para avaliar a taxa de ovulação e diâmetro do corpo lúteo.
[0145]
Tabela 3: Estudo Clínico de reCG da invenção em vacas Nelore em anestro.
ΓβΟΘβα
ENSAIO CLÍNICO Controle Folligon P
CHO
Número de animais 15 15 15
Escore Condição Corporal 2,6±0,1 2,7±0,1 2,6±0,1 0,94
Peso (Kg) 443,7±3,4 439,3±7,8 434,0±6,0 0,67
Idade (meses) 75,2±2,2 76,8±3,1 78,4±2,6 0,88
0 folicular no D8 (mm) 10,4±0,9 10,4±0,9 9,6±0,6 0,91 0 folicular no D10 (mm) 10,7±1 ,0 12,6±0,7 12,5±0,8 0,27
Crescimento folicular do D8 ao D10 (mm) 0,4±0,1 b 1 ,4±0,3a 1 ,5±0,3a 0,01
0 do CL no D18 (mm) 20,6±0,8 21 ,1 ±0,6 20,9±0,6 0,86
60,0 86,7 86,7
Taxa de ovulação (%) 0,07
(9/15) (13/15) (13/15)
[0146] Podemos observar que o diâmetro do folículo dominante dos diferentes grupos experimentais apresentava, na média, tamanho semelhante (P=0,91 ), reforçando a homogeneidade de distribuição dos diferentes tamanhos de folículos entre os tratamentos. Verificou-se que as vacas dos grupos Folligon e reCG , obtiveram maior crescimento final do folículo dominante (P=0,01 ) do que o grupo controle. Resultados semelhantes foram observados por SALES et al. (SALES et al., Fixed-time Al protocols replacing eCG with a single dose of FSH were less effective in stimulating follicular growth, ovulation, and fertility in suckled-anestrus Nelore beef cows. Anim Reprod Sei. 201 1 Mar;124(1 -2):12- 8), na qual o tratamento com eCG promoveu maior crescimento folicular (eCG - 1 ,40mm/dia vs Não eCG - 0,95mm/dia). Não se verificou diferença entre os grupos experimentais no diâmetro do folículo dominante no D10 (P=0,27), na taxa de ovulação (P=0,07) e no diâmetro do corpo lúteo (P=0,86).

Claims

Reivindicações
1 . PROCESSO DE PRODUÇÃO DE UMA GONADOTROFINA CORIÔNICA EQUINA RECOMBINANTE, caracterizado pelas etapas de:
(a) inserção de uma sequência de DNA que codifica uma eCG em um vetor de expressão que inclui o cDNA codificador da enzima diidrofolato redutase (DHFR);
(b) co-transfecção do vetor da etapa (a) com um vetor de seleção em células de expressão duplo negativas para o gene DHFR;
(c) Seleção das células transfectadas resistentes por tratamento com o antibiótico ao qual devem apresentar resistência;
(d) Amplificação gênica do vetor de expressão e seleção das células super-produtoras de reCG por tratamento com concentrações crescentes de inibidor de DHFR;
(e) cultivo das células super-produtoras de reCGap com perfil de expressão gênica determinado para os transcritos das enzimas das vias de glicosilação para expressão da reCGaP;
(f) purificação da reCGap obtida.
2. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo fato de que a sequência de DNA que codifica uma eCG compreende uma cadeia de cDNA fusionada contendo ambas as sequências codificadoras das cadeias α e β de gonadotrofina coriônica equina (eCG).
3. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo fato de que a sequência de DNA que codifica uma eCG compreende cadeias de cDNA contendo as sequências codificadoras das cadeias α e β separadas.
4. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo fato de que a sequência de DNA que codifica uma eCG é a SEQ ID No. 1 .
5. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo fato de o vetor de expressão ser o vetor pNU0.
6. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo fato de que as células de expressão são escolhidas dentre células de linhagem mamífera, células de inseto ou qualquer tipo celular compreendendo perfil de expressão gênica determinado para os transcritos das enzimas das vias de glicosilação.
7. PROCESSO de acordo com a reivindicação 6, caracterizado pelo fato de que as células de expressão são células da linhagem CHO, BHK, 293, Vero ou seus derivados.
8. PROCESSO de acordo com a reivindicação 7, caracterizado pelo fato de que as células de expressão são células da linhagem CHO-DG44.
9. PROCESSO, de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo vetor de seleção ser o vetor pX343.
10. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo fato de que a proporção do vetor de expressão para vetor de seleção na etapa de cotransfecção varia entre 1 :1 e 1 :5000.
1 1 . PROCESSO de acordo com a reivindicação 10, caracterizado pelo fato de que dita proporção varia entre 1 :40 e 1 :120.
12. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 1 , caracterizado pelo fato de que dita proporção é 1 :40.
13. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo fato de que o inibidor de DHFR é metotrexato.
14. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo fato de que ditas enzimas das vias de glicosilação são UDP-GlnNAc-2-epimerase, CMP-SA-sintetase, CMP-SA-transporter, β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 3 (ST3-GalTIII), β-galactosidase α 2,3-sialiltransferase 4 (ST3-GalTIV), β- galactosidase α 2,3-sialiltransferase 6 (ST3-GalTVI), Sialidase I, Sialidase II.
15. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo fato de que dito cultivo das células superprodutoras de reCG ocorre em meio de cultivo contendo entre cerca de 2 a 10% de soro fetal bovino ou meio quimicamente definido suplementado com fatores de crescimento e precursores utilizados nas vias de glicosilação.
16. PROCESSO de acordo com qualquer uma das reivindicações 1 a 15, caracterizado pelo fato de que são as células com dito perfil gênico para os transcritos das enzimas das vias de glicosilação aquelas que garantem a atividade biológica da reCG na espécie alvo.
17. PROCESSO de acordo com qualquer uma das reivindicações 1 a 15, caracterizado por possibilitar uma taxa de expressão de reCG na faixa de 1 a 100 mg/L.
18. PROCESSO de acordo com a reivindicação 1 , caracterizado pelo fato de que a etapa de purificação é realizada por pelo menos um dentre cromatografia por troca iônica e de afinidade, precipitação de proteínas, ultrafiltração ou filtração tangencial.
19. GONADOTROFINA CORIÔNICA EQUINA RECOMBINANTE caracterizado pelo fato de que é produzida pelo processo definido nas reivindicações 1 a 18.
20. COMPOSIÇÃO VETERINÁRIA caracterizada por compreender:
(a) uma quantidade veterinariamente eficaz da reCG definida pela reivindicação 19;
(b) opcionalmente aditivos; e
(c) um veículo farmaceuticamente aceitável.
21 . USO DA GONADOTROFINA CORIÔNICA EQUINA RECOMBINANTE, definida na reivindicação 19, ou da composição veterinária contendo dita gonadotrofina caracterizado pelo fato de ser na fabricação de um medicamento para o tratamento de condições veterinárias e protocolos relacionados à reprodução e à ovulação de mamíferos.
22. USO DA GONADOTROFINA CORIÔNICA EQUINA RECOMBINANTE, definida na reivindicação 19, ou da composição contendo dita gonadotrofina caracterizado pelo fato de ser na fabricação de kit de diagnóstico de condições veterinárias e protocolos relacionados à reprodução e à ovulação de mamíferos.
23. USO DA GONADOTROFINA CORIÔNICA EQUINA RECOMBINANTE, definida na reivindicação 19, ou da composição contendo dita gonadotrofina, caracterizado pelo fato de ser na fabricação de suplemento para o cultivo de células.
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