WO2016167340A1 - Braf遺伝子変異を有する細胞に対する細胞死誘導剤、当該細胞の増殖抑制剤及び当該細胞の増殖異常に起因する疾患の治療用医薬組成物 - Google Patents

Braf遺伝子変異を有する細胞に対する細胞死誘導剤、当該細胞の増殖抑制剤及び当該細胞の増殖異常に起因する疾患の治療用医薬組成物 Download PDF

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    • G01N2500/00Screening for compounds of potential therapeutic value
    • G01N2500/10Screening for compounds of potential therapeutic value involving cells

Definitions

  • the present invention relates to a cell death inducer for a cell having a BRAF gene mutation (for example, a kind of cancer cell), a growth inhibitor of the cell, and a pharmaceutical composition for treating a disease caused by abnormal growth of the cell,
  • the present invention relates to a method for screening a death inducer and / or a cytostatic agent.
  • the BRAF gene is a gene encoding one of serine threonine kinases constituting the RAS-RAF-MAPK pathway.
  • BRAF gene mutations have been reported in various tumors. For example, a mutation (V600E) in which 600th valine is substituted with glutamic acid is observed in many cancer cells. BRAF with the V600E mutation is known to always activate downstream signals, leading to cell proliferation without stimulation from outside the cell.
  • the BRAF gene having the V600E mutation has been observed in many colorectal cancers (5-15%) and melanoma (about 60%). In many cancers such as pancreatic cancer and colon cancer, mutations in the KRAS gene are frequently observed.
  • KRAS protein is a G protein localized inside the cell membrane.
  • RAS such as KRAS activates RAF such as CRAF and BRAF, RAF continues to form MEK, and MEK activates MAPK (Non-Patent Documents 1 and 2). Cases having both BRAF mutation and KRAS mutation are rare and are in a relationship of BRAF mutation and KRAS mutation mutual exclusion (Non-patent Document 3).
  • GST glutathione-S-transferase
  • GST glutathione-S-transferase
  • GST is classified into six types of isozymes of ⁇ , ⁇ , ⁇ , ⁇ , ⁇ , and ⁇ as representatives based on the amino acid sequence.
  • GST- ⁇ also called glutathioneathS-transferase pi or GSTP1
  • GSTP1 glutathioneathS-transferase pi
  • Non-Patent Documents 4 to 6 reports that when an androgen-independent prostate cancer cell line overexpressing GST- ⁇ is allowed to act on siRNA for GST- ⁇ , its growth is suppressed and apoptosis is increased.
  • GST- ⁇ forms a complex with c-Jun N-terminal kinase (JNK) and inhibits JNK activity (Non-patent Document 8). Furthermore, GST- ⁇ is known to be involved in S-glutathionization of proteins related to the stress response of cells (Non-patent Document 9). Furthermore, GST- ⁇ is known to contribute to the protective action against cell death induced by reactive oxygen species (ROS) (Non-patent Document 10). Thus, it can be understood that GST- ⁇ has various features and functions among GSTs.
  • ROS reactive oxygen species
  • Patent Document 11 discloses that apoptosis of cancer cells can be induced by using a drug that suppresses GST- ⁇ and an autophagy inhibitor such as 3-methyladenine as active ingredients. Further, Patent Document 2 discloses that inhibition of expression of GST- ⁇ and Akt and the like simultaneously suppresses cell proliferation and induces cell death, and autophagy induced by inhibition of GST- ⁇ expression includes Akt. It is disclosed that it is remarkably suppressed by simultaneously inhibiting the expression of and the like.
  • the present invention provides an agent having a cell death-inducing action and / or a cell growth-inhibiting action on cells having a mutation in the BRAF gene, and a pharmaceutical composition for treating a disease caused by abnormal cell growth. It is an object of the present invention to provide a method for screening a cell death inducer and / or a cell growth inhibitor.
  • a cell death inducer for cells having a mutation in the BRAF gene which contains a drug that suppresses GST- ⁇ as an active ingredient.
  • a cell growth inhibitor for cells having a mutation in the BRAF gene which contains a drug that suppresses GST- ⁇ as an active ingredient.
  • the drug is a substance selected from the group consisting of RNAi molecules, ribozymes, antisense nucleic acids, DNA / RNA chimeric polynucleotides, and vectors expressing at least one of these (1) ) Or (2).
  • a pharmaceutical composition for treating a disease caused by abnormal growth of cells having a mutation in the BRAF gene comprising the agent according to any one of (1) to (6) above.
  • a screening method for a cell death inducer and / or a cell growth inhibitor of a cell having a mutation in BRAF gene comprising selecting a drug that suppresses GST- ⁇ .
  • the cell death inducer according to the present invention can induce cell death very strongly against cells having a mutation in the BRAF gene. Therefore, the cell death inducer according to the present invention can exhibit a very high medicinal effect as a pharmaceutical composition for the treatment of diseases caused by abnormal growth of cells having a mutation in the BRAF gene.
  • the cell growth inhibitor according to the present invention can be suppressed very strongly against cells having a mutation in the BRAF gene. Therefore, the cell growth inhibitor according to the present invention can exhibit a very high medicinal effect as a pharmaceutical composition for the treatment of diseases caused by abnormal growth of cells having a mutation in the BRAF gene.
  • the screening method of the present invention it is possible to select a drug that induces cell death and / or suppresses cell proliferation very strongly against cells having a mutation in the BRAF gene.
  • the cell death inducer and cell growth inhibitor according to the present invention contain a drug that suppresses GST- ⁇ as an active ingredient.
  • the cell death inducer and cell growth inhibitor according to the present invention exhibit a cell death inducing effect and a cell growth inhibiting effect on cells having a mutation in the BRAF gene.
  • GST- ⁇ refers to an enzyme that catalyzes glutathione conjugation encoded by the GSTP1 gene.
  • GST- ⁇ exists in various animals including humans, and its sequence information is also known (for example, human: NM_000852 (NP_000843), rat: NM_012577 (NP_036709), mouse: NM_013541 (NP_038569), etc.)
  • the numbers are NCBI databases.
  • the accession number of the base sequence is shown outside the parentheses, and the amino acid sequence number is shown in parentheses).
  • nucleotide sequence of the coding region of the human GST- ⁇ gene registered in the database is shown in SEQ ID NO: 1
  • amino acid sequence of the human GST- ⁇ protein encoded by the human GST- ⁇ gene is shown in SEQ ID NO: 2.
  • GST- ⁇ can be specified by a specific base sequence and amino acid sequence, but the possibility of base sequence and amino acid sequence variations between individual organisms (including polymorphisms) must be considered. I must. That is, GST- ⁇ is not limited to a protein having the same sequence as the amino acid sequence registered in the database, and one or more, typically one or several, for example 1 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 or 10 amino acids have different sequences, including those having functions equivalent to GST- ⁇ .
  • GST- ⁇ comprises a base sequence having 70% or more, 80% or more, 90% or more, 95% or more, or 97% or more identity to the specific base sequence described above, and GST- ⁇ It also includes those that encode proteins with equivalent functions.
  • the specific function of GST- ⁇ means an enzyme activity that catalyzes glutathione conjugation as described above.
  • the “drug that suppresses GST- ⁇ ” used in the present specification is not limited, and includes, for example, a drug that suppresses production and / or activity of GST- ⁇ , and degradation and / or inactivation of GST- ⁇ .
  • Drugs that promote Examples of drugs that suppress GST- ⁇ production include, but are not limited to, RNAi molecules, ribozymes, antisense nucleic acids, DNA / RNA chimeric polynucleotides for DNA encoding GST- ⁇ , and these. A vector etc. are mentioned.
  • any compound that acts on GST- ⁇ can be used as a drug that suppresses GST- ⁇ .
  • organic compounds amino acids, polypeptides or derivatives thereof, low molecular compounds, sugars, high molecular compounds, etc.
  • inorganic compounds, and the like can be used as a drug that suppresses GST- ⁇ .
  • Such a compound may be a natural substance or a non-natural substance.
  • polypeptide derivatives include modified polypeptides obtained by adding modifying groups, variant polypeptides obtained by altering amino acid residues, and the like.
  • such compounds may be single compounds, but compound libraries, gene library expression products, cell extracts, cell culture supernatants, fermentative microbial products, marine organism extracts, plant extracts A thing etc. may be sufficient. That is, the “drug that suppresses GST- ⁇ ” is not limited to nucleic acids such as RNAi molecules, and includes any compound.
  • the drug that suppresses the activity of GST- ⁇ is not limited to this, but for example, a substance that binds to GST- ⁇ , such as glutathione, glutathione analog (for example, WO 95/08563, WO 96/40205, WO 99/54346, as described in Non-Patent Document 4, etc.), ketoprofen (Non-Patent Document 2), indomethacin (Hall et al., Cancer Res. 1989; 49 (22): 6265-8) , Ethacrynic acid, pyroprost (Tew et al., Cancer Res. 1988; 48 (13): 3622-5), anti-GST- ⁇ antibody, dominant negative mutant of GST- ⁇ , and the like.
  • these drugs are commercially available or can be appropriately produced based on known techniques.
  • Drugs that suppress GST- ⁇ production or activity include RNAi molecules, ribozymes, antisense nucleic acids, DNA / RNA chimeras for DNA encoding GST- ⁇ due to its high specificity and low possibility of side effects. Polynucleotides and vectors expressing them are preferred.
  • the inhibition of GST- ⁇ can be determined by the fact that the expression and activity of GST- ⁇ are suppressed in the cells as compared with the case where no GST- ⁇ inhibitor was allowed to act.
  • the expression of GST- ⁇ is not limited to any known method, for example, immunoprecipitation using an anti-GST- ⁇ antibody, EIA, ELISA, IRA, IRMA, Western blotting, immunohistochemistry, immunization Cytochemistry, flow cytometry, various nucleic acids using nucleic acids that specifically hybridize to a nucleic acid encoding GST- ⁇ or a unique fragment thereof or a transcription product (eg, mRNA) or splicing product of the nucleic acid. It can be evaluated by a hybridization method, Northern blot method, Southern blot method, various PCR methods and the like.
  • the activity of GST- ⁇ is not limited to the known activity of GST- ⁇ .
  • it binds to proteins such as Raf-1 (particularly phosphorylated Raf-1) and EGFR (particularly phosphorylated EGFR).
  • the sex and the like can be evaluated by analyzing by any known method such as immunoprecipitation, Western blotting, mass spectrometry, pull-down, surface plasmon resonance (SPR), and the like.
  • an RNAi molecule refers to any molecule that causes RNA interference, including, but not limited to, siRNA (small interfering RNA), miRNA (micro RNA), shRNA (short hairpin RNA), ddRNA (DNA- directed (RNA), piRNA (Piwi-interacting RNA), double-stranded RNA such as rasiRNA (repeat associated ⁇ siRNA), and variants thereof.
  • siRNA small interfering RNA
  • miRNA miRNA
  • micro RNA miRNA
  • shRNA short hairpin RNA
  • ddRNA DNA- directed (RNA)
  • piRNA piRNA
  • double-stranded RNA such as rasiRNA (repeat associated ⁇ siRNA)
  • antisense nucleic acid includes RNA, DNA, PNA, or a composite thereof.
  • a DNA / RNA chimeric polynucleotide is not limited, for example, a double-stranded polynucleotide comprising DNA and RNA that inhibits expression of a target gene described in JP-A-2003-219893. Including.
  • the compounding amount of the active ingredient in the agent or composition of the present invention may be an amount that induces cell death such as apoptosis and / or suppresses cell proliferation when the agent or composition is administered.
  • an amount that does not cause adverse effects exceeding the benefits of administration is preferred.
  • Such an amount is known or can be appropriately determined by an in vitro test using cultured cells or a model animal such as a mouse, rat, dog or pig. Such a test method is well known to those skilled in the art.
  • Induction of apoptosis is evaluated by various known methods such as DNA fragmentation, binding of annexin V to the cell membrane, changes in mitochondrial membrane potential, caspase activation and other phenomena specific to apoptosis, and TUNEL staining.
  • the amount of the active ingredient may vary depending on the dosage form of the agent or the composition. For example, when a composition of a plurality of units is used for one administration, the amount of the active ingredient blended in one unit of the composition may be a plurality of the amount of the active ingredient necessary for one administration. it can. Those skilled in the art can appropriately adjust the blending amount.
  • a cell death inducer, a cell growth inhibitor, a cell death inducer composition or a cell growth inhibitory composition can be produced by blending a drug that suppresses GST- ⁇ as an active ingredient.
  • a drug that suppresses GST- ⁇ which is used for cell death induction or cell growth suppression. Furthermore, it is possible to provide a method for inducing cell death or a method for suppressing cell proliferation, which comprises administering an effective amount of a drug that suppresses GST- ⁇ .
  • any of the above-described cell death induction or cell growth suppression methods such as apoptosis may be an in-vitro method or an in-vivo method.
  • the drug in the method is as described above, and the effective amount of the drug may be an amount that induces cell death or suppresses cell proliferation in the administered cell.
  • an amount that does not cause adverse effects exceeding the benefits of administration is preferred.
  • Such an amount is known or can be appropriately determined by an in vitro test using cultured cells or the like, and such a test method is well known to those skilled in the art.
  • Induction of cell death or suppression of cell proliferation can be evaluated by various known techniques including those described above.
  • the effective amount may not necessarily cause cell death or growth suppression to all cells of the cell population when the drug is administered to a predetermined cancer cell population.
  • the effective amount is 1% or more, 2% or more, 3% or more, 4% or more, 5% or more, 6% or more, 8% or more, 10% or more, 12% or more of the cells in the cell population, 15% % Or more, 20% or more, or even 25% or more may be an amount that causes apoptosis or growth inhibition.
  • the cell death inducer and cell growth inhibitor according to the present invention act on cells having a mutation in the BRAF gene.
  • a cell having a mutation in the BRAF gene is a cell (typically a cancer cell) that exhibits a growth abnormality due to the mutation in the BRAF gene.
  • the cell death inducer and cell growth inhibitor according to the present invention are cells that highly express GST- ⁇ among cells exhibiting abnormal growth due to mutations in the BRAF gene (typically GST- ⁇ is increased). It is preferable to apply to cancer cells that express.
  • cancer cells that highly express GST- ⁇ are cells in which the BRAF gene has a mutation and shows abnormal cell proliferation, and the expression level of GST- ⁇ is significantly higher than normal cells. Means.
  • the expression level of GST- ⁇ can be measured according to a conventional method such as RT-PCR or microarray.
  • the mutation in the BRAF gene means a mutation such as deletion, substitution, addition or insertion in the amino acid sequence of the wild type BRAF, or a mutation in the expression control region of the BRAF gene.
  • the mutation in the BRAF gene is a so-called gain-of-function mutation (gain of function). That is, a BRAF gene having a mutation (sometimes referred to as a mutant BRAF gene) includes a gene encoding a mutant BRAF whose serine-threonine kinase activity is enhanced due to the mutation.
  • Mutant BRAF genes also include those in which the expression control region contains a mutation and the expression level is increased compared to the wild type BRAF gene. That is, a cell expressing a mutant BRAF gene has a characteristic that a downstream signal from BRAF (for example, a signal to MEK) is constantly maintained by expressing the mutant BRAF or increasing the expression level of BRAF. Have.
  • the mutant BRAF gene includes a gene encoding a mutant BRAF in which valine encoded by codon 600 in the wild-type BRAF gene is replaced with glutamic acid (denoted as V600E, the same applies hereinafter), V600D, V600G, V600K, V600M, V600R V600L, G469A, G469V, D594N, V600insT (insertion of T), and the like.
  • V600E glutamic acid
  • the cell death inducer or cell growth inhibitor of the present invention can effectively induce cell death or suppress cell proliferation even in cancer cells having mutations in the BRAF gene, cancer cells having mutations in the BRAF gene It is effective as a component of a pharmaceutical composition for a disease caused by abnormal growth of cerevisiae.
  • a pharmaceutical composition for diseases caused by abnormal growth of cancer cells having a mutation in the BRAF gene can be produced by blending a drug that suppresses GST- ⁇ as an active ingredient.
  • it is possible to treat / treat diseases caused by abnormal cell proliferation including administering an effective amount of the produced pharmaceutical composition to a subject in need thereof.
  • the pharmaceutical composition is effective for treating diseases caused by abnormal growth of cancer cells having a mutation in the BRAF gene.
  • diseases caused by cancer cells having mutations in the BRAF gene include, but are not limited to, cancers that highly express GST- ⁇ , and in many cases, cancers having mutations in the BRAF gene are GST Included in cancers that highly express - ⁇ .
  • fibrosarcoma malignant fibrous histiocytoma, liposarcoma, rhabdomyosarcoma, leiomyosarcoma, hemangiosarcoma, Kaposi sarcoma, lymphangiosarcoma, synovial sarcoma, chondrosarcoma, Sarcomas such as osteosarcoma, eye cancer, thyroid cancer (papillary cancer), meningeal cancer, brain tumor, pituitary cancer, salivary gland cancer, head and neck cancer, breast cancer, lung cancer (non-small cell cancer), esophageal cancer, gastric cancer, duodenal cancer , Appendic cancer, colon cancer, rectal cancer, liver cancer, pancreatic cancer, gallbladder cancer, bile duct cancer, anal cancer, renal cancer, ureteral cancer, bladder cancer, prostate cancer, penile cancer, testicular cancer, uterine cancer (endometrial cancer) Cancers
  • cancer includes epithelial malignant tumors and non-epithelial malignant tumors.
  • the cancer in the present invention may be any part of the body, for example, brain, head and neck, chest, limbs, lung, heart, thymus, esophagus, stomach, small intestine (duodenum, jejunum, ileum), large intestine (colon, cecum, appendix).
  • liver pancreas, gallbladder, anus, kidney, ureter, bladder, prostate, penis, testis, uterus, ovary, vulva, vagina, skin, striated muscle, smooth muscle, synovium, cartilage, bone, thyroid , Adrenal glands, peritoneum, mesentery, bone marrow, blood, vascular system, lymph nodes such as lymph nodes, lymph fluid and the like.
  • the cell death inducer or cell growth inhibitor of the present invention can effectively induce cell death even among cells having a mutation in the BRAF gene and having acquired resistance to the BRAF inhibitor, or Cell proliferation can be suppressed. Therefore, the cell death inducer or cell growth inhibitor of the present invention is a pharmaceutical composition for a disease caused by abnormal growth of cancer cells having a mutation in the BRAF gene and having resistance to a BRAF inhibitor. It is effective as a component of In addition, a pharmaceutical agent for a disease caused by abnormal growth of a cancer cell having a mutation in the BRAF gene and having resistance to a BRAF inhibitor by combining a drug that suppresses GST- ⁇ as an active ingredient A composition can be produced. Furthermore, treatment and treatment of diseases caused by abnormal cell proliferation, including administering an effective amount of the produced pharmaceutical composition to a subject in need thereof, that is, a patient with reduced therapeutic effect by a BRAF inhibitor can do.
  • a BRAF inhibitor specifically inhibits signal transduction caused by a substance that inhibits signal transduction downstream from BRAF, particularly, mutant BRAF having the above-described gain-of-function mutation (gain of function). It means to include substances.
  • BRAF inhibitors include Vemurafenib (PLX4032), Cas ⁇ No .: 918504-65-1, N- [3- [5- (4-chlorophenyl) -1H-pyrrolo [2,3-b] pyridine.
  • BRAF inhibitors include regorafenib, dasatinib, PLX-8394, BeiGene-283, PLX-3603, RG-7304 (CAS NO.: 213406-50-9), LY-3009120 (CAS NO .: 1454682 -72-4), rebastinib (Cas.No .: 1020172-07-9), 1H-pyrazolo [3,4-b] pyridine-5-carboxamide analog, ASN-003, Vemurafenib prodrug, N- ( thiophen-2-yl) benzamide derivatives, DCB-R0237, REDX-04988, EBI-907, EBI-945, gossipin, nanolipole-007, TEW-0201, miRNA-3157 and thiazole derivatives (NMS-P186, NMS-P285, NMS-P349, NMS-P383, NMS-P396 and NMS-P730).
  • BRAF inhibitors include SB590885 (Cas (No .: 405554-55-4, N, N-dimethyl-2- [4-[(4Z) -4- (1-nitroso-2,3 -dihydroinden-5-ylidene) -5- (1H-pyridin-4-ylidene) -1H-imidazol-2-yl] phenoxy] ethanamine), B-Raf inhibitor 1 (Cas No .: 1093100-40-3, 1 -N- (4-chlorophenyl) -6-methyl-5-N- [3- (7H-purin-6-yl) pyridin-2-yl] isoquinoline-1,5-diamine), B-Raf inhibitor 1 dihydrochloride (Cas No .: 1191385-19-9, 1-N- (4-chlorophenyl) -6-methyl-5-N- [3- (7H-purin-6-yl) pyridin-2-yl] iso
  • the pharmaceutical composition according to the present invention may be used in combination with other active ingredients in addition to the drug that suppresses GST- ⁇ .
  • the combined use includes, for example, administration of other active ingredients as separate preparations, and administration of other active ingredients as a combination with at least one other drug.
  • preparations containing other active ingredients may be administered before other preparations, simultaneously with other preparations, or after other preparations.
  • the BRAF inhibitor described above can be used as appropriate.
  • Other active ingredients include those that are effective in treating the target disease.
  • an anticancer agent can be used in combination.
  • anticancer agents include, for example, alkylating agents such as ifosfamide, nimustine hydrochloride, cyclophosphamide, dacarbazine, melphalan, ranimustine, gemcitabine hydrochloride, enocitabine, cytarabine ocphosphat, cytarabine formulation, tegafur uracil, tegafur Gimeracil / oteracil potassium combination drug (eg TS-1), antimetabolite such as doxyfluridine, hydroxycarbamide, fluorouracil, methotrexate, mercaptopurine, idarubicin hydrochloride, epirubicin hydrochloride, daunorubicin hydrochloride, daunor
  • platinum complexes such as carboplatin, cisplatin (CDDP) and nedaplatin
  • angiogenesis inhibitors such as thalidomide, neobasstat and bevacizumab, and L-asparaginase.
  • the active ingredient in the various agents, compositions, treatment methods, etc. of the present invention described in the present specification is a nucleic acid such as an RNAi molecule, a ribozyme, an antisense nucleic acid, a DNA / RNA chimeric polynucleotide, etc.
  • a nucleic acid such as an RNAi molecule, a ribozyme, an antisense nucleic acid, a DNA / RNA chimeric polynucleotide, etc.
  • the vector any known vector such as a plasmid vector, a phage vector, a phagemid vector, a cosmid vector, or a virus vector can be used.
  • the vector preferably includes at least a promoter that enhances the expression of the nucleic acid carried, and in this case, the nucleic acid is preferably operably linked to such a promoter.
  • Nucleic acid operably linked to a promoter means that the nucleic acid and the promoter are arranged so that the protein encoded by the nucleic acid is appropriately produced by the action of the promoter.
  • the vector may or may not be replicable in the host cell, and transcription of the gene may be performed outside or inside the nucleus of the host cell. In the latter case, the nucleic acid may be integrated into the genome of the host cell.
  • the active ingredient can be supported on various non-viral lipids or protein carriers.
  • examples of such carriers include, but are not limited to, cholesterol, liposomes, antibody protomers, cyclodextrin nanoparticles, fusion peptides, aptamers, biodegradable polylactic acid copolymers, polymers, and the like, and increase the efficiency of incorporation into cells.
  • cationic liposomes and polymers for example, polyethyleneimine
  • polymers useful as such carriers include those described in US ⁇ ⁇ ⁇ 2008/0207553, US 2008/0312174, and the like.
  • the active ingredient may be combined with other optional ingredients as long as the effect of the active ingredient is not hindered.
  • optional components include other chemotherapeutic agents, pharmacologically acceptable carriers, excipients, diluents and the like.
  • the composition may be coated with an appropriate material such as an enteric coating or a time-disintegrating material. It may be incorporated.
  • compositions of the present invention described herein can be produced by various routes including both oral and parenteral, such as, without limitation, oral, intravenous, Intramuscular, subcutaneous, topical, intratumoral, rectal, intraarterial, intraportal, intraventricular, transmucosal, transdermal, intranasal, intraperitoneal, intrapulmonary, intrauterine, etc. It may be formulated into a dosage form suitable for the administration route. Any known dosage form and formulation method can be adopted as appropriate (see, for example, Standard Pharmaceutical Sciences, Yoshiaki Watanabe, Nankodo, 2003, etc.).
  • dosage forms suitable for oral administration include, but are not limited to, powders, granules, tablets, capsules, solutions, suspensions, emulsions, gels, syrups, etc.
  • Suitable dosage forms include injections such as solution injections, suspension injections, emulsion injections, and injections prepared at the time of use.
  • Formulations for parenteral administration can be in the form of aqueous or non-aqueous isotonic sterile solutions or suspensions.
  • the various agents or compositions (including various pharmaceutical compositions) of the present invention described in the present specification may be targeted to specific tissues or cells. Targeting can be accomplished by any known technique. When intended for delivery to cancer, without limitation, for example, the formulation is passive by making the diameter 50 to 200 nm, particularly 75 to 150 nm, etc. suitable for the expression of enhanced Epermability (permeability and retention) effect. Targeting, CD19, HER2, transferrin receptor, folate receptor, VIP receptor, EGFR (Torchilin, AAPS J.
  • RAAG10 (Special Table 2005-532050), PIPA (Special Table 2006-506071), ligands such as KID3 (special table 2007-529197), peptides having RGD motif or NGR motif, F3, LyP-1 (Ruoslahti et al., J Cell Biol. 2010; 188 (6): 759-68) can be used as a targeting agent.
  • ligands such as KID3 (special table 2007-529197), peptides having RGD motif or NGR motif, F3, LyP-1 (Ruoslahti et al., J Cell Biol. 2010; 188 (6): 759-68) can be used as a targeting agent.
  • carriers containing retinoids as targeting agents can also be used. In addition to the above-mentioned documents, such carriers are described in WO 2009/036368, WO ⁇ ⁇ 2010/014117, WO ⁇ ⁇ 2012/170952, and the like.
  • compositions of the present invention may be supplied in any form, but from the viewpoint of storage stability, for example, a form that can be prepared at the time of use, for example, Alternatively, it may be provided in a form that can be prepared by a doctor and / or pharmacist, nurse, or other paramedical at or near a medical site. Such a form is particularly useful when the agent or composition of the present invention contains components that are difficult to stably store, such as lipids, proteins, and nucleic acids.
  • the agent or composition of the present invention is provided as one or more containers containing at least one of the essential components thereof, and is used prior to use, for example, within 24 hours, preferably 3 Prepared within an hour and more preferably immediately before use.
  • reagents, solvents, dispensing devices and the like that are usually available at the place of preparation can be appropriately used.
  • the present invention provides a preparation kit for a composition
  • a preparation kit for a composition comprising one or two or more containers containing active ingredients that can be contained in various agents or compositions of the present invention alone or in combination, and such a kit.
  • the necessary components of various agents or compositions provided in the form of may contain instructions describing how to prepare and administer the various agents or compositions of the present invention, such as instructions, electronic recording media such as CDs and DVDs, and the like. Good.
  • the kit of this invention may contain all the components for completing the various agents or compositions of this invention, it does not necessarily need to contain all the components. Therefore, the kit of the present invention may not contain reagents and solvents that are usually available at medical sites, experimental facilities, etc., such as sterile water, physiological saline, and glucose solution.
  • the effective amount in the various treatment methods of the present invention described in the present specification is, for example, an amount that reduces the symptoms of the disease or delays or stops the progression of the disease, preferably suppresses the disease, or The amount to heal.
  • an amount that does not cause adverse effects exceeding the benefits of administration is preferred.
  • Such an amount can be appropriately determined by an in vitro test using cultured cells or the like and a test in a model animal such as a mouse, rat, dog or pig, and such a test method is well known to those skilled in the art. .
  • the dose of the drug used in the treatment method of the present invention is known to those skilled in the art, or can be appropriately determined by the above-described test or the like.
  • the specific dose of active ingredient administered in the treatment methods of the invention described herein can vary depending on various conditions related to the subject in need of treatment, such as severity of symptoms, general health status of the subject, age, weight It can be determined in consideration of the subject's sex, diet, timing and frequency of administration, medications used in combination, responsiveness to treatment, dosage form, and compliance with treatment.
  • Administration routes include various routes including both oral and parenteral, such as oral, intravenous, intramuscular, subcutaneous, topical, intratumoral, rectal, intraarterial, intraportal, intraventricular, transmucosal, Routes such as transdermal, intranasal, intraperitoneal, intrapulmonary, and intrauterine are included.
  • the frequency of administration varies depending on the properties of the agent and composition used and the conditions of the subject including the above, but for example, many times a day (ie, 2, 3, 4 or 5 times a day), 1 day a day Times, every few days (ie every 2, 3, 4, 5, 6, 7 days, etc.), every week, every few weeks (ie every 2, 3, 4 weeks, etc.).
  • the term “subject” means any living individual, preferably an animal, more preferably a mammal, more preferably a human individual.
  • a subject may be healthy or suffer from some disease, but when treatment of a specific disease is intended, typically the subject is suffering from such disease.
  • treatment also encompasses all types of medically acceptable prophylactic and / or therapeutic interventions intended to cure, temporarily ameliorate or prevent disease, etc. Shall.
  • treatment encompasses medically acceptable interventions for various purposes, including delaying or stopping the progression of disease, regression or disappearance of lesions, preventing onset or preventing recurrence, and the like.
  • a drug that suppresses GST- ⁇ exhibits cell death induction and / or cell growth suppression for cells having a mutation in the BRAF gene. Therefore, cell death inducers and / or cell growth inhibitors for cells having mutations in the BRAF gene can be screened using inhibition of GST- ⁇ as an index. That is, a substance capable of suppressing GST- ⁇ is a candidate substance for a cell death inducer and / or cell growth inhibitor of a cell having a mutation in the BRAF gene (typically a cancer cell).
  • a test substance is brought into contact with a cancer cell having a mutation in the BRAF gene, and the expression level of GST- ⁇ in the cell is measured. If the expression level when contacting the test substance decreases compared to the expression level measured in the absence of the test substance, the test substance is selected as a drug candidate substance that suppresses GST- ⁇ . can do.
  • test substance is not limited at all, and any substance may be used.
  • the test substance may be a single substance or a mixture composed of a plurality of components.
  • the test substance may be configured to include an unidentified substance such as an extract from a microorganism or a culture solution, or may be configured to include a known composition at a predetermined composition ratio. May be.
  • the test substance may be any of protein, nucleic acid, lipid, polysaccharide, organic compound and inorganic compound.
  • Example 1 the cell growth inhibitory effect when a drug that suppresses GST- ⁇ was allowed to act on cells having a mutation in the BRAF gene was examined.
  • cancer cells having a mutation (V600E) in the BRAF gene 37 types of colon cancer cell lines (CACO-2) and 4 types of melanoma cell lines (A375, SK-MEL-28, A2058, Malme-3M) The cells were cultured at 5 ° C. in an atmosphere containing 5% CO 2 .
  • the media used were CACO-2 for MEM + 20%, FBS + 0.1 mM and NEAA, A375 for DMEM + 15% and FBS, SK-MEL-28 for EMEM + 10% and FBS, A2058 for DMEM + 10% and FBS, Malme-3M was IMDM + 20% and FBS, and antibiotics were added to both.
  • each cell was seeded on a 100 mm tissue culture plastic dish using an antibiotic-free medium so as to be 10-20% confluent.
  • Opti-MEM I Reduced Serum Medium (GIBCO)
  • 600 pmol of GST- ⁇ siRNA GGGAGGCAAGACCUUCAUUTT, siRNA ID # 2385, Ambion (SEQ ID NO: 3)
  • 35 ⁇ L of Lipofectamine RNAi MAX (Invitrogen) was diluted in 1 mL of Opti-MEM I Reduced Serum Medium (GIBCO) and mixed gently.
  • the diluted GST- ⁇ siRNA and the diluted Lipofectamine RNAi MAX were gently mixed and then incubated at room temperature for 10 minutes. During this time, the medium was replaced with 10 mL of Opti-MEM I Reduced Serum Medium. After 10 minutes incubation, the complex of GST- ⁇ siRNA and Lipofectamine RNAi MAX was added to the cells and incubated at 37 ° C. in an atmosphere containing 5% CO 2 . After 5 hours of incubation, the medium was replaced with 10 mL of antibiotic-free medium. One hour after the medium exchange, the cells were washed with PBS, detached with 0.25% Trypsin-EDTA (SIGMA), and suspended in a medium containing antibiotics.
  • SIGMA Trypsin-EDTA
  • the cells were suspended in 5 ml medium and seeded on a 60 mm tissue culture plastic dish (CACO-2: 0.4 ⁇ 10 5 cells, A375: 1.0 ⁇ 10 5 cells, SK-MEL-28: 0.2 ⁇ 10 5 cells, A2058: 0.8 ⁇ 10 5 pieces, Malme-3M: 0.6 ⁇ 10 5 pieces).
  • the expression of GST- ⁇ when GST- ⁇ siRNA was allowed to act on CACO-2 cells, A375 cells, SK-MEL-28 cells, A2058 cells and Malme-3M cells was determined by Western blotting. Respectively. That is, Western blot analysis of GST- ⁇ knockdown was performed using cells collected 3 days after transfection with GST- ⁇ siRNA. First, after washing the collected cells with cold PBS, cold lysis buffer (1% NP-40, 50 mM Tris-HCl (pH 7.4), 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, complete Mini EDTA-free (Roche), PhosSTOP (Roche) was added, and the mixture was solubilized by ice cooling and incubation for 30 minutes.
  • cold lysis buffer 1% NP-40, 50 mM Tris-HCl (pH 7.4), 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, complete Mini EDTA-free (Roche), PhosSTOP (Roche) was added, and the mixture was solubil
  • the mixture was reacted with an anti-GST- ⁇ antibody (MBL) diluted with Membrane® blocking® Solution (Invitrogen) at 4 ° C. for 16 hours.
  • the secondary antibody reaction was performed at room temperature for 1 hour using a horseradish peroxidase (HRP) -labeled rabbit antibody.
  • HRP horseradish peroxidase
  • Band signal detection was performed on an X-ray film by chemiluminescence using ECL Western Blocking Detection Reagents (GE Healthcare). Washing between each operation was carried out 4 times with PBS-T for 5 minutes.
  • FIG. 1 The results regarding the colorectal cancer cell line are shown in FIG. 1, and the results regarding the melanoma cell line are shown in FIG.
  • FIG.1 and 2 the result of having measured the number of cells and the result of the analysis by a Western blot are shown collectively.
  • GST- ⁇ knockdown by GST- ⁇ siRNA a drug that suppresses GST- ⁇ , is used in cancer cells having a BRAF gene mutation in both colorectal cancer cell lines and melanoma cell lines. As a result, cell proliferation ability was remarkably suppressed.
  • a mutation in the BRAF gene has been observed in highly malignant tumors, and is known as a poor prognosis factor in unresectable colorectal cancer in colorectal cancer.
  • Half of melanoma patients have a mutation in the BRAF gene, and when the metastatic potential is high, the mortality and malignancy are the highest. From the results of this Example, it was suggested that a drug that suppresses GST- ⁇ is effective in suppressing cell proliferation for cancers having mutations in such BRAF gene. Therefore, a novel therapeutic method for these intractable cancers Is expected to lead to
  • Example 2 the cell growth inhibitory effect when a drug that inhibits GST- ⁇ and a BRAF inhibitor were allowed to act on cells having mutations in the BRAF gene was examined.
  • Example 2 In the same manner as in Example 1, one type of colon cancer cell line (CACO-2) and two types of melanoma cell lines (SK-MEL-28 and A2058) were cultured, and 10-20% confluent the day before transfection. In a 100 mm tissue culture plastic dish using an antibiotic-free medium. In 1 mL of Opti-MEM I Reduced Serum Medium (GIBCO), 600 pmol of GST- ⁇ siRNA (GGGAGGCAAGACCUUCAUUTT, siRNA ID # 2385, Ambion (SEQ ID NO: 3)) was added and mixed gently.
  • GIBCO Opti-MEM I Reduced Serum Medium
  • RNAi MAX (Invitrogen) was diluted in 1 mL of Opti-MEM I Reduced Serum Medium (GIBCO) and mixed gently. The diluted GST- ⁇ siRNA and the diluted Lipofectamine RNAi MAX were gently mixed and then incubated at room temperature for 10 minutes. During this time, the medium was replaced with 10 mL of Opti-MEM I Reduced Serum Medium. After 10 minutes incubation, the complex of GST- ⁇ siRNA and Lipofectamine RNAi MAX was added to the cells and incubated at 37 ° C. in an atmosphere containing 5% CO 2 . After 5 hours of incubation, the medium was replaced with 10 mL of antibiotic-free medium.
  • the BRAF inhibitor PLX4720 (Selleck) is 40 ⁇ M for CACO-2, 0.7 ⁇ M for SK-MEL-28, and 10 ⁇ M for A2058. In the medium, the culture was continued until day 5.
  • the control of PLX4720 treatment was performed by adding DMSO (Wako Pure Chemical) as a solvent. Growth assay was performed by counting the number of cells from day 0 to day 5 after transfection.
  • FIG. 3 The results of measuring the number of cells for CACO-2 are shown in FIG. 3, and the results of measuring the number of cells for SK-MEL-28 and A2058 are shown in FIG.
  • FIG. 3 when GST- ⁇ siRNA alone was allowed to act on a colon cancer cell line (CACO-2 strain having a mutation in the BRAF gene), PLX4720 was allowed to act on the colon cancer cell line together with siControl. It was shown that, when these GST- ⁇ ⁇ ⁇ siRNA and PLX4720 were used in combination with these cell lines, the cell growth inhibitory effect was remarkable.
  • FIG. 3 when GST- ⁇ siRNA alone was allowed to act on a colon cancer cell line (CACO-2 strain having a mutation in the BRAF gene), PLX4720 was allowed to act on the colon cancer cell line together with siControl. It was shown that, when these GST- ⁇ ⁇ ⁇ siRNA and PLX4720 were used in combination with these cell lines, the cell growth inhibitory effect was remarkable.
  • FIG. 3 when these GST- ⁇
  • Example 3 the cell growth inhibitory effect when a drug that suppresses GST- ⁇ is applied to a cell having a mutation in the BRAF gene and having resistance to a BRAF inhibitor (BRAF inhibitor resistant cell). It was investigated.
  • the BRAF inhibitor resistant cells used in this example were prepared as follows. Melanoma cell line A375 used in Example 1 in DMEM medium containing 15% FBS and antibiotics supplemented with 1-5 ⁇ M PLX4720 (Selleck) for 1 month in an atmosphere containing 5% CO 2 at 37 ° C Incubated. A cell line that survived one month of incubation was used in this example as PLX4720 resistant A375 cells.
  • PLX4720-resistant A375 cells were seeded on 100 mm tissue culture plastic dishes using DMEM medium containing 15% FBS without antibiotics so as to be 0.5 ⁇ 10 6 cells / 10 ml.
  • Opti-MEM I Reduced Serum Medium GEBCO
  • 600 pmol of GST- ⁇ siRNA GGGAGGCAAGACCUUCAUUTT, siRNA ID # 2385, Ambion (SEQ ID NO: 3)
  • 35 ⁇ L of Lipofectamine RNAi MAX (Invitrogen) was diluted in 1 mL of Opti-MEM I Reduced Serum Medium (GIBCO) and mixed gently.
  • the diluted GST- ⁇ siRNA and the diluted Lipofectamine RNAi MAX were gently mixed and then incubated at room temperature for 10 minutes. During this time, the medium was replaced with 10 mL of Opti-MEM I Reduced Serum Medium. After 10 minutes incubation, the complex of GST- ⁇ siRNA and Lipofectamine RNAi MAX was added to the cells and incubated at 37 ° C. in an atmosphere containing 5% CO 2 . After incubation for 5 hours, the medium was replaced with 10 mL of antibiotic-free DMEM medium containing 15% FBS.
  • the collected cells were washed with cold PBS, followed by cold lysis buffer (1% NP-40, 50 mM Tris-HCl (pH 7.4), 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, complete Mini EDTA-free (Roche), PhosSTOP (Roche) was added, and the mixture was solubilized by ice cooling and incubation for 30 minutes. Centrifugation was performed at 4 ° C. and 15000 rpm for 15 minutes to obtain a cell extract. The obtained cell extract was subjected to protein quantification using Micro BCA Protein Assay Kit (Thermo SCIENTIFIC).
  • the secondary antibody reaction was performed at room temperature for 1 hour using a horseradish peroxidase (HRP) -labeled rabbit antibody.
  • Band signal detection was performed on X-ray film by chemiluminescence using ECL Western Blocking Detection Reagents (GE Healthcare). Washing between each operation was carried out 4 times with PBS-T for 5 minutes.
  • melanoma cell lines that have acquired resistance to BRAF inhibitors are involved in the recurrence of melanoma. Therefore, in order to investigate whether GST- ⁇ promotes CRAF dependence of BRAF inhibitor-resistant melanoma, GST- ⁇ was knocked down with PLX4720-resistant A375. When cell proliferation was measured, a remarkable growth inhibitory effect was observed (FIG. 5). When GST- ⁇ knockdown was confirmed, GST- ⁇ expression was suppressed on the second and third days (FIG. 6).
  • This example demonstrates that the growth of cells having a mutation in the BRAF gene and having resistance to a BRAF inhibitor (BRAF inhibitor-resistant cells) can be effectively suppressed. From this result, it is possible to expect an effect of preventing or reducing a disease caused by BRAF inhibitor resistant cells, for example, recurrence of melanoma.

Abstract

BRAF遺伝子に変異を有する細胞に対して細胞死を誘導及び/又は細胞増殖を抑制する。GST-πを抑制する薬物を有効成分として含む。

Description

BRAF遺伝子変異を有する細胞に対する細胞死誘導剤、当該細胞の増殖抑制剤及び当該細胞の増殖異常に起因する疾患の治療用医薬組成物
 本発明は、BRAF遺伝子変異を有する細胞(例えばがん細胞の一種)に対する細胞死誘導剤、当該細胞の増殖抑制剤及び当該細胞の増殖異常に起因する疾患の治療用医薬組成物に関し、更に細胞死誘導剤及び/又は細胞増殖抑制剤をスクリーニングする方法に関する。
 BRAF遺伝子は、RAS-RAF-MAPK経路を構成するセリンスレオニンキナーゼの一種をコードする遺伝子である。様々な腫瘍において、BRAF遺伝子の変異が報告されている。例えば、600番目のバリンがグルタミン酸に置換する変異(V600E)は、多くのがん細胞において認められる。V600E変異を有するBRAFは、下流のシグナルを常時活性化し、細胞外からの刺激がなくても細胞の増殖をもたらすことが知られている。
 例えば、多くの大腸がん(5~15%)やメラノーマ(約60%)において、V600E変異を有するBRAF遺伝子が認められている。なお、膵臓がんや大腸がん等の多くのがんにおいて、KRAS遺伝子における変異が高頻度で認められる。KRASタンパク質は、細胞膜の内側に局在しているGタンパク質である。KRAS等のRASは、CRAFやBRAF等のRAFを活性化し、RAFは引き続きMEKを、MEKはMAPKを活性化するというカスケードを形成している(非特許文献1及び2)。BRAF変異及びKRAS変異を共に有するケースはまれであり、BRAF変異及びKRAS変異相互排他の関係にある(非特許文献3)。
 現在、V600E変異を有するBRAFが認められるがんに対しては、V600E変異を有するBRAFに対する阻害剤による治療が有効であるとされている。このような阻害剤としては、ベムラフェニブ(Vemurafenib(PLX4032))やPLX4720等が知られている。しかしながら、当該阻害剤の継続的な投与により、がん細胞が当該阻害剤に対して耐性を獲得する場合があり、治療効果は限定的である。よって、BRAF遺伝子に変異を有するがん細胞に対しては、これら阻害剤に代わる、より効果的な細胞死誘導剤や増殖抑制剤が求められていた。
 ところで、グルタチオン包含を触媒する酵素の1つであるグルタチオン-S-トランスフェラーゼ(GST)は、薬剤等の物質をグルタチオン(GSH)と共役させ、水溶性の物質とする酵素として知られている。GSTは、アミノ酸配列に基づいて、代表的なものとして、α、μ、ω、π、θ及びζの6種類のアイソザイムに分類される。なかでも、特にGST-π(glutathione S-transferase pi、GSTP1ともいう)の発現が、種々のがん細胞において増大しており、これが一部の抗がん剤に対する耐性の一因となっている可能性が指摘されている。実際、GST-πを過剰発現しており、薬物耐性を示すがん細胞系に、GST-πに対するアンチセンスDNAやGST-π阻害剤を作用させると、薬剤耐性が抑制されることが知られている(非特許文献4~6)。さらに、最近の報告では、GST-πを過剰発現するアンドロゲン非依存性前立腺がん細胞系にGST-πに対するsiRNAを作用させるとその増殖が抑制され、アポトーシスが増大することが報告されている(非特許文献7)。
 また、GST-πについては、c-Jun N末端キナーゼ(JNK)と複合体を形成し、JNK活性を阻害することが知られている(非特許文献8)。さらに、GST-πについては、細胞のストレス応答に関連するタンパク質のS-グルタチオン化に関与することが知られている(非特許文献9)。さらにまた、GST-πについては、活性酸素種(ROS)によって誘導される細胞死に対する保護作用に寄与することが知られている(非特許文献10)。このように、GSTのなかでもGST-πは、様々な特徴・機能を有していることが理解できる。
 KRASに変異を有するがん細胞系にGST-πに対するsiRNAを作用させると、Aktの活性化が抑制され、オートファジーが増大するが、アポトーシスの誘導は中程度となることが報告されている(非特許文献11)。特許文献1には、GST-πを抑制する薬物と、3-メチルアデニン等のオートファジー阻害剤とを活性成分とすることで、がん細胞のアポトーシスを誘導できることが開示されている。さらに、特許文献2には、GST-πとAkt等の発現を同時に阻害すると、細胞増殖が抑制され、細胞死が誘導されること、GST-πの発現阻害により誘導されたオートファジーが、Akt等の発現を同時に阻害することにより顕著に抑制されることが開示されている。
 しかしながら、上述したBRAF遺伝子に変異を有する細胞において、GST-πの発現と細胞増殖或いは細胞死との関係や、シグナル伝達に関するGST-πの役割等に関する知見はない。
WO2012/176282 WO2014/098210
Curr Top Microbiol Immunol. 2012; 355: 83-98 Curr Opin Pharmacol. 2008 Aug; 8(4): 419-26. British Journal of Cancer (2013) 108, 1757-1764. Takahashi and Niitsu, Gan To Kagaku Ryoho. 1994;21(7):945-51 Ban et al., Cancer Res. 1996;56(15):3577-82 Nakajima et al., J Pharmacol Exp Ther. 2003;306(3):861-9 Hokaiwado et al., Carcinogenesis. 2008;29(6):1134-8 Adler et.al, EMBO J. 1999, 18, 1321-1334 Townsend, et.al, J. Biol. Chem. 2009, 284, 436-445 Yin et.al, Cancer Res. 2000 60, 4053-4057 Nishita et al., AACR 102nd Annual Meeting, Abstract No. 1065
 そこで、本発明は、BRAF遺伝子に変異を有する細胞に対して、細胞死誘導作用及び/又は細胞増殖抑制作用を有する剤を提供し、細胞増殖異常に起因する疾患の治療用医薬組成物を提供し、細胞死誘導剤及び/又は細胞増殖抑制剤をスクリーニングする方法を提供することを目的とする。
 上述した目的に鑑み、本発明者らが鋭意検討した結果、BRAF遺伝子に変異を有する細胞において、GST-πを抑制すると細胞増殖が強力に抑制されること、また、従来公知のBRAF阻害剤に対する耐性を示す、BRAF遺伝子に変異を有する細胞においてもGST-πを抑制すると細胞増殖が強力に抑制されることを見いだし、本発明を完成するに至った。本発明は以下を包含する。
 (1)GST-πを抑制する薬物を有効成分として含む、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の細胞死誘導剤。
 (2)GST-πを抑制する薬物を有効成分として含む、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の細胞増殖抑制剤。
 (3)上記変異は、V600E変異であることを特徴とする(1)又は(2)記載の剤。
 (4)上記BRAF遺伝子に変異を有する細胞は、BRAF阻害剤に対する耐性を有する細胞であることを特徴とする(1)又は(2)記載の剤。
 (5)上記薬物が、RNAi分子、リボザイム、アンチセンス核酸、DNA/RNAキメラポリヌクレオチド及びこれらのうち少なくとも1種を発現するベクターからなる群から選択される物質であることを特徴とする(1)又は(2)記載の剤。
 (6)上記BRAF遺伝子に変異を有する細胞が、GST-πを高発現するがん細胞であることを特徴とする(1)又は(2)記載の剤。
 (7)上記(1)~(6)のいずれかに記載の剤を含む、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の増殖異常に起因する疾患の治療用医薬組成物。
 (8)上記疾患ががんであることを特徴とする(7)記載の医薬組成物。
 (9)上記がんはGST-πを高発現するがんであることを特徴とする(8)記載の医薬組成物。
 (10)上記がんは大腸癌又はメラノーマであることを特徴とする(8)記載の医薬組成物。
 (11)GST-πを抑制する薬物を選択することを含む、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の細胞死誘導剤及び/又は細胞増殖抑制剤のスクリーニング方法。
 (12)がん細胞に対して被検物質を接触させる工程と、上記細胞におけるGST-πの発現量を測定する工程と、被検物質の非存在下において測定した場合と比較して、当該発現量が低下した場合に上記GST-πを抑制する薬物として選択する工程とを含む(11)記載のスクリーニング方法。
 本明細書は本願の優先権の基礎となる日本国特許出願番号2015-84286号及び日本国特許出願番号2016-78710号の開示内容を包含する。
 本発明に係る細胞死誘導剤によれば、BRAF遺伝子に変異を有する細胞に対して非常に強力に細胞死を誘導することができる。よって、本発明に係る細胞死誘導剤は、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の増殖異常に起因する疾患の治療用の医薬組成物として非常に高い薬効を奏することが可能となる。
 また、本発明に係る細胞増殖抑制剤によれば、BRAF遺伝子に変異を有する細胞に対して非常に強力に細胞増殖を抑制することができる。よって、本発明に係る細胞増殖抑制剤は、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の増殖異常に起因する疾患の治療用の医薬組成物として非常に高い薬効を奏することが可能となる。
 さらに、本発明に係るスクリーニング方法によれば、BRAF遺伝子に変異を有する細胞に対して非常に強力に細胞死を誘導する及び/又は細胞増殖を抑制する薬剤を選択することができる。
BRAF遺伝子に変異を有する大腸癌細胞株において、GST-πノックダウンによる細胞増殖抑制効果を検証した結果(細胞数測定結果、ウェスタンブロット結果)を示す特性図である。 BRAF遺伝子に変異を有するメラノーマ細胞株において、GST-πノックダウンによる細胞増殖抑制効果を検証した結果(細胞数測定結果、ウェスタンブロット結果)を示す特性図である。 BRAF遺伝子に変異を有する大腸癌細胞株において、GST-π siRNA及びBRAF阻害剤を併用したときの細胞増殖抑制効果を検証した結果を示す特性図である。 BRAF遺伝子に変異を有するメラノーマ細胞株において、GST-π siRNA及びBRAF阻害剤を併用したときの細胞増殖抑制効果を検証した結果を示す特性図である。 BRAF遺伝子に変異を有し、BRAF阻害剤に耐性を有するメラノーマ細胞株において、GST-πノックダウンによる細胞増殖抑制効果を検証した結果を示す特性図である。 BRAF遺伝子に変異を有し、BRAF阻害剤に耐性を有するメラノーマ細胞株において、GST-πノックダウンしたときのGST-π発現をウエスタンブロットにより解析した結果を示す電気泳動写真である。
 本発明に係る細胞死誘導剤及び細胞増殖抑制剤は、GST-πを抑制する薬物を有効成分として含む。本発明に係る細胞死誘導剤及び細胞増殖抑制剤は、BRAF遺伝子に変異を有する細胞に対して細胞死誘導効果及び細胞増殖抑制効果を示すものである。
 本明細書で用いる場合、GST-πは、GSTP1遺伝子によりコードされる、グルタチオン抱合を触媒する酵素を指す。GST-πはヒトを含む種々の動物に存在し、その配列情報も公知である(例えば、ヒト:NM_000852(NP_000843)、ラット:NM_012577(NP_036709)、マウス:NM_013541(NP_038569)など。番号はNCBIデータベースのアクセッション番号を示し、括弧外は塩基配列、括弧内はアミノ酸配列の番号である)。一例として、データベースに登録されているヒトGST-π遺伝子のコーディング領域の塩基配列を配列番号1に示し、当該ヒトGST-π遺伝子がコードするヒトGST-πタンパク質のアミノ酸配列を配列番号2に示す。
 なお、GST-πについて、上述のように、具体的な塩基配列及びアミノ酸配列により特定できるが、生物個体間において塩基配列やアミノ酸配列の変異が生じる可能性(多型を含む)を考慮しなければならない。すなわち、GST-πは、データベースに登録されたアミノ酸配列と同一の配列を有するタンパク質に限定されず、同配列に対し1個又は2個以上、典型的には1個又は数個、例えば、1個、2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個又は10個のアミノ酸が相違する配列を有し、GST-πと同等の機能を有するものも含む。また、GST-πは、上述した具体的な塩基配列に対して70%以上、80%以上、90%以上、95%以上又は97%以上の同一性を有する塩基配列からなり、GST-πと同等の機能を有するタンパク質をコードするものも含む。なお、GST-πの具体的機能については、上述のように、グルタチオン抱合を触媒する酵素活性を意味する。
 なお、本明細書において、「本明細書で用いる場合」、「本明細書で用いる」、「本明細書において」、「本明細書に記載される」等の句は、特に別記しない限り、これに引続く記載が本明細書に記載された全ての発明に適用されることを意味するものとする。また、他に定義されない限り、本明細書で用いる全ての技術用語及び科学用語は、当業者が通常理解しているものと同じ意味を有する。本明細書中で参照する全ての特許、公報及び他の出版物は、その全体を本明細書に援用する。
 本明細書で用いる「GST-πを抑制する薬物」には、限定されずに、例えば、GST-πの産生及び/又は活性を抑制する薬物や、GST-πの分解及び/又は不活性化を促進する薬物などが含まれる。GST-πの産生を抑制する薬物としては、これに限定するものではないが、例えばGST-πをコードするDNAに対するRNAi分子、リボザイム、アンチセンス核酸、DNA/RNAキメラポリヌクレオチド及びこれらを発現するベクター等が挙げられる。
 また、GST-πを抑制する薬物としては、GST-πに対して作用する如何なる化合物であっても使用することができる。このような化合物としては、有機化合物(アミノ酸、ポリペプチド又はその誘導体、低分子化合物、糖、高分子化合物等)、無機化合物等を使用することができる。また、このような化合物は、天然物質及び非天然物質のいずれであってもよい。ポリペプチドの誘導体としては、修飾基を付加して得られた修飾ポリペプチド、アミノ酸残基を改変することにより得られたバリアントポリペプチド等が挙げられる。さらに、このような化合物は、単一化合物であってもよいが、化合物ライブラリー、遺伝子ライブラリーの発現産物、細胞抽出物、細胞培養上清、発酵微生物産生物、海洋生物抽出物、植物抽出物等であってもよい。すなわち、「GST-πを抑制する薬物」には、RNAi分子等の核酸に限定されず、如何なる化合物も含まれる。
 具体的には、GST-πの活性を抑制する薬物としては、これに限定するものではないが、例えば、GST-πに結合する物質、例えば、グルタチオン、グルタチオンアナログ(例えば、WO 95/08563、WO 96/40205、WO 99/54346、非特許文献4等に記載のもの)、ケトプロフェン(非特許文献2)、インドメタシン(Hall et al., Cancer Res. 1989;49(22):6265-8)、エタクリン酸、ピロプロスト(Tew et al., Cancer Res. 1988;48(13):3622-5)、抗GST-π抗体、GST-πのドミナントネガティブ変異体等が挙げられる。これらの薬物は市販されているか、公知の技術に基づいて適宜製造することができる。
 GST-πの産生又は活性を抑制する薬物としては、特異性の高さや、副作用の可能性の低さから、GST-πをコードするDNAに対するRNAi分子、リボザイム、アンチセンス核酸、DNA/RNAキメラポリヌクレオチド及びこれらを発現するベクターが好ましい。
 GST-πの抑制は、GST-π抑制剤を作用させなかった場合に比べ、細胞においてGST-πの発現や活性が抑制されていることにより決定することができる。GST-πの発現は、既知の任意の手法、限定されずに、例えば、抗GST-π抗体を利用した免疫沈降法、EIA、ELISA、IRA、IRMA、ウェスタンブロッティング法、免疫組織化学法、免疫細胞化学法、フローサイトメトリー法、GST-πをコードする核酸もしくはそのユニークな断片又は該核酸の転写産物(例えば、mRNA)もしくはスプライシング産物に特異的にハイブリダイズする核酸を利用した、種々のハイブリダイゼーション法、ノーザンブロット法、サザンブロット法、種々のPCR法などにより評価することができる。
 また、GST-πの活性は、GST-πの既知の活性、限定されずに、例えば、Raf-1(特にリン酸化Raf-1)や、EGFR(特にリン酸化EGFR)などのタンパク質との結合性などを、既知の任意の方法、例えば、免疫沈降法、ウェスタンブロッティング法、質量分析法、プルダウン法、表面プラズモン共鳴(SPR)法などにより解析することによって評価することができる。
 本明細書で用いる場合、RNAi分子は、RNA干渉をもたらす任意の分子を指し、限定されずに、siRNA(small interfering RNA)、miRNA(micro RNA)、shRNA(short hairpin RNA)、ddRNA(DNA-directed RNA)、piRNA(Piwi-interacting RNA)、rasiRNA(repeat associated siRNA)などの二重鎖RNA及びこれらの改変体などを含む。これらのRNAi分子は市販されているか、公知の配列情報、すなわち、配列番号1に示した塩基配列及び/又は配列番号2に示したアミノ酸配列に基づいて設計、作製することが可能である。また、本明細書で用いる場合、アンチセンス核酸は、RNA、DNA、PNA、又はこれらの複合物を含む。
 本明細書で用いる場合、DNA/RNAキメラポリヌクレオチドは、限定されずに、例えば、特開2003-219893に記載の、標的遺伝子の発現を阻害するDNAとRNAとからなる2本鎖ポリヌクレオチドを含む。
 本発明の剤又は組成物における有効成分の配合量は、剤又は組成物が投与された場合に、アポトーシスといった細胞死が誘導及び/又は細胞増殖が抑制される量であってもよい。また、投与による利益を超える悪影響が生じない量が好ましい。かかる量は公知であるか、培養細胞などを用いたin vitro試験や、マウス、ラット、イヌ又はブタなどのモデル動物における試験により適宜決定することができ、このような試験法は当業者によく知られている。アポトーシスの誘導は、種々の既知の手法、例えば、DNA断片化、アネキシンVの細胞膜への結合、ミトコンドリア膜電位の変化、カスパーゼの活性化などのアポトーシス特有の現象の検出や、TUNEL染色などにより評価することができる。また、細胞増殖の抑制は、種々の既知の手法、例えば、経時的な生細胞数の計数、腫瘍のサイズ、体積又は重量の測定、DNA合成量の測定、WST-1法、BrdU(ブロモデオキシウリジン)法、3Hチミジン取込み法、などにより評価することができる。活性成分の配合量は、剤や組成物の投薬態様によって変化し得る。例えば、1回の投与に複数の単位の組成物を用いる場合、組成物1単位に配合する有効成分の量は、1回の投与に必要な有効成分の量の複数分の1とすることができる。かかる配合量の調整は当業者が適宜行うことができる。
 また、GST-πを抑制する薬物を有効成分として配合することで、細胞死誘導剤、細胞増殖抑制剤、細胞死誘導組成物又は細胞増殖抑制組成物を製造することができる。
 さらに、細胞死誘導又は細胞増殖抑制に使用する、GST-πを抑制する薬物を提供することができる。さらにまた、有効量のGST-πを抑制する薬物を投与することを含む、細胞死の誘導方法又は細胞増殖の抑制方法を提供することができる。
 なお、上述したアポトーシス等の細胞死誘導又は細胞増殖抑制方法はいずれも、in vitroの方法であっても、in vivoの方法であってもよい。また、当該方法における薬物については既に上述したとおりであり、薬物の有効量は、投与した細胞において細胞死が誘導される、又は細胞増殖が抑制される量であってもよい。また、投与による利益を超える悪影響が生じない量が好ましい。かかる量は公知であるか、培養細胞などを用いたin vitro試験などにより適宜決定することができ、このような試験法は当業者によく知られている。細胞死の誘導又は細胞増殖の抑制は、上述のものを含む種々の既知の手法により評価することができる。上記有効量は、薬物を所定のがん細胞集団に投与した場合に、必ずしも同細胞集団の全ての細胞に細胞死又は増殖抑制をもたらすものでなくともよい。例えば、上記有効量は、当該細胞集団における細胞の1%以上、2%以上、3%以上、4%以上、5%以上、6%以上、8%以上、10%以上、12%以上、15%以上、20%以上、さらには25%以上などにアポトーシス又は増殖抑制をもたらす量であってよい。
 本発明に係る細胞死誘導剤及び細胞増殖抑制剤は、BRAF遺伝子に変異を有する細胞に作用する。BRAF遺伝子に変異を有する細胞とは、BRAF遺伝子が変異を有することによって増殖異常を示す細胞(典型的にはがん細胞)である。
 特に、本発明に係る細胞死誘導剤及び細胞増殖抑制剤は、BRAF遺伝子が変異を有することによって増殖異常を示す細胞のうちGST-πを高発現する細胞(典型的にはGST-πを高発現するがん細胞)に適用することが好ましい。ここで、GST-πを高発現するがん細胞とは、BRAF遺伝子が変異を有し、細胞増殖異常を示す細胞のうち、GST-πの発現量が正常細胞と比較して有意に高い細胞を意味する。なおGST-πの発現量は、RT-PCRやマイクロアレイ等、定法に従って測定することができる。
 BRAF遺伝子における変異とは、野生型BRAFのアミノ酸配列に対する欠失、置換、付加、挿入といった変異、BRAF遺伝子の発現制御領域に対する変異を意味する。なお、ここで、BRAF遺伝子における変異は、いわゆる機能獲得性変異(gain of function)である。すなわち、変異を有するBRAF遺伝子(変異型BRAF遺伝子と称する場合もある)には、当該変異に起因してセリンスレオニンキナーゼ活性が亢進した変異型BRAFをコードする遺伝子が含まれる。また、変異型BRAF遺伝子には、発現制御領域に変異が含まれ、野生型BRAF遺伝子と比較して発現量が亢進したものも含まれる。すなわち、変異型BRAF遺伝子を発現する細胞では、変異型BRAFを発現する又はBRAFの発現量が亢進することで、BRAFから下流へのシグナル(例えばMEKへのシグナル)が恒常的に持続する特徴をもつ。
 変異型BRAF遺伝子としては、野生型BRAF遺伝子におけるコドン600によりコードされるバリンがグルタミン酸に置換した変異型BRAF(V600Eと表記する。以下同様)をコードする遺伝子、V600D、V600G、V600K、V600M、V600R、V600L、G469A、G469V、D594N、V600insT(Tのinsertion)等を挙げることができる。
 本発明の細胞死誘導剤又は細胞増殖抑制剤は、BRAF遺伝子に変異を有するがん細胞においても効果的に細胞死を誘導でき又は細胞増殖を抑制できるため、BRAF遺伝子に変異を有するがん細胞の増殖異常に起因する疾患に対する医薬組成物の成分として有効である。また、GST-πを抑制する薬物を有効成分として配合することで、BRAF遺伝子に変異を有するがん細胞の増殖異常に起因する疾患に対する医薬組成物を製造することができる。さらに、製造された医薬組成物の有効量を、それを必要とする対象に投与することを含む、細胞の増殖異常に起因する疾患を処置・治療することができる。
 当該医薬組成物は、BRAF遺伝子に変異を有するがん細胞の増殖異常に起因する疾患を処置するのに有効である。BRAF遺伝子に変異を有するがん細胞に起因する疾患としては、限定されずに、GST-πを高発現するがん等が挙げられ、多くの場合、BRAF遺伝子に変異を有するがんは、GST-πを高発現するがんに包含される。
 これらとしては、限定されずに、例えば、線維肉腫、悪性線維性組織球腫 、脂肪肉腫、横紋筋肉腫、平滑筋肉腫、血管肉腫、カポジ肉腫、リンパ管肉腫、滑膜肉腫、軟骨肉腫、骨肉腫などの肉腫、眼癌、甲状腺癌(乳頭癌)、髄膜癌、脳腫瘍、下垂体癌、唾液腺癌、頭頚部癌、乳癌、肺癌(非小細胞癌)、食道癌、胃癌、十二指腸癌、虫垂癌、大腸癌、直腸癌、肝癌、膵癌、胆嚢癌、胆管癌、肛門癌、腎癌、尿管癌、膀胱癌、前立腺癌、陰茎癌、精巣癌、子宮癌(子宮内膜癌)、卵巣癌(卵巣漿液性癌)、外陰癌、膣癌、皮膚癌(悪性黒色腫)などの癌腫、さらには白血病や悪性リンパ腫などが挙げられる。なお、本発明では、「がん」は、上皮性悪性腫瘍及び非上皮性悪性腫瘍を含む。本発明におけるがんは、身体の任意の部位、例えば、脳、頭頚部、胸部、四肢、肺、心臓、胸腺、食道、胃、小腸(十二指腸、空腸、回腸)、大腸(結腸、盲腸、虫垂、直腸)、肝臓、膵臓、胆嚢、肛門、腎、尿管、膀胱、前立腺、陰茎、精巣、子宮、卵巣、外陰、膣、皮膚、横紋筋、平滑筋、滑膜、軟骨、骨、甲状腺、副腎、腹膜、腸間膜、骨髄、血液、血管系、リンパ節等のリンパ系、リンパ液などに存在し得る。
 特に、本発明の細胞死誘導剤又は細胞増殖抑制剤は、BRAF遺伝子に変異を有する細胞のうち、BRAF阻害剤に対して耐性を獲得した細胞に対しても効果的に細胞死を誘導でき又は細胞増殖を抑制できる。したがって、本発明の細胞死誘導剤又は細胞増殖抑制剤は、BRAF遺伝子に変異を有するがん細胞であって、BRAF阻害剤に耐性を有するがん細胞の増殖異常に起因する疾患に対する医薬組成物の成分として有効である。また、GST-πを抑制する薬物を有効成分として配合することで、BRAF遺伝子に変異を有するがん細胞であって、BRAF阻害剤に耐性を有するがん細胞の増殖異常に起因する疾患に対する医薬組成物を製造することができる。さらに、製造された医薬組成物の有効量を、それを必要とする対象、すなわちBRAF阻害剤による治療効果が低減した患者に投与することを含む、細胞の増殖異常に起因する疾患を処置・治療することができる。
 ここで、BRAF阻害剤とは、BRAFから下流へのシグナル伝達を阻害する物質、特に、上述した機能獲得性変異(gain of function)を有する変異型BRAFに起因するシグナル伝達を特異的に阻害する物質を含む意味である。BRAF阻害剤としては、例えば、ベムラフェニブ(Vemurafenib(PLX4032)、Cas No.: 918504-65-1、N-[3-[5-(4-chlorophenyl)-1H-pyrrolo[2,3-b]pyridine-3-carbonyl]-2,4-difluorophenyl]propane-1-sulfonamide)やPLX4720(Cas No.: 918505-84-7、N-[3-(5-chloro-1H-pyrrolo[2,3-b]pyridine-3-carbonyl)-2,4-difluorophenyl]propane-1-sulfonamide)等が知られている。
 さらに、BRAF阻害剤としては、例えば、レゴラフェニブ、ダサチニブ、PLX-8394、BeiGene-283、PLX-3603、RG-7304(CAS NO. :213406-50-9)、LY-3009120 (CAS NO.: 1454682-72-4)、rebastinib (Cas.No.: 1020172-07-9)、1H-pyrazolo[3,4-b]pyridine-5-carboxamideアナログ、ASN-003、ベムラフェニブプロドラッグ、N-(thiophen-2-yl) benzamide誘導体、DCB-R0237、REDX-04988、EBI-907、EBI-945、ゴッシピン、nanolipolee-007、TEW-0201、miRNA-3157及びチアゾール誘導体(NMS-P186、NMS-P285、NMS-P349、NMS-P383、NMS-P396及びNMS-P730)を挙げることができる。
 さらに、BRAF阻害剤としては、これら以外にもSB590885(Cas No.: 405554-55-4、N,N-dimethyl-2-[4-[(4Z)-4-(1-nitroso-2,3-dihydroinden-5-ylidene)-5-(1H-pyridin-4-ylidene)-1H-imidazol-2-yl]phenoxy]ethanamine)、B-Raf inhibitor 1(Cas No.:1093100-40-3、1-N-(4-chlorophenyl)-6-methyl-5-N-[3-(7H-purin-6-yl)pyridin-2-yl]isoquinoline-1,5-diamine)、B-Raf inhibitor 1 dihydrochloride(Cas No.:1191385-19-9、1-N-(4-chlorophenyl)-6-methyl-5-N-[3-(7H-purin-6-yl)pyridin-2-yl]isoquinoline-1,5-diamine;dihydrochloride)、ダブラフェニブ(Dabrafenib、Cas No.:1195765-45-7、N-[3-[5-(2-aminopyrimidin-4-yl)-2-tert-butyl-1,3-thiazol-4-yl]-2-fluorophenyl]-2,6-difluorobenzenesulfonamide)、LGX818(Cas No.:1269440-17-6、methyl N-[(2S)-1-[[4-[3-[5-chloro-2-fluoro-3-(methanesulfonamido)phenyl]-1-propan-2-ylpyrazol-4-yl]pyrimidin-2-yl]amino]propan-2-yl]carbamate)、HG6-64-1(Cas No.: 1315329-43-1、WO 2011/090738.参照)、PF-04880594(Cas No.: 1111636-35-1、3-[[4-[1-(2,2-difluoroethyl)-3-(1H-pyrrolo[2,3-b]pyridin-5-yl)pyrazol-4-yl]pyrimidin-2-yl]amino]propanenitrile)、BRAF inhibitor(Cas No.: 918505-61-0、N-[2,4-difluoro-3-(5-pyridin-3-yl-1H-pyrrolo[2,3-b]pyridine-3-carbonyl)phenyl]propane-2-sulfonamide)、B-Raf inhibitor (Cas No.: 1315330-11-0、N-[4-[(4-ethylpiperazin-1-yl)methyl]-3-(trifluoromethyl)phenyl]-4-methyl-3-[(6-methyl-7H-pyrrolo[2,3-d]pyrimidin-4-yl)oxy]benzamide)、TAK-632(Cas No.: 1228591-30-7、N-[7-cyano-6-[4-fluoro-3-[[2-[3-(trifluoromethyl)phenyl]acetyl]amino]phenoxy]-1,3-benzothiazol-2-yl]cyclopropanecarboxamide)、AZ 628(Cas No.: 878739-06-1、3-(2-cyanopropan-2-yl)-N-[4-methyl-3-[(3-methyl-4-oxoquinazolin-6-yl)amino]phenyl]benzamide)、RAF265(Cas No.: 927880-90-8、1-methyl-5-[2-[5-(trifluoromethyl)-1H-imidazol-2-yl]pyridin-4-yl]oxy-N-[4-(trifluoromethyl)phenyl]benzimidazol-2-amine)、CEP-32496(Cas No.: 1188910-76-0、1-[3-(6,7-dimethoxyquinazolin-4-yl)oxyphenyl]-3-[5-(1,1,1-trifluoro-2-methylpropan-2-yl)-1,2-oxazol-3-yl]urea)、GDC-0879 (Cas No.: 905281-76-7、2-[4-[(1E)-1-hydroxyimino-2,3-dihydroinden-5-yl]-3-pyridin-4-ylpyrazol-1-yl]ethanol)、トシル酸ソラフェニブ(Cas No.: 475207-59-1、4-[4-[[4-chloro-3-(trifluoromethyl)phenyl]carbamoylamino]phenoxy]-N-methylpyridine-2-carboxamide;4-methylbenzenesulfonic acid)、ダブラフェニブトシル酸塩(Cas No.: 1195768-06-9、N-[3-[5-(2-aminopyrimidin-4-yl)-2-tert-butyl-1,3-thiazol-4-yl]-2-fluorophenyl]-2,6-difluorobenzenesulfonamide;methanesulfonic acid)、CEP-32496 塩酸塩(Cas No.: 1227678-26-3、1-[3-(6,7-dimethoxyquinazolin-4-yl)oxyphenyl]-3-[5-(1,1,1-trifluoro-2-methylpropan-2-yl)-1,2-oxazol-3-yl]urea;hydrochloride)、及びソラフェニブ(Cas No.: 284461-73-0、4-[4-[[4-chloro-3-(trifluoromethyl)phenyl]carbamoylamino]phenoxy]-N-methylpyridine-2-carboxamide)を挙げることができる。
 また、本発明に係る医薬組成物は、GST-πを抑制する薬物以外に、他の有効成分と併用してもよい。ここで、併用するとは、例えば、他の有効成分を別々の製剤として投与すること、及び、他の有効成分を、少なくとも1種の他の薬剤との合剤として投与することなどを含む。別々の製剤として投与する場合には、他の有効成分を含む製剤を、他の製剤より前、他の製剤と同時、又は、他の製剤より後に投与してもよい。
 かかる他の有効成分としては、上述したBRAF阻害剤を適宜使用することができる。また、他の有効成分としては、対象となる疾患の処置に有効なものが挙げられる。例えば、処置する疾患ががんである場合は、抗がん剤を併用することができる。抗がん剤の例としては、例えば、イホスファミド、塩酸ニムスチン、シクロホスファミド、ダカルバジン、メルファラン、ラニムスチン等のアルキル化剤、塩酸ゲムシタビン、エノシタビン、シタラビン・オクホスファート、シタラビン製剤、テガフール・ウラシル、テガフール・ギメラシル・オテラシルカリウム配合剤(例えば、TS-1)、ドキシフルリジン、ヒドロキシカルバミド、フルオロウラシル、メトトレキサート、メルカプトプリン等の代謝拮抗剤、塩酸イダルビシン、塩酸エピルビシン、塩酸ダウノルビシン、クエン酸ダウノルビシン、塩酸ドキソルビシン、塩酸ピラルビシン、塩酸ブレオマイシン、硫酸ペプロマイシン、塩酸ミトキサントロン、マイトマイシンC等の抗腫瘍性抗生物質、エトポシド、塩酸イリノテカン、酒石酸ビノレルビン、ドセタキセル水和物、パクリタキセル、硫酸ビンクリスチン、硫酸ビンデシン、硫酸ビンブラスチン等のアルカロイド、アナストロゾール、クエン酸タモキシフェン、クエン酸トレミフェン、ビカルタミド、フルタミド、リン酸エストラムスチン等のホルモン療法剤、カルボプラチン、シスプラチン(CDDP)、ネダプラチン等の白金錯体、サリドマイド、ネオバスタット、ベバシズマブ等の血管新生阻害剤、L-アスパラギナーゼなどを挙げることができる。
 本明細書に記載される本発明の各種の剤や組成物、処置方法等における活性成分が核酸、例えば、RNAi分子、リボザイム、アンチセンス核酸、DNA/RNAキメラポリヌクレオチドなどである場合、これらは、裸の核酸としてそのまま利用することもできるが、種々のベクターに担持させることもできる。ベクターとしては、プラスミドベクター、ファージベクター、ファージミドベクター、コスミドベクター、ウイルスベクター等の公知の任意のものを利用することができる。ベクターは、担持する核酸の発現を増強するプロモーターを少なくとも含んでいることが好ましく、この場合、該核酸は、かかるプロモーターと作動可能に連結されていることが好ましい。核酸がプロモーターに作動可能に連結されているとは、プロモーターの作用により、該核酸のコードするタンパク質が適切に産生されるように、該核酸とプロモーターとが配置されていることを意味する。ベクターは、宿主細胞内で複製可能であってもなくてもよく、また、遺伝子の転写は宿主細胞の核外で行われても、核内で行われてもよい。後者の場合、核酸は宿主細胞のゲノムに組み込まれてもよい。
 また、有効成分は、種々の非ウイルス性脂質又はタンパク質担体に担持させることもできる。かかる担体としては、限定されずに、例えば、コレステロール、リポソーム、抗体プロトマー、シクロデキストリンナノ粒子、融合ペプチド、アプタマー、生分解性ポリ乳酸コポリマー、ポリマーなどが挙げられ、細胞内への取込み効率を高めることができる(例えば、Pirollo and Chang, Cancer Res. 2008;68(5):1247-50などを参照)。特に、カチオン性リポソームやポリマー(例えば、ポリエチレンイミンなど)が有用である。かかる担体として有用なポリマーのさらなる例としては、例えば、US 2008/0207553、US 2008/0312174等に記載のものなどが挙げられる。
 本明細書に記載される本発明の各種医薬組成物においては、活性成分の効果を妨げない限り、活性成分を他の任意成分と組み合わせてもよい。そのような任意成分としては、例えば、他の化学治療剤、薬理学的に許容される担体、賦形剤、希釈剤等が挙げられる。また、投与経路や薬物放出様式などに応じて、上記組成物を、適切な材料、例えば、腸溶性のコーティングや、時限崩壊性の材料で被覆してもよく、また、適切な薬物放出システムに組み込んでもよい。
 本明細書に記載される本発明の各種剤及び組成物(各種医薬組成物を含む)は、経口及び非経口の両方を包含する種々の経路、例えば、限定することなく、経口、静脈内、筋肉内、皮下、局所、腫瘍内、直腸、動脈内、門脈内、心室内、経粘膜、経皮、鼻内、腹腔内、肺内及び子宮内等の経路で投与してもよく、各投与経路に適した剤形に製剤してもよい。かかる剤形及び製剤方法は任意の公知のものを適宜採用することができる(例えば、標準薬剤学、渡辺喜照ら編、南江堂、2003年などを参照)。
 例えば、経口投与に適した剤形としては、限定することなく、散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、液剤、懸濁剤、乳剤、ゲル剤、シロップ剤などが挙げられ、また非経口投与に適した剤形としては、溶液性注射剤、懸濁性注射剤、乳濁性注射剤、用時調製型注射剤などの注射剤が挙げられる。非経口投与用製剤は、水性又は非水性の等張性無菌溶液又は懸濁液の形態であることができる。
 本明細書に記載される本発明の各種剤又は組成物(各種医薬組成物を含む)は、特定の組織や細胞に標的化されていてもよい。標的化は、既知の任意の手法により達成することができる。がんへの送達を企図する場合は、限定されずに、例えば、製剤をEPR(enhanced permeability and retention)効果の発現に好適な直径50~200nm、特に75~150nmなどのサイズにすることによるパッシブターゲティングや、CD19、HER2、トランスフェリン受容体、葉酸受容体、VIP受容体、EGFR(Torchilin, AAPS J. 2007;9(2):E128-47)、RAAG10(特表2005-532050)、PIPA(特表2006-506071)、KID3(特表2007-529197)などのリガンドや、RGDモチーフやNGRモチーフを有するペプチド、F3、LyP-1(Ruoslahti et al., J Cell Biol. 2010;188(6):759-68)などを標的化剤として利用するアクティブターゲティングなどの手法を用いることができる。また、レチノイド又はその誘導体ががん細胞への標的化剤として有用であることも知られているため(WO 2008/120815)、レチノイドを標的化剤として含む担体を利用することもできる。かかる担体は、上記文献のほか、WO 2009/036368、WO 2010/014117、WO 2012/170952などに記載されている。
 本明細書に記載される本発明の各種剤又は組成物(各種医薬組成物を含む)はいずれの形態で供給されてもよいが、保存安定性の観点から、用時調製可能な形態、例えば、医療の現場あるいはその近傍において、医師及び/又は薬剤師、看護士、もしくはその他のパラメディカルなどによって調製され得る形態で提供してもよい。かかる形態は、本発明の剤又は組成物が、脂質やタンパク質、核酸などの安定した保存が難しい成分を含むときに特に有用である。この場合、本発明の剤又は組成物は、これらに必須の構成要素の少なくとも1つを含む1個又は2個以上の容器として提供され、使用の前、例えば、24時間前以内、好ましくは3時間前以内、そしてより好ましくは使用の直前に調製される。調製に際しては、調製する場所において通常入手可能な試薬、溶媒、調剤器具などを適宜使用することができる。
 したがって、本発明は、本発明の各種剤又は組成物に含まれ得る活性成分を、単独でもしくは組み合わせて含む1個又は2個以上の容器を含む組成物の調製キット、ならびに、そのようなキットの形で提供される各種剤又は組成物の必要構成要素にも関する。本発明のキットは、上記のほか、本発明の各種剤又は組成物の調製方法や投与方法などが記載された指示、例えば説明書や、CD、DVD等の電子記録媒体等を含んでいてもよい。また、本発明のキットは、本発明の各種剤又は組成物を完成するための構成要素の全てを含んでいてもよいが、必ずしも全ての構成要素を含んでいなくてもよい。したがって、本発明のキットは、医療現場や、実験施設などで通常入手可能な試薬や溶媒、例えば、無菌水や、生理食塩水、ブドウ糖溶液などを含んでいなくてもよい。
 本明細書に記載される本発明の各種処置方法における有効量とは、例えば、疾患の症状を低減し、又は疾患の進行を遅延もしくは停止する量であり、好ましくは、疾患を抑制し、又は治癒する量である。また、投与による利益を超える悪影響が生じない量が好ましい。かかる量は、培養細胞などを用いたin vitro試験や、マウス、ラット、イヌ又はブタなどのモデル動物における試験により適宜決定することができ、このような試験法は当業者によく知られている。また、本発明の処置方法に用いる薬物の用量は当業者に公知であるか、又は、上記の試験等により適宜決定することができる。
 本明細書に記載される本発明の処置方法において投与する活性成分の具体的な用量は、処置を要する対象に関する種々の条件、例えば、症状の重篤度、対象の一般健康状態、年齢、体重、対象の性別、食事、投与の時期及び頻度、併用している医薬、治療への反応性、剤形、及び治療に対するコンプライアンスなどを考慮して決定され得る。
  投与経路としては、経口及び非経口の両方を包含する種々の経路、例えば、経口、静脈内、筋肉内、皮下、局所、腫瘍内、直腸、動脈内、門脈内、心室内、経粘膜、経皮、鼻内、腹腔内、肺内及び子宮内等の経路が含まれる。
 投与頻度は、用いる剤や組成物の性状や、上記のものを含む対象の条件によって異なるが、例えば、1日多数回(すなわち1日2、3、4回又は5回以上)、1日1回、数日毎(すなわち2、3、4、5、6、7日毎など)、1週間毎、数週間毎(すなわち2、3、4週間毎など)であってもよい。
 本明細書で用いる場合、用語「対象」は、任意の生物個体を意味し、好ましくは動物、さらに好ましくは哺乳動物、さらに好ましくはヒトの個体である。本発明において、対象は健常であっても、何らかの疾患に罹患していてもよいものとするが、特定の疾患の処置が企図される場合には、典型的にはかかる疾患に罹患しているか、罹患するリスクを有する対象を意味する。
 また、用語「処置」は、本明細書で用いる場合、疾患の治癒、一時的寛解又は予防などを目的とする医学的に許容される全ての種類の予防的及び/又は治療的介入を包含するものとする。例えば、「処置」の用語は、疾患の進行の遅延又は停止、病変の退縮又は消失、発症の予防又は再発の防止などを含む、種々の目的の医学的に許容される介入を包含する。
 ところで、上述のように、GST-πを抑制する薬物は、BRAF遺伝子に変異を有する細胞に対して細胞死誘導及び/又は細胞増殖抑制を示す。したがって、GST-πに対する抑制を指標として、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の細胞死誘導剤及び/又は細胞増殖抑制剤をスクリーニングすることができる。すなわち、GST-πを抑制できる物質は、BRAF遺伝子に変異を有する細胞(典型的にはがん細胞)の細胞死誘導剤及び/又は細胞増殖抑制剤の候補物質となる。
 例えば、がん細胞の一例として、BRAF遺伝子に変異を有するがん細胞に対して被検物質を接触させ、当該細胞における、GST-πの発現量を測定する。被検物質の非存在下において測定した発現量と比較して、被検物質を接触させたときの発現量が低下した場合、当該被検物質をGST-πを抑制する薬物の候補物質として選択することができる。
 ここで、被検物質としては、何ら限定されず、如何なる物質であってもよい。被検物質としては、単独の物質であってもよいし、複数の構成成分からなる混合物であってもよい。被検物質としては、例えば微生物若しくは培養液からの抽出物のように未同定の物質を含むような構成であってもよいし、既知の組成物を所定の組成比で含むような構成であってもよい。また、被検物質としては、タンパク質、核酸、脂質、多糖類、有機化合物及び無機化合物のいずれでもよい。
 以下、実施例により本発明を更に詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は以下の実施例に限定されるものではない。
〔実施例1〕
 本実施例では、BRAF遺伝子に変異を有する細胞に対してGST-πを抑制する薬物を作用させたときの細胞増殖抑制効果を検討した。先ず、BRAF遺伝子に変異(V600E)を有するがん細胞として、大腸癌細胞株1種類(CACO-2)、メラノーマ細胞株4種類(A375、SK-MEL-28、A2058、Malme-3M)を37℃で5% CO2を含む大気下で培養した。使用した培地は、CACO-2はMEM+20%、FBS+0.1mM及びNEAAとし、A375はDMEM+15%及びFBSとし、SK-MEL-28はEMEM+10%及びFBSとし、A2058はDMEM+10%及びFBSとし、Malme-3MはIMDM+20%及びFBSとし、いずれも抗生物質を添加した。
 そして、トランスフェクションの前日、各細胞を10~20%コンフルエントとなるように抗生物質不含の培地を用いて100mm組織培養プラスチックディッシュに播種した。1mLのOpti-MEM I Reduced Serum Medium(GIBCO社)中にGST-π siRNA(GGGAGGCAAGACCUUCAUUTT、siRNA  ID#2385、Ambion社(配列番号3))を600pmol加え、穏やかに混合した。次に、Lipofectamine RNAi MAX(Invitrogen社)を1mLのOpti-MEM I Reduced Serum Medium(GIBCO社)中に35μLを希釈し、穏やかに混合した。希釈したGST-π siRNAと希釈したLipofectamine RNAi MAXを穏やかに混合した後、室温で10分間インキュベートした。この間、培地を10mLのOpti-MEM I Reduced Serum Mediumに交換した。10分間のインキュベーション後、GST-π siRNAとLipofectamine RNAi MAXとの複合体を細胞に加え、37℃で5% CO2を含む大気下でインキュベートした。5時間のインキュベーション後、10mLの抗生物質不含の培地に交換した。培地交換後1時間で、PBSで洗浄し、0.25% Trypsin-EDTA(SIGMA社)を用いて細胞を剥がし、抗生物質を含む培地に懸濁した。細胞は5mlの培地に懸濁し、60mm組織培養プラスチックディッシュに播種した(CACO-2:0.4×105個、A375:1.0×105個、SK-MEL-28:0.2×105個、A2058:0.8×105個、Malme-3M:0.6×105個)。
 コントロール実験として、Scramble siRNA(CGAUUCGCUAGACCGGCUUCAUUGCAG、北海道システムサイエンス社(配列番号4))、又はAllStars Negative Control siRNA(siControl)(QIAGEN社)を用いて同様の操作を行った。GST-π siRNAのトランスフェクション後、0日目と5日目にそれぞれ細胞数を計測した。
 また、本実施例では、CACO-2細胞、A375細胞、SK-MEL-28細胞、A2058細胞及びMalme-3M細胞に対してGST-π siRNAを作用させたときのGST-πの発現をウエスタンブロットによりそれぞれ確認した。すなわち、GST-π siRNAのトランスフェクション後3日目において採取した細胞を用いてGST-πノックダウンのウエスタンブロット解析を行った。先ず、採取した細胞を冷PBSで洗った後、冷lysis buffer(1% NP-40、50mM Tris-HCl(pH7.4)、150mM NaCl、1mM EDTA、complete Mini EDTA-free(Roche社)、PhosSTOP(Roche社))を加えて、氷冷、30分間インキュベートして可溶化した。その後、4℃、15000rpmで15分間遠心分離を行い、細胞抽出液を得た。得られた細胞抽出液に対し、Micro BCA Protein Assay Kit(Thermo SCIENTIFIC社)を用いてタンパクの定量を行った。次に、20μgの細胞抽出液を還元条件下で変性させ、マルチゲルIIミニ4/20(13w)(コスモバイオ社)を用いて、SDS-PAGEを行い、タンパク質を分離した。SDS-PAGE終了後、タンク式ブロッティング装置を用いて、PVDF膜に転写した。転写膜を5%スキムミルク/0.05% Tween20添加PBS(PBS-Tと略す)で4℃、16時間でインキュベートしてブロッキングを行った。続いて、Membrane blocking Solution(Invitrogen社)で希釈した抗GST-π抗体(MBL社)と4℃で16時間反応させた。二次抗体反応は西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)標識したウサギ抗体を用いて室温で1時間行った。バンドのシグナル検出はECL Western Blocking Detection Reagents(GE Healthcare社)を用いた化学発光法によってX線フィルム上で行った。各操作の間の洗浄は、PBS-Tを用いて5分間の振盪を4回行った。
 大腸癌細胞株に関する結果を図1に示し、メラノーマ細胞株に関する結果を図2に示す。なお、図1及び2には、細胞数を測定した結果とウェスタンブロットによる解析の結果とを併せて示している。図1及び2に示すように、大腸癌細胞株及びメラノーマ細胞株ともに、BRAF遺伝子に変異を有するがん細胞においては、GST-πを抑制する薬剤であるGST-π siRNAによりGST-πノックダウンにより細胞増殖能が顕著に抑制された。BRAF遺伝子における変異は悪性度の高い腫瘍において認められており、大腸癌では切除不能大腸癌における予後不良因子として知られている。メラノーマの患者の半数はBRAF遺伝子に変異をもっており、転移能が高い場合、致死率・悪性度が最も高い。本実施例の結果より、このようなBRAF遺伝子に変異を有するがんについて、GST-πを抑制する薬剤が細胞増殖抑制に効くことが示唆されたことから、これらの難治性癌の新規治療法につながることが期待される。
〔実施例2〕
 本実施例では、BRAF遺伝子に変異を有する細胞に対してGST-πを抑制する薬物及びBRAF阻害剤を作用させたときの細胞増殖抑制効果を検討した。
 先ず、実施例1と同様にして大腸癌細胞株1種類(CACO-2)及びメラノーマ細胞株2種類(SK-MEL-28及びA2058)をそれぞれ培養し、トランスフェクションの前日、10~20%コンフルエントとなるように抗生物質不含の培地を用いて100mm組織培養プラスチックディッシュに播種した。1mLのOpti-MEM I Reduced Serum Medium(GIBCO社)中にGST-π siRNA(GGGAGGCAAGACCUUCAUUTT、siRNA  ID#2385、Ambion社(配列番号3))を600pmol加え、穏やかに混合した。次に、Lipofectamine RNAi MAX(Invitrogen社)を1mLのOpti-MEM I Reduced Serum Medium(GIBCO社)中に35μLを希釈し、穏やかに混合した。希釈したGST-π siRNAと希釈したLipofectamine RNAi MAXを穏やかに混合した後、室温で10分間インキュベートした。この間、培地を10mLのOpti-MEM I Reduced Serum Mediumに交換した。10分間のインキュベーション後、GST-π siRNAとLipofectamine RNAi MAXとの複合体を細胞に加え、37℃で5% CO2を含む大気下でインキュベートした。5時間のインキュベーション後、10mLの抗生物質不含の培地に交換した。培地交換後1時間で、PBSで洗浄し、0.25% Trypsin-EDTA(SIGMA社)を用いて細胞を剥がし、抗生物質を含む培地に懸濁した。細胞は5mlの培地に懸濁し、60mm組織培養プラスチックディッシュに播種した(CACO-2:0.4×105個、SK-MEL-28:0.2×105個及びA2058:0.2×105個)。コントロール実験として、AllStars Negative Control siRNA(siControl)(QIAGEN社)を用いて同様の操作を行った。トランスフェクション後1日目から、BRAF阻害剤であるPLX4720(Selleck社)を、CACO-2に対しては40μM、SK-MEL-28に対しては0.7μM、及びA2058に対しては10μMになるように培地中に加え5日目まで培養した。PLX4720処理のコントロールは溶媒のDMSO(和光純薬)を加えて培養した。Growth assayはトランスフェクション後0日目から5日目までの細胞数を計測することで行った。
 CACO-2について細胞数を計測した結果を図3に示し、SK-MEL-28及びA2058について細胞数を計測した結果を図4に示す。図3から分かるように、GST-π siRNAを単独で大腸癌細胞株(BRAF遺伝子に変異を有するCACO-2株)に作用させた場合、PLX4720をsiControlとともに当該大腸癌細胞株に作用させた場合と比較して、これらGST-π siRNA及びPLX4720を併用して同細胞株に作用させた場合には細胞増殖抑制効果が顕著であることが示された。また、図4から分かるように、GST-π siRNAを単独でメラノーマ細胞株(BRAF遺伝子に変異を有するSK-MEL-28及びA2058)に作用させた場合、PLX4720をsiControlとともに当該メラノーマ細胞株に作用させた場合と比較して、これらGST-π siRNA及びPLX4720を併用して同細胞株に作用させた場合には細胞増殖抑制効果が顕著であることが示された。
〔実施例3〕
 本実施例では、BRAF遺伝子に変異を有する細胞であってBRAF阻害剤に耐性を有する細胞(BRAF阻害剤耐性細胞)に対してGST-πを抑制する薬物を作用させたときの細胞増殖抑制効果を検討した。
<細胞数測定>
 本実施例で使用したBRAF阻害剤耐性細胞は以下のように作製した。実施例1で使用したメラノーマ細胞株A375を1~5μMのPLX4720(Selleck社)を添加した抗生物質と15% FBSを含むDMEM培地で、37℃で5% CO2を含む大気下で1ヵ月間インキュベートした。1ヵ月間のインキュベートの後に生存する細胞株をPLX4720耐性A375細胞として本実施例に使用した。
 本実施例では、トランスフェクションの前日、PLX4720耐性A375細胞を0.5×106個/10mlとなるように抗生物質不含の15% FBS入りDMEM培地を用いて100mm組織培養プラスチックディッシュに播種した。1mLのOpti-MEM I Reduced Serum Medium(GIBCO社)中にGST-π siRNA(GGGAGGCAAGACCUUCAUUTT、siRNA  ID#2385、Ambion社(配列番号3))を600pmol加え、穏やかに混合した。次に、Lipofectamine RNAi MAX(Invitrogen社)を1mLのOpti-MEM I Reduced Serum Medium(GIBCO社)中に35μLを希釈し、穏やかに混合した。希釈したGST-π siRNAと希釈したLipofectamine RNAi MAXを穏やかに混合した後、室温で10分間インキュベートした。この間、培地を10mLのOpti-MEM I Reduced Serum Mediumに交換した。10分間のインキュベーション後、GST-π siRNAとLipofectamine RNAi MAXとの複合体を細胞に加え、37℃で5% CO2を含む大気下でインキュベートした。5時間のインキュベーション後、10mLの抗生物質不含の15% FBS入りDMEM培地に交換した。培地交換後2時間で、PBSによる洗浄後、0.5% Trypsin-EDTA(SIGMA社)を用いて細胞を剥がし、抗生物質と15% FBSを含むDMEM培地に懸濁した。懸濁液中の細胞は1.0×105個/5mlになるように60mm組織培養プラスチックディッシュに播種した。コントロール実験としてScramble siRNA(CGAUUCGCUAGACCGGCUUCAUUGCAG、北海道システムサイエンス社(配列番号4))、あるいはAllStars Negative Control siRNA(QIAGEN社)を用いて同様の操作を行った。GST-π siRNAのトランスフェクション後それぞれ0、1、2、3、4、5日目において細胞数を計測した。
<GST-π発現確認>
 上述のように、PLX4720耐性A375細胞に対してGST-π siRNAを作用させたときのGST-πの発現をウエスタンブロットにより確認した。すなわち、GST-π siRNAのトランスフェクション後の上記各時点において採取した細胞を用いてGST-πノックダウンのウエスタンブロット解析を行った。
 先ず、採取した細胞を冷PBSで洗った後、冷lysis buffer(1% NP-40、50mM Tris-HCl(pH7.4)、150mM NaCl、1mM EDTA、complete Mini EDTA-free(Roche社)、PhosSTOP(Roche社))を加えて、氷冷、30分間インキュベートして可溶化した。4℃、15000rpmで15分間遠心分離を行い、細胞抽出液を得た。得られた細胞抽出液に対し、Micro BCA Protein Assay Kit(Thermo SCIENTIFIC社)を用いてタンパクの定量を行った。次に、20μgの細胞抽出液を還元条件下で変性させ、マルチゲルIIミニ4/20(13w)(コスモバイオ社)を用いて、SDS-PAGEを行い、タンパク質を分離した。SDS-PAGE終了後、タンク式ブロッティング装置を用いて、PVDF膜に転写した。転写膜を5%スキムミルク/0.05% Tween20添加PBS(PBS-Tと略す)で4℃、16時間でインキュベートしてブロッキングを行った。続いて、Membrane blocking Solution(Invitrogen社)で希釈した抗GST-π抗体(MBL社)と4℃で16時間反応させた。二次抗体反応は西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)標識したウサギ抗体を用いて室温で1時間行った。バンドのシグナル検出はECL Western Blocking Detection Reagents(GE Healthcare社)を用いた化学発光法によってX線フィルム上で行った。各操作の間の洗浄は、PBS-Tを用いて5分間の振盪を4回行った。
<結果>
 近年、BRAF阻害剤耐性を獲得したメラノーマ細胞株がメラノーマの再発に関与することが解っている。そこで、GST-πがBRAF阻害剤耐性メラノーマのCRAF依存性を促進しているかどうかを調べるために、PLX4720耐性A375でGST-πをノックダウンした。細胞増殖を測定したところ、顕著な増殖抑制効果が認められた(図5)。GST-πノックダウンを確認したところ、2日目と3日目でGST-π発現が抑制されていた(図6)。
 本実施例により、BRAF遺伝子に変異を有する細胞であってBRAF阻害剤に耐性を有する細胞(BRAF阻害剤耐性細胞)の増殖を効果的に抑制できることが示された。この結果より、BRAF阻害剤耐性細胞が一因となる疾患、例えばメラノーマの再発を防止できる或いは低減できるといった効果が期待できる。
 本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願はそのまま引用により本明細書に組み入れられるものとする。

Claims (12)

  1.  GST-πを抑制する薬物を有効成分として含む、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の細胞死誘導剤。
  2.  GST-πを抑制する薬物を有効成分として含む、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の細胞増殖抑制剤。
  3.  上記変異は、V600E変異であることを特徴とする請求項1又は2記載の剤。
  4.  上記BRAF遺伝子に変異を有する細胞は、BRAF阻害剤に対する耐性を有する細胞であることを特徴とする請求項1又は2記載の剤。
  5.  上記薬物が、RNAi分子、リボザイム、アンチセンス核酸、DNA/RNAキメラポリヌクレオチド及びこれらのうち少なくとも1種を発現するベクターからなる群から選択される物質であることを特徴とする請求項1又は2記載の剤。
  6.  上記BRAF遺伝子に変異を有する細胞が、GST-πを高発現するがん細胞であることを特徴とする請求項1又は2記載の剤。
  7.  請求項1乃至6のいずれか一項記載の剤を含む、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の増殖異常に起因する疾患の治療用医薬組成物。
  8.  上記疾患ががんであることを特徴とする請求項7記載の医薬組成物。
  9.  上記がんはGST-πを高発現するがんであることを特徴とする請求項8記載の医薬組成物。
  10.  上記がんは大腸癌又はメラノーマであることを特徴とする請求項8記載の医薬組成物。
  11.  GST-πを抑制する薬物を選択することを含む、BRAF遺伝子に変異を有する細胞の細胞死誘導剤及び/又は細胞増殖抑制剤のスクリーニング方法。
  12.  がん細胞に対して被検物質を接触させる工程と、上記細胞におけるGST-πの発現量を測定する工程と、被検物質の非存在下において測定した場合と比較して、当該発現量が低下した場合に上記GST-πを抑制する薬物として選択する工程とを含む請求項11記載のスクリーニング方法。
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