WO2016017756A1 - 血中希少細胞捕獲方法 - Google Patents

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WO2016017756A1
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rare cells
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cells
serum
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高井　健次
アンソニー エイチ ツァイ
理美 八木
達也 松永
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日立化成株式会社
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    • G01N2001/4088—Concentrating samples by other techniques involving separation of suspended solids filtration

Definitions

  • the present invention relates to a method for capturing rare cells in blood using a filter capable of efficiently capturing rare cells in blood, particularly circulating tumor cells (hereinafter referred to as CTC).
  • CTC circulating tumor cells
  • CTC cancer prognosis and treatment
  • Detecting CTC is a useful means of determining the progression of cancer pathology when the initial spread of cancer cells extends into peripheral blood.
  • blood components such as red blood cells or white blood cells are predominantly present in blood, it is difficult to detect an extremely small amount of CTC.
  • Patent Document 1 a method for efficiently detecting a small amount of CTC by using a resin filter using parylene has been proposed.
  • Patent Document 2 a method of improving the strength of the filter by using a metal filter instead of a resin and separating it by the difference in leukocyte and cancer cell deformability has been proposed (Patent Document 2).
  • Non-Patent Documents 1 to 6 a method has been proposed in which leukocytes are selectively removed to extract remaining cells as blood rare cells.
  • the filter method can efficiently remove white blood cells, red blood cells and plasma plate in blood, but since white blood cells are close in size to cancer cells, all cannot be removed.
  • the filter method is a method of separation based on the difference in leukocyte size and cancer cell size and difference in deformability.
  • leukocytes and cancer cells can be separated considerably by devising the material, pore shape, pore diameter, aperture ratio, and flow rate of the filter.
  • the only blood cancer cell testing system approved by the US Food and Drug Administration (FDA) is Cellsearch, which can selectively capture only cancer cells with EpCAM. However, since this method can capture only cancer cells having EpCAM, its clinical significance is questioned.
  • the blood volume used at this time is 7.5 mL.
  • the concentration rate is considered to be about 1: 25000.
  • the number of leukocytes allowed per cancer cell is 10 to 100, which is a desired characteristic.
  • the number of leukocytes allowed when 7.5 mL of blood is flowed is desirably less than 500, more desirably less than 100, even more desirably less than 50, and even more desirably less than 10.
  • the present invention has been made in view of the above, and after reducing leukocytes with magnetic beads, further reducing leukocytes with a filter, a sample containing rare cell capture in blood suitable for downstream can be prepared.
  • An object is to provide a method for capturing rare cells in blood.
  • the method for capturing rare blood cells is a method for capturing rare blood cells from blood, which includes removing leukocytes after blood filtration using a filter.
  • the step of removing the leukocytes may be a step of removing leukocytes with magnetic beads.
  • the number of white blood cells in the liquid containing rare cells in blood obtained after the blood filtration is 10,000 or less.
  • the cell suspension may be diluted with an aqueous solution containing mammalian serum, plasma, or a protein derived therefrom.
  • the mammal's serum or plasma may be derived from cows, horses or humans.
  • the mammal's serum or plasma may be derived from a fetal bovine.
  • the embodiment may be such that the concentration of the mammal's serum or plasma aqueous solution is in the range of 1% to 50%.
  • the serum or plasma aqueous solution may have a phosphate buffer solution as a main component.
  • the serum or plasma aqueous solution may contain an anticoagulant.
  • anticoagulant is any of EDTA, heparin, sodium citrate, and sodium fluoride.
  • the embodiment may include a step of immersing the filter in an aqueous solution containing mammalian serum or plasma before the blood filtration.
  • the embodiment may include a step of washing blood cells with an aqueous solution containing mammalian serum or plasma after the blood filtration and before the step of removing the leukocytes.
  • the mammal serum or plasma may be derived from cows, horses or humans.
  • the embodiment may be such that the mammal serum is fetal bovine serum or plasma.
  • the filter surface may be gold, platinum, palladium, or an alloy thereof.
  • the filter may be made of nickel as a main component, and the surface thereof is plated with gold, platinum, palladium, or an alloy thereof.
  • the filter may be made of copper as a main component, and the surface thereof is plated with gold, platinum, palladium, or an alloy thereof.
  • the filter may be made of palladium as a main component, and the surface thereof is plated with gold, platinum, or an alloy thereof.
  • the outermost layer of the filter may be a gold plating.
  • the outermost layer of the filter may have a noble metal plating of 0.05 ⁇ m to 1 ⁇ m.
  • the blood rare cells may be cancer cells.
  • the opening shape of the through hole of the filter may be any one of a circle, an ellipse, a rounded rectangle, a rectangle, and a square.
  • the rounded rectangle is a shape composed of two long sides of equal length and two semicircles.
  • the shape of the through hole of the filter may include one or more of a rectangle and a rounded rectangle, and the length of the short side may be 5 ⁇ m to 15 ⁇ m.
  • the film thickness of the filter may be 3 ⁇ m to 50 ⁇ m.
  • a blood rare cell capture method capable of preparing a sample containing blood rare cell capture suitable for downstream.
  • the blood rare cell capturing method blood rare cells are filtered from the blood using a filter.
  • the apparatus configuration for performing blood filtration is not particularly limited, a case where a cell capture cartridge is used will be described as an example.
  • the cell trapping cartridge 100 has an inflow port 130 to which an inflow pipe 125 into which the cell dispersion liquid flows is connected, and an outflow port 140 to which an outflow pipe 135 from which the cell dispersion liquid flows out is connected.
  • a housing 120 and a filter 105 disposed in the housing 120 and having a capture region for capturing rare blood cells contained in the cell dispersion.
  • the housing 120 is a member for holding the filter 105 and includes an upper member 110 and a lower member 115.
  • the shape of the housing 120 may be a rectangular parallelepiped or a cylinder, and is not particularly limited.
  • a treatment liquid such as blood or a cleaning liquid is connected upstream of the inflow pipe 125.
  • a treatment liquid such as blood or a cleaning liquid is connected upstream of the inflow pipe 125.
  • blood or the like is supplied from the inflow pipe 125 to the inside of the housing 120 by driving the pump P. Then, it is discharged from the outflow pipe 135 to the outside.
  • a through hole 106 is formed in the filter 105.
  • blood red blood cells and the like pass through the through hole 106, but blood rare cells cannot pass through the through hole 106 and stay on the surface of the filter 105. Thereby, blood rare cells can be collected.
  • the shape of the cell trapping cartridge 100 is not limited to the above.
  • the configuration of the apparatus is not particularly limited as long as rare cells in the blood can be captured by blood filtration using a filter.
  • FIG. 2 is a schematic cross-sectional view showing a method for producing a metal thin film filter using a substrate in which peelable copper foil (Ni foil in the case of performing copper plating) is bonded to MCL.
  • FIG. 2A shows a substrate in which peelable copper foil 2 (Ni foil when copper plating is performed) is laminated on MCL1. First, this substrate is prepared.
  • the material used as the substrate for producing the filter is preferably copper (nickel when the plating is copper). Copper can be easily removed by chemical dissolution with a chemical solution, and is superior to other materials in adhesion to the photoresist.
  • a photoresist 3 is formed on the peelable copper foil 2 of the substrate.
  • the thickness of this photoresist is preferably 1.0 to 2.0 times the thickness of the subsequent conductor. If this thickness is thin, resist peeling will be difficult later, and if it is thick, circuit formability will be difficult.
  • the photoresist 3 preferably has a thickness of 15 to 50 ⁇ m.
  • a negative photosensitive resin composition is preferable.
  • the negative photosensitive resin composition preferably contains at least a binder resin, a photopolymerizable compound having an unsaturated bond, and a photopolymerization initiator.
  • the photoresist is exposed. Thereby, the exposure part 3a is formed in the area
  • the photoresist development and removal of the unexposed portion 3b is performed with an alkaline solution or the like. Thereby, the exposure part 3a remains in the position corresponding to the through-hole of the filter.
  • the plating layer 5 is formed by performing electrolytic plating on the portion not covered with the photoresist. This plated portion becomes the material of the filter.
  • peelable copper foil 2 on which plating layer 5 has been formed by electrolytic plating is peeled off from MCL1.
  • the peelable copper foil 2 is removed by chemical dissolution with a chemical solution, and the free-standing film formed by the exposed portion 3a and the plating layer 5 is taken out.
  • the exposed portion 3 a made of the photoresist remaining in the free-standing film is removed, and a through hole 6 is formed in the plating layer 5.
  • electroless gold plating is performed to form a gold plating layer 7 on the filter surface.
  • the filter 105 used in the cell trapping cartridge 100 can be manufactured.
  • FIG. 3 is a schematic cross-sectional view showing a method for producing a metal thin film filter using a copper plate (Ni plate when copper plating is performed).
  • the method shown in FIG. 3 is the same as the manufacturing method shown in FIG. 2 except that a copper plate (or Ni plate) 2 ′ is used instead of the MCL 1 and the peelable copper foil 2 in the method shown in FIG. 2.
  • FIG. 3A shows a step of preparing a copper plate 2 ′ used as a substrate.
  • FIG. 3B shows a process of laminating the photoresist 3 on the copper plate 2 ′.
  • FIG. 3C shows the photoresist exposure with the photomask 4 overlaid.
  • FIG. 3D shows development removal of the photoresist in the unexposed portion 3b.
  • FIG. 3E shows a step of forming a plating layer by electrolytic plating on a portion of the photoresist not covered with the exposed portion 3a.
  • FIG. 3F shows a process of removing the copper plate 2 ′ by chemical dissolution (chemical etching) with a chemical solution and taking out a free-standing film formed by the exposed portion 3 a and the plating layer 5.
  • FIG. 3G shows a step of removing the exposed portion 3 a of the photoresist remaining in the free-standing film and forming a through hole 6 in the plating layer 5.
  • FIG. 3H shows a process of performing electroless gold plating to form a gold plating layer 7 on the filter surface.
  • the filter 105 used in the cell trapping cartridge 100 can be manufactured by using either the method shown in FIG. 2 or the method shown in FIG.
  • the material of the filter 105 is preferably metal. Since metal is excellent in workability, the processing accuracy of the filter can be increased. Thereby, the capture rate of the components to be captured can be further improved. In addition, since metal is more rigid than other materials such as plastic, its size and shape can be maintained even when external force is applied. For this reason, when a component slightly larger than the through hole is deformed and allowed to pass, separation / concentration can be performed with higher accuracy.
  • the main component of the metal is preferably nickel, silver, palladium, copper, iridium, or an alloy thereof. These metals can be electroplated.
  • the “main component” indicates that the weight ratio of the component to the total weight of the filter 105 is 50% or more.
  • Palladium and iridium have high redox potential, poor solubility and good characteristics, but have the disadvantage of being expensive.
  • Nickel has a lower oxidation-reduction potential than hydrogen, so it is easily dissolved but is inexpensive.
  • Silver and palladium are noble metals and are relatively inexpensive compared to iridium.
  • the material used as the substrate (copper plate 2 ': see FIG. 3) for producing the filter is preferably copper (nickel when the material of the filter 105 is copper). Copper can be easily removed by chemical dissolution with a chemical solution, and is superior to other materials in adhesion to the photoresist.
  • copper when the material of the filter 105 is copper is nickel is preferable.
  • the formation of the plating layer 5 shown in FIGS. 2E and 3E is performed by electrolytic plating.
  • electrolytic nickel plating Watts bath (mainly nickel sulfate, nickel chloride, boric acid), sulfamic acid bath (mainly nickel sulfamate, boric acid), strike bath (mainly nickel chloride, hydrogen chloride) Etc.
  • Examples of electrolytic silver plating include a bath mainly composed of potassium silver cyanide or potassium tartrate.
  • electrolytic palladium plating examples include a bath made of a water-soluble palladium salt and a naphthalene sulfonic acid compound.
  • Electrolytic iridium plating includes a bath containing a soluble iridium salt containing halogen and alcohols.
  • Examples of the electrolytic copper plating include a bath mainly composed of copper sulfate, sulfuric acid, and chloride ions.
  • Electrolytic plating is performed using these plating baths.
  • the current density during electroplating is preferably in the range of 0.3 to 4 A / dm 2 , and more preferably in the range of 0.5 to 3 A / dm 2 .
  • the resist when plating is performed that is, the location of the exposed portion 3a becomes the location of the through hole.
  • the opening shape of the through hole include a circle, an ellipse, a square, a rectangle, a rounded rectangle, and a polygon. From the viewpoint of efficiently capturing the target component, a circle, rectangle, or rounded rectangle is preferable. In addition, a rounded rectangle is particularly preferable from the viewpoint of preventing clogging of the filter.
  • the hole diameter of the through hole 6 is set according to the size of the component to be captured.
  • the hole diameter in a shape other than a circle such as an ellipse, rectangle, or polygon is the maximum value of the diameter of a sphere that can pass through each through hole.
  • the opening shape is rectangular, as shown in FIG. 4, the short hole diameter on the short side and the long hole diameter on the long side can be defined, but the hole diameter of the through hole 6 is the short hole diameter.
  • the diameter is the diameter of the inscribed circle of the polygon.
  • the length of the short pore diameter of the filter is preferably 5 ⁇ m to 15 ⁇ m, more preferably 7 ⁇ m to 9 ⁇ m.
  • the average aperture ratio of the through holes of the filter 105 is preferably 3 to 50%, more preferably 3 to 20%, and particularly preferably 3 to 10%.
  • the aperture ratio refers to the ratio of the area occupied by the through hole to the area of the region functioning as a filter (see FIG. 4).
  • the area of the region functioning as a filter is a region (region A1 surrounded by a broken line in FIG. 4) obtained by connecting the outermost portions of the through holes among the plurality of through holes included in the filter. If the aperture ratio is too high, the pressure applied to the white blood cells decreases, and the white blood cell residue increases. If the aperture ratio is low, the amount of blood that can flow is reduced.
  • the thickness of the filter 105 is preferably 3 ⁇ m to 50 ⁇ m, more preferably 5 ⁇ m to 30 ⁇ m, and particularly preferably 8 ⁇ m to 20 ⁇ m.
  • the film thickness of the filter 105 is less than 3 ⁇ m, the strength of the filter is lowered, and the handleability may be difficult.
  • the thickness exceeds 50 ⁇ m it is feared that productivity decreases due to a longer processing time, cost disadvantages due to excessive consumption of materials, or difficulty in fine processing itself, and leukocytes are difficult to escape.
  • the resin layer is peeled off and the copper foil is etched (FIG. 2), or the copper plate is removed (FIG. 3), so that plating is performed as shown in FIG. 2 (H) or FIG. 3 (G).
  • the filter with layer 5 is completed.
  • the resist (exposed portion 3a) remaining on the filter is removed with strong alkali.
  • the strong alkali is preferably 0.1 to 10 wt% NaOH or KOH aqueous solution.
  • Monoethanolamine (1 to 20 vol%) or the like may be added to promote peeling.
  • the resist can be removed with a solution obtained by adding alkali (0.1 to 10 wt% NaOH or KOH) to sodium permanganate or potassium permanganate.
  • ⁇ Precious metal plating should be applied to the filter after removing the resist.
  • noble metal plating gold, palladium, platinum, ruthenium, indium and the like are desirable.
  • gold is said to have the highest oxidation-reduction potential among all metals as described above, and has no cytotoxicity. There is almost no discoloration during long-term storage.
  • Gold plating can be performed electrolessly or electrolyzed. In the case of electrolysis, it is desirable to carry out electrolysis because the thickness variation becomes large and the pore diameter accuracy of the filter tends to be affected. However, electrolytic gold plating can improve the coverage.
  • Gold plating is effective only by displacement plating, but a combination of displacement plating and reduction plating is more effective.
  • the surface of the metal filter before gold plating may be oxidized. Therefore, the oxide film is removed, but here it is preferable to wash with an aqueous solution containing a compound that forms a complex with a metal ion.
  • an aqueous solution containing cyanides, EDTAs, or citric acids is preferable.
  • citric acids are most suitable as a pretreatment for gold plating.
  • citric acid anhydride, citric acid hydrate, citrate or citrate hydrate may be used.
  • citric acid anhydride, citric acid monohydrate, Sodium citrate, potassium citrate and the like can be used.
  • the concentration is preferably 0.01 mol / L to 3 mol / L, more preferably 0.03 mol / L to 2 mol / L, and particularly preferably in the range of 0.05 mol / L to 1 mol / L. preferable.
  • the immersion in a solution containing citric acid is preferably performed at 70 ° C. to 95 ° C. for 1 to 20 minutes.
  • the solution containing citric acid it is possible to add a buffer such as a reducing agent and a pH adjusting agent contained in the plating solution as long as the effects of the invention can be obtained.
  • a buffer such as a reducing agent and a pH adjusting agent contained in the plating solution
  • an aqueous solution of citric acid alone is most preferred.
  • the pH of the solution containing citric acid is preferably 5 to 10, more preferably 6 to 9.
  • the pH adjuster is not particularly limited as long as it is an acid or an alkali.
  • As the acid hydrochloric acid, sulfuric acid, nitric acid and the like can be used.
  • As the alkali alkali metals such as sodium hydroxide, potassium hydroxide and sodium carbonate can be used. Or the alkaline-earth metal hydroxide solution is mentioned. As described above, it can be used as long as the effect of citric acid is not inhibited.
  • nitric acid is contained in a solution containing citric acid at a high concentration of 100 mL / L, the effect of improving the adhesiveness is reduced as compared with the case where the solution is treated with a solution containing only citric acid.
  • the reducing agent is not particularly limited as long as it is reducible, and examples thereof include hypophosphorous acid, formaldehyde, dimethylamine borane, and sodium borohydride.
  • the displacement gold plating includes a cyan bath and a non-cyan bath, but the non-cyan bath is desirable in view of environmental load or remaining cytotoxicity.
  • the gold salt contained in the non-cyan bath include chloroaurate, gold sulfite, gold thiosulfate, and gold thiomalate. Only one type of gold salt may be used, or two or more types may be used in combination.
  • a cyan bath has an effect of dissolving a metal too much, some metals are liable to be dissolved to cause pinholes.
  • a non-cyan plating bath is preferable.
  • Gold sulfite is particularly preferred as the gold source.
  • gold sulfite sodium gold sulfite, potassium gold sulfite, gold ammonium sulfite and the like are preferable.
  • the gold concentration is preferably in the range of 0.1 g / L to 5 g / L. If it is less than 0.1 g / L, gold is difficult to precipitate, and if it exceeds 5 g / L, the liquid tends to decompose.
  • the displacement gold plating bath may contain an ammonium salt or ethylenediaminetetraacetate as a gold complexing agent.
  • the ammonium salt include ammonium chloride and ammonium sulfate.
  • the ethylenediaminetetraacetate include ethylenediaminetetraacetic acid, sodium ethylenediaminetetraacetate, potassium ethylenediaminetetraacetate, and ammonium ethylenediaminetetraacetate.
  • the concentration of the ammonium salt is preferably used in the range of 7 ⁇ 10 ⁇ 3 mol / L to 0.4 mol / L. If the concentration of the ammonium salt is outside this range, the liquid tends to become unstable.
  • the concentration of ethylenediaminetetraacetate is preferably used in the range of 2 ⁇ 10 ⁇ 3 mol / L to 0.2 mol / L. If the concentration of ammonium salt is outside this range, the liquid tends to become unstable. .
  • 0.1 g / L to 50 g / L of sulfite should be contained.
  • the sulfite include sodium sulfite, potassium sulfite and ammonium sulfite.
  • hydrochloric acid or sulfuric acid When reducing the pH as a pH adjuster, it is preferable to use hydrochloric acid or sulfuric acid. Moreover, when raising pH, it is preferable to use sodium hydroxide, potassium hydroxide, and aqueous ammonia. The pH should be adjusted to 6-7. Outside this range, the stability of the solution or the appearance of the plating is adversely affected.
  • Replacement plating is preferably used at a liquid temperature of 30 to 80 degrees. Outside this range, the stability of the liquid or the appearance of the plating is adversely affected.
  • displacement plating is performed as described above, it is difficult to completely cover the metal with displacement plating. Therefore, next, reduction-type gold plating containing a reducing agent is performed.
  • the thickness of the displacement plating is preferably in the range of 0.02 ⁇ m to 0.1 ⁇ m.
  • gold sulfite and thiosulfate are preferable, and the content thereof is preferably in the range of 1 g / L to 10 g / L as gold. If the gold content is less than 1 g / L, the gold precipitation reaction decreases, and if it exceeds 10 g / L, the stability of the plating solution decreases and the amount of gold consumed increases due to the removal of the plating solution. It is not preferable.
  • the content is more preferably 2 g / L to 5 g / L.
  • the reducing agent examples include hypophosphorous acid, formaldehyde, dimethylamine borane, sodium borohydride, and the like, but a phenyl compound-based reducing agent is more preferable.
  • diamine, p-phenylenediamine, o-toluidine, o-ethylaniline, and p-ethylaniline One or more of these can be used.
  • the content of the reducing agent is preferably 0.5 g / L to 50 g / L. If the content of the reducing agent is less than 0.5 g / L, it tends to be difficult to obtain a practical deposition rate, and if it exceeds 50 g / L, the stability of the plating solution tends to decrease. .
  • the content of the reducing agent is more preferably 2 g / L to 10 g / L, and particularly preferably 2 g / L to 5 g / L.
  • the electroless gold plating solution may contain a heavy metal salt.
  • the heavy metal salt is preferably at least one selected from the group consisting of thallium salt, lead salt, arsenic salt, antimony salt, tellurium salt and bismuth salt.
  • thallium salt examples include inorganic compound salts such as thallium sulfate salt, thallium chloride salt, thallium oxide salt, and thallium nitrate salt, and organic complex salts such as dithallium malonate salt.
  • Lead salts include lead sulfate salt, nitric acid salt, and the like. Examples thereof include inorganic compound salts such as lead salts and organic acetate salts such as acetates.
  • arsenic salts include inorganic compound salts such as arsenic salts and arsenic arsenate trioxide, and organic complex salts.
  • antimony salts include organic complex salts such as antimony tartrate, antimony chloride salts, and antimony oxysulfate. And inorganic compound salts such as salts and antimony trioxide.
  • tellurium salts include inorganic compound salts and organic complex salts such as tellurite and tellurate.
  • organic complex salts such as tellurite and tellurate.
  • bismuth salts include bismuth (III) sulfate, bismuth chloride (III), and bismuth nitrate (III).
  • organic complex salts such as bismuth (III) oxalate.
  • the total addition amount is preferably 1 ppm to 100 ppm, more preferably 1 ppm to 10 ppm, based on the total capacity of the plating solution. If it is less than 1 ppm, the effect of improving the deposition rate may not be sufficient, and if it exceeds 100 ppm, the stability of the plating solution tends to deteriorate.
  • the electroless gold plating solution may contain a sulfur compound.
  • a sulfur compound in an electroless gold plating solution containing a phenyl compound reducing agent and a heavy metal salt, a sufficient deposition rate can be obtained even at a low temperature of about 60 to 80 ° C.
  • the stability of the plating solution is particularly excellent.
  • sulfur compounds include sulfide salts, thiocyanates, thiourea compounds, mercaptan compounds, sulfide compounds, disulfide compounds, thioketone compounds, thiazole compounds, and thiophene compounds.
  • Examples of the sulfide salt include potassium sulfide, sodium sulfide, sodium polysulfide, potassium polysulfide, and the like.
  • Examples of the thiocyanate include sodium thiocyanate, potassium thiocyanate, potassium dithiocyanate, and the like.
  • Examples of the thiourea compound include thiourea, methylthiourea, dimethylthiourea and the like.
  • Mercaptan compounds include 1,1-dimethylethanethiol, 1-methyl-octanethiol, dodecanethiol, 1,2-ethanedithiol, thiophenol, o-thiocresol, p-thiocresol, o-dimercaptobenzene, m -Dimercaptobenzene, p-dimercaptobenzene, thioglycol, thiodiglycol, thioglycolic acid, dithioglycolic acid, thiomalic acid, mercaptopropionic acid, 2-mercaptobenzozoimidazole, 2-mercapto-1-methylimidazole, 2 -Mercapto-5-methylbenzimidazole, etc.
  • Examples of the sulfide compound include diethyl sulfide, diisopropyl sulfide, ethyl isopropyl sulfide, diphenyl sulfide, methyl phenyl sulfide, rhodanine, thiodiglycolic acid, thiodipropionic acid, and the like.
  • Examples of the disulfide compound include dimethyl disulfide, diethyl disulfide, disulfide. Examples thereof include propyl disulfide and the like.
  • examples of the thioketone compound include thiosemicarbazide
  • examples of the thiazole compound include thiazole, benzothiazole, 2-mercaptobenzothiazole, 6-ethoxy-2-mercaptobenzothiazole, 2-aminothiazole, 2,1,3- Examples include benzothiadiazole, 1,2,3-benzothiadiazole, (2-benzothiazolylthio) acetic acid, 3- (2-benzothiazolylthio) propionic acid and the like.
  • examples of thiophene compounds include thiophene and benzothiophene. It can be illustrated.
  • Sulfur compounds may be used alone or in combination of two or more.
  • the content of the sulfur compound is preferably 1 ppm to 500 ppm, more preferably 1 ppm to 30 ppm, and particularly preferably 1 ppm to 10 ppm. If the content of the sulfur-based compound is less than 1 ppm, the deposition rate is reduced, poor plating adhesion occurs, and the coating appearance deteriorates. If it exceeds 500 ppm, the concentration management becomes difficult and the plating solution becomes unstable.
  • the electroless gold plating solution preferably contains at least one of a complexing agent, a pH buffering agent and a metal ion concealing agent in addition to the above-described gold salt, reducing agent, heavy metal salt and sulfur compound. Etc. are more preferable.
  • the electroless gold plating solution of the present invention preferably contains a complexing agent.
  • a complexing agent include non-cyanide complexing agents such as sulfites, thiosulfates, and thiomalates.
  • the content of the complexing agent is preferably 1 g / L to 200 g / L based on the total capacity of the plating solution. When the content of the complexing agent is less than 1 g / L, the gold complexing power decreases and the stability decreases. If it exceeds 200 g / L, the plating stability is improved, but recrystallization occurs in the solution, which is not economically good.
  • the content of the complexing agent is more preferably 20 g / L to 50 g / L.
  • the electroless gold plating solution preferably contains a pH buffer.
  • the pH buffering agent has an effect of keeping the deposition rate constant and stabilizing the plating solution.
  • a plurality of buffering agents may be mixed. Examples of pH buffering agents include phosphates, acetates, carbonates, borates, citrates, sulfates, etc. Among these, boric acid and sulfates are particularly preferable.
  • the content of the pH buffering agent is preferably 1 g / L to 100 g / L based on the total capacity of the plating solution.
  • the content of the pH buffering agent is less than 1 g / L, there is no pH buffering effect, and when it exceeds 100 g / L, recrystallization may occur.
  • a more preferable content is 20 g / L to 50 g / L.
  • a concealing agent in the gold plating solution.
  • a benzotriazole-based compound can be used, and examples of the benzotriazole-based compound include benzotriazole sodium, benzotriazole potassium, tetrahydrobenzotriazole, methylbenzotriazole, and nitrobenzotriazole.
  • the content of the metal ion concealing agent is preferably 0.5 g / L to 100 g / L based on the total capacity of the plating solution.
  • the content of the metal ion concealing agent is less than 0.5 g / L, there is a tendency that the effect of concealing impurities is small and sufficient liquid stability cannot be ensured.
  • it exceeds 100 g / L recrystallization may occur in the plating solution.
  • the range of 2 g / L to 10 g / L is most preferable.
  • the pH of the gold plating solution is preferably in the range of 5-10.
  • the pH of the plating solution is less than 5, sulfite or thiosulfate, which is a complexing agent of the plating solution, may be decomposed to generate toxic sulfite gas.
  • the pH exceeds 10 the stability of the plating solution tends to decrease.
  • the pH of the electroless gold plating solution is preferably in the range of 8-10.
  • gold plating is performed by immersing the filter after replacement gold plating.
  • the plating solution temperature is preferably 50 ° C to 95 ° C. If it is less than 50 ° C., the deposition efficiency is poor, and if it is 95 ° C. or more, the liquid tends to become unstable.
  • the outermost gold plating layer 7 thus formed is preferably made of gold having a purity of 99% by weight or more.
  • the gold purity of the gold plating layer 7 is less than 99% by weight, the cytotoxicity of the contact portion is increased. From the viewpoint of improving reliability, the purity of the gold layer is more preferably 99.5% by weight or more.
  • the thickness of the gold plating layer 7 is preferably 0.005 ⁇ m to 3 ⁇ m, more preferably 0.05 ⁇ m to 1 ⁇ m, and still more preferably 0.1 ⁇ m to 0.5 ⁇ m.
  • the thickness of the gold plating layer 7 is preferably 0.05 ⁇ m to 1 ⁇ m.
  • the gold surface formed as described above has no cytotoxicity and is stable in the air or most aqueous solutions containing blood. However, since the gold surface is relatively hydrophobic and has low biocompatibility, a treatment for improving biocompatibility is preferably performed. An example of the surface treatment is shown below.
  • the solvent containing the biocompatible polymer examples include mammalian serum or plasma.
  • Plasma is a supernatant formed by precipitation of blood cell components when collected in a blood collection tube containing an anticoagulant and left or centrifuged. This plasma contains clotting factors.
  • the anticoagulant does not enter, and the blood cell component clots due to a coagulation factor.
  • the supernatant in that case is serum, which lacks clotting factors.
  • fetal bovine serum is particularly preferable.
  • Serum contains protein. By adsorbing albumin or globulin contained in the protein on the filter surface, blood cell components are prevented from adsorbing on the filter surface. Although many proteins are present in serum, serum albumin accounts for about 50% to 65%.
  • Albumin has many amino groups because many amino acids are linked.
  • the amino group has a strong coordination bond to a noble metal (gold, platinum, palladium).
  • gold has almost no oxide film, so it forms a strong bond with albumin without any special pretreatment.
  • the filter 105 is pretreated with an aqueous solution obtained by diluting such serum or plasma.
  • the serum or plasma concentration is preferably in the range of 1% to 50%, more preferably in the range of 5% to 30%, and still more preferably in the range of 10% to 20%.
  • Serum or plasma should be diluted with an aqueous solvent, and preferably contains a buffer solution such as phosphate.
  • the serum or plasma aqueous solution preferably contains a phosphate buffer as a main component.
  • the serum or plasma solution contains a blood anticoagulant.
  • anticoagulants include EDTA, heparin, sodium citrate, sodium fluoride and the like, among which EDTA or heparin is desirable.
  • the treatment time is preferably 1 to 60 minutes, more preferably 1 to 10 minutes.
  • the time is shorter than 1 minute, the biocompatible polymer is not firmly coordinated with the surface of the noble metal.
  • it is longer than 60 minutes, it is not preferable from the viewpoint of working time.
  • a filter 105 is attached to a device such as the cell capture cartridge 100 to pass blood.
  • the blood may be treated with a negative pressure from below the filter, may be treated with pressure from above the filter, or may be treated with a centrifugal force like centrifugation. In either method, it is important to control the linear velocity at which blood passes through the pores of the filter.
  • the amount of blood required as a sample is 1 to 10 ml.
  • the blood collection tube When collecting blood, the blood collection tube preferably contains an anticoagulant.
  • an anticoagulant EDTA-2K, EDTA-2Na, sodium citrate, sodium fluoride, heparin, and the like.
  • the method of taking out only the buffy coat it may be diluted with a solvent containing a biocompatible polymer. Thereby, it can prevent that the cancer cell in blood adsorb
  • the solvent containing the biocompatible polymer examples include mammalian serum or plasma.
  • Plasma is a supernatant formed by precipitation of blood cell components when collected in a blood collection tube containing an anticoagulant and left or centrifuged. This plasma contains clotting factors.
  • the anticoagulant does not enter, and the blood cell component clots due to a coagulation factor.
  • the supernatant in that case is serum, which lacks clotting factors.
  • fetal bovine serum is likely to obtain good characteristics.
  • Serum contains protein. By adsorbing albumin or globulin contained in the protein on the filter surface, blood cell components are prevented from adsorbing on the filter surface. Although many proteins are present in serum, serum albumin accounts for about 50% to 65%.
  • the filter Pre-treat the filter with a diluted solution of serum or plasma.
  • the serum or plasma concentration is preferably in the range of 1% to 50%, more preferably in the range of 5% to 30%, and still more preferably in the range of 10% to 20%.
  • Serum or plasma should be diluted with an aqueous solvent, and preferably contains a buffer solution such as phosphate.
  • the serum or plasma solution contains a blood anticoagulant.
  • anticoagulants include EDTA, heparin, sodium citrate, sodium fluoride and the like, among which EDTA or heparin is desirable.
  • Magnetic beads For removing leukocytes, a conventionally known method of removing leukocytes using magnetic beads (magnetic beads) can be used. Examples of such beads include Dynabeads M-450-CD45 (pan-leucocyte).
  • the beads obtained by reacting the CD45 antibody with the magnetic beads are immersed in the cell suspension. At this time, it is preferable to insert magnetic beads about 4 to 10 times as much as leukocytes. If the amount of magnetic beads is small, the leukocyte removal efficiency decreases, and if the amount of magnetic beads is large, the cost increases.
  • the magnetic beads After reacting the magnetic beads and white blood cells for a predetermined time, the magnetic beads are removed.
  • the above process makes it possible to reduce the white blood cell count from the initial 50 million (in the case of 5 mL) level to a minimum of 500,000.
  • the cell suspension obtained by the above steps is subjected to blood filtration to reduce the level to which downstream is possible.
  • the linear velocity (blood volume / total pore area) through which the blood passes through the filter 105 is preferably in the range of 0.5 to 100 cm / min, and more preferably in the range of 5 to 20 cm / min. .
  • the filter 105 after blood filtration may be washed again with serum or plasma solvent.
  • the same serum or plasma solvent as that used for the immersion can be used.
  • the linear velocity of the cleaning liquid is also preferably in the range of 0.5 to 100 cm / min, and more preferably in the range of 5 to 20 cm / min.
  • the washing effect is improved by flowing the biocompatible polymer again during washing.
  • the amount of the cleaning solution may be adjusted as appropriate, but it is preferably 1 to 20 minutes at the linear velocity, more preferably 5 to 15 minutes.
  • rare cells such as CTC concentrated can be captured.
  • a biocompatible polymer to the filter chemically and firmly, it is possible to exclude components such as red blood cells, white blood cells, and plasma plates.
  • the filter is immersed in an aqueous solution containing mammalian serum or plasma before blood filtration, or the blood cells in the blood are removed with an aqueous solution containing mammalian serum or plasma after blood filtration by the filter. It is sufficient that at least one of the washing steps is included, but it is possible to efficiently capture rare cells in the blood, particularly by performing the treatment before blood filtration.
  • leukocytes may be present in 7.5 ml of blood. Then, about 2000 leukocytes (1000 to 10,000) remain.
  • a method such as immersing the filter in a beaker can be considered, but a simple method is backwashing. That is, a liquid is poured from the opposite side of the filter to collect cells. In this case, it is preferable to use a solvent containing a biocompatible polymer for the recovered liquid.
  • the solvent containing the biocompatible polymer examples include mammalian serum or plasma.
  • Plasma is a supernatant formed by precipitation of blood cell components when collected in a blood collection tube containing an anticoagulant and left or centrifuged. This plasma contains clotting factors.
  • the anticoagulant does not enter, and the blood cell component clots due to a coagulation factor.
  • the supernatant in that case is serum, which lacks clotting factors.
  • fetal bovine serum is likely to obtain good characteristics.
  • Serum contains protein. By adsorbing albumin and globulin contained in proteins on the filter surface, blood cell components are prevented from adsorbing on the filter surface. Although many proteins are present in serum, serum albumin accounts for about 50 to 65%.
  • Albumin has many amino groups because many amino acids are linked.
  • the amino group has a strong coordination bond to a noble metal (gold, platinum, palladium).
  • gold has almost no oxide film, so it forms a strong bond with albumin without any special pretreatment.
  • Serum or plasma concentration is preferably in the range of 1 to 50%, more preferably in the range of 5 to 30%, and still more preferably in the range of 10 to 20%.
  • Serum or plasma should be diluted with an aqueous solvent, and preferably contains a buffer solution such as phosphate.
  • the serum or plasma solution contains a blood anticoagulant.
  • anticoagulants include EDTA, heparin, sodium citrate, sodium fluoride, etc. Among them, EDTA and heparin are preferable.
  • a conventionally known method of removing leukocytes using magnetic beads can be used.
  • examples of such beads include Dynabeads M-450-CD45 (pan-leucocyte).
  • the beads obtained by reacting CD45 antibody with magnetic beads are immersed in the cell suspension. At this time, it is preferable to insert magnetic beads about 4 to 100 times as much as leukocytes. If the amount of magnetic beads is small, the leukocyte removal efficiency decreases, and if the amount of magnetic beads is large, the cost increases.
  • the magnetic beads After reacting the magnetic beads and white blood cells for a predetermined time, the magnetic beads are removed.
  • the above process makes it possible to reduce the white blood cell count from the initial 1000 to 10,000 (in the case of 7.5 ml) level to the 10 to 100 level.
  • the cell suspension thus obtained can be at a level that allows downstream.
  • a photosensitive resin composition (PHOTEC RD-1225: thickness 25 ⁇ m, manufactured by Hitachi Chemical Co., Ltd.) is a 250 mm square substrate (MCL-E679F: a substrate obtained by bonding peelable copper foil to the surface of MCL, manufactured by Hitachi Chemical Co., Ltd.) ). Lamination conditions were performed at a roll temperature of 90 ° C., a pressure of 0.3 MPa, and a conveyor speed of 2.0 m / min.
  • a glass mask designed so that the light transmitting portion has a rounded rectangular shape, a size of 7.8 (short hole diameter) ⁇ 100 (long hole diameter) ⁇ m, and an aperture ratio of 6.7% is used as a substrate photoresist. It was left to stand on the laminate surface.
  • a glass mask in which rounded rectangles facing in the same direction are arranged at a constant pitch in the major axis and minor axis directions was used.
  • ultraviolet rays having an exposure amount of 30 mJ / cm 2 were irradiated from above the substrate on which the glass mask was placed by an ultraviolet irradiation device.
  • the obtained nickel plating layer is peeled off together with the peelable copper foil of the substrate, and this peelable copper foil is chemically dissolved by a chemical solution in a stirring process at a temperature of 40 ° C. for about 120 minutes (MEC BRIGHT SF-5420B, MEC shares).
  • the self-supporting membrane (20 mm ⁇ 20 mm) to be a metal filter was removed by removing it by the company.
  • the photoresist remaining in the self-supporting film was removed by resist stripping (P3 Poleve, Henkel) by ultrasonic treatment at a temperature of 60 ° C. for about 40 minutes to produce a metal filter having fine through holes.
  • resist stripping P3 Poleve, Henkel
  • the metal filter was immersed in acidic degreasing solution Z-200 (manufactured by World Metal: trade name) to remove organic substances on the metal filter (40 ° C. for 3 minutes).
  • immersion gold plating was performed by immersing in HGS-100 (trade name, manufactured by Hitachi Chemical Co., Ltd.), which is a non-cyan substitutional electroless Au plating, for 20 minutes.
  • the thickness of the displacement gold plating was 0.05 ⁇ m.
  • HGS-5400 (trade name, manufactured by Hitachi Chemical Co., Ltd.), which is non-cyan reduced electroless Au plating, at 65 ° C. for 10 minutes, plated with gold, washed with water and dried.
  • the total thickness of the gold plating was 0.2 ⁇ m.
  • NCI-H358 cells which are a non-small cell carcinoma cell line, were statically cultured in an RPMI-1640 medium containing 10% fetal bovine serum (FBS) at 37 ° C. and 5% CO2. Cells were detached from the culture dish by trypsin treatment and recovered, washed with phosphate buffered saline (PBS), and then washed with 10 ⁇ M CellTracker Red CMTPX (Life Technologies Japan, Inc.) at 37 ° C. for 30 minutes. NCI-H358 cells were stained by allowing to stand. Thereafter, the cells were washed with PBS and allowed to stand at 37 ° C.
  • PBS phosphate buffered saline
  • CTC recovery device CT6000 (trade name, manufactured by Hitachi Chemical Co., Ltd.) in which the filter prepared above was set in a cartridge.
  • the CTC recovery device is provided with a flow channel for introducing a blood sample or a reagent, and the inlet of the flow channel is connected to a reservoir produced by processing a syringe. By sequentially putting blood samples and reagents into this reservoir, operations such as CTC capture, staining, and washing can be performed easily and continuously.
  • EDTA-10.0% FBS (fetal bovine serum) -PBS (Gibco PBS pH 7.4) 1 ml (hereinafter referred to as a washing solution) was introduced into the reservoir, filled on the filter, and left for 10 minutes. Subsequently, liquid feeding was started at a flow rate of 200 ⁇ L / min using a peristaltic pump. Thereafter, Sample 1 was introduced. After about 5 minutes, 9 mL of the washing solution was introduced into the reservoir to wash the cells.
  • FBS fetal bovine serum
  • PBS Gibco PBS pH 7.4
  • the pump flow rate was changed to 20 ⁇ L / min, and 600 ⁇ L of cell staining solution (Hoechst 33342: 30 ⁇ l, Wash buffer: 300 ml) was introduced into the reservoir, and the cancer cells or leukocytes on the filter were fluorescently stained. After staining the cells captured on the filter for 30 minutes, 1 mL of 2 mM EDTA-0.5% BSA-PBS was introduced into the reservoir to wash the cells.
  • cell staining solution Hoechst 33342: 30 ⁇ l, Wash buffer: 300 ml
  • the filter was observed using a fluorescence microscope (BX61, Olympus Corporation) equipped with a computer-controlled electric stage and a cooled digital camera (DP70, Olympus Corporation), and the number of cancer cells and leukocytes on the filter was determined. I counted.
  • Comparative Example 2 The experiment was performed in the same manner as in Comparative Example 1 except that the initial blood volume was 15 ml instead of 7.5 ml.
  • Comparative Example 3 The experiment was performed in the same manner as in Comparative Example 1 except that the initial blood volume was 30 ml instead of 7.5 ml.
  • Example 1 As a 7.5 ml blood sample, a sample in which 1000 healthy cancer cells collected in an EDTA-2Na-containing vacuum blood collection tube were mixed with 1000 pre-existing cancer cells per 7.5 mL of blood was used. The number of white blood cells in the sample was 4.7 million cells / ml, that is 35.25 million cells / 7.5 ml. It was.
  • the CTC recovery device has a flow channel for introducing a blood sample and a reagent, and the inlet of the flow channel is connected to a reservoir produced by processing a syringe. By sequentially introducing blood samples or reagents into this reservoir, operations such as CTC capture, staining, and washing can be performed continuously and easily.
  • EDTA-10.0% FBS (fetal bovine serum) -PBS (Gibco PBS pH 7.4) 1 ml (hereinafter referred to as a washing solution) was introduced into the reservoir, filled on the filter, and left for 10 minutes. Subsequently, liquid feeding was started at a flow rate of 200 ⁇ L / min using a peristaltic pump. Thereafter, a blood sample was added. After about 5 minutes, 9 mL of the washing solution was introduced into the reservoir to wash the cells.
  • FBS fetal bovine serum
  • PBS Gibco PBS pH 7.4
  • washing solution was poured from the reverse side of the filter (back washing), and the cells on the filter were collected to obtain a suspension containing 10 ml of cells.
  • CTC recovery work was performed using a CTC recovery device: CT6000 (trade name, manufactured by Hitachi Chemical Co., Ltd.) in which the filter prepared above was set in a cartridge.
  • the CTC recovery device has a flow channel for introducing a blood sample and a reagent, and the inlet of the flow channel is connected to a reservoir produced by processing a syringe. By sequentially putting blood samples and reagents into this reservoir, operations such as CTC capture, staining, and washing can be performed easily and continuously.
  • EDTA-10.0% FBS (fetal bovine serum) -PBS (Gibco PBS pH 7.4) 1 ml (hereinafter referred to as a washing solution) was introduced into the reservoir, filled on the filter, and left for 10 minutes. Subsequently, liquid feeding was started at a flow rate of 200 ⁇ L / min using a peristaltic pump. Thereafter, Suspension 1 was added. After about 5 minutes, 9 mL of the washing solution was introduced into the reservoir to wash the cells.
  • FBS fetal bovine serum
  • PBS Gibco PBS pH 7.4
  • the pump flow rate was changed to 20 ⁇ L / min, and 600 ⁇ L of cell staining solution (Hoechst 33342: 30 ⁇ l, Wash buffer: 300 ml) was introduced into the reservoir, and the cancer cells or leukocytes on the filter were fluorescently stained. After staining the cells captured on the filter for 30 minutes, 1 mL of 2 mM EDTA-0.5% BSA-PBS was introduced into the reservoir to wash the cells.
  • cell staining solution Hoechst 33342: 30 ⁇ l, Wash buffer: 300 ml
  • the filter was observed using a fluorescence microscope (BX61, Olympus Corporation) equipped with a computer-controlled electric stage and a cooled digital camera (DP70, Olympus Corporation), and the number of cancer cells and leukocytes on the filter was determined. I counted.
  • Example 2 The experiment according to Example 2 was performed in the same manner as in Example 1 except that the initial blood volume was 15 ml instead of 7.5 ml.
  • Example 3 The experiment according to Example 3 was performed in the same manner as in Example 1 except that the initial blood volume was 30 ml instead of 7.5 ml.
  • Table 2 shows the results of each example and comparative example.
  • Comparative Examples 1 to 3 are cases in which experiments were performed without using magnetic beads, but there are many leukocyte residues and they are not suitable for downstream.
  • Examples 1 to 3 are cases in which the white blood cells in the cells of the comparative example were reduced with magnetic beads and then filtered. In either case, leukocytes are reduced and it is possible to cope with downstream. However, if the number of white blood cells before performing the magnetic beads is large, the residual white blood cells tend to increase accordingly. Furthermore, the recovery rate of cancer cells decreases. It is preferable that the number of leukocytes after filtration is 10,000 or less.
  • the filter shown in the present invention with leukocyte removal by antigen-antibody reaction, the characteristics are improved and the downstream can be achieved.

Abstract

　ダウンストリームに適した血中希少細胞捕獲を含むサンプルを準備することを可能とする。　血中希少細胞捕獲方法は、血中希少細胞を血液中から取り出す血中希少細胞捕獲方法であって、フィルターによる血液フィルトレーションの後に前記血液から白血球を取り除く工程を有することを特徴とする。

Description

血中希少細胞捕獲方法
　本発明は、血中希少細胞、特に血中循環癌細胞（Circulating Tumor Cell、以下、CTCという）を効率良く捕獲できるフィルターを用いた血中希少細胞捕獲方法に関する。
　癌細胞濃縮の研究・臨床的意義は極めて大きく、血液中の癌細胞を濃縮することもできれば、癌の診断に応用することができる。例えば、癌の予後および治療の最も重要な要因は、初診時および処置時における癌細胞の転移の有無である。癌細胞の初期の拡散が抹消血中に及んだ場合、ＣＴＣを検出することは、癌の病状進行を判断する有用な手段である。しかしながら、血液中には、赤血球又は白血球などの血液成分が圧倒的に多く存在するため、極めて少量のＣＴＣの検出は困難である。
　近年、パリレンを用いた樹脂フィルターを使用することで、少量のＣＴＣを効率的に検出する方法が提案されている（特許文献１）。
　或いは、樹脂の代わりに金属を用いたフィルターを使用することで、フィルターの強度を向上させ、白血球と癌細胞変形能の違いにより分離する方法も提案されている（特許文献２）。
　或いは、近年白血球を選択的に除去することで、残った細胞を血中希少細胞として抽出する方法が提案されている（非特許文献１～６）。
国際公開第２０１０／１３５６０３号 特開２０１３－４２６８９号
Fehm T, Solomayer EF, Meng S, Tucker T, Lane N, Wang J, et al.「Methods for isolating circulating epithelial cells and criteria for their classification as carcinoma cells」Cytotherapy 2005;7:171－85. Konigsberg R, Obermayr E, Bises G, Pfeiler G, Gneist M, Wrba F, et al. 「Detection of EpCAM positive and negative circulating tumor cells in metastatic breast cancer patients」Acta Oncol 2011;50:700－10. Sieuwerts AM, Kraan J, Bolt J, van der Spoel P, Elstrodt F, Schutte M, et al. 「Anti-epithelial cell adhesion molecule antibodies and the detection of circulating normal-like breast tumor cells」J Natl Cancer Inst 2009;101:61－6. Mostert B, Kraan J, Bolt-de Vries J, van der Spoel P, Sieuwerts AM, Schutte M, et al「Detection of circulating tumor cells in breast cancer may improve through enrichment with anti-CD146」Breast Cancer Res Treat 2011;127:33－41. Schindlbeck C, Stellwagen J, Jeschke U, Karsten U, Rack B, Janni W, et al「Immunomagnetic enrichment of disseminated tumor cells in bone marrow and blood of breast cancer patients by the Thomsen-Friedenreich-Antigen」Clin Exp Metastasis 2008;25:233－40. Deng G, Herrler M, Burgess D, Manna E, Krag D, Burke JF「Enrichment with anti-cytokeratin alone or combined with anti-EpCAM antibodies significantly increases the sensitivity for circulating tumor cell detection in metastatic breast cancer patients」Breast Cancer Res 2008;10:R69.
　フィルター法は血液中の白血球、赤血球及び血しょう板を効率よく除去できるが、白血球はがん細胞と近い大きさであるので、すべてを除去することはできない。
　フィルター法は白血球の大きさとがん細胞の大きさの違い、変形能の違いで分離する方法である。この方法において、フィルターの材質、孔形状、孔径、開口率、流速を工夫することで、白血球とがん細胞をかなり分離可能である。
　しかしながら、血液量を増やすと、白血球残渣は多くなる傾向がある。通常、３５００～９５００個／μＬの白血球を健常人は保有している。
　アメリカ食品医薬品局（ＦＤＡ）で承認されている唯一の血中がん細胞検査システムはＣｅｌｌｓｅａｒｃｈであり、ＥｐＣＡＭを持つがん細胞だけを選択的に捕獲できる。但し、この方法はＥｐＣＡＭを持つがん細胞だけしか捕獲できないということで、臨床意義が問われている。このとき使用される血液量は７．５ｍＬである。
　発明者らが鋭意努力した結果、７．５ｍＬの血液を流した場合、白血球は２，０００個程度残留する。
　現時点では濃縮率は１：２５０００程度が限界と考えている。
　近年、Ｃｅｌｌｓｅａｒｃｈは臨床意義が問われている。すなわち、がん細胞の数を数えるだけでは、がん患者の予後予測しかできないといわれている。
　近年要求されているのは採取した細胞を遺伝子解析する等のダウンストリームである。その場合、がん細胞１個に対して許される白血球の数は１０個～１００個であり、望小特性である。
　７．５ｍＬの血液を流した場合に許される白血球は５００個未満が望ましく、１００個未満が更に望ましく、５０個未満が更に望ましく、１０個未満が更に望ましい。
　つまり、即ち２，０００個ではダウンストリームを考えた場合、不十分である。
　一方、白血球を選択的に除去することで、残った細胞を血中希少細胞として抽出する方法も提案されているが、この方法でも限界が存在する。
　この方法でも発明者らが鋭意努力した結果、７．５ｍｌの血液を流した場合、白血球は２，０００個程度残留する。また、白血球の除去率を上げようとすると、磁気ビーズの大量投入が必要となり、コストがかかる。
　ＣＴＣの除去方法は上記の方法以外にも多数提案されているが、単独の方法では限界がある。
　本発明は上記を考え見てなされたものであり、磁気ビーズにより白血球を減らした後、フィルターにより更に白血球を減らすことで、ダウンストリームに適した血中希少細胞捕獲を含むサンプルを準備することが可能な血中希少細胞捕獲方法を提供することを目的とする。
　本発明の一形態に係る血中希少細胞捕獲方法は、血中希少細胞を血液中から取り出す血中希少細胞捕獲方法であって、フィルターによる血液フィルトレーションの後に白血球を取り除く工程を有することを特徴とする。
　ここで、前記白血球を取り除く工程が白血球を磁性ビーズにより取り除く工程である態様とすることができる。
　また、前記血液フィルトレーションの後に得られる前記血中希少細胞を含む液体における白血球数が１万個以下である態様とすることができる。
　前記白血球を取り除く工程において、又はその後に、細胞懸濁液を哺乳動物の血清、血漿、又はこれら由来のたんぱく質を含む水溶液で希釈する工程を有する態様とすることができる。
　前記哺乳動物の血清或いは血漿が、ウシ、ウマ又はヒト由来である態様とすることができる。
　前記哺乳動物の血清或いは血漿が、ウシ胎児由来である態様とすることができる。
　前記哺乳動物の血清或いは血漿の水溶液濃度が１％～５０％の範囲である態様とすることができる。
　前記血清或いは血漿の水溶液がリン酸緩衝液を主成分とする態様とすることができる。
　前記血清或いは血漿の水溶液が抗凝固剤を含む態様とすることができる。
　前記抗凝固剤がＥＤＴＡ、ヘパリン、クエン酸ナトリウム、及びフッ化ナトリウムのいずれかである態様とすることができる。
　前記血液フィルトレーションの前に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液にフィルターを浸漬する工程を含む態様とすることができる。
　前記血液フィルトレーションの後であって前記白血球を取り除く工程の前に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液で血球細胞を洗浄する工程を含む態様とすることができる。
　前記哺乳動物の血清或いは血漿が、ウシ、ウマ、又はヒト由来である態様とすることができる。
　前記哺乳動物の血清がウシ胎児血清或いは血漿である態様とすることができる。
　前記フィルター表面が金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金である態様とすることができる。
　前記フィルターがニッケルを主成分とし、その表面に金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金がめっきされている態様とすることができる。
　前記フィルターが銅を主成分とし、その表面に金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金がめっきされている態様とすることができる。
　前記フィルターがパラジウムを主成分とし、その表面に金又は白金、或いはそれらの合金がめっきされている態様とすることができる。
　前記フィルターの最外層が金めっきである態様とすることができる。
　前記フィルターの最外層が０．０５μｍ～１μｍの貴金属めっきある態様とすることができる。
　前記血中希少細胞ががん細胞である態様とすることができる。
　前記フィルターの貫通孔の開口形状が円、楕円、角丸長方形、長方形、正方形のいずれかである態様とすることができる。なお、角丸長方形とは２つの等しい長さの長辺と２つの半円形からなる形状である。開口形状を長方形又は角丸長方形とした場合、貫通孔に目詰まりしにくく、捕獲対象とする成分の濃縮率を更に向上させることができる。
　前記フィルターの貫通孔を形成する形状が長方形、又は角丸長方形のいずれか一つ以上の形状を含み、その短辺の長さが５μｍ～１５μｍである態様とすることができる。
　前記フィルターの膜厚が３μｍ～５０μｍである態様とすることができる。
　本発明によれば、ダウンストリームに適した血中希少細胞捕獲を含むサンプルを準備することが可能な血中希少細胞捕獲方法が提供される。
細胞捕捉カートリッジの概略構成を説明する図である。 フィルターの製造方法を説明する図である。 銅板（銅めっきを行う場合はＮｉ板）を使用してフィルターを製造する方法を示す概略断面図である。 フィルターにおける長孔径、短孔径、及び開口率の定義を説明する図である。
　以下、添付図面を参照して、本発明を実施するための形態を詳細に説明する。なお、図面の説明においては同一要素には同一符号を付し、重複する説明を省略する。
　本実施形態に係る血中希少細胞捕獲方法では血中希少細胞を血液中からフィルターによるフィルトレーションを行う。血液フィルトレーションを行うための装置構成は特に限定されないが、一例として細胞捕捉カートリッジを用いる場合について説明する。細胞捕捉カートリッジ１００は、図１に示すように、細胞分散液が流入する流入管１２５が接続された流入口１３０と、細胞分散液が流出する流出管１３５が接続された流出口１４０とを有する筐体１２０と、筐体１２０内に配置され、細胞分散液に含まれる血中希少細胞を捕捉する捕捉領域を有するフィルター１０５とを備える。
　筐体１２０は、フィルター１０５を保持するための部材であり、上部部材１１０及び下部部材１１５から構成される。筐体１２０の形状は直方体又は円筒等であってよく、特に制約はない。
　流入管１２５の上流には、例えば、血液又は洗浄液等の処理液等が接続される。また、流出管１３５の下流に、ポンプＰが接続することで、ポンプＰの駆動により、流入管１２５から筐体１２０の内部に血液等が供給され。その後、流出管１３５から外部に排出される。
　フィルター１０５には貫通孔１０６が形成されている。血液を細胞捕捉カートリッジ１００内に導入すると、血液の赤血球等は貫通孔１０６を通過するが、血中希少細胞は貫通孔１０６を通過できず、フィルター１０５表面に滞留する。これにより、血中希少細胞を回収することができる。
　なお、細胞捕捉カートリッジ１００の形状は上記に限定されない。フィルターによる血液フィルトレーションによって、血中希少細胞を捕捉することができるのであれば、その装置構成は特に限定されない。
　次に、図２及び図３を参照しながら、フィルター作製方法を例示すると共に、フィルターの説明を行う。
　図２は、ＭＣＬにピーラブル銅箔（銅めっきを行う場合はＮｉ箔）を貼り合わせた基板を使用し、金属製薄膜フィルターを製造する方法を示す概略断面図である。
　図２（Ａ）は、ＭＣＬ１上にピーラブル銅箔２（銅めっきを行う場合はＮｉ箔）が積層された基板を示している。まずこの基板を準備する。
　フィルターを作製するための基板として使用する材料は銅（めっきが銅の場合はニッケル）が好ましい。銅は薬液による化学的溶解で容易に除去可能であり、フォトレジストとの密着力においても他の材料に比べると優れている。
　次に、図２（Ｂ）に示すように、基板のピーラブル銅箔２上にフォトレジスト３を形成する。このフォトレジストの厚みは後の導体の厚みの１．０倍～２．０倍が好ましい。この厚みが薄いと、後にレジスト剥離が困難になり、厚いと回路形成性が困難になる。具体的には、フォトレジスト３は、１５～５０μｍの厚みが好ましい。フォトレジスト３を形成する感光性樹脂組成物としてはネガ型感光性樹脂組成物が好ましい。ネガ型感光性樹脂組成物は少なくともバインダー樹脂、不飽和結合を有する光重合性化合物、光重合開始剤を含むものが好ましい。
　次に、図２（Ｃ）に示すように、フォトレジスト３上にフォトマスク４を重ねた後にフォトレジスト露光を行う。これにより、フォトマスク４が重ねられていない領域に露光部３ａが形成される。
　次に、図２（Ｄ）に示すように、アルカリ溶液等で未露光部３ｂのフォトレジスト現像除去を行う。これにより、フィルターの貫通孔に対応する位置に露光部３ａが残る。
　次に、図２（Ｅ）に示すように、フォトレジストで覆われていない部分への電解めっきを行うことで、めっき層５を形成する。このめっきの部分がフィルターの材質となる。
　次に、図２（Ｆ）に示すように、ＭＣＬ１から、電解めっきによりめっき層５が形成された施したピーラブル銅箔２を剥離する。
　次に、図２（Ｇ）に示すように、薬液による化学的溶解により、ピーラブル銅箔２を除去し、露光部３ａ及びめっき層５により形成される自立膜を取り出す。
　次に、図２（Ｈ）に示すように、自立膜内に残ったフォトレジストによる露光部３ａを除去し、めっき層５に対して貫通孔６を形成する。
　次に、図２（Ｉ）に示すように、無電解金めっきを行い、フィルター表面に金めっき層７を形成する。以上により、細胞捕捉カートリッジ１００に用いられるフィルター１０５を製造することができる。
　図３は、銅板（銅めっきを行う場合はＮｉ板）を使用して金属製薄膜フィルターを製造する方法を示す概略断面図である。
　図３に示す方法では、図２に示す方法におけるＭＣＬ１とピーラブル銅箔２に代えて銅板（又はＮｉ板）２’を使用している点以外は、図２に示す製造方法と同じである。
　すなわち、図３（Ａ）は基板として使用する銅板２’を準備する工程を示している。
　また、図３（Ｂ）は銅板２’へのフォトレジスト３のラミネートする工程を示している。また、図３（Ｃ）はフォトマスク４を重ねてのフォトレジスト露光を示している。また、図３（Ｄ）は未露光部３ｂのフォトレジストの現像除去を示している。また、図３（Ｅ）はフォトレジストの露光部３ａで覆われていない部分への電解めっきによりめっき層を形成する工程を示している。また、図３（Ｆ）は薬液による化学的溶解（ケミカルエッチング）によって銅板２’　を除去し、露光部３ａ及びめっき層５により形成される自立膜を取り出す工程を示している。また、図３（Ｇ）は自立膜内に残ったフォトレジストによる露光部３ａを除去し、めっき層５に対して貫通孔６を形成する工程を示している。また、図３（Ｈ）は無電解金めっきを行い、フィルター表面に金めっき層７を形成する工程を示している。
　このように、図２に示す方法及び図３に示す方法の何れを用いても細胞捕捉カートリッジ１００に用いられるフィルター１０５を製造することができる。
　フィルター１０５の材質は金属であることが好ましい。金属は加工性に優れている為、フィルターの加工精度を高めることができる。これにより、捕獲対象とする成分の捕獲率を更に向上させることができる。また、金属はプラスチックなどの他の材料と比べて剛直である為、外部から力が加わってもそのサイズ及び形状が維持される。この為、貫通孔よりも若干大きな成分を変形させて通過させる場合、より高精度の分離・濃縮が可能となる。
　また、金属の主成分としては、ニッケル、銀、パラジウム、銅、イリジウムのいずれか、もしくはこれらの合金が好ましい。以上の金属は電気めっき可能である。なお、「主成分」とは、フィルター１０５の総重量に対する当該成分の重量割合が５０％以上であることを示す。
　パラジウム及びイリジウムは酸化還元電位が高く、難溶性で特性良好だが、高価である欠点がある。ニッケルは水素よりも酸化還元電位が低いため、溶解しやすいが、安価である。銀及びパラジウムは貴金属であり、イリジウムに比べると比較的安価である。
　フィルターを作製するための基板（銅板２’：図３参照）として使用する材料は銅（フィルター１０５の材質が銅である場合はニッケル）が好ましい。銅は薬液による化学的溶解で容易に除去可能であり、フォトレジストとの密着力においても他の材料に比べると優れている。なお、ＭＣＬ１に対して積層する金属箔２（図２参照）についても、銅（フィルター１０５の材質が銅である場合はニッケル）が好ましい。
　また、図２（Ｅ）及び図３（Ｅ）に示すめっき層５の形成は電解めっきにより行われる。例えば、電解ニッケルめっきとしてはワット浴（硫酸ニッケル、塩化ニッケル、ホウ酸が主成分）、スルファミン酸浴（スルファミン酸ニッケル、ホウ酸が主成分）、ストライク浴（塩化ニッケル、塩化水素が主成分）などが挙げられる。
　電解銀めっきとしては、シアン化銀カリウム又は酒石酸カリウムを主成分とする浴が挙げられる。
　電解パラジウムめっきとしては、水溶性パラジウム塩とナフタレンスルホン酸化合物よりなる浴が挙げられる。
　電解イリジウムめっきとしては、ハロゲンを含む可溶性イリジウム塩およびアルコール類を含有する浴が挙げられる。
　電解銅めっきとしては、硫酸銅と硫酸、塩化物イオンを主成分とする浴が挙げられる。
　これらのめっき浴を用いて、電解めっきを行う。電解めっきの際の電流密度は、０．３～４Ａ／ｄｍ２の範囲がよく、０．５～３Ａ／ｄｍ２の範囲であることがより好ましい。電流密度を４Ａ／ｄｍ２以下とすることで、ざらつきの発生を抑制でき、電流密度を０．３Ａ／ｄｍ２以上とすることで、金属の結晶粒が充分に成長し、バリア層としての効果が高まるため、本実施形態の効果が良好に得られるようになる。
　めっきを行う際のレジスト、すなわち、露光部３ａの箇所が貫通孔の箇所となる。貫通孔の開口形状として円、楕円、正方形、長方形、角丸長方形、多角形等が例示できる。効率良く対象とする成分を捕獲できる観点からは円、長方形又は角丸長方形が好ましい。また、フィルターの目詰まり防止の観点からは角丸長方形が特に好ましい。
　貫通孔６の孔径は捕捉対象とする成分のサイズに応じて設定される。本明細書において開口形状が楕円、長方形、多角形等の円以外の形状における孔径とは、それぞれの貫通孔を通過できる球の直径の最大値とする。例えば開口形状が長方形の場合、図４に示すように、短辺側の短孔径と、長辺側の長孔径とを定義することができるが、貫通孔６の孔径は短孔径となる。また、開口形状が多角形の場合、その多角形の内接円の直径となる。開口形状が長方形又は角丸長方形の場合、捕獲対象とする成分が貫通孔６に捕獲された状態であっても開口部において開口形状の長辺方向に隙間ができる。この隙間を通して液体が通過可能であるため、フィルターの目詰まりを防止することができる。フィルターの短孔径の長さは５μｍ～１５μｍが好ましく、７μｍ～９μｍがさらに好ましい。
　フィルター１０５の貫通孔の平均開口率は３～５０％が好ましく、３～２０％がより好ましく、３～１０％が特に好ましい。ここで、開口率とは、フィルターとして機能する領域の面積に対する貫通孔が占める面積の割合をいう（図４参照）。即ち、フィルターとして機能する領域の面積とは、フィルターに含まれる複数の貫通孔のうち、貫通孔の最外部を結んで得られる領域（図４において破線で囲まれた領域Ａ１）である。開口率が高すぎると白血球にかかる圧力が低下し、白血球残が増加する。開口率が低いと流せる血液量が低下する。
　フィルター１０５の厚さは３μｍ～５０μｍであることが好ましく、５μｍ～３０μｍであることがより好ましく、８μｍ～２０μｍであることが特に好ましい。フィルター１０５の膜厚が３μｍ未満の場合はフィルターの強度が低下し、取り扱い性が困難になる場合がある。逆に、５０μｍを超えると加工時間が長くなることによる生産性低下、必要以上の材料消費によるコスト的な不利又は微細加工そのものが困難になることが懸念される上、白血球が抜けにくくなる。
　以上回路形成後、樹脂層を剥離し銅箔をエッチングする（図２）か、又は銅板を除去する（図３）ことで、図２（Ｈ）又は図３（Ｇ）に示すように、めっき層５によるフィルターが完成する。
　次に、フィルターに残っているレジスト（露光部３ａ）を強アルカリにより除去する。強アルカリとしては、０．１～１０ｗｔ％のＮａＯＨ又はＫＯＨ水溶液が好ましい。剥離を促進するためにモノエタノールアミン（１～２０ｖｏｌ％）等を添加しても良い。剥離が困難な場合は過マンガン酸ナトリウム又は過マンガン酸カリウム等にアルカリ（０．１～１０ｗｔ％のＮａＯＨ又はＫＯＨ）を加えた液でレジストを除去することもできる。
　レジストを除去したフィルターに対しては貴金属めっきを行うと良い。
　貴金属めっきとしては、金、パラジウム、白金、ルテニウム、インジウムなどが望ましい。
　貴金属めっきの中でも金は前出の様に全ての金属の中で最も酸化還元電位が高く、細胞毒性がないとされている。長期保存での変色等も殆どない。
　金めっきは無電解で行うことも出来るし、電解で行うことも出来る。電解で行う場合は厚みばらつきが大きくなり、フィルターの孔径精度に影響出やすいため、無電解で行うことが望ましい。但し、電解金めっきは被覆率を向上できる。
金めっきは置換めっきで行うだけでも効果があるが、置換めっきと還元めっきを組み合わせた方が、効果が大きい。
　金めっき前の金属フィルターは表面が酸化していることがある。そこで、酸化皮膜の除去を行うのであるが、ここでは金属イオンと錯体を形成する化合物の入った水溶液で洗浄すると良い。
　具体的にはシアン類、ＥＤＴＡ類、又はクエン酸類の入った水溶液がよい。
　中でもクエン酸類は金めっきの前処理として最適である。具体的にはクエン酸の無水物、クエン酸の水和物、クエン酸塩あるいはクエン酸塩の水和物であればよく、具体的には、クエン酸無水物、クエン酸一水和物、クエン酸ナトリウム、クエン酸カリウム等を使用することができる。その濃度は０．０１ｍｏｌ／Ｌ～３ｍｏｌ／Ｌであることが好ましく、０．０３ｍｏｌ／Ｌ～２ｍｏｌ／Ｌであることがより好ましく、０．０５ｍｏｌ／Ｌ～１ｍｏｌ／Ｌの範囲であることが特に好ましい。０．０１ｍｏｌ／Ｌ以上とすることで、無電解金めっき層と金属フィルターの密着性が向上する。また、３ｍｏｌ／Ｌを超えた場合、効果が向上しない上、経済的に好ましくない。
　クエン酸を含む溶液への浸漬は、７０℃～９５℃で、１～２０分間行うと良い。
　クエン酸を含む溶液は、発明の効果が得られる範囲でめっき液などに含まれる還元剤、ｐＨ調整剤等の緩衝剤を加えることも可能であるが、還元剤、ｐＨ調整剤などは少量が望ましく、クエン酸のみの水溶液が最も好ましい。クエン酸を含む溶液のｐＨは、好ましくは５～１０であり、より好ましくは６～９である。
　ｐＨ調整剤としては、酸又はアルカリであれば特に限定されず、酸としては、塩酸、硫酸、硝酸などが使用でき、アルカリとしては、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウム、等のアルカリ金属又はアルカリ土類金属の水酸化物溶液が挙げられる。前述したように、クエン酸の効果を阻害しない範囲で使用することができる。また、クエン酸を含む溶液に、硝酸を１００ｍＬ／Ｌといった高濃度で含有させると、クエン酸のみを含む溶液で処理した場合と比較して、接着性を改善する効果が低下する。
　還元剤としては、還元性のあるものであれば特に限定されず、次亜リン酸、ホルムアルデヒド、ジメチルアミンボラン、水素化ホウ素ナトリウムなどが挙げられる。
　次に、置換金めっきを行う。置換金めっきにはシアン浴と非シアン浴があるが、環境負荷又は残存時の細胞毒性を考えると非シアン浴が望ましい。非シアン浴に含まれる金塩としては、塩化金酸塩、亜硫酸金塩、チオ硫酸金塩、チオリンゴ酸金塩が例示可能である。金塩は一種類のみ用いてもよく、二種以上を組み合わせて用いても良い。
　さらに、シアン系の浴は、金属を溶解する効果が強すぎるため、金属によっては溶解してピンホールが発生しやすい。上記のように前処理を十分に行う場合は非シアン系のめっき浴が好ましい。
　金の供給源としては亜硫酸金が特に好ましい。亜硫酸金としては、亜硫酸金ナトリウム、亜硫酸金カリウム、亜硫酸金アンモニウム、などがよい。
　金濃度は０．１ｇ／Ｌ～５ｇ／Ｌの範囲が好ましい。０．１ｇ／Ｌ未満では金が析出しにくく、５ｇ／Ｌを超えると液が分解しやすくなる。
　置換金めっき浴には金の錯化剤としてアンモニウム塩又はエチレンジアミンテトラ酢酸塩が入っているとよい。アンモニウム塩としては、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウムが挙げられ、エチレンジアミンテトラ酢酸塩としては、エチレンジアミンテトラ酢酸、エチレンジアミンテトラ酢酸ナトリウム、エチレンジアミンテトラ酢酸カリウム、エチレンジアミンテトラ酢酸アンモニウムを使用する。アンモニウム塩の濃度は、７×１０－３ｍｏｌ／Ｌ～０．４ｍｏｌ／Ｌの範囲で使用することが好ましく、アンモニウム塩の濃度がこの範囲外だと液が不安定になる傾向がある。エチレンジアミンテトラ酢酸塩の濃度は、２×１０－３ｍｏｌ／Ｌ～０．２ｍｏｌ／Ｌの範囲で使用することが好ましく、アンモニウム塩の濃度がこの範囲外だと液が不安定になる傾向がある。
　液を安定に保つために０．１ｇ／Ｌ～５０ｇ／Ｌの亜硫酸塩が入っているとよい。亜硫酸塩としては亜硫酸ナトリウム又は亜硫酸カリウム、亜硫酸アンモニウムなどが挙げられる。
　ｐＨ調整剤としてｐＨを下げる場合には、塩酸或いは硫酸を使用するのが好ましい。また、ｐＨを上げる場合には、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、アンモニア水を使用することが好ましい。ｐＨは６～７に調整するとよい。この範囲外では液の安定性又はめっきの外観に悪影響を与える。
　置換めっきは液温３０度～８０度で使用することが好ましく、この範囲外では液の安定性又はめっきの外観に悪影響を与える。
　以上のようにして置換めっきを行うわけであるが、置換めっきでは完全に金属を覆うのが難しい。そこで、次に還元剤の入った還元型の金めっきを行う。置換めっきの厚みは０．０２μｍ～０．１μｍの範囲が好ましい。
　還元型の金めっきの金塩としては、亜硫酸金塩および及びチオ硫酸塩が好ましく、その含有量は金として１ｇ／Ｌ～１０ｇ／Ｌの範囲であることが好ましい。金の含有量が１ｇ／Ｌ未満であると、金の析出反応が低下し、１０ｇ／Ｌを超えると、めっき液の安定性が低下すると共に、めっき液の持ち出しにより金消費量が多くなる為好ましくない。含有量は２ｇ／Ｌ～５ｇ／Ｌにすることがより好ましい。
　還元剤としては次亜リン酸、ホルムアルデヒド、ジメチルアミンボラン、水素化ホウ素ナトリウムなどが挙げられるが、フェニル化合物系還元剤がより好ましい。例えば、フェノール、ｏ－クレゾール、ｐ－クレゾール、ｏ－エチルフェノール、ｐ－エチルフェノール、ｔ－ブチルフェノール、ｏ－アミノフェノール、ｐ－アミノフェノール、ヒドロキノン、カテコール、ピロガロール、メチルヒドロキノン、アニリン、ｏ－フェニレンジアミン、ｐ－フェニレンジアミン、ｏ－トルイジン、ｏ－エチルアニリン、ｐ－エチルアニリン等が挙げられ、これらの１種又は２種以上を用いることが出来る。
　還元剤の含有量は、０．５ｇ／Ｌ～５０ｇ／Ｌであることが好ましい。還元剤の含有量が０．５ｇ／Ｌ未満であると、実用的な析出速度を得ることが困難となる傾向があり、５０ｇ／Ｌを超えると、めっき液の安定性が低下する傾向がある。還元剤の含有量は２ｇ／Ｌ～１０ｇ／Ｌとすることがより好ましく、２ｇ／Ｌ～５ｇ／Ｌであることが特に望ましい。
　無電解金めっき液は重金属塩を含んでいても良い。析出速度を促進する観点から、重金属塩はタリウム塩、鉛塩、砒素塩、アンチモン塩、テルル塩及びビスマス塩からなる群より選ばれる少なくとも一つであることが好ましい。
　タリウム塩としては、硫酸タリウム塩、塩化タリウム塩、酸化タリウム塩、硝酸タリウム塩等の無機化合物塩、マロン酸二タリウム塩等の有機錯体塩が挙げられ、鉛塩としては、硫酸鉛塩、硝酸鉛塩等の無機化合物塩、酢酸塩等の有機酢酸塩が挙げられる。
　また、砒素塩としては、亜砒素塩、砒酸塩三酸化砒素等の無機化合物塩又は有機錯体塩が挙げられ、アンチモン塩としては、酒石酸アンチモニル塩等の有機錯体塩、塩化アンチモン塩類、オキシ硫酸アンチモン塩、三酸化アンチモン等の無機化合物塩類が挙げられる。
　テルル塩としては、亜テルル酸塩、テルル酸塩等の無機化合物塩又は有機錯体塩が挙げられ、ビスマス塩としては、硫酸ビスマス（ＩＩＩ）、塩化ビスマス（ＩＩＩ）、硝酸ビスマス（ＩＩＩ）、等の無機化合物塩、シュウ酸ビスマス（ＩＩＩ）等の有機錯体塩が挙げられる。
　上述の重金属塩は、１種類又はそれ以上用いることが出来るが、その添加量の合計はめっき液全容量を基準として１ｐｐｍ～１００ｐｐｍが好ましく、１ｐｐｍ～１０ｐｐｍがより好ましい。１ｐｐｍ未満では、析出速度向上効果が十分でない場合があり、１００ｐｐｍを越す場合はめっき液安定性が悪くなる傾向にある。
　無電解金めっき液は硫黄系化合物を含んでいても良い。フェニル化合物系還元剤及び重金属塩を含む無電解金めっき液中に、硫黄化合物を更に含有させることにより、液温６０～８０℃程度の低温であっても十分な析出速度が得られ、被膜外観も良好である上、めっき液の安定性が特に優れるようになる。
　硫黄系化合物としては、硫化物塩、チオシアン酸塩、チオ尿素化合物、メルカプタン化合物、スルフィド化合物、ジスルフィド化合物、チオケトン化合物、チアゾール化合物、チオフェン化合物等が挙げられる。
　硫化物塩としては、例えば、硫化カリウム、硫化ナトリウム、多硫化ナトリウム、多硫化カリウム等が挙げられ、チオシアン酸塩としては、チオシアン酸ナトリウム、チオシアン酸カリウム、ジチオシアン酸カリウム等が挙げられ、また、チオ尿素化合物としては、チオ尿素、メチルチオ尿素、ジメチルチオ尿素等が挙げられる。
　メルカプタン化合物としては、１，１－ジメチルエタンチオール、１－メチル－オクタンチオール、ドデカンチオール、１，２－エタンジチオール、チオフェノール、ｏ－チオクレゾール、ｐ－チオクレゾール、ｏ－ジメルカプトベンゼン、ｍ－ジメルカプトベンゼン、ｐ－ジメルカプトベンゼン、チオグリコール、チオジグリコール、チオグリコール酸、ジチオグリコール酸、チオリンゴ酸、メルカプトプロピオン酸、２－メルカプトベンゾオゾイミダゾール、２－メルカプト－１－メチルイミダゾール、２－メルカプト－５－メチルベンゾイミダゾール、等が例示できる。
　スルフィド化合物としては、ジエチルスルフィド、ジイソプロピルスルフィド、エチルイソプロピルスルフィド、ジフェニルスルフィド、メチルフェニルスルフィド、ローダニン、チオジグリコール酸、チオジプロピオン酸等が例示でき、ジスルフィド化合物としては、ジメチルジスルフィド、ジエチルジスルフィド、ジプロピルジスルフィド、等が例示できる。
　更に、チオケトン化合物としては、チオセミカルバジド等が例示でき、チアゾール化合物としてはチアゾール、ベンゾチアゾール、２－メルカプトベンゾチアゾール、６－エトキシ－２－メルカプトベンゾチアゾール、２－アミノチアゾール、２，１，３－ベンゾチアジアゾール、１，２，３－ベンゾチアジアゾール、（２－ベンゾチアゾリルチオ）酢酸、３－（２－ベンゾチアゾリルチオ）プロピオン酸等が例示でき、チオフェン化合物としては、チオフェン、ベンゾチオフェン等が例示できる。
　硫黄系化合物は、単独で用いてもよく、２種類以上を用いても良い。硫黄系化合物の含有量は１ｐｐｍ～５００ｐｐｍであることが好ましく、１ｐｐｍ～３０ｐｐｍであることがより好ましく、１ｐｐｍ～１０ｐｐｍであることが特に好ましい。硫黄系化合物の含有量が１ｐｐｍ未満では、析出速度が低下し、めっき付きまわり不良が生じ、皮膜外観が悪化する。５００ｐｐｍを超えると、濃度管理に困難を生じ、めっき液が不安定になる。
　無電解金めっき液には、上述の金塩、還元剤、重金属塩及び硫黄系化合物に加えて、錯化剤、ｐＨ緩衝剤及び金属イオン隠蔽剤の少なくとも１つを含有することが好ましく、これ等すべてを含有することがより好ましい。
　本発明の無電解金めっき液には、錯化剤を含有させることが好ましい。具体的には亜硫酸塩、チオ硫酸塩、チオリンゴ酸塩等の非シアン系錯化剤が挙げられる。錯化剤の含有量は、めっき液の全容量を基準として１ｇ／Ｌ～２００ｇ／Ｌが好ましい。錯化剤の含有量が１ｇ／Ｌ未満である場合、金錯化力は低下し、安定性が低下する。２００ｇ／Ｌを超えると、めっき安定性は向上するが、液中に再結晶が発生し、経済的に芳しくない。錯化剤の含有量は２０ｇ／Ｌ～５０ｇ／Ｌとすることがより好ましい。
　無電解金めっき液には、ｐＨ緩衝剤を含有させることが好ましい。ｐＨ緩衝剤により析出速度を一定値に保ち、めっき液を安定化させる効果がある。緩衝剤は複数のものを混ぜても良い。ｐＨ緩衝剤としては、リン酸塩、酢酸塩、炭酸塩、硼酸塩、クエン酸塩、硫酸塩等が挙げられ、これ等の中では硼酸、硫酸塩が特に好ましい。
　ｐＨ緩衝剤の含有量は、めっき液の全容量を基準として１ｇ／Ｌ～１００ｇ／Ｌであることが好ましい。ｐＨ緩衝剤の含有量が１ｇ／Ｌ未満であると、ｐＨの緩衝効果がなく、１００ｇ／Ｌを超えると再結晶化してしまう恐れがある。より好ましい含有量は２０ｇ／Ｌ～５０ｇ／Ｌである。
　金めっき液には隠蔽剤を含有させることが好ましい。隠蔽剤としては、ベンゾトリアゾール系化合物を用いることができ、ベンゾトリアゾール系化合物としては、例えばベンゾトリアゾールナトリウム、ベンゾトリアゾールカリウム、テトラヒドロベンゾトリアゾール、メチルベンゾトリアゾール、ニトロベンゾトリアゾール等が例示できる。
　金属イオン隠蔽剤の含有量は、めっき液の全容量を基準として０．５ｇ／Ｌ～１００ｇ／Ｌであることが好ましい。金属イオン隠蔽剤の含有量が０．５ｇ／Ｌ未満であると、不純物の隠蔽効果が少なく、十分な液安定性を確保できない傾向がある。一方、１００ｇ／Ｌを超えると、めっき液中で再結晶化が生じる場合がある。コスト及び効果を鑑みると、２ｇ／Ｌ～１０ｇ／Ｌの範囲がもっとも好ましい。
　金めっき液のｐＨは５～１０の範囲であることが好ましい。めっき液のｐＨが５未満の場合、めっき液の錯化剤である亜硫酸塩又はチオ硫酸塩が分解し、毒性の亜硫酸ガスが発生する恐れがある。ｐＨが１０を超える場合、めっき液の安定性が低下する傾向がある。還元剤の析出効率を向上させ、速い析出速度を得るために、無電解金めっき液のｐＨは８～１０の範囲とすることが好ましい。
　無電解めっきの方法としては、置換金めっきが終了したフィルターを浸漬して金めっきを行う。
　めっきの液温は５０℃～９５℃がよい。５０℃未満では析出効率が悪く、９５℃以上では液が不安定になりやすい。
　このようにして形成される最外層の金めっき層７は、９９重量％以上の純度の金からなることが好ましい。金めっき層７の金の純度が９９重量％未満であると、接触部の細胞毒性が高くなる。信頼性を高める観点からは、金層の純度は、９９．５重量％以上であることがより好ましい。
　また、金めっき層７の厚さは、０．００５μｍ～３μｍとすることが好ましく、０．０５μｍ～１μｍとすることがより好ましく、０．１μｍ～０．５μｍとすることが更に好ましい。金めっき層７の厚さを０．００５μｍ以上とすることで、金属の溶出をある程度抑制できる。一方、３μｍを超えても、それ以上効果が大きく向上しないため、経済的な観点からも３μｍ以下とすることが好ましい。貴金属めっきの場合、厚さ０．０５μｍ～１μｍとすることが好ましい。
　以上のように形成した金表面は細胞毒性がなく、大気中又は血液を含む殆どの水溶液中で安定である。しかしながら、金表面は比較的疎水性であり、生体適合性が低いので、生体適合性を向上させる処理を施すと良い。以下表面処理の一例を示す。
　血液中の成分である白血球、赤血球、血小板は異物に対して拒絶反応を示す。したがって、金属表面に前処理を施すのがよい。この場合、血液ろ過の直前に金属表面を、生体適合性ポリマーを含む溶媒に浸漬するのが好ましい。
　生体適合性ポリマーを含む溶媒としては、哺乳動物の血清或いは血漿が挙げられる。血漿は、抗凝固剤入り採血管で採血して放置または遠心分離した場合に、血球成分の沈殿によりできる上澄みである。この血漿は凝固因子を含む。一方で、抗凝固剤の入らない採血管で採血して放置した場合、抗凝固剤が入らないため、血球成分が凝固因子により凝血する。その場合の上澄みが血清であり、血清は凝固因子を欠く。
　哺乳動物の中でも特性又は価格を考慮すると、ウシ、ウマ、ヒトの中から選択するのが好ましく、特にウシ胎児血清が好ましい。
　血清の中にはたんぱく質を含む。タンパク質中に含むアルブミン又はグロブリンがフィルター表面に吸着することで、血球成分がフィルター表面に吸着するのを防ぐ。血清中には多くのタンパク質が存在するが、血清アルブミンは約５０％～６５％を占める。
　アルブミンはアミノ酸が多数連結しているのでアミノ基を多数有している。アミノ基は貴金属（金、白金、パラジウム）に対して強固な配位結合をする。
　特に金は酸化皮膜が殆ど存在しないので、特別な前処理をしなくてもアルブミンと強固な結合を形成する。
　こうした血清或いは血漿を希釈した水溶液でフィルター１０５の前処理を行う。血清或いは血漿の濃度は１％～５０％の範囲が好ましく、５％～３０％の範囲が更に好ましく、１０％～２０％の範囲が更に好ましい。
　血清或いは血漿は水系の溶媒で希釈するのが良く、リン酸等の緩衝液が入っているのが望ましい。血清或いは血漿の水溶液は、リン酸緩衝液を主成分とすることが好ましい。
　更に血清或いは血漿溶液には血液の抗凝固剤が入っているのが望ましい。こうした抗凝固剤にはＥＤＴＡ、ヘパリン、クエン酸ナトリウム、及びフッ化ナトリウム等が挙げられるが、中でもＥＤＴＡ又はヘパリンが望ましい。
　処理時間は１分以上６０分以下が好ましく、１分以上１０分以下が更に好ましい。１分より短い場合は生体適合高分子が強固に貴金属表面と配位結合しにくい。他方６０分より長い場合は作業時間の観点から好ましくない。
　こうして生体適合性ポリマーを処理したフィルターに血液を流す（血液フィルトレーション）。フィルター１０５を細胞捕捉カートリッジ１００のような装置に対して取り付けて血液を通過させる。血液はフィルターの下方から陰圧で処理しても、フィルターの上方から加圧で処理しても、遠心分離のように遠心力で処理しても構わない。いずれの方法においても血液がフィルターの孔を通過する線速度をコントロールすることが重要になる。
　なお、サンプルとして必要な血液の量は１～１０ｍｌである。
　血液を採取する際の採血管は、抗凝固剤が入ったものが好ましい。こうしたものの中にはＥＤＴＡ－２Ｋ、ＥＤＴＡ－２Ｎａ、クエン酸ナトリウム、フッ化ナトリウム、又はヘパリン等が挙げられる。
　また、採血管で採取した血液をサンプルとしてすべて用いる方法と、遠心分離によりバッフィーコートのみを取り出す方法がある。採血管で採取した血液をすべて用いる方法が簡便ではあるが、赤血球等の成分を取り除いておいた方が、後の工程が容易になるというメリットがある。
　バッフィーコートのみを取り出す方法を用いる場合、生体適合性ポリマーを含む溶媒で希釈するとよい。これにより、血液中のがん細胞などが余計な箇所に吸着するのを妨げることができる。
　生体適合性ポリマーを含む溶媒としては、哺乳動物の血清或いは血漿が挙げられる。血漿は、抗凝固剤入り採血管で採血して放置または遠心分離した場合に、血球成分の沈殿によりできる上澄みである。この血漿は凝固因子を含む。一方で、抗凝固剤の入らない採血管で採血して放置した場合、抗凝固剤が入らないため、血球成分が凝固因子により凝血する。その場合の上澄みが血清であり、血清は凝固因子を欠く。
　哺乳動物の中でも特性又は価格を考慮すると、ウシ、ウマ及びヒトの中から選択するのが望ましく。特にウシ胎児血清は良好な特性が得られやすい。
　血清の中にはたんぱく質を含む。タンパク質中に含むアルブミン又はグロブリンがフィルター表面に吸着することで、血球成分がフィルター表面に吸着するのを防ぐ。血清中には多くのタンパク質が存在するが、血清アルブミンは約５０％～６５％を占める。
　こうした血清或いは血漿を希釈した溶液でフィルターの前処理を行う。血清或いは血漿の濃度は１％～５０％の範囲が好ましく、５％～３０％の範囲が更に好ましく、１０％～２０％の範囲が更に好ましい。
　血清或いは血漿は水系の溶媒で希釈するのが良く、リン酸等の緩衝液が入っているのが望ましい。
　更に血清或いは血漿溶液には血液の抗凝固剤が入っているのが望ましい。こうした抗凝固剤にはＥＤＴＡ、ヘパリン、クエン酸ナトリウム及びフッ化ナトリウム等が挙げられるが、中でもＥＤＴＡ又はヘパリンが望ましい。
　こうして白血球とＣＴＣが生体適合性ポリマーを含む溶媒に希釈された細胞懸濁液ができたら、白血球を取り除く。
　白血球の除去には従来公知の方法である白血球の磁気ビーズ（磁性ビーズ）による除去法を用いることができる。このようなビーズとしてＤｙｎａｂｅａｄｓ　Ｍ－４５０－ＣＤ４５　（ｐａｎ－ｌｅｕｃｏｃｙｔｅ）が挙げられる。
　ＣＤ４５抗体を上記の磁気ビーズに反応させたビーズを上記細胞懸濁液に浸漬させる。この際、磁気ビーズを白血球の４倍～１０倍程度入れるとよい。磁気ビーズの量が少ないと白血球の除去効率が低下し、磁気ビーズの量が多いとコスト高につながる。
　磁気ビーズと白血球を所定の時間反応させた後、磁気ビーズを除去する。
　上記工程によって、白血球数を当初の５０００万個（５ｍＬの場合）レベルから最低でも５０万個レベルに低減することが可能になる。
　以上の工程によって得られた細胞の懸濁液を血液フィルトレーションすることよってダウンストリームが可能なレベルまで低減させる。
　血液がフィルター１０５の孔を通過する線速度（血液の体積／孔の総面積）は０．５～１００ｃｍ／ｍｉｎの範囲であることが望ましく、５～２０ｃｍ／ｍｉｎの範囲であることが更に望ましい。
　血液ろ過後のフィルター１０５を、再び血清或いは血漿溶媒で洗浄すると良い。血清或いは血漿溶媒は、前記浸漬用とまったく同じものを用いることができる。洗浄液の線速度は、やはり０．５～１００ｃｍ／ｍｉｎの範囲であることが望ましく、５～２０ｃｍ／ｍｉｎの範囲であることが更に望ましい。
　当初の浸漬により、生体適合高分子がフィルター１０５の表面に吸着しているのでろ過の際の血球成分の吸着を抑えることができるが、血液処理により血球が吸着しやすい表面になる。
　また、洗浄時に再度生体適合性高分子を流すことで、洗浄効果が上がる。
　洗浄液の量は適宜調整してよいが、前記線速度で１～２０分の洗浄が望ましく、５～１５分の洗浄が更に望ましい。
　以上のようにして濃縮したＣＴＣ等の希少細胞を捕捉することができる。生体適合性ポリマーを化学的に強固にフィルターに被覆することで、赤血球、白血球、血しょう板といった成分を除外することが可能になる。なお、血液フィルトレーションの前に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液にフィルターを浸漬するか、又は、フィルターによる血液フィルトレーションの後に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液で血液の血球細胞を洗浄する工程の少なくとも一方を含んでいればよいが、特に血液フィルトレーションの前に処理を行うことにより、効率的に血液中の希少細胞を捕獲することが可能となる。
　血液フィルトレーションを用いるフィルター法では、白血球の初期投入量によって最終的に残る白血球の残存量が異なる傾向がある。発明者らの検討では白血球の量はフィルターろ過により１／２５０００程度に低減できる。
　しかしながら、血液７．５ｍｌ中には白血球が５千万個程度存在する場合もある。すると、白血球が２０００個程度（１０００～１００００個）は残存してしまう。
　白血球が２０００個残存したとしても、がん細胞のカウントは可能である。しかしながらその後の遺伝子解析等のダウンストリームでは、がん細胞が少ないとバックグラウンドが強くなり、良好な結果が得られにくい。
　フィルター法において１０００～１００００個残存した白血球を如何に減らすかという課題が残る。
　そこで、フィルター上に残存した白血球とがん細胞を回収する。回収方法としてはフィルターをビーカーに浸漬するなどの方法が考えられるが、簡便なのは逆洗浄である。即ち、フィルターの逆側から液を流し、細胞を回収する。この際の回収液には生体適合性ポリマーを含む溶媒を用いることが好ましい。
　生体適合性ポリマーを含む溶媒としては、哺乳動物の血清或いは血漿が挙げられる。血漿は、抗凝固剤入り採血管で採血して放置または遠心分離した場合に、血球成分の沈殿によりできる上澄みである。この血漿は凝固因子を含む。一方で、抗凝固剤の入らない採血管で採血して放置した場合、抗凝固剤が入らないため、血球成分が凝固因子により凝血する。その場合の上澄みが血清であり、血清は凝固因子を欠く。
　哺乳動物の中でも特性や価格を考慮すると、ウシ、ウマ、ヒトの中から選択するのが望ましく。特にウシ胎児血清は良好な特性が得られやすい。
　血清の中にはたんぱく質を含む。タンパク質中に含むアルブミンやグロブリンがフィルター表面に吸着することで、血球成分がフィルター表面に吸着するのを防ぐ。血清中には多くのタンパク質が存在するが、血清アルブミンは約５０～６５％を占める。
　アルブミンはアミノ酸が多数連結しているのでアミノ基を多数有している。アミノ基は貴金属（金、白金、パラジウム）に対して強固な配位結合をする。
　特に金は酸化皮膜が殆ど存在しないので、特別な前処理をしなくてもアルブミンと強固な結合を形成する。
　血清或いは血漿の濃度は１～５０％の範囲が好ましく、５～３０％の範囲が更に好ましく、１０～２０％の範囲が更に好ましい。
　血清或いは血漿は水系の溶媒で希釈するのが良く、リン酸等の緩衝液が入っているのが望ましい。
　更に血清或いは血漿溶液には血液の抗凝固剤が入っているのが望ましい。こうした抗凝固剤にはＥＤＴＡやヘパリン、クエン酸ナトリウム、フッ化ナトリウム等が挙げられるが、中でもＥＤＴＡやヘパリンが望ましい。
　こうして白血球とＣＴＣが生体適合性ポリマーを含む溶媒に希釈された細胞懸濁液ができたら、白血球を取り除く。
　白血球の除去には従来公知の方法である白血球の磁気ビーズによる除去法を用いることができる。このようなビーズとしてＤｙｎａｂｅａｄｓ　Ｍ－４５０－ＣＤ４５　（ｐａｎ－ｌｅｕｃｏｃｙｔｅ）が挙げられる。
　ＣＤ４５抗体を磁気ビーズに反応させたビーズを上記細胞懸濁液に浸漬させる。この際、磁気ビーズを白血球の４倍～１００倍程度入れるとよい。磁気ビーズの量が少ないと白血球の除去効率が低下し、磁気ビーズの量が多いとコスト高につながる。
　磁気ビーズと白血球を所定の時間反応させた後、磁気ビーズを除去する。
　上記工程によって、白血球数を当初の１０００～１００００個（７．５ｍｌの場合）レベルから１０～１００個レベルに低減することが可能になる。
　こうして得られた細胞の懸濁液はダウンストリームが可能なレベルとすることができる。
（フィルター１）
　感光性樹脂組成物（ＰＨＯＴＥＣ　ＲＤ－１２２５：厚さ２５μｍ、日立化成株式会社製）を２５０ｍｍ角の基板（ＭＣＬ－Ｅ６７９Ｆ：ＭＣＬの表面にピーラブル銅箔を貼り合わせた基板、日立化成工業株式会社製）の片面にラミネートした。ラミネート条件はロール温度９０℃、圧力０．３ＭＰａ、コンベア速度２．０ｍ／分で行った。
　次に、光の透過部の形状が角丸長方形、サイズが７．８（短孔径）×１００（長孔径）μｍで開口率６．７％となるように設計したガラスマスクを基板のフォトレジストラミネート面に静置した。本実施例においては同一の方向を向いた角丸長方形が長軸及び短軸方向に一定のピッチで整列したガラスマスクを使用した。
　続いて、６００ｍｍＨｇ以下の真空下において、ガラスマスクを載置した基板上部から紫外線照射装置によって露光量３０ｍＪ／ｃｍ２の紫外線を照射した。
　次に、１．０％炭酸ナトリウム水溶液で現像を行い、基板上に長方形のフォトレジストが垂直に立ったレジスト層を形成した。このレジスト付き基板の銅露出部分にｐＨが４．５になるように調整したニッケルめっき液中温度５５℃、約２０分間約２０μｍめっきを行った。ニッケルめっき液の組成を表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　次に、得られたニッケルめっき層を基板のピーラブル銅箔とともに剥離し、このピーラブル銅箔を温度４０℃で約１２０分間、攪拌処理での薬液による化学的溶解（メックブライトＳＦ－５４２０Ｂ、メック株式会社）によって除去することにより金属フィルターとなる自立膜（２０ｍｍ×２０ｍｍ）を取り出した。
　最後に、自立膜内に残ったフォトレジストを温度６０℃で約４０分間、超音波処理でのレジスト剥離（Ｐ３　Ｐｏｌｅｖｅ、Ｈｅｎｋｅｌ）によって除去し、微細貫通孔を有する金属フィルターを作製した。
これによって、シワ・折れ・キズ・カール等のダメージはなく、十分な精度の貫通孔を有する金属フィルターを作製した。
次に、酸性脱脂液Ｚ－２００（ワールドメタル製：商品名）に金属フィルターを浸漬し、金属フィルター上の有機物の除去を行った（４０℃３分）。
　水洗後、非シアン系の無電解ＡｕめっきであるＨＧＳ－１００（日立化成製：商品名）から金供給源である亜硫酸金を抜いた液により８０℃１０分の条件で置換金めっき前処理を行った。
　次に非シアン系の置換型無電解ＡｕめっきであるＨＧＳ－１００（日立化成製：商品名）に８０℃２０分浸漬し、置換金めっきを行った。置換金めっきの厚みは０．０５μｍであった。
水洗後、非シアン系還元型無電解ＡｕめっきであるＨＧＳ－５４００（日立化成製商品名）に６５℃１０分浸漬し、金めっきを行い、水洗後乾燥を行った。金めっきのトータル厚みは０．２μｍであった。
（非小細胞癌細胞株の調整）
　非小細胞癌細胞株であるＮＣＩ－Ｈ３５８細胞を１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含むＲＰＭＩ－１６４０培地にて、３７℃、５％ＣＯ２条件下にて静置培養した。トリプシン処理により培養皿から細胞を剥離させて回収し、リン酸緩衝液（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ　ｂｕｆｆｅｒｅｄ　ｓａｌｉｎｅ、ＰＢＳ）を用いて洗浄した後に、１０μＭ　ＣｅｌｌＴｒａｃｋｅｒ　Ｒｅｄ　ＣＭＴＰＸ（ライフテクノロジーズジャパン株式会社）にて３７℃、３０分間静置させることで、ＮＣＩ－Ｈ３５８細胞を染色した。その後、ＰＢＳにて洗浄し、トリプシン処理にて３７℃にて３分間静置させることで、細胞塊を解離させた。その後、培地にてトリプシン処理を停止させ、ＰＢＳにて洗浄後、２ｍＭＥＤＴＡ及び０．５％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むＰＢＳ（以下２ｍＭ　ＥＤＴＡ－０．５％　ＢＳＡ－ＰＢＳという。）に懸濁し、調整用の懸濁液を得た。なお、ＰＢＳはリン酸緩衝生理食塩水であり和光純薬工業製製品コード１６６－２３５５５を用いた。ＢＳＡはＳＩＧＭＡ－ＡＬＤＲＩＣＨ社製（Ｐｒｏｄｕｃｔ　Ｎａｍｅ　：　Ａｌｂｕｍｉｎ　ｆｒｏｍ　ｂｏｖｉｎｅ　ｓｅｒｕｍ－Ｌｙｏｐｈｉｌｉｚｅｄ　ｐｏｗｄｅｒ，　Ｂｉｏ　Ｒｅａｇｅｎｔ　ｆｏｒ　ｃｅｌｌ　ｃｕｌｔｕｒｅ）のものを用いた。ＥＤＴＡは２Ｎａ（エチレンジアミン－Ｎ，Ｎ，Ｎ’，，Ｎ’－４酢酸二ナトリウム塩二水和物）（和光純薬工業製製品コード３４５－０１８６５）を用いた。
（磁気ビーズによる血液サンプル中のＣＴＣの濃縮）
（比較例１）
　７．５ｍｌの血液サンプルとして、ＥＤＴＡ－２Ｎａ含有真空採血管に採血した健常者血液に、血液７．５ｍＬあたり１０００個の前出癌細胞を含有させたサンプルを用いた。サンプル中の白血球の数は４７０万個／ｍｌ即ち、３５２５万個／７．５ｍｌであった。
った。
　上記で作製したフィルターをカートリッジにセットしたＣＴＣ回収装置：ＣＴ６０００（日立化成製商品名）を用いて実験を行った。ＣＴＣ回収装置は血液サンプル、又は試薬を導入するための流路を備えており、流路の入り口は、シリンジを加工して作製したリザーバーに接続した。このリザーバーに、血液サンプルや試薬を順次投入していくことで、ＣＴＣの捕捉、染色、洗浄などの操作を連続的に容易に行えるようにした。
　まず、リザーバーに、２ｍＭ　ＥＤＴＡ－１０．０％　ＦＢＳ（牛胎児血清）－ＰＢＳ（Ｇｉｂｃｏ製ＰＢＳｐＨ７．４）　１ｍｌ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、サンプル１を投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。
　次にＰＢＳに４％ＰＦＡを溶かした液をカートリッジに入れ、細胞を１５分浸した。洗浄後、洗浄液に０．２％ＴｒｉｔｏｎＸを溶かした液をカートリッジに入れ、細胞を１５分浸した。
　さらに１０分後、ポンプ流速を２０μＬ／分に変更し、リザーバーに６００μＬの細胞染色液（Ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２：３０μｌ、Ｗａｓｈ　ｂｕｆｆｅｒ：３００ｍｌ）を導入し、フィルター上の癌細胞または白血球を蛍光染色した。フィルター上に捕捉された細胞に対して３０分間染色を行った後、リザーバーに１ｍＬの２ｍＭ　ＥＤＴＡ－０．５％　ＢＳＡ－ＰＢＳを導入して細胞の洗浄を行った。
　続いて、コンピューター制御式電気ステージ及び冷却デジタルカメラ（ＤＰ７０、オリンパス株式会社）を装備した蛍光顕微鏡（ＢＸ６１、オリンパス株式会社）を使用してフィルターを観察し、フィルター上の癌細胞及び白血球の数をカウントした。
　Ｈｏｅｃｈｓｔ　３３３４２及びＣｅｌｌＴｒａｃｋｅｒ　Ｒｅｄ　ＣＭＴＰＸ由来の蛍光を観察するために、それぞれＷＵ及びＷＩＧフィルター（オリンパス株式会社）を用いて画像を取得した。画像取得及び解析ソフトにはＬｕｍｉｎａ　Ｖｉｓｉｏｎ（三谷商事株式会社）を用いた。結果を表２に示す。細胞回収率（％）＝フィルターに回収された癌細胞数／血液サンプルに混合した癌細胞数×１００％。白血球の数はＨｏｅｃｈｓｔ　３３３４２で染色された細胞数からがん細胞数を引くことで算出した。以上の方法で比較例１に係る実験を行った。
（比較例２）
　当初の血液量を７．５ｍｌではなく１５ｍｌとした以外は比較例１と同様の方法で実験を行った。
（比較例３）
　当初の血液量を７．５ｍｌではなく３０ｍｌとした以外は比較例１と同様の方法で実験を行った。
（実施例１）
　７．５ｍｌの血液サンプルとして、ＥＤＴＡ－２Ｎａ含有真空採血管に採血した健常者血液に、血液７．５ｍＬあたり１０００個の前出癌細胞を含有させたサンプルを用いた。サンプル中の白血球の数は４７０万個／ｍｌ即ち、３５２５万個／７．５ｍｌであった。
った。
　上記で作製したフィルターをカートリッジにセットしたＣＴＣ回収装置：ＣＴ６０００（日立化成製商品名）を用いて血液フィルトレーションを行った。ＣＴＣ回収装置は血液サンプルや試薬を導入するための流路を備えており、流路の入り口は、シリンジを加工して作製したリザーバーに接続した。このリザーバーに、血液サンプル又は試薬を順次投入していくことで、ＣＴＣの捕捉、染色、洗浄などの操作を連続的に容易に行えるようにした。
　まず、リザーバーに、２ｍＭ　ＥＤＴＡ－１０．０％　ＦＢＳ（牛胎児血清）－ＰＢＳ（Ｇｉｂｃｏ製ＰＢＳｐＨ７．４）　１ｍｌ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液サンプルを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。
　次に、洗浄液をフィルターの逆から流し（逆洗浄）、フィルター上の細胞を回収し、１０ｍｌの細胞入りの懸濁液を得た。
　磁気ビーズにＣＤ４５抗体をつけたＤｙｎａｂｅａｄｓ　ＣＤ４５を４．０×１０５個分散液１ｍｌ（０．１％ＢＳＡ、０．０２％Ｓｏｄｉｕｍ　ａｚｉｄｅ，　ＰＢＳｐＨ７．４）を投入し、所定時間反応後、磁気ビーズを磁石により用いて取り出し、残ったがん細胞入りの懸濁液１を得た。
　上記で作製したフィルターをカートリッジにセットしたＣＴＣ回収装置：ＣＴ６０００（日立化成製商品名）を用いてＣＴＣの回収作業を行った。ＣＴＣ回収装置は血液サンプルや試薬を導入するための流路を備えており、流路の入り口は、シリンジを加工して作製したリザーバーに接続した。このリザーバーに、血液サンプルや試薬を順次投入していくことで、ＣＴＣの捕捉、染色、洗浄などの操作を連続的に容易に行えるようにした。
　まず、リザーバーに、２ｍＭ　ＥＤＴＡ－１０．０％　ＦＢＳ（牛胎児血清）－ＰＢＳ（Ｇｉｂｃｏ製ＰＢＳｐＨ７．４）　１ｍｌ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、懸濁液１を投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。
　次にＰＢＳに４％ＰＦＡを溶かした液をカートリッジに入れ、細胞を１５分浸した。
　洗浄後、洗浄液に０．２％ＴｒｉｔｏｎＸを溶かした液をカートリッジに入れ、細胞を１５分浸した。
　さらに１０分後、ポンプ流速を２０μＬ／分に変更し、リザーバーに６００μＬの細胞染色液（Ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２：３０μｌ、Ｗａｓｈ　ｂｕｆｆｅｒ：３００ｍｌ）を導入し、フィルター上の癌細胞または白血球を蛍光染色した。フィルター上に捕捉された細胞に対して３０分間染色を行った後、リザーバーに１ｍＬの２ｍＭ　ＥＤＴＡ－０．５％　ＢＳＡ－ＰＢＳを導入して細胞の洗浄を行った。
　続いて、コンピューター制御式電気ステージ及び冷却デジタルカメラ（ＤＰ７０、オリンパス株式会社）を装備した蛍光顕微鏡（ＢＸ６１、オリンパス株式会社）を使用してフィルターを観察し、フィルター上の癌細胞及び白血球の数をカウントした。
　Ｈｏｅｃｈｓｔ　３３３４２及びＣｅｌｌＴｒａｃｋｅｒ　Ｒｅｄ　ＣＭＴＰＸ由来の蛍光を観察するために、それぞれＷＵ及びＷＩＧフィルター（オリンパス株式会社）を用いて画像を取得した。画像取得及び解析ソフトにはＬｕｍｉｎａ　Ｖｉｓｉｏｎ（三谷商事株式会社）を用いた。結果を表２に示す。細胞回収率（％）＝フィルターに回収された癌細胞数／血液サンプルに混合した癌細胞数×１００％。白血球の数はＨｏｅｃｈｓｔ　３３３４２で染色された細胞数からがん細胞数を引くことで算出した。
（実施例２）
　当初の血液量を７．５ｍｌではなく１５ｍｌとした以外は実施例１と同様の方法で実施例２に係る実験を行った。
（実施例３）
　当初の血液量を７．５ｍｌではなく３０ｍｌとした以外は実施例１と同様の方法で実施例３に係る実験を行った。
　各実施例及び比較例の結果を表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　比較例１～３は磁気ビーズを用いずに実験を行った場合であるが、白血球の残渣が多くダウンストリームには不向きである。実施例１～３は、比較例の細胞中の白血球を磁気ビーズで減らした後にフィルターをかけた場合である。いずれの場合も白血球が減り、ダウンストリームに対応できる。但し、磁気ビーズを行う前の白血球の数が多いと、残存白血球もそれに伴い、増える傾向がある。更にがん細胞の回収率が低下する。フィルターろ過後の白血球数を１万個以下にすることが好ましい。
　以上示したように、本発明でしめしたフィルターと抗原抗体反応による白血球除去を組み合わせることで、従来のフィルターよりも特性が向上し、ダウンストリームが可能になる。
　１…ＭＣＬ、２…ピーラブル銅箔、２’…銅板、３…フォトレジスト、３ａ…フォトレジスト露光部分（露光部）、３ｂ…フォトレジスト現像部分（未露光部）、４…フォトマスク、５…めっき層、６…貫通孔、７…金めっき層。
 

Claims (24)

  1. 　血中希少細胞を血液中から取り出す血中希少細胞捕獲方法であって、フィルターによる血液フィルトレーションの後に白血球を取り除く工程を有することを特徴とする血中希少細胞捕獲方法。
  2. 　前記白血球を取り除く工程が白血球を磁性ビーズにより取り除く工程であることを特徴とする請求項１に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  3. 　前記血液フィルトレーションの後に得られる前記血中希少細胞を含む液体における白血球数が１万個以下であることを特徴とする請求項１又は２に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  4. 　前記白血球を取り除く工程において、又はその後に、細胞懸濁液を哺乳動物の血清、血漿、又はこれら由来のたんぱく質を含む水溶液を使用する工程を有することを特徴とする請求項１～３のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  5. 　前記哺乳動物の血清或いは血漿が、ウシ、ウマ、又はヒト由来であることを特徴とする請求項４に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  6. 　前記哺乳動物の血清或いは血漿が、ウシ胎児由来であることを特徴とする請求項４に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  7. 　前記哺乳動物の血清或いは血漿の水溶液濃度が１％～５０％の範囲であることを特徴とする請求項４～６のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  8. 　前記血清或いは血漿の水溶液がリン酸緩衝液を主成分とすることを特徴とする請求項４～７のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  9. 　前記血清或いは血漿の水溶液が抗凝固剤を含むことを特徴とする請求項４～８のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  10. 　前記抗凝固剤がＥＤＴＡ、ヘパリン、クエン酸ナトリウム、及びフッ化ナトリウムのいずれかであることを特徴とする請求項９に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  11. 　前記血液フィルトレーションの前に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液にフィルターを浸漬する工程を含むことを特徴とする請求項１～１０のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  12. 　前記血液フィルトレーションの後であって前記白血球を取り除く工程の前に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液で血球細胞を洗浄する工程を含むことを特徴とする請求項１～１１のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  13. 　前記哺乳動物の血清或いは血漿が、ウシ、ウマ、又はヒト由来であることを特徴とする請求項１１又は１２に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  14. 　前記哺乳動物の血清がウシ胎児血清或いは血漿であることを特徴とする請求項１１又は１２に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  15. 　前記フィルター表面が金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金であることを特徴とする請求項１～１４のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  16. 　前記フィルターがニッケルを主成分とし、その表面に金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金がめっきされていることを特徴とする請求項１５に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  17. 　前記フィルターが銅を主成分とし、その表面に金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金がめっきされていることを特徴とする請求項１５に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  18. 　前記フィルターがパラジウムを主成分とし、その表面に金又は白金、或いはそれらの合金がめっきされていることを特徴とする請求項１５に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  19. 　前記フィルターの最外層が金めっきであることを特徴とする請求項１５～１８のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  20. 　前記フィルターの最外層が０．０５μｍ～１μｍの貴金属めっきあることを特徴とする請求項１５～１８のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  21. 　前記血中希少細胞ががん細胞であることを特徴とする請求項１～２０のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  22. 　前記フィルターの貫通孔の開口形状が円、楕円、角丸長方形、長方形、正方形のいずれかである請求項１～２１のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  23. 　前記フィルターの貫通孔の開口形状が長方形及び角丸長方形のいずれか一つ以上の形状を含み、その短辺の長さが５μｍ～１５μｍであることを特徴とする請求項１～２２のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
  24. 　前記フィルターの膜厚が３μｍ～５０μｍであることを特徴とする請求項１～２３のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
     
     
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Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2011505152A (ja) * 2007-12-04 2011-02-24 プロテオバイオアクティブズ・ピーティーワイ・リミテッド 前駆細胞の保護およびその分化の調節
JP2013042689A (ja) * 2011-08-23 2013-03-04 Hitachi Chemical Co Ltd 癌細胞濃縮フィルター
JP2013255487A (ja) * 2012-05-14 2013-12-26 Hitachi Chemical Co Ltd 癌細胞捕捉金属フィルタ、癌細胞捕捉金属フィルタシート、癌細胞捕捉デバイス、及び、それらの製造方法
CN103725648A (zh) * 2013-09-28 2014-04-16 长沙赢润生物技术有限公司 一种新的循环肿瘤细胞富集技术及试剂盒制备方法
CN104178454A (zh) * 2013-05-24 2014-12-03 益善生物技术股份有限公司 一种循环肿瘤细胞的富集、分析方法

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20140008210A1 (en) * 2012-07-06 2014-01-09 Aviva Biosciences Corporation Methods and compositions for separating or enriching cells
US20080057505A1 (en) * 2006-07-14 2008-03-06 Ping Lin Methods and compositions for detecting rare cells from a biological sample
US20140238863A1 (en) * 2011-10-14 2014-08-28 Hitachi Chemical Company, Ltd. Method for producing metal filters
SG11201406727QA (en) * 2012-04-20 2014-11-27 Agency Science Tech & Res Apparatus and method for separating a biological entity from a sample volume
US20170269086A1 (en) * 2014-07-30 2017-09-21 Hitachi Chemical Company, Ltd. Method for capturing rare cells in blood

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2011505152A (ja) * 2007-12-04 2011-02-24 プロテオバイオアクティブズ・ピーティーワイ・リミテッド 前駆細胞の保護およびその分化の調節
JP2013042689A (ja) * 2011-08-23 2013-03-04 Hitachi Chemical Co Ltd 癌細胞濃縮フィルター
JP2013255487A (ja) * 2012-05-14 2013-12-26 Hitachi Chemical Co Ltd 癌細胞捕捉金属フィルタ、癌細胞捕捉金属フィルタシート、癌細胞捕捉デバイス、及び、それらの製造方法
CN104178454A (zh) * 2013-05-24 2014-12-03 益善生物技术股份有限公司 一种循环肿瘤细胞的富集、分析方法
CN103725648A (zh) * 2013-09-28 2014-04-16 长沙赢润生物技术有限公司 一种新的循环肿瘤细胞富集技术及试剂盒制备方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHANG, CHUN-LI ET AL.: "Circulating tumor cell detection using a parallel flow micro-aperture chip system", LAB ON A CHIP, vol. 15, no. 7, 2015, pages 1677 - 1688, XP055390823 *
CHUNG, YAO-KUANG ET AL.: "An electrical biosensor for the detection of circulating tumor cells", BIOSENSORS AND BIOELECTRONICS, vol. 26, no. 5, 2011, pages 2520 - 2526, XP027580192 *
See also references of EP3176266A4 *

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