JP2016032469A

JP2016032469A - 血中希少細胞捕獲方法

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Publication number: JP2016032469A
Application number: JP2015150965A
Authority: JP
Inventors: 高井　健次; Kenji Takai; 健次高井; アンソニーエイチツァイ; Anthony Tsai H; 理美八木; Satomi Yagi; 伊藤　博; Hiroshi Ito; 伊藤　　博
Original assignee: Hitachi Chemical Co Ltd
Current assignee: Showa Denko Materials Co Ltd
Priority date: 2014-07-30
Filing date: 2015-07-30
Publication date: 2016-03-10

Abstract

【課題】従来のフィルターの耐圧性を維持しつつ、フィルターへの細胞吸着を防ぎ、効率的に血液中の希少細胞を捕獲する。
【解決手段】血中希少細胞捕獲方法は、血中希少細胞を血液中から取り出す血中希少細胞捕獲方法であって、フィルターによる血液フィルトレーションの前に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液に前記フィルターを浸漬する工程を含むことを特徴とする。
【選択図】なし

Description

本発明は、血中希少細胞、特に血中循環癌細胞（Circulating Tumor Cell、以下、ＣＴＣという）を効率良く捕獲できるフィルターを用いた血中希少細胞捕獲方法に関する。

癌細胞濃縮の研究・臨床的意義は極めて大きく、血液中の癌細胞を濃縮することもできれば、癌の診断に応用することができる。例えば、癌の予後および治療の最も重要な要因は、初診時および処置時における癌細胞の転移の有無である。癌細胞の初期の拡散が抹消血中に及んだ場合、ＣＴＣを検出することは、癌の病状進行を判断する有用な手段である。しかしながら、血液中には、赤血球又は白血球などの血液成分が圧倒的に多く存在するため、極めて少量のＣＴＣの検出は困難である。

近年、パリレンを用いた樹脂フィルターを使用することで、少量のＣＴＣを効率的に検出する方法が提案されている（特許文献１）。

或いは、樹脂の代わりに金属を用いたフィルターを使用することで、フィルターの強度を向上させ、白血球と癌細胞変形能の違いにより分離する方法も提案されている（特許文献２）。

国際公開第２０１０／１３５６０３号特開２０１３−４２６８９号

発明者らは、金属を用いたフィルターの検討を進めるうち、以下に示す課題が存在することが分かった。すなわち、金属は生体適合性が低いため、白血球又は赤血球といった血液成分が吸着しやすく、容易に目詰まりが発生する。

この際、生体適合性の高いポリマーを事前に処理するということが考えられる。しかしながら、貴金属以外の金属は表面の酸化皮膜の影響でポリマーの表面処理が難しい。また、金属酸化皮膜はサンプルによって異なる上、金属酸化皮膜とポリマーを化学的に強固に結合させるのは難しい。

本発明は上記を鑑みてなされたものであって、従来のＣＴＣ捕捉用フィルターを改善するものであり、従来のフィルターの耐圧性を維持しつつ、フィルターへの細胞吸着を防ぎ、効率的に血液中の希少細胞を捕獲する方法を提供するものである。

本発明の一形態に係る血中希少細胞捕獲方法は、血中希少細胞を血液中から取り出す血中希少細胞捕獲方法であって、フィルターによる血液フィルトレーションの前に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液に前記フィルターを浸漬する工程を含むことを特徴とする。

また、本発明の一形態に係る血中希少細胞捕獲方法は、血中希少細胞を血液中から取り出す血中希少細胞捕獲方法であって、フィルターによる血液フィルトレーションの後に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液で前記血液の血球細胞を洗浄する工程を含むことを特徴とする。

ここで、哺乳動物の血清或いは血漿が、ウシ、ウマ、ヒト由来である態様とすることができる。

また、哺乳動物の血清がウシ胎児血清或いは血漿である態様とすることができる。

また、前記フィルター表面が金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金である態様とすることができる。

前記フィルターがニッケルを主成分とし、その表面に金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金がめっきされている態様とすることができる。

前記フィルターが銅を主成分とし、その表面に金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金がめっきされている態様とすることができる。

前記フィルターがパラジウムを主成分とし、その表面に金又は白金、或いはそれらの合金がめっきされている態様とすることができる。

前記フィルターの最外層が金めっきである態様とすることができる。

前記フィルターの最外層が厚さ０．０５μｍ〜１μｍの貴金属めっきである態様とすることができる。

前記血中希少細胞ががん細胞である態様とすることができる。

前記血液フィルトレーションの前に、前記哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液に前記フィルターを１分以上浸漬する工程を少なくとも含む態様とすることができる。

前記哺乳動物の血清或いは血漿の水溶液の濃度が１％〜５０％の範囲である態様とすることができる。

前記哺乳動物の血清或いは血漿の水溶液がリン酸緩衝液を主成分とする態様とすることができる。

前記哺乳動物の血清或いは血漿の水溶液が抗凝固剤を含む態様とすることができる。

前記抗凝固剤がＥＤＴＡ、ヘパリン、クエン酸ナトリウム、フッ化ナトリウムのいずれかである態様とすることができる。

前記フィルターの貫通孔の開口形状が円、楕円、角丸長方形、長方形、正方形のいずれかである態様とすることができる。なお、角丸長方形とは２つの等しい長さの長辺と２つの半円形からなる形状である。開口形状を長方形又は角丸長方形とした場合、貫通孔に目詰まりしにくく、捕獲対象とする成分の濃縮率を更に向上させることができる。

前記フィルターの貫通孔の開口形状が長方形及び角丸長方形の少なくとも一つ以上の形状を含み、その短辺の長さが５μｍ〜１５μｍである態様とすることができる。

前記フィルターの膜厚が３μｍ〜５０μｍである態様とすることができる。

本発明によれば、フィルターの耐圧性を維持しつつ、フィルターへの細胞吸着を防ぎ、効率的に血液中の希少細胞を捕獲する方法が提供される。

細胞捕捉カートリッジの概略構成を説明する図である。フィルターの製造方法を説明する図である。銅板（銅めっきを行う場合はＮｉ板）を使用してフィルターを製造する方法を示す概略断面図である。フィルターにおける長孔径、短孔径、及び開口率の定義を説明する図である。

以下、添付図面を参照して、本発明を実施するための形態を詳細に説明する。なお、図面の説明においては同一要素には同一符号を付し、重複する説明を省略する。

本実施形態に係る血中希少細胞捕獲方法では血中希少細胞（例えば、がん細胞）を血液中からフィルターによるフィルトレーションを行う。血液フィルトレーションを行うための装置構成は特に限定されないが、一例として細胞捕捉カートリッジを用いる場合について説明する。細胞捕捉カートリッジ１００は、図１に示すように、細胞分散液が流入する流入管１２５が接続された流入口１３０と、細胞分散液が流出する流出管１３５が接続された流出口１４０とを有する筐体１２０と、筐体１２０内に配置され、細胞分散液に含まれる血中希少細胞を捕捉する捕捉領域を有するフィルター１０５とを備える。

筐体１２０は、フィルター１０５を保持するための部材であり、上部部材１１０及び下部部材１１５から構成される。筐体１２０の形状は直方体又は円筒等であってよく、特に制約はない。

流入管１２５の上流には、例えば、血液又は洗浄液等の処理液等が接続される。また、流出管１３５の下流に、ポンプＰが接続することで、ポンプＰの駆動により、流入管１２５から筐体１２０の内部に血液等が供給され。その後、流出管１３５から外部に排出される。

フィルター１０５には貫通孔１０６が形成されている。血液を細胞捕捉カートリッジ１００内に導入すると、血液の赤血球等は貫通孔１０６を通過するが、血中希少細胞は貫通孔１０６を通過できず、フィルター１０５表面に滞留する。これにより、血中希少細胞を回収することができる。

なお、細胞捕捉カートリッジ１００の形状は上記に限定されない。フィルターによる血液フィルトレーションによって、血中希少細胞を捕捉することができるのであれば、その装置構成は特に限定されない。

次に、図２及び図３を参照しながら、フィルター作製方法を例示すると共に、フィルターの説明を行う。

図２は、ＭＣＬにピーラブル銅箔（銅めっきを行う場合はＮｉ箔）を貼り合わせた基板を使用し、金属製薄膜フィルターを製造する方法を示す概略断面図である。

図２(Ａ)は、ＭＣＬ１上にピーラブル銅箔２（銅めっきを行う場合はＮｉ箔）が積層された基板を示している。まずこの基板を準備する。

フィルターを作製するための基板として使用する材料は銅（めっきが銅の場合はニッケル）が好ましい。銅は薬液による化学的溶解で容易に除去可能であり、フォトレジストとの密着力においても他の材料に比べると優れている。

次に、図２（Ｂ）に示すように、基板のピーラブル銅箔２上にフォトレジスト３を形成する。このフォトレジストの厚みは後の導体の厚みの１．０倍〜２．０倍が好ましい。この厚みが薄いと、後にレジスト剥離が困難になり、厚いと回路形成性が困難になる。具体的には、フォトレジスト３は、１５〜５０μｍの厚みが好ましい。フォトレジスト３を形成する感光性樹脂組成物としてはネガ型感光性樹脂組成物が好ましい。ネガ型感光性樹脂組成物は少なくともバインダー樹脂、不飽和結合を有する光重合性化合物、光重合開始剤を含むものが好ましい。

次に、図２（Ｃ）に示すように、フォトレジスト３上にフォトマスク４を重ねた後にフォトレジスト露光を行う。これにより、フォトマスク４が重ねられていない領域に露光部３ａが形成される。

次に、図２（Ｄ）に示すように、アルカリ溶液等で未露光部３ｂのフォトレジスト現像除去を行う。これにより、フィルターの貫通孔に対応する位置に露光部３ａが残る。

次に、図２（Ｅ）に示すように、フォトレジストで覆われていない部分への電解めっきを行うことで、めっき層５を形成する。このめっきの部分がフィルターの材質となる。

次に、図２（Ｆ）に示すように、ＭＣＬ１から、電解めっきによりめっき層５が形成された施したピーラブル銅箔２を剥離する。

次に、図２（Ｇ）に示すように、薬液による化学的溶解により、ピーラブル銅箔２を除去し、露光部３ａ及びめっき層５により形成される自立膜を取り出す。

次に、図２（Ｈ）に示すように、自立膜内に残ったフォトレジストによる露光部３ａを除去し、めっき層５に対して貫通孔６を形成する。

次に、図２（Ｉ）に示すように、無電解金めっきを行い、フィルター表面に金めっき層７を形成する。以上により、細胞捕捉カートリッジ１００に用いられるフィルター１０５を製造することができる。

図３は、銅板（銅めっきを行う場合はＮｉ板）を使用して金属製薄膜フィルターを製造する方法を示す概略断面図である。

図３に示す方法では、図２に示す方法におけるＭＣＬ１とピーラブル銅箔２に代えて銅板（又はＮｉ板）２’を使用している点以外は、図２に示す製造方法と同じである。

すなわち、図３（Ａ）は基板として使用する銅板２’を準備する工程を示している。
また、図３（Ｂ）は銅板２’へのフォトレジスト３のラミネートする工程を示している。また、図３（Ｃ）はフォトマスク４を重ねてのフォトレジスト露光を示している。また、図３（Ｄ）は未露光部３ｂのフォトレジストの現像除去を示している。また、図３（Ｅ）はフォトレジストの露光部３ａで覆われていない部分への電解めっきによりめっき層を形成する工程を示している。また、図３（Ｆ）は薬液による化学的溶解（ケミカルエッチング）によって銅板２’を除去し、露光部３ａ及びめっき層５により形成される自立膜を取り出す工程を示している。また、図３（Ｇ）は自立膜内に残ったフォトレジストによる露光部３ａを除去し、めっき層５に対して貫通孔６を形成する工程を示している。また、図３（Ｈ）は無電解金めっきを行い、フィルター表面に金めっき層７を形成する工程を示している。

このように、図２に示す方法及び図３に示す方法の何れを用いても細胞捕捉カートリッジ１００に用いられるフィルター１０５を製造することができる。

フィルター１０５の材質は金属であることが好ましい。金属は加工性に優れている為、フィルターの加工精度を高めることができる。これにより、捕獲対象とする成分の捕獲率を更に向上させることができる。また、金属はプラスチックなどの他の材料と比べて剛直である為、外部から力が加わってもそのサイズ及び形状が維持される。この為、貫通孔よりも若干大きな成分を変形させて通過させる場合、より高精度の分離・濃縮が可能となる。

また、金属の主成分としては、ニッケル、銀、パラジウム、銅、イリジウムのいずれか、もしくはこれらの合金が好ましい。以上の金属は電気めっき可能である。なお、「主成分」とは、フィルター１０５の総重量に対する当該成分の重量割合が５０％以上であることを示す。

パラジウム及びイリジウムは酸化還元電位が高く、難溶性で特性良好だが、高価である欠点がある。ニッケルは水素よりも酸化還元電位が低いため、溶解しやすいが、安価である。銀及びパラジウムは貴金属であり、イリジウムに比べると比較的安価である。

フィルターを作製するための基板（銅板２’：図３参照）として使用する材料は銅（フィルター１０５の材質が銅である場合はニッケル）が好ましい。銅は薬液による化学的溶解で容易に除去可能であり、フォトレジストとの密着力においても他の材料に比べると優れている。なお、ＭＣＬ１に対して積層する金属箔２（図２参照）についても、銅（フィルター１０５の材質が銅である場合はニッケル）が好ましい。

また、図２（Ｅ）及び図３（Ｅ）に示すめっき層５の形成は電解めっきにより行われる。例えば、電解ニッケルめっきとしてはワット浴（硫酸ニッケル、塩化ニッケル、ホウ酸が主成分）、スルファミン酸浴（スルファミン酸ニッケル、ホウ酸が主成分）、ストライク浴（塩化ニッケル、塩化水素が主成分）などが挙げられる。

電解銀めっきとしては、シアン化銀カリウム又は酒石酸カリウムを主成分とする浴が挙げられる。

電解パラジウムめっきとしては、水溶性パラジウム塩とナフタレンスルホン酸化合物よりなる浴が挙げられる。

電解イリジウムめっきとしては、ハロゲンを含む可溶性イリジウム塩およびアルコール類を含有する浴が挙げられる。

電解銅めっきとしては、硫酸銅と硫酸、塩化物イオンを主成分とする浴が挙げられる。

これらのめっき浴を用いて、電解めっきを行う。電解めっきの際の電流密度は、０．３〜４Ａ／ｄｍ^２の範囲がよく、０．５〜３Ａ／ｄｍ^２の範囲であることがより好ましい。電流密度を４Ａ／ｄｍ^２以下とすることで、ざらつきの発生を抑制でき、電流密度を０．３Ａ／ｄｍ^２以上とすることで、金属の結晶粒が充分に成長し、バリア層としての効果が高まるため、本実施形態の効果が良好に得られるようになる。

めっきを行う際のレジスト、すなわち、露光部３ａの箇所が貫通孔の箇所となる。貫通孔の開口形状として円、楕円、正方形、長方形、角丸長方形、多角形等が例示できる。効率良く対象とする成分を捕獲できる観点からは円、長方形又は角丸長方形が好ましい。また、フィルターの目詰まり防止の観点からは角丸長方形が特に好ましい。

貫通孔６の孔径は捕捉対象とする成分のサイズに応じて設定される。本明細書において開口形状が楕円、長方形、多角形等の円以外の形状における孔径とは、それぞれの貫通孔を通過できる球の直径の最大値とする。例えば開口形状が長方形の場合、図４に示すように、短辺側の短孔径と、長辺側の長孔径とを定義することができるが、貫通孔６の孔径は短孔径となる。また、開口形状が多角形の場合、その多角形の内接円の直径となる。開口形状が長方形又は角丸長方形の場合、捕獲対象とする成分が貫通孔６に捕獲された状態であっても開口部において開口形状の長辺方向に隙間ができる。この隙間を通して液体が通過可能であるため、フィルターの目詰まりを防止することができる。フィルターの短孔径の長さは５μｍ〜１５μｍが好ましく、７〜９μｍがさらに好ましい。

フィルター１０５の貫通孔の平均開口率は３〜５０％が好ましく、３〜２０％がより好ましく、３〜１０％が特に好ましい。ここで、開口率とは、フィルターとして機能する領域の面積に対する貫通孔が占める面積の割合をいう（図４参照）。即ち、フィルターとして機能する領域の面積とは、フィルターに含まれる複数の貫通孔のうち、貫通孔の最外部を結んで得られる領域（図４において破線で囲まれた領域Ａ１）である。開口率が高すぎると白血球にかかる圧力が低下し、白血球残が増加する。開口率が低いと流せる血液量が低下する。

フィルター１０５の厚さは３μｍ〜５０μｍであることが好ましく、５μｍ〜３０μｍであることがより好ましく、８μｍ〜２０μｍであることが特に好ましい。フィルター１０５の膜厚が３μｍ未満の場合はフィルターの強度が低下し、取り扱い性が困難になる場合がある。逆に、５０μｍを超えると加工時間が長くなることによる生産性低下、必要以上の材料消費によるコスト的な不利又は微細加工そのものが困難になることが懸念される上、白血球が抜けにくくなる。

以上回路形成後、樹脂層を剥離し銅箔をエッチングする（図２）か、又は銅板を除去する（図３）ことで、図２（Ｈ）又は図３（Ｇ）に示すように、めっき層５によるフィルターが完成する。

次に、フィルターに残っているレジスト（露光部３ａ）を強アルカリにより除去する。強アルカリとしては、０．１〜１０ｗｔ％のＮａＯＨ又はＫＯＨ水溶液が好ましい。剥離を促進するためにモノエタノールアミン（１〜２０ｖｏｌ％）等を添加しても良い。剥離が困難な場合は過マンガン酸ナトリウム又は過マンガン酸カリウム等にアルカリ（０．１〜１０ｗｔ％のＮａＯＨ又はＫＯＨ）を加えた液でレジストを除去することもできる。

レジストを除去したフィルターに対しては貴金属めっきを行うと良い。

貴金属めっきとしては、金、パラジウム、白金、ルテニウム、インジウムなどが望ましい。

貴金属めっきの中でも金は前出の様に全ての金属の中で最も酸化還元電位が高く、細胞毒性がないとされている。長期保存での変色等も殆どない。

金めっきは無電解で行うことも出来るし、電解で行うことも出来る。電解で行う場合は厚みばらつきが大きくなり、フィルターの孔径精度に影響出やすいため、無電解で行うことが望ましい。但し、電解金めっきは被覆率を向上できる。

金めっきは置換めっきで行うだけでも効果があるが、置換めっきと還元めっきを組み合わせた方が、効果が大きい。

金めっき前の金属フィルターは表面が酸化していることがある。そこで、酸化皮膜の除去を行うのであるが、ここでは金属イオンと錯体を形成する化合物の入った水溶液で洗浄すると良い。

具体的にはシアン類、ＥＤＴＡ類、又はクエン酸類の入った水溶液がよい。

中でもクエン酸類は金めっきの前処理として最適である。具体的にはクエン酸の無水物、クエン酸の水和物、クエン酸塩あるいはクエン酸塩の水和物であればよく、具体的には、クエン酸無水物、クエン酸一水和物、クエン酸ナトリウム、クエン酸カリウム等を使用することができる。その濃度は０．０１ｍｏｌ／Ｌ〜３ｍｏｌ／Ｌであることが好ましく、０．０３ｍｏｌ／Ｌ〜２ｍｏｌ／Ｌであることがより好ましく、０．０５ｍｏｌ／Ｌ〜１ｍｏｌ／Ｌの範囲であることが特に好ましい。０．０１ｍｏｌ／Ｌ以上とすることで、無電解金めっき層と金属フィルターの密着性が向上する。また、３ｍｏｌ／Ｌを超えた場合、効果が向上しない上、経済的に好ましくない。

クエン酸を含む溶液への浸漬は、７０℃〜９５℃で、１〜２０分間行うと良い。

クエン酸を含む溶液は、発明の効果が得られる範囲でめっき液などに含まれる還元剤、ｐＨ調整剤等の緩衝剤を加えることも可能であるが、還元剤、ｐＨ調整剤などは少量が望ましく、クエン酸のみの水溶液が最も好ましい。クエン酸を含む溶液のｐＨは、好ましくは５〜１０であり、より好ましくは６〜９である。

ｐＨ調整剤としては、酸又はアルカリであれば特に限定されず、酸としては、塩酸、硫酸、硝酸などが使用でき、アルカリとしては、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウム、等のアルカリ金属又はアルカリ土類金属の水酸化物溶液が挙げられる。前述したように、クエン酸の効果を阻害しない範囲で使用することができる。また、クエン酸を含む溶液に、硝酸を１００ｍＬ／Ｌといった高濃度で含有させると、クエン酸のみを含む溶液で処理した場合と比較して、接着性を改善する効果が低下する。

還元剤としては、還元性のあるものであれば特に限定されず、次亜リン酸、ホルムアルデヒド、ジメチルアミンボラン、水素化ホウ素ナトリウムなどが挙げられる。

次に、置換金めっきを行う。置換金めっきにはシアン浴と非シアン浴があるが、環境負荷又は残存時の細胞毒性を考えると非シアン浴が望ましい。非シアン浴に含まれる金塩としては、塩化金酸塩、亜硫酸金塩、チオ硫酸金塩、チオリンゴ酸金塩が例示可能である。金塩は一種類のみ用いてもよく、二種以上を組み合わせて用いても良い。

さらに、シアン系の浴は、金属を溶解する効果が強すぎるため、金属によっては溶解してピンホールが発生しやすい。上記のように前処理を十分に行う場合は非シアン系のめっき浴が好ましい。

金の供給源としては亜硫酸金が特に好ましい。亜硫酸金としては、亜硫酸金ナトリウム、亜硫酸金カリウム、亜硫酸金アンモニウム、などがよい。

金濃度は０．１ｇ／Ｌ〜５ｇ／Ｌの範囲が好ましい。０．１ｇ／Ｌ未満では金が析出しにくく、５ｇ／Ｌを超えると液が分解しやすくなる。

置換金めっき浴には金の錯化剤としてアンモニウム塩又はエチレンジアミンテトラ酢酸塩が入っているとよい。アンモニウム塩としては、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウムが挙げられ、エチレンジアミンテトラ酢酸塩としては、エチレンジアミンテトラ酢酸、エチレンジアミンテトラ酢酸ナトリウム、エチレンジアミンテトラ酢酸カリウム、エチレンジアミンテトラ酢酸アンモニウムを使用する。アンモニウム塩の濃度は、７×１０^−３ｍｏｌ／Ｌ〜０．４ｍｏｌ／Ｌの範囲で使用することが好ましく、アンモニウム塩の濃度がこの範囲外だと液が不安定になる傾向がある。エチレンジアミンテトラ酢酸塩の濃度は、２×１０^−３ｍｏｌ／Ｌ〜０．２ｍｏｌ／Ｌの範囲で使用することが好ましく、アンモニウム塩の濃度がこの範囲外だと液が不安定になる傾向がある。

液を安定に保つために０．１ｇ／L〜５０ｇ／Lの亜硫酸塩が入っているとよい。亜硫酸塩としては亜硫酸ナトリウム又は亜硫酸カリウム、亜硫酸アンモニウムなどが挙げられる。

ｐＨ調整剤としてｐＨを下げる場合には、塩酸或いは硫酸を使用するのが好ましい。また、ｐＨを上げる場合には、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、アンモニア水を使用することが好ましい。ｐＨは６〜７に調整するとよい。この範囲外では液の安定性又はめっきの外観に悪影響を与える。

置換めっきは液温３０度〜８０度で使用することが好ましく、この範囲外では液の安定性又はめっきの外観に悪影響を与える。

以上のようにして置換めっきを行うわけであるが、置換めっきでは完全に金属を覆うのが難しい。そこで、次に還元剤の入った還元型の金めっきを行う。置換めっきの厚みは０．０２μｍ〜０．１μｍの範囲が好ましい。

還元型の金めっきの金塩としては、亜硫酸金塩および及びチオ硫酸塩が好ましく、その含有量は金として１ｇ／Ｌ〜１０ｇ／Ｌの範囲であることが好ましい。金の含有量が１ｇ／Ｌ未満であると、金の析出反応が低下し、１０ｇ／Ｌを超えると、めっき液の安定性が低下すると共に、めっき液の持ち出しにより金消費量が多くなる為好ましくない。含有量は２ｇ／Ｌ〜５ｇ／Ｌにすることがより好ましい。

還元剤としては次亜リン酸、ホルムアルデヒド、ジメチルアミンボラン、水素化ホウ素ナトリウムなどが挙げられるが、フェニル化合物系還元剤がより好ましい。例えば、フェノール、o−クレゾール、ｐ−クレゾール、o−エチルフェノール、ｐ−エチルフェノール、ｔ−ブチルフェノール、o−アミノフェノール、ｐ−アミノフェノール、ヒドロキノン、カテコール、ピロガロール、メチルヒドロキノン、アニリン、o−フェニレンジアミン、ｐ−フェニレンジアミン、o−トルイジン、o−エチルアニリン、ｐ−エチルアニリン等が挙げられ、これらの１種又は２種以上を用いることが出来る。

還元剤の含有量は、０．５ｇ／Ｌ〜５０ｇ／Ｌであることが好ましい。還元剤の含有量が０．５ｇ／Ｌ未満であると、実用的な析出速度を得ることが困難となる傾向があり、５０ｇ／Ｌを超えると、めっき液の安定性が低下する傾向がある。還元剤の含有量は２ｇ／Ｌ〜１０ｇ／Ｌとすることがより好ましく、２ｇ／Ｌ〜５ｇ／Ｌであることが特に望ましい。

無電解金めっき液は重金属塩を含んでいても良い。析出速度を促進する観点から、重金属塩はタリウム塩、鉛塩、砒素塩、アンチモン塩、テルル塩及びビスマス塩からなる群より選ばれる少なくとも一つであることが好ましい。

タリウム塩としては、硫酸タリウム塩、塩化タリウム塩、酸化タリウム塩、硝酸タリウム塩等の無機化合物塩、マロン酸二タリウム塩等の有機錯体塩が挙げられ、鉛塩としては、硫酸鉛塩、硝酸鉛塩等の無機化合物塩、酢酸塩等の有機酢酸塩が挙げられる。

また、砒素塩としては、亜砒素塩、砒酸塩三酸化砒素等の無機化合物塩又は有機錯体塩が挙げられ、アンチモン塩としては、酒石酸アンチモニル塩等の有機錯体塩、塩化アンチモン塩類、オキシ硫酸アンチモン塩、三酸化アンチモン等の無機化合物塩類が挙げられる。

テルル塩としては、亜テルル酸塩、テルル酸塩等の無機化合物塩又は有機錯体塩が挙げられ、ビスマス塩としては、硫酸ビスマス（III）、塩化ビスマス（III）、硝酸ビスマス（III）、等の無機化合物塩、シュウ酸ビスマス（III）等の有機錯体塩が挙げられる。

上述の重金属塩は、１種類又はそれ以上用いることが出来るが、その添加量の合計はめっき液全容量を基準として１ｐｐｍ〜１００ｐｐｍが好ましく、１ｐｐｍ〜１０ｐｐｍがより好ましい。１ｐｐｍ未満では、析出速度向上効果が十分でない場合があり、１００ｐｐｍを越す場合はめっき液安定性が悪くなる傾向にある。

無電解金めっき液は硫黄系化合物を含んでいても良い。フェニル化合物系還元剤及び重金属塩を含む無電解金めっき液中に、硫黄化合物を更に含有させることにより、液温６０〜８０℃程度の低温であっても十分な析出速度が得られ、被膜外観も良好である上、めっき液の安定性が特に優れるようになる。

硫黄系化合物としては、硫化物塩、チオシアン酸塩、チオ尿素化合物、メルカプタン化合物、スルフィド化合物、ジスルフィド化合物、チオケトン化合物、チアゾール化合物、チオフェン化合物等が挙げられる。

硫化物塩としては、例えば、硫化カリウム、硫化ナトリウム、多硫化ナトリウム、多硫化カリウム等が挙げられ、チオシアン酸塩としては、チオシアン酸ナトリウム、チオシアン酸カリウム、ジチオシアン酸カリウム等が挙げられ、また、チオ尿素化合物としては、チオ尿素、メチルチオ尿素、ジメチルチオ尿素等が挙げられる。

メルカプタン化合物としては、１，１−ジメチルエタンチオール、１−メチル−オクタンチオール、ドデカンチオール、１，２−エタンジチオール、チオフェノール、ｏ−チオクレゾール、ｐ−チオクレゾール、ｏ−ジメルカプトベンゼン、ｍ−ジメルカプトベンゼン、ｐ−ジメルカプトベンゼン、チオグリコール、チオジグリコール、チオグリコール酸、ジチオグリコール酸、チオリンゴ酸、メルカプトプロピオン酸、２−メルカプトベンゾオゾイミダゾール、２−メルカプト−１−メチルイミダゾール、２−メルカプト−５−メチルベンゾイミダゾール、等が例示できる。

スルフィド化合物としては、ジエチルスルフィド、ジイソプロピルスルフィド、エチルイソプロピルスルフィド、ジフェニルスルフィド、メチルフェニルスルフィド、ローダニン、チオジグリコール酸、チオジプロピオン酸等が例示でき、ジスルフィド化合物としては、ジメチルジスルフィド、ジエチルジスルフィド、ジプロピルジスルフィド、等が例示できる。

更に、チオケトン化合物としては、チオセミカルバジド等が例示でき、チアゾール化合物としてはチアゾール、ベンゾチアゾール、２−メルカプトベンゾチアゾール、６−エトキシ−２−メルカプトベンゾチアゾール、２−アミノチアゾール、２，１，３−ベンゾチアジアゾール、１，２，３−ベンゾチアジアゾール、（２−ベンゾチアゾリルチオ）酢酸、３−（２−ベンゾチアゾリルチオ）プロピオン酸等が例示でき、チオフェン化合物としては、チオフェン、ベンゾチオフェン等が例示できる。

硫黄系化合物は、単独で用いてもよく、２種類以上を用いても良い。硫黄系化合物の含有量は１ｐｐｍ〜５００ｐｐｍであることが好ましく、１ｐｐｍ〜３０ｐｐｍであることがより好ましく、１ｐｐｍ〜１０ｐｐｍであることが特に好ましい。硫黄系化合物の含有量が１ｐｐｍ未満では、析出速度が低下し、めっき付きまわり不良が生じ、皮膜外観が悪化する。５００ｐｐｍを超えると、濃度管理に困難を生じ、めっき液が不安定になる。

無電解金めっき液には、上述の金塩、還元剤、重金属塩及び硫黄系化合物に加えて、錯化剤、ｐＨ緩衝剤及び金属イオン隠蔽剤の少なくとも１つを含有することが好ましく、これ等すべてを含有することがより好ましい。

本発明の無電解金めっき液には、錯化剤を含有させることが好ましい。具体的には亜硫酸塩、チオ硫酸塩、チオリンゴ酸塩等の非シアン系錯化剤が挙げられる。錯化剤の含有量は、めっき液の全容量を基準として１ｇ／Ｌ〜２００ｇ／Ｌが好ましい。錯化剤の含有量が１ｇ／Ｌ未満である場合、金錯化力は低下し、安定性が低下する。２００ｇ／Ｌを超えると、めっき安定性は向上するが、液中に再結晶が発生し、経済的に芳しくない。錯化剤の含有量は２０ｇ／Ｌ〜５０ｇ／Ｌとすることがより好ましい。

無電解金めっき液には、ｐＨ緩衝剤を含有させることが好ましい。ｐＨ緩衝剤により析出速度を一定値に保ち、めっき液を安定化させる効果がある。緩衝剤は複数のものを混ぜても良い。ｐＨ緩衝剤としては、リン酸塩、酢酸塩、炭酸塩、硼酸塩、クエン酸塩、硫酸塩等が挙げられ、これ等の中では硼酸、硫酸塩が特に好ましい。

ｐＨ緩衝剤の含有量は、めっき液の全容量を基準として１ｇ／Ｌ〜１００ｇ／Ｌであることが好ましい。ｐＨ緩衝剤の含有量が１ｇ／Ｌ未満であると、ｐＨの緩衝効果がなく、１００ｇ／Ｌを超えると再結晶化してしまう恐れがある。より好ましい含有量は２０ｇ／Ｌ〜５０ｇ／Ｌである。

金めっき液には隠蔽剤を含有させることが好ましい。隠蔽剤としては、ベンゾトリアゾール系化合物を用いることができ、ベンゾトリアゾール系化合物としては、例えばベンゾトリアゾールナトリウム、ベンゾトリアゾールカリウム、テトラヒドロベンゾトリアゾール、メチルベンゾトリアゾール、ニトロベンゾトリアゾール等が例示できる。

金属イオン隠蔽剤の含有量は、めっき液の全容量を基準として０．５ｇ／Ｌ〜１００ｇ／Ｌであることが好ましい。金属イオン隠蔽剤の含有量が０．５ｇ／Ｌ未満であると、不純物の隠蔽効果が少なく、十分な液安定性を確保できない傾向がある。一方、１００ｇ／Ｌを超えると、めっき液中で再結晶化が生じる場合がある。コスト及び効果を鑑みると、２ｇ／Ｌ〜１０ｇ／Ｌの範囲がもっとも好ましい。

金めっき液のｐＨは５〜１０の範囲であることが好ましい。めっき液のｐＨが5未満の場合、めっき液の錯化剤である亜硫酸塩又はチオ硫酸塩が分解し、毒性の亜硫酸ガスが発生する恐れがある。ｐＨが１０を超える場合、めっき液の安定性が低下する傾向がある。還元剤の析出効率を向上させ、速い析出速度を得るために、無電解金めっき液のｐＨは８〜１０の範囲とすることが好ましい。

無電解めっきの方法としては、置換金めっきが終了したフィルターを浸漬して金めっきを行う。

めっきの液温は５０℃〜９５℃がよい。５０℃未満では析出効率が悪く、９５℃以上では液が不安定になりやすい。

このようにして形成される最外層の金めっき層７は、９９重量％以上の純度の金からなることが好ましい。金めっき層７の金の純度が９９重量％未満であると、接触部の細胞毒性が高くなる。信頼性を高める観点からは、金層の純度は、９９．５重量％以上であることがより好ましい。

また、金めっき層７の厚さは、０．００５μｍ〜３μｍとすることが好ましく、０．０５μｍ〜１μｍとすることがより好ましく、０．１μｍ〜０．５μｍとすることが更に好ましい。金めっき層７の厚さを０．００５μｍ以上とすることで、金属の溶出をある程度抑制できる。一方、３μｍを超えても、それ以上効果が大きく向上しないため、経済的な観点からも３μｍ以下とすることが好ましい。貴金属めっきの場合、厚さ０．０５μｍ〜１μｍとすることが好ましい。

以上のように形成した金表面は細胞毒性がなく、大気中又は血液を含む殆どの水溶液中で安定である。しかしながら、金表面は比較的疎水性であり、生体適合性が低いので、生体適合性を向上させる処理を施すと良い。以下表面処理の一例を示す。

血液中の成分である白血球、赤血球、血小板は異物に対して拒絶反応を示す。したがって、金属表面に前処理を施すのがよい。この場合、血液ろ過の直前に金属表面を、生体適合性ポリマーを含む溶媒に浸漬するのが好ましい。

生体適合性ポリマーとして、２−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン（ＭＰＣ）ポリマー又は（２−メトキシエチルアクリレート）（ＰＭＥＡ）に代表される人工合成ポリマーが挙げられる。国際公開第２０１２／１７３０９７号が例示される。発明者らの検討では、これらは生物由来のポリマーと比較して効果が薄い。

生体適合性ポリマーを含む溶媒としては、哺乳動物の血清或いは血漿が挙げられる。血漿は、抗凝固剤入り採血管で採血して放置または遠心分離した場合に、血球成分の沈殿によりできる上澄みである。この血漿は凝固因子を含む。一方で、抗凝固剤の入らない採血管で採血して放置した場合、抗凝固剤が入らないため、血球成分が凝固因子により凝血する。その場合の上澄みが血清であり、血清は凝固因子を欠く。

哺乳動物の中でも特性又は価格を考慮すると、ウシ、ウマ、ヒトの中から選択するのが好ましく、特にウシ胎児血清が好ましい。

血清の中にはたんぱく質を含む。タンパク質中に含むアルブミン又はグロブリンがフィルター表面に吸着することで、血球成分がフィルター表面に吸着するのを防ぐ。血清中には多くのタンパク質が存在するが、血清アルブミンは約５０％〜６５％を占める。

アルブミンはアミノ酸が多数連結しているのでアミノ基を多数有している。アミノ基は貴金属（金、白金、パラジウム）に対して強固な配位結合をする。

特に金は酸化皮膜が殆ど存在しないので、特別な前処理をしなくてもアルブミンと強固な結合を形成する。

こうした血清或いは血漿を希釈した水溶液でフィルター１０５の前処理を行う。血清或いは血漿の濃度は１％〜５０％の範囲が好ましく、５％〜３０％の範囲が更に好ましく、１０％〜２０％の範囲が更に好ましい。

血清或いは血漿は水系の溶媒で希釈するのが良く、リン酸等の緩衝液が入っているのが望ましい。血清或いは血漿の水溶液は、リン酸緩衝液を主成分とすることが好ましい。

更に血清或いは血漿溶液には血液の抗凝固剤が入っているのが望ましい。こうした抗凝固剤にはＥＤＴＡ、ヘパリン、クエン酸ナトリウム、及びフッ化ナトリウム等が挙げられるが、中でもＥＤＴＡ又はヘパリンが望ましい。

処理時間は１分以上６０分以下が好ましく、１分以上１０分以下が更に好ましい。１分より短い場合は生体適合高分子が強固に貴金属表面と配位結合しにくい。他方６０分より長い場合は作業時間の観点から好ましくない。

こうして生体適合性ポリマーを処理したフィルターに血液を流す（血液フィルトレーション）。フィルター１０５を細胞捕捉カートリッジ１００のような装置に対して取り付けて血液を通過させる。血液はフィルターの下方から陰圧で処理しても、フィルターの上方から加圧で処理しても、遠心分離のように遠心力で処理しても構わない。いずれの方法においても血液がフィルターの孔を通過する線速度をコントロールすることが重要になる。

血液がフィルター１０５の孔を通過する線速度（血液の体積／孔の総面積）は０．５〜１００ｃｍ／ｍｉｎの範囲であることが望ましく、５〜２０ｃｍ／ｍｉｎの範囲であることが更に望ましい。

血液ろ過後のフィルター１０５を、再び血清或いは血漿溶媒で洗浄すると良い。血清或いは血漿溶媒は、前期浸漬用とまったく同じものを用いることができる。洗浄液の線速度は、やはり０．５〜１００ｃｍ／ｍｉｎの範囲であることが望ましく、５〜２０ｃｍ／ｍｉｎの範囲であることが更に望ましい。

当初の浸漬により、生体適合高分子がフィルター１０５の表面に吸着しているのでろ過の際の血球成分の吸着を抑えることができるが、血液処理により血球が吸着しやすい表面になる。

また、洗浄時に再度生体適合性高分子を流すことで、洗浄効果が上がる。

洗浄液の量は適宜調整してよいが、前記線速度で１〜２０分の洗浄が望ましく、５〜１５分の洗浄が更に望ましい。

以上のようにして濃縮したＣＴＣ等の希少細胞を捕捉することができる。生体適合性ポリマーを化学的に強固にフィルターに被覆することで、赤血球、白血球、血しょう板といった成分を除外することが可能になる。なお、血液フィルトレーションの前に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液にフィルターを浸漬するか、又は、フィルターによる血液フィルトレーションの後に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液で血液の血球細胞を洗浄する工程の少なくとも一方を含んでいればよいが、特に血液フィルトレーションの前に処理を行うことにより、効率的に血液中の希少細胞を捕獲することが可能となる。

（フィルター１）
感光性樹脂組成物(ＰＨＯＴＥＣＲＤ−１２２５：厚さ２５μｍ、日立化成株式会社製)を２５０ｍｍ角の基板(ＭＣＬ−Ｅ６７９Ｆ：ＭＣＬの表面にピーラブル銅箔を貼り合わせた基板、日立化成株式会社製)の片面にラミネートした。ラミネート条件はロール温度９０℃、圧力０．３ＭＰａ、コンベア速度２．０ｍ／分で行った。

次に、光の透過部の形状が角丸長方形、サイズが７．８μｍ（短孔径）×１００μｍ（長孔径）であって、開口率が６．７％となるように設計したガラスマスクを基板のフォトレジストラミネート面に静置した。本実施例においては同一の方向を向いた角丸長方形が長軸及び短軸方向に一定のピッチで整列したガラスマスクを使用した。

続いて、６００ｍｍＨｇ以下の真空下において、ガラスマスクを載置した基板上部から紫外線照射装置によって露光量３０ｍＪ／ｃｍ^２の紫外線を照射した。

次に、１．０％炭酸ナトリウム水溶液で現像を行い、基板上に長方形のフォトレジストが垂直に立ったレジスト層を形成した。このレジスト付き基板の銅露出部分にｐＨが４．５になるように調整したニッケルめっき液中温度５５℃、約２０分間約２０μｍめっきを行った。ニッケルめっき液の組成を表１に示す。

次に、得られたニッケルめっき層を基板のピーラブル銅箔とともに剥離し、このピーラブル銅箔を温度４０℃で約１２０分間、攪拌処理での薬液による化学的溶解(メックブライトＳＦ−５４２０Ｂ、メック株式会社)によって除去することにより金属フィルターとなる自立膜（２０ｍｍ×２０ｍｍ）を取り出した。

最後に、自立膜内に残ったフォトレジストを温度６０℃で約４０分間、超音波処理でのレジスト剥離(Ｐ３Ｐｏｌｅｖｅ、Ｈｅｎｋｅｌ)によって除去し、微細貫通孔を有する金属フィルターを作製した。

これによって、シワ・折れ・キズ・カール等のダメージはなく、十分な精度の貫通孔を有する金属フィルターを作製した。

次に、酸性脱脂液Ｚ−２００（ワールドメタル製：商品名）に金属フィルターを浸漬し、金属フィルター上の有機物の除去を行った（４０℃３分）。

水洗後、非シアン系の無電解ＡｕめっきであるＨＧＳ−１００（日立化成製：商品名）から金供給源である亜硫酸金を抜いた液により８０℃１０分の条件で置換金めっき前処理を行った。

次に非シアン系の置換型無電解ＡｕめっきであるＨＧＳ−１００（日立化成製：商品名）に８０℃２０分浸漬し、置換金めっきを行った。置換金めっきの厚みは０．０５μｍであった。

水洗後、非シアン系還元型無電解ＡｕめっきであるＨＧＳ−５４００（日立化成製：商品名）に６５℃１０分浸漬し、金めっきを行い、水洗後乾燥を行った。金めっきのトータル厚みは０．２μｍであった。

（フィルター２）
電気Ｎｉめっきの変わりに電気パラジウムめっきを用いた以外は実施例１と同様に表面に金めっきフィルターを作製した。電気パラジウムめっき液はパラディックスＬＦ−５（日本エレクトロプレイティング・エンジニヤース株式会社：商品名）を用いた。めっき温度は５０℃、電流密度１Ａ／ｄｍ^２の条件でめっきを行い、約４．２分／μｍの条件で約２０μｍとなるように電気めっきを行った以外はフィルター１と同様の条件でめっきを行った。

（フィルター３）
ＭＣＬのピーラブル銅箔の代わりにピーラブルニッケル箔を用いた（電気めっき後はニッケル箔を除去）。さらに電気Ｎｉめっきの変わりに電気銅めっきを用いた以外は実施例１と同様に表面に金めっきフィルターを作製した。電気銅めっき液はミクロファブＣｕ２００（日本エレクトロプレイティング・エンジニヤース株式会社：商品名）を用いた。めっき温度は２５℃、電流密度３Ａ／ｄｍ^２の条件でめっきを行い、約１．５分／μｍの条件で約２０μｍとなるように電気めっきを行った以外はフィルター１と同様の条件でめっきを行った。

（フィルター４）
金めっきを行わなかったこと以外はフィルター１と同様にフィルターを作製した。

（フィルター５）
２段階の金めっきの代わりに１段階の無電解パラジウムめっきを行った以外はフィルター１と同様にフィルターを作製した。無電解パラジウムめっき液にはパラデックスストライク３（日本エレクトロプレイティング・エンジニヤース株式会社製：商品名）を用いた。パラジウムの厚みは０．１μｍであった。

（フィルター６）
２段階の金めっきの代わりに１段階の無電解白金めっきを行った以外はフィルター１と同様にフィルターを作製した。無電解白金めっき液にはレクトレスＰｔ１００（日本エレクトロプレイティング・エンジニヤース株式会社製：商品名）を用いた。白金の厚みは０．１μｍであった。

（実験）
（非小細胞癌細胞株の調整）
非小細胞癌細胞株であるＮＣＩ−Ｈ３５８細胞を１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含むＲＰＭＩ−１６４０培地にて、３７℃、５％ＣＯ_２条件下にて静置培養した。トリプシン処理により培養皿から細胞を剥離させて回収し、リン酸緩衝液（Phosphate buffered saline、ＰＢＳ）を用いて洗浄した後に、１０μＭ Cell Tracker Red CMTPX（ライフテクノロジーズジャパン株式会社）にて３７℃、３０分間静置させることで、ＮＣＩ−Ｈ３５８細胞を染色した。その後、ＰＢＳにて洗浄し、トリプシン処理にて３７℃にて３分間静置させることで、細胞塊を解離させた。その後、培地にてトリプシン処理を停止させ、ＰＢＳにて洗浄後、２ｍＭＥＤＴＡ及び０．５％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むＰＢＳ（以下２ｍＭＥＤＴＡ−０．５％ＢＳＡ−ＰＢＳという。）中に懸濁した。なお、ＰＢＳはリン酸緩衝生理食塩水であり和光純薬工業製製品コード１６６−２３５５５を用いた。ＢＳＡはSIGMA-ALDRICH社製（Product Name：Albumin from bovine serum-Lyophilized powder, Bio Reagent for cell culture）のものを用いた。また、ＥＤＴＡは２Na（エチレンジアミン-N,N,N’，,N’−４酢酸二ナトリウム塩二水和物）（和光純薬工業製製品コード３４５−０１８６５）を用いた。

（血液サンプル中のＣＴＣの濃縮）
（実施例１）
フィルター１のフィルターをカートリッジにセットしたＣＴＣ回収装置：CT6000（日立化成製商品名）を用いて実験を行った。ＣＴＣ回収装置は血液サンプル又は試薬を導入するための流路を備えており、流路の入り口は、シリンジを加工して作製したリザーバーに接続した。このリザーバーに、血液サンプル又は試薬を順次投入していくことで、ＣＴＣの捕捉、染色、洗浄などの操作を連続的に容易に行えるようにした。

ＣＴＣ回収装置に血液サンプルを導入して癌細胞を濃縮した（血液フィルトレーション）。血液サンプルとして、ＥＤＴＡ含有真空採血管に採血した健常者血液に、血液１ｍＬあたり１０００個の癌細胞を含有させたサンプルを用いた。癌細胞としては、上記のヒト小細胞肺癌細胞株ＮＣＩ−Ｈ３５８を使用した。尚、血液は採血後6時間のものを用いた。

まず、リザーバーに、２ｍＭＥＤＴＡ−１０．０％ＦＢＳ（牛胎児血清）−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ７．４）１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

次にＰＢＳに４％ＰＦＡを溶かした液をカートリッジに入れ、細胞を１５分浸した。洗浄後、洗浄液に０．２％ＴｒｉｔｏｎＸを溶かした液をカートリッジに入れ、細胞を15分浸した。

さらに１０分後、ポンプ流速を２０μＬ／分に変更し、リザーバーに６００μＬの細胞染色液（Hoechst３３３４２：３０μＬ、Wash buffer:３００ｍＬ）を導入し、フィルター上の癌細胞または白血球を蛍光染色した。フィルター上に捕捉された細胞に対して30分間染色を行った後、リザーバーに１ｍＬの２ｍＭＥＤＴＡ−０．５％ＢＳＡ−ＰＢＳを導入して細胞の洗浄を行った。

続いて、コンピューター制御式電気ステージ及び冷却デジタルカメラ（ＤＰ７０、オリンパス株式会社製）を装備した蛍光顕微鏡（ＢＸ６１、オリンパス株式会社製）を使用してフィルターを観察し、フィルター上の癌細胞及び白血球の数をカウントした。

Hoechst ３３３４２及びCellTracker Red CMTPX由来の蛍光を観察するために、それぞれＷＵ及びＷＩＧフィルター（オリンパス株式会社製）を用いて画像を取得した。画像取得及び解析ソフトにはLumina Vision（三谷商事株式会社製）を用いた。結果を表１に示す。細胞回収率（％）＝フィルターに回収された癌細胞数／血液サンプルに混合した癌細胞数×１００％。白血球の数はHoechst ３３３４２で染色された細胞数からがん細胞数を引くことで算出した。

（実施例２）
フィルター１で作製したフィルターの代わりにフィルター２で作製したフィルターを用いた以外は実施例１と同様の条件で実験を行った。

（実施例３）
フィルター１で作製したフィルターの代わりにフィルター３で作製したフィルターを用いた以外は実施例１と同様の条件で実験を行った。

（実施例４）
フィルター１で作製したフィルターの代わりにフィルター４で作製したフィルターを用いた以外は実施例１と同様の条件で実験を行った。

（実施例５）
フィルター１で作製したフィルターの代わりにフィルター５で作製したフィルターを用いた以外は実施例１と同様の条件で実験を行った。

（実施例６）
フィルター１で作製したフィルターの代わりにフィルター６で作製したフィルターを用いた以外は実施例１と同様の条件で実験を行った。

（実施例７）
まず、リザーバーに、洗浄液１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

その際の洗浄液に２ｍＭＥＤＴＡ−１．０％ＦＢＳ（牛胎児血清）−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）を用いた以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（実施例８）
まず、リザーバーに、洗浄液１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

その際の洗浄液に２ｍＭＥＤＴＡ−２０．０％ＦＢＳ（牛胎児血清）−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）を用いた以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（実施例９）
まず、リザーバーに、洗浄液１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

その際の洗浄液に２ｍＭＥＤＴＡ−３０．０％ＦＢＳ（牛胎児血清）−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）を用いた以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（実施例１０）
まず、リザーバーに、洗浄液１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

その際の洗浄液に２ｍＭＥＤＴＡ−５０．０％ＦＢＳ（牛胎児血清）−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）を用いた以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（実施例１１）
まず、リザーバーに、洗浄液１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

その際の洗浄液に２ｍＭＥＤＴＡ−１０．０％ヒト血清−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）を用いた以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（実施例１２）
まず、リザーバーに、洗浄液１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

その際の洗浄液に２ｍＭＥＤＴＡ−１０．０％ウマ血清−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）を用いた以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（実施例１３）
まず、リザーバーに、洗浄液１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

その際の洗浄液に２ｍＭＥＤＴＡ−１０．０％ウシ血清−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）を用いた以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（実施例１４）
まず、リザーバーに、洗浄液１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

その際の洗浄液に１０．０％ＦＢＳ（牛胎児血清）−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）を用いた以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（実施例１５）
まず、リザーバーに、洗浄液１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

その際の洗浄液に１００．０％ＦＢＳ（牛胎児血清を用いた以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（実施例１６）
まず、リザーバーに、２ｍＭＥＤＴＡ−１０．０％ＦＢＳ（牛胎児血清）−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに２ｍＭＥＤＴＡ−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）を導入して細胞の洗浄を行った以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（比較例）
まず、リザーバーに、洗浄液１ｍＬ（以下洗浄液）を導入し、フィルター上を満たし、１０分放置した。続いて、ぺリスタルティックポンプを使用して流速２００μＬ／分で送液を開始した。その後、血液３ｍＬを投入した。約５分後、リザーバーに９ｍＬの洗浄液を導入して細胞の洗浄を行った。

その際の洗浄液に２ｍＭＥＤＴＡ−ＰＢＳ（Gibco製ＰＢＳｐＨ7.4）を用いた以外は実施例１と同様の方法で実験を行った。

（結果）
各実施例の実験条件を表２に示す。また、評価結果を表３に示す。実施例１に示すように、金めっきフィルター上にＦＢＳ１０％の事前処理を行った後に洗浄すると、がん細胞の回収率が高く、白血球の残りも少ない。

バルク（フィルター本体）の金属をＮｉからＰｄに変えた場合（実施例２）、白血球数が減少した。バルクの金属をＮｉからＣｕに変えた場合（実施例３）も同様に、白血球数が減少した。実施例４は表面がＮｉのフィルターを用いた場合である。この場合は白血球数が多く、がん細胞の回収率も低い。卑金属は強固な酸化皮膜を形成するため、フィルター上にＦＢＳ由来の生体適合性の高分子が吸着しなかったか、或いは生体適合性の高分子と金属酸化膜の結合強度が弱いことが示唆される。

実施例５は表面のＡｕをＰＤに変更した場合である。この場合若干Ａｕに比べて特性は劣るが、依然良好な特性を示す。実施例６はＡｕをＰｔに変更した場合である。この場合も若干Ａｕに比べて特性は劣るが、依然良好な特性を示す。

実施例６〜１０はＦＢＳの濃度を変更した場合である。１％の場合効果が少ない。これは、Ａｕ表面に吸着したＦＢＳ由来の生体適合性の高分子の吸着厚が薄いと考えられる。ＦＢＳ濃度が２０〜３０％の場合は１０％よりも良好な結果を示す。但し、ＦＢＳ濃度が５０％の場合は１０％よりも劣る結果であった。

実施例１１〜１３はヒト血清、ウマ血清、ウシ血清を用いた場合である。ＦＢＳに比べて若干効果は劣るが、いずれも使用可能である。

実施例１４はＥＤＴＡを用いなかった場合である。この場合、血液の凝固防止作用が低下するため、ＥＤＴＡを用いた場合と比較して特性が低下する。

実施例１５は１００％ＦＢＳを用いた場合である。この場合良好な結果ではなかったが、比較例よりは良好な結果であった。

実施例１６は洗浄工程時に生体適合性ポリマーを用いなかった場合である。洗浄液に生体適合性ポリマーを用いた場合と比較して効果が落ちる。

比較例はフィルター上で血球成分が凝集してしまい、がん細胞の回収率、白血球残共に良好な結果が得られない。

以上示したように、本発明で示したフィルターと生体適合性の表面処理を組み合わせることで、従来のフィルターよりも特性が向上する。

１…ＭＣＬ、２…ピーラブル銅箔、２’…銅板、３…フォトレジスト、３ａ…フォトレジスト露光部分（露光部）、３ｂ…フォトレジスト現像部分、４…フォトマスク、５…めっき層、６…貫通孔、７…金めっき層。

Claims

血中希少細胞を血液中から取り出す血中希少細胞捕獲方法であって、フィルターによる血液フィルトレーションの前に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液に前記フィルターを浸漬する工程を含むことを特徴とする血中希少細胞捕獲方法。
血中希少細胞を血液中から取り出す血中希少細胞捕獲方法であって、フィルターによる血液フィルトレーションの後に哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液で前記血液の血球細胞を洗浄する工程を含むことを特徴とする血中希少細胞捕獲方法。
哺乳動物の血清或いは血漿が、ウシ、ウマ、ヒト由来であることを特徴とする請求項１又は２に記載の血中希少細胞捕獲方法。
哺乳動物の血清がウシ胎児血清或いは血漿であることを特徴とする請求項１又は２に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記フィルターの表面が金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金であることを特徴とする請求項１〜４のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記フィルターがニッケルを主成分とし、その表面に金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金がめっきされていることを特徴とする請求項１〜５のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記フィルターが銅を主成分とし、その表面に金又は白金又はパラジウム、或いはそれらの合金がめっきされていることを特徴とする請求項１〜５のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記フィルターがパラジウムを主成分とし、その表面に金又は白金、或いはそれらの合金がめっきされていることを特徴とする請求項１〜５のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記フィルターの最外層が金めっきであることを特徴とする請求項１〜８のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記フィルターの最外層が厚さ０．０５μｍ〜１μｍの貴金属めっきであることを特徴とする請求項１〜８のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記血中希少細胞ががん細胞であることを特徴とする請求項１〜１０のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記血液フィルトレーションの前に、前記哺乳動物の血清或いは血漿を含む水溶液に前記フィルターを１分以上浸漬する工程を少なくとも含むことを特徴とする請求項１〜１１のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記哺乳動物の血清或いは血漿の水溶液の濃度が１％〜５０％の範囲であることを特徴とする請求項１〜１２のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記哺乳動物の血清或いは血漿の水溶液がリン酸緩衝液を主成分とすることを特徴とする請求項１〜１３のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記哺乳動物の血清或いは血漿の水溶液が抗凝固剤を含むことを特徴とする請求項１〜１４のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記抗凝固剤がＥＤＴＡ、ヘパリン、クエン酸ナトリウム、フッ化ナトリウムのいずれかであることを特徴とする請求項１５に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記フィルターの貫通孔の開口形状が円、楕円、角丸長方形、長方形、正方形のいずれかである請求項１〜１６のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記フィルターの貫通孔の開口形状が長方形及び角丸長方形の少なくとも一つ以上の形状を含み、その短辺の長さが５μｍ〜１５μｍであることを特徴とする請求項１〜１７のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。
前記フィルターの膜厚が３μｍ〜５０μｍであることを特徴とする請求項１〜１８のいずれか一項に記載の血中希少細胞捕獲方法。