WO2015163783A1 - Способ получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека и нанокапсулированная форма рекомбинантного эритропоэтина человека с использованием субстанции, полученной указанным способом - Google Patents

Способ получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека и нанокапсулированная форма рекомбинантного эритропоэтина человека с использованием субстанции, полученной указанным способом Download PDF

Info

Publication number
WO2015163783A1
WO2015163783A1 PCT/RU2014/000303 RU2014000303W WO2015163783A1 WO 2015163783 A1 WO2015163783 A1 WO 2015163783A1 RU 2014000303 W RU2014000303 W RU 2014000303W WO 2015163783 A1 WO2015163783 A1 WO 2015163783A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
epo
substance
human erythropoietin
recombinant human
erythropoietin
Prior art date
Application number
PCT/RU2014/000303
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Елена Августовна НЕЧАЕВА
Николай Анатольевич ВАРАКСИН
Татьяна Геннадьевна РЯБИЧЕВА
Ирина Федоровна РАДАЕВА
Марина Евгеньевна КОЛЕСОВА
Ольга Павловна ХРИПКО
Варвара Сергеевна СЕРЕБРОВА
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Общество С Ограниченной Ответственностью "Вектор Фортис"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор", Общество С Ограниченной Ответственностью "Вектор Фортис" filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Priority to PCT/RU2014/000303 priority Critical patent/WO2015163783A1/ru
Publication of WO2015163783A1 publication Critical patent/WO2015163783A1/ru

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/48—Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
    • A61K9/50—Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
    • A61K9/51—Nanocapsules; Nanoparticles
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475—Growth factors; Growth regulators
    • C07K14/505—Erythropoietin [EPO]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/10—Cells modified by introduction of foreign genetic material
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02—Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione

Definitions

  • the invention relates to a technology for producing a substance of recombinant human erythropoietin and its nanocapsulated form and can be used in medicine and biotechnology,
  • Erythropoietin is a hormone produced by interstitial kidney cells and regulates erythropoiesis in mammals. EPO is used in the treatment of anemia resulting from organ and tissue transplantation, treatment of HIV infection in the pre- and postoperative period, as well as anemia during pregnancy, systemic diseases (rheumatoid arthritis) and chronic renal failure (dialysis and predialysis patients). Recombinant human EPO (rhEPO) occupies a special place in the prevention and treatment of anemia resulting from intensive chemo- and radiotherapy of tumor diseases, improving the quality of life of people and its duration. In addition, EPO improves cardiac function and can act as a cardio- and neuroprotective agent for myocardial infarction and stroke.
  • nanocapsules usually do not exceed 100 nm, which have high penetrating power and can even pass into such "closed" areas of the body, such as the brain.
  • the small size makes them invisible to cells of the immune system, which allows nanocapsules to circulate in the bloodstream for a long time.
  • the use of nanocapsules eliminates the production of autoantibodies the body, which increases the safety of the use of drugs.
  • a known method of producing an injectable form of rhEPO [USSR Patent JY O 1801 1 18, IPC C12N15 / 26, publ. 03/07/1993].
  • the method consists in obtaining genomic DNA of a human erythropoietin clone by hybridization with probes and its isolation, constructing recombinant plasmid DNA encoding human EPO, followed by transformation of the obtained mammalian cell strains (e.g., cos I), isolation and purification of the target product.
  • the therapeutic effect of rhEPO for parenteral use is widely known and described in many works.
  • a known method of producing a liposomal form of EPO [RF Patent J 22218914, IPC A61 9/127, publ. 12.20.2003] by spraying under pressure the lipid phase in an alcohol solvent into an aqueous buffer solution in a high-speed homogenizer.
  • the lipid phase contains a charged lipid compound and cholesterol.
  • the disadvantages of this method is the complexity of the technology for producing particles and the use of organic solvents capable of inactivating EPO.
  • the specified liposomal the form of the drug is intended for injection use only.
  • a known method of obtaining a tablet form of rhEPO for oral use [RF Patent ⁇ ° 2152206, IPC A61K 9/20, publ. July 10, 2000]. This form is obtained by mixing EPO with stabilizing additives and lyophilization, freeze-dried EPO is mixed with lactose, calcium stearate and vanillin and pressed into tablets, which are then coated with an acid-resistant coating.
  • the disadvantage of this method is the use of acetone in the process of obtaining an acid-resistant shell of a fire-hazardous substance, a drop in rhEPO activity during the deposition of an acid-resistant shell, and the possibility of rupture of the shell during storage and, as a result, a drop in rhEPO activity.
  • Strain CHOPE provides synthesis and secretion of rhEPO into the culture fluid with a yield of up to 4 mg / L during stationary cultivation on a mixture of nutrient media Needle MEM (45%) and 199 (45%) with the addition of 10% cattle serum.
  • the disadvantage of this method is the use of cattle serum as part of the culture medium.
  • the collected EPO-containing liquid must be cleaned of ballast proteins, which greatly complicates the process and affects the final price.
  • cattle serum is an expensive component.
  • Another drawback of whey is its qualitative variability from batch to batch, the possibility of contamination with viruses, prions, mycoplasmas, which also affects the quality and quantity of the target product.
  • the closest way to obtain the substance of recombinant human erythropoietin is a method of obtaining rhEPO [RF Patent JTs 2125093, IPC ⁇ 12 ⁇ 21 / 02, publ. January 20, 2012], which includes obtaining a substance of recombinant human erythropoietin by culturing a strain of CHO-EPO-SPM cells in a growth medium containing 1 liter of a mixture of equal proportions of RPMI-1640 and DMEM, 200 mg glutamine, 0.04 mg gentamicin and 80-120 ml of blood serum of cow fruits, and then in a storage medium containing 200 mg of glutamine in 1 l, Hepes 3.75 g, 10 ml Fetalclone II and a mixture of equal proportions of RPMI-1640 and DMEM media, followed by isolation of the target product sequentially by methods microfiltration and chromatography.
  • the disadvantage of this method is the use of expensive cow serum as part of the growth medium, as well as the use of Fetalclone II as part of the storage medium.
  • Fetalclone II was created on the basis of cattle serum by removing from it immunoglobulins and other undesirable components, as well as adding chemically purified vitamins, amino acids, trace elements and other low molecular weight factors.
  • the cost of Fetalclone II exceeds the cost of serum by 1.5 - 2 times, and besides, upon receipt of the target product, the collected EPO-containing liquid must be cleaned of foreign proteins, which greatly complicates the preparation of the target product and affects the final price.
  • some of the nanocapsules will contain in the core only extraneous protein molecules that will not have erythropoietin activity.
  • the closest analogue of the nanocapsulated form of erythropoietin is the microencapsulated (in the form of microspheres) form of erythropoietin (China patent N ?. CN102233129, IPC A61K9 / 16, publ. 09.1 1.201 1 year), which includes erythropoietin as an active component, dextran is protective (stabilizing) an agent for the active component, and a derivative of polyglycolic or lactic acid or polycaprolactone, which is the material of the shell of microcapsules (coating component).
  • erythropoietin is shown in animal experiments.
  • the claimed microencapsulated form of erythropoietin has a complex technology for producing microcapsules.
  • the particle size of the microcapsules is 5-10 microns, and the technology for producing microcapsules and the component composition of the drug do not allow the manufacture of these microcapsules of a smaller size, which can cause the body to produce antibodies to erythropoietin and increase anemia.
  • Nanocapsules have high penetrating power and can even pass into such "closed” areas of the body, such as the brain.
  • the small size makes them invisible to cells of the immune system, which allows nanocapsules to circulate in the bloodstream for a long time.
  • the technical result of the invention is to simplify the technology for the production of EPO substance, free from extraneous protein impurities and suitable for nanocapsulation, b as well as a simplification of the technology and the possibility of obtaining a nanocapsulated form of EPO with a particle size of 15 to 500 nm.
  • the specified technical result is achieved in that in a method for producing a substance of recombinant human erythropoietin, comprising cultivating in a roller bottle a strain of Chinese hamster ovary cells transformed by pre-introducing a plasmid containing the human erythropoietin gene, sequentially in growth and accumulating nutrient media, followed by isolation of the target product sequentially microfiltration and chromatography methods, according to the invention, as a growth nutrient second medium using growth medium containing, wt.%:
  • a serum-free medium containing the following ingredients in 1 l is used: proline, mg / l 49-80 glycine, mg / l 40-60 a mixture of equal proportions of DMEM and F-12 media to 1 liter, and the target product is the substance of recombinant human erythropoietin has an activity of from 1000 to 10,000 IU / ml.
  • a cultured strain a recombinant strain of Chinese hamster ovary cells N ° HSCK (P) N 626D is used.
  • a nanocapsulated form of recombinant erythropoietin human including polyelectrolyte, which is selected as sodium alginate, or chitosan, or pectin, or collidone, or carbopol, stabilizer - sucrose, hardener - gelatose, liquid substance of recombinant human erythropoietin (EPO) and urea with the following initial composition of the components before nanocapsulation, mass .%: sucrose 2.5-6.0; gelatosis 2.5-5.5; urea 0.1-3.0; sodium alginate or chitosan, or pectin, or collidone, or carbopol 0.001-1.0 and a liquid EPO substance with an erythropoietin concentration of 1,000-10,000 IU / ml, obtained according to claim 1, the rest is up to 100%.
  • polyelectrolyte which is selected as sodium alginate, or chitosan, or pectin
  • Urea in a concentration of 0, 1-3.0 mass. % promotes the disaggregation of EPO during the formation of nanocapsules, as a result of which nanocapsules are formed more homogeneous and with a more uniform number of rhEPO molecules in them.
  • - carbopol 934 (carbomer) is a high molecular weight polymer of acrylic acid crosslinked with polyalkyl esters of Sugars and polyalcohols, is a weak acid, manufactured by Sigma (USA), - Allidone 90F (povidone, polyvinylpyrrolidone) - soluble polyvinylpyrrolidone, forms complex chemical compounds with pharmaceutical substances, manufactured by BASF AG,
  • PROTASAN - chitosan
  • rhEPO for oral administration eliminates the possibility of infection of patients with hepatitis viruses, HIV and other infections, which is possible with the parenteral route of administration.
  • a specially selected composition of stabilizers, polymers and fillers eliminates the side effects caused by additives and excludes the production of autoantibodies in a macroorganism.
  • Example 1 A method of obtaining a liquid substance rhEPO
  • CHORE cells an EPO producer, are cultured in a growth medium consisting of 95% of the nutrient medium MEM needle and 5% of cattle blood serum. Cells are seeded in roll bottles, which are placed in a roll unit and rotate at a speed of 1.5 rpm. The inoculum concentration is (1.5-2.0) x 10 6 cells per 1 ml, the sieving ratio is 1: 3-1: 4, the passaging frequency is 3-4 days. For reseeding cell cultures, a 0.25% trypsin solution and a 0.02% versene solution in a 1: 2 ratio are used as a dispersant. Cell cultures are incubated at a temperature of 37 ° C for 2 days until a cell monolayer is obtained.
  • EPO-containing liquid is drained, the resulting plums are combined and stored at 4 ° C. Then the EPO-containing liquid is purified by filtration through cellulose acetate membranes with pore sizes of 0.45 and 0.22 ⁇ m, concentrated using the ultrafiltration method, the specific activity of EPO in the obtained concentrate is determined by ELISA.
  • Table 1 presents the specific activity of rhEPO in an EPO-containing liquid on various storage media obtained by ELISA.
  • a serum-free medium consisting of 50% DMEM culture medium, 50% F-12 culture medium supplemented with 5 mg / L, or 49 mg / L, or 80 mg / L Proline, and 10 mg / L, or 40 mg / l, or 60 mg / l of glycine.
  • the control accumulation medium contains 98% of the nutrient medium Needle MEM and 2% Fetalclone II.
  • serum-free culture medium in the composition of the storage medium with the addition of from 49 mg / l to 80 mg / l of proline and from 40 mg / l to 60 mg / l of glycine significantly increases the production of rhEPO in an EPO-containing liquid.
  • Example 2 The initial component compositions 1-5 of the drug before nanocapsulation, mass. %
  • erythropoietin 5000 IU / ml the rest up to 100%.
  • Example 3 Obtaining a nanocapsulated form of EPO based on sodium alginate in vials (composition 1).
  • Sterile EPO-containing liquid is obtained as in example 1.
  • sterile EPO-containing liquid with an EPO concentration of 1000 IU / ml, sterile aqueous solutions are added with continuous stirring: 10% urea to a final concentration of 0.1% (by weight), 2% sodium alginate to a final concentration of 0.001% (by weight), 50% sucrose to 2.5% (by weight) and 25% gelatose to 2.5% (by weight).
  • the resulting mixture is poured into 0.5-2 ml vials and frozen at minus (50-60) ° C for 18 hours.
  • Nanocapsules are obtained by coacervation of a charged polyelectrolyte and hardener to form a complex by freezing the solution at a rate of (0.1-3.0) ° C per minute to a temperature below the glass transition temperature of the amorphous phase remaining after ice crystallization.
  • the coacervation of a water-soluble polymer capable of dissociating into ions at a pH close to physiological ensures the safety of rhEPO in the process of obtaining nanocapsules.
  • Coacervation is due to a decrease in the solubility of the polymer when lowering the temperature and primary crystallization of ice, as a result of which the concentration of the polymer in the mother liquor (the liquid phase remaining after the primary crystallization of ice) increases.
  • the resulting coacervate, together with the equilibrium liquid is subjected to further freezing and freeze drying.
  • Concentration (lower solubility) of the polymer is carried out due to primary crystallization of ice, which does not cause inactivation of the protein preparation or its substantial dilution (not more than 1-50%).
  • the whole process of nanocapsulation consists in mixing polymer solutions with an EPO-containing liquid (hormone-containing liquid stabilized by partially hydrolyzed gelatin - gelatose and sucrose), freezing the resulting solution at a certain rate and lyophilization.
  • EPO-containing liquid hormone-containing liquid stabilized by partially hydrolyzed gelatin - gelatose and sucrose
  • Urea contributes to the disaggregation of EPO during the formation of microcapsules, as a result of which nanocapsules are formed by a more uniform and more uniform amount of EPO in them.
  • the irreversibility of the coacervation process is due to the interaction between the positive and negative charges of various molecules of the reaction mixture and, possibly, the increased effect between them that occurs during ice crystallization.
  • the product is freeze-dried for 48 hours under sterile conditions. After drying, the vials are filled with inert gas (argon), corked with rubber caps, and sealed with caps. EPO in dry form during storage during the year at a temperature of (2-8) ° C does not lose its activity.
  • Example 4 Obtaining a nanocapsulated form of EPO based on chitosan in tablets (composition 2).
  • Sterile EPO-containing liquid is prepared as in Example 1.
  • sterile EPO-containing liquid with an EPO concentration of 3000 IU / ml, sterile aqueous solutions of 50% sucrose up to 3% (by weight), 25% gelatose are added with continuous stirring. up to 3% (by mass), 10% urea up to 0.5% (by mass) and a 2% hit of ozan to a final concentration of 0.01% (by mass).
  • the resulting rhEPO substance is poured into enameled trays and frozen at minus (50-60) ° C for 18 hours. The process of formation of nanocapsules is described in example 3.
  • the product is freeze-dried for 48 hours under sterile conditions. Dry prefabricated EPO is mixed with lactose (up to 25-37% by weight), calcium stearate is added up to 2%, biconvex tablets are pressed from the resulting mass.
  • lactose up to 25-37% by weight
  • calcium stearate is added up to 2%
  • biconvex tablets are pressed from the resulting mass.
  • the obtained form of EPO has specific activity; when stored for a year at a temperature of (2-8) ° C it does not lose its activity.
  • Example 5 Obtaining a nanocapsulated form of EPO based on pectin in vials (composition 3)
  • Sterile EPO-containing liquid is obtained as in example 1.
  • sterile EPO-containing liquid with an EPO concentration of 5000 IU / ml, sterile aqueous solutions of 50% sucrose up to 3.5% (by weight), 25% are added with continuous stirring. gelatose up to 3.5% (by weight), 10% urea up to 1% (by weight) and 2% pectin to a final concentration of 0.1%.
  • the resulting substance rhEPO poured into vials of 0.5-2 ml and frozen at a temperature of minus (50-60) ° C for 18 hours.
  • the process of formation of nanocapsules is described in example 3.
  • the product is freeze-dried for 48 hours under sterile conditions. After drying, the vials are filled with inert gas (argon), sealed with rubber caps, rolled caps. EPO in dry form during storage during the year at a temperature of (2-8) ° C does not lose its activity.
  • Example 6 Obtaining a nanocapsulated form of EPO based on collidone in gelatin capsules (composition 4).
  • a sterile EPO-containing liquid is prepared as in Example 1.
  • sterile EPO-containing liquid with an EPO concentration of 8000 IU / ml, sterile aqueous solutions of 50% sucrose up to 5% (by weight), 25% gelatose are added to continuously 4.5% (by weight), 10% urea up to 2% (by weight) and 2% collidone to a final concentration of 1.0% (by weight).
  • the resulting rhEPO substance is poured into enameled trays and frozen at minus (50-60) ° C for 18 hours.
  • the process of formation of nanocapsules is described in example 3.
  • the product is freeze-dried for 48 hours under sterile conditions. Dry prefabricated EPO is Packed in gelatin capsules at a dose of 1,000-10,000 ME.
  • the obtained form of EPO has specific activity; when stored for a year at a temperature of (2-8) ° C it does not lose its activity.
  • Example 7 Obtaining a nanocapsulated form of EPO based on a carbopol copolymer in tablets (composition 5).
  • Sterile EPO-containing liquid is obtained as in Example 1.
  • sterile EPO-containing liquid with an EPO concentration of 10,000 IU / ml, sterile aqueous solutions of 50% sucrose up to 6% (by weight), 25% are added with continuous stirring. gelatoses up to 5.5% (by mass), 10% urea up to 3% (by mass) and 0.3% aqueous carbopol solution to a final concentration of 0.005% (by mass).
  • the resulting substance rhEPO poured into enameled pallets and frozen at a temperature of minus (50-60) ° C for 18 hours.
  • the process of formation of nanocapsules is described in example 3.
  • the product is freeze-dried for 48 hours under sterile conditions.
  • Dry prefabricated EPO is mixed with lactose (up to 25-37% by weight), calcium stearate is added up to 2%, biconvex tablets are pressed from the resulting mass.
  • the obtained form of EPO has specific activity; when stored for a year at a temperature of (2-8) ° C it does not lose its activity.
  • Example 8 Determination of the specific activity of the nanocapsulated form of RF EPO in vitro.
  • the specific activity of RF EPO in nanocapsulated preparations is determined by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA).
  • ELISA enzyme-linked immunosorbent assay
  • the ELISA method is based on a solid-phase (heterogeneous) variant of immunoassay, based on the principle of "sandwich”.
  • MKAT monoclonal antibodies immobilized on their surface
  • the carrier antibodies are added to the existing MKAT-EPO complexes labeled with horseradish peroxidase.
  • the resulting immobilized MKAT-EPO conjugate immune complexes are detected by the color reaction of the enzyme with a solution of hydrogen peroxide and tetramethylbenzidine. The reaction is stopped after 30 minutes by adding a solution of sulfuric acid.
  • the analysis results are recorded using a spectrophotometer, measuring the optical density in the wells in a two-wave mode: the main filter is 450 nm, the reference filter is 620 nm.
  • the color intensity is proportional to the concentration of EPO in the analyzed sample.
  • a calibration graph is constructed of the dependence of the optical density on the concentration of EPO in the calibration samples.
  • the EPO content in the analyzed samples is determined by the calibration graph.
  • the activity of rhEPO in the samples is 1 000-10 000 ME, counting on one dose of the drug without loss of activity (formulations 1-5).
  • Example 9 Determination of the stability of the nano-encapsulated form of RF EPO in vitro.
  • a study of the stability of nanocapsulated rhEPO preparations in the gastrointestinal tract is carried out in accordance with the recommendations of the State Pharmacopoeia of the XIth edition [GF XI, v.2, M., Medicine, 1989, p. 154-160].
  • EPO content in the preparations before and after simulating the conditions of the gastrointestinal tract is carried out by ELISA (see example N ° 7). Losses during the passage of acidic and alkaline media are 1.2-25.5%, depending on the polymer used to form the capsules and its concentration. EPO preparations containing sodium alginate, carbopol 934 and AU202 pectin are the most stable.
  • Example 10 The study of the specific activity of the nanocapsulated form of RF EPO in vivo
  • mice of the ICR population The specific activity of the nanocapsulated form of EPO is tested on white mice of the ICR population by changing the content of reticulocytes, red blood cell precursors, in peripheral blood.
  • Female mice are divided into groups of 6 animals and one of the preparations is orally administered at a dose of 40 IU / mouse per day for 4 days (total dose per mouse is 160 ME), blood is taken for study on day 5.
  • a negative control a group of mice treated with saline is used, as a positive control, mice that received an unencapsulated EPO preparation.
  • Blood samples are taken from the orbital vein and smears are made on a glass slide, after which they are stained using the Pappenheim-Kryukov method.
  • ⁇ Counting the number of reticulocytes is carried out under a microscope using an immersion lens. The number of reticulocytes is indicated as a percentage in relation to the total number of red blood cells. To calculate this percentage in a blood smear, 1000 red blood cells are counted in a row, noting the number of reticulocytes among them, and the found number was divided by 10.
  • Example 11 The study of nanocapsulated preparations of RF
  • nanocapsulated rhEPO preparations is examined using atomic force microscopy.
  • a drop of the resulting solution is applied to a clean fresh cleaved mica with an area of approximately 25 mm, dried at room temperature, and then the surface is removed using a Solver P47 Bio atomic force microscope in a semi-contact mode.
  • rhEPO preparations both at pH 2 and at pH 5 no large particles are observed.
  • the average size of the detected structures is 10-15 nm, which is comparable with the size of the EPO molecule.
  • the average particle size of the preparation in an acidic medium (pH 2) is 20–25 nm. The size distribution was uneven; some particles reached 70 nm. With a decrease in the acidity of the medium (pH 5), the preparation forms fractal patterns resembling a fern leaf on a substrate.
  • the average capsule size is 40-50 nm, larger formations reach 70-80 nm.
  • rhEPO preparations with Kollidon 90F (0.05%), large round particles of about 100 nm in size are formed, lining up in chains and forming fractal patterns.
  • rhEPO preparations with sodium alginate (0.005%) forms uniform oval capsules with an average particle size in an acidic environment (pH 2, pH 5) of 15-20 nm.
  • Example 12 Determination of the stability of the nanocapsulated form of RF EPO by the method of storage
  • nanocapsulated rhEPO preparations The stability of nanocapsulated rhEPO preparations is determined by ELISA (see example N2 7) before and after 1 year of storage at a temperature of (2-8) ° C.
  • the change in rhEPO content in polymer capsules after storage varies from 0.06% to 10.34%, depending on the polymer. Since an activity drop of up to 10% is allowed for immunobiological preparations, it can be argued that nanocapsulated EPO preparations are stable for 1 year of storage at a temperature of plus (2-8) ° C.
  • the claimed technical result is achieved in the present invention: simplification of the technology for the production of EPO substance free of extraneous protein impurities and suitable for nanocapsulation, as well as simplification of the technology for producing a nanocapsulated form with a particle size of 15 to 500 nm.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Nanotechnology (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области медицины. Способ получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека (ЭПО) включает культивирование в роллерных флаконах штамма клеток яичника китайского хомячка, трансформированного предварительным введением плазмиды, содержащей ген эритропоэтина человека, последовательно в ростовой и в накопительной питательных средах с последующим выделением целевого продукта последовательно методами микрофильтрации и хроматографии. Ростовая питательная среда содержит, масс.%: сыворотку крови крупного рогатого скота 5,0; питательная среду Игла MEM - остальное до 100%. Накопительная бессывороточная питательная среда содержит в 1 л: пролин, мг/л - 49-80; глицин, мг/л - 40-60 и смесь равных долей сред DMEM и F-12 до 1 литра. Нанокапсулированная форма ЭПО включает следующие компоненты, масс.%: сахароза 2,5- 6,0, желатоза 2,5-5,5, мочевина 0,1-3,0, альгинат натрия или хитозан или пектин или коллидон или карбопол 0,001-1,0 и жидкая субстанция ЭПО с концентрацией эритропоэтина 1 000-10 000 МЕ/мл - остальное до 100%.

Description

Способ получения субстанции реко бинантного эритропоэтина человека и нанокапсулированная форма рекомбинантного эритропоэтина человека с использованием субстанции, полученной указанным способом
Область техники
Изобретение относится к технологии получения субстанции рекомбинантного человеческого эритропоэтина и нанокапсулированной его формы и может быть использовано в медицине и биотехнологии,
Эритропоэтин (ЭПО) - гормон, продуцируемый интерстициальными клетками почек и регулирующий эритропоэз у млекопитающих. ЭПО применяется при лечении анемий, возникаюших вследствие трансплантации органов и тканей, терапии ВИЧ-инфекции, в пред- и послеоперационном периоде, а также анемий, возникающих при беременности, системных заболеваниях (ревматоидный артрит) и хронической почечной недостаточности (диализные и преддиализные пациенты). Особое место рекомбинантный человеческий ЭПО (рчЭПО) занимает в профилактике и лечении анемий, возникающих в результате интенсивной химио- и радиотерапии опухолевых заболеваний, улучшая качество жизни людей и ее продолжительность. Кроме того, ЭПО улучшает сердечную функцию и может выступать в роли кардио- и нейропротектора при инфарктах миокарда и инсультах.
Размеры нанокапсул обычно не превышают 100 нм, которые обладают высокой проникающей способностью и могут проходить даже в такие «закрытые» зоны организма, как головной мозг. Малый размер делает их невидимыми для клеток иммунной системы, что позволяет нанокапсул ам длительное время циркулировать в кровотоке. Использование нанокапсул исключает наработку аутоантител организмом, что повышает безопасность использования лекарственных препаратов.
Предшествующий уровень техники
Известен способ получения инъекционной формы рчЭПО [Патент СССР JYO 1801 1 18, МПК C12N15/26, опубл. 07.03.1993 г.]. Способ состоит в том, что осуществляют получение геномного ДНК клона эритропоэтина человека гибридацией с зондами и его выделение, конструирование рекомбинантных плазмидных ДНК, кодирующих ЭПО человека, с последующей трансформацией полученными ДНК штаммов клеток млекопитающих (например, cos I), выделением и очисткой целевого продукта. Терапевтический эффект рчЭПО для парентерального применения широко известен и описан во многих работах.
Однако, известно побочное действие этого препарата, приводящее к различным осложнениям [Синюхин В.Н. и др. Фармакокинетика рекомбинантного человеческого эритропоэтина. Терапевтический архив, 1994, т. 66, JV° 8, с. 60-62].
Известен способ получения липосомальной формы ЭПО [Патент РФ J 22218914, МПК А61 9/127, опубл. 20.12.2003] путем разбрызгивания под давлением липидной фазы в спиртовом растворителе в водный буферный раствор, находящийся в высокоскоростном гомогенизаторе. Липидная фаза содержит заряженное липидное соединение и холестерин.
Недостатками этого способа является сложность технологии получения частиц и использование органических растворителей, способных инактивировать ЭПО. Кроме того, указанная липосомальная форма препарата предназначена только для инъекционного применения.
Известен способ получения таблетированной формы рчЭПО для перорального применения [Патент РФ Ν° 2152206, МПК А61К 9/20, опубл. 10.07.2000 г.]. Указанную форму получают путем смешивания ЭПО со стабилизирующими добавками и лиофилизации, лиофильно высушенный ЭПО смешивают с лактозой, стеаратом кальция и ванилином и прессуют в таблетки, которые затем покрывают кислотоустойчивой оболочкой.
Недостатком способа является использование в процессе получения кислотоустойчивой оболочки пожароопасного вещества ацетона, падение активности рчЭПО в процессе нанесения кислотоустойчивой оболочки, а также возможность разрушения оболочки в процессе хранения и, как следствие, падение активности рчЭПО.
Известен способ получения рчЭПО на основе штамма продуцента
СНОрЕ [Патент РФ М> 2070931, МПК C12N 15/12, опубл. 27.12.1996 г.]. Штамм СНОрЕ обеспечивает синтез и секрецию в культуральную жидкость рчЭПО с выходом до 4 мг/л при стационарном культивировании на смеси питательных сред Игла MEM (45 %) и 199 (45 %) с добавлением 10 % сыворотки крупного рогатого скота.
Недостатком этого способа является использование сыворотки крупного рогатого скота в составе среды культивирования. В процессе получения рчЭПО, собранную ЭПО-содержащую жидкость, необходимо очищать от балластных белков, что значительно усложняет процесс и влияет на конечную цену. Кроме того, сыворотка крупного рогатого скота - дорогостоящий компонент. Еще одним недостатком сыворотки является ее качественная изменчивость от партии к партии, возможность контаминации вирусами, прионами, микоплазмами, что также влияет на качество и количество целевого продукта.
Наиболее близким способом получения субстанции рекомбинантного человеческого эритропоэтина является способ получения рчЭПО [ Патент РФ JTs 2125093, МПК С12Р21/02, опубл. 20.01.2012 г. ], включающий получение субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека путем культивированитя штамма клеток СНО- ЭПО-SPM в ростовой питательной среде, содержащей в 1 л смесь равных долей сред RPMI-1640 и DMEM, 200 мг глутамина, 0,04 мг гентамицина и 80-120 мл сыворотки крови плодов коровы, а затем в накопительной среде содержащей в 1 л глутамина 200 мг, Hepes 3,75 г, 10 мл Fetalclone II и смесь равных долей сред RPMI-1640 и DMEM с последующим выделением целевого продукта последовательно методами микрофильтрации и хроматографии.
Недостатком данного способа является использование в составе ростовой питательной среды дорогостоящей сыворотки крови плодов коровы, а также использование в составе накопительной питательной среды Fetalclone II. Fetalclone II создан на основе сыворотки крупного рогатого скота путём удаления из неё иммуноглобулинов и других нежелательных компонентов, а так же добавления химически очищенных витаминов, аминокислот микроэлементов и других низкомолекулярных факторов. Стоимость Fetalclone II превышает стоимость сыворотки в 1,5 - 2 раза и к тому же при получении целевого продукта собранную ЭПО-содержащую жидкость необходимо очищать от посторонних белков, что значительно усложняет получение целевого продукта и влияет на конечную цену. Кроме того, при недостаточной очистке субстанции ЭПО от посторонних белков и использовании ее для нанокапсулирования, часть нанокапсул будет содержать в ядре только посторонние молекулы белков, которые не будут обладать активностью эритропоэтина.
Наиболее близким аналогом нанокасулированной формы эритропоэтина является микрокапсулированная (в виде микросфер) форма эритропоэтина (патент Китая N?. CN102233129, МПК А61К9/16, опубл. 09.1 1.201 1 г.), включающая эритропоэтин, как активный компонент, декстран - защитный (стабилизирующий) агент для активного компонента, и производная полигликолиевой или молочной кислоты или поликапролактон, являющийся материалом оболочки микрокапсул (компонент покрытия). В экспериментах на животных показана пролонгированность действия эритропоэтина.
Однако заявленная микрокапсулированная форма эритропоэтина имеет сложную технологию получения микрокапсул. Кроме того, размер частиц микрокапсул составляет 5-10 микрон, а технология получения микрокапсул и компонентный состав препарата не позволяют изготавливать указанные микрокапсулы меньшего размера, что может вызвать наработку антител к эритропоэтину организмом и приведёт к усилению анемии.
Нанокапсулы обладают высокой проникающей способностью и могут проходить даже в такие «закрытые» зоны организма, как головной мозг. Малый размер делает их невидимыми для клеток иммунной системы, что позволяет нанокапсулам длительное время циркулировать в кровотоке.
Раскрытие изобретения
Техническим результатом предлагаемого изобретения является упрощение технологии получения субстанции ЭПО, свободной от посторонних белковых примесей и пригодной для нанокапсулирования, б а также упрощение технологии и возможность получения нанокапсулированной формы ЭПО с размером частиц от 15 до 500 нм.
Указанный технический результат достигается тем, что в способе получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека, включающем культивирование в роллерных флаконах штамма клеток яичника китайского хомячка, трансформированного предварительным введением плазмиды, содержащей ген человеческого эритропоэтина, последовательно в ростовой и в накопительной питательных средах с последующим выделением целевого продукта последовательно методами микрофильтрации и хроматографии, согласно изобретения, в качестве ростовой питательной среды используют ростовую среду, содержащую, масс.%:
сыворотка крови крупного рогатого скота 5,0
питательная среда Игла MEM остальное до 100%,
а в качестве накопительной питательной среды используют бессывороточную среду, содержащую следующие ингредиенты в 1 л: пролин, мг/л 49-80 глицин, мг/л 40-60 смесь равных долей сред DMEM и F-12 до 1 литра, а целевой продукт - субстанция рекомбинантного эритропоэтина человека имеет активность от 1000 до 10 000 МЕ/мл.
В качестве культивируемого штамма используют рекомбинантный штамм клеток яичника китайского хомяка N° ВСКК (П) N 626Д.
Полные прописи питательных сред Игла MEM, DMEM, RPMI- 1640, и F-12: приведены в книге: «Методы культивирования клеток: Сборник научных трудов. - Л.: Наука, 1988. - 313 с.»..
Указанный технический результат достигается также нанокапсулированной формой рекомбинантного эритропоэтина человека, включающей полиэлектролит в качестве которого выбран альгинат натрия, или хитозан, или пектин, или коллидон, или карбопол, стабилизатор - сахароза, отвердитель - желатоза, жидкую субстанцию рекомбинантного эритропоэтина человека (ЭПО) и мочевину при следующем исходном составе компонентов до нанокапсулирования, масс.%: сахароза 2,5-6,0; желатоза 2,5-5,5; мочевина 0,1-3,0; альгинат натрия или хитозан, или пектин, или коллидон, или карбопол 0,001-1,0 и жидкая субстанция ЭПО с концентрацией эритропоэтина 1 000-10 000 МЕ/мл, полученная по п.1 формулы изобретения - остальное до 100 %.
Следует отметить, что все соотношения между исходными компонентами полимеров выбраны, исходя из оптимального выхода коацервата с размером частиц в диапазоне 15-500 нм.
Мочевина в концентрации 0, 1-3,0 масс. % способствует дезагрегации ЭПО в процессе образования нанокапсул вследствие чего нанокапсулы формируются более однородными и с более равномерным количеством молекул рчЭПО в них.
Ниже приведена характеристика полимеров (полиэлектролитов), используемых для получения нанокапсулированной формы эритропоэтина:
- альгинат натрия фармакопейного качества производства фирмы Pronova Biomedical (Норвегия),
- карбопол 934 (карбомер) - высокомолекулярный полимер акриловой кислоты, поперечно сшитый полиалкильными эфирами Сахаров и полиспиртов, является слабой кислотой, выпускается фирмой Sigma (США), - оллидон 90F (повидон, поливинилпирролидон) - растворимый поливинилпирролидон, образует комплексные химические соединения с фармацевтическими субстанциям, выпускается фирмой BASF AG,
- пектин AU 701, AU 202 фирмы Sigma (США) - очищенный полисахарид, образованный остатками галактуроновой кислоты, получаемый экстракцией цитрусового, свекловичного или яблочного жома,
- хитозан (PROTASAN) фармакопейного качества производства фирмы Pronova Biomedical (Норвегия),
Создание нанокапсулированной формы рчЭПО для перорального применения позволяет исключить возможность заражения пациентов вирусами гепатитов, ВИЧ и др. инфекций, что возможно при парентеральном способе введения. Специально подобранный состав стабилизаторов, полимеров и наполнителей позволяет исключить побочные эффекты, вызываемые добавками и исключить наработку аутоантител в макроорганизме.
Предложенные способ получения субстанции рчЭПО и нанокапсулированная форма ркомбинантного эритропоэтина человека не известны из опубликованных источников информации, что позволяет сделать вывод о соответствии критериям «новизна» и «изобретательский уровень».
Вариант осуществления изобретения
Ниже приведены примеры конкретного выполнения способа получения нанокапсулированной формы рчЭПО:
Пример 1. Способ получения жидкой субстанции рчЭПО
Клетки СНОрЕ — продуцент ЭПО культивируют в ростовой питательной среде, состоящей из 95 % питательной среды Игла MEM и 5 % сыворотки крови крупного рогатого скота. Клетки высевают в роллерные бутыли, которые помещают в роллерную установку и вращают со скоростью 1,5 об/мин. Посевная концентрация составляет (1,5-2,0)х 106 клеток в 1 мл, кратность рассева 1 :3-1 :4, частота пассирования— 3-4 суток. Для пересева культур клеток в качестве диспергента применяют 0,25 %-ный раствор трипсина и 0,02 %-ный раствор версена в соотношении 1 :2. Культуры клеток инкубируют при температуре 37 °С в течение 2-х суток до получения клеточного монослоя. После образования монослоя его освобождают от балластных белков, отмывая раствором Хенкса, и заливают накопительной средой. В качестве накопительной среды используют бессывороточную среду, содержащую в своем составе 50 % питательной среды DMEM, 50 % питательной среды F-12 и аминокислоты пролин и глицин. Каждые 2-3 суток проводят сбор ЭПО- содержащей жидкости и замену на свежую порцию накопительной среды, цикл накопления повторяют 5-6 раз. ЭПО-содержащую жидкость сливают, полученные сливы объединяют и хранят при температуре 4 °С. Затем ЭПО-содержащую жидкость очищают, фильтруя через ацетат-целлюлозные мембраны с размерами пор 0,45 и 0,22 мкм, концентрируют, используя метод ультрафильтрации, определяют специфическую активность ЭПО в полученном концентрате методом ИФА.
В таблице 1 представлены данные специфической активности рчЭПО в ЭПО-содержащей жидкости на различных накопительных средах, полученные методом ИФА. В качестве опытной накопительной среды использована бессывороточная среда, состоящая из 50 % питательной среды DMEM, 50 % питательной среды F-12 с добавлением 5 мг/л, или 49 мг/л, или 80 мг/л пролина и 10 мг/л, или 40 мг/л, или 60 мг/л глицина. Контрольная накопительная среда содержит в своем составе 98 % питательной среды Игла MEM и 2 % Fetalclone II. Таким образом, в предложенном способе получения субстанции рчЭПО экспериментально установлена возможность использования в ростовой питательной среде сыворотка крови крупного рогатого скота в количестве 5,0 масс.%, что позволяет снизить количество балластных белков за счет чего упрощается процесс удаления последних.
Кроме того, использование бессывороточной питательной среды в составе накопительной среды с добавлением от 49 мг/л до 80 мг/л пролина и от 40 мг/л до 60 мг/л глицина, значительно увеличивает продукцию рчЭПО в ЭПО-содержащей жидкости.
Таблица 1.
Специфическая активность рчЭПО в ЭПО-содержащей жидкости на различных накопительных средах
Figure imgf000012_0001
Отсутствие сыворотки и ее компонентов при получении рчЭПО значительно упрощает процесс очистки препарата и делает технологию более экономичной. Пример 2. Исходные компонентные составы 1-5 препарата до нанокапсулирования, масс. %.
Состав 1.
Сахароза 2,5
Желатоза 2,5
мочевина 0, 1
альгинат натрия 0,001
жидкая субстанция ЭПО с концентрацией
эритропоэтина 1 000 МЕ/мл остальное до 100 %.
Состав 2.
Сахароза 3,0
Желатоза 3,0
мочевина 0,5
хитозан 0,01
жидкая субстанция ЭПО с концентрацией
эритропоэтина 3 000 МЕ/мл остальное до 100 %.
Состав 3.
сахароза 3,5
желатоза 3,5
мочевина 1,0
пектин 0, 1
жидкая субстанция ЭПО с концентрацией
эритропоэтина 5 000 МЕ/мл остальное до 100 %.
Состав 4.
сахароза 5,0
желатоза 4,5
мочевина 2,0
коллидон 1 ,0 жидкая субстанция ЭПО с концентрацией
эритропоэтина 8000 МЕ/мл остальное до 100
Состав 5.
Сахароза 6,0
Желатоза 5,5
Мочевина 3,0
Карбопол 0,005
жидкая субстанция ЭПО с концентрацией
эритропоэтина 10 000 МЕ/мл остальное до 100
Пример 3. Получение нанокапсулированной формы ЭПО на основе альгината натрия во флаконах (состав 1).
Стерильную ЭПО-содержащую жидкость получают как в примере 1. К стерильной ЭПО-содержащей жидкости с концентрацией ЭПО 1 000 МЕ/мл при непрерывном перемешивании добавляют стерильные водные растворы: 10 %-ной мочевины до конечной концентрации 0,1 % (по массе), 2 %-ного альгината натрия до конечной концентрации 0,001 % (по массе), 50 %-ной сахарозы до 2,5 % (по массе) и 25 %-ной желатозы до 2,5 % (по массе). Полученную смесь разливают во флаконы по 0,5-2 мл и замораживают при температуре минус (50-60) °С в течение 18 часов. Нанокапсулы получают в результате коацервации заряженного полиэлектролита и отвердителя с образованием комплекса путем замораживания раствора со скоростью (0,1-3,0) °С в минуту до температуры, ниже температуры стеклования аморфной фазы, оставшейся после кристаллизации льда.
При коацервации водорастворимого полимера, способного диссоциировать на ионы при рН, близких к физиологической, обеспечивается сохранность рчЭПО в процессе получения нанокапсул. Коацервация обусловлена понижением растворимости полимера при понижении температуры и первичной кристаллизации льда, вследствие чего концентрация полимера в маточном растворе (жидкой фазе, оставшейся после первичной кристаллизации льда) увеличивается. Полученный коацерват вместе с равновесной жидкостью подвергается дальнейшему замораживанию и лиофильному высушиванию. Концентрирование (понижение растворимости) полимера проводится за счет первичной кристаллизации льда, что не вызывает инактивации белкового препарата или его существенного разбавления (не более 1-50 %). Весь процесс нанокапсулирования заключается в сведении растворов полимеров с ЭПО-содержащей жидкостью (гормон- содержащая жидкость, стабилизированная частично гидролизованным желатином - желатозой и сахарозой), замораживании полученного раствора с определенной скоростью и лиофилизации. Мочевина способствует дезагрегации ЭПО в процессе образования микрокапсул вследствие чего нанокапсулы формируются более однородными и более равномерном количеством ЭПО в них. Необратимость процесса коацервации обусловлена взаимодействием между положительными и отрицательными зарядами различных молекул реакционной смеси и, возможно, усилением воздействия между ними, происходящем при кристаллизации льда. Продукт лиофильно высушивают в течение 48 часов в стерильных условиях. После окончания сушки флаконы заполняют инертным газом (аргоном), укупоривают резиновыми крышками, завальцовывают колпачками. ЭПО в сухом виде при хранении в течение года при температуре (2-8) °С не теряет свою активность.
Пример 4. Получение нанокапсулированной формы ЭПО на основе хитозана в таблетках (состав 2). Стерильную ЭПО-содержащую жидкость жидкость получают как в примере 1. К стерильной ЭПО-содержащей жидкости с концентрацией ЭПО 3000 МЕ/мл при непрерывном перемешивании добавляют стерильные водные растворы 50 %-ной сахарозы до 3 % (по массе), 25 %-ной желатозы до 3 % (по массе), 10 % мочевины до 0,5 % (по массе) и 2%-ного хит озана до конечной концентрации 0,01 % (по массе). Полученную субстанцию рчЭПО разливают в эмалированные поддоны и замораживают при температуре минус (50-60) °С в течение 18 часов. Процесс образования нанокапсул описан в примере 3. Продукт лиофильно высушивают в течение 48 часов в стерильных условиях. Сухой полуфабрикат ЭПО смешивают с лактозой (до 25-37 % по массе), добавляют стеарат кальция до 2 %, из полученной массы прессуют таблетки двояковыпуклой формы. Полученная форма ЭПО обладает специфической активностью, при хранении в течение года при температуре (2-8) °С не теряет свою активность.
Пример 5. Получение нанокапсулированной формы ЭПО на основе пектина во флаконах (состав 3)
Стерильную ЭПО-содержащую жидкость получают как в примере 1. К стерильной ЭПО-содержащей жидкости с концентрацией ЭПО 5000 МЕ/мл при непрерывном перемешивании добавляют стерильные водные растворы 50 %-ной сахарозы до 3,5 % (по массе), 25 %-ной желатозы до 3,5 % (по массе), 10 % мочевины до 1 % (по массе) и 2 %- ного пектина до конечной концентрации 0, 1 %. Полученную субстанцию рчЭПО разливают во флаконы по 0,5-2 мл и замораживают при температуре минус (50-60) °С в течение 18 часов. Процесс образования нанокапсул описан в примере 3. Продукт лиофильно высушивают в течение 48 часов в стерильных условиях. После окончания сушки флаконы заполняют инертным газом (аргоном), укупоривают резиновыми крышками, завальцовывают колпачками. ЭПО в сухом виде при хранении в течение года при температуре (2-8) °С не теряет свою активность.
Пример 6. Получение нанокапсулированной формы ЭПО на основе коллидона в желатиновых капсулах (состав 4).
Стерильную ЭПО-содержащую жидкость получают как в примере 1. К стерильной ЭПО-содержащей жидкости с концентрацией ЭПО 8000 МЕ/мл при непрерывном перемешивании добавляют стерильные водные растворы 50 %-ной сахарозы до 5 % (по массе), 25 %-ной желатозы до 4,5 % (по массе), 10 % мочевины до 2 % (по массе) и 2%- ного коллидона до конечной концентрации 1 ,0 % (по массе). Полученную субстанцию рчЭПО разливают в эмалированные поддоны и замораживают при температуре минус (50-60) °С в течение 18 часов. Процесс образования нанокапсул описан в примере 3. Продукт лиофильно высушивают в течение 48 часов в стерильных условиях. Сухой полуфабрикат ЭПО фасуют в желатиновые капсулы в дозе 1 000-10 000 ME. Полученная форма ЭПО обладает специфической активностью, при хранении в течение года при температуре (2-8) °С не теряет свою активность.
Пример 7. Получение нанокапсулированной формы ЭПО на основе сополимера карбопола в таблетках (состав 5).
Стерильную ЭПО-содержащую жидкость жидкость получают как в примере 1. К стерильной ЭПО-содержащей жидкости с концентрацией ЭПО 10 000 МЕ/мл при непрерывном перемешивании добавляют стерильные водные растворы 50 %-ной сахарозы до 6 % (по массе), 25 %-ной желатозы до 5,5% (по массе), 10 % мочевины до 3 % (по массе) и 0,3 %-ный водный раствор карбопола до конечной концентрации 0,005% (по массе). Полученную субстанцию рчЭПО разливают в эмалированные поддоны и замораживают при температуре минус (50- 60) °С в течение 18 часов. Процесс образования нанокапсул описан в примере 3. Продукт лиофильно высушивают в течение 48 часов в стерильных условиях. Сухой полуфабрикат ЭПО смешивают с лактозой (до 25-37 % по массе), добавляют стеарат кальция до 2 %, из полученной массы прессуют таблетки двояковыпуклой формы. Полученная форма ЭПО обладает специфической активностью, при хранении в течение года при температуре (2-8) °С не теряет свою активность.
Пример 8. Определение специфической активности нанокапсулированной формы рч ЭПО in vitro. Специфическую активность рч ЭПО в нанокапсулированных препаратах определяют методом иммуноферментного анализа (ИФА). В основе метода ИФА лежит твердофазный (гетерогенный) вариант иммуноанализа, основанный на принципе «сэндвича». В качестве твердой фазы используют полистироловые 96-луночные стрипированные планшеты с иммобилизованными на их поверхности моноклональными антителами (МКАТ) к ЭПО. Анализ проводят в две стадии. На первой стадии калибровочные образцы с известной концентрацией, стандартный образец рч ЭПО (соЭПО) и исследуемые образцы рчЭПО, восстановленные в фосфатно-солевом буфере, наносят на планшет. Планшет помещают в термошейкер и инкубируют в течение 1 часа при температуре 37 °С и 700 об/мин. В ходе инкубации иммуносорбента с анализируемыми образцами происходит образование иммунных комплексов «МКАТ-ЭПО». На второй стадии, после удаления несвязавшегося материала, следует инкубация полученных комплексов с мечеными пероксидазой хрена МКАТ к ЭПО (конъюгатом) в течение 1 часа при 37 °С и 700 об/мин. В результате на поверхности носителя происходит присоединение к имеющимся комплексам «МКАТ-ЭПО» антител, меченых пероксидазой хрена. После удаления избытка конъюгата образовавшиеся иммунные комплексы «иммобилизованные МКАТ-ЭПО-конъюгат» выявляют цветной реакцией фермента с раствором перекиси водорода и тетраметилбензидина. Реакцию останавливают через 30 минут добавлением раствора серной кислоты. Результаты анализа регистрируют с помощью спектрофотометра, измеряя оптическую плотность в лунках в двухволновом режиме: основной фильтр - 450 нм, референс-фильтр - 620 нм. Интенсивность окраски пропорциональна концентрации ЭПО в анализируемом образце. По результатам измерения строят калибровочный график зависимости оптической плотности от концентрации ЭПО в калибровочных образцах. Содержание ЭПО в анализируемых пробах определяют по калибровочному графику. Активность рчЭПО в образцах составляет 1 000- 10 000 ME, считая на одну дозу препарата без потери активности (составы 1-5).
Пример 9. Определение стабильности нано апсулированной формы рч ЭПО in vitro. Исследование стабильности нанокапсулированных препаратов рчЭПО в условиях желудочно- кишечного тракта проводят в соответствии с рекомендациями Государственной фармакопеи XI издания [ГФ XI, т.2, М., Медицина, 1989, с. 154-160]. Эксперимент состоит из двух этапов. На первом этапе для создания условий прохождения капсулами кислой среды желудка препараты ЭПО выдерживают 1 час в 0, 1 N соляной кислоте (рН=2). После чего, имитируя среду кишечника, рН раствора доводят 0,1 N гидроксидом натрия до 7,5-8,0 и выдерживают в течение 30 минут. Определение содержания ЭПО в препаратах до и после имитации условий желудочно-кишечного тракта проводят методом ИФА (см. пример N° 7). Потери при прохождении кислой и щелочной среды составляют 1,2-25,5 % в зависимости от полимера, использованного для образования капсул, и его концентрации. Наибольшей устойчивостью обладают препараты ЭПО, содержащие в своем составе альгинат натрия, карбопол 934 и пектин AU202.
Пример 10. Изучение специфической активности нанокапсулированной формы рч ЭПО in vivo
Специфическую активность нанокапсулированной формы ЭПО проверяют на белых мышах популяции ICR по изменению содержания ретикулоцитов, предшественников эритроцитов, в периферической крови. Самок мышей разделяют на группы по 6 животных и перорально вводят один из препаратов в дозе 40 МЕ/мышь в сутки в течение 4 дней (суммарная доза на мышь— 160 ME), на 5 день забирают кровь для исследования. В качестве отрицательного контроля используют группу мышей, получавших физиологический раствор, в качестве положительного контроля— мыши, получавшие не капсулированный препарат ЭПО. Пробы крови берут из орбитальной вены и делают мазки на предметном стекле, после чего окрашивают их по методу Паппенгейма-Крюкова. · Подсчет количества ретикулоцитов осуществляют под микроскопом, используя иммерсионный объектив. Количество ретикулоцитов обозначают в процентах по отношению к общему числу эритроцитов. Для вычисления этого процента в мазке крови подсчитывают подряд 1000 эритроцитов, отмечая среди них число ретикулоцитов, и найденное количество делили на 10.
Проверка специфической активности нанокапсулированной формы рчЭПО на мышах указывает увеличение содержания ретикулоцитов (на 1000 эритроцитов) в крови животных после перорального введения препаратов: исходное - 4,56%, на 5-й день для не капсулированного препарата ЭПО - 5,34 %, а для капсулированных препаратов от 6,19 % до 8,78 %, в зависимости от полимера и его концентрации.
Пример 11. Исследование нанокапсулированных препаратов рч
ЭПО методом атомно-силовой микроскопии
Структуру нанокапсулированных препаратов рчЭПО исследуют с помощью силовой атомной микроскопии. Сухой препарат из ампулы растворяют в дистиллированной воде в соотношении 1 : 100 по массе, после чего 10 мкл этого раствора смешивают с 90 мкл дистиллированной воды (рН=5) или с 90 мкл дистиллированной воды, подкисленной НС1 (рН=2). Каплю полученного раствора наносят на чистый свежий скол слюды площадью примерно 25 мм , высушивают при комнатной температуре, после чего снимают поверхность на атомно-силовом микроскопе Solver Р47 Bio в полуконтактном режиме.
В препарате не капсулированного рчЭПО как при рН 2, так и при рН 5 не наблюдается крупных частиц. Средний размер обнаруживаемых структур равен 10-15 нм, что сравнимо с размерами молекулы ЭПО. В препаратах рчЭПО с Carbopol 934 (0,005 %) средний размер частиц препарата в кислой среде (рН 2) составляет 20- 25 нм. Распределение по размеру было неравномерным, некоторые частицы достигали 70 нм. При снижении кислотности среды (рН 5) препарат образовывает на подложке фрактальные узоры, напоминающие лист папоротника. Средний размер капсул составляет 40-50 нм, более крупные образования достигают 70-80 нм. В препаратах рчЭПО с Kollidon 90F (0,05 %) образуются крупные круглые частицы размером порядка 100 нм, выстраивающиеся в цепочки и образующие фрактальные узоры. В препаратах рчЭПО с альгинатом натрия (0,005 %) образуются равномерные овальные капсулы со средним размером частиц в кислой среде (рН 2, рН 5) 15-20 нм.
Пример 12. Определение стабильности нанокапсулированной формы рч ЭПО методом режимного хранения
Стабильность нанокапсулированных препаратов рчЭПО определяют методом ИФА (см. пример N2 7) до и после 1 года хранения при температуре (2-8) °С. Изменение содержания рчЭПО в полимерных капсулах после хранения варьирует в пределах от 0,06 % до 10,34 % в зависимости от полимера. Поскольку для иммунобиологических препаратов допускается падение активности до 10 % можно утверждать, что нанокапсулированные препараты ЭПО стабильны в течение 1 года хранения при температуре плюс (2-8) °С.
Таким образом, из выше изложенного видно, что в предлагаемом изобретении достигается заявленный технический результат: упрощение технологии получения субстанции ЭПО, свободной от посторонних белковых примесей и пригодной для нанокапсулирования, а также упрощения технологии получения нанокапсулированной формы с размером частиц от 15 до 500 нм.
Промышленная применимость. В предлагаемом изобретении, пригодном для использования в медицине, по сравнению с известными аналогами обеспечивается получение субстанции ЭПО, свободной от посторонних белковых примесей и пригодной для нанокапсулирования, а также упрощается технология и возможность получения нанокапсулированной формы ЭПО с размером частиц от 15 до 500 нм, что подтверждается выше приведенными примерами 1-12.

Claims

Формула изобретения
1. Способ получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека, включающий культивирование в роллерных флаконах штамма клеток яичника китайского хомячка, трансформированного предварительным введением плазмиды, содержащей ген человеческого эритропоэтина, последовательно в ростовой и в накопительной питательных средах с последующим выделением целевого продукта последовательно методами микрофильтрации и хроматографии, отличающийся тем, что в качестве ростовой питательной среды используют ростовую среду, содержащую, масс.%:
сыворотка крови крупного рогатого скота 5,0
питательная среда Игла MEM остальное до 100%,
а в качестве накопительной питательной среды используют бессывороточную среду, содержащую следующие ингредиенты в 1 л: пролин, мг/л 49,0-80 глицин, мг/л 40,0-60,0 смесь равных долей сред DMEM и F-12 до 1 литра, а целевой продукт - субстанция рекомбинантного эритропоэтина человека имеет активность от 1000 до 10 000 МЕ/мл.
2. Способ по п.1 , отличающийся тем, что в качестве культивируемого штамма используют рекомбинантный штамм клеток яичника китайского хомяка JV ВСК (П) N 626Д.
3. Нанокапсулированная форма рекомбинантного эритропоэтина человека, включающая полиэлектролит в качестве которого выбран альгинат натрия, или хитозан, или пектин, или коллидон, или карбопол, стабилизатор - сахарозу, отвердитель - желатозу, жидкую субстанцию рекомбинантного эритропоэтина человека (ЭПО) и мочевину при следующем исходном составе компонентов до нанокапсулирования, мае. %:
сахароза 2,5-6,0 желатоза 2,5-5,5 мочевина 0,1-3,0 альгинат натрия или хитозан,
или пектин, или коллидон, или карбопол 0,001- 1 ,0 жидкая субстанция ЭПО с концентрацией
эритропоэтина 1 000-10 000 МЕ/мл,
полученная по п.1 формулы изобретения остальное до 100 %.
PCT/RU2014/000303 2014-04-25 2014-04-25 Способ получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека и нанокапсулированная форма рекомбинантного эритропоэтина человека с использованием субстанции, полученной указанным способом WO2015163783A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/RU2014/000303 WO2015163783A1 (ru) 2014-04-25 2014-04-25 Способ получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека и нанокапсулированная форма рекомбинантного эритропоэтина человека с использованием субстанции, полученной указанным способом

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/RU2014/000303 WO2015163783A1 (ru) 2014-04-25 2014-04-25 Способ получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека и нанокапсулированная форма рекомбинантного эритропоэтина человека с использованием субстанции, полученной указанным способом

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2015163783A1 true WO2015163783A1 (ru) 2015-10-29

Family

ID=54332838

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/RU2014/000303 WO2015163783A1 (ru) 2014-04-25 2014-04-25 Способ получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека и нанокапсулированная форма рекомбинантного эритропоэтина человека с использованием субстанции, полученной указанным способом

Country Status (1)

Country Link
WO (1) WO2015163783A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2018053797A1 (zh) * 2016-09-23 2018-03-29 广东东阳光药业有限公司 一种初步处理cho细胞培养液的纯化方法

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2089611C1 (ru) * 1995-07-13 1997-09-10 Зеленин Михаил Гаврилович Штамм сно культивируемых клеток китайского хомячка - продуцент эритропоэтина человека
RU2125093C1 (ru) * 1998-02-12 1999-01-20 Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов Способ получения рекомбинантного человеческого эритропоэтина, штамм культивируемых клеток яичника китайского хомяка - продуцент эритропоэтина
RU2182830C1 (ru) * 2000-12-09 2002-05-27 Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Таблетированная форма рекомбинантного человеческого эритропоэтина
WO2011019619A1 (en) * 2009-08-11 2011-02-17 Genentech, Inc. Production of proteins in glutamine-free cell culture media
CN102233129A (zh) * 2010-04-29 2011-11-09 上海交通大学 一种预防或治疗视网膜损伤的长效缓释制剂及其制备方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2089611C1 (ru) * 1995-07-13 1997-09-10 Зеленин Михаил Гаврилович Штамм сно культивируемых клеток китайского хомячка - продуцент эритропоэтина человека
RU2125093C1 (ru) * 1998-02-12 1999-01-20 Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов Способ получения рекомбинантного человеческого эритропоэтина, штамм культивируемых клеток яичника китайского хомяка - продуцент эритропоэтина
RU2182830C1 (ru) * 2000-12-09 2002-05-27 Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Таблетированная форма рекомбинантного человеческого эритропоэтина
WO2011019619A1 (en) * 2009-08-11 2011-02-17 Genentech, Inc. Production of proteins in glutamine-free cell culture media
CN102233129A (zh) * 2010-04-29 2011-11-09 上海交通大学 一种预防或治疗视网膜损伤的长效缓释制剂及其制备方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
EFIMOV I.: "Doping dlya krovi", 14 January 2010 (2010-01-14), pages 1 - 2, XP055233536, Retrieved from the Internet <URL:http://www.sibirpro.ru/8833> *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2018053797A1 (zh) * 2016-09-23 2018-03-29 广东东阳光药业有限公司 一种初步处理cho细胞培养液的纯化方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100334856B1 (ko) 성선자극호르몬을포함하는냉동건조구
US9517247B2 (en) Encapsulated liver cell composition
CN111346070A (zh) 一种巨噬细胞囊泡包载的纳米药物制剂及其在制药中的用途
CN109294980B (zh) 红景天及红景天苷在干细胞定向分化为心肌样细胞中的应用
CN111304171B (zh) 烟碱乙酰胆碱受体靶向性的过表达circDYM的外泌体及其制备方法与应用
CN103040910B (zh) 一种鹿瓜多肽脂质体注射剂
JP2004506003A (ja) ペプチドの経口デリバリー
WO2015163783A1 (ru) Способ получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека и нанокапсулированная форма рекомбинантного эритропоэтина человека с использованием субстанции, полученной указанным способом
US6825218B1 (en) Spherical agglomerates of telithromycin, their preparation process and their use in the preparation of pharmaceutical forms
RU2518329C1 (ru) Способ получения субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека и нанокапсулированная форма рекомбинантного эритропоэтина человека с использованием субстанции, полученной указанным способом
US20180117123A1 (en) Exenatide-containing composition and preparation method thereof
CN109568601B (zh) 一种蛋白多肽类药物双重微球及其制备方法和胰岛素双重微球
CN108159401B (zh) Apelin脂质体及其制备方法
CN102724969A (zh) 第九凝血因子缓释剂型
US20210015874A1 (en) Use of bio-transformed bear bile powder in preparation of anti-inflammatory drugs
JP2603360B2 (ja) 免疫増強剤
CN107334775A (zh) 三乙酰基-3-羟基苯基腺苷在制备治疗动脉粥样硬化药物中的应用
CN114642668B (zh) 拉坦前列素的药物新用途
CN114642662B (zh) Mk-5046的药物用途
Balabushevich et al. Fabrication and properties of pH-sensitive nanostructured polyelectrolyte microparticles loaded with insulin
CN110179997A (zh) 一种用于糖尿病治疗的纳米药物载体及其组合药物
RU2255730C1 (ru) Стабильная фармацевтическая суспензия азитромицина и способ ее получения
CN111388681B (zh) 一种β-细辛醚修饰的壳聚糖纳米粒及其制备方法和应用
CN108642088A (zh) 红细胞膜表面修饰基因递送系统及制备方法及应用
RU2182830C1 (ru) Таблетированная форма рекомбинантного человеческого эритропоэтина

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 14890354

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 14890354

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1