WO2015156131A1 - [2-11c]酢酸、[2-11c]酢酸イミジルエステル、及びそれらの製造方法 - Google Patents
[2-11c]酢酸、[2-11c]酢酸イミジルエステル、及びそれらの製造方法 Download PDFInfo
- Publication number
- WO2015156131A1 WO2015156131A1 PCT/JP2015/059091 JP2015059091W WO2015156131A1 WO 2015156131 A1 WO2015156131 A1 WO 2015156131A1 JP 2015059091 W JP2015059091 W JP 2015059091W WO 2015156131 A1 WO2015156131 A1 WO 2015156131A1
- Authority
- WO
- WIPO (PCT)
- Prior art keywords
- acetic acid
- ester
- reaction
- group
- methyl iodide
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Ceased
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
- C07C51/00—Preparation of carboxylic acids or their salts, halides or anhydrides
- C07C51/347—Preparation of carboxylic acids or their salts, halides or anhydrides by reactions not involving formation of carboxyl groups
- C07C51/353—Preparation of carboxylic acids or their salts, halides or anhydrides by reactions not involving formation of carboxyl groups by isomerisation; by change of size of the carbon skeleton
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K51/00—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
- A61K51/02—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
- A61K51/04—Organic compounds
- A61K51/0402—Organic compounds carboxylic acid carriers, fatty acids
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K51/00—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
- A61K51/02—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
- A61K51/04—Organic compounds
- A61K51/041—Heterocyclic compounds
- A61K51/044—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine, rifamycins
- A61K51/0453—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine, rifamycins having five-membered rings with two or more ring hetero atoms, at least one of which being nitrogen, e.g. tetrazole
Definitions
- [2- 11 C] acetic acid succinimidyl esters of the present invention since it reacts readily with the amino groups present in the peptide or protein amide bond is formed not only [11 C] Acetylation of the low molecular weight compound [ 11 C] modification to proteins, cells, viruses and antibodies, which has been a dream for many years in molecular biology. Therefore, [2- 11 C] acetic acid succinimidyl esters of the present invention can be suitably used as the labeling agent for PET molecular probe.
- the [2- 11 C] acetic acid imidyl ester of the present invention is produced by a method of cross-coupling a previously prepared imidyl ester of a carboxytriorganosilicon compound and [ 11 C] methyl iodide using a palladium complex. You can also. That is, it is represented by [ 11 C] methyl iodide and the following structural formula (2) (wherein R 1 , R 2 and R 3 represent the same or different alkyl group, aryl group or aralkyl group).
- R 1 , R 2 and R 3 represent an alkyl group, an aryl group or an aralkyl group which may be the same or different.
- the alkyl group include methyl group, ethyl group, propyl group, isopropyl group, butyl group, tert-butyl group, sec-butyl group and the like.
- a phenyl group etc. are mentioned as an aryl group.
- examples of the aralkyl group include an o-toluyl group and an m-toluyl group.
- the imidyl ester examples include a phthalimidyl ester which may have an alkyl group on a benzene ring, and a succinimidyl ester which may have an alkyl group on a 5-membered ring portion.
- the alkyl group that may be present in the benzene ring or 5-membered ring portion of the imidyl ester a methyl group, an ethyl group, a propyl group, an isopropyl group, a butyl group, a tert-butyl group, a sec-butyl group, etc. Is mentioned.
- the half life of [ 18 F] (about 110 minutes) is 5 times or more compared to the half life of [ 11 C] (about 20 minutes). There is an advantage that it can be extended. If two PET molecular probes labeled with [ 11 C] and [ 18 F] can be realized for one target compound, the difference in half-life can be effectively utilized to This is a very useful method for in vivo pharmacokinetics and metabolite analysis.
- Comparative Examples 1 and 2 In Comparative Example 1, DMF was used as a solvent, and water was not added. Other reaction conditions are the same as in Example 1. In Comparative Example 2, NMP was used as a solvent, and water was not added. Other reaction conditions are the same as in Example 1.
- a THF solution (0.05 mL) containing (15 mg, 92 ⁇ mol) and a THF solution (0.05 mL) containing N-hydroxyphthalimide (15 mg, 73 ⁇ mol) were added and reacted at 90 ° C. for 4 minutes.
- the reaction solution was subjected to preparative HPLC, and the fraction containing the target [2- 11 C] acetic acid phthalimidyl ester was collected in a flask and concentrated with an evaporator under reduced pressure. The radioactivity in the flask was 3-4 GBq.
- FIG. [2- 11 C] A preparative HPLC chart of the reaction solution obtained in Example 6 is shown in FIG. [2- 11 C] distinct peak based on the acetate phthalate succinimidyl ester (retention time 5.4 min) was observed.
- FIG. 4 shows a preparative HPLC chart of [ 11 C] acetaminophen synthesized as described above. From this figure, a clear peak (retention time 17.8 minutes) based on [ 11 C] acetaminophen was observed.
- triphenylsilylcarboxylic acid phthalimidyl ester The starting material triphenylsilylcarboxylic acid phthalimidyl ester is N, N'-dicyclohexylcarboximide (DCC) or 1-ethyl-3- (3-dimethyl) in dichloromethane solvent. Synthesis was performed by condensing triphenylsilylcarboxylic acid and N-hydroxyphthalimide in the presence of (aminopropyl) carbodiimide (EDC). The obtained triphenylsilylcarboxylic acid phthalimidyl ester was used as it was in the following reaction under PET radioactive conditions.
- DCC N'-dicyclohexylcarboximide
- EDC 1-ethyl-3- (3-dimethyl
- the present invention can be used in the pharmaceutical industry as a raw material for producing a labeling agent for a PET molecular probe.
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Optics & Photonics (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Public Health (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
- Indole Compounds (AREA)
- Low-Molecular Organic Synthesis Reactions Using Catalysts (AREA)
Abstract
【課題】PET法による分子イメージングを行うために必要な放射能を有する[2-11C]酢酸、[2-11C]酢酸イミジルエステル及びそれらの製造方法を提供することを解決すべき課題としている。 【解決手段】本発明の酢酸は2位の炭素が11Cで標識されている。この酢酸は、[11C]ヨウ化メチルと、カルボキシトリフェニルシランとを、パラジウム錯体及びホスフィンリガンドの存在下、水以外の極性溶媒と水との混合溶媒中でクロスカップリングさせることによって製造できる。また、本発明の酢酸イミジルエステルは2位の炭素が11Cで標識されている。この酢酸イミジルエステルは、[11C]ヨウ化メチルと、カルボキシトリフェニルシランのイミジルエステルとを、パラジウム錯体及びホスフィンリガンドを溶解させた極性溶媒中でクロスカップリングさせることによって製造できる。
Description
本発明は[2-11C]酢酸、[2-11C]酢酸イミジルエステル、及びそれらの製造方法に関する。本発明の[2-11C]酢酸イミジルエステルは、低分子化合物への[11C]アセチル化のみならず、抗体や細胞表面や生理活性物質等のPET分子プローブ用標識化剤として好適に用いることができる。
近年、分子生物学の分野では、タンパク質や抗体や細胞表面のアミノ基に蛍光性の置換基や同位体で標識した置換基を導入する技術が開発され、生体内での分子イメージングを用いた研究が盛んに行われている。一方、遺伝子研究の分野では、ヒストンに存在するアミノ基のアセチル化及び脱アセチル化が重要な役割を担っていることも明らかにされている。
こうした状況下、2位の炭素が11Cで標識された酢酸(すなわち、[2-11C]酢酸)によるアセチル化技術が求められている。この技術が可能となれば、分子量がわずか42という単位で11Cによる標識化が実現でき、標識化自体による影響をほとんど受けことなく、陽電子放射断層撮像(以下「PET」という)法によって生体内動態を直接調べることができる。
PET法とは、11Cや18Fなどの陽電子を放出する短寿命放射性核種で標識されたプローブを生体内に投与し、本プローブから発生するγ線をPETカメラ(ガンマ線シンチレーターと光電子増倍管からなる検出器)によって計測して、その体内分布をコンピューターにより画像化する方法である。この方法によれば、小動物からヒトまで含めた生体での標的部位への到達度を、非侵襲的かつ定量的に追跡することができる。
しかし、PET法において技術活用の鍵となるPET分子プローブの合成は、分子に組み込む放射性核種の寿命が短いために困難を伴う。PET法で使用される短寿命放射核種としては11Cや18Fなどが用いられ、これらの放射性核種で標識された化合物がプローブとして用いられる。これらの中でも11Cは有機化合物中に存在している炭素原子を利用しているため適用範囲が極めて広く、理想的な放射性核種といえる。しかしながら、11Cは半減期が20分と短く、合成からPET法での測定までを極めて短時間で行なわなければならないため、合成に与えられる時間はごくわずかとなってしまう。
また、サイクロトロンで製造できる11C核種は超微量(数十から数百nmolレベル;12Cの混入を考慮した値)であり、結果として、超希薄濃度の11C核種含有化合物と化学反応させるため、一般には反応促進のために大過剰の被標識基質を使用するという特殊な条件下で反応が行われる。従って、11C-標識化合物の合成は、11C以外の核種(12C、13C、14C及び重水素)を含む同一の化学構造を有する化合物の合成に比べ、より制約された反応条件を用いる必要があり、いかに短時間で効率良く生物活性有機化合物や創薬候補化合物をPET分子プローブ化できるかということが最重要課題となっている。
従来、[11C]酢酸の合成法([1-11C]酢酸あるいは[2-11C]酢酸の合成法)としては、[11C]二酸化炭素をメチルリチウムやメチルグリニャール試薬と反応させる方法([1-11C]酢酸の合成法:非特許文献1~16)や、[11C]メチルリチウムと二酸化炭素とを反応させる方法([2-11C]酢酸の合成法:非特許文献17)が知られている。しかし、これらの手法はいずれも塩基性の化学反応のため、最終的に得られるのは[11C]酢酸の塩である。[11C]酢酸の塩から[11C]酢酸を得るためには、反応終了後に酸性水溶液で中和処理すればよいが、手間と時間がかかることとなる。また、メチルリチウムやメチルグリニャール試薬は水によって分解するため、有機溶媒を充分に脱水した状態で反応を行わなければならず、脱水処理にも手間と時間がかかる。このため、事実上、これまでにPET法による分子イメージングを行うために必要十分な放射能(GBqレベル)を有するような[11C]酢酸を得ることはできていない。ましてや[11C]酢酸のエステル体を合成して、これをPET法に利用するということは不可能であった。
本発明は、上記従来の実情に鑑みてなされたものであり、PET法による分子イメージングを行うために必要十分な放射能を有する[2-11C]酢酸、[2-11C]酢酸イミジルエステル及びそれらの製造方法を提供することを解決すべき課題としている。
本発明の酢酸は2位の炭素が11Cで標識されている(以下「[2-11C]酢酸」という場合がある)ことを特徴とする(下記構造式参照)。PET法による分子イメージングを行うために必要な放射能とは、具体的には、化学合成後の[2-11C]酢酸の放射能が1.0 GBq以上のことであり、さらに好ましくは2.0 GBq以上であり、最も好ましいのは4.0 GBq以上である。
[2-11C]酢酸は半減期が約20分という短寿命核種である11Cを含むため、その製造には通常の酢酸とは異なった化学反応が必要となる。例えば、11Cの導入は高速かつ合成の最終段階で、反応、精製、生体への投与までを半減期の2倍の40分以内で行う必要がある。その結果、11Cの導入に許される時間はわずか5分程度である。また、サイクロトロンで製造できる11C核種は超微量(数十から数百nmolレベル;12Cの混入を考慮した値)であり、このような超希薄条件での化学反応は、通常、大過剰の被標識基質を用いて行われる。このような特殊な反応条件を要求されるため、いかに短時間で効率良く[2-11C]酢酸を製造できるかということが最重要課題となり、短寿命放射性核種に適応した新たな高速化学反応の開発が必要とされる。この課題を解決するため、本発明者らは次の方法を開発した。
すなわち、[11C]ヨウ化メチルと、下記構造式(1)(ただし、R1、R2及びR3は同一又は異なってもよいアルキル基、アリール基、又はアラルキル基を示す)で示されるカルボキシトリオルガノケイ素化合物とを、パラジウム錯体及びホスフィンリガンドの存在下、水以外の極性溶媒と水との混合溶媒中でクロスカップリングさせる製造方法である。
すなわち、[11C]ヨウ化メチルと、下記構造式(1)(ただし、R1、R2及びR3は同一又は異なってもよいアルキル基、アリール基、又はアラルキル基を示す)で示されるカルボキシトリオルガノケイ素化合物とを、パラジウム錯体及びホスフィンリガンドの存在下、水以外の極性溶媒と水との混合溶媒中でクロスカップリングさせる製造方法である。
R1、R2及びR3は同一又は異なってもよいアルキル基、アリール基、又はアラルキル基を示す。アルキル基としてはメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、tert-ブチル基、sec-ブチル基等が挙げられる。また、アリール基としてはフェニル基等が挙げられる。さらに、アラルキル基としてはo-トルイル基、m-トルイル基等が挙げられる。
一方、パラジウム錯体としては、例えばPd2(dba)3、Pd2(dba)3/CHCl3、 (allyl)PdCl)2等が挙げられる。また、ホスフィンリガンドとは、ホスフィン(PH3)と同様の3価のリンを有し、孤立電子対を有する配位子をいい、例えばPPh3、P(tert-C4H9)3、P(o-tolyl)3、PA-PPh等が挙げられる。
また、水以外の極性溶媒としては、THF、ジオキサン、アセトン等が挙げられる。水の添加割合の上限については、反応基質やパラジウム錯体やホスフィンリガンドが溶解可能な範囲で適宜選択すればよいが、下限については1容量%以上が好ましく、さらに好ましいのは5容量%以上、最も好ましいのは10容量%以上である。
一方、パラジウム錯体としては、例えばPd2(dba)3、Pd2(dba)3/CHCl3、 (allyl)PdCl)2等が挙げられる。また、ホスフィンリガンドとは、ホスフィン(PH3)と同様の3価のリンを有し、孤立電子対を有する配位子をいい、例えばPPh3、P(tert-C4H9)3、P(o-tolyl)3、PA-PPh等が挙げられる。
また、水以外の極性溶媒としては、THF、ジオキサン、アセトン等が挙げられる。水の添加割合の上限については、反応基質やパラジウム錯体やホスフィンリガンドが溶解可能な範囲で適宜選択すればよいが、下限については1容量%以上が好ましく、さらに好ましいのは5容量%以上、最も好ましいのは10容量%以上である。
本発明の[2-11C]酢酸の製造方法では、上記構造式(1)で示されるカルボキシトリオルガノケイ素化合物のカルボニル炭素に、[11C]ヨウ化メチルのメチル基を結合させる。従来、カチオン性の強いカルボニル炭素に、同じくカチオン性の強いヨウ化メチルのメチル基を結合させることは困難であるというのが当分野における技術常識であった。本発明者らは、パラジウム錯体及びホスフィンリガンドの存在下であって、水を含んだ極性溶媒を用いるという特殊な条件下であれば、上記のような極性が転換するような、従来の技術常識を超えたクロスカップリング反応(極性転換型クロスカップリング反応)が進行することを見出したのである。しかも、この方法によるメチル化は極めて迅速に起こり、高収率である。このため、例えば極めて希薄な11C標識ヨウ化メチルを基質として用いても、短時間かつ高収率で反応が進み、PET測定が可能な程度の放射性を有する[2-11C]酢酸を塩としてではなく、遊離酸として製造することができる。
本発明者らは、この製造方法における反応機構を次のように推定している(パラジウム及びホスフィンリガンドとしてPd(P(o-tolyl)3)2を用い、カルボキシトリオルガノケイ素化合物としてトリフェニルカルボキシケイ素の場合を例に挙げる)。
まず、第一段階として、Pd(P(o-tolyl)3)2に[11C]ヨウ化メチルが酸化的付加をした[11C]メチルパラジウム錯体Aが生成する(上記反応式(1)参照)。この反応は、0価パラジウム錯体に対する酸化的付加反応の一種である。一方で、P(o-tolyl)3とトリフェニルカルボキシケイ素とが反応してホスホニウム塩Bが形成される(上記反応式(2)参照)。こうして生成したAとBとの間で金属交換反応が起こり、その結果、([11C]メチル)(カルボキシ)パラジウム錯体Cが生成する(上記反応式(3)参照)。次に、Cの還元的脱離反応により[11C]酢酸のホスホニウム塩Dが生成し(上記反応式(4)参照)、わずかな酸の添加、あるいは、HPLCによる分離精製中にプロトン化されて目的の[2-11C]酢酸となる。ホスフィンリガンドの塩基性はごく弱いため塩ではなく、通常の分離精製手順時には遊離のカルボン酸として得られる。
このようにして得られる本発明の[2-11C]酢酸は、PET法による分子イメージングを行うために必要な放射能を有するため、PET分子プローブとして好適に用いることができる。また、[2-11C]酢酸を塩ではなく遊離酸として得ることができるため、引き続き、必要があれば、さらなる化学変換を行うことができるという利点がある。
一方、本発明の酢酸イミジルエステルは2位の炭素が11Cで標識されている酢酸(すなわち[2-11C]酢酸イミジルエステル)であることを特徴とする。PET法による分子イメージングを行うために必要な放射能とは、具体的には、化学合成後の[2-11C]酢酸イミジルエステルの放射能が1.0 GBq以上のことであり、さらに好ましくは2.0 GBq以上であり、最も好ましいのは4.0 GBq以上である。
本発明の[2-11C]酢酸イミジルエステルは、ペプチドやタンパク質に存在するアミノ基と容易に反応してアミド結合が形成されるため、低分子化合物への[11C]アセチル化のみならず、分子生物学における長年の夢であったタンパク質や細胞やウイルスや抗体への[11C]修飾が可能となる。このため、本発明の[2-11C]酢酸イミジルエステルは、PET分子プローブ用標識化剤として好適に用いることができる。
本発明の[2-11C]酢酸イミジルエステルは、前述した本発明の[2-11C]酢酸の製造方法を経由して製造することができる。すなわち、
[11C]ヨウ化メチルと、下記構造式(1)(ただし、R1、R2及びR3は同一又は異なってもよいアルキル基、アリール基、又はアラルキル基を示す)で示されるカルボキシトリオルガノケイ素化合物とを、パラジウム錯体及びホスフィンリガンドの存在下、水以外の極性溶媒と水との混合溶媒中でクロスカップリングさせて2位の炭素が11Cで標識された酢酸とするカップリング工程と、
該カップリング工程後、該[2-11C]酢酸とヒドロキシイミジル化合物とを脱水縮合剤で縮合させる縮合工程と、を備えることを特徴とする製造方法である。
[11C]ヨウ化メチルと、下記構造式(1)(ただし、R1、R2及びR3は同一又は異なってもよいアルキル基、アリール基、又はアラルキル基を示す)で示されるカルボキシトリオルガノケイ素化合物とを、パラジウム錯体及びホスフィンリガンドの存在下、水以外の極性溶媒と水との混合溶媒中でクロスカップリングさせて2位の炭素が11Cで標識された酢酸とするカップリング工程と、
該カップリング工程後、該[2-11C]酢酸とヒドロキシイミジル化合物とを脱水縮合剤で縮合させる縮合工程と、を備えることを特徴とする製造方法である。
ここで、R1、R2及びR3は同一又は異なってもよいアルキル基、アリール基、又はアラルキル基を示す。アルキル基としてはメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、tert-ブチル基、sec-ブチル基等が挙げられる。また、アリール基としてはフェニル基等が挙げられる。さらに、アラルキル基としてはo-トルイル基、m-トルイル基等が挙げられる。
一方、パラジウム錯体としては、例えばPd2(dba)3、Pd2(dba)3/CHCl3、(allyl)PdCl)2等が挙げられる。また、ホスフィンリガンドとは、ホスフィン(PH3)と同様の3価のリンを有し、孤立電子対を有する配位子をいい、例えばPPh3、P(tert-C4H9)3、P(o-tolyl)3、PA-PPh等が挙げられる。
また、水以外の極性溶媒としては、THF、ジオキサン、アセトン等が挙げられる。水の添加割合の上限については、反応基質やパラジウム錯体やホスフィンリガンドが溶解可能な範囲で適宜選択すればよいが、下限については1容量%以上が好ましく、さらに好ましいのは5容量%以上、最も好ましいのは10容量%以上である。
一方、パラジウム錯体としては、例えばPd2(dba)3、Pd2(dba)3/CHCl3、(allyl)PdCl)2等が挙げられる。また、ホスフィンリガンドとは、ホスフィン(PH3)と同様の3価のリンを有し、孤立電子対を有する配位子をいい、例えばPPh3、P(tert-C4H9)3、P(o-tolyl)3、PA-PPh等が挙げられる。
また、水以外の極性溶媒としては、THF、ジオキサン、アセトン等が挙げられる。水の添加割合の上限については、反応基質やパラジウム錯体やホスフィンリガンドが溶解可能な範囲で適宜選択すればよいが、下限については1容量%以上が好ましく、さらに好ましいのは5容量%以上、最も好ましいのは10容量%以上である。
本発明の[2-11C]酢酸イミジルエステルは、あらかじめ調製したカルボキシトリオルガノケイ素化合物のイミジルエステル体と[11C]ヨウ化メチルとをパラジウム錯体を用いてクロスカップリングする方法で製造することもできる。
すなわち、[11C]ヨウ化メチルと、下記構造式(2)(ただし、R1、R2及びR3は同一又は異なってもよいアルキル基、アリール基、又はアラルキル基を示す)で示されるカルボキシトリオルガノケイ素化合物のイミジルエステル体とを、パラジウム錯体及びホスフィンリガンドを溶解させた極性溶媒中でクロスカップリングさせることを特徴とする[2-11C]酢酸イミジルエステルの製造方法である。
すなわち、[11C]ヨウ化メチルと、下記構造式(2)(ただし、R1、R2及びR3は同一又は異なってもよいアルキル基、アリール基、又はアラルキル基を示す)で示されるカルボキシトリオルガノケイ素化合物のイミジルエステル体とを、パラジウム錯体及びホスフィンリガンドを溶解させた極性溶媒中でクロスカップリングさせることを特徴とする[2-11C]酢酸イミジルエステルの製造方法である。
ここで、R1、R2及びR3は同一又は異なってもよいアルキル基、アリール基、又はアラルキル基を示す。アルキル基としてはメチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、tert-ブチル基、sec-ブチル基等が挙げられる。また、アリール基としてはフェニル基等が挙げられる。さらに、アラルキル基としてはo-トルイル基、m-トルイル基等が挙げられる。
また、イミジルエステル体としては、ベンゼン環にアルキル基を有してもよいフタルイミジルエステル体、5員環部分にアルキル基を有してもよいスクシンイミジルエステル体等が挙げられる。ここで、イミジルエステル体のベンゼン環又は5員環部分に有してもよいアルキル基としては、メチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、tert-ブチル基、sec-ブチル基等が挙げられる。 さらに、パラジウム錯体としては、例えばPd2(dba)3、Pd2(dba)3/CHCl3、(allyl)PdCl)2等が挙げられる。
また、ホスフィンリガンドとは、ホスフィン(PH3)と同様の3価のリンを有し、孤立電子対を有する配位子をいい、例えばPPh3、P(tert-C4H9)3、P(o-tolyl)3、PA-PPh等が挙げられる。
また、イミジルエステル体としては、ベンゼン環にアルキル基を有してもよいフタルイミジルエステル体、5員環部分にアルキル基を有してもよいスクシンイミジルエステル体等が挙げられる。ここで、イミジルエステル体のベンゼン環又は5員環部分に有してもよいアルキル基としては、メチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ブチル基、tert-ブチル基、sec-ブチル基等が挙げられる。 さらに、パラジウム錯体としては、例えばPd2(dba)3、Pd2(dba)3/CHCl3、(allyl)PdCl)2等が挙げられる。
また、ホスフィンリガンドとは、ホスフィン(PH3)と同様の3価のリンを有し、孤立電子対を有する配位子をいい、例えばPPh3、P(tert-C4H9)3、P(o-tolyl)3、PA-PPh等が挙げられる。
この方法によれば、カルボキシトリオルガノケイ素化合物のイミジルエステルと[11C]ヨウ化メチルとをクロスカップリングするという一工程だけで、[2-11C]酢酸イミジルエステルを製造することができる。このため、製造に要する時間を短くすることができ、さらに放射能の強いPET分子プローブ用標識化剤として利用することができる。
<[18F]フルオロ酢酸及び[18F]フルオロ酢酸イミジルエステル>
[2-11C]酢酸や[2-11C]酢酸イミジルエステルの替りに、2位の炭素に18Fが結合した[18F]フルオロ酢酸(下記構造式参照)やそのイミジルエステルをPET分子プローブ用標識化剤として利用することもできる。
[2-11C]酢酸や[2-11C]酢酸イミジルエステルの替りに、2位の炭素に18Fが結合した[18F]フルオロ酢酸(下記構造式参照)やそのイミジルエステルをPET分子プローブ用標識化剤として利用することもできる。
[18F]の半減期(約110分)は、[11C]の半減期(約20分)と比較して5倍以上であり、PET分子プローブ調製の時間や、PET診断を行う時間を延ばすことができるという利点がある。また、一つの目的化合物に対して[11C]及び[18F]で標識された二つのPET分子プローブを実現することができれば、その半減期の違いを有効に活用することによって、目的化合物の生体内薬物動態や代謝物解析に非常に役立つ方法となる。
[18F]フルオロ酢酸イミジルエステルは、次の方法によって製造することができる。すなわち、下記に示した論文のように、まず、2位の炭素にアニオン性脱離基が結合した酢酸エステルと、[18F]フッ素イオンを含む溶液とを混合することによって[18F]フルオロ酢酸エステルとする。続いて、加水分解により[18F]フルオロ酢酸に変換する。これをヒドロキシイミジル化合物との間で縮合させることにより[18F]フルオロ酢酸イミジルエステルを得ることができる。なお、ここで、[18F]フッ素イオンを含む溶液は、サイクロトロンを用い、[18O]水に対して電子ビームで照射して製造することができる。
[18F]フルオロ酢酸、[18F]フルオロ酢酸塩、および[18F]フルオロ酢酸エステル合成の先行論文
1)Li, X., Domarkasc, J. & O’Hagan, D. Fluorinase mediated chemoenzymatic synthesis of [18F]fluoroacetate. Chem. Commun. 46, 7819-7821 (2010).
2)Tang, G., Tang, X., Wang, M., Li, B., Liang, M. & Wanga, Q. A simple and rapid automated radiosynthesis of [18F]fluoroacetate. J. Label Compd. Radiopharm. 51, 297-301 (2008).
3)Ponde, D. E., Dence, C. S., Oyama, N., Kim, J., Tai, Y., Laforest, R., Siegel, B. A. & Welch, M. J. 18F-Fluoroacetate: a potential acetate analog for prostate tumor imagin in vivo evaluation of 18F-fluoroacetate versus 11C-acetate. J. Nucl. Med. 48, 420-428 (2007).
4)Tewson, T. J. & Welch, M. J. Preparation and preliminary biodistribution of ''no carrier added'' fluorine- 18F-Fluoroethanol. J. Nucl. Med. 21, 559-564 (1980).
5)Jeong, J. M., Lee, D. S., Chung, J., Lee, M. C., Koh, C. & Kang, S. S. Synthesis of no-carrier-added [18F]fluoroacetate. J. Label Compd. Radiopharm. 39, 395-399 (1997).
[18F]フルオロ酢酸、[18F]フルオロ酢酸塩、および[18F]フルオロ酢酸エステル合成の先行論文
1)Li, X., Domarkasc, J. & O’Hagan, D. Fluorinase mediated chemoenzymatic synthesis of [18F]fluoroacetate. Chem. Commun. 46, 7819-7821 (2010).
2)Tang, G., Tang, X., Wang, M., Li, B., Liang, M. & Wanga, Q. A simple and rapid automated radiosynthesis of [18F]fluoroacetate. J. Label Compd. Radiopharm. 51, 297-301 (2008).
3)Ponde, D. E., Dence, C. S., Oyama, N., Kim, J., Tai, Y., Laforest, R., Siegel, B. A. & Welch, M. J. 18F-Fluoroacetate: a potential acetate analog for prostate tumor imagin in vivo evaluation of 18F-fluoroacetate versus 11C-acetate. J. Nucl. Med. 48, 420-428 (2007).
4)Tewson, T. J. & Welch, M. J. Preparation and preliminary biodistribution of ''no carrier added'' fluorine- 18F-Fluoroethanol. J. Nucl. Med. 21, 559-564 (1980).
5)Jeong, J. M., Lee, D. S., Chung, J., Lee, M. C., Koh, C. & Kang, S. S. Synthesis of no-carrier-added [18F]fluoroacetate. J. Label Compd. Radiopharm. 39, 395-399 (1997).
以下、本発明を具体化した実施例について詳細に述べる。なお、11C核の製造は住友重機械工業社製サイクロトロンCYPRIS HM-12Sを使用し、14N(p,α)11Cの核反応により製造した。[11C]ヨウ化メチルの合成は専用の標識用合成装置を用いて、11CO2ガスを出発物質として、11CO2→11CH3OH→11CH3Iの順に変換して合成した。
本明細書においては、使用した薬剤の名称について、以下の略語を用いる場合がある。
dba: dibenzylideneacetone
TBAF: tetrabutylammonium fluoride
NMP: N-methyl-2-pyrrolidone
DMF: N,N-dimethylformamide
PA-PPh:1,3,5,7-tetramethyl-6-phenyl-2,4,8-trioxa-6-phosphaadamantane
allyl:2-propenyl
本明細書においては、使用した薬剤の名称について、以下の略語を用いる場合がある。
dba: dibenzylideneacetone
TBAF: tetrabutylammonium fluoride
NMP: N-methyl-2-pyrrolidone
DMF: N,N-dimethylformamide
PA-PPh:1,3,5,7-tetramethyl-6-phenyl-2,4,8-trioxa-6-phosphaadamantane
allyl:2-propenyl
<[2-11C]酢酸の合成>
[11C]ヨウ化メチルとカルボキシトリフェニルケイ素化合物1を、各種のPd錯体及び各種のホスフィンリガンドの存在下、各種の溶媒中において[2-11C]酢酸を合成した(下記スキーム1参照)。
[11C]ヨウ化メチルとカルボキシトリフェニルケイ素化合物1を、各種のPd錯体及び各種のホスフィンリガンドの存在下、各種の溶媒中において[2-11C]酢酸を合成した(下記スキーム1参照)。
(実施例1)
・カップリング反応
Pd2(dba)3 (2.9 mg, 3.2 μmol)およびP(o-tolyl)3 (3.8 mg, 12.7μmol)のTHF溶液(0.4 mL)に、約5 GBqの放射能をもつ[11C]ヨウ化メチルを30mL/minのガス流量で吹き込んだ。その後、本溶液にH2O(0.05 mL)とカルボキシトリフェニルケイ素化合物1 (4.6 mg, 16 μmol)を含むTHF溶液(0.05 mL)を添加し、得られた溶液を90℃で4分間反応を行った。反応終了後、H3PO4 (5%水溶液, 0.5 mL)を反応溶液に加えて、この混合溶液から0.02 mLを抜き取って、直接、RI検出-HPLCにて分析を行った。HPLC分析収率とは、反応溶液を直接RI検出-HPLCにて分析し、目的の[2-11C]酢酸([11C]-2)のピーク面積を全ピーク面積との比で表したものである。ここではHPLC分析収率を用いて反応の評価を行うこととした。
その結果、目的の[2-11C]酢酸のHPLC分析収率が97-98 %となった(2回の実験結果の平均)。なお、[2-11C]酢酸の同定は、非標識酢酸を用いてHPLCの重ね合わせ分析により行った。
HPLC分析条件
カラム:資生堂 CAPCELL PAK C18 UG120 4.6 x 250 mm
カラム温度:30℃
溶出液: 初期; CH3CN:2% H3PO4水溶液 = 3:97, 0分~6分、2段階目; CH3CN:2% H3PO4水溶液 = 3-70:97-30, 6分~15分(濃度勾配は直線変化)
流量:1 mL/min
[2-11C]酢酸の保持時間 4.2-4.3分
・カップリング反応
Pd2(dba)3 (2.9 mg, 3.2 μmol)およびP(o-tolyl)3 (3.8 mg, 12.7μmol)のTHF溶液(0.4 mL)に、約5 GBqの放射能をもつ[11C]ヨウ化メチルを30mL/minのガス流量で吹き込んだ。その後、本溶液にH2O(0.05 mL)とカルボキシトリフェニルケイ素化合物1 (4.6 mg, 16 μmol)を含むTHF溶液(0.05 mL)を添加し、得られた溶液を90℃で4分間反応を行った。反応終了後、H3PO4 (5%水溶液, 0.5 mL)を反応溶液に加えて、この混合溶液から0.02 mLを抜き取って、直接、RI検出-HPLCにて分析を行った。HPLC分析収率とは、反応溶液を直接RI検出-HPLCにて分析し、目的の[2-11C]酢酸([11C]-2)のピーク面積を全ピーク面積との比で表したものである。ここではHPLC分析収率を用いて反応の評価を行うこととした。
その結果、目的の[2-11C]酢酸のHPLC分析収率が97-98 %となった(2回の実験結果の平均)。なお、[2-11C]酢酸の同定は、非標識酢酸を用いてHPLCの重ね合わせ分析により行った。
HPLC分析条件
カラム:資生堂 CAPCELL PAK C18 UG120 4.6 x 250 mm
カラム温度:30℃
溶出液: 初期; CH3CN:2% H3PO4水溶液 = 3:97, 0分~6分、2段階目; CH3CN:2% H3PO4水溶液 = 3-70:97-30, 6分~15分(濃度勾配は直線変化)
流量:1 mL/min
[2-11C]酢酸の保持時間 4.2-4.3分
実施例1で得られた反応液のradio-HPLC分析の結果を図1に示す。[2-11C]酢酸に基づく明確なピーク(保持時間4.2-4.3分)が認められる。
・[2-11C]酢酸の単離
実施例1の反応において、[2-11C]酢酸が生成していることを確かめるため、次の実験を行った。
実施例1の反応条件に基づいて、約33GBqの高放射能の[11C]ヨウ化メチルを用いて反応を行った。反応溶液を分取HPLCによって分離精製し、[2-11C]酢酸(保持時間5.4-5.5分)を単離した。図2に単離した[2-11C]酢酸のradio-HPLC分析の結果を示す。その結果、合成時間は26-30分で、合成時間30分時点に補正した値として約7.4-8.5 GBqの[2-11C]酢酸が得られることが分かった。本反応における [11C]ヨウ化メチルに基づいた[2-11C]酢酸の崩壊補正放射化学収率は63-73%であった。
HPLC分取条件
カラム:資生堂 CAPCELL PAK UG120 10 × 250 mm
ガードカラム: 資生堂CAPCELL PAK UG120 10 × 20 mm
溶出液: 20 mM NaH2PO4水溶液
流量:4.5 mL/min
[2-11C]酢酸[11C]-2の保持時間 5.4-5.5分
実施例1の反応において、[2-11C]酢酸が生成していることを確かめるため、次の実験を行った。
実施例1の反応条件に基づいて、約33GBqの高放射能の[11C]ヨウ化メチルを用いて反応を行った。反応溶液を分取HPLCによって分離精製し、[2-11C]酢酸(保持時間5.4-5.5分)を単離した。図2に単離した[2-11C]酢酸のradio-HPLC分析の結果を示す。その結果、合成時間は26-30分で、合成時間30分時点に補正した値として約7.4-8.5 GBqの[2-11C]酢酸が得られることが分かった。本反応における [11C]ヨウ化メチルに基づいた[2-11C]酢酸の崩壊補正放射化学収率は63-73%であった。
HPLC分取条件
カラム:資生堂 CAPCELL PAK UG120 10 × 250 mm
ガードカラム: 資生堂CAPCELL PAK UG120 10 × 20 mm
溶出液: 20 mM NaH2PO4水溶液
流量:4.5 mL/min
[2-11C]酢酸[11C]-2の保持時間 5.4-5.5分
(実施例2~5)
実施例2では、反応開始当初から、THFと水の混合溶媒(9:1)に[11C]ヨウ化メチルを捕獲して反応を行った。その他の反応操作については実施例1と同様であり、詳細な説明を省略する。実施例3では、テトラブチルアンモニウムフルオライド(TBAF)(1.0MのTHF溶液、20μl、20μmol)を添加して反応を行った。その他の反応条件は実施例2と同様である。実施例4では、溶媒としてアセトン:水=9:1(容量比)の混合溶媒を用いた。その他の反応条件は実施例1と同様である。実施例5では、溶媒として1,4-ジオキサン:水=9:1(容量比)の混合溶媒を用い、K3PO4(3.0mg,14.5μmol)を添加して反応を行った。その他の反応条件は実施例1と同様である。
実施例2では、反応開始当初から、THFと水の混合溶媒(9:1)に[11C]ヨウ化メチルを捕獲して反応を行った。その他の反応操作については実施例1と同様であり、詳細な説明を省略する。実施例3では、テトラブチルアンモニウムフルオライド(TBAF)(1.0MのTHF溶液、20μl、20μmol)を添加して反応を行った。その他の反応条件は実施例2と同様である。実施例4では、溶媒としてアセトン:水=9:1(容量比)の混合溶媒を用いた。その他の反応条件は実施例1と同様である。実施例5では、溶媒として1,4-ジオキサン:水=9:1(容量比)の混合溶媒を用い、K3PO4(3.0mg,14.5μmol)を添加して反応を行った。その他の反応条件は実施例1と同様である。
(比較例1,2)
比較例1では、溶媒としてDMFを用い、水は添加しなかった。その他の反応条件は実施例1と同様である。比較例2では、溶媒としてNMPを用い、水は添加しなかった。その他の反応条件は実施例1と同様である。
比較例1では、溶媒としてDMFを用い、水は添加しなかった。その他の反応条件は実施例1と同様である。比較例2では、溶媒としてNMPを用い、水は添加しなかった。その他の反応条件は実施例1と同様である。
実施例2(すなわちTHF/H2O (9:1)の混合溶媒中、Pd2(dba)3 /P(o-tolyl)3 (1:4)を用いて、90℃で、4分間反応を行った場合)では、[11C]酢酸が90%のHPLC分析収率で得られた。これに対して、[11C]ヨウ化メチルを吹き込んだ後に水を添加した実施例1では、HPLC分析収率が98%となり、[11C]ヨウ化メチルを吹き込んだ後に水を添加した方が、収率が良くなることが分かった。
一方、実施例3(すなわち、ケイ素化合物1の活性化を目的としてTBAFを添加した場合)、[11C]酢酸の収率は32%に留まった。このことから、クロスカップリングにおいて反応活性化のために加えられる塩基の存在は、かえって[11C]酢酸の収率を下げることが分かった。
また、実施例4の結果から、アセトン-水の混合溶媒も良好な収率で[11C]酢酸が得られることが分かった。
さらには、実施例5に示すように、Pd触媒系([PdCl(allyl)]2、PA-PPh、K3PO4、1,4-dioxane/H2O混合溶媒)を用いても、[11C]酢酸は88%の高収率で得られることが分かった。
一方、実施例3(すなわち、ケイ素化合物1の活性化を目的としてTBAFを添加した場合)、[11C]酢酸の収率は32%に留まった。このことから、クロスカップリングにおいて反応活性化のために加えられる塩基の存在は、かえって[11C]酢酸の収率を下げることが分かった。
また、実施例4の結果から、アセトン-水の混合溶媒も良好な収率で[11C]酢酸が得られることが分かった。
さらには、実施例5に示すように、Pd触媒系([PdCl(allyl)]2、PA-PPh、K3PO4、1,4-dioxane/H2O混合溶媒)を用いても、[11C]酢酸は88%の高収率で得られることが分かった。
一方、比較例1及び比較例2に示すように、DMFやNMPのアミド系溶媒を用いた反応では、[11C]酢酸はわずか3-7%の収率でしか得られなかった。比較例1及び比較例2の反応においては、原料のケイ素化合物1がDMFやNMP溶媒中で泡を発する現象を生じたことから、ケイ素化合物1がDMFやNMPによって分解していくと推定され、DMFやNMP等のアミド系溶媒は[11C]酢酸の合成においては適していないことが分かった。
(実施例6)
・[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルの単離
実施例6では、実施例1の方法によって[2-11C]酢酸を合成した後、[2-11C]酢酸を縮合剤によってN -ヒドロキシフタルイミドと縮合させ、[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを合成し、単離した。
すなわち、約30 GBqの放射能の[11C]ヨウ化メチルを出発原料として、実施例1の条件を用いて反応を行った後、得られた反応溶液に、N,N’-ジシクロヘキシルカルボキシイミド(15 mg, 92 μmol)を含むTHF溶液(0.05 mL)と、N -ヒドロキシフタルイミド(15 mg, 73 μmol) を含むTHF溶液(0.05 mL)を加えて、90℃で4分間反応させた。反応溶液を分取HPLCに供して、目的の[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを含むフラクションをフラスコに集めて、減圧下エバポレーターにて濃縮した。フラスコ内の放射能は3-4 GBqであった。
HPLC分取条件
カラム:ナカライテスク AR-II 10 × 250 mm
ガードカラム: ナカライテスクAR-II 10 × 20 mm
溶出液:初期; CH3CN:H2O = 50:50, 0分~10分、2段階目; CH3CN:H2O = 50-70:50-30,10分~15分(濃度勾配は直線増加)
流量:5.0 mL/min
[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルの保持時間5.4分
・[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルの単離
実施例6では、実施例1の方法によって[2-11C]酢酸を合成した後、[2-11C]酢酸を縮合剤によってN -ヒドロキシフタルイミドと縮合させ、[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを合成し、単離した。
すなわち、約30 GBqの放射能の[11C]ヨウ化メチルを出発原料として、実施例1の条件を用いて反応を行った後、得られた反応溶液に、N,N’-ジシクロヘキシルカルボキシイミド(15 mg, 92 μmol)を含むTHF溶液(0.05 mL)と、N -ヒドロキシフタルイミド(15 mg, 73 μmol) を含むTHF溶液(0.05 mL)を加えて、90℃で4分間反応させた。反応溶液を分取HPLCに供して、目的の[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを含むフラクションをフラスコに集めて、減圧下エバポレーターにて濃縮した。フラスコ内の放射能は3-4 GBqであった。
HPLC分取条件
カラム:ナカライテスク AR-II 10 × 250 mm
ガードカラム: ナカライテスクAR-II 10 × 20 mm
溶出液:初期; CH3CN:H2O = 50:50, 0分~10分、2段階目; CH3CN:H2O = 50-70:50-30,10分~15分(濃度勾配は直線増加)
流量:5.0 mL/min
[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルの保持時間5.4分
実施例6で得られた反応液の分取HPLCのチャートを図3に示す。[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルに基づく明確なピーク(保持時間5.4分)が認められた。
・[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを用いた[11C]アセトアミノフェンの合成
前述のようにして単離した[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルに、4-アミノフェノール(15 mg, 137 μmol)を含むエタノール溶液(0.5 mL)を添加し、その後、40℃で2分間、続いて60℃で2分間反応させた。減圧下、エバポレーターにて有機溶媒を除去し、残渣を分取HPLCに供して、目的の[11C]アセトアミノフェンを分離精製した。[11C]アセトアミノフェンの放射能は、1.0-2.0 GBqであり、全行程の合成時間は約55分であった。[11C]ヨウ化メチルに基づいた[11C]アセトアミノフェンの崩壊補正放射化学収率は22-43%であった。放射化学的純度は99%以上であり、化学的純度は95%以上であった。これまでの[11C]アセトアミノフェン合成では、その比放射能は27-28 GBq/μmolであった。
HPLC分取条件
カラム:ナカライテスク MS-II 10 × 250 mm
ガードカラム: ナカライテスクMS-II 10 × 20 mm
カラム温度:30℃
溶出液:初期; CH3OH:H2O = 20:80, 0分~18分、2段階目; CH3OH:H2O = 20-50:80-50,18分~30分(濃度勾配は直線増加)
流量:4.5 mL/min
[11C]アセトアミノフェンの保持時間 17.8分
前述のようにして単離した[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルに、4-アミノフェノール(15 mg, 137 μmol)を含むエタノール溶液(0.5 mL)を添加し、その後、40℃で2分間、続いて60℃で2分間反応させた。減圧下、エバポレーターにて有機溶媒を除去し、残渣を分取HPLCに供して、目的の[11C]アセトアミノフェンを分離精製した。[11C]アセトアミノフェンの放射能は、1.0-2.0 GBqであり、全行程の合成時間は約55分であった。[11C]ヨウ化メチルに基づいた[11C]アセトアミノフェンの崩壊補正放射化学収率は22-43%であった。放射化学的純度は99%以上であり、化学的純度は95%以上であった。これまでの[11C]アセトアミノフェン合成では、その比放射能は27-28 GBq/μmolであった。
HPLC分取条件
カラム:ナカライテスク MS-II 10 × 250 mm
ガードカラム: ナカライテスクMS-II 10 × 20 mm
カラム温度:30℃
溶出液:初期; CH3OH:H2O = 20:80, 0分~18分、2段階目; CH3OH:H2O = 20-50:80-50,18分~30分(濃度勾配は直線増加)
流量:4.5 mL/min
[11C]アセトアミノフェンの保持時間 17.8分
上記のようにして合成した[11C]アセトアミノフェンの分取HPLCのチャートを図4に示す。この図から、[11C]アセトアミノフェンに基づく明確なピーク(保持時間17.8分)が認められた。
・[2-11C]酢酸の各種アルコールによるエステル化反応。
実施例1の方法で製造した[2-11C]酢酸の生成を確認するために、硫酸存在下においてメチルアルコール、エチルアルコール及びイソプロピルアルコールと反応させて[2-11C]酢酸エステル体へと誘導化した。得られた反応液をradio-HPLC分析で測定した。その結果、図5に示すように、相当する[2-11C]酢酸エステルの生成が確認された。
実施例1の方法で製造した[2-11C]酢酸の生成を確認するために、硫酸存在下においてメチルアルコール、エチルアルコール及びイソプロピルアルコールと反応させて[2-11C]酢酸エステル体へと誘導化した。得られた反応液をradio-HPLC分析で測定した。その結果、図5に示すように、相当する[2-11C]酢酸エステルの生成が確認された。
以上のように、本発明によれば、約8GBqという非常に高い放射能の[2-11C]酢酸そのものを合成することができ、その反応生成物を縮合剤によってN -ヒドロキシフタルイミドと縮合させることにより、[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルへの化学変換を容易に進めることができる。また、こうして得られた[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルは、PET法に利用する場合において十分な放射能レベルを有する。
<[11C]ヨウ化メチルとトリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステルを用いた1段階での[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルの合成、および、[11C]アセトアミノフェンへの変換>
以下に示すように[11C]ヨウ化メチルとトリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステルを反応させて1段階で[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを合成し、さらに、4-アミノフェノールと反応させて[11C]アセトアミノフェンを合成した。
以下に示すように[11C]ヨウ化メチルとトリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステルを反応させて1段階で[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを合成し、さらに、4-アミノフェノールと反応させて[11C]アセトアミノフェンを合成した。
・トリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステルの調整
原料となるトリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステルは、ジクロロメタン溶媒中、N,N’-ジシクロヘキシルカルボキシイミド(DCC)あるいは1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド(EDC)の存在下に、トリフェニルシリルカルボン酸とN-ヒドロキシフタルイミドとを縮合して合成した。得られたトリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステルは、そのまま、次のPET放射性条件下の反応に使用した。
原料となるトリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステルは、ジクロロメタン溶媒中、N,N’-ジシクロヘキシルカルボキシイミド(DCC)あるいは1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド(EDC)の存在下に、トリフェニルシリルカルボン酸とN-ヒドロキシフタルイミドとを縮合して合成した。得られたトリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステルは、そのまま、次のPET放射性条件下の反応に使用した。
・トリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステルを用いた[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルの合成
Pd2(dba)3 (2.9 mg, 3.2μmol)およびP(o-tolyl)3 (3.8 mg, 12.7μmol)のTHF溶液(0.4 mL)に、約8 GBqの放射能をもつ[11C]ヨウ化メチルを30 mL/minのガス流量で吹き込んだ。その後、本溶液にH2O (0.05 mL)とトリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステル (10 mg, 22.2 μmol)を含むTHF溶液(0.05 mL)を添加し、得られた溶液を90℃で4分間反応を行った。反応溶液を分取HPLCに供して、目的の[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを含むフラクションをフラスコに集めて、減圧下エバポレーターにて濃縮した。こうして合成した[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルの分取HPLCのクロマトグラフを図6に示す。
HPLC分取条件
カラム:ナカライテスク AR-II 10 × 250 mm
ガードカラム: ナカライテスクAR-II 10 × 20 mm
溶出液:初期; CH3CN:H2O = 50:50, 0分~10分、2段階目; CH3CN:H2O = 50-70:50-30,10分~15分(濃度勾配は直線増加)
流量:5.0 mL/min
[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルの保持時間5.4分
・[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを用いた[11C]アセトアミノフェンの合成
上記の[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを含むエバポレーターのフラスコ内に、4-アミノフェノール(10 mg, 91 μmol)を含むエタノール溶液(0.5 mL)を添加し、その後、40℃で2分間、続いて60℃で2分間反応させた。減圧下、エバポレーターにて有機溶媒を除去し、残渣を分取HPLCに供して、目的の[11C]アセトアミノフェンを分離精製した。[11C]アセトアミノフェンの放射能は、約0.3 GBqであり、[11C]ヨウ化メチルの製造を含めた全行程の合成時間は約42分であった。[11C]ヨウ化メチルに基づいた[11C]アセトアミノフェンの崩壊補正放射化学収率は約16%であった。
なお、この実験では約8 GBqの[11C]ヨウ化メチルを用いたが、これの替りに30 GBqレベルの[11C]ヨウ化メチルを用いれば、単純計算で、1.0 GBq以上の放射能を持つ[11C]アセトアミノフェンが合成できることになる。したがって、この合成法は、実際の高放射能条件下におけるPET分子プローブ合成に対しても、十分な実用性があるものと判断された。
Pd2(dba)3 (2.9 mg, 3.2μmol)およびP(o-tolyl)3 (3.8 mg, 12.7μmol)のTHF溶液(0.4 mL)に、約8 GBqの放射能をもつ[11C]ヨウ化メチルを30 mL/minのガス流量で吹き込んだ。その後、本溶液にH2O (0.05 mL)とトリフェニルシリルカルボン酸フタルイミジルエステル (10 mg, 22.2 μmol)を含むTHF溶液(0.05 mL)を添加し、得られた溶液を90℃で4分間反応を行った。反応溶液を分取HPLCに供して、目的の[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを含むフラクションをフラスコに集めて、減圧下エバポレーターにて濃縮した。こうして合成した[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルの分取HPLCのクロマトグラフを図6に示す。
HPLC分取条件
カラム:ナカライテスク AR-II 10 × 250 mm
ガードカラム: ナカライテスクAR-II 10 × 20 mm
溶出液:初期; CH3CN:H2O = 50:50, 0分~10分、2段階目; CH3CN:H2O = 50-70:50-30,10分~15分(濃度勾配は直線増加)
流量:5.0 mL/min
[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルの保持時間5.4分
・[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを用いた[11C]アセトアミノフェンの合成
上記の[2-11C]酢酸フタルイミジルエステルを含むエバポレーターのフラスコ内に、4-アミノフェノール(10 mg, 91 μmol)を含むエタノール溶液(0.5 mL)を添加し、その後、40℃で2分間、続いて60℃で2分間反応させた。減圧下、エバポレーターにて有機溶媒を除去し、残渣を分取HPLCに供して、目的の[11C]アセトアミノフェンを分離精製した。[11C]アセトアミノフェンの放射能は、約0.3 GBqであり、[11C]ヨウ化メチルの製造を含めた全行程の合成時間は約42分であった。[11C]ヨウ化メチルに基づいた[11C]アセトアミノフェンの崩壊補正放射化学収率は約16%であった。
なお、この実験では約8 GBqの[11C]ヨウ化メチルを用いたが、これの替りに30 GBqレベルの[11C]ヨウ化メチルを用いれば、単純計算で、1.0 GBq以上の放射能を持つ[11C]アセトアミノフェンが合成できることになる。したがって、この合成法は、実際の高放射能条件下におけるPET分子プローブ合成に対しても、十分な実用性があるものと判断された。
この発明は上記発明の実施の態様及び実施例の説明に何ら限定されるものではない。特許請求の範囲を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。
本発明は、PET分子プローブ用標識化剤の製造原料として、医薬産業などにおいて利用することができる。
Buchanan, J. M., Hastings, A. B. & Nesbett, F. B. The role of carboxyl-labeled acetic, propionic, and butyric acids in liver glycogen formation. J. Biol. Chem. 150, 413-425 (1943).
Winstead, M. B., Lamb, J. F. & Winchell, H. S. Relationship of chemical structure to in vivo scintigraphic distribution patterns of 11C compounds: I. 11C-carboxylates. J. Nucl. Med. 14, 747-754 (1973).
Pike, V. W., Eakins, M. N., Allan, R. M. & Selwyn, A. P. Preparation of carbon-11 labelled acetate and palmitic acid for the study of mycocardial metabolism by emission-computerised axial tomography. J. Radioanal. Chem. 64, 291-297 (1981).
Pike, V. W., Eakins, M. N., Allan, R. M. & Selwyn, A. P. Preparation of [1-11C]acetate an agent for the study of myocardial metabolism by positron emission tomography. Int. J. Appl. Radiat. Isot. 33, 505-512 (1982).
Fiore, G. D. et al. Automated production of carbon-11 labelled acetate to allow detection of transient myocardial ischemia in man, using positron emission tomography. J. Radioanal. Nucl. Chem. 87, 1-14 (1984).
Pike, V. W., Horlock, P. L., Brown, C. & Clark, J. C. The remotely-controlled preparation of a 11C-labelled radiopharmaceutical [1-11C]acetate. Int. J. Appl. Radiat. Isot. 35, 623-627 (1984).
Norenberg, J. P., Simpson, N. R., Dunn, B. B. & Kiesewetter, D. O. Remote synthesis of [11C]acetate. Appl. Radiat. Isot. 43, 943-945 (1992).
Ishiwata, K., Ishii, S-I., Sasaki, T., Senda, M. & Nozaki, T. A distillation method of preparing C-11 labeled acetate for routine clinical use. Appl. Radiat. Isot. 44, 761-763 (1993).
Iwata, R., Ido, T. & Tada, M. Column extraction method for rapid preparation of [11C]acetic and [11C]palmitic acids. Appl. Radiat. Isot. 46, 117-121 (1995).
Berridge, M. S., Cassidy, E. H. & Miraldi, F. [11C]Acetate and [11C]methionine: improved syntheses and quality control. Appl. Radiat. Isot. 46, 173-175 (1995).
Kruijer, P., Linden T. T., Mooij, R., Visser, F. C. & Herscheid, J. D. M. A practical method for the preparation of [11C]acetate. Appl. Radiat. Isot. 46, 317-321 (1995).
Ishiwata, K., Ishii, S-I. & Senda, M. Successive preparation of 11C labeled sodium acetate and/or sodium hexanoate. Appl. Radiat. Isot. 46, 1035-1037 (1995).
Oberdorfer, F., Theobald, A. & Prenant, C. Simple production of [1-carbon-11]acetate. J. Nucl. Med. 37, 341-342 (1996).
Davenport, R. J., Dowsett, K. & Pike, V. W. A simple technique for the automated production of no-carrier-added [1-11C]acetate. Appl. Radiat. Isot. 48, 1117-1120 (1997).
Roeda, D., Dolle, F. & Crouzel, C. An improvement of [11C]acetate synthesis non-radioactive contaminants by irradiation-induced species emanating from the [11C]carbon dioxide production target. Appl. Radiat. Isot. 57, 857-860 (2002).
Moerlein, S. M., Gaehle, G. G. & Welch, M. J. Robotic preparation of sodium acetate C 11 injection for use in clinical PET. Nucl. Med. Biol. 29, 613-621 (2002).
Kihlberg, T., Valind, S. & Langstrom, B. Synthesis of [1-11C], [2-11C], [1-11C](2H3) and [2-11C]( 2H3)acetate for in vivo studies of myocardium using PET. Nucl. Med. Biol. 21, 1067-1072 (1994).
Claims (6)
- 2位の炭素が11Cで標識された酢酸。
- 2位の炭素が11Cで標識された酢酸イミジルエステル。
- 請求項3に記載の酢酸イミジルエステルを含有することを特徴とするPET分子プローブ用標識化剤。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2014082380A JP2017105711A (ja) | 2014-04-11 | 2014-04-11 | [2−11c]酢酸、[2−11c]酢酸イミジルエステル、及びそれらの製造方法 |
| JP2014-082380 | 2014-04-11 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| WO2015156131A1 true WO2015156131A1 (ja) | 2015-10-15 |
Family
ID=54287708
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PCT/JP2015/059091 Ceased WO2015156131A1 (ja) | 2014-04-11 | 2015-03-25 | [2-11c]酢酸、[2-11c]酢酸イミジルエステル、及びそれらの製造方法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2017105711A (ja) |
| WO (1) | WO2015156131A1 (ja) |
-
2014
- 2014-04-11 JP JP2014082380A patent/JP2017105711A/ja active Pending
-
2015
- 2015-03-25 WO PCT/JP2015/059091 patent/WO2015156131A1/ja not_active Ceased
Non-Patent Citations (4)
| Title |
|---|
| DATTA E. PONDE ET AL.: "18F-fluoroacetate: a potential acetate analog for prostate tumor imaging-in vivo evaluation of 18F-fluoroacetate versus 11C-acetate", JOURNAL OF NUCLEAR MEDICINE, vol. 48, no. 3, 2007, pages 420 - 428, XP002578050 * |
| GUNILLA B. JACOBSON ET AL.: "Synthesis of O- [11C]Acetyl CoA, O-[11C]Acetyl-L-carnitine, and L-[11C]carnitine labelled in specific positions, applied in PET studies on rhesus monkey", NUCLEAR MEDICINE AND BIOLOGY, vol. 24, no. Issue 5, 1997, pages 471 - 478, XP004400982 * |
| MIN GOO HUR ET AL.: "Development of the [11C] Acetate Synthesis Module", J KOREAN PHYS SOC, vol. 63, no. 7, 15 October 2013 (2013-10-15), pages 1390 - 1394, XP035351681 * |
| TOR KIHLBERG ET AL.: "Synthesis of [1-11C], [2-11C], [1-11C] (2H3) and [2-11C] (2H3) acetate for in vivo studies of myocardium using PET", NUCLEAR MEDICINE AND BIOLOGY, vol. 21, no. 8, 1994, pages 1067 - 72, XP026315476 * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2017105711A (ja) | 2017-06-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Yusubov et al. | Applications of iodonium salts and iodonium ylides as precursors for nucleophilic fluorination in Positron Emission Tomography. | |
| US9096647B2 (en) | Simplified one-pot synthesis of [18F]SFB for radiolabeling | |
| EP2070897A1 (en) | Method of rapid methylation, kit for preparing pet tracer and method of producing pet tracer | |
| EP3687980B1 (en) | Radiolabeled darapladib, analogs thereof and their use as imaging compounds | |
| Bratteby et al. | Aliphatic 18F‐Radiofluorination: Recent Advances in the Labeling of Base‐Sensitive Substrates | |
| Krasikova et al. | Phase Transfer catalysts and role of reaction environment in nucleophilc radiofluorinations in automated synthesizers | |
| EP2464637B1 (fr) | Derivés de composés à base de sultones substitués par des nucléophiles, notamment des radionucléides, et leur utilisation pour le marquage de macromolecules | |
| CN109438517A (zh) | 一种与羰基金属核心配位的双功能连接剂的配合物及其制备方法 | |
| TWI410396B (zh) | A new method for the production of organic compounds and the use of the compounds for radioactive halogen calibration of organic compounds | |
| CN113024542B (zh) | 一种氘代托品烷衍生物及其应用 | |
| US20190119316A1 (en) | New nucleophile-reactive sulfonated compounds for the (radio)labelling of (bio)molecules; precursors and conjugates thereof | |
| Vaidyanathan et al. | Propargyl 4-[18F] fluorobenzoate: a putatively more stable prosthetic group for the fluorine-18 labeling of biomolecules via click chemistry | |
| JP2017105711A (ja) | [2−11c]酢酸、[2−11c]酢酸イミジルエステル、及びそれらの製造方法 | |
| Pellegrini et al. | Synthesis and radiolabelling of DOTA-linked glutamine analogues with 67, 68Ga as markers for increased glutamine metabolism in tumour cells | |
| Bejot et al. | A practical synthesis of [18F] FtRGD: an angiogenesis biomarker for PET | |
| Chao et al. | A convenient route to new (radio) fluorinated and (radio) iodinated cyclic tyrosine analogs | |
| CN113105432B (zh) | 一种碳-11(11c)放射性药物及其制备方法和应用 | |
| US20230202944A1 (en) | Methods for Rapid Formation of Chemicals Including Positron Emission Tomography Biomarkers | |
| JP6037330B2 (ja) | 11c−標識チアミン及びその誘導体、11c−標識フルスルチアミン、チアミン前駆体、並びにpet用プローブ及びそれらを用いたイメージング方法 | |
| US11111199B2 (en) | Methods for preparing formaldehyde from carbon dioxide | |
| Rojas et al. | Efficient cysteine labelling of peptides with N-succinimidyl 4-[18 F] fluorobenzoate: stability study and in vivo biodistribution in rats by positron emission tomography (PET) | |
| CN112250680A (zh) | 一种新型黄连素衍生物及其合成方法和应用 | |
| JP2021520383A (ja) | [18f]sfbの一段階放射性合成 | |
| EP4382136A1 (en) | Cyclen based compounds and their gd(iii) complexes for use as multimodal pet/mri contrast agents | |
| JP2016050176A (ja) | 陽電子放出核種11cで標識したフマル酸の製造方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| 121 | Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application |
Ref document number: 15777585 Country of ref document: EP Kind code of ref document: A1 |
|
| NENP | Non-entry into the national phase |
Ref country code: DE |
|
| 122 | Ep: pct application non-entry in european phase |
Ref document number: 15777585 Country of ref document: EP Kind code of ref document: A1 |
|
| NENP | Non-entry into the national phase |
Ref country code: JP |











