WO2015064621A1

WO2015064621A1 - 新規融合体及びその検出法

Info

Publication number: WO2015064621A1
Application number: PCT/JP2014/078729
Authority: WO
Inventors: 賢吾竹内; 礼美朝賀; 征士坂田; 直也藤田; 量平片山
Original assignee: 公益財団法人がん研究会
Priority date: 2013-10-29
Filing date: 2014-10-29
Publication date: 2015-05-07
Also published as: JPWO2015064621A1

Abstract

　がんの新たな原因因子である融合体（融合タンパク質及びそれをコードする融合遺伝子）を解明し、この知見に基づき、新規の前記融合体、前記誘導体の検出方法、前記検出方法のためのキット及びプライマーセット、前記融合タンパク質であるポリペプチドの活性及び／又は発現の阻害物質のスクリーニング方法、ならびに前記阻害物質を含有するがん治療用医薬組成物を提供する。　本発明の融合タンパク質は、ＬＭＮＡ融合タンパク質又はＮＴＲＫ１融合タンパク質である。本発明の検出方法では、被験者から得た試料中の、前記融合タンパク質又は該融合タンパク質をコードする融合遺伝子を検出する。

Description

新規融合体及びその検出法

　本発明は、ＮＴＲＫ１キナーゼ領域を含む新規の融合タンパク質又は該融合タンパク質をコードする融合遺伝子、及びそれらの検出方法に関する。
　本発明は、ＬＭＮＡの少なくとも一部を含む新規の融合タンパク質又は該融合タンパク質をコードする融合遺伝子、及びそれらの検出方法に関する。

　染色体転座又は逆位等の結果、本来は別々の遺伝子が融合して融合遺伝子が作られる。これまで慢性骨髄性白血病におけるＢＣＲ－ＡＢＬ１融合体や、肺がんにおけるＥＭＬ４－ＡＬＫ融合体、肺がんを含む種々のがんにおけるＲＯＳ１融合体のように、キナーゼ遺伝子の一部を構成要素に含む融合遺伝子はしばしば発がんに本質的な役割を担い、その機能を抑制する薬剤は極めて有効な抗がん剤となることが知られている（非特許文献１、特許文献１及び特許文献２）。
　例えば、チロシンキナーゼ阻害剤のイレッサやタルセバの登場により、分子診断とがん治療効果の関係について、臨床で示されつつあり、分子診断による適応患者の選別により、患者を層別化した上での治療薬投与というコンセプトが広がりつつある。

　ＮＴＲＫ１（neurotrophic tyrosine kinase, receptor, type 1、Trk-A）は、受容体型チロシンキナーゼであり、ＮＧＦ（nerve growth factor）と結合する。細胞外ドメイン、１回膜貫通ドメイン及び細胞内キナーゼドメインを有し、神経系細胞の増殖・分化等に関与することが知られている（非特許文献２）。
　ＬＭＮＡ（lamin A/C）遺伝子は、ラミンＡ及びラミンＣタンパクをコードする。これらのラミンタンパクは真核細胞の核膜中に存在する核ラミナの主要な構成要素である（非特許文献３）。当該遺伝子が融合遺伝子を構成することは知られていない。

特許第４３０３３０３号公報ＷＯ２０１１／１６２２９５号パンフレット

Lugo TG et al., Science. 1990 Mar 2;247(4946):1079-1082 Martin-Zanca D et al., Mol Cell Biol. 1989 Jan;9(1):24-33 Fisher D et al., Proc. Nat. Acad. Sci. 83: 6450-6454, 1986

　本発明の課題は、がんの新たな原因因子である融合体（融合タンパク質及び融合遺伝子）を解明したことに基づき、融合タンパク質又は当該融合タンパク質をコードする融合遺伝子の検出方法、当該検出方法を用いたがんの診断方法、がん治療用医薬組成物の適用対象者の判定方法、前記検出方法のためのキット及びプライマーセット、前記融合タンパク質であるポリペプチドの活性及び／又は発現の阻害物質のスクリーニング方法、ならびに前記阻害物質を含有するがん治療用医薬組成物及び前記がん治療用医薬組成物を投与するがん治療方法を提供することにある。

　本発明者は、大腸がん患者から得た検体から、ＬＭＮＡ遺伝子の一部と、キナーゼであるＮＴＲＫ１遺伝子の一部とが融合した新規の融合遺伝子を単離同定し（実施例１～３）、当該融合遺伝子が大腸がん患者検体に存在することを見出した（実施例４～７）。
　本発明者は、これらの知見から、ＮＴＲＫ１融合タンパク質又は当該タンパク質をコードする融合遺伝子の検出方法を提供し（実施例４～７）、そのためのキット及びプライマーセットを提供し、この融合タンパク質又は当該融合タンパク質をコードする遺伝子を検出することにより、ＮＴＲＫ１阻害物質を用いた薬物治療の対象となるがん患者を判別することを可能とし、当該がん患者にＮＴＲＫ１阻害物質を投与する工程を含む、がんの治療方法を提供する。
　本発明者は、これらの知見から、ＬＭＮＡ融合タンパク質又は当該タンパク質をコードする融合遺伝子の検出方法を提供し（実施例４～７）、そのためのキット及びプライマーセットを提供し、この融合タンパク質又は当該融合タンパク質をコードする融合遺伝子を検出することにより、ＬＭＮＡ融合タンパク質阻害物質を用いた薬物治療の対象となるがん患者を判別することを可能とし、当該がん患者にＬＭＮＡ融合タンパク質阻害物質を投与する工程を含む、がんの治療方法を提供する。

　本発明は、以下の発明に関する：
［１］ＬＭＮＡ融合タンパク質。
［２］ＬＭＮＡとＮＴＲＫ１との融合タンパク質。
［３］以下の（ａ）～（ｄ）からなる群から選択されるポリペプチドである、［１］に記載の融合タンパク質：
（ａ）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
（ｂ）配列番号２で表されるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、
（ｃ）配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、及び
（ｄ）配列番号２で表されるアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／若しくは挿入されたアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド。
［４］［１］～［３］のいずれか一項に記載の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
［５］［４］に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
［６］［５］に記載のベクターで形質転換された細胞。
［７］被験者から得た試料中の、ＬＭＮＡ融合タンパク質又は該融合タンパク質をコードする融合遺伝子の検出方法。
［８］前記検出方法が、ＬＭＮＡタンパク質の切断、又は、ＬＭＮＡタンパク質をコードする遺伝子の切断、を検出する工程を含む、［７］に記載の検出方法。
［９］前記検出方法が、ＬＭＮＡタンパク質とそれ以外の他のタンパク質とから構築される融合タンパク質の存在、又は、前記融合タンパク質をコードする融合遺伝子の存在、を検出する工程を含む、［７］に記載の検出方法。
［１０］前記融合タンパク質が、ＬＭＮＡタンパク質とＮＴＲＫ１タンパク質との融合タンパク質である、［７］～［９］のいずれか一項に記載の検出方法。
［１１］前記融合タンパク質が、以下の（ａ）～（ｄ）からなる群から選択されるポリペプチドである、［７］～［１０］のいずれか一項に記載の検出方法：
（ａ）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
（ｂ）配列番号２で表されるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、
（ｃ）配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、及び
（ｄ）配列番号２で表されるアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／若しくは挿入されたアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド。
［１２］前記ＬＭＮＡ融合遺伝子が、［３］に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドである、［７］～［１１］のいずれか一項に記載の検出方法。
［１３］前記融合遺伝子が、ＤＮＡ又はｍＲＮＡである、［７］～［１２］のいずれか一項に記載の検出方法。
［１４］前記試料が、消化器由来試料である、［７］～［１３］のいずれか一項に記載の検出方法。
［１５］前記消化器が、消化管由来試料である、［１４］に記載の検出方法。
［１６］前記消化器が、下部消化管である、［１４］に記載の検出方法。
［１７］前記消化器が、大腸である、［１４］に記載の検出方法。
［１８］ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＬＭＮＡ遺伝子３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとを含む、ＬＭＮＡ融合遺伝子の検出用キット。
［１９］ＬＭＮＡ遺伝子と共にＬＭＮＡ融合遺伝子を構成する他の遺伝子の３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとを含む、ＬＭＮＡ融合遺伝子の検出用キット。
［２０］ＬＭＮＡタンパク質をコードするポリヌクレオチドの、５’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマー、ならびに、前記ポリヌクレオチドの３’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ融合遺伝子の検出用キット。
［２１］ＬＭＮＡタンパク質とＮＴＲＫ１タンパク質との融合タンパク質であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット。
［２２］以下の（ａ）～（ｄ）からなる群から選択されるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット：
（ａ）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
（ｂ）配列番号２で表されるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、
（ｃ）配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、及び
（ｄ）配列番号２で表されるアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／若しくは挿入されたアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド。
［２３］ＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域を特異的に認識できる抗ＬＭＮＡ抗体、及び、ＬＭＮＡタンパク質のＣ末端側領域を特異的に認識できる抗ＬＭＮＡ抗体を含む、ＬＭＮＡ融合タンパク質の検出用キット。
［２４］ＬＭＮＡタンパク質と共にＬＭＮＡ融合タンパク質を構成する他のタンパク質のＣ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体と、ＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体を含む、ＬＭＮＡ融合タンパク質の検出用キット。
［２５］前記他のタンパク質が、ＮＴＲＫ１タンパク質である、［２４］に記載のキット。
［２６］ＬＭＮＡタンパク質をコードするポリヌクレオチド部分から設計されるセンスプライマー及びＮＴＲＫ１タンパク質をコードするポリヌクレオチド部分から設計されるアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ遺伝子とＮＴＲＫ１遺伝子との融合遺伝子を検出するためのプライマーセットであって、アンチセンスプライマーは［２２］に記載のポリヌクレオチドにストリンジェントな条件下でアニールする核酸分子からなり、センスプライマーは［２２］に記載のポリヌクレオチドの相補鎖にストリンジェントな条件でアニールする核酸分子からなるプライマーセット。
［２７］ＬＭＮＡ遺伝子とＮＴＲＫ１遺伝子との融合遺伝子を検出するためのプライマーセットであって、配列番号１に示される塩基配列からなるポリヌクレオチドにストリンジェントな条件下でアニールする核酸分子からなるアンチセンスプライマー及び該ポリヌクレオチドの相補鎖にストリンジェントな条件下でアニールする核酸分子からなるセンスプライマーを含むプライマーセット。
［２８］配列番号１の塩基番号１から５６８間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドからなるセンスプライマー及び配列番号１の塩基番号５６９から２２５９間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドに対して相補的であるオリゴヌクレオチドからなるアンチセンスプライマー、あるいは、配列番号９の塩基番号１から７２６の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドからなるセンスプライマー及び配列番号９の塩基番号７２７から１８６６間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドに対して相補的であるオリゴヌクレオチドからなるアンチセンスプライマーを含む、プライマーセット。
［２９］（１）［３］に記載のポリペプチド、又は前記ポリペプチドを発現している細胞に試験物質を接触させる工程、
（２）前記ポリペプチドの活性及び／又は発現が阻害されるか否かを分析する工程、及び
（３）前記ポリペプチドの活性及び／又は発現を阻害する物質を選択する工程
を含む、前記ポリペプチドの活性及び／又は発現を阻害する物質をスクリーニングする方法。
［３０］前記ポリペプチドの活性及び／又は発現を阻害する物質が、ＬＭＮＡ融合体陽性のがんの治療剤である、［２９］に記載のスクリーニング方法。
［３１］前記がんが消化器がんである、［３０］に記載のスクリーニング方法。
［３２］前記がんが消化管がんである、［３０］に記載のスクリーニング方法。
［３３］前記がんが下部消化管がんである、［３０］に記載のスクリーニング方法。
［３４］前記がんが大腸がんである、［３０］に記載のスクリーニング方法。
［３５］ＬＭＮＡ融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質を含有する、ＬＭＮＡ融合体陽性のがんの治療用医薬組成物。
［３６］前記ＬＭＮＡ融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質が、キナーゼ阻害剤である、［３５］に記載の医薬組成物。
［３７］前記ＬＭＮＡ融合タンパク質が、［３］に記載のポリペプチドである、［３５］又は［３６］に記載の医薬組成物。
［３８］前記がんが消化器がんである、［３５］～［３７］のいずれか一項に記載の医薬組成物。
［３９］前記がんが消化管がんである、［３５］～［３７］のいずれか一項に記載の医薬組成物。
［４０］前記がんが下部消化管がんである、［３５］～［３７］のいずれか一項に記載の医薬組成物。
［４１］前記がんが大腸がんである、［３５］～［３７］のいずれか一項に記載の医薬組成物。
［４２］ＮＴＲＫ１融合タンパク質。
［４３］ＬＭＮＡとＮＴＲＫ１との融合タンパク質。
［４４］以下の（ａ）～（ｄ）からなる群から選択されるポリペプチドである、［４２］に記載の融合タンパク質：
（ａ）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
（ｂ）配列番号２で表されるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、
（ｃ）配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、及び
（ｄ）配列番号２で表されるアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／若しくは挿入されたアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド。
［４５］［４２］～［４４］のいずれか一項に記載の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
［４６］［４５］に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
［４７］［４６］に記載のベクターで形質転換された細胞。
［４８］被験者から得た試料中の、ＮＴＲＫ１融合タンパク質又は該融合タンパク質をコードする融合遺伝子の検出方法。
［４９］前記検出方法が、ＮＴＲＫ１タンパク質の切断、又は、ＮＴＲＫ１タンパク質をコードする遺伝子の切断、を検出する工程を含む、［４８］に記載の検出方法。
［５０］前記検出方法が、ＮＴＲＫ１タンパク質とそれ以外の他のタンパク質とから構築される融合タンパク質の存在、又は、前記融合タンパク質をコードする融合遺伝子の存在、を検出する工程を含む、［４８］に記載の検出方法。
［５１］前記融合タンパク質が、ＬＭＮＡタンパク質とＮＴＲＫ１タンパク質との融合タンパク質である、［４８］～［５０］のいずれか一項に記載の検出方法。
［５２］前記融合タンパク質が、以下の（ａ）～（ｄ）からなる群から選択されるポリペプチドである、４８～５１のいずれか一項に記載の検出方法：
（ａ）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
（ｂ）配列番号２で表されるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、
（ｃ）配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、及び
（ｄ）配列番号２で表されるアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／若しくは挿入されたアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド。
［５３］前記ＮＴＲＫ１融合遺伝子が、［４４］に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドである、［４８］～［５２］のいずれか一項に記載の検出方法。
［５４］前記融合遺伝子が、ＤＮＡ又はｍＲＮＡである、［４８］～［５３］のいずれか一項に記載の検出方法。
［５５］前記試料が消化器である、［４８］～［５４］のいずれか一項に記載の検出方法。
［５６］前記消化器が、消化管である、［５５］に記載の検出方法。
［５７］前記消化器が、下部消化管である、［５５］に記載の検出方法。
［５８］前記消化器が、大腸である、［５５］に記載の検出方法。
［５９］ＮＴＲＫ１遺伝子５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとを含む、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット。
［６０］ＮＴＲＫ１遺伝子と共にＮＴＲＫ１融合遺伝子を構成する他の遺伝子の５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとを含む、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット。
［６１］ＮＴＲＫ１タンパク質をコードするポリヌクレオチドの、５’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマー、ならびに、前記ポリヌクレオチドの３’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを含む、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット。
［６２］ＬＭＮＡタンパク質とＮＴＲＫ１タンパク質との融合タンパク質であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット。
［６３］以下の（ａ）～（ｄ）からなる群から選択されるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット：
（ａ）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
（ｂ）配列番号２で表されるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、
（ｃ）配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、及び
（ｄ）配列番号２で表されるアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／若しくは挿入されたアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド。
［６４］ＮＴＲＫ１タンパク質のＮ末端側領域を特異的に認識できる抗ＮＴＲＫ１抗体、及び、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域を特異的に認識できる抗ＮＴＲＫ１抗体を含む、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の検出用キット。
［６５］ＮＴＲＫ１タンパク質と共にＮＴＲＫ１融合タンパク質を構成する他のタンパク質のＮ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体と、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体を含む、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の検出用キット。
［６６］前記他のタンパク質が、ＬＭＮＡタンパク質である、［６５］に記載のキット。
［６７］ＬＭＮＡタンパク質をコードするポリヌクレオチド部分から設計されるセンスプライマー及びＮＴＲＫ１タンパク質をコードするポリヌクレオチド部分から設計されるアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ遺伝子とＮＴＲＫ１遺伝子との融合遺伝子を検出するためのプライマーセットであって、アンチセンスプライマーは［６３］に記載のポリヌクレオチドにストリンジェントな条件下でアニールする核酸分子からなり、センスプライマーは［６３］に記載のポリヌクレオチドの相補鎖にストリンジェントな条件でアニールする核酸分子からなるプライマーセット。
［６８］ＬＭＮＡ遺伝子とＮＴＲＫ１遺伝子との融合遺伝子を検出するためのプライマーセットであって、配列番号１に示される塩基配列からなるポリヌクレオチドにストリンジェントな条件下でアニールする核酸分子からなるアンチセンスプライマー及び該ポリヌクレオチドの相補鎖にストリンジェントな条件下でアニールする核酸分子からなるセンスプライマーを含むプライマーセット。
［６９］配列番号１の塩基番号１から５６８間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドからなるセンスプライマー及び配列番号１の塩基番号５６９から２２５９間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドに対して相補的であるオリゴヌクレオチドからなるアンチセンスプライマー、あるいは、配列番号９の塩基番号１から７２６の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドからなるセンスプライマー及び配列番号９の塩基番号７２７から１８６６間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドに対して相補的であるオリゴヌクレオチドからなるアンチセンスプライマーを含む、プライマーセット。
［７０］（１）［４４］に記載のポリペプチド、又は前記ポリペプチドを発現している細胞に試験物質を接触させる工程、
（２）前記ポリペプチドの活性及び／又は発現が阻害されるか否かを分析する工程、及び
（３）前記ポリペプチドの活性及び／又は発現を阻害する物質を選択する工程
を含む、前記ポリペプチドの活性及び／又は発現を阻害する物質をスクリーニングする方法。
［７１］前記ポリペプチドの活性及び／又は発現を阻害する物質が、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがんの治療剤である、［７０］に記載のスクリーニング方法。
［７２］前記がんが消化器がんである、［７１］に記載のスクリーニング方法。
［７３］前記がんが消化管がんである、［７１］に記載のスクリーニング方法。
［７４］前記がんが下部消化管がんである、［７１］に記載のスクリーニング方法。
［７５］前記がんが大腸がんである、［７１］に記載のスクリーニング方法。
［７６］ＮＴＲＫ１融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質を含有する、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがんの治療用医薬組成物。
［７７］前記ＮＴＲＫ１融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質が、キナーゼ阻害剤である、［７６］に記載の医薬組成物。
［７８］前記ＮＴＲＫ１融合タンパク質が、［４４］に記載のポリペプチドである、［７６］又は［７７］に記載の医薬組成物。
［７９］前記がんが消化器がんである、［７６］～［７８］のいずれか一項に記載の医薬組成物。
［８０］前記がんが消化管がんである、［７６］～［７８］のいずれか一項に記載の医薬組成物。
［８１］前記がんが下部消化管がんである、［７６］～［７８］のいずれか一項に記載の医薬組成物。
［８２］前記がんが大腸がんである、［７６］～［７８］のいずれか一項に記載の医薬組成物。
［８３］ＬＭＮＡ融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質が、キナーゼ阻害剤である、ＬＭＮＡ融合体陽性のがんの治療方法。
［８４］ＬＭＮＡ融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質の、ＬＭＮＡ融合体陽性の癌の治療用医薬組成物の製造への使用。
［８５］前記ポリペプチドを発現している細胞が、［６］に記載の形質転換細胞である、［２９］～［３４］のいずれかに記載のスクリーニング方法。
［８６］ＮＴＲＫ１融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質が、キナーゼ阻害剤である、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがんの治療方法。
［８７］ＮＴＲＫ１融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質の、ＮＴＲＫ１融合体陽性の癌の治療用医薬組成物の製造への使用。
［８８］前記ポリペプチドを発現している細胞が、［４７］に記載の形質転換細胞である、［７０］～［７５］のいずれかに記載のスクリーニング方法。

　本発明の検出方法は、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがん（特に消化器がん）を検出する方法として利用できる。また、本発明の検出方法によれば、被験者におけるＮＴＲＫ１融合体陽性のがんを診断することができ、更に、ＮＴＲＫ１阻害物質の適用対象者であるか否かを判定することができる。本発明の検出用キット及びプライマーセットは、本発明の検出方法に用いることができる。更に、本発明の阻害物質スクリーニング方法によれば、当該融合体陽性のがん患者の治療に有効な薬剤をスクリーニングすることができる。前記スクリーニングにより得られた物質は、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがんの治療用医薬組成物の有効成分として使用することができ、また、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがんの治療に用いることができる。
　本発明の検出方法は、ＬＭＮＡ融合体陽性のがん（特に消化器がん）を検出する方法として利用できる。また、本発明の検出方法によれば、被験者におけるＬＭＮＡ融合体陽性のがんを診断することができ、更に、ＬＭＮＡ阻害物質の適用対象者であるか否かを判定することができる。本発明の検出用キット及びプライマーセットは、本発明の検出方法に用いることができる。更に、本発明の阻害物質スクリーニング方法によれば、当該融合体陽性のがん患者の治療に有効な薬剤をスクリーニングすることができる。前記スクリーニングにより得られた物質は、ＬＭＮＡ融合体陽性のがんの治療用医薬組成物の有効成分として使用することができ、また、ＬＭＮＡ融合体陽性のがんの治療に用いることができる。

３Ｔ３繊維芽細胞に融合遺伝子ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）を導入し、９日間培養後の状態を示す、図面に代わる顕微鏡写真である。３Ｔ３繊維芽細胞に融合遺伝子ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（ＷＴ）を導入し、９日間培養後の状態を示す、図面に代わる顕微鏡写真である。３Ｔ３繊維芽細胞に遺伝子導入試薬のみを処理し、９日間培養後の状態を示す、図面に代わる顕微鏡写真である。融合遺伝子ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）を導入した３Ｔ３繊維芽細胞をヌードマウスの皮下に接種した後、１６日後の状態を示す、図面に代わる写真である。遺伝子導入試薬のみの処理をおこなった３Ｔ３繊維芽細胞を、ヌードマウスの皮下に接種した後、１６日後の状態を示す、図面に代わる写真である。図４及び図５に示すヌードマウスにおける、接種後６乃至１７日後の腫瘍サイズの経時的変化を示すグラフである。融合遺伝子ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）を導入した３Ｔ３繊維芽細胞をヌードマウスの皮下に接種した後、１４日後の状態を示す、図面に代わる写真である。融合遺伝子ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（ＷＴ）を導入した３Ｔ３繊維芽細胞をヌードマウスの皮下に接種した後、１４日後の状態を示す、図面に代わる写真である。図７及び図８に示すヌードマウスにおける、接種後６乃至２０日後の腫瘍サイズの経時的変化を示すグラフである。ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ又はＷＴ）融合ポリペプチドを発現するＢａ／Ｆ３細胞における各ＮＴＲＫ１阻害剤（ＢＩＢＦ１１２０、ＣＥＰ７０１、フォレチニブ）に対する感受性を示すグラフである。ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）融合ポリペプチドを発現するＢａ／Ｆ３細胞を各ＮＴＲＫ１阻害剤で処理した後、各培養細胞由来の抽出物のウェスタンブロッティングを実施した結果を示す、図面に代わる写真である。ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（ＷＴ）融合ポリペプチドを発現するＢａ／Ｆ３細胞を各ＮＴＲＫ１阻害剤で処理した後、各培養細胞由来の抽出物のウェスタンブロッティングを実施した結果を示す、図面に代わる写真である。

≪定義等≫
　＜融合点＞
　本明細書における「ＮＴＲＫ１融合遺伝子における融合点」とは、ＮＴＲＫ１融合遺伝子におけるＮＴＲＫ１遺伝子由来のポリヌクレオチドと、ＮＴＲＫ１遺伝子と共に融合遺伝子を構築する他の遺伝子由来のポリヌクレオチドとが結合した箇所を意味する。例えば、配列番号１で表されるＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、塩基配列の第５１３番塩基と第５１４番の塩基の結合した箇所である。
　本明細書における「ＮＴＲＫ１融合タンパク質における融合点」とは、ＮＴＲＫ１融合タンパク質における、ＮＴＲＫ１遺伝子由来のポリヌクレオチドにコードされるポリペプチドと、ＮＴＲＫ１遺伝子と共に融合遺伝子を構築するもう一方の遺伝子由来のポリヌクレオチドにコードされるポリペプチドとが結合した箇所を意味する。

　本明細書における「ＬＭＮＡ融合遺伝子における融合点」とは、ＬＭＮＡ融合遺伝子におけるＬＭＮＡ遺伝子由来のポリヌクレオチドと、ＬＭＮＡ遺伝子と共に融合遺伝子を構築する他の遺伝子由来のポリヌクレオチドとが結合した箇所を意味する。例えば、配列番号１で表されるＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、塩基配列の第５１３番塩基と第５１４番の塩基の結合した箇所である。
　本明細書における「ＬＭＮＡ融合タンパク質における融合点」とは、ＬＭＮＡ融合タンパク質における、ＬＭＮＡ遺伝子由来のポリヌクレオチドにコードされるポリペプチドと、ＬＭＮＡ遺伝子と共に融合遺伝子を構築するもう一方の遺伝子由来のポリヌクレオチドにコードされるポリペプチドとが結合した箇所を意味する。

　＜ＮＴＲＫ１遺伝子又はＮＴＲＫ１タンパク質の切断＞
　更に、本明細書において、「ＮＴＲＫ１遺伝子の切断」又は「ＮＴＲＫ１遺伝子が切断されている」とは、遺伝子の転座又は逆位等によりＮＴＲＫ１遺伝子の連続性が失われている状態、すなわち、ＮＴＲＫ１遺伝子がＮＴＲＫ１キナーゼ領域を含むポリヌクレオチドと、それ以外のポリヌクレオチドと、の少なくとも２つのポリヌクレオチドとに分かれている状態を指す。なお、ＮＴＲＫ１遺伝子の切断点（break point）は、ＮＴＲＫ１遺伝子が切断されてできたポリヌクレオチドの少なくとも一つがコードするタンパク質がＮＴＲＫ１キナーゼ活性を保持する範囲で限定されない。
　また、「ＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子の切断」又は「ＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子が切断されている」とは、遺伝子の転座又は逆位等により他の遺伝子の連続性が失われている状態、すなわち、他の遺伝子が少なくとも２つのポリヌクレオチドに分かれている状態を指す。

　また、本明細書において、「ＮＴＲＫ１タンパク質の切断」又は「ＮＴＲＫ１タンパク質が切断されている」とは、ＮＴＲＫ１遺伝子が、前述のように切断されている状態であることに基づき、ＮＴＲＫ１タンパク質の連続性が失われている状態、すなわち、ＮＴＲＫ１タンパク質がＮＴＲＫ１キナーゼ領域を含むポリペプチドと、それ以外のポリペプチドと、の少なくとも２つのポリペプチドに分かれている状態を指す。なお、ＮＴＲＫ１タンパク質の切断点は、ＮＴＲＫ１タンパク質が切断されてできたポリペプチドの少なくとも一つがＮＴＲＫ１キナーゼ活性を保持する範囲で限定されない。
　また、「ＮＴＲＫ１タンパク質以外の他のタンパク質の切断」又は「ＮＴＲＫ１タンパク質以外の他のタンパク質が切断されている」とは、他の遺伝子が、前述のように切断されている状態であることに基づき、他のタンパク質の連続性が失われている状態、すなわち、他のタンパク質が少なくとも２つのポリペプチドに分かれている状態を指す。

　＜ＬＭＮＡ遺伝子又はＬＭＮＡタンパク質の切断＞
　更に、本明細書において、「ＬＭＮＡ遺伝子の切断」又は「ＬＭＮＡ遺伝子が切断されている」とは、遺伝子の転座又は逆位等によりＬＭＮＡ遺伝子の連続性が失われている状態、すなわち、ＬＭＮＡ遺伝子が少なくとも２つのポリヌクレオチドに分かれている状態を指す。なお、ＬＭＮＡ遺伝子の切断点（break point）は、ＬＭＮＡ遺伝子と共にＬＭＮＡ融合遺伝子を構築する他の遺伝子によってコードされるＬＭＮＡ融合タンパク質の腫瘍形成能を保持する範囲で限定されない。
　また、「ＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子の切断」又は「ＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子が切断されている」とは、遺伝子の転座又は逆位等により他の遺伝子の連続性が失われている状態、すなわち、他の遺伝子が少なくとも２つのポリヌクレオチドに分かれている状態を指す。

　また、本明細書において、「ＬＭＮＡタンパク質の切断」又は「ＬＭＮＡタンパク質が切断されている」とは、ＬＭＮＡ遺伝子が、前述のように切断されている状態であることに基づき、ＬＭＮＡタンパク質の連続性が失われている状態、すなわち、ＬＭＮＡタンパク質が少なくとも２つのポリペプチドに分かれている状態を指す。なお、ＬＭＮＡタンパク質の切断点は、ＬＭＮＡタンパク質と共にＬＭＮＡ融合タンパク質を構築する他のタンパク質の、融合タンパク質の腫瘍形成能を有するために必要な機能（例えば、当該他のタンパク質がキナーゼドメインを有する場合、キナーゼ活性）を保持する範囲で限定されない。
　また、「ＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質の切断」又は「ＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質が切断されている」とは、他の遺伝子が、前述のように切断されている状態であることに基づき、他のタンパク質の連続性が失われている状態、すなわち、他のタンパク質が少なくとも２つのポリペプチドに分かれている状態を指す。

　＜５’末端側領域／３’末端側領域、Ｎ末端側領域／Ｃ末端側領域＞
　５’末端側領域とは、融合遺伝子の場合は、融合点より５’末端側のポリヌクレオチド、野生型遺伝子（融合遺伝子でない遺伝子）の場合は、当該野生型遺伝子が融合遺伝子を構築した場合の、切断点より５’末端側のポリヌクレオチドを示す。なお、５’末端側領域は、ゲノムＤＮＡ、ｍＲＮＡ、及びｃＤＮＡのいずれにおける領域であってもよく、例えば、ゲノムＤＮＡの場合は、５’末端側ゲノム領域ともいう。
　３’末端側領域とは、融合遺伝子の場合は、融合点より３’末端側のポリヌクレオチド、野生型遺伝子（融合遺伝子でない遺伝子）の場合は、当該野生型遺伝子が融合遺伝子を構築した場合の、切断点より３’末端側のポリヌクレオチドを示す。なお、３’末端側領域は、ゲノムＤＮＡ、ｍＲＮＡ、及びｃＤＮＡのいずれにおける領域であってもよく、例えば、ゲノムＤＮＡの場合は、３’末端側ゲノム領域ともいう。
　Ｎ末端側領域とは、融合タンパク質の場合は、融合点よりＮ末端側のポリペプチド、野生型タンパク質（融合タンパク質でないタンパク質）の場合は、当該野生型タンパク質が融合遺伝子を構築した場合の、切断点よりＮ末端側のポリヌクレオチドを示す。
　Ｃ末端側領域とは、融合タンパク質の場合は、融合点よりＣ末端側のポリペプチド、野生型タンパク質（融合タンパク質でないタンパク質）の場合は、当該野生型タンパク質が融合遺伝子を構築した場合の、切断点よりＣ末端側のポリヌクレオチドを示す。
　例えば、配列番号１で表されるＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、５’末端側領域は、第１番～第５１３番、３’末端側領域は、第５１４番～１６５３番の塩基配列からなるポリヌクレオチドである。ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合タンパク質の場合、Ｎ末端側領域は、前記５’末端側領域にコードされるポリペプチドであり、Ｃ末端側領域は、前記３’末端側領域にコードされるポリペプチドである。

　＜リファレンス配列＞
　また、本明細書において、各由来遺伝子のｃＤＮＡリファレンス配列として、ＬＭＮＡはENST00000368300、ＮＴＲＫ１はENST00000524377を、タンパク質のアミノ酸リファレンス配列としては、ＬＭＮＡはENSP00000357283、ＮＴＲＫ１はENSP00000431418、を用いた。

　＜ストリンジェントな条件＞
　本明細書における「ストリンジェントな条件」とは、ハイブリダイゼーションのための条件として、「５×ＳＳＰＥ、５×Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ液、０．５％ＳＤＳ、５０％ホルムアミド、２００μｇ／ｍＬ鮭精子ＤＮＡ、４２℃オーバーナイト」、洗浄のための条件として、「０．５×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、４２℃」の条件である。「よりストリンジェントな条件」とは、ハイブリダイゼーションのための条件として、「５×ＳＳＰＥ、５×Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ液、０．５％ＳＤＳ、５０％ホルムアミド、２００μｇ／ｍＬ鮭精子ＤＮＡ、４２℃オーバーナイト」、洗浄のための条件として、「０．２×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、６５℃」の条件である。

　＜腫瘍形成能＞
　あるポリペプチドが「腫瘍形成能を有する」ことは、後述の実施例７の方法で確認することができる。具体的には、当該ポリペプチドを発現するプラスミドを導入した宿主（３Ｔ３繊維芽細胞）をヌードマウスの皮下に接種し、腫瘍形成の有無で判断する方法で確認する。

《本発明のポリペプチド、ポリヌクレオチド、ベクター、形質転換細胞》
　＜本発明のポリペプチド（１）＞
　本発明のポリペプチドは、ＮＴＲＫ１タンパク質由来のポリペプチドと、ＮＴＲＫ１タンパク質以外の他のタンパク質由来のポリペプチドと、から構築される融合ポリペプチド（「ＮＴＲＫ１融合タンパク質」ともいう）であって、前記ＮＴＲＫ１タンパク質由来のポリペプチドは、ＮＴＲＫ１タンパク質における少なくともＮＴＲＫ１キナーゼ領域のポリペプチドを含み、ＮＴＲＫ１タンパク質以外の他のタンパク質由来のポリペプチドは、他のタンパク質における少なくとも一部のポリペプチドを含む範囲で特に制限されない。
　前記他のタンパク質としては、ＮＴＲＫ１キナーゼドメインを含むＮＴＲＫ１タンパク質の一部と融合することにより、ＮＴＲＫ１キナーゼ活性化が恒常的に維持され、構築されたＮＴＲＫ１融合タンパク質が腫瘍形成能を有するものであれば特に制限されない。
　ＮＴＲＫ１融合タンパク質としては、前記他のタンパク質が、ＬＭＮＡタンパク質である融合タンパク質が特に好ましい。すなわち、少なくともＮＴＲＫ１キナーゼ領域のポリペプチドを含む、ＮＴＲＫ１タンパク質由来のポリペプチドと、ＬＭＮＡタンパク質の少なくとも一部のポリペプチドとを含む、ＬＭＮＡ遺伝子由来のポリペプチドと、から構築された、ＬＭＮＡタンパク質とＮＴＲＫ１タンパク質との融合タンパク質（以下、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合タンパク質ともいう）であることが好ましい。

　＜本発明のポリペプチド（２）＞
　本発明のポリペプチドは、ＬＭＮＡタンパク質由来のポリペプチドと、ＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質由来のポリペプチドと、から構築される融合ポリペプチド（「ＬＭＮＡ融合タンパク質」ともいう）であって、前記ＬＭＮＡタンパク質由来のポリペプチドは、ＬＭＮＡタンパク質における少なくとも一部のポリペプチドを含み、ＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質由来のポリペプチドは、当該他のタンパク質における少なくとも一部のポリペプチドを含む範囲で特に制限されない。
　前記他のタンパク質としては、ＬＭＮＡタンパク質と融合することにより、当該他のタンパク質の有する機能性ドメインの活性化が恒常的に維持され、構築されたＬＭＮＡ融合タンパク質が腫瘍形成能を有するものであれば特に制限されない。
　ＬＭＮＡ融合タンパク質としては、前記他のタンパク質が、キナーゼドメインを有するタンパク質である融合タンパク質が好ましく、ＮＴＲＫ１タンパク質である融合タンパク質が特に好ましい。すなわち、前記他のタンパク質がＮＴＲＫ１タンパク質である場合、少なくともＮＴＲＫ１キナーゼ領域のポリペプチドを含む、ＮＴＲＫ１タンパク質由来のポリペプチドと、ＬＭＮＡタンパク質の少なくとも一部のポリペプチドとを含む、ＬＭＮＡ遺伝子由来のポリペプチドと、から構築された、ＬＭＮＡタンパク質とＮＴＲＫ１タンパク質との融合タンパク質（以下、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合タンパク質ともいう）であることが好ましい。

　本発明のポリペプチドの好適態様である「ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合タンパク質」としては、下記（ａ）～（ｄ）に記載のポリペプチドが特に好ましい：
（ａ）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
（ｂ）配列番号２で表されるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、
（ｃ）配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド（以下、相同ポリペプチドと称する）、及び
（ｄ）配列番号２で表されるアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／又は挿入されたアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド（以下、機能的等価改変体と称する）。

　配列番号２で表されるアミノ酸配列は、配列番号１で表される塩基配列によりコードされる配列である。また、配列番号１で表される塩基配列は、ＬＭＮＡ遺伝子の開始コドンＡＴＧからエクソン２までとＮＴＲＫ１遺伝子のエクソン１１からエクソン１７の停止コドンまでの塩基配列からなる。配列番号１で表される塩基配列の内、塩基番号１～５１３の配列はＬＭＮＡ遺伝子に由来し、塩基番号５１４～１６５３の配列はＮＴＲＫ１遺伝子に由来する。以下、配列番号１で表される塩基配列からなるポリヌクレオチドをＬＭＮＡｅｘ２－ＮＴＲＫ１ｅｘ１１と称する。

　「機能的等価改変体」において置換、欠失、及び／又は挿入可能なアミノ酸数は、１～数個であるが、好ましくは１～１０個、更に好ましくは１～７個、最も好ましくは１～５個である。

　「相同ポリペプチド」は、「配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも、腫瘍形成能を有するポリペプチド」であるが、該同一性が、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上、更に好ましくは９８％以上であるアミノ酸配列を含むポリペプチドが好ましい。

　なお、本明細書における前記「同一性」とは、ＮＥＥＤＬＥｐｒｏｇｒａｍ（J Mol Biol 1970; 48: 443-453）検索によりデフォルトで用意されているパラメータを用いて得られた値Ｉｄｅｎｔｉｔｙを意味する。前記のパラメータは以下のとおりである。
　Ｇａｐｐｅｎａｌｔｙ＝１０
　Ｅｘｔｅｎｄｐｅｎａｌｔｙ＝０．５
　Ｍａｔｒｉｘ＝ＥＢＬＯＳＵＭ６２

　＜本発明のポリヌクレオチド（１）＞
　本発明のポリヌクレオチドは、本発明のポリペプチド（すなわち、ＮＴＲＫ１融合タンパク質）をコードするポリヌクレオチド（「ＮＴＲＫ１融合遺伝子」ともいう）である限り、特に限定されるものではない。なお、「ＮＴＲＫ１融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド」は、ＮＴＲＫ１融合遺伝子において翻訳領域のみからなるポリヌクレオチドであっても、ＮＴＲＫ１融合遺伝子のゲノムＤＮＡ全長であっても、ＮＴＲＫ１融合遺伝子のｍＲＮＡやｃＤＮＡであってもよい。

　＜本発明のポリヌクレオチド（２）＞
　本発明のポリヌクレオチドは、本発明のポリペプチド（すなわち、ＬＭＮＡ融合タンパク質）をコードするポリヌクレオチド（「ＬＭＮＡ融合遺伝子」ともいう）である限り、特に限定されるものではない。なお、「ＬＭＮＡ融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド」は、ＬＭＮＡ融合遺伝子において翻訳領域のみからなるポリヌクレオチドであっても、ＬＭＮＡ融合遺伝子のゲノムＤＮＡ全長であっても、ＬＭＮＡ融合遺伝子のｍＲＮＡやｃＤＮＡであってもよい。

　＜本発明のベクター＞
　また、本発明のベクターは、前記本発明のポリヌクレオチドを含む限り、特に限定されるものではなく、真核生物又は原核生物の宿主細胞を形質転換できる適当なベクターに当該ポリヌクレオチドを組み込むことにより調製することができる。前記ベクターは、当該ポリヌクレオチドの発現に必要な配列、例えば、プロモーター、エンハンサーを含むことができ、更に、宿主への導入確認に必要な配列、例えば、薬剤耐性遺伝子を含むことができる。

　＜本発明の形質転換細胞＞
　本発明の形質転換細胞は、本発明のベクターにより、適当な宿主細胞、例えば、真核生物又は原核生物の宿主細胞を形質転換することにより調製することができる。本発明の形質転換細胞は、本発明のポリペプチドを製造するのに用いることができる。

≪本発明の検出方法に係る試料≫
　＜対象臓器＞
　本発明に係る検出方法は、対象臓器に生じるがんの検出に好適に用いることができる。被験者の被験部位（対象臓器）としては、本発明に係る融合体が存在している範囲で限定されないが、消化器が好ましく、消化管がより好ましく、胃腸が更に好ましく、下部消化管が更に好ましく、大腸が更に好ましい。
　より具体的には、本発明に係る検出方法は、消化器がんの検出に好適に、消化管がんの検出により好適に、胃腸がんの検出に更に好適に、下部消化管がんの検出に更に好適に、大腸がんの検出に更に好適に用いることができる。

　＜被験者からの採取物＞
　本発明に係る検出方法における、被験者から得た試料としては、被験者からの採取物（生体から分離した試料）、具体的には、任意の採取された体液（好ましくは血液）、被験者患部からの摘出検体、生検試料又は擦過検体、糞便、尿、消化管洗浄液等を用いることができる。前記消化管洗浄液は、消化管全体の洗浄液であっても、あるいは、少なくとも被験部位を含む消化管の洗浄液、例えば、下部消化管の洗浄液、大腸の洗浄液であってもよい。検出感度を考慮すると、前記対象臓器における被験部位の細胞が含まれる試料が好ましく、被験者の被験部位からの摘出検体又は生検試料が更に好ましい。

　＜採取物の調製＞
　本発明に係るＮＴＲＫ１融合遺伝子、又は、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の検出方法は、被験者から得た試料の組織切片、又は、細胞懸濁液等を作成し、組織切片又は細胞懸濁液に含まれる細胞に対し、当業者に周知の技法により、ＮＴＲＫ１融合遺伝子、又は、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することにより実施できる。あるいは、前述の被験者から得た試料から、可溶化液を調製し、ここに含まれる遺伝子、又は、タンパク質を抽出し、この抽出試料において、当業者に周知の技法により、ＮＴＲＫ１融合遺伝子、又は、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出してもよい。なお、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出とは、ＮＴＲＫ１融合遺伝子のゲノムＤＮＡの検出、当該ゲノムＤＮＡの転写産物であるｍＲＮＡ、又は、ｍＲＮＡを鋳型として得られるｃＤＮＡの検出のいずれであってもよい。

　本発明に係るＬＭＮＡ融合遺伝子、又は、ＬＭＮＡ融合タンパク質の検出方法は、被験者から得た試料の組織切片、又は、細胞懸濁液等を作成し、組織切片又は細胞懸濁液に含まれる細胞に対し、当業者に周知の技法により、ＬＭＮＡ融合遺伝子、又は、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することにより実施できる。あるいは、前述の被験者から得た試料から、可溶化液を調製し、ここに含まれる遺伝子、又は、タンパク質を抽出し、この抽出試料において、当業者に周知の技法により、ＬＭＮＡ融合遺伝子、又は、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出してもよい。なお、ＬＭＮＡ融合遺伝子の検出とは、ＬＭＮＡ融合遺伝子のゲノムＤＮＡの検出、当該ゲノムＤＮＡの転写産物であるｍＲＮＡ、又は、ｍＲＮＡを鋳型として得られるｃＤＮＡの検出のいずれであってもよい。

≪本発明の検出方法に係る検出対象≫
　＜ＮＴＲＫ１融合体：ＮＴＲＫ１融合遺伝子とＮＴＲＫ１融合タンパク質＞
　本発明の検出方法には、被験者から得た試料中の、ＮＴＲＫ１融合体の検出方法、すなわち、ＮＴＲＫ１キナーゼ領域を含む融合タンパク質（ＮＴＲＫ１融合タンパク質）の検出方法、又は、前記融合タンパク質をコードする融合遺伝子（ＮＴＲＫ１融合遺伝子）の検出方法が含まれる。
　＜ＬＭＮＡ融合体：ＬＭＮＡ融合遺伝子とＬＭＮＡ融合タンパク質＞
　本発明の検出方法には、被験者から得た試料中の、ＬＭＮＡ融合体の検出方法、すなわち、ＬＭＮＡ融合タンパク質の検出方法、又は、前記融合タンパク質をコードする融合遺伝子（ＬＭＮＡ融合遺伝子）の検出方法が含まれる。

≪本発明の検出方法の態様（融合タンパク質及び融合遺伝子の検出方法）≫
　本発明の検出方法には、被験者から得た消化器由来試料中の、ＮＴＲＫ１遺伝子の切断、又は、ＮＴＲＫ１遺伝子にコードされるポリペプチドの切断、を検出する工程を含む検出方法と、被験者から得た消化器由来試料中の、ＮＴＲＫ１遺伝子とそれ以外の他の遺伝子とから構築される融合遺伝子の存在、又は、前記融合遺伝子によってコードされる融合タンパク質の存在、を検出する工程を含む検出方法が含まれる。

　本発明の検出方法には、被験者から得た試料中の、ＬＭＮＡ遺伝子の切断、又は、ＬＭＮＡ遺伝子にコードされるポリペプチドの切断、を検出する工程を含む検出方法と、被験者から得た試料中の、ＬＭＮＡ遺伝子とそれ以外の他の遺伝子とから構築される融合遺伝子の存在、又は、前記融合遺伝子によってコードされる融合タンパク質の存在、を検出する工程を含む検出方法が含まれる。

　＜ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する態様＞
　以下、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する態様について述べるが、これらに限定されるものではない。
　なお、以下の各態様における遺伝子の特定の領域の検出は、その例示に関わらず、あらかじめ解析した塩基配列に基づいて設計されたプローブ又はプライマーを用いて行っても、あるいは、シーケンシングによって行ってもよい。
　ここで、正常試料（がんに罹患していない組織由来試料）には、ＮＴＲＫ１融合体のみならずＮＴＲＫ１遺伝子又はＮＴＲＫ１タンパク質も存在しないので、ＮＴＲＫ１遺伝子又はＮＴＲＫ１タンパク質自体の存在を検出することによってＮＴＲＫ１融合体を検出することもできる。

　〔ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する態様（１）〕
　〈ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する態様（１－ａ）〉
　ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する一態様として、ＮＴＲＫ１融合遺伝子が構築されているとき、ＮＴＲＫ１遺伝子が２つ以上のポリヌクレオチドに切断されていることに基づき、ＮＴＲＫ１遺伝子が切断されている状態、すなわち、ＮＴＲＫ１遺伝子５’末端側領域とＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域との連続性が失われていることを検出することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＮＴＲＫ１遺伝子５’末端側領域に特異的にハイブリダイズする第１のプローブと、ＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域に特異的にハイブリダイズする第２のプローブを用い、当該２つの遺伝子領域が染色体上で近接していないことを検出することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。あるいは、ＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域のみが存在することを検出することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。
　なお、ＮＴＲＫ１遺伝子由来のポリヌクレオチドと融合して融合遺伝子を構築している他の遺伝子が切断されている状態を前記方法で確認することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出してもよい。

　〈ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する態様（１－ｂ）〉
　他の一態様として、ＮＴＲＫ１遺伝子の、５’末端側領域と、３’末端側領域の発現量をそれぞれ特異的に検出し、その発現量の比を求めることにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。具体的には、例えば、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側領域の発現量と、ＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域の発現量とが異なる場合、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。
　あるいは、ＮＴＲＫ１遺伝子と共にＮＴＲＫ１融合遺伝子を構築しているＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子について、前記方法で確認することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出してもよい。

　〈ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する態様（１－ｃ）〉
　他の一態様として、ＮＴＲＫ１融合体の形成過程において、ＮＴＲＫ１遺伝子又はＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子の少なくとも一部の複製（duplication）を伴う場合、すなわち、ＮＴＲＫ１遺伝子由来の重複したポリヌクレオチド、及び、ＮＴＲＫ１遺伝子と共にＮＴＲＫ１融合遺伝子を構築しているＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子由来の重複したポリヌクレオチドとから、ＮＴＲＫ１融合遺伝子が構築されている場合、ＮＴＲＫ１遺伝子由来のポリヌクレオチド又は前記他の遺伝子由来のポリヌクレオチドの重複を検出することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。

　〔ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する態様（２）〕
　ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する一態様として、ＮＴＲＫ１融合遺伝子が、ＮＴＲＫ１遺伝子由来ポリヌクレオチドと、ＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子由来のポリヌクレオチドとが融合して構築されていることに基づき、ＮＴＲＫ１融合遺伝子における、ＮＴＲＫ１遺伝子由来のポリヌクレオチドの少なくとも一部と、ＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子由来のポリヌクレオチドの少なくとも一部とが連続して含まれる融合ポリヌクレオチドを検出することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子由来のポリヌクレオチドの５’末端側領域に特異的にハイブリダイズする第１のプローブと、ＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域に特異的にハイブリダイズする第２のプローブを用い、当該２つの遺伝子領域が染色体上で近接していることを検出することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。ＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子が、ＬＭＮＡの場合、すなわちＮＴＲＫ１融合遺伝子がＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子である場合、第１のプローブはＬＭＮＡ遺伝子由来のポリヌクレオチドの５’末端側領域に特異的にハイブリダイズするプローブを用いればよい。

　〔ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する態様（３）〕
　ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する一態様として、ＮＴＲＫ１融合遺伝子が、ＮＴＲＫ１遺伝子由来ポリヌクレオチドと、ＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子由来ポリヌクレオチドとが、融合点において融合して構築されていることに基づき、ＮＴＲＫ１融合遺伝子における、ＮＴＲＫ１遺伝子由来のポリヌクレオチドの少なくとも一部と、ＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子由来のポリヌクレオチドの少なくとも一部とが、融合点を含んで連続して含まれる融合ポリヌクレオチドを検出することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子由来のポリヌクレオチドの５’末端側領域に特異的にアニールする第１のプライマーと、ＮＴＲＫ１遺伝子由来のポリヌクレオチドの３’末端側領域に特異的にアニールする第２のプライマーとを用いてＰＣＲ反応を行い、融合点の存在を示す所定のＰＣＲ産物が得られることを確認することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。

　＜ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する態様＞
　以下、ＮＴＲＫ１タンパク質を検出する態様について述べるが、これらに限定されるものではない。

　〔ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する態様（１）〕
　〈ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する態様（１－ａ）〉
　ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する態様として、ＮＴＲＫ１融合遺伝子が構築されているとき、ＮＴＲＫ１遺伝子にコードされるＮＴＲＫ１タンパク質も切断されることに基づき、ＮＴＲＫ１タンパク質が切断されている状態、すなわち、ＮＴＲＫ１タンパク質のＮ末端側領域とＣ末端側領域とが連続せずに切断されていることを検出することにより、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＮＴＲＫ１タンパク質のＮ末端側領域に特異的に結合する第１の抗体と、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域に特異的に結合する第２の抗体を用い、当該２つの領域が、異なるタンパク質に存在することを確認することにより、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することができる。
　あるいは、ＮＴＲＫ１タンパク質と共に融合タンパク質を構築しているＮＴＲＫ１タンパク質以外の他のタンパク質が切断されている状態を前記方法により確認することで、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出してもよい。

　〈ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する態様（１－ｂ）〉
　他の一態様として、ＮＴＲＫ１タンパク質の、Ｎ末端側領域と、Ｃ末端側領域の発現量をそれぞれ特異的に検出し、その発現量の比を求めることにより、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することができる。具体的には、例えば、ＮＴＲＫ１タンパク質のＮ末端側領域の発現量と、ＮＴＲＫ１タンパク質Ｃ末端側領域の発現量とが異なることを指標として、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することができる。
　あるいは、ＮＴＲＫ１タンパク質と共にＮＴＲＫ１融合タンパク質を構築しているＮＴＲＫ１タンパク質以外の他のタンパク質について、前記方法で確認することにより、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出してもよい。

　〔ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する態様（２）〕
　ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する一態様では、ＮＴＲＫ１融合タンパク質が、ＮＴＲＫ１タンパク質由来ポリペプチドと、ＮＴＲＫ１タンパク質以外の他のタンパク質由来のポリペプチドとが融合して構築されていることに基づき、ＮＴＲＫ１融合タンパク質における、ＮＴＲＫ１タンパク質由来のポリペプチドの少なくとも一部と、前記他のタンパク質由来のポリペプチドの少なくとも一部が連続して含まれる融合ポリペプチドを検出することにより、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＮＴＲＫ１タンパク質以外の他のタンパク質のＮ末端側領域に特異的に結合する第１の抗体と、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域に特異的に結合する第２の抗体を用い、当該２つの領域が、同一のタンパク質に存在することを確認することにより、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することができる。

　〔ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する態様（３）〕
　ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する一態様では、ＮＴＲＫ１融合タンパク質が、ＮＴＲＫ１タンパク質由来ポリペプチドと、ＮＴＲＫ１タンパク質以外の他のタンパク質由来のポリペプチドとが融合点で融合して構築されていることに基づき、ＮＴＲＫ１融合タンパク質における、前記融合点を含むＮＴＲＫ１タンパク質由来のポリペプチドの少なくとも一部と、前記他のタンパク質由来のポリペプチドの少なくとも一部が連続して含まれる融合ポリペプチドを検出することにより、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の融合点を含むポリペプチドを特異的に認識する抗体を用いた免疫学的測定法により、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することができる。

　〔ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する態様（４）〕
　ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出する一態様では、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の活性を指標にＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することができる。
　具体的には、例えば、野生型ＮＴＲＫ１タンパク質に対して阻害活性のある物質を用いて野生型ＮＴＲＫ１タンパク質の活性を阻害した上で、ＮＴＲＫ１タンパク質のキナーゼ活性を測定し、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を含まない（野生型ＮＴＲＫ１タンパク質のみを含む）場合に比較して、活性が高いことを指標にＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出することができる。なお、ＮＴＲＫ１タンパク質のキナーゼ活性の測定には当業者に周知の方法を適宜選択することができ、例えば、ＮＴＲＫ１によりリン酸化を受ける分子のリン酸化状態を検出してもよい。

　なお、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の検出は、ＮＴＲＫ１融合タンパク質を構成する全長ポリペプチドの存在、あるいは、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の一部を構成するポリペプチドの存在を指標として行ってもよく、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の存在が確認できる範囲で制限されない。

　＜ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する態様＞
　以下、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する態様について述べるが、これらに限定されるものではない。
　なお、以下の各態様における遺伝子の特定の領域の検出は、その例示に関わらず、あらかじめ解析した塩基配列に基づいて設計されたプローブ又はプライマーを用いて行っても、あるいは、シーケンシングによって行ってもよい。

　〔ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する態様（１）〕
　〈ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する態様（１－ａ）〉
　ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する一態様として、ＬＭＮＡ融合遺伝子が構築されているとき、ＬＭＮＡ遺伝子が２つ以上のポリヌクレオチドに切断されていることに基づき、ＬＭＮＡ遺伝子が切断されている状態、すなわち、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域とＬＭＮＡ遺伝子３’末端側領域との連続性が失われていることを検出することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域に特異的にハイブリダイズする第１のプローブと、ＬＭＮＡ遺伝子３’末端側領域に特異的にハイブリダイズする第２のプローブを用い、当該２つの遺伝子領域が染色体上で近接していないことを検出することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。あるいは、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域のみが存在することを検出することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。
　なお、ＬＭＮＡ遺伝子由来のポリヌクレオチドと融合して融合遺伝子を構築している他の遺伝子が切断されている状態を前記方法で確認することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出してもよい。

　〈ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する態様（１－ｂ）〉
　他の一態様として、ＬＭＮＡ遺伝子の、５’末端側領域と、３’末端側領域の発現量をそれぞれ特異的に検出し、その発現量の比を求めることにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。具体的には、例えば、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側領域の発現量と、ＬＭＮＡ遺伝子３’末端側領域の発現量とが異なる場合、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。
　あるいは、ＬＭＮＡ遺伝子と共にＬＭＮＡ融合遺伝子を構築しているＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子について、前記方法で確認することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出してもよい。

　〈ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する態様（１－ｃ）〉
　他の一態様として、ＬＭＮＡ融合体の形成過程において、ＬＭＮＡ遺伝子又はＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子の少なくとも一部の複製（duplication）を伴う場合、すなわち、ＬＭＮＡ遺伝子由来の重複したポリヌクレオチド、及び、ＬＭＮＡ遺伝子と共にＬＭＮＡ融合遺伝子を構築しているＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子由来の重複したポリヌクレオチドとから、ＬＭＮＡ融合遺伝子が構築されている場合、ＬＭＮＡ遺伝子由来のポリヌクレオチド又は前記他の遺伝子由来のポリヌクレオチドの重複を検出することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。

　〔ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する態様（２）〕
　ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する一態様として、ＬＭＮＡ融合遺伝子が、ＬＭＮＡ遺伝子由来ポリヌクレオチドと、ＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子由来のポリヌクレオチドとが融合して構築されていることに基づき、ＬＭＮＡ融合遺伝子における、ＬＭＮＡ遺伝子由来のポリヌクレオチドの少なくとも一部と、ＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子由来のポリヌクレオチドの少なくとも一部とが連続して含まれる融合ポリヌクレオチドを検出することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子由来のポリヌクレオチドの３’末端側領域に特異的にハイブリダイズする第１のプローブと、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域に特異的にハイブリダイズする第２のプローブを用い、当該２つの遺伝子領域が染色体上で近接していることを検出することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。ＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子が、ＮＴＲＫ１の場合、すなわちＬＭＮＡ融合遺伝子がＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子である場合、第１のプローブはＮＴＲＫ１遺伝子由来のポリヌクレオチドの３’末端側領域に特異的にハイブリダイズするプローブを用いればよい。

　〔ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する態様（３）〕
　ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する一態様として、ＬＭＮＡ融合遺伝子が、ＬＭＮＡ遺伝子由来ポリヌクレオチドと、ＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子由来ポリヌクレオチドとが、融合点において融合して構築されていることに基づき、ＬＭＮＡ融合遺伝子における、ＬＭＮＡ遺伝子由来のポリヌクレオチドの少なくとも一部と、ＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子由来のポリヌクレオチドの少なくとも一部とが、融合点を含んで連続して含まれる融合ポリヌクレオチドを検出することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子由来のポリヌクレオチドの３’末端側領域に特異的にアニールする第１のプライマーと、ＬＭＮＡ遺伝子由来のポリヌクレオチドの５’末端側領域に特異的にアニールする第２のプライマーとを用いてＰＣＲ反応を行い、融合点の存在を示す所定のＰＣＲ産物が得られることを確認することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。

　＜ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する態様＞
　以下、ＬＭＮＡタンパク質を検出する態様について述べるが、これらに限定されるものではない。

　〔ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する態様（１）〕
　〈ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する態様（１－ａ）〉
　ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する態様として、ＬＭＮＡ融合遺伝子が構築されているとき、ＬＭＮＡ遺伝子にコードされるＬＭＮＡタンパク質も切断されることに基づき、ＬＭＮＡタンパク質が切断されている状態、すなわち、ＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域とＣ末端側領域とが連続せずに切断されていることを検出することにより、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域に特異的に結合する第１の抗体と、ＬＭＮＡタンパク質のＣ末端側領域に特異的に結合する第２の抗体を用い、当該２つの領域が、異なるタンパク質に存在することを確認することにより、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することができる。
　あるいは、ＬＭＮＡタンパク質と共に融合タンパク質を構築しているＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質が切断されている状態を前記方法により確認することで、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出してもよい。

　〈ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する態様（１－ｂ）〉
　他の一態様として、ＬＭＮＡタンパク質の、Ｎ末端側領域と、Ｃ末端側領域の発現量をそれぞれ特異的に検出し、その発現量の比を求めることにより、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することができる。具体的には、例えば、ＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域の発現量と、ＬＭＮＡタンパク質Ｃ末端側領域の発現量とが異なることを指標として、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することができる。
　あるいは、ＬＭＮＡタンパク質と共にＬＭＮＡ融合タンパク質を構築しているＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質について、前記方法で確認することにより、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出してもよい。

　〔ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する態様（２）〕
　ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する一態様では、ＬＭＮＡ融合タンパク質が、ＬＭＮＡタンパク質由来ポリペプチドと、ＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質由来のポリペプチドとが融合して構築されていることに基づき、ＬＭＮＡ融合タンパク質における、ＬＭＮＡタンパク質由来のポリペプチドの少なくとも一部と、前記他のタンパク質由来のポリペプチドの少なくとも一部が連続して含まれる融合ポリペプチドを検出することにより、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質のＣ末端側領域に特異的に結合する第１の抗体と、ＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域に特異的に結合する第２の抗体を用い、当該２つの領域が、同一のタンパク質に存在することを確認することにより、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することができる。

　〔ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する態様（３）〕
　ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する一態様では、ＬＭＮＡ融合タンパク質が、ＬＭＮＡタンパク質由来ポリペプチドと、ＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質由来のポリペプチドとが融合点で融合して構築されていることに基づき、ＬＭＮＡ融合タンパク質における、前記融合点を含むＬＭＮＡタンパク質由来のポリペプチドの少なくとも一部と、前記ＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質由来のポリペプチドの少なくとも一部が連続して含まれる融合ポリペプチドを検出することにより、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＬＭＮＡ融合タンパク質の融合点を含むポリペプチドを特異的に認識する抗体を用いた免疫学的測定法により、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することができる。

　〔ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する態様（４）〕
　ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する一態様では、ＬＭＮＡ融合タンパク質の活性を指標にＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することができる。
　具体的には、例えば、ＬＭＮＡタンパク質と共に融合タンパク質を構築するＬＭＮＡ以外の他のタンパク質が酵素活性を有するタンパク質である場合、ＬＭＮＡ融合タンパク質を含まない（野生型ＬＭＮＡタンパク質のみを含む）場合に比較して、当該酵素活性が高いことを指標に、ＬＭＮＡ融合タンパク質を検出することができる。なお、酵素活性の測定には当業者に周知の方法を適宜選択することができ、例えば、前記他のタンパク質がキナーゼ活性を有するタンパク質（好ましくはＮＴＲＫ１タンパク質）である場合、ＬＭＮＡ融合タンパク質によりリン酸化を受ける分子のリン酸化状態を検出してもよい。

　なお、ＬＭＮＡ融合タンパク質の検出は、ＬＭＮＡ融合タンパク質を構成する全長ポリペプチドの存在、あるいは、ＬＭＮＡ融合タンパク質の一部を構成するポリペプチドの存在を指標として行ってもよく、ＬＭＮＡ融合タンパク質の存在が確認できる範囲で制限されない。

≪検出方法に用いる技法≫
　以下、ＮＴＲＫ１融合遺伝子（ゲノムＤＮＡ、ｍＲＮＡ、又はｃＤＮＡ）の検出、ＬＭＮＡ融合遺伝子（ゲノムＤＮＡ、ｍＲＮＡ、又はｃＤＮＡ）の検出、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の検出、ＬＭＮＡ融合タンパク質の検出の工程及び検出技法について、より詳細に説明するが、これらに制限されるものではない。
　なお、被験者から得た試料から、遺伝子（ゲノムＤＮＡ、又は、ｍＲＮＡ）又は、タンパク質を抽出した場合、あるいは、組織切片、又は、細胞懸濁液等を作成した場合において、調製された試料においてＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子、あるいは、ＮＴＲＫ１融合タンパク質又はＬＭＮＡ融合タンパク質を検出するために好適な技法は、当業者が適宜選択することができる。

　＜融合遺伝子の検出＞
　ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子の検出は、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子のゲノムＤＮＡの検出、当該ゲノムＤＮＡの転写産物であるｍＲＮＡの検出、又は、ｍＲＮＡを鋳型として得られるｃＤＮＡの検出のいずれであってもよい。
　被験者から得た試料中の、ＮＴＲＫ１融合遺伝子（ゲノムＤＮＡ、又は、ｍＲＮＡ）又はＬＭＮＡ融合遺伝子（ゲノムＤＮＡ、又は、ｍＲＮＡ）を検出する技法としては、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子の少なくとも一部にハイブリダイズするプローブ（核酸プローブ等）を使用したハイブリダイゼーション技術、あるいは、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子の少なくとも一部にアニールするプライマーを用いた遺伝子増幅技術等、遺伝子の検出に用いられる当業者に周知のいかなる技法、及び、これらの技法を応用した技法を用いることができる。
　すなわち、ＰＣＲ、ＬＣＲ（Ligase chain reaction）、ＳＤＡ（Strand displacement amplification）、ＮＡＳＢＡ（Nucleic acid sequence-based amplification）、ＩＣＡＮ（Isothermal and chimeric primer-initiated amplification of nucleic acids）、ＬＡＭＰ（Loop-mediated isothermal amplification）法、ＴＭＡ法（Gen-Probe’s TMA system）、インサイチュハイブリダイゼーション法、マイクロアレイ法、ノーザンハイブリダイゼーション、サザンハイブリダイゼーション、ドットブロット法、ＲＮＡプロテクション法、ＤＮＡシーケンス、ＲＮＡシーケンス等のいかなる技法を用いてもよい。

　〔ゲノムＤＮＡの検出〕
　ゲノムＤＮＡの検出には、インサイチュハイブリダイゼーション技術を好適に用いることができる。インサイチュハイブリダイゼーション技術を利用した検出は、例えば、公知のＦＩＳＨ法に従って実施することができる。又は、クロモジェニックインサイチュハイブリダイゼーション（ＣＩＳＨ）法とシルバーインサイチュハイブリダイゼーション（ＳＩＳＨ）法を組み合わせたフュージョンアッセイ（fusion assay）で実施することができる。好適には、実施例４又は５に記載のＦＩＳＨ法スプリットアッセイ、又は、ＦＩＳＨ法フュージョンアッセイで検出することができる。

　あるいは、ゲノムＤＮＡの検出には、ＤＮＡシーケンス技術を好適に用いることができる。シーケンシングには、従来のサンガー法に基づくシーケンサーを使用してもよいが、解析の効率を考慮すると、次世代シーケンサーを使用することが好ましい（例えば、Metzker ML、Nat Rev Genet. 2010 Jan;11(1):31-46参照）。次世代シーケンサーとしては、Ｉｌｌｕｍｉｎａ社のＭｉＳｅｑ/ＨｉＳｅｑ、ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｇｉｅｓ社のＳＯＬｉＤシステム、Ｒｏｃｈｅ社の４５４シーケンスシステム（ＧＳＦＬＸ＋／ＧＳＪｕｎｉｏｒ）等が例示できる。シーケンシングにおいては、シーケンスキャプチャ技術等を用いて、融合遺伝子が存在している可能性がある領域を濃縮（enrich）することで、解析の効率を向上させることができる。シーケンスキャプチャ技術としては、Ｒｏｃｈｅ社のＲｏｃｈｅＮｉｍｂｌｅＧｅｎ、ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社のＳｕｒｅＳｅｌｅｃｔ等が例示できる。
　以下に、ゲノムＤＮＡの検出のための代表的な方法を例示するが、これらに限定されるものではない。

　〈ＦＩＳＨ法スプリットアッセイ〉
　ＮＴＲＫ１融合遺伝子のＦＩＳＨ法スプリットアッセイでは、検出用プローブとして、後述の実施例６で詳細に説明するように、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって蛍光標識したものと、同遺伝子の３’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって別の蛍光色素で標識したものとの組み合わせを使用する。正常な場合（野生型ＮＴＲＫ１遺伝子の場合）には、２つの遺伝子領域（各遺伝子ごとの５’末端側領域と３’末端側領域）が近接しているため、２つのシグナルが重なった色（例えば、赤色蛍光色素と緑色蛍光色素を使用する場合には、黄色）として検出されるのに対して、転座又は逆位等により２つの遺伝子領域が切断されている場合は、２種類の蛍光色素に由来するシグナル（例えば、赤色と緑色）が孤在性に検出される。従って、ＦＩＳＨ法スプリットアッセイでは、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側ゲノム領域とＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側ゲノム領域とが染色体上で近接していないことを検出することにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の存在を検出している。

　また、ＬＭＮＡ融合遺伝子のＦＩＳＨ法スプリットアッセイでは、検出用プローブとして、後述の実施例６で詳細に説明するように、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって蛍光標識したものと、同遺伝子の３’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって別の蛍光色素で標識したものとの組み合わせを使用する。正常な場合（野生型ＬＭＮＡ遺伝子の場合）には、２つの遺伝子領域（各遺伝子ごとの５’末端側領域と３’末端側領域）が近接しているため、２つのシグナルが重なった色（例えば、赤色蛍光色素と緑色蛍光色素を使用する場合には、黄色）として検出されるのに対して、転座又は逆位等により２つの遺伝子領域が切断されている場合は、２種類の蛍光色素に由来するシグナル（例えば、赤色と緑色）が孤在性に検出される。従って、ＦＩＳＨ法スプリットアッセイでは、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域とＬＭＮＡ遺伝子３’末端側ゲノム領域とが染色体上で近接していないことを検出することにより、ＬＭＮＡ融合遺伝子の存在を検出している。

　ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子が、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、検出用プローブとして、後述の実施例６に示すように、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって蛍光標識したものと、同遺伝子の３’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって別の蛍光色素で標識したものとの組み合わせ、あるいは、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって蛍光標識したものと、同遺伝子の３’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって別の蛍光色素で標識したものとの組み合わせを使用することにより、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。

　〈ＦＩＳＨ法フュージョンアッセイ〉
　ＮＴＲＫ１融合遺伝子のＦＩＳＨ法フュージョンアッセイでは、例えば、ＮＴＲＫ１融合遺伝子がＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、検出用プローブとして、後述の実施例５で詳細に説明するように、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって蛍光標識したものと、ＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって別の蛍光色素で標識したものとの組み合わせを使用することができる。正常な場合（野生型ＮＴＲＫ１遺伝子の場合）には、２種類の蛍光色素に由来するシグナル（例えば、赤色と緑色）が別々に離れて検出されるのに対して、転座又は逆位等により２つの遺伝子領域が近接している場合は、２つのシグナルが重なった色（例えば、黄色）として検出される。

　また、ＬＭＮＡ融合遺伝子のＦＩＳＨ法フュージョンアッセイでは、例えば、ＬＭＮＡ融合遺伝子がＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、検出用プローブとして、後述の実施例５で詳細に説明するように、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって蛍光標識したものと、ＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって別の蛍光色素で標識したものとの組み合わせを使用することができる。正常な場合（野生型ＬＭＮＡ遺伝子の場合）には、２種類の蛍光色素に由来するシグナル（例えば、赤色と緑色）が孤在性に検出されるのに対して、転座又は逆位等により２つの遺伝子領域が近接している場合は、２つのシグナルが重なった色（例えば、黄色）として検出される。

　〈ＦＩＳＨ法スプリットアッセイとフュージョンアッセイの組み合わせ〉
　上記、ＦＩＳＨ法フュージョンアッセイおよびスプリットアッセイは、同一の病理切片に対して同時におこなうこともできる。
　例えば、ＮＴＲＫ１融合遺伝子またはＬＭＮＡ融合遺伝子が、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、検出用プローブとして、後述の実施例７で詳細に説明するように、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって蛍光標識（例えば青色）したものと、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって別の蛍光色素（例えば赤色）で標識したものと、ＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであってさらに別の蛍光色素（例えば緑色）で標識したものと、の組み合わせを使用することができる。すなわち、異なる３色の蛍光色素（例えば、青色、赤色、緑色）でそれぞれのプローブを標識して用いる。

　正常な場合（野生型ＮＴＲＫ１遺伝子の場合）には、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側ゲノム領域とＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域が連続（近接）しているため、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側ゲノム領域と３’末端側ゲノム領域を標識したそれぞれ異なる蛍光標識の蛍光が重なったシグナル（例えば、赤色と緑色が重なった黄色）が検出され、かつ、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域を標識した蛍光色素のシグナル（例えば青色）が、孤在性に検出される。

　一方、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子が構成されている場合、遺伝子転座、欠失又は逆位等により、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側ゲノム領域が、本来の位置から失われ、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域とＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域が連続（挿入塩基を間に含んで連続する場合もある）して、融合点を形成することになる。このため、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域を標識した蛍光色素の蛍光と、ＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域を標識した蛍光色素の蛍光とが重なったシグナル（例えば、青色と緑色が重なった青緑色）のみが、当該融合遺伝子構成部位において検出され、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側ゲノム領域を標識した蛍光色素のシグナル（例えば赤色）は、当該融合遺伝子構成部位においては検出されなくなる。

　なお、このとき、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側ゲノム領域を標識した蛍光色素のシグナル（例えば赤色）は、孤在性に検出されるか、または、どこにも検出されないことになる。フュージョンアッセイおよびスプリットアッセイを同一の病理切片に対して同時におこなう本ＦＩＳＨアッセイは、両手法の結果を一つの病理切片上で得られるため、効率性、および、判定の信頼性向上の観点から好適である。

　一方、異なる蛍光色素で標識された２つのプローブを用い、前述の〈ＦＩＳＨ法スプリットアッセイ〉と〈ＦＩＳＨフュージョンアッセイ〉によって、融合遺伝子を構築する２つの遺伝子の切断と融合をそれぞれ検出する場合、複数の病理切片が必要になる。
　特に、融合遺伝子を構成する遺伝子同士が同一染色体上の近い距離に位置する場合（例えば、ＬＭＮＡとＮＴＲＫ１等）、フュージョンアッセイだけを行った場合では、遺伝子転座、欠失又は逆位等が起きていないにも関わらず、融合遺伝子を構成する一つの遺伝子の５’末端側領域と、融合遺伝子を構成する他の遺伝子の３’末端側領域が近いために、見る角度等によっては、近接したシグナル（例えば青緑色）が観察され、偽陽性の判定が生じる恐れがある。その際、融合遺伝子を構成する他の遺伝子（ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、ＮＴＲＫ１遺伝子）の５’末端側のシグナル（例えば赤色）が、融合遺伝子構成部位に、近接して検出されないことを確認することにより、偽陽性の判定を回避することができるため、好ましい。

　なお、融合遺伝子が構成された時に孤在性を示すシグナル（例えば赤色）のプローブは、例えば、融合遺伝子がＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１遺伝子の場合、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端領域に限らず、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域と、ＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域との間のゲノム領域内にハイブリダイズするよう設計すれば、同様の効果を得ることができる。

　また、例えばＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、それぞれの構成遺伝子の５’末端側ゲノム領域または３’末端側ゲノム領域をカバーするポリヌクレオチドであって、すべて異なる蛍光色素で標識された４種のプローブを同時に用いれば、ＬＭＮＡ遺伝子とＮＴＲＫ１遺伝子それぞれの切断、および、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域とＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域との融合を一つの病理切片上で検出することができる。

　〈検出に用いるプローブ（ゲノム用）〉
　ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出するための、ハイブリダイゼーションに用いるプローブとしては、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の少なくとも一部のヌクレオチド又はそれらの相補鎖にストリンジェントな条件下で（好ましくはよりストリンジェントな条件下で）ハイブリダイズするプローブが好ましい。

　例えば、融合点を含むＮＴＲＫ１融合遺伝子のゲノムＤＮＡを検出する場合、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の融合点をはさんでその上流及び下流のそれぞれ１６塩基からなる、連続した少なくとも３２塩基の核酸分子（具体的には、配列番号１で表される塩基配列の第９９４番～第１０２５番）、又はそれらの相補鎖を含むプローブを用いてもよい。

　ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出するための、ハイブリダイゼーションに用いるプローブとしては、ＬＭＮＡ融合遺伝子の少なくとも一部のヌクレオチド又はそれらの相補鎖にストリンジェントな条件下で（好ましくはよりストリンジェントな条件下で）ハイブリダイズするプローブが好ましい。

　例えば、融合点を含むＬＭＮＡ融合遺伝子のゲノムＤＮＡを検出する場合、ＬＭＮＡ融合遺伝子の融合点をはさんでその上流及び下流のそれぞれ１６塩基からなる、連続した少なくとも３２塩基の核酸分子（具体的には、配列番号１で表される塩基配列の第９９４番～第１０２５番）、又はそれらの相補鎖を含むプローブを用いてもよい。

　例えば、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子が、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、ＦＩＳＨ法フュージョンアッセイに用いることのできるプローブとしては、ＬＭＮＡ遺伝子又はＮＴＲＫ１遺伝子のいずれか一方の遺伝子の５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、残る一方の遺伝子の３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとの組み合わせ（好ましくは、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとの組み合わせ）を用いることができ、より具体的には、後述の実施例５で使用したＢＡＣクローンの各組み合わせを挙げることができる。

　一方、例えば、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子が、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、ＦＩＳＨ法スプリットアッセイに用いることのできるプローブとしては、ＮＴＲＫ１遺伝子５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとの組み合わせ、あるいは、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＬＭＮＡ遺伝子３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとの組み合わせ（好ましくは、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとの組み合わせ）を用いることができ、より具体的には、後述の実施例６で使用したＢＡＣクローンの各組み合わせを挙げることができる。

　〔ｍＲＮＡの検出〕
　ｍＲＮＡの検出は、ノーザンハイブリダイゼーション法等によりｍＲＮＡ自体を解析することにより行っても、又は、当業者に周知の方法によりｍＲＮＡを鋳型として合成した、相補的ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）を解析することにより行ってもよい。
　上記ＲＮＡの検出には、シーケンス技術を好適に用いることができる。シーケンシングには、解析の効率を考慮すると、次世代シーケンサーを使用することが好ましい（例えば、Metzker ML、Nat Rev Genet. 2010 Jan;11(1):31-46参照）。次世代シーケンサーとしては、Ｉｌｌｕｍｉｎａ社のＭｉＳｅｑ/ＨｉＳｅｑ、ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｇｉｅｓ社のＳＯＬｉＤシステム、Ｒｏｃｈｅ社の４５４シーケンスシステム（ＧＳＦＬＸ＋／ＧＳＪｕｎｉｏｒ）等が例示できる。シーケンシングにおいては、後述の遺伝子増幅反応方法、シーケンスキャプチャ技術等を用いて、融合遺伝子が存在している可能性がある領域を濃縮（enrich）することで、解析の効率を向上させることができる。シーケンスキャプチャ技術としては、Ｒｏｃｈｅ社のＲｏｃｈｅＮｉｍｂｌｅＧｅｎ、ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社のＳｕｒｅＳｅｌｅｃｔ等が例示できる。

　〈遺伝子増幅反応方法による検出〉
　ｍＲＮＡは、検出対象であるＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子の少なくとも一部のポリヌクレオチドを特異的に増幅できるように設計したプライマーを用いた、遺伝子増幅反応方法にて検出することができる。以下に、ｍＲＮＡの検出のための代表的な方法を例示するが、これらに限定されるものではない。

　==ＰＣＲ法==
　例えば、ＰＣＲ法では、ＰＣＲ産物をアガロースゲル電気泳動によって分析し、エチジウムブロマイド染色等によって目的とするサイズの増幅断片が得られたか否かを確認できる。目的とするサイズの増幅断片が得られた場合は、被験者から得た試料において、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子が存在していたことになる。このように、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。
　本発明のＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出方法としては、被験者から得た試料中の、特定のポリヌクレオチドを遺伝子増幅反応により増幅する工程に加え、更に目的とするサイズの増幅断片が得られたか否かを検出する工程を含むことが好ましい。

　ＰＣＲ法は、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子を定量的に検出することに適している。
　従って、前述の<ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する態様（１－ｂ）>に記載のように、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側領域と３’末端側領域の発現量をそれぞれ特異的に検出し、その発現量の比を求めることによってＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する方法に好適に用いることができる。あるいは、ＮＴＲＫ１遺伝子と共にＮＴＲＫ１融合遺伝子を構築しているＮＴＲＫ１遺伝子以外の他の遺伝子の５’末端側領域と３’末端側領域の発現量をそれぞれ特異的に検出し、その発現量の比を求めることによって、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することができる。
　また、前述の<ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する態様（１－ｂ）>に記載のように、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側領域と３’末端側領域の発現量をそれぞれ特異的に検出し、その発現量の比を求めることによってＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する方法に好適に用いることができる。あるいは、ＬＭＮＡ遺伝子と共にＬＭＮＡ融合遺伝子を構築しているＬＭＮＡ遺伝子以外の他の遺伝子の５’末端側領域と３’末端側領域の発現量をそれぞれ特異的に検出し、その発現量の比を求めることによって、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出することができる。

　なお、ＰＣＲ法、及び、これに用いるプライマー設計法は、公知の方法に従って当業者が行うことができる。
　例えば、ＮＴＲＫ１遺伝子の５’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマー、ならびに、ＮＴＲＫ１遺伝子の３’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを用いることができる。
　例えば、ＬＭＮＡ遺伝子の５’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマー、ならびに、ＬＭＮＡ遺伝子の３’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを用いることができる。

　==リアルタイムＰＣＲ法==
　更には、ＰＣＲ法においては、遺伝子の増幅過程においてＰＣＲ増幅モニター（リアルタイムＰＣＲ）法（Genome Res., 6(10), 986, 1996）を用いることにより、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子の検出において、より定量的な解析を行うことが可能である。ＰＣＲ増幅モニター法としては、例えば、ＡＢＩＰＲＩＳＭ７９００（ＰＥバイオシステムズ社）を用いることが出来る。リアルタイムＰＣＲは公知の方法であり、そのための装置及びキットは市販されており、これらを利用して簡便に行える。

　より具体的には、例えばＮＴＲＫ１融合遺伝子がＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子であって、ｍＲＮＡを指標にしてＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出する場合、センスプライマー（５’－プライマー）を、ＬＭＮＡ遺伝子由来の任意の部分から、アンチセンスプライマー（３’－プライマー）を、ＮＴＲＫ１遺伝子由来の任意の部分から設計する。
　また、例えばＬＭＮＡ融合遺伝子がＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子であって、ｍＲＮＡを指標にしてＬＭＮＡ融合遺伝子を検出する場合、センスプライマー（５’－プライマー）を、ＬＭＮＡ遺伝子由来の任意の部分から、アンチセンスプライマー（３’－プライマー）を、ＮＴＲＫ１遺伝子由来の任意の部分から設計する。

　==マルチプレックスＰＣＲ==
　ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出するためのＰＣＲ法では、ＮＴＲＫ１遺伝子と融合してＮＴＲＫ１融合遺伝子を構成する他の各遺伝子、及び、複数の融合点に対応した上記センスプライマーを混ぜることにより、１反応液により全ての融合ポリヌクレオチドを検出するマルチプレックスＰＣＲ（Multiplex PCR）を設計することもできる。
　ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出するためのＰＣＲ法では、ＬＭＮＡ遺伝子と融合してＬＭＮＡ融合遺伝子を構成する他の各遺伝子、及び、複数の融合点に対応した上記センスプライマーを混ぜることにより、１反応液により全ての融合ポリヌクレオチドを検出するマルチプレックスＰＣＲ（Multiplex PCR）を設計することもできる。

　==質量分析による検出==
　上記遺伝子増幅反応方法を用いた検出方法において、増幅断片の解析のために、特開2012-100628記載の質量分析法を用いることができる。

　==検出に用いるプライマーセット==
　本発明のＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出するための検出方法に用いられるプライマーセットは、検出対象であるＮＴＲＫ１融合遺伝子の少なくとも一部を特異的に増幅でき、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出できるものであれば、特には限定されず、当業者が、検出対象ポリヌクレオチドの塩基配列に基づいて設計することができる。
　本発明のＬＭＮＡ融合遺伝子を検出するための検出方法に用いられるプライマーセットは、検出対象であるＬＭＮＡ融合遺伝子の少なくとも一部を特異的に増幅でき、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出できるものであれば、特には限定されず、当業者が、検出対象ポリヌクレオチドの塩基配列に基づいて設計することができる。
　ＰＣＲ増幅モニター法におけるプライマー設計は、プライマー設計ソフトウェア（例えば、Primer Express; PE Biosystems）などを利用してできる。また、ＰＣＲ産物のサイズが大きくなると増幅効率が悪くなるため、センスプライマーとアンチセンスプライマーは、ｍＲＮＡ又はｃＤＮＡを対象に増幅したときの増幅産物の大きさが１ｋｂ以下になるように設定するのが適切である。

　〈ハイブリダイゼーション法による検出〉
　ｍＲＮＡは、検出対象であるＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子の少なくとも一部のポリヌクレオチドにハイブリダイズするプローブを用いた、ハイブリダイゼーション法にて検出することができる。
　ハイブリダイゼーション技術を利用した検出は、例えば、ノーザンハイブリダイゼーション、ドットブロット法、ＤＮＡマイクロアレイ法、ＲＮＡプロテクション法などが挙げられる。

　==プローブ（ｍＲＮＡ用）==
　ハイブリダイゼーションに用いるプローブとしては、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝の少なくとも一部又はそれらの相補鎖にストリンジェントな条件下で（好ましくはよりストリンジェントな条件下で）ハイブリダイズするプローブが好ましい。

　＜融合タンパク質の検出＞
　被験者から得た試料中の、ＮＴＲＫ１融合タンパク質又はＬＭＮＡ融合タンパク質を検出する技法としては、タンパク質を解析するために用いられる当業者に周知いかなる技法、又は、これらの技法を応用したいかなる技法を用いてもよい。

　例えば、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の検出に用いる方法としては、ＮＴＲＫ１タンパク質、又は、ＮＴＲＫ１タンパク質と共にＮＴＲＫ１融合タンパク質を構築するＮＴＲＫ１タンパク質以外の他のタンパク質を特異的に認識する抗体、あるいは、ＮＴＲＫ１融合タンパクを特異的に認識する抗体を用いた免疫学的測定法（イムノアッセイ法）、酵素活性測定法（ＥＬＩＳＡ法）、２抗体サンドイッチＥＬＩＳＡ法、蛍光免疫測定法、放射免疫測定法、ウェスタンブロッティング法、免疫組織化学法、免疫沈降法、ｉＡＥＰ（intercalated antibody-enhanced polymer）法、ＦＲＥＴ法を例示することができる。あるいは、これらと組み合わせて、又は単独で、質量分析法、アミノ酸シーケンス法を用いることができる。

　例えば、ＬＭＮＡ融合タンパク質の検出に用いる方法としては、ＬＭＮＡタンパク質、又は、ＬＭＮＡタンパク質と共にＬＭＮＡ融合タンパク質を構築するＬＭＮＡタンパク質以外の他のタンパク質を特異的に認識する抗体、あるいは、ＬＭＮＡ融合タンパクを特異的に認識する抗体を用いた免疫学的測定法（イムノアッセイ法）、酵素活性測定法（ＥＬＩＳＡ法）、２抗体サンドイッチＥＬＩＳＡ法、蛍光免疫測定法、放射免疫測定法、ウェスタンブロッティング法、免疫組織化学法、免疫沈降法、ｉＡＥＰ（intercalated antibody-enhanced polymer）法、ＦＲＥＴ法を例示することができる。あるいは、これらと組み合わせて、又は単独で、質量分析法、アミノ酸シーケンス法を用いることができる。
　以下に、タンパク質の検出のための代表的な方法を例示するが、これらに限定されるものではない。

　〔検出に用いる代表的な手法〕
　抗体を用いる検出方法としては、上記公知の方法によればよいが、例えば以下の方法を用いることができる。

　〈免疫組織化学法〉
　例えば、検出対象のＮＴＲＫ１融合タンパク質又はＬＭＮＡ融合タンパク質が、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合タンパク質の場合、検出対象の融合タンパク質が存在している可能性のある組織切片に対し、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域のポリペプチドに結合する抗ＮＴＲＫ１抗体及びＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域のポリペプチドに結合する抗ＬＭＮＡ抗体を用いた免疫染色を行い、それらの抗体が近接していることを指標に、検出対象の融合タンパク質の存在を検出することもできる。また、ＮＴＲＫ１タンパク質のＮ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体と、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体を用いた免疫染色を行い、それらの抗体が近接せずに局在していることを指標に、検出対象の融合タンパク質の存在を検出することもできる。また、ＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体と、ＬＭＮＡタンパク質のＣ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体を用いた免疫染色を行い、それらの抗体が近接せずに局在していることを指標に、検出対象の融合タンパク質の存在を検出することもできる。また、融合点を含むポリペプチドに特異的に結合する抗体を用いた免疫染色を行い、検出対象の融合タンパク質の存在を検出することもできる。

　〈ウェスタンブロッティング法〉
　例えば、検出対象のＮＴＲＫ１融合タンパク質又はＬＭＮＡ融合タンパク質がＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合タンパク質の場合、検出対象の融合タンパク質が存在している可能性のある細胞抽出液を、当業者に周知の方法により電気泳動して細胞抽出液中のタンパク質を分離した後、メンブレンにブロッティングする。
　そして、タンパク質がブロッティングされたメンブレンに対し、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域のポリペプチドに結合する抗ＮＴＲＫ１抗体及びＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域に結合する抗ＬＭＮＡ抗体を用いた免疫染色を行い、メンブレン上の所望の位置に、抗ＮＴＲＫ１抗体と抗ＬＭＮＡ抗体が結合していることを指標に、検出対象の融合タンパク質の存在を検出することもできる。
　また、融合点を含むポリペプチドに特異的に結合する抗体を用い、当該抗体がメンブレン上の所望の位置に結合していることを指標に、検出対象の融合タンパク質の存在を検出することもできる。
　あるいは、抗ＮＴＲＫ１抗体を用い、当該抗体が、メンブレン上のＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合タンパク質に結合していることを指標に、検出対象の融合タンパク質の存在を検出することもできる。この際、メンブレン上で野生型ＮＴＲＫ１タンパク質が予測される位置とは異なる位置に抗ＮＴＲＫ１抗体が結合することを指標に、検出対象の融合タンパク質の存在を検出してもよい。
　抗ＬＭＮＡ抗体を用い、抗ＮＴＲＫ１抗体を用いた場合と同じ原理で、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合タンパク質を検出してもよい。

　〈免疫沈降法〉
　例えば、検出対象のＮＴＲＫ１融合タンパク質又はＬＭＮＡ融合タンパク質が、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合タンパク質の場合、検出対象の融合タンパク質が存在している可能性のある細胞抽出液に対し、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域のポリペプチドに結合する抗ＮＴＲＫ１抗体又はＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域のポリペプチドに結合する抗ＬＭＮＡ抗体のいずれか一方の抗体で免疫沈降を行い、その沈降物に対して残るもう一方の抗体で検出することで、検出対象の融合タンパク質の存在を検出することもできる。上記の通り、免疫沈降と検出をした後、更には、検出抗体により、検出したポリペプチドが目的の検出対象ポリペプチドの大きさであることを確認することが好ましい。
　あるいは、検出対象のＮＴＲＫ１融合タンパク質が存在している可能性のある細胞抽出液に対し、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域のポリペプチドに結合する抗ＮＴＲＫ１抗体で免疫沈降を行い、さらにその沈降物の質量分析を行うことにより、野生型ＮＴＲＫ１と異なる質量の抗ＮＴＲＫ１抗体と結合するタンパク質の存在を確認することで、検出対象の融合タンパク質の存在を検出することもできる。検出対象のＬＭＮＡ融合タンパク質が存在している可能性のある細胞抽出液に対し、ＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域のポリペプチドに結合する抗ＬＭＮＡ抗体で免疫沈降を行い、さらにその沈降物の質量分析を行うことにより、野生型ＬＭＮＡと異なる質量の抗ＬＭＮＡ抗体と結合するタンパク質の存在を確認することで、検出対象の融合タンパク質の存在を検出することもできる。

　〔検出に用いる抗体〕
　なお、本発明に係る検出方法に用いる抗体は、ＮＴＲＫ１融合タンパク質又はＬＭＮＡ融合タンパク質の所望の部位に特異的に結合する範囲で特に制限されず、モノクローナル抗体であってもポリクローナル抗体であってもよく、モノクローナル抗体及びポリクローナル抗体を組みあわせて用いることもできる。前記抗体としては、免疫グロブリンそれ自体であっても、抗原結合能を保持した抗体断片、例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２、又はＦｖでもよい。また、抗体の結合を検出するため、当業者に周知のいかなる標識やシグナル増幅法が用いられてもよい。

　＜標識手法＞
　上記遺伝子（ゲノムＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ等）及びタンパク質の検出方法において、プローブ、増幅産物、抗体等の標識は公知の技術を用いればよい。例えば、蛍光標識、放射性標識、酵素標識等を挙げることができる。
　プローブを用いた検出方法において、プローブを標識する場合、その標識方法は上記のとおり、公知の方法によればよく、例えば、ＢＡＣクローンから、標識された核酸プローブを作製する場合、ニックトランスレーション、ランダムプライム法等の公知手法を用いることができる。またその際、ビオチン－ｄＵＴＰ（例えば、Roche Applied Science社製）を用いてプローブをビオチン標識し、アビジンと結合させた、蛍光体、放射性同位体、酵素等、をさらに処理することでプローブを標識することができる。
　抗体を用いた検出方法において、抗体を標識する場合、その標識方法は上記のとおり、公知の方法によればよいが、例えば、下記の標識方法が挙げられる。

　〔ｉＡＥＰ（intercalated antibody-enhanced polymer）法〕
　検出対象となるタンパク質に結合する第一抗体と、ポリマー試薬の間に介在抗体を入れることにより、染色感度を上げることが可能である（Takeuchiら、Clin Cancer Res, 2009 May 1; 15(9):3143-3149）。

　〔蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）〕
　２つの抗体の近接を検出する手法として、例えば、ＦＲＥＴ現象を利用したプローブ（ＦＲＥＴプローブ）を用いることができる。抗体の一つをドナー蛍光物質（ＣＦＰ等）で標識し、他の抗体をアクセプター蛍光物質（ＹＦＰ等）で標識した場合、両者が十分に近い距離にあると、ＦＲＥＴ現象により、ＹＦＰが励起状態となり、基底状態に戻る際に蛍光を発する。この蛍光を検出することで、２つの抗体が近接していることを検出することができる。

≪ＮＴＲＫ１阻害物質による治療の適用対象の判定≫
　本発明の検出方法における検出対象のＮＴＲＫ１融合遺伝子又は検出対象のＮＴＲＫ１融合タンパク質が、被験者から得た試料から検出された場合は、当該被験者は、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがんを有する対象（患者）であり、ＮＴＲＫ１阻害物質による治療の適用対象となる。

≪ＬＭＮＡ阻害物質による治療の適用対象の判定≫
　本発明の検出方法における検出対象のＬＭＮＡ融合遺伝子又は検出対象のＬＭＮＡ融合タンパク質が、被験者から得た試料から検出された場合は、当該被験者は、ＬＭＮＡ融合体陽性のがんを有する対象（患者）であり、ＬＭＮＡ阻害物質による治療の適用対象となる。

≪検出用キット≫
　本発明の検出用キットには、検出対象のＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット、又は、検出対象のＮＴＲＫ１融合タンパク質の検出用キットが含まれる。
　本発明の検出用キットには、検出対象のＬＭＮＡ融合遺伝子の検出用キット、又は、検出対象のＬＭＮＡ融合タンパク質の検出用キットが含まれる
　本発明の検出対象のＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット、又は、ＬＭＮＡ融合遺伝子の検出用キットには、本発明の検出方法においてＦＩＳＨ法フュージョンアッセイ又はＦＩＳＨ法スプリットアッセイに用いることのできるプローブ、あるいは、本発明の検出方法における検出対象のＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子の少なくとも一部を特異的に増幅できるように設計したセンス及びアンチセンスプライマーが含まれる。センス及びアンチセンスプライマーセットは、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子の少なくとも一部のポリヌクレオチドであり、かつ、増幅対象であるポリヌクレオチドの増幅用のプライマーとして機能するポリヌクレオチドのセットである。
　また、本発明の検出対象のＮＴＲＫ１融合タンパク質又はＬＭＮＡ融合タンパク質の検出用キットには、本発明の検出方法において用いることができる抗体が含まれる。

　＜プローブ＞
　本発明のＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キットは、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の少なくとも一部のポリヌクレオチド、又は、その相補鎖にストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、前記ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出できるプローブを１種類、あるいは、２種類以上の組み合わせで含むことができる。
　本発明のＬＭＮＡ融合遺伝子の検出用キットは、ＬＭＮＡ融合遺伝子の少なくとも一部のポリヌクレオチド、又は、その相補鎖にストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、前記ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出できるプローブを１種類、あるいは、２種類以上の組み合わせで含むことができる。

　プローブとして、前述の≪検出方法に用いる技法≫に記載したいずれか１種類以上のプローブが例示できる。
　例えば、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子が、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の場合、ＮＴＲＫ１遺伝子由来ポリヌクレオチドにハイブリダイズする１種類以上の（好ましくは２種類以上の）プローブ、又は、ＬＭＮＡ遺伝子由来ポリヌクレオチドにハイブリダイズする１種類以上の（好ましくは２種類以上の）プローブ、のいずれかのみを含んでも、ＮＴＲＫ１遺伝子由来ポリヌクレオチドにハイブリダイズする１種類以上のプローブ、及び、ＬＭＮＡ遺伝子由来ポリヌクレオチドにハイブリダイズする１種類以上のプローブ、の両方を含んでも、あるいは、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の融合点を含むポリヌクレオチドにハイブリダイズする１種類以上のプローブ、又は、ＬＭＮＡ融合遺伝子の融合点を含むポリヌクレオチドにハイブリダイズする１種類以上のプローブを含んでもよい。

　＜プライマーセット＞
　本発明のＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キットは、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の少なくとも一部を特異的に増幅でき、ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出できるプライマーセットを１セット、あるいは、２セット以上の組み合わせで含むことができる。
　本発明のＬＭＮＡ融合遺伝子の検出用キットは、ＬＭＮＡ融合遺伝子の少なくとも一部を特異的に増幅でき、ＬＭＮＡ融合遺伝子を検出できるプライマーセットを１セット、あるいは、２セット以上の組み合わせで含むことができる。
　プライマーセットとして、前述の≪本発明の検出方法の態様≫又は≪検出方法に用いる技法≫に記載したいずれか１種類以上のプライマーセットが例示できる。

　本発明のプライマーセットには、好ましくは、
（１）ＬＭＮＡをコードする部分から設計されるセンスプライマー及びＮＴＲＫ１をコードする部分から設計されるアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ遺伝子とＮＴＲＫ１遺伝子との融合遺伝子を検出するためのプライマーセットであって、アンチセンスプライマーは「検出対象ポリヌクレオチド」にストリンジェントな条件下（好ましくは、よりストリンジェントな条件下）でアニールする核酸分子（好ましくは、少なくとも１６塩基の核酸分子）からなり、センスプライマーは「検出対象ポリヌクレオチド」の相補鎖にストリンジェントな条件（好ましくは、よりストリンジェントな条件下）でアニールする核酸分子（好ましくは、少なくとも１６塩基の核酸分子）からなるプライマーセット、が含まれる。

　また、前記プライマーセット（１）のより具体的な態様として、本発明のプライマーセットには、以下の（２）及び／又は（３）のプライマーセットが含まれる。

（２）配列番号１（ＬＭＮＡｅｘ２－ＮＴＲＫ１ｅｘ１１）の塩基番号１から５１３間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドからなるセンスプライマー（好ましくは配列番号６）及び配列番号１の塩基番号５１４から１６５３間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドに対して相補的であるオリゴヌクレオチドからなるアンチセンスプライマー（好ましくは配列番号７または配列番号８）のプライマーセット。

（３）配列番号９の塩基番号１から７２６の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドからなるセンスプライマー（好ましくは配列番号６）及び配列番号９の塩基番号７２７から１８６６間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドに対して相補的であるオリゴヌクレオチドからなるアンチセンスプライマー（好ましくは配列番号７または配列番号８）のプライマーセット。

　なお、配列番号９で表されるポリヌクレオチドの塩基配列は、配列番号１（ＬＭＮＡｅｘ２－ＮＴＲＫ１ｅｘ１１）で表される融合遺伝子の塩基配列について、さらにその非翻訳領域（untranslated region;UTR）をも含む塩基配列である。

　これらのプライマーセット（１）～（３）においては、センスプライマーとアンチセンスセンスプライマーの選択位置の間隔が１ｋｂ以下であるか、あるいは、センスプライマーとアンチセンスセンスプライマーにより増幅される増幅産物の大きさが１ｋｂ以下であることが好ましい。
　また、本発明のプライマーは、通常、１５～４０塩基、好ましくは１６～２４塩基、更に好ましくは１８～２４塩基、特に好ましくは２０～２４塩基の鎖長を有する。

　本発明のプライマーセットは、本発明の検出方法において、検出対象ポリヌクレオチドを増幅及び検出するために用いることができる。また、本発明のプライマーセットに含まれる各プライマーは、特に限定されるものではないが、例えば、化学合成法によって製造することができる。

　＜抗体＞
　本発明のＮＴＲＫ１融合タンパク質の検出用キットには、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の任意の部位に特異的に結合する抗体を１種類、あるいは、２種類以上の組み合わせで含むことができる。具体的には、前述の＜融合タンパク質の検出＞に記載した抗体が例示できる。
　本発明のＬＭＮＡ融合タンパク質の検出用キットには、ＬＭＮＡ融合タンパク質の任意の部位に特異的に結合する抗体を１種類、あるいは、２種類以上の組み合わせで含むことができる。具体的には、前述の＜融合タンパク質の検出＞に記載した抗体が例示できる。
　例えば、ＮＴＲＫ１融合タンパク質又はＬＭＮＡ融合タンパク質が、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合タンパク質の場合、ＮＴＲＫ１タンパク質由来ポリペプチドに結合する１種類以上の（好ましくは２種類以上の）抗体、又は、ＬＭＮＡタンパク質由来ポリペプチドに結合する１種類以上の（好ましくは２種類以上の）抗体、のいずれかのみを含んでも、ＮＴＲＫ１タンパク質由来ポリペプチドに結合する１種類以上の抗体、及び、ＬＭＮＡタンパク質由来ポリペプチドに結合する１種類以上の抗体、の両方を含んでも、あるいは、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の融合点を含むポリペプチドに結合する１種類以上の抗体、又は、ＬＭＮＡ融合遺伝子の融合点を含むポリヌクレオチドに結合する１種類以上の抗体を含んでもよい。

≪阻害物質のスクリーニング方法≫
　＜ポリペプチドを阻害する物質をスクリーニングする工程＞
　本発明の、阻害物質のスクリーニング方法は、前記検出対象ポリペプチドを阻害する物質をスクリーニングすることができ、
（１）検出対象ポリペプチド、又は前記ポリペプチドを発現している細胞に試験物質を接触させる工程、
（２）前記ポリペプチドが阻害されるか否かを分析する工程、及び
（３）前記ポリペプチドを阻害する物質を選択する工程
を含む。

　本明細書において、「ポリペプチドの阻害」には、ポリペプチドの活性の阻害と、ポリペプチドの発現の阻害とが含まれる。また、「阻害」は、少なくとも一部の阻害を意味する。

　＜阻害物質スクリーニング工程とその指標＞
　本発明のスクリーニング方法には、
（Ａ）精製又は粗製のポリペプチドを用いて、インビトロでポリペプチドの活性阻害を指標とする方法、
（Ｂ）ポリペプチドを発現している細胞を用いて、ポリペプチドの活性阻害を指標とする方法、
（Ｃ）ポリペプチドを発現している細胞を用いて、ポリペプチドの発現阻害を指標とする方法
が含まれる。

　〔（Ａ）精製又は粗製ポリペプチドを用い、活性阻害を指標とする方法〕
　前記方法（Ａ）には、インビトロでポリペプチドに試験物質を添加して接触させる工程、前記試験物質により前記ポリペプチドの活性が阻害されたか否かを、対照（試験物質を接触させなかったポリペプチド）と比較して分析する工程、ポリペプチドの活性を阻害した物質を選択する工程を含む方法が含まれる。
　インビトロにおけるポリペプチド活性の測定は、公知のキナーゼ活性測定法を用いることができ、例えば、キナーゼ反応により生成するＡＤＰ量を指標としても、あるいは、ポリペプチドのチロシンリン酸化レベルを指標としてもよく、市販のキナーゼ活性測定キットを用いることもできる。

　〔（Ｂ）ポリペプチド発現細胞を用い、活性阻害を指標とする方法〕
　前記方法（Ｂ）には、ポリペプチドを発現している細胞に試験物質を添加して接触させる工程、前記試験物質により前記ポリペプチドの活性が阻害されたか否かを、対照（試験物質を接触させなかった細胞）と比較して分析する工程、ポリペプチドの活性を阻害した物質を選択する工程を含む方法が含まれる。
　前記細胞におけるポリペプチド活性の測定は、公知のキナーゼ活性測定法を用いることができ、例えば、キナーゼ反応により生成するＡＤＰ量を指標としても、あるいは、ポリペプチドのチロシンリン酸化レベルを指標としてもよく、市販のキナーゼ活性測定キットを用いることもできる。

　〔（Ｃ）ポリペプチド発現細胞を用い、発現阻害を指標とする方法〕
　前記方法（Ｃ）には、ポリペプチドを発現している細胞に試験物質を添加して接触させる工程、前記試験物質により前記ポリペプチドの発現が阻害されたか否かを、対照（試験物質を接触させなかった細胞）と比較して分析する工程、ポリペプチドの発現を阻害した物質を選択する工程を含む方法が含まれる。
　前記細胞におけるポリペプチドの発現は、タンパク質又はｍＲＮＡの量を測定することにより分析することができる。タンパク質量の測定には、例えば、ＥＬＩＳＡ法、イムノブロット法を用いることができ、ｍＲＮＡ量の測定には、例えば、ＲＴ－ＰＣＲ法、ノーザンブロット法を用いることができる。

　ここで、ＮＴＲＫ１融合遺伝子は、腫瘍形成能を有する遺伝子である。従って、本発明の阻害物質スクリーニング方法で選択したポリペプチド阻害物質は、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがんの治療薬又はその候補物質として有用であり、本発明方法は、所望により、前記阻害物質がＮＴＲＫ１融合体陽性のがんに対する治療活性を有することを確認する工程を更に含むことができる。
　また、ＬＭＮＡ融合遺伝子は、腫瘍形成能を有する遺伝子である。従って、本発明の阻害物質スクリーニング方法で選択したポリペプチド阻害物質は、ＬＭＮＡ融合体陽性のがんの治療薬又はその候補物質として有用であり、本発明方法は、所望により、前記阻害物質がＬＭＮＡ融合体陽性のがんに対する治療活性を有することを確認する工程を更に含むことができる。

　前記確認工程は、公知の評価系を用いて実施することができ、例えば、培養細胞を用いるインビトロ評価系、腫瘍細胞を移植した担がんモデル動物を用いる評価系などを挙げることができる。
　前記ポリペプチド発現細胞は、本発明のポリヌクレオチドを、常法にしたがって、所望の細胞に導入することで得ることもできる（例えば、Molecular Cloning: A Laboratory Manual 4th Edition（2012）、Cold Spring Harbor Laboratory Press参照）。具体的には、例えば、本発明のＮＴＲＫ１融合遺伝子又はＬＭＮＡ融合遺伝子であるｃＤＮＡを、組換えベクターに導入し、これをさらに細胞に導入することで、前記ポリペプチド発現細胞（形質転換細胞）を得ることができる。

≪阻害物質を含有するがん治療用医薬組成物≫
　本発明の、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがん（例えば、消化器がん）の治療用医薬組成物は、ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はその転写産物に対する阻害物質を含む。例えば、本発明の阻害物質スクリーニング方法で得られる阻害物質（例えば、低分子化合物、二重鎖核酸（ｓｉＲＮＡを含む）、タンパク質（抗体又は抗体断片を含む）、ペプチド、又はそれ以外の化合物）を有効成分として含有し、所望により、製剤学的に許容される担体を含有することができる。
　本発明のＬＭＮＡ融合体陽性のがんの治療用医薬組成物は、ＬＭＮＡ融合遺伝子又はその転写産物に対する阻害物質を含む。例えば、本発明の阻害物質スクリーニング方法で得られる阻害物質（例えば、低分子化合物、二重鎖核酸（ｓｉＲＮＡを含む）、タンパク質（抗体又は抗体断片を含む）、ペプチド、又はそれ以外の化合物）を有効成分として含有し、所望により、製剤学的に許容される担体を含有することができる。

　＜ＮＴＲＫ１融合遺伝子又は転写産物、あるいは、ＬＭＮＡ融合遺伝子又は転写産物に対する阻害物質＞
　ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はその転写産物に対する阻害物質としては、キナーゼ阻害剤、例えば、ＮＴＲＫ１阻害物質、又は、ＮＴＲＫ１遺伝子と共に融合遺伝子を構築するもう一方の遺伝子又はその転写物質に対する阻害物質を挙げることができる。
　ＬＭＮＡ融合遺伝子又はその転写産物に対する阻害物質としては、ＬＭＮＡ遺伝子又はその転写物質、あるいは、ＬＭＮＡ遺伝子と共に融合遺伝子を構築するもう一方の遺伝子の少なくともいずれか一方に対する阻害物質を挙げることができる。例えば、前記もう一方の遺伝子がＮＴＲＫ１遺伝子の場合、阻害物質としてキナーゼ阻害剤を例示できる。

　〔低分子化合物〕
　前記阻害物質のうち、低分子化合物の具体例としては、AG879（CAS148741-30-4）、国際公開公報WO2008/045627、WO2008/073480に記載の化合物等を挙げることができる。

　また、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子又はその転写産物に対する阻害物質としては、例えば、ＢＩＢＦ１１２０（Selleck Chemicals LLS）、ＣＥＰ７０１（Calbiochem（登録商標）（Merck KGaA））、フォレチニブ（Selleck Chemicals LLS）を挙げることができる。

　〔二重鎖核酸〕
　二重鎖核酸は、二重鎖の核酸（ＲＮＡ又はＤＮＡ）部分と、好ましくはセンス鎖及びアンチセンス鎖の３’末端のオーバーハングとからなり、ＲＮＡｉを誘導する。ＲＮＡｉは進化的に保存された現象で、ＲＮａｓｅIIIエンドヌクレアーゼによって生じる２１～２３塩基の二重鎖核酸を介して起こる（Genes Dev. 15, 485-490, 2001）。３’側のオーバーハングはそれぞれ１又は２塩基の任意の核酸であるが、２塩基が好ましい。なお、前記塩基数（２１～２３塩基）は、オーバーハングを含むセンス鎖又はアンチセンス鎖の各々の塩基数である。また、センス鎖及びアンチセンス鎖は、同じ塩基数であることもできるし、異なる塩基数であることもできるが、同じ塩基数であることが好ましい。

　二重鎖核酸の３’側オーバーハングを構成するリボ核酸としては、例えば、Ｕ（ウリジン）、Ａ（アデノシン）、Ｇ（グアノシン）、又はＣ（シチジン）を用いることができ、３’側のオーバーハングを構成するデオキシリボ核酸としては、例えば、ｄＴ（デオキシチミジン）、ｄＡ（デオキシアデノシン）、ｄＧ（デオキシグアノシン）、又はｄＣ（デオキシシチジン）を用いることができる。

　本発明の医薬組成物の有効成分として用いることのできる二重鎖核酸は、ＮＴＲＫ１融合遺伝子に対する阻害作用又はＬＭＮＡ融合遺伝子に対する阻害作用を有するものであれば、特に限定されない。例えば、二重鎖部分が融合点を含むポリヌクレオチドの塩基配列、例えば、配列番号１の第５１３番～第５１４番を含む塩基配列に基づいて設計することができる。あるいは、二重鎖部分が、キナーゼ部分をコードするポリヌクレオチドの塩基配列に基づいて設計することができる。本発明の二重鎖核酸は、常法（例えば、J. Am. Chem. Soc., 120, 11820-11821, 1998; 及びMethods, 23, 206-217, 2001）により製造することができる。また、二重鎖核酸を委託製造する会社（例えば、ＲＮＡｉ社）は、当業者によく知られており、二重鎖核酸の製造に利用できる。また、ｓｉＲＮＡ配列設計システム（商用ｓｉＤｉｒｅｃｔ（登録商標）、ＲＮＡｉ社）により、二重鎖核酸を設計することができる。

　〔タンパク質・抗体〕
　本発明の医薬組成物の有効成分として用いることのできる抗体は、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の転写産物又はＬＭＮＡ遺伝子の転写産物、好ましくは、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１遺伝子の転写産物を阻害するものであれば、限定されない。例えば、ＮＴＲＫ１融合タンパク質又はＬＭＮＡ融合タンパク質の活性、好ましくはキナーゼ活性を阻害するものが挙げられる。

　以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。

［実施例１］臨床検体でのＮＴＲＫ１遺伝子異常のＦＩＳＨ法による検出
　目的遺伝子の５’末端側領域及び３’末端側領域を異なる色素で染め、遺伝子の転座又は逆位等を観察する方法が知られている。ＦＩＳＨ法の一種であるこの方法はスプリットアッセイ（split assay）と呼ばれている。スプリットアッセイでは、染色体転座又は逆位等を調べたい目的遺伝子の５’末端側領域及び３’末端側領域のそれぞれを異なる蛍光色素で標識したプローブで染める。例えば、テキサスレッド（TexasRed）（赤）標識及びＦＩＴＣ（緑）標識した２種類のプローブにて蛍光標識することにより、正常な場合（融合遺伝子が構築されていない場合）は１つの黄色のシグナル（緑色と赤色のシグナルが近傍に存在している状態）として検出され、転座又は逆位等が起きている場合は、緑色と赤色のシグナルが孤在性に検出される。

　臨床検体でのＮＴＲＫ１遺伝子異常をＦＩＳＨ法スプリットアッセイで検出した。手術により摘出され、２０％ホルマリンで固定化されパラフィンに包埋された大腸がん組織を４μｍの厚さで切り、スライドガラス上に乗せ病理切片を作製した。ＦＩＳＨ法は文献（Takeuchi K, Choi YL, Soda M, Inamura K, Togashi Y, Hatano S, Enomoto M, Takada S, Yamashita Y, Satoh Y, Okumura S, Nakagawa K, Ishikawa Y, Mano H. Multiplex reverse transcription-PCR screening for EML4-ALK fusion transcripts. Clin Cancer Res. 2008;14:6618-6624.）の方法に従い行った。作製した未染色の切片は、Ｈｉｓｔｏｌｏｇｙ　ＦＩＳＨアクセサリーキット（Dako社）で処理し、続いて、緑（ＦＩＴＣ）の蛍光標識したＮＴＲＫ１遺伝子５’末端側領域をカバーするＢＡＣ（bacterial artificial chromosome）クローン（クローン番号　CTD-2562B9）と、赤（TexasRed）の蛍光標識したＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域をカバーするＢＡＣクローン（クローン番号　CTD-2219E19）とを用いてハイブリダイゼーションした。更に続いて４，６－ジアミノ－２－フェニルインドール（4,6-diamino-2-phenylindole）で染色を行った。蛍光観察は蛍光顕微鏡ＢＸ５１（Olympus社）を使用した。緑と赤のシグナルが離れて観察されるゲノム構造異常が示唆される切片を見出した。約１５００例の病理検体での検討から１例のＮＴＲＫ１遺伝子領域のゲノム構造異常を示唆する検体（結腸がん患者由来）を見出した。

［実施例２］臨床検体でのＮＴＲＫ１融合ポリヌクレオチド遺伝子の同定
　ＦＩＳＨ法解析によりＮＴＲＫ１ゲノム構造異常が示唆された組織由来のＲＮＡをテンプレートに５’－ＲＡＣＥキット（SMARTer(TM) RACE cDNA Amplification Kit; Clonetech社）のプロトコールに従い、ＮＴＲＫ１遺伝子キナーゼ領域の５’側に存在する遺伝子を調べた。具体的には、ファーストストランドｃＤＮＡ（1st strand cDNA）合成は、臨床検体由来のＲＮＡ０．５μｇとＮＴＲＫ１遺伝子キナーゼコード領域に設計したリバースプライマー（配列番号３）を用いて行った。５’－ＲＡＣＥ（rapid amplification of cDNA ends）ＰＣＲは、キットに含まれるＵＰＭプライマー及びリバースプライマー（配列番号３）を用いてＤＮＡポリメラーゼ（AmpliTaq Gold(R)；ライフテクノロジーズジャパン株式会社）によるＰＣＲ反応を行った。
　本ＲＡＣＥ産物を電気泳動し、１－２ｋｂｐ付近のＤＮＡ断片を精製し、常法に従いＴＡクローニング後にシーケンス解析した。その結果、ＬＭＮＡ遺伝子の一部がＮＴＲＫ１遺伝子キナーゼ領域の５’側に融合していることが明らかとなった。

［実施例３］臨床検体でのＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリヌクレオチド遺伝子の単離
　ＦＩＳＨ法解析によりＮＴＲＫ１ゲノム構造異常が示唆され、融合する遺伝子が同定された大腸がん臨床検体由来のｃＤＮＡを鋳型として、ＤＮＡポリメラーゼ（PrimeStar HS DNAポリメラーゼ）を用いてＰＣＲを行い、増幅産物をｐＴ７Ｂｌｕｅ－２にクローニングした。プライマーセットとしては、フォワードプライマーlmna/ntrk1-A128-F（配列番号４）とリバースプライマーlmna/ntrk1-2034A-R（配列番号５）との組合せを用いた。
　得られた増幅産物の配列を確認した結果、ＬＭＮＡ遺伝子の開始コドンＡＴＧからエクソン２までとＮＴＲＫ１遺伝子のエクソン１１からエクソン１７の停止コドンまでの塩基配列からなるポリヌクレオチド（ＬＭＮＡｅｘ２－ＮＴＲＫ１ｅｘ１１；配列番号１）が取得できた。

　なお、ＬＭＮＡｅｘ２－ＮＴＲＫ１ｅｘ１１がコードするアミノ酸配列（配列番号２）に関して、ＮＴＲＫ１の登録アミノ酸配列（Ensemble database, Protein ID: ENSP00000431418）との比較により、Ｇ２２６Ｄのアミノ酸置換が認められた。なお、前記アミノ酸置換において、最初のアミノ酸「Ｇ」は登録アミノ酸配列におけるアミノ酸を、その後のアミノ酸番号「２２６」は配列番号２におけるアミノ酸番号を、最後のアミノ酸「Ｄ」は配列番号２で表されるアミノ酸配列におけるアミノ酸を、それぞれ、意味する。
　上記アミノ酸置換について、ＮＴＲＫ１－００７の登録アミノ酸配列（Ensemble database, Protein ID: ENSP00000431418）における相当箇所のアミノ酸番号で示した場合、前記Ｇ２２６Ｄは、Ｇ４７２Ｄと表すことができる。ＬＭＮＡｅｘ２－ＮＴＲＫ１ｅｘ１１がコードするアミノ酸配列（配列番号２）を、Ｇ４７２Ｄアミノ酸置換にちなんでＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）と称することがある。

［実施例４］ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出
　表１に示すプライマーを用いて、融合部を含む領域を直接増幅するＲＴ－ＰＣＲで融合遺伝子の検出を行い、融合遺伝子ｃＤＮＡががん組織に存在していることを示した。具体的には、検体由来ＲＮＡテンプレートに対して、ＬＭＮＡ遺伝子上に設計したフォワードプライマーlmna-131-F（配列番号６）と、ＮＴＲＫ１遺伝子上に設計したリバースプライマーntrk1-1455-R（配列番号７）又はntrk1-1350-R（配列番号８）とを使用してＰＣＲを行った。増幅産物を電気泳動したところ、それぞれのプライマー設定位置から予想されるサイズのバンド（７６２ｂｐ、６５８ｂｐ）が観察され、臨床検体を用いた融合遺伝子の検出が、これらの遺伝子上にプライマーを設計することによって可能であることが示された。

［実施例５］臨床検体でのＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子のＦＩＳＨ法フュージョンアッセイによる検出
　融合遺伝子がゲノム上で融合していることを確認するため、ＦＩＳＨ法フュージョンアッセイにて検出を行った。

　ＦＩＳＨ法フュージョンアッセイでは染色体転座又は逆位等によって近接する二つの目的遺伝子領域を異なる蛍光色素で標識したプローブで染める。例えば、ＴｅｘａｓＲｅｄ（赤）標識及びＦＩＴＣ（緑）標識した２種類のプローブにて蛍光標識することにより、正常な場合（融合遺伝子が構築されていない場合）は赤と緑はそれぞれのシグナル（赤色と緑色のシグナルが離れて存在している状態）として検出され、転座又は逆位等が起きることにより２つの遺伝子領域が近接している場合は、赤色と緑色のシグナルが重なり黄色として検出される。
　具体的には、赤（TexasRed）蛍光標識をした、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域をカバーするＢＡＣクローン（クローン番号　RP11-838A18）と、緑（FITC）の蛍光標識したＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域をカバーするＢＡＣクローン（クローン番号　CTD-2562B9）との組み合わせを使用した。
　蛍光観察は蛍光顕微鏡ＢＸ５１（Olympus社）を使用した。実施例４において融合遺伝子が陽性であった病理切片上でのフュージョンアッセイの結果、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域とＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域との近接したシグナル（黄）が観察され、融合遺伝子が染色体転座又は逆位等により生成されたことが確かめられた。
　この方法が当該融合遺伝子の存在を検出する方法として使えることがわかった。

［実施例６］臨床検体でのＬＭＮＡ遺伝子又はＮＴＲＫ１遺伝子のＦＩＳＨ法スプリットアッセイによる検出
　実施例１に記載の方法にしたがい、ＬＭＮＡ遺伝子又はＮＴＲＫ１遺伝子のＦＩＳＨ法スプリットアッセイを実施した。病理切片の作製は、実施例１と同様に実施した。作製した未染色の切片は、Ｈｉｓｔｏｌｏｇｙ　ＦＩＳＨアクセサリーキット（Dako社）で処理した。

　ＮＴＲＫ１遺伝子を対象としたスプリットアッセイの場合、赤（TexasRed）の蛍光標識をした、ＮＴＲＫ１遺伝子５’末端側領域をカバーするＢＡＣクローン（クローン番号　CTD-2219E19）と、緑（FITC）の蛍光標識をした、ＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域をカバーするＢＡＣクローン（クローン番号　CTD-2562B9）とを用いてハイブリダイゼーションした。更に続いて４，６－ジアミノ－２－フェニルインドール（4,6-diamino-2-phenylindole）で染色を行った。
　蛍光観察は蛍光顕微鏡ＢＸ５１（Olympus社）を使用した。実施例４において融合遺伝子が陽性であった病理切片上で、３’側のシグナル（本実施例では赤）が孤在性に観察されるゲノム構造異常が示唆される切片を見出した。

　ＬＭＮＡ遺伝子を対象としたスプリットアッセイの場合、緑（FITC）の蛍光標識をした、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域をカバーするＢＡＣクローン(クローン番号　RP11-838A18)と、赤（TexasRed）の蛍光標識をした、ＬＭＮＡ遺伝子３’末端側領域をカバーするＢＡＣクローン(クローン番号　RP11-16C15)とを用いた染色により、５’側のシグナル（本実施例では緑）が孤在性に観察される結果を得ることができる。
　この方法が当該融合遺伝子の存在を検出する方法として使えることがわかった。

［実施例７］臨床検体でのＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子のＦＩＳＨ法フュージョンアッセイおよびスプリットアッセイの組み合わせによる検出
　ＦＩＳＨ法フュージョンアッセイおよびスプリットアッセイを、同一の病理切片に対しておこなった。病理切片の作製は、実施例１と同様に実施した。作製した未染色の切片は、Ｈｉｓｔｏｌｏｇｙ　ＦＩＳＨアクセサリーキット（Dako社）で処理した。

　具体的には、青（Aqua）の蛍光標識をしたＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域をカバーするＢＡＣクローン（クローン番号　RP11-838A18）と、赤（TexasRed）の蛍光標識をした、ＮＴＲＫ１遺伝子５’末端側領域をカバーするＢＡＣクローン（クローン番号　CTD-2219E19）と、緑（FITC）の蛍光標識をした、ＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域をカバーするＢＡＣクローン（クローン番号　CTD-2562B9）とを用いてハイブリダイゼーションした。更に続いて４，６－ジアミノ－２－フェニルインドール（4,6-diamino-2-phenylindole）で染色を行った。
　蛍光観察は蛍光顕微鏡ＢＸ５１（Olympus社）を使用した。実施例４において融合遺伝子が陽性であった病理切片上で、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域とＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域との近接したシグナル（青緑）と、このシグナルから離れた孤在性のＮＴＲＫ１遺伝子５’末端側のシグナル（赤）が観察され、融合遺伝子の生成を伴うゲノム構造異常が示された。よって、この方法が当該融合遺伝子の存在を検出する方法として使用できる。

　特に、ＬＭＮＡとＮＴＲＫ１のように、融合遺伝子を構成する遺伝子同士が同一染色体上の近い距離に位置する場合、フュージョンアッセイだけでは、遺伝子転座等が起きていないにも関わらず、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域とＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域が近いために、見る角度等によっては、近接したシグナル（青緑）が観察され、偽陽性の判定が生じる恐れがある。その際、ＮＴＲＫ１遺伝子５’末端側のシグナル（赤）が、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側領域とＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側領域とが近接したシグナル（青緑）が観察される部位に近接していないことを確認することにより、偽陽性の判定を回避できる点で、本手法は好適である。

［実施例８］ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチドの腫瘍形成能の検討
　本実施例では、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチドをコードするｃＤＮＡとして、２種類のｃＤＮＡ、すなわち、実施例３において大腸がん臨床検体から取得した配列番号１のＬＭＮＡｅｘ２－ＮＴＲＫ１ｅｘ１１（以下、Ｇ４７２Ｄアミノ酸置換にちなんでＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）と称することがある）と、前記アミノ酸置換を元のアミノ酸「Ｇ」に置換した以外は同一配列からなるＬＭＮＡｅｘ２－ＮＴＲＫ１ｅｘ１１（以下、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（ＷＴ）と称することがある）とを使用して、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチドの腫瘍形成能を検討した。各ｃＤＮＡを発現ベクターｐＬｅｎｔｉ６（Invitrogen（登録商標）（Life Technologies社））に挿入して得られたｐＬｅｎｔｉ６－ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ又はＷＴ）をマウス繊維芽細胞株ＮＩＨ３Ｔ３細胞に導入し１０日間培養したところ、図１（ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）融合ポリペプチド発現）、図２（ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（ＷＴ）融合ポリペプチド発現）に示すように形質転換フォーカスが観察された。遺伝子導入試薬のみの処理をしたＮＩＨ３Ｔ３細胞（ｃｏｎｔｒｏｌ（図３））及び、ＬａｃＺを導入したＮＩＨ３Ｔ３細胞（図示せず）においては、形質転換フォーカスは認められなかった。すなわち、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチドを発現するベクターを導入した場合に限り、形質転換フォーカスが観察された。

　ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）融合ポリペプチドを発現するベクターを導入したＮＩＨ３Ｔ３細胞又は遺伝子導入試薬処理のみをおこなったＮＩＨ３Ｔ３細胞（ｃｏｎｔｒｏｌ）をヌードマウスの皮下に１×１０^６個ずつ接種したところ、１４日以降には融合ポリペプチドを発現するベクターを導入したＮＩＨ３Ｔ３細胞を接種したマウスにおいて腫瘍形成が確認された（図４）。遺伝子導入試薬処理のみをおこなったＮＩＨ３Ｔ３細胞（ｃｏｎｔｒｏｌ）を接種したマウスにおいては、腫瘍形成は確認されなかった（図５）。接種６日目以降の両マウスにおける腫瘍サイズを図６に示す。
　また、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）融合ポリペプチドを発現するベクターを導入したＮＩＨ３Ｔ３細胞と、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（ＷＴ）融合ポリペプチドを発現するベクターを導入したＮＩＨ３Ｔ３細胞との比較を行ったところ、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）融合ポリペプチド（図７）又はＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（ＷＴ）融合ポリペプチド（図８）のいずれについても、腫瘍形成が確認された。接種６日目以降の両マウスにおける腫瘍サイズを図９に示す。
　この結果より、Ｇ４７２Ｄのアミノ酸置換の有無にかかわらず、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチドが腫瘍形成能を持っていたことから、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリヌクレオチドは、がんの原因遺伝子であることが示された。
　なお、全長のＮＴＲＫ１ポリペプチドをコードするｃＤＮＡをＮＩＨ３Ｔ３細胞に導入したところ、Ｇ４７２ＤのＳＮＰの有無にかかわらず、形質転換フォーカスは観察されず、全長のＮＴＲＫ１ポリペプチドは腫瘍形成能を有しないことが確認された。

［実施例９］ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチド発現細胞の各ＮＴＲＫ１阻害剤に対する感受性の検討
　マウスリンパ系細胞株Ｂａ／Ｆ３細胞は、増殖因子であるＩＬ－３依存性細胞株であり、その増殖にＩＬ－３を必要とするが、がん化遺伝子（例えば、チロシンキナーゼ融合遺伝子）を導入することにより、ＩＬ－３を添加しなくても増殖できるようになることが知られている（Daley GQ and Baltimore D. Proc Natl Acad Sci USA. 1988 Dec;85(23):9312-9316.）。
　本実施例では、親株Ｂａ/Ｆ３細胞及び実施例８で作製したｐＬｅｎｔｉ６－ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ又はＷＴ）を導入したＢａ／Ｆ３細胞について、細胞数２０００の状態から、所定濃度の各ＮＴＲＫ１阻害剤（ＢＩＢＦ１１２０、ＣＥＰ７０１、フォレチニブ）を添加し、７２時間培養した後の細胞数をカウントすることにより、各ＮＴＲＫ１阻害剤に対する感受性を検討した。より具体的な試験方法については、例えば、Ｋａｔａｙａｍａらの文献（Katayama R et al., Sci Transl Med, 2012(4):120ra17）を参照することができる。

　結果を図１０に示す。コントロールである親株Ｂａ／Ｆ３細胞（ＩＬ－３濃度＝０．５ｎｇ／ｍＬ）では、各ＮＴＲＫ１阻害剤の濃度が細胞毒性を示す過剰量を超えない場合には、細胞増殖能に影響は認められなかった。一方、ｐＬｅｎｔｉ６－ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ又はＷＴ）を導入したＢａ／Ｆ３細胞（ＩＬ－３非添加）では、いずれのＮＴＲＫ１阻害剤においても、濃度依存的に細胞増殖が顕著に抑制された。
　この結果は、ＮＴＲＫ１阻害剤が、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子陽性のがん患者の治療に有効であることを示すと同時に、ｐＬｅｎｔｉ６－ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１を導入したＢａ／Ｆ３細胞を用いる本評価系が、当該融合遺伝子陽性のがん患者の治療に有効な薬剤をスクリーニングするために用いることができることを示すものである。

［実施例１０］ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチド発現細胞における各ＮＴＲＫ１阻害剤によるＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチドの自己リン酸化抑制の検討
　実施例９で確認した、各ＮＴＲＫ１阻害剤によるＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ又はＷＴ）融合ポリペプチド発現細胞の増殖抑制が、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチドのキナーゼ活性が阻害されたことによるものであることを確認するために、各ＮＴＲＫ１阻害剤で処理した各培養細胞由来抽出物のウェスタンブロッティングを行った。
　ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）融合ポリペプチドの結果を図１１に示す。抗体としては、抗リン酸化ＮＴＲＫ１抗体（図１１におけるｐＮＴＲＫ１；ｐＹ６７４）、抗ＮＴＲＫ１抗体（図１１のＮＴＲＫ１を使用した。ＮＴＲＫ１のポリペプチド量については、各ＮＴＲＫ１阻害剤の処理の有無（及び処理濃度）に関してほとんど差異は認められなかった。一方、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチドのリン酸化は、各ＮＴＲＫ１阻害剤による処理により、濃度依存的に顕著に減少しており、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチドのキナーゼ活性が阻害されることにより、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合ポリペプチドの自己リン酸化が抑制されることが確認された。
　ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（ＷＴ）融合ポリペプチドにおいても、上記ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１（Ｇ４７２Ｄ）融合ポリペプチドと同様の結果が得られた。結果の一部を図１２に示す。

　以上より、本発明において、一部の消化器がん患者においてＬＭＮＡ遺伝子とＮＴＲＫ１遺伝子との融合遺伝子が存在し、その遺伝子ががんの原因となっていることが明らかとなった。即ち、ＮＴＲＫ１阻害薬物治療の対象となるがん患者を、ＬＭＮＡ－ＮＴＲＫ１融合遺伝子を検出することで、好ましくは、ＬＭＮＡｅｘ２－ＮＴＲＫ１ｅｘ１１を検出することで選別できることが明らかとなった。

　本発明の検出方法は、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがん患者の判定に有用である。本発明の検出用キット及びプライマーセットは、前記検出方法に用いることができる。本発明の阻害物質スクリーニング方法は、当該融合体陽性のがん患者の治療に有効な薬剤をスクリーニングするのに用いることができる。前記スクリーニングにより得られる薬剤は、当該融合体陽性のがんの治療用医薬組成物の有効成分として使用することができる。前記検出方法により、当該融合体陽性のがん患者と判定された患者に、前記薬剤を投与することにより、がんを治療することができる。

　本発明の検出方法は、ＬＭＮＡ融合体陽性のがん患者の判定に有用である。本発明の検出用キット及びプライマーセットは、前記検出方法に用いることができる。本発明の阻害物質スクリーニング方法は、当該融合体陽性のがん患者の治療に有効な薬剤をスクリーニングするのに用いることができる。前記スクリーニングにより得られる薬剤は、当該融合体陽性のがんの治療用医薬組成物の有効成分として使用することができる。前記検出方法により、当該融合体陽性のがん患者と判定された患者に、前記薬剤を投与することにより、がんを治療することができる。
　以上、本発明を特定の態様に沿って説明したが、当業者に自明の変形や改良は本発明の範囲に含まれる。

　配列表の配列番号３～８の配列で表される塩基配列は、合成プライマー配列である。

Claims

　ＬＭＮＡ融合タンパク質。
　ＬＭＮＡとＮＴＲＫ１との融合タンパク質。
　以下の（ａ）～（ｄ）からなる群から選択されるポリペプチドである、請求項１に記載の融合タンパク質：
（ａ）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
（ｂ）配列番号２で表されるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、
（ｃ）配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、及び
（ｄ）配列番号２で表されるアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／若しくは挿入されたアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド。
　請求項１～３のいずれか一項に記載の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
　請求項４に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
　請求項５に記載のベクターで形質転換された細胞。
　被験者から得た試料中の、ＬＭＮＡ融合タンパク質又は該融合タンパク質をコードする融合遺伝子の検出方法。
　前記検出方法が、ＬＭＮＡタンパク質の切断、又は、ＬＭＮＡタンパク質をコードする遺伝子の切断、を検出する工程を含む、請求項７に記載の検出方法。
　前記検出方法が、ＬＭＮＡタンパク質とそれ以外の他のタンパク質とから構築される融合タンパク質の存在、又は、前記融合タンパク質をコードする融合遺伝子の存在、を検出する工程を含む、請求項７に記載の検出方法。
　前記融合タンパク質が、ＬＭＮＡタンパク質とＮＴＲＫ１タンパク質との融合タンパク質である、請求項７～９のいずれか一項に記載の検出方法。
　前記融合タンパク質が、以下の（ａ）～（ｄ）からなる群から選択されるポリペプチドである、請求項７～１０のいずれか一項に記載の検出方法：
（ａ）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
（ｂ）配列番号２で表されるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、
（ｃ）配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、及び
（ｄ）配列番号２で表されるアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／若しくは挿入されたアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド。
　前記ＬＭＮＡ融合遺伝子が、請求項３に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドである、請求項７～１１のいずれか一項に記載の検出方法。
　前記融合遺伝子が、ＤＮＡ又はｍＲＮＡである、請求項７～１２のいずれか一項に記載の検出方法。
　前記試料が、消化器由来試料である、請求項７～１３のいずれか一項に記載の検出方法。
　前記消化器が、消化管由来試料である、請求項１４に記載の検出方法。
　前記消化器が、下部消化管である、請求項１４に記載の検出方法。
　前記消化器が、大腸である、請求項１４に記載の検出方法。
　ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＬＭＮＡ遺伝子３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとを含む、ＬＭＮＡ融合遺伝子の検出用キット。
　ＬＭＮＡ遺伝子と共にＬＭＮＡ融合遺伝子を構成する他の遺伝子の３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＬＭＮＡ遺伝子５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとを含む、ＬＭＮＡ融合遺伝子の検出用キット。
　ＬＭＮＡタンパク質をコードするポリヌクレオチドの、５’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマー、ならびに、前記ポリヌクレオチドの３’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ融合遺伝子の検出用キット。
　ＬＭＮＡタンパク質とＮＴＲＫ１タンパク質との融合タンパク質であるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ融合遺伝子又はＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット。
　以下の（ａ）～（ｄ）からなる群から選択されるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ融合遺伝子又はＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット：
（ａ）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、
（ｂ）配列番号２で表されるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、
（ｃ）配列番号２で表されるアミノ酸配列との同一性が８０％以上であるアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド、及び
（ｄ）配列番号２で表されるアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び／若しくは挿入されたアミノ酸配列を含み、しかも腫瘍形成能を有するポリペプチド。
　ＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域を特異的に認識できる抗ＬＭＮＡ抗体、及び、ＬＭＮＡタンパク質のＣ末端側領域を特異的に認識できる抗ＬＭＮＡ抗体を含む、ＬＭＮＡ融合タンパク質の検出用キット。
　ＬＭＮＡタンパク質と共にＬＭＮＡ融合タンパク質を構成する他のタンパク質のＣ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体と、ＬＭＮＡタンパク質のＮ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体を含む、ＬＭＮＡ融合タンパク質の検出用キット。
　前記他のタンパク質が、ＮＴＲＫ１タンパク質である、請求項２４に記載のキット。
　ＬＭＮＡタンパク質をコードするポリヌクレオチド部分から設計されるセンスプライマー及びＮＴＲＫ１タンパク質をコードするポリヌクレオチド部分から設計されるアンチセンスプライマーを含む、ＬＭＮＡ遺伝子とＮＴＲＫ１遺伝子との融合遺伝子を検出するためのプライマーセットであって、アンチセンスプライマーは請求項２２に記載のポリヌクレオチドにストリンジェントな条件下でアニールする核酸分子からなり、センスプライマーは請求項２２に記載のポリヌクレオチドの相補鎖にストリンジェントな条件でアニールする核酸分子からなるプライマーセット。
　ＬＭＮＡ遺伝子とＮＴＲＫ１遺伝子との融合遺伝子を検出するためのプライマーセットであって、配列番号１に示される塩基配列からなるポリヌクレオチドにストリンジェントな条件下でアニールする核酸分子からなるアンチセンスプライマー及び該ポリヌクレオチドの相補鎖にストリンジェントな条件下でアニールする核酸分子からなるセンスプライマーを含むプライマーセット。
　配列番号１の塩基番号１から５６８間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドからなるセンスプライマー及び配列番号１の塩基番号５６９から２２５９間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドに対して相補的であるオリゴヌクレオチドからなるアンチセンスプライマー、あるいは、配列番号９の塩基番号１から７２６の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドからなるセンスプライマー及び配列番号９の塩基番号７２７から１８６６間の任意の連続する少なくとも１６塩基のオリゴヌクレオチドに対して相補的であるオリゴヌクレオチドからなるアンチセンスプライマーを含む、プライマーセット。
（１）請求項３に記載のポリペプチド、又は前記ポリペプチドを発現している細胞に試験物質を接触させる工程、
（２）前記ポリペプチドの活性及び／又は発現が阻害されるか否かを分析する工程、及び
（３）前記ポリペプチドの活性及び／又は発現を阻害する物質を選択する工程
を含む、前記ポリペプチドの活性及び／又は発現を阻害する物質をスクリーニングする方法。
　前記ポリペプチドの活性及び／又は発現を阻害する物質が、ＬＭＮＡ融合体陽性のがんの治療剤である、請求項２９に記載のスクリーニング方法。
　ＬＭＮＡ融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質を含有する、ＬＭＮＡ融合体陽性のがんの治療用医薬組成物。
　前記ＬＭＮＡ融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質が、キナーゼ阻害剤である、請求項３１に記載の医薬組成物。
　前記ＬＭＮＡ融合タンパク質が、請求項３に記載のポリペプチドである、請求項３１又は３２に記載の医薬組成物。
　前記がんが消化器がんである、請求項３１～３３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
　前記がんが消化管がんである、請求項３１～３３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
　前記がんが下部消化管がんである、請求項３１～３３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
　前記がんが大腸がんである、請求項３１～３３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
　被験者から得た消化器由来試料中の、ＮＴＲＫ１融合タンパク質又は該融合タンパク質をコードする融合遺伝子の検出方法。
　前記検出方法が、ＮＴＲＫ１タンパク質の切断、又は、ＮＴＲＫ１タンパク質をコードする遺伝子の切断、を検出する工程を含む、請求項３８に記載の検出方法。
　前記検出方法が、ＮＴＲＫ１タンパク質とそれ以外の他のタンパク質とから構築される融合タンパク質の存在、又は、前記融合タンパク質をコードする融合遺伝子の存在、を検出する工程を含む、請求項３８に記載の検出方法。
　前記融合遺伝子が、ＤＮＡ又はｍＲＮＡである、請求項３８～４０のいずれか一項に記載の検出方法。
　前記消化器が、消化管である、請求項３８～４１のいずれか一項に記載の検出方法。
　前記消化器が、下部消化管である、請求項３８～４１のいずれか一項に記載の検出方法。
　前記消化器が、大腸である、請求項３８～４１のいずれか一項に記載の検出方法。
　ＮＴＲＫ１遺伝子５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとを含む、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット。
　ＮＴＲＫ１遺伝子と共にＮＴＲＫ１融合遺伝子を構成する他の遺伝子の５’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第１のプローブと、ＮＴＲＫ１遺伝子３’末端側ゲノム領域を特異的に認識できる第２のプローブとを含む、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット。
　ＮＴＲＫ１タンパク質をコードするポリヌクレオチドの、５’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマー、ならびに、前記ポリヌクレオチドの３’末端側領域を特異的に増幅できるように設計したセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを含む、ＮＴＲＫ１融合遺伝子の検出用キット。
　ＮＴＲＫ１タンパク質のＮ末端側領域を特異的に認識できる抗ＮＴＲＫ１抗体、及び、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域を特異的に認識できる抗ＮＴＲＫ１抗体を含む、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の検出用キット。
　ＮＴＲＫ１タンパク質と共にＮＴＲＫ１融合タンパク質を構成する他のタンパク質のＮ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体と、ＮＴＲＫ１タンパク質のＣ末端側領域のポリペプチドに特異的に結合する抗体を含む、ＮＴＲＫ１融合タンパク質の検出用キット。
　前記ポリペプチドの活性及び／又は発現を阻害する物質が、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがんの治療剤である、請求項２９に記載のスクリーニング方法。
　ＮＴＲＫ１融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質を含有する、ＮＴＲＫ１融合体陽性のがんの治療用医薬組成物。
　前記ＮＴＲＫ１融合タンパク質の活性及び／又は発現を阻害する物質が、キナーゼ阻害剤である、請求項５１に記載の医薬組成物。
　前記ＮＴＲＫ１融合タンパク質が、請求項３に記載のポリペプチドである、請求項５１又は５２に記載の医薬組成物。
　前記がんが消化器がんである、請求項５１～５３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
　前記がんが消化管がんである、請求項５１～５３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
　前記がんが下部消化管がんである、請求項５１～５３のいずれか一項に記載の医薬組成物。
　前記がんが大腸がんである、請求項５１～５３のいずれか一項に記載の医薬組成物。