WO2014175164A1 - Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるＦｄ鎖遺伝子又はＬ鎖遺伝子 - Google Patents

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Definitions

  • the present invention relates to a gene containing a base sequence encoding an amino acid or an amino acid sequence capable of increasing the secretion amount of a Fab-type antibody at the 3 'end of the base sequence encoding the amino acid sequence of the Fd chain or L chain of the antibody.
  • the present invention further includes a recombinant vector containing the chain gene, a transformant having the recombinant vector, a method for producing a Fab-type antibody using the transformant, and an amino acid sequence of the Fd chain and / or L chain of the antibody.
  • the present invention relates to an Fab type antibody having an amino acid or an amino acid sequence capable of increasing the secretion amount of the Fab type antibody at the C-terminus.
  • an appropriate host for the expression of the protein is used.
  • animal cells such as CHO cells, insects and insect cells such as silkworms, animals such as chickens and cows, and microorganisms such as Escherichia coli or yeast are used.
  • yeast is capable of large-scale high-density culture with an inexpensive medium, and can produce proteins at low cost.
  • secretory signal peptide or the like is used, secretory production into the culture solution is possible, and thus protein purification becomes easy.
  • low molecular weight antibodies such as scFv and Fab type antibodies, which are next-generation protein drugs, have attracted attention.
  • these low molecular weight antibodies are expressed using yeast as a host, there is a problem that the productivity of the antibodies is low, and there is a concern that the product may be affected by the carbon source. .
  • Non-patent Document 1 As means for solving the above problems, as a host for avoiding the influence of the carbon source on the product, yeasts of the genus Komagataella, yeasts of the genus Ogataea, yeasts of the genus Candida, etc. It is reported that the methanol-assimilating yeast of this type is used. Furthermore, in order to improve protein productivity, bases encoding Fab-type antibodies downstream of promoters such as methanol oxidase and alcohol oxidase, which have several times the activity of normal promoters. A method for producing a Fab-type antibody by arranging the sequences has been reported (Non-patent Document 1).
  • the present invention has been made to solve the problem of providing a method for producing a low molecular weight antibody with high productivity in a method for producing a low molecular weight antibody such as an Fab type antibody using yeast as a host. Specifically, the present invention provides a method for producing a low-molecular-weight antibody such as an Fab-type antibody with high productivity using yeast as a host without using a highly active promoter. It was.
  • the present inventors have determined that a base sequence encoding an amino acid of 1 to 10 residues at the 3 ′ end of the base sequence encoding the amino acid sequence of the Fd chain or L chain. By ligating and expressing this in yeast, it was found that the productivity of the Fab-type antibody was improved, and the present invention was completed.
  • the amino acid or amino acid sequence capable of increasing the amount of secretion of the Fab antibody is Asp, Gly, Ala, Val, Leu, Ile, Cys, Met, Ser, Thr, Tyr, Phe, Trp, Pro, Glu, Asn.
  • the recombinant vector according to (4) which is any of the following.
  • B an L chain gene containing an amino acid capable of increasing the secretion amount of a Fab-type antibody or a base sequence encoding an amino acid sequence at the 3 ′ end of the base sequence encoding the amino acid sequence of the L chain of the antibody;
  • a combination of recombinant vectors which is one of the following.
  • A Recombinant vector containing an Fd chain gene containing an amino acid capable of increasing the secretion amount of a Fab-type antibody or a base sequence encoding an amino acid sequence at the 3 ′ end of the base sequence encoding the amino acid sequence of the Fd chain of the antibody And a recombinant vector containing the antibody L chain gene;
  • B A recombinant vector containing, at the 3 ′ end of a base sequence encoding the amino acid sequence of the L chain of the antibody, an amino acid capable of increasing the secretion amount of the Fab-type antibody or an L chain gene containing a base sequence encoding the amino acid sequence And a recombinant vector containing the Fd chain gene of the antibody; and
  • C an amino acid or amino acid capable of increasing the secretion amount of the Fab type antibody at the 3 ′ end of the base sequence encoding the amino acid sequence of the Fd chain of the antibody
  • the amino acid or amino acid sequence capable of increasing the secretion amount of the Fab antibody is Asp, Gly, Ala, Val, Leu, Ile, Cys, Met, Ser, Thr, Tyr, Phe, Trp, Pro, Glu, Asn.
  • a base sequence encoding an amino acid or an amino acid sequence capable of increasing the secretion amount of a Fab-type antibody is linked to the 3 ′ end of the base sequence encoding the amino acid sequence of the antibody Fd chain or L chain.
  • the productivity of Fab-type antibodies can be improved.
  • the present invention is useful for the development of antibody drugs.
  • the Fd chain of the antibody in the present invention is a portion obtained by removing the hinge region and the Fc region from the H chain of the IgG antibody. From the N terminal of the H chain, the cysteine residue that is S—S bonded to the C terminal cysteine of the L chain. Refers to the part up to the base.
  • the base sequence encoding the Fd chain or L chain amino acid sequence in the present invention is not particularly limited as long as it is a DNA fragment encoding the Fd chain or L chain amino acid sequence.
  • the type of antibody from which the Fd chain or L chain is used in the present invention is not particularly limited.
  • the antigen to which the antibody derived from the Fd chain or L chain used in the present invention is also not particularly limited, but preferably CD20, HER2, IL2R, CD33, CD52, EGFR, VEGF, CD3, CD25, which are known as drug targets, Examples include antigens such as TNF ⁇ , CD11, IgE, CD2, ⁇ 4integrin, CD80, CD86, IL6R, C5a, GPIIb / IIIa, RSVF protein, VEGF-A, and GM-CSF.
  • antigens such as TNF ⁇ , CD11, IgE, CD2, ⁇ 4integrin, CD80, CD86, IL6R, C5a, GPIIb / IIIa, RSVF protein, VEGF-A, and GM-CSF.
  • base sequence encoding the amino acid sequence of the Fd chain are the base sequences shown in SEQ ID NO: 16 or SEQ ID NO: 60.
  • the L chain gene in the present invention may be any nucleotide sequence that can produce a Fab type antibody when expressed together with the Fd chain gene, and is a base sequence encoding the amino acid sequence of the IgG antibody L chain.
  • a specific example of the L chain gene is the base sequence shown in SEQ ID NO: 17 or 59.
  • the base sequence encoding the amino acid or amino acid sequence capable of increasing the secretion amount of the Fab-type antibody is contained at the 3 ′ end of the base sequence encoding the amino acid sequence of the Fd chain or L chain of the antibody.
  • the amino acid or amino acid sequence that can increase the secretion amount of the Fab-type antibody is not particularly limited as long as it exhibits the effect of increasing the secretion amount of the Fab-type antibody, and the number of amino acids is not particularly limited, but preferably 1 to 30, more preferably 1 to 10 or 1 to 5.
  • amino acids or amino acid sequences that can increase the secretion amount of Fab-type antibodies include Asp, Gly, Ala, Val, Leu, Ile, Cys, Met, Ser, Thr, Tyr, Phe, Trp, Pro, Glu, Asn , Gln, Lys, Arg, His, Asp-Lys, Asp-Lys-Thr, Asp-Lys-Thr-His (SEQ ID NO: 1), Asp-Lys-Thr-His-Thr (SEQ ID NO: 2), Asp-Lys -Thr-His-Thr-Asp-Lys-Thr-His-Thr (SEQ ID NO: 69) or Gly-Gly-Gly-Gly-Gly-Ser-Met-Val-Ser-Lys-Gly-Glu-Glu-Leu-Phe -Thr-Gly-Val-Val-Pro-Ile-Leu-Val-Glu-Leu Is either Asp-Gly-Asp-Val-
  • a plurality of amino acids or amino acid sequences selected from the above may be combined.
  • a base sequence encoding a plurality of His eg, about 6 to 10 histidine tags consisting of His is included at the 3 ′ end of the base sequence encoding the amino acid sequence of the Fd chain or L chain of the antibody is as follows: Excluded from the present invention.
  • the base sequence encoding the amino acid or amino acid sequence capable of increasing the amount of secretion of the Fab antibody described above is a combination of base sequences encoding each amino acid codon, and each amino acid codon expresses an Fd chain gene or L chain gene. It can be arbitrarily selected from codons available in the host to be prepared.
  • gac for Asp, gac, for Asp-Lys, gacaag, for Asp-Lys-Thr, gacaagagacc, for Asp-Lys-Thr-His (SEQ ID NO: 1), gacaagagcccc ( In the case of SEQ ID NO: 3), Asp-Lys-Thr-His-Thr (SEQ ID NO: 2), the base sequence of gacaagaccccaccaccacc (SEQ ID NO: 4), Asp-Lys-Thr-His-Thr-Asp-Lys-Thr-His In the case of -Thr (SEQ ID NO: 69), gacaagacccaccaccacacaagacccaccacc (SEQ ID NO: 70), Gly-Gly-Gly-Gly-Ser-Met-Val-Ser-Lys-Gly-Glu-Glu-Leu-Phe-Thr-Gly-Thr-Gly- Val-Val-P In the case of o-Ile-Leu-Val
  • Asp, Gly, Ala, Val, Leu, Ile, Cys, Met, Ser, Thr, Tyr, Phe, Trp, Pro, Glu, Asn, Gln, Lys, Arg, and His are aspartic acid residue and glycine, respectively.
  • T is thymine
  • A is adenine
  • G guanine
  • C is cytosine.
  • gacaag Containing at least 3 gac, gacaag, gacaagacc, gacaagaccccac (SEQ ID NO: 3) or gacaagaccccaccacc (SEQ ID NO: 4) at the 3 ′ end of the base sequence encoding the protein having the amino acid sequence of the Fd chain described above; You may contain the base sequence which consists of taa, tga, and tag as a stop codon in 3 'terminal.
  • SEQ ID NO: 5 is a gene in which the base sequence of gac and the base sequence of the stop codon taa are linked to the 3 ′ end of the base sequence of SEQ ID NO: 16.
  • SEQ ID NO: 6 is a gene in which the base sequence of gacaag and the base sequence of stop codon taa are linked to the 3 ′ end of the base sequence of SEQ ID NO: 16.
  • SEQ ID NO: 7 is a gene in which the base sequence of gacaagacc and the base sequence of stop codon taa are linked to the 3 ′ end of the base sequence of SEQ ID NO: 16.
  • SEQ ID NO: 8 is a gene in which the base sequence of gacaagaccccac (SEQ ID NO: 3) and the base sequence of stop codon taa are linked to the 3 ′ end of the base sequence of SEQ ID NO: 16.
  • SEQ ID NO: 9 is a gene in which the base sequence of gacaagaccccacacc (SEQ ID NO: 4) and the base sequence of the stop codon taa are linked to the 3 ′ end of the base sequence of SEQ ID NO: 16.
  • the recombinant vector in the present invention means a nucleic acid molecule having a function of expressing the above-mentioned Fd chain gene in a host cell after transformation.
  • the recombinant vector may have an integration homologous region, a selection marker gene such as an auxotrophic complementary gene or a drug resistance gene, an autonomously replicating sequence, and the like.
  • the vector after being transformed into the host may be incorporated in the chromosome of the transformant or may exist as an autonomously replicating type.
  • autonomously replicating vectors include YEp vectors, YRp vectors, and YCp vectors.
  • pPICHOLI, pHIP, pHRP, pHARS and the like can be mentioned, but not particularly limited thereto.
  • the “expression cassette” in the present invention is composed of a promoter and a target protein gene to be expressed, and may include a terminator gene.
  • a terminator gene for example, it can be constructed on a plasmid such as pUC19, or can also be prepared by a PCR method. Can do.
  • the integration homologous region in the present invention refers to a region in which the recombinant vector of the present invention is integrated by homologous recombination on the chromosome of the host cell after transformation.
  • a part of the chromosome of the host cell can be arbitrarily used, but an auxotrophic complementary gene, a promoter or a terminator in an expression cassette, etc. can also be used.
  • the auxotrophic complementary gene in the present invention is not particularly limited as long as it is a gene that complements auxotrophy such as amino acids and nucleic acids of host cells.
  • Specific examples include the URA3 gene, the LEU2 gene, the ADE1 gene, the HIS4 gene, etc., which can be selected by restoring the prototrophic phenotype in uracil, leucine, adenine, and histidine auxotrophic strains, respectively. .
  • the selection mer gene such as a drug resistance gene in the present invention is not particularly limited as long as it is a gene imparting drug resistance not possessed by a host cell. Specific examples include a G418 resistance gene, a zeocin resistance gene, a hygromycin resistance gene, and the like, which can be selected based on resistance on a medium containing G418, zeocin, and hygromycin, respectively.
  • the auxotrophic selection marker used when preparing the yeast host cannot be used when the selection marker is not destroyed. In this case, the selection marker may be recovered, and methods known to those skilled in the art can be used.
  • the autonomously replicating sequence in the present invention refers to a sequence that acts as a replication origin of the recombinant vector of the present invention and enables autonomous replication in a host cell.
  • the recombinant vector of the present invention is a recombinant vector containing the Fd chain gene or L chain gene of the present invention described in the present specification, but preferably contains both the Fd chain gene and the L chain gene.
  • Specific examples of the recombinant vector of the present invention include: (A) an Fd chain gene containing an amino acid capable of increasing the secretion amount of an Fab-type antibody or a base sequence encoding an amino acid sequence at the 3 ′ end of the base sequence encoding the amino acid sequence of the antibody Fd chain; A recombinant vector containing a chain gene; (B) an L chain gene containing an amino acid capable of increasing the secretion amount of a Fab-type antibody or a base sequence encoding an amino acid sequence at the 3 ′ end of the base sequence encoding the amino acid sequence of the L chain of the antibody, and Fd of the antibody A recombinant vector containing a chain gene; and (c) a base sequence encoding an amino acid or amino
  • first promoter sequence-first signal sequence-L chain gene-second promoter sequence-second signal sequence-Fd chain gene-terminator sequence (2) first promoter sequence-first signal sequence-Fd chain gene-second promoter sequence-second signal sequence-L chain gene-terminator sequence; (3) an expression vector containing (first promoter sequence-first signal sequence-L chain gene-first terminator sequence) and (second promoter sequence-second signal sequence-Fd chain gene-first In combination with an expression vector comprising 2 terminator sequences);
  • the first promoter and the second promoter may be the same or different.
  • the first and second promoters are preferably the MOX promoter or GAP promoter of Hansenula polymorpha (preferably the Hansenula polymorpha host).
  • the first signal sequence and the second signal sequence may be the same or different.
  • the first and second signal sequences are preferably Saccharomyces cerevisiae Mating Factor ⁇ (MF ⁇ ) prepro signal.
  • the first terminator sequence and the second terminator sequence may be the same or different.
  • the first and second terminator sequences are preferably terminator sequences of the MOX gene of Hansenula polymorpha.
  • the host in the present invention is not particularly limited as long as the recombinant vector containing the Fd chain gene and / or L chain gene of the present invention can be introduced and a Fab type antibody can be produced, but preferably yeast, mold, animal cells, Examples include transgenic animals, Escherichia coli, and cell-free protein synthesis systems. Among them, yeast is preferable, methanol-assimilating yeast is more preferable, and methanol-assimilating yeast belonging to the genus Ogataea and Komagataella is further preferable.
  • the transformant in the present invention means a product obtained by introducing the recombinant vector of the present invention into a host.
  • the transformant of the present invention can be selectively obtained using as an index the phenotype obtained by the auxotrophic complementary gene or drug resistance gene contained in the recombinant vector.
  • the method for producing the Fab-type antibody of the present invention can be obtained by culturing the above-described transformant and collecting the produced Fab-type antibody.
  • Examples of the production method include a secretion method in which the transformant is cultured and accumulated in the culture supernatant.
  • Secretion production in the present invention refers to liquid culture of a transformant and accumulation of Fab-type antibody in the culture supernatant rather than inside the cell.
  • Secretion production is performed by expressing the Fd chain and / or L chain of a Fab antibody as a protein fused with a secretion signal.
  • Secretion signal fusion can be performed, for example, by introducing a base sequence encoding a signal sequence into the 5 'end of the base sequence encoding the Fd chain and / or L chain of the Fab antibody.
  • the base sequence encoding the signal sequence in the present invention is not particularly limited as long as it is a signal sequence that allows the host cell to secrete and express the Fab-type antibody.
  • SHO1 Saccharomyces cerevisiae's Matting Factor ⁇
  • SUC2 Saccharomyces cerevisiae invertase
  • Saccharomyces cerevisiae PLB1 Saccharomyces cerevisiae PLB1
  • bovine serum albumin BSA
  • HSA human serum albumin
  • any medium can be used as the medium for the transformant in the present invention as long as it contains a nutrient source that is normally assimilated by the host cells.
  • the nutrient source include sugars such as glucose, sucrose, and maltose, lactic acid, acetic acid, and citric acid.
  • Carbon sources such as acids, organic acids such as propionic acid, alcohols such as methanol, ethanol and glycerol, hydrocarbons such as paraffin, oils and fats such as soybean oil and rapeseed oil, or mixtures thereof, ammonium sulfate, ammonium phosphate,
  • a normal medium in which nitrogen sources such as urea, yeast extract, meat extract, peptone, corn steep liquor, and other nutrient sources such as other inorganic salts and vitamins are appropriately mixed and blended can be used. It is preferable to use methanol as the carbon source.
  • the culture method can be any of batch culture, continuous culture, or dome culture.
  • Cultivation can usually be performed under general conditions, for example, by aerobically culturing for 10 hours to 10 days at a pH of 2.5 to 10.0 and a temperature range of 10 ° C. to 48 ° C. .
  • the production amount of Fab type antibody secreted in the culture supernatant when the transformant is cultured to produce Fab type antibody is 2.0 mg / mL or more (more preferably 2 .5 mg / mL or more).
  • Transformant whose Fab-type antibody secretion production amount in the culture supernatant when the transformant is cultured to produce Fab-type antibody is 2.0 mg / mL or more (more preferably 2.5 mg / mL or more)
  • the Fab-type antibody concentration was 2.0 mg / L or more (or 2.5 mg / mL or more). Is a transformant.
  • the method for recovering the Fab-type antibody of the present invention includes, in the case of secretory production, a step of preparing a culture supernatant from a culture solution by centrifugation or the like, and a step of isolating and purifying the Fab-type antibody from the culture supernatant by any method including. Isolation and purification from the culture supernatant can be carried out by appropriately combining known protein purification methods.
  • the transformant is cultured in an appropriate medium, the cells are removed from the culture supernatant by centrifugation or filtration, and the resulting culture supernatant is salted out (ammonium sulfate precipitate, sodium phosphate Precipitation, etc.), solvent precipitation (protein fraction precipitation with acetone or ethanol), dialysis, gel filtration chromatography, ion exchange chromatography, hydrophobic chromatography, affinity chromatography, reverse phase chromatography, ultrafiltration, etc.
  • Fab-type antibody can be recovered from the culture supernatant.
  • the recovered Fab-type antibody can be used as it is, but it can also be used after adding a modification that causes pharmacological changes such as PEGylation and a function that adds a function such as an enzyme or an isotope. Various preparation processes may be used.
  • the plasmids obtained in the following examples were amplified using the transformants obtained by using Escherichia coli E. coli DH5 ⁇ competent cells (manufactured by Takara Bio Inc.) under the conditions described herein. Yes.
  • Prime STAR STAR HS DNA Polymerase manufactured by Takara Bio Inc. was used, and the reaction conditions were as described in the attached manual.
  • Example 1 Construction of pUC-LEU2-PmMfTm
  • MOX promoter SEQ ID NO: 18
  • MOX terminator SEQ ID NO: 19
  • LEU2 gene SEQ ID NO: 20
  • the DNA was prepared by PCR using the genomic DNA as a template.
  • the mating factor ⁇ prepro signal (MF ⁇ , SEQ ID NO: 21) was prepared by PCR using the genomic DNA of Saccharomyces cerevisiae S288c as a template.
  • the antibody gene was chemically synthesized from the L chain (SEQ ID NO: 22) and H chain (SEQ ID NO: 23) based on the public sequence information of a fully humanized anti-TNF- ⁇ antibody (adalimumab; HUMIRA (registered trademark)) ( JP 2009-082033) was used as a template to prepare by PCR.
  • a gene fragment having the site of HindIII-NotI-BamHI-SpeI-BglII-XbaI-EcoRI (SEQ ID NO: 24) was fully synthesized and inserted into the HindIII-EcoRI site of pUC19 to prepare pUC-1.
  • a gene fragment with a HindIII site on both sides of the LEU2 gene was prepared by PCR using primers 1 and 2 (SEQ ID NOs: 25 and 26) and inserted into the HindIII site of pUC-1 after HindIII treatment (pUC-LEU2) .
  • a gene fragment with BamHI sites on both sides of the MOX promoter was prepared by PCR using primers 3 and 4 (SEQ ID NOs: 27 and 28), and inserted into the BamHI site of pUC-LEU2 after treatment with BamHI (pUC). -LEU2-Pm).
  • a gene fragment having a SpeI site on the 5 ′ side of MF ⁇ and a BglII site on the 3 ′ side was prepared by PCR using primers 5 and 6 (SEQ ID NOs: 29 and 30). After treatment with SpeI and BglII, pUC-LEU2-Pm Was inserted into the SpeI-BglII site (pUC-LEU2-PMmf).
  • a gene fragment having XbaI sites on both sides of the MOX terminator was prepared by PCR using primers 7 and 8 (SEQ ID NOs: 31 and 32), and inserted into the XbaI site of pUC-LEU2-PMmf after treatment with XbaI (pUC- LEU2-PmMfTm).
  • This gene fragment was treated with BglII, and then inserted into the BglII site of pUC-LEU2-PMmfTm to construct pUC-LEU2-PMmfFTm.
  • pUC-LEU2-PmMfLTm as a template, a gene fragment having EcoRI sites on both sides of a gene fragment to which a part of the MOX promoter, MF ⁇ , L chain, and MOX terminator was linked was added to primers 13 and 14 (SEQ ID NOs: 37 and 38). ).
  • This gene fragment was treated with EcoRI and then inserted into the EcoRI site of pUC-LEU2-PMmfFTm to construct pUC-LEU2-PMmfFTm-PMmfLtm.
  • This expression vector is designed so that the L chain and Fd chain of the Fab-type antibody are expressed under the control of separate MOX promoters.
  • Comparative Example 2 (Comparative Example 2) Obtaining Transformant The Fab-type antibody expression vector constructed in Comparative Example 1 was cleaved at the EcoRV site in the MOX terminator to make it linear. This fragment was transformed with Ogata Air polymorpha using the method described in Example 3.
  • Comparative Example 4 Quantification of Fab Type Antibody The secretory production amount of Fab type antibody in the culture supernatant obtained in Comparative Example 3 was analyzed by the sandwich ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay) method as in Example 5.
  • Each Fd chain gene (SEQ ID NOs: 5 to 9) of the present invention was prepared by PCR using the above pUC-LEU2-PmMfFTm as a template.
  • Example 2 Construction of Recombinant Expression Vectors for Each Fab Type Antibody Base sequence encoding Fd chain, Asp, Asp-Lys, Asp-Lys-Thr, Asp-Lys-Thr-His and Asp-Lys-Thr-His A fragment in which a base sequence encoding any amino acid sequence of Thr and a base sequence encoding a stop codon were fused was prepared by PCR.
  • the Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding Asp is primer 15 (SEQ ID NO: 10) and primer 16 (SEQ ID NO: 11), and the Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoded Asp-Lys is primer 15
  • the Fd chain gene fragment obtained by fusing primer 17 (SEQ ID NO: 12) with a base sequence encoding Asp-Lys-Thr is primer 1 and primer 18 (SEQ ID NO: 13), and Asp-Lys-Thr-His (SEQ ID NO: 1).
  • the Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding is the Fd chain fused with primer 15 and primer 19 (SEQ ID NO: 14) and the base sequence encoding Asp-Lys-Thr-His-Thr (SEQ ID NO: 2).
  • the gene fragment was subjected to PCR using primer 15 and primer 20 (SEQ ID NO: 15), respectively. Fragment was obtained.
  • Each fragment was treated with BglII and inserted into the BglII site of pUC-LEU2-PmMfTm described in Example 1, and Asp, Asp-Lys, Asp-Lys-Thr, Asp-Lys-Thr-His (SEQ ID NO: 1) And each plasmid containing an Fd chain gene containing a base sequence encoding either Asp-Lys-Thr-His-Thr (SEQ ID NO: 2).
  • pUC-LEU2-PmMfLTm a gene fragment having EcoRI sites on both sides of a gene fragment to which a part of the MOX promoter, MF ⁇ , L chain, and MOX terminator was linked was added to primers 13 and 14 (SEQ ID NOs: 37 and 38). ).
  • Example 3 Acquisition of transformant Various Fab-type antibody expression recombinant vectors constructed in Example 2 were linearized by cleaving at the EcoRV site in the MOX terminator. This fragment was used to transform Ogata Air polymorpha. Specifically, Ogata Air Polymorph BY4329 (from NCYC495, leu1-1) is inoculated into 3 ml of YPD medium (1% yeast extract bacto (Difco), 2% tryptone bacto (Difco), 2% glucose) And precultured at 37 ° C. overnight with shaking. The obtained preculture solution (500 ⁇ l) was inoculated into 50 ml of YPD medium, cultured after shaking at 30 ° C.
  • YPD medium 1% yeast extract bacto (Difco), 2% tryptone bacto (Difco), 2% glucose
  • the cells were suspended in 10 ml of 50 mM potassium phosphate buffer (containing 25 mM DTT, pH 7.5), and the suspension was incubated at 37 ° C. for 15 minutes. After collecting the cells (3000 ⁇ g, 10 minutes, 4 ° C.), the cells were resuspended in ice-cooled 50 ml of STM buffer (270 mM sucrose, 10 mM Tris-HCl, 1 mM magnesium chloride, pH 7.5).
  • STM buffer 270 mM sucrose, 10 mM Tris-HCl, 1 mM magnesium chloride, pH 7.5.
  • the cells were resuspended in 25 ml of ice-cooled STM buffer. After collecting the cells (3000 ⁇ g, 10 minutes, 4 ° C.), the cells were suspended in 250 ⁇ l of ice-cooled STM buffer to obtain a competent cell solution. Mix 60 ⁇ l of this competent cell solution and 3 ⁇ l of each linear plasmid solution (DNA amount 0.5-1 ⁇ g) and transfer to a cuvette for electroporation (dispos cuvette electrode, electrode spacing 2 mm; manufactured by BM Instruments). And 7.5 kV / cm, 10 ⁇ F, and 900 ⁇ .
  • the cells were suspended in 1 ml of YPD medium and allowed to stand at 37 ° C. for 1 hour.
  • the cells were collected (3000 ⁇ g, 5 minutes, room temperature), the cells were washed with 1 ml of physiological saline, and collected again (3000 ⁇ g, 5 minutes, room temperature).
  • the cells are suspended in an appropriate amount of physiological saline, applied to an SD medium agar plate (0.67% yeast nitrogen base (Difco), 1% glucose), and grown in static culture at 30 ° C for 3 days. Strains were selected, and various Fab antibody expression strains were obtained.
  • Example 4 Culture of transformant and preparation of culture supernatant The culture supernatant was prepared as follows. That is, each Fab type antibody expression strain obtained in Example 3 was added to 2 ml of BMGMY medium (1% yeast extract bacto, 2% peptone, 1.34% yeast nitrogen base, 0.4 mg / l Biotin, 100 mM potassium phosphate (pH 6. 0), 1% Glycerol, 1% Methanol), shaking culture at 30 ° C. for 72 hours, and then centrifuging (15,000 rpm, 1 minute, 4 ° C.) to prepare a culture supernatant.
  • BMGMY medium 1% yeast extract bacto, 2% peptone, 1.34% yeast nitrogen base, 0.4 mg / l Biotin, 100 mM potassium phosphate (pH 6. 0), 1% Glycerol, 1% Methanol
  • Example 5 Quantification of Fab-type antibody The secretory production amount of Fab-type antibody to the culture supernatant was analyzed by sandwich ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay) method.
  • the sandwich ELISA was prepared by anti-IgG (Fd), Human (Sheep) (The Binding Site) diluted 2500 times with an immobilization buffer (0.1 M sodium carbonate buffer, pH 9.6) on an ELISA plate (Maxisorp; manufactured by NUNC). Group) was added at 50 ⁇ l / well and incubated overnight at 4 ° C.
  • sandwich ELISA Enzyme-Linked Immunosorbent Assay
  • TMB Stop Solution manufactured by KPL
  • KPL TMB Stop Solution
  • the absorbance at 450 nm was measured with a microplate reader (BenchMark Plus; manufactured by Bio-Rad).
  • Table 1 shows the results of quantification of the Fab-type antibody in the culture supernatant, using a standard protein calibration curve. As shown in Table 1, the production amount of Fab-type antibody in which any of Asp, Asp-Lys, Asp-Lys-Thr, Asp-Lys-Thr-His and Asp-Lys-Thr-His-Thr is fused It was revealed that the antibody was improved about 5 times that of the non-Fab type antibody.
  • the Fd chain gene fragment fused with a base sequence encoding Gly is primer 15 and primer 21 (SEQ ID NO: 39), and the Fd chain gene fragment fused with a base sequence encoded Ala is primer 15 and primer 22 (SEQ ID NO: 40).
  • Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding Val is primer 15 and primer 23 (SEQ ID NO: 41), and Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding Leu is primer 15 and primer 24 (SEQ ID NO: 42), the Fd chain gene fragment fused with the nucleotide sequence encoding Ile is primer 15 and primer 25 (SEQ ID NO: 43), and the Fd chain gene fragment fused with the nucleotide sequence encoding Cys is primer 15 and primer 26 ( SEQ ID NO: 44) and the Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding Met is The Fd chain gene fragment in which primer 15 and primer 27 (SEQ ID NO: 45) are fused with the nucleotide sequence encoding Ser is the Fd chain gene fragment in which primer 15 and primer 28 (SEQ ID NO: 46) are fused and the nucleotide sequence encoding Thr is fused.
  • the fragment is the primer 15 and primer 29 (SEQ ID NO: 47), the Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding Tyr is the primer 15 and primer 30 (SEQ ID NO: 48), and the Fd chain is fused with the base sequence encoding Phe.
  • the chain gene fragment is fused with primer 15 and primer 31 (SEQ ID NO: 49), the Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding Trp is fused with primer 15 and primer 32 (SEQ ID NO: 50), and the base sequence encoding Pro
  • the Fd chain gene fragment was prepared by combining primer 15 and primer 33 (SEQ ID NO: 51) with Glu.
  • the Fd chain gene fragment fused with the base sequence to be loaded is primer 15 and primer 34 (SEQ ID NO: 52), and the Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding Asn is primer 15 and primer 35 (SEQ ID NO: 53).
  • Fd chain gene fragment fused with a base sequence encoding Gln is primer 15 and primer 36 (SEQ ID NO: 54), and Fd chain gene fragment fused with a base sequence encoding Lys is primer 15 and primer 37 (SEQ ID NO: 55).
  • the Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding Arg is primer 15 and primer 38 (SEQ ID NO: 56), and the Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoded His is primer 15 and primer 39 (sequence) PCR was performed using each of No. 57) to obtain each fragment.
  • Each fragment was treated with BglII and inserted into the BglII site of pUC-LEU2-PmMfTm described in Example 1 to obtain Gly, Ala, Val, Leu, Ile, Cys, Met, Ser, Thr, Tyr, Phe, Trp,
  • Each plasmid containing an Fd chain gene containing a base sequence encoding any of Pro, Glu, Asn, Gln, Lys, Arg, and His was constructed.
  • pUC-LEU2-PmMfLTm a gene fragment having EcoRI sites on both sides of a gene fragment to which a part of the MOX promoter, MF ⁇ , L chain, and MOX terminator was linked was added to primers 13 and 14 (SEQ ID NOs: 37 and 38). ).
  • each Fab type antibody expression vector A fragment in which a base sequence encoding the L chain, a base sequence encoding the amino acid of Asp, and a base sequence encoding the stop codon was prepared by PCR.
  • the L chain gene fragment fused with the base sequence encoding Asp was subjected to PCR using primer 9 and primer 40 (SEQ ID NO: 58) to obtain a fragment.
  • This fragment was treated with BglII, inserted into the BglII site of pUC-LEU2-PmMfTm described in Example 1, and a vector containing an L chain gene containing a base sequence encoding Asp was constructed.
  • a gene fragment having an EcoRI site on both sides of a gene fragment to which a part of the MOX promoter, MF ⁇ , Asp-containing L chain and a part of the MOX terminator are linked was added to primers 13 and 14 Prepared by PCR using (SEQ ID NO: 37 and 38). After this gene fragment was treated with EcoRI, it was inserted into the EcoRI site of pUC-LEU2-PmMfFTm described in Example 2, and each Fab type antibody expression vector containing an L chain gene containing a base sequence encoding Asp was constructed.
  • Example 8 Culture of transformant and preparation of culture supernatant Various Fab-type antibody expression recombinant vectors constructed in Examples 6 and 7 were cleaved at the EcoRV site in the MOX terminator to be linearized. . This fragment was transformed with Ogata Air polymorpha using the method described in Example 2 to obtain various Fab antibody expression strains.
  • Example 9 Culture of transformant and preparation of culture supernatant Culture supernatants of various Fab antibody-expressing strains obtained in Example 8 were prepared and obtained in the same manner as in Example 3.
  • Example 10 Quantification of Fab-type antibody The amount of secreted production of the Fab-type antibody obtained in Example 9 into the culture supernatant was analyzed by the method described in Example 4.
  • the quantification of the Fab-type antibody in the culture supernatant is shown in Table 2 with the results of using a standard protein calibration curve. As shown in Table 2, any of Gly, Ala, Val, Leu, Ile, Cys, Met, Ser, Thr, Tyr, Phe, Trp, Pro, Glu, Asn, Gln, Lys, Arg, His is fused to the Fd chain. It was revealed that the production amount of the Fab-type antibody and the production amount of the Fab-type antibody in which Asp was fused to the L chain were improved about 4 to 6 times that of the non-fused Fab-type antibody.
  • Remicade-derived Fab-type antibody gene is based on the public sequence information of Remicade (Infliximab; Remicade (registered trademark)), L chain (SEQ ID NO: 59), The Fd chain (SEQ ID NO: 60) was chemically synthesized and prepared by PCR using this as a template.
  • a gene fragment with BglII sites on both sides of the remicade-derived L chain was prepared by PCR using primers 41 and 42 (SEQ ID NOs: 61 and 62). This gene fragment was treated with BglII and then inserted into the BglII site of pUC-LEU2-PMmfTm described in Example 1 to construct pUC-LEU2-PMmfrLTm.
  • a gene fragment having a BglII site on both sides of the remicade-derived Fd chain was prepared by PCR using primers 43 and 44 (SEQ ID NOs: 63 and 64).
  • This gene fragment was treated with BglII and then inserted into the BglII site of pUC-LEU2-PMmfTm to construct pUC-LEU2-PMmfrFTFTm.
  • pUC-LEU2-PmMfrLTm as a template, a gene fragment having EcoRI sites on both sides of a gene fragment in which a MOX promoter, MF ⁇ , a remicade-derived L chain, and a part of the MOX terminator are ligated, was combined with primers 13 and 14 (SEQ ID NO: 37 And 38).
  • This gene fragment was treated with EcoRI and then inserted into the EcoRI site of pUC-LEU2-PMmfrFTm to construct pUC-LEU2-PMmfrFTm-PMmfrLtm.
  • This expression vector is designed so that the L chain and the Fd chain of the Fabic antibody derived from Remicade are expressed under the control of separate MOX promoters.
  • Comparative Example 6 Acquisition of Transformant The remicade-derived Fab type antibody expression vector constructed in Comparative Example 5 was cleaved at the EcoRV site in the MOX terminator to make it linear. This fragment was transformed with Ogata Air polymorpha using the method described in Example 3.
  • Comparative Example 7 Culture of transformant and preparation of culture supernatant The culture supernatant of the remicade-derived Fab type antibody expression vector-introduced strain obtained in Comparative Example 6 was prepared in the same manner as described in Example 13. .
  • Example 11 Construction of Remicade-derived Fab-type antibody expression vectors A Remicade-derived Fd chain gene fragment fused with a base sequence encoding Asp was subjected to PCR using primer 43 and primer 45 (SEQ ID NO: 65). Obtained. This fragment was treated with BglII and inserted into the BglII site of pUC-LEU2-PMmfTm described in Example 1 to construct a vector containing a remicade-derived Fd chain gene containing a base sequence encoding Asp.
  • a remicade-derived Fab-type antibody expression recombinant vector was constructed.
  • Example 12 Acquisition of transformant
  • the remicade-derived Fab-type antibody expression recombinant vector constructed in Example 11 was cleaved at the EcoRV site in the MOX terminator to be linearized. This fragment was transformed with Ogata Air polymorpha using the method described in Example 2 to obtain a remicade-derived Fab-type antibody expression strain.
  • Example 13 Culture of transformant and preparation of culture supernatant The culture supernatant was prepared as follows. That is, the Remicade-derived Fab type antibody expression strain obtained in Example 12 was added to 2 ml of BMGMY medium (1% yeast extract bacto, 2% peptone, 1.34% yeast nitrogen base, 0.4 mg / l Biotin, 100 mM potassium phosphate (pH 6 .0), 1% Glycerol, 1% Methanol), shaking culture at 30 ° C. for 60 hours, adding 20 mg of Methanol, and further shaking culture at 30 ° C. for 24 hours. Thereafter, the culture supernatant was prepared by centrifugation (15,000 rpm, 1 minute, 4 ° C.).
  • Example 14 Quantification of Fab type antibody The amount of secreted production of Remicade-derived Fab type antibody obtained in Example 13 into the culture supernatant was analyzed by the method described in Example 4. Table 3 shows the results of quantification of Remicade-derived Fab antibody in the culture supernatant using a standard protein calibration curve. As shown in Table 3, the production amount of Remicade-derived Fab antibody in which Asp is fused to the Fd chain is improved about 5 times that of the unfused Remicade-derived Fab antibody, regardless of the type of Fab antibody. It became clear that there was an effect.
  • Comparative Example 10 Acquisition of Pichia Transformant
  • the vector constructed in Comparative Example 9 was transformed into the Pichia yeast wild strain Y-11430. The method was carried out as described in Example 16.
  • Fab-type antibody vector for Pichia G418 resistance gene (SEQ ID NO: 66) designed to be expressed under the control of the GAP promoter of Ogata air polymorpha yeast was fully synthesized and used as a template for PCR.
  • a gene fragment in which a HindIII site was added to both sides of this G418 resistance gene was prepared by PCR using primers 46 and 47 (SEQ ID NOs: 67 and 68) and treated with HindIII.
  • Each Fab type antibody expression vector containing the Fd chain gene containing the base sequence encoding Asp described in Example 2 was treated with HindIII, and then the vector fragment containing the Fab type antibody gene was purified from an agarose gel.
  • each Fab-type antibody expression vector containing an Fd chain gene containing a base sequence encoding Asp using the G418 resistance gene as a selection marker was constructed.
  • Example 16 Acquisition of Pichia transformant
  • Each Fab type antibody expression vector containing an Fd chain gene containing a base sequence encoding Asp using the G418 resistance gene constructed in Example 15 as a selectable marker was transformed into Pichia yeast.
  • the wild strain Y-11430 was transformed.
  • the method was carried out in the same manner as described in Example 3, except that Hansenula yeast was changed to Pichia yeast.
  • a strain that grows by stationary culture at 30 ° C. for 3 days was selected to obtain a Fab-type antibody expression strain.
  • Example 17 Culture of transformant and preparation of culture supernatant The culture supernatant of the Pichia yeast Fab-type antibody expression vector-introduced strain obtained in Example 16 was prepared in the same manner as described in Example 4. did.
  • Example 18 Quantification of Fab type antibody The secretory production amount of the Fab type antibody in the culture supernatant obtained in Example 17 was analyzed by the sandwich ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay) method in the same manner as in Example 5.
  • Table 4 shows the results of quantification of the Fab-type antibody in the culture supernatant using a standard protein calibration curve. As shown in Table 4, the production amount of the Fab type antibody in which Asp is fused to the Fd chain is improved by about 2 times that of the non-fused Fab type antibody. It was.
  • each Fab type antibody expression vector 3 Base sequence encoding Fd chain, base sequence encoding peptide of Asp-Lys-Thr-His-Thr-Asp-Lys-Thr-His-Thr (SEQ ID NO: 69), encoding stop codon The fragment fused with the base sequence was prepared by PCR. The Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding Asp-Lys-Thr-His-Thr-Asp-Lys-Thr-His-Thr was obtained in Example 2 using primer 15 and primer 48 (SEQ ID NO: 71).
  • PCR was performed using the Fab-type antibody expression vector containing the Fd chain gene containing the base sequence encoding Asp-Lys-Thr-His-Thr prepared as a template to obtain a fragment.
  • This fragment is treated with BglII, inserted into the BglII site of pUC-LEU2-PMmfTm described in Example 1, and a base sequence encoding Asp-Lys-Thr-His-Thr-Asp-Lys-Thr-His-Thr A plasmid containing the Fd chain gene containing was constructed.
  • a gene fragment having EcoRI sites on both sides of a gene fragment to which a part of MOX promoter, MF ⁇ , L chain, and MOX terminator was linked was prepared by PCR using primers 13 and 14. did.
  • This gene fragment was treated with EcoRI, and then inserted into the EcoRI site of a plasmid containing an Fd chain gene containing a base sequence encoding Asp-Lys-Thr-His-Thr-Asp-Lys-Thr-His-Thr.
  • a Fab-type antibody expression vector containing an Fd chain gene containing a base sequence encoding Lys-Thr-His-Thr-Asp-Lys-Thr-His-Thr was constructed.
  • Example 20 Acquisition of transformant
  • the Fab-type antibody expression recombinant vector constructed in Example 19 was linearized by cutting at the EcoRV site in the MOX terminator. This fragment was transformed with Ogata Air polymorpha using the method described in Example 2 to obtain a Fab type antibody expression strain.
  • Example 21 Culture of transformant and preparation of culture supernatant The culture supernatant of the Fab type antibody expression strain obtained in Example 20 was prepared and obtained in the same manner as in Example 3.
  • Example 22 Quantification of Fab type antibody
  • the production amount of the Fab type antibody obtained in Example 21 to the culture supernatant was analyzed by the method described in Example 4.
  • Table 5 shows the results of quantification of the Fab-type antibody in the culture supernatant using a standard protein calibration curve. As shown in Table 5, it was revealed that the production amount of the Fab-type antibody in which the peptide of 10 residues was fused to the Fd chain was improved about 5 times that of the non-fused Fab-type antibody.
  • Fab-type antibody expression vector 4 A fragment in which a base sequence encoding an Fd chain, a base sequence encoding a 30-residue peptide (SEQ ID NO: 74) (SEQ ID NO: 75), and a base sequence encoding a stop codon was prepared by PCR.
  • the Fd chain gene fragment fused with the base sequence encoding the peptide of SEQ ID NO: 74 is used as a template with primer 49 (SEQ ID NO: 76) and primer 50 (SEQ ID NO: 77) and pEGFP-F (manufactured by Clontech). PCR was performed to obtain a fragment.
  • This fragment was treated with BglII and BamHI and inserted into the BglII site of pUC-LEU2-PmMfTm described in Example 1 to obtain a plasmid containing a part of the base sequence encoding the peptide of SEQ ID NO: 74.
  • PCR was performed using primer 15 and primer 51 (SEQ ID NO: 78) to obtain an Fd chain gene fragment.
  • a vector containing the gene was constructed.
  • pUC-LEU2-PmMfLTm as a template, a gene fragment having EcoRI sites on both sides of a gene fragment to which a part of MOX promoter, MF ⁇ , L chain, and MOX terminator was linked was prepared by PCR using primers 13 and 14. did.
  • Example 24 Acquisition of transformant
  • the Fab-type antibody expression recombinant vector constructed in Example 23 was linearized by cutting at the EcoRV site in the MOX terminator. This fragment was transformed with Ogata Air polymorpha using the method described in Example 2 to obtain a Fab type antibody expression strain.
  • Example 25 Culture of transformant and preparation of culture supernatant The culture supernatant of the Fab type antibody expression strain obtained in Example 24 was prepared in the same manner as in Example 3.
  • Example 26 Quantification of Fab-type antibody The amount of secreted production of the Fab-type antibody obtained in Example 25 into the culture supernatant was analyzed by the method described in Example 4. Table 6 shows the results of quantification of the Fab-type antibody in the culture supernatant, which was carried out using a standard protein calibration curve. As shown in Table 6, it was revealed that the production amount of the Fab antibody in which a 30-residue peptide was fused to the Fd chain was improved about 4 times that of the unfused Fab antibody.

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Abstract

　本発明の目的は、酵母を宿主として用いたＦａｂ型抗体等の低分子化抗体の製造方法において、低分子化抗体を高い生産性で製造できる方法を提供することである。本発明によれば、抗体のＦｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３'末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有する、遺伝子が提供される。

Description

Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるＦｄ鎖遺伝子又はＬ鎖遺伝子
　本発明は、抗体のＦｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有する、遺伝子に関する。本発明はさらに、前記鎖遺伝子を含む組み換えベクター、前記組み換えベクターを有する形質転換体、前記形質転換体を用いたＦａｂ型抗体の製造方法、並びに抗体のＦｄ鎖及び／又はＬ鎖のアミノ酸配列のＣ末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列を有する、Ｆａｂ型抗体に関する。
　遺伝子組換え技術を用いてタンパク質を生産するためには、そのタンパク質の発現に適切な宿主が使用される。宿主としては、例えば、ＣＨＯ細胞等の動物細胞、カイコ等の昆虫及び昆虫細胞、ニワトリや牛などの動物、並びに大腸菌又は酵母などの微生物などが用いられている。上記の中でも酵母は、安価な培地で大規模な高密度培養が可能であり、タンパク質を低コストで生産することができる。また、分泌シグナルペプチド等を利用すれば培養液中への分泌生産も可能なため、タンパク質の精製も容易となる。上記したような宿主を用いて生産するタンパク質としては、次世代タンパク医薬品であるｓｃＦｖやＦａｂ型抗体等の低分子化抗体が注目されている。しかし、宿主として酵母を用いてこれらの低分子化抗体を発現させた場合、抗体の生産性が低いという問題があり、さらに炭素源によって生産物に影響を及ぼす場合があることが懸念されている。
　上記した問題を解消するための手段としては、炭素源による生産物への影響を回避するための宿主として、コマガタエラ（Komagataella）属酵母、オガタエア（Ogataea）属酵母及びキャンディダ(Candida）属酵母等のメタノール資化性酵母が用いることが報告されている。さらにタンパク質の生産性を向上させるために、通常のプロモーターと比較して数倍の活性を有するメタノールオキシダーゼ（Methanol oxidase）やアルコールオキシダーゼ（Alcohol oxidase）等のプロモーターの下流にＦａｂ型抗体をコードする塩基配列を配置して、Ｆａｂ型抗体を生産する方法が報告されている（非特許文献１）。しかしながら、上記のような強力なプロモーターを用いてＦａｂ型抗体のような高次構造を持つタンパク質を発現させた場合、立体構造が正しくホールディングされないＦａｂ型抗体が小胞体内で蓄積し、小胞体ストレスと呼ばれるストレスを菌体に与えるといった問題がある。
　上記した通り、宿主として酵母を用いてＦａｂ型抗体等の低分子化抗体を低コストで生産するためには、通常より活性の高いプロモーターを用いる方法が知られているが、小胞体ストレスを引き起こす等の問題がある。そのため、通常より活性の高いプロモーターを用いる方法は、高生産の観点から見て効率的であるとはいえず、問題は未だ解決されていない。
Biotechnology and Bioengineering, vol94, 353-361, 2006
　本発明は、酵母を宿主として用いたＦａｂ型抗体等の低分子化抗体の製造方法において、低分子化抗体を高い生産性で製造できる方法を提供することを解決すべき課題とした。具体的には、本発明は、活性の高いプロモーターを用いることなく、酵母を宿主として用いてＦａｂ型抗体等の低分子化抗体を高い生産性で製造できる方法を提供することを解決すべき課題とした。
　本発明者らは、前記課題を解決すべく鋭意研究を行った結果、Ｆｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に１～１０残基のアミノ酸をコードする塩基配列を連結し、これを酵母において発現させることによって、Ｆａｂ型抗体の生産性が向上することを見出し、本発明を完成するに至った。
　すわなち、本発明によれば、以下の発明が提供される。

（１）抗体のＦｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有する、遺伝子。
（２）　前記Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列が、１～３０個のアミノ酸からなるものである、（１）に記載の遺伝子。
（３）　前記Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列が、Ａｓｐ、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ、又はＧｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ－Ｍｅｔ－Ｖａｌ－Ｓｅｒ－Ｌｙｓ－Ｇｌｙ－Ｇｌｕ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ｐｈｅ－Ｔｈｒ－Ｇｌｙ－Ｖａｌ－Ｖａｌ－Ｐｒｏ－Ｉｌｅ－Ｌｅｕ－Ｖａｌ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｖａｌ－Ａｓｎ－Ｇｌｙの何れかである、（１）又は（２）に記載の遺伝子。
（４）　（１）から（３）の何れかに記載の遺伝子を含有する組換えベクター。
（５）　以下の何れかである、（４）に記載の組み換えベクター。
（ａ）抗体のＦｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子と、抗体のＬ鎖遺伝子とを含有する、組み換えベクター；
（ｂ）抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子と、抗体のＦｄ鎖遺伝子とを含有する、組み換えベクター；及び
（ｃ）抗体のＦｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子と、抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子とを含有する組み換えベクター。
（６）　以下の何れかである、組換えベクターの組み合わせ。
（Ａ）抗体のＦｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターと、抗体のＬ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターとの組み合わせ；
（Ｂ）抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターと、抗体のＦｄ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターとの組み合わせ；及び
（Ｃ）抗体のＦｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターと、抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターとの組み合わせ：
（７）　（４）又は（５）に記載の組換えベクター又は（６）に記載の組換えベクターの組み合わせにより宿主を形質転換することにより得られる形質転換体。
（８）　宿主が酵母である、（７）に記載の形質転換体。
（９）　酵母がオガタエア属またはコマガタエラ属酵母である、（７）又は（８）に記載の形質転換体。
（１０）　オガタエア属またはコマガタエラ属酵母が、オガタエア・ポリモルファまたはコマガタエラ・パストリスである、（９）に記載の形質転換体。
（１１）　形質転換体を培養してＦａｂ型抗体を生産させた場合の、培養上清中のＦａｂ型抗体分泌生産量が２．０ｍｇ／ｍＬ以上である、（７）から（１０）の何れかに記載の形質転換体。
（１２）　（７）から（１１）の何れかに記載の形質転換体を培養し、Ｆａｂ型抗体を回収する工程を含むＦａｂ型抗体の製造方法。
（１３）　抗体のＦｄ鎖及び／又はＬ鎖のアミノ酸配列のＣ末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列を有する、Ｆａｂ型抗体。
（１４）　前記Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列が、１～１０個のアミノ酸からなるものである、（１３）に記載のＦａｂ型抗体．
（１５）　前記Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列が、Ａｓｐ、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ、又はＧｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ－Ｍｅｔ－Ｖａｌ－Ｓｅｒ－Ｌｙｓ－Ｇｌｙ－Ｇｌｕ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ｐｈｅ－Ｔｈｒ－Ｇｌｙ－Ｖａｌ－Ｖａｌ－Ｐｒｏ－Ｉｌｅ－Ｌｅｕ－Ｖａｌ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｖａｌ－Ａｓｎ－Ｇｌｙの何れかである、（１３）又は（１４）に記載のＦａｂ型抗体。
　本発明によれば、抗体のＦｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を連結させるだけで、Ｆａｂ型抗体の生産性を向上させることができる。本発明によれば、通常より活性の高いプロモーターを用いる必要がないことにより、小胞体ストレスを菌体に与えるという懸念がない。また、本発明によるＦａｂ型抗体の製造方法においては、高密度培養が可能な酵母を宿主として用いることが可能であることから抗体の製造コストを削減できる。本発明は、抗体医薬の開発に有用である。
　以下、本発明の実施の形態についてさらに詳細に説明する。
　本発明における抗体のＦｄ鎖とは、ＩｇＧ抗体のＨ鎖からヒンジ部位とＦｃ領域を除いた部分であり、Ｈ鎖のＮ末端から、Ｌ鎖のＣ末端のシステインとＳ-Ｓ結合するシステイン残基までの部分を指す。
　本発明におけるＦｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列とは、Ｆｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ断片であれば特に限定されない。
　本発明で用いるＦｄ鎖又はＬ鎖が由来する抗体の種類は、特に限定されず、例えばヒト抗体、ヒト化抗体、マウス抗体、イヌ抗体、ネコ抗体、ウマ抗体、ウシ抗体、ブタ抗体、ニワトリ抗体、又はこれらを融合したキメラ抗体などが挙げられる。
　本発明で用いるＦｄ鎖又はＬ鎖が由来する抗体が結合する抗原も特に限定されないが、好ましくは創薬のターゲットとして知られるＣＤ２０、ＨＥＲ２、ＩＬ２Ｒ、ＣＤ３３、ＣＤ５２、ＥＧＦＲ、ＶＥＧＦ、ＣＤ３、ＣＤ２５、ＴＮＦα、ＣＤ１１、ＩｇＥ、ＣＤ２、α４ｉｎｔｅｇｒｉｎ、ＣＤ８０、ＣＤ８６、ＩＬ６Ｒ、Ｃ５ａ、ＧＰＩＩｂ／ＩＩＩａ、ＲＳＶＦ Ｐｒｏｔｅｉｎ、ＶＥＧＦ－Ａ、ＧＭ－ＣＳＦなどの抗原が挙げられる。
　Ｆｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の具体例としては、配列番号１６又は配列番号６０に示す塩基配列である。
　本発明におけるＬ鎖遺伝子とは、Ｆｄ鎖遺伝子と共に発現させた場合にＦａｂ型抗体が生産されるものであればよく、ＩｇＧ抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列である。Ｌ鎖遺伝子の具体例としては、配列番号１７又は配列番号５９に示す塩基配列である。
　本発明の遺伝子においては、抗体のＦｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有する。
　Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列としては、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるという作用を発揮する限り、特に限定されず、アミノ酸の個数も特に限定されないが、好ましくは１～３０個であり、より好ましくは１～１０個又は１～５個である。
　Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列の具体例としては、Ａｓｐ、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ（配列番号１）、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ（配列番号２）、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ（配列番号６９）、又はＧｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ－Ｍｅｔ－Ｖａｌ－Ｓｅｒ－Ｌｙｓ－Ｇｌｙ－Ｇｌｕ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ｐｈｅ－Ｔｈｒ－Ｇｌｙ－Ｖａｌ－Ｖａｌ－Ｐｒｏ－Ｉｌｅ－Ｌｅｕ－Ｖａｌ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｖａｌ－Ａｓｎ－Ｇｌｙ（配列番号７４）の何れかである。また、上記のアミノ酸又はアミノ酸配列の中から複数のものを選択して、組み合わせたものでもよい。但し、複数個（例えば６～１０個程度など）のＨｉｓからなるヒスチジンタグをコードする塩基配列を、抗体のＦｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に含む態様は、本発明から除外される。同様に、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ（配列番号２）、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｌｅｕ（配列番号７２）Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ｃｙｓ－Ａｌａ－Ａｌａ（配列番号７３）をコードする塩基配列を、抗体のＦｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に含む態様も、本発明から除外される。
　上記したＦａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列は、各アミノ酸コドンをコードする塩基配列を組み合わせて成るが、各アミノ酸コドンは、Ｆｄ鎖遺伝子又はＬ鎖遺伝子を発現させる宿主内で利用できるコドンの中から任意で選ぶことができる。具体的には、Ａｓｐの場合は、ｇａｃ、Ａｓｐ－Ｌｙｓの場合は、ｇａｃａａｇ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒの場合は、ｇａｃａａｇａｃｃ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ（配列番号１）の場合は、ｇａｃａａｇａｃｃｃａｃ（配列番号３）、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ（配列番号２）の場合は、ｇａｃａａｇａｃｃｃａｃａｃｃ（配列番号４）の塩基配列、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ（配列番号６９）の場合は、ｇａｃａａｇａｃｃｃａｃａｃｃｇａｃａａｇａｃｃｃａｃａｃｃ（配列番号７０）、Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ－Ｍｅｔ－Ｖａｌ－Ｓｅｒ－Ｌｙｓ－Ｇｌｙ－Ｇｌｕ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ｐｈｅ－Ｔｈｒ－Ｇｌｙ－Ｖａｌ－Ｖａｌ－Ｐｒｏ－Ｉｌｅ－Ｌｅｕ－Ｖａｌ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｖａｌ－Ａｓｎ－Ｇｌｙ（配列番号７４）の場合は、ｇｇａｇｇｔｇｇｃｇｇａｔｃｃａｔｇｇｔｇａｇｃａａｇｇｇｃｇａｇｇａｇｃｔｇｔｔｃａｃｃｇｇｇｇｔｇｇｔｇｃｃｃａｔｃｃｔｇｇｔｃｇａｇｃｔｇｇａｃｇｇｃｇａｃｇｔａａａｃｇｇｃ（配列番号７５）が挙げられるが、特にこれらに限定されるものではない。
　上述のＡｓｐ、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓはそれぞれ、アスパラギン酸残基、グリシン残基、アラニン残基、バリン残基、ロイシン残基、イソロシシン残基、システイン残基、メチオニン残基、セリン残基、スレオニン残基、チロシン残基、フェニルアラニン残基、トリプトファン残基、プロリン残基、グルタミン酸残基、アスパラギン残基、グルタミン残基、リジン残基、アルギニン残基、およびヒスチジン残基を指す。また、塩基配列を示すＴはチミン、Ａはアデニン、Ｇはグアニン、Ｃはシトシンを指す。
　上述のＦｄ鎖のアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする塩基配列の３'末端に、ｇａｃ、ｇａｃａａｇ、ｇａｃａａｇａｃｃ、ｇａｃａａｇａｃｃｃａｃ（配列番号３）、又はｇａｃａａｇａｃｃｃａｃａｃｃ（配列番号４）のいずれかを含有し、さらにその３'末端に終止コドンとしてｔａａ、ｔｇａおよびｔａｇからなる塩基配列を含有してもよい。
　配列番号５は配列番号１６の塩基配列の３'末端に、ｇａｃの塩基配列と終止コドンｔａａの塩基配列を連結させた遺伝子である、
　配列番号６は配列番号１６の塩基配列の３'末端に、ｇａｃａａｇの塩基配列と終止コドンｔａａの塩基配列を連結させた遺伝子である。
　配列番号７は配列番号１６の塩基配列の３'末端に、ｇａｃａａｇａｃｃの塩基配列と終止コドンｔａａの塩基配列を連結させた遺伝子である。
　配列番号８は配列番号１６の塩基配列の３'末端に、ｇａｃａａｇａｃｃｃａｃ（配列番号３）の塩基配列と終止コドンｔａａの塩基配列を連結させた遺伝子である。
　配列番号９は配列番号１６の塩基配列３'末端に、ｇａｃａａｇａｃｃｃａｃａｃｃ（配列番号４）の塩基配列と終止コドンｔａａの塩基配列を連結させた遺伝子である。
　本発明における組換えベクターとは、形質転換後の宿主細胞において、上記したＦｄ鎖遺伝子が発現する機能を有する核酸分子のことを意味する。組み換えベクターは、発現カセットに加えて、組み込み相同領域、栄養要求性相補遺伝子または薬剤耐性遺伝子などの選択マーカー遺伝子、自律複製配列などを有していてもよい。
　本発明において宿主に形質転換された後のベクターは、形質転換体の染色体に組み込まれている状態でも良く、自律複製型として存在している状態でも良い。自律複製型ベクターの例としては、ＹＥｐベクター、ＹＲｐベクター、ＹＣｐベクターなどが挙げられる。コマガタエラ属の場合はｐＰＩＣＨＯＬＩ、ｐＨＩＰ、ｐＨＲＰ、ｐＨＡＲＳなどが挙げられるが、特にこれらに限定されるものではない。
　本発明における「発現カセット」とは、プロモーターおよび発現する目的タンパク質遺伝子より構成され、ターミネーター遺伝子を含んでも良く、例えば、ｐＵＣ１９等のプラスミド上に構築することもできるし、ＰＣＲ法によっても作成することができる。
　本発明における組み込み相同領域とは、本発明の組換えベクターが形質転換後の宿主細胞の染色体上に相同組換えで組み込まれるための領域を指す。本領域は、宿主細胞の染色体の一部を任意で利用できるが、栄養要求性相補遺伝子や、発現カセット内のプロモーターやターミネーターなどを利用することもできる。
　本発明における栄養要求性相補遺伝子は、宿主細胞のアミノ酸や核酸などの栄養要求性を相補する遺伝子であれば特に限定されない。具体的な例としては、ＵＲＡ３遺伝子、ＬＥＵ２遺伝子、ＡＤＥ１遺伝子、ＨＩＳ４遺伝子などが挙げられ、それぞれウラシル、ロイシン、アデニン、ヒスチジンの栄養要求性株において原栄養株表現型の回復により選択することができる。
　本発明における薬剤耐性遺伝子などの選択マーマー遺伝子は、宿主細胞が保有していない薬剤耐性を付与する遺伝子であれば特に限定されない。具体的な例としては、G418耐性遺伝子、ゼオシン耐性遺伝子、ハイグロマイシン耐性遺伝子などが挙げられ、それぞれＧ４１８、ゼオシン、ハイグロマイシンを含む培地上における耐性により選択することができる。なお、酵母宿主を作成するときに用いた栄養要求性選択マーカーは、該選択マーカーが破壊されていない場合は、用いることができない。この場合、該選択マーカーを回復させればよく、方法は当業者において公知の方法を用いることができる。
　本発明における自律複製配列とは、宿主細胞において、本発明の組換えベクターの複製起点として作用し、自律的な複製を可能とする配列のことを指す。
　本発明の組み換えベクターは、本明細書に記載した本発明のＦｄ鎖遺伝子又はＬ鎖遺伝子を含有する組換えベクターであるが、好ましくは、Ｆｄ鎖遺伝子とＬ鎖遺伝子の両方を含むものである。本発明の組み換えベクターの具体例としては、
（ａ）抗体のＦｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子と、抗体のＬ鎖遺伝子とを含有する、組み換えベクター；
（ｂ）抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子と、抗体のＦｄ鎖遺伝子とを含有する、組み換えベクター；及び
（ｃ）抗体のＦｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子と、抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子とを含有する組み換えベクター；
を挙げることができる。
　本発明の組み換えベクターに含まれる各構成要素の５'側から３'側への並び方について好ましい例を以下に挙げる。
（１）第１のプロモーター配列－第１のシグナル配列－Ｌ鎖遺伝子－第２のプロモーター配列－第２のシグナル配列－Ｆｄ鎖遺伝子－ターミネーター配列；
（２）第１のプロモーター配列－第１のシグナル配列－Ｆｄ鎖遺伝子－第２のプロモーター配列－第２のシグナル配列－Ｌ鎖遺伝子－ターミネーター配列；
（３）（第１のプロモーター配列－第１のシグナル配列－Ｌ鎖遺伝子－第１のターミネーター配列）を含む発現ベクターと、（第２のプロモーター配列－第２のシグナル配列－Ｆｄ鎖遺伝子－第２のターミネーター配列）を含む発現ベクターとの組み合わせ；
　（１）～（３）において、第１のプロモーターと第２のプロモーターは同一であっても異なっていてもよい。第１及び第２のプロモーターは、好ましくは、ハンゼヌラ・ポリモルファ（好ましくは宿主であるハンゼヌラ・ポリモルファ）のＭＯＸプロモーター又はＧＡＰプロモーターである。
　（１）～（３）において、第１のシグナル配列と第２のシグナル配列は同一であっても異なっていてもよい。第１及び第２のシグナル配列は、好ましくは、サッカロマイセス・セレビシエのＭａｔｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒ α（ＭＦα）プレプロシグナルである。
　（３）において、第１のターミネーター配列と第２のターミネーター配列は同一であっても異なっていてもよい。第１及び第２のターミネーター配列は、好ましくは、ハンゼヌラ・ポリモルファのＭＯＸ遺伝子のターミネーター配列である。
　本発明における宿主とは、本発明のＦｄ鎖遺伝子及び／又はＬ鎖遺伝子を含有する組換えベクターを導入し、Ｆａｂ型抗体を生産できれば、特に限定されないが、好ましくは酵母、カビ、動物細胞、トランスジェニック動物、大腸菌、無細胞タンパク質合成系などが挙げられる。中でも酵母が好ましく、メタノール資化性酵母がより好ましく、オガタエア属（Ｏｇａｔａｅａ）やコマガタエラ属(Ｋｏｍａｇａｔａｅｌｌａ)に属するメタノール資化性酵母がさらに好ましい。オガタエア属に属するメタノール資化性酵母の中でも、オガタエア・ポリモルファ（Ｏｇａｔａｅａ　ｐｏｌｙｍｏｒｐｈａ）、オガタエア・ミニュータ（Ｏｇａｔａｅａ ｍｉｎｕｔａ）が好ましく、コマガタエラ属に属するメタノール資化性酵母では、コマガタエア・パストリス（Ｋｏｍａｇａｔａｅｌｌａ　ｐａｓｔｏｒｉｓ）が好ましい。
　本発明における形質転換体とは、本発明の組換えベクターが宿主に導入されたものを意味する。本発明の形質転換体は、組換えベクターに含まれる栄養要求性相補遺伝子や薬剤耐性遺伝子により得られる表現型を指標にして、選択的に得ることができる。
　本発明のＦａｂ型抗体の製造方法としては、上記した形質転換体を培養して、生産したＦａｂ型抗体を回収することで得られる。生産する方法としては、上記の形質転換体を培養し、その培養上清中に蓄積させる分泌方法等が挙げられる。
　本発明における分泌生産とは、形質転換体を液体培養して、菌体内部でなく培養上清にＦａｂ型抗体を蓄積させることを指す。分泌生産は、Ｆａｂ型抗体のＦｄ鎖および/またはＬ鎖を、分泌シグナルを融合したタンパク質として発現させることにより行う。分泌シグナルの融合としては、例えば、Ｆａｂ型抗体のＦｄ鎖および/またはＬ鎖をコードする塩基配列の５’末端にシグナル配列をコードする塩基配列を導入することにより行うことができる。
　本発明におけるシグナル配列をコードする塩基配列は、宿主細胞がＦａｂ型抗体を分泌発現できるシグナル配列であれば特に限定されないが、サッカロマイセス・セレビシアエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）のＭａｔｉｎｇ　Ｆａｃｔｏｒ　α（ＭＦα）や、オガタエア・ポリモルファやコマガタエラ・パストリスの酸ホスファターゼ（ＰＨＯ１）、サッカロマイセス・セレビシアエのインベルターゼ（ＳＵＣ２）、サッカロマイセス・セレビシアエのＰＬＢ１、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、ヒト血清アルブミン(ＨＳＡ)、免疫グロブリンのシグナル配列をコードする塩基配列等が挙げられる。
　本発明における形質転換体の培地は、通常宿主細胞が資化する栄養源を含む培地であれば何でも使用でき、上記栄養源としては、グルコース、シュークロース、マルトース等の糖類、乳酸、酢酸、クエン酸、プロピオン酸等の有機酸類、メタノール、エタノール、グリセロール等のアルコール類、パラフィン等の炭化水素類、大豆油、菜種油等の油脂類、またはこれらの混合物等の炭素源、硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、尿素、酵母エキス、肉エキス、ペプトン、コーンスチープリカー等の窒素源、更に、その他の無機塩、ビタミン類等の栄養源を適宜混合・配合した通常の培地を用いることができるが、特にグリセロールやメタノールを炭素源として用いることが好ましい。また、培養方法としてバッチ培養、連続培養またはドーム型培養のいずれでも培養可能である。
　培養は通常一般の条件により行なうことができ、例えば、ｐＨ２．５～１０．０、温度範囲１０℃～４８℃の範囲で、好気的に１０時間～１０日間培養することにより行うことができる。
　本発明の形質転換体は、好ましくは、形質転換体を培養してＦａｂ型抗体を生産させた場合の培養上清中のＦａｂ型抗体分泌生産量が２．０ｍｇ／ｍＬ以上（さらに好ましくは２．５ｍｇ／ｍＬ以上）である。形質転換体を培養してＦａｂ型抗体を生産させた場合の培養上清中のＦａｂ型抗体分泌生産量が２．０ｍｇ／ｍＬ以上（さらに好ましくは２．５ｍｇ／ｍＬ以上）である形質転換体とは、実施例１に示したＦａｂ型抗体の遺伝子を含む発現ベクターを用い、それを実施例２に示す方法で酵母に形質転換し、得られた形質転換体を、実施例３及び４に示す方法で、培養して得られた培養上清中のＦａｂ型抗体分泌生産量を解析した場合に、そのＦａｂ型抗体の濃度が２．０ｍｇ／Ｌ以上（又は２．５ｍｇ／ｍＬ以上）になる形質転換体を意味する。
　本発明のＦａｂ型抗体を回収する方法は、分泌生産の場合、培養液から遠心分離等で培養上清を調製する工程や、培養上清から任意の方法でＦａｂ型抗体を単離精製する工程を含む。培養上清からの単離精製は、公知のタンパク質精製法を適当に組み合わせて用いることにより実施できる。例えば、形質転換体を適当な培地で培養し、培養液の遠心分離、あるいは、濾過処理により培養上清から菌体を除き、得られた培養上清を、塩析（硫酸アンモニウム沈殿、リン酸ナトリウム沈殿など）、溶媒沈殿（アセトンまたはエタノールなどによる蛋白質分画沈殿法）、透析、ゲル濾過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、限外濾過等の手法で、該培養上清からＦａｂ型抗体を回収することができる。上記回収したＦａｂ型抗体は、そのまま使用することもできるが、その後ＰＥＧ化等の薬理学的な変化をもたらす修飾、酵素やアイソトープ等の機能を付加する修飾を加えて使用することもできる。また、各種の製剤化処理を使用しても良い。
　以下の実施例により本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらにより限定されるものではない。なお、以下の実施例において用いた組換えＤＮＡ技術に関する詳細な操作方法などは、次の成書に記載されている：Molecular Cloning 2nd Edition（Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989）、Current Protocols in Molecular Biology（Greene Publishing Associates and Wiley-Interscience）、Current Protocols in Molecular Biology（Greene Publishing Associates and Wiley-Interscience）。
　また、以下の実施例において取得したプラスミドは、大腸菌E. coli DH5αコンピテントセル（タカラバイオ社製）を用いて、これに記載の条件で行うことにより取得した形質転換体を用いて増幅している。
　ＰＣＲにはPrime STAR HS DNA Polymerase（タカラバイオ社製）を用い、反応条件は添付のマニュアルに記載の方法で行った。
（実施例１）ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍの構築
　抗体発現ベクターの構築において利用した、ＭＯＸプロモーター（配列番号１８）、ＭＯＸターミネーター（配列番号１９）、ＬＥＵ２遺伝子（配列番号２０）はハンゼヌラ・ポリモルファ ８Ｖ株のゲノムＤＮＡをテンプレートにしてＰＣＲで調製した。Ｍａｔｉｎｇ Ｆａｃｔｏｒαプレプロシグナル（ＭＦα、配列番号２１）は、サッカロマイセス・セレビシアエＳ２８８ｃ株のゲノムＤＮＡをテンプレートにしてＰＣＲで調製した。抗体遺伝子は、完全ヒト型化抗ＴＮＦ－α抗体（ａｄａｌｉｍｕｍａｂ；ＨＵＭＩＲＡ（登録商標））の公開配列情報に基づいて、Ｌ鎖（配列番号２２）、Ｈ鎖（配列番号２３）を化学合成した（特開２００９－０８２０３３）ものをテンプレートにしてＰＣＲで調製した。
　ＨｉｎｄＩＩＩ－ＮｏｔＩ－ＢａｍＨＩ－ＳｐｅＩ－ＢｇｌＩＩ－ＸｂａＩ－ＥｃｏＲＩのサイトをもつ遺伝子断片（配列番号２４）を全合成し、これをｐＵＣ１９のＨｉｎｄＩＩＩ－ＥｃｏＲＩサイトに挿入してｐＵＣ－１を調製した。ＬＥＵ２遺伝子の両側にＨｉｎｄＩＩＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー１および２（配列番号２５および２６）を用いたＰＣＲにより調製し、ＨｉｎｄＩＩＩ処理後にｐＵＣ－１のＨｉｎｄＩＩＩサイトに挿入した（ｐＵＣ－ＬＥＵ２）。次に、ＭＯＸプロモーターの両側にＢａｍＨＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー３および４（配列番号２７および２８）を用いたＰＣＲにより調製し、ＢａｍＨＩ処理後にｐＵＣ－ＬＥＵ２のＢａｍＨＩサイトへ挿入した（ｐＵＣ－ＬＥＵ２－Ｐｍ）。ＭＦαの5'側にSpeIサイトを、3'側にBglIIサイトつけた遺伝子断片をプライマー５および６（配列番号２９および３０）を用いたＰＣＲにより調製し、SpeIおよびBglII処理後にｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍのSpeI-BglIIサイトへ挿入した（ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆ）。ＭＯＸターミネーターの両側にＸｂａＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー７および８（配列番号３１および３２）を用いたＰＣＲにより調製し、ＸｂａＩ処理後にｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆのＸｂａＩサイトに挿入した（ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍ）。
（比較例１）Ｆａｂ型抗体発現組換えベクターの構築
　Ｌ鎖の両側にＢｇｌＩＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー９および１０（配列番号３３および３４）を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＢｇｌＩＩ処理後、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍのＢｇｌＩＩサイトに挿入し、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＬＴｍを構築した。Ｆｄ鎖の両側にＢｇｌＩＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー１１および１２（配列番号３５および３６）を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＢｇｌＩＩ処理後、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍのＢｇｌＩＩサイトに挿入し、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＦＴｍを構築した。ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＬＴｍをテンプレートにして、ＭＯＸプロモーター、ＭＦα、Ｌ鎖、ＭＯＸターミネーターの一部が連結した遺伝子断片の両側にＥｃｏＲＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー１３および１４（配列番号３７および３８）を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＥｃｏＲＩ処理後、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＦＴｍのＥｃｏＲＩサイトに挿入し、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＦＴｍ－ＰｍＭｆＬｔｍを構築した。本発現ベクターは、Ｆａｂ型抗体のＬ鎖およびＦｄ鎖がそれぞれ別々のＭＯＸプロモーター制御下で発現するように設計されている。
（比較例２）形質転換体の取得
　比較例１で構築したFab型抗体発現ベクターをＭＯＸターミネーター内のEcoRVサイトで切断して直鎖状にした。本断片を実施例３記載の方法を用いてオガタエア・ポリモルファを形質転換した。
（比較例３）形質転換体の培養および培養上清の調製
　比較例２で取得したＦａｂ型抗体発現ベクター導入株の培養上清の調製は実施例４に記載の方法と同様に実施した。
（比較例４）Ｆａｂ型抗体の定量
　比較例３で取得した培養上清中のＦａｂ型抗体の分泌生産量は、実施例５と同様にサンドイッチELISA（Enzyme-Linked ImmunosorbentAssay）法により解析した。
　本発明の各Ｆｄ鎖遺伝子（配列番号５～９）は、上記のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＦＴｍをテンプレートにしてＰＣＲにより調製した。
（実施例２）各Ｆａｂ型抗体発現組換えベクターの構築
　Ｆｄ鎖をコードする塩基配列、Ａｓｐ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－ＨｉｓおよびＡｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒの何れかのアミノ酸配列をコードする塩基配列、終止コドンをコードする塩基配列を融合させた断片は、ＰＣＲにより調製した。
　Ａｓｐをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー１５（配列番号１０）とプライマー１６（配列番号１１）を、Ａｓｐ－Ｌｙｓをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー１７（配列番号１２）を、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1とプライマー１８(配列番号１３)を、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ（配列番号１）をコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー１９（配列番号１４）を、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ（配列番号２）をコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー１５とプライマー２０（配列番号１５）を、それぞれ用いてＰＣＲを行い、各断片を得た。各断片をBglII処理して、実施例１記載のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍのＢｇｌＩＩサイトに挿入して、Ａｓｐ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ（配列番号１）およびＡｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ（配列番号２）の何れかをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含む各プラスミドを構築した。ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＬＴｍをテンプレートにして、ＭＯＸプロモーター、ＭＦα、Ｌ鎖、ＭＯＸターミネーターの一部が連結した遺伝子断片の両側にＥｃｏＲＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー１３および１４（配列番号３７および３８）を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＥｃｏＲＩ処理後、上述のＡｓｐ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ（配列番号１）およびＡｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ（配列番号２）の何れかをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含む各プラスミドのＥｃｏＲＩサイトに挿入し、Ａｓｐ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ（配列番号１）およびＡｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ（配列番号２）の何れかをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含む各Ｆａｂ型抗体発現ベクターを構築した。
（実施例３）形質転換体の取得
　実施例２で構築した各種のＦａｂ型抗体発現組換えベクターを、ＭＯＸターミネーター内のEcoRVサイトで切断して直鎖状にした。本断片を用いてオガタエア・ポリモルファを形質転換した。具体的には、オガタエア・ポリモルファBY4329（NCYC495由来、leu1-1）を３ｍｌのYPD培地（1% yeast extract bacto（Difco社製），2% tryptone bacto（Difco社製），2% glucose）に接種し、３７℃で一晩振とう培養して、前培養液を得た。得られた前培養液５００μｌを５０ｍｌのＹＰＤ培地に接種し、ＯＤ６００が１～１．５になるまで３０℃で振とう培養後、集菌（3000×g、10分、20℃）した。菌体を１０ｍｌの５０ｍＭリン酸カリウムバッファー(２５ｍＭ DTTを含む、 ｐＨ７．５)に懸濁し、懸濁液を３７℃で１５分インキュベートした。集菌（3000×g、10分、4℃）した後、氷冷した５０ｍｌのＳＴＭバッファー（２７０ｍＭスクロース, １０ｍＭ Tris-HCl, １ｍＭ塩化マグネシウム, ｐＨ７．５）で菌体を再懸濁した。集菌（3000×g、10分、4℃）後、菌体を２５ｍｌの氷冷したＳＴＭバッファーで再懸濁した。集菌（3000×g、10分、4℃）した後、菌体を２５０μｌの氷冷したＳＴＭバッファーに懸濁し、これをコンピテントセル溶液とした。このコンピテントセル溶液６０μｌと直鎖状の各プラスミド溶液３μｌ（ＤＮＡ量０．５～１μｇ）を混合し、エレクトロポレーション用キュベット（ディスポキュベット電極，電極間隔２ｍｍ；ビーエム機器社製）に移し入れ、7.5kV／cm、１０μF、９００Ωの条件でエレクトロポレーションした。その後、菌体をYPD培地１ｍｌで懸濁し、３７℃で１時間静置した。集菌（3000×g、5分、室温）し、１ｍｌの生理食塩水で菌体を洗浄し、再度集菌（3000×g、5分、室温）した。菌体を適当量の生理食塩水で懸濁後、SD培地寒天プレート（0.67% yeast nitrogen base（Difco社製），1% glucose）に塗布し、３０℃、３日間の静置培養で生育する株を選択し、各種Fab型抗体発現株を取得した。
（実施例４）形質転換体の培養および培養上清の調製
　培養上清の調製は以下のように実施した。即ち、実施例３で得られた各Ｆａｂ型抗体発現株を２ｍｌのBMGMY培地（1% yeast extract bacto，2% peptone，1.34% yeast nitrogen base，0.4mg/l Biotin，100mMリン酸カリウム(pH6.0)，1% Glycerol, 1% Methanol）に植菌し、３０℃で７２時間振とう培養後、遠心分離（15,000rpm、1分、4℃）により培養上清を調製した。
（実施例５）Ｆａｂ型抗体の定量
　Ｆａｂ型抗体の培養上清への分泌生産量は、サンドイッチELISA（Enzyme-Linked ImmunosorbentAssay）法により解析した。
　サンドイッチELISAは、ELISA用プレート（マキシソープ；NUNC社製）に固定化バッファー（0.1M 炭酸ナトリウムバッファー、pH9.6）にて２５００倍希釈したAnti IgG(Ｆｄ) ,Human (Sheep)（The Binding Site Group社製）を５０μｌ/ウェルで添加し、終夜で４℃インキュベートした。インキュベート後、ウェル中の溶液を除去し、５倍希釈したイムノブロック（大日本住友製薬社製）を２５０μｌ/ウェルで加え、室温で１時間静置し、ブロッキングした。各ウェルをPBST（PBS(タカラバイオ社製)+0.1% Tween20）で３回洗浄後、系列希釈した標準Fab型抗体（Anti-Human IgGFab；rockland社製）と培養上清の希釈液を５０μｌ/ウェルで加え、室温で1時間反応した。ウェル中の溶液を除去し、PBSTで２回洗浄後、PBSTIB（PBST + 2% イムノブロック）溶液にて８０００倍希釈したAnti-Human IgG（Fab SPECIFIC）PEROXIDASE CONJUGATE Antibody developed in Goat Affinity Isolated Antibody（SIGMA社製）を５０μｌ/ウェルで加え、室温で１時間反応させた。ウェル中の溶液を除去し、PBSTで４回洗浄後、TMB 1-Component Microwell Peroxidase Substrate，SureBlue（KPL社製）を１００μｌ/ウェルで添加し、室温で２０分静置した。TMB Stop Solution（KPL社製）を１００μｌ/ウェルで添加して反応を停止させた後、マイクロプレートリーダー（BenchMark Plus；Bio-Rad社製）で４５０ｎｍの吸光度を測定した。培養上清中のＦａｂ型抗体の定量は、標準タンパク質の検量線を用いて行った結果を表１に示す。表1の通り、Ａｓｐ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－ＨｉｓおよびＡｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒの何れかを融合したＦａｂ型抗体の生産量は、融合していないＦａｂ型抗体の５倍程度向上していることが明らかとなった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
（実施例６）各Ｆａｂ型抗体発現ベクターの構築２
　Ｆｄ鎖をコードする塩基配列、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓの何れかのアミノ酸をコードする塩基配列、終止コドンをコードする塩基配列を融合させた断片は、ＰＣＲにより調製した。
　Ｇｌｙをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー２１（配列番号３９）を、Ａｌａをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー２２（配列番号４０）を、Ｖａｌをコードする塩基配列を融合したFd鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー２３(配列番号４１)を、Ｌｅｕをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー２４（配列番号４２）を、Ｉｌｅをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー２５（配列番号４３）を、Ｃｙｓをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー２６（配列番号４４）を、Ｍｅｔをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー２７（配列番号４５）を、Ｓｅｒをコードする塩基配列を融合したFd鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー２８(配列番号４６)を、Ｔｈｒをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー２９（配列番号４７）を、Ｔｙｒをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー３０（配列番号４８）を、Ｐｈｅをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー３１（配列番号４９）を、Ｔｒｐをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー３２（配列番号５０）を、Ｐｒｏをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー３３(配列番号５１)を、Ｇｌｕをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー３４（配列番号５２）を、Ａｓｎをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー３５（配列番号５３）を、Ｇｌｎをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー３６（配列番号５４）を、Ｌｙｓをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー３７（配列番号５５）を、Ａｒｇをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー３８(配列番号５６)を、Ｈｉｓをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー３９（配列番号５７）を、それぞれ用いてＰＣＲを行い、各断片を得た。各断片をBglII処理して、実施例１記載のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍのBglIIサイトに挿入して、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓの何れかをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含む各プラスミドを構築した。ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＬＴｍをテンプレートにして、ＭＯＸプロモーター、ＭＦα、Ｌ鎖、ＭＯＸターミネーターの一部が連結した遺伝子断片の両側にＥｃｏＲＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー１３および１４（配列番号３７および３８）を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＥｃｏＲＩ処理後、上述のＧｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓの何れかをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含む各プラスミドのＥｃｏＲＩサイトに挿入し、ｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓの何れかをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含む各Ｆａｂ型抗体発現ベクターを構築した。
（実施例７）各Ｆａｂ型抗体発現ベクターの構築３
　Ｌ鎖をコードする塩基配列、Ａｓｐののアミノ酸をコードする塩基配列、終止コドンをコードする塩基配列を融合させた断片は、ＰＣＲにより調製した。
　Ａｓｐをコードする塩基配列を融合したＬ鎖遺伝子断片はプライマー９とプライマー４０（配列番号５８）を用いてＰＣＲを行い、断片を得た。本断片をＢｇｌＩＩ処理して、実施例１記載のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍのＢｇｌＩＩサイトに挿入し、Ａｓｐをコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子を含むベクターを構築した。本ベクターをテンプレートにして、ＭＯＸプロモーター、ＭＦα、Ａｓｐをコードする塩基配列を含有するＬ鎖、ＭＯＸターミネーターの一部が連結した遺伝子断片の両側にＥｃｏＲＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー１３および１４（配列番号３７および３８）を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＥｃｏＲＩ処理後、実施例２記載のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＦＴｍのＥｃｏＲＩサイトに挿入し、Ａｓｐをコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子を含む各Ｆａｂ型抗体発現ベクターを構築した。
（実施例８）形質転換体の培養および培養上清の調製
　実施例６および７で構築した各種のＦａｂ型抗体発現組換えベクターを、ＭＯＸターミネーター内のEcoRVサイトで切断して直鎖状にした。本断片を実施例２に記載の方法を用いてオガタエア・ポリモルファを形質転換し、各種Fab型抗体発現株を取得した。
（実施例９）形質転換体の培養および培養上清の調製
　実施例８で得られた各種Fab型抗体発現株の培養上清の調製は実施例3と同様に実施して取得した。
（実施例１０）Ｆａｂ型抗体の定量
　実施例９で取得したＦａｂ型抗体の培養上清への分泌生産量は、実施例４に記載の方法により解析した。
　培養上清中のＦａｂ型抗体の定量は、標準タンパク質の検量線を用いて行った結果を表２に示す。表２の通り、Ｆｄ鎖にＧｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓの何れかを融合したＦａｂ型抗体の生産量、Ｌ鎖にＡｓｐを融合したＦａｂ型抗体の生産量は、融合していないＦａｂ型抗体の４～６倍程度向上していることが明らかとなった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
（比較例５）レミケード由来のＦａｂ型抗体発現ベクターの構築
　レミケード由来のFab型抗体遺伝子は、レミケード（Ｉｎｆｌｉｘｉｍａｂ；Ｒｅｍｉｃａｄｅ（登録商標））の公開配列情報に基づいて、Ｌ鎖（配列番号５９）、Ｆｄ鎖（配列番号６０）を化学合成し、これをテンプレートにしてＰＣＲで調製した。
　レミケード由来Ｌ鎖の両側にＢｇｌＩＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー４１および４２（配列番号６１および６２）を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＢｇｌＩＩ処理後、実施例１記載のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍのＢｇｌＩＩサイトに挿入し、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆｒＬＴｍを構築した。レミケード由来Ｆｄ鎖の両側にＢｇｌＩＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー４３および４４（配列番号６３および６４）を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＢｇｌＩＩ処理後、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍのＢｇｌＩＩサイトに挿入し、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆｒＦＴｍを構築した。ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆｒＬＴｍをテンプレートにして、ＭＯＸプロモーター、ＭＦα、レミケード由来Ｌ鎖、ＭＯＸターミネーターの一部が連結した遺伝子断片の両側にＥｃｏＲＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー１３および１４（配列番号３７および３８）を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＥｃｏＲＩ処理後、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆｒＦＴｍのＥｃｏＲＩサイトに挿入し、ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆｒＦＴｍ－ＰｍＭｆｒＬｔｍを構築した。本発現ベクターは、レミケード由来のＦａｂ型抗体のＬ鎖およびＦｄ鎖がそれぞれ別々のＭＯＸプロモーター制御下で発現するように設計されている。
（比較例６）形質転換体の取得
　比較例５で構築したレミケード由来Ｆａｂ型抗体発現ベクターをＭＯＸターミネーター内のEcoRVサイトで切断して直鎖状にした。本断片を実施例３記載の方法を用いてオガタエア・ポリモルファを形質転換した。
（比較例７）形質転換体の培養および培養上清の調製
　比較例６で取得したレミケード由来Ｆａｂ型抗体発現ベクター導入株の培養上清の調製は実施例１３に記載の方法と同様に実施した。
（比較例８）Ｆａｂ型抗体の定量
　比較例７で取得した培養上清中のＦａｂ型抗体の分泌生産量は、実施例５と同様にサンドイッチELISA（Enzyme-Linked ImmunosorbentAssay）法により解析した。結果を表３に示す。
（実施例１１）レミケード由来各Ｆａｂ型抗体発現ベクターの構築
　Ａｓｐをコードする塩基配列を融合したレミケード由来Ｆｄ鎖遺伝子断片はプライマー４３とプライマー４５（配列番号６５）を用いてＰＣＲを行い、断片を得た。本断片をBglII処理して、実施１記載のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍのBglIIサイトに挿入して、Ａｓｐをコードする塩基配列を含有するレミケード由来Ｆｄ鎖遺伝子を含むベクターを構築した。比較例２記載のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆｒＬＴｍをテンプレートにして、ＭＯＸプロモーター、ＭＦα、レミケード由来Ｌ鎖、ＭＯＸターミネーターの一部が連結した遺伝子断片の両側にＥｃｏＲＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー１３および１４（配列番号３７および３８）を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＥｃｏＲＩ処理後、上述のＡｓｐをコードする塩基配列を含有するレミケード由来Ｆｄ鎖遺伝子を含むベクターのＥｃｏＲＩサイトに挿入し、Ａｓｐをコードする塩基配列を含有するレミケード由来Ｆｄ鎖遺伝子を含むレミケード由来Ｆａｂ型抗体発現組換えベクターを構築した。
（実施例１２）形質転換体の取得
　実施例１１で構築したレミケード由来Ｆａｂ型抗体発現組換えベクターを、ＭＯＸターミネーター内のEcoRVサイトで切断して直鎖状にした。本断片を実施例２に記載の方法を用いてオガタエア・ポリモルファを形質転換し、レミケード由来Fab型抗体発現株を取得した。
（実施例１３）形質転換体の培養および培養上清の調製
　培養上清の調製は以下のように実施した。即ち、実施例１２で得られたレミケード由来Ｆａｂ型抗体発現株を２ｍｌのBMGMY培地（1% yeast extract bacto，2% peptone，1.34% yeast nitrogen base，0.4mg/l Biotin，100mMリン酸カリウム(pH6.0)，1% Glycerol, 1% Methanol）に植菌し、３０℃で６０時間振とう培養後、Methanolを20mg添加し、さらに３０℃で２４時間振とう培養した。その後、遠心分離（15,000rpm、1分、4℃）により培養上清を調製した。
（実施例１４）Ｆａｂ型抗体の定量
　実施例１３で取得したレミケード由来Ｆａｂ型抗体の培養上清への分泌生産量は、実施例４に記載の方法により解析した。
　培養上清中のレミケード由来Ｆａｂ型抗体の定量は、標準タンパク質の検量線を用いて行った結果を表３に示す。表３の通り、Ｆｄ鎖にＡｓｐを融合したレミケード由来Ｆａｂ型抗体の生産量は、融合していないレミケード由来Ｆａｂ型抗体の５倍程度向上しており、Ｆａｂ型抗体の種類に因らず、効果があることが明らかとなった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
（比較例９）ピキア用Ｆａｂ型抗体ベクターの構築
　実施例２記載のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＬＴｍ－ＰｍＭｆＦｔｍをＨｉｎｄＩＩＩで処理した後に、Ｆａｂ型抗体遺伝子を含むベクター断片をアガロースゲルから精製した。その後、本ベクター断片のＨｉｎｄＩＩＩサイトに、実施例１５に記載のＧ４１８耐性遺伝子を挿入し、ｐＵＣ－Ｇ４１８－ＰｍＭｆＬＴｍ－ＰｍＭｆＦｔｍを構築した。
（比較例１０）ピキアの形質転換体の取得
　比較例９で構築したベクターを、ピキア酵母野生株Ｙ－１１４３０株に形質転換した。方法は実施例１６に記載の方法にて実施した。
（比較例１１）形質転換体の培養および培養上清の調製
　比較例１０で取得したＦａｂ型抗体発現ベクター導入ピキア株の培養上清の調製は実施例４に記載の方法と同様に実施した。
（比較例１２）Ｆａｂ型抗体の定量
　比較例１１で取得した培養上清中のＦａｂ型抗体の分泌生産量は、実施例５と同様にサンドイッチELISA（Enzyme-Linked ImmunosorbentAssay）法により解析した。結果を表４に示す。
（実施例１５）ピキア用Ｆａｂ型抗体ベクターの構築
　オガタエア・ポリモルファ酵母のＧＡＰプロモーター制御下で発現するように設計したＧ４１８耐性遺伝子（配列番号６６）を全合成し、ＰＣＲのテンプレートとした。このＧ４１８耐性遺伝子の両側にＨｉｎｄＩＩＩサイトを付加した遺伝子断片を、プライマー４６および４７（配列番号６７および６８）用いてＰＣＲで調製し、ＨｉｎｄＩＩＩ処理をした。実施例２記載のＡｓｐをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含む各Ｆａｂ型抗体発現ベクターをＨｉｎｄＩＩＩで処理した後に、Ｆａｂ型抗体遺伝子を含むベクター断片をアガロースゲルから精製した。その後、本ベクター断片のＨｉｎｄＩＩＩサイトに上述のＧ４１８耐性遺伝子を挿入し、Ｇ４１８耐性遺伝子を選択マーカーとするＡｓｐをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含む各Ｆａｂ型抗体発現ベクターを構築した。
（実施例１６）ピキアの形質転換体の取得
　実施例１５で構築したＧ４１８耐性遺伝子を選択マーカーとするＡｓｐをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含む各Ｆａｂ型抗体発現ベクターを、ピキア酵母野生株Ｙ－１１４３０株に形質転換した。方法は実施例３に記載の方法において、ハンゼヌラ酵母をピキア酵母に変更して実施した。
　形質転換後の菌体をＧ４１８含有のSD培地寒天プレート（0.17% Bacto Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids and Ammonium Sulfate(Difco社製），0.1% sodium glutamate, 1% glucose, 0.25g/L G418）に塗布し、３０℃、３日間の静置培養で生育する株を選択し、Fab型抗体発現株を取得した。
（実施例１７）形質転換体の培養および培養上清の調製
　実施例１６で取得したピキア酵母のＦａｂ型抗体発現ベクター導入株の培養上清の調製は実施例４に記載の方法と同様に実施した。
（実施例１８）Ｆａｂ型抗体の定量
　実施例１７で取得した培養上清中のＦａｂ型抗体の分泌生産量は、実施例５と同様にサンドイッチELISA（Enzyme-Linked ImmunosorbentAssay）法により解析した。
　培養上清中のＦａｂ型抗体の定量は、標準タンパク質の検量線を用いて行った結果を表４に示す。表４の通り、Fd鎖にＡｓｐを融合したＦａｂ型抗体の生産量は、融合していないＦａｂ型抗体の２倍程度向上しており、複数の酵母種において、効果があることが明らかとなった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
（実施例１９）各Ｆａｂ型抗体発現ベクターの構築３
　Ｆｄ鎖をコードする塩基配列、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ（配列番号６９）のペプチドをコードする塩基配列（配列番号７０）、終止コドンをコードする塩基配列を融合させた断片は、ＰＣＲにより調製した。Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片はプライマー1５とプライマー４８（配列番号７１）を用いて、実施例２にて調製したＡｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含むＦａｂ型抗体発現ベクターをテンプレートに用いてＰＣＲを行い、断片を得た。本断片をBglII処理して、実施例１記載のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍのBglIIサイトに挿入して、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含むプラスミドを構築した。ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＬＴｍをテンプレートにして、ＭＯＸプロモーター、ＭＦα、Ｌ鎖、ＭＯＸターミネーターの一部が連結した遺伝子断片の両側にＥｃｏＲＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー１３および１４を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＥｃｏＲＩ処理後、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含むプラスミドのＥｃｏＲＩサイトに挿入し、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含むＦａｂ型抗体発現ベクターを構築した。
（実施例２０）形質転換体の取得
　実施例１９で構築したＦａｂ型抗体発現組換えベクターを、ＭＯＸターミネーター内のEcoRVサイトで切断して直鎖状にした。本断片を実施例２に記載の方法を用いてオガタエア・ポリモルファを形質転換し、Fab型抗体発現株を取得した。
（実施例２１）形質転換体の培養および培養上清の調製
　実施例２０で得られたFab型抗体発現株の培養上清の調製は実施例3と同様に実施して取得した。
（実施例２２）Ｆａｂ型抗体の定量
　実施例２１で取得したＦａｂ型抗体の培養上清への分泌生産量は、実施例４に記載の方法により解析した。
　培養上清中のＦａｂ型抗体の定量は、標準タンパク質の検量線を用いて行った結果を表５に示す。表５の通り、Ｆｄ鎖に１０残基のペプチドを融合したＦａｂ型抗体の生産量は、融合していないＦａｂ型抗体の５倍程度向上していることが明らかとなった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
（実施例２３）Ｆａｂ型抗体発現ベクターの構築４
　Ｆｄ鎖をコードする塩基配列、３０残基のペプチド（配列番号７４）をコードする塩基配列（配列番号７５）、終止コドンをコードする塩基配列を融合させた断片は、ＰＣＲにより調製した。
　配列番号７４のペプチドをコードする塩基配列を融合したＦｄ鎖遺伝子断片は、プライマー４９（配列番号７６）とプライマー５０（配列番号７７）を用いてpEGFP-F（クローンテック社製）などをテンプレートに用いてＰＣＲを行い、断片を得た。本断片をBglIIおよびBamHI処理して、実施例１記載のｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＴｍのBglIIサイトに挿入し、配列番号７４のペプチドをコードする塩基配列の一部を含むプラスミドを得た。次に、プライマー1５とプライマー５１（配列番号７８）を用いてＰＣＲを行い、Fd鎖遺伝子断片を得た。本断片をBglIIおよびBamHI処理し、上述の配列番号７４のペプチドをコードする塩基配列の一部を含むプラスミドのBglIIサイトに挿入して、配列番号７４のペプチドをコードする塩基配列を融合したFd鎖遺伝子を含むベクターを構築した。ｐＵＣ－ＬＥＵ２－ＰｍＭｆＬＴｍをテンプレートにして、ＭＯＸプロモーター、ＭＦα、Ｌ鎖、ＭＯＸターミネーターの一部が連結した遺伝子断片の両側にＥｃｏＲＩサイトをつけた遺伝子断片を、プライマー１３および１４を用いたＰＣＲにより調製した。本遺伝子断片をＥｃｏＲＩ処理後、配列番号７４のペプチドをコードする塩基配列を融合したFd鎖遺伝子を含むベクターのＥｃｏＲＩサイトに挿入し、配列番号７４のペプチドをコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含むＦａｂ型抗体発現ベクターを構築した。
（実施例２４）形質転換体の取得
　実施例２３で構築したＦａｂ型抗体発現組換えベクターを、ＭＯＸターミネーター内のEcoRVサイトで切断して直鎖状にした。本断片を実施例２に記載の方法を用いてオガタエア・ポリモルファを形質転換し、Fab型抗体発現株を取得した。
（実施例２５）形質転換体の培養および培養上清の調製
　実施例２４で得られたFab型抗体発現株の培養上清の調製は実施例3と同様に実施して取得した。
（実施例２６）Ｆａｂ型抗体の定量
　実施例２５で取得したＦａｂ型抗体の培養上清への分泌生産量は、実施例４に記載の方法により解析した。
　培養上清中のＦａｂ型抗体の定量は、標準タンパク質の検量線を用いて行った結果を表６に示す。表６の通り、Ｆｄ鎖に３０残基のペプチドを融合したＦａｂ型抗体の生産量は、融合していないＦａｂ型抗体の4倍程度向上していることが明らかとなった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006

Claims (15)

  1. 抗体のＦｄ鎖又はＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有する、遺伝子。
  2. 前記Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列が、１～３０個のアミノ酸からなるものである、請求項１に記載の遺伝子。
  3. 前記Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列が、Ａｓｐ、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ、又はＧｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ－Ｍｅｔ－Ｖａｌ－Ｓｅｒ－Ｌｙｓ－Ｇｌｙ－Ｇｌｕ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ｐｈｅ－Ｔｈｒ－Ｇｌｙ－Ｖａｌ－Ｖａｌ－Ｐｒｏ－Ｉｌｅ－Ｌｅｕ－Ｖａｌ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｖａｌ－Ａｓｎ－Ｇｌｙの何れかである、請求項１又は２に記載の遺伝子。
  4. 請求項１から３の何れか１項に記載の遺伝子を含有する組換えベクター。
  5. 以下の何れかである、請求項４に記載の組み換えベクター。
    （ａ）抗体のＦｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子と、抗体のＬ鎖遺伝子とを含有する、組み換えベクター；
    （ｂ）抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子と、抗体のＦｄ鎖遺伝子とを含有する、組み換えベクター；及び
    （ｃ）抗体のＦｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子と、抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子とを含有する組み換えベクター。
  6. 以下の何れかである、組換えベクターの組み合わせ。
    （Ａ）抗体のＦｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターと、抗体のＬ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターとの組み合わせ；
    （Ｂ）抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターと、抗体のＦｄ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターとの組み合わせ；及び
    （Ｃ）抗体のＦｄ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＦｄ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターと、抗体のＬ鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列の３’末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列をコードする塩基配列を含有するＬ鎖遺伝子を含有する組み換えベクターとの組み合わせ：
  7. 請求項４又は５に記載の組換えベクター又は請求項６に記載の組換えベクターの組み合わせにより宿主を形質転換することにより得られる形質転換体。
  8. 宿主が酵母である、請求項７に記載の形質転換体。
  9. 酵母がオガタエア属またはコマガタエラ属酵母である、請求項７又は８に記載の形質転換体。
  10. オガタエア属またはコマガタエラ属酵母が、オガタエア・ポリモルファまたはコマガタエラ・パストリスである、請求項９に記載の形質転換体。
  11. 形質転換体を培養してＦａｂ型抗体を生産させた場合の、培養上清中のＦａｂ型抗体分泌生産量が２．０ｍｇ／ｍＬ以上である、請求項７から１０の何れか１項に記載の形質転換体。
  12. 請求項７から１１の何れか１項に記載の形質転換体を培養し、Ｆａｂ型抗体を回収する工程を含むＦａｂ型抗体の製造方法。
  13. 抗体のＦｄ鎖及び／又はＬ鎖のアミノ酸配列のＣ末端に、Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列を有する、Ｆａｂ型抗体。
  14. 前記Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列が、１～１０個のアミノ酸からなるものである、請求項１３に記載のＦａｂ型抗体．
  15. 前記Ｆａｂ型抗体の分泌量を増大できるアミノ酸又はアミノ酸配列が、Ａｓｐ、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｃｙｓ、Ｍｅｔ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ、Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ－Ａｓｐ－Ｌｙｓ－Ｔｈｒ－Ｈｉｓ－Ｔｈｒ、又はＧｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ－Ｍｅｔ－Ｖａｌ－Ｓｅｒ－Ｌｙｓ－Ｇｌｙ－Ｇｌｕ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ｐｈｅ－Ｔｈｒ－Ｇｌｙ－Ｖａｌ－Ｖａｌ－Ｐｒｏ－Ｉｌｅ－Ｌｅｕ－Ｖａｌ－Ｇｌｕ－Ｌｅｕ－Ａｓｐ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｖａｌ－Ａｓｎ－Ｇｌｙの何れかである、請求項１３又は１４に記載のＦａｂ型抗体。
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