WO2014069597A1 - 線維化非ヒト動物及びその用途 - Google Patents
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- the knowledge obtained from the non-human animal of the present invention also provides a method for evaluating the therapeutic effect in a scleroderma patient.
- IL-1 ⁇ stimulation strongly suppresses IKK ⁇ expression and inhibits p65 expression and NF ⁇ B activity. Therefore, before and after treatment, for example, biopsy, blood collection, etc. from scleroderma patients, fibroblasts etc. are prepared, IKK ⁇ and / or p65 expression in the cells, p65 nuclear translocation, NF ⁇ B
- the effect of the treatment can be determined by measuring the activity and the like by a method known per se and comparing before and after the treatment.
- Example 5 T cell activity in IKK ⁇ KO mice
- Myofibroblasts were prepared from the mice obtained in Example 1 and co-cultured with dendritic cells obtained from normal mice. Culture is performed at 37 ° C under 5% CO 2 , using ovalbumin (Ovalbmin) as an antigen, and the proliferation of added OVA-specific T cells is used as an indicator of T cell proliferation ability using [ 3 H] thymidine incorporation as an indicator. It was measured.
- Ovalbmin ovalbumin
- co-culture of fibroblasts from KO mice with dendritic cells increased T cell stimulation by antigen presentation. The results are shown in FIG.
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Abstract
Description
[1]筋線維芽細胞及び/又は平滑筋細胞特異的にIKKβ遺伝子を欠損した、組織の線維化を示す非ヒト動物又はその生体の一部。
[2]組織の線維化が、自己免疫疾患、膠原病、皮膚疾患、心疾患、呼吸器系疾患、食道疾患、胃腸疾患、肝疾患、腎疾患、脳神経疾患、癌及び糖尿病からなる群より選択される疾患に伴う線維化を再現することを特徴とする[1]に記載の非ヒト動物又はその生体の一部。
[3]強皮症モデルである[1]に記載の非ヒト動物又はその生体の一部。
[4]動物がげっ歯類である[1]に記載の非ヒト動物又はその生体の一部。
[5]組織の線維化の予防用及び/又は治療用の物質をスクリーニングする方法であって、
(a)[1]に記載の非ヒト動物又はその生体の一部に試験物質を接触させる工程、及び
(b)前記非ヒト動物又はその生体の一部における組織の線維化を分析する工程
を含む前記方法。
[6]強皮症の予防用及び/又は治療用の物質をスクリーニングする方法であって、
(a)[1]に記載の非ヒト動物又はその生体の一部に試験物質を接触させる工程、及び
(b)前記非ヒト動物又はその生体の一部における強皮症の病態を反映する事象を分析する工程
を含む前記方法。
線維化
組織の線維化とは、フィブロネクチンや膠原線維等の細胞外基質が組織に著しく沈着した状態、又は、膠原線維が著しく増加し、瘢痕組織を残すといった線維性結合組織の増加した状態をいう。
筋線維芽細胞及び/又は平滑筋細胞特異的にIKKβ遺伝子が欠損した非ヒト動物は、(a)筋線維芽細胞及び/又は平滑筋細胞特異的に発現するマーカー遺伝子に隣接して部位特異的組換え酵素をコードする遺伝子が、遺伝子座に存在する非ヒト動物を調製する工程、(b)前記部位特異的組換え酵素の認識部位をIKKβ遺伝子座に有する非ヒト動物を調製する工程、及び前記(a)及び(b)の非ヒト動物を掛け合わせることにより得ることができる。あるいは、筋線維芽細胞及び/又は平滑筋細胞特異的にIKKβが欠損される限り、前記方法に限定されない。
また、本発明の非ヒト動物では、各種組織の線維化のみならず、右心室の拡大、高血圧、脾臓の腫大等が認められる上に、強皮症患者で特異的に検出される自己抗体(抗セントロメア抗体等)も産生し、脾臓においてB細胞・T細胞の活性化が認められる。即ち、該非ヒト動物は強皮症の病態を強く反映していることから、強皮症のモデル動物として使用することもできる。
例えば、本発明の非ヒト動物(例、マウス)から採取した成体皮膚線維芽細胞では培養条件においてIKKβの発現を欠いており、NFκBの活性化が阻害され、in vivoと同様にコラーゲンの沈着が亢進している。該線維芽細胞では、MMP9の発現及び活性が低下している一方、活性型である非リン酸化β-カテニンの発現が増大している。
あるいは、自体公知の方法を用いて行うことができる。
本発明は、本発明の線維化非ヒト動物又は該非ヒト動物から調製する組織又は培養細胞等を用いることを特徴とする、被検物質のスクリーニング方法を提供する。特に本発明の線維化非ヒト動物は、皮膚、食道、肺、腎臓等の様々な組織又は臓器において線維化が認められるため、該非ヒト動物、又は、該非ヒト動物から調製する組織や培養細胞等を線維化の予防又は治療薬のスクリーニング、線維化のメカニズムの解明、さらには線維化の新たな治療方法の開発等に適用することができる。
さらに、本発明は前記スクリーニング方法で得られた物質を、本発明の非ヒト動物、細胞又は組織と接触させ、線維化の程度を確認する方法も包含する。
さらには、試験物質非投与群と比較した場合の右心室の拡大、高血圧、脾臓の腫大の改善、皮膚病変部へのB及び/又はT細胞の浸潤抑制、脾臓におけるB細胞及び/又はT細胞の活性化抑制など、あるいは、該非ヒト動物由来の生体線維芽細胞におけるMMP9の発現及び/又は活性の増大、活性型β-カテニンの発現阻害、樹状細胞と共培養した場合の抗原提示能(T細胞の活性化)の阻害、p65の発現もしくはNFκB活性の増大等を指標として、強皮症の予防及び/又は治療効果を有する候補物質を選択することができる。
上記スクリーニング方法により得られる物質は、線維化又は強皮症の予防又は治療に有効な候補物質となり得ることから、本発明は、該物質を有効成分として含む医薬組成物又は製剤も提供する。該医薬組成物又は製剤は、以下の任意の担体を含むことができる。
さらに本発明はまた、別の態様として、筋線維芽細胞及び/又は平滑筋細胞特異的にIKKβ遺伝子を過剰発現するトランスジェニック(Tg)非ヒト動物を提供する。該Tg動物は、上記と同様の筋線維芽細胞及び/又は平滑筋細胞特異的プロモーター(例えば、SM22αプロモーター)の制御下にIKKβ遺伝子を挿入した発現カセットを、自体公知の方法(例えば、受精卵へのマイクロインジェクション等)により導入することによって得ることができる。当該Tg動物はIKKβ遺伝子を筋線維芽細胞及び/又は平滑筋細胞特異的に発現可能な状態で安定に保持する。当該Tg動物由来の成体線維芽細胞では、MMP9の発現及び活性が野生型に比べて顕著に上昇する一方、活性型β-カテニンの発現が低下している。
これらの知見は、筋線維芽細胞及び/又は平滑筋細胞特異的にIKKβ遺伝子を過剰発現させることにより、コラーゲンの分解を促進し、組織の線維化を抑制し得ることを示している。従って、当該Tg動物の表現型は、筋線維芽細胞及び/又は平滑筋細胞特異的なIKKβの補充療法の可能性を示唆する。
本発明の非ヒト動物から得られた知見はまた、強皮症患者における治療効果の評価方法を提供する。後述の実施例で記載するように、強皮症患者では、IL-1βの刺激によりIKKβの発現が強く抑制され、p65の発現及びNFκBの活性が阻害されている。従って、治療前と治療後において、例えば、強皮症患者から生検、採血等を行い、線維芽細胞等を調製し、当該細胞におけるIKKβ及び/又はp65の発現、p65の核移行、NFκBの活性等を、自体公知の方法で測定し、治療前後で比較することにより、当該治療の効果を判定することができる。IKKβの発現、p65の発現・核移行、NFκBの活性の測定は、線維芽細胞等の細胞もしくは核抽出物に対してELISA、EMSA、ウェスタンブロッティング、レポーター遺伝子アッセイ等により行うことができる。
また、強皮症患者由来の線維芽細胞におけるIL-1β刺激によるIKKβの発現抑制は、プロテアソーム阻害剤で前処理することによって緩和されたことから、本発明はまた、プロテアソーム阻害によるIKKβの分解抑制及びNFκB経路の活性化に基づく、新規な強皮症の予防及び/又は治療を提供し得る。
実施例で使用した抗体及び試薬は以下のとおりである。
抗IKKβポリクローナル抗体(ミリポア)、抗Sm22α(別名TAGLN)ポリクローナル抗体(Lifespan Bioscience)、抗MMP9ポリクローナル抗体(Abnova)、GAPDH(Cell Signaling Technology 以下、「CST」という)、TGFβ(CST)、p65抗体(CST)、抗β-catenin抗体(CST)、抗活性β-catenin抗体(ミリポア)、抗PNA(Vector Laboratories Inc., Burlingame, CA, USA)を使用した。また、市販されている以下のプライマー、TGFβ、CTGF、CollagenI及びMMP9 (Applied Biosystems(商標))を使用して、qRT-PCRを行った。NE-PER核タンパク質・細胞質タンパク質分離抽出用キット(Thermo Scientific)を用いて核タンパク質を抽出した。RNAaqueous(商標)キット(Applied Biosytems(商標))を用いてRNAを単離し、TaqMan(登録商標)Gene Expression Assaysキット(Applied Biosytems(商標))を使用して、遺伝子発現量を測定した。プロテアソーム阻害剤としては、MG132(CAS登録番号;133407-82-6)を使用した。
本発明の統計解析は2標本のt検定を行い、P<0.05で有意差ありと判断した。図表中の数値は平均値±標準偏差で表記している。Kolmogorov-Smirnov検定で独立性が棄却された場合には、Wilcoxon-Mann-Whitney検定を行った。また、図中、*はp<0.05、**はp<0.01、***はp<0.005、****はp<0.001を示す。
公知のIKKβflox/floxマウスとSm22α-Cre+マウス(Science (2003), vol.300, p.329-332)とを交配し、ヘテロ接合マウスIKKβflox/wt Sm22α-Cre+/-マウスを得た。前記マウスと、IKKβflox/floxマウスとを交配させ、IKKβflox/flox Sm22α-Cre+/-マウス(以下、KOマウスという)及びIKKβflox/flox Sm22α-Cre-/-マウス(以下、WTマウスという)を得た。KOマウスはメンデリアンの法則に従った比率で出生し、その体重推移等の成長はWTマウスと違いが認められなかった。なお、本発明で得られたKOマウスは純系の動物系統C57BL/6同士の交配にて得られた。
(1)皮膚の線維化
実施例1で得られたマウスは、出生後から4週齢のKOマウスは、頭部の一部が無毛の皮膚病変を認めた(図2(a)、左)。これに対し、WTマウスでは前記病変は認められなかった。また、平均16週齢のKOマウスにおいて、頭部及び尾部に糜爛を伴う皮膚硬化が高頻度に認められた(図2(a)、中及び右)。そこで、組織学的な観察も行った。皮膚組織の染色は、パラフィン包埋組織の2-4μm連続した切片を、ヘマトキシリンエオジン(H&E)染色して行った。コラーゲン量及びコラーゲン組織を評価するために、脱パラフィン化切片をpicrosirius red/fast green染色した。その結果、KOマウスにおいて組織学的にも表皮及び真皮の著明な肥厚と膠原線維の著しい蓄積が認められた。これに対し、WTマウスでは前記病変は認められなかった(図2(b))。
実施例1で得られたマウスの食道を観察した。パラフィン包理した食道の4μm切片を、マッソントリクローム染色し、顕微鏡下で観察した。粘膜筋板の長さは、Image J ソフトウエアを用いて測定及び分析を行った。その結果、KOマウスでは、下部食道において粘膜下の膠原線維による平滑筋の置換と食道の拡張が認められた。これに対し、WTマウスでは前記病変は認められなかった。結果を図4-1に示す。
実施例1で得られたマウスの肺を観察した。パラフィン包理した肺及び心臓の4μm切片を、ヘマトキシリンエオジン(H&E)染色及びマッソントリクローム染色し、顕微鏡下で観察した。肺胞のサイズは、Image J ソフトウエアを用いて測定及び分析を行った。その結果、KOマウスでは、肺において膠原線維の蓄積と肺胞の拡大が認められた。これに対し、WTマウスでは前記病変は認められなかった。結果を図4-2に示す。さらに、KOマウスは肺高血圧を示唆する右心室の拡張が認められた。これに対し、WTマウスでは前記病変は認められなかった。結果を図4-3に示す。
実施例1で得られたマウスの腎臓を観察した。上述の方法で腎臓組織をpicrosirius red/fast green染色した。また、24時間かけてマウスの尿を採取し、尿中の全タンパク質及びクレアチニン濃度を測定した。収縮期(BPS)および拡張期(BPD)の血圧は、tail-cuff法による自動血圧測定器(MK-2000A、Muromachi、Tokyo、Japan)を用いて測定した。その結果、KOマウスは、腎臓において糸球体輸出入動脈の狭窄化と膠原線維の蓄積、及び前記病変によると思われる尿中タンパク質の増加及び高血圧が認められた。これに対し、WTマウスでは前記病変は認められなかった。結果を図4-4に示す。
実施例1で得られたマウス皮膚のコラーゲンIのmRNA量をqRT-PCR法で確認した。上述の市販のプライマー及びキットを使用した。KOマウスは、WTマウスと比較して、約6倍のコラーゲンI mRNAの増加が認められた。結果を図5に示す。
(1)核及び細胞質並びに脾臓の病変
実施例1で得られたマウスの自己抗体の存在を検討した。同一の正常肝組織をWT及びKOマウスそれぞれの血清(20倍希釈)とインキュベートし、上述の方法でDAB染色を行った。その結果、KOマウスでは核及び細胞質の染色が認められ、自己抗体の存在が示された(図6-1)。
さらに、両マウスから脾臓を摘出して観察したところ、KOマウスでは脾臓の腫大が認められ、自己免疫異常状態が示唆された(図6-2)。さらに、KOマウスの脾臓ではB細胞が活性化されていた(図6-3)。また、KOマウスの病変部皮膚では、強皮症患者と同様、CD45陽性のB又はT細胞の浸潤が認められた。これに対し、WTマウスでは前記いずれの病変も認められなかった(図6-1~6-3)。
さらに、前記マウスにて強皮症に特異的な自己抗体である、抗セントロメア抗体の存在の有無をELISA法で検討した。KOマウスでは、WTマウスと比べて抗セントロメア抗体が有意に高値を示した。結果を図7に示す。
実施例2及び3で認められたKOマウスの表現型のメカニズムを探索するため、実施例1で得られたマウスの皮膚組織におけるタンパク質をWestern blot法で、mRNAをqRT-PCR法で測定した。その結果、強皮症患者において増加が認められるTGFβの増加が蛋白・mRNAともに認められた。結果を図8に示す。
さらに、in vitroでの実験系として、成体マウスの皮膚組織から線維芽細胞(AFbs)を調製した。AFbsは平板培養するとSM22αを発現するため、TGFβ刺激による筋線維芽細胞分化誘導前に既にIKKβを欠損していた。IKKβの欠損により、AFbsではNFκBの活性化が阻害されていた。また、in vivoで観察されたように、AFbsの培養細胞でもコラーゲンの沈着が亢進していた。
このAFbsを用いて、当該細胞からタンパク質及びRNAを抽出した。種々のコラーゲン蓄積・分解の調節因子のmRNAの発現レベルをqRT-PCR法で調べたところ、いずれの実験でも、MMP9のmRNA発現が野生型に比べて有意に抑制されていた(図9-1(a))。次いで、MMP9タンパク質の活性をゼラチンザイモグラフィー法で確認した(図9-1(b))。その結果、KOマウス由来のAFbsでは、WTマウスと比べてMMP9 の活性が顕著に減少しており、コラーゲンが蓄積する機構と考えられた(図9-1(b))。
一方、線維化に関与しているとされているβ-カテニンの発現を確認した結果、IKKβKOマウスでは活性型β-カテニンの発現が顕著に増加していたのに対し、IKKβKAMFマウスでは顕著に抑制されていた。結果を図9-3に示す。さらに、IKKβとβ-カテニンとの結合を調べた結果を図9-4に示す。IKKβKAMF線維芽細胞溶解液(1mg)を1μgのコントロールのIgG、抗β-カテニン抗体又は抗FLAG抗体と4℃で1晩インキュベートし、25μL Protein G Sepharose(GE Healthcare)を加えて4℃で1時間振とう後、細胞溶解バッファーで3回、Tris(pH7.5)バッファーで1回沈殿物を洗浄後、SDSサンプルバッファーで溶出し、抗β-カテニン抗体又は抗FLAG抗体を用いたイムノブロッティングで検出した。その結果、IKKβとβ-カテニンとは直接的に相互作用することが示された。
実施例1で得られたマウスから筋線維芽細胞を調製し、正常マウスから得られた樹状細胞と共培養を行った。培養は37℃、5%CO2条件下で行い、卵白アルブミン(Ovalbmin)を抗原として使用、添加されたOVA特異的T細胞の増殖を[3H]チミジンの取り込みを指標としてT細胞増殖能を測定した。
その結果、KOマウスから線維芽細胞を樹状細胞と共培養することで、抗原提示によるT細胞刺激が増加していた。結果を図10に示す。
強皮症患者(n=5)及び健常人(n=5)の皮膚を生検で採取し、線維芽細胞を調製した。当該線維芽細胞をL-グルタミン、ペニシリン/ストレプトマイシン及び10%FCSを添加したDMEM培地中で、37℃、5%CO2濃度で培養した。培養後、線維芽細胞からNE-PER核タンパク質・細胞質タンパク質分離抽出用キット(Thermo Scientific)を用いて核タンパク質を抽出し、全細胞溶解液(whole-cell lysate)及び核抽出液中のp65タンパク質量を比較した。また、当該線維芽細胞からRNAaqueous(商標)キット(Applied Biosytems(商標))を用いてRNAを単離し、TaqMan(登録商標)Gene Expression Assaysキット(Applied Biosytems(商標))を用いて、p65のmRNA量を比較した。さらに、当該線維芽細胞におけるNFκB活性をNFκB p65 Transcription Assay Kit (Thermo Scientific)で測定して比較した。強皮症患者皮膚からの線維芽細胞のNFκB p65は、核内及び細胞全体で発現量が低下しており(図11-1(a)、(b))、mRNA量も減少していた(図11-1(a))。また、NFκB活性も低下していた(図11-1(b))。さらに、強皮症患者皮膚からの線維芽細胞を、60分間IL-1β(2.5ng/mL)で刺激し、IKKβ及び核内p65タンパク質量を比較した。その結果、IL-1β刺激によりIKKβ及び核内p65タンパク質量の発現が顕著に抑制された(図11-2)。また、強皮症患者皮膚からの線維芽細胞を前記IL-1β刺激を行う前に、2μMの MG132で2時間処理しIKKβ量を測定した。その結果、MG132処理によりIKKβ量が回復した(図11-3)。
つまり、NFκB活性やp65発現量の低下は、IKKβの発現量の低下によるものであることが示された。また、強皮症患者の線維芽細胞におけるIKKβの発現量の減少には、ユビキチン-プロテアソーム系による分解の関与が示唆された。
Claims (6)
- 筋線維芽細胞及び/又は平滑筋細胞特異的にIKKβ遺伝子を欠損した、組織の線維化を示す非ヒト動物又はその生体の一部。
- 組織の線維化が、自己免疫疾患、膠原病、皮膚疾患、心疾患、呼吸器系疾患、食道疾患、胃腸疾患、肝疾患、腎疾患、脳神経疾患、癌及び糖尿病からなる群より選択される疾患に伴う線維化を再現することを特徴とする、請求項1に記載の非ヒト動物又はその生体の一部。
- 強皮症モデルである、請求項1に記載の非ヒト動物又はその生体の一部。
- 動物がげっ歯類である、請求項1に記載の非ヒト動物又はその生体の一部。
- 組織の線維化の予防用及び/又は治療用の物質をスクリーニングする方法であって、
(a)請求項1に記載の非ヒト動物又はその生体の一部に試験物質を接触させる工程、及び
(b)前記非ヒト動物又はその生体の一部における組織の線維化を分析する工程
を含む前記方法。 - 強皮症の予防用及び/又は治療用の物質をスクリーニングする方法であって、
(a)請求項1に記載の非ヒト動物又はその生体の一部に試験物質を接触させる工程、及び
(b)前記非ヒト動物又はその生体の一部における強皮症の病態を反映する事象を分析する工程
を含む前記方法。
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