WO2014065276A1 - 液体クロマトグラフィーによる物質の精製方法及び装置 - Google Patents

液体クロマトグラフィーによる物質の精製方法及び装置 Download PDF

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雅子 後藤
一郎 小熊
和雄 奥山
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旭化成メディカル株式会社
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    • G01N30/30Control of physical parameters of the fluid carrier of temperature
    • G01N2030/3007Control of physical parameters of the fluid carrier of temperature same temperature for whole column

Definitions

  • the present invention relates to a liquid chromatography apparatus used in a purification process of a physiologically active substance, and a method for operating the apparatus.
  • Liquid chromatography is a technique widely used as an analytical technique and various industrial separation and purification techniques.
  • One example of industrial separation and purification using liquid chromatography is purification of physiologically active substances.
  • An example of a physiologically active substance is immunoglobulin (antibody).
  • An antibody is a physiologically active substance that controls an immune reaction.
  • the antibody is obtained from blood of an immunized animal, a cell culture medium of cells possessing antibody-producing ability, an animal ascites culture medium, and the like.
  • blood and culture solution contain impurities such as proteins other than antibodies and complicated impurities. Therefore, in order to separate an antibody from impurities and purify the antibody, a complicated and long purification process is usually required.
  • liquid chromatography used for purifying antibodies include gel filtration chromatography, affinity chromatography, ion exchange chromatography, and reverse phase chromatography. These chromatographies may be combined when the antibody is separated and purified.
  • the separation target substance can be adsorbed on the support surface, or the separation target substance can be dissociated from the support surface.
  • an acidic (low pH) solution As a mobile phase for dissociating the substance to be separated from the carrier surface, an acidic (low pH) solution, a buffer solution with a high salt concentration, an organic solvent, and the like have been conventionally used.
  • an acidic solution or the like may impair the activity of the biological material to be separated or cause an aggregate. Therefore, in order to maintain the activity of the biological material to be separated and to suppress the generation of aggregates, the interaction between the biological material to be separated and the carrier surface can be changed by a change in temperature.
  • Possible temperature-responsive chromatography has been proposed.
  • Patent Document 1 uses a filler containing a copolymer having a charge that can change the effective charge density on the surface of the stationary phase according to a temperature change, a method for producing the filler, and the filler.
  • a temperature-responsive chromatography method is disclosed.
  • Patent Document 2 discloses a temperature-responsive chromatographic support in which a polymer whose hydration power changes within a temperature range of 0 to 80 ° C. is fixed at a high density on a substrate surface by an atom transfer radical polymerization method.
  • Patent Document 3 includes temperature responsiveness including growth reaction of a polymer having charge and changing hydration power within a temperature range of 0 to 80 ° C. by an atom transfer radical method using isopropyl alcohol as a solvent.
  • a method for producing a chromatographic support is disclosed.
  • Patent Document 4 discloses that a high molecular weight physiologically active substance useful in the fields of biology, medicine, pharmacy and the like can be separated under a specific condition including an aqueous mobile phase within a temperature range of 0 to 80 ° C.
  • a method for producing a liquid chromatography carrier in which a solid surface is coated with a charged polymer that varies in sum is disclosed.
  • Non-Patent Document 1 discloses a temperature-responsive chromatography carrier having a carboxyl group prepared by an atom transfer radical polymerization method and a method for producing the same.
  • Non-Patent Document 1 discloses a monomer composition optimized for the separation of lysozyme with respect to the monomer composition used in the atom transfer radical polymerization method.
  • Patent Document 5 discloses a method for separating an antibody using mutant protein A (temperature-responsive protein A) whose affinity with an antibody changes due to a change in a three-dimensional structure accompanying a change in temperature.
  • protein A will be described.
  • Protein A is derived from Staphylococcus aureus.
  • Protein A has a specifically high affinity for the Fc region of an antibody under neutral conditions. Therefore, when purifying an antibody using natural protein A, first, a solution containing the antibody is brought into contact with an insoluble carrier having natural protein A as a ligand under neutral conditions, so that the natural protein on the carrier is An antibody is specifically adsorbed on A.
  • the components that have not been adsorbed on the carrier are washed with a neutral buffer and removed, and then the antibody is dissociated from the natural protein A on the carrier using an acidic solution having a pH of around 3.0.
  • the antibody is dissociated from temperature-responsive protein A by changing the temperature of the mobile phase without using an acidic solution. Can do.
  • Patent Documents 6 and 7 describe devices for adjusting the temperature change of the mobile phase.
  • Patent Document 6 discloses a temperature gradient elution method used for an analysis method by liquid chromatography.
  • the mobile phase is adjusted to a constant temperature different from each other in two flow paths, mixed at an arbitrary mixing ratio, and insulated.
  • the temperature of the column is adjusted by flowing into the prepared column.
  • Patent Document 7 describes a temperature control method in a liquid chromatography apparatus having a large column.
  • the fluid is supplied into the jacket by surrounding the outer peripheral surface of the chromatography column with a jacket.
  • the temperature difference from the mobile phase solvent passed through is maintained within a certain range.
  • a loop-shaped pipe is provided in the step before flowing into the column, and the mobile phase is adjusted to a constant temperature by immersing it in a thermostatic bath.
  • temperature-responsive chromatography With the development of temperature-responsive chromatography technology, the application of temperature-responsive chromatography is expanding from small-scale analysis technology to large-scale purification process fields. Here, when temperature-responsive chromatography is applied to a large-scale purification process, uniform and efficient temperature adjustment becomes a problem. However, research for efficiently transferring heat to a mobile phase in a liquid chromatography system used for a purification process of a physiologically active substance has not been advanced so far.
  • temperature control in a large-scale purification process has been difficult to manage strictly, such as by using a solvent with a small specific heat or by putting the temperature within a certain range.
  • temperature-responsive chromatography changes the adsorption capacity depending on the temperature, more strict temperature control is required.
  • the object to be purified by temperature-responsive chromatography is a physiologically active substance, it easily undergoes thermal denaturation.
  • the present invention provides a liquid chromatography system for use in a purification process of a physiologically active substance, which provides a system capable of quickly and accurately controlling a temperature even with a large amount of mobile phase flowing through a large-scale column on a production scale. Equipped with a heat exchanger.
  • an aspect of the present invention is (a) a liquid chromatography system used in a purification process of a physiologically active substance, and (b) a temperature-responsive chromatography in which the ability to adsorb the physiologically active substance changes according to a temperature change.
  • a column containing a support (c) a process pipe connected to the column and through which the mobile phase flows; and (d) a plate heat exchanger provided in the process pipe and controlling the temperature of the mobile phase.
  • the plate heat exchanger is detachable from, for example, a process pipe.
  • the plate heat exchanger is provided, for example, in process piping upstream of the column.
  • two or more plate heat exchangers are provided in the process piping.
  • two or more plate heat exchangers are provided in parallel in the process piping.
  • at least one of the two or more plate heat exchangers is a heating plate heat exchanger that heats the mobile phase, and at least the other one of the two or more plate heat exchangers is mobile. It is a plate heat exchanger for cooling which cools a phase.
  • the shape of the carrier is, for example, any one of beads, a flat membrane, and a hollow fiber membrane.
  • the volume of the carrier packed in the column is, for example, 1 L or more.
  • the physiologically active substance to be purified is, for example, an antibody.
  • the carrier is, for example, a temperature-responsive affinity chromatography carrier.
  • the carrier is, for example, a temperature responsive ion exchange chromatography carrier.
  • an aspect of the present invention includes (a) a column containing a temperature-responsive chromatography carrier whose ability to adsorb a physiologically active substance is changed by temperature change, and (b) a process in which a mobile phase is flowed connected to the column.
  • a method for purifying a physiologically active substance using a liquid chromatography system comprising: a pipe; and (c) a plate heat exchanger provided in the process pipe for controlling the temperature of the mobile phase.
  • a purification method of the physiologically active substance including setting a surface temperature of the heat exchanger outside the temperature range where the physiologically active substance is denatured.
  • an aqueous solvent is used as a heat medium or a refrigerant of a plate heat exchanger.
  • the linear velocity of the mobile phase passing through the column is, for example, 100 cm / h or more and 300 cm / h or less.
  • the flow rate of the mobile phase is, for example, 50 mL / min or more and 10 L / min or less.
  • the flow rate of the medium of the plate heat exchanger is, for example, 1 L / min or more and 200 L / min or less.
  • the difference between the target temperature of the mobile phase and the temperature of the medium of the plate heat exchanger is, for example, within 5 ° C.
  • an aspect of the present invention includes (a) a column containing a temperature-responsive chromatography carrier whose ability to adsorb a physiologically active substance is changed by temperature change, and (b) a process in which a mobile phase is flowed connected to the column.
  • a liquid chromatography system comprising: a pipe; and (c) a plate heat exchanger provided in the process pipe for controlling the temperature of the mobile phase, wherein (d) the plate heat exchanger is provided in the process pipe.
  • At least one of the two or more plate heat exchangers is a heating plate heat exchanger for heating the mobile phase, and two or more plate heat exchangers
  • F a method for purifying a physiologically active substance using a liquid chromatography system, wherein at least one of the is a cooling plate heat exchanger for cooling a mobile phase, 1) passing the mobile phase through a heating plate heat exchanger to raise the column to the target temperature; 2) flowing a solution containing a physiologically active substance at a target temperature, and adsorbing the physiologically active substance to a carrier in the column; 3) a step of switching the flow path of the mobile phase to a cooling plate heat exchanger; 4) A step of flowing a mobile phase cooled by a cooling plate type heat exchanger to the column and recovering the physiologically active substance from the column; Including a method.
  • an aspect of the present invention includes (a) a column containing a temperature-responsive chromatography carrier whose ability to adsorb a physiologically active substance is changed by temperature change, and (b) a process in which a mobile phase is flowed connected to the column.
  • a liquid chromatography system comprising: a pipe; and (c) a plate heat exchanger provided in the process pipe for controlling the temperature of the mobile phase, wherein (d) the plate heat exchanger is provided in the process pipe.
  • At least one of the two or more plate heat exchangers is a heating plate heat exchanger for heating the mobile phase, and two or more plate heat exchangers
  • F a method for purifying a physiologically active substance using a liquid chromatography system, wherein at least one of the is a cooling plate heat exchanger for cooling a mobile phase, 1) A step of passing the mobile phase through a cooling plate heat exchanger to lower the inside of the column to a target temperature; 2) flowing a solution containing a physiologically active substance at a target temperature, and adsorbing the physiologically active substance to a carrier in the column; 3) switching the mobile phase flow path to a heating plate heat exchanger; 4) A step of flowing a mobile phase heated by a heating plate heat exchanger through the column and recovering a physiologically active substance from the column; Including a method.
  • an aspect of the present invention is (a) a liquid chromatography system used in a purification process of a physiologically active substance, and (b) temperature-responsive chromatography in which the ability to adsorb the physiologically active substance changes according to a temperature change.
  • a column containing a support (c) a process pipe connected to the column and through which the mobile phase flows; and (d) a plate heat exchanger provided in the process pipe and controlling the temperature of the mobile phase.
  • a method for purifying a physiologically active substance using a liquid chromatography system 1) setting the plate heat exchanger to a constant temperature; 2) A step of flowing a mobile phase whose temperature is controlled by a plate heat exchanger to keep the temperature in the column constant; 3) flowing a solution containing a physiologically active substance and impurities through a column, adsorbing the impurities on a carrier, and recovering the purified physiologically active substance; Including a method.
  • the temperature of the mobile phase can be quickly and accurately adjusted, and purification can be performed without denaturing a physiologically active substance such as an antibody. .
  • the liquid chromatography system is a liquid chromatography system used in a purification process of a physiologically active substance, and the ability to adsorb the physiologically active substance changes according to a temperature change.
  • a column containing a temperature-responsive chromatographic support; a process pipe connected to the column through which the mobile phase flows; and a plate heat exchanger provided in the process pipe for controlling the temperature of the mobile phase.
  • the physiologically active substance in the present embodiment refers to a chemical substance that acts on a specific physiological regulation function of a living body. For example, vitamins and minerals, nucleic acids, enzymes, hormones, neurotransmitters and the like can be mentioned. Many physiologically active substances undergo thermal denaturation (thermal inactivation) that loses their activity due to heat.
  • the liquid chromatography system according to the present embodiment is useful for purifying a physiologically active substance that causes such heat denaturation.
  • the physiologically active substance that causes heat denaturation is a substance composed of, for example, a protein, and specifically includes antibodies.
  • an antibody is a kind of physiologically active substance as defined in biochemistry, and is a glycoprotein molecule (gamma globulin or immunoglobulin) produced by B lymphocytes as a vertebrate infection prevention mechanism. (Also called).
  • This embodiment can also be used for purification of antibodies that are industrially useful and can be used as pharmaceuticals for humans.
  • the mobile phase containing the physiologically active substance is sent to the column through the process piping.
  • the process piping refers to the entire flow path for sending the mobile phase.
  • the mobile phase refers to a solution containing a buffer or a physiologically active substance for purification.
  • the liquid chromatography system according to the present embodiment may include a pump for feeding the mobile phase.
  • the pump can be provided in process piping or the like.
  • the plate heat exchanger includes a plurality of closely connected heat transfer plates as shown in FIG.
  • a mobile phase inlet for allowing the mobile phase fluid to flow in As an opening in the heat transfer plate, a mobile phase inlet for allowing the mobile phase fluid to flow in, a mobile phase outlet for allowing the mobile phase fluid to flow out, a medium inlet for allowing the medium fluid to flow in, and the medium A medium outlet is provided to allow the fluid to flow out.
  • One side of the heat transfer plate is used as a surface (FIG. 3) for flowing the mobile phase over the entire surface, and the other surface of the heat transfer plate is used for flowing the medium over the entire surface. Functions as a surface (FIG. 4).
  • the medium refers to a fluid used for heating or cooling the heat transfer plate.
  • the mobile phase introduced from the mobile phase inlet extends over the entire surface within the range of the gasket surrounding the mobile phase inlet and the mobile phase outlet, and exits from the mobile phase outlet.
  • the medium flowing in from the medium inlet extends over the entire surface within the range of the gasket surrounding the medium inlet and the medium outlet, and exits from the medium outlet.
  • the surface of FIG. 3 that is, the surface through which the mobile phase flows over the entire surface
  • the surface of FIG. 4 that is, the surface through which the medium passes through the entire surface
  • a flow path for alternately flowing the mobile phase and a flow path for flowing the medium are formed. Since these two flow paths are separated by a plate and a gasket, the medium and the mobile phase do not mix.
  • the total surface area of the heat transfer plates is the sum of the surface areas of the plurality of heat transfer plates, for example, 0.01 m 2 or more and 150.0 m 2 or less, preferably 0.1 m 2 or more and 2.0 m. 2 or less, more preferably 0.5 m 2 or more and 1.5 m 2 or less, and further preferably 0.5 m 2 or more and 1.2 m 2 or less.
  • the total surface area is calculated by the product of the surface area per heat transfer plate and the number of heat transfer plates.
  • the surface area per one surface plate is calculated as the surface area on one side.
  • the surface area per one heat transfer plate is, for example, 0.01 m 2 or more and 1.0 m 2 or less, preferably 0.01 m 2 or more and 0.6 m 2 or less, more preferably 0.01 m 2. 2 or more and 0.2 m 2 or less.
  • the shape of the heat transfer plate is preferably a rectangular shape with rounded corners. In this case, when the short side is X and the long side is Y, a shape having a shape of 2 ⁇ Y / X ⁇ 6 can be preferably used.
  • the thickness of the heat transfer plate is, for example, 0.1 to 1.0 mm, and preferably 0.3 to 0.6 mm.
  • the number of heat transfer plates is related to the area of the heat transfer plate, but is, for example, 1 to 150.
  • the number of heat transfer plates is, for example, 20 to 100, and preferably 60 to 90.
  • the number of heat transfer plates is, for example, 1 to 50, and preferably 10 to 30.
  • the distance between the plates of the heat transfer plate is, for example, 1.0 to 5.0 mm, preferably 1.5 to 3.5 mm.
  • the opening is preferably provided at one of the four corners of the heat transfer plate.
  • the mobile phase inlet, the mobile phase outlet, the medium inlet, and the medium outlet are provided at the four corners of each rectangular heat transfer plate, and the mobile phase inlet and the medium inlet are one. It is provided on a diagonal line, and a medium outlet and a mobile phase outlet provided on another diagonal line can be used.
  • the material of the heat transfer plate is preferably made of a corrosion-resistant metal such as stainless steel or titanium.
  • the heat transfer plate is preferably provided with unevenness on the surface, and particularly preferably has a complicated uneven shape. Thereby, a turbulent flow is generated in the fluid flowing between the heat transfer plates, and heat exchange is performed efficiently.
  • Metal, rubber, silicon, fluororesin, etc. can be used as gasket material.
  • the gasket made of metal is fixed on the heat transfer plate by welding.
  • a gasket made of rubber, silicon, and fluororesin is stuck on the heat transfer plate with an adhesive.
  • a gasket is fitted by the uneven structure provided in the heat-transfer plate.
  • the medium When there is a temperature difference between the mobile phase and the medium, heat is transferred via the heat transfer plate.
  • the medium When it is desired to warm the mobile phase, the medium may be set slightly higher than the mobile phase target temperature, and when the mobile phase is desired to be cooled, the medium may be set slightly lower than the mobile phase target temperature.
  • the temperature of the medium is set higher than the target temperature of the mobile phase and lower than the target temperature + 5 ° C. It is preferable to set, and when cooling, it is preferable to set the temperature of the medium lower than the target temperature of the mobile phase and higher than the target temperature of ⁇ 5 ° C.
  • the temperature of the medium when heating the mobile phase, is preferably set higher than the target temperature of the mobile phase and not higher than the target temperature + 3 ° C., and when cooling, the temperature of the medium is set higher than the target temperature of the mobile phase. It is preferable that the temperature is low and the target temperature is set to ⁇ 3 ° C. or higher. More preferably, when heating the mobile phase, it is preferable to set the temperature of the medium to be higher than the target temperature of the mobile phase and not higher than the target temperature + 1 ° C., and when cooling, the temperature of the medium is higher than the target temperature of the mobile phase. It is preferable that the temperature is low and the target temperature is set to ⁇ 1 ° C. or higher.
  • a heat exchanger in addition to the plate heat exchanger, there is a loop tube heat exchanger having a looped pipe.
  • the loop tube heat exchanger heat exchange is performed between the fluid in the pipe and the medium outside the pipe while the fluid flows in one long loop pipe.
  • a multi-tube heat exchanger provided with a plurality of pipes arranged in parallel. In a multi-tube heat exchanger, heat exchange is performed between a fluid in the pipe and a medium outside the pipe while the fluid flows in the plurality of pipes.
  • the liquid chromatography system according to the present embodiment includes the above-described plate heat exchanger in the process piping.
  • the plate heat exchanger suppresses temperature unevenness in the fluid by causing turbulent flow in the fluid, and can realize efficient and excellent heat transfer performance. Efficient heat transfer contributes to the reduction of the heat transfer area and, consequently, the space of the heat exchanger. Further, efficient heat transfer contributes to reducing the temperature difference between the temperature of the medium and the mobile phase set temperature, and the temperature of the mobile phase can be made uniform. In addition, efficient heat transfer can quickly and accurately adjust the temperature of the mobile phase. Therefore, the liquid chromatography system according to this embodiment is suitable for purification of physiologically active substances such as antibodies that are easily affected by temperature.
  • the column refers to a container filled with a carrier.
  • a carrier As the shape of the carrier, beads, flat membranes, hollow fiber membranes and the like are generally employed.
  • the column may be removable.
  • the liquid chromatography system further includes sensors for monitoring the purified solution.
  • sensors for monitoring the purified solution include an ultraviolet (UV) absorbance sensor, an electrical conductivity sensor, a temperature sensor, a pH sensor, and a pressure sensor.
  • UV ultraviolet
  • the liquid chromatography system according to the present embodiment may be configured by providing a plate heat exchanger in the liquid chromatography system including the pumps and sensors as described above.
  • a chromatography apparatus provided with the pumps and sensors as described above for example, AKTA process (manufactured by GE Healthcare) can be mentioned.
  • the liquid chromatography system may be configured by providing a plate heat exchanger in an apparatus that performs liquid chromatography including a sensor that measures pH, pressure, and the like.
  • the plate heat exchanger is detachable.
  • detachable means that the liquid chromatography method can be carried out even with the plate heat exchanger removed. In other words, it is possible to easily attach and detach the plate heat exchanger by changing the process piping, and to perform unnecessary liquid chromatography methods for the plate heat exchanger in the same liquid chromatography system. . If a plate-type heat exchanger with a small heat transfer area is used, the apparatus can be easily miniaturized, so that the plate-type heat exchanger can be easily attached to and detached from the chromatography apparatus.
  • the plate heat exchanger in the process piping upstream of the column. This is because the ligand fixed to the carrier in the column or module is thermally controlled by a plate heat exchanger to generate desired properties for the ligand.
  • a heat insulating portion that blocks the column or module and the outside air, or a column jacket that regulates the temperature of the wall surface of the column or module may be omitted. This is because when the column or module is large, it is difficult to receive a temperature change due to the outside air, and the temperature of the mobile phase tends to be sufficiently maintained.
  • two or more plate heat exchangers are arranged on a process pipe.
  • two or more plate heat exchangers are provided in each of the process pipes arranged in parallel.
  • the temperature of the mobile phase can be quickly switched by switching the process pipe through which the mobile phase passes.
  • FIG. 6 shows a liquid chromatography system provided with two or more plate heat exchangers according to the present embodiment.
  • the flow path is branched into at least two or more before the plate heat exchanger, and at least one plate heat exchanger is installed in each flow path.
  • a switching valve is provided at the branch point, and the mobile phase flowed by the liquid feeding pump is fed toward one flow path selected by the switching valve at the branch point.
  • the two or more plate heat exchangers are set, for example, such that the mobile phases have different temperatures.
  • at least one of the plate heat exchangers is set as a heating plate heat exchanger for heating the mobile phase
  • at least one other of the plate heat exchangers is a cooling plate heat for cooling the mobile phase.
  • the mobile phase is heated or cooled to a certain temperature in a flow path provided with one of two or more plate heat exchangers, and then flows into a column or module. At this time, it is preferable that the number of flow paths be one again before the column or module. It is preferable to provide a valve in front of the single channel so that the mobile phase flowing from each branched channel does not become cloudy. This valve is used by appropriately switching the mobile phase flowing from one flow path selected by the switching valve so as to connect to the column.
  • the temperature at the column outlet is set at a predetermined flow rate that is twice or less the column volume. It becomes possible to adjust to the temperature.
  • a carrier used for affinity chromatography, ion exchange chromatography, gel filtration chromatography, reverse phase chromatography, and the like can be used.
  • carriers used for affinity chromatography and ion exchange chromatography can be preferably used.
  • This embodiment is suitable when a carrier whose adsorption performance to a physiologically active substance is changed by a temperature change, that is, a temperature-responsive chromatography carrier is used.
  • a carrier whose adsorption performance to a physiologically active substance is changed by a temperature change that is, a temperature-responsive chromatography carrier is used.
  • the adsorption performance of the chromatographic support varies slightly depending on the temperature, so that strict temperature control is required particularly for a trace analysis.
  • the carrier in which the adsorption performance to the physiologically active substance is changed by the temperature change in the present embodiment refers to a chromatography carrier that is modified so that the adsorption performance to the physiologically active substance is significantly changed by the temperature change.
  • a temperature-responsive chromatography carrier a temperature-responsive affinity chromatography carrier using a mutant protein A (temperature-responsive protein A) whose affinity with an antibody changes due to a change in a three-dimensional structure accompanying a change in temperature, etc.
  • a temperature-responsive ion exchange chromatography carrier having a solid surface coated with a charged polymer whose hydration power changes within a temperature range of 0 to 80 ° C.
  • the physiologically active substance is purified by, for example, the Bind and Elute method.
  • the method for purifying a physiologically active substance using the liquid chromatography system according to the present embodiment by the bind and elute method is, for example, 1) passing the mobile phase through a heating plate heat exchanger to raise the column to the target temperature; 2) flowing a solution containing a physiologically active substance at a target temperature, and adsorbing the physiologically active substance to a carrier in the column; 3) a step of switching the flow path of the mobile phase to a cooling plate heat exchanger; 4) A step of flowing a mobile phase cooled by a cooling plate type heat exchanger to the column and recovering the physiologically active substance from the column; including.
  • a method for purifying a physiologically active substance using the liquid chromatography system according to the present embodiment by the bind-and-elut method is, for example, 1) A step of passing the mobile phase through a cooling plate heat exchanger to lower the inside of the column to a target temperature; 2) flowing a solution containing a physiologically active substance at a target temperature, and adsorbing the physiologically active substance to a carrier in the column; 3) switching the mobile phase flow path to a heating plate heat exchanger; 4) A step of flowing a mobile phase heated by a heating plate heat exchanger through the column and recovering a physiologically active substance from the column; including.
  • the physiologically active substance is purified by, for example, a flow-through method.
  • a flow-through method for example, an antibody protein monomer component is allowed to pass through an ion-exchange chromatography carrier as a target physiologically active substance in one temperature region, and an aggregate component is adsorbed as an impurity, whereby an antibody Only the monomer component of the protein is substantially eluted. Since antibody protein aggregates have a higher charge amount than monomers, the binding to ion exchange resins tends to be stronger than monomers. Furthermore, since the aggregate is more hydrophobic than the monomer, the aggregate tends to interact with the hydrophobic portion of the ion exchange resin (hydrophobic interaction) and bond with the ion exchange resin.
  • the set temperature when the mixed solution of impurities and physiologically active substance is flow-through into a container filled with carriers the temperature at which the adsorptivity of the physiologically active substance to be purified is low and the impurities are highly absorptive to the carrier is set. select.
  • the purification method of the physiologically active substance using the liquid chromatography system according to this embodiment by the flow-through method is, for example, 1) setting the plate heat exchanger to a constant temperature; 2) A step of flowing a mobile phase whose temperature is controlled by a plate heat exchanger to keep the temperature in the column constant; 3) flowing a solution containing a physiologically active substance and impurities through a column, adsorbing the impurities on a carrier, and recovering the purified physiologically active substance; including.
  • linear velocity is taken into account when changing the column volume of liquid chromatography.
  • the linear velocity indicates the distance that the mobile phase passes per unit time from the inlet of the column toward the outlet, and can be determined by the following equation.
  • Linear velocity (cm / h) flow velocity (ml / min) / column cross-sectional area (cm 2 ) ⁇ 60 If the linear velocity is kept constant, the passage time of the substance in the column does not change even if the column size changes, so it becomes easy to shift the condition study on a small scale to a large scale.
  • a linear velocity 100 cm / h or more and 300 cm / h or less is suitably used.
  • the flow rate (linear velocity) of the mobile phase is controlled by, for example, a chromatography apparatus.
  • the cross-sectional area of a column It is not uncommon for the cross-sectional area of a column to exceed 1000 cm 2 in the manufacturing process of pharmaceutical products.
  • the column cross-sectional area is large, it is necessary to increase the flow rate of the mobile phase in order to keep the linear velocity constant. Therefore, a means capable of quickly and accurately adjusting the temperature of the mobile phase passing at a high flow rate is desired.
  • the flow rate of the mobile phase depends on the target linear velocity and the column size, but can be suitably used at 50 mL / min or more and 10 L / min or less.
  • the looped pipe is immersed in the thermostatic bath.
  • the length of the pipe will be increased accordingly, and the temperature chamber in which the medium is put in will not be replaced with a larger one. It becomes difficult to make adjustments.
  • physiologically active substances such as antibodies have the possibility of heat denaturation, avoid excessive temperature rise in large columns and control the temperature in the column with a more uniform temperature distribution. Is preferred.
  • the plate type heat exchanger according to the present embodiment has excellent heat transfer performance, it can be suitably used even when a medium having a large specific heat such as an aqueous solvent is used.
  • the surface temperature of the plate heat exchanger is the surface temperature at which heat is transferred, and is the temperature of each surface of the heat transfer plate of the plate heat exchanger. As described above, in the plate heat exchanger, the medium and the mobile phase come into contact with each other through the heat transfer plate, so that heat is transferred.
  • the temperature of the medium of the plate heat exchanger may be set outside the temperature range where the physiologically active substance is denatured.
  • a medium for the plate heat exchanger a liquid such as water or brine (an aqueous solution close to saturation of sodium chloride) or a condensing gas such as steam can be used.
  • water it is preferable to use water as a medium in order to set the propagation temperature in a temperature range where the physiologically active substance is not denatured.
  • the temperature of the medium is controlled by a temperature controller that adjusts the temperature with a heat block or the like, and the medium is passed through the heat transfer plate.
  • a temperature controller that adjusts the temperature with a heat block or the like, and the medium is passed through the heat transfer plate.
  • the flow rate of the medium (circulation rate from the temperature controller to the plate heat exchanger) is higher than the flow rate (linear velocity) of the mobile phase.
  • the temperature can be suitably controlled by setting the flow rate of the medium to 1 L / min or more and 200 L / min or less.
  • the volume of the carrier packed in the column is, for example, 1 L or more.
  • a column having a volume of 1 L or more has a large flow rate value when the mobile phase is allowed to flow at a constant linear velocity.
  • the plate heat exchanger according to the present embodiment has excellent heat transfer performance, Even if the value increases, the temperature of the mobile phase can be adjusted quickly and accurately.
  • a high performance liquid chromatography system was used as the antibody aggregation evaluation system of the present embodiment. That is, reservoir tank (mobile phase, 0.1 mol / L phosphoric acid, 0.2 mol / L arginine, pH 6.7), liquid feed pump (liquid feed flow rate 0.6 ml / min), sample loop (capacity 20 ⁇ L), column (Room temperature), detector (ultraviolet light, wavelength 280 nm), after loading the target using a high-performance liquid chromatography system connected in the order of drain, the absorbance contained in the target is determined from the absorbance detected from the detector. Aggregate ratio was quantified.
  • a Tosoh TSKGELG3000SWXL column having an inner diameter (diameter) of 7.8 mm and a bed height of 300 mm was used.
  • a multimer peak (peak A) of a trimer or higher is detected at an elution time of 12 to 13 minutes, and a dimer peak (peak B) is detected at an elution time of 14 to 15 minutes.
  • a monomer peak (peak C) is detected around time 16 minutes. From the area ratio of these peaks, the degree of antibody aggregation was calculated using a program using the following formula (1).
  • Antibody aggregation degree (%) 100 ⁇ ⁇ (Area ratio of peak A) + (Area ratio of peak B) ⁇ (1)
  • a temperature-responsive ion exchange resin was prepared as follows according to the method described in Patent Document WO12 / 081727. 1) Fixation of initiator 1 g of crosslinked polyvinyl alcohol beads (particle size 100 ⁇ m) was wetted with pure water and placed in a 300 mL glass Erlenmeyer flask.
  • N-isopropylacrylamide (IPAAm, manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) 18.40 g, GMA 0.231 g, butyl methacrylate (BMA, manufactured by Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.) 1.217 g, copper chloride I ( 0.085 g of CuCl, manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) and 0.012 g of copper chloride II (CuCl2, manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) were dissolved in 42.8 mL of a 90% by volume isopropanol (IPA) aqueous solution. Nitrogen bubbling was performed for 30 minutes.
  • IPA isopropanol
  • the antibody solution used in this example was obtained by performing an affinity chromatography step and a virus removal step through a cell culture step and a cell separation step in accordance with a general antibody pharmaceutical production process.
  • the antibody aggregation degree of this solution was 3.8%.
  • Example 1 As shown in FIG. 6, an existing chromatographic control system (AKTA process) is attached with a pipe divided into two by a valve, and one side is heated with a plate heat exchanger A (AlfaNova 27-80H Alfa Laval Co., Ltd.). Total surface area: 1.95 m 2 Size: 311 ⁇ 112 ⁇ 230 mm Weight: 12.3 kg)
  • plate heat exchanger B for cooling AlfaNova 27-24H, manufactured by Alfa Laval Co., Ltd.
  • Total surface area 0 .55 m 2 size: 311 ⁇ 112 ⁇ 91 mm weight: 4.3 kg) was attached. 41 ° C. water was installed in the heating plate heat exchanger A and 7 ° C. water was circulated as a medium in the cooling plate heat exchanger B.
  • the piping after the heat exchanger becomes one flow path again as shown in FIG.
  • An acrylic column (P630 ⁇ 500, manufactured by Millipore Corporation) was attached to this end.
  • the column was packed with 20 L of the temperature-responsive ion exchange resin prepared as described above.
  • the piping at the column outlet was again connected to an existing chromatographic control system (AKTA process), so that the UV absorbance, electrical conductivity, temperature, pH, etc. of the solution could be monitored.
  • the flow path is set so that the mobile phase flows toward the plate type heat exchanger A for heating, and 15 mmol / L acetate buffer (pH 6.0) at room temperature (25 ° C.) is flowed at a flow rate of 8 L / min (linear velocity). 120 cm / h).
  • the mobile phase temperature after the column outlet monitored was 40 ° C. From this state, a solution containing the antibody was poured, and the following adsorption, washing, and elution operations were performed.
  • the antibody solution at the point A in FIG. 6 (solution after heating to 40 ° C. with a plate heat exchanger) was sampled, and the degree of antibody aggregation was measured. Further, the degree of antibody aggregation was also measured for the solution during the temperature elution step. The results are shown in Table 1.
  • the temperature of the mobile phase increased only to 33 ° C. It was as follows.
  • An acrylic column (P630 ⁇ 500, manufactured by Millipore Corporation) was attached to this end.
  • the column was packed with 20 L of the temperature-responsive ion exchange resin prepared as described above.
  • the piping at the column outlet was again connected to an existing chromatographic control system (AKTA process), so that the UV absorbance, electrical conductivity, temperature, pH, etc. of the solution could be monitored.
  • the flow path was set so that the mobile phase would flow toward the heated multitubular heat exchanger, and 15 mmol / L acetate buffer (pH 6.0) at room temperature (25 ° C.) was flowed at a flow rate of 8 L / min (linear velocity of 120 cm). / H).
  • the mobile phase temperature after the column outlet monitored was 40 ° C. From this state, a solution containing the antibody was poured, and the following adsorption, washing, and elution operations were performed.
  • the antibody solution at point A in FIG. 7 (solution after heating to 40 ° C. with a multi-tube heat exchanger) was sampled, and the degree of antibody aggregation was measured. Further, the degree of antibody aggregation was measured for the solution during the temperature elution step. The solution at point A was cloudy. The results are shown in Table 1.
  • Comparative Example 1 the degree of antibody aggregation greatly increased at point A. This is because the medium temperature of the multi-tubular heat exchanger is high (80 ° C), and there is a temperature gradient inside, and the ratio of multimers and dimers is increased due to partial reaching of the heat denaturation temperature of antibodies. It is done. In addition, using a multi-tube heat exchanger having a larger heat transfer area is difficult to connect to a chromatography system (AKTA process) in terms of size and weight.
  • AKTA process chromatography system

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Abstract

 生理活性物質の精製工程に使用される液体クロマトグラフィーシステムであって、温度変化によって生理活性物質を吸着する性能が変化する温度応答性クロマトグラフィー担体を含有するカラムと、カラムに接続され、移動相が流されるプロセス配管と、プロセス配管に設けられ、移動相の温度を制御するプレート式熱交換器と、を備える、液体クロマトグラフィーシステム。

Description

液体クロマトグラフィーによる物質の精製方法及び装置
 本発明は、生理活性物質の精製工程において用いられる液体クロマトグラフィー装置、及び当該装置の運転方法に関する。
 液体クロマトグラフィーは分析技術や各種工業用分離精製技術として広く用いられる手法である。液体クロマトグラフィーを用いた工業用分離精製の一例として、生理活性物質の精製がある。
 生理活性物質の一例としては、免疫グロブリン(抗体)が挙げられる。抗体は、免疫反応を司る生理活性物質である。近年、医薬品、診断薬、及び対応する抗原タンパク質の分離精製材料等の用途において、抗体の利用価値が高まっている。抗体は、免疫した動物の血液、抗体産生能を保有する細胞の細胞培養液、及び動物の腹水培養液等から得られる。ただし、血液や培養液は、抗体以外のタンパク質、及び複雑な夾雑物等の不純物を含んでいる。したがって、不純物から抗体を分離し、抗体を精製するためには、通常、煩雑で長い時間を要する精製工程が必要とされている。
 抗体を精製するために用いられる液体クロマトグラフィーとしては、ゲルろ過クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、及び逆相クロマトグラフィー等がある。抗体を分離精製する際には、これらのクロマトグラフィーが組み合わされることもある。
 クロマトグラフィーにおいては、移動相の組成を変えることによって、分離対象物質と、担体表面と、の相互作用を変えることが可能である。そのため、移動相の組成を調整することにより、分離対象物質を担体表面に吸着させたり、分離対象物質を担体表面から解離させたりすることが可能である。ここで、分離対象物質を担体表面から解離させるための移動相としては、従来、酸性(低pH)溶液、高塩濃度の緩衝液、及び有機溶媒等が用いられている。しかし、酸性溶液等は、分離対象の生体物質の活性を損なったり、凝集体を生じさせたりする場合がある。そこで、分離対象の生体物質の活性を維持すること、及び凝集体の発生を抑制することを目的として、分離対象の生体物質と、担体表面と、の相互作用を、温度変化によって変化させることが可能な、温度応答性クロマトグラフィーが提案されている。
 例えば、特許文献1には、固定相表面の有効荷電密度を温度変化によって変化させることができる、荷電を有する共重合体を含む充填剤、当該充填剤の製造方法、及び当該充填剤を用いた温度応答性クロマトグラフィー法が開示されている。特許文献2には、0~80℃の温度範囲内で水和力が変化するポリマーを、原子移動ラジカル重合法によって、基材表面に高密度に固定した温度応答性クロマトグラフィー担体が開示されている。特許文献3には、イソプロピルアルコールを溶媒として、原子移動ラジカル法により、荷電を有し、0~80℃の温度範囲内で水和力が変化するポリマーを成長反応させることを含む、温度応答性クロマトグラフィー担体の製造方法が開示されている。
 特許文献4には、水系移動相を含む特定の条件下で、生物学、医学、及び薬学等の分野において有用な高分子量の生理活性物質を分離できる、0~80℃の温度範囲内で水和力が変化する荷電ポリマーを固体表面に被覆した液体クロマトグラフィー担体の製造方法が開示されている。非特許文献1には、原子移動ラジカル重合法により調製された、カルボキシル基を有する温度応答性クロマトグラフィー担体及びその製造法が開示されている。また、非特許文献1には、原子移動ラジカル重合法に用いるモノマー組成に関して、リゾチームの分離に最適化されたモノマー組成が開示されている。
 特許文献5には、温度変化に伴う立体構造の変化等によって、抗体との親和性が変化する変異プロテインA(温度応答性プロテインA)を用いた、抗体の分離方法が開示されている。ここで、プロテインAについて説明する。プロテインAは、スタフィロコッカス属黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)に由来する。プロテインAは、中性条件下で、抗体のFc領域に対して特異的に高い親和性を有する。そのため、天然のプロテインAを用いて抗体を精製する際には、まず、天然のプロテインAをリガンドとして有する不溶性担体に抗体を含む溶液を中性条件下で接触させて、担体上の天然のプロテインAに抗体を特異的に吸着させる。そして、中性の緩衝液で担体に吸着しなかった成分を洗浄し、除去した後、pH3.0付近の酸性の溶液を用いて、担体上の天然のプロテインAから抗体を解離させる。これに対し、温度応答性プロテインAをアフィニティークロマトグラフィーのリガンドとして用いる場合には、酸性の溶液を用いることなく、移動相の温度を変化させることによって、温度応答性プロテインAから抗体を解離させることができる。
 特許文献6及び7には、移動相の温度変化を調節するための装置について記載されている。特許文献6には、液体クロマトグラフィーによる分析方法に用いる温度グラジエント溶出法が開示されており、移動相を2つの流路で互いに異なる一定の温度に調整し、任意の混合比で混合して断熱されたカラムに流入させることにより、カラムの温度を調節している。また、特許文献7には、大型カラムを備える液体クロマトグラフィー装置における温度コントロールの方法が記載されており、クロマトカラムの外周面をジャケットで囲んでジャケット内に流体を供給し、該流体とカラム内に通液される移動相溶媒との温度差を一定範囲内に保っている。何れの方法でも、カラムへ流入する前の工程でループ状の配管を備えており、これを恒温槽に浸すことにより移動相を一定温度に調節している。
国際公開第99/061904号 特開2007-69193号公報 特開2009-85933号公報 国際公開第01/074482号 国際公開第08/143199号 国際公開第2007/091323号 特開昭63-38158号公報
Polymer Preprints,Japan Vol.58,No.2,3T1-13(2009)
 温度応答性クロマトグラフィー技術の発展と共に、温度応答性クロマトグラフィーの用途は、小スケールの分析技術から、大スケールの精製プロセス分野へ広がりを見せている。ここで、大スケールの精製プロセスへ温度応答性クロマトグラフィーを応用しようとした場合、均一で効率的な温度調整が課題となる。しかし、生理活性物質の精製工程に用いる液体クロマトグラフィーシステムにおいて、移動相に効率的に伝熱するための研究は、これまで進められてこなかった。
 これまで、大型の精製プロセスでの温度コントロールといえば、比熱の小さい溶媒を用いることによるものや、温度をある範囲内に入れるというような、厳密とは言い難い管理であった。しかし、温度応答性クロマトグラフィーは、温度により吸着能を変化させることから、より厳密な温度コントロールが必要となる。加えて、温度応答性クロマトグラフィーの精製対象は生理活性物質であるため、熱変性しやすい。
 したがって、活性を低下させる加温部と、生理活性物質と、の接触を極力短時間に抑えるとともに、加温部の設定温度と、生理活性物質の目的温度と、の差を小さくするため、熱エネルギーの移動効率を高くすることが求められる。そのため、温度応答性クロマトグラフィーを精製プロセスに用いるためには、加温部と、生理活性物質を含む溶液と、の間の温度差を均一にし、移動相等の温度を正確にコントロールすることが望まれる。また、製造スケールの大型カラム等を用いる場合、大容量の移動相の温度を、迅速かつ正確に制御することも望まれる。
 本発明は、生理活性物質の精製工程に用いる液体クロマトグラフィーシステムであって、製造スケールの大型カラムに流される大量の移動相でも、迅速かつ正確に温度制御できるシステムを提供するものであり、プレート式熱交換器を備える。
 すなわち、本発明の態様は、(a)生理活性物質の精製工程に使用される液体クロマトグラフィーシステムであって、(b)温度変化によって生理活性物質を吸着する性能が変化する温度応答性クロマトグラフィー担体を含有するカラムと、(c)カラムに接続され、移動相が流されるプロセス配管と、(d)プロセス配管に設けられ、移動相の温度を制御するプレート式熱交換器と、を備える、液体クロマトグラフィーシステムを含む。
 本発明の態様に係る液体クロマトグラフィーシステムにおいて、プレート式熱交換器は、例えば、プロセス配管から着脱可能である。プレート式熱交換器は、例えば、カラム上流のプロセス配管に設けられている。プレート式熱交換器は、例えば、プロセス配管に2個以上設けられている。プレート式熱交換器は、例えば、プロセス配管に、2個以上、並列に設けられている。例えば、2個以上のプレート式熱交換器の少なくとも1つは移動相を加温する加温用プレート式熱交換器であり、2個以上のプレート式熱交換器の少なくともその他の1つは移動相を冷却する冷却用プレート式熱交換器である。
 本発明の態様に係る液体クロマトグラフィーシステムにおいて、担体の形状は、例えば、ビーズ、平膜、中空糸膜のいずれかである。カラムに充填される担体の体積は、例えば、1L以上である。精製される生理活性物質は、例えば、抗体である。担体は、例えば、温度応答性アフィニティークロマトグラフィー担体である。あるいは、担体は、例えば、温度応答性イオン交換クロマトグラフィー担体である。
 また、本発明の態様は、(a)温度変化によって生理活性物質を吸着する性能が変化する温度応答性クロマトグラフィー担体を含有するカラムと、(b)カラムに接続され、移動相が流されるプロセス配管と、(c)プロセス配管に設けられ、移動相の温度を制御するプレート式熱交換器と、を備える、液体クロマトグラフィーシステムを用いた生理活性物質の精製方法であって、(d)プレート式熱交換器の伝面温度を、生理活性物質の変性する温度領域以外に設定することを含む、生理活性物質の精製方法を含む。
 本発明の態様に係る生理活性物質の精製方法において、プレート式熱交換器の熱媒又は冷媒として、例えば、水系溶媒が用いられる。カラム内を通過する移動相の線速度は、例えば、100cm/h以上300cm/h以下である。移動相の流速は、例えば、50mL/min以上10L/min以下である。プレート式熱交換器の媒体の流速は、例えば、1L/min以上200L/min以下である。移動相の目的温度とプレート式熱交換器の媒体の温度の差は、例えば、5℃以内である。
 また、本発明の態様は、(a)温度変化によって生理活性物質を吸着する性能が変化する温度応答性クロマトグラフィー担体を含有するカラムと、(b)カラムに接続され、移動相が流されるプロセス配管と、(c)プロセス配管に設けられ、移動相の温度を制御するプレート式熱交換器と、を備える、液体クロマトグラフィーシステムであって、(d)プロセス配管に、プレート式熱交換器が2個以上設けられており、(e)2個以上のプレート式熱交換器の少なくとも1つが移動相を加温する加温用プレート式熱交換器であり、2個以上のプレート式熱交換器の少なくとも1つが移動相を冷却する冷却用プレート式熱交換器である、(f)液体クロマトグラフィーシステムを使用する生理活性物質の精製方法であって、
 1)移動相を加温用プレート式熱交換器に通して、カラム内を目的温度に上げる工程と、
 2)目的温度で生理活性物質を含む溶液を流し、カラム内の担体に生理活性物質を吸着させる工程と、
 3)移動相の流路を冷却用プレート式熱交換器に切り替える工程と、
 4)冷却用プレート式熱交換器で冷却された移動相をカラムに流してカラムから生理活性物質を回収する工程と、
 を含む、方法を含む。
 また、本発明の態様は、(a)温度変化によって生理活性物質を吸着する性能が変化する温度応答性クロマトグラフィー担体を含有するカラムと、(b)カラムに接続され、移動相が流されるプロセス配管と、(c)プロセス配管に設けられ、移動相の温度を制御するプレート式熱交換器と、を備える、液体クロマトグラフィーシステムであって、(d)プロセス配管に、プレート式熱交換器が2個以上設けられており、(e)2個以上のプレート式熱交換器の少なくとも1つが移動相を加温する加温用プレート式熱交換器であり、2個以上のプレート式熱交換器の少なくとも1つが移動相を冷却する冷却用プレート式熱交換器である、(f)液体クロマトグラフィーシステムを使用する生理活性物質の精製方法であって、
 1)移動相を冷却用プレート式熱交換器に通して、カラム内を目的温度に下げる工程と、
 2)目的温度で生理活性物質を含む溶液を流し、カラム内の担体に生理活性物質を吸着させる工程と、
 3)移動相の流路を加温用プレート式熱交換器に切り替える工程と、
 4)加温用プレート式熱交換器で加温された移動相をカラムに流してカラムから生理活性物質を回収する工程と、
 を含む、方法を含む。
 また、本発明の態様は、(a)生理活性物質の精製工程に使用される液体クロマトグラフィーシステムであって、(b)温度変化によって生理活性物質を吸着する性能が変化する温度応答性クロマトグラフィー担体を含有するカラムと、(c)カラムに接続され、移動相が流されるプロセス配管と、(d)プロセス配管に設けられ、移動相の温度を制御するプレート式熱交換器と、を備える、液体クロマトグラフィーシステムを使用する生理活性物質の精製方法であって、
 1)プレート式熱交換器を一定の温度に設定する工程と、
 2)プレート式熱交換器で温度制御された移動相を流し、カラム内の温度を一定にする工程と、
 3)生理活性物質と不純物とを含む溶液をカラムに流し、担体に不純物を吸着させ、精製された生理活性物質を回収する工程と、
 を含む、方法を含む。
 本発明によれば、生理活性物質の精製工程で液体クロマトグラフィーシステムを用いる際に、移動相の温度を迅速かつ正確に調整でき、抗体等の生理活性物質を変性させずに精製することができる。
本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムの第1の模式図である。 プレート式熱交換器の模式図である。 プレート式熱交換器の伝熱プレートの移動相を面全体に流す面の模式図である。 プレート式熱交換器の伝熱プレートの媒体を面全体に通す面の模式図である。 多管式熱交換器の模式図である。 本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムの第2の模式図である。 比較例に係る液体クロマトグラフィーシステムの模式図である。
 以下、本発明の実施の形態(以下において、「本実施の形態」という。)について詳細に説明する。
 図1に示すように、本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムは、生理活性物質の精製工程に使用される液体クロマトグラフィーシステムであって、温度変化によって生理活性物質を吸着する性能が変化する温度応答性クロマトグラフィー担体を含有するカラムと、カラムに接続され、移動相が流されるプロセス配管と、プロセス配管に設けられ、移動相の温度を制御するプレート式熱交換器と、を備える。
 本実施の形態における生理活性物質とは、生体の特定の生理的調節機能に対して作用する化学物質をさす。例えば、ビタミンやミネラル、核酸、酵素、ホルモン、神経伝達物質等が挙げられる。生理活性物質の多くは、熱によりその活性を失う熱変性(熱失活)を起こす。例えば、本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムは、このような熱変性を起こす生理活性物質の精製に有用である。熱変性を起こす生理活性物質とは、例えばタンパク質で構成されている物質であり、具体的には抗体等が挙げられる。
 本実施の形態において、抗体とは、生化学における一般的な定義のとおり、生理活性物質の1種で、脊椎動物の感染防禦機構としてBリンパ球が産生する糖タンパク質分子(ガンマグロブリン又は免疫グロブリンともいう)をさす。本実施の形態は、産業上有用な、ヒトに対して医薬品として使用できる抗体の精製にも用いることができる。
 生理活性物質が含まれる移動相は、プロセス配管を通ってカラムに送液される。なお、本実施の形態において、プロセス配管とは、移動相を送液する流路全般のことをさす。本実施の形態において、移動相とは、バッファーや精製目的の生理活性物質を含む溶液をさす。さらに、本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムは、移動相を送液するためのポンプを備えていてもよい。ポンプは、プロセス配管等に設けることができる。
 本実施の形態に係るプレート式熱交換器は、図2に示すように、密接された複数の伝熱プレートを備える。伝熱プレートには開口部として、移動相の流体を流入させるための移動相流入口、移動相の流体を流出させるための移動相流出口、媒体の流体を流入させるための媒体流入口、媒体の流体を流出させるための媒体流出口が設けられており、伝熱プレートの片面は移動相を面全体に流す面(図3)として、伝熱プレートの他方の面は媒体を面全体に流す面(図4)として機能する。なお、本実施の形態において、媒体とは伝熱プレートを加熱あるいは冷却するために用いる流体をさす。
 図3の面には、移動相流入口及び移動相流出口を取り囲むガスケットと、媒体流入口のみを取り囲むガスケットと、媒体流出口のみを取り囲むガスケットと、が設けられている。図3の面においては、移動相流入口から流入された移動相が、移動相流入口及び移動相流出口を取り囲むガスケットの範囲内で面全体に広がり、移動相流出口から出ていく。
 図4の面には、媒体流入口及び媒体流出口を取り囲むガスケットと、移動相流入口のみを取り囲むガスケットと、移動相流出口のみを取り囲むガスケットと、が設けられている。図4の面においては、媒体流入口から流入された媒体が、媒体流入口及び媒体流出口を取り囲むガスケットの範囲内で面全体に広がり、媒体流出口から出ていく。
 伝熱プレートは、図3の面(すなわち移動相を面全体に流す面)と図3の面とが対面し、図4の面(すなわち媒体を面全体に通す面)と図4の面とが対面するように設置されている。その結果、交互に移動相を流す流路と、媒体を流す流路が形成される。この2つの流路はプレート及びガスケットにより分断されているため、媒体と移動相は混合しない。
 伝熱プレートの総伝面面積は、複数の伝熱プレートの伝面面積の総和であって、例えば、0.01m以上150.0m以下であり、好ましくは0.1m以上2.0m以下であり、より好ましくは、0.5m以上1.5m以下であり、さらに好ましくは0.5m以上1.2m以下である。なお、総伝面面積は、伝熱プレート1枚当たりの伝面面積と、伝熱プレートの枚数の積で算出する。ここで、伝熱プレートには、一方の面に移動相が、他方の面に媒体が流れるため、伝面プレート1枚当たりの伝面面積は、片側の伝面面積として計算する。
 また、伝熱プレートの1枚当たりの伝面面積は、例えば0.01m以上1.0m以下であり、好ましくは0.01m以上0.6m以下であり、より好ましくは0.01m以上0.2m以下である。伝熱プレートの形状は角の丸い長方形型が好ましい。このとき短辺の長さをX、長辺をYとすると、2≦Y/X≦6である形状のものを好適に用いることができる。伝熱プレートの厚みは例えば0.1~1.0mmであり、好ましくは、0.3~0.6mmである。
 伝熱プレートの枚数は、伝熱プレートの面積にも関係するが、例えば1枚から150枚である。加熱用の熱交換機では、伝熱プレートの枚数は、例えば20枚から100枚であり、好ましくは60枚から90枚である。冷却用の熱交換器では、伝熱プレートの枚数は、例えば1枚から50枚であり、好ましくは10枚から30枚である。
 伝熱プレートのプレート間の距離は、例えば1.0~5.0mmであり、好ましくは、1.5~3.5mmである。
 前記の開口部は、伝熱プレートの四隅のいずれかに設けられていることが好ましい。例えば、移動相流入口、移動相流出口、媒体流入口、及び媒体流出口が、それぞれの長方形状の伝熱プレートの四隅に設けられており、移動相流入口と媒体流入口とが一の対角線上に設けられており、媒体流出口と移動相流出口とが他の対角線上に設けられているものを用いることができる。移動相流入口及び媒体流入口を対角線上に設け、並びに媒体流出口及び移動相流出口を対角線上に設けることで、面内の移動相ないし媒体の流速のばらつきが小さくなり、滞留を少なくすることができるため好ましい。
 伝熱プレートの材質としては、ステンレス鋼及びチタニウム等の耐食性金属からなるものが好ましい。また、伝熱プレートは、面上に凹凸が設けられているものが好ましく、特に、複雑な凹凸形状のものが好ましい。これにより、伝熱プレートの間を流れる流体に乱流が生じ、効率的に熱交換が行われる。
 ガスケットの材料としては、金属、ゴム、シリコン、及びフッ素樹脂等が使用可能である。金属からなるガスケットは、溶接により、伝熱プレート上に固定される。ゴム、シリコン、及びフッ素樹脂からなるガスケットは、接着剤により、伝熱プレート上に貼り付けられる。あるいは、ガスケットは、伝熱プレートに設けられた凹凸構造に勘合される。本実施の形態においては、ガスケットに金属を使用し、伝熱プレート同士を溶接で固定することが好ましい。これは、ガスケットの材料やガスケットの接着剤から移動相への汚染を防止するという観点、並びに金属製のガスケットは移動相の種類・温度・pH等に左右されずに使用できるという観点から好ましい。尚、プレート同士が溶接されていると、分解して洗浄することが困難な場合もある。このため内部の滞留部が少ない構造を持つことが好ましい。
 移動相と媒体に温度差があると、伝熱プレートを介して熱の授受が行われる。移動相を加温したいときは、媒体を移動相目的温度より少し高く、移動相を冷却したいときは、媒体を移動相目的温度より少し低く設定するとよい。伝熱プレートを通過する前の移動相の温度にも依存するが、より具体的には、移動相を加温する場合は、媒体の温度を移動相目的温度より高くかつ目的温度+5℃以下に設定することが好ましく、冷却するときは、媒体の温度を移動相目的温度より低くかつ目的温度-5℃以上に設定することが好ましい。より好ましくは、移動相を加温する場合は、媒体の温度を移動相目的温度より高くかつ目的温度+3℃以下に設定することが好ましく、冷却するときは、媒体の温度を移動相目的温度より低くかつ目的温度-3℃以上に設定することが好ましい。さらに好ましくは、移動相を加温する場合は、媒体の温度を移動相目的温度より高くかつ目的温度+1℃以下に設定することが好ましく、冷却するときは、媒体の温度を移動相目的温度より低くかつ目的温度-1℃以上に設定することが好ましい。
 熱交換器としては、プレート式熱交換器以外に、ループ状の配管を備えるループ管式熱交換器がある。ループ管式熱交換器においては、1つの長いループ状の配管の中を流体が流れる間に、配管内の流体と、配管外の媒体と、の間で、熱交換が行われる。また、図5に示すように、並列に配置された複数の配管を備える多管式熱交換器もある。多管式熱交換器においては、複数の配管の中を流体が流れる間に、配管内の流体と、配管外の媒体と、の間で、熱交換が行われる。
 これらのループ管式熱交換器又は多管式熱交換器に対して、本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムは、上述したプレート式熱交換器をプロセス配管中に備える。プレート式熱交換器は、流体に乱流を生じさせることによって、流体内の温度ムラを抑制し、効率的で優れた伝熱性能を実現可能である。効率的な伝熱は、伝熱面積の小スペース化、ひいては、熱交換器の小スペース化に貢献する。また、効率的な伝熱は、媒体の温度と、移動相設定温度と、の温度差を小さくすることに貢献し、移動相の温度を均一化することができる。さらに、効率的な伝熱は、移動相の温度を迅速かつ正確に調整可能である。そのため、本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムは、温度の影響を受けやすい抗体等の生理活性物質の精製に好適である。
 本実施の形態において、カラムとは、担体を充填する容器のこという。担体の形状としては、一般的にビーズや、平膜、中空糸膜等が採用されている。本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムにおいて、カラムは取り外し可能であってもよい。
 本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムは、精製後の溶液をモニタリングするセンサー類をさらに備える。センサーとしては、紫外線(UV)吸光度センサー、電気伝導度センサー、温度センサー、pHセンサー、及び圧力センサー等が挙げられる。
 本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムは、上述したようなポンプやセンサー類を備えている液体クロマトグラフィーシステムに、プレート式熱交換器を設けることによって構成されてもよい。上述したようなポンプやセンサー類を備えているクロマトグラフィー装置としては、例えばAKTAprocess(GEヘルスケア製)が挙げられる。
 すなわち、少なくとも1つ以上の移動相を流すためのポンプを備え、少なくとも1つのカラム接続部と、少なくとも1つの移動相の物性をモニタリングするセンサー類(紫外線(UV)吸光度、電気伝導度、温度、pH、及び圧力等を計測するセンサー)とを備える液体クロマトグラフィーを行う装置に、プレート式熱交換器を設けることによって、本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムを構成してもよい。
 本実施の形態に係る液体クロマトグラフィーシステムにおいて、プレート式熱交換器は着脱可能である。ここで、着脱可能とは、プレート式熱交換器を外した状態でも、液体クロマトグラフィー法を実施可能であることを意味する。つまり、プロセス配管をつなぎ変えることで、プレート式熱交換器を簡便に着脱でき、かつ、プレート式熱交換器の不要な液体クロマトグラフィー法も、同じ液体クロマトグラフィーシステムで行うことができることを意味する。伝熱面積の小さいプレート式熱交換器を用いれば、装置が小型化しやすいため、プレート式熱交換器のクロマトグラフィー装置への着脱は容易に行える。
 プレート式熱交換器はカラム上流のプロセス配管中に配置することが好ましい。これはカラムやモジュール内の担体に固定されたリガンドをプレート式熱交換器で熱制御することで、リガンドに所望の性質を発生させるためである。このとき、カラムやモジュールが大型である場合、カラムやモジュールと、外気と、を遮断する断熱部、あるいはカラムやモジュールの壁面を温調するカラムジャケットは、特に設けなくてもよい。これは、カラムやモジュールが大型である場合、外気による温度変化を受けにくく、移動相の温度を充分保つことができる傾向にあるためである。
 プレート式熱交換器は、例えば、プロセス配管上に2個以上配置される。好ましくは、2つ以上のプレート式熱交換器は、並列に配置されたプロセス配管のそれぞれに設けられる。これにより、移動相が通過するプロセス配管を切り替えることによって、移動相の温度切り替えを迅速に行うことが可能となる。
 本実施の形態に係る2個以上のプレート式熱交換器を備えた液体クロマトグラフィーシステムを図6に示す。プレート式熱交換器の手前で流路は少なくとも2つ以上に分岐していて、各流路にはそれぞれ少なくとも1つのプレート式熱交換器が設置されている。分岐点には切り替え弁が設けられており、送液ポンプにより流された移動相は、分岐点で切り替え弁により選択された1つの流路に向かって送液される。
 2個以上のプレート式熱交換器は、例えば、それぞれ移動相が異なる温度になるように設定される。例えば、プレート式熱交換器の少なくとも1つが移動相を加温する加温用プレート式熱交換器に設定され、プレート式熱交換器の他の少なくとも1つが移動相を冷却する冷却用プレート式熱交換器に設定される。
 移動相は2個以上のプレート式熱交換器のいずれかが設けられた流路で一定温度に加温または冷却された後、カラムやモジュールへと流入する。このとき、カラムやモジュールの手前で、流路は再び1つにしておくことが好ましい。分岐された各流路から流れる移動相はそれぞれ混濁しないように、流路を1つにする手前には弁を設けることが好ましい。この弁は切り替え弁により選択された1つの流路から流れてきた移動相を、カラムへとつなぐように適宜切り替えて使用する。
 このような方式で温度の切り替えを行うと、切り替えに要する移動相の流量を少なくすることができる。例えば、プロセスカラムの温度を約10℃から約40℃に昇温する場合、及び、約40℃から約10℃に降温する場合、カラム体積の2倍以下の流量で、カラム出口の温度を所定の温度に調節することが可能となる。
 本実施形態に係るプレート式熱交換器を備える温度応答性クロマトグラフィーシステムには、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、及び逆相クロマトグラフィー等に用いる担体を用いることができる。特に、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィーに用いる担体を好適に用いることができる。
 本実施の形態は、温度変化により生理活性物質への吸着性能が変化する担体、すなわち、温度応答性クロマトグラフィー担体を用いる場合に好適である。一般的に、温度応答性クロマトグラフィー担体でなくとも、クロマトグラフィー担体は温度により吸着性能が若干変化するため、特に微量分析では厳密な温度管理が必要となる。しかしながら、本実施形態における温度変化により生理活性物質への吸着性能が変化する担体とは、温度変化により生理活性物質への吸着性能が著しく変化するよう改変を行っているクロマトグラフィー担体をさす。例えば、温度応答性クロマトグラフィー担体として、温度変化に伴う立体構造の変化等によって、抗体との親和性が変化する変異プロテインA(温度応答性プロテインA)を用いた温度応答性アフィニティークロマトグラフィー担体や、0~80℃の温度範囲内で水和力が変化する荷電ポリマーを固体表面に被覆した温度応答性イオン交換クロマトグラフィー担体等があげられる。
 温度応答性クロマトグラフィー担体を用いる場合、例えばバインド・アンド・エリュート(Bind and Elute)法により、生理活性物質が精製される。バインド・アンド・エリュート法による、本実施形態に係る液体クロマトグラフィーシステムを使用する生理活性物質の精製方法は、例えば、
 1)移動相を加温用プレート式熱交換器に通して、カラム内を目的温度に上げる工程と、
 2)目的温度で生理活性物質を含む溶液を流し、カラム内の担体に生理活性物質を吸着させる工程と、
 3)移動相の流路を冷却用プレート式熱交換器に切り替える工程と、
 4)冷却用プレート式熱交換器で冷却された移動相をカラムに流してカラムから生理活性物質を回収する工程と、
 を含む。
 あるいは、バインド・アンド・エリュート法による、本実施形態に係る液体クロマトグラフィーシステムを使用する生理活性物質の精製方法は、例えば、
 1)移動相を冷却用プレート式熱交換器に通して、カラム内を目的温度に下げる工程と、
 2)目的温度で生理活性物質を含む溶液を流し、カラム内の担体に生理活性物質を吸着させる工程と、
 3)移動相の流路を加温用プレート式熱交換器に切り替える工程と、
 4)加温用プレート式熱交換器で加温された移動相をカラムに流してカラムから生理活性物質を回収する工程と、
 を含む。
 またあるいは、温度応答性クロマトグラフィー担体を用いる場合、例えばフロー・スルー(Flow Through)法により、生理活性物質が精製される。フロー・スルー法においては、例えば、1つの温度領域でイオン交換クロマトグラフィー担体に目的とする生理活性物質として抗体タンパク質の単量体成分を通過させ、不純物として凝集体成分を吸着させることで、抗体タンパク質の単量体成分のみを実質的に溶出させる。抗体タンパク質の凝集体は、単量体よりも荷電量が多いため、イオン交換樹脂との結合が、単量体よりも強くなる傾向にある。さらに、凝集体は、単量体よりも疎水性が強いため、イオン交換樹脂の疎水性部分と相互作用(疎水性相互作用)し、イオン交換樹脂との結合が強くなる傾向にある。
 担体を充填した容器に不純物と生理活性物質の混合溶液をフロー・スルーするときの設定温度としては、精製目的の生理活性物質の担体に対する吸着性が低く、不純物の担体に対する吸着性が高い温度を選択する。
 フロー・スルー法による、本実施形態に係る液体クロマトグラフィーシステムを使用する生理活性物質の精製方法は、例えば、
 1)プレート式熱交換器を一定の温度に設定する工程と、
 2)プレート式熱交換器で温度制御された移動相を流し、カラム内の温度を一定にする工程と、
 3)生理活性物質と不純物とを含む溶液をカラムに流し、担体に不純物を吸着させ、精製された生理活性物質を回収する工程と、
 を含む。
 液体クロマトグラフィーのカラム体積を変更する際には、線速度が考慮される。ここで、線速度とは、カラムの入り口から出口方向に向けて移動相が単位時間当たりに通過する距離を示し、以下の式により求めることができる。
 線速度(cm/h)= 流速(ml/min) / カラム断面積(cm2)×60
 線速度を一定にすると、カラムの大きさが変わっても、物質のカラム内通過時間が変わらないので、小スケールでの条件検討を、大スケールに移行することが容易になる。一般的に、抗体のような生理活性物質を精製する際には、100cm/h以上300cm/h以下の線速度が好適に用いられている。
 移動相の流速(線速度)は、例えば、クロマトグラフィー装置で制御される。
 医薬品等の製造工程においては、カラム断面積が1000cm2を超えることも珍しくない。カラム断面積が大きい場合、線速度を一定に保つためには、移動相の流速を速める必要がある。そのため、速い流速で通過する移動相の温度を迅速かつ正確に調整可能な手段が望まれる。移動相の流速は、目的の線速度とカラムの大きさに依存するが、50mL/min以上10L/min以下で好適に用いることができる。
 ここで、ループ管式の熱交換器においては、ループ状の配管が恒温槽に浸される。ループ管式の熱交換器において、配管を流れる流体の流速を速くすると、それに伴い配管の長さをより長くしたり、媒体を入れる恒温槽をより大きなものへと交換したりしなければ、温度調整を行うことが困難となる。
 また、抗体のような生理活性物質は熱変性の可能性があるため、大型カラム内において過度に温度上昇する部分が生じることを避けて、より均一な温度分布でカラム内の温度を制御することが好ましい。生理活性物質の熱変性を防ぐには、媒体の温度と、移動相の設定温度との温度差をできるだけ小さくすることが好ましい。例えば、媒体の温度と、移動相の到達目標温度との差を5℃以内に調節することが好ましい。
 このような条件にするためには、ループ管式の熱交換器を用いると、配管の伝熱面積を非常に大きくする必要があるが、製造現場において熱交換器の大きさを非常に大きくすることは現実的に困難である。これに対し、プレート式熱交換器は優れた伝熱性能を有するため、小さい伝熱面積でも、媒体の温度と、移動相の到達目標温度との差を小さい状態にしたまま、大容量の移動相の温度を制御することが可能となる。
 また、ループ管式の熱交換器においては、使用される媒体の比熱が大きくなると、迅速で正確な温度調整を行うことが困難である。これに対し、本実施の形態に係るプレート式熱交換器は優れた伝熱性能を有するため、水系溶媒等の比熱が大きい媒体を用いる場合にも好適に使用できる。
 また、本実施の形態において、プレート式熱交換器の伝面温度は、生理活性物質が変性する温度領域以外に調節することが好ましい。ここで、伝面温度とは、熱の受け渡しを行う面の温度のことであり、プレート式熱交換器が有する伝熱プレートのそれぞれの面の温度のことである。上述したように、プレート式熱交換器においては、媒体と、移動相と、が、伝熱プレートを介して接触することで、熱の受け渡しが行われる。
 この伝面温度を生理活性物質の変性する温度領域以外に設定するには、プレート式熱交換器の媒体の温度を生理活性物質の変性する温度領域以外に設定すればよい。プレート式熱交換器の媒体としては、水やブライン(塩化ナトリウムの飽和に近い水溶液)のような液体や、蒸気のような凝縮する気体が使用可能である。本実施の形態では、伝面温度を生理活性物質の変性しない温度領域に設定するために、媒体として水を使用することが好ましい。
 媒体はヒートブロック等で温度調整する温調機により温度制御され、伝熱プレートに通液される。伝面温度を目的の温度にするためには、移動相の流速(線速度)よりも媒体の流速(温調機からプレート熱交換器への循環速度)が速いことが好ましい。たとえば、媒体の流速を1L/min以上200L/min以下にすることにより、好適に温度制御することができる。
 本実施の形態において、カラムに充填される担体の体積は、例えば1L以上である。1L以上の体積のカラムは、一定の線速度で移動相を流すときの流速の値が大きくなるが、本実施の形態に係るプレート式熱交換器は優れた伝熱性能を有するため、流速の値が大きくなっても、移動相の温度を迅速かつ正確に調整可能である。
 以下に、本実施形態を実施例に基づいて更に詳しく説明するが、これらは本実施形態を何ら限定するものではない。
 [抗体凝集度の評価方法]
 本実施の形態の抗体凝集の評価系として、高速液体クロマトグラフィーのシステムを利用した。すなわち、リザーバタンク(移動相、0.1mol/Lリン酸、0.2mol/Lアルギニン、pH6.7)、送液ポンプ(送液流速0.6ml/min)、サンプルループ(容量20μL)、カラム(室温)、検出器(紫外線、波長280nm)、ドレンの順に接続した高速液体クロマトグラフィーのシステムを用いて目的物をロードした後、検出器から検出された吸光度から、目的物に含有される凝集体の比率を定量した。内径(直径)7.8mm、ベッド高さ300mmの東ソーTSKGELG3000SWXLカラムを用いた。典型的には、溶出時間12分乃至13分に3量体以上の多量体ピーク(ピークA)が検出され、溶出時間14分乃至15分に2量体ピーク(ピークB)が検出され、溶出時間16分付近に単量体ピーク(ピークC)が検出される。これらのピークの面積比から、下記(1)式を用いるプログラムを用いて抗体凝集度を算出した。
抗体凝集度(%)=100×{(ピークAの面積比)+(ピークBの面積比)}・・・(1)
なお、ピークAの面積比及びピークBの面積比は、
(ピークAの面積比)=(ピークAの面積)/{(ピークAの面積)+(ピークBの面積)+(ピークCの面積)}
(ピークBの面積比)=(ピークBの面積)/{(ピークAの面積)+(ピークBの面積)+(ピークCの面積)}
として導出した。
  [温度応答性イオン交換樹脂の作成方法]
 本実施の形態の担体として、温度応答性のイオン交換樹脂を特許文献WO12/081727に記載の方法に準じ、下記のように作成した。
 1)開始剤の固定
 架橋ポリビニルアルコールビーズ1g(粒径100μm)を純水で湿潤させ、300mLのガラス製三角フラスコに入れた。三角フラスコに、テトラヒドラフラン(安定剤不含、関東化学(株)社製)200mL、2-ブロモイソ酪酸ブロミド(東京化成工業(株)製)1.23mL、及びトリエチルアミン(和光純薬工業(株)社製)1.40mLを加え、室温で16時間震とうさせた。反応後、ろ過してから200mLエタノールで3回洗浄し、脱水イソプロパノール中で保存した。これにより、架橋ポリビニルアルコールビーズ表面に原子移動ラジカル重合(ATRP)開始剤である2-ブロモイソ酪酸ブロミドが導入された。
 2)表面グラフト重合
 スルホン酸基の前駆体モノマーであるグリシジルメタクリレート(GMA、東京化成工業(株)製)を、N-イソプロピルアクリルアミドに対して1mol%の割合で含有するモノマー組成物を調整した。具体的には、N-イソプロピルアクリルアミド(IPAAm、和光純薬工業(株)製)18.40g、GMA0.231g、ブチルメタクリレート(BMA、東京化成工業(株)製)1.217g、塩化銅I(CuCl、和光純薬工業(株)製) 0.085g、及び塩化銅II(CuCl2、和光純薬工業(株)製)0.012gを90容量%イソプロパノール(IPA)水溶液42.8mLに溶解させ、30分間、窒素バブリングした。その後、窒素雰囲気下で溶液にトリス(2-ジメチルアミノエチル)アミン(Me6TREN)(Alfa Aesar社製)0.221gを加えて、5分間攪拌しCuCl/CuCl2/Me6TRENの触媒を形成させた。この反応溶液を窒素雰囲気下で開始剤導入架橋ポリビニルアルコールビーズに反応させ、室温で16時間のATRPをおこなった。反応後、エタノール、50mmol/L―EDTA水溶液、純水の順に洗浄し、モノマー、ポリマー、及び銅触媒を洗浄した。
 3)スルホン酸基の導入
 原子移動ラジカル重合法によりグラフト鎖を導入したビーズを、亜硫酸ナトリウムと、IPAと、の混合水溶液(亜硫酸ナトリウム/IPA/純水=10/15/75wt%)200gに投入し、80℃で24時間反応を行い、グラフト鎖中のエポキシ基をスルホン酸基に変換した。反応後、このビーズを純水で洗浄した。その後、このビーズを0.5mol/L硫酸中に投入し、80℃で2時間反応を行うことで、グラフト鎖中に残存していたエポキシ基をジオール基に変換した。反応後、このビーズを純水で洗浄した。
  [抗体溶液]
 本実施例で用いた抗体溶液は、一般的な抗体医薬品の製造工程に準じ、細胞培養工程、細胞分離工程を経て、アフィニティークロマトグラフィー工程、ウイルス除去工程を行ったものである。この溶液の抗体凝集度は3.8%であった。
 (実施例1)
 既存のクロマトコントロールシステム(AKTAprocess)に、図6に示すように弁によって2つに分けた配管を取り付け、一方に加温用のプレート式熱交換器A(AlfaNova 27-80H アルファ・ラバル(株)製 総伝面面積:1.95m2 大きさ:311x112x230mm 重さ12.3kg)、他方に冷却用のプレート式熱交換器B(AlfaNova 27-24H アルファ・ラバル(株)製 総伝面面積:0.55m2 大きさ:311x112x91mm 重さ:4.3kg)を取り付けた。
 加温用のプレート式熱交換器Aには41℃の水、冷却用のプレート式熱交換器Bには7℃の水が媒体として循環するように設置した。
 熱交換器後の配管は、図6のように再び1つの流路となる。この先にアクリル製カラム(P630x500 ミリポア(株)製)を取り付けた。
 カラムには、前述のように作成した温度応答性のイオン交換樹脂を20Lパッキングした。カラム出口の配管は再び既存のクロマトコントロールシステム(AKTAprocess)につながれ、これにより、溶液のUV吸光度、電気伝導度、温度、pH等をモニタリングできるようにした。加温用のプレート式熱交換器Aの方へ移動相が流れるように、流路を設定し、常温(25℃)の15mmol/L酢酸バッファー(pH6.0)を流速8L/min(線速度120cm/h)で流した。
 40L通液したところ、モニタリングしていたカラム出口後の移動相温度が40℃になった。この状態から、抗体を含む溶液を流し、下記のような吸着・洗浄・溶出の操作を行った。
 ビーズを充填したカラムの温度変化操作は、クロマトグラフィーシステムのポンプを一時停止し、弁を切り替えて、溶液が冷却用のプレート式熱交換器Bへ流れるようにした後、再びポンプを稼働して行った。
(吸着ステップ)
・抗体濃度:24mg/L
・吸着バッファー:15mmol/L酢酸バッファー(pH6.0)
・抗体溶液ロード量:240L
・流速:8L/min
・カラム体積:20L
・吸着温度:40℃
(洗浄ステップ)
・洗浄バッファー:15mmol/L酢酸バッファー(pH6.0)
・流速:8L/min
・流量:240L
・洗浄温度:40℃
(温度溶出ステップ)
・溶出バッファー:15mmol/L酢酸バッファー(pH6.0)
・流速:8L/min
・流量:240L
・溶出温度:10℃
(塩溶出ステップ)
・溶出バッファー:1mol/L酢酸バッファー(pH6.0)
・流速:8L/min
・流量:60L
・溶出温度:10℃
 温度溶出後、温度変化では溶出しきれない抗体を、1mol/L酢酸バッファー(pH6.0)で溶出させた。
 図6におけるA地点(プレート式熱交換器で40℃に加温した後の溶液)の抗体溶液をサンプリングし、抗体凝集度を測定した。また、温度溶出ステップ時の溶液についても、抗体凝集度を測定した。結果を表1に示す。
 (比較例1)
 既存のクロマトコントロールシステム(AKTAprocess)に、図7のように弁によって2つに分けた配管を取り付け、一方に加温用の多管式熱交換器A(HTF-125-05(株)ハシテック製 総伝面面積:2.4m2 大きさ:600x140x250mm 重さ30kg)、他方に冷却用の多管式熱交換器B(HTF-125(株)ハシテック製 総伝面面積:4.8m2 大きさ:1100x140x250mm 重さ:41kg)を取り付けた。
 加温用の多管式熱交換器Aには80℃の水、冷却用の多管式熱交換器Bには7℃の水が媒体として循環するように設置した。なお、加温用の多管式熱交換器Aに41℃の水を媒体として循環するように設置したときは、移動相の温度が33℃までしか上昇しなかったため、媒体の設定温度を上記のとおりとした。
 熱交換器後の配管は、図7のように再び1つの流路となる。この先にアクリル製カラム(P630x500 ミリポア(株)製)を取り付けた。カラムには、前述のように作成した温度応答性のイオン交換樹脂を20Lパッキングした。カラム出口の配管は再び既存のクロマトコントロールシステム(AKTAprocess)につながれ、これにより、溶液のUV吸光度、電気伝導度、温度、pH等をモニタリングできるようにした。加温の多管式熱交換器の方へ移動相が流れるように、流路を設定し、常温(25℃)の15mmol/L酢酸バッファー(pH6.0)を流速8L/min(線速度120cm/h)で流した。
 40L通液したところ、モニタリングしていたカラム出口後の移動相温度が40℃になった。この状態から、抗体を含む溶液を流し、下記のような吸着・洗浄・溶出の操作を行った。
 ビーズを充填したカラムの温度変化操作は、クロマトグラフィーシステムのポンプを一時停止し、弁を切り替えて、流路を冷却用多管式熱交換器へ流れるようにした後、再びポンプを稼働して行った。
 (吸着ステップ)
・抗体濃度:24mg/L
・吸着バッファー:15mmol/L酢酸バッファー(pH6.0)
・抗体溶液ロード量:240L
・流速:8L/min
・カラム体積:20L
・吸着温度:40℃
(洗浄ステップ)
・洗浄バッファー:15mmol/L酢酸バッファー(pH6.0)
・流速:8L/min
・流量:240L
・洗浄温度:40℃
(温度溶出ステップ)
・溶出バッファー:15mmol/L酢酸バッファー(pH6.0)
・流速:8L/min
・流量:240L
・溶出温度:10℃
(塩溶出ステップ)
・溶出バッファー:1mol/L酢酸バッファー(pH6.0)
・流速:8L/min
・流量:60L
・溶出温度:10℃
 温度溶出後、温度変化では溶出しきれない抗体を、1mol/L酢酸バッファー(pH6.0)で溶出させた。
 図7におけるA地点(多管式熱交換器で40℃に加温した後の溶液)の抗体溶液をサンプリングし、抗体凝集度を測定した。また、温度溶出ステップ時の溶液について、抗体凝集度を測定した。尚、A地点の溶液には白濁がみられた。結果を表1に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 比較例1ではA地点で抗体凝集度が大きく上がった。これは多管式熱交換器の媒体温度が高く(80℃)内部に温度勾配があり、部分的に抗体の熱変性温度に達したことにより、多量体及び2量体の割合が増えたと考えられる。また、これ以上伝熱面積の大きい多管式熱交換器を用いることは、大きさ・重量の面からクロマトグラフィーシステム(AKTAprocess)との接続が困難である。

Claims (20)

  1.  生理活性物質の精製工程に使用される液体クロマトグラフィーシステムであって、
     温度変化によって前記生理活性物質を吸着する性能が変化する温度応答性クロマトグラフィー担体を含有するカラムと、
     前記カラムに接続され、移動相が流されるプロセス配管と、
     前記プロセス配管に設けられ、前記移動相の温度を制御するプレート式熱交換器と、
     を備える、液体クロマトグラフィーシステム。
  2.  前記プレート式熱交換器が、前記プロセス配管から着脱可能である、請求項1に記載の液体クロマトグラフィーシステム。
  3.  前記カラム上流の前記プロセス配管に、前記プレート式熱交換器が設けられている、請求項1又は2に記載の液体クロマトグラフィーシステム。
  4.  前記プロセス配管に、前記プレート式熱交換器が2個以上設けられている、請求項1~3のいずれか1項に記載の液体クロマトグラフィーシステム。
  5.  前記プロセス配管に、前記プレート式熱交換器が、2個以上、並列に設けられている、請求項1~4のいずれか1項に記載の液体クロマトグラフィーシステム。
  6.  前記2個以上のプレート式熱交換器の少なくとも1つが前記移動相を加温する加温用プレート式熱交換器であり、前記2個以上のプレート式熱交換器の少なくとも1つが前記移動相を冷却する冷却用プレート式熱交換器である、請求項4又は5に記載の液体クロマトグラフィーシステム。
  7.  前記担体の形状が、ビーズ、平膜、中空糸膜のいずれかである、請求項1~6のいずれか1項に記載の液体クロマトグラフィーシステム。
  8.  前記カラムに充填される担体の体積が1L以上である、請求項1~7のいずれか1項に記載の液体クロマトグラフィーシステム。
  9.  前記生理活性物質が抗体である、請求項1~8のいずれか1項に記載の液体クロマトグラフィーシステム。
  10.  前記担体が、温度応答性アフィニティークロマトグラフィー担体である、請求項1~9のいずれか1項に記載の液体クロマトグラフィーシステム。
  11.  前記担体が、温度応答性イオン交換クロマトグラフィー担体である、請求項1~9のいずれか1項に記載の液体クロマトグラフィーシステム。
  12.  請求項1~11のいずれか1項に記載の液体クロマトグラフィーシステムを用いた生理活性物質の精製方法であって、前記プレート式熱交換器の伝面温度を、前記生理活性物質の変性する温度領域以外に設定することを含む、生理活性物質の精製方法。
  13.  前記プレート式熱交換器の熱媒又は冷媒として水系溶媒を用いる、請求項12に記載の生理活性物質の精製方法。
  14.  前記カラム内を通過する前記移動相の線速度が100cm/h以上300cm/h以下である、請求項12又は13に記載の生理活性物質の精製方法。
  15.  前記移動相の流速が50mL/min以上10L/min以下である、請求項12~14のいずれか1項に記載の生理活性物質の精製方法。
  16.  前記プレート式熱交換器の媒体の流速が1L/min以上200L/min以下である、請求項12~15のいずれか1項に記載の生理活性物質の精製方法。
  17.  前記移動相の目的温度と前記プレート式熱交換器の媒体の温度の差が5℃以内である、請求項12~16に記載の生理活性物質の精製方法。
  18.  請求項6に記載の液体クロマトグラフィーシステムを使用する生理活性物質の精製方法であって、
     1)前記移動相を前記加温用プレート式熱交換器に通して、前記カラム内を目的温度に上げる工程と、
     2)前記目的温度で前記生理活性物質を含む溶液を流し、前記カラム内の担体に前記生理活性物質を吸着させる工程と、
     3)前記移動相の流路を前記冷却用プレート式熱交換器に切り替える工程と、
     4)前記冷却用プレート式熱交換器で冷却された移動相を前記カラムに流して前記カラムから前記生理活性物質を回収する工程と、
     を含む、方法。
  19.  請求項6に記載の液体クロマトグラフィーシステムを使用する生理活性物質の精製方法であって、
     1)前記移動相を前記冷却用プレート式熱交換器に通して、前記カラム内を目的温度に下げる工程と、
     2)前記目的温度で前記生理活性物質を含む溶液を流し、前記カラム内の担体に前記生理活性物質を吸着させる工程と、
     3)前記移動相の流路を前記加温用プレート式熱交換器に切り替える工程と、
     4)前記加温用プレート式熱交換器で加温された移動相を前記カラムに流して前記カラムから前記生理活性物質を回収する工程と、
     を含む、方法。
  20.  請求項1~11のいずれか1項に記載の液体クロマトグラフィーシステムを使用する生理活性物質の精製方法であって、
     1)前記プレート式熱交換器を一定の温度に設定する工程と、
     2)前記プレート式熱交換器で温度制御された移動相を流し、前記カラム内の温度を一定にする工程と、
     3)前記生理活性物質と不純物とを含む溶液を前記カラムに流し、前記担体に前記不純物を吸着させ、精製された前記生理活性物質を回収する工程と、
     を含む、方法。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014171437A1 (ja) * 2013-04-16 2014-10-23 旭化成メディカル株式会社 抗体タンパク質の精製方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012081727A1 (ja) * 2010-12-17 2012-06-21 旭化成メディカル株式会社 強カチオン交換基を有する温度応答性吸着剤、及びその製造方法
WO2012121409A1 (ja) * 2011-03-10 2012-09-13 旭化成メディカル株式会社 温度応答性クロマトグラフィー担体による生理活性物質の精製方法

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012081727A1 (ja) * 2010-12-17 2012-06-21 旭化成メディカル株式会社 強カチオン交換基を有する温度応答性吸着剤、及びその製造方法
WO2012121409A1 (ja) * 2011-03-10 2012-09-13 旭化成メディカル株式会社 温度応答性クロマトグラフィー担体による生理活性物質の精製方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"Economical plate heat exchanger system", CHEM. ENG. WORLD, vol. 41, no. 7, 2006, pages 57 - 58 *
TOMOKAZU MATSUOKA: "Plate-shiki Netsu Kokanki Tekiyo Han'i to Kokateki na Tekiyo Jirei", PIPING AND PROCESS MACHINERY, vol. 23, no. 12, 1983, pages 18 - 28 *
YASUHIKO MATSUNAGA: "Netsu Kokanki (Plate-gata) <Plate-shiki Netsu Kokanki no Genri to Kozo>", KENSETSU SETSUBI TO HAIKAN KOJI, vol. 42, no. 7, 2004, pages 57 - 59 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014171437A1 (ja) * 2013-04-16 2014-10-23 旭化成メディカル株式会社 抗体タンパク質の精製方法
US10400007B2 (en) 2013-04-16 2019-09-03 Asahi Kasei Medical Co., Ltd. Method for purifying antibody protein

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