WO2014020215A1 - Procedimiento para la obtención a gran escala de inoculo miceliar de ascomicetos. - Google Patents
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Definitions
- the present invention belongs to the technical field of Agrobiotechnology, and in particular to the large-scale production of mycelium in pure culture of higher fungal species of the Ascomycetes division. Background
- the present invention provides a method for obtaining in vitro fungal mycelium in pure, isolated culture, both from the fruiting bodies of fungal species of interest, and from root sections of mycorrhizal plants with said fungal species.
- the invention is an addition to the Invention Patent P200930246 for "Procedure for the Large-Scale Obtaining of Mycelial Inocula of Basidiomycetes", which comprises the steps: isolation of the fungal mycelium from Ascomycete fungal species, preferably from the genus Tuber, Terfezia, or Morchella and more preferably from fruiting bodies of fungi; inoculation of the mycelium isolated in the previous stage in a solid modified oats culture medium (MOM); mycelium purification in solid modified oatmeal culture medium (MOM); development of the purified mycelium in the previous stage in a modified Biotin-Aneurin-Folic Acid (BAF) culture medium and obtaining the purified fungal mycelium.
- MOM solid modified oats culture medium
- MOM mycelium purification in solid modified oatmeal culture medium
- BAF Biotin-Aneurin-Folic Acid
- said fungus of the genus Tuber is Tuber melanosporum
- said fungus of the genus Terfezia is Terfezia arenaria.
- said modified BAF liquid medium has a pH of 6.5.
- the results of the examples show an extraordinary development and a large amount of mycelium obtained. After 5 days of culture, a growth of 1: 103 of the mycelium in pure culture was obtained, already ready for the inoculation of the plants to be mycorrhized.
- the figures show two different perspectives of the system used for purification of the fungal mycelium.
- Figure 1 corresponds to a Petri dish of a diameter of 9 cm (1) at the bottom of which a plate (2) of 5 cm in diameter is placed centrally, shown in broken lines.
- a plate (2) of 5 cm in diameter is placed centrally, shown in broken lines.
- Figure 2 shows the central space (4) that remains when, once the medium has cooled, the interposed plate is removed.
- said central empty space is where the mycelium inoculum is located, which develops until reaching the peripheral section (3) where the means for purification is found, thus freeing from the possible presence of bacteria, which are retained in the section central plates, unable to develop due to lack of nutrients.
- Example 1 Preparation of the mycelial inoculum of Tuber melanosporum, Terfezia arenaria and Morchella esculenta.
- Petri dishes had previously been added modified solid oatmeal culture medium (MOM) with a composition / liter of medium of 0.5 g of Ca (N0 3 ) 2 4H 2 0; 0.2 g of PO4KH2; 0.1 g of S0 4 Mg 7H 2 0; 0.1 g of KCI; 5.0 g sucrose; 3.5 g of oatmeal powder; 0.1 g of yeast extract and 8.0 g of agar. Inoculated plates were maintained in chamber 20 and C until the mycelium developed coming to occupy the entire surface of the plate.
- MOM modified solid oatmeal culture medium
- the mycelium obtained in both cases was subjected to a purification process in order to eliminate the possibility of bacterial contamination, using 9 cm diameter Petri dishes in which the MOM culture medium as described above is arranged only in a peripheral circular section of 2 cm (5 cm diameter plates inserted into the 9 cm Petri dishes). In the central part of these plates, 1 x 1 cm sections of the solid MOM growth medium containing the fungal mycelium were placed. These plates were kept in chamber at 20 e C until the mycelium was developed occupying the entire surface of the plate.
- Example 2 Culture of mycelial inoculum
- Example 4 Obtaining mycelium of Terfezia arenaria in pure culture
- Example 5 Obtaining mycelium of Morchella esculenta in pure culture
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Description
Procedimiento para la obtención a gran escala de inoculo miceliar de Ascomicetos.
DESCRIPCIÓN
Campo Técnico de la Invención
La presente invención pertenece al campo técnico de la Agrobiotecnología, y en concreto a la producción a gran escala de micelio en cultivo puro de especies de hongos superiores de la división Ascomicetos. Antecedentes
Hasta el momento no hay referencias acerca de la producción a gran escala de inoculo micelial de especies fúngicas pertenecientes a la división Ascomicetos; muchas de ellas sin embargo de gran importancia por ser las especies más demandadas y que alcanzan los precios más elevados en el mercado.
Existía gran interés en encontrar un procedimiento sencillo, rápido y económico de obtención de micelio en cultivo puro de las citadas especies, para su utilización en la micorrización de plantas, con certificación de origen, destinadas a la producción en vivero o plantación, así como a la recuperación de la producción micológica en zonas naturales.
Así pues, la presente solicitud de Patente de Adición pretende solventar la ausencia de la patente parental de esta otra gran división de los hongos superiores, ya que, Ascomicetos y Basidiomicetos son las dos divisiones de hongos superiores pertenecientes al subreino Neomycota del reino Fungí.
En principio, las divisiones de hongos a los que se podría aplicar un procedimiento para la obtención a gran escala de inoculo miceliar similar al recogido por la patente de invención P200930246 para los Basidiomicetos tendrían que presentar una organización miceliar similar, circunstancia que se cumple en la familia de los Ascomicetos, aunque sin los estudios experimentales este hecho no constituiría a priori una garantía de éxito.
Descripción
La presente invención proporciona un procedimiento para la obtención in vitro de micelio fúngico en cultivo puro, aislado, tanto de los cuerpos fructíferos de especies fúngicas de interés, como de secciones de raicillas de plantas micorrizadas con dichas especies fúngicas.
La invención es una adición a la Patente de Invención P200930246 por "Procedimiento para la Obtención a Gran Escala de Inoculo Miceliar de Basidiomicetos", que comprende las etapas: aislamiento del micelio fúngico de especies de hongos Ascomicetos, preferiblemente de los géneros Tuber, Terfezia, o Morchella y más preferiblemente a partir de cuerpos fructíferos de los hongos; inoculación del micelio aislado en la etapa anterior en un medio de cultivo sólido de avena modificado (MOM); purificación del micelio en medio de cultivo sólido de avena modificado (MOM); desarrollo del micelio purificado en la etapa anterior en un medio de cultivo Biotina- Aneurina-Ácido Fólico (BAF) modificado y obtención del micelio fúngico purificado.
En una realización preferible de la invención, dicho hongo del género Tuber es Tuber melanosporum, y en otra realización preferible dicho hongo del género Terfezia es Terfezia arenaria. En una realización preferible más de la invención dicho medio líquido BAF modificado presenta un pH de 6,5.
Los resultados de los ejemplos muestran un extraordinario desarrollo y una gran cantidad de micelio obtenido. A los 5 días de cultivo se obtuvo por término medio un crecimiento de 1 :103 del micelio en cultivo puro, ya dispuesto para la inoculación de las plantas a micorrizar.
Descripción de las figuras
Las figuras muestran dos perspectivas diferentes del sistema utilizado para la purificación del micelio fúngico.
La figura 1 corresponde a una placa de Petri de un diámetro de 9 cm (1 ) en cuyo fondo se coloca de forma centrada una placa (2) de 5 cm de diámetro, que se muestra con trazo discontinuo. Como resultado de esta configuración entre ambas placas se
espacio circular de 2 cm de ancho (3) en el que se deposita el medio de cultivo
La figura 2 muestra el espacio central (4) que queda cuando, una vez enfriado el medio, se retira la placa interpuesta. En dicho espacio vacío central es donde se sitúa el inoculo del micelio, que se desarrolla hasta alcanzar la sección periférica (3) donde se encuentra el medio para la purificación, liberándose así de la posible presencia de bacterias, las cuales quedan retenidas en la sección central de las placas, al no poder desarrollarse por ausencia de nutrientes.
Ejemplos
Con la intención de mostrar la presente invención de un modo ilustrativo aunque en ningún modo limitante, se aportan los siguientes ejemplos. Ejemplo 1 : Preparación del inoculo miceliar de Tuber melanosporum, Terfezia arenaria y Morchella esculenta.
Se aislaron en cámara de flujo laminar pequeñas secciones de la parte más interna del himenio del píleo de carpóforos maduros de cada especie por separado, a los que se les había eliminado previamente la pellis. Seguidamente, se inocularon dichas secciones en condiciones de máxima asepsia en cámara de flujo laminar en placas Petri de plástico de 5 cm de diámetro, previamente esterilizadas en autoclave. A estas placas Petri se les había adicionado con anterioridad medio de cultivo sólido de avena modificado (MOM) con composición/litro de medio de 0,5 g de Ca(N03)2 4H20; 0,2 g de PO4KH2 ; 0,1 g de S04Mg 7H20; 0,1 g de KCI; 5,0 g de sacarosa; 3,5 g de avena en polvo; 0,1 g de extracto de levadura y 8,0 g de agar. Las placas inoculadas se mantuvieron en cámara a 20eC hasta que el micelio se desarrolló llegando a ocupar toda la superficie de la placa. Posteriormente, el micelio obtenido en ambos casos se sometió a un proceso de purificación con objeto de eliminar la posibilidad de existencia de contaminación bacteriana, utilizando para ello placas Petri de 9 cm de diámetro en las que el medio de cultivo MOM tal cual anteriormente descrito se dispuso solamente en una sección circular periférica de 2 cm (placas de 5 cm de diámetro introducidas dentro de las placas Petri de 9 cm). En la parte central de estas placas se colocaron secciones de 1 x1 cm del medio sólido de crecimiento MOM conteniendo el micelio fúngico. Estas placas se mantuvieron en cámara a 20eC hasta que el micelio se desarrolló ocupando toda la superficie de la placa.
Ejemplo 2: Cultivo del inoculo miceliar
Una vez purificado el micelio de cada especie según el Ejemplo 1 se transfirió una pequeña porción para su desarrollo a gran escala a medio de cultivo líquido BAF modificado. En todos los experimentos se partió de un inoculo micelial de tamaño similar con un peso medio de unos 10 mg, que se incubó en matraces erlenmeyer conteniendo medio de cultivo líquido BAF modificado con una composición/litro de medio: 0,1 g de CI2Ca; 0,5 g de P04KH2; 0,5 g de S04Mg 7H20; 0,005 g de S04Mn; 0,001 g de S04Zn; 0,01 g de CI3Fe 7H20; 2,0 g de peptona; 0,0005 g de tiamina; 0,00001 g de biotina; 0,05 g de inositol; 0,0001 g de ácido fólico; 5,0-20,0 g de glucosa, y 0,2 g de extracto de levadura; el cultivo se mantuvo bajo condiciones controladas: 25 eC, oscuridad, pH 6,5 y agitación constante a 120 rpm durante todos los días del cultivo ininterrumpidamente. Ejemplo 3: Obtención de micelio de Tuber melanosporum en cultivo puro
Los resultados del crecimiento miceliar en medio nutritivo líquido BAF de la especie Tuber melanosporum durante catorce días sin nuevos aportes de medio nutritivo, se muestran en la tabla I. El crecimiento se mantiene hasta el día 14 en que, a causa del agotamiento de los nutrientes del medio de cultivo, se observa un cierto descenso del mismo, que evidencia el inicio de procesos de lisis celular. Por ello, después de estos 14 días se requirió un nuevo aporte de medio nutritivo para la reanudación del crecimiento del micelio.
Tabla I
De estos datos se deduce que a los cinco días el crecimiento del micelio en cultivo puro fue de 1 :103, lo que se corresponde con una producción a gran escala.
Ejemplo 4: Obtención de micelio de Terfezia arenaria en cultivo puro
El crecimiento miceliar en medio nutritivo líquido BAF de la especie Terfezia arenaria durante catorce días sin nuevos aportes de medio nutritivo, se muestra en la tabla II.
En este ejemplo también se mantiene el crecimiento constante hasta el día 14 en que se observa un cierto descenso del mismo, que evidencia el inicio de los procesos de lisis celular. A partir de los 14 días se requirió un nuevo aporte de medio nutritivo para la reanudación del crecimiento del micelio.
Tabla II
Al igual que en la especie anterior, de los datos expuestos en la tabla se deduce que a los cinco días el crecimiento fue de 1 :7x102, lo que indica también un extraordinario desarrollo, si bien, un poco menor que en el ejemplo anterior.
Ejemplo 5: Obtención de micelio de Morchella esculenta en cultivo puro
El crecimiento miceliar en medio nutritivo líquido BAF de la especie Morchella esculenta. El crecimiento se mantiene, asimismo, hasta el día 14 en que se observa un cierto descenso del mismo, que evidencia el inicio de procesos de lisis celular. Después de estos 14 días se requirió, igualmente, un nuevo aporte de medio nutritivo para la reanudación del crecimiento del micelio.
Tabla III
De los datos expuestos en la tabla se deduce que a los cinco días el crecimiento fue de 1 :103, lo que se corresponde igualmente con una producción a gran escala similar a la del Ejemplo 3.
Claims
REIVINDICACIONES
Adición a la Patente de Invención P200930246 por "Procedimiento para la Obtención a Gran Escala de Inoculo Miceliar de Basidiomicetos", que comprende las etapas:
a) aislamiento del micelio fúngico de especies de hongos ascomicetos, b) inoculación del micelio aislado en la etapa a) en un medio de cultivo sólido de avena modificado (MOM),
c) purificación del micelio en medio de cultivo sólido de avena modificado (MOM),
d) desarrollo del micelio purificado en la etapa c) en un medio de cultivo Biotina-Aneurina-Ácido Fólico (BAF) modificado, y
e) obtención del micelio fúngico purificado.
Adición a la Patente de Invención P200930246 según la reivindicación 1 , caracterizada por que dicho aislamiento del micelio fúngico de la etapa a) se realiza a partir de cuerpos fructíferos de hongos.
Adición a la Patente de Invención P200930246 según la reivindicación 2, caracterizado por que el hongo de ascomicetos a partir del cual se obtiene el micelio es de los géneros Tuber, Terfezia, o Morchella.
Adición a la Patente de Invención P200930246 según la reivindicación 3, caracterizado por que dicho hongo del género Tuber es Tuber melanosporum. Adición a la Patente de Invención P200930246 según la reivindicación 3, caracterizado por que dicho hongo del género Terfezia es Terfezia arenaria. Adición a la Patente de Invención P200930246 según la reivindicación 1 , caracterizado por que dicho medio líquido BAF modificado de la etapa d) presenta un pH de 6,5.
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