WO2013131205A1 - 植物气孔调控相关蛋白gabr1及其编码基因与应用 - Google Patents

植物气孔调控相关蛋白gabr1及其编码基因与应用 Download PDF

Info

Publication number
WO2013131205A1
WO2013131205A1 PCT/CN2012/000287 CN2012000287W WO2013131205A1 WO 2013131205 A1 WO2013131205 A1 WO 2013131205A1 CN 2012000287 W CN2012000287 W CN 2012000287W WO 2013131205 A1 WO2013131205 A1 WO 2013131205A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
plant
sequence
gene
protein
dna
Prior art date
Application number
PCT/CN2012/000287
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
巩志忠
洪旭晖
华德平
任小峙
廖辉
陈智忠
Original Assignee
中国农业大学
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 中国农业大学 filed Critical 中国农业大学
Priority to PCT/CN2012/000287 priority Critical patent/WO2013131205A1/zh
Publication of WO2013131205A1 publication Critical patent/WO2013131205A1/zh

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/415—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from plants
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8241—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
    • C12N15/8261—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
    • C12N15/8271—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for stress resistance, e.g. heavy metal resistance
    • C12N15/8273—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for stress resistance, e.g. heavy metal resistance for drought, cold, salt resistance

Definitions

  • the invention belongs to the field of bioengineering and relates to a protein associated with stomatal regulation of plants GABR1 and its coding gene and application, in particular to the stomatal regulation related protein GABR1 derived from Arabidopsis thaliana and its coding gene and application.
  • Drought is the main obstacle to limit the growth and development of plants. With economic development, population expansion and destruction of biological populations, water shortages are becoming more and more serious. It has seriously affected agricultural production and ecological environment and has become a global concern. It is of great significance that plants, especially crops, regulate the way of stomatal movement, control the efficiency of water use, and improve the drought resistance of crops. In the later stages of crop maturation, it is also necessary to accelerate the loss of water by regulating stomatal movement. To improve the regulation of stomatal motility in crops, in addition to the use of traditional breeding methods, the application of genetic engineering breeding has become one of the areas of concern for scientists and technicians.
  • Arabidopsis thaliana is a typical model plant widely used in plant genetics, developmental biology and molecular biology. Most of the Arabidopsis genes can be found in other plants, and any discovery about Arabidopsis can be applied to other plant (crop) studies. Therefore, the study of the molecular mechanism of stomatal regulation of Arabidopsis will greatly help to find ways to improve the stomatal mobility of crops and increase yield.
  • Arabidopsis has a total of about 130 million base pairs and 2,900 genes. The function of many genes is still unclear, and the use of mutation technology to study gene function has become an effective method. Through the study of mutants, we have learned some genes related to drought regulation, such as DREB, CBF, and ABRE.
  • the plant stomatal regulation-related protein provided by the present invention is derived from the genus ⁇ Arabidopsis thaliana) and is a protein of the following (a) or (b):
  • Sequence 1 in the sequence listing consists of 1037 amino acid residues.
  • a label as shown in Table 1 may be attached to the amino terminus or carboxy terminus of a protein consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 in the Sequence Listing.
  • the GABR1 in the above (b) can be artificially synthesized, or the coding gene can be synthesized first, and then biologically expressed.
  • the coding gene for GABR1 in the above (b) can be obtained by deleting the codon of one or several amino acid residues in the DNA sequence shown in the sequence 2 from the 5' to the 1st to the 3114th base in the sequence listing, and/or A missense mutation of one or several base pairs is performed, and/or a coding sequence of the tag shown in Table 1 is ligated at its 5' end and/or 3' end.
  • the coding gene iGABRD of the above plant stomatal regulation-related protein is also within the scope of protection of the present invention.
  • the gene encoding the protein is a DNA molecule as follows 1) or 2) or 3) or 4) or 5) or 6) or 7):
  • its coding sequence is the DNA molecule of sequence 2 from nucleotides 1 to 3114 of the 5'end; 2) the DNA molecule shown in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing;
  • Sequence 2 in the sequence listing consists of 3356 deoxyribonucleotides, and the deoxyribonucleotides from positions 1 to 3114 at the 5' end are GABR1 open reading frames (ORFs).
  • Expression cassettes containing the /T ⁇ gene, recombinant expression vectors, transgenic cell lines, and recombinant strains are all within the scope of the present invention.
  • a recombinant expression vector containing the gene can be constructed using an existing plant expression vector.
  • the plant expression vector includes a dual Agrobacterium vector and a vector which can be used for plant microprojectile bombardment and the like.
  • the plant expression vector may further comprise a 3' untranslated region of the foreign gene, i.e., comprising a polyadenylation signal and any other fragment of the gene involved in mRNA processing or gene expression.
  • the polyadenylation signal can direct polyadenylation to the 3' end of the mRNA precursor, such as Agrobacterium tumefaciens-induced (Ti) plasmid genes (such as the rouge synthase Nos gene), plant genes (such as soybean storage).
  • Ti Agrobacterium tumefaciens-induced
  • the untranslated region of the 3'-end transcription of the protein gene has a similar function.
  • any of the enhanced promoters or constitutive promoters or inducible promoters such as the cauliflower mosaic virus (CAMV) 35S promoter, may be added before the transcription initiation nucleotide.
  • Maize ubiquitin promoters Ubiquitin
  • enhancers including translation enhancers or transcription enhancers, can also be used. These enhancer regions may be ATG start codons or contiguous region start codons, etc., but must be identical to the reading frame of the coding sequence to ensure proper translation of the entire sequence.
  • the translation control signal and the starting password The source of the sub is broad, either natural or synthetic.
  • the translation initiation region can be from a transcription initiation region or a structural gene.
  • the plant expression vector used can be processed, such as a gene encoding a color-changing enzyme or a luminescent compound (GUS gene, luciferase) which can be expressed in plants.
  • GUS gene luminescent compound
  • Genes, etc. resistant antibiotic markers (gentamicin markers, kanamycin markers, etc.) or anti-chemical marker genes (such as anti-tuberculosis genes). From the safety of transgenic plants, the transformed plants can be screened directly at the seedling stage leaf dehydration level without any selectable marker genes.
  • the recombinant expression vector may be a recombinant plasmid obtained by inserting the gene into a multiple cloning site of pCAMBIA1300.
  • the recombinant expression vector may specifically be a recombinant plasmid obtained by substituting a small fragment between the BamH I and Sal I sites of pCAMBIA1300 into the gene.
  • the primer pair may specifically be a primer pair consisting of the nucleotide shown in SEQ ID NO: 3 of the Sequence Listing and the nucleotide shown in SEQ ID NO: 4 of the Sequence Listing.
  • the protein, the gene, the expression cassette, the recombinant expression vector, the transgenic cell line, and the recombinant strain can be applied to the cultivation of a transgenic plant.
  • the transgenic plant may be a transgenic plant having improved drought tolerance and/or increased resistance to abscisic acid and/or improved stomatal regulation compared to the starting plant.
  • Another object of the present invention is to provide a method of cultivating a stress-tolerant plant.
  • the method for cultivating a stress-tolerant plant provided by the present invention is to introduce the gene into a plant to obtain a stress-tolerant plant.
  • the recombinant expression vector containing the gene can be introduced into a plant to obtain a stress-tolerant plant.
  • the stress-tolerant plant may specifically be a plant that is drought tolerant and/or resistant to abscisic acid.
  • the transgenic plant having enhanced tolerance to abiotic stress such as drought and abscisic acid can be obtained by introducing the gene encoding GABR1 provided by the present invention into a plant using any vector capable of guiding expression of a foreign gene in a plant.
  • An expression vector carrying a coding gene can be transformed into a plant cell or tissue by using conventional biological methods such as Ti plasmid, Ri plasmid, plant viral vector, direct DNA transformation, microinjection, conductance, Agrobacterium-mediated transformation, and transformed plants. The tissue is grown into plants.
  • the transformed plant host can be either a monocot or a dicot, such as: Soybeans, Arabidopsis (such as Colombian ecotype Arabidopsis), rice, wheat, corn, cucumber, tomato, poplar, turfgrass, oysters, etc.
  • Soybeans such as Colombian ecotype Arabidopsis
  • Arabidopsis such as Colombian ecotype Arabidopsis
  • rice wheat, corn, cucumber, tomato, poplar, turfgrass, oysters, etc.
  • the present invention also contemplates a method of cultivating a drought-sensitive and/or abscisic acid-sensitive plant by inactivating the gene in a plant of interest containing the gene to obtain drought sensitivity and/or compared to the plant of interest. Abscisic acid-sensitive plants.
  • the inactivation can be achieved by introducing small interfering RNA of the gene into the plant of interest.
  • the inactivation can be achieved by inserting the T-DNA into the gene of the plant of interest.
  • the inactivation can be achieved by introducing the recombinant plasmid B into the plant of interest; the recombinant plasmid B is inserted into the DNA shown in SEQ ID NO: 5 of the sequence listing between the Spel and Ascl cleavage sites of PFGC1008, BamH A recombinant plasmid obtained by reverse-inserting the DNA shown in SEQ ID NO: 5 of the sequence listing between the I and Swa I cleavage sites.
  • the present invention also protects the DNA fragment shown by SEQ ID NO: 5 or its complementary sequence of the Sequence Listing, which is the coding sequence of the small interfering RNA of the gene.
  • a recombinant expression vector containing the sequence shown in SEQ ID NO: 5 of the Sequence Listing is also within the scope of protection of the present invention.
  • the recombinant expression vector may specifically be: a forward insertion sequence between the Spel and Ascl restriction sites of PFGC1008, and a reverse insertion sequence between the BamH I and Swa I cleavage sites.
  • the recombinant plasmid obtained by the DNA shown in Sequence 5.
  • the plant of interest may specifically be Arabidopsis thaliana, such as the Colombian ecotype Arabidopsis thaliana (Col-0).
  • Arabidopsis thaliana such as the Colombian ecotype Arabidopsis thaliana (Col-0).
  • Col-0 Colombian ecotype Arabidopsis thaliana
  • Figure 1 shows the results of restriction enzyme digestion of the recombinant plasmid; M: molecular marker 15000; 1: recombinant plasmid.
  • Figure 2 shows the results of PCR identification of recombinant Agrobacterium; 1-3: positive colonies; 4: Agrobacterium GV1300 (negative control); 5: pCAMBIA1300- ⁇ 7?7 (positive control); M: molecular marker Figure 3 is resistant The phenotype of the plants in the drought stress experiment.
  • Figure 4 shows the stomatal aperture data of plants in the ABA tolerance test.
  • Figure 5 shows the stomatal morphology of plants in the ABA tolerance test.
  • the primers were designed as follows before the start codon ATG and after the stop codon:
  • Primer 1 5' - ATGGGGCAAC TTCCATCACA GG-3';
  • Primer 2 5' CTAAATAGAA GAAAGATCTT CGTAAATGGT CTTAATACC -3, , ⁇ Extract 100-200mg of Colombian ecotype Arabidopsis thaliana (Col-0) seedlings, extract total RNA from roots (or stems) with Trizol, 1% agarose Gel electrophoresis detects the integrity of the RNA.
  • the single-stranded (ss) cDNA was synthesized by the method of SuperscriptTM II RNase H- Reverse Transcriptase using a kit (Transscript First-Strand cDNA Synthesis SuperMix, catalog number: AT301). The synthesized single-stranded cDNA was diluted 10-fold as a template for the PCR reaction.
  • the PCR reaction system (20 ⁇ 1) contains: 10X PCR buffer 2 ⁇ 1, 2.5mM dNTP (dATP, dGTP, dCTP, dTTP) mixture 1.6 ⁇ 1, 5 ⁇ primer 1 and primer 2 each. ⁇ , Taq enzyme (15 ⁇ / ⁇ 1) 0 . ⁇ .
  • the fragment of interest was ligated to the T-vector (pMD18-T, catalog number D101A, purchased from Bio-Engineering (Dalian) Co., Ltd., BP: TaRaKa) for sequencing.
  • pMD18-T catalog number D101A, purchased from Bio-Engineering (Dalian) Co., Ltd., BP: TaRaKa
  • BP Bio-Engineering (Dalian) Co., Ltd., BP: TaRaKa
  • the DNA fragment shown in SEQ ID NO: 2 encodes the protein shown in SEQ ID NO: 1, and the protein shown in SEQ ID NO: 1 is named GABR1.
  • the coding gene for GABR1 was named GABR1.
  • Example 2 Acquisition of fc ⁇ T ⁇ gene overexpressing plants I. Construction of plant expression vector
  • the plant expression vector pCAMBIA1300 (Beijing Quanjin Biotechnology Co., Ltd., catalogue number: VT200) was digested with restriction endonuclease BamH I and Sal I, and the target fragment (vector backbone) was recovered.
  • the sequencing results showed that the recombinant plasmid pCAMBIA 1300- ⁇ 4 ⁇ was obtained (the backbone vector was pCAMBIA1300, and the sequence of sequence 2 was inserted between BamH I and Sal restriction sites from 5 ' a DNA molecule represented by nucleotides 1 to 3114 at the end).
  • the pCAMBIA1300-fc4U was transformed into Agrobacterium GV3101 (Beijing Quanjin Biotechnology Co., Ltd.; catalog number: AG108) to obtain recombinant Agrobacterium.
  • the results of PCR identification of recombinant Agrobacterium were shown in Figure 2.
  • Example 3 Gene inactivation (knockout) Plant acquisition
  • the recombinant plasmid B is the target plasmid, and the hairpin structure for the gene can be obtained by transcription.
  • Recombinant plasmid B was transformed into Agrobacterium GV3101 to obtain recombinant Agrobacterium, using flower bud infection technique Transformation of the Colombian ecotype Arabidopsis thaliana (Col-0). Positive plants were screened on hygromycin medium, and antibiotic-positive plants were identified by PCR to obtain gene knockout plants (T. generation plants).
  • Agrobacterium tumefaciens GV3101 was transformed with PFGC1008 vector, and Agrobacterium tumefaciens was obtained, and Colombian ecotype Arabidopsis thaliana (Col-0) was transformed by flower bud infection technique to obtain a vector control vector (T. plant).
  • the L generation represents ⁇ .
  • the seed produced by the self-crossing and the plant grown by it the 2nd generation represents the seed produced by the L-generation self-crossing and the plant grown by it, and the 3rd generation represents the seed produced by the self-crossing of the 2nd generation and by it The grown plant.
  • the knockout plants GABR1 T 3 of progenies (/ r, the empty vector control transfected T 3 of progenies plants and wild plants (CoI) (Arabidopsis thaliana ecotype Columbia) was placed in 3-week-old seedlings 20_23 ° C, The relative humidity is 40-60%, 16 hours light / 8 hours dark condition, normal culture for 2 weeks, and then divided into the following two groups for different treatment:
  • the first group no watering for 3 weeks, then watering for 3 days, observe the phenotype and take photos while counting the survival rate;
  • the second group (normal conditions): For 3 weeks in a row, water is normally watered every day, and the phenotype is observed and photographed while the survival rate is counted.
  • the survival rate of each plant under normal conditions was 100%. There was no significant difference in the survival rate of plants under normal conditions.
  • the survival rate of wild plants was 96 ⁇ after 3 days of watering. 4%, the survival rate of the control vector of the empty vector was not significantly different from that of the wild plant, the survival rate of the knockout plant was 10 ⁇ 4%, and the survival rate of the knockout plant was significantly lower than that of the wild plant.
  • FIG. 3 A: the growth phenotype of wild-type and knockout plants grown under normal conditions for 5 weeks; B: the phenotype of wild-type and knockout plants after 2 weeks of normal growth and 3 weeks of drought treatment; : Phenotype of wild-type and fc4 3 ⁇ 4 knockout plants after 2 weeks of normal growth, 3 weeks of drought treatment, and 3 days of rehydration.
  • the results showed that: after 3 weeks of drought treatment, the wild type grew well, while the fc4 3 ⁇ 4 knockout plant had dried up and wilted; after 3 days of rehydration, the wild type grew well, and the mutant could hardly resume growth, which was already drought-induced. Die.
  • the phenotype of the empty vector control plants was the same as that of the wild plants, either under normal conditions or after drought treatment.
  • the stomata of each plant were tested separately.
  • the specific detection methods were as follows: Take the fully extended leaves of the plant, carefully tear the leaves of the leaves with tweezers, and gently clean the chloroplast adhered to the lower foreskin with a brush. The microscope observes the pores at an appropriate magnification (10*20), and measures the pore size of the pores (ie, the length at the maximum width of the pores, and records at least 60 pores per treatment per sample.
  • the microscope used is moodic B5 professional series microscope).
  • the stomatal pore diameter of wild-type plants was 2.82 ⁇ 0.09 ⁇ , and the stomatal pore diameter of fc ⁇ T ⁇ knockout plants was 3.06 ⁇ 0.09 ⁇ ; and after 3 weeks of drought treatment, the stomatal of wild-type plants
  • the pore size is 1.56 ⁇ 0. ⁇ , which is significantly smaller than the pore size under normal conditions.
  • the pore diameter of the fc43 ⁇ 4 gene knockout plant is 2.67 ⁇ 0.08 ⁇ , which is not much different from the pore size under normal conditions; whether under normal conditions or after drought treatment
  • the stomatal aperture of the control vector of the empty vector was not significantly different from that of the wild plants.
  • Ang holes respectively 3 ⁇ 4 gene ( ⁇ r, empty vector transfected T 3 of the control plants and wild-generation plants plants (CoI) for stress tolerance experiments knock ABA T plants except substituting 3 plants, the steps of: taking three-week-old seedlings Fully stretched leaves, carefully tear the leaves of the leaves with tweezers, gently clean the chloroplast adhered to the lower foreskin with a writing brush; place the torn scalp into the MES buffer (can make the stomata of the plant) Fully open, so that the pores are in a consistent state before the ABA treatment; the specific formula is: 30mM KC1, 10mM Mes-KOH, pH6.15) soak for 2.5 hours, the pores are completely opened; then the leaf epidermis is transferred to the lower Soaking in different concentrations of abscisic acid solution (0, 1, 5, 10, 20 ⁇ ) for 2.5 hours, and then detecting the stomata of the plants after each concentration of the abscisic acid solution.
  • the specific detection method is as follows: The leaves of the leaves of the plants are laid flat on the slides, covered with a cover glass, and the stomata are observed under an appropriate magnification (10*20) by an optical microscope, and Measure the pore size of the pores (ie: the length at the maximum width of the pore opening, record at least 60 pores per treatment for each sample, using a microscope for the Motic B5 professional series microscope.
  • the stomatal pore diameters of the knockout plants treated with 0, 1, 5, 10, 20 ⁇ of abscisic acid were 3.10 ⁇ 0.16, 3.03 ⁇ 0.08, 2.95 ⁇ 0.08, 2.81 ⁇ 0.06, 2.94 ⁇ 0.12, respectively.
  • the stomatal pore diameters of wild type plants treated with 0, 1, 5, 10, 20 ⁇ of abscisic acid were: 3.05 ⁇ 0.04, 2.23 ⁇ 0.04, 1.81 ⁇ 0.03, 1.18 + 0.03, 1.29 ⁇ 0.03, respectively.
  • the stomatal aperture of the empty vector control plants was not significantly different from the wild plants.
  • the specific pore diameters of the 3rd generation plants and wild type plants of the 3 ⁇ 4 gene knockout plants treated with different concentrations of abscisic acid are shown in Fig. 4, and the stomatal morphology is shown in Fig. 5.
  • the invention provides a novel plant stomatal regulation related protein and a coding gene thereof for the deficiency of an effective functional gene for regulating stomatal movement in plants.
  • the gene provided by the present invention can be transferred into a plant by using any vector which can guide the expression of the exogenous gene in the plant, and the obtained transgenic plant exhibits rapid regulation of stomatal movement, and causes the stomatal closure to lose water slowly and resist drought.
  • any plant gene knockout technique and fc4 3 ⁇ 4 after knocking out (or silencing) the plant the plant is characterized by rapid water loss and drought sensitivity.
  • the main function of the gene is obvious-regulating stomatal movement, and the plant is a single copy, which can be applied to genetic engineering breeding, which is conducive to the cultivation of new varieties of stomatal sports crops.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

本发明公开了植物气孔调控相关蛋白GABR1及其编码基因与应用。本发明提供的蛋白是如下（a）或（b）的蛋白质：（a）由序列表中序列1所示的氨基酸序列组成的蛋白质；（b）将序列1的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与气孔调控相关的由序列1衍生的蛋白质。利用任何一种可以引导外源基因在植物中表达的载体，将本发明所提供的GABR1基因转入植物中，得到的转基因植物表现出快速调控气孔运动，促使气孔关闭失水慢而抗旱。利用任何一种植物基因敲除技术而GABR1此基因敲除（或沉默）后，植物则表现为失水快、旱敏感的特点。GABR1基因主效功能明显-调控气孔运动，并且植物体内是单拷贝，可应用于基因工程育种，有利于培育出新的作物品种。

Description

植物气孔调控相关蛋白 GABR1及其编码基因与应用 技术领域
本发明属于生物工程领域， 涉及一种与植物气孔调控相关蛋白 GABR1 及其编码基因与应用， 特别是来源于拟南芥的气孔调控相关蛋白 GABR1及 其编码基因与应用。
背景技术
粮食问题是当今世界所面临的几大难题之一。 通过提高单产或扩大种植 面积、 增加农业投入改造中低产田等途径来增加粮食产量均需克服逆境限制 或减轻逆境危害等问题。 因此， 认识植物对逆境的反应机制， 提高植物的抗 逆性， 已成为农业进一步增产的重要基础研究， 倍受世界各国政府和科学家 的关注， 也是当前生命科学研究的热点。
干旱是限制植物生长发育的主要逆境， 随着经济发展、 人口膨胀以及 生物种群的破坏， 水资源短缺现象日趋严重， 它严重地影响了农业生产和 生态环境， 已成为全球关注的问题， 因此寻求植物特别是农作物调控气孔 运动的途径， 控制水分的利用效率， 提高作物的抗旱性具有重大的意义。 在作物成熟的后期， 通过调控气孔运动， 加速作物的失水， 也是十分必要 的。 提高作物的调控气孔运动性， 除了利用传统的育种方法， 应用基因工 程育种已经成为科技工作者所关注的领域之一。
拟南芥是一种典型的模式植物， 广泛用于植物遗传学、 发育生物学和 分子生物学的研究。 拟南芥的大多数基因在其它植物中都能找到， 有关拟 南芥的任何发现都能应用于其它植物 （农作物） 研究。 因此， 对拟南芥调 控气孔运动性分子机制的研究将极大地有助于找到提高农作物调控气孔 运动性， 增加产量的方法。
拟南芥共有约 1. 3亿个碱基对， 2. 9万个基因。 目前很多基因的功能 还不清楚， 利用突变技术研究基因功能已成为一种有效的方法。 通过对突 变体的研究， 获知了一些调控干旱相关的基因， ¾ DREB、 CBF、 ABRE等。
目前， 还未找到有效的调控气孔运动功能基因， 面对日益严重的作物 干旱问题， 寻找新的调控气孔运动功能基因并阐明其功能具有重要的理论 及实践意义。 发明公开
本发明的目的是提供一种植物气孔调控相关蛋白 GABR1 及其编码基 因与应用。
本发明所提供的植物气孔调控相关蛋白， 名称为 GABR1， 来源于拟南 {Arabidopsis thaliana) , 是如下 （a) 或 （b) 的蛋白质：
(a) 由序列表中序列 1所示的氨基酸序列组成的蛋白质；
(b) 将序列 1的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和 /或 缺失和 /或添加且与植物气孔调控相关的由序列 1衍生的蛋白质。
序列表中的序列 1由 1037个氨基酸残基组成。
为了使 （a) 中的 GABR1便于纯化， 可在由序列表中序列 1所示的氨 基酸序列组成的蛋白质的氨基末端或羧基末端连接上如表 1所示的标 签。
表 1 标签的序列
Figure imgf000003_0001
上述 （b) 中的 GABR1 可人工合成， 也可先合成其编码基因， 再进行 生物表达得到。 上述（b) 中的 GABR1的编码基因可通过将序列表中序列 2 自 5'端第 1至 3114位碱基所示的 DNA序列中缺失一个或几个氨基酸残基 的密码子， 和 /或进行一个或几个碱基对的错义突变， 和 /或在其 5'端和 / 或 3'端连上表 1所示的标签的编码序列得到。
上述植物气孔调控相关蛋白的编码基因 iGABRD 也属于本发明的保护 范围。
所述蛋白的编码基因为如下 1) 或 2) 或 3) 或 4) 或 5) 或 6) 或 7) 的 DNA分子:
1) 其编码序列是序列表中序列 2 自 5 '末端第 1至 3114位核苷酸所 示的 DNA分子； 2) 序列表中序列 2所示的 DNA分子；
3)在严格条件下与 1) 限定的 DNA序列杂交且编码所述蛋白的 DNA分 子；
4) 与 1) 或 2) 或 3) 限定的 DNA序列具有 25-50%同源性， 且编码相 同功能蛋白质的 DNA分子；
5) 与 1) 或 2) 或 3) 限定的 DNA序列具有 50-75%同源性， 且编码相 同功能蛋白质的 DNA分子；
6) 与 1) 或 2) 或 3) 限定的 DNA序列具有 75-90%同源性， 且编码相 同功能蛋白质的 DNA分子；
7) 与 1) 或 2) 或 3) 限定的 DNA序列具有 90%以上的同源性， 且编码 相同功能蛋白质的 DNA分子。
序列表中的序列 2由 3356个脱氧核糖核苷酸组成， 自 5' 末端的第 1 至 3114 位脱氧核糖核苷酸为 GABR1 的开放阅读框 （Open Reading Frame, ORF) 。
含有 /T^基因的表达盒、 重组表达载体、 转基因细胞系及重组菌均 属于本发明的保护范围。
可用现有的植物表达载体构建含有 基因的重组表达载体。
所述植物表达载体包括双元农杆菌载体和可用于植物微弹轰击的载 体等。 所述植物表达载体还可包含外源基因的 3' 端非翻译区域， 即包含 聚腺苷酸信号和任何其它参与 mRNA加工或基因表达的謹片段。 所述聚 腺苷酸信号可引导聚腺苷酸加入到 mRNA前体的 3' 端， 如农杆菌冠瘿瘤诱 导（Ti)质粒基因（如胭脂合成酶 Nos基因）、 植物基因 （如大豆贮存蛋白基 因） 3' 端转录的非翻译区均具有类似功能。
使用 构建植物重组表达载体时， 在其转录起始核苷酸前可加上 任何一种增强型启动子或组成型启动子或诱导型启动子， 如花椰菜花叶病 毒 （CAMV) 35S启动子、 玉米的泛素启动子 （Ubiquitin) ， 它们可单独使 用或与其它植物启动子结合使用； 此外， 使用本发明的基因构建植物表达 载体时， 还可使用增强子， 包括翻译增强子或转录增强子， 这些增强子区 域可以是 ATG起始密码子或邻接区域起始密码子等， 但必需与编码序列的 阅读框相同， 以保证整个序列的正确翻译。 所述翻译控制信号和起始密码 子的来源是广泛的， 可以是天然的， 也可以是合成的。 翻译起始区域可以 来自转录起始区域或结构基因。
为了便于对转基因植物细胞或植物进行鉴定及筛选， 可对所用植物表 达载体进行加工， 如加入可在植物中表达的编码可产生颜色变化的酶或发 光化合物的基因 （GUS基因、 萤光素酶基因等） 、 具有抗性的抗生素标记 物 （庆大霉素标记物、 卡那霉素标记物等） 或是抗化学试剂标记基因 （如 抗除莠剂基因） 等。 从转基因植物的安全性考虑， 可不加任何选择性标记 基因， 直接以植物苗期叶片失水程度筛选转化植株。
所述重组表达载体可为在 pCAMBIA1300 的多克隆位点位点插入所述 基因得到的重组质粒。所述重组表达载体具体可为将 pCAMBIA1300的 BamH I和 Sal I位点间的小片段取代为所述基因得到的重组质粒。
扩增所述 DNA片段的全长及其任一片段的引物对也属于本发明的保护 范围。
所述引物对具体可为序列表的序列 3所示核苷酸和序列表的序列 4所 示核苷酸组成的引物对。
所述蛋白、 所述基因、 所述表达盒、 所述重组表达载体、 所述转基因 细胞系和所述重组菌均可应用于培育转基因植物。 所述转基因植物可为与 出发植物相比， 耐旱能力提高和 /或耐脱落酸能力提高和 /或气孔调节能力 提高的转基因植物。
本发明的另一个目的是提供一种培育耐逆植物的方法。
本发明所提供的培育耐逆植物的方法， 是将所述 基因导入植物 中， 得到耐逆植物。 具体可将所述含有 基因的重组表达载体导入植 物中， 得到耐逆植物。
所述耐逆植物具体可为耐旱和 /或耐脱落酸的植物。
利用任何一种可以引导外源基因在植物中表达的载体， 将本发明所提 供的 GABR1的编码基因导入植物， 可获得对干旱和脱落酸等非生物逆境胁 迫耐受力增强的转基因植株。 携带有编码基因的表达载体可通过使用 Ti 质粒、 Ri质粒、 植物病毒载体、 直接 DNA转化、 显微注射、 电导、 农杆菌 介导等常规生物学方法转化植物细胞或组织， 并将转化的植物组织培育成 植株。被转化的植物宿主既可以是单子叶植物， 也可以是双子叶植物， 如： 大豆、 拟南芥 （如哥伦比亚生态型拟南芥） 、 水稻、 小麦、 玉米、 黄瓜、 番茄、 杨树、 草坪草、 苜宿等。
本发明还保护一种培育旱敏感和 /或脱落酸敏感的植物的方法， 是将 含有所述基因的目的植物中的所述基因灭活， 得到与所述目的植物相比旱 敏感和 /或脱落酸敏感的植物。
所述灭活可通过将所述基因的小干扰 RNA导入所述目的植物中实现。 所述灭活可通过将 T-DNA插入所述目的植物的所述基因实现。
所述灭活可通过将重组质粒乙导入所述目的植物中实现； 所述重组质 粒乙是在 PFGC1008的 Spel和 Ascl酶切位点之间正向插入序列表的序列 5所 示的 DNA， BamH I和 Swa I酶切位点之间反向插入序列表的序列 5所示的 DNA 得到的重组质粒。
本发明还保护序列表的序列 5或其互补序列所示的 DNA片段， 是所述 基因的小干扰 RNA的编码序列。
含有序列表的序列 5所示的靈的重组表达载体也属于本发明的保护 范围。
所述重组表达载体具体可为： 在 PFGC1008的 Spel和 Ascl酶切位点 之间正向插入序列表的序列 5所示的靈， BamH I和 Swa I酶切位点之间 反向插入序列表的序列 5所示的 DNA得到的重组质粒。
所述目的植物具体可为拟南芥， 如哥伦比亚生态型拟南芥 (Col-0)。 以下结合附图及具体实施例进一步阐述本发明。 以下的实施例便于更 好地理解本发明， 但并不限定本发明。
附图说明
图 1为重组质粒的酶切鉴定结果； M :分子标记 15000 ; 1： 重组质粒。 图 2为重组农杆菌的菌落 PCR鉴定结果； 1-3: 阳性菌落； 4: 农杆菌 GV1300 (阴性对照） ； 5： pCAMBIA1300-^7?7 (阳性对照） ； M :分子标记 图 3为耐干旱胁迫实验中植株的表型。
图 4为耐脱落酸胁迫实验中植株的气孔孔径数据。
图 5为耐脱落酸胁迫实验中植株的气孔形态。
实施发明的最佳方式 以下的实施例便于更好地理解本发明， 但并不限定本发明。 下述实施 例中的实验方法， 如无特殊说明， 均为常规方法。 下述实施例中所用的试 验材料， 如无特殊说明， 均为自常规生化试剂商店购买得到的。
哥伦比亚生态型拟南芥（Col-0) :购自美国俄亥俄州立大学的拟南芥生 物资源中心（Arabidopsis Biology Resource Center, ABRC)； 原始来源不 清。 实施例 1、 fc^W基因的克隆
根据拟南芥基因组数据库中 GABIi 编号为 At4g20940)基因的 c謹序 列， 在起始密码子 ATG前和终止密码子后分别设计引物如下：
引物 1: 5' - ATGGGGCAAC TTCCATCACA GG- 3' ；
引物 2: 5' CTAAATAGAA GAAAGATCTT CGTAAATGGT CTTAATACC -3， , ― 以哥伦比亚生态型拟南芥（Col-0)幼苗 100-200mg为材料， 用 Trizol 提取根（或茎）的总 RNA， 经 1%琼脂糖凝胶电泳检测 RNA的完整性。 使用北 京 全 式 金 生 物 技 术 有 限 公 司 的 试 剂 盒 ( TransScript First-Strand cDNA Synthesis SuperMix， 目录号： AT301 ) 按照、 Superscript™ II RNase H— Reverse Transcriptase的方法合成单链 ( ss) cDNA。 将合成的单链 cDNA稀释 10倍， 作为 PCR反应的模板。 PCR反应体 系（20μ1)中含有： 10XPCR 缓冲液 2μ1， 2.5mM dNTP (dATP、 dGTP、 dCTP、 dTTP)混合物 1.6μ1， 5μΜ的引物 1和引物 2各 Ι.ΟμΙ, Taq 酶 （15υ/μ1) 0. ΐμΐ。在 ΡΕ 9700仪上扩增： 94°C预变性 5min; 94 °C 30 sec, 57°C 30 sec, 72 °C 10 sec, 共计 35个循环； 72°C延伸 10 min， 将获得的 PCR产物进行 1%琼脂糖凝胶电泳。将目的片段连接于 T-载体（pMD18-T， 目录号为 D101A, 购自宝生物工程 （大连） 有限公司， BP: TaRaKa) ， 进行测序鉴定。 结果 表明， 得到了目的质粒 pT-fc4U (T-载体中插入序列表的序列 2 自 5 '末 端第 1至 3114位核苷酸所示的 DNA分子） 。
序列 2所示的 DNA片段编码序列 1所示的蛋白质， 将序列 1所示的蛋 白质命名为 GABR1。 将 GABR1的编码基因命名为 GABR1。 实施例 2、 fc^T^基因过表达植株的获得 一、 植物表达载体的构建
1、 用限制型内切酶 BamH I和 Sal I酶切 pT-fc^7^，回收目的片段 基因） ；
2、 用限制型内切酶 BamH I和 Sal I酶切植物表达载体 pCAMBIA1300 (北京全式金生物技术有限公司， 目录号： VT200 )，回收目的片段（载体 骨架） ；
3、 用 T4连接酶将步骤 1回收的目的片段和步骤 2回收的目的片段连 接， 用连接产物转化大肠杆菌 JM109 (北京京泰时代生物科技有限公司） ， 筛选阳性克隆进行菌落 PCR, 并提取质粒进行酶切 （BamH I和 Sal I ) 鉴 定。 酶切鉴定结果见图 1。 鉴定阳性的克隆提取质粒进行测序， 测序结果 表明， 得到了重组质粒 pCAMBIA 1300-^4^^ (骨架载体为 pCAMBIA1300， 在 BamH I和 Sal酶切位点间插入了序列表的序列 2自 5 '末端第 1至 3114 位核苷酸所示的 DNA分子） 。
二、 重组农杆菌的获得
将 pCAMBIA1300-fc4U转化农杆菌 GV3101 (北京全式金生物技术有限 公司； 目录号： AG108 ) ， 得到重组农杆菌。 重组农杆菌的菌落 PCR鉴定 结果见图 2。 实施例 3、 基因灭活 （敲除） 植株的获得
1、 fc^T^基因敲除植株的获得
利用 RNAi技术将 GABR1基因敲除， 具体的步骤：
①选择 GABR1基因上的一段特异 DNA序列 （见序列表的序列 5 ) ， 人工 合成序列 5所示的 DNA;
②将序列表的序列 5所示的 DNA正向插入 pFGC1008 载体 （使用北京全 式金生物技术有限公司的， 目录号： PG100 )的 Spel和 Ascl酶切位点之间， 得到重组质粒甲；
③将序列表的序列 5所示的 DNA反向插入重组质粒甲的 BamH I和 Swa I 酶切位点之间， 得到重组质粒乙。
重组质粒乙即为目的质粒， 转录可以得到针对 基因的发夹结构。 将重组质粒乙转化农杆菌 GV3101 , 得到重组农杆菌， 利用花蕾侵染技 术转化哥伦比亚生态型拟南芥（Col-0)。 潮霉素培养基上筛选阳性植株， 将抗生素阳性植株进行 PCR鉴定， 得到 基因敲除植株（T。代植株） 。
用 PFGC1008 载体转化农杆菌 GV3101 , 得到对照农杆菌， 利用花蕾侵 染技术转化哥伦比亚生态型拟南芥（Col-0) , 得到转空载体对照植株 （T。 代植株） 。
L代表示 Τ。代自交产生的种子及由它所长成的植株， Τ2代表示 L代自 交产生的种子及由它所长成的植株， Τ3代表示 Τ2代自交产生的种子及由它 所长成的植株。
2、 fc4 ¾ 基因敲除植株的耐干旱胁迫实验
将 GABR1基因敲除植株的 T3代植株（ / r 、 转空载体对照植株的 T3 代植株和野生植株（Col) (哥伦比亚生态型拟南芥） 的 3 周龄苗置于 20_23°C、 相对湿度为 40-60%、 16小时光 /8小时黑暗条件下， 正常培养 2 周， 然后分成如下两组进行不同处理：
第一组： 连续 3周不浇水， 然后恢复浇水 3天， 观察表型并拍照同时 进行存活率统计；
第二组 （正常条件） ： 连续 3周， 每天正常浇水， 观察表型并拍照同 时进行存活率统计。
实验共设三次重复， 结果取平均值； 每次重复中， 所测试的各株系植 株均分别为 54株。
结果显示： 正常条件下各个株系植株存活率的均为 100%, 在正常条件 各个株系植株的存活率没有明显差异； 干旱处理中， 恢复浇水 3天后， 野 生植株的存活率为 96 ± 4%，转空载体对照植株的存活率与野生植株没有显 著差异， 基因敲除植株的存活率为 10 ± 4%， 基因敲除植株的 存活率明显低于野生植株的存活率。
观察植株的生长状态， 见图 3。 图 3中， A :正常条件下生长 5周的野 生型和 基因敲除植株的生长表型； B : 正常生长 2周、 干旱处理 3 周后， 野生型和 基因敲除植株的表型； C : 正常生长 2周、 干旱处 理 3周、 复水 3天后， 野生型和 fc4 ¾ 基因敲除植株的表型。 结果表明： 干旱处理 3周后，野生型生长良好，而 fc4 ¾ 基因敲除植株已经干枯萎蔫； 复水 3天后， 野生型生长良好， 而突变体几乎不能恢复生长， 已经干旱致 死。 不管是正常条件下， 还是干旱处理后， 转空载体对照植株的表型与野 生植株相同。
分别检测各个株系植株的气孔， 具体检测方法如下： 取植株完全伸展 的叶片， 用镊子小心的撕取叶片的下表皮， 用毛笔将下包皮上粘附的叶绿 体轻轻的涮干净， 利用光学显微镜在适当的放大倍数 （10*20) 下观察气 孔， 并且测量记录气孔的孔径 （即： 气孔开放的最大宽度处的长度， 每个 样品每个处理至少记录 60 个气孔。 使用的显微镜为 motic 的 B5 professional series显微镜) 。
检测结果： 在正常条件下， 野生型植株的气孔孔径为 2.82±0.09μπι， fc^T^基因敲除植株的气孔孔径为 3.06±0.09μπι; 而经过 3周的干旱处 理， 野生型植株的气孔孔径为 1.56±0. Ιΐμπι, 明显小于正常条件下的孔 径， fc4¾ 基因敲除植株的气孔孔径为 2.67±0.08μπι， 与正常条件下的 孔径差异不大； 不管是正常条件下， 还是干旱处理后， 转空载体对照植株 的气孔孔径与野生植株没有显著差异。
结果表明： 基因敲除之后， 在正常条件下植株可以正常生长， 在干旱胁迫下， 植物就对气孔的调节变弱， 气孔关闭的缓慢或没有完全关 闭， 从而抗旱性减低。 即 基因敲除植株表现出失水快、 干旱敏感的 特征。
3、 基因敲除植株的耐脱落酸胁迫实验
分别孔昂 ¾ 基因敲除植株的 T3代植株 (^^r 、转空载体对照植 株的 T3代植株和野生植株（Col)进行耐脱落酸胁迫实验， 步骤为: 取 3周 龄苗的完全伸展的叶片， 用镊子小心的撕取叶片的下表皮， 用毛笔将下包 皮上粘附的叶绿体轻轻的涮干净； 将撕取的下表皮放入到 MES缓冲液 （可 以使植物的气孔完全张开， 使气孔在脱落酸处理前处于一致的状态； 具体 配方为： 30mM KC1、 10mM Mes-KOH, pH6.15) 中浸泡 2.5小时， 使气孔完 全打开； 然后将叶片下表皮分别转移到不同浓度的脱落酸溶液 （0、 1、 5、 10、 20μΜ) 中浸泡 2.5小时， 然后分别检测各个浓度的脱落酸溶液出后植 株的气孔。
具体检测方法如下： 将植株的叶片下表皮平铺到载玻片上， 上面盖上 盖玻片， 利用光学显微镜在适当的放大倍数 （10*20) 下观察气孔， 并且 测量记录气孔的孔径 （即： 气孔开放的最大宽度处的长度， 每个样品的每 个处理至少记录 60个气孔， 使用的显微镜为 motic 的 B5 professional series显微镜。
检测结果： 分别用 0、 1、 5、 10、 20μΜ的脱落酸处理的 基因敲 除植株的气孔孔径分别是： 3.10±0.16， 3.03±0.08， 2.95±0.08， 2.81 ±0.06， 2.94±0.12; 分别用 0、 1、 5、 10、 20μΜ的脱落酸处理的野生型 植株的气孔孔径分别是： 3.05±0.04， 2.23±0.04， 1.81±0.03， 1.18 + 0.03， 1.29±0.03。 在各个浓度下， 转空载体对照植株的气孔孔径与野生 植株没有显著差异。 用不同浓度的脱落酸处理的 ¾ 基因敲除植株的 Τ3 代植株和野生型植株的气孔孔径具体数据见图 4， 气孔形态见图 5。
结果表明： 在不同的脱落酸处理条件下， 都可以观察到 基因敲 除植株的气孔孔径都要比野生型植株的气孔孔径大； 当野生型植株气孔因 脱落酸处理而关闭时， 基因敲除植株的气孔却基本没有变化； 说明 GABR1基因缺失后， 植株表现出气孔运动对 ABA不敏感的特征。
工业应用
本发明针对植物现有调控气孔运动有效功能基因的不足， 提供了一种 新的植物气孔调控相关蛋白及其编码基因。 利用任何一种可以引导外源基 因在植物中表达的载体， 将本发明所提供的 基因转入植物中， 得到 的转基因植物表现出快速调控气孔运动，促使气孔关闭失水慢而抗旱。 利 用任何一种植物基因敲除技术而 fc4 ¾ 此基因敲除 （或沉默） 后， 植物则 表现为失水快、 旱敏感的特点。 基因主效功能明显-调控气孔运动， 并且植物体内是单拷贝， 可应用于基因工程育种， 有利于培育出新的调控 气孔运动作物品种。

Claims

权利要求
1、 一种蛋白， 是如下 （a) 或 （b) 的蛋白质：
(a) 由序列表中序列 1所示的氨基酸序列组成的蛋白质；
(b) 将序列 1的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和 /或 缺失和 /或添加且与植物气孔调控相关的由序列 1衍生的蛋白质。
2、 权利要求 1所述蛋白的编码基因。
3、 根据权利要求 2 所述的基因， 其特征在于： 所述蛋白的编码基因 为如下 1) 或 2) 或 3) 或 4) 或 5) 或 6) 或 7) 的 DNA分子：
1) 其编码序列是序列表中序列 2 自 5 '末端第 1至 3114位核苷酸所 示的 DNA分子；
2) 序列表中序列 2所示的 DNA分子；
3)在严格条件下与 1) 限定的 DNA序列杂交且编码所述蛋白的 DNA分 子；
4) 与 1) 或 2) 或 3) 限定的謹序列具有 25-50%同源性， 且编码相 同功能蛋白质的 DNA分子；
5) 与 1) 或 2) 或 3) 限定的 DNA序列具有 50-75%同源性， 且编码相 同功能蛋白质的 DNA分子；
6) 与 1) 或 2) 或 3) 限定的 DNA序列具有 75-90%同源性， 且编码相 同功能蛋白质的 DNA分子；
7) 与 1) 或 2) 或 3) 限定的 DNA序列具有 90%以上的同源性， 且编码 相同功能蛋白质的 DNA分子。
4、 含有权利要求 2或 3所述基因的表达盒、 重组表达载体、 转基因 细胞系或重组菌。
5、 根据权利要求 4 所述的重组表达载体， 其特征在于： 所述重组表 达载体为： 将 PCAMBIA1300的 BamH I和 Sal I位点间的小片段取代为权利 要求 2或 3所述基因得到的重组质粒。
6、 扩增权利要求 2或 3中所述謹片段的全长及其任一片段的引物 对。
7、 如权利要求 6 所述的引物对， 其特征在于： 所述引物对为序列表 的序列 3所示核苷酸和序列表的序列 4所示核苷酸组成的引物对。
8、 权利要求 1所述蛋白、 权利要求 2或 3所述基因、 权利要求 4或 5 所述表达盒、 重组表达载体、 转基因细胞系或重组菌在培育转基因植物中 的应用。
9、 如权利要求 8 所述的应用， 其特征在于： 所述转基因植物为耐逆 植物。
10、 如权利要求 9所述的应用， 其特征在于： 所述耐逆植物为耐旱和 /或耐脱落酸的植物。
11、 一种培育耐逆植物的方法， 是将权利要求 2或 3所述基因导入目 的植物中， 得到耐逆植物。
12、 如权利要求 11所述的方法， 其特征在于： 权利要求 2或 3所述 基因通过权利要求 4或 5所述的重组表达载体导入所述目的植物中。
13、 如权利要求 11或 12所述的方法， 其特征在于： 所述耐逆植物为 耐旱和 /或耐脱落酸的植物。
14、 如权利要求 11至 13中任一所述的方法， 其特征在于： 所述目的 植物为拟南芥。
15、 一种培育旱敏感和 /或脱落酸敏感植物的方法， 是将含有权利要 求 2或 3所述基因的目的植物中的所述基因灭活， 得到与所述目的植物相 比旱敏感和 /或脱落酸敏感的植物。
16、 如权利要求 15 所述的方法， 其特征在于： 所述灭活是通过将权 利要求 2或 3所述基因的小干扰 RNA导入所述目的植物中实现的。
17、 如权利要求 15所述的方法， 其特征在于： 所述灭活是通过将重组 质粒乙导入所述目的植物中实现的； 所述重组质粒乙是在 PFGC1008的 Spel 和 Ascl酶切位点之间正向插入序列表的序列 5所示的 DNA， BamH I和 Swa I 酶切位点之间反向插入序列表的序列 5所示的 DNA得到的重组质粒。
18、 如权利要求 15至 17中任一所述的方法， 其特征在于： 所述目的 植物为拟南芥。
19、 序列表的序列 5或其互补序列所示的 DNA片段。
20、 含有权利要求 19所述謹片段的重组表达载体。
21、 如权利要求 20 所述的重组表达载体， 其特征在于： 所述重组表 达载体是在 PFGC1008的 Spel和 Ascl酶切位点之间正向插入序列表的序 列 5所示的薩， BamH I和 Swa I酶切位点之间反向插入序列表的序列 5 所示的 DNA得到的重组质粒。
PCT/CN2012/000287 2012-03-07 2012-03-07 植物气孔调控相关蛋白gabr1及其编码基因与应用 WO2013131205A1 (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/CN2012/000287 WO2013131205A1 (zh) 2012-03-07 2012-03-07 植物气孔调控相关蛋白gabr1及其编码基因与应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/CN2012/000287 WO2013131205A1 (zh) 2012-03-07 2012-03-07 植物气孔调控相关蛋白gabr1及其编码基因与应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2013131205A1 true WO2013131205A1 (zh) 2013-09-12

Family

ID=49115838

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/CN2012/000287 WO2013131205A1 (zh) 2012-03-07 2012-03-07 植物气孔调控相关蛋白gabr1及其编码基因与应用

Country Status (1)

Country Link
WO (1) WO2013131205A1 (zh)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2090662A2 (en) * 2006-04-05 2009-08-19 Metanomics GmbH Process for the production of a fine chemical
WO2011052169A1 (en) * 2009-10-30 2011-05-05 Toyota Jidosha Kabushiki Kaisha Gene capable of imparting environmental stress resistance to plants and method for utilizing the same

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2090662A2 (en) * 2006-04-05 2009-08-19 Metanomics GmbH Process for the production of a fine chemical
WO2011052169A1 (en) * 2009-10-30 2011-05-05 Toyota Jidosha Kabushiki Kaisha Gene capable of imparting environmental stress resistance to plants and method for utilizing the same

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DATABASE GENBANK 13 May 2003 (2003-05-13), retrieved from http://www,ncbi,nlm.nih.gov.nuccore/nm: 128190 accession no. M128190 *
DATABASE GENBANK 18 February 2010 (2010-02-18), retrieved from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/FJ708750 accession no. J708750 *
DATABASE GENBANK 22 February 2012 (2012-02-22), retrieved from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/protein/264664505 accession no. OLGQ9 *
GOU, X.P. ET AL.: "Genome-wide cloning and sequence analysis of leucine-rich repeat receptor-like protein kinase genes in Arabidopsis thaliana.", BMC GENOMICS, vol. 11, no. 19, 11 January 2011 (2011-01-11) *
MASLE, J. ET AL.: "The ERECTA gene regulates plant transpiration efficiency in Arabidopsis.", NATURE, vol. 436, no. 7052, 11 August 2005 (2005-08-11), pages 866 - 870 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101942449B (zh) 提高植物非生物胁迫耐受性和/或生物量的方法及用该方法所产生的植物
CN107827964B (zh) 一种与植物耐逆性相关的转录因子PwNAC2及其编码基因与应用
US20150252377A1 (en) Genes controlling photoperiod sensitivity in maize and sorghum and uses thereof
US20060272057A1 (en) Methods for improving crop plant architecture and yield
CN105683213B (zh) 改善植物农学性能的bg1组合物和方法
CN110628808B (zh) 拟南芥AtTCP5基因及其在调控株高上的应用
WO2015007240A1 (en) Transgenic maize
CN111073873B (zh) Pp84蛋白及其编码基因在调控植物抗旱性中的应用
US20160010101A1 (en) Enhanced nitrate uptake and nitrate translocation by over- expressing maize functional low-affinity nitrate transporters in transgenic maize
WO2009127897A1 (zh) 水稻蛋白激酶基因OsCIPK15及其在提高植物耐盐能力中的应用
US9024141B2 (en) Maize ERECTA genes for improving plant growth, transpiration, efficiency and drought tolerance in crop plants
CN109879947B (zh) 毛竹转录因子PheDof 2基因及应用
US8716553B2 (en) NAC transcriptional activators involved in abiotic stress tolerance
Chen et al. Overexpression of the Salix matsudana SmAP2-17 gene improves Arabidopsis salinity tolerance by enhancing the expression of SOS3 and ABI5
CN111153975A (zh) 植物抗旱相关蛋白TaNAC15及其编码基因与应用
CN110713994B (zh) 一种植物耐逆性相关蛋白TaMAPK3及其编码基因和应用
CN108165557B (zh) 小麦TaZCCT2基因在调控植物开花时间中的应用
CN104673803B (zh) 基因甲基化在调控基因表达方面的应用
US7763778B2 (en) Delayed flowering time gene (DLF1) in maize and uses thereof
WO2013131205A1 (zh) 植物气孔调控相关蛋白gabr1及其编码基因与应用
US20110023191A1 (en) Methods for improving crop plant architecture and yield
CN114644691B (zh) Eip1蛋白及其编码基因与抗旱应用
US20220042030A1 (en) A method to improve the agronomic characteristics of plants
CN112341530B (zh) 一种石斛WRKY类转录因子基因DoWRKY69及其应用
US20090158459A1 (en) Novel transcription factor for increasing kernel mass and yield in plants (1403)

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 12870525

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 12870525

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1