WO2012153704A1 - 同位体を有するリン酸化合物の製造方法 - Google Patents

同位体を有するリン酸化合物の製造方法 Download PDF

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phosphorus
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智洋 濱崎
忠明 大木
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Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a phosphate compound having an isotope.
  • a labeled compound into which an isotope is introduced As a method for confirming the behavior of a compound in a living body, it is common to use a labeled compound into which an isotope is introduced.
  • the compound include nucleic acids such as DNA and RNA, and the use of stable isotopes has attracted attention because the isotopes do not affect living organisms.
  • the synthesis of a nucleic acid into which a stable isotope is introduced is generally carried out by introducing a stable isotope into a monomer in advance and using this as a raw material to synthesize a polynucleotide.
  • a stable isotope In order to detect stable isotopes with high sensitivity, it is desired that a large number of stable isotopes be introduced into the polynucleotide.
  • this method in order to introduce a large number of stable isotopes, it is necessary to label all monomers including A, G, C and T / U bases, which is labor intensive and costly. There is a problem that becomes extremely high.
  • Non-Patent Document 1 As a method of introducing a stable isotope, 2,2' cyclo uridine was opened by acid (PhC 18 O 2 H), at the 2 'position of the sugar, the hydroxyl group with a stable isotope (- 18 OH) Has been disclosed (Non-Patent Document 1).
  • a nucleoside having a specific pyrimidine base can only be labeled, and a nucleoside having another base cannot be obtained.
  • the labor and cost problems of labeling with a stable isotope are not limited to the nucleic acid, and the same applies to, for example, low molecular compounds such as pharmaceuticals and agricultural chemicals.
  • an object of the present invention is to provide a method for easily producing a phosphate compound having an isotope.
  • the production method of the present invention is a production method of a phosphate compound having an isotope, wherein the isotope is oxidized by oxidizing a trivalent phosphorus compound with an oxidizing agent containing an isotope. It includes an oxidation step of synthesizing a pentavalent phosphate compound into which is introduced.
  • a phosphate compound containing an isotope can be easily produced only by using the oxidizing agent containing the isotope.
  • the production method of the present invention is useful, for example, for the synthesis of a nucleic acid having a phosphate group and the synthesis of a low-molecular compound such as an agrochemical, a pharmaceutical or a phospholipid having a phosphate group.
  • FIG. 1 is a mass spectrometry chromatogram of 18 O-labeled poly (U) in Example 1.
  • FIG. FIG. 2 is a mass spectrometry chromatogram of 18 O-labeled poly (U) treated at a predetermined pH in Example 1.
  • FIG. 3 is a photograph of Native-PAGE of siRNA introduced with 18 O in Example 2.
  • 4 is a graph showing a circular dichroism spectrum of siRNA introduced with 18 O in Example 2.
  • FIG. FIG. 5 is a graph showing the relative value of the expression level of human GAPDH gene mRNA in Example 2.
  • FIG. 6 is a graph showing the relationship between the concentration of 18 O-labeled poly (U) and ⁇ 18 O [ ⁇ ] in Example 3.
  • FIG. 7 is a photograph observing the intracellular localization of siRNA introduced with 18 O in Example 4.
  • the production method of the present invention is a method for producing a phosphate compound having an isotope, and the trivalent phosphorus compound is converted into an oxidant containing an isotope (hereinafter referred to as “isotope oxidant”). It includes an oxidation step of synthesizing a pentavalent phosphate compound into which the isotope is introduced by oxidation.
  • trivalent phosphorus of a trivalent phosphorus compound is oxidized to pentavalent phosphorus by the isotope oxidant, and accordingly, the isotope derived from the isotope oxidant is converted to the pentavalent phosphorus.
  • the body joins.
  • a pentavalent phosphate compound into which an isotope is introduced can be obtained only by performing an oxidation reaction with the isotope oxidant.
  • the present invention is characterized in that the trivalent phosphorus compound is oxidized using the isotope oxidant, and other configurations and other conditions are not particularly limited.
  • the production method of the present invention includes, for example, synthesis of agrochemicals having a phosphate group, pharmaceuticals, phospholipids and the like, nucleic acids such as RNA and DNA having a phosphate group, and nucleoside-monophosphate that is a monomer, It is preferably applied to the synthesis of nucleoside-diphosphate, nucleoside-triphosphate, and the like, particularly preferably applied to the synthesis of the nucleic acid.
  • the method for synthesizing the nucleic acid is not limited at all, and examples thereof include a phosphite method, a phosphoramidite method (or also referred to as a phosphoramidite method) (hereinafter, amidite method) and the like.
  • a phosphite method or also referred to as a phosphoramidite method
  • amidite method a phosphoramidite method
  • the amidite method will be described as an example, but the present invention is not limited to this.
  • the amidite method In solid phase synthesis of nucleic acids, the amidite method generally removes the monomer amidite coupling step, the resulting oxidation step of trivalent phosphorus to pentavalent phosphorus (phosphate group) and the sugar protecting group at the 5 ′ end. One cycle of the deprotection step is repeated until the desired length is reached.
  • the isotope can be easily introduced into the phosphate group of the phosphodiester bond only by using the isotope oxidant in the oxidation step. Moreover, the isotope can be introduced only into the desired phosphodiester bond by using the isotope oxidant only in the oxidation step of the desired cycle. Furthermore, the isotopes can be introduced into the phosphate groups of all phosphodiester bonds by using the isotope oxidant in the oxidation steps of all cycles. Conventionally, as described above, since it is necessary to synthesize an amidite into which an isotope is introduced for each base to be labeled, there is a problem that labor and cost are required.
  • the oxidation reaction by the oxidizing agent is, for example, an oxidation reaction in which trivalent phosphorus in the trivalent phosphorus compound is oxidized to pentavalent phosphorus, and atoms derived from the oxidizing agent are bound to the pentavalent phosphorus. is there.
  • the isotope oxidant may be such that the atom bonded to the pentavalent phosphorus is the isotope.
  • the isotope oxidant is not particularly limited, and for example, oxidizes trivalent phosphorus in the trivalent phosphorus compound to pentavalent phosphorus and donates atoms to the pentavalent phosphorus. What is necessary is just to have an isotope as an atom donated to the pentavalent phosphorus.
  • oxidizing agent exhibiting such an oxidation reaction from the common general knowledge at the time of filing, and for the oxidizing agent having an isotope as the donated atom, for example, a commercially available product can be obtained. It can be manufactured from the common general knowledge at the time of filing.
  • the isotope is not particularly limited, and may be, for example, a stable isotope or a radioactive isotope, preferably the former. If it is the said stable isotope, since there is little danger of exposure and a dedicated facility is unnecessary, it is excellent in handling property and can also reduce cost. In addition, the stable isotope is different from, for example, a fluorescent label, has no change in physical properties of the labeled compound, and is excellent in properties as a tracer.
  • the isotope oxidant is not particularly limited, and examples thereof include oxygen donors that donate isotope oxygen to pentavalent phosphorus by oxidation.
  • examples of the isotope include 17 O, 18 O, and the like, and preferably 18 O.
  • Examples of the oxygen donor include water or peroxide (peroxide) having isotope oxygen.
  • the peroxide is represented, for example, by the chemical formula R—O—O—R ′, and R and R ′ are, for example, H or an optional substituent. R and R 'may be the same or different.
  • the substituent is not particularly limited, and examples thereof include an alkyl group having 1 to 10 carbon atoms, and may be linear or branched. Examples of the alkyl group include a butyl group such as a t-butyl group.
  • Examples of the peroxide include a hydroperoxide in which at least one of R and R 'is preferably hydrogen, halogen or a monovalent metal, and more preferably at least one of R and R' is hydrogen. Examples of the hydroperoxide include t-butyl hydroperoxide.
  • Examples of the monovalent metal include alkali metals such as sodium, potassium, lithium, rubidium, cesium, and francium.
  • the oxygen donor is particularly preferably H 2 18 O having 18 O because, for example, a commercially available product with high purity can be obtained.
  • water having the isotope oxygen for example, it is preferable to use iodine (I 2 ), pyridine (Py), and tetrahydrofuran (THF) in combination.
  • the pentavalent phosphoric acid compound obtained for example, a pentavalent phosphorus, hydroxyl groups isotope oxygen - is preferably (18 OH) are attached,
  • the hydrogen in the hydroxyl group may be substituted with a monovalent metal such as an alkali metal, for example. Examples of the alkali metal include sodium, potassium, lithium, rubidium, cesium, francium and the like.
  • isotope oxidizing agent examples include a sulfur donor that donates isotope sulfur to pentavalent phosphorus by oxidation.
  • examples of the isotope include 33 S, 34 S, 36 S and the like, and 34 S is preferable.
  • the sulfur donor is preferably, for example, a disulfide having isotope sulfur (compound having —SS—), more preferably an organic disulfide, and still more preferably a cyclic organic disulfide.
  • the disulfide include, for example, 3H-1,2-benzothiol 3-one 1,1-dioxide, 5-((dimethylamino-methylidene) amino) -3H-1,2,4-dithiazole-3- Thion and the like are preferable, preferably 3H-1,2-benzodithyl 3-one 1,1-dioxide, more preferably 3H-1,2-benzodithyl 3-one 1,1-dioxide having 34 S. is there.
  • the obtained pentavalent phosphate compound has, for example, isotope sulfur bonded to pentavalent phosphorus, specifically, phosphorothioate. Is preferably formed.
  • Examples of the isotope oxidizing agent include boron donors that donate isotope boron to pentavalent phosphorus by oxidation.
  • Examples of the isotope include 10 B.
  • the boron donor is preferably an amine-borane complex having an isotope boron, and more preferably a trialkylamine-borane complex.
  • the trialkylamine / borane complex include diisopropylethylamine (DIPEA) / borane complex represented by C 8 H 19 N ⁇ BH 3 , preferably DIPEA / borane complex C having 10 B.
  • pentavalent phosphoric acid compound obtained, for example, a pentavalent phosphorus, borane group having isotope boron (- 10 BH 3 -) is a bond Specifically, it is preferable to form boranophosphate.
  • hydrogen of the borane group may be substituted with halogen, for example. Examples of the halogen include F, Cl, Br, and I.
  • the borane group may form a salt with a monovalent metal or a divalent metal, for example.
  • Examples of the monovalent metal include alkali metals such as sodium, potassium, lithium, rubidium, cesium, and francium.
  • the divalent metal is, for example, an alkaline earth metal, and examples thereof include calcium, strontium, barium, and radium.
  • the trivalent phosphorus compound is not particularly limited as long as it is a compound having trivalent phosphorus.
  • Examples of the trivalent phosphorus compound include phosphorous acid and phosphite.
  • the phosphorous acid includes, for example, phosphite, phosphorous acid derivatives and the like in addition to phosphorous acid [HP (O) (OH) 2 ].
  • phosphoric acid in which an isotope is bound to phosphorus can be produced by using phosphorous acid as the trivalent phosphorus compound.
  • the obtained phosphoric acid includes, for example, the meanings of phosphates, phosphoric acid derivatives and the like.
  • phosphites examples include phosphite monoester [R 1 O—P (OX 2 ) —OX 3 ], phosphite diester [R 1 O—P (OR 2 ) —OX 3 ], phosphorous Any of acid triester [R 1 O—P (OR 2 ) —OR 3 ] may be used.
  • X 2 and X 3 are, for example, hydrogen or a monovalent metal.
  • the monovalent metal is, for example, an alkali metal, and examples thereof include sodium, potassium, lithium, rubidium, cesium, and francium.
  • the R 1 , R 2 and R 3 are not limited at all, and various organic groups such as a hydrocarbon group described later can be mentioned.
  • the nucleic acid may be, for example, a monomer or a polymer obtained by polymerizing the monomer.
  • Examples of the monomer include nucleotides constituting RNA or DNA.
  • a pentavalent phosphate group is bonded to a nucleoside composed of a sugar and a base.
  • the nucleotide has a sugar, a base, and a pentavalent phosphate group, and the base is bonded to the 1 ′ position of the sugar, and the 5 ′ position, the 3 ′ position, or the 2 ′ position of the sugar.
  • the pentavalent phosphate group is bonded to each other.
  • Specific examples of the nucleotide include ribonucleotides and deoxyribonucleotides.
  • the nucleotide includes, for example, the meaning of a derivative of the nucleotide.
  • the polymer is, for example, a polymer of the nucleotide, specifically, RNA that is a polymer of ribonucleotides, DNA that is a polymer of deoxyribonucleotides, or a polymer of ribonucleotides and deoxyribonucleotides (DNA / RNA Chimera) and the like.
  • the polymerization number of the monomer is not limited, and includes the meaning of an oligomer.
  • a sugar of one nucleotide and a sugar of the other nucleotide are bonded through the phosphate group.
  • the 5′-position, 3′-position or 2′-position of one sugar and the 5′-position, 3′-position or 2′-position of the other sugar are It is preferable that they are bonded via a phosphate group.
  • the combination of the binding sites of the sugar of one nucleotide and the sugar of the other nucleotide is not particularly limited, the combination of the 5 ′ position and the 3 ′ position, the combination of the 5 ′ position and the 5 ′ position, and the 3 ′ position. And the combination of the 3 ′ position and the combination of the 2 ′ position and the 5 ′ position.
  • the sugar may be, for example, ribose having a hydroxy group bonded to the 2′-position carbon atom, or deoxyribose having a hydrogen atom bonded to the 2′-position carbon atom.
  • the hydroxy group may be substituted (modified) with any atom or group.
  • the atom include a hydrogen atom and a halogen atom, and examples of the halogen atom include F, Cl, Br, and I. Among these, F (fluorine atom) is preferable.
  • Examples of the group include an alkoxy group (—O-alkyl group), an acyloxy group (—O-acyl group), an amino group (NH 2 group), or a substituted amino group in which H is substituted with a substituent. It is done.
  • the alkoxy group (—O-alkyl group) is not particularly limited, and examples thereof include a methoxy group (—O-Me group), and the alkyl group is not limited.
  • the acyloxy group (—O-acyl group) is not particularly limited, and examples thereof include —O—CHO group, and the acyl group is not limited.
  • the hydrogen atom may be substituted (modified) with an arbitrary atom. Examples of the atom include the halogen atom and the like.
  • the base is not particularly limited, and examples thereof include adenine, guanine, cytosine, thymine, uracil and the like.
  • examples of these substituted bases include 7-deazaguanine, 7-deaza-8-azaguanine, and 5-propynylcytosine.
  • the base may be, for example, a natural base or a non-natural base.
  • a nucleoside having the trivalent phosphorus is oxidized with the isotope oxidizing agent. According to this method, the trivalent phosphorus bonded to the nucleoside is converted into the pentavalent phosphorus by oxidation, and the isotope derived from the isotope oxidant is bonded to the pentavalent phosphorus. For this reason, the monomer which has an isotope can be obtained.
  • the nucleoside having trivalent phosphorus preferably includes, for example, a sugar and a base, a base is bonded to the 1′-position of the sugar, and the trivalent phosphorus is bonded to the sugar.
  • the trivalent phosphorus is bonded to the 5′-position, 3′-position or 2′-position of the sugar.
  • the nucleoside having trivalent phosphorus is, for example, the phosphite, specifically, phosphite monoester [R 1 O—P (OX 2 ) —OX 3 ], phosphorus It can be represented by either an acid diester [R 1 O—P (OR 2 ) —OX 3 ] or a phosphorous acid triester [R 1 O—P (OR 2 ) —OR 3 ]. Any of R 1 , R 2 and R 3 is preferably the nucleoside.
  • the trivalent phosphorus compound for example, a polymer containing a nucleoside residue having trivalent phosphorus synthesized in advance is used as the trivalent phosphorus compound, and this is oxidized with the isotope oxidant to introduce an isotope.
  • the trivalent phosphorus in the polymer becomes the pentavalent phosphorus by oxidation, and the isotope derived from the isotope oxidant is bonded to the pentavalent phosphorus, so that a polymer having an isotope can be obtained. it can.
  • the polymer having trivalent phosphorus is a polymer containing two or more nucleoside residues.
  • the nucleoside residue contains a sugar and a base, the base is bonded to the 1'-position of the sugar, and each sugar is bonded via phosphorus between the nucleoside residues.
  • the 5′-position, 3′-position or 2′-position of one sugar and the 5′-position, 3′-position or 2′-position of the other sugar are phosphorous. It is preferable that it couple
  • the combination of the binding sites of the sugar of one nucleotide and the sugar of the other nucleotide is not particularly limited, the combination of the 5 ′ position and the 3 ′ position, the combination of the 5 ′ position and the 5 ′ position, and the 3 ′ position. And the combination of the 3 ′ position and the combination of the 2 ′ position and the 5 ′ position.
  • the phosphorus between at least one pair of nucleoside residues is the trivalent phosphorus.
  • at least one of the phosphorus between the nucleoside residues may be trivalent phosphorus or all may be trivalent phosphorus.
  • the trivalent phosphorus compound is, for example, the phosphite as described above.
  • the phosphite is, for example, either a phosphite diester [R 1 O—P (OR 2 ) —OX 3 ] or a phosphite triester [R 1 O—P (OR 2 ) —OR 3 ]. It can be expressed as R 1 and R 2 are preferably the nucleoside residue or a polymer of the nucleoside residue, and both may be the same or different.
  • the polymer may be, for example, a polymer (polynucleotide) in which the nucleotide residue is phosphodiester linked, or the nucleotide residue is trivalent. A polymer bonded via phosphorus may also be used.
  • the number of nucleotide residues constituting the polymer is not limited.
  • the second method is, for example, a method of performing nucleoside coupling and isotope introduction by oxidation using the isotope oxidant.
  • the said isotope is introduce
  • the method for synthesizing the polymer is not particularly limited, and examples thereof include a phosphite method and an amidite method. These synthesis methods may be, for example, solid phase synthesis or liquid phase synthesis, and are not particularly limited.
  • the second method further includes, for example, a coupling step of synthesizing the trivalent phosphorus compound by coupling two molecules of a monomer including a nucleoside, and in the oxidation step, the coupling is performed.
  • the trivalent phosphorus compound obtained in the step is oxidized with the isotope oxidant to synthesize a pentavalent phosphate compound into which the isotope is introduced.
  • the type of the monomer is not particularly limited, and a known monomer can be used.
  • trivalent phosphorus is bonded to a site bonded to the other monomer, and a protecting group for the hydroxyl group is bonded to a site having another hydroxyl group.
  • the site to which the trivalent phosphorus is bonded is not particularly limited, and examples thereof include the 5′-position, the 3′-position, and the 2′-position, and the site to which the protective group is bonded is not particularly limited, and is 5′-position, 3′-position. Position or 2 'position.
  • the combination of the binding site of the trivalent phosphorus and the binding site of the protecting group is not particularly limited.
  • the combination of the 5 ′ position and the 3 ′ position, the combination of the 5 ′ position and the 5 ′ position, and the 3 ′ position and 3 The combination of 'position', the combination of 2'position and 5'position, etc. can be mentioned.
  • the one monomer has, for example, a trivalent phosphorus bonded to the 3 'position of the sugar of the nucleoside and a hydroxyl protecting group bonded to the 5' position of the sugar.
  • the trivalent phosphorus preferably has a reactive group that reacts with a hydroxyl group.
  • the protecting group is not particularly limited, and examples thereof include a dimethoxytrityl (DMTr) group.
  • the site bonded to the one monomer is preferably a hydroxyl group from which the protecting group is removed.
  • the site to be bonded to the one monomer is not particularly limited, and examples thereof include 5 'position, 3' position and 2 'position.
  • the other monomer is preferably a hydroxyl group with the protecting group at the 5'-position of the sugar of the nucleoside removed.
  • trivalent phosphorus is oxidized to pentavalent phosphorus, and a polymer in which the nucleoside is bonded by a phosphodiester bond having an isotope is synthesized.
  • the monomer to which the protecting group is bonded is not particularly limited, and for example, monomers used in the phosphite method, the amidite method and the like as described above can be applied.
  • Examples of the monomer for the amidite method include known phosphoramidites. Specific examples thereof include TBDMS-amidite, TOM-amidite, and ACE-amidite.
  • the nucleoside is not particularly limited, and includes a sugar and a base as described above, and the base is bonded to the 1'-position of the sugar.
  • the latter monomer is immobilized on a solid phase, for example, other than the binding site with the former monomer.
  • the latter monomer is, for example, a monomer in which the 5'-position of the sugar is a hydroxyl group
  • the 3'-position of the sugar is preferably immobilized on a solid phase.
  • the second method may further include, for example, a deprotecting step of removing the protecting group (for example, the 5 'position) of the sugar of the nucleoside.
  • the method of deprotection is not particularly limited, and can be performed by a known method, for example, depending on the type of protecting group.
  • the method further comprises a coupling step of synthesizing the trivalent phosphorus compound by coupling a new monomer containing a nucleoside to the pentavalent phosphate compound, which is obtained by the coupling step.
  • the obtained trivalent phosphorus compound may be oxidized with the isotope oxidant to synthesize a pentavalent phosphate compound into which the isotope is introduced.
  • the isotope can be introduced into the desired phosphodiester bond by repeatedly performing the coupling step and the oxidation step and using the isotope oxidant in the desired oxidation step or all the oxidation steps.
  • a new monomer is coupled to the pentavalent phosphate compound, for example, after deprotecting a sugar protecting group (for example, the 5 ′ position) on the 5′-terminal nucleoside of the pentavalent phosphate compound. It is preferable to couple the monomers. That is, in the second method, it is preferable to repeat the coupling step, the oxidation step, and the deprotection step. The number of repetitions is not limited at all, and can be performed until the desired polymer length is obtained.
  • R at the 2′-position of the sugar is not particularly limited, and examples thereof include the hydrocarbon groups described above.
  • R at the 2′-position of the sugar is not particularly limited, and examples thereof include the hydrocarbon groups described above.
  • R at the 2′-position of the sugar is not particularly limited, and examples thereof include the hydrocarbon groups described above.
  • R at the 2′-position of the sugar is not particularly limited, and examples thereof include the hydrocarbon groups described above.
  • ⁇ 18 OH can be introduced into the phosphate group, and 3H-1,2-benzodithyl 3-one 1 having 34 S can be introduced.
  • the phosphate group - 34 S - can introduce, by oxidation with DIPEA ⁇ borane complex, a phosphate group - 10 BH 3 - can be introduced.
  • agricultural chemicals, pharmaceuticals, phospholipids, and the like in which isotopes are introduced into phosphate groups can be produced.
  • examples of the agrochemical include marathon and sumithion
  • examples of the pharmaceutical include sodium hydrocortisone phosphate (trade name: Kraton).
  • R is not limited at all, and examples thereof include the hydrocarbon groups as described above.
  • R—OH and a trivalent phosphorus donor are reacted to synthesize a trivalent phosphorus compound.
  • the trivalent phosphorus donor is not particularly limited.
  • the following compounds having a cyano group include 2-cyanoethyl chloro (diisopropylamino) phosphinate (N, N-Diisopropylamino cyanoethyl phosphonamidic chloride) or 2-cyanoethyl.
  • N, N, N, N-tetraisopropyl phosphane (2-Cyanoethyl N, N, N, N-tetraisopropyl phosphane).
  • the pentavalent phosphate compound in which the isotope was introduced into X is obtained by performing the reaction 2 using the above-mentioned isotope oxidant.
  • the isotope oxidant introduces, for example, the oxygen donor when introducing isotope oxygen into X, and the isotope boron when introducing isotope sulfur into X, and the sulfur donor when X is introduced. In this case, it is preferable to use the boron donor.
  • the isotope-containing phosphate compound obtained by the production method of the present invention can be used in place of, for example, a conventional phosphate compound, and its use is not limited at all.
  • RNA labeled with 18 O As a synthetic RNA, 18 O-labeled poly (U) having a base length of 20 mer in which one 18 O was introduced into each phosphate group of a phosphodiester bond was synthesized. Using TBDMS-amidite as a monomer raw material and using a nucleic acid synthesizer (trade name: ABI Expedite 8909, ABI) based on the phosphoramidite method, a coupling step, an oxidation step, and a ribose residue 5 ′ The deprotection step for removing the protective group dimethoxytrityl (DMTr) group at the position was repeated 19 cycles.
  • DMTr dimethoxytrityl
  • the composition used was a THF / pyridine / water mixture containing 0.1 mol / L iodine.
  • the mixing ratio (volume ratio) of THF: pyridine: water was 78: 20: 2.
  • the composition containing the H 2 18 O according to the conventional method.
  • FIG. 1 is a chromatogram showing the results of mass spectrometry of synthetic RNA.
  • the measured value of 18 O-labeled poly (U) was 6094.2.
  • 18 O-labeled poly (U) was evaluated for pH stability. Specifically, 18 O-labeled poly (U) is mixed in a 50 mmol / L phosphate buffer solution having a predetermined pH (pH 3, 4, 5.5, 7, 8.5) so as to be 20 ⁇ mol / L. And incubated at 37 ° C. for 28 days. Then, the stability of the 18 O-labeled poly (U) after incubation was confirmed by analyzing the molecular weight using LC-ESI-Q-Tof-MS (trade name: Waters SYNAPT G2 MS). .
  • LC-ESI-Q-Tof-MS trade name: Waters SYNAPT G2 MS.
  • FIG. 2 is a chromatogram showing mass spectrometry results of 18 O-labeled poly (U) after incubation at each pH.
  • FIG. 2 it is a result after processing by pH 3.0, 4.0, 5.5, 7.0, and 8.5 in an order from the upper graph.
  • the molecular weight of 18 O-labeled poly (U) did not change from the molecular weight before incubation (actual measurement value: 6094.2) regardless of the pH.
  • 18 O-labeled poly (U) was stable at pH 3 to 8.5. That is, it was confirmed that 18 O labeling was stable without being exchanged with water molecules (H 2 16 O) in the surrounding environment at pH 3 to 8.5. This indicates that the 18 O label is similarly stable in the biological environment, and the 18 O label has the necessary stability as a tracer.
  • Example 2 (1) Synthesis of 18 O-labeled siRNA RNA having a length of 21 bases shown in the following SEQ ID NOs: 1 to 4 was synthesized by the same RNA synthesis method as in Example 1. In addition, the said coupling process, the said oxidation process, and the said deprotection process repeated 20 cycles by making these into 1 cycle. In each of these RNAs, one 18 O was introduced into each phosphate group of the phosphodiester bond by the RNA synthesis method. That is, 20 18 O was introduced into each RNA. On the other hand, RNAs of SEQ ID NOs: 1 to 4 were synthesized in the same manner except that unlabeled H 2 16 O was used as the oxidizing agent.
  • the single-stranded RNAs into which 18 O was introduced were designated as target 18 O-sense RNA, target 18 O-antisense RNA, control 18 O-RNA sense, and control 18 O-antisense RNA, respectively. Further, 18 O is a single-stranded RNA having 16 O is not installed, respectively, 16 O-sense RNA target, 16 O-antisense RNA target control for 16 O-sense RNA, 16 for a control O -Antisense RNA.
  • each RNA introduced with 18 O had a measured value that was very close to the theoretical value.
  • the results, 18 O and introduced 21-base-long RNA, respectively, 18 O has proved to be introduced into the phosphodiester bond phosphate groups of 20 locations.
  • the target sense RNA and the target antisense RNA are overhang sequences, and the target sense RNA and the target anti RNA
  • the sense RNA is completely complementary with a length of 19 bases excluding the overhang.
  • the following double strands of the target sense RNA and the target antisense RNA are siRNA (target 18 O-siRNA) against human GAPDH.
  • the sense RNA is completely complementary with a length of 19 bases excluding the overhang.
  • the double strands of the control sense RNA and the control antisense RNA are siRNAs (negative control 18 O-siRNA) that do not show RNA interference with human GAPDH.
  • Double-stranded RNA was formed by combining the obtained single-stranded RNAs as shown below.
  • control sense RNA and the control antisense RNA are overhang sequences
  • the control sense RNA and the control antisense RNA are completely complementary in length of 19 bases excluding the overhang.
  • the double strands of the control sense RNA and the control antisense RNA are siRNAs that do not exhibit RNA interference with human GAPDH.
  • C1 a combination of the control for 16 O-sense RNA and the control for 16 O-antisense RNA (16 O / 16 O)
  • C2 Combination of the control 16 O-sense RNA and the control 18 O-antisense RNA
  • C3 Combination of the control 18 O-sense RNA and the control 16 O-antisense RNA
  • C4 a combination of the control for 18 O-sense RNA and the control for 18 O-antisense RNA (18 O / 18 O)
  • 2 bases (AG) at the 3 ′ end of the target sense RNA (SEQ ID NO: 1) and 2 bases (UU) at the 3 ′ end of the target antisense RNA (SEQ ID NO: 2) are overhang sequences.
  • the target sense RNA and the target antisense RNA are completely complementary in length of 19 bases excluding the overhang.
  • the following double strands of the target sense RNA and the target antisense RNA are siRNAs against human GAPDH.
  • T1 combined with 16 O-antisense RNA for the the 16 O-sense RNA for the target target (16 O / 16 O)
  • T2 Combination of the target 16 O-sense RNA and the target 18 O-antisense RNA
  • T3 Combination of the target 18 O-sense RNA and the target 16 O-antisense RNA
  • T4 combined with 18 O-antisense RNA for the the 18 O-sense RNA for the target target (18 O / 18 O)
  • siRNAs (c1) to (c4) and (t1) to (t4) were subjected to electrophoresis by electrophoresis, and their respective molecular weights were confirmed.
  • electrophoresis a 15% acrylamide gel was used for electrophoresis.
  • FIG. 3 shows the results of confirmation of double strand formation of each siRNA.
  • FIG. 3 is a photograph of Native-PAGE confirming the formation of each siRNA, lanes 1 to 4 are the control siRNAs of (c1) to (c4), and lanes 5 to 8 are the (t1) This is a target siRNA of (t4).
  • the control siRNAs in lanes 1 to 4 showed the same molecular weight
  • the target siRNAs in lanes 5 to 8 showed the same molecular weight. From this result, it was shown that RNA into which 18 O was introduced formed a double strand in the same manner as RNA into which 18 O had not been introduced and became siRNA.
  • FIG. 4 shows the results of the CD spectrum.
  • FIG. 4 shows (c4) control siRNA ( 18 O / 18 O) and (t4) target siRNA ( 18 ) among the siRNAs (c1) to (c4) and (t1) to (t4). O / 18 O) results are shown.
  • the vertical axis represents ellipticity (molecular ellipticity) (millimeter: mdeg), and the horizontal axis represents wavelength (nm).
  • FIG. 4 (A) the (c4) is the result of the control for siRNA (18 O / 18 O)
  • FIG. 4 (B) the result of the (t4) siRNA target (18 O / 18 O) is there.
  • control siRNA all show the same CD spectrum as the (c4) control siRNA in FIG. 4 (A), and the (t1) to (t3) target All siRNAs (not shown) showed the same CD spectrum as the (t4) target siRNA in FIG. 4B. From these results, it was confirmed that the four types of control siRNAs had the same structure and the four types of target siRNAs had the same structure. That, siRNA was introduced 18 O, has been shown to have the same structure as siRNA of 18 O is not installed.
  • thermodynamic stability of siRNA The thermodynamic stability of each siRNA in (4) was confirmed.
  • the thermodynamic stability (Tm value) was measured with a spectrophotometer (trade name UV-1800 UV-VIS, Shimadzu Corporation).
  • Table 3 below shows the confirmation results of the thermodynamic stability. As shown in Table 3 below, for the target siRNA, it was confirmed that each siRNA showed the same thermodynamic stability. Moreover, it was confirmed that each siRNA exhibits the same thermodynamic stability for the control siRNA. Thus, 18 O was introduced siRNA is thermodynamic stability, it was found that the siRNA and the same degree of 18 O is not installed.
  • HCT116 cells derived from human colon adenocarcinoma
  • the culture conditions were 37 ° C. and 5% CO 2 .
  • the medium used was McCoy's 5A medium supplemented with 10% inactivated calf serum.
  • the cells were cultured in the above-mentioned medium, and the culture solution was dispensed into a 24-well plate in a volume of 400 ⁇ L at 4 ⁇ 10 4 cells / well.
  • the siRNA was transfected into the cells using a transfection reagent (trade name Lipofectamine 2000, Invitrogen) according to the attached protocol. Specifically, 100 ⁇ L of the complex of siRNA and transfection reagent was added per well, the total amount was 500 ⁇ L, and the final concentration of siRNA was 0.1 nmol / L.
  • the following primer sets were used for amplification of the GAPDH gene and ⁇ -actin gene, respectively.
  • GAPDH gene amplification primer set 5'-GGAGAAGGCTGGGGCTCATTTGC-3 '(SEQ ID NO: 5) 5'-TGGCCAGGGGTGCTAAGCAGTTG-3 '(SEQ ID NO: 6)
  • Primer set for ⁇ -actin gene amplification 5'-GCCACGGCTGCTTCCAGCTCCTC-3 '(SEQ ID NO: 7) 5'-AGGTCTTTGCGGATGTCCACGTCAC-3 '(SEQ ID NO: 8)
  • the gene expression level was also measured for cells to which the siRNA and the transfection reagent were not added ( ⁇ ).
  • the gene expression level was also measured for cells to which the siRNA was not added and only the transfection reagent was added (mock).
  • FIG. 5 is a graph showing the relative expression level of human GAPDH gene mRNA, and the vertical axis represents the relative gene expression level.
  • the siRNAs into which 18 O was introduced exhibited the same expression suppression activity as the target siRNA into which 18 O had not been introduced.
  • the results, for the siRNA was introduced 18 O it was confirmed that can be used in the same manner as siRNA having 18 O 16 O is not installed.
  • Example 3 The serum concentration of the 18 O-labeled poly (U) synthesized in Example 1 was measured.
  • Serum samples were prepared by adding the 18 O-labeled poly (U) to the mouse pool serum to a predetermined concentration.
  • the predetermined concentration is 0, 0.01, 0.02, 0.04, 0.06, 0.08, 0.1, 0.2, 0.4, 0.6, 0.8, 1, 2 ⁇ g. / ML.
  • the serum sample was lyophilized in a silver capsule. Then, the freeze-dried serum sample was subjected to a stable isotope ratio mass spectrometer connected to a gasification pretreatment apparatus.
  • the gasification pretreatment apparatus used was TC / TA manufactured by Thermo Fisher Scientific, and the stable isotope ratio mass spectrometer used was VELTA V Plus manufactured by Thermo Fisher Scientific.
  • ⁇ 18 O percentage: ⁇ .
  • R (s) is a measured value of the 18 O / 16 O ratio of the serum sample
  • R (r) is a measured value of the 18 O / 16 O ratio of the standard substance.
  • ⁇ 18 O ( ⁇ ) [R (s) / R (r) ⁇ 1] ⁇ 1000
  • FIG. 6 shows a graph of the correlation between the ⁇ 18 O value and the 18 O-labeled poly (U) concentration.
  • the vertical axis represents the ⁇ 18 O value ( ⁇ )
  • the horizontal axis represents the concentration of the 18 O-labeled poly (U).
  • radioisotope-labeled RNA has been used as a method for measuring the blood concentration of RNA.
  • radioisotopes are concerned about the danger of exposure.
  • we use a stable isotope 18 O has been introduced RNA, as shown in FIG. 6, by 18 O-labeled RNA, in the blood, and RNA concentration It was confirmed that there was a correlation with the ⁇ 18 O value ( ⁇ ). For this reason, it can be seen that, by using RNA introduced with 18 O as RNA for pharmaceuticals or the like, for example, after administration to a living body, it is possible to maintain safety and measure blood concentration.
  • Example 4 For the siRNA introduced with 18 O synthesized in Example 2, intracellular localization was observed using a stable isotope microscope.
  • siRNA Using the a combination of said 18 O-sense RNA and 18 O-antisense RNA prepared in Example 2 (c4) control for siRNA (18 O / 18 O) .
  • the cultured cells were washed with PBS and treated with a 2.5% glutaraldehyde / PBS solution at 37 ° C. for 1 hour to fix the cells. Thereafter, the fixed cells were dehydrated by immersing them in 20, 40, 60, 70, 80, 90, 100% ethanol in this order for 10 minutes. Then, tert-butanol was added to the dehydrated cells, frozen in a freezer and dried. The freeze-dried product was coated with a gold coating having a thickness of 30 nm. In this way, a sample was produced.
  • FIG. 7 is a photomicrograph of the intracellular localization of the control siRNA ( 18 O / 18 O).
  • the upper left photograph is a secondary ion image of 16 O
  • the lower left photograph is a secondary ion image of 12 C 14 N
  • the upper right photograph is a secondary ion image of 18 O.
  • the lower right photograph is a secondary ion image of 18 O / 16 O.
  • the secondary ion image of 12 C 14 N is an imaging of organic matter
  • the morphology of the cells could be confirmed from the lower left photograph ( 12 C 14 N) in FIG.
  • the strong portion of 16 O appears white and the weak portion appears black.
  • the photograph ( 16 O) in the upper left of FIG. 7 is blackish as a whole, and thus it was confirmed that natural 16 O was present evenly.
  • the 18 O secondary ion image the 18 O strong portion appears white and the weak portion appears black.
  • the administered siRNA for control 18 O / 18 O
  • the portion with a low 18 O ratio is blue and the portion with a high 18 O ratio is red.
  • the portion corresponding to the white point in the upper right photograph ( 18 O) has a high 18 O / 16 O ratio and is imaged in red (white in the figure). Point), and other locations were imaged blue because the 18 O / 16 O ratio was around 0.002 natural. From these results, it can be seen that, when siRNA introduced with 18 O is used, for example, an image image showing the localization of the siRNA can be obtained from the 18 O / 16 O ratio without using a fluorescent label or the like. It was.
  • fluorescently labeled nucleic acids are generally used for imaging.
  • fluorescent substances are usually hydrophobic and have a large molecular weight, adding them to the ends of nucleic acids may cause the physical properties of the nucleic acids to differ from unmodified forms not modified with fluorescent labels. There is sex. Further, the fluorescent material may be cleaved in vivo.
  • labeling with 18 O suppresses changes in the physical properties of the nucleic acid, can be modified to all phosphate groups, and can also prevent the modification from being removed. For this reason, by using a nucleic acid introduced with 18 O, for example, it is possible to observe the intracellular localization more efficiently.
  • a phosphate compound containing an isotope can be easily produced only by using the oxidant containing the isotope.
  • the production method of the present invention is useful, for example, for the synthesis of a nucleic acid having a phosphate group and the synthesis of a low-molecular compound such as an agrochemical, a pharmaceutical or a phospholipid having a phosphate group.

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Abstract

　同位体を有するリン酸化合物を容易に製造する方法を提供する。　本発明の製造方法は、同位体を有するリン酸化合物の製造方法であって、３価リン化合物を、同位体を含む酸化剤で酸化することによって、前記同位体が導入された５価のリン酸化合物を合成する酸化工程を含む。本発明は、例えば、ＤＮＡおよびＲＮＡ等の核酸の合成に適用することが好ましい。前記同位体は、安定化同位体が好ましい。前記酸化剤は、例えば、Ｈ２ １８Ｏ、３４Ｓを有する３Ｈ－１，２－ベンゾジチール３－オン１，１－ジオキシド、１０Ｂを有するジイソプロピルエチルアミン・ボラン複合体が好ましい。

Description

同位体を有するリン酸化合物の製造方法
　本発明は、同位体を有するリン酸化合物の製造方法に関する。
　生体内における化合物の挙動を確認する方法として、同位体を導入した標識化合物の使用が一般的となっている。前記化合物は、例えば、ＤＮＡおよびＲＮＡ等の核酸があり、前記同位体は、生体への影響がないことから安定同位体の利用が注目されている。
　中でも、安定同位体を導入した核酸の合成は、一般に、予めモノマーに安定同位体を導入し、これを原料としてポリヌクレオチドの合成が行われている。そして、安定同位体を高感度で検出するには、前記ポリヌクレオチドにおいて多数の安定同位体が導入されることが望まれる。しかしながら、この方法によると、多数の安定同位体を導入するには、Ａ、Ｇ、ＣおよびＴ／Ｕの各塩基を含む全てのモノマーに、標識化を行う必要があり、労力がかかりおよびコストが極めて高くなるという問題がある。
　また、安定同位体の導入方法として、２，２’－シクロウリジンを安息香酸（ＰｈＣ１８Ｏ２Ｈ）により開環し、糖の２’位に、安定同位体を有する水酸基（－１８ＯＨ）を導入する方法が開示されている（非特許文献１）。しかしながら、この方法によると、特定のピリミジン塩基を有するヌクレオシドについて標識化できるのみであって、他の塩基を有するヌクレオシドを得ることができない。
　このように安定同位体による標識化の労力およびコスト面の問題は、前記核酸に限られたものではなく、例えば、医薬、農薬等の低分子化合物についても同様である。
Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．２００８　Ｊａｎ.　４；７３（１）：３０９－３１１
　そこで、本発明は、同位体を有するリン酸化合物を容易に製造する方法を提供することを目的とする。
　前記目的を達成するために、本発明の製造方法は、同位体を有するリン酸化合物の製造方法であって、３価リン化合物を、同位体を含む酸化剤で酸化することによって、前記同位体が導入された５価のリン酸化合物を合成する酸化工程を含むことを特徴とする。
　本発明の製造方法によれば、前記同位体を含む酸化剤を使用するのみで、同位体を含むリン酸化合物を容易に製造できる。本発明の製造方法は、例えば、リン酸基を有する核酸の合成や、リン酸基を有する農薬、医薬、リン脂質等の低分子化合物の合成に有用である。
図１は、実施例１において、１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）の質量分析クロマトグラムである。 図２は、実施例１において、所定のｐＨで処理した１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）の質量分析クロマトグラムである。 図３は、実施例２において、１８Ｏを導入したｓｉＲＮＡのＮａｔｉｖｅ－ＰＡＧＥの写真である。 図４は、実施例２において、１８Ｏを導入したｓｉＲＮＡの円偏光二色性スペクトルを示すグラフである。 図５は、実施例２において、ヒトＧＡＰＤＨ遺伝子のｍＲＮＡの発現量の相対値を示すグラフである。 図６は、実施例３において、１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）の濃度と、δ１８Ｏ[‰]との関係を示すグラフである。 図７は、実施例４において、１８Ｏを導入したｓｉＲＮＡの細胞内局在を観察した写真である。
　本発明の製造方法は、前述のように、同位体を有するリン酸化合物の製造方法であって、３価リン化合物を、同位体を含む酸化剤（以下、「同位体酸化剤」という）で酸化することによって、前記同位体が導入された５価のリン酸化合物を合成する酸化工程を含むことを特徴とする。
　本発明の製造方法によれば、前記同位体酸化剤によって、３価リン化合物の３価リンが５価リンに酸化され、これにともない、前記５価リンに前記同位体酸化剤由来の前記同位体が結合する。このため、前記同位体酸化剤による酸化反応を行うのみで、同位体が導入された５価のリン酸化合物が得られる。このため、本発明によれば、例えば、同位体が導入されたリン酸化合物の用途を、さらに広げることが可能になるといえる。
　本発明は、前述のように、前記同位体酸化剤を用いて３価リン化合物を酸化することが特徴であり、その他の構成およびその他の条件は、特に制限されない。
　本発明の製造方法は、前述のように、例えば、リン酸基を有する農薬、医薬、リン脂質等の合成、リン酸基を有するＲＮＡおよびＤＮＡ等の核酸や、モノマーであるヌクレオシド－モノリン酸、ヌクレオシド－ジリン酸、ヌクレオシド－トリリン酸の合成等に適用することが好ましく、中でも、前記核酸の合成に適用することが特に好ましい。前記核酸の合成方法は、何ら制限されず、例えば、ホスファイト法、ホスホアミダイト法（またはホスホロアミダイト法ともいう）（以下、アミダイト法）等があげられる。以下に、アミダイト法を例にあげて説明するが、本発明はこれには限定されない。核酸の固相合成において、アミダイト法は、一般に、モノマーアミダイトのカップリング工程、それによって生ずる３価リンの５価リン（リン酸基）への酸化工程および５’末端の糖の保護基をはずす脱保護工程を１サイクルとして、所望の長さになるまで前記サイクルを繰り返し行う。本発明によれば、前記酸化工程において、前記同位体酸化剤を使用するのみで、容易に、ホスホジエステル結合のリン酸基に同位体を導入できる。また、所望のサイクルの酸化工程のみにおいて、前記同位体酸化剤を使用することで、所望のホスホジエステル結合のみに前記同位体を導入できる。さらに、全てのサイクルの酸化工程において、前記同位体酸化剤を使用することで、全てのホスホジエステル結合のリン酸基に前記同位体を導入することもできる。また、従来では、前述のように、標識したい塩基ごとに、同位体が導入されたアミダイトを合成する必要があったため、労力およびコストがかかるという問題があった。しかしながら、本発明によれば、塩基にかかわらず、ホスホジエステル結合のリン酸基に同位体を導入するため、前述のような塩基ごとに同位体が導入されたアミダイトを合成する必要もない。したがって、労力およびコストを極めて低減することが可能であり、また、目的の合成核酸の塩基配列にも影響受けることがない。
　本発明において、前記酸化剤による酸化反応は、例えば、前記３価リン化合物における３価リンを５価リンに酸化し、且つ、前記５価リンに前記酸化剤由来の原子を結合させる酸化反応である。このため、本発明において、前記同位体酸化剤は、前記５価リンに結合する前記原子が、前記同位体であればよい。
　本発明において、前記同位体酸化剤は、特に制限されず、例えば、前記３価リン化合物における３価リンを５価リンに酸化し、且つ、前記５価リンに原子を供与するものであり、前記５価リンに供与される原子として同位体を有するものであればよい。このような酸化反応を示す酸化剤は、当業者であれば出願時の技術常識から理解可能であり、前記供与される原子として同位体を有する酸化剤は、例えば、市販品を入手でき、また、出願時の技術常識から製造可能である。
　前記同位体は、特に制限されず、例えば、安定同位体でもよく、放射性同位体でもよく、好ましくは前者である。前記安定同位体であれば、例えば、被ばくの危険性が少なく、専用の施設も不要であることから、取り扱い性に優れ、また、コストも抑えることができる。また、前記安定同位体は、例えば、蛍光標識と異なり、標識された化合物の物性変化がなく、トレーサーとしての性質にも優れている。
　前記同位体酸化剤は、特に制限されず、例えば、酸化によって５価リンに同位体酸素を供与する酸素供与体があげられる。前記同位体は、例えば、１７Ｏ、１８Ｏ等があげられ、好ましくは、１８Ｏである。
　前記酸素供与体は、例えば、同位体酸素を有する、水またはペルオキシド（過酸化物）があげられる。前記ペルオキシドは、例えば、化学式Ｒ－Ｏ－Ｏ－Ｒ’で表わされ、ＲおよびＲ’は、例えば、Ｈまたは任意の置換基である。ＲおよびＲ’は、同じでも異なってもよい。前記置換基は、特に制限されず、例えば、炭素数１～１０のアルキル基等があげられ、直鎖でも分岐鎖でもよい。前記アルキル基は、例えば、ｔ-ブチル基等のブチル基等が例示できる。前記ペルオキシドは、例えば、ＲおよびＲ’の少なくとも一方が、水素、ハロゲンまたは一価金属であることが好ましく、より好ましくは、ＲおよびＲ’の少なくとも一方が水素であるヒドロペルオキシドがあげられる。前記ヒドロペルオキシドは、例えば、ｔ－ブチルヒドロペルオキシド等があげられる。前記一価金属は、例えば、アルカリ金属があげられ、ナトリウム、カリウム、リチウム、ルビジウム、セシウム、フランシウム等が例示できる。
　前記酸素供与体は、中でも、例えば、純度の高い市販品を入手可能であることから、特に好ましくは、１８Ｏを有するＨ２ １８Ｏである。前記同位体酸素を有する水を使用する場合、例えば、ヨウ素（Ｉ２）とピリジン（Ｐｙ）とテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）を併用することが好ましい。前記同位体酸素を有する水を使用した場合、得られる５価のリン酸化合物は、例えば、５価のリンに、同位体酸素を有する水酸基（－１８ＯＨ）が結合していることが好ましく、前記水酸基における水素は、例えば、アルカリ金属等の一価金属等で置換されてもよい。前記アルカリ金属は、例えば、ナトリウム、カリウム、リチウム、ルビジウム、セシウム、フランシウム等があげられる。
　前記同位体酸化剤は、この他に、例えば、酸化によって５価リンに同位体硫黄を供与する硫黄供与体があげられる。前記同位体は、例えば、３３Ｓ、３４Ｓ、３６Ｓ等があげられ、好ましくは、３４Ｓである。
　前記硫黄供与体は、例えば、同位体硫黄を有するジスルフィド（－Ｓ－Ｓ－を有する化合物）が好ましく、より好ましくは、有機ジスルフィドであり、さらに好ましくは、環状有機ジスルフィドである。ジスルフィドの具体例としては、例えば、３Ｈ－１，２－ベンゾチオール３－オン１，１－ジオキシド、５－（（ジメチルアミノ－メチリデン）アミノ）－３Ｈ－１，２，４－ジチアゾール－３－チオン等があげられ、好ましくは３Ｈ－１，２－ベンゾジチール３－オン１，１－ジオキシドであり、より好ましくは、３４Ｓを有する３Ｈ－１，２－ベンゾジチール３－オン１，１－ジオキシドである。前記同位体硫黄を有する硫黄供与体を使用した場合、得られる５価のリン酸化合物は、例えば、５価のリンに、同位体硫黄が結合していることが好ましく、具体的には、ホスホロチオエートを形成していることが好ましい。
　また、前記同位体酸化剤は、例えば、酸化によって５価リンに同位体ホウ素を供与するホウ素供与体があげられる。前記同位体は、例えば、１０Ｂ等があげられる。
　前記ホウ素供与体は、例えば、同位体ホウ素を有する、アミン・ボラン複合体が好ましく、より好ましくは、トリアルキルアミン・ボラン複合体である。前記トリアルキルアミン・ボラン複合体は、例えば、Ｃ８Ｈ１９Ｎ・ＢＨ３で表わされるジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＰＥＡ）・ボラン複合体等があげられ、好ましくは、１０Ｂを有するＤＩＰＥＡ・ボラン複合体Ｃ８Ｈ１９Ｎ・１０ＢＨ３である。前記同位体ホウ素を有するＤＩＰＥＡ・ボラン複合体を使用した場合、得られる５価のリン酸化合物は、例えば、５価のリンに、同位体ホウ素を有するボラン基（－１０ＢＨ３ －）が結合していることが好ましく、具体的には、ボラノフォスフェートを形成していることが好ましい。前記アミン・ボラン複合体において、前記ボラン基の水素は、例えば、ハロゲンで置換されてもよい。前記ハロゲンは、例えば、Ｆ、Ｃｌ、Ｂｒ、Ｉ等があげられる。また、前記ボラン基は、例えば、一価金属または二価金属と塩を形成してもよい。前記一価金属は、例えば、アルカリ金属であり、ナトリウム、カリウム、リチウム、ルビジウム、セシウム、フランシウム等が例示できる。二価金属は、例えば、アルカリ土類金属であり、例えば、カルシウム、ストロンチウム、バリウム、ラジウム等があげられる。
　本発明において、前記３価リン化合物は、特に制限されず、３価のリンを有する化合物であればよい。前記３価リン化合物は、例えば、亜リン酸、亜リン酸エステルがあげられる。
　前記亜リン酸は、例えば、亜リン酸［ＨＰ（Ｏ）（ＯＨ）２］の他に、亜リン酸塩、亜リン酸誘導体等を含む。本発明の製造方法によれば、前記３価リン化合物として前記亜リン酸を使用することにより、リンに同位体が結合したリン酸を製造できる。得られるリン酸は、例えば、リン酸塩、リン酸誘導体等の意味も含む。
　前記亜リン酸エステルは、例えば、亜リン酸モノエステル［Ｒ１Ｏ－Ｐ（ＯＸ２）－ＯＸ３］、亜リン酸ジエステル［Ｒ１Ｏ－Ｐ（ＯＲ２）－ＯＸ３］、亜リン酸トリエステル［Ｒ１Ｏ－Ｐ（ＯＲ２）－ＯＲ３］のいずれでもよい。前記Ｘ２およびＸ３は、例えば、水素、または一価金属である。前記一価金属は、例えば、アルカリ金属であり、例えば、ナトリウム、カリウム、リチウム、ルビジウム、セシウム、フランシウム等が例示できる。前記Ｒ１、Ｒ２およびＲ３は、何ら限定されず、後述する炭化水素基等の各種有機基があげられる。前記３価リン化合物として前記亜リン酸エステルを使用することにより、リンに同位体が結合したリン酸エステルを製造できる。
　本発明の製造方法により合成される前記５価のリン酸化合物が、前記核酸の場合、前記核酸は、例えば、モノマーでもよいし、前記モノマーが重合したポリマーでもよい。
　前記モノマーは、例えば、ＲＮＡまたはＤＮＡを構成するヌクレオチドがあげられる。前記ヌクレオチドは、例えば、糖と塩基からなるヌクレオシドに、５価のリン酸基が結合している。前記ヌクレオチドは、具体的には、糖、塩基および５価のリン酸基を有し、前記糖の１’位に前記塩基が結合し、前記糖の５’位、３’位または２’位に前記５価のリン酸基が結合している。前記ヌクレオチドは、具体的には、リボヌクレオチドおよびデオキシリボヌクレオチドがあげられる。前記ヌクレオチドは、例えば、前記ヌクレオチドの誘導体の意味も含む。前記ポリマーは、例えば、前記ヌクレオチドの重合体であり、具体的には、リボヌクレオチドの重合体であるＲＮＡ、デオキシリボヌクレオチドの重合体であるＤＮＡ、リボヌクレオチドとデオキシリボヌクレオチドとの重合体（ＤＮＡ／ＲＮＡキメラ）等があげられる。前記ポリマーにおいて、例えば、前記モノマーの重合数は限定されず、オリゴマーの意味も含む。前記ポリマーは、例えば、一方のヌクレオチドの糖と、他方のヌクレオチドの糖とが、前記リン酸基を介して結合している。具体的には、例えば、前記ヌクレオチド残基間は、一方の糖の５’位、３’位または２’位と、他方の糖の５’位、３’位または２’位とが、前記リン酸基を介して結合していることが好ましい。前記一方のヌクレオチドの糖と、前記他方のヌクレオチドの糖との結合部位の組合せは、特に制限されず、５’位と３’位の組合せ、５’位と５’位の組合せ、３’位と３’位の組合せ、２’位と５’位の組合せ等があげられる。
　前記ヌクレオチドにおいて、前記糖は、例えば、２’位の炭素原子にヒドロキシ基が結合したリボースでもよいし、前記２’位の炭素原子に水素原子が結合したデオキシリボースでもよい。前記リボースは、例えば、前記ヒドロキシ基が、任意の原子または基で置換（修飾）されてもよい。前記原子は、例えば、水素原子、ハロゲン原子等があげられ、前記ハロゲン原子は、例えば、Ｆ、Ｃｌ、Ｂｒ、Ｉ等があげられ、中でもＦ（フッ素原子）が好ましい。前記基は、例えば、アルコキシ基（－Ｏ－アルキル基）、アシルオキシ基（－Ｏ－アシル基）および、アミノ基（ＮＨ２基）またはそのＨが置換基で置換された置換アミノ基等があげられる。前記アルコキシ基（－Ｏ－アルキル基）は、特に制限されず、例えば、メトキシ基（－Ｏ－Ｍｅ基）があげられ、前記アルキル基は、制限されない。前記アシルオキシ基（－Ｏ－アシル基）は、特に制限されず、例えば、－Ｏ－ＣＨＯ基等があげられ、前記アシル基は、制限されない。また、前記デオキシリボースは、例えば、前記水素原子が、任意の原子に置換（修飾）されてもよい。前記原子は、例えば、前記ハロゲン原子等があげられる。
　前記塩基は、特に制限されず、アデニン、グアニン、シトシン、チミン、ウラシル等があげられ、その他に、これらの置換塩基として、例えば、７－デアザグアニン、７－デアザ－８－アザグアニン、５－プロピニルシトシン、５－プロピニルウラシル、７－デアザアデニン、７－デアザ－８－アザアデニン、７－デアザ－６－オキソプリン、６－オキソプリン、３－デアザアデノシン、２－オキソ－５－メチルピリミジン、２－オキソ－４－メチルチオ－５－メチルピリミジン、２－チオカルボニル－４－オキソ－５－メチルピリミジン、４－オキソ－５－メチルピリミジン、２－アミノプリン、５－フロロウラシル、２，６－ジアミノプリン、８－アミノプリン、４－トリアゾロ－５－メチルチミン、４－トリアゾロ－５－メチルウラシルおよびヒポキサンチン等があげられる。前記塩基は、例えば、天然の塩基でもよいし、非天然の塩基でもよい。
　前記同位体が導入された前記モノマーを製造する場合、例えば、前記３価リン化合物として、前記３価リンを有するヌクレオシドを、前記同位体酸化剤により酸化する。この方法によれば、前記ヌクレオシドに結合した前記３価リンが酸化により前記５価リンとなり、前記５価リンに前記同位体酸化剤由来の同位体が結合する。このため、同位体を有するモノマーを得ることができる。
　前記３価リンを有するヌクレオシドは、例えば、糖と塩基を含み、前記糖の１’位に塩基が結合し、前記糖に前記３価リンが結合していることが好ましく、より好ましくは、前記糖の５’位、３’位または２’位に前記３価リンが結合している。
　前記３価リンを有するヌクレオシドは、前述のように、例えば、前記亜リン酸エステルであり、具体的に、亜リン酸モノエステル［Ｒ１Ｏ－Ｐ（ＯＸ２）－ＯＸ３］、亜リン酸ジエステル［Ｒ１Ｏ－Ｐ（ＯＲ２）－ＯＸ３］または亜リン酸トリエステル［Ｒ１Ｏ－Ｐ（ＯＲ２）－ＯＲ３］のいずれで表わすこともできる。前記Ｒ１、Ｒ２およびＲ３のいずれかが、前記ヌクレオシドであることが好ましい。
　前記同位体が導入された前記ポリマーを製造する場合、例えば、以下に示す第１の方法および第２の方法があげられる。
　第１の方法は、例えば、前記３価リン化合物として、予め合成した３価リンを有するヌクレオシド残基を含むポリマーを使用し、これを前記同位体酸化剤により酸化して、同位体を導入する方法である。この方法によれば、前記ポリマーにおける前記３価リンが酸化により前記５価リンとなり、前記５価リンに前記同位体酸化剤由来の同位体が結合するため、同位体を有するポリマーを得ることができる。
　前記３価リンを有する前記ポリマーは、２以上のヌクレオシド残基を含むポリマーである。前記ヌクレオシド残基は、糖と塩基を含み、前記糖の１’位に前記塩基が結合し、前記ヌクレオシド残基間は、それぞれの糖が、リンを介して結合している。具体的には、例えば、前記ヌクレオシド残基間は、一方の糖の５’位、３’位または２’位と、他方の糖の５’位、３’位または２’位とが、リンを介して結合していることが好ましい。前記一方のヌクレオチドの糖と、前記他方のヌクレオチドの糖との結合部位の組合せは、特に制限されず、５’位と３’位の組合せ、５’位と５’位の組合せ、３’位と３’位の組合せ、２’位と５’位の組合せ等があげられる。そして、少なくとも一組のヌクレオシド残基間のリンが、前記３価リンである。前記ポリマーにおいて、前記ヌクレオシド残基間のリンは、例えば、少なくとも一つが３価リンでもよいし、全てが３価リンでもよい。前者の場合、前記ポリマーにおける３価リンのみが５価リンに酸化され、前記５価リンに前記同位体酸化剤由来の同位体が導入され、後者の場合、全てのヌクレオシド残基間の３価リンが５価リンに酸化され、前記５価リンに前記同位体酸化剤由来の同位体が導入される。
　前記３価リン化合物は、例えば、前述のように、前記亜リン酸エステルである。前記亜リン酸エステルは、例えば、亜リン酸ジエステル［Ｒ１Ｏ－Ｐ（ＯＲ２）－ＯＸ３］、亜リン酸トリエステル［Ｒ１Ｏ－Ｐ（ＯＲ２）－ＯＲ３］のいずれかで表わすことができる。前記Ｒ１およびＲ２が、前記ヌクレオシド残基または前記ヌクレオシド残基のポリマーであることが好ましく、両者は、同じでも異なってもよい。前記Ｒ１および／またはＲ２が、前記ヌクレオシド残基のポリマーの場合、前記ポリマーは、例えば、前記ヌクレオチド残基がホスホジエステル結合したポリマー（ポリヌクレオチド）でもよいし、前記ヌクレオチド残基が３価リンを介して結合したポリマーでもよい。前記ポリマーを構成するヌクレオチド残基の数は、制限されない。
　第２の方法は、例えば、ヌクレオシドのカップリングと、前記同位体酸化剤を用いた酸化による同位体の導入とを行う方法である。これにより、任意のヌクレオシド残基間の５価リンに前記同位体を導入して、同位体を有するポリマーを合成できる。前記ポリマーの合成方法は、特に制限されず、例えば、ホスファイト法、アミダイト法等があげられる。これらの合成方法は、例えば、固相合成でもよいし、液相合成でもよく、特に制限されない。
　具体的に、第２の方法は、例えば、さらに、ヌクレオシドを含む２分子のモノマーをカップリングして、前記３価リン化合物を合成するカップリング工程を有し、前記酸化工程において、前記カップリング工程により得られた前記３価リン化合物を、前記同位体酸化剤により酸化して、前記同位体が導入された５価のリン酸化合物を合成する方法である。
　前記モノマーの種類は、特に制限されず、公知のモノマーが使用できる。前記一方のモノマーは、例えば、前記ヌクレオシドの糖において、前記他方のモノマーと結合する部位に、３価リンが結合し、その他の水酸基を有する部位に、前記水酸基に対する保護基が結合していることが好ましい。前記３価リンが結合する部位は、特に制限されず、５’位、３’位または２’位があげられ、前記保護基が結合する部位は、特に制限されず、５’位、３’位または２’位があげられる。前記３価リンの結合部位と前記保護基の結合部位の組合せは、特に制限されず、例えば、５’位と３’位の組合せ、５’位と５’位の組合せ、３’位と３’位の組合せ、２’位と５’位の組合せ等があげられる。具体例として、前記一方のモノマーは、例えば、前記ヌクレオシドの糖の３’位に３価リンが結合し、前記糖の５’位に水酸基の保護基が結合していることが好ましい。前記３価リンは、水酸基と反応する反応基を有することが好ましい。前記保護基は、特に制限されず、例えば、ジメトキシトリチル（ＤＭＴｒ）基等があげられる。
　前記他方のモノマーは、前記ヌクレオシドの糖において、前記一方のモノマーと結合する部位が、前記保護基がはずれた水酸基であることが好ましい。前記一方のモノマーと結合する部位は、特に制限されず、５’位、３’位または２’位があげられる。具体例として、前記他方のモノマーは、前記ヌクレオシドの糖の５’位の保護基がはずれ、水酸基であることが好ましい。前記カップリング工程において、前記２分子のモノマーをカップリングすると、前者の前記反応基（例えば、３’位）と、後者の前記糖の水酸基（例えば、５’位）とが反応し、前記モノマー間が３価リンを介して結合する。前記モノマー間の３価リンを前記同位体酸化剤で酸化することにより、３価リンが５価リンに酸化され、同位体を有するホスホジエステル結合で前記ヌクレオシドが結合したポリマーが合成される。
　前記保護基が結合したモノマーは、特に制限されず、例えば、前述のようなホスファイト法、アミダイト法等に使用するモノマーが適用できる。前記アミダイト法のモノマーは、例えば、公知のホスホロアミダイトがあげられ、具体例としては、例えば、ＴＢＤＭＳ－アミダイト、ＴＯＭ-アミダイト、ＡＣＥ－アミダイト等があげられる。
　前記ヌクレオシドは、特に制限されず、前述と同様に、糖と塩基を含み、前記糖の１’位に前記塩基が結合している。固相合成を行う場合、前記後者のモノマーは、例えば、前記前者のモノマーとの結合部位以外が、固相に固定化されていることが好ましい。具体例として、前記後者のモノマーが、例えば、前記糖の５’位が水酸基であるモノマーの場合、例えば、前記糖の３’位が固相に固定化されていることが好ましい。
　前記第２の方法は、例えば、さらに、前記ヌクレオシドの糖の前記保護基（例えば、５’位）をはずす脱保護工程を含んでもよい。脱保護の方法は、特に制限されず、例えば、保護基の種類に応じて、公知の方法により行うことができる。
　また、前記第２の方法は、ヌクレオシドのカップリングと前記同位体酸化剤を用いた酸化による同位体の導入とを、繰り返し行うこともできる。具体的には、さらに、前記５価のリン酸化合物に、ヌクレオシドを含む新たなモノマーをカップリングして、前記３価のリン化合物を合成するカップリング工程を有し、前記カップリング工程により得られた前記３価リン化合物を、前記同位体酸化剤により酸化して、前記同位体が導入された５価のリン酸化合物を合成する方法でもよい。
　このようにカップリング工程と酸化工程とを繰り返し行い、所望の前記酸化工程または全ての酸化工程において、前記同位体酸化剤を使用することで、所望のホスホジエステル結合に同位体を導入できる。
　前記５価のリン酸化合物に新たなモノマーをカップリングする際、例えば、前記５価のリン酸化合物について、５’末端のヌクレオシドにおける糖の保護基（例えば、５’位）を脱保護した後、前記モノマーをカップリングすることが好ましい。すなわち、前記第２の方法は、前記カップリング工程と前記酸化工程と前記脱保護工程とを繰り返し行うことが好ましい。この繰り返しの回数は、何ら制限されず、所望のポリマーの長さとなるまで行うことができる。
　以下に、前記同位体を有する同位体酸化剤を使用して、核酸へ同位体を導入する反応の一例を示す。本発明は、これらの例に制限されない。下記式において、糖の２’位におけるＲは、特に制限されず、例えば、前述した炭化水素基があげられる。下記式に示すように、例えば、Ｉ２／Ｐｙ／Ｈ２ １８Ｏで酸化することによって、リン酸基に－１８ＯＨを導入でき、３４Ｓを有する３Ｈ－１，２－ベンゾジチール３－オン１，１－ジオキシドで酸化することによって、リン酸基に－３４Ｓ－を導入でき、ＤＩＰＥＡ・ボラン複合体で酸化することによって、リン酸基に－１０ＢＨ３ －を導入できる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
　本発明の製造方法によれば、例えば、リン酸基に同位体が導入された農薬、医薬、リン脂質等を製造することもできる。前記農薬は、例えば、マラソン、スミチオン等があげられ、前記医薬は、例えば、ヒドロコルチゾンリン酸エステルナトリウム（商品名：クレイトン）等があげられる。
　以下に、アルコールを出発原料として、リン酸基に同位体が導入された低分子リン酸化合物を合成する反応の一例を示す。本発明は、これには制限されない。下記式（１）において、Ｒは、何ら制限されず、例えば、前述のような炭化水素基があげられる。まず、反応１において、Ｒ－ＯＨと３価リン供与体とを反応させ、３価リン化合物を合成する。前記３価リン供与体は、特に制限されず、例えば、以下に示すシアノ基を有する化合物として、クロロ（ジイソプロピルアミノ）亜ホスフィン酸２－シアノエチル（N,N-Diisopropylamino　cyanoethyl　phosphonamidic　chloride）または２－シアノエチル　Ｎ，Ｎ，Ｎ，Ｎ－テトライソプロピル　ホスファン（2-Cyanoethyl　N,N,N,N-tetraisopropyl　phosphane）があげられる。そして、前述のような前記同位体酸化剤を用いて、反応２を行うことで、Ｘに同位体が導入された５価のリン酸化合物が得られる。前記同位体酸化剤は、例えば、Ｘに同位体酸素を導入する場合は、前記酸素供与体、Ｘに同位体硫黄を導入する場合は、前記硫黄供与体、Ｘに、同位体ホウ素を導入する場合は、前記ホウ素供与体を使用することが好ましい。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
　本発明の製造方法により得られる同位体含有リン酸化合物は、例えば、従来のリン酸化合物に代えて使用でき、その用途は何ら制限されない。
　つぎに、本発明の実施例について説明する。なお、本発明は、下記の実施例により限定及び制限されない。
［実施例１］
（１）１８Ｏで標識されたＲＮＡの合成
　合成ＲＮＡとして、ホスホジエステル結合の各リン酸基に１つの１８Ｏを導入した、塩基長２０ｍｅｒの１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）を合成した。モノマー原料として、ＴＢＤＭＳ－アミダイトを使用し、核酸合成機（商品名ＡＢＩ　Ｅｘｐｅｄｉｔｅ　８９０９、ＡＢＩ社）を用いて、ホスホロアミダイト法に基づいて、カップリング工程、酸化工程、およびリボース残基の５’位の保護基ジメトキシトリチル（ＤＭＴｒ）基をはずす脱保護工程を１サイクルとして１９サイクル繰り返した。全ての酸化工程において、同位体酸化剤として、同位体酸素１８Ｏを有するＨ２ １８Ｏ（ＷＡＴＥＲ－１８Ｏ、純度１８Ｏ　ａｔｏｍ％＝９９．２％、大陽日酸株式会社）を含む組成物を使用した。前記組成物は、０．１ｍｏｌ／Ｌヨウ素を含むＴＨＦ／ピリジン／水の混合液を使用した。前記混合液において、ＴＨＦ：ピリジン：水の混合比（体積比）は、７８：２０：２とした。なお、前記Ｈ２ １８Ｏを含む前記組成物を使用した以外は、定法に従った。
（２）分子量測定
　得られた１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）について、定法に基づき、マトリックス支援レーザー脱離イオン化飛行時間型質量分析装置（商品名Ｂｒｕｋｅｒ　ＡＵＴＯＦＬＥＸ）を使用して分子量を測定した。
　分析結果を図１に示す。図１は、合成ＲＮＡの質量分析結果を示すクロマトグラムである。１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）の実測値は６０９４．２であった。
　１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）は、前述のようにカップリング工程、酸化工程および脱保護工程を１９サイクル行っていることから、理論上、１８Ｏが１９個導入されていることとなる。このため、１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）の分子量は、未標識ポリ（Ｕ）の分子量６０６１．４と比較して、３８（２×１９原子）増加する計算となる。しかしながら、実際には、使用したＨ２ １８Ｏの純度が９９．２％であるため、分子量は、２×１９原子×（純度０．９９２）１９＝３２．６増加することとなる。これに基づくと、合成した前記１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）の理論分子量は、６０６１．４＋３２．６＝６０９４．０となる。前述のように実測値は６０９４．２であることから、理論分子量６０９４．０と極めて近似している。したがって、この結果から、実施例により、２０ｍｅｒのポリ（Ｕ）において、１９箇所のホスホジエステル結合のリン酸基に１８Ｏが導入されたことが証明された。
（３）ｐＨ安定性評価
　得られた１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）について、ｐＨ安定性を評価した。具体的には、所定ｐＨ（ｐＨ３、４、５．５、７、８．５）の５０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液に、２０μｍｏｌ/Ｌとなるように１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）を混合し、３７℃で２８日間インキュベートした。そして、インキュベート後の前記１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）について、ＬＣ－ＥＳＩ－Ｑ－Ｔｏｆ-ＭＳ（商品名：Ｗａｔｅｒｓ　ＳＹＮＡＰＴ　Ｇ２　ＭＳ）を用いて分子量を分析することにより、その安定性を確認した。
　これらの結果を図２に示す。図２は、前記各ｐＨでインキュベートした後の１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）の質量分析結果を示すクロマトグラムである。図２において、上のグラフから順に、ｐＨ３．０、４．０、５．５、７．０および８．５で処理した後の結果である。図２に示すように、いずれのｐＨで処理しても、１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）の分子量は、インキュベート前の分子量（実測値：６０９４．２）から変化が無かった。この結果から、１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）は、ｐＨ３～８．５において安定であることが確認された。すなわち、１８Ｏ標識は、ｐＨ３～８．５において、周辺環境の水分子（Ｈ２ １６Ｏ）と交換されずに安定であることが確認された。このことは、１８Ｏ標識が、生体環境においても同様に安定であり、１８Ｏ標識が、トレーサーとして必要な安定性を有していることを示す。
［実施例２］
（１）１８Ｏ標識化ｓｉＲＮＡの合成
　前記実施例１と同様のＲＮＡ合成方法により、下記配列番号１～４に示す２１塩基長のＲＮＡを合成した。なお、前記カップリング工程、前記酸化工程および前記脱保護工程は、これらを１サイクルとして２０サイクル繰り返した。これらのＲＮＡは、いずれも、前記ＲＮＡ合成方法により、ホスホジエステル結合の各リン酸基に１つの１８Ｏが導入された。つまり、各ＲＮＡは、２０個の１８Ｏが導入された。他方、酸化剤として、未標識のＨ２ １６Ｏを使用した以外は、同様にして、配列番号１～４のＲＮＡを合成した。
ターゲット用センスＲＮＡ
　5’-CCAUGAGAAGUAUGACAACAG-3’　（配列番号１）
ターゲット用アンチセンスＲＮＡ
　5’-GUUGUCAUACUUCUCAUGGUU-3’　（配列番号２）
コントロール用センスＲＮＡ
　5’-UACUAUUCGACACGCGAAGUU-3’　（配列番号３）
コントロール用アンチセンスＲＮＡ
　5’-CUUCGCGUGUCGAAUAGUAUU-3’　（配列番号４）
　１８Ｏが導入された一本鎖ＲＮＡを、それぞれ、ターゲット用１８Ｏ‐センスＲＮＡ、ターゲット用１８Ｏ-アンチセンスＲＮＡ、コントロール用１８Ｏ‐ＲＮＡセンス、コントロール用１８Ｏ‐アンチセンスＲＮＡとした。また、１８Ｏが未導入である１６Ｏを有する一本鎖ＲＮＡを、それぞれ、ターゲット用１６Ｏ‐センスＲＮＡ、ターゲット用１６Ｏ-アンチセンスＲＮＡ、コントロール用１６Ｏ‐センスＲＮＡ、コントロール用１６Ｏ‐アンチセンスＲＮＡとした。
（２）一本鎖ＲＮＡの分子量測定
　得られた各一本鎖ＲＮＡについて、前記実施例１と同様にして、分子量を測定した。下記表１に、測定した分子量（Observed　mass）および理論上の算出値（Calculated　mass）を併せて示す。なお、理論上の算出値は、使用したＨ２ １８Ｏの１８Ｏ純度９９．２％を考慮して求めた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　前記表１に示すように、１８Ｏを導入した各ＲＮＡは、実測値が、理論値と極めて近似していた。この結果から、１８Ｏを導入した２１塩基長のＲＮＡは、それぞれ、２０箇所のホスホジエステル結合のリン酸基に１８Ｏが導入されたことが証明された。
　前記ターゲット用センスＲＮＡの３’末端の２塩基（ＡＧ）および前記ターゲット用アンチセンスＲＮＡの３’末端の２塩基（ＵＵ）は、オーバーハング配列であり、前記ターゲット用センスＲＮＡおよび前記ターゲット用アンチセンスＲＮＡは、前記オーバーハングを除く１９塩基長が完全に相補である。以下に示す前記ターゲット用センスＲＮＡと前記ターゲット用アンチセンスＲＮＡとの二本鎖は、ヒトＧＡＰＤＨに対するｓｉＲＮＡ（ターゲット１８Ｏ‐ｓｉＲＮＡ）である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
　前記コントロール用センスＲＮＡの３’末端の２塩基（ＵＵ）および前記コントロール用アンチセンスＲＮＡの３’末端の２塩基（ＵＵ）は、オーバーハング配列であり、前記コントロール用センスＲＮＡおよび前記コントロール用アンチセンスＲＮＡは、前記オーバーハングを除く１９塩基長が完全に相補である。前記コントロール用センスＲＮＡと前記コントロール用アンチセンスＲＮＡとの二本鎖は、ヒトＧＡＰＤＨに対するＲＮＡ干渉能を示さないｓｉＲＮＡ（ネガティブコントロール１８Ｏ‐ｓｉＲＮＡ）である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
（３）各一本鎖ＲＮＡの純度評価
　得られた各一本鎖ＲＮＡについて、下記条件のＨＰＬＣによって純度を分析した。前記純度は、前記ＨＰＬＣにおける全ピーク面積を１００％とし、前記各一本鎖ＲＮＡの理論分子量に該当するリテンションタイムにおけるピーク面積の割合で示す。
（ＨＰＬＣ条件）
分析装置：Shimadzu　LC-10A　system（島津製作所）
カラム：XBridge　OST　C18,　2.5μm（Waters）
カラムサイズ：4.6×50mm
溶出液：
　Ａ：50mmol/L　酢酸トリエチルアンモニウム（pH7.4）　＋　5%　アセトニトリル
　Ｂ：50mmol/L　酢酸トリエチルアンモニウム（pH7.4）　＋　50%　アセトニトリル
　グラジェント：%B　5%→10%／20min
流速：1.0　mL/min
検出器：UV検出器（254nm）
　これらの分析結果を、下記表２に示す。下記表２に示すように、１８Ｏを導入した各ＲＮＡは、いずれも高い純度を示し、１８Ｏ未導入の１６Ｏ‐ＲＮＡと同程度であった。この結果から、１８Ｏ標識したＲＮＡは１８Ｏ未導入のＲＮＡと同収率、同純度で合成できることが証明された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
（４）二本鎖ＲＮＡの形成
　得られた各一本鎖ＲＮＡを組合せて、以下に示すように、二本鎖ＲＮＡを形成した。
　前記コントロール用センスＲＮＡ（配列番号３）の３’末端の２塩基（ＵＵ）および前記コントロール用アンチセンスＲＮＡ（配列番号４）の３’末端の２塩基（ＵＵ）は、オーバーハング配列であり、前記コントロール用センスＲＮＡおよび前記コントロール用アンチセンスＲＮＡは、前記オーバーハングを除く１９塩基長が完全に相補である。前記コントロール用センスＲＮＡと前記コントロール用アンチセンスＲＮＡとの二本鎖は、ヒトＧＡＰＤＨに対するＲＮＡ干渉能を示さないｓｉＲＮＡである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
　そこで、下記組合せのコントロール用ｓｉＲＮＡを形成した。
（ｃ１）前記コントロール用１６Ｏ‐センスＲＮＡと前記コントロール用１６Ｏ‐アンチセンスＲＮＡとの組み合わせ（１６Ｏ／１６Ｏ）
（ｃ２）前記コントロール用１６Ｏ‐センスＲＮＡと前記コントロール用１８Ｏ‐アンチセンスＲＮＡとの組み合わせ（１６Ｏ／１８Ｏ）
（ｃ３）前記コントロール用１８Ｏ‐センスＲＮＡと前記コントロール用１６Ｏ‐アンチセンスＲＮＡとの組み合わせ（１８Ｏ／１６Ｏ）
（ｃ４）前記コントロール用１８Ｏ‐センスＲＮＡと前記コントロール用１８Ｏ‐アンチセンスＲＮＡとの組み合わせ（１８Ｏ／１８Ｏ）
　他方、前記ターゲット用センスＲＮＡ（配列番号１）の３’末端の２塩基（ＡＧ）および前記ターゲット用アンチセンスＲＮＡ（配列番号２）の３’末端の２塩基（ＵＵ）は、オーバーハング配列であり、前記ターゲット用センスＲＮＡおよび前記ターゲット用アンチセンスＲＮＡは、前記オーバーハングを除く１９塩基長が完全に相補である。以下に示す前記ターゲット用センスＲＮＡと前記ターゲット用アンチセンスＲＮＡとの二本鎖は、ヒトＧＡＰＤＨに対するｓｉＲＮＡである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
　そこで、下記組合せのターゲット用ｓｉＲＮＡを形成した。
（ｔ１）前記ターゲット用１６Ｏ‐センスＲＮＡと前記ターゲット用１６Ｏ‐アンチセンスＲＮＡとの組み合わせ（１６Ｏ／１６Ｏ）
（ｔ２）前記ターゲット用１６Ｏ‐センスＲＮＡと前記ターゲット用１８Ｏ‐アンチセンスＲＮＡとの組み合わせ（１６Ｏ／１８Ｏ）
（ｔ３）前記ターゲット用１８Ｏ‐センスＲＮＡと前記ターゲット用１６Ｏ‐アンチセンスＲＮＡとの組み合わせ（１８Ｏ／１６Ｏ）
（ｔ４）前記ターゲット用１８Ｏ‐センスＲＮＡと前記ターゲット用１８Ｏ‐アンチセンスＲＮＡとの組み合わせ（１８Ｏ／１８Ｏ）
　そして、電気泳動により前記（ｃ１）～（ｃ４）および（ｔ１）～（ｔ４）のｓｉＲＮＡを電気泳動に供し、それぞれの分子量を確認した。電気泳動は、１５％アクリルアミドゲルを使用した。
　図３に、前記各ｓｉＲＮＡの二本鎖形成の確認結果を示す。図３は、各ｓｉＲＮＡの形成を確認するＮａｔｉｖｅ－ＰＡＧＥの写真であり、レーン１～４は、前記（ｃ１）～（ｃ４）のコントロール用ｓｉＲＮＡであり、レーン５～８は、前記（ｔ１）～（ｔ４）のターゲット用ｓｉＲＮＡである。図３に示すように、レーン１～４の前記コントロール用ｓｉＲＮＡは、同程度の分子量を示し、レーン５～８の前記ターゲット用ｓｉＲＮＡは、同程度の分子量を示した。この結果から、１８Ｏを導入したＲＮＡは、１８Ｏ未導入のＲＮＡと同様に二本鎖を形成し、ｓｉＲＮＡとなることが示された。
（５）ｓｉＲＮＡの構造
　前記（４）における各ｓｉＲＮＡについて、円偏光二色性スペクトル（ＣＤスペクトル）により、構造を比較した。測定は、分光偏光計（商品名Ｊ－７２０Ｗ、ジャスコインターナショナル）を用いて行った。図４に、ＣＤスペクトルの結果を示す。図４には、前記（ｃ１）～（ｃ４）および（ｔ１）～（ｔ４）のｓｉＲＮＡのうち、前記（ｃ４）コントロール用ｓｉＲＮＡ（１８Ｏ／１８Ｏ）および前記（ｔ４）ターゲット用ｓｉＲＮＡ（１８Ｏ／１８Ｏ）の結果を示した。図４において、縦軸が、ｅｌｌｉｐｔｉｃｉｔｙ（分子楕円率）（ミリ度：ｍｄｅｇ）であり、横軸が、波長（ｎｍ）である。図４（Ａ）は、前記（ｃ４）コントロール用ｓｉＲＮＡ（１８Ｏ／１８Ｏ）の結果であり、図４（Ｂ）は、前記（ｔ４）ターゲット用ｓｉＲＮＡ（１８Ｏ／１８Ｏ）の結果である。
　前記（ｃ１）～（ｃ３）コントロール用ｓｉＲＮＡ（図示せず）は、全て、図４（Ａ）の前記（ｃ４）コントロール用ｓｉＲＮＡと同じＣＤスペクトルを示し、前記（ｔ１）～（ｔ３）ターゲット用ｓｉＲＮＡ（図示せず）は、全て、図４（Ｂ）の前記（ｔ４）ターゲット用ｓｉＲＮＡと同じＣＤスペクトルを示した。この結果から、４種類のコントロール用ｓｉＲＮＡは、同様の構造を有し、４種類のターゲット用ｓｉＲＮＡは、同様の構造を有していることが、それぞれ確認された。すなわち、１８Ｏを導入したｓｉＲＮＡは、１８Ｏ未導入のｓｉＲＮＡと同様の構造を有していることが示された。
（６）ｓｉＲＮＡの熱力学的安定性
　前記（４）における各ｓｉＲＮＡについて、熱力学的安定性を確認した。前記熱力学的安定性（Ｔｍ値）は、分光光度計（商品名ＵＶ－１８００　ＵＶ－ＶＩＳ、島津製作所）により測定した。
　下記表３に、前記熱力学的安定性の確認結果を示す。下記表３に示すように、ターゲット用ｓｉＲＮＡについて、各ｓｉＲＮＡは、同様の熱力学的安定性を示すことが確認された。また、コントロール用ｓｉＲＮＡについて、各ｓｉＲＮＡは、同様の熱力学的安定性を示すことが確認された。これにより、１８Ｏを導入したｓｉＲＮＡは、熱力学的安定性が、１８Ｏ未導入のｓｉＲＮＡと同程度であることがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
（７）ｓｉＲＮＡの生物活性
　前記（４）における各ｓｉＲＮＡについて、ヒトＧＡＰＤＨ遺伝子のｍＲＮＡ発現量を測定し、発現抑制能を確認した。
　細胞は、ＨＣＴ１１６細胞（ヒト結腸腺癌由来）を使用した。培養条件は、３７℃、５％ＣＯ２とした。培地は、１０％の非働化仔牛血清を添加したＭｃＣｏｙ’ｓ　５Ａ培地を使用した。
　まず、細胞を、前記培地中で培養し、その培養液を、２４穴プレートに、４００μＬずつ、４×１０４細胞／ウェルとなるように分注した。そして、前記細胞に、トランスフェクション試薬（商品名Lipofectamine　2000、Invitrogen)を用いて、添付プロトコールに従って、前記ｓｉＲＮＡをトランスフェクションした。具体的には、前記ウェルあたり、前記ｓｉＲＮＡとトランスフェクション試薬との複合体１００μＬを添加し、全量を５００μＬとし、前記ｓｉＲＮＡの最終濃度を、０．１ｎｍｏｌ／Ｌとした。
　トランスフェクション後、前記細胞を２４時間培養した。そして、試薬（商品名RNeasy　Mini　Kit、Qiagen）を用い、添付のプロトコールに従って、ＲＮＡを回収した。次に、逆転写酵素（商品名SuperScript　III、Invitrogen社製）を用い、添付のプロトコールに従って、前記ＲＮＡからｃＤＮＡを合成した。そして、得られたｃＤＮＡを鋳型としてＰＣＲを行い、ヒトＧＡＰＤＨ遺伝子のｍＲＮＡの発現量および内部標準であるβ－アクチン遺伝子の発現量を測定した。前記ヒトＧＡＰＤＨ遺伝子の発現量は、前記β－アクチン遺伝子の発現量により補正した。前記ＰＣＲにおいて、前記ＧＡＰＤＨ遺伝子およびβ－アクチン遺伝子の増幅には、それぞれ下記のプライマーセットを使用した。発現量は、前記ｓｉＲＮＡを添加していない細胞におけるヒトＧＡＰＤＨ遺伝子の発現量を１として、相対的に比較した。
ＧＡＰＤＨ遺伝子増幅用プライマーセット
　　5’-GGAGAAGGCTGGGGCTCATTTGC-3’　（配列番号５）
　　5’-TGGCCAGGGGTGCTAAGCAGTTG-3’　（配列番号６）
β－アクチン遺伝子増幅用プライマーセット
　　5’-GCCACGGCTGCTTCCAGCTCCTC-3’　　（配列番号７）
　　5’-AGGTCTTTGCGGATGTCCACGTCAC-3’　（配列番号８）
　なお、コントロール１として、前記ｓｉＲＮＡおよび前記トランスフェクション試薬を添加していない細胞についても、遺伝子発現量を測定した（－）。また、コントロール２として、トランスフェクションにおいて、前記ｓｉＲＮＡを未添加とし、前記トランスフェクション試薬のみを添加した細胞についても、遺伝子発現量を測定した（ｍｏｃｋ）。
　これらの結果を、図５に示す。図５は、ヒトＧＡＰＤＨ遺伝子のｍＲＮＡの発現量の相対値を示すグラフであり、縦軸は、相対遺伝子発現量である。図５に示すように、１８Ｏを導入したターゲット用ｓｉＲＮＡは、いずれも、１８Ｏ未導入のターゲット用ｓｉＲＮＡと同様の発現抑制活性を示した。この結果から、１８Ｏを導入したｓｉＲＮＡについても、１８Ｏ未導入である１６Ｏを有するｓｉＲＮＡと同様に使用できることが確認できた。
［実施例３］
　前記実施例１で合成した１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）について、血清中濃度の測定を行った。
　マウスのプール血清に、前記１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）を、所定濃度となるように添加して、血清サンプルを調製した。前記所定濃度は、０、０．０１、０．０２、０．０４、０．０６、０．０８、０．１、０．２、０．４、０．６、０．８、１、２μｇ／ｍＬとした。前記血清サンプルを銀カプセルに入れて凍結乾燥した。そして、凍結乾燥した前記血清サンプルを、ガス化前処理装置に接続した安定同位体比質量分析計に供した。前記ガス化前処理装置は、Thermo　Fisher Scientific社製のTC/TAを使用し、前記安定同位体比質量分析計は、Thermo　Fisher Scientific社製のVELTA　V　Plusを使用した。そして、前記血清サンプルの測定値を下記式に代入して、δ１８Ｏ（千分率：‰）を求めた。下記式において、Ｒ（ｓ）は、前記血清サンプルの１８Ｏ／１６Ｏ比率の測定値であり、Ｒ（ｒ）は、標準物質の１８Ｏ／１６Ｏ比率の測定値である。
　　δ１８Ｏ（‰）＝[Ｒ（ｓ）／Ｒ（ｒ）－１]×１０００
　図６に、δ１８Ｏ値と１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）濃度との相関関係のグラフを示す。図６において、縦軸がδ１８Ｏ値（‰）であり、横軸が前記１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）の濃度である。図６に示すように、δ１８Ｏ値と前記１８Ｏ標識化ポリ（Ｕ）の濃度とは、正の相関があり、相関係数（Ｒ）０．９９９という優れた相関性を示した。
　従来、ＲＮＡの血中濃度を測定する方法は、放射性同位体標識したＲＮＡが用いられている。しかし、放射性同位体は、被爆の危険性が懸念されている。これに対して、本実施例では、安定同位体である１８Ｏが導入されたＲＮＡを使用しており、図６に示すように、１８Ｏ標識化ＲＮＡによっても、血中において、ＲＮＡ濃度とδ１８Ｏ値（‰）とが相関関係を示すことが確認された。このため、医薬品等のＲＮＡとして１８Ｏが導入されたＲＮＡを使用することで、例えば、生体への投与後、安全を維持し且つ血中濃度を測定することが可能であることがわかる。
［実施例４］
　前記実施例２で合成した１８Ｏを導入したｓｉＲＮＡについて、安定同位体顕微鏡を用いて、細胞内局在を観察した。
（１）ｓｉＲＮＡ
　前記実施例２で調製した前記１８Ｏ－センスＲＮＡと１８Ｏ－アンチセンスＲＮＡとを組合せた前記（ｃ４）コントロール用ｓｉＲＮＡ（１８Ｏ／１８Ｏ）を使用した。
（２）サンプルの調製
　７ｍｍ×７ｍｍのシリコンウェハーを、３５ｍｍディッシュの中央に置いた。前記ディッシュに、ヒト肺由来Ａ５４９細胞を５×１０５ｃｅｌｌｓ／ディッシュとなるように播種し、培養した。培養条件は、３７℃、５％ＣＯ２、２４時間とした。培地は、１０％ＦＣＳ含有Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　ｍｏｄｉｆｉｅｄ　ｅａｇｌｅ　ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ）（ｓｉｇｍａ）を使用した。培養後、２ｍＬの新しい培地に交換し、ｓｉＲＮＡを最終濃度３００ｎｍｏｌ／Ｌとなるように添加し、トランスフェクション試薬（商品名Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎ２０００、Invitrogen社製）を用いて、トランスフェクションした。前記トランスフェクション後、さらに、２４時間培養した。前記培養後の細胞をＰＢＳで洗浄し、２．５％グルタルアルデヒド／ＰＢＳ溶液で、３７℃、１時間処理して、前記細胞を固定した。その後、前記固定した細胞を、２０、４０、６０、７０、８０、９０、１００％エタノールに、この順序で１０分間ずつ浸すことで、脱水した。そして、ｔｅｒｔ－ブタノールを前記脱水後の細胞に添加し、冷凍庫で凍結後、乾燥した。前記凍結乾燥物に、厚さ３０ｎｍの金コーティングを施した。このようにして、サンプルを作製した。
（３）安定同位体顕微鏡による観察
　前記サンプルを、安定同位体顕微鏡システム（北海道大学、Ｃａｍｅｃａ　ｉｍｓ－１２７０＋ＳＣＡＰＳ）で観察した。前記観察において、一次ビームとしてセシウムを使用し、１２Ｃ１４Ｎ、１６Ｏ、１８Ｏの２次イオンイメージを得た。この観察結果を、図７に示す。図７は、前記コントロール用ｓｉＲＮＡ（１８Ｏ／１８Ｏ）の細胞内局在を観察した顕微鏡写真である。図７において、左上の写真は、１６Ｏの２次イオンイメージであり、左下の写真は、１２Ｃ１４Ｎの２次イオンイメージであり、右上の写真は、１８Ｏの２次イオンイメージであり、右下の写真は、１８Ｏ／１６Ｏの２次イオンイメージである。
　１２Ｃ１４Ｎの２次イオンイメージは、有機物のイメージングであることから、図７の左下の写真（１２Ｃ１４Ｎ）により、細胞の形態が確認できた。１６Ｏの２次イオンイメージは、１６Ｏの強度が強い部分が白く、弱い部分は黒く見える。図７の左上の写真（１６Ｏ）は、全体的に黒っぽいことから、天然の１６Ｏが均等に存在していることが確認できた。また、１８Ｏの２次イオンイメージは、１８Ｏの強度が強い部分が白く、弱い部分は黒く見える。図７の右上の写真（１８Ｏ）では、細胞質に該当する領域に、白い点が多数見られることから、投与した前記コントロール用ｓｉＲＮＡ（１８Ｏ／１８Ｏ）が、細胞質に局在していることが確認できた。つぎに、１８Ｏ／１６Ｏの２次イオンイメージは、１８Ｏの２次イオンイメージ（１８Ｏの強度）を、１６Ｏの２次イオンイメージ（１６Ｏの強度）で割ったものをイメージしており、１８Ｏ比率が低い部分は青く、高い部分は赤くなる。図７の右下の写真（１８Ｏ／１６Ｏ）において、前記右上の写真（１８Ｏ）の白い点に対応する箇所は、１８Ｏ／１６Ｏ比率が高く、赤色にイメージングされ（図において白い点）、その他の箇所は、１８Ｏ／１６Ｏ比率が、天然の０．００２前後であるため、青色にイメージングされた。これらの結果から、１８Ｏを導入したｓｉＲＮＡを使用すれば、例えば、蛍光ラベル等を使用することなく、１８Ｏ／１６Ｏ比率から、前記ｓｉＲＮＡの局在を示すイメージ像が得られることがわかった。
　従来、イメージングには、一般的に蛍光標識した核酸が用いられている。しかし、蛍光物質は、通常、疎水性であり、分子量が大きいため、核酸の末端等に付加することで、前記核酸の物性が、蛍光標識で修飾していない未修飾体とは異なってしまう可能性がある。また、前記蛍光物質は、生体内で切断される可能性もある。これに対して、１８Ｏでの標識は、例えば、核酸の物性変化が抑制され、全てのリン酸基へ修飾が可能であり、且つ、修飾が外れることも抑制できる。このため、１８Ｏを導入した核酸を用いることで、例えば、より効率よく細胞内局在を観察することが可能である。
　以上、実施形態を参照して本願発明を説明したが、本願発明は上記実施形態に限定されるものではない。本願発明の構成や詳細には、本願発明のスコープ内で当業者が理解し得る様々な変更をすることができる。
　この出願は、２０１１年５月１０日に出願された日本出願特願２０１１－１０５７２２を基礎とする優先権を主張し、その開示のすべてをここに取り込む。
　以上のように、本発明の製造方法によれば、前記同位体を含む酸化剤を使用するのみで、同位体を含むリン酸化合物を容易に製造できる。本発明の製造方法は、例えば、リン酸基を有する核酸の合成や、リン酸基を有する農薬、医薬、リン脂質等の低分子化合物の合成に有用である。

Claims (22)

  1. ３価リン化合物を、同位体を含む酸化剤で酸化することによって、前記同位体が導入された５価のリン酸化合物を合成する酸化工程を含むことを特徴とする、同位体含有リン酸化合物の製造方法。
  2. 前記酸化剤による酸化反応が、前記３価リン化合物における３価リンを５価リンに酸化し、且つ、前記５価リンに前記酸化剤由来の原子を結合させる酸化反応であり、
    前記酸化剤が、前記５価リンに結合する前記原子として、前記同位体を有する、請求項１記載の製造方法。
  3. 前記同位体が、安定同位体である、請求項１または２記載の製造方法。
  4. 前記同位体が、１７Ｏ、１８Ｏ、３３Ｓ、３４Ｓ、３６Ｓおよび１０Ｂからなる群から選択された少なくとも一つの同位体である、請求項１から３のいずれか一項に記載の製造方法。
  5. 前記酸化剤が、酸素供与体であり、供与される酸素が、前記同位体である、請求項１から４のいずれか一項に記載の製造方法。
  6. 前記酸素供与体が、水またはペルオキシドである、請求項５記載の製造方法。
  7. 前記ペルオキシドが、ヒドロペルオキシドである、請求項６記載の製造方法。
  8. 前記ヒドロペルオキシドが、ｔ－ブチルヒドロペルオキシドである、請求項７記載の製造方法。
  9. 前記酸化剤が、硫黄供与体であり、供与される硫黄が、前記同位体である、請求項１から４のいずれか一項に記載の製造方法。
  10. 前記硫黄供与体が、３Ｈ－１，２－ベンゾジチオール３－オン１，１－ジオキシドおよび５－（（ジメチルアミノ－メチリデン）アミノ）－３Ｈ－１，２，４－ジチアゾール－３－チオンの少なくとも一方である、請求項９記載の製造方法。
  11. 前記酸化剤が、ホウ素供与体であり、供与されるホウ素が、前記同位体である、請求項１から４のいずれか一項に記載の製造方法。
  12. 前記ホウ素供与体が、アミン・ボラン複合体である、請求項１１記載の製造方法。
  13. 前記アミン・ボラン複合体が、トリアルキルアミン・ボラン複合体である、請求項１２記載の製造方法。
  14. 前記トリアルキルアミン・ボラン複合体が、ジイソプロピルエチルアミン・ボラン複合体である、請求項１３記載の製造方法。
  15. 前記３価リン化合物が、亜リン酸エステルである、請求項１から１４のいずれか一項に記載の製造方法。
  16. 前記３価リン化合物は、前記３価リンを有するヌクレオシドを含むモノマーであり、
    前記ヌクレオシドは、糖と塩基を含み、前記糖の１’位に前記塩基が結合し、
    前記糖に前記３価リンが結合している、請求項１から１５のいずれか一項に記載の製造方法。
  17. 前記糖の５’位、３’位または２’位に前記３価リンが結合している、請求項１６記載の製造方法。
  18. 前記３価リン化合物は、２以上のヌクレオシド残基を含むポリマーであり、
    前記ヌクレオシド残基は、糖と塩基を含み、前記糖の１’位に前記塩基が結合し、
    前記ヌクレオシド残基間は、それぞれの糖が、リンを介して結合し、
    少なくとも一組のヌクレオシド残基間のリンが、前記３価リンである、請求項１から１５のいずれか一項に記載の製造方法。
  19. 前記ヌクレオシド残基間は、一方の糖の５’位、３’位または２’位と、他方の糖の５’位、３’位または２’位とにおいて、前記リンを介して結合している、請求項１８記載の製造方法。
  20. さらに、ヌクレオシドを含む２分子のモノマーをカップリングして、前記３価リン化合物を合成するカップリング工程を有し、
    前記酸化工程において、前記カップリング工程により得られた前記３価リン化合物を、前記酸化剤により酸化して、前記同位体が導入された５価のリン酸化合物を合成する、請求項１から１９のいずれか一項に記載の製造方法。
  21. さらに、前記５価のリン酸化合物に、ヌクレオシドを含むモノマーをカップリングして、前記３価のリン化合物を合成するカップリング工程を有し、
    前記酸化工程において、前記カップリング工程により得られた前記３価リン化合物を、前記酸化剤により酸化して、前記同位体が導入された５価のリン酸化合物を合成する、請求項１から２０のいずれか一項に記載の製造方法。
  22. 前記５価のリン酸化合物が、農薬、医薬またはリン脂質である、請求項１から２１のいずれか一項に記載の製造方法。
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