WO2011132584A1 - 膜電位変化検出装置および膜電位変化検出方法 - Google Patents

膜電位変化検出装置および膜電位変化検出方法 Download PDF

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WO2011132584A1
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cell
reflection interference
quantitative phase
membrane potential
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範和 杉山
卓治 片岡
池田 貴裕
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浜松ホトニクス株式会社
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    • G01N21/00Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/17Systems in which incident light is modified in accordance with the properties of the material investigated
    • G01N21/41Refractivity; Phase-affecting properties, e.g. optical path length
    • G01N21/45Refractivity; Phase-affecting properties, e.g. optical path length using interferometric methods; using Schlieren methods
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
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    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
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    • G01N21/25Colour; Spectral properties, i.e. comparison of effect of material on the light at two or more different wavelengths or wavelength bands
    • G01N21/251Colorimeters; Construction thereof
    • G01N21/253Colorimeters; Construction thereof for batch operation, i.e. multisample apparatus

Definitions

  • the present invention relates to a membrane potential change detection device and a membrane potential change detection method.
  • Non-Patent Document 1 a cell is stained with a fluorescent dye, and a distance (cell adhesion) between the cell placed on the substrate and the substrate is obtained using a fluorescence interference contrast microscope image, or a membrane potential is determined.
  • a technique for staining cells with a sensitive dye and optically determining changes in cell membrane potential is disclosed.
  • Non-Patent Document 2 discloses a technique in which cells are stained (colored) with a FRET dye, and a change in cell membrane potential is calculated using the FRET phenomenon.
  • Fluorescent dye which is a labeling agent for measuring changes in cell membrane potential, needs to be incorporated into cells. Moreover, it is necessary to irradiate strong excitation light for said measurement, and it affects the state of a living cell. In order to perform measurement while maintaining the normal state of living cells, it is necessary to determine the optimum conditions of dye concentration and excitation light irradiation intensity by trial and error. In the future, as human cells are increasingly used as drug evaluation targets based on stem cells, many of these cells are susceptible to damage, and labeled measurement becomes increasingly difficult. Therefore, a label-free technique that non-invasively measures the membrane potential without labeling as much as possible and without changing as much as possible from the state in which cells are cultured is desired.
  • the present invention has been made in view of the above, and provides a membrane potential change detection apparatus and a membrane potential change detection method capable of detecting a change in membrane potential of a cell by a noninvasive method without labeling.
  • the purpose is to do.
  • a membrane potential change detection device of the present invention is a transparent interference measurement light source, a holding means for holding a transparent member on which cells are placed, and a reflection interference measurement light source that is radiated transparently.
  • a reflection interference imaging unit that generates a reflection interference image, and a parameter related to the adhesion between the cell and the transparent member is calculated from the reflection interference image.
  • an analysis means for detecting a change in the membrane potential of the cell.
  • the reflection interference imaging means images the light emitted from the reflection interference measurement light source and reflected from the cell through the transparent member on which the cell is placed.
  • the reflection interference imaging step for generating the reflection interference image and the analysis means calculate a parameter relating to the adhesion between the cell and the transparent member from the reflection interference image, and detect a change in the membrane potential of the cell based on the change in the parameter.
  • the parameter relating to the adhesion between the cell and the transparent member is calculated based on the reflected light from the cell.
  • the change in the membrane potential of the cell is detected based on the change in the parameter.
  • the inventors have found that there is a correlation between the degree of adhesion between the transparent member on which the cell is placed and the cell and the change in the membrane potential of the cell.
  • the present invention is characterized in that a change in the membrane potential of a cell is captured as a change in the adhesion distance (adhesion degree) between the cell and the transparent member by utilizing such a discovered correlation. Since the parameter relating to the adhesion between the cell and the transparent member based on the adhesion distance is obtained by a noninvasive method, it is possible to detect the change in the membrane potential of the cell non-invasively without labeling.
  • the analyzing means may detect a change in the membrane potential of the cell based on a correlation that the cell is separated from the transparent member when depolarized and the cell approaches the transparent member when hyperpolarized. According to this invention, it is possible to detect a change in the membrane potential of a cell when the cell is depolarized and hyperpolarized based on the above-described correlation discovered by the inventors.
  • the present invention further includes an objective lens that collects the light emitted from the reflection interference measurement light source and reflected from the cells, and the objective lens and the transparent member may be disposed via an air layer. Good. According to the present invention, since the operability of the objective lens can be improved, it becomes easy to capture an image while scanning the entire transparent member on which cells are placed. Thereby, the throughput at the time of detecting the change of the cell membrane potential can be improved.
  • the surface opposite to the mounting surface of the transparent member may be provided with an antireflection coating. According to this invention, even when a dry objective lens is used, a reflection interference image of the cell adhesion surface can be obtained with high contrast.
  • a ring-shaped slit disposed at a position conjugate with the aperture stop on the reflection interference measurement light source side of the objective lens may be further provided.
  • the illumination light from the reflection interference measurement light source passes through the ring-shaped slit, and the illumination light is illuminated through the periphery without passing through the center of the objective lens. Since the cells are illuminated using only the light, it is possible to reduce the influence of the reflected light from the solution above the cells. Further, by using a ring-shaped slit, background light due to reflection inside the objective lens can be reduced.
  • the present invention may further include a quantitative phase measurement light source and quantitative phase imaging means for generating a quantitative phase image by imaging light emitted from the quantitative phase measurement light source and transmitted through the cell. Good.
  • a quantitative phase measurement light source and quantitative phase imaging means for generating a quantitative phase image by imaging light emitted from the quantitative phase measurement light source and transmitted through the cell.
  • information such as the optical thickness, volume, and area of each cell is acquired.
  • an image alignment means for aligning both images by matching the spatial position between the reflection interference image and the quantitative phase image, and the quantitative phase image
  • a contour extracting means for extracting a contour of a cell
  • a contour applying means for generating a reflected interference image after applying the contour by applying the contour extracted by the contour extracting means to the reflected interference image.
  • the analysis means calculates a parameter for each cell related to the adhesion between the cell and the transparent member based on the reflection interference image after applying the contour, and detects a change in the membrane potential for each cell based on the change in the parameter. May be.
  • the reflection interference imaging means images the light emitted from the reflection interference measurement light source and reflected from the cell through the transparent member on which the cell is placed, A reflection interference imaging step for generating a reflection interference image; and a quantitative phase imaging step for generating a quantitative phase image by imaging a light emitted from a quantitative phase measurement light source and transmitted through a cell by a quantitative phase imaging means;
  • the image alignment means aligns the spatial position between the reflected interference image and the quantitative phase image, thereby aligning both images, and the contour extraction means converts the quantitative phase image into the quantitative phase image.
  • the contour applying step for generating an image and the analysis means calculate a parameter for each cell related to the adhesion between the cell and the transparent member based on the reflection interference image after the contour application, and for each cell based on the change of the parameter And an analysis step of detecting a change in membrane potential.
  • the cell contour is extracted based on the quantitative phase image, and the contour is superimposed on the reflection interference image.
  • the reflection interference light amount adjusting means for adjusting the light amount emitted from the reflection interference measurement light source, the quantitative phase measurement light source, and the light emission amount emitted from the quantitative phase measurement light source are adjusted.
  • a reflection phase interference imaging unit that generates a reflection interference image by imaging reflected light that is emitted from the reflection interference measurement light source and reflected from the cells, and is quantitatively measured.
  • the quantitative phase image is generated by imaging the transmitted light that is emitted from the phase measurement light source and passes through the cells
  • the quantitative phase light amount adjusting unit generates the light from the quantitative phase measurement light source when generating the reflection interference image.
  • the reflected interference imaging unit captures the reflected light and generates a quantitative phase image
  • the reflected interference light amount adjusting unit blocks the light from the reflected interference measurement light source, and the reflected interference imaging unit transmits the transmitted light. It may be image.
  • information such as the optical thickness, volume, and area of each cell is acquired.
  • the reflected interference light quantity adjusting means is a shutter for adjusting the light quantity of light emitted from the reflected interference measuring light source
  • the quantitative phase light quantity adjusting means is the quantitative phase measuring light source. It may be a shutter that adjusts the amount of light emitted from the shutter. According to the present invention, specific means for adjusting the amount of light is provided.
  • the reflected interference light amount adjusting means adjusts the light amount emitted from the reflection interference measurement light source by switching the reflection interference measurement light source ON / OFF, and determines the quantitative phase.
  • the light amount adjusting means may adjust the light amount of light emitted from the quantitative phase measurement light source by switching the quantitative phase measurement light source on and off.
  • a specific method for adjusting the amount of light is provided. This method is particularly useful when the light source is a semiconductor light source such as an LED (light emitting diode), LD (laser diode), or SLD (super luminescent diode).
  • the contour extraction means for extracting the contour of the cell based on the quantitative phase image and the contour extracted by the contour extraction means are applied to the reflection interference image, thereby applying the contour after the contour application.
  • Contour applying means for generating a reflection interference image, and the analysis means calculates a parameter for each cell related to adhesion between the cell and the transparent member based on the reflection interference image after applying the contour, and the parameter A change in membrane potential for each cell may be detected based on the change in.
  • the imaging means generates a reflection interference image by imaging reflected light emitted from the reflection interference measurement light source and reflected from the cell, and for quantitative phase measurement.
  • An applying unit applies a contour extracted by the contour extracting unit to the reflection interference image, thereby generating a reflection interference image after applying the contour, and an analyzing unit based on the reflection interference image after applying the contour.
  • the quantitative phase light amount adjustment unit blocks the light from the light source for quantitative phase measurement, and the imaging unit images the reflected light to generate the quantitative phase image.
  • the reflected interference light amount adjusting means may block the light from the reflection interference measuring light source, and the imaging means may image the transmitted light.
  • the cell contour is extracted based on the quantitative phase image, and the contour is superimposed on the reflection interference image.
  • the membrane potential change detection apparatus and the membrane potential change detection method of the present invention it is possible to detect a change in the membrane potential of a cell by a noninvasive method without labeling.
  • FIG. 1 is a schematic diagram illustrating an overall configuration of a membrane potential change detection device according to a first embodiment. It is a hardware block diagram of the process part which concerns on 1st Embodiment. It is sectional drawing which shows the structure of a container. It is a figure for showing the effect by an antireflection coat. It is a figure for showing the effect by an antireflection coat. It is a figure which shows the difference in the reflective interference image by the difference in wavelength width. It is a flowchart which shows the function and operation
  • FIG. 7 is a graph showing a change in change rate over time in Measurement Example 1. It is a graph which shows the relationship between the density
  • Embodiment demonstrates the apparatus which detects the change of the membrane potential of a cell using the reflection interference image obtained from the measurement of reflection interference.
  • the quantitative phase is measured simultaneously with the measurement of the reflection interference, the reflection interference image and the quantitative phase image are acquired, and the change in the membrane potential of the cell using both these images. A method of detecting the will be described.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing the overall configuration of the membrane potential change detection device 1.
  • the membrane potential change detection device 1 includes an image acquisition unit 10 and a processing unit 20.
  • the image acquisition unit 10 includes a holding unit 103 (corresponding to “holding unit” in the claims), an objective lens 104, a reflection interference measurement light source 106, a ring-shaped slit 107, a half mirror 108, and a reflection interference detection camera 110. (Corresponding to “reflection reflection imaging means” in the claims), an XY stage 115 and a dispenser 117 are provided.
  • the processing unit 20 includes an image reception unit 201, an analysis unit 202 (corresponding to “analysis unit” in the claims), and a storage unit 203.
  • the holding unit 103 is formed of a transparent member 102a, and rests (holds) the container 102 in which the cells 101 are contained (placed).
  • the objective lens 104 collects light emitted from the reflection interference measurement light source 106 and reflected from the cell 101.
  • the objective lens 104 and the transparent member 102a are disposed via an air layer.
  • the reflection interference measurement light source 106 emits illumination light.
  • the ring-shaped slit 107 performs ring illumination.
  • the half mirror 108 reflects or transmits incident light at a predetermined ratio.
  • the reflection interference detection camera 110 generates a reflection interference image by imaging light emitted from the reflection interference measurement light source 106 and reflected from the cell 101 via the transparent member 102a.
  • the XY stage 115 switches the measurement area.
  • the dispenser 117 administers a drug solution to the cells 101.
  • the image receiving unit 201 is a part that receives the reflection interference image output from the reflection interference detection camera 110.
  • the analysis unit 202 is a part that calculates a parameter related to the adhesion between the cell and the transparent member from the reflection interference image and detects a change in the membrane potential of the cell based on the parameter. In this embodiment, the analysis unit 202 changes the membrane potential of the cell 101 based on the correlation that the cell 101 moves away from the transparent member 102a when depolarized and the cell 101 approaches the transparent member 102a when hyperpolarized. Detected.
  • the storage unit 203 is a part that stores parameters calculated by the analysis unit 202 and an image output from the reflection interference detection camera 110.
  • FIG. 2 is a hardware configuration diagram of the processing unit 20 including the functional components described above.
  • the processing unit 20 is physically connected to a main storage device such as a CPU 21, a ROM 22 and a RAM 23, an input device 24 such as a keyboard and a mouse, an output device 25 such as a display, and an image acquisition unit 10.
  • It is configured as a normal computer system including a communication module 26 such as a network card for transmitting and receiving data between them, an auxiliary storage device 27 such as a hard disk, and the like.
  • Each function of the processing unit 20 causes the input device 24, the output device 25, and the communication module 26 to operate under the control of the CPU 21 by reading predetermined computer software on hardware such as the CPU 21, the ROM 22, and the RAM 23. This is realized by reading and writing data in the main storage devices 22 and 23 and the auxiliary storage device 27.
  • the holding unit 103 is preferably maintained at a temperature suitable for the state of the cell 101 in order to maintain the state of the cell 101 being measured. Further, when the measurement of the cell 101 takes a long time, it is desirable that the holding unit 103 is maintained in an environment in which the temperature, humidity, carbon dioxide concentration, etc. suitable for the growth and state maintenance of the cell 101 are prepared.
  • FIG. 3 is a cross-sectional view showing the configuration of the container 102.
  • maintenance part 103 the part in which the cell 101 is mounted is formed of the transparent member 102a.
  • the container 102 include a dish and a microplate.
  • the placement surface 102b of the cell 101 in the container 102 is charged, and is charged to + in this embodiment.
  • the container 102 is provided with an antireflection coating 102d on the opposite side (the objective lens 104 side of the observation region of the container 102) 102c to the cell 101 mounting surface 102b.
  • This antireflection coat 102d exhibits a significant effect in obtaining a reflection interference image.
  • a low-magnification objective lens has a low numerical aperture (NA), and a dry objective lens is generally used instead of oil immersion or water immersion.
  • NA numerical aperture
  • a dry objective lens is generally used instead of oil immersion or water immersion.
  • the illumination light emitted from the objective lens is largely reflected on the bottom surface of the container containing the cells.
  • an antireflection coating 102d is provided on the opposite side 102c of the cell 101 placement surface 102b of the container 102 in which the cells 101 are placed, so that a reflection interference image with a dry objective lens is obtained.
  • the illumination light irradiated from the objective lens without the antireflection coating 102d has a reflection of about 4% at the interface between air and glass, but the wavelength range of the illumination light on the glass bottom surface.
  • the background light can be reduced to 1/8 or less by performing the antireflection coating treatment in which the reflectance R is suppressed to about 0.5% at (420 nm to 720 nm). Therefore, according to this embodiment, even when a dry objective lens is used, a reflection interference image of the cell adhesion surface can be obtained with high contrast.
  • FIG. 5 shows a reflection interference image using a dry objective lens when the bottom surface 102c of the container 102 is provided with the antireflection coating 102d. If the antireflection coating 102d is not applied as shown in FIG. 5A, the reflection from the bottom surface 102c of the container 102 is large, and the contrast of the reflection interference image is extremely lowered. In contrast, as shown in FIG. 5B, by using the container 102 having the bottom surface 102c with the antireflection coating 102d, good contrast can be obtained even with a dry objective lens.
  • the objective lens 104 is desirably an objective lens having a low magnification of 10 or 20 times and a large numerical aperture in order to put as many cells as possible into the field of view as described above.
  • the objective lens 104 is preferably a dry objective lens, as described above, rather than water immersion or oil immersion. In the present embodiment, by using such a dry objective lens, the operability of the objective lens 104 is improved, so that the entire container 102 can be imaged while being scanned. Thereby, it is possible to improve throughput when detecting a change in the membrane potential of the cell 101.
  • the objective lens 104 is provided with a focus mechanism (not shown), and can perform autofocus based on an image obtained by a reflection interference detection camera 110 described later.
  • the light source for reflection interference measurement 106 is preferably a light source having radiation sensitivity over a wide wavelength range such as a halogen lamp or a xenon lamp.
  • a light source having radiation sensitivity over a wide wavelength range such as a halogen lamp or a xenon lamp.
  • illumination light using a band-pass filter whose wavelength width is limited to some extent has been used.
  • band-pass illumination light interference fringes are often reflected due to reflection from the interface between the cell membrane on the upper part of the cell and the culture solution, which has high interference and is not related to the cell adhesion surface.
  • low-coherent light having a wide wavelength width and low coherence is used.
  • illumination light having a wide wavelength width By using illumination light having a wide wavelength width, it is possible to reduce the distance at which interference occurs, and it is possible to extract a reflection interference image limited to the adhesion surface of cells to the substrate.
  • the light source has radiation sensitivity over a wide wavelength range such as a halogen lamp or a xenon lamp, light in the near infrared region of 700 nm to 2500 nm can be used as illumination light, and toxicity to the cell 101 can be reduced.
  • a light source such as an LED (light emitting diode), a semiconductor laser (laser diode), or an SLD (super luminescent diode) may be used.
  • FIG. 6 shows a difference in reflection interference image between the case where illumination light having a wide wavelength range of 420 nm to 750 nm is used and the case where illumination light bandpassed in a narrow wavelength range of about 30 nm with a central wavelength of 480 nm and 530 nm is used.
  • the illumination light band-passed in a narrow wavelength range as shown in FIGS. 6A and 6B the reflection from the interface between the cell membrane on the upper part of the cell and the culture solution is not an interference fringe.
  • FIG. 6C shows interference due to reflected light from the upper part of the cell is not observed, and information limited by the cell adhesion surface It is possible to take out only.
  • the reflection interference measurement light source 106 of the present embodiment uses a halogen lamp having a wide radiation wavelength as a light source, and a bandpass filter having an arbitrary wide wavelength width in the visible to near-infrared wavelength range of about 420 nm to 800 nm as output light. Is used. When bandpassed light having a center wavelength of 500 nm to 1000 nm and a full width at half maximum of 100 nm or more is used, a reflection interference image limited to the cell adhesion surface can be extracted.
  • the illumination light for reflection interference is an optical filter so that the wavelength width is about several hundreds of nanometers in the white light or near infrared light region after excluding the ultraviolet ray region and the heat ray region that adversely affect the cells. Irradiate the bandpass light at.
  • the coherence distance can be shortened to about 500 nm, and only interference at a distance of about 500 nm near the cell adhesion surface can be taken out. it can.
  • the ring-shaped slit 107 is arranged at a position conjugate with the pupil of the objective lens 104 of the luminous flux of the illumination light to perform annular illumination.
  • a low-magnification objective lens has a low NA
  • illumination light with a low NA has many components that are irradiated perpendicularly to the specimen, and is reflected at the interface between the solution and air existing above the cells, and the cells are illuminated by the reflected light. Cause the phenomenon.
  • the morphological image of the cell unrelated to the adhesion surface is included on the observation side.
  • the illumination light that has passed through the central portion of the objective lens is reflected inside the objective lens, and a large amount of reflected light is included on the observation side to become high background light, which causes a decrease in the contrast of the reflection interference image on the adhesive surface. .
  • a ring shape is formed at a position conjugate with the aperture stop on the reflection interference measurement light source 106 side of the objective lens 104.
  • a slit 107 is provided. The illumination light from the reflection interference measurement light source 106 passes through the slit 107 opened in a ring shape, and the illumination light is illuminated through the periphery without passing through the center of the objective lens 104, and only the light having a high NA with an angle is used. Since the cell 101 is illuminated, the influence of reflected light from the solution on the cell 101 can be reduced.
  • illumination using the ring-shaped slit 107 can reduce background light not only by the low NA objective lens 104 but also by reflection inside the objective lens 104 widely.
  • a plurality of ring-shaped slits 107 suitable for the objective lens 104 to be used are mounted on the disk so that the slit 107 opened in a ring shape can be changed for each objective lens 104 according to the pupil diameter of the objective lens 104 to be used.
  • the ring-shaped slit 107 can be selected by the user by rotating the disk as necessary. Note that the same effect can be obtained by disposing the ring-shaped slit 107 at a position where the pupil of the objective lens 104 exists.
  • the illumination light emitted from the reflection interference measurement light source 106 passes through the ring-shaped slit 107, is reflected by the half mirror 108, passes through the objective lens 104, and is measured. It enters from the bottom side of the container 102 containing the cells 101 to be formed.
  • a beam splitter with a reduced reflection ratio such as 5:95 (reflection: transmission) or 20:80 (reflection: transmission) may be used when the illumination light intensity is sufficient.
  • Reflected light obtained from the adhesion surface of the cell 101 on the bottom surface of the container 102 causes interference according to the adhesion distance of the cell 101, and the obtained reflected interference light is condensed again by the objective lens 104 and passes through the half mirror 108. Then, the image is picked up by the reflection interference detection camera 110. In this way, the light reflected from the adhesion surface of the cell 101 on the bottom surface of the container 102 has a different amplitude depending on the adhesion distance of the cell 101 and is photographed as a contrast of light and dark.
  • reflection interference measurement illumination light is incident from the back side of the substrate to which the cell is adhered, and reflected light from the interface between the substrate and the culture solution and reflected light from the interface between the culture solution and the cell bottom surface above it.
  • contrast between light and dark according to the distance between the cell and the substrate can be obtained.
  • the image is generally dark when the distance between the cell and the substrate approaches several tens of nm or less.
  • the distance between the cell and the substrate is about 100 nm to 200 nm, a bright image is taken.
  • the membrane potential change detection device 1 of this embodiment may have a mechanism for moving the observation position in order to measure as many cells 101 as possible or to measure responses to different reagents.
  • a method of changing the observation position by moving the ten main bodies on the XY plane is desirable.
  • an XY stage 115 having a working distance that sufficiently covers the observation range of the container 102 and a positioning accuracy of several tens ⁇ m or less (preferably 1 ⁇ m or less) is provided.
  • a reflection interference image of the adhesion surface of the cell 101 is obtained by the reflection interference detection camera 110 (step S101, corresponding to the “reflection interference imaging step” in the claims).
  • the amplitude of the interference light varies depending on the distance of the cell 101 adhered to the substrate on the bottom surface of the container 102 from the substrate on the bottom surface of the container 102, and the reflected interference image is taken as a contrast of light and dark.
  • the shading of the reflected light within the field of the reflection interference image is corrected.
  • offset correction of the background portion is performed for each time so that the value of the background without the cells 101 does not change with time.
  • the reflection interference detection camera 110 acquires reflection interference images at intervals of 1 second, for example. Note that the reflection interference image acquisition interval is preferably adjusted as appropriate according to the rate of change in the membrane potential of the cell 101. Then, after a certain period of time when the reflection interference detection camera 110 starts to acquire an image, the dispensing operation of the dispenser 117 is performed, and the target drug solution is administered to the solution containing the cells 101 so as to have a target concentration. To do.
  • the analysis unit 202 calculates a parameter related to the adhesion between the cell 101 and the transparent member 102a using the reflection interference image continuously obtained in this manner (step S102, corresponding to the “analysis step” in the claims). .
  • the “average luminance change rate” is calculated as a parameter for evaluating the change in membrane potential of the cell 101 (corresponding to “a parameter related to adhesion” in the claims).
  • the analysis unit 202 distinguishes between the area where the cell 101 is adhered and the area where the cell 101 is not adhered from the reflection interference image, identifies the area where the cell 101 is adhered, and identifies the area (hereinafter, “measurement”). Measure the average brightness of the region.
  • the analysis unit 202 calculates the average luminance I (t) of the measurement region in the reflection interference image, and before the drug solution administration
  • the rate of change dI with respect to the average luminance of the measurement area acquired in advance (hereinafter referred to as “basic average luminance I (base)”) is calculated (step S103, corresponding to the “analysis step” in the claims) ).
  • the basic average luminance for example, the average luminance obtained from the reflection interference image of the measurement region acquired before the drug solution administration may be used, or the initial luminance stored in advance as an initial value for each cell type May be used.
  • Such basic average luminance is stored in the storage unit 203, and the analysis unit 202 reads the basic average luminance from the storage unit 203 in a timely manner to calculate the change rate dI.
  • the change rate dI is calculated by the following equation.
  • Rate of change dI (t) ⁇ I (t) ⁇ I (base) ⁇ / I (base)
  • I (t) average luminance of reflection interference (background corrected value)
  • I (base) average value of I (t) before drug administration
  • the analysis unit 202 detects a change in the membrane potential of the cell 101 based on the change rate dI calculated by the above formula. That is, the analysis unit 202 evaluates that any change has been detected in the membrane potential in the cell 101 when the predetermined change rate dI is calculated. Further, the analysis unit 202 plots the change rate dI (%) with respect to the average luminance before administration of the drug solution calculated by the above formula on the time axis, for example, as shown in FIG. 8A or FIG. 8B. A simple graph may be output. That is, a graph in which the rate of change dI (%) with respect to luminance before drug solution administration is plotted may be output as a graph showing changes in the membrane potential of the cells 101.
  • the membrane potential change detection device 1 of the present embodiment when the cell is depolarized, the cell 101 is separated from the transparent member 102a and the reflection interference image becomes bright. When the cell is hyperpolarized, the cell 101 approaches the transparent member and the reflection image becomes dark. Based on correlation. Therefore, it was detected that the membrane potential of the cell 101 was depolarized due to the change rate dI in the positive direction, and the membrane potential of the cell 101 was hyperpolarized due to the change in the minus rate of the change rate dI. Can be detected.
  • a peak (a maximum value in the case of depolarization and a minimum value in the case of hyperpolarization) within a certain time after administration of the drug solution is obtained, and the concentration of the drug solution administered to the cell 101 can be determined from the magnitude of the value. it can. This point will be described later in the columns of measurement examples 1 and 2.
  • the membrane potential change detection apparatus 1 moves the XY stage 115 to the position of the well where the next measurement is to be performed, focuses on the placement surface 102b of the cell 101, and starts measurement again. To do. This process is repeated, and the reaction of the cells 101 to various drugs is measured.
  • KCl having different concentrations (6.25 mM, 25 mM, 50 mM, 100 mM) were administered to the CHO cells, respectively, and the average luminance change rate dI (parameter) was calculated by the analysis unit 202.
  • a graph as shown in FIG. 10 was obtained.
  • the analysis unit 202 can detect that the average luminance change rate dI is temporarily increased in the positive direction. It can be detected that the membrane potential is depolarized.
  • the membrane potential change detection device 1 of the present embodiment confirmed that there was a dependency between the rate of change in average luminance at the peak and the concentration of the administered drug.
  • the average luminance change rate dI proportional to the concentration of the administered drug (depending on the concentration) is calculated. Therefore, the membrane potential of the cell 101 is changed for each concentration of the administered drug. Changes can be evaluated. For this reason, it is possible to use the membrane potential change detection device 1 of the present embodiment even when evaluating the drug effect on the cells 101.
  • reflex interference detection is performed when an agonistic compound is administered to a calcium ion-dependent potassium channel (hereinafter referred to as “sample cell”) using the MIN-6 pancreatic ⁇ cell line (mouse-derived pancreatic ⁇ cell line).
  • the reflection interference image acquired by the camera 110 and the average luminance change rate dI (parameter) calculated by the analysis unit 202 were verified.
  • the reflection interference image obtained by the reflection interference detection camera 110 is verified before the administration of the agonist compound to the sample cell, immediately after the administration of the agonist compound, and 5 minutes after the administration of the agonist compound. Went. According to this, as shown in FIG. 12, after the agonist compound is administered to the sample cell, an approaching phenomenon that approaches the transparent member on which the sample cell is placed occurs, and the reflection interference image is darkened. It was observable (image immediately after acting compound).
  • “average luminance change rate dI” is calculated as a parameter for evaluating the change in membrane potential of the cell 101 (a parameter related to adhesion), and the change in the parameter It was confirmed that it was possible to detect that the membrane potential of the cell 101 was hyperpolarized.
  • agonist compounds having different ligand concentrations 100 ⁇ M, 25 ⁇ M, 6.25 ⁇ M
  • the average luminance change rate dI (parameter) was calculated by the analysis unit 202.
  • each graph as shown in FIG. 13 was obtained. According to this, it was confirmed that when the membrane potential of the cell 101 becomes hyperpolarized, the average luminance change rate dI changes in the negative direction.
  • the analysis unit 202 can detect that the average luminance change rate dI is temporarily increased in the negative direction. It can be detected that the membrane potential is hyperpolarized.
  • the membrane potential change detection device 1 of the present embodiment confirmed that there was a dependency between the rate of change in average luminance at the peak and the concentration of the administered drug.
  • the average luminance change rate dI proportional to the concentration of the administered drug (depending on the concentration) is calculated. Therefore, the membrane potential of the cell 101 is changed for each concentration of the administered drug. Changes can be evaluated. For this reason, it is possible to use the membrane potential change detection device 1 of the present embodiment even when evaluating the drug effect on the cells 101.
  • the membrane potential change detection device 1 of the present embodiment the reflection interference measurement light source 106, the holding unit 103, the reflection interference detection camera 110, and the analysis unit 202 are provided, so that the reflected light from the cell 101 is used as a basis. Then, a parameter related to the adhesion between the cell 101 and the transparent member 102a is calculated, and a change in the membrane potential of the cell 101 is detected based on the change in the parameter.
  • the inventors have found that there is a correlation between the degree of adhesion between the transparent member on which the cell is placed and the cell and the change in the membrane potential of the cell.
  • the present invention is characterized in that the change in the membrane potential of the cell is regarded as the change in the adhesion distance (adhesion degree) between the cell and the transparent member using such a discovered correlation. Since the parameter relating to the adhesion between the cell 101 and the transparent member 102a based on the adhesion distance is obtained by a noninvasive method, it is possible to detect the change in the membrane potential of the cell 101 non-invasively without labeling. .
  • the membrane potential change detection device 1 the change in membrane potential of the cell 101 when the cell 101 is depolarized and hyperpolarized can be detected.
  • the measurement region to be analyzed for evaluating the change in membrane potential of the cell 101 has been described as an example where the region to which the cell 101 is attached is a “measurement region”.
  • the present invention is not limited thereto. Is not to be done.
  • an object in which cells 101 are confluent about 80% with respect to the area of the container
  • the entire field of view of the reflected interference image obtained at the start of measurement may be determined as the measurement region.
  • an area where the cells 101 extracted from the reflected interference image obtained at the start of measurement using a certain luminance threshold value or image processing may be defined as the measurement area.
  • the present invention is not limited to this.
  • “change in increase / decrease in adhesion area” can be used as a parameter for evaluating the change in membrane potential of the cell 101.
  • a region corresponding to the adhesion of the cell 101 extracted from the reflection interference image acquired in time series using a certain threshold of luminance or image processing is defined as the measurement region, and the number of pixels in the measurement region in the entire field of view Ask for.
  • the change rate dA of the increase / decrease in the adhesion area is calculated by the following equation.
  • Rate of change dA (t) ⁇ A (t) -A (base) ⁇ / A (base)
  • a (t) number of pixels in the adhesion area at each time of reflection interference
  • a (base) average value of A (t) before drug solution administration
  • the analysis unit 202 detects a change in the membrane potential of the cell 101 based on the change rate dA calculated by the above formula. That is, the analysis unit 202 may evaluate that some change has been detected in the membrane potential in the cell 101 when the predetermined change rate dA is calculated. In addition, the analysis unit 202 may output a graph in which the change rate dA calculated by the above formula is plotted on the time axis and a graph showing changes in the membrane potential of the cell 101. That is, a graph in which the rate of change dA (%) with respect to the adhesion area before drug solution administration is plotted may be output as a graph showing changes in the membrane potential of the cells 101. Thereby, the change of the membrane potential in the cell 101 can be explicitly shown to the user who uses the membrane potential change detection device 1.
  • the cell 101 moves away from the transparent member 102a when depolarized, and the cell 101 approaches the transparent member when hyperpolarized. It is detected that the cell potential 101 is depolarized by the change rate dA in the plus direction, and the membrane potential of the cell 101 is hyperpolarized by the change rate dA in the minus direction. can do.
  • a peak a maximum value in the case of depolarization and a minimum value in the case of hyperpolarization
  • the concentration of the drug solution administered to the cell 101 can be determined from the magnitude of the value. The point that can be done is also the same.
  • FIG. 15 is a schematic diagram showing the overall configuration of the membrane potential change detection device 41.
  • the membrane potential change detection device 41 includes an image acquisition unit 10 and a processing unit 20.
  • the image acquisition unit 10 includes a holding unit 103 (corresponding to “holding unit” in the claims), an objective lens 104, a quantitative phase measurement light source 121, an irradiation light diaphragm unit 121B, a reflection interference measurement light source 106, and a half mirror 108. , Dichroic mirror 122, total reflection mirror 123, reflection interference detection camera 110 (corresponding to “reflection reflection imaging means” in claims), diffractive interference optical system 124, and quantitative phase detection camera 125 (claims) A range of “quantitative phase imaging means”).
  • the half mirror 108 is a reflection interference incidence optical system for guiding the light from the reflection interference measurement light source 106 to the cell 101, and the dichroic mirror 122 guides the light from the cell 101 to the reflection interference detection camera 110.
  • This is an optical system for reflection interference measurement.
  • the objective lens 104, the half mirror 108, and the dichroic mirror 122 are a common optical system for guiding light from the same range of the cell 101 to the reflection interference detection camera 110 and the quantitative phase detection camera 125. That is, in this embodiment, the reflection interference incidence optical system and the reflection interference measurement optical system are a common optical system.
  • the total reflection mirror 123 and the diffractive interference optical system 124 are a quantitative phase optical system for guiding light to the quantitative phase detection camera 125.
  • the reflection interference detection camera 110 generates a reflection interference image by imaging the light emitted from the reflection interference measurement light source 106 and reflected from the cell 101.
  • the quantitative phase detection camera 125 generates a quantitative phase image by imaging light emitted from the quantitative phase measurement light source 121 and transmitted through the cell 101.
  • the irradiation light diaphragm 121B is a means for narrowing the illumination light. Examples of the irradiation light aperture 121B include pinholes and apertures.
  • the processing unit 20 includes an image registration unit 211 (corresponding to “image registration unit” in claims), a contour extraction unit 212 (corresponding to “contour extraction unit” in claims), and a contour application unit 213 ( And an analysis unit 202 (corresponding to “analysis means” in the claims), and a storage unit 203.
  • the image alignment unit 211 is a part that aligns both images by matching the spatial position between the reflection interference image and the quantitative phase image.
  • the contour extraction unit 212 is a part that extracts a contour that is a range of the cell 101 based on the quantitative phase image.
  • the contour applying unit 213 is a part that generates a reflection interference image after applying the contour by applying the contour extracted by the contour extracting unit 212 to the reflection interference image.
  • the analysis unit 202 calculates a parameter for each cell 101 related to the adhesion between the cell 101 and the transparent member 102a based on the reflection interference image after applying the contour, and changes in the membrane potential for each cell 101 based on the change in the parameter. This is the part that detects FIG. 2 is a hardware configuration diagram of the processing unit 20 including the functional components as described above. Since the hardware configuration is the same as that of the membrane potential change detection device 1 of the first embodiment, the description thereof is omitted here.
  • the quantitative phase measurement is described. Illumination light emitted from a quantitative phase measurement light source 121 such as a halogen lamp or a xenon lamp installed on the upper part of the container 102 containing the cells 101 passes through an illumination light diaphragm 121B such as a pinhole or an aperture. It becomes irradiation light close to a point light source, passes through the container 102 containing the cells 101, and is collected by the objective lens 104.
  • the light source 121 for quantitative phase measurement may be a light source such as an LED (light emitting diode), a semiconductor laser (laser diode), or an SLD (super luminescent diode).
  • the illumination light diaphragm 121B is not necessary. Then, it passes through the dichroic mirror 122 for separating the quantitative phase image and the reflected interference image by wavelength through the half mirror 108, and further passes through the total reflection mirror 123, and then the diffractive interference optical system 124 for phase measurement. Then, an interference image between the object light and the reference light is formed, and an interference fringe image is captured by the quantitative phase detection camera 125.
  • the dichroic mirror 122 may be a beam splitter such as a half mirror. In this case, a filter for selecting a wavelength used for quantitative phase detection is disposed between the beam splitter and the quantitative phase detection camera 125.
  • the illumination light emitted from the reflection interference measurement light source 106 is reflected by the half mirror 108, passes through the objective lens 104, and enters from the bottom surface side of the container 102 in which the cell 101 to be measured is placed.
  • a beam splitter with a reduced reflection ratio such as 5:95 (reflection: transmission) or 20:80 (reflection: transmission) may be used when the illumination light intensity is sufficient.
  • Reflected light obtained from the adhesion surface of the cell 101 on the bottom surface of the container 102 causes interference according to the adhesion distance of the cell 101, and the obtained reflected interference light is condensed again by the objective lens 104 and passes through the half mirror 108. Then, only the reflection interference image is reflected by the dichroic mirror 122 for separating the quantitative phase image and the reflection interference image by the wavelength, and is captured by the reflection interference detection camera 110.
  • a beam splitter such as a half mirror is used instead of the dichroic mirror 122
  • a filter for selecting a wavelength used for reflection interference detection may be disposed between the beam splitter and the reflection interference detection camera 110.
  • the light reflected from the adhesion surface of the cell 101 on the bottom surface of the container 102 has a different amplitude depending on the adhesion distance of the cell 101 and is photographed as a contrast of light and dark. Since the quantitative phase image and the reflected interference image are acquired through the common objective lens 104, the imaging range of the cell 101 is substantially the same range in the quantitative phase measurement and the reflected interference measurement.
  • the camera 125 that acquires the quantitative phase image and the camera 110 that acquires the reflection interference image need not be limited to cameras having the same performance and the same pixel resolution. Since the amount of light incident on each camera and the incident wavelength are different from each other, cameras having performance and spatial resolution suitable for each may be used.
  • the quantitative phase detection camera 125 uses a high-sensitivity camera with high sensitivity at 830 nm and a large pixel size, and the reflection interference detection camera 110 has high sensitivity in the visible range and low spatial resolution priority with a small pixel size. You may use other cameras. In such a case, processing for matching the spatial coordinates of the two cameras is required, which will be described in detail later.
  • Lights in different wavelength ranges may be used as the illumination wavelengths of the reflection interference measurement light source 106 and the quantitative phase measurement light source 121 so that the quantitative phase measurement and the reflection interference measurement can be distinguished by wavelength.
  • the dichroic mirror 122 can separate and select the quantitative phase image and the reflected interference image at a specific wavelength. Therefore, an image at the same time can be obtained without crosstalk by quantitative phase measurement and reflection interference measurement.
  • an interference fringe image of the reference light and the object light transmitted through the cell 101 is obtained by the quantitative phase detection camera 125 (step S201, corresponding to the “quantitative phase imaging step” in the claims).
  • a quantitative phase image is formed from the interference fringe image using a known calculation method.
  • the offset correction of the background area without the cell 101 and the shading correction in the visual field of the background area are performed, the background part is spatially uniform, the phase value of the background part is corrected to 0, A two-dimensional map of the phase (optical path length) of the cell 101 is obtained.
  • a reflection interference image of the adhesive surface of the cell 101 is obtained by the reflection interference detection camera 110 (step S202, corresponding to the “reflection interference imaging step” in the claims).
  • the amplitude of the interference light varies depending on the distance of the cell 101 adhered to the substrate on the bottom surface of the container 102 from the substrate on the bottom surface of the container 102, and the reflected interference image is taken as a contrast of light and dark.
  • the shading of the reflected light in the field of the reflection interference image is corrected.
  • offset correction of the background portion is performed for each time so that the value of the background without the cells 101 does not change with time.
  • FIG. 17 shows a specimen 30 used for image alignment.
  • a microscale or dot pattern in which a lattice 31 is engraved on a glass substrate is used.
  • the microscale or dot pattern is easy to operate if at least one place is marked so that the same position can be seen when taken with two cameras.
  • a procedure for shifting the position of the image of the camera 110 on the reflection interference side in accordance with the image of the quantitative phase will be described in detail.
  • a microscale or a dot pattern is placed in place of the specimen of the cell 101, and the reflection interference and the quantitative phase are photographed with respective photographing cameras.
  • the reflection interference image obtained by photographing the microscale or the dot pattern and the quantitative phase image are superimposed with different pseudo colors (for example, the reflection interference image is green and the quantitative phase image is red). In some cases, it is easier to see if the luminance of the image is inverted.
  • the shift amount of each point is determined so that the center coordinates of each intersection of the lattice image or each dot of the dot image coincide with each other with two cameras.
  • the amount of shift is determined by interpolating spatial coordinates other than the coordinates where the grids or dots exist. In this manner, a table storing the shift amounts in units of one pixel for all pixels (all coordinates) is created and used as alignment data.
  • the obtained alignment data is saved as a file.
  • a new measurement is performed and an image is acquired
  • alignment between images is performed using the alignment data stored in the file, and an image with a corrected position is output.
  • the alignment as described above does not need to be performed every time the quantitative phase or the reflection interference is measured. If the same optical system is used, for example, 1 is considered in consideration of misalignment due to the use environment and the influence of vibration. It may be performed about once a month.
  • an observation filter for example, an electric filter wheel
  • the above procedure can be applied as appropriate when the position of the image of the camera 125 on the quantitative phase side is shifted in accordance with the image of reflection interference. it can. Further, the above procedure can be performed by an automated image processing without depending on human hands.
  • step S ⁇ b> 203 processing for extracting the contour region of the cell 101 (hereinafter also referred to as “segmentation”) is performed (steps S ⁇ b> 204 and S ⁇ b> 205, “contour extraction step” in the claims). ”).
  • step S204 contour extraction step. That is, in the quantitative phase image, the light passing through the cell 101 with respect to the light passing through the background solution without the cell 101 has a longer optical path length because the refractive index of the cell 101 is larger than the refractive index of the solution. Therefore, the value of the phase of the pixel in the area where the cell 101 exists is larger than the background. Therefore, by using an appropriate threshold value or spatial filter processing, the background and the cell 101 can be automatically separated without depending on a human hand. Then, the contour corresponding to each cell 101 can be determined, and the region of pixel coordinates corresponding to the region occupied by each cell 101 can be determined.
  • step S204 by adapting the pixel coordinates of the contour region of each cell 101 obtained in step S204 to the reflection interference image in which the spatial coordinates coincide, that is, by copying the segmentation region obtained in step S204 to the reflection interference image.
  • step S205 the contour region of each cell 101 determined by the quantitative phase image is applied to the reflection interference image (step S205, corresponding to the “contour application step” in the claims).
  • region can be determined with respect to the images A and B of both a quantitative phase image and a reflective interference image.
  • the contour corresponding to each cell can be determined, and the region of pixel coordinates corresponding to the region occupied by each cell can be determined.
  • the analysis unit 202 uses an image (hereinafter, referred to as “synthesized image”) in which the outline region of each cell 101 determined by the quantitative phase image is applied to the reflection interference image.
  • the parameter regarding the adhesion between the cell 101 and the transparent member 102a is calculated (step S206, corresponding to the “analysis step” in the claims).
  • the difference between the process of the present embodiment and the process of the first embodiment is that the analysis unit 202 of the first embodiment uses the area where the cells 101 are adhered from the entire reflection interference image as the measurement area.
  • the analysis unit 202 of the embodiment is that each cell region is a measurement region.
  • the “average luminance change rate” is calculated as a parameter for evaluating the change in membrane potential of each cell 101 (corresponding to “a parameter related to adhesion” in the claims).
  • the analysis unit 202 measures the average luminance with each cell area as a measurement area.
  • the analysis unit 202 calculates the average luminance I (t) of each measurement region in the composite image and obtains it in advance before drug solution administration.
  • a rate of change dI with respect to the average brightness of each individual measurement region (hereinafter referred to as “basic average brightness I (base)”) is calculated.
  • the average average luminance for example, an average luminance obtained from a composite image of individual measurement regions acquired before drug administration may be used, or an initial value stored in advance as an initial value for each cell type Luminance may be used.
  • Such basic average luminance is stored in the storage unit 203, and the analysis unit 202 reads the basic average luminance from the storage unit 203 in a timely manner to calculate the change rate dI.
  • the change rate dI is calculated by the following equation.
  • Rate of change dI (t) ⁇ I (t) ⁇ I (base) ⁇ / I (base)
  • I (t) average luminance of reflection interference (background corrected value)
  • I (base) average value of I (t) before drug administration
  • the analysis unit 202 detects a change in the membrane potential of the cell 101 with respect to each measurement region based on the change rate dI calculated by the above formula. That is, the analysis unit 202 evaluates that any change has been detected in the membrane potential in each cell 101 when a predetermined change rate dI is calculated in each measurement region. Further, the analysis unit 202 may output a graph such as shown in FIG. 8A or FIG. 8B in which the rate of change dI calculated by the above equation is plotted on the time axis. Further, a graph in which the rate of change dI (%) with respect to the adhesion area before drug solution administration is plotted may be output as a graph showing the change in the membrane potential of the cell 101. In addition, when outputting the said graph, it is preferable to output for every measurement area
  • the membrane potential change detection device 41 of the present embodiment when the cell is depolarized, the cell 101 is separated from the transparent member 102a and the reflection interference image becomes bright. When the cell is hyperpolarized, the cell 101 approaches the transparent member and the reflection image becomes dark. Based on correlation. Accordingly, it is detected that the individual cells 101 of the membrane potential are depolarized due to the change rate dI in the positive direction, and the membrane potential of the individual cells 101 is hyperpolarized by the change rate dI in the negative direction. Can be detected.
  • a peak (a maximum value in the case of depolarization and a minimum value in the case of hyperpolarization) within a certain time after administration of the drug solution is obtained, and the concentration of the drug solution administered to each cell 101 is also determined based on the magnitude of the value. be able to.
  • the membrane potential change detection device 41 includes a quantitative phase measurement light source 121, a reflection interference measurement light source 106, a reflection interference detection camera 110, a quantitative phase detection camera 125, and an analysis unit 202. Since the information regarding the adhesion of the cell 101 and the information regarding the area and the optical thickness of the cell 101 can be acquired at the same time, variations in parameters regarding the adhesion between the cell 101 and the transparent member 102a can be increased. In addition, since the segmentation of the cells 101 is executed by an automated process, it is possible to easily acquire data for each cell 101.
  • the reflection interference image and the quantitative phase image as in the membrane potential change detection device 41 according to the present embodiment are acquired simultaneously.
  • the configuration is valid.
  • the example has been described in which the outline of a cell that can be acquired from the quantitative phase image is copied (segmented) into the reflection interference image, but the present invention is not limited to this.
  • the calculation of the rate of change dI with respect to the average luminance of the measurement region is as described above, and thus the description thereof is omitted here.
  • FIG. 19 is a schematic diagram showing the overall configuration of the membrane potential change detection device 61.
  • the membrane potential change detection device 61 includes an image acquisition unit 10 and a processing unit 20.
  • the image acquisition unit 10 includes a holding unit 103 (corresponding to “holding unit” in claims), an objective lens 104, a light source for quantitative phase measurement 121, and a quantitative phase shutter 121A (“quantitative phase light amount adjusting unit in claims”). ),
  • a total reflection mirror 131, a diffractive interference optical system 132, a reference light cutting device 133, and a camera 134 (corresponding to “reflective interference imaging means” in the claims).
  • the processing unit 20 includes an image receiving unit 221, a contour extracting unit 212 (corresponding to “contour extracting unit” in claims), a contour applying unit 213 (corresponding to “contour applying unit” in claims), and an analyzing unit. 202 and a storage unit 203.
  • the image receiving unit 221 is a part that receives the reflection interference image and the quantitative phase image generated by the imaging of the camera 134.
  • the contour extraction unit 212 is a part that extracts a contour that is a range of the cell 101 based on the quantitative phase image.
  • the contour applying unit 213 is a part that generates a reflection interference image after applying the contour by applying the contour extracted by the contour extracting unit 212 to the reflection interference image.
  • the analysis unit 202 calculates a parameter for each cell 101 related to the adhesion between the cell 101 and the transparent member 102a based on the reflection interference image after applying the contour, and changes in the membrane potential for each cell 101 based on the change in the parameter.
  • FIG. 2 is a hardware configuration diagram of the processing unit 20 including the functional components as described above. Since the hardware configuration is the same as that of the membrane potential change detection device 1 of the first embodiment, the description thereof is omitted here.
  • the reflection interference shutter 106A adjusts the amount of light emitted from the reflection interference measurement light source 106 such as a halogen lamp or a xenon lamp.
  • the quantitative phase shutter 121A adjusts the amount of light emitted from the quantitative phase measurement light source 121 such as a halogen lamp or a xenon lamp.
  • a light source having radiation sensitivity over a wide wavelength range such as a halogen lamp or a xenon lamp can use light in the near infrared region of 700 nm to 2500 nm as illumination light, and can reduce toxicity to the cell 101. .
  • the reflection interference shutter 106A and the quantitative phase shutter 121A are necessary.
  • a semiconductor light source such as an LED (light emitting diode), a semiconductor laser (laser diode), or an SLD (super luminescent diode) is used as the light source, reflection interference measurement and quantitative phase can be performed by turning the light source itself on and off. Switching to measurement may be performed. In this case, as shown in FIG.
  • the amount of light emitted from the reflection interference measurement light source 106 is adjusted by turning on / off the reflection interference measurement light source 106 and the quantitative phase measurement light source 121 is turned on. What is necessary is just to provide the light source control part 225 which adjusts the light quantity of the light radiated
  • the camera 134 captures the reflected light emitted from the reflection interference measurement light source 106 and reflected from the cell 101 to generate a reflection interference image, and the irradiation light emitted from the quantitative phase measurement light source 121
  • the illumination light diaphragm 121B such as a pinhole or an aperture
  • the irradiation light becomes close to a point light source, and the transmitted light passing through the cell 101 is imaged to generate a quantitative phase image.
  • the quantitative phase shutter 121A blocks the light from the quantitative phase measurement light source 121, and the camera 134 images the reflected light.
  • the reflection interference shutter 106A blocks the light from the reflection interference measurement light source 106, and the camera 134 images the transmitted light.
  • the camera 134 performs both measurements exclusively in terms of time as one camera common to the reflection interference measurement and the quantitative phase measurement.
  • the diffractive interference optical system 132 separates the transmitted light from the cell 101 into object light and reference light for interference in order to generate a quantitative phase image.
  • the reference light cutting device 133 is installed on an optical path through which the reference light passes in the diffractive interference optical system 132, and shields the reference light when generating a reflection interference image.
  • Quantitative phase measurement will be described.
  • the illumination light emitted from the quantitative phase measurement light source 121 installed on the upper part of the container 102 containing the cells 101 passes through the container 102 containing the cells 101 and is collected by the objective lens 104.
  • an interference image of the object light and the reference light is formed by the diffraction interference optical system 132 for phase measurement through the half mirror 108 and further through the total reflection mirror 131, and the interference fringe image is formed by the camera 134. Imaged.
  • the illumination light emitted from the reflection interference measurement light source 106 is reflected by the half mirror 108, passes through the objective lens 104, and enters from the bottom surface side of the container 102 in which the cell 101 to be measured is placed.
  • the reflection interference illumination optical system is not limited to a half mirror. When the illumination light intensity is sufficient, the reflection ratio is reduced to 5:95 (reflection: transmission) or 20:80 (reflection: transmission). Another beam splitter may be used. Moreover, you may use the dichroic mirror from which a reflectance and transmittance
  • Reflected light obtained from the adhesion surface of the cell 101 on the bottom surface of the container 102 causes interference according to the adhesion distance of the cell 101, and the obtained reflected interference light is condensed again by the objective lens 104 and passes through the half mirror 108. Further, the image is captured by the camera 134 via the total reflection mirror 131.
  • the light reflected from the adhesion surface of the cell 101 on the bottom surface of the container 102 has a different amplitude depending on the adhesion distance of the cell 101 and is photographed as a contrast of light and dark. Since the quantitative phase image and the reflected interference image are acquired through the common objective lens 104, the imaging range of the cell 101 is substantially the same range in the quantitative phase measurement and the reflected interference measurement.
  • the third embodiment is characterized in that the quantitative phase image and the reflection interference image are acquired by using one camera 134 with a time difference alternately. For this purpose, it is necessary to illuminate each other exclusively at the timing when the quantitative phase measurement light source 121 and the reflection interference measurement light source 106 irradiate the respective illumination lights. Therefore, mechanical shutters 121 ⁇ / b> A and 106 ⁇ / b> A for irradiating and blocking light are provided at the irradiation ports of the quantitative phase measurement light source 121 and the reflection interference measurement light source 106.
  • a reference light cutting device 133 is provided inside the diffractive interference optical system 132 for creating a quantitative phase image.
  • the diffractive interference optical system 132 is an optical system for creating a quantitative phase image, and separates the object light and the reference light from the transmitted illumination image illuminated by the quantitative phase measurement light source 121 through the diffraction element 132A. , Play the role of interfering.
  • both the quantitative phase image and the reflected interference image pass through the same diffractive interference optical system 132, in order to extract the reflected interference image, an apparatus for cutting the reference light separated by passing through the diffractive element 132A In this embodiment, the reference light cutting device 133 is provided.
  • the reference light cutting device 133 can be configured as, for example, a mechanical shutter provided on the optical path 132B on the reference light side.
  • FIG. 20 is a diagram illustrating a reference light shutter 133A that functions as the reference light cutting device 133.
  • FIG. 20A shows the movement of the reference light shutter 133A at the time of capturing a quantitative phase image.
  • both the object light passing through the pinhole 133B and the reference light passing through the pinhole 133C are required after being separated by the diffraction element 132A, and therefore the reference light shutter 133A does not block the pinhole 133C.
  • the object light and the reference light reach the camera 134 through the pinholes 133B and 133C.
  • the reference light shutter 133A shields the reference light by blocking the pinhole 133C, and only the object light reaches the camera 134 through the pinhole 133B.
  • FIG. 21 is a timing chart for the operations of the quantitative phase shutter 121A, the reference light cut device 133, the quantitative phase imaging by the camera 134, the reflection interference shutter 106A, and the camera 134.
  • the quantitative phase image and the reflection interference image perform illumination and image acquisition exclusively in time series. Specifically, when a quantitative phase image is acquired, the quantitative phase shutter 121A is opened and the reflection interference shutter 106A is closed. Conversely, when acquiring a reflection interference image, the reflection interference shutter 106A is opened and the quantitative phase shutter 121A is closed.
  • the reference light cutting device 133 provided on the reference light side among the object light and the reference light obtained by the diffraction element 132A of the diffractive interference optical system 132 opens, and the camera 134 Then, a quantitative phase image is obtained by forming an interference image of the object beam and the reference beam.
  • the reference light cutting device 133 provided on the reference light side is closed and only the object light is used as the reflection interference image. The image is formed on the camera 134 as it is. In this way, the quantitative phase image and the reflection interference image are alternately obtained in time, and the two images are treated as a pair of images at the same time.
  • an interference fringe image of the reference light and the object light transmitted through the cell 101 is obtained by the camera 134 (step S301, corresponding to the “imaging step” in the claims).
  • a quantitative phase image is formed from the interference fringe image using a known calculation method.
  • the offset correction of the background area without the cell 101 and the shading correction in the visual field of the background area are performed, the background part is spatially uniform, the phase value of the background part is corrected to 0, A two-dimensional map of the phase (optical path length) of the cell 101 is obtained.
  • a reflection interference image of the adhesion surface of the cell 101 is obtained by the camera 134 (step S302, corresponding to the “imaging step” in the claims).
  • the amplitude of the interference light varies depending on the distance of the cell 101 adhering to the bottom surface of the container 102 from the bottom surface of the container 102, and the reflected interference image is taken as a contrast of light and dark.
  • the shading of the reflected light in the field of the reflection interference image is corrected.
  • offset correction of the background portion is performed for each time so that the value of the background without the cells 101 does not change with time.
  • Both images (quantitative phase image and reflection interference image) captured and corrected in step S301 and step S302 are input to the processing unit 20 (step S303).
  • step S303 a process of extracting the outline region of the cell 101 (hereinafter also referred to as “segmentation”) is performed on both images input in step S303 (steps S304 and S305, “ Corresponding to “contour extraction step” and “contour application means”).
  • an area that is an outline of each cell 101 is detected from the quantitative phase image, out of the quantitative phase image and the reflection interference image captured at the same observation position and at the same time (step).
  • step 3 image A in FIG. 23, equivalent to “contour extraction step” in claims). That is, in the quantitative phase image, the light passing through the cell 101 with respect to the light passing through the background solution without the cell 101 has a longer optical path length because the refractive index of the cell 101 is larger than the refractive index of the solution. Therefore, the value of the phase of the pixel in the area where the cell 101 exists is larger than the background. Therefore, by using an appropriate threshold value or spatial filter processing, the background and the cell 101 can be automatically separated without depending on a human hand. Then, the contour corresponding to each cell 101 can be determined, and the region of pixel coordinates corresponding to the region occupied by each cell 101 can be determined.
  • the pixel coordinates of the contour region of each cell 101 obtained in step S304 are adapted to the reflection interference image having the same spatial coordinates, that is, the segmentation region obtained in step S304 is copied to the reflection interference image.
  • the contour region of each cell 101 determined by the quantitative phase image is applied to the reflection interference image (step S305, image B in FIG. 23, corresponding to the “contour application step” in the claims).
  • region can be determined with respect to both image A and B of a quantitative phase image and a reflective interference image.
  • the contour corresponding to each cell can be determined, and the region of pixel coordinates corresponding to the region occupied by each cell can be determined.
  • the analysis unit 202 uses an image (hereinafter, referred to as “composite image”) obtained by applying the contour region of each cell 101 determined by the quantitative phase image to the reflection interference image, and displays “average luminance of each measurement region”. "Change rate” is calculated, and changes in the membrane potential of the cells 101 with respect to individual measurement regions are detected based on the average luminance change rate dI (step S306, corresponding to the "analysis step” in the claims). Since it is the same as that of 2nd Embodiment, the description is abbreviate
  • the quantitative phase measurement light source 121 In the membrane potential change detection device 61 according to the third embodiment, the quantitative phase measurement light source 121, the quantitative phase shutter 121 ⁇ / b> A, the reflection interference measurement light source 106, the reflection interference shutter 106 ⁇ / b> A, and the camera 134 are provided. Since information, and information regarding the area and optical thickness of the cell 101 can be acquired simultaneously, variations in parameters regarding the adhesion between the cell 101 and the transparent member 102a can be increased. In addition, since the segmentation of the cells 101 is executed by an automated process, it is possible to easily acquire data for each cell 101.
  • the membrane potential change detection device 61 of the third embodiment is low in comparison with the membrane potential change detection device 41 according to the second embodiment because only one camera is required to acquire a quantitative phase image and a reflection interference image. There is a merit that it is possible to reduce the cost and it is not necessary to align the two cameras.
  • the membrane potential change detection device 61 of the third embodiment is a time interval when the response of the cells is relatively slow with respect to the drug solution administration, and the quantitative phase image and the reflection interference image are acquired sequentially. It is useful to use for applications in which changes can be detected.
  • Illumination light stop part 122 ... Dichroic mirror, 123, 131 ... Total reflection mirror, 124 ... Diffractive interference optical system, 125 ... Quantitative phase detection 132, diffraction interference optical system, 132A, diffraction element, 133, reference light cutting device, 133A Reference light shutter, 133B, 133C ... pinhole, 134 ... camera, 201, 221 ... image receiving unit, 202 ... analysis unit, 203 ... storage unit, 211 ... image alignment unit, 212 ... contour extraction unit, 213 ... contour application , 225... Light source control unit.
  • the present invention provides a membrane potential change detection apparatus and a membrane potential change detection method capable of detecting a change in membrane potential of a cell by a noninvasive method without labeling.

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Abstract

 膜電位変化検出装置1は、反射干渉計測用光源106と、細胞101が載置された透明部材102aを保持する保持部103と、反射干渉計測用光源106から放射され、透明部材102aを介して細胞101から反射される光を撮像することにより、反射干渉画像を生成する反射干渉検出用カメラ110と、反射干渉画像から細胞101と透明部材102aとの接着に関するパラメータdIを算出し、当該パラメータdIの変化に基づいて細胞101の膜電位の変化を検出する解析部202と、を備えている。

Description

膜電位変化検出装置および膜電位変化検出方法
 本発明は、膜電位変化検出装置および膜電位変化検出方法に関するものである。
 細胞のイオンチャンネルを標的とした治療薬の開発は、創薬の開発において重要度を増している。従来の生細胞を用いたアッセイにおいてはパッチクランプ電極を用いた膜電位の測定や膜電位感受性色素を用いた光学的な膜電位の計測などが用いられてきた。例えば、非特許文献1には、蛍光色素によって細胞を染色し、蛍光干渉コントラスト顕微鏡画像を用いて基板に載置された当該細胞と基板との距離(細胞の接着度)を求めたり、膜電位感受性色素によって細胞を染色し、光学的に細胞の膜電位の変化を求めたりする技術が開示されている。また、非特許文献2には、FRET色素によって細胞を染色(着色)し、FRET現象を用いて細胞の膜電位の変化を算出する技術が開示されている。
Raimund Gleixner and PeterFromherz, "The Extracellular Electrical Resistivity in Cell Adhesion." ,Biophysical Journal , Volume90, 2600-2611, (2006) Jesus E Gonzalez and Roger YTsien, "Improved indicators of cell membrane potential that use fluorescenceresonance energy transfer" , Chemistry & Biology,1997,Vol.4, No.4,Page.269-277
 細胞の膜電位変化を測定するためのラベル剤である蛍光色素を細胞に取り込ませる必要がある。また、上記の測定には強い励起光を照射する必要があり、生細胞の状態に影響を及ぼす。生細胞の正常な状態を保って測定するには色素濃度や励起光照射強度の最適な条件を試行錯誤により見極める必要がある。また今後、幹細胞をもとにヒト細胞が薬効評価の対象として利用が拡大するとこれらの細胞の中にはダメージを受けやすい細胞も多く、ラベルした測定はますます難しくなる。したがって、できるだけラベルをせず、細胞を培養した状態からできるだけ手を加えずに膜電位を非侵襲に測定するラベルフリー技術が望まれている。
 そこで、本発明は上記に鑑みてなされたもので、ラベルすることなく非侵襲的な方法で細胞の膜電位の変化を検出することが可能な膜電位変化検出装置および膜電位変化検出方法を提供することを目的とする。
 上記課題を解決するために、本発明の膜電位変化検出装置は、反射干渉計測用光源と、細胞が載置された透明部材を保持する保持手段と、反射干渉計測用光源から放射され、透明部材を介して細胞から反射される光を撮像することにより、反射干渉画像を生成する反射干渉撮像手段と、反射干渉画像から細胞と透明部材との接着に関するパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞の膜電位の変化を検出する解析手段と、を備えている。
 また、本発明の膜電位変化検出方法は、反射干渉撮像手段が、反射干渉計測用光源から放射され、細胞が載置された透明部材を介して細胞から反射される光を撮像することにより、反射干渉画像を生成する反射干渉撮像ステップと、解析手段が、反射干渉画像から細胞と透明部材との接着に関するパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて、細胞の膜電位の変化を検出する解析ステップと、を含んでいる。
 このような発明によれば、反射干渉計測用光源、保持手段、反射干渉撮像手段および解析手段を備えることにより、細胞からの反射光をもとに細胞と透明部材との接着に関するパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞の膜電位の変化を検出している。発明者らは、細胞が載置された透明部材と細胞との接着度合と、細胞の膜電位の変化との間に相関関係があることを発見した。本発明は、発見されたこのような相関関係を利用して、細胞の膜電位の変化を、細胞と透明部材との接着距離(接着度合)の変化として捉えているところに特徴がある。当該接着距離に基づく細胞と透明部材との接着に関するパラメータは非侵襲的な方法で得られるので、細胞の膜電位の変化をラベルすることなく非侵襲的に検出することが可能となる。
 また、本発明では、解析手段は、脱分極になると細胞が透明部材から離れ、過分極になると細胞が透明部材に近づくという相関関係に基づいて細胞の膜電位の変化を検出してもよい。この発明によれば、発明者らが発見した上記相関関係に基づいて、細胞が脱分極および過分極になったときの細胞の膜電位の変化を検出することができる。
 また、本発明では、反射干渉計測用光源から放射され細胞から反射される光が集光される対物レンズを更に備えており、対物レンズと透明部材とは空気層を介して配置されていてもよい。この発明によれば、対物レンズの操作性を改善することができるので、細胞が載置された透明部材全体をスキャンしながら撮像することが容易となる。これにより、細胞の膜電位の変化を検出する際のスループットを向上させることができる。
 また、本発明では、透明部材の載置面とは反対側の面は、反射防止コートが施されていてもよい。この発明によれば、ドライ系の対物レンズを用いる場合であっても、高いコントラストで細胞接着面の反射干渉画像を得ることができる。
 また、本発明では、対物レンズの反射干渉計測用光源側の開口絞りと共役な位置に配置されているリング状のスリットを更に備えていてもよい。この発明によれば、リング状に開口したスリットを反射干渉計測用光源からの照明光が通り、照明光は対物レンズの中心は通らず周辺を通って照明され、角度のついた高いNAの光のみを使って細胞が照明されるため、細胞上部の溶液からの反射光の影響を低減することができる。また、リング状のスリットを用いることにより、対物レンズ内部の反射による背景光を低減することもできる。
 また、本発明では、定量位相計測用光源と、定量位相計測用光源から放射され細胞を透過する光を撮像することにより、定量位相画像を生成する定量位相撮像手段と、を更に備えていてもよい。この発明によれば、定量位相計測用光源と定量位相撮像手段とを備えることにより、個々の細胞の光学的厚さ、体積および面積などの情報を取得している。定量位相撮像手段から取得できる個々の細胞の光学的厚さ、体積および面積などの情報を用いることにより、細胞と透明部材との接着に関するパラメータのバリエーションを増やすことが可能となる。
 また、本発明の膜電位変化検出装置では、反射干渉画像と定量位相画像との間で、空間的な位置を一致させることにより、両画像の位置合わせを行う画像位置合わせ手段と、定量位相画像に基づき、細胞の輪郭を抽出する輪郭抽出手段と、輪郭抽出手段が抽出した輪郭を反射干渉画像に適用することにより、輪郭適用後の反射干渉画像を生成する輪郭適用手段と、を更に備えており、解析手段は、輪郭適用後の反射干渉画像に基づいて、細胞と透明部材との接着に関する細胞ごとのパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞ごとの膜電位の変化を検出してもよい。
 また、本発明の膜電位変化検出方法では、反射干渉撮像手段が、反射干渉計測用光源から放射され、細胞が載置された透明部材を介して細胞から反射される光を撮像することにより、反射干渉画像を生成する反射干渉撮像ステップと、定量位相撮像手段が、定量位相計測用光源から放射され、細胞を透過する光を撮像することにより、定量位相画像を生成する定量位相撮像ステップと、画像位置合わせ手段が、反射干渉画像と定量位相画像との間で、空間的な位置を一致させることにより、両画像の位置合わせを行う画像位置合わせステップと、輪郭抽出手段が、定量位相画像に基づき、細胞の輪郭を抽出する輪郭抽出ステップと、輪郭適用手段が、輪郭抽出手段が抽出した輪郭を反射干渉画像に適用することにより、輪郭適用後の反射干渉画像を生成する輪郭適用ステップと、解析手段が、輪郭適用後の反射干渉画像に基づいて、細胞と透明部材との接着に関する細胞ごとのパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞ごとの膜電位の変化を検出する解析ステップと、を含んでいてもよい。
 これらの発明によれば、画像位置合わせ手段と、輪郭抽出手段と、輪郭適用手段とを備えることにより、定量位相画像に基づき細胞の輪郭を抽出し、当該輪郭を反射干渉画像と重ね合わせている。これにより、反射干渉撮像手段および定量位相撮像手段により取得される画像の中に複数の細胞が含まれている場合には、個々の細胞について膜電位の変化を検出することが可能となる。
 また、本発明では、反射干渉計測用光源から放射される光の光量を調整する反射干渉光量調整手段と、定量位相計測用光源と、定量位相計測用光源から放射される光の光量を調整する定量位相光量調整手段と、を更に備えており、反射干渉撮像手段は、反射干渉計測用光源から放射され、細胞から反射される反射光を撮像することにより、反射干渉画像を生成するとともに、定量位相計測用光源から放射され、細胞を透過する透過光を撮像することにより、定量位相画像を生成し、反射干渉画像を生成する際に、定量位相光量調整手段が定量位相計測用光源からの光を遮光し、反射干渉撮像手段が反射光を撮像し、定量位相画像を生成する際に、反射干渉光量調整手段が反射干渉計測用光源からの光を遮光し、反射干渉撮像手段が透過光を撮像してもよい。この発明によれば、定量位相計測用光源と定量位相撮像手段とを備えることにより、個々の細胞の光学的厚さ、体積および面積などの情報を取得している。定量位相撮像手段から取得できる個々の細胞の光学的厚さ、体積および面積などの情報を用いることにより、細胞と透明部材との接着に関するパラメータのバリエーションを増やすことが可能となる。
 また、本発明の膜電位変化検出装置では、反射干渉光量調整手段は、反射干渉計測用光源から放射される光の光量を調整するシャッタであり、定量位相光量調整手段は、定量位相計測用光源から放射される光の光量を調整するシャッタであってもよい。この発明によれば、光の光量を調整するための具体的な手段が提供される。
 また、本発明の膜電位変化検出装置では、反射干渉光量調整手段は、反射干渉計測用光源のON/OFFによる切り替えにより、反射干渉計測用光源から放射される光の光量を調整し、定量位相光量調整手段は、定量位相計測用光源のON/OFFによる切り替えにより、定量位相計測用光源から放射される光の光量を調整してもよい。この発明によれば、光の光量を調整するための具体的な方法が提供される。この方法は、光源がLED(発光ダイオード)やLD(レーザーダイオード)、SLD(スーパールミネッセントダイオード)などの半導体型光源である場合に特に有用である。
 また、本発明の膜電位変化検出装置では、定量位相画像に基づき、細胞の輪郭を抽出する輪郭抽出手段と、輪郭抽出手段が抽出した輪郭を反射干渉画像に適用することにより、輪郭適用後の反射干渉画像を生成する輪郭適用手段と、を更に備えており、解析手段は、輪郭適用後の反射干渉画像に基づいて、細胞と透明部材との接着に関する細胞ごとのパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞ごとの膜電位の変化を検出してもよい。
 また、本発明の膜電位変化検出方法では、撮像手段が、反射干渉計測用光源から放射され、細胞から反射される反射光を撮像することにより、反射干渉画像を生成するとともに、定量位相計測用光源から放射され、細胞を透過する透過光を撮像することにより、定量位相画像を生成する撮像ステップと、輪郭抽出手段が、定量位相画像に基づき、細胞の輪郭を抽出する輪郭抽出ステップと、輪郭適用手段が、輪郭抽出手段が抽出した輪郭を反射干渉画像に適用することにより、輪郭適用後の反射干渉画像を生成する輪郭適用ステップと、解析手段が、輪郭適用後の反射干渉画像に基づいて、細胞と透明部材との接着に関する細胞ごとのパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞ごとの膜電位の変化を検出する解析ステップと、を含んでおり、反射干渉画像を生成する際に、定量位相光量調整手段が定量位相計測用光源からの光を遮光し、撮像手段が反射光を撮像し、定量位相画像を生成する際に、反射干渉光量調整手段が反射干渉計測用光源からの光を遮光し、撮像手段が透過光を撮像してもよい。
 これらの発明によれば、画像位置合わせ手段と、輪郭抽出手段と、輪郭適用手段とを備えることにより、定量位相画像に基づき細胞の輪郭を抽出し、当該輪郭を反射干渉画像と重ね合わせている。これにより、反射干渉撮像手段および定量位相撮像手段により取得される画像の中に複数の細胞が含まれている場合には、個々の細胞について膜電位の変化を検出することが可能となる。
 本発明の膜電位変化検出装置および膜電位変化検出方法によれば、ラベルすることなく非侵襲的な方法で細胞の膜電位の変化を検出することが可能となる。
第1実施形態に係る膜電位変化検出装置の全体構成を示す概要図である。 第1実施形態に係る処理部のハードウェア構成図である。 容器の構成を示す断面図である。 反射防止コートによる効果を示すための図である。 反射防止コートによる効果を示すための図である。 波長幅の違いによる反射干渉画像の違いを示す図である。 処理部の機能および動作を示すフローチャートである。 変化率の時間的変化の一例を示す図である。 測定例1における反射干渉画像の変化を示す図である。 測定例1における変化率の時間的変化を示すグラフである。 測定例1における濃度とピーク時の変化率との関係を示すグラフである。 測定例2における反射干渉画像の変化を示す図である。 測定例2における変化率の変化を示すグラフである。 測定例2における濃度とピーク時の変化率との関係を示すグラフである。 第2実施形態に係る膜電位変化検出装置の全体構成を示す概要図である。 第2実施形態に係る処理部の機能および動作を示すフローチャートである。 第2実施形態に係る画像位置合わせに用いる標本を示す図である。 第2実施形態に係る輪郭抽出処理および輪郭適用処理の一例を示す図である。 第3実施形態に係る膜電位変化検出装置の全体構成を示す概要図である。 参照光カット装置として機能する参照光シャッタを示す図である。 定量位相撮像および反射干渉撮像にかかるタイミングチャートに示す図である。 第3実施形態に係る処理部の機能および動作を示すフローチャートである。 第3実施形態に係る輪郭抽出処理および輪郭適用処理の一例を示す図である。 第3実施形態の変形例に係る膜電位変化検出装置の全体構成を示す概要図である。
 以下、添付図面を参照して本発明にかかる膜電位変化検出装置および膜電位変化検出方法の好適な実施形態を詳細に説明する。なお、図面の説明において同一の要素には同一の符号を付し、重複する説明を省略する。
 第1実施形態では、反射干渉の計測から得られる反射干渉画像を利用して細胞の膜電位の変化を検出する装置について説明を行う。第2実施形態と第3実施形態では、反射干渉の計測と同時に定量位相の計測を行い、反射干渉画像と定量位相画像とを取得し、これらの両画像を利用して細胞の膜電位の変化を検出する方法について説明を行う。
 [第1実施形態]
 (膜電位変化検出装置1の全体構成)
 まず、本発明の実施形態に係る膜電位変化検出装置1の全体構成について、図1を参照しながら説明する。図1は、膜電位変化検出装置1の全体構成を示す概要図である。図1に示すように、膜電位変化検出装置1は、画像取得部10および処理部20から構成されている。
 画像取得部10は、保持部103(特許請求の範囲の「保持手段」に相当)、対物レンズ104、反射干渉計測用光源106、リング状のスリット107、ハーフミラー108、反射干渉検出用カメラ110(特許請求の範囲の「反射干渉撮像手段」に相当)、XYステージ115およびディスペンサ117を備えている。処理部20は、画像受信部201、解析部202(特許請求の範囲の「解析手段」に相当)および記憶部203を備えている。
 保持部103は、透明部材102aで形成され、細胞101が収容(載置)された容器102を静置(保持)する。対物レンズ104は、反射干渉計測用光源106から放射され細胞101から反射される光を集光する。対物レンズ104と透明部材102aとは、空気層を介して配置されている。反射干渉計測用光源106は照明光を放射する。リング状のスリット107は輪体照明を行う。ハーフミラー108は、所定の比率で入射光を反射または透過する。反射干渉検出用カメラ110は、反射干渉計測用光源106から放射され、透明部材102aを介して細胞101から反射される光を撮像することにより、反射干渉画像を生成する。XYステージ115は測定領域を切り換える。ディスペンサ117は細胞101に薬液を投与する。画像受信部201は、反射干渉検出用カメラ110が出力した反射干渉画像を受信する部分である。解析部202は、反射干渉画像から細胞と透明部材との接着に関するパラメータを算出し、当該パラメータに基づいて細胞の膜電位の変化を検出する部分である。本実施形態では、解析部202は、脱分極になると細胞101が透明部材102aから離れ、過分極になると細胞101が透明部材102aに近づくという相関関係に基づいて、細胞101の膜電位の変化を検出している。記憶部203は、解析部202によって算出されるパラメータや、反射干渉検出用カメラ110から出力される画像を記憶する部分である。
 図2は、上述した機能的構成要素を備える処理部20のハードウェア構成図である。図2に示すように、処理部20は、物理的には、CPU21、ROM22及びRAM23などの主記憶装置、キーボード及びマウスなどの入力デバイス24、ディスプレイなどの出力デバイス25、画像取得部10との間でデータの送受信を行うためのネットワークカードなどの通信モジュール26、ハードディスクなどの補助記憶装置27などを含む通常のコンピュータシステムとして構成される。処理部20の各機能は、CPU21、ROM22、RAM23などのハードウェア上に所定のコンピュータソフトウェアを読み込ませることにより、CPU21の制御の元で入力デバイス24、出力デバイス25、通信モジュール26を動作させると共に、主記憶装置22,23や補助記憶装置27におけるデータの読み出しおよび書き込みを行うことで実現される。
 (膜電位変化検出装置1の詳細説明)
 (画像取得部10の説明)
 再び、図1を参照しながら説明する。保持部103は、計測中の細胞101の状態を維持するために、細胞101の状態に適した温度に維持することが望ましい。また、細胞101の測定が長時間に及ぶ場合には、保持部103は、細胞101の生育、状態維持に適した温度、湿度、炭酸ガス濃度などが整った環境に維持することが望ましい。
 図3は、容器102の構成を示す断面図である。保持部103に保持される容器102は、細胞101が載置される部分が透明部材102aによって形成されている。容器102としては、例えばディッシュやマイクロプレートが例示される。容器102における細胞101の載置面102bは帯電されており、本実施形態においては+に帯電されている。
 容器102は、細胞101の載置面102bの反対側(容器102の観察領域の対物レンズ104側)102cに反射防止コート102dが施されている。この反射防止コート102dは、反射干渉画像を取得する上で著しい効果を発揮する。できるだけ多くの細胞101を計測するためには、低倍率の対物レンズを利用することが望ましい。しかし、低倍率の対物レンズは開口数(NA:Numerical Aperture)が低く、通常油浸や水浸ではなく、ドライ系の対物レンズが一般的である。しかしながら、反射干渉画像において、ドライ系の対物レンズを用いると、対物レンズから出射した照明光は細胞の入っている容器の底面で大きく反射する。これは空気と容器の底面のガラスなどの屈折率差が大きいためである。そのため、大幅に背景光が増加して細胞の接着面の反射干渉画像を見ることはほとんど困難となる。従来、反射干渉観察に、油浸や水浸の対物レンズが用いられてきた理由はここにある。
 そこで、本実施形態の容器102では、細胞101が入れられた容器102の細胞101の載置面102bの反対側102cに反射防止コート102dを施すことによって、ドライ系の対物レンズでの反射干渉画像の取得を可能にした。図4に示すように、反射防止コート102dをしていない状態で対物レンズから照射された照明光は空気とガラスとの界面で4%程度の反射があるが、ガラス底面に照明光の波長範囲(420nm~720nm)において反射率Rを0.5%程度に抑えた反射防止コート処理を行うことによって、背景光を1/8以下に低減することができる。このため、本実施形態によれば、ドライ系の対物レンズを用いる場合であっても、高いコントラストで細胞接着面の反射干渉画像を得ることができる。
 図5に容器102の底面102cに反射防止コート102dを施した場合のドライ系の対物レンズを用いた反射干渉画像を示す。図5(A)のように反射防止コート102dを施さないと、容器102の底面102cからの反射が大きいために、反射干渉画像のコントラストは極めて低下してしまう。これに対して、図5(B)のように底面102cに反射防止コート102dを施した容器102を用いることによって、ドライ系の対物レンズでも良好なコントラストを得ることができる。
 図1に戻り、対物レンズ104は、上述したようにできるだけ多くの細胞を視野に入れるため、10倍または20倍の低倍率でかつ開口数のより大きい対物レンズであることが望ましい。また、対物レンズ104は、水浸や油浸ではなく、上述したようにドライ系の対物レンズであることが望ましい。本実施形態では、このようなドライ系の対物レンズを使用することにより、対物レンズ104の操作性が改善されるので、容器102全体をスキャンしながら撮像することが可能となる。これにより、細胞101の膜電位の変化を検出する際のスループットを向上させることが可能となる。また、対物レンズ104には、図示しないフォーカス機構が設けられており、後述する反射干渉検出用カメラ110にて得られた画像に基づいてオートフォーカスを実行することができる。
 反射干渉計測用光源106は、ハロゲンランプやキセノンランプなどの広い波長範囲にわたって放射感度を有する光源が望ましい。従来、コントラストを得るためにある程度波長幅を制限したバンドパスフィルタを用いた照明光が利用されていた。しかしながら、バンドパスされた照明光では、干渉性が高く、細胞の接着面とは関係のない細胞の上部の細胞膜と培養液との界面からの反射による干渉縞が映り込むことがしばしばある。本実施形態では、波長幅の広く干渉性の低い低コヒーレント光を使用している。広い波長幅の照明光を用いることにより、干渉が起きる距離を狭くすることができ、細胞の基板への接着面に限定した反射干渉画像を取り出すことが可能となる。また、ハロゲンランプやキセノンランプなどの広い波長範囲にわたって放射感度を有する光源であれば、700nm~2500nmの近赤外領域の光を照明光として用いることが可能であり、細胞101に対する毒性を低減できる。なお、反射干渉計測用光源106としては、LED(発光ダイオード)や半導体レーザー(レーザーダイオード)、SLD(スーパールミネッセントダイオード)などの光源を用いてもよい。
 図6に420nm~750nmの波長幅の広い照明光を用いた場合と480nm、530nmを中心波長として波長幅30nm程度に狭い波長範囲でバンドパスされた照明光を用いた場合の反射干渉画像の違いを示す。図6(A)と図6(B)のように狭い波長範囲でバンドパスされた照明光では、細胞の接着面ではない細胞の上部の細胞膜と培養液との界面からの反射が干渉縞のように重なって観察されるが、図6(C)のように波長幅の広い照明光を用いることにより、細胞の上部からの反射光による干渉は観察されず、細胞の接着面により限定した情報のみを取り出すことが可能である。
 本実施形態の反射干渉計測用光源106は、広い放射波長を有するハロゲンランプを光源として用い、出力光に420nmから800nm程度の可視から近赤外の波長域において任意の広い波長幅のバンドパスフィルタを用いている。中心波長が500nmから1000nmで、半値全幅が100nm以上のバンドパスされた光を用いると、細胞の接着面に限定した反射干渉画像を取り出すことができる。基板に接着している細胞と基板との距離は、光軸方向に最大でも1μm以下であると考えられることから、細胞と基板の接着面の情報のみを特異的に取り出すためには反射干渉の過干渉距離を1μm以下になるようにすることが好ましいと考えられる。そこで、反射干渉用の照明光は、細胞に悪影響を与える紫外線領域および熱線領域を除外したうえで、白色光または近赤外光の領域にて波長幅が数百nm程度になるように光学フィルタにてバンドパスされた光を照射する。このように、波長幅を広げることにより光のコヒーレンス長を短くし、可干渉距離を短くすることによって、細胞と容器底面との接着領域から得られる反射光の干渉のみを取り出すことができる。例えば中心波長600nm、波長幅200nmの広帯域にバンドパスされた光を用いると、可干渉距離は500nm程度に短くすることができ、細胞の接着面付近の500nm程度の距離における干渉のみを取り出すことができる。
 図1に戻り、リング状のスリット107は、照明光の光束の対物レンズ104の瞳と共役の位置に配置され、輪帯照明を行うことが望ましい。一般に、統計的に優位なデータを取得するためにはできるだけ多くの細胞について計測を行う必要がある。そのため、できるだけ低倍率の対物レンズを用いて一度に広い視野を計測することが望まれる。しかしながら、低倍率の対物レンズはNAが低く、NAの低い照明光は標本に垂直に照射される成分が多く、細胞上部に存在する溶液と空気の界面で反射し、反射光によって細胞が照明されるという現象を引き起こす。これによって接着面とは無関係な細胞の形態像が観察側に含まれるようになる。また、対物レンズの中心部分を通過した照明光は、対物レンズ内部で反射され、反射光が観察側に多く含まれて高い背景光となり、接着面の反射干渉画像のコントラストを低下させる原因となる。
 本実施形態に係る膜電位変化検出装置1の反射干渉計測において、低いNAの対物レンズ104を使う場合は、対物レンズ104の反射干渉計測用光源106側の開口絞りと共役な位置にリング状のスリット107を設ける。リング状に開口したスリット107を反射干渉計測用光源106からの照明光が通り、照明光は対物レンズ104の中心は通らず周辺を通って照明され、角度のついた高いNAの光のみを使って細胞101が照明されるため、細胞101上部の溶液からの反射光の影響を低減することができる。また、リング状のスリット107を用いた照明は、低NAの対物レンズ104のみならず、広く対物レンズ104内部の反射による背景光を低減することができる。リング状に開口したスリット107は使用する対物レンズ104の瞳径に適合して対物レンズ104ごとに変えられるように、使用する対物レンズ104に適合したリング状のスリット107が円盤上に複数個取り付けられて、必要に応じて、円盤を回転させることによって、使用者がリング状のスリット107を選択できるように構成されている。なお、リング状のスリット107を、対物レンズ104の瞳そのものの存在する位置に配置することでも同じ効果を得ることができる。
 次に、反射干渉計測について述べる。図1に示すように、反射干渉計測用光源106から放射された照明光は、リング状のスリット107を通過して、ハーフミラー108にて反射して、対物レンズ104を通って、測定対象となる細胞101を入れた容器102の底面側から入射する。ハーフミラーに限らず、照明光強度が十分ある場合には5:95(反射:透過)や20:80(反射:透過)にするなど、反射比率を低減させたビームスプリッタを用いてもよい。また、波長によって反射率・透過率が異なるダイクロイックミラーを用いてもよい。容器102の底面の細胞101の接着面から得られる反射光は細胞101の接着距離に応じて干渉を生じ、得られた反射干渉光は再び対物レンズ104にて集光され、ハーフミラー108を介して、反射干渉検出用カメラ110にて撮像される。このようにして、容器102の底面の細胞101の接着面から反射した光は、細胞101の接着距離に応じて干渉した光の振幅が異なり、明暗のコントラストとして撮影される。
 ここで、反射干渉の原理について簡単に説明する。一般に、反射干渉計測においては照明光を細胞の接着している基板の裏面側から入射し、基板と培養液との界面からの反射光とその上部の培養液と細胞底面の界面からの反射光が干渉することにより細胞と基板との距離に応じた明暗のコントラストを得ることができる。可視光の照明においては、おおむね細胞と基板との距離が数十nm以下に近づいた状態では暗く撮影される。一方、細胞と基板との距離が100nmから200nm程度に離れた状態では明るく撮影される。
 本実施形態の膜電位変化検出装置1では、できるだけ多くの細胞101を測定したり、異なる試薬に対する応答を測定したりするために、観察する位置を移動させる機構を有していてもよい。細胞101への影響を少なくするため、および定量位相計測において液面の揺れを抑えるために、細胞101を入れた容器は静止したままで、照明光学系と観察光学系を一体とした画像取得部10の本体をXY平面上で移動させることによって観察位置を変える方法が望ましい。これと合わせて、観察しているXYの空間平面座標を画像に記録することが望ましい。本実施形態では、稼動距離が容器102の観察範囲を十分にカバーしており、かつ位置決め精度が数十μm以下(好ましくは1μm以下)のXYステージ115が備えられている。
 (処理部20の説明)
 図7のフローチャートを更に参照しながら、処理部20の機能および動作について説明する。最初に、反射干渉検出用カメラ110にて細胞101の接着面の反射干渉画像が得られる(ステップS101、特許請求の範囲の「反射干渉撮像ステップ」に相当)。容器102の底面の基板上に接着している細胞101の容器102の底面の基板からの距離に応じて干渉光の振幅が異なり、反射干渉画像は明暗のコントラストとして撮影される。次に、反射干渉画像の視野内の反射光のシェーディングを補正する。あわせて細胞101のない背景の値が時間的に変動しないように、時間ごとに背景部のオフセット補正を行う。これらの画像演算補正によって、空間的、時間的に変動の少ない反射干渉画像を得ることができる。
 反射干渉検出用カメラ110は、例えば1秒間隔で反射干渉画像を取得している。なお、反射干渉画像の取得間隔は、細胞101の膜電位の変化の速度に合わせて適宜調節することが好ましい。そして、反射干渉検出用カメラ110が画像の取得を開始した一定時間の後、ディスペンサ117の薬液分注操作を行い、細胞101の入っている溶液に目的の薬液を目的の濃度になるように投与する。
 解析部202は、このようにして継続的に得られる反射干渉画像を用いて細胞101と透明部材102aとの接着に関するパラメータを算出する(ステップS102、特許請求の範囲の「解析ステップ」に相当)。本実施形態では、細胞101の膜電位の変化を評価するパラメータ(特許請求の範囲の「接着に関するパラメータ」に相当)として、「平均輝度の変化率」を算出している。解析部202は、反射干渉画像から細胞101の接着している領域と細胞101が接着していない領域とを区別して、細胞101の接着している領域を特定し、当該領域(以下、「計測領域」と示す)の平均輝度を計測する。
 解析部202は、反射干渉検出用カメラ110から順次出力されてくる反射干渉画像を画像受信部201が受信すると、当該反射干渉画像における計測領域の平均輝度I(t)を算出し、薬液投与前に予め取得されている計測領域の平均輝度(以下、「基礎となる平均輝度I(base)」と示す)に対する変化率dIを算出する(ステップS103、特許請求の範囲の「解析ステップ」に相当)。なお、基礎となる平均輝度は、例えば薬液投与前に取得された計測領域の反射干渉画像から得られる平均輝度を用いてもよいし、細胞の種類ごとに予め初期値として記憶されている初期輝度を用いてもよい。このような基礎となる平均輝度は、記憶部203に記憶されており、解析部202は記憶部203から適時、基礎となる平均輝度を読み出して、変化率dIを算出する。変化率dIは、以下の式により算出される。
  変化率dI(t)={I(t)-I(base)}/I(base)
  I(t)=反射干渉の平均輝度(背景補正された値)
  I(base)=薬液投与前のI(t)の平均値
 解析部202は、上記式によって算出される変化率dIに基づいて細胞101の膜電位の変化を検出する。すなわち、解析部202は、所定の変化率dIが算出されたとき、細胞101における膜電位に何らかの変化が検出されたと評価している。また、解析部202は、上記式によって算出される薬液投与前の平均的な輝度に対する変化率dI(%)を時間軸にプロットした、例えば図8(A)や図8(B)に示すようなグラフを出力してもよい。すなわち、薬液投与前の輝度に対する変化率dI(%)をプロットしたグラフを、細胞101の膜電位の変化を示したグラフとして出力してもよい。
 また、本実施形態の膜電位変化検出装置1では、脱分極になると細胞101が透明部材102aから離れ反射干渉画像が明るくなり、過分極になると細胞101が透明部材に近づき反射画像が暗くなるという相関関係に基づいている。したがって、変化率dIのプラス方向への変化により細胞101の膜電位が脱分極になったことを検知し、変化率dIのマイナス方向への変化により細胞101の膜電位が過分極になったことを検知することができる。また、薬液投与後の一定時間内におけるピーク(脱分極の場合は最大値、過分極の場合は最小値)を求めて、当該数値の大小から細胞101に投与した薬液濃度に対する判定も行うことができる。なお、この点については後段の測定例1および2の欄で述べる。
 膜電位変化検出装置1は、ひとつのウエルの解析が終了すると、次の計測を行うべきウエルの位置にXYステージ115を移動させ、細胞101の載置面102bに焦点を合わせて再び計測を開始する。これを繰り返し、各種の薬剤に対して細胞101の反応を測定する。
 (測定例1)
 ここでは、CHO細胞(チャイニーズハムスター卵巣細胞)が収容された容器102を保持部103にセットし、当該CHO細胞に脱分極を引き起こすKCl(薬品:塩化カリウム)を投与した場合に、反射干渉検出用カメラ110により取得される反射干渉画像と、解析部202により算出される平均輝度の変化率dI(パラメータ)とについて検証を行った。
 まず、反射干渉検出用カメラ110にて取得される、CHO細胞にKClを投与する前、KClを投与して5分後、KClを投与して10分後、およびKClを投与して15分後の反射干渉画像について検証を行った。これによると、図9に示されるようにCHO細胞にKClを投与した後に、CHO細胞が載置されている透明部材から離れる離反現象が起きて、反射干渉画像が明るくなっていることが観察できた(5分後の画像)。これにより、本実施形態の膜電位変化検出装置1では、細胞101の膜電位の変化を評価するパラメータ(接着に関するパラメータ)として、例えば「平均輝度の変化率dI」を算出し、当該パラメータの変化を検出することで、細胞101の膜電位が脱分極になったことを検出できることが確認できた。
 次に、当該CHO細胞に、濃度の異なる(6.25mM、25mM、50mM、100mM)KClをそれぞれ投与し、解析部202による平均輝度の変化率dI(パラメータ)の算出をそれぞれ行った。この結果、図10に示されるようなグラフを得た。これによれば、細胞101の膜電位が脱分極になると、一過的に平均輝度の変化率dIがプラス方向に変化することが確認できた。これにより、本実施形態の膜電位変化検出装置1では、図10に示すように、解析部202によって一過的に平均輝度の変化率dIがプラス方向に大きくなることが検出できるので、細胞101の膜電位が脱分極になったことを検出することができる。
 また、図10のグラフからは、投与したKClの濃度に比例して平均輝度の変化率dIがプラス方向に最大振幅が大きくなることが確認できた。そこで、平均輝度の変化率dIのピーク時(図10において5分少し経過したとき)におけるKClの濃度と平均輝度の変化率dIとの関係をグラフ化すると、図11に示すような、KCl濃度が6.25mM、25mM、50mM、100mMと高くなるにつれ、ピーク時の平均輝度の変化率も+8%、+35%、+55%、+95%と順に高くなる結果を得た。これにより、ピーク時の平均輝度の変化率と投与した薬品の濃度とには依存関係があることが確認できた。本実施形態の膜電位変化検出装置1では、投与した薬品の濃度に比例(濃度に依存)した平均輝度の変化率dIが算出されるので、投与した薬品の濃度ごとに細胞101の膜電位の変化を評価することができる。このため、細胞101に対する薬効評価をする場合にも本実施形態の膜電位変化検出装置1を利用することが可能となる。
 (測定例2)
 ここでは、MIN-6膵β細胞株(マウス由来膵β細胞株)を用いたカルシウムイオン依存性カリウムチャンネル(以下、「試料細胞」と示す)に作動性化合物を投与した場合に、反射干渉検出用カメラ110により取得される反射干渉画像と、解析部202により算出される平均輝度の変化率dI(パラメータ)とについて検証を行った。
 まず、反射干渉検出用カメラ110にて取得される、試料細胞に作動性化合物を投与する前、作動性化合物を投与した直後、および作動性化合物を投与して5分後の反射干渉画像について検証を行った。これによると、図12に示されるように試料細胞に作動性化合物を投与した後に、試料細胞が載置されている透明部材に近づく接近現象が起きて、反射干渉画像が暗くなっていることが観察できた(作動性化合物した直後の画像)。これにより、本実施形態の膜電位変化検出装置1では、細胞101の膜電位の変化を評価するパラメータ(接着に関するパラメータ)として、例えば「平均輝度の変化率dI」を算出し、当該パラメータの変化を検出することで、細胞101の膜電位が過分極になったことを検出できることが確認できた。
 次に、当該試料細胞に、リガンド濃度の異なる(100μM、25μM、6.25μM)作動性化合物をそれぞれ投与し、解析部202による平均輝度の変化率dI(パラメータ)の算出をそれぞれ行った。この結果、図13に示されるようなそれぞれのグラフを得た。これによれば、細胞101の膜電位が過分極になると、一過的に平均輝度の変化率dIがマイナス方向に変化することが確認できた。これにより、本実施形態の膜電位変化検出装置1では、図13に示すように、解析部202によって一過的に平均輝度の変化率dIがマイナス方向に大きくなることが検出できるので、細胞101の膜電位が過分極になったことを検出することができる。
 また、図13のグラフを総じてみると、投与した作動性化合物の濃度に比例して平均輝度の変化率dIがマイナス方向に最大振幅が大きくなることが確認できた。そこで、平均輝度の変化率dIのピーク時(図12において300ミリ秒付近)における作動性化合物の濃度と平均輝度の変化率dIとの関係をグラフ化すると、図14に示すような、作動性化合物の濃度が100μM、25μM、6.25μMと高くなるにつれ、薬剤投与後の平均輝度の変化率dIのマイナス方向への変化量も10%、17%、23%、42%、49%、55%と順に大きくなる結果を得た。これにより、ピーク時の平均輝度の変化率と投与した薬品の濃度とには依存関係があることが確認できた。本実施形態の膜電位変化検出装置1では、投与した薬品の濃度に比例(濃度に依存)した平均輝度の変化率dIが算出されるので、投与した薬品の濃度ごとに細胞101の膜電位の変化を評価することができる。このため、細胞101に対する薬効評価をする場合にも本実施形態の膜電位変化検出装置1を利用することが可能となる。
 (第1実施形態の作用及び効果)
 続いて、以上まで説明した第1実施形態に係る膜電位変化検出装置1の作用及び効果について説明する。本実施形態の膜電位変化検出装置1によれば、反射干渉計測用光源106、保持部103、反射干渉検出用カメラ110、および解析部202を備えることにより、細胞101からの反射光をもとに細胞101と透明部材102aとの接着に関するパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞101の膜電位の変化を検出している。発明者らは、細胞が載置された透明部材と細胞との接着度合と、細胞の膜電位の変化との間に相関関係があることを発見した。本発明は、発見されたこのような相関関係を利用して、細胞の膜電位の変化を、細胞と透明部材との接着距離(接着度合)の変化として捉えていることに特徴がある。当該接着距離に基づく細胞101と透明部材102aとの接着に関するパラメータは非侵襲的な方法で得られるので、細胞101の膜電位の変化をラベルすることなく非侵襲的に検出することが可能となる。
 また、上記膜電位変化検出装置1によれば、細胞101が脱分極および過分極になったときの細胞101の膜電位の変化を検出することができる。
 (第1実施形態の変形例)
 上記実施形態においては、細胞101の膜電位変化を評価するための解析対象となる計測領域として、細胞101の接着している領域を「計測領域」とする例を挙げて説明したがこれに限定されるものではない。例えば細胞101をコンフルエント(容器の面積に対して約80%)に培養した被検体を用意し、測定開始時に得られた反射干渉画像の視野全体を計測領域として定めてもよい。また、測定開始時に得られた反射干渉画像から一定の輝度のしきい値や画像処理を用いて抽出した細胞101の存在する領域を計測領域として定めてもよい。
 上記実施形態においては、細胞101の膜電位変化を評価するパラメータとして、「平均輝度の変化率」を用いた例を挙げて説明したがこれに限定されるものではない。例えば細胞101の膜電位変化を評価するパラメータとして「接着面積の増減の変化」を用いることもできる。この場合、時系列に取得した反射干渉画像から一定の輝度のしきい値や画像処理を用いて抽出した細胞101の接着に相当する領域を計測領域として定めて、視野全体における計測領域の画素数を求める。この場合の接着面積の増減の変化率dAは、以下の式により算出される。
  変化率 dA(t)={A(t)-A(base)}/A(base)
  A(t)=反射干渉の各時間の接着領域の画素数
  A(base)=薬液投与前のA(t)の平均値
 解析部202は、上記式によって算出される変化率dAに基づいて細胞101の膜電位の変化を検出する。すなわち、解析部202は、所定の変化率dAが算出されたとき、細胞101における膜電位に何らかの変化が検出されたと評価してもよい。また、解析部202は、上記式によって算出される変化率dAを時間軸にプロットしたグラフを、細胞101の膜電位の変化を示したグラフを出力してもよい。すなわち、薬液投与前の接着面積に対する変化率dA(%)をプロットしたグラフを、細胞101の膜電位の変化を示したグラフとして出力してもよい。これにより、膜電位変化検出装置1を使用する使用者に対して、細胞101における膜電位の変化を明示的に示すことができる。
 上述したように、本実施形態の膜電位変化検出装置1では、脱分極になると細胞101が透明部材102aから離れ、過分極になると細胞101が透明部材に近づくという相関関係に基づいているので、変化率dAのプラス方向への変化により膜電位の細胞101が脱分極になったことを検知し、変化率dAのマイナス方向への変化により細胞101の膜電位が過分極になったことを検知することができる。また、薬液投与後の一定時間内におけるピーク(脱分極の場合は最大値、過分極の場合は最小値)を求めて、当該数値の大小から細胞101に投与した薬液濃度に対する判定も行うことができる点も同様である。
 [第2実施形態]
 本発明の第2実施形態について説明する。第2実施形態では、第1実施形態にはない構成についてのみ詳細な説明を行い、第1実施形態と同じ構成については同じ参照番号を付して詳細な説明を省略する。
 (膜電位変化検出装置41の全体構成)
 まず、本発明の実施形態に係る膜電位変化検出装置41の全体構成について、図15を参照しながら説明する。図15は、膜電位変化検出装置41の全体構成を示す概要図である。図15に示すように、膜電位変化検出装置41は、画像取得部10および処理部20から構成されている。
 画像取得部10は、保持部103(特許請求の範囲の「保持手段」に相当)、対物レンズ104、定量位相計測用光源121、照射光絞り部121B、反射干渉計測用光源106、ハーフミラー108、ダイクロイックミラー122、全反射ミラー123、反射干渉検出用カメラ110(特許請求の範囲の「反射干渉撮像手段」に相当)、回折型干渉光学系124、および定量位相検出用カメラ125(特許請求の範囲の「定量位相撮像手段」に相当)を備えている。ハーフミラー108は反射干渉計測用光源106からの光を細胞101へ導くための反射干渉入射用光学系であり、また、ダイクロイックミラー122は、反射干渉検出用カメラ110へ細胞101からの光を導くための反射干渉計測用光学系である。また、対物レンズ104およびハーフミラー108、ダイクロイックミラー122は、細胞101の同一範囲からの光を反射干渉検出用カメラ110および定量位相検出用カメラ125へ導くための共通光学系である。つまり、本実施形態では、反射干渉入射用光学系と反射干渉計測用光学系が共通光学系となっている。また、全反射ミラー123および回折型干渉光学系124は、定量位相検出用カメラ125へ光を導くための定量位相光学系である。反射干渉検出用カメラ110は、反射干渉計測用光源106から放射され、細胞101から反射される光を撮像することにより、反射干渉画像を生成する。定量位相検出用カメラ125は、定量位相計測用光源121から放射され、細胞101を透過する光を撮像することにより、定量位相画像を生成する。照射光絞り部121Bは、照明光を絞る手段である。照射光絞り部121Bとしては、ピンホールやアパーチャーが例示される。
 処理部20は、画像位置合わせ部211(特許請求の範囲の「画像位置合わせ手段」に相当)、輪郭抽出部212(特許請求の範囲の「輪郭抽出手段」に相当)、輪郭適用部213(特許請求の範囲の「輪郭適用手段」に相当)、解析部202(特許請求の範囲の「解析手段」に相当)、および記憶部203を備えている。
 画像位置合わせ部211は、反射干渉画像と定量位相画像との間で、空間的な位置を一致させることにより、両画像の位置合わせを行う部分である。輪郭抽出部212は、定量位相画像に基づき、細胞101の範囲である輪郭を抽出する部分ある。輪郭適用部213は、輪郭抽出部212が抽出した輪郭を反射干渉画像に適用することにより、輪郭適用後の反射干渉画像を生成する部分である。解析部202は、輪郭適用後の反射干渉画像に基づいて、細胞101と透明部材102aとの接着に関する細胞101ごとのパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞101ごとの膜電位の変化を検出する部分である。図2は、以上のような機能的構成要素を備える処理部20のハードウェア構成図である。当該ハードウェア構成についても第1実施形態の膜電位変化検出装置1と同様であるのでここではその説明を省略する。
 次に、図15を参照しながら、画像取得部10について詳細に説明する。定量位相計測について述べる。細胞101の入った容器102の上部に設置した、ハロゲンランプやキセノンランプなどの定量位相計測用光源121から放射された照明光は、ピンホールやアパーチャーなどの照明光絞り部121Bを通過することで点光源に近い照射光となり、細胞101の入った容器102を透過し、対物レンズ104にて集光される。なお、定量位相計測用光源121としては、LED(発光ダイオード)や半導体レーザー(レーザーダイオード)、SLD(スーパールミネッセントダイオード)などの光源を用いてもよい。なお、レーザーやSLDの場合には、光源サイズが十分小さいため、照明光絞り部121Bは不要になる。そして、ハーフミラー108を介し、定量位相像と反射干渉像を波長で分離するためのダイクロイックミラー122を透過して、更に全反射ミラー123を介して、位相計測のための回折型干渉光学系124にて物体光と参照光の干渉像を形成し、定量位相検出用カメラ125にて干渉縞画像が撮像される。なお、ダイクロイックミラー122はハーフミラーなどのビームスプリッタでもよく、この場合、ビームスプリッタと定量位相検出用カメラ125の間に定量位相検出に用いる波長を選択するためのフィルタを配置する。
 反射干渉計測について述べる。反射干渉計測用光源106から放射された照明光は、ハーフミラー108にて反射して、対物レンズ104を通って、測定対象となる細胞101を入れた容器102の底面側から入射する。ハーフミラーに限らず、照明光強度が十分ある場合には5:95(反射:透過)や20:80(反射:透過)にするなど、反射比率を低減させたビームスプリッタを用いてもよい。また、波長によって反射率・透過率が異なるダイクロイックミラーを用いてもよい。容器102の底面の細胞101の接着面から得られる反射光は細胞101の接着距離に応じて干渉を生じ、得られた反射干渉光は再び対物レンズ104にて集光され、ハーフミラー108を介し、定量位相像と反射干渉像とを波長で分離するためのダイクロイックミラー122にて反射干渉像のみを反射して、反射干渉検出用カメラ110にて撮像される。なお、ダイクロイックミラー122の代わりにハーフミラーなどのビームスプリッタを用いる場合は、ビームスプリッタと反射干渉検出用カメラ110との間に反射干渉検出に用いる波長を選択するためのフィルタを配置すればよい。容器102の底面の細胞101の接着面から反射した光は、細胞101の接着距離に応じて干渉した光の振幅が異なり、明暗のコントラストとして撮影される。なお、定量位相像および反射干渉像は、共通の対物レンズ104を介して取得されるので、細胞101の撮像範囲は、定量位相計測および反射干渉計測においてほぼ同一範囲となる。
 定量位相画像を取得するカメラ125と反射干渉画像を取得するカメラ110は同じ性能、同じ画素分解能のカメラに限定する必要はない。それぞれのカメラに入射する光量や入射波長は互いに異なるので、それぞれに適した性能、空間分解能のカメラを用いてもよい。例えば定量位相検出用カメラ125には830nmに感度が高く、画素サイズが大きめの感度優先のカメラを用い、反射干渉検出用カメラ110には可視域に感度が高く、画素サイズが小さめの空間分解能優先のカメラを利用するなどしてよい。このような場合に二つのカメラの空間座標を一致させる処理が必要となるが、これについては後段にて詳述する。
 定量位相計測と反射干渉計測を波長で区別できるように、反射干渉計測用光源106と定量位相計測用光源121のそれぞれの照明波長には、異なる波長域の光を用いても良い。ダイクロイックミラー122にて特定の波長で定量位相像と反射干渉像を分離選択することができる。したがって、定量位相計測と反射干渉計測で、クロストークなく同時刻の像を得ることができる。
 次に、図16のフローチャートを更に参照しながら、処理部20の機能および動作について説明する。最初に、定量位相検出用カメラ125にて参照光と細胞101を透過した物体光の干渉縞画像が得られる(ステップS201、特許請求の範囲の「定量位相撮像ステップ」に相当)。干渉縞画像から公知の演算方法を用いて定量的な位相画像を形成する。定量位相画像を得るためには、細胞101のない背景領域のオフセット補正および背景領域の視野におけるシェーディング補正を施し、背景部分は空間的に均一で、背景部の位相の値を0に補正し、細胞101の位相(光路長)の2次元マップを得る。
 一方で、ステップS201とともに、反射干渉検出用カメラ110にて細胞101の接着面の反射干渉画像が得られる(ステップS202、特許請求の範囲の「反射干渉撮像ステップ」に相当)。容器102の底面の基板上に接着している細胞101の容器102の底面の基板からの距離に応じて干渉光の振幅が異なり、反射干渉画像は明暗のコントラストとして撮影される。反射干渉画像の視野内の反射光のシェーディングを補正する。あわせて細胞101のない背景の値が時間的に変動しないように、時間ごとに背景部のオフセット補正を行う。これらの画像演算補正によって、空間的、時間的に変動の少ない定量位相画像および反射干渉画像を得ることができる。
 次に、定量位相画像および反射干渉画像の空間的位置補正が行われる(ステップS203、特許請求の範囲の「画像位置合わせステップ」に相当)。図17は、画像位置合わせに用いる標本30を示す。位置合わせの標本30として、ガラス基板に格子31が刻まれたマイクロスケールやドットパターンなどを用いる。マイクロスケールやドットパターンには2つのカメラで撮影したときに同じ位置が分かるように、少なくとも1か所以上に目印が付いていると操作が簡便である。図17の例では、三角と丸の二つの目印が付いている。
 ここで、反射干渉側のカメラ110の像を定量位相の像に合わせて位置をずらす手順について詳細に説明する。まず、細胞101の標本の代わりにマイクロスケールまたはドットパターンを置き、反射干渉および定量位相のそれぞれの撮影用カメラで撮影する。次に、マイクロスケールまたはドットパターンを撮影して得られた反射干渉画像と定量位相画像をそれぞれ異なる疑似カラー(例えば反射干渉画像は緑、定量位相画像は赤など)で重ね合わせる。場合によっては画像の輝度を反転すると見やすくなる。続いて、反射干渉画像の格子像またはドット像を定量位相側の格子像またはドット像に合致させるために、重ね合わせた画像を見ながら、反射干渉画像に対して(1)拡大縮小倍率、(2)水平方向の移動量(画素数)、(3)垂直方向の移動量(画素数)、(4)回転角度、(5)回転方向、(6)左右反転などを微調整し、調整量を決定する。調整量は、重ね合わせて表示した格子像またはドット像が重なり、エッジが出なくなるような位置に決定されればよく、例えば、それぞれの格子像またはドット像が重なり合って緑色と赤色が黄色になるような位置で決定される。
 撮影した2つのカメラの像に空間歪があり、両者の空間歪のパターンが大きく異なる場合は、上述の(1)から(6)のデータだけで一律にすべての画素の位置を合致させることは難しい場合がある。その場合は視野内のすべての画素における移動量が異なるため、各々の画素に対して移動量を定める必要がある。具体的には、格子像の各交点またはドット像の各ドットの中心座標が2つのカメラで一致するように、各点のずらし量を決定する。格子またはドットの存在する座標以外の空間座標は補間することによってずらし量を決定する。このようにして空間的に全画素(全座標)について1画素単位でずらし量を記憶したテーブルを作成して、位置合わせデータとする。得られた位置合わせデータをファイルで保存する。新規に測定を行い画像を取得したときに、ファイルで保存した位置合わせデータを用いて、画像間の位置合わせを行い、位置を補正した画像を出力する。また、新規に測定を行い取得した画像データをファイルに保存するときには、位置合わせデータを画像データと一緒にファイルに保存することが好ましい。こうすることによって、画像ファイルを呼び出した時にも、画像を新規に取得した時の最も適切であった位置合わせデータを援用して、当該呼び出した画像を補正することができる。
 なお、以上のような位置合わせは定量位相や反射干渉の計測のたびに行う必要はなく、同じ光学系を利用するのであれば、使用環境や振動の影響による位置ずれを考慮して、例えば1カ月に1回程度の頻度で行えば良い。また、観察側の光学系に観察用のフィルタを選択する部品(例えば電動フィルタホイールなど)が装着されている場合は、位置合わせは使用するフィルタごとに行うことが望ましい。なぜなら、使用するフィルタの傾きや平行度によって像の位置ずれ量や位置ずれの方向が異なるからである。
 なお、繰り返しとなるため説明は省略するが、以上とは逆に、定量位相側のカメラ125の像を反射干渉の像に合わせて位置をずらす場合にも、上述の手順を適宜適用することができる。また、以上の手順は、自動化された画像処理によって、人の手に寄らずに、行うことができる。
 図16に戻り、ステップS203の位置合わせの後に、細胞101の輪郭領域を抽出する処理(以下、「セグメンテーション」ともいう。)が行われる(ステップS204およびS205、特許請求の範囲の「輪郭抽出ステップ」に相当)。
 まず、図18に示すように、同時刻に撮像され、位置合わせが行われた後の定量位相画像および反射干渉画像のうち、定量位相画像から個々の細胞101の輪郭となる領域を画像処理により検出する(ステップS204:輪郭抽出ステップ)。つまり、定量位相画像では、細胞101のない背景となる溶液を通る光に対して細胞101を通る光は、細胞101の屈折率が溶液の屈折率よりも大きいために、光路長が長くなる。そのため、細胞101の存在する領域の画素の位相の値は背景よりも大きな値となる。そこで、適正な閾値または空間フィルタ処理を用いることにより、人の手に寄らず自動的に、背景と細胞101を分離することができる。そして、一つ一つの細胞101に対応した輪郭を決定し、それぞれの細胞101の占める領域に対応する画素座標の領域を決定することができる。
 次に、ステップS204で得られた個々の細胞101の輪郭領域の画素座標を空間座標の一致した反射干渉画像に適応させ、つまりステップS204で得られたセグメンテーション領域を反射干渉画像にコピーすることにより、定量位相画像で決定された個々の細胞101の輪郭領域を反射干渉画像に当てはめる(ステップS205、特許請求の範囲の「輪郭適用ステップ」に相当)。このようにすることで、図18に示すように、定量位相画像と反射干渉画像の両方の画像A,Bに対して同じ輪郭領域を決定することができる。また、一つ一つの細胞に対応した輪郭を決定し、それぞれの細胞の占める領域に対応する画素座標の領域を決定することができる。
 図16に戻り、次に、解析部202は、定量位相画像で決定された個々の細胞101の輪郭領域を反射干渉画像に当てはめた画像(以下、「合成画像」と示す)を用いて、個々の細胞101と透明部材102aとの接着に関するパラメータを算出する(ステップS206、特許請求の範囲の「解析ステップ」に相当)。本実施形態の処理が第1実施形態における処理と異なる点は、第1実施形態の解析部202が、反射干渉画像全体から細胞101の接着している領域を計測領域としているのに対し、本実施形態の解析部202は、個々の細胞の領域を計測領域としている点である。
 本実施形態では、個々の細胞101の膜電位の変化を評価するパラメータ(特許請求の範囲の「接着に関するパラメータ」に相当)として、「平均輝度の変化率」を算出している。解析部202は、上述したように個々の細胞の領域を計測領域としての平均輝度を計測する。
 解析部202は、画像位置合わせ部211から出力される順次出力されてくる合成画像を受信すると、当該合成画像における個々の計測領域の平均輝度I(t)を算出し、薬液投与前に予め取得されている個々の計測領域の平均輝度(以下、「基礎となる平均輝度I(base)」と示す)に対する変化率dIを算出する。なお、基礎となる平均輝度は、例えば薬液投与前に取得された個々の計測領域の合成画像から得られる平均輝度を用いてもよいし、細胞の種類ごとに予め初期値として記憶されている初期輝度を用いてもよい。このような基礎となる平均輝度は、記憶部203に記憶されており、解析部202は記憶部203から適時、基礎となる平均輝度を読み出して、変化率dIを算出する。変化率dIは、以下の式により算出される。
  変化率dI(t)={I(t)-I(base)}/I(base)
  I(t)=反射干渉の平均輝度(背景補正した値)
  I(base)=薬液投与前のI(t)の平均値
 解析部202は、上記式によって算出される変化率dIに基づいて個々の計測領域に対する細胞101の膜電位の変化を検出する。すなわち、解析部202は、個々の計測領域において所定の変化率dIが算出されたとき、個々の細胞101における膜電位に何らかの変化が検出されたと評価している。また、解析部202は、上記式によって算出される変化率dIを時間軸にプロットした、例えば図8(A)や図8(B)に示すようなグラフを出力してもよい。また、薬液投与前の接着面積に対する変化率dI(%)をプロットしたグラフを、細胞101の膜電位の変化を示したグラフとして出力してもよい。なお、上記グラフを出力する際には、個々の計測領域ごと、すなわち個々の細胞ごとに出力することが好ましい。
 また、本実施形態の膜電位変化検出装置41では、脱分極になると細胞101が透明部材102aから離れ反射干渉画像が明るくなり、過分極になると細胞101が透明部材に近づき反射画像が暗くなるという相関関係に基づいている。したがって、変化率dIのプラス方向への変化により膜電位の個々の細胞101が脱分極になったことを検知し、変化率dIのマイナス方向への変化により個々の細胞101の膜電位が過分極になったことを検知することができる。また、薬液投与後の一定時間内におけるピーク(脱分極の場合は最大値、過分極の場合は最小値)を求めて、当該数値の大小から個々の細胞101に投与した薬液濃度に対する判定も行うことができる。
 (第2実施形態の作用及び効果)
 第2実施形態に係る膜電位変化検出装置41では、定量位相計測用光源121、反射干渉計測用光源106、反射干渉検出用カメラ110、定量位相検出用カメラ125、および解析部202を備えることにより、細胞101の接着に関する情報、また細胞101の面積、光学的厚さに関する情報を同時に取得することができるので、細胞101と透明部材102aとの接着に関するパラメータのバリエーションを増やすことができる。また、自動化された処理により細胞101のセグメンテーションが実行されるので、個々の細胞101に対してデータを取得することが容易に可能となる。また、薬液分注後の細胞の反応が早く、できるだけ短いインタバルで計測を行いたい場合には、本実施形態に係る膜電位変化検出装置41のような反射干渉画像と定量位相画像を同時に取得する構成が有効である。
 (第2実施形態の変形例)
 上記第2実施形態においては、定量位相画像から取得できる細胞の輪郭を反射干渉画像にコピー(セグメンテーション)する例を挙げて説明したがこれに限定されるものではない。例えば、セグメンテーションの工程を経なくても、細胞101の膜電位の変化を検出することが可能である。すなわち、定量位相画像から一定のしきい値にて得られる細胞101の存在を示す領域全体を計測領域とし、この計測領域における平均的な輝度を用いて細胞101の膜電位の変化を検出してもよい。なお、計測領域の平均輝度に対する変化率dIを算出することについては上述したとおりなので、ここではその説明を省略する。
 [第3実施形態]
 本発明の第3実施形態について説明する。第3実施形態では、第1実施形態にはない構成についてのみ詳細な説明を行い、第1実施形態と同じ構成については同じ参照番号を付して詳細な説明を省略する。
 (膜電位変化検出装置61の全体構成)
 まず、本発明の実施形態に係る膜電位変化検出装置61の全体構成について、図19を参照しながら説明する。図19は、膜電位変化検出装置61の全体構成を示す概要図である。図19に示すように、膜電位変化検出装置61は、画像取得部10および処理部20から構成されている。
 画像取得部10は、保持部103(特許請求の範囲の「保持手段」に相当)、対物レンズ104、定量位相計測用光源121、定量位相シャッタ121A(特許請求の範囲の「定量位相光量調整手段」に相当)、照明光絞り部121B、反射干渉計測用光源106、反射干渉シャッタ106A(特許請求の範囲の「反射干渉光量調整手段」に相当)、反射干渉照明用光学系としてのハーフミラー108、全反射ミラー131、回折型干渉光学系132、参照光カット装置133およびカメラ134(特許請求の範囲の「反射干渉撮像手段」に相当)を備えている。
 処理部20は、画像受信部221、輪郭抽出部212(特許請求の範囲の「輪郭抽出手段」に相当)、輪郭適用部213(特許請求の範囲の「輪郭適用手段」に相当)、解析部202、および記憶部203を備えている。画像受信部221は、カメラ134の撮像により生成された反射干渉画像および定量位相画像を受信する部分である。輪郭抽出部212は、定量位相画像に基づき、細胞101の範囲である輪郭を抽出する部分である。輪郭適用部213は、輪郭抽出部212が抽出した輪郭を反射干渉画像に適用することにより、輪郭適用後の反射干渉画像を生成する部分である。解析部202は、輪郭適用後の反射干渉画像に基づいて、細胞101と透明部材102aとの接着に関する細胞101ごとのパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞101ごとの膜電位の変化を検出する部分である。図2は、以上のような機能的構成要素を備える処理部20のハードウェア構成図である。当該ハードウェア構成についても第1実施形態の膜電位変化検出装置1と同様であるのでここではその説明を省略する。
 次に、図19を参照しながら、画像取得部10について詳細に説明する。反射干渉シャッタ106Aは、ハロゲンランプやキセノンランプなどの反射干渉計測用光源106から放射される光の光量を調整する。定量位相シャッタ121Aは、ハロゲンランプやキセノンランプなどの定量位相計測用光源121から放射される光の光量を調整する。なお、ハロゲンランプやキセノンランプなどの広い波長範囲にわたって放射感度を有する光源であれば、700nm~2500nmの近赤外領域の光を照明光として用いることが可能であり、細胞101に対する毒性を低減できる。ハロゲンランプやキセノンランプなどの電球系光源を、光源として用いた場合、光量や波長などの安定性を考慮すると、測定中は光源自体をON/OFFせずに光源をONにしておいたほうがよい。そのため、反射干渉シャッタ106Aや定量位相シャッタ121Aが必要となる。ただし、LED(発光ダイオード)や半導体レーザー(レーザーダイオード)、SLD(スーパールミネッセントダイオード)などの半導体系光源を光源として用いた場合、光源自体をON/OFFすることで反射干渉計測と定量位相計測との切り替えを行ってもよい。この場合、図24に示すように、反射干渉計測用光源106のON/OFFによる切り替えにより、反射干渉計測用光源106から放射される光の光量を調整し、且つ定量位相計測用光源121のON/OFFによる切り替えにより、定量位相計測用光源121から放射される光の光量を調整する光源制御部225を備えればよい。そして、図19に示す実施形態における画像取得部10から反射干渉シャッタ106A、定量位相シャッタ121A、および照明光絞り部121Bをなくせばよい。
 カメラ134は、反射干渉計測用光源106から放射され、細胞101から反射される反射光を撮像することにより、反射干渉画像を生成するとともに、定量位相計測用光源121から放射された照射光が、ピンホールやアパーチャーなどの照明光絞り部121Bを通過することで点光源に近い照射光となり、細胞101を透過する透過光を撮像することにより、定量位相画像を生成する。後述するように、反射干渉画像を生成する際には、定量位相シャッタ121Aが定量位相計測用光源121からの光を遮光した上で、カメラ134が反射光を撮像する。また、定量位相画像を生成する際には、反射干渉シャッタ106Aが反射干渉計測用光源106からの光を遮光した上で、カメラ134が透過光を撮像する。以上により、カメラ134は、反射干渉計測および定量位相計測に共通の一つのカメラとして、時間的に互いに排他的に両計測を行うこととなる。
 回折型干渉光学系132は、定量位相画像を生成するために、細胞101からの透過光を物体光および参照光に分離して干渉させる。参照光カット装置133は、回折型干渉光学系132において参照光が通る光路上に設置され、反射干渉画像を生成する際に、参照光を遮光する。
 定量位相計測について述べる。細胞101の入った容器102の上部に設置した定量位相計測用光源121から放射された照明光は、細胞101の入った容器102を透過し、対物レンズ104にて集光される。そして、ハーフミラー108を介し、更に全反射ミラー131を介して、位相計測のための回折型干渉光学系132にて物体光と参照光の干渉像を形成し、カメラ134にて干渉縞画像が撮像される。
 反射干渉計測について述べる。反射干渉計測用光源106から放射された照明光は、ハーフミラー108にて反射して、対物レンズ104を通って、測定対象となる細胞101を入れた容器102の底面側から入射する。反射干渉照明用光学系としては、ハーフミラーに限らず、照明光強度が十分ある場合には5:95(反射:透過)や20:80(反射:透過)にするなど、反射比率を低減させたビームスプリッタを用いてもよい。また、波長によって反射率・透過率が異なるダイクロイックミラーを用いてもよい。容器102の底面の細胞101の接着面から得られる反射光は細胞101の接着距離に応じて干渉を生じ、得られた反射干渉光は再び対物レンズ104にて集光され、ハーフミラー108を介し、更に全反射ミラー131を介して、カメラ134にて撮像される。容器102の底面の細胞101の接着面から反射した光は、細胞101の接着距離に応じて干渉した光の振幅が異なり、明暗のコントラストとして撮影される。なお、定量位相像および反射干渉像は、共通の対物レンズ104を介して取得されるので、細胞101の撮像範囲は、定量位相計測および反射干渉計測においてほぼ同一範囲となる。
 第3実施形態は、定量位相画像および反射干渉画像を一つのカメラ134を用いて、交互に時間差を置いて取得することを特徴の一つとする。このためには、定量位相計測用光源121および反射干渉計測用光源106がそれぞれの照明光を照射するタイミングにおいて互いに排他的に照明を行う必要がある。そこで、定量位相計測用光源121および反射干渉計測用光源106のそれぞれの照射口に光の照射・遮断を行うための機械シャッタ121A,106Aを備える。あわせて定量位相画像を作成するための回折型干渉光学系132の内部に、参照光カット装置133を備える。
 回折型干渉光学系132は定量位相画像を作成するための光学系であり、定量位相計測用光源121にて照明された透過照明像から回折素子132Aを通して物体光と参照光を分離してそれぞれ取り出し、干渉させる役目を果たす。また、定量位相像と反射干渉像はいずれも同じ回折型干渉光学系132を通るため、反射干渉画像を取り出すためには、回折素子132Aを通ることにより分離された参照光をカットするための装置が必要となり、本実施形態では参照光カット装置133を備えている。
 参照光カット装置133は、例えば参照光側の光路132B上に設けた機械シャッタとして構成することができる。図20は、参照光カット装置133として機能する参照光シャッタ133Aを示す図である。図20(A)は、定量位相画像撮像時の参照光シャッタ133Aの動きを示す。定量位相画像撮像時には、回折素子132Aにより分離された後に、ピンホール133Bを通る物体光およびピンホール133Cを通る参照光の両方が必要であるため、参照光シャッタ133Aはピンホール133Cを遮ることなく、物体光および参照光はピンホール133Bおよび133Cを通ってカメラ134に到達する。一方、図20(B)は、反射干渉画像撮像時の参照光シャッタ133Aの動きを示す。反射干渉画像撮像時には、回折素子132Aにより分離された後にピンホール133Bを通る物体光は必要であるが、ピンホール133Cを通る参照光は不要である。このため、参照光シャッタ133Aはピンホール133Cを遮ることにより参照光を遮光し、物体光のみがピンホール133Bを通ってカメラ134に到達する。
 図21は、定量位相シャッタ121A、参照光カット装置133、カメラ134による定量位相撮像、反射干渉シャッタ106A、およびカメラ134のそれぞれの動作にかかるタイミングチャートに示す。定量位相画像と反射干渉画像は時系列にお互い排他的に照明と画像取得を行う。具体的には、定量位相画像を取得する時は、定量位相シャッタ121Aが開口し、反射干渉シャッタ106Aが閉じる。逆に反射干渉画像を取得する時には、反射干渉シャッタ106Aが開口し、定量位相シャッタ121Aが閉じるという具合である。同時に、定量位相画像を取得するタイミングにおいては、回折型干渉光学系132の回折素子132Aによって得られる物体光と参照光のうち、参照光側に設けた参照光カット装置133が開口し、カメラ134にて物体光と参照光の干渉像が結像することによって定量位相画像を得る。一方、反射干渉画像を取得するタイミングにおいては、回折素子132Aによって得られた参照光は不要であるので、参照光側に設けた参照光カット装置133が閉じて、物体光のみが反射干渉画像としてそのままカメラ134に結像する。このように定量位相画像と反射干渉画像とを時間的に交互に取得して2つの画像をペアとして同時刻の画像として扱う。
 次に、図22のフローチャートを更に参照しながら、処理部20の機能および動作について説明する。最初に、カメラ134にて参照光と細胞101を透過した物体光の干渉縞画像が得られる(ステップS301、特許請求の範囲の「撮像ステップ」に相当)。干渉縞画像から公知の演算方法を用いて定量的な位相画像を形成する。定量位相画像を得るためには、細胞101のない背景領域のオフセット補正および背景領域の視野におけるシェーディング補正を施し、背景部分は空間的に均一で、背景部の位相の値を0に補正し、細胞101の位相(光路長)の2次元マップを得る。
 一方で、ステップS101とともに、カメラ134にて細胞101の接着面の反射干渉画像が得られる(ステップS302、特許請求の範囲の「撮像ステップ」に相当)。容器102の底面に接着している細胞101の容器102の底面からの距離に応じて干渉光の振幅が異なり、反射干渉画像は明暗のコントラストとして撮影される。反射干渉画像の視野内の反射光のシェーディングを補正する。あわせて細胞101のない背景の値が時間的に変動しないように、時間ごとに背景部のオフセット補正を行う。これらの画像演算補正によって、空間的、時間的に変動の少ない定量位相画像および反射干渉画像を得ることができる。
 ステップS301およびステップS302にて撮像および補正された両画像(定量位相画像および反射干渉画像)が処理部20に入力される(ステップS303)。
 次に、ステップS303にて入力された両画像に対して、細胞101の輪郭領域を抽出する処理(以下、「セグメンテーション」ともいう。)が行われる(ステップS304およびS305、特許請求の範囲の「輪郭抽出ステップ」および「輪郭適用手段」に相当)。
 まず、図23に示すように、同一観察位置および同時刻に撮像された定量位相画像および反射干渉画像のうち、定量位相画像から個々の細胞101の輪郭となる領域を画像処理により検出する(ステップS304、図23の画像A、特許請求の範囲の「輪郭抽出ステップ」に相当)。つまり、定量位相画像では、細胞101のない背景となる溶液を通る光に対して細胞101を通る光は、細胞101の屈折率が溶液の屈折率よりも大きいために、光路長が長くなる。そのため、細胞101の存在する領域の画素の位相の値は背景よりも大きな値となる。そこで、適正な閾値または空間フィルタ処理を用いることにより、人の手に寄らず自動的に、背景と細胞101を分離することができる。そして、一つ一つの細胞101に対応した輪郭を決定し、それぞれの細胞101の占める領域に対応する画素座標の領域を決定することができる。
 次に、ステップS304で得られた個々の細胞101の輪郭領域の画素座標を空間座標の一致する反射干渉画像に適応させ、つまりステップS304で得られたセグメンテーション領域を反射干渉画像にコピーすることにより、定量位相画像で決定された個々の細胞101の輪郭領域を反射干渉画像に当てはめる(ステップS305、図23の画像B、特許請求の範囲の「輪郭適用ステップ」に相当)。このようにすることで、図23に示すように、定量位相画像と反射干渉画像の両方の画像A,Bに対して同じ輪郭領域を決定することができる。また、一つ一つの細胞に対応した輪郭を決定し、それぞれの細胞の占める領域に対応する画素座標の領域を決定することができる。
 解析部202が、定量位相画像で決定された個々の細胞101の輪郭領域を反射干渉画像に当てはめた画像(以下、「合成画像」と示す)を用いて、個々の計測領域の「平均輝度の変化率」を算出し、この平均輝度の変化率dIに基づいて個々の計測領域に対する細胞101の膜電位の変化を検出する(ステップS306、特許請求の範囲の「解析ステップ」に相当)については、第2実施形態と同様であるので、ここではその説明を省略する。また、個々の細胞に対して薬液投与後の一定時間内におけるピーク(脱分極の場合は最大値、過分極の場合は最小値)を求めて、これらの数値の大小から薬物濃度の判定をそれぞれ行うことができる点についても同様である。
 (第3実施形態の作用及び効果)
 第3実施形態に係る膜電位変化検出装置61では、定量位相計測用光源121、定量位相シャッタ121A、反射干渉計測用光源106、反射干渉シャッタ106A、およびカメラ134備えることにより、細胞101の接着に関する情報、また細胞101の面積、光学的厚さに関する情報を同時に取得することができるので、細胞101と透明部材102aとの接着に関するパラメータのバリエーションを増やすことができる。また、自動化された処理により細胞101のセグメンテーションが実行されるので、個々の細胞101に対してデータを取得することが容易に可能となる。
 また、第3実施形態の膜電位変化検出装置61は、第2実施形態に係る膜電位変化検出装置41と比べて定量位相画像および反射干渉画像を取得するためのカメラが1台で済むので低コスト化を図ることが可能であり、かつ2台のカメラの位置合わせの必要がないことにメリットがある。また、第3実施形態の膜電位変化検出装置61は、薬液投与に対して細胞の応答が比較的ゆっくりであり、定量位相画像と反射干渉画像とを順次に取得する場合の時間間隔であっても変化が検出できる用途に利用することが有用である。
 1,41,61…膜電位変化検出装置、10…画像取得部、20…処理部、101…細胞、102…容器、102a…透明部材、102b…載置面、102c…底面、102d…反射防止コート、103…保持部、104…対物レンズ、106…反射干渉計測用光源、106A…反射干渉シャッタ、107…リングスリット、108…ハーフミラー、110…反射干渉検出用カメラ、115…XYステージ、117…ディスペンサ、121…定量位相計測用光源、121A…定量位相シャッタ、121B…照明光絞り部、122…ダイクロイックミラー、123,131…全反射ミラー、124…回折型干渉光学系、125…定量位相検出用カメラ、132…回折型干渉光学系、132A…回折素子、133…参照光カット装置、133A…参照光シャッタ、133B,133C…ピンホール、134…カメラ、201,221…画像受信部、202…解析部、203…記憶部、211…画像位置合わせ部、212…輪郭抽出部、213…輪郭適用部、225…光源制御部。
 本発明は、ラベルすることなく非侵襲的な方法で細胞の膜電位の変化を検出することが可能な膜電位変化検出装置および膜電位変化検出方法を提供する。

Claims (14)

  1.  反射干渉計測用光源と、
     細胞が載置された透明部材を保持する保持手段と、
     前記反射干渉計測用光源から放射され、前記透明部材を介して前記細胞から反射される光を撮像することにより、反射干渉画像を生成する反射干渉撮像手段と、
     前記反射干渉画像から前記細胞と前記透明部材との接着に関するパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて前記細胞の膜電位の変化を検出する解析手段と、を備えている膜電位変化検出装置。
  2.  前記解析手段は、脱分極になると前記細胞が前記透明部材から離れ、過分極になると前記細胞が前記透明部材に近づくという相関関係に基づいて、前記細胞の前記膜電位の変化を検出する、請求項1に記載の膜電位変化検出装置。
  3.  前記反射干渉計測用光源から放射され前記細胞から反射される光が集光される対物レンズを更に備えており、
     前記対物レンズと前記透明部材とは空気層を介して配置されている、請求項1または2に記載の膜電位変化検出装置。
  4.  前記透明部材の前記載置面とは反対側の面は、反射防止コートが施されている、請求項3に記載の膜電位変化検出装置。
  5.  前記対物レンズの前記反射干渉計測用光源側の開口絞りと共役な位置に配置されているリング状のスリットを更に備えている、請求項3または4に記載の膜電位変化検出装置。
  6.  定量位相計測用光源と、
     前記定量位相計測用光源から放射され前記細胞を透過する光を撮像することにより、定量位相画像を生成する定量位相撮像手段と、を更に備えている、請求項1~5の何れか1項に記載の膜電位変化検出装置。
  7.  前記反射干渉画像と前記定量位相画像との間で、空間的な位置を一致させることにより、両画像の位置合わせを行う画像位置合わせ手段と、
     前記定量位相画像に基づき、前記細胞の輪郭を抽出する輪郭抽出手段と、
     前記輪郭抽出手段が抽出した前記輪郭を前記反射干渉画像に適用することにより、輪郭適用後の反射干渉画像を生成する輪郭適用手段と、を更に備えており、
     前記解析手段は、前記輪郭適用後の反射干渉画像に基づいて、前記細胞と前記透明部材との接着に関する細胞ごとのパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞ごとの膜電位の変化を検出する、請求項6に記載の膜電位変化検出装置。
  8.  前記反射干渉計測用光源から放射される光の光量を調整する反射干渉光量調整手段と、
     定量位相計測用光源と、
     前記定量位相計測用光源から放射される光の光量を調整する定量位相光量調整手段と、を更に備えており、
     前記反射干渉撮像手段は、前記反射干渉計測用光源から放射され、細胞から反射される反射光を撮像することにより、反射干渉画像を生成するとともに、前記定量位相計測用光源から放射され、前記細胞を透過する透過光を撮像することにより、定量位相画像を生成し、
     前記反射干渉画像を生成する際に、前記定量位相光量調整手段が前記定量位相計測用光源からの光を遮光し、前記反射干渉撮像手段が前記反射光を撮像し、
     前記定量位相画像を生成する際に、前記反射干渉光量調整手段が前記反射干渉計測用光源からの光を遮光し、前記反射干渉撮像手段が前記透過光を撮像する、請求項1~5の何れか1項に記載の膜電位変化検出装置。
  9.  前記反射干渉光量調整手段は、前記反射干渉計測用光源から放射される光の光量を調整するシャッタであり、
     前記定量位相光量調整手段は、前記定量位相計測用光源から放射される光の光量を調整するシャッタである、
     ことを特徴とする請求項8に記載の膜電位変化検出装置。
  10.  前記反射干渉光量調整手段は、前記反射干渉計測用光源のON/OFFによる切り替えにより、前記反射干渉計測用光源から放射される光の光量を調整し、
     前記定量位相光量調整手段は、前記定量位相計測用光源のON/OFFによる切り替えにより、前記定量位相計測用光源から放射される光の光量を調整する、
     ことを特徴とする請求項8に記載の膜電位変化検出装置。
  11.  前記定量位相画像に基づき、前記細胞の輪郭を抽出する輪郭抽出手段と、
     前記輪郭抽出手段が抽出した前記輪郭を前記反射干渉画像に適用することにより、輪郭適用後の反射干渉画像を生成する輪郭適用手段と、を更に備えており、
     前記解析手段は、前記輪郭適用後の反射干渉画像に基づいて、前記細胞と前記透明部材との接着に関する細胞ごとのパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞ごとの膜電位の変化を検出する、請求項8~10の何れか1項に記載の膜電位変化検出装置。
  12.  反射干渉撮像手段が、反射干渉計測用光源から放射され、細胞が載置された透明部材を介して前記細胞から反射される光を撮像することにより、反射干渉画像を生成する反射干渉撮像ステップと、
     解析手段が、前記反射干渉画像から前記細胞と前記透明部材との接着に関するパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて、前記細胞の膜電位の変化を検出する解析ステップと、を含んでいる膜電位変化検出方法。
  13.  反射干渉撮像手段が、反射干渉計測用光源から放射され、細胞が載置された透明部材を介して前記細胞から反射される光を撮像することにより、反射干渉画像を生成する反射干渉撮像ステップと、
     定量位相撮像手段が、定量位相計測用光源から放射され、細胞を透過する光を撮像することにより、定量位相画像を生成する定量位相撮像ステップと、
     画像位置合わせ手段が、前記反射干渉画像と前記定量位相画像との間で、空間的な位置を一致させることにより、両画像の位置合わせを行う画像位置合わせステップと、
     輪郭抽出手段が、前記定量位相画像に基づき、前記細胞の輪郭を抽出する輪郭抽出ステップと、
     輪郭適用手段が、前記輪郭抽出手段が抽出した前記輪郭を前記反射干渉画像に適用することにより、輪郭適用後の反射干渉画像を生成する輪郭適用ステップと、
     前記解析手段が、前記輪郭適用後の反射干渉画像に基づいて、前記細胞と前記透明部材との接着に関する細胞ごとのパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞ごとの膜電位の変化を検出する解析ステップと、
     を含んでいる膜電位変化検出方法。
  14.  撮像手段が、反射干渉計測用光源から放射され、細胞から反射される反射光を撮像することにより、反射干渉画像を生成するとともに、定量位相計測用光源から放射され、前記細胞を透過する透過光を撮像することにより、定量位相画像を生成する撮像ステップと、
     輪郭抽出手段が、前記定量位相画像に基づき、前記細胞の輪郭を抽出する輪郭抽出ステップと、
     輪郭適用手段が、前記輪郭抽出手段が抽出した前記輪郭を前記反射干渉画像に適用することにより、輪郭適用後の反射干渉画像を生成する輪郭適用ステップと、
     前記解析手段が、前記輪郭適用後の反射干渉画像に基づいて、前記細胞と前記透明部材との接着に関する細胞ごとのパラメータを算出し、当該パラメータの変化に基づいて細胞ごとの膜電位の変化を検出する解析ステップと、
     を含んでおり、
     前記反射干渉画像を生成する際に、定量位相光量調整手段が前記定量位相計測用光源からの光を遮光し、前記撮像手段が前記反射光を撮像し、
     前記定量位相画像を生成する際に、反射干渉光量調整手段が前記反射干渉計測用光源からの光を遮光し、前記撮像手段が前記透過光を撮像する、
     ことを特徴とする膜電位変化検出方法。
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