WO2011131896A2 - Derives peptidiques, leur preparation et leurs utilisations comme vecteurs - Google Patents

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Vect-Horus
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    • C07K2319/74—Fusion polypeptide containing domain for protein-protein interaction containing a fusion for binding to a cell surface receptor

Definitions

  • the invention relates to peptide derivatives (peptides and pseudo-peptides) and their use as vectors of molecules of interest.
  • the invention also relates to conjugates containing a peptide derivative of the invention bound to a molecule of interest.
  • the peptides of the invention can be used in particular to vectorize, in the form of generally prodrug conjugates, molecules of pharmaceutical or diagnostic interest, such as, for example, therapeutic molecules, imaging or diagnostic agents, or molecular probes, through cell membranes, and in particular to promote their transport across the blood-brain barrier (BBB).
  • BBB blood-brain barrier
  • the brain is protected against potentially toxic substances by the presence of two main systems of physiological barriers: the BBB, and the cerebrospinal fluid-blood barrier (BS-LCR).
  • BBB is considered to be the main route for the uptake of plasma ligands. Its area is about 5000 times higher than that of BS-LCR.
  • the total length of blood vessels constituting the BBB is approximately 600 km.
  • Each cm 3 of cerebral cortex contains the equivalent of 1 km of blood vessels.
  • the total area of the BBB is estimated at 20 m 2 ⁇ De Boer et al., 2007, Clin. Pharmacokinetics 46 (7), 553-576).
  • cerebral endothelium which constitutes the BBB, represents a major obstacle to the use of potential drugs against many CNS disorders, but also a significant area of potential exchange between blood and nerve tissue.
  • BCECs brain capillary endothelial cells
  • BCECs are closely linked by tight junctions, compared to other endothelial cells of other organs, which are fenestrated. These tight junctions thus prevent any para-cellular transport through the BBB.
  • the BBB is considered as the major obstacle to be overcome in the development of new therapies intended to treat cerebral pathologies, and in particular for the use of molecules capable of treating CNS disorders (Neuwelt et al., 2008, Lancet Neurol, 7, 84-96).
  • One of the reasons why no effective treatment is currently available for the major brain pathologies is that the developers of candidates -medicines intended to treat pathologies of the brain, carry out internally research programs (brain drug-discovery programs) by investing little effort in the problem of the passage of the BBB and in the preferential targeting of the CNS, and in particular of the brain ⁇ brain drug-targeting programs), ⁇ Pardridge, 2003, Mol.
  • a drug candidate must meet certain structural, physico-chemical, pharmacochemical and pharmacological rules in order to have the best chance of becoming a drug to treat a CNS pathology or disorder ⁇ Pajouhesh et al, 2005, NeuroRx, 2 ( 4), 541-553).
  • the selectivity and specificity (pharmacological profiling) of a molecule for its target are essential to its therapeutic activity (efficacy).
  • the bioavailability and potential toxicity (pharmaceutical proficiency) of a molecule are crucial for its future as a drug.
  • any molecule that could become a drug intended to treat a pathology or disorder of the CNS must firstly pass through the BBB, secondly, retain its biological activity, and have good pharmacokinetic properties (PK), absorption, distribution, metabolism and excretion / elimination (ADME) and pharmacodynamics (PD), with low toxicity (Tox).
  • PK pharmacokinetic properties
  • ADME absorption, distribution, metabolism and excretion / elimination
  • PD pharmacodynamics
  • Tox low toxicity
  • the hydrophilic / lipophilic balance of the developing molecule is particularly difficult to find for medicinal chemists in this therapeutic area of the CNS.
  • the major problem in the treatment of CNS disorders and pathologies therefore lies in the fact that the molecules administered do not pass the BBB and therefore can not reach their target (s) in the CNS.
  • the endothelial cells of CNS vessels and capillaries that make up the BBB hinder molecules that can not pass from blood to nerve tissue.
  • these endothelial cells and the astrocyte feet surrounding them constitute a physical barrier linked in particular to the existence of tight junctions between the endothelial cells which limit / prevent any passage / transport by the para-cellular pathway, and also a physiological barrier, since these cells have effective efflux systems that restrict any passage / transport by the trans-cellular pathway.
  • MDR multidrug resistant transport proteins
  • P-gp which is mainly localized on the luminal surface of the endothelial cells of the cerebral capillaries, is an essential element in the physiological barrier function of the BBB preventing the entry into the brain of most xenobiotics but also candidates. drugs and other molecules of therapeutic interest that may be active in the CNS.
  • Invasive approaches may be implemented by direct cerebral ventricular injection of the active substance, intracerebral injection or intrathecal infusion, or by disruption of the BBB (temporary break in the integrity of the BBB).
  • Intraventricular infusion involves placement of a catheter into the ventricles (Aird, 1984, Neurol Exp., 86, 342-358). This highly invasive technique is not effective for the transport of active substances in the cerebral parenchyma. Indeed, the volume of flow from the cerebrospinal fluid to the cerebral parenchyma during the delivery of a medicament by intraventricular infusion is governed by an abnormally slow diffusion of its convection (of its transport), because the brain has no intra-parenchymal volume flow.
  • the diffusion of an active substance in the brain decreases very rapidly from the injection site to the site of injury. Indeed, the brain concentration of an active substance decreases by 90% at a distance of 500 ⁇ from its injection site.
  • Intrathecal infusion involves placing a catheter in the brain. This catheter is connected to a pump that delivers the active substance at a predefined rate. Because the brain is the only organ that does not have a lymphatic system, normally used to bring extracellular fluids back to the general circulation, the distribution of an active substance by intrathecal infusion at the cerebral level is very slow. This decreases the concentration of the active substance at the site of injury.
  • the temporary rupture of the impermeability of the BBB is associated with a transient opening of the tight junctions of the endothelial cells of the cerebral capillaries. This is the case of vasoactive substances such as leukotrienes or bradykinins ⁇ Baba et al, 1991, J. Cereb. Blood Flow Metab., 11, 638-643).
  • This strategy is also invasive and requires arterial access to the carotid artery in subjects / patients sedated.
  • the major problem with the temporary break in the integrity of the BBB, besides the expenses related to the radiologist's act for access to the carotid artery, is that the BBB only remains open for a short period of time, limiting indeed the possibility of delivering a drug in chronic.
  • Pharmacological strategies for the transport of molecules include the trans-cellular diffusion of molecules made more hydrophobic by the addition of lipid or lipophilic groups on the active substance (Transcellular Lipophilic Diffusion or TLD) or the use of liposomes (Zhou et al. 1992, J. Control, Release, 19, 459-486), and ion adsorption transport via positively charged or cationized carrier molecules of the active molecule (Adsorptive-Mediated Transport or AMT).
  • lipid or lipophilic group allows the chemical conversion of the hydrophilic molecules into more hydrophobic molecules, in particular through prodrug approaches.
  • the synthesis of such compounds leads to molecules that exceed the optimal transport threshold for crossing the BBB, particularly as regards the molecular weight which becomes greater than the optimal limit of 450 Daltons (Pajouhesh et al., 2005, NeuroRx , 2 (4), 541-553).
  • liposomes or even small vesicles (micelles, etc.) or nanoparticles (nanospheres, nanocapsules) are generally too large, not specific enough for the BBB, and therefore relatively inefficient for the transport of molecules.
  • AMT addition of a cationic group via covalent coupling or direct cationization of the drug
  • the main problem encountered is the low specificity to specifically target and cross the BBB with respect to other cell membranes.
  • ⁇ is based on cationic molecules adsorbed on cells whose membrane is negatively charged, which is the case for most cells.
  • the decrease in plasma AUC values of the drug, their generally limited use in vectorization of small molecules, and their cytotoxicity are all factors that penalize the vectorization approach via AMT.
  • molecules such as L-DOPA (Parkinson's disease), melphalan (brain cancer), ⁇ -methyl-DOPA (arterial hypertension) and gabapentin (epilepsy) pass into the brain via CMT via the large neutral amino acid transporters 1 and 2 (LAT1 and LAT2), (Pardridge, 2003, Mol Interv., 3, 90-105).
  • LAT1 and LAT2 large neutral amino acid transporters 1 and 2
  • LAT1 and LAT2 large neutral amino acid transporters 1 and 2
  • CMT approaches are their high selectivity / specificity for conjugates that closely mimic / mimic the substrate of the endogenous receptor / transporter, and hence their use which remains limited to the vectorization of small molecules.
  • the RMT uses a receiver-dependent transport system.
  • the vectorization is carried out via endocytosis mechanisms by targeting endogenous receptors / transporters present in the cerebral capillaries.
  • the transferrin receptor (TfR) the insulin receptor (IR), the low-density lipoprotein receptors (LDL) for the transport of LDL receptor (LDLR) and members of the low-density lipoprotein receptor-related protein (LRP) family
  • IGFR insulin-like growth factor receptor
  • DTR diphtheria toxin
  • HB-EGF heparin binding epidermal growth factor-like growth factor
  • SCAV-Rs scavenger receptor class B type I
  • SR-BI scavenger receptor class B type I
  • receptors on the membrane of an endothelial cell of the BBB bind their ligand, resulting in endocytosis of the receptor / transporter complex and its ligand in a vesicle that forms on the surface of the cell. and then enters the endothelial cell of the BBB.
  • the ligand / receptor complex can pass through the endothelial cell (transcytosis), and thus cross the BBB to act in the nerve tissue.
  • This process of RMT does not depend on the size of what is being endocyted.
  • the RMT is a mechanism that allows the transport from the blood into the brain of molecules such as insulin, iron-carrying proteins, cholesterol, various peptide derivatives and proteins, etc.
  • transferrin is used as a TfR ligand vector present on the BBB (Jefferies et al., 1984, Nature, 312, 162-163; Friden et al., 1983, Science, 259, 373-377; Friden, 1994, Neurosurgery, 35, 294-298), and the molecule to be transported (active substance) is coupled to transferrin (ligand vector).
  • this vectorization strategy using a macromolecule allows an increase in the passage of conjugated molecules of interest through the BBB, it has some disadvantages.
  • the coupling of the molecule to the vector is generally done by methods of gene expression (fusion) thus limiting the number of molecules to be transported to only polypeptides or proteins.
  • the coupling system of the molecule to the vector is quite complex, a coupling
  • the traditional chemical or biochemical approach does not provide well-defined macro-molecular systems from a structural and molecular point of view.
  • the potential competition between conjugates and endogenous ligands for the targeted receptor may lead to either an inhibition of the physiological process of RMT or a decrease in endogenous ligand concentration required for proper brain function.
  • RMT receptors are involved in cellular signaling processes at the brain level and conjugates could potentially interfere with these processes.
  • the present application relates to new peptides binding human LDLR, optimized for the transport of molecules.
  • the present invention provides optimized peptides or pseudo-peptides able to convey through the cell membranes, and more specifically the BBB, substances which can be of mass and / or large volume (s).
  • the invention thus makes it possible to improve the biodistribution or even the bioavailability of molecules of interest, and in particular to improve their access (targeting) to the CNS.
  • An object of the invention thus resides in a peptide or pseudo-peptide, characterized in that it corresponds to the following general formula (I):
  • Al denotes cysteine or one of its analogues or isosteres
  • A2 denotes proline or one of its analogues or isosteres
  • A3 denotes glycine or one of its analogs or isosteres.
  • Al denotes cysteine (Cys) or an analogue thereof chosen from (D) -cysteine, Penicillamine (Pen) and (D) -penicillamine ((D) -pen);
  • A2 denotes proline (Pro) or one of its analogs selected from pipecolic acid (Pip) and thiazolidine-4-carboxylic acid (Thz); and
  • / or A3 denotes glycine (Gly), or sarcosine (Sar).
  • a preferred object of the invention is a peptide or pseudo-peptide of the following general formula ( ⁇ ):
  • A1 denotes cysteine or an analogue thereof chosen preferably from (D) -cys, Pen and (D) -pen; and A2 denotes proline or one of its analogues preferably selected from Pip and Thz.
  • Another particular object of the invention resides in a peptide or pseudo-peptide of general formula (I ") below: Al-Met-A2-Arg-Leu-Arg-Ala-Cys ( ⁇ ) wherein Al denotes cysteine or an analogue thereof preferably selected from (D) -cys, Pen and (D) -pen; and A2 denotes proline or one of its analogues preferably selected from Pip and Thz.
  • Alanine (Ala) can be of L or D configuration.
  • the peptides of the invention advantageously have the ability to bind the human LDL receptor (hLDLR) with high affinity. They also have a reduced size, typically less than 10 amino acids, which is particularly advantageous. Particular examples of such peptides include peptides of SEQ ID NOs: 1 to 10.
  • Another subject of the invention relates to the use of a peptide or pseudo-peptide as defined above for the preparation of a pharmaceutical or diagnostic composition for vectorizing an active substance or of interest in diagnosis, imaging or therapy. .
  • Another subject of the invention relates to the use of a peptide or pseudo-peptide as defined above for increasing the biological activity or decreasing the toxicity of an active substance or of interest to which it is coupled.
  • Another subject of the invention relates to a peptide or pseudo-peptide as defined above for its use for vectorizing an active substance or of interest in diagnosis, imaging or therapy.
  • Another subject of the invention relates to a peptide or pseudo-peptide as defined above for its use for increasing the biological activity or decreasing the toxicity of an active substance or of interest to which it is coupled.
  • the subject of the invention is also any conjugated compound of formula (II) below:
  • the invention also relates to any conjugated compound of formula (III) below:
  • V represents a peptide or pseudo-peptide as defined above
  • L represents a spacer arm
  • D represents an active substance or of interest
  • x and y are integers between 1 and 5
  • z is an integer. between 1 and 10.
  • Another subject of the invention relates to a pharmaceutical composition
  • a pharmaceutical composition comprising at least one conjugated compound as defined above and one or more pharmaceutically acceptable excipients.
  • Another subject of the invention relates to a diagnostic composition characterized in that it comprises a diagnostic or medical imaging agent consisting of a conjugated compound as defined above.
  • Another object of the invention relates to a method for improving or allowing the passage of a molecule through the BBB, comprising the coupling of this molecule to a peptide or pseudo-peptide as defined above.
  • Another object of the invention resides in an improved method of treating a subject in a subject with a medicament, the improvement consisting in coupling this drug to a peptide or pseudo-peptide as defined above.
  • the invention is usable in any mammal, especially any human being. LEGEND OF FIGURES
  • a - CHO-hLDLR-GFP cells expressing hLDLR-GFP (green) incubated with Dil-LDL (red), the superposition of the red and green markings is visible in yellow / orange, note the strong labeling of the cells.
  • the invention relates to peptide derivatives capable of binding human LDLR and their use in the pharmaceutical field, in particular for transporting, in the cells of the BBB, molecules of therapeutic or diagnostic interest.
  • Human LDLR is a transmembrane protein of 839 amino acids comprising three regions: the extracellular region (1-768), the transmembrane region (768-790) and the cytoplasmic region (790-839).
  • the extracellular region is divided into two subregions: that of LDL binding (1-322) and that outside the LDL binding zone (322-768) (see WO2007 / 014992).
  • the brain has a strong need for LDL for its proper functioning.
  • LDLR natural ligands are LDL and more particularly apo lipoprotein B (ApoB) and apo lipoprotein E (ApoE) constitutive of LDL particles thus allowing the transport of cholesterol, contained in these particles, through cell membranes. and more particularly the BBB.
  • LDLR has been shown to allow transcytosis of LDL particles through BBB (Dehouck et al., 1997, J. Cell Biol, 138 (4), 877-889), via an MRT process, in particular endosomal vesicles that prevent lysosome fusion.
  • BBB BBB
  • endosomal vesicles that prevent lysosome fusion.
  • These lipoproteins having passed the BBB by transcytosis, are then captured by neurons and / or astrocytes (Spencer et al., 2007, Proc Natl Acad Sci USA, 104 (18), 7594-7599).
  • This property has been used to vector molecules of therapeutic interest by nanoparticles on which whole apolipoproteins (constitutive of LDL) are conjugated (Kreuter et al, 2007, J. Control Release, 118, 54-58). In this study, however, an entire lipoprotein apo was used, and in nanoparticle-coupled form to mimic the
  • the present application relates to new peptides binding human LDLR, optimized for the transport of molecules.
  • the vector peptides or pseudo-peptides can be easily synthesized chemically, and most of the molecules of therapeutic interest, or imaging or diagnostic agents can be coupled to the peptide or pseudo-peptide vector in a simple and effective way. through a prodrug strategy via a spacer arm (synthesis via linker) or by direct coupling (tandem synthesis) between the two entities ( Figure 2).
  • the peptides and pseudo-peptides of the invention are designed to adopt a cyclic configuration, and therefore more resistant to proteolysis.
  • the peptides and pseudo-peptides of the invention bind to LDLR without competition with the natural ligand.
  • the peptides or pseudo-peptides of the invention can be used as vectors of molecules of therapeutic interest, or imaging or diagnostic agents, or any other molecule such as a molecular probe, in the treatment, the imaging and / or the diagnosis of neurological pathologies, as well as infectious or cerebral or non-cerebral cancer pathologies.
  • the peptides or pseudo-peptides described in the present invention possess the capacity to target cellular receptors / transporters, particular cell types and / or to pass the cell membranes, in particular those of the physiological barriers of the brain and more particularly the BBB or the blood barrier.
  • Retina BSR
  • the peptides or pseudo-peptides described in the present invention possess the capacity to target cellular receptors / transporters, particular cell types, in particular cancerous cells, nervous or non-nervous tissue, and / or to pass cell membranes, in particular those of physiological barriers.
  • BHT hemato-tumoral barrier
  • the peptides or pseudo-peptides described in the present invention possess the capacity to target cellular receptors / transporters, particular cell types and / or to pass the cell membranes, in particular those of the physiological barriers of the CNS, to treat more particularly infectious pathologies cerebral or otherwise, bacterial, viral, parasitic or fungal.
  • the peptides or pseudo-peptides described in the present invention possess the ability to bind to a murine or human LDLR of the cell membrane and to cross said membrane through this receptor by transcytosis.
  • the peptides or pseudo-peptides described in the present invention possess the ability to bind to LDLR on the surface of cell membranes of barriers physiology of the murine and human brain and cross the said physiological barrier through LDLR by RMT.
  • An object of the invention thus relates to peptides or pseudo-peptides, characterized in that they correspond to the following general formula (I):
  • Al denotes cysteine or one of its analogues or isosteres
  • A2 denotes proline or one of its analogues or isosteres
  • A3 denotes glycine or one of its analogues or isosteres.
  • the group Al denotes a residue chosen from cysteine (Cys, C), of D or L configuration, or a derivative thereof chosen from 2-amino-3-mercaptopropanoic acid and its S-substituted derivatives. , S-acetylcysteine or 2-amino-3- (acetylthio) propanoic acid, selenocysteine (Sec, U) or 2-amino-3- (seleno) propanoic acid, cysteinol, 3-mercaptopropanoic acid (Mpa) , or penicillamine (Pen), configuration L or D.
  • the group Al is chosen from cysteine or penicillamine, of L or D configuration.
  • the group A2 denotes more preferably a residue chosen from proline (Pro, P) or pyrolidine-2-carboxylic acid, homoproline or 2- (2-pyrrolidinyl) ethanoic acid, 3-hydroxyproline (3Hyp), 4- hydroxyproline (4Hyp), 3-methylproline, 3,4-dehydroproline, 3,4-methanoproline, 4-aminoproline, 4-oxoproline, thioproline or thiazolidine-4-carboxylic acid (Thz), the acid 2-oxothiazolidine-4-carboxylic acid, indoline-2-carboxylic acid (Idc), pipecolic acid (Pip) or piperidine-2-carboxylic acid, nipecoic acid (Nip) or acid piperidine-3-carboxylic acid, 4-oxopipecolic acid, 4-hydroxypipecolic acid, amino-1-cyclohexane carboxylic acid, prolinol.
  • the group A2 is selected from proline, pipecolic acid (Pip) or thiazolidine-4-carboxylic acid (Thz).
  • the group A3 denotes more preferably a residue chosen from glycine (Gly, G) or 2-aminoethanoic acid, sarcosine (Sar) or N-methylglycine (MeGly), N-ethylglycine (EtGly), allylglycine (allylGly) or 2-aminopent-4-enoic acid, 2-cyclopentylglycine (Cpg), 2-cyclohexylglycine (Chg), 2,2-dipropylglycine (Dpg), 2- (3-indolyl) glycine (IndGly), 2-indanylglycine (Igl), 2-neopentylglycine (NptGly), 2-octylglycine (OctGly), 2-propargylglycine (Pra) or 2-amino-pent-4-ynoic acid, 2-phenylglycine (Phg), 2- (4-chlorophen
  • the group A3 is selected from glycine and sarcosine.
  • peptides or pseudo-peptides of formula (I) the peptides in which the group A3 is glycine are particularly preferred.
  • a particular object of the invention relates to peptides of formula ( ⁇ ) below:
  • Al denotes cysteine or one of its analogues or isosteres, preferably A1 denotes Cys, (D) -cys, Pen, or (D) -pen; and A2 denotes an analogue of proline, preferably A2 denotes Pip or Thz.
  • the cyclic peptides or pseudo-peptides of the invention may comprise modified peptide, non-peptide and / or peptide bonds.
  • the peptides or pseudo-peptides comprise at least one peptidomimetic linkage, preferably chosen from intercalation of a methylene group (-CH 2 -) or phosphate (-PO 2 -), secondary amine (-NH-) or oxygen (-O-), alpha-azapeptides, alpha-alkylpeptides, N-alkylpeptides , phosphonamidates, depsipeptides, hydroxymethylenes, hydroxyethylenes, dihydroxyethylenes, hydroxyethylamines, retro-inverso, methyleneoxy, cetomethylene, esters, phosphinates, phosphinics, phosphonamides, carba analogues.
  • the peptides or pseudo-peptides of the invention comprise a function N-term and / or C-term respectively protected, for example, by acylation, or by amidation or esterification.
  • peptides or pseudo-peptides of the invention can be synthesized by any technique known per se to those skilled in the art (chemical, biological, genetic synthesis, etc.). They can be stored as is, or formulated in the presence of a substance of interest or any acceptable excipient.
  • amino acids referred to as exotic, that is to say, non-coded
  • amino acids referred to as exotic that is to say, non-coded
  • a peptide sequence containing one or more peptidomimetic linkages may in particular include the intercalation of a methylene (-CH 2 -) or phosphate (-PO 2 -) group.
  • a secondary amine -NH-
  • oxygen -O-
  • lipid derivative or phospholipidic derivative
  • a constituent of a liposome or of a nanoparticle so as to incorporate the peptide or pseudo-peptide of the invention in a lipid membrane such as that of a liposome consisting of one or more lipid layers or bilayers, or a nanoparticle .
  • the peptides of the invention, or part of them of protein nature can also be obtained from a nucleic acid sequence coding for it.
  • the subject of the present invention is also a nucleic acid molecule comprising or consisting of a nucleic sequence coding for a peptide as defined above.
  • nucleic acid molecule comprising at least one sequence coding for a peptide of general formula (I).
  • nucleic acid sequences may be DNA or RNA and may be associated with control sequences and / or inserted into biological expression vectors.
  • the biological expression vector used is chosen according to the host in which it will be transferred. It may be for example a plasmid, cosmid, virus, etc. These nucleic acids and biological expression vectors are particular objects of the invention, and are useful for producing the peptides of the invention, or part thereof of a protein nature, in a cellular host.
  • the preparation of these biological expression vectors as well as the production or expression in a host of the peptides can be carried out by the techniques of molecular biology and genetic engineering well known to those skilled in the art.
  • Another subject of the invention is the use of a cyclic peptide or pseudo-peptide as defined above, as a vector for the transfer / transport of molecules of therapeutic interest, or imaging or diagnostic agents. , or any other molecule.
  • Another object of the invention resides in the use of a peptide or cyclic pseudo-peptide as defined above for the preparation of a drug capable of crossing the BBB.
  • Another object of the invention relates to a method for enabling or improving the passage of a molecule through the BBB, comprising coupling the molecule to a peptide or pseudo-peptide of the invention.
  • a particular object of the invention relates to a conjugated compound of formula (II) below:
  • V represents a peptide or pseudo-peptide of the invention
  • D represents an active substance or of interest
  • x and y are integers between 1 and 5.
  • x and y are equal to 1, x is greater than y, or y is greater than x.
  • Another particular object of the invention relates to a conjugate compound of formula (III) below:
  • V represents a peptide or pseudo-peptide of the invention
  • L represents a spacer arm
  • D represents an active substance or of interest
  • x and y are integers between 1 and 5
  • z is an integer between 1 and 10.
  • the active substance or of interest may be any molecule of pharmaceutical interest, in particular therapeutic, a diagnostic or medical imaging agent, or a molecular probe. It may be in particular any chemical entity having a biological interest such as a small chemical molecule (antibiotic, antiviral, immunomodulator, anticancer, anti-inflammatory, etc.), a peptide or polypeptide, a protein (enzyme , hormone, cytokine, apolipoprotein, growth factor, antigen, antibody or part of antibody), a nucleic acid (ribonucleic acid or deoxyribonucleic acid of human, viral, animal, eukaryotic or prokaryotic origin, vegetable, synthetic, etc.
  • a small chemical molecule antibiotic, antiviral, immunomodulator, anticancer, anti-inflammatory, etc.
  • a peptide or polypeptide a protein (enzyme , hormone, cytokine, apolipoprotein, growth factor, antigen, antibody or part of antibody)
  • a nucleic acid
  • the "substance of interest” can be any active ingredient of a drug, be it a chemical, biochemical, natural or synthetic.
  • the term "small chemical molecule” denotes a molecule of pharmaceutical interest having a molecular weight of up to 1000 Daltons, typically between 300 and 700 Daltons. Another particular object of the invention relates to a compound of formula (IV) below:
  • V represents a peptide or pseudo-peptide of the invention
  • L represents a spacer arm
  • x is an integer between 1 and 5
  • z is an integer between 1 and 10.
  • the coupling between V and D, or between V and L on the one hand and between L and D on the other hand can be achieved by any means of binding acceptable given the chemical nature , the size and the number of active substance (s) and associated peptide (s) or pseudo-peptide (s).
  • the coupling can thus be carried out by one or more covalent, ionic, hydrogen, hydrophobic or Van der Waals bonds, cleavable or otherwise in a physiological medium or inside cells.
  • D can be coupled to V, where appropriate via L, at different reactive groups, and in particular at one or more N-term and / or C-term ends of V and / or at a or more reactive groups carried by the side chains of the natural amino acids or not, constituting V.
  • the coupling may be carried out at any site of the peptide or pseudo-peptide, in which functional groups such as -OH, -SH, -C0 2 H, -NH 2 , -SO 3 H, -PO 2 H are naturally present or have been introduced.
  • a molecule of therapeutic interest, or a diagnostic agent (or medical imaging agent) or any other molecule such as a molecular probe can be linked (coupled) to the peptide or pseudo-peptide vector of the invention by a covalent bond either at the N-term or C-term termini, or at the level of the reactive groups borne by the side chains of the natural amino acids or not, of this peptide sequence.
  • the coupling can be carried out at any site of the active substance or of interest (molecule of therapeutic interest, diagnostic or medical imaging agent, any other molecule such as a molecular probe), where for example functional groups such as -OH, -SH, -C0 2 H, -NH 2 , -SO 3 H, -PO 2 H are naturally present or have been introduced. It is preferable that the interaction is sufficiently solid so that the peptide does not dissociate from the active substance until it has reached its site of action. For this reason, the preferred coupling according to the invention is a covalent coupling, but it could however be a non-covalent coupling.
  • the substance of interest can be coupled directly to the peptide (tandem synthesis) either at one of these terminal ends (N-term or C-term), or at the level of a side chain of one of the constituent amino acids of the sequence (Majumdar and Siahaan, Med Res Rev., Epub ahead of print).
  • the substance of interest can also be coupled indirectly via a linker or spacer arm (synthesis via linker), either at one of the terminal ends of the peptides, or at a side chain of a amino acids constituting the sequence (Figure 2).
  • an object of the invention also resides in a process for preparing a conjugated compound as defined above, characterized in that it comprises a step of coupling between a peptide or pseudo-peptide V and a Substance D, where appropriate via L, preferably chemically, biochemically, enzymatically, or by genetic engineering.
  • Another subject of the invention relates to a pharmaceutical composition characterized in that it comprises at least one conjugated compound as defined above and one or more pharmaceutically acceptable excipients.
  • Another subject of the invention relates to a diagnostic composition characterized in that it comprises a diagnostic or medical imaging agent consisting of a conjugated compound as defined above.
  • the conjugate can be used in the form of any pharmaceutically acceptable salt.
  • pharmaceutically acceptable salts is meant, for example and without limitation, pharmaceutically acceptable basic or acid addition salts, hydrates, esters, solvates, precursors, metabolites or stereoisomers, said vectors or conjugates charged with at least one substance of interest. .
  • salts refers to non-toxic salts, which can be generally prepared by reacting a free base with a suitable organic or inorganic acid. These salts retain the biological efficacy and properties of free bases.
  • Representative examples of such salts are water-soluble and water-insoluble salts, such as acetates, N-methylglucamine ammonium, ansonates (4,4-diaminostilbene-2,2'-disulfonates), benzenesulfonates, benzonates, bicarbonates, bisulfates, bitartrates, borates, hydrobromides, bromides, buryates, camsylates, carbonates, hydrochlorides, chlorides, citrates, clavulariates, dihydrochlorides, diphosphates, edetates, calcium edetates, edisylates, estolates, esylates, fumarates, gluceptates, gluconates, glutamates, glycolylars
  • compositions of the invention advantageously comprise a pharmaceutically acceptable carrier or excipient.
  • the pharmaceutically acceptable vehicle may be selected from vehicles conventionally used in each of the modes of administration. Depending on the intended mode of administration, the compounds may be in solid, semi-solid or liquid form.
  • the active substance may be combined with: (a) diluents, for example lactose, dextrose, sucrose, mannitol, sorbitol, cellulose and / or glycine; b) lubricants, for example silica, talc, stearic acid, its magnesium or calcium salt and / or polyethylene glycol; c) binders, for example magnesium aluminum silicate, starch paste, gelatin, gum tragacanth, methylcellulose, sodium carboxymethylcellulose and / or polyvinylpyrrolidone; d) disintegrants, for example starch, agar, alginic acid or its sodium salt, or effervescent mixtures; and / or e) absorbents, dyes, flavoring agents and sweeteners.
  • diluents for example lactose, dextrose, sucrose, mannitol, sorbitol, cellulose and / or glycine
  • lubricants for
  • the excipients may be, for example, mannitol, lactose, starch, magnesium stearate, sodium saccharin, talc, cellulose, glucose, sucrose, magnesium carbonate and pharmaceutical grade analogs.
  • the excipient may, for example, be a fat emulsion or suspension, or based on polyalkylene glycol, such as polypropylene glycol.
  • Liquid compositions, in particular injectable or to be included in a soft capsule can be prepared for example by dissolution, dispersion, etc. of the active substance in a pharmaceutically pure solvent such as, for example, water, physiological saline, aqueous dextrose, glycerol, ethanol, an oil and its analogues.
  • compositions or conjugates of the invention may be administered by any suitable route and, in a non-limiting manner by the parenteral route, such as, for example, in the form of injectable preparations subcutaneously, intravenously or intramuscularly; orally (or per os), such as, for example, in the form of coated tablets or not, capsules, powders, granules, suspensions or oral solutions (such a form for oral administration can be either immediate release, either prolonged or delayed release); - rectal route, such as, for example, in the form of suppositories; - Topical route, particularly transdermal, such as, for example, in the form of patches, ointments or gels; intranasal route, for example in the form of aerosols and sprays; - perlingual route; - intraocular route.
  • the parenteral route such as, for example, in the form of injectable preparations subcutaneously, intravenously or intramuscularly; orally (or per os), such as, for
  • compositions typically comprise an effective dose of a peptide or pseudo-peptide or conjugate of the invention.
  • a “therapeutic dose “effective” as described herein means the dose that gives a therapeutic effect for a given condition and administration regime. This is typically the average dose of an active substance to be administered to substantially improve some of the symptoms associated with a disease or condition. For example, in the treatment of cerebral or non-brain cancer, a pathology, a lesion or a disorder of the CNS, the dose of an active substance which decreases, prevents, delays, suppresses or stops the any of the causes or symptoms of the disease or disorder would be therapeutically effective.
  • a "therapeutically effective dose" of an active substance is not required to cure a disease or disorder but will provide treatment for that disease or disorder so that its onset is delayed, hindered or prevented, or that its symptoms are alleviated, or the term is modified or, for example, less severe or the patient's recovery is accelerated.
  • the "therapeutically effective dose” for a particular individual will depend on various factors, including the activity / efficacy of the active substance, its time of administration, route of administration, rate of excretion and its metabolism, drug associations / interactions and the severity of the disease (or disorder) treated as a preventative or curative, as well as age, body weight, overall health status, sex and / or diet of the patient.
  • the conjugates and compositions of the invention may be used for the treatment, prevention, diagnosis or imaging of numerous pathologies, in particular pathologies affecting the CNS, infectious pathologies or cancers.
  • the invention relates to the use of conjugates or pharmaceutical compositions as described above for the treatment or the prevention of CNS pathologies or disorders, of cerebral cancer tumors or of other cancerous cells, and of infectious pathologies. cerebral or otherwise, bacterial, viral, parasitic or fungal.
  • the invention also relates to the use of conjugates or pharmaceutical compositions as described above for the diagnosis or imaging of CNS pathologies or disorders, of cerebral cancer tumors or of other cancerous cells, and of cerebral infectious pathologies or others, bacterial, viral, parasitic or fungal.
  • the invention also relates to the use of a conjugate or a composition as defined above for the treatment, imaging and / or diagnosis of a cerebral cancer tumor or of another type of cancer cells.
  • a conjugate or a composition as defined above for the treatment, imaging and / or diagnosis of a cerebral cancer tumor or of another type of cancer cells.
  • Studies have shown that patients with certain cancers have hypocholesterolemia. This hypocholesterolemia is the consequence of overuse of cholesterol by cancer cells. The latter induce an increase in the level of expression of LDLR in the tumoral organs in order to survive ⁇ Henricksson et al, 1989, Lancet,
  • 3,000 LDLRs are present on the surface of a non-pathological cell. Similarly, non-pathological neurons have only a small number of LDLRs (Pitas et al., 1987, J. Biol Chem., 262, 14352-14360). In the case of glioblastoma, overexpression of LDLR has been demonstrated. Thus, tumor cell counts of 125,000 (for U-251 cells) were counted at 900,000 (for SF-767 cells) LDLR (Malentiska et al., 2000, Cancer Res., 60, 2300-2303, Nikanjam et al., 2007, Int J Pharm., 328, 86-94).
  • tumor cells overexpress LDLR, such as those of prostate cancer (Chen et al., 2001, J. Cancer, 91, 41-45), colon cancer (Niendorf et al. 1995, Int J. Cancer, 61, 461-464), leukemias (Tatidis et al., 2002, Biochem Pharmacol., 63, 2169-2180), colorectal cancer (Caruso et al., 2001, Anticancer Res 21, 429-433), breast cancer (Graziani et al., 2002, Gynecol, Oncol, 85, 493-497), as well as cancers of the liver, pancreas, ovary, lung, prostate stomach, etc.
  • the invention also relates to the use of a conjugate or a composition as defined above for the treatment, imaging and / or diagnosis of infectious diseases of the brain or the like, of the bacterial, viral, parasitic or fungal, such as, and not limited to, AIDS, even meningitis, etc.
  • LDLR is also present on liver cells. It is now known that endocytosis of hepatitis C virus (HCV) can be mediated through LDLR. LDLR could serve as a viral receptor at an early stage of human hepatocyte infection with HCV (Molina et al, 2007, J. Hepatol, 46 (3), 411-419).
  • the conjugates of the invention can therefore be used to specifically target pathological cells, infected with viruses such as hepatitis B and C, which express LDLR and / or to modulate the process of infection of healthy cells by viruses. via the LDLR.
  • the invention also relates to the use of a conjugate or a composition as defined above for the treatment, imaging and / or diagnosis of neurodegenerative pathologies such as but not limited to Alzheimer's disease, Parkinson's disease, Creutzfeldt-Jacob disease, stroke, bovine spongiform encephalitis, multiple sclerosis, amyotrophic lateral sclerosis, etc.
  • neurodegenerative pathologies such as but not limited to Alzheimer's disease, Parkinson's disease, Creutzfeldt-Jacob disease, stroke, bovine spongiform encephalitis, multiple sclerosis, amyotrophic lateral sclerosis, etc.
  • the invention also relates to the use of a conjugate or a composition as defined above for the treatment, imaging and / or diagnosis of neurological pathologies such as, but not limited to, epilepsy, migraine , encephalitis, CNS pain, etc.
  • the invention also relates to the use of a conjugate or a composition as defined above for the treatment, imaging and / or diagnosis of neuropsychiatric pathologies such as, but not limited to, depression, autism , anxiety, schizophrenia, etc.
  • treatment means that a pharmacological and / or physiological effect is achieved, for example, inhibition growth of cancer cells, death of cancer cells or improvement of a neurological disease or disorder.
  • the effect may be prophylactic or preventative in order to totally or partially prevent the aggravation of a disease or symptom thereof, in a sick person, or its spread, in healthy subjects, and / or may be therapeutic in order to treat totally or partially a disease and / or its related harmful effects.
  • treatment includes any treatment of a disease in a mammal, and more particularly a human, and includes: (a) the prevention of a disease (for example, the prevention of cancer) or a condition that may occur in a person who is prone to this condition or disorder, but has not yet been diagnosed as having it, (b) slowing down a disease (for example, stopping its development) , or (c) the relief of a disease (for example, by reducing the symptoms associated with a disease).
  • a disease for example, the prevention of cancer
  • condition that may occur in a person who is prone to this condition or disorder, but has not yet been diagnosed as having it
  • slowing down a disease for example, stopping its development
  • the relief of a disease for example, by reducing the symptoms associated with a disease.
  • treatment also includes any administration of an active substance to treat, cure, relieve, ameliorate, diminish or inhibit a condition in an individual or patient, including but not limited to , administering to a person in need of a drug composed of a vector or conjugate as described herein.
  • the present invention also relates to the use of a peptide or pseudo-peptide of the invention for increasing the biological activity of an active substance or of interest (molecule of therapeutic interest, diagnostic agent or medical imaging agent , any other molecule like a molecular probe) to which it is coupled.
  • an active substance or of interest molecule of therapeutic interest, diagnostic agent or medical imaging agent , any other molecule like a molecular probe
  • the present invention also relates to the use of a peptide or pseudo-peptide of the invention, for reducing the toxicity of the active substance or of interest (molecule of therapeutic interest, diagnostic or medical imaging agent, any another molecule as a molecular probe) to which it is coupled.
  • the inventors have identified peptides on the basis of their interaction and affinity for the human and murine receptors with low-density lipoproteins (hLDLR and mLDLR), involved in particular in endocytosis and transcytosis (trans-cellular transport, in particular through the BBB) cholesterol.
  • hLDLR and mLDLR low-density lipoproteins
  • the prerequisite for the characterization of these peptides was the establishment in eukaryotic cells (Chines and Hamster Ovary Cells, CHO) of stable lines constitutively expressing high levels of hLDLR and mLDLR.
  • hLDLR and mLDLR are available in the databanks (access numbers: NM 000527 and NM O 10700 respectively).
  • the primers necessary for amplification of the cDNAs by PCR were selected, having at their end (in bold type) the necessary restriction sites (HindIII and SalI for human LDLR and HindIII and KpnI for murine LDLR) for cloning in the pEGFP-N1 expression vector (Clontech): hLDLR
  • RNAs prepared from human and murine brains were transformed into reverse transcription cDNA for PCR amplification of DNA fragments encoding hLDLR and mLDLR.
  • the PCR products were digested with the HindIII-SalI and HindIII-KpnI restriction enzymes respectively and ligated into the pEGFP-N1 expression vector (Clontech), digested with the same restriction enzymes.
  • this vector allows the expression, under the control of the CMV promoter, of LDLR fused to GFP at their C-term end, ie at the end of their intracellular domains (FIG. 3).
  • E. coli DH5CC competent bacteria After transformation of E. coli DH5CC competent bacteria, obtaining isolated colonies, preparation of plasmid DNA, the constructs were integrally sequenced on the 2 strands for verification.
  • Transient transfections in different cell lines were performed to determine the expression levels and membrane localization of hLDLR and mLDLR on living cells.
  • the receptor is visible directly on living cells, under fluorescence microscopy, without the need for immunostaining, thanks to the green fluorescence emitted by the GFP fused at C-term of these receptors.
  • Stable transfectants were selected by limiting dilution and using the geneticin resistance gene (G418) carried by the expression vector. These lines were amplified while keeping a selection pressure.
  • the expression of hLDLR-GFP of the expected size was verified by Western Blot on cell lysates with antibodies directed against human LDLR and against GFP.
  • a protein corresponding to the combined sizes of GFP and hLDLR (190 kDa) is recognized by anti-hLDLR ( Figure 4) and anti-GFP antibodies in cell extracts prepared from stable lines.
  • a line CHO expressing GFP constitutively was used as a negative control.
  • the anti-hLDLR antibody does not detect any protein in the GFP line.
  • Dil-LDL fluorescent natural ligand
  • the endocytosis activity of the CHO-LDLR-GFP line is specific to the LDLR ligand, since in this line no non-specific ligand endocytosis is observed, for example transferrin (Tf) labeled with a red fluorochrome (Texas Red, Figure 6-C).
  • Tf transferrin labeled with a red fluorochrome (Texas Red, Figure 6-C).
  • Receptor Functionality is confirmed by real-time experiments under fluorescent video microscopy showing that LDL, the natural ligand of hLDLR, labeled with Dil, is effectively transported rapidly and very efficiently in expressing cells.
  • hLDLR-GFP compared to cells expressing GFP alone or cells expressing another receptor involved in endocytosis such as hTfR (negative controls).
  • video microscopy experiments performed with Texas Red labeled Tf which is very efficiently endocytosed by cells expressing hTfR-GFP, confirm that transferrin is not endocytosed by the cells of a lineage. GFP control or those of a hLDLR line.
  • Peptide syntheses and couplings to a tracer molecule biotin, fluorescein, or S-Tag with enzymatic activity.
  • the peptides were synthesized by the solid phase peptide synthesis (SPPS) method on an automatic synthesizer, Advanced ChemTech Apex396 model (AAPPTec), or a Liberty TM (CEM) focused microwave autofocus synthesizer. using a Fmoc / tBu strategy on Rink Amide AM resin on 1% DVB polystyrene, or Wang resin on 1% DVB polystyrene, or Barlos ⁇ 2-chlorotrityl chloridated resin) on 1% DVB polystyrene, or Sieber amide resin on polystyrene-1% DVB.
  • the charge (or substitution) is between 0.25 and 1.6 mmol / g depending on the resin used.
  • Amino acids N-protected by Fmoc or Boc for certain N-term ends
  • orthogonal functions amino acids N-protected by Fmoc (or Boc for certain N-term ends) and / or protected by orthogonal functions (acid-labile in particular) at their side chains, chemical coupling and deprotection reagents, and solvents are purchased from specialized companies and used as is.
  • Barlos and Sieber type "hypersensitive acid labile or HAL" resins respectively allow the release of the terminal acid or amide function (in C-term) while preserving the orthogonal lateral protections of the different amino acids of the synthesized peptide as well as the amine protection.
  • terminal (N-term) of the amino function of its last amino acid for example, N-acetylation for stability neo-synthesized peptide sequence).
  • This type of resins via a Fmoc synthesis strategy makes it possible to use acid-labile orthogonal lateral protections (Boc-type Prot 2 , tBu, OtBu, Trt, Mmt, Acm, etc.) which are cleavable only in a strongly acid medium. acid, while the stall of the protected peptide is in very mild acidic conditions.
  • This type of cleavage makes it possible to recover the totally protected peptide sequence on its lateral functions (Prot 2 ), in particular with a view to coupling a molecule of therapeutic interest on the peptide. This is called orthogonal 3-dimensional SPPS peptide synthesis (Barlos or Sieber / Fmoc / tBu).
  • the standard orthogonal side shields (Prot 2 ) used for each amino acid during peptide synthesis are: Arg (N-Pbf), Arg (N-Pmc), Asn (N-Trt), Asp (O-tBu), Cys (S-Acm), Cys (S-Mmt), Cys (S-4MeBn), Cys (S-tBu), Cys (S-Tmob), Cys (S-Trt), Glu (O-tBu), Gln (N-Trt), His (N-Trt), Lys (N-Boc), Pen (S-Acm), Pen (S-Trt), Ser (O- tBu), Thr (O-tBu), Trp ( N-Boc), Tyr (O-tBu) (Applied Biosystems, 1998, Cleavage, Deprotection, and Isolation of Peptides after Fmoc Synthesis, Technical Bulletin). Gly, Sar, Ala, Val, Leu, Ile,
  • the amino acid couplings are made by activation of the acid function of the amino acid n + 1 using DIEA / HBTU / HOBt or DIPC / HOBt in DMF.
  • the last amino acid coupled during the peptide sequence will either be protected by a Boc function (in order to release its free terminal amine function at the end of synthesis) or acetylated (in order to stabilize the synthesized neo-peptide at the end of synthesis). risks of secondary reactions during the coupling of the therapeutic molecule of interest in C-term for example) or even propionylated.
  • the disulfide bridges are obtained by intramolecular cyclization from 2 thiol functions of 2 suitably protected Cys (mAb, Trt, tBu, etc.), either in solution or on the resin, using reagents conventionally used by those skilled in the art: H 2 O / AcOH /, / (NH 4 ) 2 CO 3 / DMSO, H 2 O / AcOH, / (NH 4 ) 2 CO 3 , I 2 / DMF, I 2 / HFIP / DCM, TFA / DMSO / anisole, I 2 / DCM / MeOH / H 2 O, etc.
  • a Cys in N-term position can be advantageously replaced by Pen or Mpa for cyclization via a disulfide bridge.
  • Bridges lanthionines by cyclization via dehydroalanine
  • dicarba by cyclization via allylGly
  • a lactam bridge can be created between the lateral acid function of a Glu (or Asp) residue and a side amino function on a N-term Lys or amine.
  • a cyclization between the amino function N-term and the C-term acid function can be carried out via an amide bond, as can a cyclization between the amine side function of a Lys and the acid function C- peptide term (Majumdar and Siahaan, MedRes Rev., Epub ahead of print).
  • the cleavage of the peptides of the Barlos or Sieber resins is carried out by methods conventionally used by those skilled in the art, either with 0.5% of TFA (v / v) in DCM or with AcOH / TFE. / DCM (1/1/3), either with HFIP (30%) in DCM or with TFE (30%) in DCM, etc.
  • the deprotections of the side chains, and the cleavage of the peptides of Rink Amide or Wang resins are carried out by methods conventionally used by those skilled in the art: either with a TFA / H 2 O / TIS or TIPS mixture (95 / 2.5 / 2.5), either with TFA / H 2 O / EDT / TIS or TIPS (94 / 2.5 / 2.5 / 1), or with TFA / thioanisole / H 2 0 (94/5 / 1), either with TFA / TIS / H 2 O / thioanisole (90/5/3/2), or with
  • Biotins, fluoresceins, or S-Tag are generally introduced in C-term, these tracers are sometimes coupled in N-term, according to conventional synthesis and coupling methods known from skilled in the art.
  • the peptides are isolated and purified by HPLC on a Beckman System Gold 126 instrument with a Chromolith C18 column (4.6 ⁇ 50 mm) or Nucleosil C18 column (10 ⁇ 250 mm) with, for example, a 0 to 100% gradient).
  • acetonitrile in an aqueous phase in 3.5 min then 100 to 0%> in 1.5 min (flow rate: 1 to 5 ml / min), or on a Waters 1525 chain with a column (stationary phase) Chromolith Speed ROD RP-18 (4.6 x 50 mm) with detection by a Waters 996 PDA equipment (190 - 400 nm), or on a Waters Alliance 2690 chain with a column (stationary phase) Chromolith Performance RP-18 (3 x 100 mm) with detection by a Waters 996 PDA equipment (190 - 400 nm). UV detection is performed at 214 and 254 nm.
  • the preparative purifications are carried out with a Waters prep LC4000 System chain with a column (stationary phase) Guard-PakTM cartridges Delta-PakTM Cl 8 (25 x 10 mm) with detection by a Waters 2487 Dual 1 Absorbance Detector.
  • Molecular weights are determined using an ion electrospray mass spectrometer (ESI) in positive mode.
  • ESI ion electrospray mass spectrometer
  • the spectra are obtained using a Waters MicromassQuattro Micro (quadrupole analyzer) equipped with a Waters Alliance 2690 HPLC system for LC-MS coupling.
  • the acquisition of mass spectra in positive electrospray mode is at a rate of 100-200 ⁇ / ⁇ .
  • the data is obtained in scan mode from 200 to 1700 m / z at 0.1 s intervals.
  • CHO-hLDLR-RFP cells were cultured in 6-well plates. Three cell wells are used per condition.
  • a solution containing ⁇ peptide SEQ ID NO: 17 / S-Tag was prepared in HamF12-1% BSA culture medium. To this solution were added 10 ⁇ of the peptide to be evaluated (competition).
  • Table 1 The results obtained for the best peptides are shown in Table 1 below.
  • the table gives the results of the competitions in% of reference vector peptide (SEQ ID NO: 17 / S-Tag), affinity for hLDLR, displaced by the peptides of the invention.
  • this value is greater than 50%, the peptide has a higher affinity than that of the reference peptide (SEQ ID NO: 17).
  • the peptides or pseudo-peptides of the invention have the pharmacological prerequisites:
  • affine for hLDLR in CHO-LDLR-GFP lines.
  • Peptides of the invention affine for hLDLR-GFP are coupled / conjugated at C-term to different "tracer” molecules, either rhodamine or S-Tag, separated by a spacer arm generally consisting of 3 Gly residues (FIG. ).
  • S-Tag (15 amino acid peptide derived from the 1-15 sequence of bovine pancreatic ribonuclease A) can be recognized by an anti-S-tag antibody for immunocytochemistry or FACS approaches, and on the other hand reconstitute enzymatic activity by binding to the ribonuclease S-protein (C-term portion, amino acids 21-124) in in vitro activity assays using the FRETWorks S-Tag assay kit (Novagen 70724-3) .
  • the ribonuclease thus activated digests an MRA substrate releasing a masked fluorescent agent revealed by FRET (Fluorescence Resonance Energy Transfer) and quantified in a 96-well plate in a Beckmann spectrofluorometer.
  • the cells are washed twice with 2 ml of PBS and then incubated for 1 h at 37 ° C. with 250 ⁇ l of peptide solution. They are again washed twice with 2 ml of PBS and then twice with 1 ml of PBS, then scraped into 1 ml of PBS and centrifuged for 5 min at 1250 rpm. The supernatant is then aspirated and the cell pellet is lysed in 80 ⁇ l of PBS + 0.1% of Triton XI 00. Twenty ⁇ l of each cell lysate are analyzed by measuring the fluorescence emission after reaction of FRET.
  • the potential toxic effects of peptides on endothelial cells, the binding / accumulation of peptides in these cells, and the transcytosis passage of peptides are evaluated on BBB models in vitro.
  • the cells required for the implementation of the model are bovine cells (bovine brain microvascular endothelial cells, BBMECs) distributed by the company Cellial Technologies (Lens, France). or rat brain capillary endothelial cells (rat BCECs) which made it possible to develop a mouse model internally.
  • This type of in vitro BBB model is used to evaluate the passive passage or active transport of many molecules, including pharmacological agents, across BCECs and thus extrapolating their ability to reach CNS nervous tissue in vivo.
  • the bovine and murine models show ultra-structural properties characteristic of the cerebral endothelium, notably tight junctions, the absence of pores, the absence of transendothelial canals, the low permeability to hydrophilic molecules and a high electrical resistance.
  • these models showed good correlations between the results of measurements made on different molecules evaluated in vitro and in vivo for their property of passage through the BBB.
  • all the data obtained reveal that these in vitro BHE models closely mimic the in vivo situation by reproducing some of the complexities of the cellular environment that exist in vivo, while retaining the benefits associated with experimentation in culture. cellular.
  • the bovine model of in vitro BBB involves a co-culture of BBMECs and astrocytes.
  • plate inserts Prior to cell culture, plate inserts (Millicell-PC 3.0 ⁇ , 30 mm diameter) are treated on the upper side with rat tail collagen to allow optimal adhesion of BBMECs and create the conditions of a basal lamina.
  • Primary mixed astrocyte cultures are established from neonatal rat cerebral cortex (Dehouck et al., 1990, J. Neurochem., 54, 1798-1801). Briefly, after removing the meninges, the brain tissue was passed through a 82 ⁇ nylon screen.
  • Astrocytes are distributed in microplate wells at a concentration of l, 2xl0 5 cells / ml and 2 ml of medium optimal cultivation (DMEM) supplemented with 10% inactivated fetal calf serum by heating. The middle is changed twice a week.
  • the BBMECs obtained from Cellial Technologies are cultured in the presence of DMEM medium supplemented with 10% (v / v) of horse serum and 10% of inactivated calf serum by heating, 2 mM of glutamine, 50 ⁇ g / ml of gentamycin and 1 ng / ml of basic fibroblast growth factor, added every other day.
  • the BBMECs are then distributed on the upper side of the filters in 2 ml of the co-culture. This BBMECs medium is changed three times a week. Under these conditions, differentiated BBMECs form a monolayer of confluent cells 7 days later.
  • the peptides of the invention coupled to rhodamine are incubated in the upper chamber of the culture system, in contact with the endothelial cells for 1 h, 5 h and 24h.
  • the culture medium of the lower chamber is collected at different times and the fluorescence quantified by fluorimetric analysis.
  • the results are expressed as endothelial surface permeability (or Pe) expressed in 10 -3 cm / min Lucifer Yellow (LY), a small fluorescent molecule that passes the BBB, is used on the one hand to control the integrity in vitro, in all the analyzed wells, but on the other hand, in co-incubation with the peptides, in order to control the absence of toxicity of the peptides for the endothelial cells which form this BBB. considered “permeable” or "open” if the passage value Pe of the LY is greater than 1.10 "3 cm / min.
  • LY Lucifer Yellow
  • the value of the quality threshold is fixed at> 500 Ohm.cm 2 .
  • the experiments carried out demonstrate a lack of toxicity of the peptides, as well as for the control peptide used, and an absence of deleterious effects on the permeability properties of the BBB.
  • the passage through the BBB of a peptide of the invention conjugated to rhodamine is verified on the bovine model of in vitro BBB described above. This analysis is performed by measuring by fluorimetry the amount of fluorescence accumulated in the recipient well at different times (1 h, 4 h, 24h). The integrity of the BBB in the different wells analyzed is evaluated by simultaneously measuring the rate of LY passing from one compartment to another as a function of time.
  • Protocols for the chemical synthesis of vector / molecule conjugates of therapeutic interest or imaging (or diagnostic) agent or any other molecule such as a molecular probe are possible.
  • a molecule of therapeutic interest or imaging or diagnostic agent or any other molecule such as a molecular probe can be cleaved / released / released from the vector after transport and passage through the cell membranes and more particularly the BBB. for example through a prodrug strategy by hydrolysis or enzymatic cleavage of a chemical bond between the vector and the active substance.
  • tandem synthesis ie direct coupling without intermediate between the two entities
  • synthesis through a linker Temsamani et al., 2004, Drug Discovay Today, 23, 1012-1019
  • one or the other of the various strategies is applied either on the C-term or on the N-term, or on a reactive function of a side chain of this vector peptide (Majumdar and Siahaan, Med Res Rev., Epub ahead of print).
  • the chosen spacer arms should allow a good release of the active substance and the improvement of the solubility of the conjugate (Molema et al, 2001, Drug targeting, organ-specific strategies.
  • PEG polyethylene glycol
  • the conjugates vectors / active substances or of interest can be used in diagnosis, imaging or therapy of a pathology, a lesion or a disorder of the CNS for the preparation of a drug able to cross the BBB, a cerebral cancer tumor or other type of cancer cells for the preparation of a drug capable of traversing cancerous cell membranes, and / or infectious pathologies for the preparation of a drug capable of crossing cell membranes and targeting infected cells of cerebral or other infectious diseases, of bacterial, viral, parasitic or fungal type.
  • the in situ brain perfusion technique (in the OF1 adult male mouse) is used to illustrate the passage into the brain through the BBB.
  • the vector peptides are radiolabeled with tritium ( 3 H), which element offers the highest sensitivity for detecting radioactive compounds, especially on tissue sections.
  • 3 H tritium
  • the preparation of radioactive peptides with a high specific radioactivity (SAR, up to 100 Ci / mmol) is carried out by a strategy for acylating the N-term amino function with tritiated propionic (or propanoic) anhydride or propionyl-N-succinimide (NPS) tritiated.
  • This tritiation method can be applied to all the peptides (vectors, or conjugated between a therapeutic peptide and a vector peptide in tandem or via a linker (which can be of a peptide or organic nature)), provided that the modification of the N-term does not affect the affinity of the peptides for the targeted receptor (ie LDLR) or their biological activity in the case of therapeutic peptides.
  • a linker which can be of a peptide or organic nature
  • the tritiation reaction of the vector peptide in N-term by propionylation is carried out in DMF (1 mg of peptide in 100 to 450 ⁇ according to solubility) by adding 0.1 equivalent of tritiated NPS for 5 minutes at room temperature, then 0.9 equivalents of cold NPS (non-tritiated) for 1 h, then a new equivalent of cold NPS for 5 h.
  • the reaction medium is then left at 4 ° C. overnight and purified the next day by HPLC.
  • the SAR for each tritiated peptide is typically between 5 and 10 Ci / mmol.
  • the total amount of radioactivity prepared by synthesis is generally between 600 and 950 ⁇ .
  • the covalent coupling of the radiolabeled peptides (at 3 H, for example) to a radiolabeled active substance (at 14 C for example) is carried out, as described, for example, in EXAMPLE VI.
  • this covalent coupling is carried out according to the structure and the physicochemical properties of the active substance, in particular the presence of functional chemical groups that can be modified without reducing the biological activity of this substance. Syntheses of conjugates radiolabelled are performed by extrapolation from the synthetic pathways developed on non-radiolabelled conjugates.
  • in situ cerebral perfusion techniques are among the most technically demanding and difficult to perform in mice.
  • in situ cerebral perfusion allows total control of the artificial perfusate composition to maintain the cells and vascularization of the brain under normal physiological and anatomic conditions within the animal without the disturbing factor of systemic distribution.
  • mice This strategy of in situ cerebral perfusion normally performed in rats has been adapted in mice (Dagenais et al., 2000, Cereb Blood Flow Metab., 20 (2), 381-6) in order to broaden its application to evaluate. the kinetic parameters of transport at the level of the BBB and the blood-retinal barrier, and this also in mutant transgenic and KO mice for the receptors, enzymes or transporters of active substances.
  • the endogenous blood flow is stopped by cutting the ventricles of the heart to avoid mixing the tampon with the blood and raising the blood pressure.
  • the duration of the fixed rate infusion is controlled.
  • Buffer infusion can be extended for up to 20 min or up to 1h in the presence of oxygen transporters (washed erythrocytes) for Receptor-Mediated Transport (RMT) studies.
  • the experiments carried out made it possible to determine the cerebral transport, or transfer coefficient (Ki n : ratio between the volume of distribution and the cerebral perfusion time), of several vector peptides of the invention.
  • the cerebral perfusion time for these experiments is 5 min with a perfusate flow rate of 2 ml / min.
  • Ki n peptide vectors of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 4, radiolabeled at a SAR of 2 Ci / mmol are respectively 3.3 and 3.0 x 10 -4 ml / s / g. .
  • transferrin (Tf) has an IQ n of 3.0 x 10 "4 ml / s / g ⁇ Demeule et al, 2008, J. Neurochem., 106 (4), 1534-1544), and
  • the reference peptide, SEQ ID NO: 17 has, under the same experimental conditions, an IQ n of 3.2 ⁇ 0.4 ⁇ 10 -4 ml / s / g.
  • this type of in situ brain perfusion experiment also makes it possible to distinguish between compounds that remain in the cerebral vascular compartment and those that have passed the abluminal endothelial membrane to enter the cerebral parenchyma.
  • This technique measures whether the molecule actually crosses the endothelium to enter the cerebral parenchyma.
  • the use of this technique makes it possible to demonstrate that the specific vector peptides (or conjugates) accumulate in the cerebral parenchyma.
  • this technique (Triguero et al., 1990, J. Neurochem., 54 (6), 1882-8) is used to distinguish between the fraction of vectors (or conjugates), which has passed through the endothelium and has entered the brain through extracellular space or brain cells, and the remaining fraction associated with endothelial cells.

Abstract

L'invention concerne des dérivés peptidiques (peptides et pseudo-peptides) et leur utilisation comme vecteurs de molécules d'intérêt. L'invention concerne également des conjugués contenant un dérivé peptidique de l'invention lié à une molécule d'intérêt. Les peptides de l'invention sont utilisables pour vectoriser sous forme de conjugués généralement prodrogues des molécules d'intérêt pharmaceutique ou diagnostique, comme par exemple des molécules thérapeutiques, des agents d'imagerie ou de diagnostic, ou des sondes moléculaires, à travers les membranes cellulaires, et notamment pour favoriser leur transport à travers la barrière hémato-encéphalique (BHE).

Description

DERIVES PEPTIDIQUES, LEUR PREPARATION ET LEURS UTILISATIONS
L'invention concerne des dérivés peptidiques (peptides et pseudo-peptides) et leur utilisation comme vecteurs de molécules d'intérêt. L'invention concerne également des conjugués contenant un dérivé peptidique de l'invention lié à une molécule d'intérêt. Les peptides de l'invention sont utilisables notamment pour vectoriser sous forme de conjugués généralement prodrogues des molécules d'intérêt pharmaceutique ou diagnostique, comme par exemple des molécules thérapeutiques, des agents d'imagerie ou de diagnostic, ou des sondes moléculaires, à travers les membranes cellulaires, et notamment pour favoriser leur transport à travers la barrière hémato-encéphalique (BHE).
CONTEXTE DE L'INVENTION
Selon IMS Health, le marché mondial des médicaments destinés à traiter les pathologies du système nerveux central (SNC, cerveau et moelle épinière) était d'environ 70 milliards de dollars en 2007, dont la part des produits issus des technologies de drug delivery est estimé à près de 9 milliards de dollars (Jain, 2008, Jain PharmaBiotech Report, Drug Delivery in CNS disorders). Ainsi, à ce jour la neurologie fait partie des 3 aires thérapeutiques les plus importantes avec le cardiovasculaire et l'oncologie. Même si le nombre de personnes souffrant de troubles et de pathologies du SNC à travers le monde est plus important que celui des personnes atteintes par des maladies cardiovasculaires ou des cancers, la neurologie reste un marché sous-exploité. Ceci s'explique par le fait que 98% des médicaments potentiels destinés à traiter les pathologies du SNC ne traversent pas la barrière hémato-encéphalique ou BHE (Pardridge, 2003, Mol. Interv., 3, 90-105).
En effet, le cerveau est protégé contre les substances potentiellement toxiques par la présence de deux systèmes principaux de barrières physiologiques : la BHE, et la barrière sang-liquide céphalo-rachidien (BS-LCR). La BHE est considérée comme la principale voie pour la captation de ligands plasmatiques. Sa superficie est environ 5000 fois supérieure à celle de la BS-LCR. La longueur totale des vaisseaux sanguins constitutifs de la BHE est d'environ 600 km. Chaque cm3 de cortex cérébral contient l'équivalent d' 1 km de vaisseaux sanguins. La surface totale de la BHE est estimée à 20 m2 {De Boer et al., 2007, Clin. Pharmacokineî., 46 (7), 553-576). Ainsi, l'endothélium cérébral, qui constitue la BHE, représente un obstacle majeur à l'utilisation de médicaments potentiels contre de nombreux troubles du SNC, mais également une surface importante d'échange potentiel entre le sang et le tissu nerveux.
En règle générale, seules quelques petites molécules lipophiles d'environ 450 à 600 Daltons peuvent passer à travers la BHE (soit seulement 2% des candidats- médicaments), c'est-à-dire, passer depuis le sang jusqu'au cerveau. Le poids moléculaire et la taille de nombreux candidats-médicaments, qui montrent des résultats prometteurs dans les études in vitro et chez l'animal pour le traitement des troubles du SNC, sont considérablement plus importants. Ainsi, la plupart des molécules telles que les peptides ou protéines thérapeutiques sont généralement exclues du passage/transport depuis le sang jusqu'au cerveau, en raison de la faible perméabilité transcellulaire des cellules endothéliales des capillaires cérébraux (brain capillary endothelial cells ou BCECs) pour ce type de candidats-médicaments. Les BCECs organisées en vaisseaux sont entourées d'une lame basale, de pieds d'astrocytes, de péricytes et de cellules microgliales et neuronales. L'association étroite des cellules endothéliales avec les pieds astrocytaires est responsable du développement et du maintien des propriétés d'imperméabilité de la BHE à la plupart des molécules, assurant ainsi un contrôle strict et efficace des échanges moléculaires entre le sang et le cerveau afin de maintenir l'homéostasie cérébrale. Les BCECs sont étroitement liées par des jonctions serrées, comparativement aux autres cellules endothéliales d'autres organes, qui sont fenestrées. Ces jonctions serrées empêchent ainsi tout transport para-cellulaire à travers la BHE.
La BHE est considérée comme l'obstacle majeur à franchir dans le développement de nouvelles thérapies destinées à traiter les pathologies cérébrales, et notamment pour l'utilisation de molécules susceptibles de traiter les désordres du SNC (Neuwelt et al., 2008, Lancet Neurol, 7, 84-96). L'une des raisons pouvant expliquer pourquoi aucun traitement efficace n'est actuellement disponible pour les principales pathologies cérébrales (cancer du cerveau, maladies de Parkinson et d'Alzheimer, accidents vasculaires cérébraux (AVC), etc.) est que les développeurs de candidats-médicaments destinés à traiter des pathologies du cerveau, réalisent en interne des programmes de recherche {brain drug-discovery programs) en investissant peu d'efforts dans la problématique du passage de la BHE et dans le ciblage préférentiel du SNC, et notamment du cerveau {brain drug-targeting programs), {Pardridge, 2003, Mol. Interv., 3, 90-105). Un candidat-médicament doit répondre à certaines règles structurales, physico-chimiques, pharmacochimiques et pharmaco logiques afin d'avoir toutes les chances de devenir un médicament pour traiter une pathologie ou un trouble du SNC {Pajouhesh et al, 2005, NeuroRx, 2 (4), 541-553). Ainsi, dans le développement d'un candidat-médicament, la sélectivité et la spécificité (profïlage pharmaco logique) d'une molécule pour sa cible sont essentielles à son activité thérapeutique (efficacité). La biodisponibilité et la toxicité potentielle (profïlage pharmaceutique) d'une molécule sont quant à elles cruciales pour son devenir en tant que médicament. Autrement dit, toute molécule susceptible de devenir un médicament destiné à traiter une pathologie ou un trouble du SNC doit d'une part passer au travers de la BHE, d'autre part, conserver son activité biologique, et présenter de bonnes propriétés de pharmacocinétique (PK), d'absorption, de distribution, de métabolisme et d'excrétion/élimination (ADME) et de pharmacodynamie (PD), avec une faible toxicité (Tox). De fait, la balance hydrophile/lipophile de la molécule en développement est particulièrement difficile à trouver pour les chimistes médicinaux dans cette aire thérapeutique du SNC.
Le problème majeur dans le traitement des troubles et pathologies du SNC réside donc dans le fait que les molécules administrées ne passent pas la BHE et ne peuvent donc pas atteindre leur(s) cible(s) dans le SNC. Les cellules endothéliales des vaisseaux et capillaires du SNC constitutives de la BHE font obstacle aux molécules qui ne peuvent pas passer du sang au tissu nerveux. En effet comme évoqué précédemment, ces cellules endothéliales et les pieds d'astrocytes qui les entourent constituent une barrière physique liée notamment à l'existence de jonctions serrées entre les cellules endothéliales qui limitent/empêchent tout passage/transport par la voie para-cellulaire, et également une barrière physiologique, puisque ces cellules disposent de systèmes d'efflux efficaces qui restreignent tout passage/transport par la voie trans-cellulaire. Ces propriétés limitent donc fortement le passage des substances du plasma sanguin vers l'espace extracellulaire cérébral.
En effet, certaines molécules, qui sont capables de franchir la BHE, sont expulsées activement du cerveau vers le système sanguin par des protéines de transport multidrug résistant (MDR). Ces systèmes d'efflux par transport actif {active efflux transport, AET) contrôlent généralement Γ efflux actif des petites molécules depuis le cerveau vers le système sanguin. Le système d'AET modèle au niveau de la BHE est le transporteur ATP Binding Cassette (ABC) à savoir la glycoprotéine P (P-glycoprotein, P-gp) ; toutefois d'autres systèmes d'AET sont présents au niveau de la BHE tel que la MDR- associated protein 1 (MRP1). La P-gp, qui est principalement localisée à la surface luminale des cellules endothéliales des capillaires cérébraux, est un élément essentiel dans la fonction de barrière physiologique de la BHE prévenant l'entrée dans le cerveau de la plupart des xénobiotiques mais également des candidats-médicaments et autres molécules d'intérêt thérapeutique pouvant être actives dans le SNC.
Une des priorités de la recherche, dans la découverte de molécules destinées à traiter, diagnostiquer ou imager les troubles ou les pathologies cérébrales, est donc de trouver des moyens permettant d'augmenter l'efficacité de passage des substances actives à travers la BHE.
A cet égard, les stratégies de vectorisation de molécules au travers de la BHE, actuellement étudiées et utilisées par les développeurs de candidats-médicaments afin de permettre à une molécule d'intérêt thérapeutique d'atteindre le SNC, peuvent être divisées selon deux principales stratégies : les approches pharmaco logiques et les approches physiologiques (Figure 1), (Pardridge, 2007, Pharm. Res., 24 (9), 1733- 1744 ; De Boer et al, 2007, Clin. Pharmacokinet., 46 (7), 553-576 ; De Boer et al, 2007, Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol., 47, 327-355 ; Jones et al., 2007, Pharm. Res., 24 (9), 1759-1771). Approches invasives
Les approches invasives peuvent être mise en œuvre par injection intra-ventriculaire cérébrale directe de la substance active, injection intracérébrale ou infusion intrathécale, ou par perturbation de la BHE (rupture temporaire de l'intégrité de la BHE).
Le problème principal des approches neurochirurgicales par injection intra- ventriculaire, en dehors des coûts relatifs à l'acte neurochirurgical, est que le médicament n'est pas délivré directement au niveau du parenchyme cérébral mais dans le liquide céphalo-rachidien. L'infusion intra-ventriculaire implique le placement d'un cathéter dans les ventricules (Aird, 1984, Exp. Neurol, 86, 342-358). Cette technique très invasive n'est pas efficace pour le transport de substances actives dans le parenchyme cérébral. En effet, le volume d'écoulement depuis le liquide céphalo- rachidien jusqu'au parenchyme cérébral lors de la délivrance d'un médicament par infusion intra-ventriculaire est régi par une diffusion anormalement lente de sa convection (de son transport), car le cerveau ne possède pas de débit volumique intra- parenchymateux.
De même pour l'injection intracérébrale, la diffusion d'une substance active dans le cerveau décroît très rapidement depuis le site d'injection jusqu'au site de lésion. En effet, la concentration cérébrale d'une substance active diminue de 90% à une distance de 500 μιη de son site d'injection.
L'infusion intrathécale implique le placement d'un cathéter dans le cerveau. Ce cathéter est connecté à une pompe qui délivre la substance active à un débit prédéfini. Du fait que le cerveau soit le seul organe qui n'ait pas de système lymphatique, servant normalement à ramener les fluides extracellulaires jusqu'à la circulation générale, la distribution d'une substance active par infusion intrathécale au niveau cérébral est très lente. Ceci diminue la concentration de la substance active au site de lésion.
De plus, les risques infectieux sont importants au cours de tels actes neurochirurgicaux, notamment de par la présence du cathéter. Dans ces conditions, le confort des patients n'est pas optimal.
La rupture temporaire de l'imperméabilité de la BHE est associée à une ouverture transitoire des jonctions serrées des cellules endothéliales des capillaires cérébraux. C'est le cas des substances vasoactives comme les leukotriènes ou bradykinines {Baba et al, 1991, J. Cereb. Blood Flow Metab., 11, 638-643). Cette stratégie est également invasive et nécessite un accès artériel au niveau de la carotide chez des sujets/patients mis sous sédatifs. Le problème majeur rencontré par la rupture temporaire de l'intégrité de la BHE, outre les dépenses relatives à l'acte du radiologue pour l'accès à la carotide, est que la BHE ne reste ouverte que pendant une courte période de temps, limitant de fait la possibilité de délivrer en chronique un médicament. En outre, la rupture temporaire de la BHE permet aux protéines plasmatiques d'entrer dans le cerveau (alors que ces protéines peuvent être toxiques pour le cerveau) et peut également faciliter l'entrée d'agents infectieux. Ce type de rupture de la BHE peut donc conduire à des perturbations neuropathologiques chroniques et est associé à des risques importants d'infection (Salahuddin et al., 1988, Acta Neuropathol, 76, 1-10).
Approches pharmacologiques de vectorisation
Les stratégies pharmacologiques pour le transport de molécules comprennent la diffusion trans-cellulaire de molécules rendues plus hydrophobes par l'addition de groupements lipidiques ou lipophiles sur la substance active {Transcellular Lipophilic Diffusion ou TLD) voire l'utilisation des liposomes (Zhou et al., 1992, J. Control. Release, 19, 459-486), et le transport par adsorption ionique via des molécules vecteurs chargées positivement ou par cationisation de la molécule active {Adsorptive-Mediated Transport ou AMT).
L'addition d'un groupement lipidique ou lipophile permet la conversion chimique des molécules hydrophiles en molécules plus hydrophobes notamment au travers d'approches prodrogues. Cependant, la synthèse de tels composés conduit à des molécules qui dépassent le seuil de transport optimal pour traverser la BHE, notamment en ce qui concerne le poids moléculaire qui devient supérieur à la limite optimale de 450 Daltons (Pajouhesh et al., 2005, NeuroRx, 2 (4), 541-553). Pour cette même raison, les liposomes ou même les petites vésicules (micelles, etc.) ou nanoparticules (nanosphères, nanocapsules) sont généralement de trop grande taille, pas assez spécifiques pour la BHE, et par conséquent relativement peu efficaces pour le transport de molécules d'intérêt thérapeutique (ou d'agents d'imagerie ou de diagnostic, ou de toute autre molécule comme une sonde moléculaire) à travers la BHE (Levin, 1980, J. Med. Chem., 23, 682-684 ; Schackert et al., 1989, Sélective Cancer Ther., 5, 73-79). De plus, ce type de système vésiculaire présente généralement des effets toxiques non négligeagles au niveau cérébral. Ainsi, les principaux problèmes rencontrés par les technologies de lipidisation sont leur faible spécificité pour cibler et traverser spécifiquement la BHE par rapport à d'autres membranes cellulaires, la diminution des valeurs plasmatiques de l'aire sous la courbe de la drogue (ASC), et leur utilisation généralement limitée à la vectorisation de petites molécules.
Dans les approches d'AMT (addition d'un groupement cationique via couplage covalent ou cationisation directe de la drogue), le principal problème rencontré est la faible spécificité pour cibler et traverser spécifiquement la BHE par rapport à d'autres membranes cellulaires. En effet, ΓΑΜΤ est basée sur des molécules cationiques s'adsorbant sur des cellules dont la membrane est chargée négativement, ce qui est le cas de la plupart des cellules. La diminution des valeurs plasmatiques de l'ASC de la drogue, leur utilisation généralement limitée à la vectorisation de petites molécules, et leur cytotoxicité sont autant de facteurs qui pénalisent l'approche de vectorisation via AMT.
Approches physiologiques de vectorisation
Les stratégies fondées sur des approches physiologiques de vectorisation consistent à exploiter les différents mécanismes de transport naturel au niveau de la BHE. Ces mécanismes de transport actif de molécules au travers de la BHE se font soit via couplage à un substrat spécifique d'un récepteur ou par mimétisme moléculaire avec le substrat spécifique d'un récepteur (Carrier-Mediated Transport ou CMT), soit via couplage ou fusion à un ligand ciblant spécifiquement un récepteur (Receptor-Mediated Transport ou RMT).
A titre d'exemple des molécules comme la L-DOPA (maladie de Parkinson), le melphalan (cancer du cerveau), Γα-méthyl-DOPA (hypertension artérielle) et la gabapentine (épilepsie) passent dans le cerveau par CMT via les large neutral amino- acid transporters 1 et 2 (LAT1 et LAT2), (Pardridge, 2003, Mol. Interv., 3, 90-105). Ces molécules ont des structures chimiques proches de la phénylalanine, l'un des substrats naturels de LAT1/2. Toutefois, les principaux problèmes rencontrés par les approches CMT sont leur grande sélectivité/spécificité pour des conjugués qui imitent/miment étroitement le substrat du récepteur/transporteur endogène, et par conséquent leur utilisation qui reste limitée à la vectorisation de petites molécules.
Le RMT fait appel à un système de transport récepteur-dépendant. La vectorisation est réalisée via des mécanismes d'endocytose par le ciblage des récepteurs/transporteurs endogènes présents au niveau des capillaires cérébraux. Parmi les différents récepteurs humains de la BHE impliqués dans le RMT, on recense notamment: le récepteur à la transferrine (TfR), le récepteur à l'insuline (IR), les récepteurs aux low-density lipoproteins (LDL) permettant le transport du cholestérol dont le récepteur au LDL (LDLR) et les membres de la famille des low-density lipoprotein receptor-related protein (LRP), ou encore le récepteur à Y insulin-like growth factor (IGFR), le récepteur à la toxine diphtérique (DTR) ou heparin binding epidermal growth factor-like growth factor (HB-EGF), ainsi que les scavenger receptors (SCAV-Rs) dont le scavenger receptor class B type I (SR-BI). Dans le RMT, les récepteurs sur la membrane d'une cellule endothéliale de la BHE lient leur ligand, ce qui entraîne l'endocytose du complexe constitué du récepteur/transporteur et de son ligand dans une vésicule qui se forme à la surface de la cellule et pénètre ensuite dans la cellule endothéliale de la BHE. Le complexe ligand/récepteur peut passer au travers de la cellule endothéliale (transcytose), et par conséquent traverser ainsi la BHE pour agir dans le tissu nerveux. Ce processus de RMT ne dépend pas de la taille de ce qui est endocyté. Ainsi, le RMT est un mécanisme qui permet le transport depuis le sang jusque dans le cerveau de molécules telles que l'insuline, des protéines transporteuses de fer, le cholestérol, divers dérivés peptidiques et protéines, etc. Par exemple, la transferrine est utilisée comme vecteur, ligand du TfR présent sur la BHE {Jefferies et al, 1984, Nature, 312, 162-163 ; Friden ét al, 1983, Science, 259, 373-377 ; Friden, 1994, Neurosurgery, 35, 294-298), et la molécule à transporter (substance active) est couplée à la transferrine (vecteur ligand). Bien que cette stratégie de vectorisation à l'aide d'une macromolécule permette une augmentation du passage des molécules d'intérêt conjuguées à travers la BHE, elle présente quelques inconvénients. D'abord, le couplage de la molécule au vecteur se fait généralement par des méthodes d'expression génétique (fusion) limitant ainsi le nombre de molécules à transporter à seulement des polypeptides ou des protéines. Ensuite, le système de couplage de la molécule au vecteur est assez complexe, un couplage chimique ou biochimique traditionnel ne permet pas d'obtenir des systèmes macro moléculaires bien définis d'un point de vue structurel et moléculaire. De plus, la compétition potentielle entre les conjugués et les ligands endogènes pour le récepteur ciblé peut conduire soit à une inhibition du processus physiologique de RMT, soit à une diminution de la concentration de ligands endogènes nécessaire pour le bon fonctionnement du cerveau. Les récepteurs RMT sont impliqués dans des processus de signalisation cellulaire au niveau cérébral et les conjugués pourraient potentiellement interférer avec ces processus.
La demande de brevet internationale n° WO2010/046588 décrit pour la première fois des peptides ou pseudo-peptides qui lient le LDLR humain et sont capables de véhiculer à travers la BHE des substances pouvant être de masse et/ou de volume important(s).
La présente demande concerne de nouveaux peptides liant le LDLR humain, optimisés pour le transport de molécules.
RESUME DE L'INVENTION
La présente invention fournit des peptides ou pseudo-peptides optimisés capables de véhiculer à travers les membranes cellulaires, et plus spécifiquement la BHE, des substances pouvant être de masse et/ou de volume important(s). L'invention permet ainsi d'améliorer la biodistribution voire la biodisponibilité de molécules d'intérêt, et notamment d'améliorer leur accès (ciblage) au SNC.
Dans la demande WO2010/046588, les inventeurs ont mis au point des dérivés peptidiques capables de lier le LDLR humain. Les inventeurs ont montré que ces dérivés étaient capables de traverser la BHE. Les inventeurs ont également montré que ces dérivés permettaient de véhiculer, dans les cellules de la BHE, des molécules d'intérêt thérapeutique ou diagnostique.
Poursuivant leurs recherches, les inventeurs sont parvenus à concevoir et tester de nouveaux peptides présentant des propriétés avantageuses pour le transport de molécules. Ces nouveaux peptides, capables de lier le LDLR sans compétition avec le ligand naturel, et donc sans interférence avec le transport du LDL endogène, représentent de nouveaux produits (vecteurs) particulièrement avantageux pour la conception et la vectorisation de médicaments ou d'agents de diagnostic ou d'imagerie, notamment pour atteindre le SNC.
Un objet de l'invention réside ainsi dans un peptide ou pseudo-peptide, caractérisé en ce qu'il répond à la formule générale (I) suivante :
Al-Met-A2-Arg-Leu-Arg-A3-Cys (I) dans laquelle Al désigne la cystéine ou un de ses analogues ou isostères, A2 désigne la proline ou un de ses analogues ou isostères, et A3 désigne la glycine ou un des ses analogues ou isostères.
Selon des modes préférés, Al désigne la cystéine (Cys) ou un de ses analogues choisi parmi la (D)-cystéine, la Pénicillamine (Pen) et la (D)-pénicillamine ((D)-pen) ; A2 désigne la proline (Pro) ou un de ses analogues choisi parmi l'acide pipécolique (Pip) et l'acide thiazolidine-4-carboxylique (Thz) ; et/ou A3 désigne la glycine (Gly), ou la sarcosine (Sar).
Un objet préféré de l'invention réside dans un peptide ou pseudo-peptide de formule générale (Γ) suivante :
Al -Met-A2-Arg-Leu-Arg-Gly-Cys (F) dans laquelle Al désigne la cystéine ou un de ses analogues choisi de préférence parmi (D)-cys, Pen et (D)-pen ; et A2 désigne la proline ou un de ses analogues choisi de préférence parmi Pip et Thz.
Un autre objet particulier de l'invention réside dans un peptide ou pseudo-peptide de formule générale (I") suivante : Al-Met-A2-Arg-Leu-Arg-Ala-Cys (Γ) dans laquelle Al désigne la cystéine ou un de ses analogues choisi de préférence parmi (D)-cys, Pen et (D)-pen ; et A2 désigne la proline ou un de ses analogues choisi de préférence parmi Pip et Thz. L'alanine (Ala) peut être de configuration L ou D.
Les peptides de l'invention présentent avantageusement la capacité de lier le récepteur humain aux LDL (hLDLR), avec une affinité élevée. Ils possèdent par ailleurs une taille réduite, typiquement inférieure à 10 acides aminés, ce qui est particulièrement avantageux. Des exemples particuliers de tels peptides sont notamment les peptides de séquences SEQ ID NOs : 1 à 10.
Un autre objet de l'invention concerne l'utilisation d'un peptide ou pseudo-peptide tel que défini ci-avant pour la préparation d'une composition pharmaceutique ou diagnostique pour vectoriser une substance active ou d'intérêt en diagnostic, imagerie ou thérapie.
Un autre objet de l'invention concerne l'utilisation d'un peptide ou pseudo-peptide tel que défini ci-avant pour augmenter l'activité biologique ou diminuer la toxicité d'une substance active ou d'intérêt à laquelle il est couplé.
Un autre objet de l'invention concerne un peptide ou pseudo-peptide tel que défini ci- avant pour son utilisation pour vectoriser une substance active ou d'intérêt en diagnostic, imagerie ou thérapie.
Un autre objet de l'invention concerne un peptide ou pseudo-peptide tel que défini ci- avant pour son utilisation pour augmenter l'activité biologique ou diminuer la toxicité d'une substance active ou d'intérêt à laquelle il est couplé.
L'invention a encore pour objet tout composé conjugué de formule (II) suivante :
VxDy (II) dans laquelle V représente un peptide ou pseudo-peptide tel que défini ci-avant, D représente une substance active ou d'intérêt, et x et y sont des nombres entiers compris entre 1 et 5.
L'invention concerne également tout composé conjugué de formule (III) suivante :
VxLzDy (III)
dans laquelle V représente un peptide ou pseudo-peptide tel que défini ci-avant, L représente un bras espaceur, D représente une substance active ou d'intérêt, x et y sont des nombres entiers compris entre 1 et 5 et z est un entier compris entre 1 et 10.
Un autre objet de l'invention concerne une composition pharmaceutique comprenant au moins un composé conjugué tel que défini ci-avant et un ou des excipients pharmaceutiquement acceptables.
Un autre objet de l'invention concerne une composition diagnostique caractérisée en ce qu'elle comprend un agent de diagnostic ou d'imagerie médicale constitué d'un composé conjugué tel que défini ci-avant.
Un autre objet de l'invention concerne une méthode pour améliorer ou permettre le passage d'une molécule à travers la BHE, comprenant le couplage de cette molécule à un peptide ou pseudo-peptide tel que défini ci-dessus.
Un autre objet de l'invention réside dans une méthode améliorée de traitement d'une pathologie chez un sujet par un médicament, l'amélioration consistant à coupler ce médicament à un peptide ou pseudo-peptide tel que défini ci-dessus.
L'invention est utilisable chez tout mammifère, notamment tout être humain. LEGENDE DES FIGURES
Figure 1
Schéma illustrant les différents modes de passage de molécules naturelles ou pharmaco logiques à travers la BHE, adapté d'après Abbott et Romero, 1996, Mol. Med. Today, 2 (3), 106-113.
Figure 2
Schéma comparatif de la synthèse en tandem et de la synthèse via un linker d'un conjugué vecteur/molécule d'intérêt thérapeutique.
Figure 3
A - Schéma du plasmide utilisé pour cloner les hLDLR et mLDLR.
B - Schéma représentant la protéine de fusion exprimée par les cellules transfectées.
Figure 4
Western blot réalisé sur des lignées cellulaires CHO exprimant de manière constitutive les protéines de fusion hLDLR-GFP ou GFP (utilisée comme contrôle). Une bande de 190 kDa correspondant à la taille de la protéine de fusion hLDLR-GFP est détectée avec l'anticorps anti- hLDLR.
Figure 5
Immunocytochimie sur cellules CHO non perméabilisées, exprimant de manière stable soit A - la GFP seule (contrôle), soit B - la construction hLDLR-GFP. Les noyaux cellulaires sont marqués au Hoechst (bleu, Al et Bl). La fluorescence de la GFP est visible en vert (A2 et B2), celle du marquage du domaine extracellulaire du hLDLR par l'anticorps anti-hLDLR est visible dans le rouge (A3 et B3) et la superposition des marquages rouges et verts est visible en jaune/orange (A4 et B4). Noter que seules les cellules transfectées de manière stable avec la construction hLDLR-GFP expriment le récepteur à la membrane (B3). Figure 6
A - Cellules de la lignée CHO-hLDLR-GFP exprimant le hLDLR-GFP (vert) incubées avec du Dil-LDL (rouge), la superposition des marquages rouges et vert est visible en jaune/orange, noter le fort marquage des cellules.
B - Cellules d'une lignée CHO-TfR-GFP exprimant le hTfR-GFP (vert) incubées avec du Dil-LDL (rouge) : absence de liaison et d'endocytose du Dil-LDL.
C - Cellules de la lignée CHO-hLDLR-GFP exprimant le hLDLR-GFP (vert) incubées avec de la transferrine couplée à du Texas Red (rouge) : absence de liaison et d'endocytose du ligand Tf.
Noter la différence d'intensité de marquage entre A d'une part, B et C d'autre part, où seul le marquage des récepteurs hTfr et hLDLR fusionnés à la GFP est détecté.
Figure 7
Schéma général des peptides synthétisés conjugués à la rhodamine ou au S-Tag, avec bras espaceur en C-terminal (C-term).
DESCRIPTION DETAILLEE DE L'INVENTION
L'invention concerne des dérivés peptidiques capables de lier le LDLR humain et leur utilisation dans le domaine pharmaceutique, notamment pour transporter, dans les cellules de la BHE, des molécules d'intérêt thérapeutique ou diagnostique.
Le LDLR humain est une protéine transmembranaire de 839 acides aminés comprenant trois régions : la région extracellulaire (1-768), la région transmembranaire (768-790) et la région cytoplasmique (790-839). La région extracellulaire est divisée en deux sous- régions : celle de liaison des LDL (1-322) et celle en dehors de la zone de liaison des LDL (322-768) (voir WO2007/014992). Le cerveau a un besoin important de LDL pour son bon fonctionnement. Les ligands naturels au LDLR sont le LDL et plus particulièrement l'apo lipoprotéine B (ApoB) et l'apo lipoprotéine E (ApoE) constitutives des particules de LDL permettant ainsi le transport de cholestérol, contenu dans ces particules, au travers des membranes cellulaires et plus particulièrement de la BHE.
Il a ainsi été démontré que le LDLR permettait la transcytose de particules de LDL au travers de la BHE (Dehouck et al., 1997, J. Cell Biol, 138 (4), 877-889), via un processus de RMT, dans des vésicules endosomiques particulières qui empêchent la fusion au lysosome. Ces lipoprotéines, ayant passé la BHE par transcytose, sont alors captées par les neurones et/ou les astrocytes (Spencer et al., 2007, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 104 (18), 7594-7599). Cette propriété a été utilisée pour vectoriser des molécules d'intérêt thérapeutique par des nanoparticules sur lesquelles sont conjuguées des apolipoprotéines entières (constitutives du LDL) (Kreuter et al, 2007, J. Control. Release, 118, 54-58). Dans cette étude, toutefois, une apo lipoprotéine entière a été utilisée, et sous forme couplée à une nanoparticule afin de mimer la structure de la particule LDL.
La demande de brevet internationale n° WO2010/046588 décrit pour la première fois des peptides ou pseudo-peptides qui lient le LDLR humain et sont capables de véhiculer à travers la BHE des substances pouvant être de masse et/ou volume importants.
La présente demande concerne de nouveaux peptides liant le LDLR humain, optimisés pour le transport de molécules. Les peptides ou pseudo-peptides vecteurs peuvent être aisément synthétisés par voie chimique, et la plupart des molécules d'intérêt thérapeutique, ou des agents d'imagerie ou de diagnostic peuvent être couplées au peptide ou pseudo-peptide vecteur de façon simple et efficace au travers d'une stratégie prodrogue via un bras espaceur (synthèse via linker) ou par couplage direct (synthèse en tandem) entre les deux entités (Figure 2). Les peptides et pseudo-peptides de l'invention sont conçus pour adopter une configuration cyclique, et donc plus résistante à la protéolyse. Par ailleurs, les peptides et pseudo-peptides de l'invention se lient au LDLR sans compétition avec le ligand naturel. Les peptides ou pseudo-peptides de l'invention peuvent être utilisés comme vecteurs de molécules d'intérêt thérapeutique, ou d'agents d'imagerie ou de diagnostic, ou de toute autre molécule comme une sonde moléculaire, dans le traitement, l'imagerie et/ou le diagnostic de pathologies neurologiques, ainsi que de pathologies infectieuses ou cancéreuses cérébrales ou non.
Les peptides ou pseudo-peptides décrits dans la présente invention possèdent la capacité de cibler des récepteurs/transporteurs cellulaires, des types cellulaires particuliers et/ou de passer les membranes cellulaires notamment celles des barrières physiologiques du cerveau et plus particulièrement la BHE ou la barrière sang-rétine (BSR).
Les peptides ou pseudo-peptides décrits dans la présente invention possèdent la capacité de cibler des récepteurs/transporteurs cellulaires, des types cellulaires particuliers, notamment des cellules cancéreuses, du tissu nerveux ou non et/ou de passer les membranes cellulaires notamment celles des barrières physiologiques du SNC et plus particulièrement la barrière hémato-tumorale (BHT) au niveau des tumeurs du tissu nerveux.
Les peptides ou pseudo-peptides décrits dans la présente invention possèdent la capacité de cibler des récepteurs/transporteurs cellulaires, des types cellulaires particuliers et/ou de passer les membranes cellulaires, notamment celles des barrières physiologiques du SNC, pour traiter plus particulièrement des pathologies infectieuses cérébrales ou autres, de type bactériennes, virales, parasitaires ou fongiques.
Les peptides ou pseudo-peptides décrits dans la présente invention possèdent la capacité de se fixer sur un LDLR murin ou humain de la membrane cellulaire et de traverser ladite membrane grâce à ce récepteur par transcytose.
Les peptides ou pseudo-peptides décrits dans la présente invention possèdent la capacité de se fixer sur le LDLR à la surface des membranes cellulaires des barrières physiologiques du cerveau de type murin et humain et de traverser ladite barrière physiologique grâce au LDLR par RMT.
Un objet de l'invention concerne ainsi des peptide ou pseudo-peptides, caractérisés en ce qu'ils répondent à la formule générale (I) suivante :
Al-Met-A2-Arg-Leu-Arg-A3-Cys (I) dans laquelle :
- Al désigne la cystéine ou un de ses analogues ou isostères,
- A2 désigne la proline ou un de ses analogues ou isostères, et
- A3 désigne la glycine ou un des ses analogues ou isostères.
Plus particulièrement, le group Al désigne un résidu choisi parmi la cystéine (Cys, C), de configuration D ou L, ou un dérivé de celle-ci choisi parmi l'acide 2-amino-3- mercaptopropanoïque et ses dérivés S-substitués, la S-acétylcystéine ou acide 2-amino- 3-(acétylthio)propanoïque, la sélénocystéine (Sec, U) ou acide 2-amino-3- (séléno)propanoïque, le cystéinol, l'acide 3-mercaptopropanoïque (Mpa), ou la pénicillamine (Pen), de configuration L ou D.
Dans un mode préféré, le groupe Al est choisi parmi la cystéine ou la pénicillamine, de configuration L ou D.
Le group A2 désigne plus préférentiellement un résidu choisi parmi la proline (Pro, P) ou acide pyrolidine-2-carboxylique, l'homoproline ou acide 2-(2- pyrrolidinyl)éthanoïque, la 3-hydroxyproline (3Hyp), la 4-hydroxyproline (4Hyp), la 3- méthylproline, la 3,4-déshydroproline, la 3,4-méthanoproline, la 4-aminoproline, la 4- oxoproline, la thioproline ou acide thiazolidine-4-carboxylique (Thz), l'acide 2- oxothiazolidine-4-carboxylique, l'acide indoline-2-carboxylique (Idc), l'acide pipécolique (Pip) ou acide piperidine-2-carboxylique, l'acide nipéco tique (Nip) ou acide piperidine-3-carboxylique, l'acide 4-oxopipécolique, l'acide 4-hydroxypipécolique, l'acide amino-1 -cyclo hexane carboxylique, le prolinol.
Dans un mode préféré, le groupe A2 est choisi parmi la proline, l'acide pipécolique (Pip) ou l'acide thiazolidine-4-carboxylique (Thz).
Le group A3 désigne plus préférentiellement un résidu choisi parmi la glycine (Gly, G) ou acide 2-aminoéthanoïque, la sarcosine (Sar) ou N-méthylglycine (MeGly), la N- éthylglycine (EtGly), l'allylglycine (allylGly) ou acide 2-aminopent-4-énoïque, la 2- cyclopentylglycine (Cpg), la 2-cyclohexylglycine (Chg), la 2,2-dipropylglycine (Dpg), la 2-(3-indolyl)glycine (IndGly), la 2-indanylglycine (Igl), la 2-néopentylglycine (NptGly), la 2-octylglycine (OctGly), la 2-propargylglycine (Pra) ou acide 2-amino pent-4-ynoïque, la 2-phénylglycine (Phg), la 2-(4-chlorophényl)glycine, l'azaglycine (AzGly), ou le glycinol ou 2-aminoéthanol.
Dans un mode préféré, le groupe A3 est choisi parmi la glycine et la sarcosine.
Parmi les peptides ou pseudo-peptides de formule (I), on préfère tout particulièrement les peptides dans lesquels le group A3 est la glycine. Ainsi, un objet particulier de l'invention concerne des peptides de formule (Γ) suivante :
Al -Met-A2-Arg-Leu-Arg-Gly-Cys (F) dans laquelle Al désigne la cystéine ou un de ses analogues ou isostères, de préférence Al désigne Cys, (D)-cys, Pen, ou (D)-pen ; et A2 désigne un analogue de la proline, de préférence A2 désigne Pip ou Thz.
Des exemples particuliers de peptides selon l'invention sont décrits ci-dessous :
SEQ ID NO : 1, (D)-cys-Met-Pip-Arg-Leu-Arg-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 2, (D)-pen-Met-Pip-Arg-Leu-Arg-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 3, Pen-Met-Pip-Arg-Leu-Arg-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 4, (D)-cys-Met-Thz-Arg-Leu-Arg-Gly-Cys ; SEQ ID NO : 5, (D)-pen-Met-Thz-Arg-Leu-Arg-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 6, Pen-Met-Thz-Arg-Leu-Arg-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 7, (D)-cys-Met-Thz-Arg-Leu-Arg-Sar-Cys ;
SEQ ID NO : 8, (D)-pen-Met-Thz-Arg-Leu-Arg-Sar-Cys ;
SEQ ID NO : 9, Pen-Met-Thz-Arg-Leu-Arg-Sar-Cys ;
SEQ ID NO : 10, (D)-cys-Met-Pro-Arg-Leu-Arg-(D)-ala-Cys.
Les résultats obtenus par le demandeur montrent que les peptides de l'invention possèdent une affinité améliorée pour le LDLR. Ainsi, par rapport au peptide de référence SEQ ID NO : 17, les peptides testés de formule (I) présentent tous une affinité améliorée, comme cela ressort du Tableau 1 (EXEMPLE III). Ces résultats sont d'autant plus remarquables que la modification d'autres résidus dans la séquence, comme par exemple le remplacement des résidus arginine, conduit à une chute substantielle d'affinité (voir peptides de référence SEQ ID NO : 11-16).
SEQ ID NO : 11, (D)-Cys-Met-Pro-hArg-Leu-Arg-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 12, (D)-Cys-Met-Pro-Agb-Leu-Arg-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 13, (D)-Cys-Met-Pro-Agp-Leu-Arg-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 14, (D)-Cys-Met-Pro-Cit-Leu-Arg-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 15, (D)-Cys-Met-Pro-Arg-Leu-Cit-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 16, (D)-Cys-Met-Pro-Arg-Leu-Arg(N02)-Gly-Cys ;
SEQ ID NO : 17, (D)-Cys-Met-Pro-Arg-Leu-Arg-Gly-Cys.
Ces résultats sont également particulièrement remarquables compte tenu de la taille réduite des peptides (les peptides ci-dessus comportent 8 acides aminés), qui constitue un atout supplémentaire dans leur utilisation industrielle.
Comme indiqué précédemment, les peptides ou pseudo-peptides cycliques de l'invention peuvent comprendre des liaisons peptidiques, non-peptidiques et/ou peptidiques modifiées. Dans un mode préféré, les peptides ou pseudo-peptides comprennent au moins une liaison peptidomimétique, choisie de préférence parmi l'intercalation d'un groupe méthylène (-CH2-) ou phosphate (-P02-), aminé secondaire (-NH-) ou oxygène (-0-), des alpha-azapeptides, alpha-alkylpeptides, N-alkylpeptides, phosphonamidates, depsipeptides, hydroxyméthylènes, hydroxyéthylènes, dihydroxyéthylènes, hydroxyéthy lamines, retro-inverso, méthylèneoxy, cétométhylène, esters, phosphinates, phosphiniques, phosphonamides, analogues carba.
Par ailleurs, dans un mode particulier de mise en œuvre, les peptides ou pseudo-peptides de l'invention comprennent une fonction N-term et/ou C-term respectivement protégée, par exemple, par une acylation, ou par une amidation ou une estérification.
Les peptides ou pseudo-peptides de l'invention peuvent être synthétisés par toute technique connue en soi de l'homme du métier (synthèse chimique, biologique, génétique, etc.). Ils peuvent être conservés tels quels, ou formulés en présence d'une substance d'intérêt ou de tout excipient acceptable.
Pour les synthèses chimiques, sont utilisés des appareils commerciaux permettant d'incorporer aussi bien des acides aminés naturels que non naturels, tels que les énantiomères D et des résidus ayant des chaînes latérales avec des hydrophobicités et des encombrements stériques différents de ceux de leurs homologues naturels (acides aminés dits exotiques c'est-à-dire non codés), ou une séquence peptidique contenant une ou plusieurs liaisons peptidomimétiques pouvant inclure notamment l'intercalation d'un groupe méthylène (-CH2-) ou phosphate (-P02-), d'une aminé secondaire (-NH-) ou d'un oxygène (-0-), d'un N-alkylpeptide.
Au cours de la synthèse, il est possible d'introduire diverses modifications chimiques, comme par exemple, mettre en N-term, C-term ou sur une chaîne latérale un dérivé lipidique (ou phospho lipidique) ou un constituant d'un liposome ou d'une nanoparticule, de façon à pouvoir incorporer le peptide ou pseudo-peptide de l'invention au sein d'une membrane lipidique telle que celle d'un liposome constitué d'une ou plusieurs couches ou bicouches lipidiques, ou d'une nanoparticule. On peut également obtenir les peptides de l'invention, ou partie de ceux-ci de nature protéique à partir d'une séquence d'acide nucléique codant pour celui-ci. La présente invention a aussi pour objet une molécule d'acide nucléique comprenant, ou constituée par, une séquence nucléique codant pour un peptide tel que défini ci-avant. Plus particulièrement l'invention concerne une molécule d'acide nucléique comprenant au moins une séquence codant pour un peptide de formule générale (I). Ces séquences d'acides nucléiques peuvent être des ADN ou ARN et être associées à des séquences de contrôle et/ou être insérées dans des vecteurs d'expression biologiques.
Le vecteur d'expression biologique utilisé est choisi en fonction de l'hôte dans lequel il sera transféré. Il peut s'agir par exemple d'un plasmide, cosmide, virus, etc. Ces acides nucléiques et vecteurs d'expression biologiques constituent des objets particuliers de l'invention, et sont utiles pour produire les peptides de l'invention, ou partie de ceux-ci de nature protéique, dans un hôte cellulaire. La préparation de ces vecteurs d'expression biologiques ainsi que la production ou l'expression dans un hôte des peptides peuvent être réalisées par les techniques de biologie moléculaire et de génie génétique bien connues de l'homme de l'art.
Un autre objet de l'invention réside dans l'utilisation d'un peptide ou pseudo-peptide cyclique tel que défini précédemment, comme vecteur pour le transfert/transport de molécules d'intérêt thérapeutique, ou d'agents d'imagerie ou de diagnostic, ou de toute autre molécule.
Un autre objet de l'invention réside dans l'utilisation d'un peptide ou pseudo-peptide cyclique tel que défini précédemment pour la préparation d'un médicament capable de traverser la BHE.
Un autre objet de l'invention concerne une méthode pour permettre ou améliorer le passage d'une molécule à travers la BHE, comprenant le couplage de la molécule à un peptide ou pseudo-peptide de l'invention. Ainsi, un objet particulier de l'invention concerne un composé conjugué de formule (II) suivante :
VxDy (II)
dans laquelle V représente un peptide ou pseudo-peptide de l'invention, D représente une substance active ou d'intérêt, et x et y sont des nombres entiers compris entre 1 et 5. Dans un mode particulier, x et y sont égal à 1 , x est supérieur à y, ou y est supérieur à x.
Un autre objet particulier de l'invention concerne un composé conjugué de formule (III) suivante :
VxLzDy (III)
dans laquelle V représente un peptide ou pseudo-peptide de l'invention, L représente un bras espaceur, D représente une substance active ou d'intérêt, x et y sont des nombres entiers compris entre 1 et 5 et z est un entier compris entre 1 et 10. Dans un mode particulier, x=z=y= 1 ou x=z>y ou y=z>x ou z>x>y .
La substance active ou d'intérêt peut être toute molécule d'intérêt pharmaceutique, notamment thérapeutique, un agent de diagnostic ou d'imagerie médicale, ou une sonde moléculaire. Il peut s'agir en particulier de toute entité chimique ayant un intérêt biologique telle qu'une petite molécule chimique (antibiotique, antiviral, immuno- modulateur, anticancéreux, anti-inflammatoire, etc.), un peptide ou polypeptide, une protéine (enzyme, hormone, cytokine, apolipoprotéine, facteur de croissance, antigène, anticorps ou une partie d'anticorps), un acide nucléique (acide ribonucléique ou acide désoxyribonucléique d'origine humaine, virale, animale, eucaryote ou procaryote, végétale, synthétique, etc., pouvant avoir une taille variable, allant du simple oligonucléotide au génome ou fragment de génome), un génome viral ou un plasmide, un ribozyme, un marqueur ou traceur. De manière générale, la « substance d'intérêt » peut être tout principe actif de médicament, qu'il s'agisse d'un produit chimique, biochimique, naturel ou synthétique. L'expression « petite molécule chimique » désigne une molécule d'intérêt pharmaceutique ayant un poids moléculaire de 1000 Daltons au maximum, typiquement compris entre 300 et 700 Daltons. Un autre objet particulier de l'invention concerne un composé de formule (IV) suivante :
VxLz (IV)
dans laquelle V représente un peptide ou pseudo-peptide de l'invention, L représente un bras espaceur, x est un nombre entier compris entre 1 et 5 et z est un entier compris entre 1 et 10. Dans un mode particulier, x=z=l ou z>x.
Dans les composés conjugués de l'invention, le couplage entre V et D, ou entre V et L d'une part et entre L et D d'autre part, peut être réalisé par tout moyen de liaison acceptable compte tenu de la nature chimique, de l'encombrement et du nombre de substance(s) active(s) et de peptide(s) ou pseudo-peptide(s) associés. Le couplage peut ainsi être réalisé par une ou plusieurs liaisons covalentes, ioniques, hydrogènes, hydrophobes ou de Van der Waals, clivables ou non en milieu physiologique ou à l'intérieur de cellules. Par ailleurs, D peut être couplé à V, le cas échéant via L, au niveau de différents groupes réactifs, et notamment d'une ou des extrémités N-term et/ou C-term de V et/ou au niveau d'un ou plusieurs groupements réactifs portés par les chaînes latérales des acides aminés naturels ou non, constitutifs de V.
Le couplage peut être effectué en n'importe quel site du peptide ou pseudo-peptide, dans lequel des groupements fonctionnels tels que -OH, -SH, -C02H, -NH2, -S03H, - P02H sont naturellement présents ou ont été introduits. Ainsi, une molécule d'intérêt thérapeutique, ou un agent de diagnostic (ou d'imagerie médicale) ou toute autre molécule comme une sonde moléculaire peut être liée (couplée) au peptide ou pseudo- peptide vecteur de l'invention par une liaison covalente soit au niveau des extrémités N- term ou C-term, soit au niveau des groupements réactifs portés par les chaînes latérales des acides aminés naturels ou non, de cette séquence peptidique.
De même, le couplage peut être effectué en n'importe quel site de la substance active ou d'intérêt (molécule d'intérêt thérapeutique, agent de diagnostic ou d'imagerie médicale, toute autre molécule comme une sonde moléculaire), où par exemple des groupements fonctionnels tels que -OH, -SH, -C02H, -NH2, -SO3H, -P02H sont naturellement présents ou ont été introduits. Il est préférable que l'interaction soit suffisamment solide pour que le peptide ne se dissocie pas de la substance active avant d'avoir atteint son site d'action. Pour cette raison, le couplage préféré selon l'invention est un couplage covalent, mais il pourrait cependant s'agir d'un couplage non covalent. La substance d'intérêt peut être couplée directement au peptide (synthèse en tandem) soit à l'une de ces extrémités terminales (N-term ou C-term), soit au niveau d'une chaîne latérale d'un des acides aminés constitutifs de la séquence (Majumdar and Siahaan, Med Res Rev., Epub ahead of print). La substance d'intérêt peut aussi être couplée indirectement par le biais d'un bras de liaison ou bras espaceur (synthèse via linker), soit à l'une des extrémités terminales des peptides, soit au niveau d'une chaîne latérale d'un des acides aminés constitutifs de la séquence (Figure 2). On peut citer comme moyen de couplage chimique covalent, faisant appel ou pas à un bras espaceur, ceux choisis parmi des agents bi- ou multifonctionnels contenant des groupements alkyle, aryle ou peptidique par des esters, aldéhydes ou acides d'alkyle ou d'aryle, des groupements anhydrides, sulfhydriles ou carboxyles, des groupes dérivés du bromure ou chlorure de cyanogène, du carbonyldiimidazole, des esters de succinimide ou des halogénures sulfoniques.
A cet égard, un objet de l'invention réside également dans un procédé de préparation d'un composé conjugué tel que défini ci-avant, caractérisé en ce qu'il comprend une étape de couplage entre un peptide ou pseudo-peptide V et une substance D, le cas échéant via L, de préférence par voie chimique, biochimique, enzymatique, ou par génie génétique.
Un autre objet de l'invention concerne une composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un composé conjugué tel que défini ci-avant et un ou des excipients pharmaceutiquement acceptables.
Un autre objet de l'invention concerne une composition diagnostique caractérisée en ce qu'elle comprend un agent de diagnostic ou d'imagerie médicale constitué d'un composé conjugué tel que défini ci-avant. Le conjugué peut être utilisé sous forme de tout sel pharmaceutiquement acceptable. Par sels pharmaceutiquement acceptables, on entend par exemple et de manière non limitative des sels d'addition basique ou acide pharmaceutiquement acceptables, hydrates, esters, solvates, précurseurs, métabolites ou stéréoisomères, desdits vecteurs ou conjugués chargés avec au moins une substance d'intérêt.
L'expression sels pharmaceutiquement acceptables se réfère aux sels non toxiques, qui peuvent être généralement préparés en faisant réagir une base libre avec un acide organique ou inorganique convenable. Ces sels conservent l'efficacité biologique et les propriétés des bases libres. Comme exemples représentatifs de tels sels, on peut citer les sels hydrosolubles et hydroinsolubles, tels que les acétates, N-méthylglucamine ammonium, ansonates (4,4-diaminostilbènes-2,2'-disulfonates), benzènesulfonates, benzonates, bicarbonates, bisulfates, bitartrates, borates, bromhydrates, bromures, buryrates, camsylates, carbonates, chlorhydrates, chlorures, citrates, clavulariates, dichlorhydrates, diphosphates, édétates, édétates de calcium, édisylates, estolates, ésylates, fumarates, gluceptates, gluconates, glutamates, glycolylarsanylates, hexafluorophosphates, hexylrésorcinates, hydrabamines, hydroxynaphtoates, iodures, isothionates, lactates, lactobionates, laurates, malates, maléates, mandélates, mésylates, méthylbromures, méthylnitrates, méthylsulfates, mucates, napsylates, nitrates, 3- hydroxy-2-naphtoates, oléates, oxalates, palmitates, pamoates (l,l-méthylène-bis-2- hydroxy-3-naphtoates, ou emboates), pantothénates, phosphates, picrates, polygalacturonates, propionates, p-toluènesulfonates, salicylates, stéarates, subacétates, succinates, sulfates, sulfosalicylates, suramates, tannâtes, tartrates, téoclates, tosylates, triéthiodides, trifluoroacétates, valérates.
Les compositions de l'invention comprennent avantageusement un véhicule ou excipient pharmaceutiquement acceptable. Le véhicule pharmaceutiquement acceptable peut être choisi parmi les véhicules utilisés de manière classique selon chacun des modes d'administration. En fonction du mode d'administration prévu, les composés peuvent être sous forme solide, semi-solide ou liquide. Pour les compositions solides, telles que comprimés, pilules, poudres ou granulés à l'état libre ou inclus dans des gélules, la substance active peut être combinée avec : a) des diluants, par exemple le lactose, le dextrose, le sucrose, le mannitol, le sorbitol, la cellulose et/ou la glycine ; b) des lubrifiants, par exemple la silice, le talc, l'acide stéarique, son sel de magnésium ou de calcium et/ou le polyéthylène glycol ; c) des liants, par exemple le silicate de magnésium et d'aluminium, la pâte d'amidon, la gélatine, la gomme adragante, la méthylcellulose, la carboxyméthylcellulose sodique et/ou la polyvinylpyrrolidone ; d) des désintégrants, par exemple l'amidon, l'agar, l'acide alginique ou son sel de sodium, ou des mélanges effervescents ; et/ou e) des absorbants, colorants, aromatisants et édulcorants. Les excipients peuvent être par exemple du mannitol, lactose, amidon, stéarate de magnésium, saccharine sodique, talc, cellulose, glucose, sucrose, carbonate de magnésium et analogues de qualité pharmaceutique. Pour les compositions semi- solides, telles que suppositoires, l'excipient peut, par exemple, être une émulsion ou suspension grasse, ou à base de polyalkylène glycol, tel que le polypropylène glycol. Les compositions liquides, en particulier injectables ou à inclure dans une capsule molle, peuvent être préparées par exemple par dissolution, dispersion, etc. de la substance active dans un solvant pharmaceutiquement pur tel que, par exemple, l'eau, le sérum physiologique, le dextrose aqueux, le glycérol, l'éthanol, une huile et ses analogues.
Les compositions ou conjugués de l'invention peuvent être administrés par toute voie adaptée et, de manière non limitative par la voie parentérale, comme par exemple, sous forme de préparations injectables par voie sous-cutanée, intraveineuse ou intramusculaire ; par voie orale (ou per os), comme par exemple, sous forme de comprimés enrobés ou non, de gélules, de poudres, de granulés, de suspensions ou de solutions orales (une telle forme pour l'administration par voie orale peut être soit à libération immédiate, soit à libération prolongée ou retardée) ; - voie rectale, comme par exemple, sous forme de suppositoires ; - voie topique, notamment transdermique, comme par exemple, sous la forme de patchs, de pommades ou de gels ; - voie intra- nasale, comme par exemple sous forme d'aérosols et de sprays ; - voie perlinguale ; - voie intraoculaire.
Les compositions pharmaceutiques comprennent typiquement une dose efficace d'un peptide ou pseudo-peptide ou conjugué de l'invention. Une « dose thérapeutiquement efficace » telle qu'elle est décrite ici s'entend comme la dose qui donne un effet thérapeutique pour une condition et un régime d'administration donnés. C'est typiquement la dose moyenne d'une substance active à administrer pour améliorer sensiblement certains des symptômes associés à une maladie ou à un état pathologique. Par exemple, dans le traitement d'un cancer cérébral ou non, d'une pathologie, d'une lésion ou d'un trouble du SNC, la dose d'une substance active qui diminue, empêche, retarde, supprime ou arrête l'une des causes ou l'un des symptômes de la maladie ou du trouble serait thérapeutiquement efficace.
Une « dose thérapeutiquement efficace » d'une substance active n'est pas tenue de guérir une maladie ou un trouble mais fournira un traitement pour cette maladie ou ce trouble de façon à ce que son apparition soit retardée, entravée ou empêchée, ou que ses symptômes soient atténués, ou que son terme soit modifié ou, par exemple, soit moins sévère ou que la récupération du patient soit accélérée.
Il est entendu que la « dose thérapeutiquement efficace » pour une personne en particulier dépendra de divers facteurs, incluant l'activité/efficacité de la substance active, son heure d'administration, sa voie d'administration, son taux d'excrétion et son métabolisme, les associations/interactions médicamenteuses et la sévérité de la maladie (ou du trouble) traitée à titre préventif ou curatif, ainsi que l'âge, le poids corporel, l'état de santé global, le sexe et/ou le régime alimentaire du patient.
Selon la substance couplée, les conjugués et compositions de l'invention peuvent être utilisés pour le traitement, la prévention, le diagnostic ou l'imagerie de nombreuses pathologies, notamment de pathologies affectant le SNC, de pathologies infectieuses ou de cancers.
A cet égard, l'invention concerne l'utilisation de conjugués ou compositions pharmaceutiques tels que décrits ci- avant pour le traitement ou la prévention de pathologies ou troubles du SNC, de tumeurs cancéreuses cérébrales ou d'autres cellules cancéreuses, et de pathologies infectieuses cérébrales ou autres, de type bactériennes, virales, parasitaires ou fongiques. L'invention concerne également l'utilisation de conjugués ou compositions pharmaceutiques tels que décrits ci-avant pour le diagnostic ou l'imagerie de pathologies ou troubles du SNC, de tumeurs cancéreuses cérébrales ou d'autres cellules cancéreuses, et de pathologies infectieuses cérébrales ou autres, de type bactériennes, virales, parasitaires ou fongiques.
L'invention concerne également l'utilisation d'un conjugué ou d'une composition tels que définis ci-avant pour le traitement, l'imagerie et/ou le diagnostic d'une tumeur cancéreuse cérébrale ou d'un autre type de cellules cancéreuses. Des études ont en effet montré que des patients atteints de certains cancers présentent une hypocholestérolémie. Cette hypocholestérolémie est la conséquence d'une sur-utilisation du cholestérol par les cellules cancéreuses. Ces dernières induisent pour survivre une augmentation du niveau d'expression du LDLR au sein des organes tumoraux {Henricksson et al, 1989, Lancet,
2 (8673), 1178-1180). Il existe ainsi une corrélation entre l'augmentation du niveau d'expression du LDLR par les cellules et certains cancers. Il a également été récemment démontré que le nombre de LDLR était très important à la surface de certaines cellules pathologiques comme les cellules cancéreuses. Il est généralement admis que 1 000 à
3 000 LDLR sont présents à la surface d'une cellule non pathologique. De même, des neurones non pathologiques ne présentent qu'un faible nombre de LDLR (Pitas et al, 1987, J. Biol. Chem., 262, 14352-14360). Dans le cas du glioblastome, il a été démontré une surexpression du LDLR. Ainsi, il a été dénombré à la surface des cellules cérébrales tumorales de 125 000 (pour les cellules U-251) à 900 000 (pour les cellules SF-767) LDLR (Malentiska et al., 2000, Cancer Res., 60, 2300-2303 ; Nikanjam et al., 2007, Int. J. Pharm., 328, 86-94). Notons également que beaucoup de cellules tumorales surexpriment le LDLR, telles que celles du cancer de la prostate (Chen et al., 2001, Int. J. Cancer, 91, 41-45), du cancer du colon (Niendorf et al., 1995, Int. J. Cancer, 61, 461- 464), des leucémies (Tatidis et al., 2002, Biochem. Pharmacol., 63, 2169-2180), du cancer colorectal (Caruso et al., 2001, Anticancer Res., 21, 429-433), du cancer du sein (Graziani et al., 2002, Gynecol. Oncol, 85, 493-497), ainsi que les cancers du foie, du pancréas, des ovaires, du poumon, de l'estomac, etc. L'invention concerne également l'utilisation d'un conjugué ou d'une composition tels que définis ci-avant pour le traitement, l'imagerie et/ou le diagnostic de pathologies infectieuses cérébrales ou autres, de type bactériennes, virales, parasitaires ou fongiques, telles que, et de manière non limitative, le SIDA, voire les méningites, etc. Le LDLR est également présent sur les cellules hépatiques. Il est à présent connu que l'endocytose du virus de l'hépatite C (VHC) peut se faire par l'intermédiaire du LDLR. Le LDLR pourrait servir de récepteur viral à un stade précoce de l'infection des hépatocytes humains par le VHC {Molina et al, 2007, J. Hepatol, 46 (3), 411-419). Les conjugués de l'invention peuvent donc être utilisés pour cibler spécifiquement des cellules pathologiques, infectées par des virus tels que ceux des hépatites B et C, qui expriment le LDLR et/ou pour moduler le processus d'infection des cellules saines par les virus via le LDLR.
L'invention concerne également l'utilisation d'un conjugué ou d'une composition tels que définis ci-avant pour le traitement, l'imagerie et/ou le diagnostic de pathologies neurodégénératives telles que de manière non limitative la maladie d'Alzheimer, la maladie de Parkinson, la maladie de Creutzfeldt- Jacob, les accidents vasculaires cérébraux (AVC), l'encéphalite bovine spongiforme, la sclérose en plaques, la sclérose latérale amyotrophique, etc.
L'invention concerne également l'utilisation d'un conjugué ou d'une composition tels que définis ci-avant pour le traitement, l'imagerie et/ou le diagnostic de pathologies neurologiques telles que de manière non limitative l'épilepsie, la migraine, les encéphalites, les douleurs du SNC, etc.
L'invention concerne également l'utilisation d'un conjugué ou d'une composition tels que définis ci-avant pour le traitement, l'imagerie et/ou le diagnostic de pathologies neuropsychiatriques telles que de manière non limitative la dépression, l'autisme, l'anxiété, la schizophrénie, etc.
Les termes « traitement », « traiter » et autres expressions semblables signifient l'obtention d'un effet pharmaco logique et/ou physiologique, par exemple, l'inhibition de la croissance des cellules cancéreuses, la mort des cellules cancéreuses ou l'amélioration d'une maladie ou d'un trouble neurologique. L'effet peut être prophylactique ou préventif afin d'empêcher totalement ou partiellement l'aggravation d'une maladie ou d'un symptôme de celle-ci, chez une personne malade, ou sa propagation, chez des sujets sains, et/ou peut être thérapeutique afin de traiter totalement ou partiellement une maladie et/ou ses effets néfastes liés. Le terme « traitement » tel qu'il est utilisé dans le présent document couvre tout traitement d'une maladie chez un mammifère, et plus particulièrement un homme, et comprend : (a) la prévention d'une maladie (par exemple, la prévention du cancer) ou d'une condition pouvant survenir chez une personne prédisposée à cette pathologie ou trouble, mais qui n'a pas encore été diagnostiquée comme atteinte, (b) le ralentissement d'une maladie (par exemple, en arrêtant son développement), ou (c) le soulagement d'une maladie (par exemple, en réduisant les symptômes associés à une maladie). Ce terme « traitement » couvre également toute administration d'une substance active afin de soigner, de guérir, de soulager, d'améliorer, de diminuer ou d'inhiber une condition chez un individu ou patient, y compris, sans s'y limiter, l'administration à une personne en ayant besoin d'un médicament composé d'un vecteur ou d'un conjugué tels que décrits dans le présent document.
La présente invention concerne encore l'utilisation d'un peptide ou pseudo-peptide de l'invention pour augmenter l'activité biologique d'une substance active ou d'intérêt (molécule d'intérêt thérapeutique, agent de diagnostic ou d'imagerie médicale, toute autre molécule comme une sonde moléculaire) à laquelle il est couplé.
La présente invention concerne aussi l'utilisation d'un peptide ou pseudo-peptide de l'invention, pour diminuer la toxicité de la substance active ou d'intérêt (molécule d'intérêt thérapeutique, agent de diagnostic ou d'imagerie médicale, toute autre molécule comme une sonde moléculaire) à laquelle il est couplé.
D'autres aspects et avantages de la présente invention apparaîtront à la lecture des exemples ci-dessous, qui sont de nature illustrative seulement mais ne limitent pas la portée de la présente demande. EXEMPLES
EXEMPLE I
Construction de lignées cellulaires CHO exprimant de manière stable les LDLR humain et murin.
Les inventeurs ont identifié des peptides sur la base de leur interaction et affinité pour les récepteurs humain et murin aux low-density lipoproteins (hLDLR et mLDLR), impliqués notamment dans l'endocytose et la transcytose (transport trans-cellulaire, notamment à travers la BHE) du cholestérol. Le préalable à la caractérisation de ces peptides était l'établissement dans des cellules eucaryotes (Chines e Hamster Ovary Cells, CHO) de lignées stables exprimant de manière constitutive et à taux élevés le hLDLR et le mLDLR. Ces lignées sont utilisées : i) pour la caractérisation de peptides se fixant sur le hLDLR exprimé à la surface des cellules, dans sa configuration native ; ii) pour vérifier que le hLDLR et le mLDLR peuvent internaliser les peptides sélectionnés par endocytose.
La construction de ces lignées a été décrite dans la demande WO2010/046588. Brièvement, les séquences des ARN messagers codant pour le hLDLR et le mLDLR sont disponibles dans les banques de données (numéros d'accès: NM 000527 et NM O 10700 respectivement). Les amorces nécessaires à l'amplification des ADNc par PCR ont été sélectionnées, comportant à leur extrémité (en caractères gras) les sites de restriction nécessaires (HindIII et Sali pour le LDLR humain et HindIII et Kpnl pour le LDLR murin) au clonage dans le vecteur d'expression pEGFP-Nl (Clontech) : hLDLR
Amorce Forward : AT ATATAAGCTTCGAGGACACAGCAGGTCGTGAT (SEQ ID NO : 18)
Amorce Reverse : TTAATTGTCGACCACGCCACGTCATCCTCCAGACT (SEQ ID NO : 19) mLDLR
Amorce Forward : AT ATATAAGCTTGACGCAACGCAGAAGCTAAG (SEQ ID NO : 20)
Amorce Reverse : TTAATTGGTACCGTTGCCACATCGTCCTCCAG (SEQ ID NO : 21)
Les ARN totaux préparés à partir de cerveaux humains et murins ont été transformés en ADNc par reverse transcription pour l'amplification par PCR de fragments d'ADN codant pour le hLDLR et le mLDLR. Après amplification, les produits PCR ont été digérés par les enzymes de restriction HindIII-SalI et HindIII-Kpnl respectivement et ligués dans le vecteur d'expression pEGFP-Nl (Clontech), digéré par les mêmes enzymes de restriction. Après transfection dans des cellules eucaryotes, ce vecteur permet l'expression, sous contrôle du promoteur CMV, de LDLR fusionnés à la GFP à leur extrémité C-term, c'est à dire à l'extrémité de leurs domaines intracellulaires (Figure 3). Après transformation de bactéries compétentes E. Coli DH5CC, obtention de colonies isolées, préparation de l'ADN des plasmides, les constructions ont été intégralement séquencées sur les 2 brins pour vérification.
Des transfections transitoires dans différentes lignées cellulaires (CHO, COS, N2A et HEK293) ont été réalisées pour déterminer sur cellules vivantes ou fixées les niveaux d'expression et la localisation membranaire du hLDLR et du mLDLR. Le récepteur est visible directement sur cellules vivantes, sous microscopie à fluorescence, sans nécessité d'immunomarquage, grâce à la fluorescence verte émise par la GFP fusionnée en C-term de ces récepteurs. Des transfectants stables ont été sélectionnés par dilution limite et grâce au gène de résistance à la généticine (G418) porté par le vecteur d'expression. Ces lignées ont été amplifiées tout en gardant une pression de sélection. Dans l'exemple évoqué ici, l'expression du hLDLR-GFP de la taille attendue a été vérifiée par Western Blot sur lysats cellulaires avec des anticorps dirigés contre le LDLR humain et contre la GFP. Une protéine correspondant aux tailles combinées de la GFP et du hLDLR (190 kDa) est reconnue par les anticorps anti- hLDLR (Figure 4) et anti-GFP dans des extraits cellulaires préparés à partir des lignées stables. Une lignée CHO exprimant la GFP de manière constitutive a été utilisée comme contrôle négatif. L'anticorps anti-hLDLR ne détecte aucune protéine dans la lignée GFP.
L'immunocytochimie avec l'anticorps anti-hLDLR sur cellules fixées (PFA) des lignées CHO-GFP (utilisée comme contrôle) et CHO-hLDLR-GFP montre que la fusion hLDLR-GFP est bien exprimée dans les cellules transfectées. Des expériences d'immunocytochimie sur cellules non perméabilisées avec du Triton XI 00 montrent que le domaine extracellulaire du LDLR est bien détecté au niveau extracellulaire (Figure 5).
Une co-localisation entre le hLDLR et son ligand naturel le LDL, rendu fluorescent par adsorption du Dil, un marqueur fluorescent, est montrée. Ce ligand naturel fluorescent (Dil-LDL) est rapidement internalisé (endocytose) comme visualisé sous microscopie à fluorescence sur cellules fixées (Figure 6- A). Par contre, le Dil-LDL n'est pas endocyté par la lignée contrôle CHO-GFP, ou par une autre lignée contrôle de cellules CHO, qui surexprime par exemple le récepteur humain de la transferrine (hTfR, Figure 6-B), un autre récepteur impliqué dans la transcytose. De plus, l'activité d'endocytose de la lignée CHO-LDLR-GFP est spécifique au ligand du LDLR puisque dans cette lignée, on n'observe pas d'endocytose de ligand qui ne lui soit pas spécifique, à titre d'exemple la transferrine (Tf) marquée avec un fluorochrome rouge (le Texas Red, Figure 6-C).
La fonctionnalité des récepteurs (capacité d'endocytose) est confirmée par des expériences en temps réel, sous vidéo-microscopie à fluorescence montrant que le LDL, ligand naturel du hLDLR, marqué au Dil, est effectivement transporté rapidement et très efficacement dans les cellules exprimant le hLDLR-GFP comparé aux cellules exprimant la GFP seule ou aux cellules exprimant un autre récepteur impliqué dans l'endocytose tel le hTfR (contrôles négatifs). A l'inverse, des expériences de vidéo- microscopie réalisées avec la Tf marquée au Texas Red, qui est très efficacement endocytée par des cellules exprimant le hTfR-GFP, confirment que la transferrine n'est pas endocytée par les cellules d'une lignée contrôle GFP ni par celles d'une lignée hLDLR. Malgré un haut taux d'expression du hLDLR dans les lignées CHO-hLDLR-GFP, le système d'endocytose est non seulement efficace, mais il a conservé sa sélectivité. La présence de la fusion GFP n'a altéré ni les propriétés d'insertion dans la membrane du hLDLR, ni l'exposition à l'extérieur de la cellule du domaine extracellulaire du hLDLR, ni la fonctionnalité du récepteur dans les processus d'endocytose.
EXEMPLE II
Synthèses peptidiques et couplages à une molécule traceur (biotine, fluorescéine, ou S-Tag avec une activité enzymatique).
Les peptides ont été synthétisés par la méthode de synthèse en phase solide (solid phase peptide synthesis ou SPPS) sur un synthétiseur automatique, modèle Advanced ChemTech Apex396 (AAPPTec), ou un synthétiseur automatique sous champ microonde focalisée, modèle Liberty™ (CEM), en utilisant une stratégie Fmoc/tBu sur résine Rink Amide AM sur polystyrène- 1%DVB, ou résine Wang sur polystyrène- 1%DVB, ou résine Barlos {2-chlorotrityl chloridé) sur polystyrène- 1%DVB, ou résine Sieber Amide sur polystyrène- 1%DVB. La charge (ou substitution) est comprise entre 0,25 et 1,6 mmol/g suivant la résine utilisée.
Les acides aminés N-protégés par un Fmoc (ou un Boc pour certaines extrémités N- term) et/ou protégés par des fonctions orthogonales (acido-labiles notamment) au niveau de leurs chaînes latérales, les réactifs chimiques de couplage et de déprotection, et les solvants sont achetés auprès de sociétés spécialisées et utilisés tels quels.
Les résines Rink Amide et Wang permettent de synthétiser les séquences peptidiques totalement déprotégées sur leurs chaînes latérales et leurs extrémités C-term. On parle alors de synthèse peptidique SPPS orthogonale à 2 dimensions (Fmoc/tBu).
Les résines « hypersensitive acid labile ou HAL » de type Barlos et Sieber permettent respectivement la libération de la fonction acide ou amide terminale (en C-term) tout en conservant les protections latérales orthogonales des différents acides aminés du peptide synthétisé ainsi que la protection aminé terminale (N-term) de la fonction aminé de son dernier acide aminé (par exemple, N-acétylation pour des questions de stabilité de la séquence peptidique néo-synthétisée). Ce type de résines via une stratégie de synthèse Fmoc (en Proti) permet d'utiliser des protections latérales orthogonales acido-labiles (Prot2 de type Boc, tBu, OtBu, Trt, Mmt, Acm, etc.) clivables uniquement en milieu fortement acide, alors que le décrochage du peptide protégé se fait en conditions acides très douces. Ce type de clivage permet de récupérer la séquence peptidique totalement protégée sur ses fonctions latérales (Prot2) en vue notamment du couplage d'une molécule d'intérêt thérapeutique sur le peptide. On parle alors de synthèse peptidique SPPS orthogonale à 3 dimensions (Barlos ou Sieber/Fmoc/tBu).
Les protections latérales orthogonales (Prot2) standard utilisées pour chaque acide aminé au cours de la synthèse peptidique sont : Arg(N-Pbf), Arg(N-Pmc), Asn(N-Trt), Asp(0- tBu), Cys(S-Acm), Cys(S-Mmt), Cys(S-4MeBn), Cys(S-tBu), Cys(S-Tmob), Cys(S- Trt), Glu(O-tBu), Gln(N-Trt), His(N-Trt), Lys(N-Boc), Pen(S-Acm), Pen(S-Trt), Ser(0- tBu), Thr(O-tBu), Trp(N-Boc), Tyr(O-tBu) (Applied Biosystems, 1998, Cleavage, Deprotection, and Isolation of Peptides after Fmoc Synthesis. Technical Bulletin). Gly, Sar, Ala, Val, Leu, Ile, Phe, Met, Pro, Pip et Thz ne possèdent pas de protections latérales, puisque leurs structures chimiques respectives ne le nécessitent pas.
Les couplages d'acides aminés se font via activation de la fonction acide de l'acide aminé n+1 à l'aide de DIEA/HBTU/HOBt ou DIPC/HOBt dans du DMF.
La déprotection du groupement Fmoc (Proti) d'un nouvel acide aminé ainsi couplé est réalisée à l'aide de 20% de pipéridine dans le DMF.
Le dernier acide aminé couplé au cours de la séquence peptidique sera soit protégé par une fonction Boc (en vue de libérer sa fonction aminé terminale libre en fin de synthèse), soit acétylé (afin de stabiliser le néo-peptide synthétisé mais également de réduire les risques de réactions secondaires lors du couplage co valent de la molécule d'intérêt thérapeutique en C-term par exemple) voire propionylé.
Suivant le peptide synthétisé, les ponts disulfures sont obtenus par cyclisation intramoléculaire à partir de 2 fonctions thiols de 2 Cys convenablement protégées (Acm, Trt, tBu, etc.), soit en solution, soit sur la résine, à l'aide de réactifs classiquement utilisés par l'homme de l'art : H20/AcOH/,/(NH4)2C03/DMSO, H20/AcOH,/(NH4)2C03, I2/DMF, I2/HFIP/DCM, TFA/DMSO/ aniso le, I2/DCM/MeOH/H20, etc. Une Cys en positon N-term peut être avantageusement remplacée par Pen ou Mpa pour la cyclisation via un pont disulfure. Des ponts lanthionines (par cyclisation via déshydroalanine) ou dicarba (par cyclisation via allylGly) peuvent également être obtenus par des voies de synthèse connues de l'homme de l'art. Un pont lactame peut-être créé entre la fonction acide latérale d'un résidu Glu (ou Asp) et une fonction aminé latérale sur une Lys ou une aminé N-term. De même une cyclistion entre la fonction aminé N-term et la fonction acide C-term (tête/queue) peut être réalisée via une liaison amide, tout comme une cyclisation entre la fonction aminé latérale d'une Lys et la fonction acide C-term du peptide (Majumdar and Siahaan, MedRes Rev., Epub ahead of print).
Le clivage des peptides des résines Barlos ou Sieber se fait par des méthodes classiquement utilisées par l'homme de l'art, soit avec 0,5% de TFA (v/v) dans du DCM, soit avec de l'AcOH/TFE/DCM (1/1/3), soit avec du HFIP (30%) dans du DCM, soit avec du TFE (30%) dans du DCM, etc.
Les déprotections des chaînes latérales, et le clivage des peptides des résines Rink Amide ou Wang, sont réalisés par des méthodes classiquement utilisées par l'homme de l'art : soit avec un mélange TFA/H20/TIS ou TIPS (95/2,5/2,5), soit avec TFA/H2O/EDT/TIS ou TIPS (94/2,5/2,5/1), soit avec TFA/thioanisole/H20 (94/5/1), soit avec TFA/TIS/H20/thioanisole (90/5/3/2), soit avec
TFA/H20/phénol/thioanisole/EDT (82,5/5/5/5/2,5), etc.
Les biotines, fluorescéines, ou S-Tag (cf. EXEMPLE IV, ci-dessous) sont généralement introduits en C-term, ces traceurs sont parfois couplés en N-term, selon des procédés de synthèse et de couplage classiques connus de l'homme de l'art.
Les peptides sont isolés et purifiés par HPLC sur un Appareil Beckman System Gold 126 avec une colonne Chromolith C18 (4,6 x 50 mm) ou Nucleosil C18 (10 x 250 mm) avec par exemple un gradient de 0 à 100%) d'acétonitrile dans une phase aqueuse (H20 + 0,1%) TFA) en 3,5 min puis 100 à 0%> en 1,5 min (débit : 1 à 5 ml/min), ou sur une chaîne Waters 1525 avec une colonne (phase stationnaire) Chromolith Speed ROD RP- 18 (4,6 x 50 mm) avec détection par un équipement Waters 996 PDA (190 - 400 nm), ou sur une chaîne Waters Alliance 2690 avec une colonne (phase stationnaire) Chromolith Performance RP-18 (3 x 100 mm) avec détection par un équipement Waters 996 PDA (190 - 400 nm). La détection UV est réalisée à 214 et 254 nm.
Les purifications préparatives sont réalisées avec une chaîne Waters prep LC4000 System avec une colonne (phase stationnaire) Guard-PakTM cartridges Delta-PakTM Cl 8 (25 x 10 mm) avec détection par un équipement Waters 2487 Dual 1 Absorbance Detector.
Les masses moléculaires sont déterminées en utilisant un spectromètre de masse à électrospray d'ions (ESI) en mode positif. Les spectres sont obtenus en utilisant un appareil Waters MicromassQuattro Micro (analyseur quadripôle) équipé d'un système HPLC Waters Alliance 2690 permettant le couplage LC-MS.
Les conditions d'analyses LC-MS utilisées sont les suivantes :
- colonne Cl 8 Chromo lith Flash (4,6 x 25 mm),
- débit de 3 mL/min,
- gradient linéaire de 0 à 100 % de B en 2,5 min (A : H20/HC02H 0,1 % ; B : ACN/HC02H 0,1 %).
L'acquisition des spectres de masse en mode electrospray positif se fait à un débit de 100-200 μί/ηιίη. Les données sont obtenues en mode scan de 200 à 1700 m/z à intervalles de 0,1 s.
EXEMPLE III
Conception de peptides vecteurs.
Le peptide de séquence SEQ ID NO : 17/S-Tag, décrit dans la demande WO2010/046588, a servi de référence.
A partir de ce peptide, différentes approches ont été utilisées pour tenter d'améliorer les propriétés de liaison, de synthèse et de vectorisation. De nombreux peptides ont ainsi été synthétisés, différant de SEQ ID NO : 17 par la délétion et/ou le remplacement et/ou la modification chimique d'un ou plusieurs résidus d'acide aminé.
La capacité des peptides ainsi synthétisés à lier le hLDLR a été déterminée.
A cet effet, les cellules CHO-hLDLR-RFP adhérentes et à confluence, ont été cultivées dans des plaques 6 puits. Trois puits de cellules sont utilisés par condition. Une solution contenant ΙΟμΜ de peptide SEQ ID NO : 17/S-Tag a été préparée dans du milieu de culture HamF12-l% BSA. A cette solution ont été ajoutés 10 μΜ du peptide à évaluer (compétition).
Plusieurs solutions contrôles sont aussi préparées :
(i) Milieu HamF 12- 1 % BSA.
(ii) Milieu HamF 12-1% BSA + 10 μΜ de peptide contrôle CTRL-S-Tag (évaluation de la liaison non spécifique de tout peptide comportant un S-Tag).
(iii) Milieu HamF12-l% BSA + 10 μΜ de peptide SEQ ID NO : 17/S-Tag + 10 μΜ de peptide contrôle CTRL (évaluation de la compétition « non spécifique » entre le peptide d'intérêt et le peptide contrôle CTRL).
Les approches de FRET utilisées sont celles décrites dans l'EXEMPLE IV.
Les résultats obtenus pour les meilleurs peptides sont présentés dans le tableau 1 ci- dessous. Le tableau donne les résultats des compétitions en % de peptide vecteur de référence (SEQ ID NO : 17/S-Tag), affin pour le hLDLR, déplacé par les peptides de l'invention. Plus la valeur de déplacement est grande, plus le peptide est affin pour le hLDLR. Lorsque cette valeur est supérieure à 50%>, le peptide possède une affinité supérieure à celle du peptide de référence (SEQ ID NO : 17).
Tableau 1
Peptides tests Déplacement du peptide contrôle
SEQ ID NO : 1 66%
SEQ ID NO : 2 70%
SEQ ID NO : 3 75%
SEQ ID NO : 4 88%
SEQ ID NO : 5 91%
SEQ ID NO : 6 77%
SEQ ID NO : 7 74%
SEQ ID NO : 8 84%
SEQ ID NO : 9 80% SEQ ID NO : 10 54%
SEQ ID NO : 11 22%
SEQ ID NO : 12 23%
SEQ ID NO : 13 8%
SEQ ID NO : 14 9%
SEQ ID NO : 15 < 5%
SEQ ID NO : 16 < 5%
SEQ ID NO : 17 50%
Les résultats présentés montrent que les peptides de séquences SEQ ID NOs : 1 à 10 présentent une affinité améliorée pour le récepteur humain aux HDL. Ces résultats sont particulièrement intéressants compte tenu de la taille réduite des peptides, et particulièrement remarquables et surprenants, compte tenu des effets négatifs sur l'affinité observés avec les peptides SEQ ID NO : 11-16.
Ainsi, en s 'appuyant sur une approche d'optimisation chimique basée sur la chimie médicinale, les inventeurs ont progressé dans la compréhension des relations structure/activité (affinité) du peptide vecteur de référence (SEQ ID NO : 17), et notamment :
(i) l'importance de chacun des résidus d'acides aminés (Ala-scan, D-scan), c'est-à-dire le remplacement alternatif (un par un) de chacun des résidus d'origine soit par une alanine, soit par leur analogue non naturel de configuration D ;
(ii) l'importance des extrémités N- et C-terminales (acétylation, amidation, etc.) ;
(iii) l'importance/intérêt de la cyclisation du peptide.
Les principales limitations généralement attribuées aux dérivés peptidiques à visée thérapeutique sont :
(i) leur faible biodisponibilité orale (leur administration par voie intraveineuse est en général requise) ;
(ii) un temps de demi- vie court en raison de leur dégradation rapide par des enzymes protéolytiques (notamment les peptidases ou protéases) de l'appareil digestif et du plasma sanguin ; (iii) leur élimination rapide de la circulation sanguine par le foie (clairance hépatique) et les reins (clairance rénale) ;
(iv) leur faible capacité à passer au travers des membranes biologiques ou physiologiques en raison de leur caractère généralement hydrophile ;
(v) leur grande flexibilité conformationnelle, ce qui entraîne parfois un manque de sélectivité impliquant des interactions avec différents récepteurs ou cibles (résultant en une faible biodistribution spécifique), qui a pour effet l'activation de plusieurs cibles et conduit à des effets secondaires ou indésirables ;
(vi) des coûts élevés de synthèse et de production industrielle (le coût de production d'un peptide de masse moléculaire 5 kDa est supérieur au coût de production d'une molécule organique de masse moléculaire 500 Da).
De façon assez remarquable, les peptides ou pseudo-peptides de l'invention présentent les pré-requis pharmaco logiques :
(i) une affinité forte pour le hLDLR ;
(ii) des caractéristiques physico-chimiques (cyclisation via un pont disulfure ; jusqu'à
3 acides aminés non naturels pour certains d'entre eux ; une taille réduite à 8 acides aminés) favorisant leur spécificité pour ce récepteur ;
(iii) une plus grande résistance à la protéolyse enzymatique en raison de leur cyclisation, de l'introduction d'acides aminés non naturels et pour certains d'entre eux d'une liaison pseudo-peptidique, mais également en modifiant/bloquant les extrémités N- et C-term ;
(iv) une petite taille et une masse moléculaire voisine de 1 kDa permettant de réduire les coûts de synthèse et de production future à l'échelle industrielle.
EXEMPLE IV
Liaison et endocytose des peptides synthétisés, affins pour le hLDLR dans les lignées CHO-LDLR-GFP. Des peptides de l'invention affîns pour hLDLR-GFP sont couplés/conjugués en C-term à différentes molécules « traceurs », soit la rhodamine, soit le S-Tag, séparés par un bras espaceur généralement constitué de 3 résidus Gly (Figure 7). Le S-Tag (peptide de 15 acides aminés dérivé de la séquence 1-15 de la ribonucléase A pancréatique bovine) peut d'une part être reconnu par un anticorps anti-S-Tag pour des approches d'immunocytochimie ou de FACS, et d'autre part reconstituer une activité enzymatique par liaison à la ribonucléase S-protein (portion C-term, acides aminés 21-124) dans des tests d'activité in vitro utilisant le FRETWorks S-Tag assay kit (Novagen 70724-3). La ribonucléase ainsi activée digère un substrat d'ARN libérant un agent fluorescent masqué révélé par FRET (Fluorescence Résonance Energy Transfert) et quantifié en plaque de 96 puits dans un spectrofluorimètre Beckmann. Pour ces expériences de FRET, des cellules CHO contrôles ont été utilisées et la GFP fusionnée en C-term au hLDLR et au mLDLR, qui génère un bruit de fond important aux longueurs d'ondes utilisées pour le FRET a été remplacée par la Red Fluorescent Protein (RFP). Les lignées stables générées pour les expériences de FRET sont donc CHO-RFP et CHO- hLDLR-RFP.
Pour les approches de FRET, les cellules sont lavées 2 fois avec 2 ml de PBS puis incubées lh à 37°C avec 250 μΐ de solution de peptide. Elles sont à nouveau lavées 2 fois avec 2 ml de PBS puis 2 fois avec 1 ml de PBS, puis grattées dans 1 ml de PBS et centrifugées 5 min à 1250 rpm. Le surnageant est alors aspiré et le culot cellulaire est lysé dans 80 μΐ de PBS + 0.1% de Triton XI 00. Vingt μΐ de chaque lysat cellulaire sont analysés par mesure de l'émission de fluorescence après réaction de FRET.
Ainsi, des expériences d'incubation des peptides sur différentes cellules exprimant le hLDLR sont réalisées et permettent de démontrer que les peptides se lient bien aux cellules CHO-LDLR-GFP et qu'ils sont endocytés pour s'accumuler dans les cellules de la lignée qui expriment le hLDLR, ce qui n'est pas le cas des peptides contrôles. Dans ces expériences, des incubations préalables des peptides conjugués au S-Tag, avec un anticorps primaire (Ac primaire) dirigé contre le S-Tag, et un anticorps secondaire (Ac secondaire) dirigé contre l'anticorps primaire, montrent que le complexe entre un peptide/S-Tag, un Ac primaire et un Ac secondaire se lie aux cellules exprimant le hLDLR et est internalisé par endocytose. Ces résultats indiquent que les peptides cycliques de cette famille peuvent se lier à des cellules exprimant le hLDL et vectoriser des charges importantes (2 anticorps), i.e. internalisation par endocytose de ces charges.
EXEMPLE V
Toxicité, endocytose et transcytose des peptides synthétisés, affins pour le hLDLR, sur des cellules endothéliales dans des modèles de BHE in vitro.
Les potentiels effets toxiques des peptides sur cellules endothéliales, la liaison/accumulation des peptides dans ces cellules, et le passage par transcytose des peptides sont évalués sur modèles de BHE in vitro. Les cellules nécessaires à la mise en place du modèle (co-culture de cellules endothéliales issues de micro -vaisseaux cérébraux et astrocytes) sont des cellules bovines {bovine brain microvascular endothelial cells, BBMECs) distribuées par la société Cellial Technologies (Lens, France) ou des cellules de rat (rat brain capillary endothelial cells, rat BCECs) ayant permis de développer en interne un modèle murin. Ce type de modèles de BHE in vitro est utilisé pour évaluer le passage passif ou le transport actif de nombreuses molécules, notamment des agents pharmaco logiques, à travers les BCECs et donc par extrapolation leur capacité à atteindre le tissu nerveux du SNC in vivo. Les modèles bovin et murin présentent des propriétés ultra-structurales caractéristiques de l'endothélium cérébral notamment les jonctions serrées, l'absence de pores, l'absence de canaux trans- endothéliaux, la faible perméabilité aux molécules hydrophiles et une haute résistance électrique. En outre, ces modèles ont montré de bonnes corrélations entre les résultats des mesures effectuées sur différentes molécules évaluées in vitro et in vivo pour leur propriété de passage au travers de la BHE. A ce jour, toutes les données obtenues révèlent que ces modèles de BHE in vitro imitent de près la situation in vivo en reproduisant certaines des complexités de l'environnement cellulaire qui existent in vivo, tout en conservant les avantages associés à l'expérimentation en culture cellulaire.
A titre d'exemple, le modèle bovin de BHE in vitro met en jeu une co-culture de BBMECs et d'astrocytes. Préalablement à la culture cellulaire, des inserts de plaque (Millicell-PC 3,0 μΜ ; 30 mm de diamètre) sont traités sur la partie supérieure avec du collagène de queue de rat afin de permettre une adhésion optimale des BBMECs et créer les conditions d'une lame basale. Des cultures primaires d'astrocytes mixtes sont établies à partir de cortex cérébral de rat nouveau-né (Dehouck et al., 1990, J. Neurochem., 54, 1798-1801). Brièvement, après avoir ôté les méninges, le tissu cérébral est passé sur un tamis de nylon à 82 μιη. Les astrocytes sont distribués dans les puits de microplaques à une concentration de l,2xl05 cellules/ml et 2 ml de milieu de culture optimal (DMEM) complémenté avec 10% de sérum de veau fœtal inactivé par chauffage. Le milieu est changé deux fois par semaine. Les BBMECs obtenus auprès de Cellial Technologies sont cultivées en présence de milieu DMEM complémenté avec 10% (v/v) de sérum de cheval et 10%> de sérum de veau inactivé par chauffage, 2 mM de glutamine, 50 μg/ml de gentamycine, et de 1 ng/ml de facteur de croissance basique de fïbroblastes, ajouté tous les deux jours. Les BBMECs sont ensuite distribuées sur la face supérieure des filtres dans 2 ml de la co-culture. Ce milieu de BBMECs est changé trois fois par semaine. Dans ces conditions, des BBMECs différenciées forment une monocouche de cellules confluentes 7 jours plus tard.
Pour tester leur toxicité, les peptides de l'invention couplés à la rhodamine sont incubés dans la chambre supérieure du système de culture, en contact avec les cellules endothéliales pendant lh, 5 h et 24h. Le milieu de culture de la chambre inférieure est collecté à différents temps et la fluorescence quantifiée par analyse fluorimétrique. Les résultats sont exprimés en perméabilité de surface endothéliale (ou Pe) exprimée en 10"3 cm/min. Le Lucifer Yellow (LY), une petite molécule fluorescente qui passe peu la BHE, est utilisé d'une part pour contrôler l'intégrité de la BHE in vitro, dans tous les puits analysés, mais d'autre part, en co-incubation avec les peptides, afin de contrôler l'absence de toxicité des peptides pour les cellules endothéliales qui forment cette BHE. La barrière in vitro est considérée « perméable » ou « ouverte » si la valeur de passage Pe du LY est supérieure à 1.10"3 cm/min. La mesure de la Trans Endothelial Electrical Resistence (TEER), évaluée avec un Ohm-mètre et exprimée en Ohm.cm2, permet également de mesurer l'intégrité de la BHE in vitro lors des tests de passage à travers cette BHE. La valeur du seuil de qualité est fixée à >500 Ohm.cm2. Les expériences réalisées démontrent une absence de toxicité des peptides, de même que pour le peptide contrôle utilisé, et une absence d'effets délétères sur les propriétés de perméabilité de la BHE.
Le passage à travers la BHE d'un peptide de l'invention conjugué à la rhodamine est vérifié sur le modèle bovin de BHE in vitro décrit ci-dessus. Cette analyse est réalisée en mesurant par fluorimétrie la quantité de fluorescence accumulée dans le puits receveur à différents temps (lh, 4h, 24h). L'intégrité de la BHE dans les différents puits analysés est évaluée par mesure simultanée du taux de LY qui passe d'un compartiment à l'autre en fonction du temps.
EXEMPLE VI
Protocoles pour la synthèse chimique de conjugués vecteur/molécule d'intérêt thérapeutique ou agent d'imagerie (ou de diagnostic) ou toute autre molécule comme une sonde moléculaire.
Une molécule d'intérêt thérapeutique ou agent d'imagerie ou de diagnostic ou toute autre molécule comme une sonde moléculaire peut être clivée/libérée/relargué(e) du vecteur après transport et passage au travers des membranes cellulaires et plus particulièrement de la BHE, par exemple au travers d'une stratégie prodrogue par hydrolyse ou clivage enzymatique d'une liaison chimique entre le vecteur et la substance active.
Le couplage covalent, entre le peptide vecteur totalement protégé sur ses fonctions réactives latérales (cas des couplages en C-term et N-term) ou partiellement protégé (cas du couplage sur une fonction réactive d'une chaîne latérale), et la molécule d'intérêt thérapeutique, est réalisé via 2 stratégies générales (Figure 2) :
synthèse en tandem (i.e. couplage direct sans intermédiaire entre les 2 entités), synthèse au travers d'un linker (Temsamani et al., 2004, Drug Discov. Today, 23, 1012-1019). En fonction du peptide vecteur sélectionné et de la molécule d'intérêt thérapeutique choisie, l'une ou l'autre des diverses stratégies est appliquée soit sur le C-term, soit sur le N-term, soit sur une fonction réactive d'une chaîne latérale de ce peptide vecteur (Majumdar and Siahaan, Med Res Rev., Epub ahead of print). Idéalement, dans une stratégie prodrogue, les bras espaceurs sélectionnés doivent permettre une bonne libération de la substance active et l'amélioration de la solubilité du conjugué (Molema et al, 2001, Drug targeting, organ-specific stratégies. In Methods and principles in médicinal chemistry, vol. 12). Diverses liaisons chimiques covalentes labiles peuvent ainsi être générées entre les 2 entités (vecteur et substance active) au travers ou non d'un bras espaceur : amides, carbamates, esters, thioester, disulfure, etc. Par exemple, il a été montré dans la littérature que les liaisons disulfures, relativement stables dans le plasma, peuvent être clivées, par des enzymes telles que la protein-disulfïde reductase, à l'intérieur du compartiment intracérébral pour redonner une fonction thiol libre (Saito et al., 2003, Adv. Drug Deliv. Rev., 55, 199-215).
D'autres composés intéressants sont ceux dans lesquels le bras espaceur représente un polymère tel que le polyéthylène glycol (PEG). En effet, il a été montré dans la littérature que la conjugaison d'une molécule organique d'intérêt biologique avec un PEG permettait d'augmenter la demi- vie plasmatique de cette molécule {Greenwald et al, 2003, Adv. Drug Deliv. Rev., 55, 217-250) et de diminuer sa clairance.
Les conjugués vecteurs/substances actives ou d'intérêt sont utilisables en diagnostic, imagerie ou thérapie d'une pathologie, d'une lésion ou d'un trouble du SNC pour la préparation d'un médicament capable de traverser la BHE, d'une tumeur cancéreuse cérébrale ou d'un autre type de cellules cancéreuses pour la préparation d'un médicament capable de traverser les membranes cellulaires cancéreuses, et/ou de pathologies infectieuses pour la préparation d'un médicament capable de traverser les membranes cellulaires et de cibler les cellules infectées des pathologies infectieuses cérébrales ou autres, de type bactériennes, virales, parasitaires ou fongiques.
EXEMPLE VII
Perfusion cérébrale in situ pour les vecteurs et les conjugués vecteur/molécule d'intérêt thérapeutique ou agent d'imagerie (ou de diagnostic) ou toute autre molécule comme une sonde moléculaire, et étude de leur cinétique de transport au travers de la BHE, et de leur accumulation dans le cerveau de souris.
La technique de perfusion cérébrale in situ (chez la souris mâle adulte OF1) est utilisée pour illustrer le passage dans le cerveau au travers de la BHE.
Au préalable, les peptides vecteurs sont radiomarqués au tritium (3H), élément qui offre la plus forte sensibilité pour la détection de composés radioactifs notamment sur des coupes de tissus. La préparation de peptides radioactifs à haute radioactivité spécifique (RAS, pouvant aller jusqu'à 100 Ci/mmole) est réalisée par une stratégie d'acylation de la fonction aminé N-term par de l'anhydride propionique (ou propanoïque) tritié ou du propionyl-N-succinimide (NPS) tritié. Cette méthode de tritiation peut être appliquée à tous les peptides (vecteurs, ou conjugués entre un peptide thérapeutique et un peptide vecteur en tandem ou via un linker (pouvant être de nature peptidique ou organique)), à condition que la modification du N-term n'affecte pas l'affinité des peptides pour le récepteur ciblé (i.e. LDLR) ou leur activité biologique dans le cas de peptides thérapeutiques.
La réaction de tritiation du peptide vecteur en N-term par propionylation est réalisée dans le DMF (1 mg de peptide dans 100 à 450 μΐ selon solubilité) par ajout de 0,1 équivalent de NPS tritié pendant 5 mn à T ambiante, puis de 0,9 équivalent de NPS froid (non tritié) pendant lh, puis d'un nouvel équivalent de NPS froid pendant 5 h. Le milieu réactionnel est ensuite laissé à 4°C pendant la nuit et purifié le lendemain par HPLC. La RAS pour chaque peptide tritié est typiquement comprise entre 5 et 10 Ci/mmol. La quantité totale de radioactivité préparée par synthèse est généralement comprise entre 600 et 950 μθ.
Le couplage covalent des peptides radiomarqués (au 3H par exemple) à une substance active radio marquée (au 14C par exemple) est effectué, tel que décrit par exemple dans Γ EXEMPLE VI. Comme mentionné précédemment, ce couplage covalent est réalisé en fonction de la structure et des propriétés physico-chimiques de la substance active, en particulier la présence de groupes chimiques fonctionnels pouvant être modifiés sans diminuer l'activité biologique de cette substance. Les synthèses des conjugués radiomarqués sont réalisées par extrapolation à partir des voies de synthèse mises au point sur les conjugués non-radiomarqués.
Les techniques brièvement résumées ci-dessous ont été développées précédemment pour étudier la distribution cérébrale de substances actives et en particulier le rôle de la BHE et plus particulièrement du LDLR dans la pénétration de ces molécules dans le cerveau. Les techniques de perfusion cérébrale in situ sont parmi les plus exigeantes techniquement et les plus difficiles à réaliser chez la souris. Toutefois, la perfusion cérébrale in situ (comme les modèles in vitro) permet un contrôle total de la composition du perfusât artificiel, afin de maintenir les cellules et la vascularisation du cerveau dans des conditions physiologiques et anatomiques normales au sein de l'animal, sans le facteur perturbant de distribution systémique.
Cette stratégie de perfusion cérébrale in situ normalement effectuée chez le rat a été adaptée chez la souris (Dagenais et al., 2000, J Cereb Blood Flow Metab., 20(2), 381-6) afin d'élargir son application à évaluer les paramètres cinétiques de transport au niveau de la BHE et de la barrière sang-rétine, et ceci également chez des souris transgéniques et KO mutantes pour les récepteurs, enzymes ou transporteurs de substances actives. Il s'agit d'une cathétérisation d'une carotide chez des souris (typiquement OF1) anesthésiées, et de la ligature de certaines branches de cette carotide (externe, thyroïdienne, occipitale) afin de perfuser spécifiquement la carotide interne et les artères ptérygopalatines, qui sont utilisées pour évaluer la captation cérébrale des vecteurs et conjugués. Le cathéter permet de remplacer la circulation générale par une infusion avec un perfusât bien contrôlé (tampon bicarbonate, plasma ou sang) en passant par la carotide. Du tampon bicarbonate de Krebs oxygéné est utilisé en premier lieu afin d'évaluer les capacités de passage cérébral des vecteurs et conjugués. Après cathétérisation de la carotide, le débit sanguin endogène est stoppé en sectionnant les ventricules du cœur afin d'éviter le mélange du tampon avec le sang et l'élévation de la pression sanguine. La durée de la perfusion à débit fixe est contrôlée. La perfusion avec tampon peut être prolongée jusqu'à 20 min, voire jusqu'à lh en présence de transporteurs d'oxygène (érythrocytes lavés) pour les études de Receptor-Mediated Transport (RMT). Les expériences réalisées ont permis de déterminer le transport cérébral, ou coefficient de transfert (Kin : rapport entre le volume de distribution et le temps de perfusion cérébrale), de plusieurs peptides vecteurs de l'invention. Le temps de perfusion cérébrale pour ces expériences est de 5 min avec un débit de perfusât à 2 ml/min. Ainsi, le Kin des peptides vecteurs de SEQ ID NO : 2 et SEQ ID NO : 4, radiomarqués à une RAS de 2 Ci/mmole, est respectivement de 3,3 et 3,0 x 10~4 ml/s/g.
A titre comparatif, la transferrine (Tf) a un IQn de 3,0 x 10"4 ml/s/g {Demeule et al, 2008, J. Neurochem., 106 (4), 1534-1544), et le peptide de référence, SEQ ID NO : 17 présente, dans les mêmes conditions expérimentales, un IQn de 3,2 ± 0,4 x 10"4 ml/s/g.
Ces résultats montrent donc que les peptides vecteurs de l'invention, bien que de taille réduite et de configuration avantageuse, possèdent un coefficient de transfert cérébral très élevé, supérieur à celui de la transferrine.
Par ailleurs, ce type d'expérience de perfusion cérébrale in situ permet également d'établir une distinction entre les composés qui restent dans le compartiment vasculaire cérébral de ceux ayant franchi la membrane endothéliale abluminale pour entrer dans le parenchyme cérébral. Cette technique, appelée déplétion capillaire post-perfusion, permet de mesurer si la molécule traverse effectivement l'endothélium afin d'entrer dans le parenchyme cérébral. L'utilisation de cette technique permet de démontrer que les peptides vecteurs spécifiques (ou les conjugués) s'accumulent dans le parenchyme cérébral. Ainsi, cette technique (Triguero et al., 1990, J Neurochem., 54(6), 1882-8) est utilisée afin de faire la distinction entre la fraction de vecteurs (ou conjugués), qui a transitée par l'endothélium et est entrée dans le cerveau par l'espace extracellulaire ou les cellules du cerveau, et la fraction restant associée aux cellules endothéliales.
Les étapes clés des études de perfusion cérébrale in situ chez la souris peuvent se résumer comme suit pour les vecteurs et conjugués étudiés : i) Evaluation de la tolérance (non toxicité) des vecteurs et conjugués au niveau de la BHE, conservation de l'intégrité de cette barrière physiologique.
ii) Etude de la cinétique et de la linéarité de la captation cérébrale via RMT par le LDLR.
iii) Etude du taux de captation cérébrale en fonction de la concentration en vecteurs ou en conjugués (Tmax, Km).
iv) Etude des mécanismes de transport à l'aide de substrats inhibiteurs ou modulateurs du LDLR.
v) Distribution dans les compartiments du cerveau : déplétion capillaire (Triguero et al., 1990, J Neurochem., 54(6), 1882-8).
vi) Evaluation du taux de liaison des vecteurs et conjugués aux protéines plasmatiques (albumines, etc.), étude de leur influence sur la captation cérébrale de ces molécules.
vii) Administration intraveineuse et évaluation de la distribution tissulaire (cerveau et autres organes) en fonction du temps.

Claims

REVENDICATIONS
1. Peptide ou pseudo-peptide, caractérisé en ce qu'il répond à la formule générale (I) suivante :
Al-Met-A2-Arg-Leu-Arg-A3-Cys (I) dans laquelle Al désigne la cystéine (Cys) ou un de ses analogues ou isostères, A2 désigne la proline (Pro) ou un de ses analogues ou isostères, et A3 désigne la glycine (Gly) ou un des ses analogues ou isostères.
2. Peptide ou pseudo-peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que Al désigne Cys ou un de ses analogues choisis parmi la (D)-cys, la Pénicillamine (Pen) et la (D)- pénicillamine ((D)-pen).
3. Peptide ou pseudo-peptide selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que A2 désigne un analogue de Pro choisi parmi l'acide pipécolique (Pip) et l'acide thiazo lidine-4-carboxylique (Thz) .
4. Peptide ou pseudo-peptide selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que A3 désigne Gly ou la sarcosine (Sar).
5. Peptide ou pseudo-peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il répond à la formule générale (Γ) suivante :
Al-Met-A2-Arg-Leu-Arg-Gly-Cys (Γ) dans laquelle Al désigne la cystéine ou un de ses analogues ou isostères, de préférence Al désigne Cys, (D)-cys, Pen, ou (D)-pen ; et A2 désigne Pro ou un de ses analogues ou isostères, de préférence A2 désigne Pip ou Thz.
6. Peptide ou pseudo-peptide selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu'il est choisi parmi les peptides de séquence SEQ ID NOs : 1 à 10.
7. Peptide ou pseudo-peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il est de configuration cyclique.
8. Peptide ou pseudo-peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il lie le récepteur humain aux lipoprotéines de faible densité (hLDLR) à la surface de membranes cellulaires.
9. Peptide ou pseudo-peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une liaison peptidomimétique, choisie de préférence parmi l'intercalation d'un groupe méthylène (-CH2-) ou phosphate (-P02-), aminé secondaire (-NH-) ou oxygène (-0-), des alpha-azapeptides, alpha-alkylpeptides, N-alkylpeptides, phosphonamidates, depsipeptides, hydroxyméthylènes, hydroxyéthylènes, dihydroxyéthylènes, hydroxyéthylamines, retro-inverso, méthylèneoxy, cétométhylène, esters, phosphinates, phosphiniques, phosphonamides, analogues carba.
10. Peptide ou pseudo-peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que la fonction N-terminale (N-term) par une acylation et/ou en ce que la fonction C-terminale (C-term) est protégée par une amidation ou une estérification.
11. Peptide ou pseudo-peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, pour son utilisation pour vectoriser une substance active ou d'intérêt en diagnostic, imagerie ou thérapie.
12. Peptide ou pseudo-peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, pour son utilisation pour augmenter l'activité biologique ou diminuer la toxicité d'une substance active ou d'intérêt à laquelle il est couplé.
13. Composé conjugué de formule (III) suivante : VxLzDy (III)
dans laquelle V représente un peptide ou pseudo-peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, L représente un bras espaceur, D représente une substance active ou d'intérêt, x et y sont des nombres entiers compris entre 1 et 5 et z est un entier compris entre 0 et 10.
14. Composé conjugué selon la revendication 14, caractérisé en ce que x=z=y=l ; x=z>y, y=z>x ou z>x>y ; ou en ce que z est égal à 0 et x et y sont égal à 1 ou y est supérieur à x.
15. Composé conjugué selon l'une des revendications 13 à 14, caractérisé en ce que la substance active ou d'intérêt est une molécule d'intérêt thérapeutique, un agent de diagnostic ou d'imagerie médicale, ou une sonde moléculaire, choisie de préférence parmi une petite molécule chimique, un peptide ou polypeptide, une protéine, un antigène, un anticorps ou une partie d'anticorps, un acide nucléique ou un oligonucléotide, un ribozyme, un marqueur ou un traceur.
16. Composé conjugué selon l'une des revendications 13 à 15, caractérisé en ce que le couplage entre V et D, ou entre V et L d'une part et entre L et D d'autre part, est réalisé par une ou plusieurs liaisons covalentes, ioniques, hydrogènes, hydrophobes ou de Van der Waals, clivables ou non en milieu physiologique ou à l'intérieur de cellules.
17. Composé conjugué selon l'une quelconque des revendications 13 à 16, caractérisé en ce que D est couplé à V, le cas échéant via L, au niveau d'une ou des extrémités N- term et/ou C-term de V et/ou au niveau d'un ou plusieurs groupements réactifs portés par les chaînes latérales des acides aminés naturels ou non, constitutifs de V.
18. Procédé de préparation d'un composé conjugué selon l'une des revendications 13 à 17, caractérisé en ce qu'il comprend une étape de couplage entre un peptide ou pseudo- peptide V et une substance D, le cas échéant via L, de préférence par voie chimique, biochimique, enzymatique, ou par génie génétique.
19. Composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un composé conjugué selon l'une des revendications 13 à 18 et un ou des excipients pharmaceutiquement acceptables.
20. Composition diagnostique caractérisée en ce qu'elle comprend un agent de diagnostic ou d'imagerie médicale constitué d'un composé conjugué selon l'une des revendications 13 à 18.
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