WO2009116750A2 - 혈관 재협착방지 스텐트 코팅용 조성물 및 이를 이용해 제조된 스텐트 - Google Patents

혈관 재협착방지 스텐트 코팅용 조성물 및 이를 이용해 제조된 스텐트 Download PDF

Info

Publication number
WO2009116750A2
WO2009116750A2 PCT/KR2009/001257 KR2009001257W WO2009116750A2 WO 2009116750 A2 WO2009116750 A2 WO 2009116750A2 KR 2009001257 W KR2009001257 W KR 2009001257W WO 2009116750 A2 WO2009116750 A2 WO 2009116750A2
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
stent
sirna
composition
gene
coated
Prior art date
Application number
PCT/KR2009/001257
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2009116750A9 (ko
WO2009116750A3 (ko
Inventor
강상원
최철희
권기환
강동훈
Original Assignee
이화여자대학교 산학협력단
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 이화여자대학교 산학협력단 filed Critical 이화여자대학교 산학협력단
Publication of WO2009116750A2 publication Critical patent/WO2009116750A2/ko
Publication of WO2009116750A3 publication Critical patent/WO2009116750A3/ko
Publication of WO2009116750A9 publication Critical patent/WO2009116750A9/ko

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00—Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/82—Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/38—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix containing added animal cells
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/02—Inorganic materials
    • A61L27/04—Metals or alloys
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/28—Materials for coating prostheses
    • A61L27/34—Macromolecular materials
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2250/00—Special features of prostheses classified in groups A61F2/00 - A61F2/26 or A61F2/82 or A61F9/00 or A61F11/00 or subgroups thereof
    • A61F2250/0058—Additional features; Implant or prostheses properties not otherwise provided for
    • A61F2250/0067—Means for introducing or releasing pharmaceutical products into the body

Definitions

  • the present invention relates to a composition for preventing vascular restenosis stent coating, a stent for preventing vascular restenosis, and a method of manufacturing the same.
  • Atherosclerosis is a chronic inflammatory disease that lasts for more than a few decades.
  • the earliest sign of the disease is that the blood vessels in the arteries look normal, but lichen deposits, called fatty streak, build up in the intima of the blood vessels.
  • the fat mass stimulates the endothelial cell layer to attract monocytes to the lining, and these monocytes differentiate into macrophages to swallow fat.
  • Some macrophages that have absorbed excess fat turn into foam cells, stimulating the growth of smooth muscle cells (SMC) and secreting factors that stimulate smooth muscle cells to move into the endometrium.
  • SMC smooth muscle cells
  • This series of processes causes vascular obstruction. Smooth muscle cells exposed to the vascular lumen attract platelets and at the same time promote thrombosis, eventually leading to plaque formation at the wound site.
  • Coronary arteries are often an area prone to atherosclerosis. Plaque formation in the coronary arteries reduces blood flow to the heart muscle, leading to angina, myocardial infarction and
  • angioplasty involves the use of coronary graft surgery, the most commonly used percutaneous transluminal angioplasty (PTA), and percutaneous coronary angioplasty (PCTA). How to insert it.
  • PTA percutaneous transluminal angioplasty
  • PCTA percutaneous coronary angioplasty
  • an elongated balloon catheter consisting of a manifold portion for inserting a liquid on the opposite side of the balloon is used for implanting solids such as an intravascular stent.
  • angioplasty with balloon catheter removes plaque and simultaneously expands the range of damaged vascular structures. During the procedure the endothelial cell layer near the disease site is always damaged.
  • vascular restenosis Without the endothelial layer, implantation and insertion of synthetic materials, such as metals or polymers, promotes a complex process involving thrombus formation followed by platelet replenishment and aggregation. Aggregated platelets release a major factor called platelet-derived growth factor (PDGF), which induces the proliferation and migration of smooth muscle cells. As a result, intimal hyperplasia occurs in the proliferation of SMC and in the accumulation of extracellular matrix. These new symptoms of vasculature appear up to 30-40% in a few months, leading to the failure of angioplasty. The vascular remodeling process caused by the symptoms of intima is called vascular restenosis.
  • PDGF platelet-derived growth factor
  • mTOR is a signaling agent that acts at the bottom of the PI3-K / Akt pathway. Inhibition of mTOR causes cell death because the PI3-K / Akt pathway is one of the major survival signals.
  • rapamycin is a toxic substance, local injection of the stent insertion site is not very fatal. Therefore, implanting a rapamycin-releasing stent into a blood vessel effectively causes vascular smooth muscle cell death and prevents endometrial hyperplasia.
  • siRNA small-interfering RNA
  • siRNA small-interfering RNA
  • siRNA has a relatively long sequence compared to the conventional antisense oligo DNA, and because it is very sequence specific to decompose mRNA, it is possible to selectively inhibit only a desired gene. Therefore, by mixing siRNA for genes that selectively inhibit vascular smooth muscle cell growth and siRNA for genes that promote endothelial cell growth, endothelial cell growth can be suppressed while inhibiting vascular smooth muscle cell growth. have.
  • siRNA intravenous injection or oral administration is limited because it is not stable in the blood due to RNase in the blood and can not easily pass through the cell membrane when introduced into the bloodstream (Scherer LJ, et al., Nat) . Biotech. 21, 1457-1465, 2003; Kurreck J, et al., Eur. J. Biochem. 270 (8), 1628-1644, 2003).
  • siRNA injection or intranasal injection has been attempted and cultured cells have been known to enter membrane receptor-independently, they have not been successful with very low efficiency. Therefore, many efforts have been made to develop a suitable delivery medium of siRNA and have been developed based on cultured cells.
  • the most efficient delivery media for siRNAs developed so far is to use adeno or retroviral vectors, cationic lipids or liposomes as non-viral vectors, and cationic polymers such as peptides. (Akhtar S, et al., J. Clin. Invest. 117 (12), 3623-3632, 2007). However, no attempt was made to deliver siRNA in vivo to the atherosclerotic lesions via stents.
  • An object of the present invention is to provide a composition for anti-vascular restenosis stent coating.
  • Another object of the present invention is to provide a stent for preventing vascular restenosis coated with a composition for coating vascular restenosis prevention stent.
  • Still another object of the present invention is to provide a method for preparing a blood vessel restenosis preventing stent coated with the composition for preventing restenosis stent.
  • the present invention provides a composition for coating a vascular restenosis prevention stent containing siRNA and a transformant for a gene causing vascular restenosis.
  • SiRNA contained in the composition of the present invention is siRNA for platelet-derived growth factor receptor (PDGFR) gene associated with vascular restenosis, siRNA for the Intimal thickness receptor (ITR) gene, interleukin- SiRNA for 1 receptor (IL-1R) gene, siRNA for ⁇ (v) ⁇ (3) -Integrin receptor gene, siRNA for Low density lipoprotein receptor (LDLR) gene, Angiotensin II SiRNA against angiotensin II type I receptor gene, siRNA against ribonucleotide reductase gene, siRNA against cyclooxygenase-2 gene, platelet glycoprotein IIb / IIIa receptor siRNA for platelet glycoprotein IIb / IIIa receptor genes, and mixtures thereof.
  • PDGFR platelet-derived growth factor receptor
  • ITR Intimal thickness receptor
  • IL-1R interleukin- SiRNA for 1 receptor
  • siRNA for ⁇ (v) ⁇ (3) -Integrin receptor gene siRNA for Low density lipoprotein receptor (
  • Preferred siRNAs contained in the composition of the present invention are mixtures of one or more siRNAs specific for PDGFR, and more preferred siRNAs are represented by SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 3, SEQ ID NO: 5 At least one siRNA mixture selected from the group consisting of a sequence consisting of: SEQ ID NO: 7, and an antisense sequence thereof.
  • the siRNA contained in the composition of the present invention may be a commercially available product, and a nucleotide sequence that can be decomposed by binding to its mRNA using a target gene that induces vascular restenosis is designed in a laboratory. It can also be used.
  • the term 'siRNA' includes siRNA that has been chemically modified to prevent rapid degradation by nucleases in vivo.
  • One skilled in the art can synthesize and modify the siRNA in a desired manner using methods known in the art. (Henschel A, et al., A web-based tool for the design and quality control of siRNAs. Nucleic Acids Research 32 (Web Server Issue), W113-W120, (2004) DEQOR).
  • siRNA contained in the composition of the present invention has a double helix structure, it is a relatively stable structure than ribonucleic acid or antisense oligonucleotide having a single helix structure, but is rapidly decomposed by nucleic acid degrading enzymes in vivo, thereby causing chemical modification. The rate of decomposition can be reduced.
  • Various chemical modification methods well known in the art can be used to ensure that the siRNA is stable and resistant to easy degradation.
  • the siRNA contained in the composition of the present invention is coated on the stent and applied locally to the vascular endothelium and then introduced into the cell to decompose the mRNA, thereby effectively preventing the expression of the target gene.
  • siRNA contained in the composition of the present invention selectively inhibits only the desired gene because the action of siRNA that degrades the mRNA of the target gene is sequence specific.
  • the transfection reagent contained in the composition of the present invention is an efficient introduction of siRNA into mammalian cells, and includes a polyamine, a lipid preparation, a cationic liposome, or a cation. Cationic polymers and the like are preferred, and polyamine-containing or cationic liposome preparations are more preferred.
  • Lipofectamine 2000 (# 11668, Invitrogen, USA) currently available, Lipofectamine RNAiMAX (# 13778, Invitrogen, USA), Oligofectamine transformants (# 12252, Invitrogen, USA); HiPerFect transformants (# 301704, QIAGEN, Netherlands); Dharma FECT 1, 2, 3 or 4 siRNA transformants (T 2001, 2002, 2003, 2004, DHARMACON, USA), Dharma FECT Duo lipid reagent (T-2010, DHARMACON, USA); DOTAP Liposomal Transformants (11811177001, Roche, Germany), DOSPER Liposomal Transformants (11781995001, Roche, Germany), Fugene6 (11988387001, Roche, Germany), X-tremeGENE siRNA Transformants (04476093001, Roche, Germany); siPORT Lipid transformants (AM4504, Ambion, USA), siPORT Amine Polyamine-Based transformants (AM4502, Ambion, USA), siPORT NeoFX transformants (
  • the present invention also provides a stent coated with a first coating liquid comprising a composition for coating an anti-vascular restenosis stent containing siRNA and a transformant for a gene causing vascular restenosis.
  • the stent to which the composition of the present invention is coated may be a metal or plastic itself, or a metal or plastic coated with heparin or phosphocholine (PC) or the like.
  • a metal stent (bear metal stent), a metal stent coated with phosphocholine (PC-metal stent), and the like, and more preferably, a metal stent coated with phosphocholine may be used.
  • the stent can also be manufactured and used, commercially available phosphocholine (PC) -coated metal stents (ARTHOSpico, Biocompatibles Ltd, England), metal stents (ARTHOSpico, AMG International GmbH, Germany), heparin coated metal stents ( Carmeda AB, Sweden).
  • PC-metal stents when using lipid preparations as transformants PC-metal stents when using cationic liposomes as transformants, or metal stents or PC-metal stents when using polyamines as transformants. desirable.
  • the present invention also provides a variety of stents coated with various transformants that exhibit excellent siRNA delivery effects.
  • the present invention further provides a stent for preventing vascular restenosis, wherein the transformation agent is a lipid preparation, and the stent used is a PC-metal stent.
  • the present invention also provides a stent for preventing vascular restenosis, wherein the transformant is a polyamine, wherein the stent used is preferably a metal stent or a PC-metal stent, more preferably a PC-metal stent.
  • the coated stent shows a very good siRNA delivery effect, and in the case of using a polyamine-containing agent as a transformant, it shows a particularly excellent siRNA delivery effect regardless of the type of stent and the PC-metal stent. Is even better.
  • the present invention also provides a stent for preventing vascular restenosis further coated with a second coating solution including a biodegradable polymer or a non-biodegradable polymer on the stent coated with the first coating solution.
  • the biodegradable polymer or non-biodegradable polymer included in the second coating solution may be gelatin, polyglycolic acid / polylactic acid (PGLA), polycaprolactone (PCL), polyhydroxybutyrate Biodegradable polymers such as polyhydroxybutyrate valerate (PHBV), polyorthoester (POE), and polyethyleneoxide / polybutylene terephthalate (PEO / PBTP); And non-biodegradable polymers such as polyurethane (PUR), silicone (silicone, SIL), and polyethylene terephthalate (PET).
  • PGLA polyglycolic acid / polylactic acid
  • PCL polycaprolactone
  • PEG polyhydroxybutyrate valerate
  • POE polyorthoester
  • PEO / PBTP polyethyleneoxide / polybutylene terephthalate
  • non-biodegradable polymers such as polyurethane (PUR), silicone (silicone, SIL), and polyethylene
  • the second coating solution of the present invention is a solution of 0.1-5%, preferably 0.1-2% (w / v%) of the biodegradable polymer or non-biodegradable polymer, and preferably water or ethanol as a solvent. Can be used.
  • the stent coated with the composition of the present invention when the siRNA is injected into the bloodstream can effectively exhibit a therapeutic effect without the problem of stability as in the prior art.
  • the stent coated with the composition of the present invention successfully delivers siRNA for genes that cause vascular stenosis to the vessel wall to transform cells associated with vascular stenosis.
  • Stents coated with a composition containing siRNA for receptors or enzymes involved in the vascular restenosis, in particular siRNA for PDGFR ⁇ , have a very good effect on inhibiting vascular restenosis.
  • the present invention comprises the steps of: a) preparing a composition for coating vascular restenosis prevention stents containing siRNA and transformants for genes that cause vascular restenosis; b) coating the stent with a first coating solution comprising the composition; c) provides a method of manufacturing a stent for preventing vascular restenosis comprising the step of drying.
  • the present invention further comprises the steps of d) further coating with a second coating liquid on the dried coating layer; And e) provides a method for producing a stent for preventing vascular restenosis comprising the step of drying.
  • the present invention also provides a method for preventing vascular restenosis comprising applying a stent coated with an anti-vascular restensive stent coating composition containing a siRNA and a transformant to a gene causing vascular restenosis to the endothelium. .
  • si-CONT means non-fluorescent control siRNA
  • Cy3 means using a red fluorescent filter to measure the DY-547 phosphor.
  • H & E staining shows a significant thickening of the lining in the case of balloon injury.
  • FIG. 2A is a diagram confirming the function of siRNA against PDGF-BB or PDGFR ⁇ introduced as compared to control siRNA with a decrease in intima thickness (arrowed portion).
  • 2B is a graph showing quantification of the inner film thickness.
  • Figure 3 is a diagram confirming the elution of the coating and coating siRNA made of a metal stent.
  • FIG. 4 is a diagram confirming whether or not siRNA is delivered to the vessel wall from the implanted stent.
  • Figure 5 is a graph showing the quantitative analysis of the amount of fluorescence delivered to the vessel wall.
  • Reagents used in the embodiments of the present invention are as follows. Synthetic selected siRNA SMART pools (Dharmacon RNA Technologies, USA), siCONTROL nontargeting siRNA pool (Dharmacon RNA Technologies, USA), fluorescently labeled siGLO-red siRNA (Dharmacon RNA Technologies, USA); SiPORTTM NeoFXTM reagent (Ambion, USA), phosphocholine (PC) -coated metal stents (ARTHOSpico, Biocompatibles Ltd, England), metal stents (ARTHOSpico, AMG International GmbH, Germany).
  • Example 1 Preparation of a composition for anti-vascular restenosis stent coating
  • siPORT NeoFX TM formulation was first diluted in 100 ml Opti-MEM I medium (Invitrogen, USA) and left for 10 minutes at room temperature.
  • 1 ml of 20 mM siRNA was diluted in 100 ml Opti-MEM I medium to give a final siRNA concentration of 200 nM.
  • Both diluted mixed solutions were mixed well little by little to prepare a final mixed solution, which was left for 10 minutes at room temperature again to prepare a transformed mixed solution containing siRNA and a transformant.
  • siGLO control siRNA with DY-547 red phosphor attached (# D-001630-02-05, Dharmacon) was used at a final concentration of 20-200 nM.
  • a transformed mixed solution containing the siRNA prepared in Example 1 and a transformant was prepared. Soak the metal stent or PC-metal stent in this mixture for 5 minutes, and dry for 5 minutes in air. The siRNA-coated stent is again coated with 1% gelatin solution for 5 minutes and carefully dried in air for 5 minutes. I was.
  • the coated stent was immersed in a beaker containing phosphate-buffered saline (PBS) and stirred with a magnetic stirrer for 1 hour. After taking out the indicated time zone and drying again, the degree of elution was confirmed by measuring the fluorescence (Cy3 filter) of the red wavelength band remaining on the stent with a fluorescence shaper (Typoon TM ).
  • PBS phosphate-buffered saline
  • Balloon damage to the left carotid artery of normal male rats was performed with an infiltrated 2F Fogarty balloon catheter (Edwards Lifesciences, USA) in a known surgical manner (Usui M, et al., FASEB J. 2002; 16: 1838-1840). After paralyzing 10 week old male rats, the left outer carotid artery was exposed and the boundaries of the carotid artery were compressed. Transverse arteriotomy of the external carotid artery (transverse arteriotomy) pushed the catheter about 1 cm and then reciprocated the carotid artery three to five times to damage the endothelial cells in contact with the balloon.
  • the area of four different parts of the H & E stained area was measured by analysis software (NIH Image 1.62; http://rsb.info.nih.gov/nihimage/download. html). Briefly, areas surrounded by lumen space, internal elastic lamina (IEL), and external elastic lamina (EEL) were measured. The intima area was measured by excluding the lumen area from the IEL area, and the media area was measured by excluding the IEL area from the EEL area. The results were analyzed using the average of the area values of five slides per horse and expressed as the intima / media ratio.
  • the rats were first anesthetized by breathing and the right leg hip was dissected.
  • the lower part of the femoral artery was exposed and then the lower part of the puncture was ligated with the artery / vein together with a 4/0 black silk.
  • the artery was then punctured with a needle catheter.
  • the needle was removed and the guide wire was placed in the abdominal aorta using a guiding catheter.
  • an introducer was installed. Subsequently, the guide wire was removed and finally, the stent coated with the composition for coating the stent of the present invention through the introducer was placed in the abdominal artery, and the vessel was sutured to complete the transplantation.
  • the stented artery was plastic-embedded (Technovoit 9100, Wehrheim, Germany) (PNAS 2006; 10 (1): 159-164 Heart 2002; 88: 401-405) Made of slices. SiGLO fluorescence and metal stents were observed using a confocal laser-scanning microscope (LSM510, Carl-Zeiss).
  • siGLO Red fluorescent DY547-labeled control siRNA called siGLO (# D-001630-02-05, Dharmacon, USA) was used to confirm delivery of target siRNA.
  • Non-fluorescent control siRNA or siGLO not mixed with the transformant was also used as a control solution mixed with phosphate buffer (PBS) so that the final concentration is 20 ⁇ 200 nM.
  • PBS phosphate buffer
  • siRNAs that inhibit the expression of the proteins PDGFR and PDGF-BB can be treated separately, but four different siRNA mixtures, listed in Table 1 for PDGFR and Table 2 for PDGF, can be used to enhance specificity. (Dharmacon Co .; Rat PDGFB (# L-081176-01-0010)) was used.
  • siRNA, siRNA for PDGF-BB or siRNA for PDGFR ⁇ mixed with a transformant was injected 200 ⁇ l into the right carotid artery of exposed and damaged mice as in Experiment 1 and incubated for 15 minutes.
  • the right carotid artery was cut out to prepare a section in the frozen state. Prepared sections were H & E stained to observe the thickness of thickened endovascular. Balloon damage in the carotid artery significantly increased proliferation and migration of smooth muscle cells in the intima area, as shown by the arrows highlighted in FIG. 2A.
  • Transformation mixed solution containing siGLO prepared by Example 1 composition for anti-stenosis stent coating
  • two different stents that is, a metal stent (bear metal stent) and phosphocholine (coated nothing) , PC
  • the coated metal stent was coated in the method of Example 2, each divided into two groups, one group was subjected to additional coating with 1% gelatin aqueous solution as the second coating solution, the other One group did not have additional coating.
  • immersed in phosphate-buffered saline to elute siGLO slowly stirred in a magnetic mixer and removed by the time slots indicated in FIG. 3, as described in Example 2 Measured.
  • the amount of siGLO coated on the PC-metal stent was about twice as high as the metal stent.
  • elution of about 30% of the coated siRNA occurred within the initial 30 minutes, and then stabilized and no further elution occurred (FIG. 3).
  • the group coated with the second coating solution of gelatin was significantly delayed in dissolution of siGLO compared to the group without additional coating, indicating that more than 90% of siGLO remained regardless of the stent type.
  • the stent additionally coated with gelatin second coating solution on the PC-metal stent was twice as close as the simple metal stent. It was found that the positive siRNA was kept stable to give a very desirable result. Furthermore, it was found that the use of a second coating solution containing various bio-degradable or non-biodegradable polymers including gelatin plays an important role in the stable delivery of siRNA.
  • Metal stents coated with the siGLO transformation mixture (composition for preventing stenosis) and additionally coated with a second coating solution containing an aqueous solution of 1% gelatin were implanted into arteries of mice and maintained for 2 weeks. . And the arterial vessels were cut out and fixed for analysis, and tissue sections were confirmed and found that the metal stent was well implanted in the vessel wall (Fig. 4, arrow).
  • siGLO was mixed with one of the transformants selected from siPORT NeoFX, Polyamine, and Lipofectamine to prepare respective transformation mixtures (compositions for anti-stenosis stent coating).
  • the prepared transfection mixture was coated with a metal or PC-metal stent.
  • the coated stents were further coated with a second coating solution containing 1% gelatin aqueous solution and implanted into the arteries of the mice and maintained for 2 weeks.
  • the fluorescence image shown in FIG. 4 shows that the siGLO diffuses into the vessel wall and remains stable. This confirmed that the siRNA was stably diffused and distributed in the blood vessel wall. Therefore, it was confirmed that the delivery method of siRNA through the stent coated with the composition of the present invention is stably and safely applicable in real life, and that siRNA can be applied as a new method for treating vascular restenosis.
  • siRNA mixed with polyamine was best delivered to the arterial vessel wall when removed on graft when coated on a metal stent.

Abstract

본 발명은 혈관재협착을 유발하는 유전자에 선택적인 siRNA와 형질전환제(transfection reagent)를 포함하는 혈관재협착 방지 스텐트용 코팅 조성물을 제공한다. 본 발명은 또한 상기 조성물이 코팅된 스텐트, 그 제조방법 및 나아가 이를 혈관 내막에 직접 적용하는 단계를 포함하는 혈관재협착을 예방하는 방법을 제공한다. 본 발명의 조성물은 스텐트에 코팅된 후 국소부위에서 siRNA를 효율적으로 안정하게 세포 내로 도입시키므로 독성이 없이 혈관재협착을 방지할 수 있는 작용효과를 나타낸다.

Description

[규칙 제26조에 의한 보정 07.08.2009]　혈관 재협착방지 스텐트 코팅용 조성물 및 이를 이용해 제조된 스텐트
본 발명은 혈관 재협착방지 스텐트 코팅용 조성물, 이를 이용해 제조된 혈관재협착 방지용 스텐트, 및 그 제조방법에 관한 것이다.
동맥경화(Atherosclerosis)는 만성 염증 질환으로 수십년 이상 진행되는 질병이다. 이 질병의 초기 징후는 동맥의 혈관은 정상처럼 보이지만 지방괴(fatty streak)라 불리는 지방침착이 혈관의 내막(intima)에 쌓여있게 되는 것이다. 지방괴는 내피세포층을 자극함으로써 단핵세포들을 내막부분으로 끌어 모으고 이 단핵세포들이 마크로파지로 분화되어 지방적을 삼켜버린다. 과도한 지방을 흡수한 일부 대식세포는 거품세포(foam cell)로 바뀌어 혈관 평활근세포(smooth muscle cell, SMC)의 성장을 자극하고 평활근세포가 혈관내막으로 이동하도록 자극하는 인자들을 분비한다. 이런 연속적인 일련의 과정들이 혈관폐색을 일으킨다. 혈관 강(lumen)으로 노출된 평활근 세포는 혈소판을 끌어 모으고 동시에 혈전증을 촉진하게 되며 결국 상처 부위의 플라그 형성을 유도한다. 관상동맥은 종종 죽상동맥경화증에 의해 병증을 일으키기 쉬운 부분이다. 관상동맥의 플라그형성은 심장근육으로 흐르는 혈류를 감소시켜 결국 협심증, 심근경색, 그리고 죽음에까지 이르게 한다.
폐색된 혈관구조를 회복하는 방법은 관상동맥 이식 수술 방법과, 가장 일반적으로 쓰이는 경피적 혈관 성형술 (percutaneous transluminal angioplasty, PTA), 경피적 관상동맥 성형술(percutaneous coronary angioplasty, PCTA)을 이용하여 질병부위 혈관 내에 스텐트를 삽입하는 방법이다. 후자의 경우 삽입구 쪽의 풍선(balloon) 부분과 반대편에는 액체를 삽입하는 매니폴드(manifold) 부분으로 이루어진 가늘고 긴 모양의 풍선 카테터(balloon catheter)가 혈관 내 스텐트와 같은 고형체를 이식하기 위해 이용 된다. 그러나, 역설적으로 풍선 카테터를 이용한 혈관 성형술은 플라그를 제거함과 동시에 손상된 혈관 구조의 범위를 확장시킨다. 시술을 하는 동안 질병 부위나 가까운 주변의 내피세포층은 항상 손상을 받는다. 내피세포층이 없는 경우, 금속이나 폴리머 같은 합성물질의 이식, 삽입은 혈전 형성에 이은 혈소판의 재공급과 응집을 포함하는 복잡한 과정을 촉진한다. 응집된 혈소판은 혈소판 유래 성장 인자(Platelet-derived growth factor, PDGF) 라는 주요 인자를 방출하는데 이 성장 인자는 평활근 세포의 증식과 이동을 유도한다. 결과적으로 내막부분의 과증식(intimal hyperplasia)은 SMC의 증식과, 세포외 기질 축적으로 일어난다. 이러한 혈관구조의 새로운 증상은 몇 개월 안에 30~40%까지 나타나며 혈관 재성형 수술의 실패를 가져온다. 이러한 내막(intima) 과대증가 증상에 의한 혈관 재성형 과정을 혈관재협착(restenosis)이라 한다.
그 동안 혈관재협착 방지를 위해 혈관 내막 과형성 (intimal hyperplasia)을 줄이거나 억제할 수 있는 방법의 개발을 위해 많은 노력을 해 왔다. 혈관평활근세포의 성장을 방해하는 약물이나 물질을 방출하는 개선된 스텐트는 성공적으로 개발되어 임상에서 사용되어 왔다. 혈소판 응집과 혈전증, PDGF 작용기 효소를 방해하는 화학물질(예. 아스피린, 아라키돈산, 프로스타그란딘, 헤파린, 저분자량 헤파린, typhostins, 글리벡 등)과 PDGF나 CD144에 대한 항체들이 시험되어 왔다. 가장 효과적인 화학물질은 라파마이신으로 라파마이신은 mTOR(mammalian target of rapamycin)을 억제한다. mTOR은 PI3-K/Akt 경로의 하부에서 작용하는 신호전달 물질이다. PI3-K/Akt 경로가 주요 생존 신호의 하나이기 때문에 mTOR의 억제는 세포의 죽음을 일으킨다. 비록 라파마이신이 독성있는 물질이지만 스텐트 삽입부위의 국소적인 주입은 그리 치명적이지 않다. 따라서 라파마이신을 방출하는 스텐트를 혈관내에 이식하는 것은 혈관평활근세포의 죽음을 효과적으로 일으키고 내막 과형성을 막게 된다.
그러나 이러한 약물방출 스텐트에 대한 우려들이 최근에 증가하고 있으며 동시에 현실로 나타나고 있다. 스텐트에서 방출된 물질들이 동시에 내피세포의 회복도 방해하기 때문이다. 그 결과 스텐트 삽입 후 건강한 혈관 내피세포가 스텐트 표면을 덮어 스텐트의 금속 표면이 혈소판과 직접 접촉하지 못하게 하는 과정이 억제된다. 이는 스텐트 삽입 이후에 지속적으로 스텐트내의 혈전에 의한 갑작스런 혈류의 차단 위험이 상존한다는 의미이며, 최근의 보고들에서 사실로 확인 되고 있다 (FDA Public Health Web Notification 2003, http://www.fda.gov/cdrh/safety/cypher3.htm; Joner M, et al., J Am Coll Cardiol, 48, 193-202, 2006; Babinska A, et al., Nephrol Dial Transplant, 13, 3153-9, 1998). 그렇기 때문에 지금부터는 혈관평활근세포의 성장은 선택적으로 억제하면서 내피세포층은 회복할 수 있게 하는 연구가 요구된다. 화학물질 약물은 부작용을 일으키며 비가역적인 반면, 항체를 포함하는 단백질 약물은 세포에 침투할 수 있다. 따라서 혈관재협착의 내막과형성을 다루는 치료 방법의 관점이 변해야 한다.
한편, siRNA(small-interfering RNA)는 microRNA의 일종이며 20 ~ 28 의 리보뉴클레오타이드 염기로 되어 있는 RNA로 세포 내로 도입(transfection)되면 상보적인 서열을 가진 mRNA에 결합하여 mRNA를 분해시킴으로써 효과적으로 표적 유전자 발현을 막는다. siRNA는 기존의 안티센스 올리고DNA에 비하여 상대적으로 서열이 길고 mRNA를 분해시키는 작용이 매우 염기서열 특이적이기 때문에 원하는 유전자만 매우 선택적으로 억제할 수 있다. 따라서, 혈관평활근세포의 성장을 선택적으로 억제하는 유전자에 대한 siRNA와 내피세포의 성장을 촉진하는 유전자에 대한 siRNA를 혼합 처리하면, 혈관평활근세포의 성장을 억제하는 동시에 내피세포의 성장을 촉진할 수 있다.
그러나 siRNA의 문제점은 혈류에 도입되었을 때 혈액속의 RNase로 인해 혈 중에서 안정적이지 못하고 세포막도 쉽게 통과할 수 없기 때문에 정맥 내 주입이나 경구투여가 제한적일 수 밖에 없다는 점이다(Scherer LJ, et al., Nat. Biotech. 21, 1457-1465, 2003; Kurreck J, et al., Eur. J. Biochem. 270(8), 1628-1644, 2003).
siRNA만의 혈관주입 이나 비강내 투입이 시도된 적도 있고 배양세포의 경우도 막 수용체 비의존적으로 들어 간다고 알려진 바 있지만 실제로는 매우 낮은 효율성으로 성공적이지 못했다. 이런 고로 siRNA의 적합한 전달매체를 개발하는데 많은 노력들이 있어 왔고 배양세포를 기준으로 개발이 되었다. 지금까지 개발된 siRNA의 효율적인 전달매체는 아데노 혹은 레트로 바이러스 벡터를 이용하는 방법이 주를 이루며, 비-바이러스 벡터로서 양이온성 지질이나 리포좀을 사용하는 방법, 펩타이드와 같은 양이온성 폴리머를 사용하는 방법 등이 있다 (Akhtar S, et al., J. Clin. Invest. 117(12), 3623-3632, 2007). 그러나 스텐트를 통한 죽상동맥경화 병변으로의 in vivo에서 siRNA를 전달하고자 한 시도는 없었다.
본 발명의 목적은 혈관 재협착방지 스텐트 코팅용 조성물을 제공하고자 하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 혈관 재협착방지 스텐트 코팅용 조성물이 코팅된 혈관 재협착 방지용 스텐트를 제공하고자 하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 재협착방지 스텐트 코팅용 조성물이 코팅된 혈관 재협착 방지용 스텐트의 제조방법을 제공하고자 하는 것이다.
본 발명은 혈관재협착을 유발하는 유전자에 대한 siRNA 및 형질전환제를 함유하는 혈관 재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물을 제공한다.
본 발명의 조성물에 함유되는 siRNA는 혈관재협착과 관련된 혈소판 유래 성장 인자 수용체 (Platelet Derived Growth Factor Receptor, PDGFR) 유전자에 대한 siRNA, 내막두께 수용체 (Intimal thickness receptor, ITR) 유전자에 대한 siRNA, 인터루킨-1 수용체 (IL-1R) 유전자에 대한 siRNA, α(v)β(3)-인테그린 수용체 (Integrin receptor) 유전자에 대한 siRNA, 저밀도 지단백 수용체 (Low density lipoprotein receptor, LDLR) 유전자에 대한 siRNA, 안지오텐신 II형 I 수용체 (angiotensin II type I receptor) 유전자에 대한 siRNA, 리보뉴클레오타이드 환원효소 (ribonucleotide reductase) 유전자에 대한 siRNA, 싸이클로옥시제네이즈-2 (cyclooxygenase-2) 유전자에 대한 siRNA, 혈소판 당단백 IIb/IIIa 수용체 (platelet glycoprotein IIb/IIIa receptor) 유전자에 대한 siRNA, 및 이들의 혼합물로 구성된 군에서 선택된 하나 이상의 유전자에 대한 siRNA일 수 있다(Ferns GA, et al., Science, 253(5024), 1129-1132, 1991; Tsukada S, et al., Circulation, 107, 313-319, 2003; Binder CJ, Nature Medicine 8, 1218 -1226, 2002; Bishop GG, Circulation. 103, 1906-1911, 2001; Chen Z, et al., Circulation 106(1), 21-23, 2002; Kang PM, et al., Am Heart J. 127(5), 1388-1401, 1994; Radke PW, et al., Am Heart J. 152(4), 761.e1-6, 2006; Brune W, et al., Science 291(5502), 303-305, 2001; Linton MF, et al., Curr Opin Lipidol. 13(5), 497-504, 2002; Yang HM, et al., Circulation, 110(3), 301-308, 2001; Lincoff AM, et al., N Engl J Med. 341(5), 319-327, 1999).
본 발명의 조성물에 함유되는 바람직한 siRNA는 PDGFR에 대해 특이적인 1종 이상의 siRNA 혼합물이며, 보다 바람직한 siRNA는 서열번호:1로 표시되는 서열, 서열번호:3로 표시되는 서열, 서열번호:5로 표시되는 서열, 서열번호:7로 표시되는 서열, 및 이들의 안티센스 서열로 구성된 군으로부터 선택된 1종 이상의 siRNA 혼합물이다.
본 발명의 조성물에 함유되는 siRNA는 시판품을 사용할 수도 있고, 혈관 재협착을 유발하는 표적 유전자를 주형으로 하고 그의 mRNA와 결합하여 분해할 수 있는 염기서열을 siRNA 제작 프로그램에 따라 디자인 하여 실험실 내에서 제작하여 사용할 수도 있다.
본 발명에서, 용어 'siRNA'는 생체내 핵산 분해효소에 의한 빠른 분해를 막기 위해 화학적으로 변형된 siRNA를 포함한다. 당업자는 당해 기술 분야에 공지된 방법을 이용하여 원하는 방식대로 상기 siRNA를 합성하고 변형시킬 수 있다. (Henschel A, et al., a web-based tool for the design and quality control of siRNAs. Nucleic Acids Research 32(Web Server Issue), W113-W120, (2004) DEQOR).
본 발명의 조성물에 함유되는 siRNA는 이중나선 구조를 가지므로, 단일나선 구조의 리보핵산이나 안티센스 올리고핵산(antisense oligonucleotide)보다는 상대적으로 안정한 구조이지만 생체내 핵산 분해효소에 의해 빠르게 분해되기 때문에 화학적 변형을 통해 분해 속도를 감소시킬 수 있다. siRNA가 쉽게 분해되지 않도록 안정하고 저항적이도록 하기 위한 당업계에서 잘 알려진 여러 화학적 변형 방법이 사용될 수 있다.
본 발명의 조성물에 함유되는 siRNA는 스텐트에 코팅되어 국소적으로 혈관내피에 적용된 후 세포 안으로 도입되어 mRNA를 분해시킴으로써 효과적으로 표적유전자의 발현을 막는다.
또한 본 발명의 조성물에 함유되는 siRNA는 표적유전자의 mRNA를 분해시키는 siRNA의 작용이 염기서열 특이적이기 때문에 원하는 유전자만 선택적으로 억제한다.
본 발명의 조성물에 함유되는 형질전환제 (transfection reagent)는 siRNA를 포유동물 세포 내로 효율적으로 도입하는 것으로, 폴리아민 함유 제제 (polyamine), 리피드 제제 (lipoplex), 양이온성 리포좀 (cationic liposome), 또는 양이온성 폴리머 (cationic polymer) 등이 바람직하며, 폴리아민 함유제제 또는 양이온성 리포좀 제제가 보다 바람직하다. 보다 구체적으로 현재 시판되고 있는 Lipofectamine 2000 (#11668, Invitrogen, USA), Lipofectamine RNAiMAX (#13778, Invitrogen, USA), Oligofectamine 형질전환제 (#12252, Invitrogen, USA); HiPerFect 형질전환제(#301704, QIAGEN, Netherlands); DharmaFECT 1, 2, 3 or 4 siRNA 형질전환제 (T 2001,2002,2003,2004, DHARMACON, USA), DharmaFECT Duo lipid reagent (T-2010, DHARMACON, USA); DOTAP Liposomal 형질전환제(11811177001, Roche, Germany), DOSPER Liposomal 형질전환제(11781995001, Roche, Germany), Fugene6 (11988387001, Roche, Germany), X-tremeGENE siRNA 형질전환제 (04476093001, Roche, Germany); siPORT Lipid 형질전환제 (AM4504, Ambion, USA), siPORT Amine Polyamine-Based 형질전환제 (AM4502, Ambion, USA), siPORT NeoFX 형질전환제 (AM4510, Ambion, USA); TransFast 형질전환제 (E2431, Promega, USA), Tfx Reagents for the Transfection of Eukaryotic Cells (E1811, Promega, USA), CodeBreaker siRNA 형질전환제 (E5052, Promega, USA); GeneJuice 형질전환제 (#70967, Novagen, USA); TransIT-TKO siRNA 형질전환제 (# MIR 2154, Mirus, USA) 또는 TransIT-siQUEST siRNA 형질전환제(# MIR 2114, Mirus, USA); In vivo JetPEI transfection reagent (Polyplus-transfection, #201-10) 등을 사용할 수 있다.
본 발명은 또한 혈관재협착을 유발하는 유전자에 대한 siRNA 및 형질전환제를 함유하는 혈관 재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물을 포함하는 제1코팅액으로 코팅된 스텐트를 제공한다.
본 발명의 조성물이 코팅되는 스텐트는 금속 또는 플라스틱 그 자체 (bare stent), 또는 헤파린 (heparin) 이나 포스포콜린 (phosphocholine, PC) 등으로 코팅된 금속 또는 플라스틱일 수 있다. 바람직하게는 금속 스텐트(bear metal stent), 포스포콜린이 코팅된 금속 스텐트(PC-금속 스텐트) 등을 사용할 수 있고, 보다 바람직하게는 포스포콜린이 코팅된 금속 스텐트를 사용할 수 있다. 상기 스텐트는 제조하여 사용할 수도 있으며, 시판되는 포스포콜린 (PC)-코팅된 금속 스텐트 (ARTHOSpico,, Biocompatibles Ltd, England), 금속 스텐트(ARTHOSpico, AMG International GmbH, Germany), 헤파린 코팅된 금속 스텐트 (Carmeda AB, Stockholm, Sweden) 등을 구입하여 사용할 수도 있다. 형질전환제로서 리피드 제제를 사용하는 경우 PC-금속스텐트가, 형질전환제로서 양이온성 리포좀을 사용하는 경우 PC-금속 스텐트가, 형질전환제로서 폴리아민을 사용하는 경우 금속 스텐트 또는 PC-금속 스텐트가 바람직하다.
본 발명은 또한 뛰어난 siRNA 전달 효과를 나타내는 다양한 형질전환제를 코팅한 다양한 종류의 스텐트를 제공한다. 본 발명은 나아가 형질전환제는 리피드 제제이고, 사용된 스텐트는 PC-금속 스텐트인 혈관 재협착 방지용 스텐트를 제공한다. 본 발명은 또한 형질전환제가 폴리아민인 혈관 재협착 방지용 스텐트를 제공하는데, 사용된 스텐트는 바람직하게는 금속 스텐트 또는 PC-금속 스텐트이며, 보다 바람직하게는 PC-금속 스텐트이다. 본 발명의 조성물이 코팅되었을 때, 코팅된 스텐트는 매우 우수한 siRNA 전달효과를 나타내며, 형질전환제로서 폴리아민 함유 제제를 사용하는 경우에는 스텐트의 종류에 무관하게 특히 뛰어난 siRNA 전달효과를 나타내며 PC-금속 스텐트의 경우 더욱 뛰어나다.
본 발명은 또한 상기 제1코팅액이 코팅된 스텐트 위에 생분해성 고분자 또는 비생분해성 고분자를 포함하는 제2코팅액이 추가로 코팅된 혈관 재협착 방지용 스텐트를 제공한다.
상기 제2코팅액에 포함되는 생분해성 고분자 또는 비생분해성 고분자는 젤라틴(gelatin), 폴리글리콜산/폴리락트산 (polyglycolic acid/polylactic acid, PGLA), 폴리카프로락톤 (polycaprolactone, PCL), 폴리히드록시부티레이트발레레이트 (polyhydroxybutyrate valerate, PHBV), 폴리오르쏘에스테르 (polyorthoester, POE), 및 폴리에틸렌옥사이드/폴리부틸렌테레프탈레이트 (polyethyleneoxide/ polybutylene terephthalate, PEO/PBTP) 등의 생분해성 고분자; 및 폴리우레탄 (polyurethane, PUR), 실리콘 (silicone, SIL), 및 폴리에틸렌테레프탈레이트 (polyethylene terephthalate, PETP)등의 비생분해성 고분자로 구성된 군으로부터 선택되는 것이다.
본 발명의 상기 제2코팅액은 상기 생분해성 고분자 또는 비생분해성 고분자의 0.1~5%, 바람직하게는 0.1 ~ 2% (w/v%) 용액이며, 용매로는 바람직하게는 물 또는 에탄올 등을 사용할 수 있다.
본 발명의 조성물로 코팅된 스텐트는, siRNA가 혈류에 주입되었을 경우 종래와 같은 안정성의 문제없이 효율적으로 치료효과를 나타낼 수 있다.
본 발명의 조성물로 코팅된 스텐트는, 혈관재협착을 유발하는 유전자에 대한 siRNA를 성공적으로 혈관벽에 전달하여 혈관재협착과 관련된 세포를 형질전환시킨다. 상기 혈관재협착에 관련이 있는 수용체 또는 효소들에 대한 siRNA, 특히 PDGFRβ에 대한 siRNA를 함유하는 조성물로 코팅된 스텐트는 혈관재협착 억제에 있어 매우 뛰어난 효과를 보인다.
본 발명은 a) 혈관재협착을 유발하는 유전자에 대한 siRNA 및 형질전환제를 함유하는 혈관 재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물을 제조하는 단계; b) 상기 조성물을 포함하는 제1코팅액으로 스텐트를 코팅하는 단계; c) 건조하는 단계를 포함하는 혈관 재협착 방지용 스텐트의 제조방법을 제공한다.
나아가, 본 발명은 추가적으로 d) 건조된 코팅층에 제2코팅액으로 추가 코팅하는 단계; 및 e) 건조하는 단계를 포함하는 혈관 재협착 방지용 스텐트 제조방법을 제공한다.
본 발명은 또한 혈관재협착을 유발하는 유전자에 대한 siRNA 및 형질전환제를 함유하는 혈관 재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물로 코팅된 스텐트를 혈관내막에 적용시키는 것을 포함하는 혈관 재협착 방지 방법을 제공한다.
본 발명에 의한 조성물로 코팅된 스텐트를 이식함으로써 안정하고 효과적으로 혈관 재협착을 방지할 수 있다.
도 1은 siRNA가 혈관벽으로 통과하는 지 여부를 확인한 도이다. si-CONT은 비-형광 대조군 siRNA를 의미하며, Cy3은 DY-547 형광체를 측정하기 위한 빨강색 형광 필터를 이용함을 의미한다. H&E 염색은 풍선손상 (balloon injury)의 경우 내막이 현저히 두터워 졌음을 보여준다.
도 2A는 대조군 siRNA와 비교하여 도입된 PDGF-BB 혹은 PDGFRβ에 대한 siRNA의 기능을 내막 두께 (화살표시된 부분)의 감소로 확인한 도이다. 도 2B 는 내막두께를 정량하여 나타낸 그래프이다.
도 3은 금속스텐트에 이루어진 코팅 및 코팅된 siRNA의 용출을 확인한 도이다.
도 4는 이식된 스텐트로부터 siRNA가 혈관벽으로 전달되는지 여부를 확인한 도이다.
도 5는 혈관벽에 전달된 형광의 양을 정량 분석하여 표시한 그래프이다.
본 발명의 이점 및 특징, 그리고 그것들을 달성하는 방법은 상세하게 후술되어 있는 실시예들을 참조하면 명확해질 것이다. 그러나 본 발명은 이하에서 개시되는 실시예들에 한정되는 것이 아니라 서로 다른 다양한 형태로 구현될 것이며, 단지 본 실시예들은 본 발명의 개시가 완전하도록 하고, 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 발명의 범주를 완전하게 알려주기 위해 제공되는 것이며, 본 발명은 청구항의 범주에 의해 정의될 뿐이다.
본 발명의 실시예들에서 사용한 시약은 다음과 같다. Synthetic selected siRNA SMART pools (Dharmacon RNA Technologies, USA), siCONTROL nontargeting siRNA pool(Dharmacon RNA Technologies, USA), 형광 표지된 siGLO-red siRNA(Dharmacon RNA Technologies, USA); SiPORTTM NeoFXTM reagent (Ambion, USA), 포스포콜린 (PC)-코팅된 금속 스텐트 (ARTHOSpico,, Biocompatibles Ltd, England), 금속 스텐트(ARTHOSpico, AMG International GmbH, Germany).
실시예 1 : 혈관재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물의 제조
PDGFR 유전자 (Genebank NM_031525)의 발현을 저해시키는 4가지 다른 siRNA 혼합물 (Dharmacon Co.; Rat PDGFRB (#L-091874-01-0010)과, siPORTTM NeoFXTM reagent (Ambion, USA)를 이용해 제조자 설명서 기재에 따라 다음과 같이 혈관 재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물을 제조하였다.
표 1
Figure PCTKR2009001257-appb-T000001
5ml siPORT NeoFXTM 제제를 먼저 100ml Opti-MEM I 배지(Invitrogen, USA)에 희석하고 상온에서 10분 방치했다. 또한 20mM siRNA을 1ml씩 100ml Opti-MEM I 배지에 희석하여 최종 siRNA의 농도를 200nM로 하였다. 양쪽 희석된 혼합용액을 조금씩 잘 섞어 최종 혼합액을 준비하고, 이를 상온에서 다시 10분간 방치하여 siRNA 및 형질전환제를 함유하는 형질전환 혼합액을 제조하였다. siRNA의 전달을 확인하는 실험들에서는 siGLO (DY-547 붉은 형광체가 부착된 대조군 siRNA (#D-001630-02-05, Dharmacon)가 최종농도 20 ~ 200 nM로 사용되었다.
실시예 2 : 본 발명의 스텐트 코팅용 조성물을 코팅한 스텐트의 제조
실시예 1에서 제조한 siRNA, 및 형질전환제를 함유하는 형질전환 혼합액을 준비하였다. 이 혼합액에 금속 스텐트 또는 PC-금속 스텐트를 5분간 담근 후 공기 중에 5분간 건조시키고, siRNA로 코팅되어진 스텐트를 다시 1% 젤라틴(gelatin) 수용액으로 추가적으로 5분간 코팅하고 다시 5분간 공기 중에 조심스럽게 건조시켰다.
이렇게 코팅된 siGLO의 안정성을 확인하기 위하여 코팅된 스텐트를 인산완충액 (phosphate-buffered saline, PBS)이 들어 있는 비이커에 담근 후 1시간 동안 자석혼합기 (magnetic stirrer)로 저어주면서 방치하였다. 지시된 시간대별로 꺼내어 다시 건조한 후 형광 형상화기(TypoonTM)로 스텐트에 남아 있는 붉은색 파장대의 형광 (Cy3 filter)을 측정하여 용출된 정도를 확인하였다.
실시예 3: 본 발명의 스텐트의 혈관 내 이식
(1) 경동맥 풍선 손상 (Balloon-injury) 쥐 모델의 제조
공지의 수술 방식대로 infiltrated 2F Fogarty 풍선 카테터 (Edwards Lifesciences, USA)로 정상 수컷 쥐 (Rattus rattus, n = 2~4)의 왼쪽 경동맥에 풍선 손상 일으켰다(Usui M, et al., FASEB J. 2002;16: 1838-1840). 10주된 수컷 쥐를 마비시킨 후, 쥐의 왼쪽 외경동맥을 노출시켰으며 경동맥의 경계선을 전기 압축시켰다. 외경동맥의 횡동맥절개(transverse arteriotomy)를 통해 카테터를 1cm 정도 밀어 넣은 후 경동맥을 3 ~ 5회 왕복 통과함으로써 풍선과 접촉된 내피세포를 손상시켰다. 손상시킨 후 혈관은 다시 봉합하고 혈액흐름을 회복시켰다. 쥐는 7일 이나 10일 동안 회복실에서 생활한 뒤 이화여대 동물실의 동물관리규정에 따라 희생되었다. 마취된 쥐로부터 손상되었던 경동맥을 절단하고 3.7% 포름알데히드를 함유한 헤파린 처리 생리식염수로 고정한 뒤 파라핀에 고정시켰다. 파라핀 고정된 경동맥은 마이크로톰을 이용하여 절편을 얻었다. 다섯 개의 연속적인 조직절편 (직경 100μm, 두께 3μm)을 각 경동맥의 중간부분에서 얻었다. 각각의 슬라이드는 헤마톡실린 및 에오신(Haematoxylin & Eosin, H&E)으로 염색하였다.
H&E 염색된 부분의 4개의 서로 다른 부분(lumen, intima, media, total vascular area)의 면적이 분석 소프트웨어로 측정되었다 (NIH Image 1.62; http://rsb.info.nih.gov/nihimage/download.html). 간단히 혈관강(lumen) 공간, 내탄력층 (internal elastic lamina, IEL), 및 외탄력층(external elastic lamina, EEL)으로 둘러싸인 영역들이 측정되었다. 내막 (intima) 영역은 IEL 영역에서 혈관강(lumen) 영역을 제외시킴으로써 측정되었고, 중막(media) 영역은 EEL영역에서 IEL영역을 제외시킴으로써 측정 되었다. 결과분석은 각 마리 당 5장의 슬라이드의 영역 값의 평균울 사용하였고 중막에 대한 내막의 비율 (intima/media ratio)로 표시하였다.
(2) 스텐트 코팅용 조성물을 코팅한 스텐트의 쥐의 대동맥으로 이식
쥐를 먼저 호흡 마취시키고 오른쪽 다리 고관절 부위를 절개하였다. 대퇴동맥 아래 부분을 노출한 다음 천자(puncture)할 부분의 아래를 동맥/정맥을 함께 봉합사(4/0 black silk)로 결찰하였다. 이어 동맥은 바늘 카테터(needle catheter)로 구멍을 뚫었다. 바늘은 제거되고 가이딩 카테터(guiding catheter)를 사용하여 가이드 와이어를 복부동맥(abdominal aorta)에 위치시켰다. 카테터를 빼낸 후 introducer를 넣어 장착하였다. 이어 가이드 와이어를 제거 하고 최종적으로 introducer를 통해 본 발명의 스텐트 코팅용 조성물을 코팅한 스텐트를 복부동맥에 위치시킨 후 혈관을 봉합하고 이식을 완료하였다. siGLO의 전달을 확인하기 위하여, 스텐트 시술된 동맥(stented artery)은 plastic-embedded (Technovoit 9100, Wehrheim, Germany) (PNAS 2006;10(1): 159-164 Heart 2002;88:401-405)되고 절편으로 만들어 졌다. siGLO의 형광과 금속 스텐트는 공초점 레이저 주사현미경 (confocal laser-scanning microscope, LSM510, Carl-Zeiss)을 사용하여 관찰되었다.
실험예 1: siRNA의 혈관 내로의 전달 여부 확인
siGLO라고 불리는 red fluorescent DY547-labeled control siRNA (# D-001630-02-05, Dharmacon, USA)를 이용하여 표적 siRNA의 전달 여부를 확인하였다. siGLO 및 그와 동일한 비-형광 대조군 siRNA (siCONT)를 형질전환제(siPORTTM NeoFXTM, Ambion, USA)와 최종농도 20 ~ 200 nM 되도록 혼합한 용액을 사용하였다. 형질전환제와 섞지 않은 비-형광 대조군 siRNA 또는 siGLO 역시 최종농도가 20 ~ 200 nM이 되도록 인산완충액(PBS)과 혼합한 용액을 대조군으로 사용하였다. 쥐의 오른쪽 경동맥은 앞서 상술한 바와 같이 노출시켰고, 이를 두 그룹으로 나누어 한 그룹은 풍선 카테터 손상을 받게 했고, 다른 한 그룹은 손상시키지 않았다. 비-형광 대조군 siRNA나 siGLO를 포함하는 형질전환제제 혼합용액 200 μl를 손상된 혈관내에 주입하고 15분 동안 incubation하였다. 혈관성형술 후 1주일 경과시, 오른쪽 경동맥을 잘라서 냉동상태에서 절편을 준비하였다. 준비된 절편들은 먼저 형광현미경으로 DY547-표지된 siGLO의 분포를 관찰하고 이어 비후된 혈관내막의 두께를 관찰하기 위해 H&E 염색을 하였다. 풍선 카테터 손상의 경우는 손상 받지 않은 경우에 비하여 내막이 현저하게 두터워짐(내막/중막 비율이 60%이상 증가)을 H&E 염색에서 재현성 있게 확인할 수 있었다(도 1).
비-형광 대조군 siRNA나 siGLO로 처리된 혈관벽 모두에서 혈관벽 자체의 자가형광인 몇 겹의 형광선이 관찰될 뿐이었다(도 1(A)). 한편, 풍선으로 손상되고 siGLO 혼합액으로 처리된 혈관에서는 두터워진 내막 부분에서 빨강색의 형광이 선명하게 관찰되었다 (도 1(B), 화살표 머리). 반면, 혈관은 손상되었지만 형질전환제를 혼합하지 않고 siRNA와 식염수를 혼합한 용액을 처리한 혈관에서는 두터워진 내막 부분에서 빨강색 형광을 전혀 관찰할 수 없었다(도 1(C)). 이를 통해 siRNA 자체로는 손상되지 않은 혈관내피층은 물론 심지어 손상된 혈관세포로도 형질전환제의 도움 없이는 통과할 수 없음을 확인하였다.
실험예 2 : PDGFR beta 발현 억제에 의한 내막 두께의 감소 실험
주입된 siRNA가 기능 하는지 알아보기 위해 평활근에 잘 발현되어 있고, 그 성장을 조절하는 것으로 알려진 PDGFR을 타겟으로 삼았다. 또한 손상된 부위로 모이는 혈소판들에 의해 생성되는 것으로 알려진 PDGF-BB (Genebank XM_343293)를 대조군으로 선택하였다. 해당 단백질인 PDGFR와 PDGF-BB의 발현을 저해시키는 siRNA는 각각의 처리도 가능하나, 특이성을 향상시키기 위해 PDGFR의 경우는 표 1기재의, PDGF의 경우에는 표2 기재의, 4가지 다른 siRNA 혼합물 (Dharmacon Co.; Rat PDGFB (#L-081176-01-0010))을 이용하였다.
표 2
Figure PCTKR2009001257-appb-T000002
대조군 siRNA, PDGF-BB에 대한 siRNA 또는 PDGFRβ에 대한 siRNA를 형질전환제와 혼합한 용액을 실험예 1에서처럼 노출되고 손상된 쥐의 오른쪽 경동맥에 200 μl 씩을 각각 주입하고 15분 동안 incubation하였다. 혈관성형술 후 1주일 경과시, 오른쪽 경동맥을 잘라서 냉동상태에서 절편을 준비하였다. 준비된 절편들은 비후된 혈관내막의 두께를 관찰하기 위해 H&E 염색을 하였다. 도 2A의 화살표로 강조된 부분에서 보는 바와 같이 경동맥의 풍선 손상은 내막영역에서의 평활근 세포의 증식과 이동을 크게 증가시켰다. PDGF-BB의 발현 저해는 내막 두께 감소에 미미한 효과를 일으켰으나, PDGFRβ 의 발현 저해는 현저한 내막 두께 감소 효과를 나타냄을 확인하였다 (도 2). 이러한 결과는 또한 주입된 siRNA가 성공적으로 기능을 하고 있다는 것을 보여준다.
실험예 3: 스텐트에 코팅된 siRNA의 용출 확인
실시예1에 의해 제조된 siGLO를 포함하는 형질전환 혼합용액(혈관 재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물)을 두 개의 서로 다른 스텐트, 즉 아무것도 코팅하지 않은 금속 스텐트(bear metal stent)와 포스포콜린(phosphocholine, PC) 코팅된 금속 스텐트(PC-금속 스텐트)에 실시예 2의 방법으로 코팅하고, 각각을 다시 두 군으로 나누어 한 군에는 1% 젤라틴 수용액을 제2코팅액으로 하여 추가적인 코팅을 시행하였고, 다른 한 군은 추가적인 코팅을 하지 않았다. 5분 동안 상온에서 공기 건조한 후, siGLO가 용출되도록 인산완충액(phosphate-buffered saline)에 담궈 자석혼합기에서 서서히 저어 주면서 도 3에서 표시된 시간대 별로 꺼내어 남아 있는 형광의 양을 실시예 2에서 서술한 바와 같이 측정하였다.
놀랍게도, 금속 스텐트와 비교하여 PC-금속 스텐트에 코팅되는 siGLO의 양이 2배 가량 많았다. 금속 스텐트와 PC-금속 스텐트 모두에서 초기 30분내에 30%정도의 코팅 siRNA의 용출이 일어나고 이후에는 안정화되어 더 이상의 용출은 일어나지 않았다(도 3). 한편 젤라틴의 제2코팅액으로 추가적인 코팅을 한 군은 추가적인 코팅을 하지 않은 군에 비해 siGLO의 용출이 현저히 지연되어 90% 이상의 siGLO가 스텐트 종류에 무관하게 남아 있음을 확인하였다. 결국, 스텐트 이식 후 안정하게 잔존하고 있는 siRNA의 양이 본 발명의 효과에 가장 큰 영향을 미침을 고려할 때, PC-금속 스텐트에 젤라틴 제2코팅액으로 추가적으로 코팅한 스텐트가 단순한 금속 스텐트보다 2배 가까운 양의 siRNA를 안정하게 유지하여 매우 바람직한 결과를 나타냄을 알 수 있었다. 나아가, 젤라틴을 포함한 다양한 생분해성 (bio-degradable) 또는 비-생분해성 고분자를 포함하는 제2코팅액의 사용은 siRNA의 안정한 전달에 중요한 역할을 함을 알 수 있었다.
실험예 4: 스텐트의 동맥 내 이식 및 혈관벽으로의 전달 확인
실시예 1에서 제조된 siGLO 형질전환 혼합액(혈관 재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물)으로 코팅하고 1% 젤라틴 수용액을 포함하는 제2코팅액으로 추가적으로 코팅된 금속 스텐트들을 쥐의 동맥에 이식하여 2주간 유지하였다. 그리고 분석을 위해 동맥 혈관을 잘라내어 고정시키고, 조직절편을 만들어 확인한 결과 금속 스텐트는 혈관 벽에 잘 이식되는 것으로 나타났다 (도 4, 화살표).
스텐트 및 형질전환제의 조합에 따른, siRNA의 이식된 스텐트로부터 혈관벽으로의 전달 효율성을 조사하였다. 실험예3에서 기재된 바와 같이 siGLO를 siPORT NeoFX, Polyamine, 및 Lipofectamine에서 선택된 어느 하나의 형질전환제와 혼합하여 각각의 형질전환 혼합액(혈관 재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물)을 제조하였다. 제조된 형질전환 혼합액으로 금속 또는 PC-금속 스텐트를 코팅하였다. 상기 코팅된 스텐트를 1% 젤라틴 수용액을 포함하는 제2코팅액으로 추가 코팅하고 각각 쥐의 동맥에 이식하고 2주간 유지하였다.
도 4에 나타난 형광 이미지는 siGLO가 혈관 벽으로 확산되어 안정적으로 남아있다는 것을 보여준다. 이로써, siRNA가 혈관 벽 내에 안정적으로 확산 분포하고 있다는 것을 확인하였다. 따라서, 본 발명의 조성물이 코팅된 스텐트를 통한 siRNA의 운반법은 실제 생체에서 안정적으로 안전하게 적용가능하며, siRNA를 혈관재협착을 치료하는 새로운 방법으로 적용가능함을 확인하였다.
전달된 형광 siRNA의 양을 정량적으로 분석한 결과(도 5), siPORT NeoFX 또는 lipofectamine의 경우는 PC 코팅 스텐트에 코팅되었을 때 가장 잘 전달되는 반면, polyamine은 스텐트의 종류에 상관없이 잘 전달됨을 확인하였다. 조사된 조합 중 polyamine과 혼합된 siRNA가 금속 스텐트에 코팅되었을 때 이식동안 제거되지 않고 동맥 혈관 벽으로 가장 잘 전달되었다.

Claims (16)

  1. 혈관재협착을 유발하는 유전자에 대한 siRNA 및 형질전환제(transfection reagent)를 함유하는 혈관 재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물.
  2. 제1항에 있어서, 상기 siRNA는 혈소판 유래 성장 인자 수용체(PDGFR) 유전자에 대한 siRNA, 내막 두께 수용체 (ITR) 유전자에 대한 siRNA, IL-1수용체 유전자에 대한 siRNA, α(v)β(3)-인테그린 수용체 유전자에 대한 siRNA, 저밀도 지단백 수용체(LDLR) 유전자에 대한 siRNA, 안지오텐신 II형 I 수용체 유전자에 대한 siRNA, 리보뉴클레오타이드 환원효소 유전자에 대한 siRNA, 씨클로옥시게네이즈-2유전자에 대한 siRNA, 혈소판 당단백 IIb/IIIa 수용체 유전자에 대한 siRNA, 및 이들의 혼합물로 이루어진 군으로부터 선택되는 혈관재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물.
  3. 제2항에 있어서, 상기 siRNA는 PDGFR 유전자에 대한 siRNA인 혈관재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물.
  4. 제3항에 있어서, 상기 siRNA는 서열번호 1 내지 8 중 어느 하나인 혈관재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물.
  5. 제1항에 있어서, 상기 형질전환제는 폴리아민 함유 제제 (polyamine), 리피드 제제 (lipoplex), 양이온성 리포좀 (cationic liposome), 및 양이온성 폴리머 (cationic polymer)로 구성된 군으로부터 선택되는 것인 혈관재협착 방지 스텐트 코팅용 조성물.
  6. 제1항 내지 제5항 중 어느 한 항의 조성물을 함유하는 제1코팅액이 코팅된 혈관 재협착 방지용 스텐트.
  7. 제 6항에 있어서 코팅되어지는 스텐트는 금속 스텐트, 헤파린이 코팅된 금속 스텐트, 및 포스포콜린이 코팅된 금속 스텐트로 구성된 군으로부터 선택되는 것인 혈관 재협착 방지용 스텐트.
  8. 제7항에 있어서, 상기 형질전환제는 리피드 제제이고, 상기 스텐트는 포스포콜린 코팅된 금속 스텐트인 혈관 재협착 방지용 스텐트.
  9. 제7항에 있어서, 상기 형질전환제는 폴리아민 제제이고, 상기 스텐트는 금속 스텐트 또는 포스포콜린 코팅된 금속스텐트인 혈관 재협착 방지용 스텐트.
  10. 제6항에 있어서, 생분해성 고분자 또는 비생분해성 고분자를 포함하는 제2코팅액이 추가로 코팅된 혈관 재협착 방지용 스텐트.
  11. 제10항에 있어서, 상기 생분해성 고분자 또는 비생분해성 고분자는 젤라틴(gelatin), 폴리글리콜산/폴리락트산 (polyglycolic acid/ polylactic acid, PGLA), 폴리카프로락톤 (polycaprolactone, PCL), 폴리히드록시부티레이트발레레이트 (polyhydroxybutyrate valerate, PHBV), 폴리오르쏘에스테르 (polyorthoester, POE), 및 폴리에틸렌옥사이드/폴리부틸렌테레프탈레이트 (polyethyleneoxide/ polybutylene terephthalate, PEO/PBTP), 폴리우레탄 (polyurethane, PUR), 실리콘 (silicone, SIL), 및 폴리에틸렌테레프탈레이트 (polyethylene terephthalate, PETP)로 구성된 군으로부터 선택되는 것인 혈관 재협착 방지용 스텐트.
  12. 제10항에 있어서, 제2코팅액은 0.1 ~ 5%의 상기 생분해성 고분자 또는 비생분해성 고분자 용액인 혈관 재협착 방지용 스텐트.
  13. 제10항에 있어서, 코팅되어지는 스텐트는 포스포콜린 코팅된 금속 스텐트인 혈관 재협착 방지용 스텐트.
  14. a) 제1항 내지 제5항의 조성물을 제조하는 단계; b)상기 조성물을 포함하는 제1코팅액으로 스텐트를 코팅하는 단계; c) 건조하는 단계를 포함하는 혈관 재협착 방지용 스텐트 제조방법.
  15. 제12항에 있어서, d) 건조된 코팅층에 제2코팅액으로 추가 코팅하는 단계; 및 e) 건조하는 단계를 포함하는 혈관 재협착 방지용 스텐트 제조방법.
  16. 제 6항 내지 제13항의 스텐트를 혈관내막에 적용시키는 단계를 포함하는 혈관 재협착을 예방하는 방법.
PCT/KR2009/001257 2008-03-17 2009-03-13 혈관 재협착방지 스텐트 코팅용 조성물 및 이를 이용해 제조된 스텐트 WO2009116750A2 (ko)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR10-2008-0024361 2008-03-17
KR20080024361 2008-03-17

Publications (3)

Publication Number Publication Date
WO2009116750A2 true WO2009116750A2 (ko) 2009-09-24
WO2009116750A3 WO2009116750A3 (ko) 2009-12-17
WO2009116750A9 WO2009116750A9 (ko) 2010-03-04

Family

ID=41091364

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/KR2009/001257 WO2009116750A2 (ko) 2008-03-17 2009-03-13 혈관 재협착방지 스텐트 코팅용 조성물 및 이를 이용해 제조된 스텐트

Country Status (2)

Country Link
KR (1) KR101159406B1 (ko)
WO (1) WO2009116750A2 (ko)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111050697A (zh) * 2017-07-31 2020-04-21 亚历山大·多坎托·扎戈 促进快速支柱覆盖和血管内皮覆盖的装置和方法

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101383058B1 (ko) * 2011-03-18 2014-04-21 전남대학교산학협력단 목적 유전자를 세포로 전달하기 위한 유전자 전달체
KR101602688B1 (ko) 2013-12-30 2016-03-11 가톨릭관동대학교산학협력단 microRNA-365 활성화제를 포함하는 혈관평활근세포 증식 또는 이동 억제용 약학적 조성물

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20040063654A1 (en) * 2001-11-02 2004-04-01 Davis Mark E. Methods and compositions for therapeutic use of RNA interference
KR20040039351A (ko) * 2001-09-17 2004-05-10 컨트롤 딜리버리 시스템즈 인코포레이티드 서방 약물 전달 시스템으로 코팅된 스텐트 및 이의 용도
US20060115454A1 (en) * 2004-10-15 2006-06-01 Linda Couto Therapeutic RNAi agents for treating restenosis
KR100679990B1 (ko) * 2001-10-15 2007-02-08 헤모텍 게엠베하 재협착증의 방지를 위한 스텐트의 코팅

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4162486B2 (ja) * 2000-11-24 2008-10-08 ヴァスキュラー バイオジェニックス リミテッド アテローム性動脈硬化を防止および処置するための規定された酸化型リン脂質を用いる方法およびそのような酸化型リン脂質を含有する組成物

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20040039351A (ko) * 2001-09-17 2004-05-10 컨트롤 딜리버리 시스템즈 인코포레이티드 서방 약물 전달 시스템으로 코팅된 스텐트 및 이의 용도
KR100679990B1 (ko) * 2001-10-15 2007-02-08 헤모텍 게엠베하 재협착증의 방지를 위한 스텐트의 코팅
US20040063654A1 (en) * 2001-11-02 2004-04-01 Davis Mark E. Methods and compositions for therapeutic use of RNA interference
US20060115454A1 (en) * 2004-10-15 2006-06-01 Linda Couto Therapeutic RNAi agents for treating restenosis

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111050697A (zh) * 2017-07-31 2020-04-21 亚历山大·多坎托·扎戈 促进快速支柱覆盖和血管内皮覆盖的装置和方法

Also Published As

Publication number Publication date
WO2009116750A9 (ko) 2010-03-04
KR101159406B1 (ko) 2012-06-28
WO2009116750A3 (ko) 2009-12-17
KR20090099470A (ko) 2009-09-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Zhou et al. Nanofiber-mediated microRNA-126 delivery to vascular endothelial cells for blood vessel regeneration
Li et al. Bioswitchable delivery of microRNA by framework nucleic acids: application to bone regeneration
CN102387817B (zh) 通过抑制针对脑衍生神经营养因子(bdnf)的天然反义转录物来治疗bdnf相关的疾病
CN102239260B (zh) 通过抑制针对载脂蛋白‑a1的天然反义转录物治疗载脂蛋白‑a1相关疾病
Konopka et al. MicroRNA loss enhances learning and memory in mice
JP5184077B2 (ja) ヘッジホッグシグナリングのｒｎａ干渉モジュレーター及びその利用
CN102803492B (zh) 通过抑制针对三重四脯氨酸(ttp)的天然反义转录物来治疗ttp相关疾病
Sprangers et al. Liposomal spherical nucleic acids for regulating long noncoding RNAs in the nucleus
CN102695797B (zh) 通过抑制针对胶原基因的天然反义转录物来治疗胶原基因相关的疾病
JP4255123B2 (ja) 転写ｄｎａ結合部位を含む環状ダンベルデコイオリゴデオキシヌクレオチド（ｃｄｏｄｎ）
CN107083385A (zh) 产热的miRNA调节剂
JPH11503911A (ja) 動静脈及び静脈の移植治療：方法及び組成物
JP2008528037A (ja) 阻害剤の核酸
JP5873419B2 (ja) 腸管線維症処置剤
CA3065098C (en) The mirna-212/132 family as a therapeutic target
RU2586531C2 (ru) ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ КОМПОЗИЦИЯ, ВКЛЮЧАЮЩАЯ микроРНК-100, И ЕЕ ПРИМЕНЕНИЕ В МОДУЛИРОВАНИИ РОСТА КРОВЕНОСТЫХ СОСУДОВ И ВОСПАЛЕНИЯ ЭНДОТЕЛИЯ
WO2009116750A2 (ko) 혈관 재협착방지 스텐트 코팅용 조성물 및 이를 이용해 제조된 스텐트
CN116490195A (zh) 用于抑制脂蛋白(a)的RNA组合物和方法
WO2004092379A2 (en) Method for treatment of angiogenic disorders
US20190112603A1 (en) Methods and Compositions for Managing Vascular Conditions Using miR-483 Mimics and HIF1alpha Pathway Inhibitors
JPWO2006126600A1 (ja) 血管閉塞性疾患用医薬組成物
JP2022513111A (ja) Ａｎｇｐｔｌ８を阻害するための新規のｒｎａ組成物および方法
US20120190580A1 (en) Treatment of patients after stent implantation or balloon dilatation and drug eluting stents
WO2004026342A1 (ja) NFκBデコイを含有する移植片新生内膜肥厚に対する保護剤
Jafarkhani et al. Exploring the effects of Nano-liposomal TGF-β1 on induced pluripotent stem Cell-Derived vascular smooth muscle cells in Tissue-Engineered vascular graft; an in vivo study

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 09723315

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A2

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 09723315

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A2