WO2008131699A2 - Composición biofertilizante - Google Patents

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WO2008131699A2
WO2008131699A2 PCT/CU2008/000002 CU2008000002W WO2008131699A2 WO 2008131699 A2 WO2008131699 A2 WO 2008131699A2 CU 2008000002 W CU2008000002 W CU 2008000002W WO 2008131699 A2 WO2008131699 A2 WO 2008131699A2
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Jesús MENA CAMPOS
Eulogio PIMENTEL VÁZQUEZ
Marieta MARÍN BRUZOS
Armando Tomás HERNÁNDEZ GARCÍA
Ileana SÁNCHEZ ORTIZ
Yamilka RAMÍREZ NÚÑEZ
Sonia González Blanco
Marianela GARCÍA SIVERIO
Carlos Guillermo Borroto Nordelo
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Centro De Ingeniería Genética Y Biotecnología
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C05—FERTILISERS; MANUFACTURE THEREOF
    • C05F—ORGANIC FERTILISERS NOT COVERED BY SUBCLASSES C05B, C05C, e.g. FERTILISERS FROM WASTE OR REFUSE
    • C05F11/00—Other organic fertilisers
    • C05F11/08—Organic fertilisers containing added bacterial cultures, mycelia or the like
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N63/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
    • A01N63/20—Bacteria; Substances produced thereby or obtained therefrom

Definitions

  • the present invention relates to the field of soil microbiology and the application of microbial bioferti I, capable of promoting and stimulating plant growth, without affecting the environment.
  • Biofertilizers are defined as products based on microorganisms that normally live in the soil, although in low populations and that by increasing their populations through artificial inoculation, they are able to make available to plants, through their biological activity, a an important part of the nutrients that they need for their development, as well as supplying hormonal substances or growth promoters (Mart ⁇ nez JS et al. (1985). Practical Manual of Microbiology. Ed People and Education, Cuba).
  • Rhizobium bacterium
  • the nodule typical structure of legume roots.
  • Rhizobium loses its cell wall and becomes a bacteroid, which by the action of its nitrogenase enzyme, fixes nitrogen (N 2 ) and converts it to ammonium (NH 3 ), which is transferred to the plant ribosome to The protein synthesis.
  • the legume by means of photosynthesis, reduces CO 2 in carbohydrates that will serve as a source of carbon and energy for Rhizobium, and with This keeps it active in the nodule until it covers the nitrogen needs of the plant (Bauer T. (2001). Nitrogen Fixing Microorganisms: Rhizobiaceae family. In: http://www.microbiologia.com.ar/suelo/rhizobium. html). This constitutes the most elaborate and efficient association between plants and microorganisms, for this reason it has been the most studied so far.
  • the bacteria of the genus Azotobacter form a special group of nitrogen fixing microorganisms because they are the only ones that are unicellular and, apparently, can fix nitrogen under aerobic conditions (Andresson AJ et al. (1994). Effect of inoculation with Azotobacter and MVA in yam vitroplants (Dioscorea alata) Tropical Crops, 15 (3): 66). From the historical point of view, Azotobacter is the microorganism that in a broader way has been used in agriculture. The first applications of these bacteria date back to 1902, reaching wide use during the 40s, 50s and 60s, particularly in the countries of Eastern Europe (González J and Lluch C. (1992). Nitrogen Biology. Plant Interaction Microorganism, Ed. Rueda, Madrid, Spain).
  • biofertilizing microorganisms Io constitute several strains of the genus Pseudomonas that contribute to the increase in the availability of assimilable phosphorus (Lawrence AR (2002). Biofertilizers for rice cultivation. Agriculture! Universities of India. At: http: //www.hinduonnet.com/ thehindu / seta / 2002/04/04 / stories / 20020404001 20400.htm).
  • the present invention solves the problem set forth above, by providing a biofertilizing composition that stimulates the growth and phenological development of plants characterized in that it comprises at least one strain of Tsukamure ⁇ la paurometabola, a mutant derived from it or a metabolite derived from said strain. in an appropriate carrier.
  • the mentioned composition increases soil fertility, and conditions it for a more favorable development of the plants grown there.
  • the biofertilizing composition comprises the bacterium Tsukamure // a paurometabola strain C-924 (Mena J et al. (2003) Applied Biotechnology, 20 (4): 248-252). Its ability to positively influence the phenology of various species of cultivated plants is demonstrated. With the results obtained it is possible to establish a method to stimulate the development of plants based on the use of a biofertilizing agent for agricultural use that optimizes the use of organic matter by plants, by favoring the assimilation of nitrogen and phosphorus, related elements with the activity of T. paurometabola strain C-924 in the soil, or in a natural or artificial substrate.
  • T. paurometabola The biostimulatory effect of T. paurometabola on plants is generated from the production of ammonia (NH3), associated with the growth of this bacterium on the organic matter and amino acids present in the soil or the substrate that supports the plants, or on The organic matter and amino acids added in any mixture that is applied simultaneously or in combinations with this bacterium.
  • NH3 ammonia
  • the microorganism is involved in the solubilization of phosphorus, converting it from non-assimilable to assimilable by plants.
  • the application of the bacterium T. paurometabola strain C-924 to the soil, on an organic substrate (artificial or natural) or in combination with a carrier of organic matter and / or amino acids, is carried out by means of a cell suspension that has between 1.0 x 10 7 colony forming units (cfu) / mL and 5.0 x 10 12 cfu / mL, or by a concentrated powder of approximately 10 12 cfu / g of composition.
  • the composition comprising T.
  • paurometabola strain C-924 (supported by organic matter, amino acids and other organic carriers), applied in combination with other biofertilizers and biostimulators, or independently, favors the development of plants in the same or better way than other plant growth promoting microorganisms used in agriculture.
  • the metabolite comprised in the biofertilizer composition can be obtained by natural, recombinant or synthetic route.
  • the Biofertilizer composition of the present invention can have as an organic fertilizer carrier, a pre-packaged soil, a seed coater, a powder, a granulate, a nebulizer, a suspension or a liquid or any of the variants presented in encapsulated form.
  • the strain of Tsukamurella paurometabola is combined or mixed with other biofertilizing microorganisms, such as Bacillus subtilis, Rhizobium leguminosarum, Azotobacter chroococcum, Pseudomonas fluorescens, Glomus fasciculatum and Glomus clarum, or such a mutant organism, or such mutation any active substance or metabolite obtained from said strains by natural, recombinant or synthetic route, in an appropriate carrier.
  • biofertilizing microorganisms such as Bacillus subtilis, Rhizobium leguminosarum, Azotobacter chroococcum, Pseudomonas fluorescens, Glomus fasciculatum and Glomus clarum, or such a mutant organism, or such mutation any active substance or metabolite obtained from said strains by natural, recombinant or synthetic route, in an appropriate carrier.
  • a method to stimulate the growth of plants characterized in that it comprises a) obtaining a biofertilizing agent comprising a culture of a strain of Tsukamurella paurometabola or a metabolite derived from said strain obtained by natural, recombinant or synthetic and b) contact the soil or a natural or artificial substrate with an effective amount of said biofertilizing agent, or of the metabolite derived from said strain.
  • the aforementioned method is characterized in that the strain of Tsukamurella paurometabola is strain C-924. The effective amount of the biofertilizing agent that is applied to soil or substrate in aqueous suspension
  • 6 9 is in a concentration of approximately 10 to 10 cfu per milliliter of suspension, and the biofertilizer is applied at least once in the soil or mixed with the substrate.
  • the biofertilizing agent and the method of stimulating the growth of the plants of the present invention is effective both for plants that are used for the purpose of obtaining food for humans, such as fruits and vegetables, and for plants that are obtained for food animal, such as grasses, cereals, etc. It is also applicable to plants grown for ornamental purposes.
  • FIGURES Figure 1. Kinetics of ammonia formation during the cultivation of Tsukamurella paurometabola C-924 in a 5 L bioreactor. The working temperature was 28 0 C and the initial pH was equal to 7.0; The agitation used was 500 revolutions per minute (rpm).
  • Example 1 Ammonia produced by the bacterium Tsukamurella paurometabola strain C-924 grown in a 5L bioreactor.
  • Tsukamurella paurometabola strain C-924 can be considered as a high producer of ammonia when compared to other microorganisms (Hoffmann T. (1998). Ammonification in Bacillus subtilis utilizing dissimilatory nitrite reduce ⁇ S dependent on resDE. Journal of Bacteriology, vol 180, 1: 186-189; Takahasi N. (2000). Metabolic Pathways for cytotoxic end product formation from glutamate- and aspartate-containing peptides by Porphyromonas gingivalis. Journal of Bacteriology, vol 182, 17: 4704-4710).
  • Figure 2 shows the experimental correlation obtained between the levels of ammonia in the extracellular environment, and the cellular concentration expressed as dry weight of the biomass produced in the bioreactor of 5 L. A linear relationship occurs between both variables, which indicates a production of NH 3 associated with the growth of the microorganism, whose speed is constant with respect to the biomass concentration.
  • Example 2 Solubilization of phosphates by Tsukamurella paurometabola strain C-924.
  • Phosphorus is one of the main limiting nutrients for plant development, but in many cases it is found in an insoluble form in the soil.
  • a high percentage of inorganic phosphates applied to the soil as fertilizers are quickly immobilized after application and are maintained in forms not available to plants. That is why the release of these insoluble forms of phosphorus is an important aspect to increase the availability of this element in soils.
  • strain C-924 was seeded in NBRIP medium (Nautiyal C. (1999). An efficient microbiological growth medium for screening phosphate solubilizing microorganisms. FEMS Microbiology Letters 170: 265-270), useful for determining phosphate solubilizing microorganisms , and incubated at 3O 0 C for 10 days. After this time the characteristic transparent halo was observed in the medium. Many isolates that do not show halo in solid medium, or make a very small halo, solubilize insoluble phosphates in liquid medium (Leyval C and Barthelin J. (1999). Plant Soil, 17: 103-110). That is why the test was carried out in liquid medium. As a positive control, Pseudomonas aeruginosa, ATCC 25922 was used.
  • the two strains were seeded separately in NBRIP liquid medium and incubated at 30 0 C with agitation of 180 rpm for 5 days. Sterile medium without inoculation was also used to validate the assay. Samples were taken every 24 hours. The cultures of each sample were centrifuged at 3000 rpm for 25 minutes and the supernatant was filtered on a 0.45 ⁇ m filter. The concentration of soluble phosphates was determined in each case by the method of Fiske and Subbarow (Fiske H and Subbarow Y. (1925). The colorimet ⁇ c determination of phosphorus. J. Biol. Chem. 66: 375-400). The data are shown in Table 1. Although both microorganisms showed the ability to solubilize phosphates, Tsukamurella paurometabola strain C-924 was more efficient.
  • Example 3 Effect of a biofertilizing composition comprising Tsukamurella paurometabola C-924 on the growth and development of banana plants (Musa sp. Hybrid, cultivate Macho).
  • the experiment was carried out in a hothouse with semi-controlled conditions.
  • Means with different letters differ significantly from each other (for each measurement) according to Tukey's docima of multiple ranges, for p ⁇ 0.05.
  • the two microorganisms used produced a significant increase in the growth of banana plants.
  • the increase had no differences between treatments with T. paurometabola strain C-924 and with Bacillus subtilis strain F16 / 95, a bacterium that was used as a positive control, since it is known as a promoter of plant growth (McSpadden BB and Fravel D R. (2002). Biological Control of Plant Pathogens: Research, Commercialization, and Application in the USA. At: http://www.phcrnexico.corn.mx/apsnet_biolog ⁇ cal_Control .html,).
  • Example 4 Effect of Tsukamurella paurometabola C-924 on the growth and development of banana plants (cultivate Cavendish, Musa sp. Hybrid).
  • a medium-carbonated Fluffy Brown soil was selected (Soil Institute (1999). New genetic classification of the soils of Cuba. Ministry of Agriculture. Editorial AGRINFOR), this was screened through a mesh with holes of 0.5 cm in diameter , to eliminate undesirable particles; 5% of earthworm humus was applied to the soil, with which the soil was taken to 3% of labile organic matter (or available) and 12% of total organic matter.
  • the final evaluation was carried out 5 months after the beginning of the experiment, in the parameters: weight of the foliage in grams, weight of the roots in grams and the total sum of both determinations.
  • the experiment was carried out in a hothouse with semi-controlled conditions.
  • the Analysis of Variance was applied to the data obtained from the weights. In order to know among which treatments the significant differences were found (p ⁇ 0.05), the Tucimo multiple range Tukey was applied. The SYSTAT 7.0 for Windows program was used for the execution of the statistical calculations. The results obtained 5 months after the application of the treatments and the transplant were the following: Table 3. Measurement means in 10 plants.
  • Means with different letters differ significantly from each other (for each measurement) according to Tukey's docima of multiple ranges, for p ⁇ 0.05.
  • Example 3 the two microorganisms used caused a significant increase in the growth of banana plants. There were no differences between treatment with strain C-924 and treatment with strain F16 / 95, used as a control.
  • Example 5 Effect of Tsukamurella paurometabola C-924 on the growth and development of soybean plants (Glycine max).
  • a Red Ferralitic type soil was selected (Soil Institute (1999). New genetic classification of the soils of Cuba. Ministry of Agriculture. Editorial AGRINFOR), this was screened by a mesh with holes of 0.5 cm in diameter, to remove undesirable particles; This soil had a content of 2.6% of labile organic matter (or available) and 10.7% of total organic matter.
  • the treatments were applied one day before sowing the pregerminated seeds.
  • the evaluation was carried out 7 days after planting, the following parameters were quantified: root weight, stem weight, leaf weight and plant weight in grams.
  • the plants of 10 pots were evaluated (30 in total).
  • the experiment was carried out in a hothouse with semi-controlled conditions.
  • the Variance Analysis (ANOVA, p ⁇ 0.05) was applied to the data obtained from the pesos.
  • the SYSTAT 7.0 for Windows program was used for the execution of the statistical calculations.
  • Example 6 Effect of Tsukamurella paurometabola C-924 on the growth of tomato plants ⁇ Lycopersicon esculentum WIiII. variety FA-18Q) in seed conditions.
  • a protected crop house adapted for the development of vegetable seedlings was used.
  • As a substrate for the seedbed a mixture of 50% earthworm humus, 25% peat and 25% zeoüta was used. Two treatments of the substrate were used, three days before sowing the pregerminated seeds equally: a) Treatment with a concentrated suspension (5.0 x 10 11 cfu / mL) of Tsukamurella paurometabola strain C-924 at a rate of 20 ml_ per 100 Kg of substrate, using a Manuai spray pump to which 10 L of water was added to make the distribution of the bacterial suspension homogeneous. b) Witness treatment treated only with water.
  • Table 5 summarizes the average values of the heights by plants, where the significant differences (p ⁇ 0.05, ANOVA) between the obtained sizes are observed in both treatments, and a clear influence of strain C-924 can be seen as a promoter of the growth of tomato positions on a substrate with high organic matter content.
  • Example 7 Effect of Tsukamurella paurometabola C-924 on the growth and other phenological parameters and development of tomato plants (Lycopers / with escutentum Mili, variety FA-180) in field conditions.
  • Tsukamurella paurometabola strain C-924 at a rate of 10 L / ha applied by the fertigation system, 7 days before transplantation.
  • Table 6 shows a summary of the results. The height, the number of leaflets and the number of flowers were significantly higher in the two treatments where strain C-924 was used in two different doses, which confirms the properties of this biofertiizing agent in field conditions.
  • EXAMPLE 8 Comparison and interaction of Tsukamurella paurometabola strain C-924 with Rhizobium legum ⁇ nosarum in bean cultivation (Phaseolus vulgaris L.)
  • R leguminosarum was inoculated with a concentration of 2.5 x 10 8 cfu / mL, in solid solution mixed with previously screened humus at a dose of 1 kg of biofertilizer per 45 kg of seed.
  • the necessary fertilization was applied to each pot according to the contents of P2O5 and K 2 O of the soil, according to the agrochemical recommendations of the Soil Institute.
  • the carriers used were Urea, Triple Superphosphate (SFT) and Potassium Chloride (KCI), for nitrogen, phosphorus and potassium, respectively. Fertilization was carried out four days before planting in the case of phosphorus and potassium, and in the case of urea it was applied 15 days after germination. For this crop the fertilization was applied at a rate of 217 kg / ha of Urea, 119.5 kg / ha of SFT and 60 kg / ha of KCI.
  • the phenological variables evaluated were the number of leaves every seven days, as well as the dry weight.
  • the variables were statistically evaluated using a simple classification ANOVA.
  • the Duncan multiple comparison test was applied to compare the treatment means.
  • the statistical package SPSS version 8.0 (1997) was applied. The results of the measurements are summarized in Table 7.
  • EXAMPLE 9 Comparison and interaction of T. paurometabola strain C-924 with Azotobacter chroococcum and Pseudomonas fluorescens in the corn crop (Zea corn.)
  • T. paurometabola strain C-924 it was inoculated 7 days before and 7 days after planting, according to the application in the field. The dose applied was 100 mL / pot with a concentration of 1 x 10 9 cfu / ml.
  • the necessary fertilization was applied to each pot according to the contents of P 2 O 5 and K 2 O of the soil, according to the agrochemical recommendations of the Soil Institute.
  • the carriers used were Urea, Triple Superphosphate (SFT) and Chloride of potassium (KCI) for nitrogen, phosphorus and potassium, respectively. Fertilization was carried out four days before planting in the case of phosphorus and potassium, and in the case of urea it was applied 15 days after germination. For the cultivation of corn, fertilization was applied at a rate of 185 kg / ha of Urea, 121 kg / ha of SFT and 45 kg / ha of KCI.
  • the phenological variables evaluated were the thickness of the stem, the height of the plant and the number of leaves every seven days, as well as the dry weight (MINAG. (1988). Soils. Chemical Analysis. Determination of dry weight, organic matter and acidity indices NRAG. 892 and 878,). The results of the measurements are summarized in Table 8.
  • EXAMPLE 10 Interaction of T. paurometabola strain C-924, with arbuscular mycorrhizae in lettuce (Lactuca sativa).
  • Strain C-924 was used as a wettable powder concentrated at 2x10 12 cfu / mL. It was inoculated seven days before sowing the seeds in an aqueous suspension at a concentration of 3x10 7 cfu / mL. Daily watering was applied in the appropriate proportions so as not to exceed the soil moisture retention capacity.
  • Table 9 summarizes the results. If the treatments corresponding to the application of each MA are compared separately, Ia application of C-924 and application of a combination of the same MA and C-924, it is observed that the best results are achieved in the plants treated with the combination. In both cases, the combinations of T. paurometabola strain C-924 + G. clarum and T. paurometabola strain C-924 + G. fasciculatum, had superior results to the treatments where the same MA was used separately, in terms of the increase of the weight of the foliage of the plants.
  • EXAMPLE 11 Compatibility tests on protected cucumber crops ⁇ Cucumis sativus var. Poinset) between T. paurometabola strain C-924 and Glomus fasciculatum. Two cultivation houses were available on a brown soil without carbonate (Soil Institute (1999). New genetic classification of the soils of Cuba. Ministry of Agriculture. Editorial AGRINFOR), with a labile organic matter content of 3, 1% and total organic matter of 12.3%. An experimental design was carried out for parcels of equal size (30 m 2 ) of four treatments with four replicates, consisting of the following treatments:
  • Treatment 1 soil inoculated with Glomus fasciculatum and C-924.
  • Treatment 2 soil inoculated with Glomus fasciculatum.
  • Treatment 3 soil inoculated with C-924.
  • Treatment 4 soil without inoculation (control).
  • the strain C-924 and the MA was applied seven days before planting and at another two moments, at intervals of 21 days after the first application, according to the equivalent doses per m 2 , which were used in Example 10.
  • the yields expressed in the weight of commercial fruits harvested during the crop cycle (98 days) were evaluated for each treatment. The results are shown in Table 10. There was a significant increase in the weight of the fruits, with respect to! control group, in plants that received treatment with T. paurometabola strain C-924, as with Glomus fasciculatum.

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Abstract

Una composición para estimular el desarrollo de las plantas que comprende al menos una cepa de Tsukamurella paurometabola, agente biofertilizante que optimiza el aprovechamiento de la materia orgánica por las plantas, al favorecer la asimilación del nitrógeno y el fósforo. Dicho agente es capaz de incrementar el crecimiento y desarrollo de las plantas al ser aplicado al suelo directamente o en un sustrato natural o artificial, con materia orgánica, o al aplicarse en cualquier tipo de suelo o sustrato con un complemento orgánico.

Description

COMPOSICIÓN BIOFERTILIZANTE.
Campo de Ia técnica
La presente invención se relaciona con el campo de Ia microbiología del suelo y la aplicación de bioferti I izantes microbianos, capaces de favorecer y estimular el crecimiento de las plantas, sin afectar el medio ambiente.
Estado de Ia técnica anterior
Los biofertilizantes se definen como productos a base de microorganismos que viven normalmente en el suelo, aunque en poblaciones bajas y que al incrementar sus poblaciones por medio de Ia inoculación artificial, son capaces de poner a disposición de las plantas, mediante su actividad biológica, una parte importante de las sustancias nutritivas que necesitan para su desarrollo, así como suministrar sustancias hormonales o promotoras del crecimiento (Martínez J. S. y col. (1985). Manual Práctico de Microbiología. Ed. Pueblo y Educación, Cuba).
Sobre este tema se han realizado diversos estudios sobre un grupo de microorganismos conocidos que se resumen a continuación: Se considera que Ia fijación simbiótica del nitrógeno, propia del género Rhizobium, es una de las alternativas más viables para recuperar nitrógeno en el ecosistema. Se ha estimado que 175 millones de toneladas de nitrógeno/año se fijan biológicamente, del cual el 70% va al suelo (Burity HA y col. (1989). Estimation of nitrogen fixation and transfer from alfalfa to associated grasses in mixed swards under field conditions. Plant and Soil, 114:249-255) y de éste, el 50% proviene de asociaciones nodulares como las causadas por Rhizobium (Carrera M y col. (2004). Nodulación natural en leguminosas silvestres del Estado de Nuevo León).
La fijación simbiótica de nitrógeno ocurre cuando Ia bacteria (Rhizobium) reconoce a su hospedero, Io infecta a través de los pelos radicales y en Ia matriz de las células corticales, induce una meiosis y mitosis acelerada que dan lugar a un tejido hipertrofiado: "el nodulo", estructura típica de las raíces de las leguminosas. Dentro de este nodulo, Rhizobium pierde su pared celular y se transforma en un bacteroide, que por Ia acción de su enzima nitrogenasa, fija el nitrógeno (N2) y Io convierte en amonio (NH3), que es transferido al ribosoma vegetal para Ia síntesis de proteínas. Al mismo tiempo, Ia leguminosa, mediante Ia fotosíntesis, reduce el CO2 en carbohidratos que servirán como fuente de carbono y energía para Rhizobium, y con esto Io mantiene activo en el nodulo hasta cubrir las necesidades de nitrógeno de Ia planta (Bauer T. (2001). Microorganismos Fijadores de Nitrógeno: familia Rhizobiaceae. En: http://www.microbiologia.com.ar/suelo/rhizobium.html). Esta constituye Ia asociación más elaborada y eficiente entre plantas y microorganismos, por esta razón ha sido Ia más estudiada hasta el momento.
Las bacterias del género Azotobacter forman un grupo especial de microorganismos fijadores de nitrógeno por cuanto se trata de los únicos que son unicelulares y, aparentemente, pueden fijar nitrógeno en condiciones aerobias (Andresson AJ y col. (1994). Efecto de Ia inoculación con Azotobacter y MVA en vitroplantas de ñame (Dioscorea alata). Cultivos Tropicales, 15 (3): 66). Desde el punto de vista histórico, es Azotobacter el microorganismo que de una forma más amplia ha sido utilizado en Ia agricultura. Las primeras aplicaciones de estas bacterias datan de 1902, alcanzando una amplia utilización durante las décadas del 40, 50 y 60, particularmente en los países de Europa del Este (González J y Lluch C. (1992). Biología del Nitrógeno. Interacción Planta-Microorganismo. Ed. Rueda, Madrid, España).
Otros microorganismos biofertilizantes Io constituyen varias cepas del género Pseudomonas que contribuyen al aumento de Ia disponibilidad de fósforo asimilable (Lawrence A. R. (2002). Biofertilizers for rice cultivation. Agricultura! Universities of India. En:http://www.hinduonnet.com/thehindu/seta/2002/04/04/stories/20020404001 20400.htm).
La aplicación combinada a semillas de pepino (Cucumis satívus, L.) de tres especies de bacterias: Bacillus pumilus Meyer y Gotheil, Bacillus subtilís (Ehrenberg) Cohn y Curtobacterium flaccumfaciens (Hedges) Collins y Jones, proporcionó mejores resultados en comparación con Ia inoculación de cada una separadamente (Raupach GS y Kloepper JVV. (1998). Mixtures of plant growth-promoting rhizobacteria enhance biological control of múltiple cucumber pathogens. Phytopathology, 88:1158-1164). Se ha informado sobre el efecto positivo de cepas de hongos micorrizógenos combinados con Azotobacter sp. y humus de lombriz sobre el crecimiento de posturas de café (Coffeea arábica). La combinación de Glomus fasciculatum y Glomus peuύ con Azofobacfer resultaron superiores a los tratamientos testigos (Sánchez C. y col. (1994) Utilización de las Micorrizas VA y Azotobacter sp. en Ia producción de posturas de Coffea arábica L. Cultivos Tropicales, 15 (3): 69). En los cultivos de tomate, acelga, lechuga, habichuela y rábano, se ha informado sobre una respuesta positiva de los mismos a Ia coinoculación con Glomus sp. y Azotobacter, que brindó los resultados más efectivos, Io que demuestra que ambos microorganismos funcionaron de forma sinergística cuando se añadieron simultáneamente (Terry E y col. (2000) Efectividad de Azotobacter chroococcum y HFMA en diferentes cultivos hortícolas en condiciones de organopónico. XII Seminario Científico, Programa y Resúmenes. La Habana. INCA, 117). Anteriormente, se ha reportado Ia actividad nematicida de Ia bacteria Tsukamureíla paurometabola, cepa C-924, que ha sido empleada en el control de parásitos de animales y plantas (Mena J y col. Patente EP 0774906 B1 ) como bionematicida. El control biológico de los nemátodos es una alternativa valiosa al uso de los pesticidas químicos en las prácticas agrícolas. El mecanismo de acción de este bionematicida se ha relacionado con el efecto combinado de actividades de desulfurasa y quitinasa sobre los nemátodos y sus huevos. Hasta Ia fecha, no se conoce ningún otro beneficio de su aplicación a los cultivos que no se derive de su acción directa sobre los nemátodos.
Independientemente del efecto inmediato de los fertilizantes químicos sobre el desarrollo de las plantas, las aplicaciones de dichos fertilizantes al suelo generan otros desórdenes nutricionales y efectos colaterales indeseados. Es por ello que existe Ia necesidad de contar con nuevos biofertilizantes que puedan promover el crecimiento de las plantas sin causar efectos indeseados al ambiente y al hombre.
DESCRIPCIÓN DETALLADA DE LA INVENCIÓN
La presente invención resuelve el problema antes planteado, al proveer de una composición biofertilizante que estimula el crecimiento y el desarrollo fenológico de las plantas caracterizada porque comprende al menos una cepa de Tsukamureíla paurometabola, un muíante derivado de Ia misma o un metabolito derivado de dicha cepa en un portador apropiado. La mencionada composición aumenta Ia fertilidad del suelo, y condiciona el mismo para un desarrollo más favorable de las plantas que en él se cultivan.
En una realización de Ia invención Ia composición biofertilizante comprende la bacteria Tsukamure//a paurometabola cepa C-924 (Mena J y col. (2003) Biotecnología Aplicada, 20 (4): 248-252). Se demuestra su capacidad de incidir positivamente en Ia fenología de diversas especies de plantas cultivadas. Con los resultados obtenidos se hace posible establecer un método para estimular el desarrollo de las plantas basado en el uso de un agente biofertilizante de uso agrícola que optimiza el aprovechamiento de Ia materia orgánica por las plantas, al favorecer Ia asimilación del nitrógeno y el fósforo, elementos relacionados con Ia actividad de T. paurometabola cepa C-924 en el suelo, o en un sustrato natural o artificial. Adicíonalmente, se eliminan o disminuyen las aplicaciones de fertilizantes químicos al suelo que, independientemente al efecto inmediato sobre el desarrollo de las plantas que estos ejercen, generan otros desórdenes nutricionales y efectos colaterales indeseados. El efecto bioestimulador de T. paurometabola sobre las plantas se genera a partir de Ia producción de amoníaco (NH3), asociada al crecimiento de esta bacteria sobre Ia materia orgánica y aminoácidos presentes en el suelo o el sustrato que soporta a las plantas, o sobre Ia materia orgánica y aminoácidos adicionados en cualquier mezcla que se aplique simultáneamente o en combinaciones con esta bacteria. Al mismo tiempo el microorganismo interviene en Ia solubilización del fósforo convirtiéndolo de no asimilable a asimilable por las plantas.
La aplicación de Ia bacteria T. paurometabola cepa C-924 al suelo, sobre un sustrato orgánico (artificial o natural) o en combinación con un portador de materia orgánica y/o aminoácidos, se realiza mediante una suspensión celular que posee entre 1 ,0 x 107 unidades formadoras de colonias (ufc)/mL y 5,0 x 1012 ufc/mL, o mediante un polvo concentrado de aproximadamente 1012 ufc/g de composición. La composición que comprende T. paurometabola cepa C-924 (soportada por materia orgánica, aminoácidos y otros portadores orgánicos), aplicada en combinación con otros biofertilizantes y bioestimuladores, o de manera independiente, favorece el desarrollo de las plantas de igual o mejor forma que otros microorganismos promotores del crecimiento vegetal empleados en Ia agricultura. Con los resultados obtenidos se hace posible establecer un método para estimular el desarrollo de las plantas basado en el uso de un agente biofertilizante de uso agrícola que optimiza el aprovechamiento de la materia orgánica por las plantas, al favorecer Ia asimilación del nitrógeno y el fósforo, elementos relacionados con Ia actividad de T. paurometabola cepa C-924 en el suelo o en un sustrato natural o artificial.
En una realización de Ia invención el metabolito comprendido en Ia composición biofertilizante puede ser obtenido por vía natural, recombinante o sintética. La composición biofertilizante de Ia presente invención puede tener como portador un fertilizante orgánico, un suelo pre-empacado, un recubridor de semillas, un polvo, un granulado, un nebulizador, una suspensión o un líquido o cualquiera de las variantes expuestas en forma encapsulada. En una materialización de Ia invención Ia cepa de Tsukamurella paurometabola, se combina o mezcla con otros microorganismos biofertilizantes, como Bacillus subtilis, Rhizobium leguminosarum, Azotobacter chroococcum, Pseudomonas fluorescens, Glomus fasciculatum y Glomus clarum, o un muíante derivado de dichos organismos, así como cualquier principio activo o metabolito obtenido a partir de dichas cepas por vía natural, recombinante o sintética, en un portador apropiado. Es también objeto de Ia presente invención un método para estimular el crecimiento de las plantas, caracterizado porque comprende a) obtener un agente biofertilizante que comprende un cultivo de una cepa de Tsukamurella paurometabola o un metabolito derivado de dicha cepa obtenido por vía natural, recombinante o sintética y b) contactar el suelo o un sustrato natural o artificial con una cantidad efectiva de dicho agente biofertilizante, o del metabolito derivado de dicha cepa. En una realización de Ia invención, el método antes mencionado se caracteriza porque Ia cepa de Tsukamurella paurometabola es Ia cepa C-924. La cantidad efectiva del agente biofertilizante que se aplica sobre suelo o sustrato en suspensión acuosa
6 9 está en una concentración de aproximadamente entre 10 y 10 ufe por mililitro de suspensión, y el agente biofertilizante es aplicado al menos una vez en el terreno o mezclado con el sustrato.
El agente biofertilizante y el método de estimular el crecimiento de las plantas de Ia presente invención es efectivo tanto para plantas que se emplean con el objetivo de obtener alimentos para los seres humanos, como las frutas y vegetales, como para plantas que se obtienen para alimento animal, como pastos, cereales, etc. También es aplicable a las plantas que se cultivan con propósitos ornamentales.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS Figura 1. Cinética de formación de amoníaco durante el cultivo de Tsukamurella paurometabola C-924 en un biorreactor de 5 L. La temperatura de trabajo fue 28 0C y el pH inicial fue igual a 7,0; Ia agitación empleada fue de 500 revoluciones por minutos (rpm). Figura 2. Correlación obtenida entre Ia concentración de amoníaco acumulado y el peso seco de la biomasa producida en el biorreactor de 5 L, en las condiciones antes mencionadas.
Ejemplos de realización
Ejemplo 1. Amoníaco producido por Ia bacteria Tsukamurella paurometabola cepa C-924 cultivada en un biorreactor de 5 L.
Se procedió al cultivo de Ia cepa de T. paurometabola C-924 en biorreactor de 5 L, a 28 0C y con una velocidad de agitación de 500 rpm. Las muestras de medio de cultivo se tomaron a diferentes intervalos de tiempo durante la fermentación (2, 4, 6, 8, 10, 12 y 13 h). Cinco mi de cada muestra (por triplicado) fueron centrifugados y filtrados a través de filtro de 0,2 μm; el filtrado resultante fue sometido al análisis de amonio por el método del reactivo de Nessler. Para Ia determinación espectrofotométrica en un espectrofotómetro Pharmacia-Biotech se utilizó una longitud de onda de 450 nm.
La producción de amoníaco durante el cultivo de Tsukamurella paurometabola cepa C-924 se representa en Ia Figura 1 , que muestra Ia cinética de formación de amoníaco en el biorreactor de 5 L, determinado hasta las 14 horas de cultivo. La temperatura de trabajo fue 28 0C y el pH inicial fue 7,0. Se apreció una producción de amoníaco asociado al crecimiento, Io cual demuestra Ia capacidad de desanimación oxidativa del microorganismo de manera constitutiva en presencia de substrato aminoacídico.
Se apreció el consecuente aumento del pH en el tiempo, alcanzándose valores cercanos a 9,0; y concentraciones de NH3 de hasta 934 μg/mL, por Io que puede considerarse a Tsukamurella paurometabola cepa C-924 como alta productora de amoníaco al compararla con otros microorganismos (Hoffmann T. (1998). Ammonification in Bacillus subtilis utilizing dissimilatory nitrite reducíase ¡s dependent on resDE. Journal of Bacteriology, vol 180, 1 : 186-189; Takahasi N. (2000). Metabolic Pathways for cytotoxic end product formation from glutamate- and aspartate-containing peptides by Porphyromonas gingivalis. Journal of Bacteriology, vol 182, 17: 4704-4710).
La producción de NH3 debe sustentarse fundamentalmente en el proceso de desaminación oxidativa que sufren los aminoácidos componentes del medio de cultivo (Vanhooke JL y col. (1999). Phenylalanine dehydrogenase from Rhodococcus sp. M4: high-resolution X-ray analyses of inhibitory ternary complexes reveal key features in the oxidative deamination mechanism. Biochemistry, 38:2326- 2329; Paustian T. (2001 ) Microbiology Webbed Out. University of Wisconsin- Madison). Es importante señalar que mediante este proceso, los aminoácidos se desaminan rindiendo amoníaco y un residuo de carbono (un α-cetoácido), al necesitarse más carbono energético que nitrógeno asimilable, generalmente ocurre una acumulación de amoníaco en el medio (Salle A J. (1966). Bacteriología. Edición Revolucionaria, La Habana,). Presumiblemente, este mecanismo se ajusta a Io ocurrido en el proceso de acumulación de amoníaco para Tsukamurella paurometabola cepa C-924.
En Ia Figura 2 se muestra Ia correlación experimental obtenida entre los niveles de amoníaco en el medio extracelular, y Ia concentración celular expresada como peso seco de Ia biomasa producida en el biorreactor de 5 L. Ocurre una relación lineal entre ambas variables, Io cual indica una producción de NH3 asociada al crecimiento del microorganismo, cuya velocidad es constante respecto a Ia concentración de biomasa.
Ejemplo 2. Solubilización de fosfatos por Tsukamurella paurometabola cepa C- 924. El fósforo es uno de los principales nutrientes limitantes para el desarrollo de las plantas, pero en muchas ocasiones se encuentra en forma insoluble en el suelo. Un alto porcentaje de los fosfatos inorgánicos aplicados al suelo como fertilizantes son rápidamente inmovilizados luego de su aplicación y se mantienen en formas no disponibles para las plantas. Es por ello que Ia liberación de estas formas insoluoles de fósforo es un aspecto importante para incrementar Ia disponibilidad de este elemento en los suelos.
Con propósitos experimentales, se sembró Ia cepa C-924 en medio NBRIP (Nautiyal C. (1999). An efficient microbiological growth médium for screening phosphate solubilizing microorganisms. FEMS Microbiology Letters 170: 265-270), útil para determinar microorganismos solubilizadores de fosfatos, y se incubó a 3O0C por 10 días. Transcurrido este tiempo se observó el halo transparente característico en el medio. Muchos aislamientos que no muestran halo en medio sólido, o hacen un halo muy pequeño, solubilizan fosfatos insolubles en medio líquido (Leyval C y Barthelin J. (1999). Plant Soil, 17: 103-110). Es por ello que se procedió a realizar el ensayo en medio líquido. Como control positivo se empleó Pseudomonas aeruginosa, ATCC 25922.
Se sembraron las dos cepas separadamente en medio NBRIP líquido y se incubaron a 30 0C, con agitación de 180 rpm, durante 5 días. También se empleó medio estéril sin inocular para validar el ensayo. Se tomaron muestras cada 24 horas. Los cultivos de cada muestra se centrifugaron a 3000 rpm por 25 minutos y el sobrenadante se filtró en un filtro de 0,45 μm. Se determinó en cada caso Ia concentración de fosfatos solubles mediante el método de Fiske y Subbarow (Fiske H y Subbarow Y. (1925). The colorimetπc determination of phosphorus. J. Biol. Chem. 66: 375-400). Los datos se muestran en Ia Tabla 1. Aunque ambos microorganismos mostraron Ia capacidad de solubilizar fosfatos, Tsukamurella paurometabola cepa C-924 resultó más eficiente.
Tabla 1. Resultados de las mediciones de solubilizaciórí de fosfatos por las cepas en estudio.
Figure imgf000009_0001
Ejemplo 3. Efecto de una composición biofertilizante que comprende Tsukamurella paurometabola C-924 sobre el crecimiento y desarrollo de las plantas de plátano (Musa sp. híbrido, cultivar Macho).
Se seleccionó un suelo tipo Pardo Mullido Medianamente Carbonatado (Instituto de
Suelos (1999). Nueva clasificación genética de los suelos de Cuba. Ministerio de Ia Agricultura. Editorial AGRINFOR), éste se tamizó por una malla con orificios de 0,5 cm de diámetro, para eliminar partículas indeseables; se aplicó un 5% de humus de lombriz al suelo, con ello se elevó el contenido de materia orgánica del suelo sobre el 3 % de materia orgánica lábil y un 12 % de materia orgánica total. Posteriormente, se llenaron las macetas, de 15 cm de diámetro superior y 1 ,0 L de capacidad, para ser empleadas en los experimentos de actividad biológica. Se emplearon plántulas procedentes de cultivo de tejido in vitro ("vitroplantas") de plátano (Musa sp. híbrido, cultivar Macho), que fueron plantadas en las macetas. Se utilizaron 10 réplicas en cada uno de los siguientes tratamientos:
1- Testigo: Medio Luria Bertani (LB) + H2O [a concentración 1/1000]. Aplicado a 50 mL/maceta.
2- Bacillus subtilis cepa F16/95 [ajustado a 1 x 107 esporas/mL]. Aplicada a 50 mL/maceta.
3- Tsukamurella paurometabola cepa C-924 [ajustado a 1 x 107 ufc/mL]. Aplicada a 50 mL/maceta.
La evaluación final se efectuó a los 3 meses de iniciado el experimento, en los parámetros peso del follaje en gramos, peso de las raíces en gramos y Ia suma total de ambas determinaciones.
El experimento se llevó a cabo en un invernáculo con condiciones semicontroladas.
Se aplicó el Análisis de Varianza (ANOVA) a los datos obtenidos de los pesos. Para conocer entre qué tratamientos se encontraban las diferencias significativas
(p<0,05), se aplicó Ia dócima de rangos múltiples de Tukey. Se empleó el programa
SYSTAT 7.0 for Windows, para Ia ejecución de los cálculos estadísticos. Los resultados obtenidos a los tres meses de Ia aplicación de los tratamientos y del transplante fueron los siguientes:
Tabla 2. Medias de las mediciones en 10 plantas.
Figure imgf000010_0001
Medias con letras distintas difieren significativamente entre sí (para cada medición) según Ia dócima de rangos múltiples de Tukey, para p < 0,05.
Los dos microorganismos empleados produjeron un incremento significativo en el crecimiento de las plantas de plátano. El incremento no tuvo diferencias entre los tratamientos con T. paurometabola cepa C-924 y con Bacillus subtilis cepa F16/95, bacteria que se empleó como control positivo, ya que es conocida como promotor del crecimiento de las plantas (McSpadden B B y Fravel D R. (2002). Biological Control of Plant Pathogens: Research, Commercialization, and Application in the USA. En: http://www.phcrnexico.corn.mx/apsnet_biolog¡cal_Control.html,).
Ejemplo 4. Efecto de Tsukamurella paurometabola C-924 sobre el crecimiento y desarrollo de las plantas de banano (cultivar Cavendish, Musa sp. híbrido).
Se seleccionó un suelo tipo Pardo Mullido Medianamente Carbonatado (Instituto de Suelos (1999). Nueva clasificación genética de los suelos de Cuba. Ministerio de Ia Agricultura. Editorial AGRINFOR), éste se tamizó por una malla con orificios de 0,5 cm de diámetro, para eliminar partículas Indeseables; se aplicó un 5% de humus de lombriz al suelo, con ello se llevó el suelo al 3 % de materia orgánica lábil (o disponible) y un 12 % de materia orgánica total.
Posteriormente, se llenaron las macetas de 15 cm de diámetro superior y 1 ,0 L de capacidad, para ser empleadas en los experimentos de actividad biológica. Se emplearon "vitroplantas" de banano (cultivar Cavendish, Musa sp. híbrido) plantadas en las macetas. Se utilizaron 10 réplicas en cada uno de los siguientes tratamientos:
1- Testigo: Medio LB + H2O [a concentración 1/1000]. Aplicado a 50 mL/maceta.
2- Bacillus subtilis cepa F16/95 [ajustada a 1 x 107 esporas/mL]. Aplicada a 50 mL/maceta. 3- Tsukamurella paurometabola cepa C-924 [ajustada a 1 x 107 ufc/mL]. Aplicada a 50 mL/maceta.
La evaluación final se efectuó a los 5 meses de iniciado el experimento, en los parámetros: peso del follaje en gramos, peso de las raíces en gramos y Ia suma total de ambas determinaciones. El experimento se llevó a cabo en un invernáculo con condiciones semicontroiadas.
Se aplicó el Análisis de Varianza (ANOVA) a los datos obtenidos de los pesos. Para conocer entre qué tratamientos se encontraban las diferencias significativas (p<0.05), se aplicó Ia dócima de rangos múltiples de Tukey. Se empleó el programa SYSTAT 7.0 for Windows, para Ia ejecución de los cálculos estadísticos. Los resultados obtenidos a los 5 meses de Ia aplicación de los tratamientos y del transplante fueron los siguientes: Tabla 3. Medias de las mediciones en 10 plantas.
Figure imgf000012_0001
Medias con letras distintas difieren significativamente entre sí (para cada medición) según Ia dócima de rangos múltiples de Tukey, para p < 0,05.
Al igual que en el Ejemplo 3, los dos microorganismos empleados provocaron un incremento significativo en el crecimiento de las plantas de plátano. No hubo diferencias entre el tratamiento con Ia cepa C-924 y el tratamiento con Ia cepa F16/95, empleada como control.
Ejemplo 5. Efecto de Tsukamurella paurometabola C-924 sobre el crecimiento y desarrollo de las plantas de soya (Glycine max).
Se seleccionó un suelo tipo Ferralítico Rojo (Instituto de Suelos (1999). Nueva clasificación genética de los suelos de Cuba. Ministerio de Ia Agricultura. Editorial AGRINFOR), éste se tamizó por una malla con orificios de 0,5 cm de diámetro, para eliminar partículas indeseables; este suelo presentaba un contenido de 2,6 % de materia orgánica lábil (o disponible) y un 10,7 % de materia orgánica total.
Posteriormente, se llenaron las macetas de 15 cm de diámetro superior y 1 ,0 L de capacidad, para ser empleadas en los experimentos de actividad biológica. Se emplearon semillas pregerminadas de soya (Glycine max) sembradas en número de tres por macetas. Se utilizaron 20 macetas (con tres plantas cada una) en cada uno de los siguientes tratamientos:
1- Testigo: Medio LB + H2O [a concentración 1/1000]. Aplicado a 100 mL/maceta.
2- Tsukamurella paurometabola cepa C-924 [ajustada a 1 x 106 ufc/mL]. Aplicada a 100 mL/maceta.
Los tratamientos se aplicaron un día antes de sembrar las semillas pregerminadas. La evaluación se efectuó a los 7 días posteriores a Ia siembra, se cuantificaron los siguientes parámetros: peso de las raíces, peso de los tallos, peso de las hojas y peso de Ia planta en gramos. Se evaluaron las plantas de 10 macetas (30 en total). El experimento se llevó a cabo en un invernáculo con condiciones semicontroladas. Se aplicó el Análisis de Varianza (ANOVA, p < 0,05) a los datos obtenidos de los pesos. Se empleó el programa SYSTAT 7.0 for Windows, para Ia ejecución de los cálculos estadísticos.
Los resultados de los valores medios (por plantas) de (os pesos frescos en cada evaluación y su significación, se resumen en Ia Tabla 4.
Tabla 4. Medias de las mediciones en 30 plantas.
Peso raíces Peso tallos Peso hojas Peso planta
Tratamiento (g) (g) (g) (g)
Testigo 0 ,388 0 ,783 0 ,564 1 , 735
C-924 0 ,367 1 ,066 0 ,680 2, 113
A los 7 días del desarrollo de las plantas se observaron diferencias significativas en el incremento de los pesos frescos en tallos, hojas y en el peso total de (as plantas, para el tratamiento donde se empleó la cepa C-924, por Io que se concluye que el tratamiento con Ia composición que comprende la bacteria arrojó resultados satisfactorios en Ia estimulación del crecimiento de las plantas.
Ejemplo 6. Efecto de Tsukamurella paurometabola C-924 sobre el crecimiento de las plantas de tomate {Lycopersicon esculentum WIiII. variedad FA-18Q) en condiciones de semillero.
Se utilizó una casa de cultivos protegidos adaptada para el desarrollo de los semilleros de hortalizas. Como sustrato para el semillero se empleó una mezcla de humus de lombriz al 50 %, turba al 25 % y zeoüta al 25 %. Se emplearon dos tratamientos del sustrato, tres días antes de sembrar las semillas pregerminadas por igual: a) Tratamiento con una suspensión concentrada (5,0 x 1011 ufc/mL) de Tsukamurella paurometabola cepa C-924 a razón de 20 ml_ por 100 Kg de sustrato, usando una bomba de aspersión manuaí a Ia que se Ie añadió 10 L de agua para hacer homogénea Ia distribución de la suspensión bacteriana. b) Tratamiento Testigo tratado sólo con agua.
A los 22 días de Ia siembra, cuando las plántulas o posturas estaban listas para el transplante, se midió Ia altura de 40 plántulas de cada tratamiento, ubicadas en grupos de a 10 en diferentes lugares del semillero seleccionados al azar. En Ia Tabla 5 se resumen los valores de las medias de las alturas por plantas, donde se observan las diferencias significativas (p < 0.05, ANOVA) entre las tallas obtenidas en ambos tratamientos, y se aprecia una clara influencia de Ia cepa C-924 como promotor del crecimiento de las posturas de tomate sobre un sustrato con alto contenido de materia orgánica.
Tabla 5. Medias de las mediciones en 40 plantas.
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Ejemplo 7. Efecto de Tsukamurella paurometabola C-924 sobre el crecimiento y otros parámetros fenológicos y del desarrollo de las plantas de tomate (Lycopers/con escutentum Mili, variedad FA-180) en condiciones de campo.
Se utilizó una casa de cultivos protegidos de 0,09 ha de superficie, en un suelo tipo pardo sin carbonato (Instituto de Suelos (1999). Nueva clasificación genética de los suelos de Cuba. Ministerio de Ia Agricultura. Editorial AGRINFOR), con un contenido de materia orgánica lábil del 3 % y total del 12 %. Para ello, se dividió Ia casa en 16 parcelas donde se estableció un diseño experimental con cuatro tratamientos e igual número de réplicas, en Ia siguiente forma: • Tratamiento con una suspensión concentrada (5,0 x 1011 ufc/mL) de
Tsukamurella paurometabola cepa C-924 a razón 10 L/ha aplicada por el sistema de fertirriego, 7 días antes del transplante.
• Tratamiento con una suspensión concentrada (5,0 x 1011 ufc/mL) de Tsukamurella paurometabola cepa C-924 a razón 4 L/ha aplicada por el sistema dθ fertirriego, 7 días antes del transplante.
• Tratamiento químico: Basamid (Dazomet) a 600 Kg/ha.
• Testigo (sin tratamiento químico ni biológico).
Los dos tratamientos con (a cepa C-924 se realizaron mediante una bomba auxiliar al sistema de riego localizado (goteo), con una norma de entrega tota! de riego de 1 L por metro cuadrado y de acuerdo a los parámetros establecidos para el fertirriego en los cultivos protegidos (Casanova A. (1999). Guía técnica para !a producción protegida de hortalizas en Casas de Cultivo tropical con efecto de "sombrilla". MlNAGRI, Instituto de Investigaciones Hortícolas "Liliana Dimitrova"). A los 15 días del transplante, se realizaron mediciones y conteos (a 10 plantas por parcela) en los siguientes parámetros: • Altura de las plantas (cm).
• Número de foliólos por planta.
• Grosor de Ia base del tallo (mm).
• Número de racimos florales por planta.
• Número de flores por planta.
En Ia Tabla 6 se muestra un resumen de los resultados. Fueron significativamentθ superiores Ia altura, el número de foliólos y el número de flores en los dos tratamientos donde se empleó Ia cepa C-924 en dos dosis diferentes, Io cual ratifica las propiedades de este agente bioferti I izante en condiciones de campo.
Tabla 6. Medias de las mediciones en 10 plantas.
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Medias con letras diferentes (en cada parámetro o medición) difieren significativamente según Ia prueba de Tukey, (p < 0,05).
EJEMPLO 8. Comparación e interacción de Tsukamurella paurometabola cepa C-924 con Rhizobium legumínosarum en el cultivo del frijol (Phaseolus vulgaris L.)
Cada tratamiento constó de cinco réplicas y cuatro plantas por réplica. Las semillas se sembraron a razón de una semilla por nido, cuatro nidos por maceta y a una profundidad de 3 cm en macetas de 1 L de capacidad. Para cada unidad experimental (maceta) se utilizó 1 ,2 kg de suelo tipo Pardo con Carbonates, con un contenido de materia orgánica lábil de 3,74 % (14,2 % total) y de fósforo soluble de 19,14 mg de P2 O5/IOO g de suelo (Instituto de Suelos (1999). Nueva clasificación genética de los suelos de Cuba. Ministerio de Ia Agricultura. Editorial AGRlNFOR). El experimento se llevó a cabo en un invernáculo con condiciones semicontroladas. Los tratamientos fueron los siguientes: 1. Testigo sin inocular. 2. T. paurometabola cepa C-924, se inoculó 7 días antes y 7 días después de Ia siembra. La dosis aplicada fue de 100 mL/maceta con una concentración de 1 x 109 ufc/mL
3. Se inoculó R leguminosarum con una concentración de 2,5 x 108 ufc/mL, en solución sólida mezclada con humus previamente tamizado a una dosis de 1 kg de biofertilizante por 45 kg de semilla.
4. Combinación de los tratamientos 2 y 3.
A cada maceta se Ie aplicó Ia fertilización necesaria de acuerdo a los contenidos de P2O5 y K2O del suelo, según las recomendaciones agroquímicas del Instituto de Suelos. Los portadores utilizados fueron Urea, Superfosfato Triple (SFT) y Cloruro de Potasio (KCI), para nitrógeno, fósforo y potasio, respectivamente. La fertilización se realizó cuatro días antes de Ia siembra en el caso de fósforo y potasio, y en el caso de Ia urea se aplicó a los 15 días después de Ia germinación. Para este cultivo Ia fertilización se aplicó a razón de 217 kg/ha de Urea, 119.5 kg/ha de SFT y 60 kg/ha de KCI.
Las variables fenológicas evaluadas fueron el número de hojas cada siete días, así como el peso seco. Las variables se evaluaron estadísticamente mediante un ANOVA de clasificación simple. Se aplicó Ia prueba de comparación múltiple de Duncan para comparar las medias de los tratamientos. Se aplicó el paquete estadístico SPSS versión 8.0 (1997). Los resultados de las mediciones se resumen en Ia Tabla 7.
Tabla 7. Resultados de Ia aplicación de las cepas inoculadas sobre los parámetros fenológicos en el cultivo del frijol {Phaseolus vulgarís L.).
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Medias con letras distintas difieren significativamente entre sí (en cada medición) según la prueba de rangos múltiples de Duncan, para p < 0,05.
Con respecto al número de hojas, a los 36 días, los mejores resultados se obtuvieron con Ia aplicación de T. paurometabola cepa C-924, existiendo diferencias significativas con el resto de los tratamientos. En el que se aplicaron ambas cepas, este parámetro fue similar al tratamiento con R. leguminosarum, sin embargo resultaron diferentes al testigo.
En cuanto al porcentaje de materia seca, los mayores valores se observaron en Ia aplicación conjunta de T. paurometabola cepa C-924 y R leguminosarum aunque no difirió estadísticamente de los tratamientos donde se aplica el biofertilizante y en el testigo sin inocular. Este hecho se debe a Ia presencia de cepas nativas en el suelo y el efecto positivo del R leguminosarum sobre el crecimiento del cultivo del frijol.
EJEMPLO 9. Comparación e interacción de T. paurometabola cepa C-924 con Azotobacter chroococcum y Pseudomonas fluorescens en el cultivo de maíz (Zea maíz.)
Cada tratamiento constó de cinco réplicas y cuatro plantas por réplica. Las semillas se sembraron a razón de una semilla por nido, cuatro nidos por maceta y a una profundidad de 3 cm en macetas de 1 L de capacidad. Para cada unidad experimental (maceta) se utilizó 1 ,2 Kg de suelo Pardo con Carbonatas, con un contenido de materia orgánica lábil de 3,74 % (14,2 % total) y de fósforo soluble de 19,14 mg de P2 O5/100g de suelo (Instituto de Suelos (1999). Nueva clasificación genética de los suelos de Cuba. Ministerio de Ia Agricultura. Editorial AGRINFOR). El experimento se llevó a cabo en un invernáculo con condiciones semicontroladas. Los tratamientos fueron los siguientes:
1. Testigo sin inocular.
2. T. paurometabola cepa C-924: se inoculó 7 días antes y 7 días después de Ia siembra, según se realiza Ia aplicación en el campo. La dosis aplicada fue de 100 mL/maceta con una concentración de 1 x 109 ufc/ml.
3. A. chroococcum con una concentración de 4,5 x 1010 ufc/ml en solución sólida mezclada con humus previamente tamizado a una dosis de 2 kg/ha.
4. P. fluorescens con una concentración de 2,7 x 1010 ufc/ml, en solución sólida mezclada con humus previamente tamizado a una dosis de 2 kg/ha. 5. Combinación de los tratamientos 2 y 3. 6. Combinación de los tratamientos 2 y 4.
A cada maceta se Ie aplicó Ia fertilización necesaria de acuerdo a los contenidos de P2O5 y K2O del suelo, según las recomendaciones agroquímicas del Instituto de Suelos. Los portadores utilizados fueron Urea, Superfosfato Triple (SFT) y Cloruro de potasio (KCI) para nitrógeno, fósforo y potasio, respectivamente. La fertilización se realizó cuatro días antes de Ia siembra en ei caso de fósforo y potasio, y en el caso de Ia urea se aplicó a los 15 días después de Ia germinación. Para el cultivo del maíz Ia fertilización se aplicó a razón de 185 kg/ha de Urea, 121 kg/ha de SFT y 45 kg/ha de KCI.
Las variables fenológicas evaluadas fueron el grosor del tallo, Ia altura de Ia planta y el número de hojas cada siete días, así como el peso seco (MINAG. (1988). Suelos. Análisis Químico. Determinación de peso seco, materia orgánica y los índices del grado de acidez. NRAG. 892 y 878,). Los resultados de las mediciones se resumen en Ia Tabla 8.
Tabla 8. Resultados de Ia aplicación de las cepas inoculadas sobre los parámetros fenológicos y Ia materia seca en el cultivo del maíz (Zea maíz L.)
Figure imgf000018_0001
Medias con letras distintas difieren significativamente entre sí según Ia prueba de rangos múltiples de Duncan, para p < 0,05.
Los mejores valores para cada uno de los parámetros fenológicos estudiados se obtuvieron en los tratamientos donde se aplicó T. paurometabola cepa C-924, tanto solo como combinado con los otros promotores del crecimiento. Respecto al número de hojas, los resultados de Ia aplicación de C-924 solo fueron superiores, de manera estadísticamente significativa, ai resto de los tratamientos.
Los mejores resultados en el desarrollo de los cultivos durante Ia aplicación de T. paurometabola cepa C-924 evidencian que existe un aporte de elementos adicionales al crecimiento de las plantas que está dado por los compuestos nitrogenados que se liberan durante Ia degradación de Ia materia orgánica.
En cuanto al porcentaje de materia seca de las plantas de maíz, una vez finalizado el estudio, se observó que todas las variantes inoculadas con uno u otro microorganismo muestran valores similares, pero superiores respecto al control sin inocular. Esto demuestra Ia eficacia de los biofertilizantes estudiados en el crecimiento del cultivo (Haggag W M. (2002). Sustainable Agricultura Management of Plant Diseases. Online Journal of Biological Science, 2: 280-284).
EJEMPLO 10. Interacción de T. paurometabola cepa C-924, con micorrizas arbusculares en el cultivo de lechuga (Lactuca sativa).
Se utilizó un suelo Ferrítico Rojo Púrpura (Instituto de Suelos (1999). Nueva clasificación genética de los suelos de Cuba. Ministerio de Ia Agricultura. Editorial AGRINFOR) con un 2,9 % de materia orgánica lábil y 11 ,8 % total, dispensado en macetas de 1 L de capacidad. Se emplearon semillas pregerminadas de lechuga (Lactuca sativa) variedad Black Simpson.
La cepa C-924 se utilizó en forma de un polvo humedecible concentrado a 2x1012 ufc/mL. La misma se inoculó siete días antes de Ia siembra de las semillas en una suspensión acuosa a una concentración de 3x107 ufc/mL. Se aplicó riego diario en las proporciones adecuadas para no sobrepasar Ia capacidad de retención de humedad del suelo.
Las micorrizas arbusculares (MA) Glomus fasciculatum y Glomus clarum previamente formuladas en el Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas de Cuba, se aplicaron en el momento de Ia siembra en dosis de 200 g/m2 (20 g por maceta). Se empleó un diseño experimental de seis tratamientos con cuatro réplicas (macetas), cada una de ellas con cuatro plantas de lechuga. Las plantas se mantuvieron durante 30 días bajo las condiciones semicontroladas de una casa de cultivos. Los tratamientos fueron los siguientes: Tratamiento 1 : suelo sin inoculación (testigo). Tratamiento 2: suelo inoculado con C-924. Tratamiento 3: suelo inoculado con Glomus fasciculatum y C-924. Tratamiento 4: suelo inoculado con Glomus fasciculatum. Tratamiento 5: suelo inoculado con Glomus clarum y C-924. Tratamiento 6: suelo inoculado con Glomus clarum.
A los 30 días de Ia siembra se determinó el peso fresco del follaje de cada planta en todos los tratamientos. En Ia Tabla 9 se resumen los resultados. Si se comparan los tratamientos correspondientes a Ia aplicación de cada MA por separado, Ia aplicación de C-924 y aplicación de una combinación de Ia misma MA y C-924, se observa que los mejores resultados se alcanzan en las plantas tratadas con Ia combinación. En ambos casos, las combinaciones de T. paurometabola cepa C-924 + G. clarum y T. paurometabola cepa C-924 + G. fasciculatum, tuvieron resultados superiores a los tratamientos donde se empleó por separado Ia misma MA, en cuanto al incremento del peso del follaje de las plantas.
Tabla 9. Comparación de las medias del peso de Ia parte aérea de cada planta de lechuga.
Figure imgf000020_0001
Medias con letras diferentes presentaron diferencias significativas, p < 0,05 (Tukey).
EJEMPLO 11. Ensayos de compatibilidad en cultivos protegidos de pepino {Cucumis sativus var. Poinset) entre T. paurometabola cepa C-924 y Glomus fasciculatum. Se dispuso de dos casas de cultivo en un suelo tipo pardo sin carbonato (Instituto de Suelos (1999). Nueva clasificación genética de los suelos de Cuba. Ministerio de Ia Agricultura. Editorial AGRINFOR), con un contenido de materia orgánica lábil del 3,1 % y materia orgánica total del 12,3 %. Se realizó un diseño experimental por parcelas de igual tamaño (30 m2) de cuatro tratamientos con cuatro réplicas, consistentes en los siguientes tratamientos:
Tratamiento 1 : suelo inoculado con Glomus fasciculatum y C-924. Tratamiento 2: suelo inoculado con Glomus fasciculatum. Tratamiento 3: suelo inoculado con C-924. Tratamiento 4: suelo sin inoculación (testigo). Se aplicó Ia cepa C-924 y Ia MA siete días antes de Ia siembra y en otros dos momentos, a intervalos de 21 días después de Ia primera aplicación, de acuerdo a las dosis equivalentes por m2, que fueron empleadas en el Ejemplo 10. Se evaluaron los rendimientos expresados en el peso de los frutos comerciales cosechados durante el ciclo del cultivo (98 días) para cada tratamiento. Los resultados se muestran en Ia Tabla 10. Se produjo un incremento significativo del peso de los frutos, respecto a! grupo testigo, en las plantas que recibieron el tratamiento con T. paurometabola cepa C-924, al igual que con Glomus fasciculatum. Además, al aplicar los dos microorganismos de manera combinada, el peso de los frutos aumentó en comparación a las aplicaciones de los microorganismos por separado. Esta diferencia fue estadísticamente significativa. Tabla 10. Comportamiento de los rendimientos en casas de cultivo con aplicación combinada de C-924 y el hongo micorrizógeno G. fasciculatum.
Figure imgf000021_0001
Medias con letras diferentes presentaron diferencias significativas, p < 0,05 (Tukey).

Claims

REIVINDICACIONESCOMPOSICIÓN BIOFERTILIZANTE.
1. Composición biofertilizante para estimular el crecimiento y el desarrollo fenológico de las plantas caracterizada porque comprende al menos una cepa de
Tsukamurella paurometabola, un muíante derivado de Ia misma o un metabolito derivado de dicha cepa en un portador apropiado.
2. Composición biofertilizante según Ia reivindicación 1 , caracterizada porque Ia cepa de Tsukamurella paurometabola es Ia cepa C-924.
3. Composición biofertilizante según Ia reivindicación 2, caracterizada porque Ia cantidad efectiva de Ia cepa de Tsukamurella paurometabola C-924 en Ia composición está en el rango de 109 a 1012 unidades formadoras de colonias (ufe) por mililitro o gramo de medio de cultivo.
4. Composición biofertilizante según Ia reivindicación 1 , caracterizada porque el metabolito puede ser obtenido por vía natural, recombinante o sintética.
5. Composición biofertilizante según Ia reivindicación 1 , caracterizada porque el portador es un fertilizante orgánico, un suelo pre-empacado, un recubridor de semillas, un polvo, un granulado, un nebulizador, una suspensión o un líquido o cualquiera de las variantes expuestas en forma encapsulada.
6. Composición biofertilizante según Ia reivindicación 1 , caracterizada porque Ia cepa de Tsukamurella paurometabola, se combina o mezcla con otros microorganismos biofertilizantes, como Bacillus subtilis, Rhizobium leguminosarum, Azotobacter chroococcum, Pseudomonas fluorescens, Glomus fasciculatum y Glomus clarum, o un muíante derivado de dichos organismos, así como cualquier principio activo o metabolito obtenido a partir de dichas cepas por vía naíural, recombinaníe o siníética, en un portador apropiado.
7. Método para estimular el crecimiento de las plantas, caracterizado porque comprende: a) Obtener un agente biofertilizante que comprende un cultivo de una cepa de Tsukamurella paurometabola o un metabolito derivado de dicha cepa obtenido por vía natural, recombinante o sintéíica. b) Coníacíar el suelo o un susírato natural o artificial con una cantidad efectiva de dicho agente biofertilizante, o del metabolito derivado de dicha cepa.
8. Método para estimular el crecimiento de las plantas según Ia reivindicación 7, caracterizado porque Ia cepa de Tsukamurθlla paurometabola es Ia cepa C-924.
9. Método para estimular el crecimiento de las plantas según Ia reivindicación 7, caracterizado porque Ia cantidad efectiva del agente biofertilizante que se aplica sobre suelo o sustrato en una suspensión acuosa está en una concentración de aproximadamente entre 10 y 10 ufe por mililitro de suspensión.
10. Método para estimular el crecimiento de las plantas según Ia reivindicación 9, caracterizado porque el agente biofertilizante es aplicado al menos una vez en el terreno o mezclado con el sustrato.
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Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101748087B (zh) * 2009-12-25 2011-11-23 浙江工业大学 耐酪氨酸冢村氏菌及其催化制备(S)-α-乙基-2-氧-1-吡咯烷乙酸
ES2378040B1 (es) 2010-03-31 2013-02-18 Probelte, S.A Un preparado biológico bionematicida y estimulador del crecimiento vegetal y cultivos puros de las cepas denominadas n11, sr11 y alo1, contenidas en el mismo.
CA2898583C (en) * 2013-03-20 2023-09-26 Basf Corporation Synergistic compositions comprising a bacillus subtilis strain and a biopesticide
MA35583B1 (fr) * 2013-04-05 2014-11-01 Valorhyze Formulation liquide de deux de pseudomonas fluorescence lr1 solubilisatrice de phosphore applicable pour la fertilisation agricole
US9839222B2 (en) 2014-08-28 2017-12-12 Universidad Eafit Process for increasing biomass and spores production of plant growth promoting bacteria of the bacillus genus
UY36478A (es) 2014-12-29 2017-07-31 Fmc Corp Composiciones microbianas y metodos para usar para beneficiar el crecimiento de las plantas y tratar la enfermedad de las plantas
MX2017008876A (es) * 2017-07-04 2019-02-08 Newpek S A De C V Una formulacion inoculante bacteriano a base de un consorcio de microorganismos del genero calothrix sp. para incrementar el rendimiento y calidad de cultivos vegetales, el metodo para la fabricacion de la formulacion, y usos.
PH12017000246A1 (en) * 2017-08-30 2019-03-04 Univ Of The Philippines Los Banos Composition and method of producing a multi-functional biofertilizer for use as seed/planting material inoculant for use in all crops
CU24557B1 (es) 2018-09-27 2021-12-08 Ct Ingenieria Genetica Biotecnologia Composición sólida de uso agrícola que comprende cepa bacteriana de brevibacterium celere
CU20220062A7 (es) * 2022-10-19 2024-05-07 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Biocubafarma Composición inductora de la floración

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0774906B1 (en) 1994-08-10 2006-03-15 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Nematicidic agent and method for the bio-control of nematodes

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS627787A (ja) * 1985-07-05 1987-01-14 Sunaken Kk 土壌改良剤
KR100430761B1 (ko) * 2000-10-02 2004-05-10 (주)에스비바이오테크 고밀도 길항 미생물 기재의 제조방법
CU23176A1 (es) * 2001-01-03 2006-09-22 Ct Ingenieria Genetica Biotech Composiciones pesticidas y antiparasitarias
EP1656445A4 (en) * 2003-07-07 2008-12-10 Flinders Technologies Pty Ltd METHOD AND AGENTS FOR IMPROVING THE PRODUCTIVITY OF PLANTS INVOLVING ENDOPHYTIC ACTINOMYCETS AND THEIR METABOLITES

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0774906B1 (en) 1994-08-10 2006-03-15 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Nematicidic agent and method for the bio-control of nematodes

Non-Patent Citations (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ANDRESSON AJ ET AL.: "Efecto de la inoculación con Azotobacter y MVA en vitroplantas de name (Dioscorea alata)", CULTIVOS TROPICALES, vol. 15, no. 3, 1994, pages 66
BAUER T, MICROORGANISMOS FIJADORES DE NITR6GENO: FAMILIA RHIZOBIACEAE, 2001, Retrieved from the Internet <URL:http://www.microbiologia.com.ar/suelo/rhizobium.html>
BURITY HA ET AL.: "Estimation of nitrogen fixation and transfer from alfalfa to associated grasses in mixed swards under field conditions", PLANT AND SOIL, vol. 114, 1989, pages 249 - 255
CARRERA M ET AL., NODUIACION NATURAL EN LEGUMINOSAS SILVESTRES DEL ESTADO DE NUEVO LEON, 2004
FISKE H; SUBBAROW Y: "The colorimetric determination of phosphorus", J. BIOL. CHEM., vol. 66, 1925, pages 375 - 400
GONZÁLEZ J; LLUCH C.: "Biologia del Nitr6geno. Interacción Planta-Microorganismo", 1992, RUEDA
HAGGAG. W. M: "Sustainable Agriculture Management of Plant Diseases", JOURNAL OF BIOLOGICAL SCIENCE, vol. 2, 2002, pages 280 - 284
HOFFMANN T.: "Ammonification in Bacillus subtilis utilizing dissimilatory nitrate reductase is dependent on resDE", JOURNAL OF BACTERIOLOGY, vol. 180, no. 1, 1998, pages 186 - 189
LAWRENCE A.R., BIOFERTILIZERS FOR RICE CULTIVATION. AGRICULTURAL UNIVERSITIES OF INDIA, 2002, Retrieved from the Internet <URL:http://www.hinduonnet.com/thehindu/seta/2002/04/04/stories/2002040400120400.ht m>
LEYVAL C.; BARTHELIN J., PLANT SOIL, vol. 17, 1999, pages 103 - 110
MARTINEZ J. S. ET AL.: "Manual Practice de Microbiologia", 1985, PUEBLO Y EDUCACION
MENA J. ET AL., BIOTECNOLOGIA APLICADA, vol. 20, no. 4, 2003, pages 248 - 252
NAUTIYAL C.: "An efficient microbiological growth medium for screening phosphate solubilizing microorganisms", FEMS MICROBIOLOGY LETTERS, vol. 170, 1999, pages 265 - 270
PAUSTIAN T., MICROBIOLOGY WEBBED OUT, 2001
RAUPACH GS; KLOEPPER JW.: "Mixtures of plant growth-promoting rhizobacteria enhance biological control of multiple cucumber pathogens", PHYTOPATHOLOGY, vol. 88, 1998, pages 1158 - 1164
SALLE A J: "Bacteriologia", 1966, EDICIÓN REVOLUCIONARIA
SÁNCHEZ C. ET AL.: "Utilización de las Micorrizas VA y Azotobacter sp. en la produccion de posturas de Coffea arabica L.", CULTIVOS TROPICALES, vol. 15, no. 3, 1994, pages 69
TAKAHASI N.: "Metabolic Pathways for cytotoxic end product formation from glutamate and a spartate containing peptides by Porphyromonas gingivalis", JOURNAL OF BACTERIOLOGY, vol. 182, no. 17, 2000, pages 4704 - 4710
TERRY E. ET AL.: "Efectividad de Azotobacter chroococcum y HFMA en diferentes cultivos horticolas en condiciones de organop6nico", XII SEMINARIO CIENTIFICO, PROGRAMA Y RESÚMENES, 2000, pages 117
VANHOOKE JL ET AL.: "Phenylalanine dehydrogenase from Rhodococcus sp. M4: high-resolution X-ray analysis of inhibitory ternary complexes reveal key features in the oxidative deamination mechanism", BIOCHEMISTRY, vol. 38, 1999, pages 2326 - 2329

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