WO2008081116A2 - Préparations cellulaires pour une utilisation comme agent stimulant la revascularisation - Google Patents

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WO2008081116A2
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cellular
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Gérard TOBELEM
Sophie Le Ricousse-Roussanne
Philippe Foubert
Jean-Sébastien SILVESTRE
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Institut Des Vaisseaux Et Du Sang
Assistance Publique-Hopitaux De Paris
Universite Paris Diderot-Paris 7
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Definitions

  • the present invention relates to a cell preparation and to a use of this cell preparation as a revascularization stimulating agent.
  • the targeted pathologies are here numerous, and overall it is the pathologies that led to denaturation or destruction of a vascular system. Such circumstances occur especially when the arterial blood supply in a tissue or organ decreases or stops.
  • Cellular therapies consist precisely of regenerating altered tissue, whatever it is, from specific cells cultured in vitro, or not, and then transplanted into the altered tissue. Many advances have already been made to treat different pathologies using these cell therapies.
  • the general principle is essentially based on the ability of certain types of cells at certain stages of their development, to multiply and to differentiate to produce specialized cells that acquire a morphology and a specific function of the tissue in which they are implanted.
  • Embryonic stem cells in the early stages after fertilization, are undifferentiated and will be able to lead to the formation of all tissues of the body.
  • Adult stem cells on the other hand, are already engaged in a specific tissue program and can only lead to the formation or regeneration of distinct tissues; they are said to be multipotent whereas embryonic stem cells are themselves, totipotent.
  • precursor cells derived from stem cell divisions have already acquired, during their development, a certain degree of specialization and are physiologically functional.
  • multipotent stem cell populations from skeletal muscle tissue.
  • This method makes it possible to prepare multipotent stem cell populations aimed at the regeneration of many types of tissues, but it is relatively complex to implement.
  • myocardial tissues lack stem cells capable of forming cardiomyocytes to regenerate, it has also been imagined to prepare relatively homogeneous cell populations whose dominant type has the characteristics of myoblastic cells, and to inject directly these populations in the myocardial tissue or indirectly in the arterial circulation.
  • WO01 / 94555 in which such a method is described.
  • the sorting of different cell populations requires the observation of specific cell markers.
  • the cell populations obtained are specifically adapted to the regeneration of the heart muscle.
  • both the first document analyzed above has a relatively broad spectrum of use of multipotent stem cell populations obtained, but does not provide convincing results for a pro-angiogenic activity, as the second document discloses populations specific cells with the characteristics of myoblastic cells and therefore of a more restricted use.
  • a problem that arises and that the present invention aims to solve is to provide a cellular preparation for use as a revascularization stimulating agent, which allows the vascular system of a damaged mammalian tissue to be reconstituted and particular of human, when it is administered to him.
  • a revascularization stimulating agent which allows the vascular system of a damaged mammalian tissue to be reconstituted and particular of human, when it is administered to him.
  • the present invention provides a cellular preparation comprising endothelial cell precursors (EPCs, for Endothelial Precursor CeIIs in English language) and smooth muscle cell precursors (SMCs, for Smooth Muscle CeIIs, in English language). ) as a combination product for simultaneous administration, separate or spread over time, for use as a revascularization stimulating agent.
  • EPCs Endothelial Precursor CeIIs in English language
  • SMCs smooth muscle cell precursors
  • a characteristic of the invention lies in the use of two types of cells, both endothelial cell precursors and smooth muscle cell precursors which then interact to stimulate the formation and development of blood capillaries from pre-existing blood vessels.
  • said endothelial cell precursors are obtained by in vitro differentiation of progenitors from umbilical cord blood or hematopoietic marrow or circulating peripheral blood or any other tissue.
  • EPCs endothelial cell precursors
  • said endothelial cell precursors express a specific receptor capable of receiving a protein material for activating said endothelial cell precursors (EPCs).
  • EPCs endothelial cell precursors
  • said specific receptor is an Eph receptor with tyrosine kinase activity, for example of the EphB type and more specifically EphB4.
  • the protein material preferably comprises a ligand specific for said marker, said ligand being associated with a binding polypeptide.
  • the specific ligand is an ephrin ligand, for example ephrin-B or more precisely ephrin-B2 or ephrin-B1.
  • the binding polypeptide it is preferably an Fc fragment of immunoglobulin.
  • endothelial cells with specific receptors are obtained, to which specific receptors are associated a protein material consisting of a ligand and a binding polypeptide; such endothelial cell precursors are then activated.
  • precursors of smooth muscle cells they are preferably obtained by in vitro differentiation of progenitors from umbilical cord blood or hematopoietic marrow or circulating peripheral blood or any other tissue.
  • mononuclear cells are first isolated, for example from umbilical cord blood, and then differentiated into smooth muscle cell precursors. They are then recovered and then associated with endothelial cell precursors to be administered.
  • said smooth muscle cell precursors are obtained from a biopsy of muscle tissue that is taken from a skeletal muscle of a human and that the cultured to harvest only the precursors of identified smooth muscle cells.
  • These Smooth muscle cell precursors are indeed clearly identifiable through specific cell markers.
  • the present invention provides the use of a cell preparation associating endothelial cell precursors and smooth muscle cell precursors for the preparation of a cellular composition for stimulating revascularization or ischemia tissue angiogenesis. mammals and especially in humans. Furthermore, it is also envisaged a combination of these precursors of endothelial cells and smooth muscle cell precursors for the preparation of a medicament for normalizing tumor revascularization.
  • a cell preparation associating endothelial cell precursors and smooth muscle cell precursors for the preparation of a medicament for stimulating the revascularization of damaged tissues in the healing phase.
  • pathological conditions such as: radiation or post-radiation dermatitis, burns or post-traumatic skin breakdown or any other origin.
  • the cell preparation combining endothelial cell precursors and smooth muscle cell precursors is suitable for the preparation of a therapeutic composition intended for the prevention or treatment of cancers in prior or simultaneous administration to anti-cancer treatment by chemotherapy or radiotherapy. It is also adapted to treat vascular malformations and in particular angiomas.
  • a cell preparation of the type according to the invention as a pro-angiogenic active ingredient, in association with a physiologically acceptable excipient, for the preparation of a composition for therapeutic use in the body.
  • treatment of vascular insufficiency particularly in the revascularization of ischemic, cardiac, cerebral or peripheral tissues.
  • FIG. 1 is a histogram showing the comparative efficacy of the pro-angiogenic activity of the cell preparations which are the subject of the present invention.
  • EPCs endothelial cell precursors
  • SMCs smooth muscle cell precursors
  • samples of 30 to 50 ml each of human umbilical cord blood are first collected and placed in sterile tubes containing an anticoagulant solution of sodium heparin.
  • the mononuclear cells were then isolated from umbilical cord blood by density gradient centrifugation using Pancoll (1.07 g per milliliter, sold by Miguel Dutscher S.A., Brumath, France).
  • Pancoll (1.07 g per milliliter, sold by Dominique Dutscher S.A., Brumath, France).
  • the isolated mononuclear cells are then separated from the adherent cells by culturing on plastic boxes for 24 hours at 37 ° C.
  • a mixture of isolated mononucleated cells and freed from the adherent cells is then collected, which mixture is then placed in the wells of a six-well plate covered with a defined matrix.
  • This defined matrix contains fibronectin, laminin, heparan sodium sulfate, type I and type IV collagen (these products are all supplied by Sigma-Aldrich) and a hVEGF growth factor (R & D Systems, Oxford UK).
  • Squamous-type cells are in fact precursors of endothelial cells because they express the main markers of this type of cell, von Willebrand Factor, CD31, eNOS, VE-Cadherin, VEGF-R1 or VEGF-R2.
  • fusiform-type cells are precursors of smooth muscle cells because they express as a marker, ⁇ SMA, calponin, SM22 ⁇ and SM-MHC.
  • a first cell preparation then comprising both endothelial cell precursors and smooth muscle cell precursors is tested on batches of male Nude mice according to a first protocol defined below.
  • the efficacy of the above preparation will be compared not only to a neutral control preparation with PBS (buffer: 137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na 2 HPO 4 , 1.84 mM KH 2 PO 4 ) without cell colony, but also with respect to a preparation containing only endothelial cell precursors and a preparation containing only smooth muscle cell precursors. Therefore, four batches of six animals will be reserved, and the four preparations will be administered to the animals of the four batches, respectively.
  • PBS buffer: 137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na 2 HPO 4 , 1.84 mM KH 2 PO 4
  • the ligation of the right femoral artery of all seven-week-old mice is performed to simulate ischemia.
  • the first cellular preparation of endothelial cell precursors and smooth muscle cell precursors was simultaneously injected intravenously into the retro-orbital sinus, at a rate of approximately 250,000 cells for both cell types and for each mouse of a first batch, and respectively the other preparations to the other three batches of animals.
  • the other cell preparations tested will contain about 500,000 cells.
  • 12 days after ligation the mice are sacrificed and the gastronecmius muscles of the ischemic leg and the non-ischemic leg are removed.
  • the angiographic score measures the density of the vessels and is determined by micro-angiography (operating modalities in the article by Silvestre J. S et al., Cir Res., 2001; 89: 259-264). In this case, the density of the vessels is measured for each animal in the ischemia member and in the non-ischemic limb and the result obtained is presented in the form of a report, ischemic paw on non-ischemic leg.
  • capillary density which represents the number of capillaries per square millimeter, it is measured by labeling sections of the gastronecmius muscle by means of an antibody directed against the endothelial-specific CD31 marker, as indicated above. and comparing these sections to sections of the same muscle of the non-ischemic limb. The results thus obtained are presented in the form of the ratio, ischemic paw on nonischemated paw.
  • the cutaneous blood flow As for the cutaneous blood flow, it is evaluated quantitatively by the ratio, the blood flow measured on the ischemia limb and the blood flow measured on the non-ischemic limb. It is thus verified that the variation in the number of vessels corresponds to a functional adaptation and therefore to a variation in perfusion of the ischemia limb.
  • Table I of the results The measurement of the above three parameters is recorded in the table below for each of the four groups of six individuals. The measurement is the result of the average of the six animals.
  • endothelial cell precursors EPCs or precursors of smooth muscle cells SMCs causes a slight increase, respectively of approximately 60% and 35%, of the density of the vessels compared to that of the group of control animals, to which the control PBS (or, multiplied by 1.60 and 1.35, respectively) was administered.
  • the density of vessels is multiplied substantially by 2.4 relative to that of the "control" group of animals.
  • the animals to which the endothelial precursors and the smooth muscle cell precursors have been simultaneously administered have a capillary density that is substantially 50% greater than the capillary density of the animals to which it has been subjected. administered either precursors of endothelial cells alone or precursors of smooth muscle cells alone.
  • a cell preparation according to the invention incorporating endothelial cell precursors and smooth muscle cell precursors can be administered as a medicament, in particular for treating vascular insufficiency, in particular in the revascularization of cardiac, cerebral or cerebral ischemic tissues. peripheral devices.
  • a preparation is also indicated to normalize the tumor vasculature and thus allow drugs administered in chemotherapy to spread better in the tumor.
  • the tumor vasculature is not consistent with the normal vasculature of healthy tissue and it is accompanied in particular by hemostatic and chemical disorders.
  • the drugs administered reach more difficult the heart of the tumor which thus decreases their activity and their effectiveness.
  • the aforementioned cell preparation leads to restore the tumor normal blood supply and therefore normally receive drugs circulating in the blood.
  • the cell preparation according to the invention may be packaged in unit dose form containing both smooth muscle cell precursors and endothelial cell precursors or even in the form of separate doses.
  • the two cellular compositions are administered, either simultaneously, or separately or even spread over time.
  • endothelial cell precursors and smooth muscle cell precursors can be independently, frozen and stored at minus 80 ° C. Thus, when necessary, they are then thawed and then cultured for a period of about one week to be administered simultaneously or separately.
  • the cell preparation is particularly suitable for the preparation of a composition intended for the treatment of arteritis, insufficiency coronary vascular, or cardiac, and cerebrovascular insufficiency.
  • a composition intended for the treatment of arteritis, insufficiency coronary vascular, or cardiac, and cerebrovascular insufficiency On the aforementioned animal model, it has provided good results in the treatment of critical ischemia of the lower limbs; and consequently the hope is great of being able to obtain, in man in such circumstances, a cure to avoid amputation.
  • the cell composition according to the invention can therefore be administered in the mammal and in particular in humans according to a procedure known per se.
  • the cell composition is capable of being injected at or near the vascular lesion, into the blood, or delivered directly to the lesion site by means of a suitable vector.
  • the endothelial cell precursors, on the one hand, and the smooth muscle cell precursors, on the other hand may be separately administered by injection.
  • a cellular composition according to the invention comprising 5 to 10 9 cells.
  • activated EPCs endothelial cell precursors and SMC smooth muscle cell precursors are associated.
  • endothelial cell precursors having a specific cell marker are provided on the surface of the outer membrane of the cell, said cellular marker being chosen from the group consisting of Eph, in particular EphB4 or EphB1; and a protein material of structure LK is associated therewith.
  • the protein material consists of a ligand (L) specific for said marker, and a binding peptide (K), in particular an Fc fragment of immunoglobulin or antibodies.
  • EPCs cells comprising the Eph marker are activated by the specific L ligand belonging to the ephrin family.
  • the ligand L may also consist of a peptide fragment of an ephrin, for example ephrin-B2, which would then have the same biological activity.
  • the endothelial cell precursors are activated via an EphB4 cell marker to which an ephrin-B2 ligand is attached, the ligand being itself associated to an antibody Fc fragment.
  • activated endothelial cell precursors of the form: EPC-EphB4-ephrin-B2-Fc are obtained.
  • squamous cell colonies derived from the cell preparation obtained according to the above-mentioned first preparation method are collected.
  • This cell preparation contains, inter alia, endothelial cell precursors provided with the EphB4 marker.
  • These cell colonies are then treated with 3 ⁇ g / ml of Ephrin-B2-Fc fusion protein, for an incubation period of 30 minutes at 37 ° C. Rinse with PBS is separated off each unbound fusion protein (at least two rinses are needed).
  • An endothelial precursor composition of structure EPC-EphB4-ephrin-B2-Fc is then obtained.
  • the above-mentioned cellular preparation obtained according to the first method of preparation contains precursors of smooth muscle cells identifiable by their fusiform type. Therefore, these smooth muscle cell precursors will be taken in such a preparation, and will be associated with EPC-EphB4-ephrin-B2-Fc endothelial cell precursors.
  • a cellular composition is collected at the end of the first part of the aforesaid first method of preparation at the height of the first embodiment of the invention.
  • the mononuclear cells of the umbilical cord blood were isolated by centrifugation and were then separated from the adherent cells by culture on plastic dishes for 24 hours at 37 ° C. A cell mixture is thus obtained containing mononuclear cells expressing the EphB4 marker and mononuclear cells not expressing said marker.
  • the CD34 + labeled cells are isolated and purified from non-adherent cells by a standard immunomagnetic separation technique, in particular by means of the "CD34 isolation kit” material (marketed by MILTENYI BIOTECH, Paris, France), which comprises a monoclonal antibody. anti-CD34.
  • the cell mixture thus obtained which contains 1.5 x 10 6 to 3.5 x 10 6 CD34 + cells, can be placed in the wells of a 6-well plate coated with a matrix containing fibronectin, laminin, heparan sodium sulphate, and type I and IV collagen (products sold by the aforementioned SIGMA-ALDRICH company) and in a culture medium containing hVEGF, bFGF and IGF1 (products marketed by the so-called R & D company). SYSTEMS INC., Oxford, United Kingdom). After 15 days of culture, a cell mixture enriched in EPC-EphB4 is collected.
  • This cell mixture is then treated identically to the first embodiment, with 3 ⁇ g / ml of Ephrin-B2-Fc fusion protein.
  • a cell composition is thus obtained, predominantly comprising EPC-EphB4-ephrin-B2-Fc endothelial cell precursors.
  • this cell composition is associated with smooth muscle cell precursors taken in a manner similar to the first embodiment, in a cell preparation according to the first preparation method.
  • a third cell preparation according to the invention will then be obtained.
  • the precursors of smooth muscle cells can also be obtained according to the second aforementioned method of obtaining.
  • the second cell preparation comprising both endothelial cell precursors of EPC-EphB4-ephrin-B2-Fc structure and smooth muscle cell precursors is tested according to a second protocol substantially identical to the first protocol above, on batches of male Nude mice. It will be noted that the third cell preparation mentioned above would lead to the same result as the second preparation.
  • the efficacy of the second preparation will be compared to a control preparation (PBS), and also to a preparation containing only EPC-EphB4-ephrin-B2-Fc endothelial cell precursors. Three sets of six animals will then be reserved, and the three preparations will be administered to the animals of these three lots respectively.
  • mice are sacrificed and the gastronecmius muscles of the ischemic leg and the non-ischemic leg are removed.
  • the three parameters already met above, the angiographic score, the capillary density, and the cutaneous blood flow are then measured.
  • Table II of the results The measurement of the above three parameters is recorded in the table below for each of the three groups of six individuals. The measure is the average of the results observed on the six animals.
  • endothelial cell precursors activated via their EphB4 marker associated with ephrin-B2 ligand and Fc antibody fragment, and in combination with smooth muscle cell precursors. , cause an increase in vessel density equivalent to 3.5 times the density of the vessels obtained with the control composition which is devoid of cells.
  • the cell composition containing only endothelial cells activated via their EphB4 marker associated with the ephrin-B2 ligand and the antibody Fc fragment already causes an increase in the density of the vessels twice that of the control composition.
  • the second cell preparation according to the invention incorporating activated endothelial cell precursors and in combination, smooth muscle cell precursors, can be administered as a drug, in order to also treat vascular insufficiencies, in particular in the revascularization of cardiac, cerebral or peripheral ischemic tissue.
  • this second preparation is suitable for producing a medicament for normalizing tumor vascularization.

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Abstract

L'invention concerne une préparation cellulaire comprenant des précurseurs de cellules endothéliales (EPCs) et des précurseurs de cellules musculaires lisses (SMCs), comme produit de combinaison pour une administration simultanée, séparée ou étalée dans le temps, pour une utilisation comme agent stimulant la revascularisation. L'invention concerne également l'utilisation d'une telle préparation cellulaire.

Description

Préparations cellulaires pour une utilisation comme agent stimulant la revascularisation
La présente invention se rapporte à une préparation cellulaire et à une utilisation de cette préparation cellulaire comme agent stimulant la revascularisation.
Les pathologies visées sont ici nombreuses, et globalement ce sont les pathologies qui ont conduit à une dénaturation ou une destruction d'un système vasculaire. De telles circonstances se rencontrent notamment lorsque l'apport sanguin artériel dans un tissu ou un organe diminue ou s'arrête.
Les thérapies cellulaires consistent précisément à régénérer un tissu altéré, quel qu'il soit, à partir de cellules spécifiques cultivées in vitro, ou non, puis ensuite transplantées au sein du tissu altéré. De nombreuses avancées ont déjà été faites pour traiter différentes pathologies à l'aide de ces thérapies cellulaires.
Le principe général repose essentiellement sur la faculté qu'ont certains types de cellules à certains stades de leur développement, de se multiplier et de se différencier pour produire des cellules spécialisées qui acquièrent une morphologie et une fonction spécifique du tissu dans lequel elles sont implantées. Les cellules souches embryonnaires, aux premiers stades après la fécondation, sont indifférenciées et vont pouvoir conduire à la formation de tous les tissus de l'organisme. Les cellules souches adultes en revanche, sont déjà engagées dans un programme tissulaire spécifique et elles ne peuvent conduire qu'à la formation ou la régénération de tissus distincts ; elles sont dites multipotentes alors que les cellules souches embryonnaires sont elles, totipotentes. En outre, les cellules précurseurs issues des divisions de cellules souches ont déjà acquis, lors de leur développement, un certain degré de spécialisation et sont physiologiquement fonctionnelles.
Ainsi, il a déjà été imaginé de préparer des populations de cellules souches multipotentes à partir de tissus du muscle squelettique. On pourra notamment se référer au document WO03/027281 lequel décrit un procédé de préparation de telles cellules souches multipotentes capables de se différencier en cellules du muscle squelettique et en bien d'autres cellules et notamment, en cellules de muscle lisse, en cardiomyocytes, en cellules du sang, en cellules vasculaires endothéliales, en adipocytes, etc. Ce procédé permet de préparer des populations de cellules souches multipotentes visant la régénération de nombreux types de tissus, en revanche il est relativement complexe à mettre en oeuvre.
Par ailleurs, puisque les tissus du myocarde sont dépourvus de cellules souches capables de former des cardiomyocytes pour se régénérer, il a aussi été imaginé de préparer des populations cellulaires relativement homogènes dont le type dominant a les caractéristiques de cellules myoblastiques, et d'injecter directement ces populations dans le tissu myocardique ou encore indirectement dans la circulation artérielle. On pourra également se référer au document WO01 /94555, dans lequel est décrit un tel procédé.
Là également, le tri des différentes populations cellulaires exige l'observation de marqueurs cellulaires spécifiques. En outre, les populations cellulaires obtenues sont spécifiquement adaptées à la régénération du muscle cardiaque.
Ainsi, autant le premier document analysé ci-dessus présente un spectre relativement large d'utilisation de populations de cellules souches multipotentes obtenues, mais ne permettant pas d'obtenir de résultats probants pour une activité pro-angiogénique, autant le second document divulgue des populations cellulaires spécifiques présentant les caractéristiques de cellules myoblastiques et par conséquent d'une utilisation plus restreinte.
Aussi, un problème qui se pose et que vise à résoudre la présente invention, est de fournir une préparation cellulaire pour une utilisation comme agent stimulant la revascularisation, qui permette de reconstituer le système vasculaire d'un tissu endommagé de mammifère et en particulier d'humain, lorsqu'elle lui est administrée. En outre, il s'agit de pouvoir obtenir une telle préparation de façon relativement aisée.
Dans le but de résoudre ce problème, la présente invention propose une préparation cellulaire comprenant des précurseurs de cellules endothéliales (EPCs, pour Endothelial Precursor CeIIs en langue anglaise) et des précurseurs de cellules musculaires lisses (SMCs, pour Smooth Muscle CeIIs, en langue anglaise), comme produit de combinaison pour une administration simultanée, séparée ou étalée dans le temps, pour une utilisation comme agent stimulant la revascularisation. Ainsi, une caractéristique de l'invention réside dans la mise en oeuvre de deux types de cellules, à la fois des précurseurs de cellules endothéliales et des précurseurs de cellules musculaires lisses qui interagissent alors pour stimuler la formation et le développement de capillaires sanguins à partir de vaisseaux sanguins préexistants. De la sorte, à partir d'un tissu cellulaire quel qu'il soit, dans lequel la circulation sanguine a été diminuée ou stoppée, l'injection des précurseurs de cellules endothéliales et des précurseurs de cellules musculaires lisses dans le tissu infarci provoquent alors la régénération des capillaires sanguins à condition bien évidemment que la circulation sanguine réapparaisse normalement.
Préférentiellement, lesdits précurseurs de cellules endothéliales (EPCs) sont obtenus par différenciation in vitro de progéniteurs provenant de sang de cordon ombilical ou de moelle hématopoïétique ou encore de sang circulant périphérique ou bien de tout autre tissu. Ainsi qu'on l'expliquera plus en détail ci-après, on isole les cellules mononucléées, par exemple du sang de cordon ombilical puis on provoque leur différenciation in vitro pour les récupérer ensuite et les associer aux précurseurs de cellules musculaires lisses.
De façon particulièrement avantageuse, lesdits précurseurs de cellules endothéliales (EPCs) expriment un récepteur spécifique apte à recevoir un matériau protéique pour activer lesdits précurseurs de cellules endothéliales (EPCs). De la sorte, l'activation des précurseurs de cellules endothéliales induit une synergie supplémentaire entre ces cellules précurseurs et les précurseurs de cellules musculaires lisses ; synergie qui conduit alors à une activité de revascularisation ou pro-angiogénique, supérieure à celle des seules cellules précurseurs non activées ou des seuls précurseurs de cellules musculaires lisses.
Avantageusement, ledit récepteur spécifique est un récepteur Eph à activité tyrosine kinase, par exemple de type EphB et plus précisément EphB4. En outre, le matériau protéique comporte de préférence, un ligand spécifique dudit marqueur, ledit ligand étant associé à un polypeptide de liaison. De plus, et selon un mode préféré de mise en oeuvre, le ligand spécifique est un ligand éphrine, par exemple éphrine-B ou plus précisément éphrine-B2 ou encore éphrine-B1. S'agissant du polypeptide de liaison, il est de préférence un fragment Fc d'immunoglobuline.
On obtient de la sorte des cellules endothéliales présentant des récepteurs spécifiques, auxquels récepteurs spécifiques sont associés un matériau protéique constitué d'un ligand et d'un polypeptide de liaison ; de tels précurseurs de cellules endothéliales sont alors activés.
S'agissant des précurseurs de cellules musculaires lisses (SMCs), ils sont préférentiellement obtenus par différenciation in vitro de progéniteurs provenant de sang de cordon ombilical ou de moelle hématopoïétique ou encore de sang circulant périphérique ou bien de tout autre tissu . Tout comme les précurseurs de cellules endothéliales, on isole d'abord des cellules mononucléées, par exemple à partir de sang de cordon ombilical puis on provoque ensuite leur différenciation en précurseurs de cellules musculaires lisses. Ils sont ensuite récupérés puis associés aux précurseurs de cellules endothéliales pour être administrés.
Selon un autre mode de mise en oeuvre de l'invention, lesdits précurseurs de cellules musculaires lisses (SMCs) sont obtenus à partir d'une biopsie de tissu musculaire que l'on prélève dans un muscle squelettique d'un être humain et que l'on met en culture pour ne récolter que les précurseurs de cellules musculaires lisses identifiés. Ces précurseurs de cellules musculaires lisses sont en effet clairement identifiables grâce à des marqueurs cellulaires spécifiques.
Selon un autre aspect, la présente invention propose l'utilisation d'une préparation cellulaire associant des précurseurs de cellules endothéliales et des précurseurs de cellules musculaires lisses pour la préparation d'une composition cellulaire destinée à stimuler la revascularisation ou Pangiogénèse de tissus ischémies, chez les mammifères et en particulier chez l'homme. Par ailleurs, il est aussi envisagé une association de ces précurseurs de cellules endothéliales et précurseurs de cellules musculaires lisses pour la préparation d'un médicament destiné à normaliser la revascularisation tumorale.
Plus largement, on prévoit l'utilisation d'une préparation cellulaire associant des précurseurs de cellules endothéliales et des précurseurs de cellules musculaires lisses pour la préparation d'un médicament destiné à stimuler la revascularisation des tissus endommagés en phase de cicatrisation. Ainsi, il est envisagé de traiter, grâce à la préparation cellulaire conforme à l'invention, les états pathologiques tels que : les dermites radiques ou post-radiques, les brûlures ou encore les délabrements cutanés post-traumatiques ou de tout autre origine. Au surplus, la préparation cellulaire associant des précurseurs de cellules endothéliales et des précurseurs de cellules musculaires lisses est adaptée pour la préparation d'une composition thérapeutique destinée à la prévention ou au traitement de cancers en administration préalable ou simultanée à un traitement anti-cancéreux par chimiothérapie ou par radiothérapie. Elle est également adaptée pour traiter les malformations vasculaires et en particulier les angiomes.
Plus généralement, on prévoit l'utilisation d'une préparation cellulaire du type conforme à l'invention en tant qu'ingrédient actif pro- angiogénique, en association avec un excipient physiologiquement acceptable, pour la préparation d'une composition pour usage thérapeutique dans le traitement des insuffisances vasculaires, notamment dans la revascularisation des tissus ischémies, cardiaques, cérébraux ou périphériques.
D'autres particularités et avantages de l'invention ressortiront à la lecture de la description faite ci-après de modes de réalisation particuliers de l'invention, donnés à titre indicatif mais non limitatif, en référence aux dessins annexés sur lesquels :
- l'unique Figure 1 est un histogramme montrant l'efficacité comparée de l'activité pro-angiogénique des préparations cellulaires objet de la présente invention. Premier mode de réalisation
Ainsi, selon un premier mode de réalisation de l'invention, les précurseurs de cellules endothéliales (EPCs) et les précurseurs de cellules musculaires lisses (SMCs) sont obtenus conjointement à partir de sang de cordon ombilical humain. Aussi, selon un premier mode de préparation, on collecte tout d'abord des échantillons, de 30 à 50 ml chacun de sang de cordon ombilical humain et on les place dans des tubes stériles contenant une solution anticoagulante d'héparine sodique. On isole ensuite les cellules mononucléées du sang de cordon ombilical par centrifugation de gradient de densité au moyen de Pancoll (1 ,077 g par millilitre, produit commercialisé par la société Dominique Dυtscher S.A., à Brumath, France). Les cellules mononucléées isolées sont ensuite séparées des cellules adhérentes par culture sur des boîtes plastiques durant 24 heures à 37° C. On recueille alors un mélange de cellules mononucléées isolées et débarrassées des cellules adhérentes, mélange qui est ensuite placé dans les puits d'une plaque à six puits recouverts d'une matrice définie. Cette matrice définie contient de la fibronectine, de la laminine, du sulfate de sodium d'héparan, du collagène de type I et de type IV (ces produits sont tous fournis par la société Sigma-AIdrich) et un facteur de croissance hVEGF (R&D Systems, Oxford UK).
De la sorte, après 15 jours de culture, on voit apparaître distinctement des colonies de type pavimenteux et des colonies de type fusiforme. On recueille alors chacune de ces colonies pour les repiquer indépendamment l'une de l'autre puis les amplifier pour obtenir de grandes quantités de cellules de ces deux types.
Les cellules de type pavimenteux sont en réalité des précurseurs de cellules endothéliales car elles expriment les principaux marqueurs de ce type de cellules, Von Willebrand Factor, CD31 , eNOS, VE-Cadherine, VEGF-R1 ou VEGF-R2. Et les cellules de type fusiforme sont des précurseurs de cellules musculaires lisses car elles expriment comme marqueur, l'αSMA, la calponine, SM22α et SM-MHC. Une première préparation cellulaire comprenant alors à la fois des précurseurs de cellules endothéliales et les précurseurs de cellules musculaires lisses est testée sur des lots de souris mâles Nude selon un premier protocole défini ci-dessous.
On comparera l'efficacité de Ia préparation précitée, non seulement par rapport à une préparation témoin neutre avec du PBS (tampon : 137 mM NaCI, 2,7 mM KCI, 10 mM Na2HPO4, 1,84 mM KH2PO4) dépourvue de colonie cellulaire, mais aussi par rapport à une préparation ne contenant que des précurseurs de cellules endothéliales et à une préparation ne contenant que des précurseurs de cellules musculaires lisses. Par conséquent, on réservera quatre lots de six animaux, et les quatre préparations seront respectivement administrées aux animaux des quatre lots.
Tout d'abord, à un instant t=0, on procède à la ligature de l'artère fémorale droite de toutes les souris âgées de sept semaines pour simuler une ischémie. Cinq heures après, on injecte simultanément par voie intraveineuse au niveau du sinus rétro-orbital, la première préparation cellulaire de précurseurs de cellules endothéliales et de précurseurs de cellules musculaires lisses, à raison de 250 000 cellules environ pour les deux type de cellules et pour chaque souris d'un premier lot, et respectivement les autres préparations aux trois autres lots d'animaux. Les autres préparations cellulaires testées contiendront environ 500 000 cellules. Ensuite, 12 jours après la ligature, les souris sont sacrifiées et les muscles gastronecmius de la patte ischémiée et de la patte non ischémiée sont prélevés. On mesure alors trois paramètres, le score angiographique, la densité capillaire, et le flux sanguin cutané. Le score angiographique mesure la densité des vaisseaux et il est déterminé par micro-angiographie (modalités opératoires dans l'article de Silvestre J. S et al., Cir. Res., 2001; 89: 259-264). En l'espèce, la densité des vaisseaux est mesurée pour chaque animal dans le membre ischémie et dans le membre non ischémie et le résultat obtenu est présenté sous la forme d'un rapport, patte ischémiée sur patte non ischémiée.
S'agissant de la densité capillaire, qui représente le nombre de capillaires par millimètre carré, on la mesure par marquage de coupes du muscle gastronecmius au moyen d'un anticorps dirigé contre le marqueur CD31, spécifique des cellules endothéliales comme indiqué ci-dessus, et en en comparant ces coupes à des coupes du même muscle du membre non ischémie. Les résultats ainsi obtenus, sont présentés sous la forme du rapport, patte ischémiée sur patte non ischémiée.
Quant au flux sanguin cutané, il est évalué quantitativement par le ratio, du flux sanguin mesuré sur le membre ischémie et du flux sanguin mesuré sur le membre non ischémie. On vérifie ainsi que la variation du nombre de vaisseaux correspond à une adaptation fonctionnelle et donc à une variation de la perfusion du membre ischémie.
Tableau I des résultats La mesure des trois paramètres précités est consignée dans le tableau ci- dessous pour chacun des quatre groupes de six individus. La mesure est le résultat de la moyenne réalisée sur les six animaux.
Figure imgf000010_0001
Ainsi on observe que l'injection des précurseurs de cellules endothéliales EPCs ou des précurseurs de cellules musculaires lisses SMCs, provoque une légère augmentation, respectivement d'environ 60 % et 35 %, de la densité des vaisseaux par rapport à celle du groupe d'animaux « contrôle », auxquels a été administré le témoin PBS (ou, respectivement multiplié par 1,60 et 1,35). De façon inattendue, lorsque l'on injecte simultanément les précurseurs de cellules endothéliales et les précurseurs de cellules musculaires lisses, la densité de vaisseaux est multipliée sensiblement par 2,4 par rapport à celle du groupe d'animaux « contrôle ».
S'agissant de la densité capillaire, on observe que les animaux auxquels ont été administrés simultanément les précurseurs de cellules endothéliales et les précurseurs de cellules musculaires lisses, présentent une densité capillaire sensiblement supérieure de 50 % à la densité capillaire des animaux auxquels il a été administré soit des précurseurs de cellules endothéliales seuls, soit des précurseurs de cellules musculaires lisses seuls.
Quant à la mesure du flux sanguin cutané, des quatre groupes d'animaux, il corrobore les résultats ci-dessus, puisque le flux sanguin cutané des animaux auxquels il a été administré simultanément les précurseurs de cellules endothéliales et les précurseurs de cellules musculaires lisses, est d'environ 50 % plus élevés que le flux sanguin des animaux auxquels il a été administré que les précurseurs de cellules endothéliales ou que les précurseurs de cellules musculaires lisses.
Ainsi, les résultats des trois paramètres mesurés, le score angiographique, la densité capillaire et le flux sanguin cutané, lesquels représentent une mesure de l'activité angiogénique ou de revascularisation, sont-ils concourants et au surplus dans des proportions comparables. Par conséquent, l'action conjuguée des précurseurs de cellules endothéliales et de précurseurs de cellules musculaires lisses au sein d'un tissu préalablement ischémie, provoque-t-elle une régénération des vaisseaux et des capillaires sanguins. Par conséquent, une synergie des précurseurs de cellules endothéliales et des précurseurs de cellules musculaires lisses par effet de potentialisation, au sein du tissu ischémie provoque cette régénération des vaisseaux sanguins. Ainsi, une préparation cellulaire selon l'invention incorporant des précurseurs de cellules endothéliales et des précurseurs de cellules musculaires lisses, peut être administrée en tant que médicament, notamment pour traiter les insuffisances vasculaires, en particulier dans la revascularisation des tissus ischémies cardiaques, cérébraux ou périphériques. En outre, une telle préparation est aussi indiquée pour normaliser la vascularisation tumorale et permettre ainsi aux drogues administrées en chimiothérapie de mieux se répandre dans la tumeur. En effet, la vascularisation tumorale n'est pas conforme à la vascularisation normale des tissus sains et elle s'accompagne notamment de désordres hémostatiques et chimiques. Aussi, les drogues administrées atteignent plus difficilement le cœur de la tumeur ce qui par là même diminue leur activité et leur efficacité. Or, la préparation cellulaire précitée conduit à redonner à la tumeur une vascularisation normale et par conséquent à recevoir normalement les drogues circulant dans le sang. La préparation cellulaire selon l'invention peut être conditionnée sous forme de dose unitaire renfermant à la fois les précurseurs de cellules musculaires lisses et les précurseurs de cellules endothéliales ou bien encore sous forme de doses séparées. Dans ce cas, les deux compositions cellulaires sont administrées, soit simultanément, soit séparément ou encore étalées dans le temps.
Par ailleurs, les précurseurs de cellules endothéliales et les précurseurs de cellules musculaires lisses peuvent être indépendamment, congelés et stockés à moins 80 °C. Ainsi, lorsque nécessaire, ils sont ensuite décongelés puis cultivés pendant une période d'environ une semaine pour être administrés simultanément ou séparément.
La préparation cellulaire convient en particulier pour la préparation d'une composition destinée au traitement de l'artérite, de l'insuffisance vasculaire coronarienne, ou cardiaque, et de l'insuffisance vasculaire cérébrale. Sur le modèle animal précité, elle a fourni de bons résultats dans le traitement de l'ischémie dite critique des membres inférieurs ; et par conséquent l'espoir est grand de pouvoir obtenir, chez l'homme en de pareilles circonstances, une guérison permettant d'éviter l'amputation.
La composition cellulaire selon l'invention peut donc être administrée chez le mammifère et en particulier chez l'homme selon un mode opératoire connu en soi. Par exemple, la composition cellulaire est susceptible d'être injectée au niveau ou au voisinage de la lésion vasculaire, dans le sang, ou encore amenée directement sur le site de la lésion au moyen d'un vecteur approprié. En variante, on peut administrer séparément par voie injectable les précurseurs de cellules endothéliales, d'une part, et les précurseurs de cellules musculaires lisses, d'autre part.
Chez l'homme adulte, on peut administrer par injection une composition cellulaire conforme à l'invention comportant entrelO5 et 109 cellules.
Deuxième mode réalisation
Selon un deuxième mode de réalisation de l'invention, on associe des précurseurs de cellules endothéliales EPCs activés et des précurseurs de cellules musculaires lisses SMCs.
Pour ce faire, on fournit des précurseurs de cellules endothéliales présentant un marqueur cellulaire spécifique à la surface de la membrane externe de la cellule, ledit marqueur cellulaire étant choisi parmi l'ensemble constitué par les Eph, notamment EphB4 ou EphB1 ; et on y associe un matériau protéique de structure L-K. Le matériau protéique est constitué d'un ligand (L) spécifique dudit marqueur, et d'un peptide de liaison (K), notamment un fragment Fc d'immunoglobuline ou d'anticorps. L'ensemble formant un système capable de fournir des populations cellulaires ou un matériau cellulaire de structure EPC-Eph-L-K. On pourra se reporter au document FR 05 08029 dans lequel est décrit la mise en œuvre d'un tel matériau cellulaire. Ainsi, pour stimuler l'angiogenèse on active les cellules EPCs comportant le marqueur Eph par le ligand L spécifique appartenant à la famille des éphrines. Le ligand L peut également être constitué d'un fragment peptidique d'une éphrine, par exemple de éphrine-B2, qui aurait alors la même activité biologique.
Ce sont alors ces précurseurs de cellules endothéliales activés qui vont être administrés en combinaison avec les précurseurs de cellules musculaires lisses pour stimuler la revascularisation ou l'angiogenèse d'un tissu préalablement ischémie. Préférentiellement, selon ce deuxième mode de mise en oeuvre de l'invention, les précurseurs de cellules endothéliales sont activés par l'intermédiaire d'un marqueur cellulaire EphB4 sur lequel vient se fixer un ligand éphrine-B2, le ligand étant lui-même associé à un fragment Fc d'anticorps. On obtient ainsi des précurseurs de cellules endothéliales activés de la forme : EPC-EphB4-éphrine-B2-Fc.
Tout d'abord, il s'agit d'obtenir une population cellulaire contenant majoritairement des précurseurs de cellules endothéliales présentant le marqueur EphB4.
Selon un premier mode d'obtention, on recueille des colonies cellulaires de type pavimenteux issues de la préparation cellulaire obtenue selon le premier mode de préparation précité. Cette préparation cellulaire contient entre autres, des précurseurs de cellules endothéliales pourvus du marqueur EphB4. On traite alors ces colonies cellulaires avec 3μg/ml de protéine de fusion Ephrine-B2-Fc, pendant une durée d'incubation de 30 minutes à 37 0C. On écarte par rinçage avec du PBS chaque protéine de fusion non liée (au moins deux rinçages sont nécessaires). On obtient alors une composition de précurseurs de cellules endothéliales de structure EPC-EphB4-éphrine-B2-Fc.
Ensuite, il s'agit d'associer cette composition cellulaire à des précurseurs de cellules musculaires lisses pour constituer une deuxième préparation cellulaire conforme à l'invention. La préparation cellulaire précitée obtenue selon le premier mode de préparation, contient des précurseurs de cellules musculaires lisses identifiables par leur forme du type fusiforme. Par conséquent, on prélèvera ces précurseurs de cellules musculaires lisses dans une telle préparation, et on les associera aux précurseurs de cellules endothéliales de structure EPC-EphB4-éphrine- B2-Fc.
Selon un second mode d'obtention, on recueille une composition cellulaire à l'issue de la première partie du premier mode de préparation précité à hauteur du premier mode de réalisation de l'invention. On a ainsi isolé par centrifugation les cellules mononucléées du sang de cordon ombilical que l'on a ensuite séparées des cellules adhérentes par culture sur boites plastiques pendant 24 heures à 37°C. On obtient alors un mélange cellulaire contenant des cellules mononucléées exprimant le marqueur EphB4 et des cellules mononucléées n'exprimant pas ledit marqueur. Ensuite, on isole et purifie les cellules marquées CD34+ des cellules non adhérentes par une technique de séparation immunomagnétique standard, notamment au moyen du matériel "CD34 isolation Kit" (commercialisé par la société MILTENYI BIOTECH, Paris France), qui comporte un anticorps monoclonal anti-CD34. L'analyse des cellules, ainsi obtenues, par cytométrie de flux et en utilisant un anticorps monoclonal anti-CD34 (de préférence différent du précédent) couplé au FITC, montre que 75% (± 5,6%) d'entre elles possèdent le marqueur CD34.
Le mélange cellulaire, ainsi obtenu, qui contient 1 ,5 x 106 à 3,5 x 106 cellules CD34+, peut être placé dans les puits d'une plaque à 6 puits revêtus d'une matrice contenant de la fibronectine, de la laminine, du sulfate sodique d'héparane, et du collagène de type I et IV (produits commercialisés par la société dite SIGMA-ALDRICH précitée) et dans un milieu de culture contenant hVEGF, bFGF et IGF1 (produits commercialisés par la société dite R&D SYSTEMS INC., Oxford, Royaume-Uni). Après 15 jours de culture, on recueille un mélange cellulaire enrichi en EPC-EphB4. Ce mélange cellulaire est alors traité de manière identique au premier mode d'obtention, avec 3μg/ml de protéine de fusion Ephrine-B2- Fc. Et on obtient alors une composition cellulaire comportant majoritairement des précurseurs de cellules endothéliales de structure EPC-EphB4-éphrine-B2-Fc.
Ensuite, on associe à cette composition cellulaire des précurseurs de cellules musculaires lisses prélevés de façon analogue au premier mode d'obtention, dans une préparation cellulaire selon le premier mode de préparation. On obtiendra alors une troisième préparation cellulaire conforme à l'invention.
On notera également, que les précurseurs de cellules musculaires lisses peuvent également être obtenus selon le second mode d'obtention précité.
La deuxième préparation cellulaire comprenant à la fois des précurseurs de cellules endothéliales de structure EPC-EphB4-éphrine- B2-Fc et des précurseurs de cellules musculaires lisses, est testée selon un deuxième protocole sensiblement identique au premier protocole ci- dessus, sur des lots de souris mâles Nude. On notera que la troisième préparation cellulaire précitée conduirait au même résultat que la deuxième préparation.
On comparera l'efficacité de la deuxième préparation par rapport à une préparation témoin (PBS), et aussi par rapport à une préparation contenant uniquement des précurseurs de cellules endothéliales de structure EPC-EphB4-éphrine-B2-Fc. On réservera alors trois lots de six animaux, et on administrera respectivement les trois préparations aux animaux de ces trois lots.
Selon ce deuxième protocole, et de façon similaire au premier, à un instant t=0 on procède à la ligature de l'artère fémorale droite de toutes les souris âgées de sept semaines pour simuler une ischémie. Cinq heures après, on injecte simultanément par voie intraveineuse au niveau du sinus rétro-orbital, la deuxième préparation cellulaire à raison de 250 000 cellules pour les deux type de cellules et pour chaque souris d'un premier lot, et les préparations précitées à titre de comparaison respectivement aux animaux des deux autres lots.
Ensuite, 12 jours après la ligature, les souris sont sacrifiées et les muscles gastronecmius de la patte ischémiée et de la patte non ischémiée sont prélevés. On mesure alors les trois paramètres déjà rencontrés ci-dessus, le score angiographique, la densité capillaire, et le flux sanguin cutané.
Tableau II des résultats La mesure des trois paramètres précités est consignée dans le tableau ci-dessous pour chacun des trois groupes de six individus. La mesure est la moyenne des résultats observés sur les six animaux.
Figure imgf000017_0001
Ainsi, on constate, de manière tout à fait surprenante que les précurseurs de cellules endothéliales activés par l'intermédiaire de leur marqueur EphB4 associé au ligand éphrine-B2 et au fragment d'anticorps Fc, et en combinaison avec des précurseurs de cellules musculaires lisses, provoquent une augmentation de la densité des vaisseaux équivalente à 3,5 fois la densité des vaisseaux obtenue avec la composition témoin qui est dépourvue de cellules.
Au surplus, la composition cellulaire ne contenant que des cellules endothéliales activées par l'intermédiaire de leur marqueur EphB4 associé au ligand éphrine-B2 et au fragment Fc d'anticorps, provoque déjà une augmentation de la densité des vaisseaux deux fois supérieure à celle de la composition témoin. Ainsi, la deuxième préparation cellulaire selon l'invention incorporant des précurseurs de cellules endothéliales activés et en combinaison, des précurseurs de cellules musculaires lisses, peut être administrée en tant que médicament, afin de traiter aussi les insuffisances vasculaires, en particulier dans la revascularisation des tissus ischémies cardiaques, cérébraux ou périphériques. Tout comme la première préparation cellulaire, cette deuxième préparation est adaptée à la réalisation d'un médicament pour normaliser la vascularisation tumorale.
On se reportera alors, à la Figure 1 , sur laquelle sont reportés les scores angiographiques, sous forme d'un histogramme, des préparations cellulaires testées conformément à l'invention.
Ainsi, si l'on constate que les progéniteurs de cellules endothéliales et les précurseurs de cellules musculaires lisses produisent indépendamment un effet pro-angiogénique il est remarquable que l'action combinée de ces deux types cellulaires a un effet pro- angiogénique marqué. La densité des vaisseaux est en effet multipliée par 2,4 par rapport à la densité des vaisseaux de la composition témoin.
En outre, il est tout aussi remarquable, que la combinaison des précurseurs de cellules musculaires lisses et des précurseurs de cellules endothéliales activés par l'intermédiaire de leur récepteur EphB4, multiplie par 3,5 la densité des vaisseaux sanguins par rapport à la densité de vaisseaux obtenue avec la composition témoin.

Claims

REVENDICATIONS
1. Préparation cellulaire comprenant des précurseurs de cellules endothéliales (EPCs) et des précurseurs de cellules musculaires lisses (SMCs), comme produit de combinaison pour une administration simultanée, séparée ou étalée dans le temps, pour une utilisation comme agent stimulant la revascularisation.
2. Préparation cellulaire selon la revendication 1 , caractérisée en ce que lesdits précurseurs de cellules endothéliales (EPCs) sont obtenus par différenciation in vitro de progéniteurs provenant de sang de cordon ombilical.
3. Préparation cellulaire selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que lesdits précurseurs de cellules endothéliales (EPCs) sont obtenus par différenciation in vitro de progéniteurs provenant de sang circulant.
4. Préparation cellulaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que lesdits précurseurs de cellules endothéliales (EPCs) sont obtenus par différenciation in vitro de progéniteurs provenant de moelle hématopoïétique.
5. Préparation cellulaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que lesdits précurseurs de cellules endothéliales (EPCs) expriment un récepteur spécifique Eph à activité tyrosine kinase apte à recevoir un matériau protéique pour activer lesdits précurseurs de cellules endothéliales (EPCs).
6. Préparation cellulaire selon la revendication 5, caractérisée en ce que ledit récepteur spécifique est un récepteur de type EphB.
7. Préparation cellulaire selon la revendication 6, caractérisée en ce que ledit récepteur spécifique est un récepteur de type EphB4.
8. Préparation cellulaire selon l'une quelconque des revendications 5 à 7, caractérisée en ce que ledit matériau protéique comporte un ligand spécifique dudit marqueur, ledit ligand étant associé à polypeptide de liaison.
9. Préparation cellulaire selon la revendication 8, caractérisée en ce que ledit ligand spécifique dudit marqueur est un ligand éphrine.
10. Préparation cellulaire selon la revendication 9, caractérisée en ce que ledit ligand spécifique dudit marqueur est un ligand éphrine-B.
11. Préparation cellulaire selon la revendication 10, caractérisée en ce que ledit ligand spécifique dudit marqueur est un ligand éphrine-B2.
12. Préparation cellulaire selon l'une quelconque des revendications 8 à
11 , caractérisée en ce que ledit polypeptide de liaison est un fragment Fc d'immunoglobuline.
13. Préparation cellulaire selon l'une quelconque des revendications 1 à
12, caractérisée en ce que lesdits précurseurs de cellules musculaires lisses (SMCs) sont obtenues par différenciation in vitro de progéniteurs provenant de sang de cordon ombilical ou de sang périphérique.
14. Préparation cellulaire selon l'une quelconque des revendications 1 à
13, caractérisée en ce que lesdits précurseurs de cellules musculaires lisses (SMCs) sont obtenues par différenciation in vitro de progéniteurs provenant de moelle hématopoïétique.
15. Préparation cellulaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 16, caractérisée en ce que lesdits précurseurs de cellules musculaires lisses (SMCs) sont obtenues à partir d'une biopsie musculaire.
16. Utilisation d'une préparation cellulaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, pour la préparation d'un médicament destiné à stimuler la revascularisation de tissus ischémies.
17. Utilisation d'une préparation cellulaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, pour la préparation d'un médicament destiné à normaliser la vascularisation tumorale pour permettre aux drogues administrées en chimiothérapie de se répandre dans une tumeur.
18. Utilisation d'une préparation cellulaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, pour la préparation d'un médicament destiné à stimuler la revascularisation des tissus endommagés en phase de cicatrisation.
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