WO2008043521A2 - Microrna (mirna) zur diagnose und therapie von herzerkrankungen - Google Patents

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    • C12Q2600/178—Oligonucleotides characterized by their use miRNA, siRNA or ncRNA

Definitions

  • MicroRNA for the diagnosis and treatment of heart disease
  • the invention relates to microRNAs (miRNAs) for the diagnosis, prophylaxis and / or therapy of heart diseases.
  • the invention particularly relates to SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 29 for the diagnosis, prophylaxis and / or therapy of heart disease.
  • the invention relates to the use of these sequences for the preparation of a medicament for heart diseases and for their diagnosis.
  • a method for diagnosing a heart disease, a kit and an expression vector with these sequences, a cell containing the expression vector, a method of modulating a heart disease and a method of screening a pharmaceutically active compound for the treatment and / or prophylaxis of heart disease of the invention are provided.
  • MicroRNAs are small noncoding RNA molecules that can post-transcriptionally regulate gene expression by degrading the messenger RNA.
  • the total number of different miRNAs is estimated at about 300-500. This makes miRNAs about 1% of the human genome. miRNAs have been discovered in several species and appear to be highly conserved.
  • miRNA is estimated to regulate up to 30% of the genes of the human genome.
  • miRNA genes are transcribed by RNA polymerase II into long primary miRNAs (pri-miRNA). Further processing of these pri-miRNAs occurs stepwise and in different compartments.
  • Pri-miRNAs are first converted in the cell nucleus by the RNase III enzyme Drosha into precursor miRNAs (precursor miRNAs) comprising about 70-80 nucleotides. Drosha forms with the RNA-binding protein DGCR8 to a microprocessor complex.
  • Pre-miRNA hairpins are transported out of the cell nucleus by the protein exportin-5 and Ran-GTP as cofactor.
  • the pre-miRNA is processed by the RNase II enzyme Dicer into approximately 22 nucleotide duplex miRNAs. Dicer interacts with the double-stranded RNA-binding protein TRBP. The miRNA duplex molecules are then unraveled to produce mature miRNA. This mature miRNA is then incorporated into a ribonucleoprotein complex (miRNP), which is very similar to the RNA-induced silencing complex (RISC), the effector molecule of interfering RNA (RNAi) (Hutvagner and Zamore, 2002).
  • miRNP ribonucleoprotein complex
  • RISC RNA-induced silencing complex
  • RNAi interfering RNA
  • miRNAs can lead to a downregulation of the respective target gene via two different mechanisms: a) Translational inhibition or b) Target mRNA cleavage.
  • the choice of mechanism depends on the degree of complementarity between miRNA and the target gene in combination with a so-called Argonaute protein (Meister et al., 2005). Nearly perfect complementarity leads to a cleavage of the target gene with subsequent RNA degradation; while translational inhibition occurs with only partial complementarity (Hutvagner and Zamore, 2002). The exact mechanism of translational inhibition is not yet known (see Fig. 1, which represents the prior art).
  • miRNAs and their regulated target genes predicts an important role for miRNA in the development and progression of various diseases. For example, the majority of miRNAs identified in different tumor samples are down-regulated (Lu et al., 2005).
  • miRNA Another possible role of miRNA in the control of remodeling processes after myocardial infarction or other heart diseases, such as Hypertrophy or myocarditis seems likely, but information about it is not yet available.
  • heart failure will continue to be one of the central health challenges in the new millennium.
  • cardiac remodeling (Pfeffer and Braunwald, 1990) describes the remodeling processes of the heart under pathophysiological conditions after a myocardial infarction or in other diseases (eg myocarditis), which can lead to heart failure, while in the early phase after myocardial infarction to necrosis of the ischemic Myocardia with consequent scarring occurs in the long-term course in myocardial infarcted non-infarcted myocardial lesions, which are initially seen as healing and adaptive processes.
  • the thinning and dilatation of the infarcted myocardial wall can lead to early cardiac arrest (days to weeks) in the postinfarction phase; late remodeling (months to years) is caused by a structural remodeling of the surviving myocardium characterized by myocyte hypertrophy, interstitial fibrosis, apoptotic cardiomyocyte loss, and dilation and deformation of the ventricle.
  • cardiac remodeling involves molecular, cellular and interstitial changes. Not only are cardiomyocytes (change of phenotype with hypertrophy and reduced contractility, necrosis, apoptosis) affected, but also especially the extracellular matrix and an abnormal tion of the inflammatory environment. Cardiac remodeling is influenced by hemodynamic changes, neurohormonal activation, inflammatory cytokines, and a variety of other processes. Chronic heart failure, as well as acute myocardial infarction, are characterized by increased plasma levels of proinflammatory cytokines (including tumor necrosis factor alpha, interleukin-1-beta, -2 and -6) and their soluble receptors. In the insufficient myocardium inflammatory cytokines are expressed.
  • proinflammatory cytokines including tumor necrosis factor alpha, interleukin-1-beta, -2 and -6
  • the present invention is therefore based on the object of specifying various miRNA sequences which are suitable for the diagnosis, prophylaxis and / or therapy of heart diseases.
  • the invention relates to SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 29 for the diagnosis, prophylaxis and / or therapy of heart disease.
  • the invention relates to the Use of these sequences for the manufacture of a medicament for heart disease and for their diagnosis.
  • the invention relates to a method for diagnosing a heart disease, a kit and an expression vector with these sequences, a cell containing the expression vector, a method for modulating heart disease and a method for screening a pharmaceutically active compound for the treatment and / or prophylaxis of a heart disease.
  • Fig. 1 represents the state of the art and shows the miRNA maturation and the inhibition processes of the mRNA.
  • Figure 2 shows isolated miRNA and total RNA by capillary electrophoresis.
  • Fig. 4 shows the increase in left ventricular weight after the aortic banding after 3 days (AB 3d) and 21 days (AB 21 d) versus the sham controls (Sham).
  • Fig. 5 shows miRNAs in cultured neonatal cardiomyocytes (> 90%, residual cells of cardiac fibroblasts and endothelial cells) (A). Nuclei were stained with 4 ', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI). B) Cell size increase with miRNA treatment. C) Increased expression of single miRNAs after miRNA transfection.
  • Cspg2 chondroitin sulfate proteoglycan 2
  • phldal pleckstrin homology-like domain, family A, member 1
  • HSP90 heat shock protein 90
  • RASA1 RAS p21 protein activator 1
  • MEF2a myosin enhancer factor 2 alpha
  • cradd CASP2 and RIPK1 domain containing adapter with death domain
  • dtna dystrobrevin alpha).
  • FIG. 6 shows miRNAs in cultured adult cardiomyocytes (> 90%, residual cardiac fibroblasts and endothelial cells) (A), transfection specificity (B), increased expression of single miRNAs after miRNA transfection (C), cell size increase under miRNA treatment ( D and F), and the activation of fetal gene programs after miRNA transfection (E). Nuclei were stained with 4 ', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI). (The abbreviations are as given above).
  • Fig. 7 shows the repression of sprouty-1 (A) and sarcalumenine (B) after pre-my-21 overexpression in cultured cardiomyocytes (> 90%, residual cells of cardiac fibroblasts and endothelial cells).
  • C) and D) show the repression of sprouty-1 and the increased ERK1 / 2 phosphorylation after left ventricular compression in the animal model (aortic banding).
  • E) shows the uptake of intravenously injected Cy-3 labeled Antagomir® into the heart.
  • F shows a repression of cardiac miR-21 expression after Antagomir®-21 treatment.
  • FIG. G shows an increase in heart weight relative to animal weight three weeks after aortic banding, as well as prevention of increase in heart weight under Antagomir®. -Treatment.
  • AB or TAC Aortic Banding Surgery
  • anti-21 or anti-miR-21 Antagomir®-21 treatment
  • Figure 8A shows an increase in cardiomyocyte size after aortic banding and normalization with Antagomir®-21 treatment.
  • B shows echocardiographic analyzes after aortic banding with and without Antagomir®-21 treatment.
  • the present invention relates to miRNA sequences, in particular SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 29 for the diagnosis, prophylaxis and / or therapy of heart diseases.
  • the sequences are given in the Sequence Listing and summarized in Table 2.
  • SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 29 can be used for the preparation of a medicament for the prophylaxis and / or therapy of heart disease.
  • SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 29 can be used to diagnose heart disease.
  • the heart disease is myocardial infarction, heart failure, in particular chronic heart failure and / or cardiac hypertrophy.
  • a further subject of the invention is a method for diagnosing a heart disease, the method comprising the steps:
  • FIG. 1 Another embodiment relates to the use of the sequence SEQ ID NO: 5 (miR-134), SEQ ID NO: 10 (miR-212), SEQ ID NO: 11 (miR-214), SEQ ID NO: 14 (miR -21), SEQ ID NO: 20 (miR-182) and / or SEQ ID NO: 24 (miR-290).
  • miR-21 SEQ ID NO: 14
  • This miRNA is approximately 3.3-fold upregulated in human heart failure and approximately 3.0-fold early in the mouse after cardiac hypertrophy (aortic banding 3 days).
  • miR-212 SEQ ID NO: 10
  • This miRNA is approximately 5.6-fold in human heart failure and up to 2.4-fold after chronic myocardial infarction in the rat.
  • miR-214 (SEQ ID NO: 11) is preferred. This miRNA is slightly in human heart failure approximately 1, 2-fold and significantly early and late after cardiac hypertrophy (aortic banding 3 and 21 days) about 1, 5-fold, and about 2.1-fold in the mouse after chronic myocardial infarction about 2.6-fold and after pharmacological cardiac hypertrophy induction in vitro about 1, 5-fold upregulated.
  • miR-134 (SEQ ID NO: 5) is preferred. This miRNA is slightly in human heart failure approximately 1, 2-fold and significantly late after cardiac hypertrophy (aortic banding 21 days) approximately 1.7 times in the mouse and after chronic myocardial infarction (3.3-fold) in the rat upregulated.
  • All upregulated miRNAs can be normalized via miRNA inhibitors in vitro and in vivo in their expression as a therapy. Furthermore, they can be used as diagnostic markers.
  • miR-182 (SEQ ID NO: 20) is preferred. This miRNA is present in human heart failure (-1, 3-fold) and significantly early and late after cardiac hypertrophy (aortic banding 3 and 21 days) (-1, 8-fold, or -2.2- fold) in the mouse and after chronic myocardial infarction (-4.0-fold) in the rat downregulated.
  • miR-290 (SEQ ID NO: 24) is preferred. This miRNA is present in human heart failure (-1, 4-fold) and early after cardiac hypertrophy (aortic banding 3 days) (-1, 6-fold) in the mouse as well as after chronic myocardial infarction (-1, 4-fold) in the Rat down regulated.
  • miRNAs can be normalized via exogenously added miRNAs.
  • drugs can be developed which normalize the expression of miRNAs.
  • they can also be used as diagnostic markers, if appropriate together with the upregulated miRNAs.
  • Another object of the invention relates to a kit comprising at least one sequence selected from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 29 for the diagnosis of heart disease.
  • an expression vector comprising at least one sequence selected from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 29 is included in the invention.
  • a cell comprising at least one expression vector also belongs to the invention.
  • Another aspect of the present invention relates to a method of modulating heart disease comprising modulating the expression or activity of at least one sequence selected from SEQ ID NO: 1 to SEQ ID NO: 29 in a cell.
  • a further subject matter of the invention relates to a method for the screening of a pharmaceutically active compound for the treatment and / or prophylaxis of heart disease, the method comprising the steps:
  • the miRNA isolation could be optimized by addition of a further separation step by gel electrophoresis to the extent that a good label for the subsequent hybridization and detection (detection) of miRNAs on specially spotted special miRNA microarrays (in cooperation with the IZKF Microarray Facility, Dr. S. Kneitz) was possible (see Fig. 2 and Fig. 3).
  • a good label for the subsequent hybridization and detection (detection) of miRNAs on specially spotted special miRNA microarrays in cooperation with the IZKF Microarray Facility, Dr. S. Kneitz
  • Fig. 2 and Fig. 3 By Similar to healthy with chronic infarcted rat myocardium numerous deregulated miRNAs could be identified, which represent interesting target structures for subsequent research approaches or interesting diagnostic markers.
  • miR211 (SEQ ID NO: 9), miR16-1, miR137, miR195, miR199a * -1, miR199a-2, miR145, miR96, miR101-1, miR368, miR193, miR297-1, miR125b-1, miR1-2, iet7f-1, miR295, miR199a-1, miR198, miR291-3p, miR99a, miR210, miR293, miR350, miR409, miR339, miR103-1, miR129-2, miR190, miR325, miR367, miR291-5p, Iet7d * , miR19a , miR369, miR300, miR199a * -2, miR98, miR221, miR292-3p, miR126, miR136, miR17-3p, miR128a (SEQ ID NO: 4), miR15b (SEQ ID NO: 1), miR151 (SEQ ID NO:
  • miR106b miR182 (SEQ ID NO: 17), miR296 (SEQ ID NO: 18), miR122a (SEQ ID NO: 19), miR30a-3p (SEQ ID NO: 20), miR372, miR182 * , miR298, miR9-1 .
  • Myosin-binding protein C heart type (heart MyBP-C)
  • V-CAM 1 Vascular Cell Adhesion Protein 1 Precursor
  • VEGF-A Vascular endothelial growth factor A precursor histone H2B
  • miRNA128a Vascular endothelial growth factor C precursor
  • Myosin heavy chain myocardium alpha isoform (MyHC-alpha)
  • TRIP-1 Thioredoxin reductase 2 Metalloproteinase inhibitor 1 precursor
  • miRNA151 myosin-binding protein C 1 heart type (heart MyBP-C) (heart muscle).
  • Heparin-binding growth factor precursor (acidic fibroblasts
  • aFGF Growth factor
  • BMP-10 bone morphogenetic protein 10 precursor
  • Nitric oxide synthase, brain m EC 1.14.13.39
  • NOS type I neurovascular NOS
  • N-NOS neuronal NOS
  • Potassium channel voltage-mediated subfamily H Member 7 Voltaged-gated potassium channel subunit Kv1 1.3
  • Matrix metalloproteinase-9 precursor (EC 3.4.24.35) (MMP-9)
  • Atrial Natriuretic Peptide Receptor B Precursor (ANP-B)
  • V-CAM 1 Vascular Cell Adhesion Protein 1 Precursor
  • miRNA212 myosin 5B (myosin Vb) (myosin heavy chain myr 6)
  • V-CAM 1 Vascular cell adhesion protein 1 precursor
  • Metalloproteinase inhibitor 1 precursor (TIMP-1)
  • MyBP-H Myosin-binding protein H
  • Metalloproteinase inhibitor 4 precursor (TIMP-4)
  • Myosin light polypeptide 6 (myosin light chain alkali 3) (myosin light chain 3)
  • C1 Chlorine-Dependent Creatine Transporter 1
  • Single highly regulated miRNAs can be produced by up-regulation (by liposomal transfection of the specific miRNA) or downregulation (by liposomal transfection of specific miRNA inhibitors (anti-miRs®, Ambion, UK or Antagomir's, Alnylam, Kulmbach, Germany).
  • other types of transfection can be used (eg, viral or by nucleofection, or electroporation)
  • the large number of target genes of individual miRNAs so normalized whole gene networks in their expression after myocardial infarction and restored an improved heart function.
  • RNA including small RNAs small RNAs was isolated (m / ⁇ / ana TM miRNA isolation kit; Ambion, USA). The total RNA was isolated separately and the purified miRNAs were prepared using the FlashPAGE fractionation system (Ambion, USA). Capillary electrophoresis (Bioanalyzer 2100, Agilent, Germany) was used to evaluate the quality of total RNA and the purity of miRNA. MicroRNA obtained from 10 ⁇ g total RNA was labeled with the dye Cy3 (Molecular Probes, USA) using the m / ⁇ / ana TM miRNA labeling kit (Ambion, USA) according to the manufacturer's instructions. Each target was hybridized in a separate array.
  • Microarrays with up to 384 miRNAs were spotted in the laboratory of the inventors on SCHOTT Nexterion ® Slide E microarray slides in each case 4 times.
  • the oligonucleotide probes were 42-46 nt in length and consisted of an 18-24 nt segment targeting a particular known miRNA derived from human, mouse or rat.
  • the miRNA array data analyzes were performed using the R package from the Bioconductor project (www.bioconductor.org). The resulting signal intensities were normalized by variance stabilization (Huber et al., 2002). The quality of all data sets was tested and statistical analysis was performed to evaluate differentially expressed genes using the Limma (Linear Models for Microarray Analysis) package.
  • the core of the Limma package is an implementation of the empirical Bayes linear-mode approach of Smyth and can even be used for the stability analysis of even smaller sample sizes (Smyth, 2004). Method for predicting the miRNA target (see Table 1)
  • the miRNA database miRBase (http://microma.sanqer.ac.uk/) was used to identify potential miRNA targets.
  • the miRanda algorithm was used to screen all available miRNA sequences of a given genome against the 3 'UTR sequences of that genome.
  • the algorithm uses dynamic programming to search for the maximum local complementarity that corresponds to the double-stranded anti-parallel duplex. A positive score is given for complementary base pairing, and a negative score is given for mismatches, openings, and gap-opening and gap-extension extensions.
  • the values derived from the 5 'end of the miRNA were multiplied by a factor to express the importance of perfect Watson-Crick base pairing, which was experimentally observed. Subsequently, a Karlin Altschul normalization was performed (miRBase Targets version 3.0, http://microrna.sanqer.ac.uk/tarqets/v3/).
  • MicroRN A analyzes in human failing hearts
  • Diseased hearts are left ventricular tissue harvested as part of a heart transplant due to decompensated heart failure.
  • the deregulated miRNAs (upregulation and downregulation) that are potential targets for new optimized therapies are given below:
  • hsa_miR_212 (SEQ ID NO: 10), hsa_miR_21 (SEQ ID NO: 14), hsa_miR_29b (SEQ ID NO: 15), hsa_miR_129 (SEQ ID NO: 16), mmu_miR_17_3p ,, hsa_miR_210, hsa_miR_29a, hsa_miR_299_5p, hsa_miR_211, hsa_miR_423, hsa_miR_320, hsa_miR_200c, hsa_miR_1, hsa_miR_15a, hsa_miR_213 (SEQ ID NO: 17), hsa_miR_126_AS, hsa_let_7c (SEQ ID NO: 18), hsa_miR_26a,
  • hsa_miR_139 hsa_miR_376a, hsa_miR_517a, hsa_miR_141, mmu_miR_380_3p, hsa_miR_30c, hsa_miR_520d, hsa_miR_519d ,, mmu_miR_291_3p, hsa_miR_221, hsa_miR_520b, hsa__miR_522, hsa_miR_422b, hsa_miR_527, hsa_miR_17_3p, hsa_miR_507, hsa_miR_24, hsa_miR_523, hsa_miR_452_AS, hsa_miR_520a_AS, hsa_
  • Cardiomyocytes were isolated and cultured by neonatal rats as described (Burkard et al., 2005). More than 95% of the cultured cells showed expression for the cardiomyocyte-specific actinin, which indicates a very high purity of the cell culture.
  • Fluorescent dye (Cy3) -labeled scrambled-miR, -miR-21, -miR-129, and -miR-212 molecules (Cy3-pre-miR miRNAs, Ambion, U.S.A., 100 nM, 48 h) were prepared separately or in vitro Combination transfected into cultured cardiomyocytes by means of a liposomal transfection method (Lipofectamine, Invitrogen, Germany) (Thum et al., 2007, Fig.
  • the genes ANP, BNP, beta-MHC, alpha skeletal actin, villin2, cspg2, phldal, hsp90, RASA1, MEF2a, cradd and dtna were modulated by miRNA overexpression in their expression so that the expression level was on the pathological heart (Fig. 5D, 6E).
  • Transfection of adult cardiomyocytes with this set of miRNAs also resulted in the development of cellular hypertrophy and activation of fetal gene programs ( Figure 6D, E, F).
  • Transfection of scrambled miRNAs did not result in cellular hypertrophy or activation of fetal, pathological gene programs ( Figures 5, 6).
  • the data identify certain miRNAs as important regulators for the re-activation of fetal gene programs in the deficient human heart, thus providing an important contribution to the explanation of transcriptional changes in heart failure.
  • mmu_miR_106a hsa_miR_21, hsa_miR_223, hsa_miR_512_3p, hsa_miR_377, mmu_miR_376b, hsa_miR_379, hsa_miR_197, hsa__miR_522, ambi_miR_7026, mmu_miR_295, hsa_miR_326, hsa_miR_214, ambi_miR_7027, mmu_miR_329, hsa_miR_488, mmu_miR_215, hsa__miR_521, rno_miR_20_AS, hsa_miR_491, hsa_miR_200a, hsa_miR_520a_AS, mm
  • hsa_let_7d hsa_miR_30a_5p, hsa_miR_130a, ambi_miR_7089, hsa_miR_106b, hsa_miR_503, hsa_miR_485_5p, hsa_miR_496, hsa_miR_25, hsa_miR_493, ambi_miR_7081, hsa_miR_520h, hsa_miR_105, hsa_miR_490, hsa_miR_505, hsa_miR_452_AS, am- bi_miR_7085, hsa_miR_101, ambi_miR_7083, hsa_miR_216, am- bi_miR_7080, hsa__miR_500,
  • hsa_miR_30a_5p hsa_miR_106b, hsa_miR_25, hsa_miR_216, mmu_miR_297, hsa_miR_105, hsa_miR_101, hsa_miR_429, hsa_miR_512_3p, hsa_miR_138, hsa__miR_519b, mmu_let_7d_AS, hsa_miR_432, mmu_miR_341, hsa_miR_214, ambi_miR_7026, hsa_miR_222, hsa_miR_491, rno_miR_346, mmu_miR_291_3p, hsa_miR_524, mo_miR_327, ambi
  • hsa_let_7d hsa_miR_193b
  • ambi_miR_7080 hsa_miR_490
  • hsa_miR_497 ambi_miR_7081, hsa_miR_493, ambi_miR_7075
  • hsa_miR_502 hsa_miR_526c, hsa_miR_491, hsa_miR_199a_AS, am- bi_miR_7097, hsa_miR_485_5p, hsa_miR_501, hsa_miR_195, hsa_miR_505, hsa_miR_199a, mmu_miR_337, hsa_miR_30e_5p, hsa_miR_191, hsa_miR_
  • induced miRNAs after chronic myocardial infarction was based on the level of induction after myocardial infarction (greater than about 2-fold induced), as well as on the expected regulated target genes of the respective miRNA (e.g., miRNA-212).
  • This miRNA is particularly upregulated in human heart failure (5.6-fold) and in chronic rat myocardial infarction (2.4-fold).
  • This miRNA is mild in human heart failure (1, 2-fold) and significantly early and late after cardiac hypertrophy (aortic banding 3 and 21 days) (1, 5-fold, and 2.1-fold) in the mouse as well as after chronic myocardial infarction (2.6-fold) and after pharmacological cardiac hypertrophy induction in vitro (1, 5-fold) upregulated.
  • This miRNA is particularly upregulated in human heart failure (3.3-fold) and early after cardiac hypertrophy (aortic banding 3 days) (3.0-fold) in the mouse.
  • miR-134 SEQ ID NO: 5
  • This miRNA is mild in human heart failure (1, 2-fold) and significantly late after cardiac hypertrophy (aortic banding 21 days) (1.7 fold) in the mouse and after chronic myocardial infarction (3.3-fold) in the rat upregulated.
  • This miRNA is up-regulated in human heart failure (2.7 times) and late after cardiac hypertrophy (aortic banding 21 days) (1.4 times) in the mouse and after chronic myocardial infarction (1.4 times) in the rat.
  • This miRNA is in the human heart failure (-1, 3-fold) and clearly early and late after cardiac hypertrophy (aortic banding 3 and 21 days) (-1, 8-fold, and -2.2-fold) in the mouse and after chronic myocardial infarction (-4.0-fold) of the rat downregulated.
  • This miRNA is present in human heart failure (-1, 4-fold) and early after cardiac hypertrophy (aortic banding 3 days) (-1, 6-fold) in the mouse as well as after chronic myocardial infarction (-1, 4-fold) in the Rat down regulated.
  • the inventors After hypertrophy induction on the mouse model, the inventors found increased expression of miR-21 (see above). They therefore investigated whether inhibition of miR-21 in vivo leads to prevention of the development of cardiac hypertrophy due to compressive stress (reduction of the aortic diameter by aortic ban- ding operation). They first used bioinformatic analysis and used the database miRBase (http://microrna.sanger.ac.uk/). to look for potential targets with binding sites for the miR-21 in their 3 'untranslated To search areas.
  • miRBase http://microrna.sanger.ac.uk/
  • sprouty-1 (SPRY1, accession number: NM_001097524), sarcalumenine (accession number: NM_001098814) and tropomyosine (accession number: subsequently NM 001018005) as potential miR-21 targets.
  • SPRY1 mRNA contains several conserved miR binding sites, one of which is a binding site for miR-21 up-regulated in cardiac hypertrophy and cardiac insufficiency.
  • the inventors transfected pre-miR-21 molecules (Ambion, pre-miRs, 50 nM, 72 h) into cultured cardiomyocytes and analyzed SPRY1 and sarcalumenine protein expression. They observed a strong reduction in protein expression of SPRY1 and sarcalumenin after pre-miR21 overexpression in cultured cardiomyocytes ( Figure 7A, B). Reduction of these proteins most likely leads to the development of cardiac hypertrophy and cardiac dysfunction after left ventricular pressure.
  • the inventors then injected chemically modified oligonucleotides via a catheter inserted into the jugular vein for specific downregulation of endogenous miR-21 expression (Antagomir®-21, Alnylam).
  • the tagomir® sequences were synthesized as reverse-complementary oligonucleotides as described in the literature, with Antagomir®-181a additionally being color-marked with Cy3 (Krutzfeldt et al., 2005).
  • Treatment was started 24 hours after the surgical reduction of the aortic banding. In each case, 80 mg / kg / d were then administered intravenously once a day for 3 days once a day. After injection of a Cy-3 labeled Antagomir®, the heart was removed after 3 h and the cardiac uptake of the C3-labeled Antagomir® was analyzed by immunofluorescence. It could be one strong uptake of Antagomir® into the heart ( Figure 7E). Surprisingly, real-time (PCR) analyzes showed a strong repression of cardiac miR-21 expression after 3 weeks after an initial 3-day treatment with Antagomir®-21 ( Figure 7F).
  • Cardiac function was analyzed by echocardiography and catheter-based volume / pressure measurements. Both left-ventricular end-systolic and end-diastolic diameters increased 3 weeks after aortic banding, whereas fractional shingling (a measure of cardiac function) was markedly reduced (Figure 8B).
  • Modulation of miRNAs in the cardiovascular system could also be successfully used in humans to prevent or as a therapy for cardiovascular diseases such as cardiac hypertrophy, heart failure or myocardial infarction.
  • Substances which increase or prevent miRNA expression in the cardiovascular system may be administered by various routes such as intravenous, intraarterial, intracardiac via catheters or during open heart surgery, subcutaneously, transdermally, inhalatively, orally, rectally, etc. Therapy could be performed in patients with cardiac hypertrophy, after myocardial infarction or in patients with acute or chronic heart failure or coronary heart disease.
  • the prevention of the expression of miR-21, miR-129 and miR-212 seems promising as a causal therapeutic approach for the prevention of various cardiovascular diseases.
  • a myocardial biopsy can be taken. From this, the miRNA can be isolated and the expression level determined.
  • An increase in individual miRNAs or their combination, in particular miR-21 (SEQ ID NO: 14), miR-129, miR-212 (SEQ ID NO: 10), miR-214 (SEQ ID NO: 11), miR-134 ( SEQ ID NO: 5) may be used to diagnose an increased risk of development or even the presence of cardiac hypertrophy and / or cardiac insufficiency.
  • Downregulation of miR-182 (SEQ ID NO: 20) or miR-290 (SEQ ID NO: 24) or a combination thereof may be used to diagnose an increased risk of development or even the presence of cardiac hypertrophy and / or heart failure.
  • the combination of increased expression of miR-21 (SEQ ID NO: 14), miR-129, miR-212 (SEQ ID NO: 10), miR-214 (SEQ ID NO: 11), miR-134 (SEQ ID NO: 5) with a decreased expression of miR-182 (SEQ ID NO: 20) or miR-290 (SEQ ID No .: 24) to diagnose an increased risk of developing or already presenting the presence of cardiac hypertrophy and / or cardiac insufficiency.
  • the expression strength of the respective miRNAs can be carried out either by microarray analyzes, RT-PCR, Northern blotting, or other suitable methods.
  • microRNA miR-196 acts upstream of Hoxb ⁇ and Shh in limb development. Nature 438, 671-674.

Abstract

Die Erfindung betrifft MicroRNAs (miRNAs) zur Diagnose, Prophylaxe und/oder Therapie von Herzerkrankungen. Sie betrifft insbesondere SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Diagnose, Prophylaxe und/oder Therapie von Herzerkrankungen. Daneben betrifft die Erfindung die Verwendung dieser Sequenzen zur Herstellung eines Arzneimittels für Herzerkrankungen sowie zu deren Diagnose. Ferner ist ein Verfahren zur Diagnose einer Herzerkrankung, ein Kit und ein Expressionsvektor mit diesen Sequenzen, eine Zelle, die den Expressionsvektor enthält sowie ein Verfahren zum Modulieren einer Herzerkrankung und ein Verfahren zum Screenen einer pharmazeutisch aktiven Verbindung zur Behandlung und/oder Prophylaxe einer Herzerkrankung umfasst.

Description

MicroRNA (miRNA) zur Diagnose und Therapie von Herzerkrankungen
Gebiet der Erfindung
Die Erfindung betrifft MicroRNAs (miRNAs) zur Diagnose, Prophylaxe und/oder Therapie von Herzerkrankungen.
Die Erfindung betrifft insbesondere SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Diagnose, Prophylaxe und/oder Therapie von Herzerkrankungen. Daneben betrifft die Erfindung die Verwendung dieser Sequenzen zur Herstellung eines Arzneimittels für Herzerkrankungen sowie zu deren Diagnose. Ferner ist ein Verfahren zur Diagnose einer Herzerkrankung, ein Kit und ein Expressionsvektor mit diesen Sequenzen, eine Zelle, die den Expressionsvektor enthält sowie ein Verfahren zum Modulieren einer Herzerkrankung und ein Verfahren zum Screenen einer pharmazeutisch aktiven Verbindung zur Behandlung und/oder Prophylaxe einer Herzerkrankung von der Erfindung umfasst.
Hintergrund der Erfindung miRNAs
MicroRNAs (miRNAs) sind kleine nicht-kodierende RNA-Moleküle, welche post- transkriptionell die Genexpression durch Abbau der messenger-RNA regulieren können. Die Gesamtzahl verschiedener miRNAs wird auf ca. 300-500 geschätzt. Damit machen miRNAs ca. 1 % des menschlichen Genoms aus. miRNAs wurden in verschiedenen Spezies entdeckt und scheinen hoch konserviert zu sein.
Obwohl die Zielgene (Targetgene oder Targets) und somit die biologischen Funktionen der miRNAs bislang zum Großteil nicht identifiziert werden konnten, wird geschätzt dass miRNA bis zu 30 % der Gene des menschlichen Genoms regulieren. Zunächst werden miRNA-Gene durch die RNA-Polymerase Il in lange primäre miRNAs (pri-miRNA) transkribiert. Die weitere Prozessierung dieser pri-miRNAs erfolgt schrittweise und in verschiedenen Kompartimenten. Pri-miRNAs werden zunächst im Zellkern durch das RNase Ill-Enzym Drosha in ca. 70-80 Nukleotide umfassende Vorläufer miRNAs (precursor miRNAs; pre-miRNAs) umgewandelt. Drosha formiert sich mit dem RNA-bindenden Protein DGCR8 zu einem Mikroprozessor-Komplex. Pre-miRNA Haarnadelschleifen (hairpins) werden durch das Protein Exportin-5 und Ran-GTP als Kofaktor aus dem Zellkern herausbefördert. Im Zytoplasma wird die pre-miRNA durch das RNase Il-Enzym Dicer in ca. 22 Nukleotide große Duplex-miRNAs prozessiert. Dicer interagiert hierbei mit dem doppel- bandigen RNA-bindenden Protein TRBP. Die miRNA-Duplex-Moleküle werden anschließend entwunden, so dass reife miRNA entsteht. Diese reife miRNA wird anschließend in einen Ribonukleoprotein-Komplex inkorporiert (miRNP), welcher dem RNA-induzierten silcencing complex (RISC), dem Effektormolekül der interfe- ring RNA (RNAi) sehr ähnlich ist (Hutvagner and Zamore, 2002).
In dieser Form können miRNAs über zwei unterschiedliche Mechanismen zu einer Herabregulation des jeweiligen Zielgens führen: a) Translationale Inhibition oder b) Target-mRNA-Spaltung. Die Auswahl des Mechanismus hängt vom Grad der Komplementarität zwischen miRNA und dem Zielgen in Kombination mit einem sogenannten Argonaute Protein ab (Meister et al., 2005). Bei nahezu perfekter Komplementarität kommt es zu einer Spaltung des Zielgens mit anschließender RNA-Degradation; während es bei einer nur partiellen Komplementarität zu einer translationalen Inhibition kommt (Hutvagner and Zamore, 2002). Der genaue Mechanismus der translationalen Inhibition ist bislang nicht bekannt (vgl. Fig. 1 , die den Stand der Technik darstellt).
Während bereits einige Mechanismen zur Steuerung von Differenzierungsprozessen durch miRNAs aufgeklärt werden konnten (Harfe, 2005; Homstein et al., 2005), ist die Regulation physiologischer Funktionen durch miRNAs bislang weitgehend unbekannt.
Die große Anzahl an miRNAs und deren regulierte Targetgene prognostizieren eine wichtige Rolle von miRNA in der Entstehung und Progression verschiedenster Krankheiten. So ist beispielsweise die Mehrzahl der in unterschiedlichen Tumorproben identifizierten miRNAs herunterreguliert (Lu et al., 2005).
Über die Regulation der herzspezifischen Entwicklung liegt bislang in der Literatur eine Arbeit vor. Hier konnten Zhao und Mitarbeiter zeigen, dass bestimmte muskelspezifische miRNAs entscheidend an der Regulation der Herzentwicklung beteiligt sind (Zhao et al., 2005). So sind die miRNAs miR1-1 und miR1-2 besonders in kardialen Vorläuferzellen exprimiert. Ein Target von miR-1 ist der kardiale Transkriptionsfaktor Hand2, welcher wiederum die Expansion des Ventrikels während der Entwicklung kontrolliert. Sehr wahrscheinlich wirkt miR-1 einer zu schnellen und überschießenden Herzentwicklung entgegen (Zhao et al., 2005).
Eine weitere mögliche Rolle von miRNA in der Kontrolle von Umbauprozessen nach Myokardinfarkt oder anderen Herzerkrankungen, wie z.B. Hypertrophie oder Myokarditis scheint wahrscheinlich, jedoch sind Informationen hierüber bislang nicht verfügbar.
Mögliche Bedeutung von miRNA bei Pathogenese und Heilungsprozessen verschiedener kardialer Erkrankungen
Die Defektheilung nach Myokardinfarkt mit Narbenbildung und konsekutiver reduzierter linksventrikulärer Pumpfunktion ist die häufigste Ursache der Herzinsuffizienz in den westlichen Industriestaaten (Massie and Shah, 1997). Die Hospitali- sationsraten wegen Herzinsuffizienz haben sich in den europäischen Ländern in den letzten 10-15 Jahren nahezu verdoppelt. Die Prognose der Herzinsuffizienz ist ungünstig und ähnlich schlecht wie bei vielen malignen Tumoren. Bedingt durch -A-
die zunehmend höhere Lebenserwartung in der Bevölkerung werden Inzidenz und Prävalenz der Herzinsuffizienz weiter zunehmen. Die Herzinsuffizienz wird deshalb auch im neuen Jahrtausend eine der zentralen Herausforderungen für das Gesundheitswesen darstellen.
Der Begriff „kardiales Remodeling" (Pfeffer und Braunwald, 1990) beschreibt die Umbauprozesse des Herzens unter pathophysiologischen Bedingungen nach einem Myokardinfarkt oder bei anderen Erkrankungen (z.B. Myokarditiden), die zur Herzinsuffizienz führen können. Während es in der Frühphase nach Myokardinfarkt zur Nekrose des ischämischen Myokards mit konsekutiver Narbenbildung kommt, treten im Langzeitverlauf bei nicht direkt vom Infarkt betroffenem Myokard Veränderungen auf, die zunächst als Heilungs- und Anpassungsvorgänge aufzufassen sind. Die Ausdünnung und Dilatation der infarzierten Myokardwand kann früh (Tage bis Wochen) in der Postinfarktphase zur Infarktexpansion führen; das späte Remodeling (Monate bis Jahre) wird verursacht durch eine strukturelle Umgestaltung des überlebenden Myokards, welche durch Myozytenhypertrophie, interstitielle Fibrose, apoptotischen Kardiomyozytenverlust sowie Dilatation and Verformung der Herzkammer charakterisiert ist.
Die wesentlichen Charakteristika dieser strukturellen Veränderungen umfassen zelluläre Hypertrophie des verbleibenden Restmyokards, reduzierte Kapillarisie- rung sowie eine progrediente myokardiale Fibrose (Pfeffer and Braunwald, 1990). Zwar stellen diese initialen Umbauprozesse eine kompensatorische Antwort dar; letztendlich führen die Veränderungen aber zu einer progressiven linksventrikulä- ren Dilatation und Einschränkung der linksventrikulären Pumpfunktion, welche durch eine hohe Mortalität gekennzeichnet sind.
Des Weiteren umfasst der Prozess des kardialen Remodelings molekulare, zelluläre und interstitielle Veränderungen. Betroffen sind nicht nur Kardiomyozyten (Phänotypänderung mit Hypertrophie und verminderter Kontraktilität, Nekrose, Apoptose), sondern auch insbesondere die Extrazellulärmatrix sowie eine Ände- rung des inflammatorischen Milieus. Das kardiale Remodeling wird beeinflusst durch hämodynamische Veränderungen, neurohormonale Aktivierung, inflammatorische Zytokine und eine Vielzahl weiterer Prozesse. Die chronische Herzinsuffizienz, wie auch der akute Myokardinfarkt, sind durch erhöhte Plasmaspiegel proinflammatorischer Zytokine (u.a. Tumor-Nekrosefaktor alpha, lnterleukin-1-beta, -2 und -6) sowie deren lösliche Rezeptoren charakterisiert. Im insuffizienten Myokard werden inflammatorische Zytokine exprimiert. Neben der bekannten negativen inotropen Wirkung dieser Zytokine dürften längerfristig vor allem ausgeprägte Effekte auf den Myozyten-Phänotyp und die extrazelluläre Matrix bei chronischer Herzinsuffizienz von pathophysiologischer Bedeutung sein. Für eine aktuelle LJ- bersicht über zelluläre und molekulare Mechanismen bei Herzinsuffizienz wird auf die weiterführende Literatur verwiesen (Hunter, 1999).
In klinischen Studien konnte eine signifikante Verbesserung der Prognose unter medikamentöser Therapie (Beta-Blocker, ACE-Inhibitoren, Aldosteron- Antagonisten) belegt werden. Trotzdem ist und bleibt die Herzinsuffizienz eine der häufigsten Todesursachen in den industrialisierten Ländern.
Die Suche und Entwicklung neuer Therapieformen zur Verbesserung kardialer Heilungsprozesse ist eine der größten Herausforderungen in der modernen Kardiologie geworden. Die Nutzung von miRNAs bietet neue Möglichkeiten für eine optimierte Therapie und/oder Diagnose von Herzerkrankungen.
Der vorliegenden Erfindung liegt deshalb die Aufgabe zugrunde, verschiedene miRNA Sequenzen anzugeben, die zur Diagnose, Prophylaxe und/oder Therapie von Herzerkrankungen geeignet sind.
Zusammenfassung der Erfindung
Die Erfindung betrifft SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Diagnose, Prophylaxe und/oder Therapie von Herzerkrankungen. Daneben betrifft die Erfindung die Ver- wendung dieser Sequenzen zur Herstellung eines Arzneimittels für Herzerkrankungen sowie zu deren Diagnose. Ferner betrifft die Erfindung ein Verfahren zur Diagnose einer Herzerkrankung, einen Kit und einen Expressionsvektor mit diesen Sequenzen, eine Zelle, die den Expressionsvektor enthält sowie ein Verfahren zum Modulieren einer Herzerkrankung und ein Verfahren zum Screenen einer pharmazeutisch aktiven Verbindung zur Behandlung und/oder Prophylaxe einer Herzerkrankung.
Im Folgenden wird die Erfindung unter Bezugnahme auf die beigefügten Figuren unter Angabe von verschiedenen Ausführungsformen näher beschrieben.
Kurzbeschreibung der Figuren
Fig. 1 stellt den Stand der Technik dar und zeigt die miRNA-Reifung und die Hemmungsprozesse der mRNA.
Fig. 2 zeigt isolierte miRNA und totale RNA durch Kapillarelektrophorese.
Fig. 3 zeigt eine hierarchische Clusteranalyse von deregulierten miRNAs - zu sehen sind die signifikanten Unterschiede in chronisch infarziertem Myokardgewebe (Infarkt; n=3) und Myokardgewebe von Schein-operierten Ratten (Sham; n=3).
Fig. 4 zeigt die Zunahme des linksventrikulären Gewichts nach der Verengung der Aorta (aortic banding) nach 3 Tagen (AB 3d) und 21 Tagen (AB 21 d) gegenüber den Sham-Kontrollen (Sham).
Fig. 5 zeigt miRNAs in kultivierte neonatale Kardiomyozyten (zu > 90%; restliche Zellen kardiale Fibroblasten und Endothelzellen) (A). Die Zellkerne wurden mit 4',6-Diamidino-2-phenylindol (DAPI) gefärbt. B) Zeilgrößenzunahme unter miRNA- Behandlung. C) Verstärkte Expression einzelner miRNAs nach miRNA- Transfektion. D) Aktivierung fötaler Genprogramme nach miRNA Transfektion (ANP = atrial natriuretic peptide, BNP = brain natriuretic peptide; beta-MHC = beta-myosin heavy chain; cspg2 = chondroitin sulfate proteoglycan 2; phldal = pleckstrin homology-like domain, family A, member 1 ; HSP90 = heat shock protein 90; RASA1 = RAS p21 protein activator 1 ; MEF2a = myosin enhancer factor 2 alpha; cradd = CASP2 and RIPK1 domain containing adaptor with death domain; dtna = dystrobrevin alpha).
Fig. 6 zeigt miRNAs in kultivierte adulte Kardiomyozyten (zu > 90%; restliche Zellen kardiale Fibroblasten und Endothelzellen) (A), die Transfektionsspezifität (B), die verstärkte Expression einzelner miRNAs nach miRNA Transfektion (C), eine Zellgrößenzunahme unter miRNA Behandlung (D und F), und die Aktivierung fötaler Genprogramme nach miRNA-Transfektion (E). Die Zellkerne wurden mit 4', 6- Diamidino-2-phenylindol (DAPI) gefärbt. (Die Abkürzungen sind wie oben angegeben).
Fig. 7 zeigt die Repression von Sprouty-1 (A) und Sarcalumenin (B) nach pre-mir- 21 -Überexpression in kultivierten Kardiomyozyten (zu > 90%; restliche Zellen kardiale Fibroblasten und Endothelzellen). (C) und (D) zeigen die Repression von Sprouty-1 und die erhöhte ERK1/2-Phosphorylierung nach Druckbelastung des linken Ventrikels im Tiermodell (Aortic banding). (E) zeigt die Aufnahme von intravenös injiziertem Cy-3 markierten Antagomir® in das Herz. (F) zeigt eine Repression der kardialen miR-21 -Expression nach Antagomir®-21 Behandlung. (G) zeigt eine Zunahme des Herzgewichts relativ zum Tiergewicht drei Wochen nach aortic banding, als auch die Verhinderung der Zunahme des Herzgewichts unter Antagomir®^'! -Behandlung. (AB oder TAC = Aortic Banding Operation; anti-21 oder Anti-miR-21 = Antagomir®-21 Behandlung).
Fig. 8A zeigt eine Größenzunahme der Kardiomyozyten nach aortic banding und die Normalisierung unter Antagomir®-21 Behandlung. (B) zeigt echokardio- graphische Analysen nach aortic banding mit und ohne Antagomir®-21 Behandlung. (Die Abkürzungen sind wie oben angegeben). Detaillierte Beschreibung der Erfindung und bevorzugte Ausführungsformen
Die vorliegende Erfindung betrifft miRNA-Sequenzen, insbesondere SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Diagnose, Prophylaxe und/oder Therapie von Herzerkrankungen. Die Sequenzen sind im Sequenzprotokoll angegeben und in Tabelle 2 zusammengestellt.
Ferner können die SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Herstellung eines Arzneimittels zur Prophylaxe und/oder Therapie von Herzerkrankungen verwendet werden.
Außerdem können die SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Diagnose von Herzerkrankungen verwendet werden.
In einer besonders bevorzugten Ausführungsform ist die Herzerkrankung ein Myokardinfarkt, eine Herzinsuffizienz, insbesondere eine chronische Herzinsuffizienz und/oder eine Herzhypertrophie.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Diagnose einer Herzerkrankung, wobei das Verfahren die Schritte umfasst:
(a) Bereitstellen einer Probe eines Individuums, das unter dem Verdacht einer Herzerkrankung steht;
(b) Messen der Expressionsmenge von mindestens einer Sequenz ausgewählt unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 in der Probe; wobei eine erhöhte oder verringerte Expressionsmenge mindestens einer Sequenz ausgewählt unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 gegenüber einer Kontrollprobe eine Herzerkrankung oder eine Prävalenz bzw. Prädisposition für eine Herzerkrankung anzeigt. Eine weitere Ausführungsform betrifft insbesondere die Verwendung der Sequenz SEQ ID NR: 5 (miR-134), SEQ ID NR: 10 (miR-212), SEQ ID NR: 1 1 (miR-214), SEQ ID NR: 14 (miR-21 ), SEQ ID NR: 20 (miR-182) und/oder SEQ ID NR: 24 (miR-290).
Besonders bevorzugt ist Insbesondere miR-21 (SEQ ID NR: 14). Diese miRNA ist in der humanen Herzinsuffizienz ca. 3,3-fach und früh nach Herzhypertrophie (aor- tic banding 3 Tage) ca. 3,0-fach bei der Maus hochreguliert.
Bevorzugt ist außerdem miR-212 (SEQ ID NR: 10). Diese miRNA ist in der humanen Herzinsuffizienz ca. 5,6-fach und nach chronischem Myokardinfarkt ca. 2,4- fach bei der Ratte hochreguliert.
Ferner ist miR-214 (SEQ ID NR: 11 ) bevorzugt. Diese miRNA ist leicht in der humanen Herzinsuffizienz ca. 1 , 2-fach und deutlich früh und spät nach Herzhypertrophie (aortic banding 3 und 21 Tage) ca. 1 ,5-fach, bzw. ca. 2,1-fach bei der Maus sowie nach chronischem Myokardinfarkt ca. 2,6-fach und nach pharmakologischer Herzhypertrophieinduktion in vitro ca. 1 , 5-fach hochreguliert.
Schließlich ist miR-134 (SEQ ID NR: 5) bevorzugt. Diese miRNA ist leicht in der humanen Herzinsuffizienz ca. 1 ,2-fach und deutlich spät nach Herzhypertrophie (aortic banding 21 Tage) ca. 1 , 7-fach bei der Maus sowie nach chronischem Myokardinfarkt (3,3-fach) in der Ratte hochreguliert.
Alle hochregulierten miRNAs können über miRNA-lnhibitoren in vitro und in vivo in ihrer Expression als Therapie normalisiert werden. Des Weiteren können sie als Diagnosemarker eingesetzt werden.
In einer alternativen Ausführungsform ist miR-182 (SEQ ID NR: 20) bevorzugt. Diese miRNA ist in der humanen Herzinsuffizienz (-1 ,3-fach) und deutlich früh und spät nach Herzhypertrophie (aortic banding 3 und 21 Tage) (-1 ,8-fach, bzw. -2,2- fach) bei der Maus sowie nach chronischem Myokardinfarkt (-4,0-fach) in der Ratte herunterreguliert.
Ferner ist miR-290 (SEQ ID NR: 24) bevorzugt. Diese miRNA ist in der humanen Herzinsuffizienz (-1 , 4-fach) und früh nach Herzhypertrophie (aortic banding 3 Tage) (-1 ,6-fach) bei der Maus sowie nach chronischem Myokardinfarkt (-1 ,4-fach) bei der Ratte herunterreguliert.
Diese reduzierten bzw. herunter regulierten miRNAs können über exogen hinzugegebene miRNAs normalisiert werden. Ferner können Medikamente entwickelt werden, welche die Expression der miRNAs normalisieren. Des Weiteren können sie, ggf. auch zusammen mit den hochregulierten miRNAs als Diagnosemarker verwendet werden.
Ein weiterer Gegenstand der Erfindung betrifft einen Kit umfassend mindestens eine Sequenz ausgewählt unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Diagnose von Herzerkrankungen.
Ferner ist ein Expressionsvektor umfassend mindestens eine Sequenz ausgewählt unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 von der Erfindung umfasst.
In einer besonderen Ausführungsform gehört eine Zelle umfassend mindestens einen Expressionsvektor ebenfalls zur Erfindung.
Ein weiterer Aspekt der vorliegenden Erfindung betrifft ein Verfahren zum Modulieren einer Herzerkrankung umfassend das Modulieren der Expression oder Aktivität mindestens einer Sequenz, die ausgewählt ist unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29, in einer Zelle. Noch ein Gegenstand der Erfindung betrifft ein Verfahren zum Screenen einer pharmazeutisch aktiven Verbindung zur Behandlung und/oder Prophylaxe einer Herzerkrankung, wobei das Verfahren die Schritte umfasst:
(a) Bereitstellen einer erfindungsgemäßen Zelle,
(b) In Kontakt bringen eines Kandidaten einer pharmazeutisch aktiven Verbindung mit der Zelle,
(c) Bestimmen der Wirkung des Kandidaten auf die Expression einer Sequenz, die ausgewählt ist unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29, wobei eine Veränderung der Expression mindestens einer Sequenz von SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 eine pharmazeutisch aktive Verbindung anzeigt.
Ferner sei angemerkt, dass sämtlichen Merkmalen, die in den Anmeldungsunterlagen und insbesondere in den abhängigen Ansprüchen genannt sind, trotz dem vorgenommenen formalen Rückbezug auf einen oder mehrere bestimmte Ansprüche, auch einzeln oder in beliebiger Kombination eigenständiger Schutz zukommt.
Die Erfindung wird in den folgenden Beispielen und Ergebnissen näher beschrieben, die nur exemplarisch angegeben sind und nicht einschränkend verstanden werden sollen.
Beispiele und Ergebnisse
1. MicroRNA-Analysen nach Myokardinfarkt
Im Labor wurden alle nötigen Verfahren zur Isolation und Microarray-basierten Detektion von >300 verschiedenen miRNAs aus Myokardgewebe etabliert. So konnte die miRNA-lsolation durch Hinzunahme eines weiteren Trennungsschrittes mittels Gelelektrophorese soweit optimiert werden, dass eine gute Markierung für die nachfolgende Hybridisierung und den Nachweis (Detektion) von miRNAs auf eigens gespotteten speziellen miRNA-Microarrays (in Kooperation mit der IZKF- Microarray Facility, Dr. S. Kneitz) möglich war (siehe Fig. 2 und Fig. 3). Durch Ver- gleich von gesundem mit chronisch infarziertem Myokard der Ratte konnten zahlreiche deregulierte miRNAs identifiziert werden, welche interessante Zielstrukturen für nachfolgende Forschungsansätze, bzw. interessante Diagnosemarker darstellen.
So konnte über Microarray-basierte Techniken durch die Erfinder bereits eine Anzahl im Herzen stark exprimierter miRNAs identifiziert werden. Zahlreiche differen- tiell exprimierte miRNAs im chronisch infarzierten Myokardgewebe deuten auf eine wichtige Rolle beim kardialen Remodeling hin.
Die folgenden miRNAs sind nach Myokardinfarkt induziert (> 1 , 2-fach der Schein (Sham)-operierten Tiere). Es sind Mittelwerte aus n=3 Tieren pro Gruppe angegeben:
miR211 (SEQ ID NR: 9), miR16-1 , miR137, miR195, miR199a*-1 , miR199a-2, miR145, miR96, miR101-1 , miR368, miR193, miR297-1 , miR125b-1 , miR1-2, iet7f-1 , miR295, miR199a-1 , miR198, miR291-3p, miR99a, miR210, miR293, miR350, miR409, miR339, miR103-1 , miR129-2, miR190, miR325, miR367, miR291-5p, Iet7d*, miR19a, miR369, miR300, miR199a*-2, miR98, miR221 , miR292-3p, miR126, miR136, miR17-3p, miR128a (SEQ ID NR: 4), miR15b (SEQ ID NR: 1 ), miR151 (SEQ ID NR: 7), miR328 (SEQ ID NR: 12), miR126* (SEQ ID NR: 3), miR23a (SEQ ID NR: 2), miR212 (SEQ ID NR: 10), miR149 (SEQ ID NR: 6), miR206 (SEQ ID NR: 8), miR214 (SEQ ID NR:11 ), miR371 (SEQ ID NR: 13), miR134 (SEQ ID NR: 5).
Die folgenden miRNAs sind nach Myokardinfarkt reprimiert (< 80 % der Schein (Sham)-operierten Tiere). Es sind Mittelwerte aus n=3 Tieren pro Gruppe angegeben:
miR106b, miR182 (SEQ ID NR: 17), miR296 (SEQ ID NR: 18), miR122a (SEQ ID NR: 19), miR30a-3p (SEQ ID NR: 20), miR372, miR182*, miR298, miR9-1 , miR155, miR99b, miR147, miR197, miR189, miR154, miR376b, miR219-1 , miR202; miR370, miR341 , miR27a, Iet7e, miR302c*; miR188, miR200b, miR215, miR142-3p, miR153-1 , miR345, miR34a, miR21 , miR148a, miR146, miR290, Iet7i, miR106a, miR217, Iet7g, miR183, miR200a, miR133a-1 , miR7-1 , miR22, miR9-1*, miR93, miR144, miR34c, miR220, miR141 , miR130b.
Für ausgewählte miRNA Sequenzen ist die jeweilige SEQ ID NR: in Klammern angegeben.
Ein hierarchische Clusteranalyse nach Eisen (http://rana.lbl.gov/) zeigte ebenfalls die signifikanten Unterschiede in chronisch infarziertem Myokardgewebe (Infarkt; n=3) und Myokardgewebe von Schein-operierten Ratten (Sham, n=3) (siehe Fig. 3). Diese bioinformatorische Analysemethode sucht nach Unterschieden und Gemeinsamkeiten der verschiedenen untersuchten Gruppen.
Durch Suche in Datenbanken (http://microrna.sanqer.ac.uk/) konnten bereits theoretische Zielgene der deregulierten miRNAs identifiziert werden. Eine Auswahl ist in Tabelle 1 angegeben.
Tabelle 1
Nach Myokardinfarkt herauf-regulierte miRNA und deren Zielgene, welche bei Myokardinfarkt/Herzinsuffizienz eine wichtige Rolle spielen
miRNA Zielgen
miR15b Carnitin-O-palmitoyltransferase Il (Fettsäureoxidation)
(SEQ ID NR: 1 ) Cyclin A2
G1/S-spezifisches Cyclin E1
Myosin-bindendes Protein C, Herz-Typ (Herz MyBP-C)
Superoxide Dismutase [Cu-Zn]
Fibroblasten Wachstumsfaktor 6
miR23a L-Lactat Dehydrogenase B Kette
(SEQ ID NR: 2) Hypoxie-induzierbarer Faktor 1 alpha Inhibitor
Retinoid X Rezeptor gamma
Cyclin H
Thioredoxin
Cyclin-L1 (Cyclin-L)
miRNA126* Vaskulärer Zelladhäsionsprotein 1 Vorläufer (V-CAM 1 )
(SEQ ID NR: 3) Vaskulärer endothelialer Wachstumsfaktor A Vorläufer (VEGF-A) Histon H2B
miRNA128a Vaskulärer endothelialer Wachstumsfaktor C Vorläufer
(SEQ ID NR: 4) Thioredoxin Reduktase 2
6-Phosphofructokinase, Muskel-Typ
Troponin I1 Herzmuskel (Herz Troponin I)
Myosin schwere Kette, Herzmuskel alpha Isoform (MyHC-alpha)
Somatotropin Vorläufer (Wachstumshormon)
Thioredoxin Reduktase 2 Metalloproteinase Inhibitor 1 Vorläufer (TIMP-1 )
miRNA134 Calreticulin
(SEQ ID NR: 5) Cytochrom C Oxidase Polypeptid Va, mitochondrialer Vorläufer Peroxiredoxin 1 (EC 1.11.1.15) (Thioredoxin Peroxidase 2)
miRNA149 Camitin O-Acetyltransferase
(SEQ ID NR: 6) Kalium Kanal spannungsvermittelte Subfamilie D Mitglied 3 Wachstumsarrest und durch DNA-Schädigung induzierte 45 beta Tropomyosin 1 alpha Kette (Alpha-Tropomyosin)
miRNA151 Myosin-bindendes Protein C1 Herz-Typ (Herz MyBP-C) (Herzmuskel
(SEQ ID NR: 7) Isoform)
Calcium-aktivierte Kalium Kanal beta Untereinheit 4
Heparin-bindender Wachstumsfaktor Vorläufer (Saurer Fibroblasten
Wachstumsfaktor) (aFGF).
miRNA206 Cytochrom b5
(SEQ ID NR: 8) Superoxid Dismutase [Cu-Zn] Cyclin H Angiopoietin-ähnliches 2
miRNA211 Knochen morphogenetischer Protein 10 Vorläufer (BMP-10)
(SEQ ID NR: 9) Mittlere Leitfähigkeit (intermediate conductance) Calcium-aktiviertes
Kalium Kanal Protein 4 (SK4) (KCa4)
Stickoxid Synthase, Gehirn m(EC 1.14.13.39) (NOS Typ I) (Neuro nales NOS) (N-NOS)
Kalium Kanal spannungsvermitteltes Subfamilie H Mitglied 7 (Volta- ge-gated potassium Channel subunit Kv1 1.3)
Nestin
Matrix Metalloproteinase-9 Vorläufer (EC 3.4.24.35) (MMP-9)
Atriales natriuretischer Peptid Rezeptor B Vorläufer (ANP-B)
Myogener Faktor 6 Vaskulärer Zelladhäsions Protein 1 Vorläufer (V-CAM 1 ) (CD106 Antigen)
miRNA212 Myosin-5B (Myosin Vb) (Myosin schwere Kette myr 6)
(SEQ ID NR: 10) Calcium-aktivierte Kalium Kanal beta Untereinheit 4
Isocitrat Dehydrogenase [NAD] Untereinheit beta, mitochondrialer
Vorläufer
Transkriptionsfaktor E2F5 (E2F-5)
Mitochondriales Carnitin/Acylcarnitin Trägerprotein
Vaskulärer Zeiladhäsionsprotein 1 Vorläufer (V-CAM 1 )
Ryanodin Rezeptor Typ 1
Metalloproteinase Inhibitor 1 Vorläufer (TIMP-1 )
Kalium Kanal spannungsvermitteltes Subfamiiie A Mitglied 6 (Kv1.6)
miRNA214 Carnitin O-Acetyltransferase
(SEQ ID NR: 11 ) Kreatin Kinase M-Typ
Myosin-bindendes Protein H (MyBP-H)
Metalloproteinase Inhibitor 4 Vorläufer (TIMP-4)
Myosin XVIIIa
Superoxid dismutase [Cu-Zn]
Myosin leichtes Polypeptid 6 (Myosin leichte Kette Alkali 3) (Myosin leichte Kette 3)
Herz Troponin C
miRNA328 Calcium-aktivierte Kalium Kanal beta Untereinheit 4
(SEQ ID NR: 12) Myosin-bindendes Protein H
Calcium/Calmodulin-abhängige Proteinkinase Kinase 1 (EC
2.7.1.37)
Natrium- und Chlor-abhängiger Kreatin Transporter 1 (CT1 ) (Crea tin Transporter 1 )
Kalium Kanal spannungsvermitteltes Subfamiiie D Mitglied 3
(Kv4.3)
IGF-II mRNA-bindendes Protein 1
Nestin Fructose-1 ,6-bisphosphatase 2 Myoglobin miRNA371 Somatotropin Vorläufer (Wachstumshormon)
(SEQ ID NR: 13) Kreatin Kinase B-Typ (EC 2.7.3.2) (Kreatin Kinase, B Kette) (B-CK)
Einzelne stark regulierte miRNAs können über eine Heraufregulation (durch lipo- somale Transfektion der spezifischen miRNA) oder Herabregulation (durch lipo- somale Transfektion spezifischer miRNA-lnhibitoren (anti-miRs®, Ambion, UK o- der Antagomirs, Alnylam, Kulmbach, Germany) der entsprechenden miRNA durch Applikation nach Myokardinfarkt moduliert werden. Alternativ können auch andere Transfektionsarten verwendet werden (z.B. viral oder durch Nukleofektion, bzw. Elektroporation) Durch die große Anzahl an Targetgenen einzelner miRNAs werden so ganze Gen-Netzwerke in ihrer Expression nach Myokardinfarkt wieder normalisiert und eine verbesserte Herzfunktion wiederhergestellt.
2. Methoden des miRNA-Expressionsscreens
miRNA-Expressionsanalysen
Gefrorenes Herzgewebe oder kultivierte Kardiomyozyten wurden unter Verwendung von flüssigem Stickstoff zerkleinert. Aus ihnen wurde Gesamt-RNA einschließlich kleinen RNAs (small RNAs) isoliert (m/Λ/ana™ miRNA Isolierungskit; Ambion, USA). Die Gesamt-RNA wurde getrennt isoliert und die gereinigten miRNAs unter Verwendung des FlashPAGE-Fraktionierungssystems (Ambion, USA) aufbereitet. Eine Kapillarelektrophorese (Bioanalyzer 2100; Agilent, Deutschland) wurde verwendet, um die Qualität der Gesamt-RNA und die Reinheit der miRNA zu bewerten. MicroRNA, die aus 10 μg gesamt RNA erhalten wurde, wurde mit dem Farbstoff Cy3 (Molecular Probes, USA) unter Verwendung des m/Λ/ana™ miRNA Markierungskits (Ambion, USA) nach den Angaben des Hersteller markiert. Jedes Target wurde in einem getrennten Array hybridisiert.
Microarrays mit bis zu 384 miRNAs (m/rVana miRNA Sondenset, Ambion) wurden im Labor der Erfinder auf SCHOTT Nexterion® Slide E Microarray Objektträger jeweils 4-fach aufgespottet. Die Oligonukleotidsonden waren 42-46 nt lang und bestanden aus einem 18-24 nt Segment, das auf eine bestimmte bekannte miRNA, die vom Menschen, der Maus oder der Ratte stammt, abzielt.
Eine vollständige Auflistung der verwendeten Sonden einschließlich der Sequenzinformationen in dem Sondenset steht unter www.arnbion.com/techlib/resources/- iτiiRNA array/index.html zur Verfügung. Die Verarbeitung der Objektträger, die miRNA Reinigung, die Anreicherung und die Markierung wurde nach den Angaben in dem Handbuch von Ambion m/Λ/ana™ (www.ambion.com/techlib/prot/) durchgeführt. Die Datenaufnahme wurde unter Verwendung der ScanAlyze Software (M. Eisen, LBNL, CA, USA) durchgeführt.
Datenanalyse der Arrays
Die miRNA-Array-Datenanalysen wurden unter Verwendung des R-Pakets aus dem Bioconductor-Projekt (www.bioconductor.org) durchgeführt. Die resultierenden Signalintensitäten wurden durch Varianzstabilisierung normalisiert (Huber et al., 2002). Die Qualität aller Datensätze wurde getestet, und es wurde eine statistische Analyse durchgeführt, um differenziell exprimierte Gene unter Verwendung des Limma (Linear Models for Microarray Analysis) Pakets zu bewerten. Der Kern des Limma-Pakets ist eine Implementierung des empirischen Bayes linear mode- ling Ansatzes von Smyth and kann selbst für die stabilie Analyse von noch kleineren Probegrößen verwendet werden (Smyth, 2004). Verfahren zur Vorhersage des miRNA Targets (siehe Tabelle 1)
Die miRNA-Datenbank miRBase (http://microma.sanqer.ac.uk/) wurde verwendet um mögliche miRNA-Targets zu identifizieren. Der miRanda-Algorithmus wurde verwendet um alle zu Verfügung stehenden miRNA-Sequenzen eines gegebenen Genoms gegen die 3' UTR-Sequenzen dieses Genoms zu screenen. Der Algorithmus verwendet die dynamische Programmierung, um nach der maximalen lokalen Komplementarität zu suchen, die dem doppelsträngigen anti-parallelen Duplex entspricht. Ein positiver Wert (score) wird für komplementäre Basenpaarung angegeben, und ein negativer Wert (score) wird für Fehlpaarungen, Öffnungen und Erweiterungen der Transkriptions-/Replikationsgabel (gap-opening und gap-extension) angegeben. Die Werte, die von dem 5' Ende der miRNA abgeleitet waren, wurden mit einem Faktor multipliziert, um die Wichtigkeit einer perfekten Watson-Crick-Basenpaarung auszudrücken, die experimentell beobachtet wurde. Anschließend wurde eine Karlin-Altschul-Normalisierung durchgeführt (miRBase Targets Version 3.0; http://microrna.sanqer.ac.uk/tarqets/v3/).
MicroRN A- Analysen in humanen insuffizienten Herzen
Mit den bereits oben beschriebenen Methoden wurden miRNA-Expressionsprofile von n=4 humanen erkrankten Herzen und n=4 gesunden Herzen erstellt. Bei den erkrankten Herzen handelt es sich um linksventrikuläres Gewebe, das im Rahmen einer Herztransplantation aufgrund von dekompensierter Herzinsuffizienz entnommen wurde. Die deregulierten miRNAs (Herauf- sowie Herabregulation), die potenzielle Zielstrukturen für neue optimierte Therapien darstellen, sind im Folgenden angegeben:
Die folgenden miRNAs sind im menschlichen dekompensierten Herzen („heart failure - Herzversagen") induziert (n=4 gesundes linksventrikuläres Gewebe; n=4 erkranktes dekompensiertes linksventrikuläres Gewebe):
hsa_miR_212 (SEQ ID NR:10), hsa_miR_21 (SEQ ID NR:14), hsa_miR_29b (SEQ ID NR:15), hsa_miR_129 (SEQ ID NR:16), mmu_miR_17_3p,, hsa_miR_210, hsa_miR_29a, hsa_miR_299_5p, hsa_miR_211 , hsa_miR_423, hsa_miR_320, hsa_miR_200c, hsa_miR_1 , hsa_miR_15a, hsa_miR_213 (SEQ ID NR:17), hsa_miR_126_AS, hsa_let_7c (SEQ ID NR:18), hsa_miR_26a, hsa_miR_106b (SEQ ID
NR: 19), hsa_miR_130a, hsa_miR_384, hsa_miR_424, hsa_let_7e, hsa_let_7g, mmu_miR_199b, hsa_miR_125a, hsa_miR_199b,, hsa_miR_28, hsa_miR_365, hsa_let_7d, hsa_miR_98, hsa_miR_335, hsa_let_7f, hsa_let_7b, hsa_miR_204, hsa_miR_372, hsa_miR_26b, mmu_miR__140_AS, hsa_miR_130b, mmu_miR_192, hsa_miR_34b, mmu_miR_129_3p, hsa_miR_132, hsa_miR_203, hsa_miR_181a, hsa_miR_127, mmu_miR_330, hsa_miR_15b, hsa_miR_199a, hsa_miR_516_3p, hsa_miR_101 , hsa_miR_205, hsa_miR_151 , hsa_miR_331 , hsa_miR_32, hsa_miR_184, hsa_miR_489, hsajniR_504, hsa_miR_31 , hsa_miR_146a, hsa_miR_373, hsa_let_7a, hsa_miR_143, hsa_miR_511 , hsa_miR_10b, hsa_miR_185, hsa_miR_136, mo_miR_349, hsa_miR_194, hsa_miR_145, hsa_miR_154, mmu_miR_151 , hsa_miR_134
(SEQ ID NR: 5), mmu_miR_424, hsa_miR_181c, mmu__miR_201 , hsa_miR_508, hsa_miR_99b, hsa_miR_27b.
Die folgenden miRNAs sind im menschlichen dekompensierten Herzen („heart failure - Herzversagen") reprimiert (n=4 gesundes linksventrikuläres Gewebe; n=4 erkranktes dekompensiertes linksventrikuläres Gewebe):
hsa_miR_139, hsa_miR_376a, hsa_miR_517a, hsa_miR_141 , mmu_miR_380_3p, hsa_miR_30c, hsa_miR_520d, hsa_miR_519d,, mmu_miR_291_3p, hsa_miR_221 , hsa_miR_520b, hsa__miR_522, hsa_miR_422b, hsa_miR_527, hsa_miR_17_3p, hsa_miR_507, hsa_miR_24, hsa_miR_523, hsa_miR_452_AS, hsa_miR_520a_AS, hsa_miR_135b, hsa_miR_182, hsa_miR_215, hsa_miR_518f_AS, hsa_miR_224, hsa_miR_339, mmu_miR_292_5p, mmu_miR_376b, hsa_miR_222, hsa_miR_96, mmu_miR_290 (SEQ ID NR: 24), hsa_miR_30a_5p (SEQ ID NR: 25), hsa_miR_425, hsa_miR_219 (SEQ ID NR: 26), hsa_miR_302b, hsa_miR_515_5p (SEQ ID NR: 27), hsa_miR_526b (SEQ ID NR: 28), hsa_miR_302b_AS, hsa_miR_107, hsa_miR_124a, hsa_miR_30b (SEQ ID NR: 29).
Eine Überexpression bestimmter miRNAs führt zu zellulärer Hypertrophie und Aktivierung fötaler pathologischer Genprogramme in Kardiomyozyten
Kardiomyozyten wurden von neonatalen Ratten wie beschrieben isoliert und kultiviert (Burkard et al., 2005). Mehr als 95% der kultivierten Zellen zeigten eine Expression für das Kardiomyozyten-spezifische Aktinin, was auf eine sehr hohe Reinheit der Zellkultur schließen lässt. Fluoreszenz-Farbstoff (Cy3)-markierte scrambled-miR, -miR-21 , -miR-129 und -miR-212-Moleküle (Cy3-pre-miR miRNAs, Ambion, USA, 100 nM, 48 h) wurden separat oder in Kombination mittels eines liposomalen Transfektionsverfahrens (Lipofectamine, Invitrogen, Germany) in kultivierte Kardiomyozyten transfiziert (Thum et al., 2007; Abb. 5A, B). 48 h nach der Transfektion wurden aus den Zellen Zell-Lysate wie beschrieben hergestellt (Thum et al., 2006). Adulte Kardiomyozyten wurden wie beschrieben isoliert und kultiviert (Thum et al., 2001 ). Adulte Kardiomyozyten wurden an ihrer typischen rechteckigen Morphologie identifiziert, und die Reinheit der Zellkultur an adulten Kardiomyozyten war sehr hoch (Abb. 6A). Adulte Kardiomyozyten wurden mit scrambled Cy3-markierter miRNA oder einem Set an miRNAs (miR-21 , miR- 129 and miR-212, 72 h, 25 nM) liposomal transfiziert (Lipofectamine, Invitrogen, Germany). Als ein Marker für die Zellgröße wurde die Oberfläche der kultivierten neonatalen (48 h nach Transfektion) und adulten (72 h nach Transfektion) Kardiomyozyten mit dem Bildanalyseprogramm AxioVison ReI. 4.4 (Carl Zeiss GmbH, Germany) bestimmt. Statistische Analysen wurden mittels one-way ANOVA gefolgt von mehreren Vergleichen mit dem „Fisher's protected least-significant diffe- rence" Test durchgeführt. Die statistische Analyse wurde mit dem Program Stat- View 5.0 (Abacus Concepts, Berkley, CA, USA) durchgeführt. Die statistische Signifikanz wurde für P<0.05 angenommen.
Um die Bedeutung einzelner deregulierter miRNAs für die Biologie von Kardiomy- ozyten zu analysieren, wurden drei in humanen insuffizienten Herzen hochregulierte miRNAs (miR-21 , miR-129 and miR-212) in neonatalen und adulten Kardio- myozyten überexprimiert (siehe Abb. 5, 6). Die Transfektionseffizienz wurde mittels Nutzung Cy-3 markierter pre-miRNA-Moleküle untersucht und war sowohl in neonatalen als auch adulten Kardiomyozyten sehr hoch (siehe Abb. 5A, B; Abb. 6A; >85%). Zusätzlich wurde nach der Transfektion die Expression der einzelnen miRNAs mittles quantitativer miRNA Stammschleifen (stem loop) RT-PCR (Taq- Man® MicroRNA Assays, Applied Biosystems, USA) bestimmt. Die Transfektion führte in neonatalen und adulten Kardiomyozyten zu einer Heraufregulation der miRNAs miR-21 , miR-129 und miR-212 (Abb. 5C, 6C). Nur vitale Kardiomyozyten konnten transfiziert werden (Abb. 6B). Während die Überexprimierung einzelner miRNAs zwar deutliche Effekte auf die zelluläre Morphologie, einschließlich Hypertrophie, ausübte, konnte der stärkste Effekt durch die gleichzeitige Überexpression aller drei miRNAs (miR-21 , miR-129 and miR-212) erzielt werden (Abb. 5B, 6D). Eine weitere Folge der Überexpression dieser miRNAs war eine Re- Aktivierung fötaler Genprogramme, die regelmäßig während einer Herzerkrankung, einschließlich der Herzhypertrophie und Herzinsuffizienz, auftritt. So wurden die Gene ANP, BNP, beta-MHC, alpha skeletal actin, villin2, cspg2, phldal, hsp90, RASA1, MEF2a, cradd und dtna durch die miRNA-Überexpression in ihrer Expression so moduliert, dass das Expressionsniveau auf dem krankhafter Herzen lag (Abb. 5D, 6E). Eine Transfektion adulter Kardiomyozyten mit diesem Set an miRNAs (miR-21 , miR-129 und miR-212) resultierte ebenfalls in der Ausbildung einer zellulären Hypertrophie und Aktivierung fötaler Genprogramme (Abb. 6D, E, F). Die Transfektion von scrambled miRNAs führte weder zu einer zellulären Hypertrophie noch zu einer Aktivierung fötaler, pathologischer Genprogramme (Abb. 5, 6). Die Daten identifizieren bestimmte miRNAs als wichtige Regulatoren für die Re- Aktivierung fötaler Genprogramme im insuffizienten humanen Herzen und liefern somit einen wichtigen Beitrag zur Erklärung der transkriptioneilen Veränderungen bei der Herzinsuffizienz.
MicroRN A- Analysen während der Entwicklung einer Myokardhypertrophie am Mausmodell in vivo und in vitro
In-vivo: Mittels eines operativen Eingriffs wurde der Durchmesser der Aorta an Mäusen stark verkleinert („aortic banding"). Bei den Kontrollen („Shanϊ'-operierten Tieren) wurde ebenfalls der Thorax eröffnet und die Aorta dargestellt, aber keine Verengung der Aorta durchgeführt. Nach 3 und nach 21 Tagen wurde das links- ventrikuläre Herzgewicht relativ zum Gesamtgewicht der jeweiligen Maus bestimmt (siehe Fig. 4) und anschließend die miRNA wie oben beschrieben isoliert. Danach wurden die miRNA-Expressionsprofile der Tiere mit verengter Aorta („aortic banding-Tiere") im Vergleich zu den „SharrT-operierten Tiere nach 3 sowie 21 Tagen erstellt. Die deregulierten miRNAs (Herauf- sowie Herabregulation) stellen potenzielle Zielstrukturen für neue optimierte Therapien dar.
Die folgenden miRNAs sind nach 3 Tagen „aortic banding" induziert (n=4 Tieren pro Gruppe):
mmu_miR_106a, hsa_miR_21 , hsa_miR_223, hsa_miR_512_3p, hsa_miR_377, mmu_miR_376b, hsa_miR_379, hsa_miR_197, hsa__miR_522, ambi_miR_7026, mmu_miR_295, hsa_miR_326, hsa_miR_214, ambi_miR_7027, mmu_miR_329, hsa_miR_488, mmu_miR_215, hsa__miR_521 , rno_miR_20_AS, hsa_miR_491 , hsa_miR_200a, hsa_miR_520a_AS, mmu_miR_376a, hsa_miR_301 , hsa_miR_221 , hsa_miR_510, hsa_miR_371 , mo_miR_336, hsa_miR_520d, hsa_miR_20a, hsa_miR_380_3p, hsa_miR_323, mmu_miR_201 , hsa_miR_365, hsa_miR_518a, mmu_miR_101 b, hsa_miR_17_5p, hsa_miR_196b, hsa_miR_224, hsa_miR_217, hsa_miR_507, hsa_miR_520d_AS, hsa_miR_196a, hsa_miR_367, hsa_miR_369_3p, hsa_miR_99a, hsa_miR_141 , ambi_miR_7039, hsa_miR_212, hsa_miR_524, hsa_miR_345, hsa_miR_220, mmu_miR_202, hsa_miR_106a, hsa_miR_107, hsa_miR_99b, hsa_miR_30b, hsa_miR_23b, hsa_miR_342, hsa_miR_518f, hsa_miR_339, hsa_miR_338, hsa_miR_302a.
Die folgenden miRNAs sind nach 3 Tagen „aortic banding" reprimiert (n=4 Tieren pro Gruppe):
hsa_let_7d, hsa_miR_30a_5p, hsa_miR_130a, ambi_miR_7089, hsa_miR_106b, hsa_miR_503, hsa_miR_485_5p, hsa_miR_496, hsa_miR_25, hsa_miR_493, ambi_miR_7081 , hsa_miR_520h, hsa_miR_105, hsa_miR_490, hsa_miR_505, hsa_miR_452_AS, am- bi_miR_7085, hsa_miR_101 , ambi_miR_7083, hsa_miR_216, am- bi_miR_7080, hsa__miR_500, rno_miR_346, ambi_miR_7066, am- bi_miR_7105, ambi_miR_7067, hsa_miR_497, hsa_miR_429, hsa_miR_302b_AS, hsa_miR_182, ambi_miR_7058, hsa_miR_499, hsa_miR_452, hsa_miR_511 , hsa_miR_519b, hsa_miR_494, mmu_miR_140_AS, ambi_miR_7068_1 , ambi_miR_7097, hsa_miR_337, hsa_miR_133a, ambi_miR_7059_1 , hsa_miR_502, hsa_miR_202_AS, hsa_miR_432_AS, rno_miR_352, hsa_let_7b, mmu_miR_290, am- bi_miR_7084, rno_miR_349, hsa_let_7f, hsa_miR_504, hsa_miR_126, hsa_miR_1 , mmu_miR_7b, mmu_miR_34b, hsa_miR_150, hsa_miR_30e_3p, hsa_miR_370, ambi_miR_7095, hsa_miR_190, hsa_miR_518c_AS, ambi_miR_7062, hsa_miR_375, mmu_miR_345, mo_miR_333, hsa_let_7a, hsa_miR_373, hsa_miR_495, hsa_miR_432, hsa_miR_492, mmu_miR_297, hsa_miR_515_3p, ambi_miR_7079, am- bi_miR_7036, hsa_miR_372, mmu_miR_346, mmu_miR_17_3p, mmu_miR_350, mmu_miR_129_3p, mmu_miR_330, ambi_miR_7101 , hsa__miR_145, ambi_miR_7070, mmu_miR_341 , hsa_miR_325, am- bi_miR_7076, hsa_miR_423, hsa_miR_135b, hsa_miR_422a, hsa_miR_34a, hsa_miR_34c, hsa_miR_142_5p, hsa_miR_30c.
Die folgenden miRNAs sind nach 21 Tagen „aortic banding" induziert (n=4 Tieren pro Gruppe):
hsa_miR_30a_5p, hsa_miR_106b, hsa_miR_25, hsa_miR_216, mmu_miR_297, hsa_miR_105, hsa_miR_101 , hsa_miR_429, hsa_miR_512_3p, hsa_miR_138, hsa__miR_519b, mmu_let_7d_AS, hsa_miR_432, mmu_miR_341 , hsa_miR_214, ambi_miR_7026, hsa_miR_222, hsa_miR_491 , rno_miR_346, mmu_miR_291_3p, hsa_miR_524, mo_miR_327, ambi_miR_7039, mmu_miR_346, hsa_miR_367, mmu_miR_207, mmu_miR_351 , mmu_miR_292_3p, hsa_miR_510, ambi_miR_7027, hsa_miR_379, hsa_miR_134, hsa_miR_525, hsa_miR_498, hsa_miR_198, hsa_miR_373, hsa_miR_512_5p, hsa__miR_136, hsa_miR_372, hsa_miR_518f, hsa_miR_514, hsa_miR_525_AS, hsa_miR_7, hsa_miR_506, hsa_miR_517a, ambi_miR_7085, mmu_miR_380_3p, hsa_miR_521 , hsa_miR_130a, ambi_miR_7076, hsa_miR_296, hsa_miR_520d_AS, hsa_miR_346, hsa_miR_378, hsa_miR_324_3p, ambi_miR_7067, hsa_miR_520h, hsa_miR_206, hsa_miR_122a, hsa_miR_373_AS, mmu_miR_215, mmu_miR_409, hsa_miR_221 , hsa_miR_330, am- bi_miR_7089, hsa_miR_129, mmu_miR_294, hsa_miR_196a, mmu_miR_376b, mmu_miR_383, ambi_miR_7074, hsa_miR_187, mmu_miR_300, hsa_miR_302d, hsa_miR_375, mmu_miR_292_5p, hsa_miR_518a, hsa_miR_92, ambi_miR_7066, hsa_miR_424, hsa_miR_518f_AS, hsa_miR_302c, hsa_miR_193a, hsa_miR_507, mmu_miR_429, rno_miR_20_AS, hsa_miR_200b, hsa_miR_339, hsa_miR_369_3p, mmu_miR_217, hsa_miR_517_AS, hsa_miR_527, hsa_miR_326, hsa_miR_377, mmu_miR_411 , mo__miR_333, mmu_miR_344, mmu_miR_295, mo_miR_7_AS, ambi_miR_7100
Die folgenden miRNAs sind nach 21 Tagen „aortic banding" reprimiert (n=4 Tieren pro Gruppe):
hsa_miR_183, rno_miR_352, hsa_miR_133a, hsa_miR_10a, hsa_miR_203, hsa_miR_1 , hsa_miR_202_AS, hsa_miR_450, hsa_miR_126, hsa_let_7a, hsa_miR_100, hsa_let_7b, hsa_miR_26b, hsa_let_7f, hsa_miR_26a, mmu_miR_337, hsa_miR_30c, hsa_miR_23b, hsa_miR_499, hsa_miR_29a, hsa_miR_23a, hsa_miR_10b, hsa_miR_24, hsa_let_7g, hsa_miR_30d, hsa_miR_30e_5p, mmu_miR_129_3p, hsa_miR_29c, hsa_miR_16, hsa_miR_145, hsa_miR_15b, hsa_miR_142_5p, hsa_miR_422b, hsa_miR_524_AS, hsa_miR_189, mmu_miR_106a, hsa_miR_27a, hsa_miR_422a, rno_miR_336, hsa_miR_150, hsa_miR_9_AS, ambi_miR_7029, hsa_miR_380_3p, hsa_miR_153, hsa_miR_490, hsa_miR_135b, hsa_miR_212, hsa_miR_125b, hsa_miR_22, hsa_miR_374, hsa_miR_195, mo_miR_421 , hsa_miR_200c, mmu_miR_151 , ambi_miR_7059_1 , hsa_let_7i, hsa_miR_140, hsa_miR_34a, hsa_miR_182, hsa_miR_501 , hsa_miR_191 , hsa_miR_342, hsa_miR_103, hsa_miR_27b, mmu_miR_140_AS, hsa_miR_204, hsa_miR_513, rno_miR_151_AS, hsa_miR_194, hsa_miR_125a, hsa_miR_345, hsa_miR_143, hsa_miR_15a, hsa_miR_520a, hsa_miR_36, hsa_miR_21 , hsa_miR_219, hsa_miR_519e_AS, hsa_miR_497, hsa_miR_199a, hsa_miR_28, am- bi_miR_7103, ambi_miR_7105, mmu_miR_298, hsa_miR_197, hsa_miR_503, hsa_miR_34c, hsa_miR_526b, hsa_miR_485_5p, hsa_miR_508, hsa_miR_489, hsa_miR_526b_AS, hsa__miR_493, mmu_miR_199b, hsa_miR_188, hsa_miR_518d, mmu_miR_345, hsa_miR_181 c, hsa_miR_99b, mmu_miR_322, hsa_miR_523, mmu_miR_291_5pl hsa_miR_148b, hsa_miR_526c„ hsa_miR_302b_AS, hsa_miR_520b, hsa_miR_29b, hsa_miR_152, hsa_miR_149, hsa_miR_18a, hsa_miR_106a, hsa_miR_205, ambi_miR_7055, hsa_miR_186, hsa_miR_432_AS, hsa_miR_185, ambi_miR_7062, am- bi_miR_7080, hsa_let_7e, hsa_miR_192, mmu_miR_155, ambi_miR_7075, hsa_miR_30e_3ρ, hsa_miR_505, ambi_miR_7084, hsa_miR_494, am- bi_miR_7083, ambi_miR_7068_1 , hsa_miR_17_3p, ambi_miR_7036, hsa_miR_518c, hsa_miR_34b, hsa_miR_148a, mmu_miR_330, mmu_miR_7b, hsa_miR_496, ambi_miR_7101 , hsa_miR_199a_AS, hsa_miR_492, hsa_miR_324_5p, ambi_miR_7038_1 , ambi_miR_7081 , hsa_miR_412, hsa_miR_182_AS, hsa_miR_211 , hsa_miR_151 , hsa_miR_452, hsa_miR_337, hsa_miR_502, hsa_miR_193b, hsa_miR_376a, hsa_miR_299_5p, ambi_miR_7097, hsa_miR_519e, hsa_miR_19a, hsa_miR_488, hsa_miR_449, hsa_miR_320, hsa_miR_208, hsa_miR_518e, hsa_miR_410, hsa_miR_124a, hsa_miR_135a, hsa_miR_184, hsa_miR_181a, hsa_miR_516_3p, hsa_miR_328.
In-vitro Induktion einer Hypertrophie an neonatalen Kardiomyozyten
Zunächst wurden neonatale Kardiomyozyten von Mäusen isoliert und kultiviert. Anschließend wurde eine 48 h Behandlung mit je 10 μM Phenylephrin und Isopro- terenol durchgeführt, die zu einer zellulären Hypertrophie kultivierter Kardiomyozyten führte (Buitrago et al., 2005). In Folge wurden auch hier miRNA- Expressionsprofile behandelter und unbehandelter (nicht hypertrophierter) Kardiomyozyten erstellt. Die deregulierten miRNAs (Herauf- sowie Herabregulation), stellen potentielle Zielstrukturen für neue optimierte Therapien der Herzhypertrophie dar.
Die folgenden miRNAs sind nach 2 Tagen Behandlung (je 10 μM Phenylephrin und Isoproterenol) von kultivierten neonatalen Kardiomyozyten induziert (n=3 Versuche pro Gruppe): hsa_miR_302c_AS, hsa_miR_101 , hsa_miR_124a, hsa_miR_33, hsa_miR_220, hsa_miR_154, hsa_miR_99a, hsa_miR_340, hsa_miR_216, hsa_miR_323, hsa_miR_107, hsa_miR_302a, hsa_miR_141 , hsa_miR_224, hsa_miR_98, hsa_miR_217, hsa_let_7c, hsa_miR_203, hsa_miR_213, mmu_miR_424, mmu_miR_106a, hsa_miR_302c, mmu_miR_217, hsa_miR_302b, hsa_miR_144, hsa_miR_32, hsa_miR_339, hsa_miR_205, hsa_miR_488, mmu_miR_291_3p, hsa_miR_17_3p, hsa_miR_338, hsa_miR_518a, hsa_miR_142_5p, mmu_miR_292_5p, hsa_miR_219, hsa_miR_302d, ambi_miR_7027, hsa_miR_384, hsa_miR_139, hsa_miR_137, hsa_miR_96, mmu_miR_292_3p, hsa_miR_136, hsa_miR_208, mmu_miR_17_3p, hsa_miR_18a, hsa_miR_215, hsa_miR_9, hsa_miR_142_3p, hsa_miR_181 c, mmu_miR_140_AS, hsa_miR_130b.
Die folgenden miRNAs sind nach 2 Tagen Behandlung (je 10 μM Phenylephrin und Isoproterenol) von kultivierten neonatalen Kardiomyozyten reprimiert (n=3 Versuche pro Gruppe):
hsa_let_7d, hsa_miR_193b, ambi_miR_7080, hsa_miR_490, hsa_miR_497, ambi_miR_7081 , hsa_miR_493, ambi_miR_7075, hsa_miR_502, hsa_miR_526c, hsa_miR_491 , hsa_miR_199a_AS, am- bi_miR_7097, hsa_miR_485_5p, hsa_miR_501 , hsa_miR_195, hsa_miR_505, hsa_miR_199a, mmu_miR_337, hsa_miR_30e_5p, hsa_miR_191 , hsa_miR_489, hsa_miR_520e, mmu_miR_345, hsa_miR_189, hsa_miR_526b, hsa_miR_452, hsa_miR_432_AS, hsa_miR_30a_5p, hsa_miR_374, hsa_miR_496, ambi_miR_7068_1 , hsa_miR_370, hsa_miR_34b, hsa_miR_499, mmu_miR_298, am- bi_miR_7076, mmu_miR_7b, hsa_miR_30b, hsa_miR_524_AS, hsa_miR_188, ambi_miR_7062, hsa_miR_130a, hsa_miR_382, mo_miR_346, hsa_miR_515_5p, hsa_miR_520a, hsa_miR_519c, hsa_miR_513, hsa_miR_526b_AS, hsa_miR_512_5p, ambi_miR_7059_1 , hsa_miR_204, ambi_miR_7084, ambi_miR_7105, hsa_miR_23b, hsa_miR_500, hsa_miR_34c, hsa_miR_518c, hsa_miR_410, hsa_miR_492, ambi_miR_7095, hsa_miR_202_AS, hsa_miR_380_5p, am- bi_miR_7054, hsa_miR_25, hsa_miR_518b, hsa_miR_432, hsa_miR_30d, hsa_miR_449, hsa_miR_181 a, hsa_miR_450, ambi_miR_7055, hsa_miR_29a, hsa_miR_19a, rno_miR_347, hsa_miR_373_AS, am- bi_miR_7083, hsa_miR_34a, hsa_miR_7, hsa_miR_24, rno_miR_421 , mmu_miR_383, mo_miR_336, hsa_miR_181 b, ambi_miR_7103, rno_miR_349, hsa_miR_361 , mmu_miR_429, mmu_miR_384, hsa_miR_100, hsa_miR_519e_AS, mmu_miR_409, hsa_miR_199b, am- bi_miR_7101 , hsa_miR_15b, hsa_miR_371 , hsa_miR_151 , hsa_miR_19b,, IDmU-ITIiR-SSI , hsa_miR_99b, hsa_miR_508, hsa_miR_140, mmu_miR_346.
Die unterschiedlichen eingesetzten Verfahren bzw. pathophysiologischen Zustände (humane Herzinsuffizienz, Infarktmodell an der Ratte, Hypertrophie-Modell an der Maus durch „aortic banding" nach 3 und 21 Tagen, pharmakologisches in-vitro Modell der kardialen Hypertrophe) führen zu Ergebnissen bei der miRNA- Expression, die gleichen Trends folgen.
Die wirksamsten miRNA-Kandidaten wurden nach den folgenden Kriterien ausgewählt:
(1 ) Die Auswahl der induzierten miRNAs nach chronischem Myokardinfarkt erfolgte aufgrund der Höhe der Induktion nach Myokardinfarkt (größer ca. 2- fach induziert), als auch aufgrund der zu erwartenden regulierten Zielgene der jeweiligen miRNA (z.B. miRNA-212).
(2) Die Auswahl der induzierten miRNAs in der Herzhypertrophie und Herzinsuffizienz erfolgte nach folgenden Kriterien. (a) größer ca. 1 ,2-fache Induktion in den humanen Herzen von Patienten mit Herzinsuffizienz, und
(b) mindestens eine weitere Induktion in einem der zusätzlich verwendeten Modelle (Aortic banding nach 3d sowie 21 d; pharmakologisches in vitro Hypertrophie-Modell).
In der folgenden Tabelle 2 sind die SEQ ID NRs, die Bezeichnungen aus der Datenbank (Sanger) und die Ml Bezeichnungen zusammengefasst.
Tabelle 2:
Figure imgf000032_0001
Figure imgf000033_0001
Die bevorzugtesten miRNAs sind nochmals im Folgenden zusammengestellt:
Hochregulierte miRNAs
(1 ) miR-212 (SEQ ID NR: 10)
Diese miRNA ist besonders in der humanen Herzinsuffizienz (5,6-fach) und nach chronischem Myokardinfarkt (2,4-fach) bei der Ratte hochreguliert.
(2) miR-214 (SEQ ID NR: 1 1 )
Diese miRNA ist leicht in der humanen Herzinsuffizienz (1 ,2-fach) und deutlich früh und spät nach Herzhypertrophie (aortic banding 3 und 21 Tage) (1 ,5-fach, bzw. 2,1-fach) bei der Maus sowie nach chronischem Myokardinfarkt (2,6-fach) und nach pharmakologischer Herzhypertrophieinduktion in vitro (1 , 5-fach) hochreguliert.
(3) miR-21 (SEQ ID NR: 14)
Diese miRNA ist besonders in der humanen Herzinsuffizienz (3,3-fach) und früh nach Herzhypertrophie (aortic banding 3 Tage) (3,0-fach) bei der Maus hochreguliert.
(4) miR-134 (SEQ ID NR: 5) Diese miRNA ist leicht in der humanen Herzinsuffizienz (1 ,2-fach) und deutlich spät nach Herzhypertrophie (aortic banding 21 Tage) (1 ,7-fach) bei der Maus sowie nach chronischem Myokardinfarkt (3,3-fach) bei der Ratte hochreguliert.
(5) miR-129 (SEQ ID NR: 16)
Diese miRNA ist in der humanen Herzinsuffizienz (2,7-fach) und spät nach Herzhypertrophie (aortic banding 21 Tage) (1 ,4-fach) bei der Maus sowie nach chronischem Myokardinfarkt (1 , 4-fach) bei der Ratte hochreguliert.
Herunterregulierte miRNAs
(6) miR-182 (SEQ ID NR: 20)
Diese miRNA ist in der humanen Herzinsuffizienz (-1 , 3-fach) und deutlich früh und spät nach Herzhypertrophie (aortic banding 3 und 21 Tage) (-1 ,8- fach, bzw. -2,2-fach) bei der Maus sowie nach chronischem Myokardinfarkt (-4,0-fach) der der Ratte herunterreguliert.
(7) miR-290 (SEQ ID NR: 24)
Diese miRNA ist in der humanen Herzinsuffizienz (-1 , 4-fach) und früh nach Herzhypertrophie (aortic banding 3 Tage) (-1 ,6-fach) bei der Maus sowie nach chronischem Myokardinfarkt (-1 ,4-fach) bei der Ratte herunterreguliert.
Mir-21 als besonders geeignetes therapeutisches Target
Nach Hypertrophieinduktion am Mausmodell fanden die Erfinder eine erhöhte Expression der miR-21 (siehe oben). Sie untersuchten daher ob eine Hemmung der miR-21 in vivo zu einer Verhinderung der Entwicklung einer Herzhypertrophie durch Druckbelastung (Verkleinerung des Aortendurchmessers durch aortic ban- ding-Operation) führt. Sie verwendeten zunächst bioinformatorische Analysen und nutzten die Datenbank miRBase (http://microrna.sanger.ac.uk/). um nach potenziellen Targets mit Bindungsstellen für die miR-21 in ihren 3' nichttranslatierten Bereichen zu suchen. Hier identifizierten sie sprouty-1 (SPRY1 ; Zugangsnummer: NM_001097524), Sarcalumenin (Zugangsnummer: NM_001098814) und Tropo- myosin (Zugangsnummer: anschließend NM 001018005) als potenzielle miR-21 - Targets. Insbesondere der 3' nichttranslatierte Bereich der SPRY1-mRNA enthält mehrere konservierte miR-Bindungsstellen, von denen eine eine Bindungsstelle für das in der Herzhypertrophie und in der Herzinsuffizienz im Herzen hochregulierte miR-21 ist. Um eine direkte Rolle der miR-21 in der post-transkriptionellen Regulation von SPRY1 und Sarcalumenin zu untersuchen, transfizierten die Erfinder pre-miR-21 Moleküle (Ambion, pre-miRs, 50 nM, 72 h) in kultivierte Kardiomy- ozyten und analysierten die SPRY1- und Sarcalumenin-Proteinexpression. Sie beobachteten eine starke Reduktion der Proteinexpression von SPRY1 und Sarcalumenin nach pre-miR21 Überexpression in kultivierten Kardiomyozyten (Abb. 7A, B). Eine Reduktion dieser Proteine führt sehr wahrscheinlich zu der Entwicklung der Herzhypertrophie und kardialen Dysfunktion nach Druckbelastung des linken Ventrikels. Die Erfinder beobachteten außerdem eine reduzierte Proteinexpression von SPRY1 (Abb. 7C) und eine verstärkte Phosphorylierung der extrazellulär Signal-regulierten Kinase 1/2 (extracellular signal-regulated kinase 1/2 = phospho-ERK1/2) nach Druckbelastung im linken Ventrikel der Maus (Abb. 7D).
Die Erfinder injizierten anschließend über einen in die Vena jugularis eingebrachten Katheter chemisch modifizierte Oligonukleotide für eine spezifische Herunterregulation der endogenen miR-21 Expression (Antagomir®-21 , Alnylam). Die An- tagomir® Sequenzen wurden als revers komplementäre Oligonukleotide, wie in der Literatur beschrieben, synthetisiert, wobei Antagomir®-181 a zusätzlich mit Cy3 farbmarkiert war (Krutzfeldt et al., 2005).
Die Behandlung wurde 24 h nach der operativen Verkleinerung des Aortendurchmessers (aortic banding) begonnen. Es wurden dann jeweils morgens 80 mg/kg/d für 3 Tage 1x pro Tag intravenös appliziert. Nach Injektion eines Cy-3 markierten Antagomir® wurde nach 3 h das Herz entnommen und die kardiale Aufnahme des C3-markierten Antagomir® mittels Immunfluoreszenz analysiert. Es konnte eine starke Aufnahme des Antagomir® in das Herz nachgewiesen werden (Abb. 7E). Echtzeit (real-time) PCR Analysen zeigten überraschenderweise noch nach 3 Wochen eine starke Repression der kardialen miR-21 -Expression nach anfänglich 3- tägiger Antagomir®-21 -Behandlung (Abb. 7F). Diese Behandlung führte neben der Repression der kardialen miR-21 -Expression zu einem Anstieg der SPRY1 Proteinexpression nach aortic banding-Operation (Abb. 7C). Der nach aortic banding beobachtete Anstieg der Expression von phospho-ERK1/2 wurde durch die 3- tägige Antagomir®-21 -Behandlung komplett verhindert (Abb. 7D). Das auf das Körpergewicht normalisierte Herzgewicht stieg 3 Wochen nach aortic banding signifikant an und wurde aber durch die Antagomir®-21 Behandlung vollständig normalisiert (Abb. 7G). Die Zunahme der Myozytengröße in Schnitten des Herzens 3 Wochen nach aortic banding-Operation konnte durch Antagomir®-21 -Behandlung komplett gehemmt werden (Abb. 8A). Eine Antagomir®-21 -Behandlung in Sham- operierten Mäusen führte nicht zu einer Veränderung des Herzgewichts oder der Myozytengröße (Abb. 7G, 8A). Die Herzfunktion wurde mittels Echokardiographie und Katheter-basierten Volumen/Druckmessungen analysiert. Sowohl der links- ventrikuläre end-systolische und end-diastolische Diameter erhöhte sich 3 Wochen nach aortic banding, wohingegen das Fractional Shorting (ein Maß für die Herzfunktion) deutlich eingeschränkt war (Abb. 8B). Die durch aortic banding hervorgerufene Druckbelastung des linken Ventrikels führte zu einem messbaren Anstieg des linksventrikulären end-diastolischen Druckes (LVEDp; 2,8±1 ,3 mmHg (Sham) versus 7,2±1 ,7mmHg (aortic banding); p=0.09) und zu einer reduzierten kardialen Ejektionsfraktion (55,9%±8,0% (Sham) versus 24,7%±5,6% (aortic banding); p<0.05). Die Antagomir®-21 -Behandlung nach aortic banding verhinderte überraschend die linksventrikuläre Dilatation und normalisierte das Fractional Shortening (Abb. 8B). Ebenfalls waren nach Antagomir®-21 -Behandlung die Ejektionsfraktion verbessert und der linksventrikuläre end-diastolische Druck normalisiert (EF: 50,1 %±13,1%; LVEDp: 2,4±1 ,5 mmHg). Ausführungsbeispiele am Menschen - Therapie
Eine Modulation von miRNAs im kardiovaskulären System könnte auch beim Menschen zur Verhinderung von oder als Therapie für kardiovaskuläre Erkrankungen, wie Herzhypertrophie, Herzinsuffizienz oder Myokardinfarkt erfolgreich genutzt werden. Substanzen, welche die miRNA-Expression im kardiovaskulären System erhöhen oder verhindern können über verschiedene Wege appliziert werden wie beispielsweise intravenös, intraarteriell, intrakardial über Katheter oder während einer Operation am offenen Herzen, subkutan, transdermal, inhalativ, oral, rektal, etc. Die Therapie könnte bei Patienten mit Herzhypertrophie, nach Myokardinfarkt oder bei Patienten mit akuter oder chronischer Herzinsuffizienz oder koronarer Herzerkrankung durchgeführt werden. In Anbetracht der bisherigen experimentellen in vitro und Tierstudien der Erfinder scheint die Verhinderung der Expression von miR-21 , miR-129 und miR-212 erfolgversprechend als kausaler therapeutischer Ansatz zur Verhinderung verschiedener kardiovaskulärer Erkrankungen.
Ausführungsbeispiele am Menschen - Diagnose
Die Daten belegen, dass eine Änderung der kardialen Expression von verschiedenen miRNAs der Entwicklung einer Herzerkrankung, insbesondere Herzhypertrophie und Herzinsuffizienz, vorausgeht. Um die Expression von miRNAs im Herzen von Patienten zu bestimmen, kann eine Myokardbiopsie entnommen werden. Hieraus kann die miRNA isoliert und die Expressionsstärke bestimmt werden. Eine Erhöhung einzelner miRNAs oder deren Kombination, insbesondere miR-21 (SEQ ID NR: 14), miR-129, miR-212 (SEQ ID NR: 10), miR-214 (SEQ ID NR: 11 ), miR- 134 (SEQ ID NR: 5) kann zur Diagnosestellung eines erhöhten Risikos der Entwicklung oder bereits des Vorliegens einer Herzhypertrophie und/oder Herzinsuffizienz genutzt werden. Eine Herunterregulation der miR-182 (SEQ ID NR: 20) oder miR-290 (SEQ ID NR: 24) oder deren Kombination kann zur Diagnosestellung eines erhöhten Risikos der Entwicklung oder bereits des Vorliegens einer Herzhypertrophie und/oder Herzinsuffizienz genutzt werden. Ebenso kann die Kombination einer erhöhten Expression von miR-21 (SEQ ID NR: 14), miR-129, miR-212 (SEQ ID NR: 10), miR-214 (SEQ ID NR: 11 ), miR-134 (SEQ ID NR: 5) mit einer erniedrigten Expression von miR-182 (SEQ ID NR: 20) oder miR-290 (SEQ ID NR: 24) zur Diagnosestellung eines erhöhten Risikos der Entwicklung oder bereits des Vorliegens einer Herzhypertrophie und/oder Herzinsuffizienz genutzt werden. Die Expressionsstärke der jeweiligen miRNAs kann entweder über Microarray- Analysen, RT-PCR, Northern Blotting, oder andere geeignete Verfahren erfolgen.
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Claims

Patentansprüche
1. SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Diagnose, Prophylaxe und/oder Therapie von Herzerkrankungen.
2. Verwendung von SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Herstellung eines Arzneimittels zur Prophylaxe und/oder Therapie von Herzerkrankungen.
3. Verwendung von SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Diagnose von Herzerkrankungen.
4. Verwendung nach Anspruch 2 oder 3, wobei die Herzerkrankung Myokardinfarkt, Herzinsuffizienz, chronische Herzinsuffizienz und/oder Herzhypertrophie ist.
5. Verfahren zur Diagnose einer Herzerkrankung, wobei das Verfahren die Schritte umfasst:
(a) Bereitstellen einer Probe eines Individuums, das unter dem Verdacht einer Herzerkrankung steht;
(b) Messen der Expressionsmenge von mindestens einer Sequenz ausgewählt unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 in der Probe; wobei eine erhöhte oder verringerte Expressionsmenge mindestens einer Sequenz ausgewählt unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 gegenüber einer Kontrollprobe eine Herzerkrankung oder eine Prädisposition für eine Herzerkrankung anzeigt.
6. Verfahren nach Anspruch 5, wobei die Sequenz SEQ ID NR: 5 (miR-134), SEQ ID NR: 10 (miR-212), SEQ ID NR: 11 (miR-214), SEQ ID NR: 14 (miR- 21 ), miR-129 (SEQ ID NR: 16), SEQ ID NR: 20 (miR-182) und/oder SEQ ID NR: 24 (miR-290) ist.
7. Kit umfassend mindestens eine Sequenz ausgewählt unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 zur Diagnose von Herzerkrankungen.
8. Expressionsvektor umfassend mindestens eine Sequenz ausgewählt unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29.
9. Zelle umfassend mindestens einen Expressionsvektor nach Anspruch 8.
10. Verfahren zum Modulieren einer Herzerkrankung umfassend das Modulieren der Expression oder Aktivität mindestens einer Sequenz, die ausgewählt ist unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 in einer Zelle.
11. Verfahren zum Screenen einer pharmazeutisch aktiven Verbindung zur Behandlung und/oder Prophylaxe einer Herzerkrankung, wobei das Verfahren die Schritte umfasst:
(a) Bereitstellen einer Zelle nach Anspruch 9,
(b) In Kontakt bringen eines Kandidaten einer pharmazeutisch aktiven Verbindung mit der Zelle,
(c) Bestimmen der Wirkung des Kandidaten auf die Expression einer Sequenz, die ausgewählt ist unter SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29, wobei eine Veränderung der Expression mindestens einer Sequenz von SEQ ID NR: 1 bis SEQ ID NR: 29 eine pharmazeutisch aktive Verbindung anzeigt.
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