WO2006045916A2 - Preparation de silicones et silanes fonctionnalises via une catalyse enzymatique - Google Patents

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silane
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Mirjana Gelo-Pujic
Fabien BARBIRATO
Isabelle DUPRET
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Rhodia Chimie SAS
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    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
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    • C08G77/00—Macromolecular compounds obtained by reactions forming a linkage containing silicon with or without sulfur, nitrogen, oxygen or carbon in the main chain of the macromolecule
    • C08G77/04—Polysiloxanes
    • C08G77/38—Polysiloxanes modified by chemical after-treatment
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C08G77/06—Preparatory processes
    • C08G77/08—Preparatory processes characterised by the catalysts used

Definitions

  • the field of the invention is that of silicones, namely (poly) organosiloxanes, functionalized in particular by unsaturated carboxylic acid ester groups such as (meth) acrylate functions.
  • (meth) acrylates corresponds to the methacrylate or acrylate ester.
  • the functionalization of the polyorganosiloxanes by (meth) acrylate groups is a reaction which arouses great interest because it not only gives access to other functionalities by chemical post-treatment, but also makes it possible to obtain polyorganosiloxanes having faster crosslinking than commercially available vinyl organopolysiloxanes.
  • (Meth) acrylates are able to react rapidly together, by radical means under actinic and / or thermal activation, according to a polyaddition polymerization mechanism.
  • acrylate or methacrylate functional polyorganosiloxanes are generally in the form of polydiorganosiloxane oils and may be formulated alone or in combination with unsaturated monomers or polymers, to be subsequently crosslinked under UV radiation, for example.
  • patent application FR-A-2,377,430 describes acrylate silicones obtained by addition of hydroxyalkyl acrylate grafts on silicones with chlorosiloxane functions.
  • These acrylate and / or methacrylate functional polyorganosiloxanes thus comprise functional grafts connected to the silicone chain by means of bonds Si-O.
  • bonds Si-O bonds
  • US-A-5,981,679 discloses polyorganosiloxanes having at both ends (meth) acryloyl groups.
  • the starting products used are ⁇ , ⁇ -hydrogenodimethylsiloxy-polyorganosiloxanes, which are reacted by hydrosilylation on one of the double bonds of (meth) acrylate compounds each comprising at least two (meth) acryloyl groups, preferably three.
  • this hydrosilylation is carried out in the presence of a metal catalyst, preferably based on platinum.
  • the SiH-patterned polyorganosiloxane is preferably an ⁇ , ⁇ -diethoxyhydrogenosiloxy polydimethylsiloxane obtained from an ⁇ , ⁇ -diol polydimethyl siloxane which is condensed with triethoxysilane.
  • the problem with this hydrosilylation modified triacrylate (trimethylolpropane type or propyleneoxide triacrylate "ARONIX M-310 ®"), according to US-A-5,981,679 is that it generates 50% of polyorganosiloxanes bearing functionalised grafts acrylates and linked to the silicone chain by stable SiC bonds, but also 50% silicone-bound polyacrylate grafts by an easily hydrolysable Si-OC bridge.
  • the direct hydrosilylation of polyacrylates by polyorganosiloxanes with an SiH unit in and / or at the end of the chain may involve, for example, 1,6-hexanedioldiacrylate, trimethylolpropane triacrylate, triethylene glycol diacrylate or neopentylglycol. diacrylate, or else tripropylene glycol-diacrylate and finally bisphenol ethoxylated diacrylate.
  • French Patent Application FR-A-2,634,769 describes a thioalkyl acrylate-functional diorganopolysiloxane obtained by reacting a vinyl-containing polyorganosiloxane, for example an ⁇ , ⁇ -dimethylvinylsiloxy linear polydimethylsiloxane, with a mercaptoalkanol which reacts with the vinyl functional groups via thiol groups, so as to produce an ⁇ , ⁇ -thioalkylhydroxylated polydimethylsiloxane.
  • This alcohol is able to react with acrylic acid by esterification.
  • the Japanese patent application JP-200 098 602 of 7/04/2000 for its part relates in a completely different way the reaction of diethanolamine with acrylic acid to obtain an acrylic aminoester.
  • chromium catalysis has the drawback of the toxic nature of chromium itself.
  • Another disadvantage of chromium catalysis is related to the fact that the elimination of chromium is very difficult. This results in a residual color of the compounds obtained, which is unacceptable.
  • the European patent EP-BO 291 452 describes polyorganosiloxanes carrying at each end of two acrylate or methacrylate functional groups, obtained from a polyorganosiloxane with terminal motifs ⁇ SiH that is reacted with an alkenyl epoxide. The polyorganosiloxane thus epoxidized at its ends is then brought into contact with an aqueous or methanolic base such as NaOH. This polyorganosiloxane is then reacted with a derivative of acrylic or methacrylic acid for introducing an acrylate group.
  • These acrylate silicones result from the hydrosilylation of allyl glycidyl ether (AGE) and a vinylcyclohexene epoxide (VCMX) in the presence of a platinum catalyst on an SiH functional polyorganosiloxane.
  • the graft polyorganosiloxane thus obtained is reacted with (meth) acrylic acid and or (meth) acrylic acid anhydride.
  • the reaction is catalyzed by diazabicyclo (2,2,2) octane.
  • This acrylate or methacrylate function grafting via a first epoxy functionalization, intervenes as well on Si-H units located in the chain as on terminal Si-H units.
  • one of the essential objectives of the present invention is to provide new perspectives for the use of silanes / epoxy silicones, in particular for those whose ball joint between the epoxy function and the silicone chain is short (number of atoms composing the patella less than 10).
  • Another essential objective of the present invention is to propose a novel process for producing a functionalized polyorganosiloxane or silane, in particular by acrylate and / or methacrylate functional groups carried by groups linked to the polysiloxane chain or silane via an Si bond.
  • -C which does not have the disadvantages of known methods.
  • Another essential objective of the present invention is to provide a new process for producing functionalized silicones or silanes, in particular (meth) acrylate, which makes it possible to obtain good yields without resorting to ecotoxic compounds such as chromium for example and without producing salts.
  • the present invention which relates to a new process for preparing a monomer, oligomer, polymer or copolymer of an organosiloxane or functionalized silane (A) comprising the following steps: a) reacting at least one monomer, an oligomer, a polymer or a copolymer of an organosiloxane or a silane (B) bearing at least one reactive group (Y) comprising at least one epoxy function (Ep) with at least one nucleophile carrying at least one function
  • the reaction of step a) is carried out at a temperature T1 of between 20 and 100 ° C. and preferably between 30 and 80 ° C.
  • polymerization inhibitors examples include hydroquinone and hydroquinone monomethylether (MEHQ). Hydroquinone is particularly preferred.
  • the reactive group (Y) comprising at least one epoxy function (Ep) is connected to a silicon atom.
  • nucleophiles carrying at least one functional group that are useful according to the invention, mention may be made of those carrying acid functions, acid anhydrides, amides and / or esters.
  • the function (Nu) capable of reacting with the epoxy function (Ep) is a -COOH function.
  • the function (Nu) capable of reacting with the epoxy function (Ep) is a -COOR function, with R being a linear C 1 -C 12 alkyl, branched C 1 -C 12 or cyclic C 5 -C 10 .
  • nucleophile carrying at least one functional group (Nu) from the group consisting of: acrylic acid, methacrylic acid, (meth) acrylic anhydride, benzoic acid diacids such as terephthalic acid or adipic acid, fatty acids such as lauric acid, stearic acid or palmitic acid, uronic acids such as glucuronic acid or galacturonic acid, amino acids such as aspartic acid and mixtures thereof.
  • nucleophile from the group consisting of acrylic acid, methacrylic acid and mixtures thereof.
  • the enzyme used according to the invention is a lipase of class EC 3.1.1.3 or EC 3.1.1.13 and preferably a lipase of the genera Alcaligenes, Pseudomenas Rhizopus Burkholderia or Aspergillus.
  • the genus Alcaligenes spp, of the family Alcaligenacae includes several species, such as for example: Alcaligenes aestus, Alcaligenes aquamarinus, Alcaligenes Alcaligenes eufrophus, Alcaligenes faecalis, Alcaligenes denitrificans, Alcaligenes eutrophus, Alcaligenes faecalis, Alcaligenes laius, Alcaligenes pacificus, Alcaligenes paradoxus, Alcaligenes piechaudii, Alcaligenes ruhlandii, Alcaligenes venustus, Alcaligenes xylosoxidans.
  • the lipases of the invention can be obtained for example from culture of the genera Alcaligenes, Pseudomonas, Rhizopus Burkholderia, Candida or Aspergillus.
  • the culture conditions may vary depending on the type of strains used. It is recommended to choose these conditions in order to produce lipases in the most advantageous way possible.
  • the culture temperature is generally between 5 and 80 ° C.
  • the culture period is generally between 1 and 10 days.
  • the recovery of lipases can be carried out in various ways well known to those skilled in the art. It is for example possible to separate the bacteria and the culture medium, in particular by centrifugation or filtration, and then carry out a purification of the lipases.
  • the purification of lipases can be carried out by precipitation, lyophilization, ion exchange chromatography, immunoaffinity using specific mono- or polyclonal antibodies, and / or dialysis.
  • the lipases can also be recovered by destroying the bacteria, for example by sonication and recovery of the ground material, or by enzymatic lysis of the cell walls.
  • the lipases of the invention can be purified, for example to the genus Alcaligenes from strains 1 Alcaligenes spp by addition of salts, using for example ammonium sulphate, passage through an ion exchange chromatography and then gel filtration.
  • lipases for example: the lipase PL of the strain of Alcaligenes sp (supplied by the company Meito Sangyo), the lipase
  • the lipase F-AP 15 of the Rhizopus oryzae strain supplied by the company by Amano-Enzyme Inc.
  • the CE lipase Choesterol Esterase
  • the strain Pseudomonas sp supplied by the company Amano-Enzyme Inc
  • Burkholderia cepacia strain AH lipase supplied by Amano-Enzyme Inc.
  • Aspergillus niger lipase AS supplied by Amano-Enzyme Inc.
  • the EC 3.1.1.3 or EC 3.1.1.13 classes are particularly preferred, for example the PL lipase of the strain of Alcaligenes sp (supplied by the company Meito Sangyo), the lipase PL in its form.
  • PLC lipase supplied by the company Meito Sangyo
  • PLAG lipase supplied by the company Meito Sangyo
  • IM TL lipase of the strain Pseudomonas stutzeri supplied by the company Meito Sangyo
  • the lipase QLM of the strain Alcaligenes sp the lipase QLM of the strain Alcaligenes sp.
  • lipase F-AP 15 of the strain Rhizopus oryzae supplied by the company Amano-Enzyme Inc-Enzyme Inc.
  • lipase CE Choesterol Esterase
  • Pseudomonas sp supplied by Amano-Enzyme Inc.
  • Burkholderia cepacia strain AH lipase supplied by Amano-Enzyme Inc.
  • Aspergillus niger lipase AS supplied by Amano-Enzyme Inc.
  • 3.1.1.13 used according to the invention make it possible to obtain a degree of conversion ( ⁇ -i) of opening of the epoxy functions (Ep) of the compound (B) of greater than or equal to 10%, preferably greater than 30% and even more more preferably greater than 40%.
  • the proportion of the enzyme catalyzing the nucleophilic opening of epoxy function (s) is between 0.5 and 10% by weight and preferably between 2 and 5%. by weight relative to the weight of the compound of formula (B).
  • the following test may be carried out: a) the reaction is carried out in a reactor of 100 m L 1 optionally in the presence of a solvent such as methyl isobutyl ketone or methyl ethyl ketone, at least a monomer, an oligomer, a polymer or a copolymer of an organosiloxane or a silane (B) carrying at least one reactive group (Y) comprising at least one epoxy functional group (Ep) with the nucleophile carrying from minus a function (Nu) capable of reacting with the epoxy function (Ep) in the presence of the enzyme to be tested while keeping the temperature of the reaction medium T1 constant between 20 and 100 ° C.
  • a solvent such as methyl isobutyl ketone or methyl ethyl ketone
  • the degree of conversion (O 1 ) of opening of the epoxy functional groups is measured, for example, by integration of the signal Rmn of the proton -CH- of the epoxy ring :
  • ( ⁇ -i) [(% signal area at t 0 -% signal area after a reaction time ( ⁇ t)) /% signal area at t 0 ] x 100 and c) the transformation rate must be greater than 10%, preferably greater than 20% and even more preferably greater than 40%.
  • the lipases used according to the method of the invention have an amino acid sequence having a percentage of homology greater than or equal to 80%, in particular 90%, preferably 95, more preferably 100% with the acid sequence.
  • amines of the lipase PL of the strain of Alcaligenes sp the protein having an activity in the opening reaction of an epoxy function by a nucleophile.
  • the lipases used according to the invention may originate from nucleotide sequences having a homology percentage greater than or equal to 80%, in particular 90%, preferably 95, more preferably 100%, with the nucleotide sequence of the lipase PL gene of the strain.
  • Alcaligenes sp the lipase obtained having an activity in the opening reaction by a nucleophile of an epoxy function carried by a silane, an organosiloxane or a polyorganosiloxane.
  • homology refers to the perfect similarity or identity between the compared amino acids but also to the non-perfect resemblance that is termed similarity.
  • the amino acid sequences may differ from the reference sequence by substitution, deletion and / or insertion of one or more amino acids, preferably a reduced number of amino acids, in particular by substitution of natural amino acids. by non-natural amino acids or pseudo-amino acids, at positions such that these modifications do not significantly affect the biological activity of the protein. Homology is generally determined using sequence analysis software (eg, Sequence Analysis Software Package of the Genetics Computer Group, University of Wisconsin Biotechnology Center, 1710 University Avenue, Madison, WI 53705, or BLAST software of the National Center. for Biotechnology Information, US National Library of Medicine, 8600 Rockville Pike Bethesda, MD 20894).
  • sequence analysis software eg, Sequence Analysis Software Package of the Genetics Computer Group, University of Wisconsin Biotechnology Center, 1710 University Avenue, Madison, WI 53705, or BLAST software of the National Center. for Biotechnology Information, US National
  • the amino acid sequences of natural, synthetic, chimeric and / or recombinant synthetic lipases may be of the same length as the reference sequences. It is understood that according to the invention the lipases of class EC 3.1.1.3 can originate from the bacteria of the genera Alcaligenes, Pseudomonas, Rhizopus, Burkholderia or Aspergillus. However, for example in the context of industrial process for manufacturing these lipases, it is possible that these are produced by host cells or by chemical processes.
  • the lipase may be immobilized on a suitable solid or non-immobilized support.
  • the solid support may be chosen from the group consisting of: diethylaminoethylcellulose
  • DEAE-cellulose diethylaminoethylsepharose
  • DAO-Sepharose diethylaminoethylsepharose
  • diatom silica
  • alumina alginate beads
  • alginate beads polypropylene ceramic particles and mixtures thereof.
  • the isolated lipase can be used directly in the reaction medium or in organic solvents.
  • the organic solvent may be an aliphatic, cyclic or aromatic hydrocarbon compound and / or ketone.
  • the organic solvent is preferably selected from the group comprising: methyl ethyl ketone and methyl isobutyl ketone.
  • the enzymatic catalysis reaction of step a) is preferably carried out at a temperature of between 20 and 100 ° C. and preferably between 30 and 80 ° C.
  • a person skilled in the art is perfectly able to easily determine the optimal duration conditions for a given substrate. This can be done by carrying out regular samples of the reaction medium on which the conversion rate is evaluated.
  • immobilized enzymes lies essentially in the possibility of recovering them without difficulty from the medium in which they have been implemented and in which the enzyme itself develops its activities for which it is conventionally used, to purify them in as needed and to put them to work in another environment.
  • the silicone (B) bearing at least one reactive group (Y) comprising at least one epoxy functional group (Ep) useful according to the invention is a monomer, an oligomer, a polymer or an essentially linear copolymer bearing units of formulas:
  • radicals R 2 are identical or different from each other and each represents an alkyl, an aryl or an arylalkyl; preferably linear or branched C 1 -C 10 alkyl or phenyl;
  • the radical (Y) is a reactive group comprising at least one epoxy function (Ep); • a and b are chosen so that:
  • 0 ⁇ a + b preferably 0 ⁇ a + b ⁇ 500, and even more preferably 10 ⁇ a + b ⁇ 200 and even more preferably 50 ⁇ a + b ⁇ 150;
  • organosiloxane (B) it is preferably linear and of formula (V):
  • radicals R 1 are identical or different from each other and each represents an alkyl, an aryl, an arylalkyl or the radical (Y); preferably a C 1 -C 0 linear or branched or phenyl;
  • radicals R 2 are identical or different from each other and each represents an alkyl, an aryl or an arylalkyl; preferably linear or branched C 1 -C 10 alkyl or phenyl;
  • the radical R 3 represents an alkyl, an aryl, an arylalkyl or the radical (Y); preferably linear or branched C 1 -C 10 alkyl or phenyl;
  • the radical (Y) is a reactive group comprising at least one epoxy function (Ep); • a and b are chosen so that:
  • B can be equal to 0 and in this case at least one of the radicals R 1 or R 2 represents the radical (Y).
  • radicals R 3 since they are different from the radical (Y), independently respond to the same definition as that given above for R 2 and R 1 .
  • the reactive groups (Y) comprising at least one epoxy function (Ep) are preferably in the chain and optionally on at least one of the terminal Si of the formula (V).
  • silane (B) carrying an epoxy functional group As an example of a silane (B) carrying an epoxy functional group, mention may be made of 3-glycidoxypropylt ⁇ methoxysilane (GLYMO), 3,4-epoxycyclohexylethyltrimethoxysilane and those described in the book “Chemistry and Technology of Silicones", Walter NoII, published by Académie. Press Inc, 1968, at page 173.
  • GLYMO 3-glycidoxypropylt ⁇ methoxysilane
  • 3,4-epoxycyclohexylethyltrimethoxysilane those described in the book "Chemistry and Technology of Silicones", Walter NoII, published by Académie. Press Inc, 1968, at page 173.
  • the reactive group (Y) comprising at least one epoxy function (Ep) is selected from the group consisting of the following radicals (1) to (10):
  • the radical (Y) is the following unit (11):
  • the polyorganosiloxanes (B) may be oils with a dynamic viscosity at 25 ° C. of the order of 10 to 10,000 mPa.s, generally of the order of 50 to 5,000 mPa.s, and even more preferably of 100 to 600 mPa.s, or gums having a molecular mass of the order of 1x10 6 g.
  • the dynamic viscosity at 25 ° C. of all the silicones considered in the present disclosure can be measured using a BROOKFIELD viscometer, according to the AFNOR NFT 76 102 standard of February 1972.
  • the polyorganosiloxanes B used contain from 1 to 10 epoxyfunctional groups per macromolecular chain. For an epoxyfunctional group this corresponds to epoxide levels ranging from 20 to 2000 meq. molar / 100 g of polyorganosiloxane.
  • the polyorganosiloxanes B may be dynamic viscosity oils at 25 0 C 1 of the order of 10 to 10 OOO mPa.s at 25 ° C, generally of the order of 20 to 5000 mPa.s at 25 ° C and , more more preferably, from 20 to 600 mPa.s at 25 ° C, or gums having a molecular weight of about 1,000,000.
  • cyclic polyorganosiloxanes B these consist of units which may be, for example, of the dialkylsiloxy or alkylarylsiloxy type. These cyclic polyorganosiloxanes have a viscosity of the order of 1 to 5,000 mPa.s at 25 ° C.
  • the epoxy functional organosiloxanes or polyorganosiloxanes B may be prepared by hydrosilylation reaction between Si-H units and epoxyfunctional compounds such as, for example, 4-vinylcyclohexeneoxide or allylglycidylether. Obtaining such organosiloxanes or epoxy functionalized silanes is perfectly within the reach of a person skilled in the art of silicone chemistry.
  • the subject of the invention is a composition comprising the mixture of:
  • - optionally at least one solvent, preferably a solvent selected from the group consisting of: methyl isobutyl ketone, methyl ethyl ketone and mixtures thereof; and
  • a polymerization inhibitor preferably hydroquinone.
  • the subject of the invention is the use of the monomer, oligomer, polymer, organosiloxane copolymer or functionalized silane (A) obtained by the process as defined above as a main or secondary constituent in useful compositions. for cosmetics, pharmacy, personal care, home care and the preparation of paper non-stick coatings.
  • A functionalized silane
  • the silicone substrates used are oils functionalized with allyl glycidyl ether.
  • the intended reaction is nucleophilic addition to the epoxy function by enzymatically catalyzed acrylic acid.
  • the expected structures for the functionalized polyorganosiloxane (A) are therefore as follows:
  • the reaction is monitored by 1 H NMR.
  • the sample is first filtered through a 0.2 ⁇ m microfilter and then dissolved in CDCl 3 . Spectrum acquisition is performed on a 300 MHz Br ⁇ cker device at room temperature.
  • the conversion rate (TT) is calculated from the peak integrals of the epoxy CH at about 3.1 ppm (which decreases during the reaction) and the CH 2 at silicon alpha at 0.41 ppm (which remains constant during the reaction). the reaction).
  • the final product is characterized by 1 H NMR after evaporation of the excess of acrylic acid.
  • the flask is heated to 70 ° C .; 1600 g of a silicone oil of structure MD 110 D 5 M (1.002 equivalent of SiH) are cast at a rate of 8.2 g / min.
  • conversion rate of the SiH functions 100%).
  • the medium is treated with black 2S for 2h at 80 ° C., followed by filtration and distillation without column and under vacuum (1 mm Hg, 3h at 130 ° C.).
  • This silicone oil has reactive functions (here epoxy) connected to the siloxane chain by a -CH 2 -CH 2 -CH 2 -O- patella. It follows that the length of this patella is therefore much lower than a polyoxyethylene ball (Poe) and therefore has reactive groups a priori difficult to access for enzymatic catalysis because of an adverse steric environment.
  • Re epoxy polyoxyethylene ball
  • the screening type tests are carried out in a carousel accepting 12 test tubes.
  • the reaction volume is about 11 ml, the temperature is regulated to the desired value.
  • the stirring is done by magnetic bar. Operating conditions:
  • Enzyme to be tested 0.25 g
  • Duration from 4 to 6 days; temperature 60 ° C;
  • Methyl isobutyl ketone 3.5 ml.
  • Epoxy silicones (MD 5 D 110 epoxy M): 7 g.
  • reaction medium is stirred at 700 rpm for 7 days and samples are taken regularly and analyzed by 1 H NMR. After reaction, the medium is filtered in order to separate the solid catalyst from the liquid reagents and is then subjected to a rotavapor distillation twice. at 70 0 C at 7 mb at 110 rpm to remove excess acrylic acid. '
  • lipase QLM lipase QLM
  • lipase TL IM lipase TL IM
  • Example 3 In test No. 3, the conditions of Example 3 are reproduced, but 9.2 g of an organosiloxane monomer (B) of formula MD epoxy M (ie 0.028 epoxy equivalent) are introduced in place of the ® silicone oil Di inhabitcxy 5 10 M. the molar ratios are identical, the missing volume being replaced with methyl isobutyl ketone (MIBK).
  • MIBK methyl isobutyl ketone
  • the enzyme used is PL lipase.
  • This test (referenced G-4) was conducted in parallel with a standard test with lipase PL (referenced H-4). The results are shown in Table III below.
  • Table III Reactor Testing RPAS 100 ml: grafting kinetics in comparison to an epoxy monomer compound and the polyorganosiloxane M MD MD 5 D 110 epoxy M.

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Abstract

Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) comprenant les étapes suivantes: a) on fait réagir au moins un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou d'un silane (B) porteur d'au moins un groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) avec un nucléophile porteur d'au moins une fonction (Nu) susceptible de réagir avec une fonction époxy (Ep) en présence d'au moins une enzyme catalysant l'ouverture nucléophile de fonction(s) époxy(s) et éventuellement en présence d'un inhibiteur de polymérisation ; et b) on isole le produit (A).

Description

PREPARATION DE SILICONES ET SILANES FONCTIONNALISES VIA UNE CATALYSE ENZYMATIQUE.
Le domaine de l'invention est celui des silicones, à savoir les (poly)organosiloxanes, fonctionnalisés en particulier par des groupements esters d'acide carboxylique insaturé telle que les fonctions (méth)acrylates. L'expression « (méth)acrylates » correspond à l'ester méthacrylate ou acrylate.
La fonctionnalisation des polyorganosiloxanes par des groupements (méth)acrylates, est une réaction qui suscite un grand intérêt car non seulement elle donne accès à d'autres fonctionnalités par post-traitement chimique, mais aussi elle permet d'obtenir des polyorganosiloxanes présentant des vitesses de réticulations plus rapides que les organopolysiloxanes vinylés disponibles dans le commerce.
Ces fonctionnalités, en particulier (méth)acrylates sont incluses dans des radicaux liés à la chaîne (poly)siloxane par une liaison Si-C. De tels radicaux fonctionnels sont classiquement apportés par greffage sur le squelette silicone en bout(s) et/ou dans la chaîne. Les fonctions
(méth)acrylates sont aptes à réagir rapidement ensemble, par voie radicalaire sous activation actinique et/ou thermique, selon un mécanisme de polymérisation par polyaddition.
Cette aptitude à la polymérisation rapide des fonctions acrylates est exploitée par exemple pour la réalisation de revêtements anti-adhérents en élastomère silicone réticulé, pour support papier (par exemple de type étiquette). CeEe aptitude à la réticulation des polysiloxanes à fonctions ester acide acrylique permet leur utilisation comme liants dans des encres de l'imprimerie. Ce type de silicone trouve aussi une utilisation dans la préparation de compositions liantes filmogènes dans des secteurs variés tels que la cosmétique, le soin personnel (« personal care ») et le soin ménager (« home care »).
Ces polyorganosiloxanes à fonctions acrylate ou méthacrylate se présentent généralement sous forme d'huiles polydiorganosiloxanes et peuvent être formulés seuls ou en combinaison avec des monomères ou des polymères insaturés, pour être par la suite réticulés sous rayonnement UV par exemple.
La préparation de ces polyorganosiloxanes porteurs de greffons fonctionnalisés acrylate peut s'envisager de différentes manières, qui ont été décrites dans l'art antérieur.
Ainsi, la demande de brevet FR-A-2 377 430 décrit des silicones acrylates obtenus par addition de greffons hydroxyalkyl-acrylate sur des silicones à fonctions chlorosiloxanes. Ces polyorganosiloxanes à fonctions acrylates et/ou méthacrylate comprennent donc des greffons fonctionnels reliés à la chaîne silicone par des liaisons Si-O. Or, on sait que de telles liaisons peuvent être aisément hydrolysées. Il s'agit là d'un inconvénient rédhibitoire.
Le brevet US-A-6 211 322 (= EP-A-O 940 458 et EP-A-O 940 422) décrit des polyorganosiloxanes comprenant des groupements (méth)acrylate, obtenus à partir de polyorganosiloxane à motifs Si-H, que l'on fait réagir avec un alcényléther polyhydroxylé de formule :
Figure imgf000004_0001
en présence de catalyseurs au platine ou au rhodium, avec R3 = radical alkyle en CrCi0. Le silicone porteur d'un greffon éther polyhydroxylé ainsi obtenu est ensuite soumis à une estérification avec de l'acide (méth)acrylique et éventuellement avec un acide monocarboxylique exempt de double liaison. Cette fonctionnalisation par un acrylate de ce polyhydroxy-alkylsiloxane est catalysée par de l'acide triflique. L'un des inconvénients de ce procédé de préparation est lié au fait que l'alcényléther polyhydroxylé mis en oeuvre n'est pas un produit commercial facilement accessible. Cela impose de le synthétiser, d'où une charge opératoire et économique très lourde. De plus, le fait de faire réagir un allyloxypolyol avec un polyorganosiloxane à motif Si-H, en présence d'un catalyseur au platine, comme proposé dans ce brevet, peut engendrer des réactions secondaires indésirables, avec notamment apparition de propène, à moins que l'hydrure de silicium contienne des groupements donneurs d'électrons tels que des atomes de chlore ou des groupements carbonyles. On peut se rapporter à ce sujet aux brevets américains US-A-4 503 208 et US-A-3 767 690. Un autre inconvénient est que les allyloxypolyols que l'on hydrosilyle conformément au brevet US-A-6 211 322, peuvent être sujets à de réactions d'isomérisation. Une telle instabilité est tout à fait dommageable pour le procédé de préparation de silicones acrylate par cette voie.
Le brevet US-A-5 981 679 décrit des polyorganosiloxanes porteurs à leurs deux extrémités de groupements (méth)acryloyles. Pour obtenir ces silicones α,ω-bis acrylates, les produits de départ mis en oeuvre sont des α,ω-hydrogénodiméthylsiloxy-polyorganosiloxanes, lesquels sont mis à réagir par hydrosilylation sur l'une des doubles liaisons de composés (méth)acrylates comportant chacun au moins deux groupements (méth)acryloyles, de préférence trois. Classiquement, cette hydrosilylation est réalisée en présence d'un catalyseur métallique, de préférence à base de platine. Le polyorganosiloxanes à motif SiH est de préférence un polydiméthylsiloxane α,ω-diéthoxyhydrogénosiloxy obtenu à partir d'un polydiméthyl siloxane α,ω- diol que l'on condense avec du triéthoxysilane. Le problème avec cette hydrosilylation de triacrylate modifié (du type triméthylolpropane, propylèneoxyde ou triacrylate "ARONIX M-310®"), selon le brevet US-A-5 981 679 est qu'elle génère 50% de polyorganosiloxanes porteurs de greffons fonctionnalisés acrylates et liés à la chaîne silicone par des liaisons SiC stables, mais également 50% de greffons polyacrylates reliés au silicone par un pont Si-O-C facilement hydrolysable. L'hydrosilylation directe de polyacrylates par des polyorganosiloxane à motif SiH dans et/ou en bout de chaîne, peut faire intervenir par exemple le 1 ,6-hexanedioldiacrylate, le triméthylolpropane-triacrylate, le triéthylène-glycol-diacrylate, le néopentyl-glycol-diacrylate, ou bien encore le tripropylèneglycol-diacrylate et enfin le bisphénoléthoxylé-diacrylate.
La demande de brevet français FR-A-2 634 769 décrit un diorganopolysiloxane à fonction thioalkylacrylate obtenu en faisant réagir un polyorganosiloxane vinylé par exemple un polydiméthylsiloxane linéaire α,ω-diméthylvinylsiloxy, avec un mercaptoalcanol qui réagit avec les fonctions vinyles par l'intermédiaire des groupements thiols, de manière à produire un polydiméthylsiloxane α,ω-thioalkylhydroxylé. Cet alcool est apte à réagir avec l'acide acrylique par estérification. La réaction du thiol avec les fonctions vinyles du polyorganosiloxane s'opère en présence d'un générateur de radicaux libres du type azo-bis-isobutyronitrile (AIBN). Ces polyorganosiloxanes à fonctions thioalkylacrylates ont pour principal inconvénient de ne pas être stables du fait du pont thioester relativement sensible. En outre, cette réaction de thioestérification en présence d'un initiateur radicalaire est relativement difficile à mettre en oeuvre. Enfin, la présence de soufre dans ces polyorganosiloxanes acrylates est tout à fait indésirable dans de nombreuses applications, notamment pour des problèmes de sécurité et de toxicité.
La demande de brevet japonais JP-200 098 602 du 7/04/2000 concerne quant à elle dans un tout autre registre la mise en réaction de diéthanol aminé avec l'acide acrylique permettant d'obtenir un aminoester acrylique.
D'autres articles et brevets décrivent l'ouverture d'un époxy par l'acide acrylique par catalyse avec un composé aminé, tel que par exemple la pyridiπe (D. Rosu, C. M. Cascaval, Revue Roumaine De Chimie 1994, 34, 979-974). Dans cet article, les auteurs relèvent des désavantages importants de ce mode de greffage, à savoir: cinétique très lente et formation de sous-produits issus de la polymérisation des époxy ou de l'ouverture de l'époxy par l'aminé elle-même consommée. Cet inconvénient ne se retrouve pas dans le cas de la catalyse au chrome pour la fixation d'acides acryliques sur des polyorganosiloxanes par ouverture de cycles époxy préalablement fixés sur la chaîne silicone dans et/ou en bout de chaîne (brevet français 87/02617). Néanmoins, la catalyse au chrome a pour inconvénient la nature toxique du chrome lui-même. Enfin, un autre désavantage de la catalyse au chrome est lié au fait que l'élimination du chrome se fait très difficilement. Il en résulte une couleur résiduelle des composés obtenus, qui est rédhibitoire. Le brevet européen EP-B-O 291 452 décrit des polyorganosiloxanes porteurs à chaque extrémité de deux fonctionnalités acrylates ou méthacrylates, obtenues à partir d'un polyorganosiloxane à motifs terminaux ≡SiH que l'on fait réagir avec un époxyde alcénylé. Le polyorganosiloxane ainsi époxydé à ses extrémités est ensuite mis en présence d'une base aqueuse ou méthanolique telle que NaOH. Ce polyorganosiloxane est ensuite mis à réagir avec un dérivé d'acide acrylique ou méthacrylique permettant d'introduire un groupement acrylate.
L'article "Makromol. Chem., RAPID COMMUN. 7, 703-707 (1986)" décrit la synthèse de polyorganosiloxane α,ω-bis acrylates obtenus à partir de polyorganosiloxane à motifs terminaux
≡SiH que l'on fait réagir avec l'AGE en présence d'acide chloroplatinique. Le polyorganosiloxane à extrémité époxy ainsi obtenu est mis en réaction avec l'acide méthacrylique en présence de di- isopropyle salicylate de chrome.
Le brevet US-A-4 908 274 (= EP-A-O 281 681) concerne des silicones acrylates dans lesquels le greffon fonctionnalisé est relié à la chaîne silicone par l'intermédiaire de liaisons non hydrolysables SiC. Ces silicones acrylates résultent de Phydrosilylation d'allylglycidyléther (AGE) et d'un époxyde du vinylcyclohexène (VCMX), en présence d'un catalyseur au platine sur un polyorganosiloxane à fonction SiH. Le polyorganosiloxane greffé ainsi obtenu est mis en réaction avec de l'acide (méth)acrylique et ou un anhydride d'acide (méth)acrylique. La réaction est catalysée par du diazabicyclo(2,2,2) octane. Ce greffage de fonction acrylate ou méthacrylate par l'intermédiaire d'une première fonctionnalisation époxy, intervient aussi bien sur des motifs Si-H situés dans la chaîne que sur des motifs Si-H terminaux.
Les huiles à fonctions acrylate ou méthacrylate, obtenues par ouverture d'un groupe époxy (oxirane) au moyen d'acide acrylique, en présence de catalyseurs les plus divers [US-A-4 908 274 (= EP-A-O 281 681), US-A-4 293 678] sont souvent très visqueuses, du fait de la présence de groupes hydroxyles engendrant des liaisons hydrogène. En outre, la réaction n'est pas complète. Ii reste souvent des fonctions époxy résiduelles moins réactives aux UV que les groupes acrylates.
Le brevet US 6,288,129 décrit la transestérification d'un silicone polyéther à fonctionnalité hydroxy avec un acide (méth)acrylique par voie enzymatique. Cette voie nécessite la présence de fonctions hydroxyles greffées sur le silicone au moyen de greffon ou rotule de type polyoxyéthylène ayant un nombre d'unité oxyde d'éthylène ou d'oxyde de propylène assez élevé (supérieur à 15 unités d'oxyde d'éthylène ou d'oxyde de propylène). Ce nombre assez élevé d'unités peut s'expliquer par la nécessité de faciliter l'accès de l'enzyme au substrat réactif lorsque l'on utilise des supports de type silicone.
Il ressort de ce qui précède que la fonctionnalisation des polyorganosiloxanes par des acrylates souffre d'un certain nombre de carences et d'inconvénients parmi lesquels on peut citer, de manière générale l'apparition de quantités considérables de sous-produits, la nécessité de filtrer un sous-produit de la réaction, l'instabilité au stockage des silicones acrylates (réaction alcools résiduels avec acrylate en milieu acide), présence de liaisons Si-O-C sensibles à l'hydrolyse, faible rendement de fonctionnalisation ou bien encore catalyseur écotoxique. Force est de constater qu'aucune voie enzymatique n'a été proposée par l'art antérieur permettant d'utiliser des composés silicones ayant un groupement réactif difficile d'accès pour une catalyse enzymatique du fait d'un environnement stérique défavorable de part la structure même des polymères silicones. En effet, il est connu que l'activité d'une enzyme est très sensible à l'encombrement stérique d'un substrat réactif.
Dans un tel contexte, l'un des objectifs essentiels de la présente invention est de fournir de nouvelles perspectives d'emploi des silanes/silicones époxy en particulier pour ceux dont la rotule reliant la fonction époxy à la chaîne silicone est courte (nombre d'atomes composant la rotule inférieur à 10).
Un autre objectif essentiel de la présente invention est de proposer un nouveau procédé de fabrication d'un polyorganosiloxane ou silane fonctionnalisé, en particulier par des fonctions acrylate et/ou méthacrylate portées par des groupements liés à la chaîne polysiloxane ou au silane par une liaison Si-C, qui ne présente pas les inconvénients des procédés connus.
Un autre objectif essentiel de la présente invention est de fournir un nouveau procédé de fabrication de silicones ou silanes fonctionnalisés, en particulier (méth)acrylate, permettant d'obtenir de bons rendements sans faire appel à des composés écotoxiques tels que le chrome par exemple et sans produire de sels.
Ces objectifs, parmi d'autres, sont atteints par la présente invention qui concerne un nouveau procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou d'un silane fonctionnalisé (A) comprenant les étapes suivantes: a) on fait réagir au moins un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou d'un silane (B) porteur d'au moins un groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) avec au moins un nucléophile porteur d'au moins une fonction
(Nu) susceptible de réagir avec la fonction époxy (Ep) en présence d'au moins une enzyme catalysant l'ouverture nucléophile de fonction(s) époxy(s) et éventuellement en présence d'un inhibiteur de polymérisation ; et b) on isole le produit (A).
Selon une variante de l'invention, on effectue la réaction de l'étape a) à une température T1 comprise entre 20 et 1000C et de préférence entre 30 et 80°C.
Parmi les inhibiteurs de polymérisation, on peut citer par exemple Thydroquinone et l'hydroquinone monométhylether (MEHQ). L'hydroquinone est particulièrement préférée.
Selon un premier mode préférentiel de l'invention, le groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) est relié à un atome de silicium.
Parmi les nucléophiles porteur d'au moins une fonction (Nu) utiles selon l'invention, On peut citer ceux porteurs de fonctions acides, anhydrides d'acide, amides et/ou esters.
Selon un deuxième mode préférentiel de l'invention, la fonction (Nu) susceptible de réagir avec la fonction époxy (Ep) est une fonction -COOH.
Selon un troisième mode préférentiel de l'invention, la fonction (Nu) susceptible de réagir avec la fonction époxy (Ep) est une fonction -COOR, avec R étant un alkyle linéaire en C1-C12 , ramifié en C1-C12 ou cyclique en C5-C10.
Selon l'invention, il est avantageux de choisir le nucléophile porteur d'au moins une fonction (Nu) parmi le groupe constitué par: l'acide acrylique, l'acide méthacrylique, l'anhydride (méth)acrylique, l'acide benzoïque, les diacides tels que l'acide téréphtalique ou l'acide adipique, les acides gras tels que l'acide laurique, l'acide stéarique ou l'acide palmitique, les acides uroniques tels que l'acide glucuronique ou l'acide galacturonique, les aminoacides tels que l'acide aspartique et leurs mélanges.
Selon l'invention, II est encore plus particulièrement avantageux de choisir le nucléophile parmi le groupe constitué par l'acide acrylique, l'acide méthacrylique et leurs mélanges
Avantageusement, l'enzyme utilisée selon l'invention est une lipase de la classe EC 3.1.1.3 ou EC 3.1.1.13 et de préférence une lipase des genres Alcaligenes, Pseudomcnas Rhizopus Burkholderia ou Aspergillus.
Par exemple, le genre Alcaligenes spp, de la famille Alcaligenacae comprend plusieurs espèces, telles que par exemple : Alcaligenes aestus, Alcaligenes aquamarinus, Alcaligenes cupidus, Alcaligenes defragrans, Alcaligenes denitrificans, Alcaligenes eutrophus, Alcaligenes faecalis, Alcaligenes laius, Alcaligenes pacificus, Alcaligenes paradoxus, Alcaligenes piechaudii, Alcaligenes ruhlandii, Alcaligenes venustus, Alcaligenes xylosoxidans.
On peut utiliser selon le procédé de l'invention différentes lipases conformes à l'invention. Les lipases de l'invention peuvent être obtenues par exemple à partir de culture des genres Alcaligenes, Pseudomonas, Rhizopus Burkholderia, Candida ou Aspergillus. Les conditions de culture peuvent varier en fonction du type de souches utilisées. Il est recommandé de choisir ces conditions de façon à produire les lipases de la manière la plus avantageuse possible. La température de culture est généralement comprise entre 5 et 800C. La période de culture est généralement comprise entre 1 et 10 jours. La récupération des lipases peut être réalisée de différentes manières bien connues de l'homme du métier. Il est par exemple possible de procéder à une séparation des bactéries et du milieu de culture, notamment par centrifugation ou filtration, et ensuite procéder à une purification des lipases. Par exemple, la purification des lipases peut être réalisée par précipitation, lyophilisation, chromatographie échangeuse d'ions, immuno-affinité à l'aide d'anticorps mono- ou polyclonaux spécifiques, et/ou dialyse. On peut également recueillir les lipases par destruction des bactéries, par exemple par sonication et récupération du broyât, ou par une lyse enzymatique des parois cellulaires. Les lipases de l'invention peuvent notamment être purifiées, par exemple pour le genre Alcaligenes à partir des souches d1 'Alcaligenes spp par ajout de sels, en utilisant par exemple du sulfate d'ammonium, passage dans une chromatographie échangeuse d'ions et ensuite filtration sur gel.
Il est bien entendu que des lipases naturelles, synthétiques mutées, chimériques et/ou recombinantes provenant des genres Alcaligenes, Pseudomonas, Rhizopus, Burkholderia, Candida ou Aspergillus peuvent être utilisées dans le procédé selon l'invention, dans la mesure où leur activité vis-à-vis de l'ouverture de fonction(s) époxy(s) portée(s) par les substrats de l'invention est conservée, voir améliorée. Ainsi, des lipases mutées des genres Alcaligenes, Pseudomonas, Rhizopus, Burkholderia, Candida ou Aspergillus exprimées par d'autres micro¬ organismes ou produites par synthèse chimique sont également concernées par la présente invention.
Des exemples de lipases utiles selon l'invention sont par exemple : - ia lipase PL de la souche d'Alcaligenes sp (fournie par la société Meito Sangyo), la lipase
PL sous sa forme immobilisée sur support diatomée (lipase PLC fournie par la société Meito Sangyo), la lipase PL sous sa forme immobilisée sur des granules de diatomée (lipase PLG fournie par la société Meito Sangyo), la lipase MY de la souche Candida cylindracea (fournie par la société Meito Sangyo), la lipase PLC de la souche Alcaligenes sp (fournie par la société Meito Sangyo), la iipase QLG de la souche Alcaligenes sp (fournie par la société Meito Sangyo), la lipase QLC de la souche Alcaligenes sp (fournie par la société Meito Sangyo), la lipase D de la souche Rhizopus oryzae (fournie par la société par Amano-Enzyme Inc), la lipase TL IM de la souche Pseudomonas stutzeri (fournie par la société Meito Sangyo), la lipase QLM de la souche Alcaligenes sp. (fournie par la société par Meito Sangyo), la lipase F-AP 15 de la souche Rhizopus oryzae (fournie par la société par Amano-Enzyme Inc), la lipase CE (Cholestérol Esterase)de la souche Pseudomonas sp (fournie par la société Amano-Enzyme Inc), la lipase AH de la souche Burkholderia cepacia (fournie par ia société Amano-Enzyme Inc) et la lipase AS de la souche Aspergillus niger (fournie par la société Amano-Enzyme Inc).
Parmi les lipases utiles selon l'invention, les classes EC 3.1.1.3 ou EC 3.1.1.13 sont particulièrement préférées, par exemplela lipase PL de la souche d'Alcaligenes sp (fournie par la société Meito Sangyo), la lipase PL sous sa forme immobilisée sur support diatomée (lipase PLC fournie par la société Meito Sangyo), la lipase PL sous sa forme immobilisée sur des granules de diatomée (lipase PLG fournie par la société Meito Sangyo), la lipase TL IM de la souche Pseudomonas stutzeri (fournie par la société Meito Sangyo), la lipase QLM de la souche Alcaligenes sp. (fournie par la société par Meito Sangyo), la lipase F-AP 15 de la souche Rhizopus oryzae (fournie par la société par Amano-Enzyme Inc-Enzyme Inc.), la lipase CE (Cholestérol Esterase)de la souche Pseudomonas sp (fournie par la société Amano-Enzyme Inc), la lipase AH de la souche Burkholderia cepacia (fournie par la société Amano-Enzyme Inc) et la lipase AS de la souche Aspergillus niger (fournie par la société Amano-Enzyme Inc).
Selon un mode de réalisation de l'invention, les lipases des classes EC 3.1.1.3 ou EC
3.1.1.13 utilisées selon l'invention permettent d'obtenir un taux de transformation (δ-i) d'ouverture des fonctions époxy (Ep) du composé (B) supérieur ou égal à 10 %, de préférence supérieure à 30% et encore plus préférentiellement supérieur à 40 %.
Selon un autre mode de réalisation de l'invention, la proportion de l'enzyme catalysant l'ouverture nucléophile de fonction(s) époxy(s) est comprise entre 0,5 et 10 % en poids et de préférence entre 2 et 5 % en poids par rapport au poids du composé de formule (B).
Afin de déterminer si une enzyme est utile selon l'invention, on peut procéder au test suivant : a) on fait réagir dans un réacteur de 100 m L1 éventuellement en présence d'un solvant tel que la méthylisobutylcétone ou la méthyléthylcétone, au moins un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou d'un silane (B) porteur d'au moins un groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) avec le nucléophile porteur d'au moins une fonction (Nu) susceptible de réagir avec la fonction époxy (Ep) en présence de l'enzyme à tester tout en maintenant la température du milieu réactionnel T1 constante comprise entre 20 et 1000C ; b) après une durée de réaction (Δt) d'au plus 168 heures, le taux de transformation (O1) d'ouverture des fonctions époxy est mesuré par exemple par intégration du signal Rmn du ou des protons -CH- du cycle époxy :
(δ-i) = [(% de surface du signal à t0 -% de surface du signal après une durée de réaction (Δt))/ % de surface du signal à t0] x 100 et c) le taux de transformation doit être supérieur 10 %, de préférence supérieure à 20% et encore plus préférentiellement supérieur à 40%.
Ce test permet à l'homme du métier de déterminer les enzymes qui ont une activité conforme à l'invention.
Préférentiellement, les lipases utilisées selon le procédé de l'invention présentent une séquence d'acides aminés ayant un pourcentage d'homologie supérieur ou égal à 80 %, notamment 90 %, de préférence 95, plus préférentiellement 100 % avec la séquence d'acides aminés de la lipase PL de la souche d'Alcaligenes sp, la protéine ayant une activité dans la réaction d'ouverture d'une fonction époxy par un nucléophile. Les lipases utilisées selon l'invention peuvent provenir de séquences nucléotidiques présentant un pourcentage d'homologie supérieur ou égal à 80 %, notamment 90 %, de préférence 95, plus préférentiellement 100 % avec la séquence nucléotidique du gêne de la lipase PL de la souche d'Alcaligenes sp, la lipase obtenue ayant une activité dans la réaction d'ouverture par un nucléophile d'une fonction époxy porté par un silane, un organosiloxane ou un polyorganosiloxane.
Il est entendu que le terme homologie se réfère à la ressemblance parfaite ou identité entre les acides aminés comparés mais aussi à la ressemblance non parfaite que l'on qualifie de similitude. Les séquences d'acides aminés peuvent différer de la séquence de référence par substitution, délétion et/ou insertion d'un ou de plusieurs acides aminés, de préférence d'un nombre réduit d'acides aminés, notamment par substitution d'acides aminés naturels par des acides aminés non naturels ou pseudo-acides aminés, à des positions telles que ces modifications ne portent pas significativement atteinte à l'activité biologique de la protéine. L'homoiogie est généralement déterminée en utilisant un logiciel d'analyse de séquence (par exemple, Séquence Analysis Software Package of the Genetics Computer Group, University of Wisconsin Biotechnology Center, 1710 University Avenue, Madison, Wl 53705 ; ou BLAST software du National Center for Biotechnology Information, US National Library of Médecine, 8600 Rockville Pike Bethesda, MD 20894).
Les séquences d'acides aminés des lipases naturelles, synthétiques mutées, chimériques et/ou recombinantes peuvent être de la même longueur que les séquences de référence. II est bien entendu que selon l'invention les lipases de la classe EC 3.1.1.3 peuvent provenir des bactéries des genres Alcaligenes, Pseudomonas, Rhizopus, Burkholderia ou Aspergillus. Toutefois, par exemple dans le cadre de procédé industriel de fabrication de ces lipases, il est possible que celles-ci soient produites par des cellules hôtes ou par des processus chimiques.
La lipase peut être immobilisée sur un support solide approprié ou non immobilisée. Le support solide peut être choisi parmi le groupe constitué par : la diéthylaminoéthylcellulose
(DEAE-cellulose), la diéthylaminoéthylsépharose (DEAE-εépharose), la diatomée, la silice, l'alumine, les billes d'alginate, le polypropylène des particules de céramique ainsi que leurs mélanges.
La lipase isolée peut être employée directement dans le milieu réactionnel ou dans des solvants organiques.
Différents types de solvants organiques peuvent être utilisés selon la présente invention. Le solvant organique peut être un composé hydrocarboné aliphatique, cyclique ou aromatique et/ou cétone. Le solvant organique est préférentiellement choisi dans le groupe comprenant : la méthyléthylcétone et la méthylisobutylcétone.
La réaction de catalyse enzymatique de l'étape a) s'effectue préférentiellement à une température comprise entre 20 et 100 0C et de préférence entre 30 et 8O0C. Pour chaque substrat, il est possible de déterminer à l'avance et/ou de contrôler en continu la durée de la réaction enzymatique, en fonction du composé époxydé de formule (B) utilisé. Un homme du métier est parfaitement à même de déterminer facilement les conditions de durée optimales pour un substrat donné. Ceci peut être réalisé en réalisant des prélèvements réguliers du milieu réactionnel sur lesquels on évalue le taux de conversion.
L'intérêt des enzymes immobilisées réside essentiellement dans la possibilité de les récupérer sans difficulté à partir du milieu dans lequel elles ont été mises en œuvre et dans lequel l'enzyme proprement dite développe ses activités pour lesquelles elle est classiquement utilisée, de les purifier en tant que de besoin et de les remettre à agir dans un autre milieu.
Le silicone (B) porteur d'au moins un groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) utile selon l'invention est un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère essentiellement linéaire porteur de motifs de formules:
Figure imgf000013_0001
formule dans lesquelles:
• les radicaux R2 sont identiques ou différents entre eux et représentent chacun un alkyle, un aryle ou un arylalkyle ; de préférence un alkyle en C1-C10 linéaire ou ramifié ou un phényle ;
• le radical (Y) est un groupement réactif comprenant au moins une fonction époxy (Ep); • a et b sont choisis de telle sorte que :
0 < a + b, de préférence 0 < a + b < 500, et encore plus préférentiellement 10 < a + b < 200 et plus préférentiellement encore 50 < a + b < 150 ;
• pour le cas d'un monomère : a et b sont égal à 0 et au moins l'un des radicaux R2 représente le radical (Y), et • lorsque b=0 au moins l'un des radicaux R2 représente le radical (Y).
Pour le cas d'un organosiloxane (B) il est de préférence linéaire et de formule (V) :
R2 R3
([) (R^)3Si —0 -fSiOVfSiO ^Si(R1)3
R2 Y
(V) formule dans laquelle :
• les radicaux R1 sont identiques ou différents entre eux et représentent chacun un alkyle, un aryle, un arylalkyle ou le radical (Y) ; de préférence un alkyle en C1-Ci0 linéaire ou ramifié ou un phényle ;
• les radicaux R2 sont identiques ou différents entre eux et représentent chacun un alkyle, un aryle ou un arylalkyle; de préférence un alkyle en C1-C10 linéaire ou ramifié ou un phényle ;
• le radical R3 représente un alkyle, un aryle, un arylalkyle ou le radical (Y) ; de préférence un alkyle en C1-Ci0 linéaire ou ramifié, ou un phényle ;
• le radical (Y) est un groupement réactif comprenant au moins une fonction époxy (Ep); • a et b sont choisis de telle sorte que :
0 < a + b, de préférence 1 < a + b < 500, et encore plus préférentiellement 10 < a + b < 200 et plus préférentiellement encore 50 < a + b < 150 ; et
• b peut être égal à 0 et dans ce cas au moins l'un des radicaux R1 ou R2 représente le radical (Y).
En pratique, les radicaux R3, dès lors qu'ils sont différents du radical (Y), répondent indépendamment à la même définition que celle donnée ci-dessus pour R2 et R1.
Dans ce mode de réalisation, les groupements réactifs (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) sont de préférence dans la chaîne et éventuellement sur au moins l'un des Si terminaux de la formule (V).
Comme exemple de silane (B) porteur de fonction époxy on peut citer le 3- glycidoxypropyltπméthoxysilane (GLYMO), le 3,4-époxycyclohexyléthyltriméthoxysilane ainsi que ceux décrits dans l'ouvrage « Chemistry and Technology of Silicones », Walter NoII, édité par Académie Press Inc, 1968, à la page 173.
De préférence, le groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) est sélectionné parmi le groupe constitué par les radicaux (1) à (10) suivants:
Figure imgf000014_0001
P) m
Figure imgf000015_0001
m ω
H,
Figure imgf000015_0002
CT M
Figure imgf000015_0003
Figure imgf000015_0004
Selon une variante préférée, le radical (Y) est IΘ motif (11) suivant :
Figure imgf000015_0005
Les polyorganosiloxanes (B) peuvent être des huiles de viscosité dynamique à 25°C de l'ordre de 10 à 10 000 mPa.s, généralement de l'ordre de 50 à 5 000 mPa.s, et plus préférentiellement encore de 100 à 600 mPa.s, ou des gommes présentant une masse moléculaire de l'ordre de 1x106g.
La viscosité dynamique à 25°C, de tous les silicones considérés dans le présent exposé peut être mesurée à l'aide d'un viscosimètre BROOKFIELD, selon la norme AFNOR NFT 76 102 de février 1972. Selon une variante avantageuse de l'invention, les polyorganosiloxanes B utilisés comportent de 1 à 10 groupements époxyfonctionnel par chaîne macromoléculaire. Pour un groupement époxyfonctionnel cela correspond à des taux d'époxyde variant de 20 à 2000 meq. molaire/100 g de polyorganosiloxane.
Les polyorganosiloxanes B peuvent être des huiles de viscosité dynamique à 250C1 de l'ordre de 10 à 10 OOO mPa.s à 25°C, généralement de l'ordre de 20 à 5 000 mPa.s à 25°C et, plus préférentiellement encore, de 20 à 600 mPa.s à 25°C, ou des gommes présentant une masse moléculaire de l'ordre de 1 000 000.
Lorsqu'il s'agit de polyorganosiloxanes B cycliques, ceux-ci sont constitués de motifs qui peuvent être, par exemple, du type dialkylsiloxy ou alkylarylsiloxy. Ces polyorganosiloxanes cycliques présentent une viscosité de l'ordre de 1 à 5 000 mPa.s à 25°C.
Les organosiloxanes ou polyorganosiloxanes B époxy fonctionnels peuvent être préparés par réaction d'hydrosilylation entre des huiles à motifs Si-H et- des composés époxyfonctionnels tels que par exemple le vinyl-4 cyclohexèneoxyde ou l'allylglycidyléther. L'obtention de tels organosiloxanes ou silanes fonctionnalisés époxy est parfaitement à la portée de l'homme du métier de la chimie des silicones.
Selon un autre aspect, l'invention a pour objet une composition comprenant le mélange de :
- au moins un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou d'un silane (B) porteur d'au moins un groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) tel que défini ci-dessus ;
- au moins un nucléophile porteur d'au moins une fonction (Nu) susceptible de réagir avec la fonction époxy (Ep) tel que défini ci-dessus ;
- au moins une enzyme catalysant l'ouverture nucléophile de fonction(s) époxy(s) tel que défini ci- dessus ;
- éventuellement au moins un solvant, de préférence un solvant choisi parmi le groupe constitué par : la méthylisobutylcétone, la méthyléthylcétone et leurs mélanges ; et
- éventuellement un inhibiteur de polymérisation, de préférence l'hydroquinone.
Selon un autre de ses aspects, l'invention a pour objet l'utilisation du monomère, oligomère, polymère, copolymère organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) obtenu par le procédé tel que défini ci-dessus comme constituant principal ou secondaire dans des compositions utiles pour la cosmétique, la pharmacie, le soin personnel (« Personal care »), le soin ménager (« home care ») et la préparation de revêtements anti-adhérents papier. Les exemples qui suivent permettront de mieux comprendre l'invention et de percevoir tous ses avantages et ses variantes de réalisation. Information générale sur les exemples :
Les substrats silicone utilisés sont des huiles fonctionnalisées par l'allylglycidyléther. La réaction visée est une addition nucléophile sur Ia fonction époxy par l'acide acrylique catalysée 5 enzymatiquement. Les structures attendues pour le polyorganosiloxane fonctionnalisé (A) sont donc les suivantes :
Figure imgf000017_0001
(12) (13)
10 Le suivi de la réaction est réalisé par RMN 1H. On filtre tout d'abord l'échantillon sur micro-filtre 0.2 μm puis on dissous dans le CDCI3. L'acquisition du spectre est réalisée sur un appareil Brϋcker 300 MHz à température ambiante. Le taux de transformation (TT) est calculé à partir des intégrales des pics du CH de l'époxy à environ 3.1 ppm (qui diminue au cours de la réaction) et du CH2 en alpha du silicium à 0.41 ppm (qui reste constant pendant la réaction).
15
Le produit final est caractérisé par RMN 1H après évaporation de l'excès d'acide acrylique.
Exemple 1 : Préparation d'un polvorqanosiloxane (B) porteur de groupement fonctionnel époxy : silicones époxy de structure MDgépoxyD:MnM
• 20 Signification des symboles:
Figure imgf000017_0002
D = (CHs)2SiO2Z2
D' = (CH3)HSiO2Z2 D â PO χy _ (CH3)(Y)SiO272 et (Y) = radical de formule (11) :
25
Figure imgf000018_0001
(11)
Dans un ballon en verre de 2 litres munit d'un agitateur en verre, d'un réfrigérant avec ciel d'argon et d'une sonde de température 155,6g d'allylglycidyl éther (1 ,36 moles), et 0.35 g de catalyseur au platine de Karstedt (20ppm) sont chargés.
Le ballon est chauffé à 7O0C ; 1600g d'une huile silicone de structure MD110D 5M (1.002 équivalent de SiH) sont coulés à la vitesse de 8.2g/min. La masse réactionnelle est maintenue à 800C pendant 1h (taux de transformation des fonctions SiH =100%). Puis le milieu est traité au noir 2S pendant 2h à 8O0C , suivi d'une filtration et d'une distillation sans colonne et sous vide (1 mm Hg, 3h à 130°C).
Résultats : On obtient l'huile MD5 épDXyDi10M avec un taux d'époxy mesuré par potentiomètrie : 0.506eq/kg ; viscosité≈ 275 cps.
Cette huile silicone a des fonctions réactives (ici époxy) reliées à la chaîne siloxanique par une rotule -CH2-CH2-CH2-O-. Il en découle que la longueur de cette rotule est donc bien inférieure à une rotule de type polyoxyéthylène (Poe) et présente donc des groupements réactifs à priori difficile d'accès pour une catalyse enzymatique du fait d'un environnement stérique défavorable.
Exemple 2 : Criblage des lipases Schéma réactionnel :
Figure imgf000018_0002
avec pour les structures (12) et (13) : a=110 et b=5.
Les essais de type criblage sont réalisés dans un carrousel acceptant 12 tubes à essais. Le volume réactionnel est de 11 ml environ, la température est régulée à la valeur souhaitée. L'agitation se fait par barreau magnétique. Conditions opératoires:
Acide acrylique : 2,5 g.
Hydroquinone : 0,05 g.
Enzyme à tester : 0,25 g
Durée : de 4 à 6 jours ; température 60°C ;
Méthyl-isobutyi-cétone : 3,5 ml.
Silicones époxy (MD5 époxyD110M) : 7 g.
Les analyses des points finaux sont faites par RMN 1H. Les résultats sont consignés dans le
Tableau I ci-dessous.
Figure imgf000019_0001
Tableau I: Essais de criblage TT= Taux de transformation
Exemple 3
Dans un Réacteur Parfaitement Agité Standardisé (RPAS) de 100cc muni d'un agitateur à pâles inclinées, d'un réfrigérant avec ciel d'argon, d'une sonde de température et chauffé par un bain d'huile régulé à 70 degré, on introduit les réactifs suivants : - Acide acrylique : 18 g soit 0.25 mole.
- Hydroquinone : 0.360 g correspondant à 2% p/p par rapport à l'acide acrylique
- Méthylisobutylcétone : 15 g soit 0,15 mole (MIBK/acide =0.6).
- Silicones époxy (MD5 époxyD110IVl) : 50 g soit 0.0257 équivalent époxy ; et - Lipase étudiée: 2 g (11%/ acide acrylique).
Le milieu réactionnel est agité à 700tr/min pendant 7 jours et des prélèvements sont effectués régulièrement et analysés par RMN 1H. Après réaction, le milieu est filtré pour séparer le catalyseur solide des réactifs liquides puis on effectue une distillation au rotavapeur 2 fois 4h30 à 700C sous 7 mb à 110 tr/min pour éliminer l'acide acrylique excédentaire. '
3 essais ont été réalisés é partir de 3 enzymes différentes sélectionnées à partir du criblage selon l'exemple 2:
- la lipase PL,
- la lipase QLM, et - la lipase TL IM.
La cinétique de transformation des fonctions époxy en fonction du temps est donné dans la Figure n° 1 et les valeurs des taux de transformation (TT) sont reportées dans le Tableau II
Figure imgf000021_0001
Tableau II : Essais en réacteur RPAS de 100 ml
L'analyse RMN 1H confirme la structure attendue. Il est à noter que les taux de transformation sont important (> 90%), notamment pour les essais concernant les enzymes lipase PL et lipase QLM. Exemple 4
Dans l'essai n° 3, on reproduit les conditions de l'exemple 3, mais on introduit 9,2 g d'un monomère organosiloxane (B) de formule MDépoxyM (soit 0.028 équivalent époxy) à la place de l'huile silicone MD5 épcxyDi10M. Les ratios molaires sont donc identiques, le volume manquant étant remplacé par de la méthylisobutylcétone (MIBK). L'enzyme utilisée est la lipase PL. Cet essai (référencé G-4) a été mené en parallèle avec un essai standard avec la lipase PL (référencé H-4). Les résultats sont consignés dans le Tableau III ci-dessous.
Figure imgf000022_0001
Tableau III: Essais en réacteur RPAS de 100 ml : Comparaison des cinétiques de greffage sur un composé monomère MDépoxyM et le polyorganosiloxane MD5 époxyD110M.
L'analyse RMN 1H confirme la structure attendue.

Claims

19
REVENDICATIONS
1 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) comprenant les étapes suivantes: a) on fait réagir au moins un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou d'un silane (B) porteur d'au moins un groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) avec au moins un nucléophile porteur d'au moins une fonction (Nu) susceptible de réagir avec la fonction époxy (Ep) en présence d'au moins une enzyme catalysant l'ouverture nucléophile de fonction(s) époxy(s) et éventuellement en présence d'un inhibiteur de polymérisation ; et b) on isole le produit (A).
2 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon Ja revendication 1 caractérisé en ce que le groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) est relié à un atome de silicium.
3 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon la revendication 1 ou 2 caractérisé en ce que la fonction (Nu) susceptible de réagir avec une fonction époxy (Ep) est une fonction -COOH.
4 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon la revendication 1 ou 2 caractérisé en ce que la fonction (Nu) susceptible de réagir avec une fonction époxy (Ep) est une fonction -COOR1 avec R étant un alkyle linéaire en C1-C^ , ramifié en C1-C12 ou cyclique en C5-C10.
5 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel le nucléophile est choisi parmi le groupe constitué par : l'acide acrylique, l'acide méthacrylique, l'anhydride (méth)acrylique, l'acide benzoïque, les diacides tels que l'acide téréphtalique ou l'acide adipique, les acides gras tels que l'acide laurique, l'acide stéarique ou l'acide palmitique, les acides uroniques tels que l'acide glucuronique ou l'acide galacturonique, les aminoacides tels que l'acide aspartique et leurs mélanges.
6 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications 20
précédentes dans lequel le nucléophile est choisi parmi le groupe constitué par l'acide acrylique, l'acide méthacrylique et leurs mélanges.
7 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel l'enzyme choisie est une lipase de la classe EC 3.1.1.3 ou EC 3.1.1.13.
8 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon la revendication 7 caractérisé en ce que la lipase est choisie parmi le groupe constitué par les genres Alcaligenes, Pseudomonas, Rhizopus, Burkholderia et Aspergillus.
9 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon la revendication 7 ou 8 caractérisé en ce que la lipase présente les caractéristiques suivantes :
-le taux de transformation (O1) d'ouverture des fonctions époxy (Ep) du composé (B) est supérieur ou égal à 10 %, de préférence supérieure à 30% et encore plus préférentiellement supérieur à 40 %. supérieur.
10 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications 7 à 9 caractérisé en ce que la lipase est choisie parmi le groupe constitué par : la lipase PL de la souche d'Alcaligenes sp, la lipase PL sous sa forme immobilisée sur support diatomée (lipase PLC), la lipase PL sous sa forme immobilisée sur des granules de diatomée (lipase PLG), lipase TL IM de la souche Pseudomonas stutzeri, la lipase CE (Cholestérol Esterase) de la souche Pseudomonas sp, la lipase QLM de la souche Alcaligenes sp., la lipase F-AP 15 de la souche Rhizopus oryzae, la lipase AH de la souche Burkholderia et la lipase AS de la souche Aspergillus niger.
11 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications 7 à 10 caractérisé en ce que la lipase est immobilisée sur un support solide approprié ou non immobilisée.
12 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou .un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon la revendication 11 caractérisé en ce que le support solide est choisi parmi le groupe constitué par : la diéthylaminoéthylcellulose (DEAE- 21
cellulose), la DEAE sépharose, la diatomée, la silice, l'alumine, les billes d'alginate, le polypropylène, des particules de céramique ainsi que leurs mélanges.
13 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel l'inhibiteur de polymérisation est l'hydroquinone.
14 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel on effectue la réaction de l'étape a) à une température T1 comprise entre 20 et 1000C et de préférence entre 30 et 800C.
15 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel on effectue la réaction de l'étape a) en présence d'un solvant organique choisi parmi le groupe constitué par: la méthylisobutylcétone et la méthyléthylcétone.
16 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel le silicone (B) porteur d'au moins un groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) est un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère essentiellement linéaire porteur de motifs de formules:
R2 R2 R2 R2
R2O-Si—O e SiCH5- et -4SiOiE Si-O R2
R2 R2 Y R2 (I) (II) (III) (IV)
formule dans lesquelles:
• les radicaux R2 sont identiques ou différents entre eux et représentent chacun un alkyle, un aryle ou un arylalkyle; de préférence un alkyle en C1-C10 linéaire ou ramifié ou un phényle ;
• le radical (Y) est un groupement réactif comprenant au moins une fonction époxy (Ep);
• a et b sont choisis de telle sorte que :
0 < a + b, de préférence 0 < a + b < 500, et encore plus préférentiellement 22
10 < a + b < 200 et plus préférentiellement encore 50 < a + b < 150 ;
• pour le cas d'un monomère : a et b sont égal à 0 et au moins l'un des radicaux R2 représente le radical (Y), et
• lorsque b=0 au moins l'un des radicaux R2 représente le radical (Y).
17 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel le silicone (B) est linéaire et de formule (V) :
R2 R3
Figure imgf000026_0001
R* Y (V) formule dans laquelle :
• les radicaux R1 sont identiques ou différents entre eux et représentent chacun un alkyle, un aryle, un arylalkyle ou un radical (Y) ; de préférence un alkyle en CrC10 linéaire ou ramifié ou un phényle ; • les radicaux R2 sont identiques ou différents entre eux et représentent chacun un alkyle, un aryle ou un arylalkyle; de préférence un alkyle en C1-C10 linéaire ou ramifié ou un phényle ;
• le radical R3 représente un alkyle, un aryle, un arylalkyle ou un radical (Y) ; de préférence un alkyle en C1-C10 linéaire ou ramifié, ou un phényle ; • le radical (Y) est un groupement réactif comprenant au moins une fonction époxy (Ep);
• a et b sont choisis de telle sorte que :
0 < a + b, de préférence 1 < a + b < 500, et encore plus préférentiellement 10 < a + b < 200 et plus préférentiellement encore 50 < a + b < 150 ; et
• b peut être égal à 0 et dans ce cas au moins l'un des radicaux R1 ou R2 représente le radical (Y).
18 - Procédé pour préparer un monomère, un oiigomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que le monomère, l'oligomère, le polymère ou le copolymère organosiloxane ou silane (B) est porteur d'au moins un groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep), ledit groupement réactif (Y) étant choisi parmi le groupe constitué par : 23
Figure imgf000027_0001
(S) W
Figure imgf000027_0002
P) (8)
Figure imgf000027_0003
m
Figure imgf000027_0004
19 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une des revendications précédentes dans lequel le groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) a pour structure :
Figure imgf000027_0005
20 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que la proportion de l'enzyme catalysant l'ouverture πucléophile de fonctιon(s) époxy(s) est comprise entre 0,5 et 10 % en poids et de préférence entre 2 et 5 % en poids par rapport au poids du composé de formule (B). 24
21 - Procédé pour préparer un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel l'enzyme catalysant l'ouverture nucléophile de fonction(s) époxy(s) est choisie suivant le protocole suivant : a) on fait réagir, éventuellement en présence d'un solvant, au moins un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou d'un silane (B) porteur d'au moins un groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) avec le nucléophile porteur d'au moins une fonction (Nu) susceptible de réagir avec la fonction époxy (Ep) en présence de l'enzyme à tester tout en maintenant la température du milieu réactionnel
T1 constante comprise entre 20 et 1000C ; b) après une durée de réaction (Δt) d'au plus 168 heures, le taux de transformation (O1) d'ouverture des fonctions époxy est mesuré en particulier par intégration du signal Rmn du ou des protons -CH- du cycle époxy : (S1) = [(% de surface du signal à t0 -% de surface du signal après une durée de réaction :
(Δt))/ % de surface du signal à to] x 100 ; et c) le taux de transformation doit être supérieur 10 %, de préférence supérieure à 20% et encore plus préférentiellement supérieur à 40%.
22 - Composition comprenant le mélange de :
- au moins un monomère, un oligomère, un polymère ou un copolymère d'un organosiloxane ou d'un silane (B) porteur d'au moins un groupement réactif (Y) comprenant au moins une fonction époxy (Ep) défini selon l'une quelconque des revendications 16 à 19 ;
- au moins un nucléophile porteur d'au moins une fonction (Nu) susceptible de réagir avec la fonction époxy (Ep) défini selon l'une quelconque des revendications 3 à 6;
- au moins une enzyme catalysant l'ouverture nucléophile de fonction(s) époxy(s) défini selon l'une quelconque des revendications 7 à 12;
- éventuellement au moins un solvant, de préférence un solvant choisi parmi le groupe constitué par: la méthylisobutylcétone, la méthyléthylcétone et leurs mélanges ; - et éventuellement un inhibiteur de polymérisation, de préférence l'hydroquinone.
23 - Utilisation du monomère, oligomère, polymère, copolymère organosiloxane ou silane fonctionnalisé (A) obtenu par le procédé décrit selon l'une quelconque des revendications 1 à 21 comme constituant principale ou secondaire dans des compositions utiles pour la cosmétique, la pharmacie, le soin personnel (« Personal care »), le soin ménager (« home care ») et la préparation de revêtements anti-adhérents papier.
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