WO2003040386A2 - Reaktionsräume enthaltend komplexe lagerstabile reagenzienformulierungen und testkit zum nachweis und zur isolierung pathogener mikrobieller nukleinsäuren - Google Patents

Reaktionsräume enthaltend komplexe lagerstabile reagenzienformulierungen und testkit zum nachweis und zur isolierung pathogener mikrobieller nukleinsäuren Download PDF

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    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
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    • C12N15/1003—Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6806—Preparing nucleic acids for analysis, e.g. for polymerase chain reaction [PCR] assay

Definitions

  • the invention relates to standard reaction spaces, the complex storage stable
  • Contain reagent formulations are thus suitable for receiving and, if necessary, storing complex liquid patient samples, which are subsequently to be examined for the presence of pathogenic microbial nucleic acids (bacteria, viruses, etc.).
  • the reaction spaces preferably have complex storage-stable reagent formulations which, in a test kit, permit the detection and quantitative isolation of viral and bacterial nucleic acids, even when an extremely small number of copies is present, from a complex biological sample.
  • a simple archiving system for the clinically relevant nucleic acids can be provided.
  • Virus infections such as HIV, HCV or HBV are spreading more and more worldwide.
  • New test methods based on the use of sensitive amplification techniques such as PCR or NASBA enable highly efficient virus detection and are increasingly being used as diagnostic instruments.
  • RNA or DNA nucleic acids
  • an essential step for the application of these techniques for the detection of pathogenic nucleic acids consists in the isolation of the nucleic acids (RNA or DNA) from relevant complex clinical samples. Without such a highly efficient insulation e.g. Viral nucleic acids cannot be diagnosed with sufficient sensitivity.
  • the isolation of, for example, viral nucleic acids from blood products is usually carried out by lysing the starting material with a buffer which contains chaotropic components of high ionic strength and the subsequent binding of the nucleic acids to a solid phase (for example membrane filters).
  • a buffer which contains chaotropic components of high ionic strength
  • the bound nucleic acids are washed on the solid phase and finally detached from the solid phase with a low ionic strength buffer.
  • the method is shown, inter alia, in US Pat. No. 5,234,809 A and is known worldwide under the name "Boom Patent".
  • the method describes precisely the isolation of nucleic acids from nucleic acid-containing starting materials by incubating the starting material with a chaotropic buffer and a DNA-binding solid phase.
  • the chaotropic buffers implement both the lysis of the starting material and the binding of the nucleic acids to the solid phase.
  • the method is well suited to isolating nucleic acids from small sample amounts and is particularly useful in the area of isolating viral nucleic acids.
  • a major problem in the isolation of viral and bacterial nucleic acids is the realization of a sufficiently high diagnostic sensitivity, since the number of viral copies (or the number of copies of other microbial pathogens) in a complex biological sample is usually very small.
  • Previous solutions for increasing the extraction efficiency relate to increasing the volume of the clinical sample to be examined or the enrichment of viral particles by centrifugation techniques. It is clear to the person skilled in the art that these variants are subject to narrow limits.
  • Another problem with the isolation of, in particular, viral nucleic acids for subsequent diagnostic detection is that a number of reaction components have to be pipetted into a reaction vessel containing the sample for the extraction of the nucleic acids.
  • the object of the present invention was therefore to search for possibilities which eliminate all the existing problems in connection with the handling of a complex biological sample to be examined for the presence of microbial nucleic acids and to find reaction approaches which allow the methods for isolating microbial nucleic acids Simplify and further automate patient samples to enable parallel sample processing in high throughput. Furthermore, these reaction approaches are intended to significantly reduce known risks of cross-contamination by reducing work steps.
  • reaction vessels such as 1.5 ml or 2.0 ml Eppendorf reaction vessels or 96-well or 386-well microtiter plates
  • reaction spaces are provided which are required for the lysis of a biological sample for the extraction methods used according to the prior art and for the diagnostic detection of microbial nucleic acids.
  • reaction spaces which all have components for the isolation of pathogenic nucleic acids from patient samples in a complex, storage-stable formulation:
  • the detection of microbial nucleic acids involves:
  • At least one carrier nucleic acid (necessary to be able to extract even the smallest amounts of microbiller nucleic acid)
  • a proteolytic enzyme e.g. a proteinase
  • the complex storage-stable reagent formulations are prepared in a professional manner, preferably either by vacuum drying or by lyophilization.
  • the reaction rooms prepared in this way have numerous advantages.
  • they are suitable as part of test kits for the detection and isolation of pathogenic nucleic acids.
  • they enable the processing of a complex biological sample with the aim of quantitative detection of pathogenic nucleic acids, which are caused by the transfer of the sample begins in the reaction vessel according to the invention.
  • All components for the lysis of the starting material and for extraction standards necessary for quantitative nucleic acid diagnostics are already in the reaction vessel.
  • no further pipetting steps for adding buffers or other essential components are necessary. This drastically reduces the necessary "hands-on" effort while at the same time significantly reducing the risk of contamination.
  • the more samples are to be processed in parallel, the more important.
  • automation is very simple, including the reaction materials according to the invention designed.
  • the volume of the clinical sample to be examined can be significantly increased using the reaction spaces according to the invention. Due to the complete absence of liquid reaction components, the volume of the sample added ultimately also corresponds to the volume of the overall reaction. The previously required multiple loading steps of centrifugation filters when increasing the volume of the biological sample are eliminated.
  • the lysate with defined proportions is e.g. of an alcohol and subsequently given over a solid phase which is able to bind the sample nucleic acid.
  • the solid phase is then washed with ethanol-containing washing buffers and the sample nucleic acid including the extraction standard is detached from the solid phase by adding a low salt buffer.
  • the nucleic acid is now available for subsequent quantitative analysis.
  • the test kit according to the invention also comprises
  • sample nucleic acid remains stable on the long-term storage after the necessary washing steps have been carried out and subsequent drying of the solid phase.
  • This has the advantage that the nucleic acid in this bound form can easily be stored at ambient temperature or even shipped. Complicated long-term storage of sample nucleic acids at -80 ° C or storage with the addition of ethanol are therefore no longer necessary. If necessary, the sample nucleic acid is simply detached from the solid phase by adding a low salt buffer and used for diagnostics.
  • RNA can also be stored over long periods of time without the occurrence of degradations and detached from the solid phase at a desired point in time. This provides a completely new archiving system for sample nucleic acids.
  • the solid phases are usually constituents of filtration units, which can be present as a "single tube” or as multiple variants of single reaction cavities (e.g. 96-well filtration plates, 384-well filtration plates, etc.). They are thus compatible with the reaction cavities according to the invention and thus allow the isolation or archiving of sample nucleic acids in a wide variety of formats.
  • reaction spaces used Another advantage of the reaction spaces used is that after the liquid patient sample has been added, the nucleic acid contained is protected under the lysis buffer formulations used and carrier nucleic acids added. This allows the sample to be transported without cooling and thus also considerably simplifies the logistics of sample collection and sample dispatch for subsequent quantitative diagnostics, especially of microbial nucleic acids.
  • the agent according to the invention can also be used for many other questions in molecular diagnostics and is therefore not restricted to use in microbial diagnostics.
  • centrifugation column e.g. centrifugation column from Invitek with glass fiber material. Centrifugation for 1 min and discarding the filtrate. Wash the centrifugation column twice with wash buffers containing ethanol. Drying the centrifugation column by centrifugation for 3 minutes.
  • the detection of the isolated viral RNA and or DNA is carried out using known amplification techniques.

Abstract

Die Erfindung betrifft Standard-Reaktionsräume, die komplexe lagerstabile Reagenzienformulierungen enthalten und die so zur Aufnahme und ggf. Lagerung von komplexen flüssigen Patientenproben geeignet sind, welche nachfolgend auf das Vorhandensein pathogener mikrobieller Nukleinsäuren (Bakterien, Viren etc.) untersucht werden sollen. Bevorzugt weisen die Reaktionsräume komplexe lagerstabile Reagenzienformulierungen auf, die in einem Testkit den Nachweis und eine quantitative Isolierung viraler und bakterieller Nukleinsäuren auch bei Vorliegen extrem geringer Kopienzahl aus einer komplexen biologischen Probe erlauben. Geichzeitig kann ein einfaches Archivierungssystem für die klinisch relevanten Nukleinsäuren bereitgestellt werden. Durch den Einsatz dieser Reaktionsräume, die die komplexen lagerstabilen Reagenzienformulierungen enthalten, werden notwendige Verfahrensschritte der Probenhandhabung drastisch reduziert and damit potentielle Infektionsrisiken und Kontaminationsrisiken deutlich verringert.

Description

Reaktionsräume enthaltend komplexe lagerstabile Reagenzienformulierungen und Testkit zum Nachweis und zur Isolierung pathogener mikrobieller Nukleinsäuren
Beschreibung
Die Erfindung betrifft Standard-Reaktionsräume, die komplexe lagerstabile
Reagenzienformulierungen enthalten und die so zur Aufnahme und ggf. Lagerung von komplexen flüssigen Patientenproben geeignet sind, welche nachfolgend auf das Vorhandensein pathogener mikrobieller Nukleinsäuren (Bakterien, Viren etc.) untersucht werden sollen. Bevorzugt weisen die Reaktionsräume komplexe lagerstabile Reagenzienformulierungen auf, die in einem Testkit den Nachweis und eine quantitative Isolierung viraler und bakterieller Nukleinsäuren auch bei Vorliegen extrem geringer Kopienzahl aus einer komplexen biologischen Probe erlauben. Geichzeitig kann ein einfaches Archivierungssystem für die klinisch relevanten Nukleinsäuren bereitgestellt werden. Durch den Einsatz dieser Reaktionsräume, die die komplexen lagerstabilen Reagenzienformulierungen enthalten, werden notwendige Verfahrensschritte der Probenhandhabung drastisch reduziert und damit potentielle Infektionsrisiken und Kontaminationsrisiken deutlich verringert.
Das Screenen komplexer biologischer Proben (Serum, Plasma, Blut etc.) auf Vorliegen infektiöser Komponenten gewinnt immer mehr an Bedeutung. Virusinfektionen wie HIV, HCV oder HBV breiten sich weltweit immer stärker aus. Neue Testverfahren auf Basis der Verwendung sensitiver Amplifikationstechniken wie PCR oder NASBA ermöglichen einen hocheffizienten Virusnachweis und werden immer stärker als diagnostische Instrumentarien eingesetzt.
Dem Fachmann ist bekannt, dass ein essentieller Schritt für die Anwendung dieser Techniken zum Nachweis pathogener Nukleinsäuren in der Isolierung der Nukleinsäuren (RNA oder DNA) aus relevanten komplexen klinischen Proben besteht. Ohne eine solche hocheffiziente Isolierung z.B. viraler Nukleinsäuren kann auch keine ausreichend sensitive Diagnostik durchgeführt werden.
Zum jetzigen Zeitpunkt erfolgt die Isolierung von z.B. viraler Nukleinsäuren aus Blutprodukten üblicherweise über die Lyse des Ausgangsmaterials mit einem Puffer, welcher chaotrope Komponenten hoher Ionenstärke enthält und der nachfolgenden Bindung der Nukleinsäuren an eine feste Phase (z.B. Membranfilter). Die gebundenen Nukleinsäuren werden an der festen Phase gewaschen und final von der festen Phase mit einem Puffer geringer Ionenstärke wieder abgelöst. Das Verfahren ist unter u.a. im Patent US 5,234,809 A dargestellt und weltweit unter dem Namen „Boom-Patent" bekannt. Das Verfahren beschreibt exakt die Isolierung von Nukleinsäuren aus nukleinsäurehaltigen Ausgangsmaterialien durch Inkubation des Ausgangsmaterials mit einem chaotropen Puffer und einer DNA-bindenden festen Phase. Die chaotropen Puffer realisieren sowohl die Lyse des Ausgangsmaterials als auch die Bindung der Nukleinsäuren an die feste Phase. Das Verfahren ist gut geeignet , um Nukleinsäuren aus kleinen Probenmengen zu isolieren und findet speziell im Bereich der Isolierung viraler Nukleinsäuren seine praktische Anwendung.
Ein Hauptproblem bei der Isolierung viraler und bakterieller Nukleinsäuren besteht nun in der Realisierung einer ausreichend hohen diagnostischen Sensitivität, da in der Regel die Anzahl viraler Kopien (oder die Kopienzahl anderer mikrobieller Erreger) in einer komplexen biologischen Probe sehr gering ist. Bisherige Lösungen zur Erhöhung der Extraktionseffizienz betreffen die Erhöhung des Volumens der zu untersuchenden klinischen Probe oder die Anreicherung von viralen Partikeln durch Zentrifugationstechniken. Dem Fachmann wird deutlich, dass diesen Varianten engen Grenzen gesetzt sind.
So führt eine Erhöhung des Ausgangsvolumens der klinischen Probe mit den zur Zeit Verwendung findenden Extraktionsverfahren zu einer notwendigen proportionalen bzw. auch überproportionalen Erhöhung notwendiger Reaktionspuffer. Dies bewirkt nachfolgend eine Vervielfachung von notwendigen Zentrifugationsschritten, um das vergrößerte Volumen der zu bearbeiteten Probe auf einen Zentrifugationsfilter zu übertragen, an welchem letztlich die Bindung der zu isolierenden Nukleinsäure erfolgen soll.
Dadurch erhöhen sich der manuelle Aufwand für die Extraktion, die Extraktionszeit sowie das Kontaminationrisiko.
Ein weiteres Problem bei der Isolierung insbesondere viraler Nukleinsäuren für einen nachfolgenden diagnostischen Nachweis besteht darin, dass für die Extraktion der Nukleinsäuren eine Reihe von Reaktionskomponenten in ein die Probe enthaltenes Reaktionsgefäß pipettiert werden müssen.
Die Aufgabe der vorliegenden Erfindung bestand deshalb darin, nach Möglichkeiten zu suchen, welche alle die bestehenden Probleme im Zusammenhang mit der Handhabung einer auf das Vorliegen mikrobieller Nukleinsäuren zu untersuchenden komplexen biologischen Probe beseitigen und Reaktionsansätze zu finden, die gestatten, die Verfahren zur Isolierung mikrobieller Nukleinsäuren aus Patientenproben zu vereinfachen und zu weiter zu automatisieren, um eine parallele Probenbearbeitung im Hochdurchsatz zu ermöglichen. Weiterhin sollen mit diesen Reaktionsansätzen bekannte Risiken von Kreuzkontaminationen über die Reduktion von Arbeitsschritten deutlich gesenkt werden.
Die Erfindung wird durch die Ansprüche 1, 8, 1 1 und 12 realisiert, die Unteransprüche sind Vorzugsvarianten.
Die Aufgabe konnte durch Standardreaktionsgefäße ( wie z.B. 1.5 ml oder 2.0 ml Eppendorf Reaktionsgefäße oder 96-Well bzw. 386 Well Mikrotiterplatten), welche alle Komponenten, die zur Aufnahme und ggf. Lagerung von komplexen flüssigen Patientenproben geeignet sind, enthalten, wobei die Proben anschließend (zu einem beliebigen Zeitpunkt) auf das Vorhandensein pathogener mikrobieller Nukleinsäuren (Bakterien, Viren etc.) untersucht werden sollen. D. h, es werden Reaktionsräume bereitgestellt, die für die Lyse einer biologischen Probe für die nach dem Stand der Technik verwendete Extraktionsmethoden und den diagnostischen Nachweis mikrobieller Nukleinsäuren benötigt werden, enthalten. Bevorzugt handelt es sich um Reaktionsräume, die alle für die Isolierung pathogener Nukleinsäuren aus Patientenproben Komponenten in einer komplexen, lagerstabilen Formulierung aufweist:
Insbesondere handelt es sich zum Nachweis mikrobieller Nukleinsäuren um:
Standard-Reaktionsräume umfassend
1. mindestens eine Standardnukleinsäure (Kontrollstandard zur Überprüfung der Extraktionseffizienz)
2. mindestens eine Carrier Nukleinsäure (notwendig um auch geringste Mengen an mikrobiller Nukleinsäure extrahieren zu können)
3. eine Lysepufferformulierung und
4. ggf. ein proteolytisches Enzym (z.B. eine Proteinase)
Alle diese Komponenten sind als weitgehend oder vollständig wasserfreie Reagenzienformulierung in den Reaktionskavitäten enthalten und weisen auf Grund ihrer geringen Quantität nahezu kein Volumen aus. Die Herstellung der komplexen lagerstabilen Reagenzienformulierungen erfolgt fachgemäß, vorzugsweise entweder durch Vakuumtrocknung oder durch Lyophilisierung.
Die so präparierten Reaktionsräume besitzen zahlreiche Vorteile. Insbesondere sind sie als Bestandteil von Testkits zum Nachweis und zur Isolierung pathogener Nukleinsäuren geeignet. So ermöglichen sie die Bearbeitung einer komplexen biologischen Probe mit dem Ziel des quantitativen Nachweises pathogener Nukleinsäuren, welche durch das Überführen der Probe in das erfindungsgemäße Reaktionsgefäß beginnt. Alle Komponenten zur Lyse des Ausgangsmaterials sowie für eine quantitative Nukleinsäurediagnostik notwendige Extraktionsstandards befinden sich schon im Reaktionsgefäß. Somit sind keine weiteren Pipettierschritte zur Zugabe von Puffern oder anderen essentiellen Komponenten mehr notwendig. Damit reduziert sich der notwendige „hands-on"-Aufwand drastisch bei gleichzeitig deutlich verringertem Kontaminationsrisiko. Dies ist um so bedeutsamer, je mehr Proben parallel bearbeitet werden sollen. Dem Fachmann wird auch ersichtlich, dass sich die Automation unter Einbeziehung der erfindungsgemäßen Reaktionsmaterialien sehr einfach gestaltet.
Ein weiterer wesentlicher Vorteil besteht darin, dass unter Verwendung der erfindungsgemäßen Reaktionsräume das Volumen der zu untersuchenden klinischen Probe deutlich erhöht werden kann. Durch das vollständige Fehlen flüssiger Reaktionskomponenten entspricht letztlich das Volumen der zugegebenen Probe auch dem Volumen der Gesamtreaktion. Die bisher notwendigen multiplen Beladungsschritte von Zentrifugationfiltern bei Erhöhung des Volumens der biologischer Probe entfallen. Nach der erfolgten Lyse des Ausgangsmaterials wird das Lysat mit definierten Anteilen z.B. eines Alkohols versetzt und nachfolgend über eine feste Phase, welche in der Lage ist, die Probennukleinsäure zu binden, gegeben. Die feste Phase wird nachfolgend mit ethanolhaltigen Waschpuffern gewaschen und die Probennukleinsäure einschließlich des Extraktionsstandards durch Zugabe eines Niedrigsalzpuffers von der festen Phase abgelöst. Die Nukleinsäure steht nun einer nachfolgenden quantitativen Analytik zur Verfügung. Der erfindungsgemäße Testkit umfasst neben den Reaktionsräumen weiterhin
- eine dem Fachmann bekannte feste Phase zur Bindung von Nukleinsäuren
- ggf. an sich bekannte Bindungspuffer
- ggf. an sich bekannte Waschpuffer,
- ggf. an sich bekannte Niedrigsalzpuffer sowie ggf. weitere dem Fachmann bekannte Hilfsstoffe.
Überraschenderweise zeigt sich auch, dass die Probennukleinsäure nach der Durchführung der notwendigen Waschschritte und einer nachfolgenden Trocknung der festen Phase an dieser langzeitlagerstabil verbleibt. Dies hat den Vorteil, dass die Nukleinsäure in dieser gebunden Form problemlos bei Umgebungstemperatur gelagert oder auch versendet werden kann. Aufwendige Langzeitlagerungen von Probennukleinsäuren bei -80°C bzw. auch die Lagerung unter Zusatz von Ethanol sind damit nicht mehr notwendig. Bei Bedarf wird die Probennukleinsäure einfach durch die Zugabe eines Niedrigsalzpuffers von der festen Phase abgelöst und der Diagnostik zugeführt. Überraschenderweise kann auch RNA so über lange Zeiträume ohne das Auftreten von Degradierungen gelagert und zu einem gewünschten Zeitpunkt von der festen Phase abgelöst werden. Damit steht eine völlig neues Archivierungssystem für Probennukleinsäuren zur Verfügung.
Die festen Phasen sind üblicherweise Bestandteile von Filtrationseinheiten, welche als "single Tube" als auch als multiple Varianten von Einzelreaktionskavitäten (z.B. 96-Well- Filtrationsplatten, 384-Well-Filtrationsplatten etc) vorliegen können. Sie sind damit kompatibel zu den erfindungsgemäßen Reaktionskavitäten und erlauben somit die Isolierung bzw. Archivierung von Probennukleinsäuren in den unterschiedlichsten Formaten.
Ein weitere Vorteil der eingesetzten Reaktionsräume zeigt sich darin, dass nach Zugabe der flüssigen Patientenprobe die enthaltene Nukleinsäure unter den verwendeten Lysepufferformulierungen und zugesetzten Carrier-Nukleinsäuren protektiert wird. Dies erlaubt den Transport der Probe ohne Kühlung und vereinfacht somit auch erheblich die Logistik der Probensammlung und Probenversendung für eine nachfolgende quantitative Diagnostik speziell mikrobieller Nukleinsäuren. Letztlich sei bemerkt, dass das erfindungsgemäße Mittel auch für viele andere Fragestellungen einer molekularen Diagnostik eingesetzt werden kann und somit nicht nur auf die Anwendung in der mikrobiellen Diagnostik beschränkt ist.
Die Anwendung der e.g. Reaktionsräume soll nachfolgend an einem Beispiel näher erläutert werden.
Ausführungsbeispiel
Isolierung von viralen Nukleinsäuren aus KörperflUssigkeiten (Serum, Plasma, Urin etc.)
Mischen von 200 μl Serum mit 200 μl H2O. Überführen der Probe in den erfindungsgemäßen Reaktionsraum (2 ml Reaktionsgefäß) enthaltend eine lagerstabile Reagenzienformulierung in wasserfreier oder weitgehend wasserfreier Form, bestehend aus:
1. DNA und RNA eines synthetischen Gens (pMSl; Springer Lab Manual; Quantication of mRNA by Polymerase Chain Reaction; Springer Verlag 1995) als Standardnukleinsäure für die Extraktionskontrolle
2. tRNA als Carrier-Nukleinsäure
3. Lysepuffer enthaltend CTAB, Polyvinylpyrrolidone, Ammoniumchlorid, Tris-HCl, Proteinase K
Mischen des Ansatzes und Inkubation für 10 min bei 56°C in einem Thermomixer. Nachfolgend Zugabe von 400 μl Isopropanol und Überführen des Ansatzes auf ein Zentrifugationssäulchen (z.B. Zentrifugationssäulchen der Firma Invitek mit enthaltendem Glasfasermaterial). Zentrifugation für 1 min und Verwerfen des Filtrates. Zweimaliges Waschen des Zentrifugationssäulchens mit ethanolhaltigen Waschpuffern. Trocknung des Zentrifugationssäulchen durch 3 minütige Zentrifugation.
Zugabe von 80 μl eines Elutionspuffers (10 mM Tris HC1; pH 8.5) zum Zentrifugationssäulchen und Zentrifugation für 1 min.
Der Nachweis der isolierten viralen RNA und oder DNA erfolgt mittels bekannter Amplifikationstechniken.

Claims

Patentansprüche
1. Reaktionsräume zur Aufnahme und Lagerung komplexer biologischer Proben umfassend komplexe lagerstabile Reagenzienformulierungen in fester Form, die zur Lyse von Nukleinsäuren geeignet sind.
2. Reaktionsräume nach Anspruch 1, gekennzeichnet durch Standard-Reaktionsräume umfassend mindestens eine Standardnukleinsäure mindestens eine Carrier Nukleinsäure eine Lysepufferformulierung wobei alle Komponenten als weitgehend oder vollständig wasserfreie
Reagenzienformulierung enthalten sind.
3. Raktionsräume nach Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Standard- Reaktionsräume 1,5 ml oder 2 ml Reaktionsgefäße, 96 Well-Mikrotiterplatten oder 384 Well Mikrotiterplatten sind, wobei die einzelnen Wells identische oder verschiedene Reagenzien beinhalten.
4. Reaktionsräume nach Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, dass sie Standardnukleinsäuren als Kontrollstandard zur Überprüfung der Extraktionseffizienz beinhalten.
5. Reaktionsräume nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass sie als Carrier Nukleinsäuren (notwendig um auch geringste Mengen an mikrobiller Nukleinsäure extrahieren zu können) RNA, poly-RNA oder DNA beinhalten.
6. Reaktionsräume nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass sie als Lysepufferformulierung Detergentien, ein- oder mehrwertige Kationen, Tris-HCl, Polyvinylpyrrolidon und andere Bestandteile beinhalten.
7. Reaktionsräume nach einem der Ansprüche 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, dass sie zusätzlich eine oder mehrere proteolytische Enzyme, vorzugsweise Proteinasen wie Proteinase K, beinhalten.
8. Verwendung der Reaktionsräume nach einem der Ansprüche 1 bis 7 zum Nachweis viraler und bakterieller Nukleinsäuren.
. Verwendung der Reaktionsräume nach einem der Ansprüche 1 bis 7 zum Nachweis von Nukleinsäuren aus pathogenen Mikroorganismen, wie z. B. aus Hefen oder Protozoen.
10. Verwendung der Reaktionsräume nach einem der Ansprüche 1 bis 7 zur Isolierung mikrobieller Nukleinsäuren.
1 1. Testkit zum Nachweis und zur quantitativen Isolierung mikrobieller, vorzugsweise viraler und bakterieller Nukleinsäuren, umfassend
Reaktionsräume nach einem der Ansprüche 1 bis 7 eine feste Phase zur Bindung der Nukleinsäure ggf. Bindungspuffer ggf. Waschpuffer ggf. Niedrigsalzpuffer.
12. Archivierungssystem für klinisch relevante Nukleinsäuren umfassend eine feste Phase gemäß Anspruch 1 1 die die gebundene Nukleinsäure lagerstabil in weitgehend oder vollständig trockenem Zustand aufweist.
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