WO2002040706A2 - Procede et milieu de detection/identification de microorganismes - Google Patents

Procede et milieu de detection/identification de microorganismes Download PDF

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WO2002040706A2
WO2002040706A2 PCT/FR2001/003611 FR0103611W WO0240706A2 WO 2002040706 A2 WO2002040706 A2 WO 2002040706A2 FR 0103611 W FR0103611 W FR 0103611W WO 0240706 A2 WO0240706 A2 WO 0240706A2
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Céline ROGER-DALBERT
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    • G01N2496/25—Reference solutions for assays of biological material containing added polymers to stabilise biological material against degradation or maintain viscosity or density, e.g. gelatin, polyacrylamides or polyvinyl alcohol

Definitions

  • the field of the invention is that of microbiological analysis by biochemical means, and in particular the detection and identification of bacterial strains by seeding reaction media, in particular nutritive media.
  • the latter include chromogenic or fluorogenic substrates capable of reacting with the specific enzymes of the desired strains, producing a coloration or a fluorescence of each colony concerned.
  • microorganisms or quality indicators we are more particularly interested in the detection / identification of pathogenic microorganisms or quality indicators, whether in the medical or industrial environment, and more particularly of microorganisms with enzymatic activity of esterase, osidase, peptidase, sulfatase or phosphatase type, for example bacteria or yeasts of the genera Salmonella, Pseudomonas, Listeria, Staphylococcus, Enterococcus, Candida and more particularly of the species Escherichia coli, Listeria monocytogenes,
  • the cher'Escherichia coli strains are often highlighted by the revelation of an enzymatic activity of the osidase type such as the ⁇ -glucuronidase or ⁇ -galactosidase activity.
  • the genus Listeria is detected by demonstrating ⁇ -glucosidase activity.
  • Aminopeptidase activity can also be used to reveal a group, genus or species of microorganisms.
  • Alanine-aminopeptidase activity for example, differentiates Gram negative bacteria from Gram positive bacteria.
  • the genus Salmonella responsible in humans for various infections (typhoid fever, food poisoning), has non-specific esterases capable of hydrolyzing synthetic chromogenic, for example indigogenic, substrates.
  • the detection / identification of salmonella, and more generally of bacteria with esterase activity is conventionally carried out on agar or liquid isolation media, which allow the detection / identification of suspicious colonies of bacteria with esterase activity, in particular salmonella.
  • the seeding of such media is carried out by soaking said medium in the analyzed sample or by bringing the sample into contact with the medium.
  • Patent FR-2 697 028 discloses a culture medium for the detection of salmonella comprising a chromogenic esterase substrate constituted by an ester of caprylic acid with an indole residue (5-Bromo-4-chloro-3- indolyl-caprylate), as well as a detergent chosen from bile salts (Sodium deoxycholate). This chromogen and this bile salt are contained in a nutritive medium allowing the growth of salmonella. According to the teaching of FR-2 697 028, the bile salt is added directly to the selective medium in which the esterase substrate is already included.
  • This culture medium does not offer all the desirable guarantees in terms of stability of the esterase substrate. In addition, it turns out that the latter is not completely miscible with the culture medium. It is clear that this affects the quality of the results obtained in terms of sensitivity, speed and stability.
  • the culture medium according to FR-2 697 028 is in the form of powder. This forces the user to perform a prior reconstitution operation of the liquid or gelled medium. This constraint results from the lack of stability of the esterase substrates used.
  • the agar medium prepared according to the teaching of FR-2 697 028 is not translucent. This risks compromising the reading of colorations associated with possible colonies of target bacteria.
  • PCT patent application WO-92/17607 relates to a detection medium for salmonella containing TERGITOL-4® (hydrogenated sulfate of 7-ethyl-2-methyl-4-undecanonate or its sodium salt).
  • TERGITOL-4® hydrogenated sulfate of 7-ethyl-2-methyl-4-undecanonate or its sodium salt.
  • the concentration of TERGITOL-4® can vary from 2 to 30 ml / l in the culture medium based on agar-xylose-lysine agar. According to this document, the detection of salmonella rests solely on a principle of selective growth by competition.
  • PCT application WO-99/41409 relates to chromogenic esterase substrates for the detection of salmonella.
  • a chromogenic compound which reacts with an esterase / lipase specific for the genus Salmonella and having an affinity for C8 fatty acid esters.
  • the chromogenic compound in question comprises an anion and a cation of the formula: [4- [2- (4-octanoyloxy-3,5-dimethoxyphenyl) -vinyl] - quinolinium-l- (propan-3-yl) carboxylate] + , " [bromide or chloride].
  • the substrates used are C8 esters, for example, of the carboxylate cation.
  • the method according to WO-99/41409 describes the use of Sorbitan ester and fatty acids (in particular: monolauric acid: TWEEN® 20). These products are used as detergent at a rate of 2 g per liter of medium.
  • the specific substrate according to the teaching of this PCT application can be introduced into the nutritive culture medium in admixture with Methanol, Ethanol or N, N-Dimethylformamide (DMF). Any detergent is not introduced together with the substrate and the solvent, but separately.
  • WO-99/41409 are not presented as providing an improvement in the stability of the enzyme substrates contained in the detection medium. Also known from various documents, culture media comprising several substrates for the detection of a single enzymatic activity, but also culture media comprising several substrates making it possible to detect different enzymatic activities.
  • Document WO-95/04157 describes, for example, culture media comprising different chromogenic substrates of osidases, such as 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl galactoside, 5-bromo-4-chloro-3- indoxyl glucuronide, 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl glucoside or even 6-chloro-3-indoxyl galactoside.
  • osidases such as 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl galactoside, 5-bromo-4-chloro-3- indoxyl glucuronide, 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl glucoside or even 6-chloro-3-indoxyl galactoside.
  • Such media are used in particular to differentiate bacteria of the species Escherichia coli from other coliforms.
  • This document also describes a medium comprising chromogenic substrates specific for different enzymes, such as osidases and phosphatases. These substrates are, for example, 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl N-acetyl-glucosaminide and 5-bromo-6-chloro-3-indoxyl phosphate.
  • substrates are, for example, 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl N-acetyl-glucosaminide and 5-bromo-6-chloro-3-indoxyl phosphate.
  • Document WO-00/53799 describes a chromogenic medium for detecting Staphylococcus aureus bacteria.
  • This medium comprises two chromogenic substrates in combination and in particular 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl glucoside and 5-bromo-6-chloro-3-indoxyl phosphate.
  • the main interest of such an environment is to avoid false positives or false negatives, as well as to differentiate S. aureus from other species or other genera such as Streptococcus.
  • Esters of Sorbitan and Fatty Acids are known surfactants, widely used in food and pharmaceutical preparations in particular.
  • ESAG Sorbitan and Fatty Acids
  • the emulsions considered are oil in water emulsions (30% by volume of n-tetradecane at pH 6.8). This technical field is relatively distant from that of the detection of bacteria with specific enzymatic activity by color reaction on selective culture medium.
  • one of the essential objectives of the present invention is to provide a medium for detection / identification of bacteria with enzymatic activity chosen from esterase and / or osidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or activities phosphatases, which is constituted so that the sensitivity of the analysis is optimized, that is to say that the intensity of the coloration or of the fluorescence revealing the presence of target bacteria is as strong as possible.
  • Another essential objective of the present invention is to provide a medium for detecting / identifying microorganisms, in particular bacteria or yeasts, with enzymatic activity chosen from esterase and / or osidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or sulfatase activities and / or phosphatases, which is perfectly translucent before seeding with the sample to be analyzed.
  • Another essential objective of the invention is to provide a medium for detecting / identifying microorganisms, in particular bacteria or yeasts with enzymatic activity chosen from the esterase and / or osidase and / or peptidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase activities.
  • esterase substrates and / or osidase substrates and / or peptidase substrates and / or sulfatase substrates and / or phosphatase substrates which comprises at least one enzyme substrate chosen from esterase substrates and / or osidase substrates and / or peptidase substrates and / or sulfatase substrates and / or phosphatase substrates, chromogenic or fluorogenic and which is stable on storage (intensity of the coloring or of the revelation fluorescence maintained at a maximum level at least for several weeks).
  • Another essential objective of the invention is to provide a medium for detecting / identifying microorganisms, in particular bacteria or yeasts with enzymatic activity chosen from the esterase and / or osidase and / or peptidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase activities. , which is not in the form of a dry powder to be regenerated with a liquid to reconstitute a liquid or gelled medium, but which exists directly in ready-to-use forms.
  • Another essential objective of the invention is to provide a medium for detecting / identifying microorganisms, in particular bacteria or yeasts with enzymatic activity chosen from the esterase and / or osidase and / or peptidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase activities.
  • enzymatic activity chosen from the esterase and / or osidase and / or peptidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase activities.
  • Another essential objective of the invention is to provide a process for obtaining the above-mentioned detection / identification medium which is simple to implement and economical.
  • Another essential objective of the present invention is to provide a method of detection / identification of strains with enzymatic activity chosen from the esterase, osidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase activities, which is easy to implement ( routine tests), which is economical (quantity of reagent, handling, labor, speed %) which is reliable, sensitive, specific and reproducible.
  • Another essential objective of the present invention is to propose the use of a new stabilizing additive in detection / identification media for microorganisms, in particular bacteria or yeasts, with enzymatic activity chosen from esterase and / or osidase activities and / or peptidases and / or sulfatases and / or phosphatases, by revelation resulting from a hydrolysis reaction releasing a dye or a fluorescent product.
  • the present invention which firstly relates to a medium for detecting / identifying microorganisms and in particular bacteria and / or yeasts with enzymatic activity chosen from the esterase and / or osidase activities and / or peptidases and / or sulfatases and / or phosphatases, of the type comprising in particular a reaction medium, in particular a culture medium, and at least one substrate for esterases and / or osidases and / or peptidases and / or sulfatases and / or phosphatases, chromogenic or fluorogenic, excluding substrates comprising a cation of 4- [2- (4-octanoyloxy-3,5-dimethoxyphenyl) -vinyl] - quinolinium-l- (propan- 3-yl-carboxylic acid) and an anion, this detection / identification being essentially based on the demonstration of esterase and
  • ESAG Ester of Sorbitan and Fatty Acid
  • AG Fatty Acid
  • AG mixture comprising at least one Ester of Sorbitan and Fatty Acid (s) and at least one fatty acid
  • a medium for detecting / identifying microorganisms and in particular bacteria and / or yeasts with enzymatic activity chosen from the esterase and / or osidase and / or peptidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase activities, according to the invention, can be obtained from the media presented in documents WO-95/04157 and WO-00/53799, described above.
  • the medium according to the invention has the advantage of being a ready-to-use medium which is in liquid or semi-liquid form (gel) without this posing any problem as to stability.
  • the substrates of esterases and / or osidases and / or peptidases and / or sulfatases and / or phosphatases, present in this medium and yet known for their tendency to relatively rapid degradation, are stabilized thanks to the presence of the stabilizing-emulsifying additive ESAG, AG or ESAG / AG.
  • This additive induces another advantage which is to allow excellent dissolution of the substrates of esterases and / or osidases and / or peptidases and / or sulfatases and / or phosphatases, traditionally recalcitrant to the solution.
  • This allows translucent detection / identification media to be obtained before seeding. This makes it easier to read colored or fluorescent results.
  • This ESAG, AG or ESAG / AG additive is inexpensive and allows a simplification of the processing and a reduction in the amount of substrates used (stabilization). This results in a certain economic gain.
  • the means according to the invention are at the origin of a better biological activity of the aforementioned substrates, which results in a more intense coloration of the target colonies and by better specificity.
  • the detection / identification medium which it relates to is obtained by mixing at least one stock solution of substrate in the solvent S and ESAG or AG or ESAG / AG mixture, added to at least part of the constituents of the culture medium.
  • ESAG, AG, ESAG / AG and solvent S is then incorporated into at least part of the culture medium, which is preferably in gelled form by supercooling. It has been found that this operating characteristic allows optimization of the advantageous results produced by the means according to the invention.
  • the ESAG is selected from the group comprising: • polyoxyethylenated sorbitan monolaurate comprising 20 ethylene oxide (O.E) units, -TWEEN® 20-;
  • the GA is selected from the group comprising C4-C20 saturated or unsaturated fatty acids, preferably C6-C11 saturated or unsaturated fatty acids and more preferably C8-C9 fatty acids, and mixtures thereof.
  • the particularly selected products are Sorbitan esters widely used in the food industry and in the cosmetic industry as non-ionic emulsifiers, but hitherto they had never been used in detection media. / microbiological identification, as stabilizers with respect to esterase and / or osidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase substrates.
  • the "Hydrophilic-Lipophilic-Balances" (HLB) of the above-mentioned ESAGs are respectively: 8.6; 6.7; 4.7; 2.1; 4.3; 3.7; 1.8.
  • the stabilizing-emulsifying agent or agents described above, in particular the ESAG (s) can be combined with at least one synergistic co-agent, preferably at least one anionic surfactant, preferably 7-Ethyl-2-methyl-4-undecylhydrogenosulfate or its salts and more particularly its sodium salts (TERGITOL-4®).
  • synergistic co-agent facilitates the detection of the enzymatic activity in the target bacteria. It is an excellent complement to the stabilizing-emulsifying agent (s) and in particular ESAGs. It makes it possible to improve the selectivity and the detection of the esterase and / or osidase and / or peptidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase activities of the target microorganisms, without harming the expression of other enzymatic activities which could possibly be used. for the detection of the target microorganisms considered.
  • the synergistic co-agent TERGITOL-4® has an action which promotes penetration of esterase and / or osidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase, chromogenic or fluorogenic substrates or the excretion of enzymes through the cell membranes of target microorganisms, thus optimizing the accessibility of these substrates vis-à-vis the enzymes whose activity is sought. This makes it possible to reduce the quantity of substrates used, hence a certain economic advantage.
  • the association TWEEN® and TERGITOL-4® appears to be quite effective in the detection / identification medium according to the invention.
  • the chromogenic or fluorogenic substrate consisting of a target part of the enzyme and a chromophore or fluorophore part
  • esterase substrates examples include chromogenic ester substrates derived from Indole and in particular 5-Bromo-3-indolyl nonanoate, 6-Chloro-3-indolyl nonaoate or 5-Bromo-3-indolyl decanoate .
  • chromogenic esterase substrates derived from Anthraquinone mention may be made of 2-Alizarin octanoate.
  • osidase substrates mention may be made of chromogenic osidase substrates derived from Indole and in particular 6-chloro-3-indolyl- ⁇ -galactoside, 5-bromo-4-chloro-3-indolyl- ⁇ -N-acetylglucosaminide, 5-bromo-6-chloro- ⁇ -glucoside.
  • chromogenic osidase substrates derived from Anthraquinone mention may be made of 2-Alizarin- ⁇ -glucuronide.
  • substrates for fluorogenic osidases mention may be made of substrates derived from hydroxycoumarin and in particular 4-methylumbelliferone- ⁇ -glucoside.
  • substrates for chromogenic peptidases mention may be made of substrates derived from Indole.
  • the substrates for fluorogenic peptidases are in particular the substrates derived from hydroxycoumarin, such as analog-amino-methylcoumarin.
  • chromogenic substrates derived from Indole, in particular 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-sulfate.
  • the substrates for fluorogenic sulfatases are for example 4-methylumbelliferone-sulfate.
  • chromogenic substrates derived from Indole such as 5-bromo-4-chloro-3-indolylphosphate.
  • the substrates for fluorogenic phosphatases are for example 4-methylumbelliferone phosphate.
  • the solvent S is an auxiliary for solubilizing the substrate of enzymes of interest, in particular chromogenic. It also complements the action of the emulsifying stabilizing agent ESAG, AG or ESAG / AG. It is therefore preferably a constituent of the medium according to the invention. According to an advantageous arrangement of the latter, the solvent S is selected from the group comprising:
  • alcohols preferably methanol, ethanol, methoxyethanol,
  • DMF DiMethylFormamide
  • - sulfur solvents preferably DiMethylSulfOoxide (DMSO)
  • - aqueous solvents preferably water, buffered water
  • the solvents preferably used are methanol, DMF and DMSO.
  • the concentration of [ESAG] in the medium is defined as follows (in% by weight): 0.1 ⁇ [ESAG] ⁇ 10, preferably 0.5 ⁇ [ESAG] ⁇ 5, and more preferably still 1.5 ⁇ [ESAG] ⁇ 3.5.
  • the quantities used are such that its concentration in the medium is defined as follows (in mg / 1):
  • the culture medium present in the detection / identification medium it can be specified that it is selected from the group comprising:
  • the medium according to the invention is particularly suitable for the detection / identification of microorganisms of medical or industrial interest, and in particular those of the genus Salmonella, Pseudomonas, Listeria, Staphylococcus, Enterococcus or Candida.
  • Mac Conkey medium will be chosen as the culture medium.
  • the medium according to the invention may contain any other additives such as for example: one or more other enzymatic substrates, for example chromogenic or fluorogenic, peptones, one or more growth factors, carbohydrates, one or more selective agents, buffers, and one or more gelling agents.
  • one or more other enzymatic substrates for example chromogenic or fluorogenic, peptones, one or more growth factors, carbohydrates, one or more selective agents, buffers, and one or more gelling agents.
  • the medium according to the invention is in the form of a liquid or gel ready for use, that is to say ready for seeding in a tube, flask or on petri dishes.
  • the medium according to the invention can be stored for several weeks at 4 ° C. in its containers and in liquid or gel form.
  • the present invention also relates to a process for obtaining the medium as defined above, characterized in that it essentially consists:
  • the preparation of the mother solution is carried out separately by successively incorporating the substrate, the solvent S and the ESAG, AG or ESAG / AG mixture, optionally co-additivated.
  • the products and the quantities used are as defined above.
  • the stock solution is added to the gelled culture medium which is supercooled and regenerated beforehand in water. It can also be a non-gelled liquid medium, for example a nutritive broth.
  • the liquid or gelled detection medium After mixing the culture medium and the mother solution, the liquid or gelled detection medium is obtained, ready to be seeded.
  • the invention also relates to a method for detecting identification of strains with esterase and / or osidase and / or peptidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase activity consisting of:
  • the detection / identification medium as defined above as a product per se or as a product obtained by the process also described above, with the sample containing the target bacteria to be analyzed; - incubate the seeded medium under appropriate conditions known to those skilled in the art;
  • the invention also relates to the use of Ester (s) of Sorbitan and of Fatty Acid (s) (ESAG), of Fatty Acids (AG) or of an ESAG / AG mixture, as stabilizing-emulsifying agent for medium (liquid or gel) for detection / identification of microorganisms, in particular bacteria or yeasts, with enzymatic activity chosen from esterase and / or osidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase activities, this medium comprising in particular a reaction medium and at least one chromogenic or fluorogenic esterase and / or osidase and / or peptidase and / or sulfatase and / or phosphatase substrate, excluding substrates comprising a 4- [2- (4-octanoyloxy-) carboxylate 3,5-dimethoxyphenyl) -vinyl] -quinolinium- 1 - (
  • Example 1 Solubility test of an Indoxyl-based esterase substrate, the
  • the most optically homogeneous media are media 3, 4 and 5: media with the highest methanol concentration. However, the appearance of these media is “milky”: it would therefore seem that the esterase substrate is in the form of an emulsion.
  • Medium 2 has better optical homogeneity than medium 1. Either the esterase substrate is completely dissolved, or it is in the form of an emulsion whose micellar particles are no longer visible to the eye.
  • Example 3 biological test of the two media described in the previous example
  • Microorganisms from the Applicant's collection were seeded on each of the two media previously described by isolation in three dials from a suspension at 0.5 McFarland. The dishes were incubated at 37 ° C for 48 hours. The colonies formed were examined visually after 24 and 48 hours of incubation. The coloration of these colonies as well as the intensity of this coloration were noted. The results are presented in Table 3 below.
  • color intensity arbitrary scale; -: lack of coloring and intensity
  • the medium containing Tween®20 therefore makes it possible to obtain more intense colorings for the strains of microorganisms exhibiting esterase activity.
  • the substrate is therefore used more either because it is better dissolved or because it is more available. Naked the difference in intensity between the two media, it seems possible, in the presence of Tween®20, to decrease the concentration of substrate used and therefore to reduce the cost generated by the use of this type of substrate.
  • Example 4 Test of this mode of dissolution for another Indoxyl derivative (chromogenic esterase substrate) on Gram-positive and Gram-negative bacterial species and on yeasts
  • a 40 g / l stock solution of 5-Bromo-4-chloro-3-indolyl octanoate (chromogenic esterase substrate) was produced in a Methanol mixture (40%) Tween®20 (60%). Then a volume corresponding to a final concentration of 500 mg / 1 of substrate a was added in a gelled medium by supercooling: a Columbia type medium. This medium was poured into petri dishes.
  • Microorganisms from the Applicant's collection were seeded by isolation in three dials from a suspension at 0.5 McFarland. The dishes were then incubated at 37 ° C for 48 hours. The colonies formed were examined visually after 24 and 48 hours of incubation. The coloration of these colonies as well as the intensity of this coloration were noted. The results are presented in Table 4 below.
  • color intensity arbitrary scale; -: lack of coloring and intensity
  • Example 5 replacement of methanol with other solvents in the presence of Tween 20 and in the absence or presence of bile salts
  • Microorganisms from the Applicant's collection were seeded on each of the six media previously described by isolation in three dials from a suspension at 0.5 McFarland. The dishes were incubated at 37 ° C for 48 hours. The colonies formed were examined visually after 24 and 48 hours of incubation. The coloration of these colonies as well as the intensity of this coloration were noted. The results are presented in Table 8 below.
  • Example 7 Test of the solubilization process on an esterase substrate having a marker part other than an Indoxyl
  • the substrate tested is 1,2-Dihydroxyanthraquinone octanoate (2-Alizarin octanoate).
  • Different stock solutions of the substrate are produced with DMF or DMSO or methanol or Methoxyethanol as solvent and in all cases in the presence of Tween® 20.
  • Table 9 below shows the appearance of the stock solutions according to their composition.
  • color intensity arbitrary scale; -: lack of coloring and intensity.
  • This dissolution method is therefore not specific to indoxyl esters but can be used in particular with other families of enzymatic substrates.
  • EXAMPLE 8 Test of Different ESAGs Derived from Tween® 20 for the Solubilization of an Esterase Substrate, 5-Bromo-3-Indolyl Nonanoate
  • Different stock solutions of the substrate are made in DMSO in the presence of Tween® 20 or Tween ® 80 (Polyoxyethylenated sorbitan monooleate) or Tween® 60 (Polyoxyethylenated sorbitan monostearate) or Tween® 65 (Polyoxyethylenated sorbitan tristearate). Then a volume corresponding to a final concentration of 500 mg / 1 of substrate is added to a gelled medium by supercooling: Mac Conkey medium. Table 11 shows the composition of the media tested.
  • Microorganisms from the Applicant's collection were seeded on each of the six media previously described by isolation in three dials from a suspension at 0.5 McFarland. The dishes were incubated at 37 ° C for 48 hours. The colonies formed were examined visually after 24 and 48 hours of incubation. The coloration of these colonies as well as the intensity of this coloration were noted. The results are presented in Table 12.
  • I intensity of coloring (arbitrary scale); C: color; TI: incubation time -: colorless
  • Tween 20, Tween 80 and Tween ® 60 allow to obtain good solubility of the substrates and the revealing hydrolysis of the substrate with very suitable staining intensities.
  • Two stock substrate solutions were produced: one at 40 g / l in methanol in the presence of 6.5 g / l of bile salts no 3, the other at 40 g / l in a DMSO mixture (40 %) Tween® 20 (60%). Then a volume corresponding to a final concentration of 500 mg / l of substrate was added to a gelled medium by supercooling, Mac Conkey medium. These two media were poured into Petri dishes with a diameter of 90 mm and stored at + 4 ° C for 8 weeks. After a week, two weeks, four weeks and eight weeks, two media such as those described above were performed extemporaneously.
  • Microorganisms from the Applicant's collection were seeded by isolation in three dials from a suspension at 0.5 McFarland on the two media prepared extemporaneously and the two media stored at + 4 ° C.
  • the dishes were incubated at 37 ° C for 48 hours.
  • the colonies formed were examined visually after 24 and 48 hours of incubation. The coloration of these colonies as well as the intensity of this coloration were noted. The results are presented in the tables below.
  • I intensity of coloring (arbitrary scale); C: color; TI: incubation time -: colorless
  • the medium containing the substrate dissolved in a methanol bile salt mixture exhibits a very significant drop in expression of the esterase activity from 2 weeks of storage. This decline is amplified over time.
  • the medium containing the substrate dissolved in the DMSO and Tween 20 mixture exhibits an expression of the esterase activity constant over time up to at least six weeks. At eight weeks, there is a slight decrease in the expression of the esterase activity but which is not prohibitive. Tween 20 therefore makes it possible to stabilize the esterase substrate and facilitates the conservation and use of culture media containing this type of substrate.
  • Example 10 comparative stability of gelled media containing an osidase substrate, 6-Chloro-3-indoly- ⁇ -n-acetylgIucosaminide, solubilized or not in the presence of Tween® 20
  • Two stock substrate solutions were produced: one at 50 g / l in DMF, the other at 50 g / l in a DMF mixture (40%) Tween® 20 (60%). Then a volume corresponding to a final concentration of 175 mg / l of substrate was added to a gelled medium by supercooling, the Columbia medium without blood. These two media were poured into Petri dishes with a diameter of 90 mm and stored at + 4 ° C for 8 weeks. After three weeks, six weeks, nine weeks and twelve weeks, two media such as those described above were made extemporaneously.
  • Microorganisms from the Applicant's collection were seeded by isolation in three dials from a suspension at 0.5 McFarland on the two media prepared extemporaneously and the two media stored at + 4 ° C.
  • the dishes were incubated at 37 ° C for 48 hours.
  • the colonies formed were examined visually after 24 and 48 hours of incubation. The coloration of these colonies as well as the intensity of this coloration were noted. The results are presented in the tables below.
  • the medium containing the substrate dissolved in DMF alone shows a very significant drop in expression of the ⁇ -N-acetylglucosaminidase activity after three weeks of storage. This decline is amplified over time. It is no longer possible to detect activity at twelve weeks.
  • the medium containing the substrate dissolved in the DMF and Tween 20 mixture exhibits a constant expression of the ⁇ -N-acetylglucosaminidase activity over time up to at least six weeks. At nine and twelve weeks, there is a slight drop in the expression of ⁇ -N-acetylglucosaminidase activity but which is not unacceptable. Tween 20 therefore makes it possible to stabilize the ⁇ -N-acetylglucosaminidase substrate and facilitates the conservation and use of culture media containing this type of substrate.
  • the numbers appended to the strains correspond to the number of each strain referenced in the Applicant's collection.
  • the intensity of coloring corresponds to an arbitrary scale, the meaning of which is as follows:

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Abstract

L'invention concerne un milieu d'analyse biologique par voie biochimique comprenant des substrats chromogènes ou fluorogènes réactifs avec les enzymes spécifiques (estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases) des souches recherchées.Le but de l'invention est d'améliorer la sensibilité, la translucidité initiale, la stabilité et la facilité d'emploi de tels milieux d'identification/détection. Ce but est atteint par le milieu selon l'invention qui se présente sous une forme stable, liquide ou gel prête à l'emploi et qui comporte au moins un agent stabilisant-émulsifiant du type ester de Sorbitan et d'acides gras/acides gras et au moins un solvant (diméthylsulfoxide). Ce milieu est obtenu par mélange d'une solution mère de substrats d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, dans le solvant et l'agent stabilisant-émulsifiant, avec une partie des constituants du milieu de culture.L'invention concerne également la préparation d'un tel milieu et l'utilisation d'ester de Sorbitan et d'acides gras/acides gras à titre de stabilisant-émulsifiant dans un milieu de détection/identification de microorganismes, notamment de bactéries ou de levures, à activités estérase et/ou osidase et/ou peptidase et/ou sulfatase et/ou phosphatase.

Description

PROCÉDÉ ET MILIEU DE DÉTECTION/DDENTIFICATION DE
MICROORGANISMES À ACTIVITÉ ESTERASE ET/OU OSIDASE ET/OU
PEPTIDASE ET/OU SULFATASE ET/OU PHOSPHATASE
Le domaine de l'invention est celui de l'analyse microbiologique par voie biochimique, et en particulier de la détection et de l'identification de souches bactériennes par ensemencement de milieux réactionnels, en particulier des milieux nutritifs. Ces derniers comprennent des substrats chromogènes ou fluorogènes susceptibles de réagir avec les enzymes spécifiques des souches recherchées, en produisant une coloration ou une fluorescence de chaque colonie concernée. Dans le cadre de la présente invention, on s'intéresse plus particulièrement à la détection/identification de micro-organismes pathogènes ou indicateurs de qualité, que ce soit dans le milieu médical ou le milieu industriel, et plus particulièrement de microorganismes à activité enzymatique du type esterase, osidase, peptidase, sulfatase ou phosphatase, par exemple les bactéries ou levures des genres Salmonella, Pseudomonas, Listeria, Staphylococcus, Enterococcus, Candida et plus particulièrement encore des espèces Escherichia coli, Listeria monocytogenes,
Staphylococcus aureus, Candida albicans.
Les souches ύ'Escherichia coli sont souvent mises en évidence par la révélation d'une activité enzymatique du type osidase telle que l'activité β-glucuronidase ou β- galactosidase.
De la même façon, le genre Listeria est détecté par la mise en évidence de l'activité β-glucosidase.
Une activité aminopeptidase peut également être utilisée pour révéler un groupe, un genre ou une espèce de micro-organismes. L'activité Alanine- aminopeptidase, par exemple, permet de différencier les bactéries à Gram négatif des bactéries à Gram positif.
Le genre Salmonella, responsable chez l'homme de diverses infections (fièvre typhoïde, intoxication alimentaire), possède des estérases non spécifiques capables d'hydrolyser des substrats synthétiques chromogènes, par exemple indigogéniques. La détection/identification de salmonelles, et plus généralement de bactéries à activité esterase est classiquement réalisée sur des milieux géloses ou liquides d'isolement, qui permettent la détection/identification des colonies suspectes de bactéries à activité esterase, notamment les salmonelles. L'ensemencement de tels milieux s'opère par trempage dudit milieu dans l'échantillon analysé ou par mise en contact de l'échantillon avec le milieu.
Les bactéries à activités estérases, osidases, peptidases, sulfatases ou encore phosphatases possèdent dans leur patrimoine enzymatique des estérases, osidases, peptidases, sulfatases ou phosphatases qui clivent les liaisons cibles des substrats présents dans le milieu et qui libèrent ainsi la partie chromophore ou fluorophore activée desdits substrats. Il en résulte une coloration ou une fluorescence qui révèle l'hydrolyse, et donc la présence de bactéries ou de colonies de bactéries cibles. Pour pouvoir réaliser des tests de routine à grande envergure, il est nécessaire que les milieux de détection/identification soient stables et permettent de simplifier au maximum les procédés de détection/identification correspondant, en limitant les manipulations. En outre, il importe que les procédés offrent une haute sensibilité (intensité de coloration), ainsi qu'une spécificité de premier ordre. La vitesse de révélation des colonies suspectes est également un paramètre fondamental de ces types de milieux et procédés de détection/identification de bactéries présentant les activités enzymatiques susmentionnées.
Or, il est connu que les substrats d'enzymes telles que les estérases, les osidases, les peptidases, les sulfatases ou les phosphatases posent des problèmes de compatibilité avec les milieux de culture pour microorganismes et en particulier pour les bactéries possédant ces activités. De plus, de tels substrats ne sont pas stables dans le temps, ce qui induit une diminution de la sensibilité vis-à-vis de l'activité enzymatique concernée avec l'allongement du temps de conservation.
Dans ce contexte, on connaît au travers de l'article scientifique intitulé "Synthèse de substrats indigogéniques. Mise en évidence de l'activité estérasique des salmonelles": A. Agban et al., Eur. J. Med. Chem. (1990) 25, 697-699, des milieux de culture géloses comprenant des substrats indigogéniques, à savoir notamment le Pélargonate (C9) de Bromo-5-indoxyle et un sel biliaire, à savoir le Déoxycholate de Sodium. De tels milieux de culture souffrent des mêmes inconvénients que ceux évoqués ci-dessous en référence au document FR-2 697 028.
Le brevet FR-2 697 028 divulgue un milieu de culture pour la mise en évidence de salmonelles comprenant un substrat d'estérase chromogène constitué par un ester de l'acide caprylique avec un reste indole (5-Bromo-4-chloro-3-indolyl-caprylate), ainsi qu'un détergent choisi parmi les sels biliaires (Désoxycholate de Sodium). Ce chromogène et ce sel biliaire sont contenus dans un milieu nutritif permettant la croissance des salmonelles. Selon l'enseignement du FR-2 697 028, le sel biliaire est ajouté directement au milieu sélectif dans lequel se trouve déjà inclus le substrat d'estérase.
Un autre inconvénient lié à l'emploi de sels biliaires tient au fait que ces derniers sont des matières premières d'origine animale, ce qui sous-tend une certaine variabilité de la qualité.
De plus, les résultats en termes d'activité biologique sont perfectibles. Ce milieu de culture n'offre pas toutes les garanties souhaitables en termes de stabilité du substrat d'estérase. En outre, il s'avère que ce dernier n'est pas complètement miscible avec le milieu de culture. Il est clair que cela nuit à la qualité des résultats obtenus sur le plan de la sensibilité, de la rapidité et de la stabilité. II doit également être noté que le milieu de culture selon le FR-2 697 028 se présente sous forme de poudre. Cela oblige l'utilisateur à exécuter une opération de reconstitution préalable du milieu liquide ou gélifié. Cette contrainte résulte du manque de stabilité des substrats d'estérase mis en oeuvre. De plus, le milieu gélose préparé selon l'enseignement du FR-2 697 028 n'est pas translucide. Ceci risque de compromettre la lecture des colorations associées aux éventuelles colonies de bactéries cibles.
La demande de brevet PCT WO-92/ 17607 concerne un milieu de détection pour salmonelles contenant du TERGITOL-4® (sulfate hydrogéné de 7-éthyl-2-méthyl-4- undécanonate ou son sel de sodium). Cet additif est sensé améliorer la sélectivité du milieu de détection vis-à-vis des salmonelles-cibles. La concentration en TERGITOL- 4® peut varier de 2 à 30 ml/1 dans le milieu de culture à base de gélose agar-xylose- lysine. Selon ce document, la détection de salmonelles repose uniquement sur un principe de croissance sélective par compétition.
La demande PCT WO-99/41409 concerne des substrats d'estérase chromogènes pour la détection de salmonelles.
Il est proposé selon ce document de mettre en oeuvre un composé chromogène qui réagit avec une estérase/lipase spécifique du genre Salmonella et ayant une affinité pour les esters d'acide gras en C8. Le composé chromogène dont il s'agit, comprend un anion et un cation de formule : [4-[2-(4-octanoyloxy-3,5-diméthoxyphényl)-vinyl]- quinolinium-l-(propan-3-yle) carboxylate]+, "[bromure ou chlorure]. Plus précisément, les substrats mis en oeuvre sont des esters en C8 par exemple, du cation carboxylate.
En outre, le procédé selon le WO-99/41409 décrit la mise en oeuvre d'ester de Sorbitan et d'acides gras (en particulier : acide monolaurique : TWEEN® 20). Ces produits sont employés à titre de détergent à raison de 2 g par litre de milieu. En outre, le substrat spécifique selon l'enseignement de cette demande PCT peut être introduit dans le milieu de culture nutritif en mélange avec du Méthanol, de l'Ethanol ou de la N,N-Diméthylformamide (DMF). Le détergent éventuel n'est pas introduit conjointement au substrat et au solvant, mais séparément.
En tout état de cause, les moyens divulgués dans le WO-99/41409 ne sont pas présentés comme procurant une amélioration de la stabilité des substrats enzymatiques contenus dans le milieu de détection. On connaît également au travers de différents documents, des milieux de cultures comportant plusieurs substrats pour la détection d'une seule activité enzymatique, mais également des milieux de culture comportant plusieurs substrats permettant de détecter des activités enzymatiques différentes. Le document WO-95/04157 décrit par exemple, des milieux de culture comportant différents substrats chromogènes d'osidases, tels que le 5-bromo-4-chloro- 3-indoxyl galactoside, le 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl glucuronide, le 5-bromo-4- chloro-3-indoxyl glucoside ou encore le 6-chloro-3-indoxyl galactoside. De tels milieux sont utilisés pour différencier notamment les bactéries de l'espèce Escherichia coli d'autres coliformes.
Ce document décrit également un milieu comportant des substrats chromogènes spécifiques de différentes enzymes, telles que des osidases et phosphatases. Ces substrats sont par exemple, le 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl N-acétyl-glucosaminide et 5-bromo-6-chloro-3-indoxyl phosphate. Un tel milieu permet notamment de différencier Candida albicans, des autres levures du genre Candida.
Le document WO-00/53799 décrit un milieu chromogène de détection de bactéries Staphylococcus aureus. Ce milieu comporte deux substrats chromogènes en combinaison et notamment le 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl glucoside et le 5-bromo-6- chloro-3-indoxyl phosphate. L'intérêt principal d'un tel milieu est d'éviter les faux positifs ou les faux négatifs, ainsi que de différencier les S. aureus d'autres espèces ou d'autres genres tels que les Streptococcus.
Toutefois, rien dans les documents WO-95/04157 et WO-00/53799 n'indique que les milieux décrits ont été élaborés afin d'améliorer la stabilité des substrats enzymatiques qu'ils contiennent. Les Esters de Sorbitan et d'Acides Gras (ESAG) sont des tensioactifs connus, largement utilisés dans les préparations alimentaires et pharmaceutiques notamment. A titre illustratif, on peut citer l'article de DLCKINSON et al. : "J Colloid interface Sci 1999 Apr 15; 212 (2) : 466-473" concernant la stabilisation d'émulsions contenant du Casénate de Sodium et un Monolauréate de Sorbitan polyoxyéthyléné comprenant 20 motifs oxyde d'éthylène (TWEEN 20). Les émulsions considérées sont des émulsions huile dans eau (30% volumique de n-tétradécane à pH 6,8). Ce domaine technique est relativement éloigné de celui de la détection de bactéries à activité enzymatique spécifique par réaction colorée sur milieu de culture sélectif.
Dans l'article GRAM et al : "Clin Chem 1985 Oct; 31(10): 1683-8", il est question de mise en oeuvre de Monooléate de Sorbitan polyoxyéthyléné (TWEEN 80) dans un milieu de dosage de l'antitrombine-III, ce milieu comportant également du Polyéthylène Glycol, une solution de trombine et des substrats peptidiques chromogènes synthétiques. Les additifs mis en oeuvre sont présentés comme permettant l'augmentation de la concentration de thrombine active, de manière à garantir la bonne marche de l'analyse. Une fois de plus, force est de constater que ce genre de préoccupations techniques sont très distinctes de celles propres au milieu de détection de bactéries à activité enzymatique spécifique, à l'aide de milieux de culture sélectifs contenant des substrats chromogènes.
Dans un tel environnement technique, l'un des objectifs essentiels de la présente invention est de fournir un milieu de détection/identification de bactéries à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, qui soit constitué de telle sorte que la sensibilité de l'analyse soit optimisée, c'est-à-dire que l'intensité de la coloration ou de la fluorescence révélant la présence de bactéries-cibles soit la plus forte possible.
Un autre objectif essentiel de la présente invention est de fournir un milieu de détection/identification de microorganismes, notamment de bactéries ou de levures, à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, qui soit parfaitement translucide avant ensemencement par l'échantillon à analyser.
Un autre objectif essentiel de l'invention est de fournir un milieu de détection/identification de microorganismes, notamment de bactéries ou de levures à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, qui comporte au moins un substrat d'enzyme choisi parmi les substrats d'estérases et/ou les substrats d'osidases et/ou les substrats de peptidases et/ou les substrats de sulfatases et/ou les substrats de phosphatases, chromogène ou fluorogène et qui soit stable à la conservation (intensité de la coloration ou de la fluorescence de révélation maintenue à un niveau maximum au moins pendant plusieurs semaines).
Un autre objectif essentiel de l'invention est de fournir un milieu de détection/identification de microorganismes, notamment de bactéries ou de levures à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, qui ne se présente pas sous forme de poudre sèche à régénérer avec un liquide pour reconstituer un milieu liquide ou gélifié, mais qui existe directement sous des formes prêtes à l'emploi.
Un autre objectif essentiel de l'invention est de fournir un milieu de détection/identification de microorganismes, notamment de bactéries ou de levures à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, qui soit économique, notamment du fait qu'il comprend des quantités réduites de substrat(s) d'enzyme, chromogène ou fluorogène, lequel a la particularité d'être coûteux.
Un autre objectif essentiel de l'invention est de fournir un procédé d'obtention du milieu de détection/identification sus visé qui soit simple à mettre en oeuvre et économique.
Un autre objectif essentiel de la présente invention est de fournir un procédé de détection/identification de souches à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases, osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, qui soit facile à mettre en oeuvre (tests de routine), qui soit économique (quantité de réactif, manipulation, main d'oeuvre, vitesse...) qui soit fiable, sensible, spécifique et reproductible.
Un autre objectif essentiel de la présente invention est de proposer l'utilisation d'un nouvel additif stabilisant dans des milieux de détection/identification de microorganismes, notamment les bactéries ou les levures, à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, par révélation résultant d'une réaction d'hydrolyse libérant un colorant ou un produit fluorescent.
Ces objectifs, parmi d'autres, sont atteints par la présente invention qui concerne tout d'abord un milieu de détection/identification de microorganismes et notamment de bactéries et/ou de levures à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, du type de ceux comprenant notamment un milieu réactionnel, en particulier un milieu de culture, et au moins un substrat d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, chromogène ou fluorogène, à l'exclusion des substrats comprenant un cation de 4-[2-(4-octanoyloxy-3,5-diméthoxyphényl)-vinyl]- quinolinium-l-(propan-3-yle-acide carboxylique) et un anion, cette détection/identification reposant essentiellement sur la mise en évidence des activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, ledit milieu : * est sous forme stable liquide ou gel prêt à l'emploi;
* comporte :
- au moins un Ester de Sorbitan et d'Acide(s) Gras (ESAG) ou au moins un Acide Gras (AG) ou un mélange ESAG/AG (comprenant au moins un Ester de Sorbitan et d'Acide(s) Gras et au moins un Acide Gras), à titre d'agent stabilisant-émulsifiant,
- et éventuellement au moins un Solvant (S). Un milieu de détection/identification de microorganismes et notamment de bactéries et/ou de levures à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, selon l'invention, peut être obtenu à partir des milieux présentés dans les documents WO-95/04157 et WO-00/53799, décrits supra.
Le milieu selon l'invention présente l'avantage d'être un milieu prêt à l'emploi se présentant sous forme liquide ou semi-liquide (gel) sans que cela ne pose de problème quant à la stabilité. En effet, les substrats d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, présents dans ce milieu et pourtant connus pour leur tendance à la dégradation relativement rapide, sont stabilisés grâce à la présence de l'additif stabilisant-émulsifiant ESAG, AG ou ESAG/AG.
Cet additif, éventuellement associé au solvant S, induit un autre avantage qui est de permettre une excellente dissolution des substrats d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, traditionnellement récalcitrant à la mise en solution. Cela permet d'obtenir des milieux de détection/identification translucides avant l'ensemencement. La lecture des résultats colorés ou fluorescents s'en trouve ainsi facilitée.
Cet additif ESAG, AG ou ESAG/AG est peu onéreux et permet une simplification de la mise en oeuvre et une diminution de la quantité des substrats utilisée (stabilisation). Il en résulte un gain économique certain.
Enfin, les moyens selon l'invention sont à l'origine d'une meilleure activité biologique des substrats précités, ce qui se traduit par une coloration plus intense des colonies-cibles et par une meilleure spécificité.
Il est du mérite des inventeurs d'avoir sélectionné cette classe particulière d'agents stabilisant-émulsifiant, en particulier les ESAG, qui procurent de manière suiprenante et inattendue des propriétés de stabilité, de translucidité, d'activité biologique, de sensibilité, de fiabilité et de spécificité, tout à fait bienvenues dans l'analyse microbiologique par voie biochimique selon l'invention.
Suivant une caractéristique remarquable de l'invention, le milieu de détection/identification qu'elle concerne, est obtenu par mélange d'au moins une solution mère de substrat dans le solvant S et de l'ESAG ou AG ou mélange ESAG/AG, ajouté à au moins une partie des constituants du milieu de culture.
Il est en effet apparu important conformément à l'invention de solubiliser le substrat d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, dans le solvant S en présence d'un ou plusieurs ESAG, AG ou d'un mélange ESAG/AG répondant à la définition donnée ci-dessus. Ce mélange substrat
ESAG, AG, ESAG/AG et solvant S est ensuite incorporé dans au moins une partie du milieu de culture, qui se présente, de préférence, sous forme gélifiée en surfusion. Il a pu être constaté que cette caractéristique opératoire permet une optimisation des résultats avantageux produits par les moyens selon l'invention.
De préférence, l'ESAG est sélectionné dans le groupe comprenant : • Monolaurate de Sorbitan polyoxyéthyléné comprenant 20 motifs oxyde d'éthylène (O.E), -TWEEN® 20-;
• Monopalmitate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 40-;
• Monostéarate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 60-;
• Tristéarate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 65 -; • Monooléate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 80-;
• Sesquioléate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 83-;
• Trioléate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 85-;
• et leurs mélanges ; et l'AG est sélectionné dans le groupe comprenant les acides gras saturés ou insaturés en C4-C20, preferentiellement les acides gras saturés ou insaturés en C6-C11 et plus preferentiellement les acides gras en C8-C9, et leurs mélanges.
Les produits particulièrement sélectionnés, conformément à l'invention, sont des esters de Sorbitan largement utilisés dans l'industrie alimentaire et dans l'industrie cosmétique comme émulsifiants non ioniques, mais jusqu'alors ils n'avaient jamais été employés dans des milieux de détection/identification microbiologiques, à titre de stabilisants vis-à-vis de substrats d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases.
Les "Hydrophile-Lipophile-Balances" (HLB) des ESAG sus-mentionnés sont respectivement : 8,6 ; 6,7 ; 4,7 ; 2,1 ; 4,3 ; 3,7 ; 1,8. Selon une variante intéressante de l'invention, le ou les agents stabilisant- émulsifiant décrits ci-dessus, en particulier le ou les ESAG, peuvent être associés à au moins un co-agent synergique, de préférence, au moins un tensioactif anionique, de préférence le 7-Ethyl-2-méthyl-4-undécylhydrogénosulfate ou ses sels et plus particulièrement ses sels de sodium (TERGITOL-4®). ' L'utilisation d'un tel co-agent synergique facilite la mise en évidence de l'activité enzymatique dans les bactéries-cibles. Il s'agit d'un excellent complément du ou des agents stabilisant-émulsifiant et en particulier des ESAG. Il permet d'améliorer la sélectivité et la détection des activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases des microorganismes-cibles, sans nuire à l'expression d'autres activités enzymatiques qui pourraient être éventuellement utilisées pour la mise en évidence des microorganismes-cibles considérés. Sans vouloir être lié par la théorie, il est supposé que le co-agent synergique TERGITOL-4® a une action qui favorise la pénétration des substrats d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, chromogènes ou fluorogènes ou l'excrétion des enzymes au travers des membranes des cellules des microorganismes-cibles, optimisant ainsi l'accessibilité de ces substrats vis-à-vis des enzymes dont l'activité est recherchée. Cela permet de diminuer la quantité de substrats mis en oeuvre, d'où un avantage économique certain.
De manière plus préférée encore, l'association TWEEN® et TERGITOL-4® apparaît comme étant tout à fait performante dans le milieu de détection/identification selon l'invention. S'agissant du substrat chromogène ou fluorogène, constitué d'une partie cible de l'enzyme et d'une partie chromophore ou fluorophore, il est avantageusement choisi parmi les substrats dont la partie cible est sélectionnée dans le groupe comprenant notamment : les glycosides, constitués par des unités mono-, di- et/ou polysaccharides, liés en α ou β à la fonction hydroxyle de la partie chromophore ou fluorophore; les acides α-aminés ou des peptides ; les acides organiques, tels que -O-CO(CH )n-CH3, avec n compris entre 0 et 20 ; - un sulfate, un phosphate, un pyrosulfate, un pyrophosphate ou un phosphodiester ; et dont la partie chromophore ou fluorophore est sélectionnée dans le groupe comprenant notamment : les Quinones/Anthraquinones et dérivés, notamment la Dihydroxyanthraquinone (Alizarine); l'amino- ou l'hydroxycoumarine et dérivés ; les fluorescéines et dérivés ; les Indoxyles et dérivés.
Comme exemples de substrats d'estérases, on peut citer les substrats esters chromogènes dérivés d'Indole et notamment le 5-Bromo-3-indolyl nonanoate, le 6- Chloro-3-indolyl nonaoate ou le 5-Bromo-3-indolyl décanoate.
A titre d'exemples de substrats d'estérases chromogènes dérivés de l'Anthraquinone, on peut citer le 2-Alizarine octanoate. Comme exemples de substrats d'osidases, on peut citer les substrats d'osidases chromogènes dérivés d'Indole et notamment le 6-chloro-3-indolyl-β-galactoside, le 5- bromo-4-chloro-3-indolyl-β-N-acétylglucosaminide, le 5-bromo-6-chloro-α-glucoside. A titre d'exemples de substrats d'osidases chromogènes dérivés de l'Anthraquinone, on peut citer le 2-Alizarine-β-glucuronide.
Comme substrats d'osidases fluorogènes, on peut citer les substrats dérivés d'hydroxycoumarine et notamment le 4-méthylumbelliférone-β-glucoside. Concernant les substrats de peptidases chromogènes, on peut citer les substrats dérivés d'Indole.
Les substrats de peptidases fluorogènes sont notamment les substrats dérivés d'hydroxycoumarine, tels que l'analyl-amino-méthylcoumarine.
Comme substrats de sulfatases, on peut citer les substrats chromogènes, dérivés d'Indole, en particulier le 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-sulfate. Les substrats de sulfatases fluorogènes sont par exemple le 4-méthylumbelliférone-sulfate.
De façon équivalente, parmi les substrats de phosphatases, on peut citer des substrats chromogènes dérivés d'Indole tels que le 5-bromo-4-chloro-3-indolyl- phosphate. Les substrats de phosphatases fluorogènes sont par exemple le 4- méthylumbelliférone-phosphate.
Le solvant S est un auxiliaire de solubilisation du substrat d'enzymes d'intérêt en particulier chromogène. Il complète également l'action de l'agent stabilisant émulsifiant ESAG, AG ou ESAG/AG. Il s'agit donc de préférence d'un constituant du milieu selon l'invention. Selon une disposition avantageuse de cette dernière, le solvant S est sélectionné dans le groupe comprenant :
- les alcools, de préférence le Méthanol, l'Ethanol, le Méthoxyéthanol,
- les amides, de préférence le DiMéthylFormamide (DMF),
- les solvants soufrés, de préférence le DiMéthylSulfOxyde (DMSO), - les solvants aqueux, de préférence l'eau, l'eau tamponnée,
- et leurs mélanges.
En pratique, les solvants preferentiellement utilisés sont le méthanol, le DMF et le DMSO.
Sur le plan pondéral, il s'est avéré tout à fait avantageux, conformément à l'invention, que la proportion Ester de Sorbitan et d'Acide(s) Gras (ESAG) : Solvant (S) soit comprise entre 20 : 80 et 80 : 20, de préférence est comprise entre 30 : 70 et 70 : 30, et plus preferentiellement encore correspond à 40 : 60 ou à 60 : 40.
Toujours sur le plan quantitatif, il est préférable que la concentration en [ESAG] dans le milieu soit définie comme suit (en % en poids) : 0,1 < [ESAG] < 10, de préférence 0,5 < [ESAG] < 5, et plus preferentiellement encore 1,5 < [ESAG] < 3,5. S'agissant du substrat chromogène ou fluorogène, les quantités mises en oeuvre sont telles que sa concentration dans le milieu est définie comme suit (en mg/1) :
1 < [substrat] < 2000, de préférence 5 < [substrat] < 1500, et plus preferentiellement encore 25 < [substrat] < 1000.
Concernant le substrat dans la solution d'ESAG et de solvants S, les quantités mises en œuvre sont telles que sa concentration dans le milieu est définie comme suit (en g/1) :
0,5 < [substrat dans la solution mère] < 2000, de préférence 1 < [substrat dans la solution mère] < 1000, et plus preferentiellement encore 2 < [substrat dans la solution mère] < 200.
A propos du milieu de culture présent dans le milieu détection/identification, il peut être précisé qu'on le sélectionne dans le groupe comprenant:
- les milieux sélectifs de type : Mac Conkey, Columbia ANC, PALCAM, Sabouraud Gentamycine-Chloramphénicol, de préférence le milieu Mac
Conkey,
- les milieux non sélectifs de type Columbia +/- sang, Trypcase Soja, Gélose nutritive, Sabouraud, de préférence le milieu Columbia.
En pratique, l'homme de l'art choisira le milieu de culture en fonction des bactéries-cibles, selon des critères parfaitement connus et à la portée de cet homme de l'art.
Sans que cela ne soit limitatif, il s'avère que le milieu selon l'invention est particulièrement adapté à la détection/identification de microorganismes d'intérêt médical ou industriel, et notamment ceux du genre Salmonella, Pseudomonas, Listeria, Staphylococcus, Enterococcus ou Candida.
Dans le cas de la détection de bactéries du genre Salmonella, on choisira par exemple, le milieu de Mac Conkey à titre de milieu de culture.
Par ailleurs, le milieu selon l'invention peut contenir d'éventuels autres additifs comme par exemple : un ou plusieurs autres substrats enzymatiques par exemple chromogènes ou fluorogènes, des peptones, un ou plusieurs facteurs de croissance, des hydrates de carbone, un ou plusieurs agents sélectifs, des tampons, et un ou plusieurs gélifiants.
Le milieu selon l'invention se présente sous forme de liquide ou de gel prêt à l'emploi, c'est-à-dire prêt à l'ensemencement en tube, flacon ou sur des boîtes de pétri. Le milieu selon l'invention peut se conserver plusieurs semaines à 4°C dans ses conteneurs et sous forme liquide ou gel. Selon un autre de ses aspects, la présente invention vise également un procédé d'obtention du milieu tel que défini ci-dessus caractérisé en ce qu'il consiste essentiellement :
- à préparer au moins une solution-mère du substrat d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, chromogène ou fluorogène, dans le solvant S et d'au moins un ESAG, AG ou mélange ESAG/AG,
- à ajouter cette solution et d'éventuels autres additifs dans le milieu de culture, et
- à homogénéiser l'ensemble.
La préparation de la solution mère s'effectue de manière séparée en incorporant successivement le substrat, le solvant S et le ESAG, AG ou mélange ESAG/AG, éventuellement co-additivé. Les produits et les quantités utilisés sont tels que définis ci-dessus.
Après homogénéisation, la solution mère est ajoutée au milieu de culture gélifié mis en surfusion et préalablement régénéré dans l'eau. Il peut s'agir également d'un milieu liquide non gélifié, comme par exemple un bouillon nutritif.
Après mélange du milieu de culture et de la solution mère, on obtient le milieu de détection liquide ou gélifié prêt à être ensemencé.
Selon encore un autre de ses aspects, l'invention a également pour objet un procédé de détection identification de souches à activité esterase et/ou osidase et/ou peptidase et/ou sulfatase et/ou phosphatase consistant à :
- ensemencer le milieu de détection/identification tel que défini ci-dessus en tant que produit per se ou en tant que produit obtenu par le procédé également décrit ci-dessus, avec l'échantillon contenant les bactéries cibles à analyser ; - incuber le milieu ensemencé dans des conditions appropriées connues de l'homme de l'art ;
- et lire/interpréter les colorations ou fluorescences des colonies qui se sont développées après incubation, par exemple à l'étuve à 37°C ; ces colorations révélant l'hydrolyse du substrat d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, chromogène ou fluorogène par les bactéries-cibles.
Enfin, l'invention concerne également l'utilisation d'Ester(s) de Sorbitan et d'Acide(s) Gras (ESAG), d'Acides Gras (AG) ou d'un mélange ESAG/AG, à titre d'agent stabilisant-émulsifiant de milieu (liquide ou gel) de détection/identification de microorganismes, notamment de bactéries ou de levures, à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, ce milieu comprenant notamment un milieu réactionnel et au moins un substrat d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, chromogène ou fluorogène, à l'exclusion des substrats comprenant un carboxylate de 4-[2-(4-octanoyloxy-3 ,5-diméthoxyphényl)-vinyl]-quinolinium- 1 - (propan-3-yle) et un anion, éventuellement en association avec au moins un solvant S du substrat d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, chromogène ou fluorogène, présent dans le milieu.
Les exemples qui suivent permettront de mieux comprendre l'invention et d'appréhender tous ses avantages ainsi que ses diverses variantes de réalisation et de mise en oeuvre.
EXEMPLES :
Exemple 1 : essai de solubilité d'un substrat d'estérase à base d'Indoxyle, le
5-Bromo-3-indolyl nonanoate (substrat d'estérase chromogène), dans un milieu gélifié
Différentes solutions mères de substrat sont réalisées dans le Méthanol en présence de sels biliaires n°3 (bioMérieux). Ensuite, différents volumes de ces solutions sont ajoutés dans un milieu gélifié en surfusion : le milieu Mac Conkey (régénéré dans l'eau à une concentration de 50 g/1).
Le protocole et l'observation de l'aspect des milieux sont répertoriés dans le tableau 1 ci-après.
TABLEAU 1
Figure imgf000016_0001
Les milieux les plus optiquement homogènes sont les milieux 3, 4 et 5 : milieux où la concentration en méthanol est la plus élevée. Cependant, l'aspect de ces milieux est « laiteux » : il semblerait donc que le substrat d'estérase soit sous forme d'émulsion.
Exemple 2 : amélioration de la solubilisation du substrat d'estérase par ajout de Tween ®20 (ESAG)
Deux solutions mères de substrat différentes sont réalisées dans le solvant S :Méthanol l'une en présence de sels biliaires n° 3, l'autre en présence de sels biliaires n° 3 et de Tween ®20 [monolaurate de sorbitan polyoxyéthyléné comprenant 20 motifs oxyde d'éthylène (O.E)]. Ensuite un volume correspondant à une concentration finale de 500 mg/1 de substrat est ajouté dans un milieu de culture gélifié en surfusion : le milieu Mac Conkey. Le protocole et l'observation de l'aspect des milieux sont répertoriés dans le tableau 2 ci-après.
TABLEAU 2
Figure imgf000016_0002
Le milieu 2 présente une meilleure homogénéité optique que le milieu 1. Soit le substrat d'estérase est complètement dissous, soit il est sous la forme d'une émulsion dont les particules micellaires ne sont plus visibles à l'œil.
Exemple 3 : test biologique des deux milieux décrits dans l'exemple précédent
Des micro-organismes issus de la collection de la Demanderesse ont été ensemencés sur chacun des deux milieux précédemment décrits par isolement en trois cadrans à partir d'une suspension à 0,5 McFarland. Les boîtes ont été incubées à 37 °C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement après 24 et 48 heures d'incubation. La coloration de ces colonies ainsi que l'intensité de cette coloration ont été notées. Les résultats sont présentés dans le tableau 3 ci-dessous.
TABLEAU 3
Figure imgf000017_0001
intensité de coloration : échelle arbitraire ; - : absence de coloration et d'intensité
Le milieu contenant le Tween®20 permet donc d'obtenir des colorations plus intenses pour les souches de micro-organismes présentant une activité esterase. Le substrat est donc plus utilisé soit parce qu'il est mieux dissous, soit parce qu'il est plus disponible. Nu la différence d'intensité entre les deux milieux, il semble possible, en présence de Tween®20, de diminuer la concentration en substrat utilisé et donc de réduire le coût engendré par l'utilisation de ce type de substrat.
Exemple 4 : test de ce mode de dissolution pour un autre dérivé d'Indoxyle (substrat d'estérase chromogène) sur des espèces bactériennes à Gram positif et Gram négatif et sur des levures
Une solution mère à 40 g/1 de 5-Bromo-4-chloro-3-indolyl octanoate (substrat d'estérase chromogène) a été réalisée dans un mélange Méthanol (40%) Tween®20 (60%). Ensuite un volume correspondant à une concentration finale de 500 mg/1 de substrat a été ajouté dans un milieu gélifié en surfusion : un milieu type Columbia. Ce milieu a été coulé en boîtes de Pétri.
Des micro-organismes issus de la collection de la Demanderesse ont été ensemencés par isolement en trois cadrans à partir d'une suspension à 0,5 McFarland. Les boîtes ont ensuite été incubées à 37 °C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement après 24 et 48 heures d'incubation. La coloration de ces colonies ainsi que l'intensité de cette coloration ont été notées. Les résultats sont présentés dans le tableau 4 ci-dessous.
TABLEAU 4
Figure imgf000018_0001
intensité de coloration : échelle arbitraire ; - : absence de coloration et d'intensité
En présence de Tween 20, il est donc possible de révéler l'expression d'une activité esterase chez tous les micro-organismes la possédant indépendamment du groupe auquel ils appartiennent. D'autre part, ce mode d'utilisation est indépendant du dérivé d'Indoxyle (substrat d'estérase chromogène) étudié.
Exemple 5 ; remplacement du Méthanol par d'autres solvants en présence de Tween 20 et en absence ou présence de sels biliaires
Le méthanol utilisé dans les exemples précédents a été remplacé par deux autres solvants le Dimethylsulfoxide (DMSO) et le Diméthylformamide (DMF). Les trois solvants ont été testés en présence de Tween 20 et en présence ou absence de sels biliaires à une concentration finale dans le milieu de 6,5 g/1. Le tableau 5 suivant montre la composition des six milieux testés.
Figure imgf000019_0001
L'activité du substrat a été vérifiée de la même façon que l'exemple précédent c'est à dire en présence de micro-organismes ensemencés sur un milieu gélose Mac Conkey contenant le substrat d'estérase dissous dans un des solvants précédemment cités. Les résultats sont présentés dans le tableau 6 ci-dessous.
Figure imgf000019_0002
I : intensité de coloration (échelle arbitraire) ; C : couleur ; TI : temps d'incubation en heures
- : incolore
Il est donc possible d'utiliser des solvants différents pour dissoudre le substrat d'estérase lorsque le Tween 20 est présent. D'autre part, l'ajout de Sels biliaires n'apporte rien que ce soit en terme de solubilité ou en terme de résultats biologiques et ceci quel que soit le solvant testé. Conclusion, le mode de dissolution le plus simple est le mélange d'un solvant et de Tween ®20 sans apport supplémentaire de sels biliaires. Exemple 6 : test de différents ratios solvant S/T een 20
Différentes solutions mères de substrat sont réalisées dans du DMSO en présence de Tween®20. Chaque solution mère correspond à un ratio DMSO/Tween® 20 différents. Ensuite un volume correspondant à une concentration finale de 500 mg/1 de substrat est ajouté dans un milieu gélifié en surfusion : le milieu Mac Conkey. Le tableau 7suivant montre la composition des six milieux testés.
TABLEAU 7
Figure imgf000020_0001
Des micro-organismes issus de la collection de la Demanderesse ont été ensemencés sur chacun des six milieux précédemment décrits par isolement en trois cadrans à partir d'une suspension à 0,5 McFarland. Les boîtes ont été incubées à 37°C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement après 24 et 48 heures d'incubation. La coloration de ces colonies ainsi que l'intensité de cette coloration ont été notées. Les résultats sont présentés dans le tableau 8 ci-après.
Figure imgf000020_0002
I : intensité de coloration (échelle arbitraire) ; C : couleur ; TI : temps d'incubation en heures
- : incolore Les six ratios testés permettent d'obtenir une bonne solubilité des substrats et la révélation de l'hydrolyse du substrat avec des intensités de coloration très convenables. Des intensités de coloration maximales sont obtenues entre les ratios 40 % DMSO /60 % Tween ®20 et 60 % DMSO / 40 % Tween ®20.
Exemple 7 : test du procédé de solubilisation sur un substrat d'estérase ayant une partie marqueur autre qu'un Indoxyle
Le substrat testé est le 1,2-Dihydroxyanthraquinone octanoate (2-Alizarine octanoate). Différentes solutions mères de substrat sont réalisées avec comme solvant le DMF ou le DMSO ou le méthanol ou le Méthoxyéthanol et dans tous les cas en présence de Tween® 20. Le tableau 9 suivant montre l'aspect des solutions mères en fonction de leur composition.
TABLEAU 9
Figure imgf000021_0001
Ensuite un volume correspondant à une concentration finale de 100 mg/1 de substrat est ajouté dans un milieu gélifié en surfusion : le milieu Mac Conkey. Du Citrate de fer à une concentration finale de 50 mg/1 a été aussi ajouté dans le milieu ceci afin de permettre la révélation de l'activité esterase en présence d'un substrat à base d'Alizarine. Seule une des solutions mères présentant une dissolution totale du substrat a été testée (solution mère dans le DMF). Des micro-organismes issus de la collection de la Demanderesse ont été ensemencés sur chacun des deux milieux précédemment décrits par isolement en trois cadrans à partir d'une suspension à 0,5 McFarland. Les boîtes ont été incubées à 37°C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement après 24 et 48 heures d'incubation. La coloration de ces colonies ainsi que l'intensité de cette coloration ont été notées. Les résultats sont présentés dans le tableau 10. TABLEAU 10
Figure imgf000022_0001
intensité de coloration : échelle arbitraire ; - : absence de coloration et d'intensité.
Ce mode de dissolution n'est donc pas spécifique des esters d'indoxyle mais peut être utilisé notamment avec d'autres familles de substrats enzymatiques.
Exemple 8 : test de différents ESAG dérivés de Tween® 20 pour la solubilisation d'un substrat d'estérase, le 5-Bromo-3-indolyl nonanoate Différentes solutions mères de substrat sont réalisées dans du DMSO en présence de Tween® 20 ou Tween® 80 (Polyoxyéthyléné sorbitan monooléate) ou Tween® 60 (Polyoxyéthyléné sorbitan monostéarate) ou Tween® 65 (Polyoxyéthyléné sorbitan tristéarate). Ensuite un volume correspondant à une concentration finale de 500 mg/1 de substrat est ajouté dans un milieu gélifié en surfusion : le milieu Mac Conkey. Le tableau 11 montre la composition des milieux testés.
TABLEAU 11
Figure imgf000022_0002
Des micro-organismes issus de la collection de la Demanderesse ont été ensemencés sur chacun des six milieux précédemment décrits par isolement en trois cadrans à partir d'une suspension à 0,5 McFarland. Les boîtes ont été incubées à 37°C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement après 24 et 48 heures d'incubation. La coloration de ces colonies ainsi que l'intensité de cette coloration ont été notées. Les résultats sont présentés dans le tableau 12.
Figure imgf000023_0001
I : intensité de coloration (échelle arbitraire) ; C : couleur ; TI : temps d'incubation - : incolore
Remarque : Différents ratio Tween®/solvant ont été réalisés pour chaque Tween® testés. Cependant, seul un ratio est répertorié dans cet exemple car les résultats étaient très similaires quel que soit le ratio étudié.
Le Tween® 20, le Tween® 80 et le Tween® 60 permettent d'obtenir une bonne solubilité des substrats et la révélation de l'hydrolyse du substrat avec des intensités de coloration très convenables.
Exemple 9 : stabilité comparée de milieux gélifiés contenant un substrat d'estérase, le 5-Bromo-3-indoIyl nonanoate, solubilisé ou non en présence de Tween® 20
Deux solutions mères de substrat ont été réalisées : l'une à 40 g/1 dans le méthanol en présence de 6,5 g/1 de sels biliaires n° 3, l'autre à 40 g/1 dans un mélange DMSO (40%) Tween® 20 (60%). Ensuite un volume correspondant à une concentration finale de 500 mg/1 de substrat a été ajouté dans un milieu gélifié en surfusion, le milieu Mac Conkey. Ces deux milieux ont été coulés en boîtes de Pétri d'un diamètre de 90 mm et conservés à +4°C pendant 8 semaines. Après une semaine, deux semaines, quatre semaines et huit semaines, deux milieux comme ceux décrits ci- dessus ont été réalisés extemporanement.
Des micro-organismes issus de la collection de la Demanderesse ont été ensemencés par isolement en trois cadrans à partir d'une suspension à 0,5 McFarland sur les deux milieux préparés extemporanement et les deux milieux conservés à +4°C. Les boîtes ont été incubées à 37°C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement après 24 et 48 heures d'incubation. La coloration de ces colonies ainsi que l'intensité de cette coloration ont été notées. Les résultats sont présentés dans les tableaux ci-après.
TABLEAU 13
Figure imgf000024_0001
TABLEAU 14
Figure imgf000024_0002
TABLEAU 15
Figure imgf000025_0001
TABLEAU 16
Figure imgf000025_0002
I : intensité de coloration (échelle arbitraire) ; C : couleur ; TI : temps d'incubation - : incolore
Le milieu contenant le substrat dissous dans un mélange Méthanol sels biliaires présente une baisse très importante d'expression de l'activité esterase dès 2 semaines de conservation. Cette baisse est amplifiée dans le temps. Le milieu contenant le substrat dissous dans le mélange DMSO et Tween 20 présente une expression de l'activité esterase constante dans le temps jusqu'au moins six semaines. A huit semaines, il y a une légère baisse de l'expression de l'activité esterase mais qui n'est pas rédhibitoire. Le Tween 20 permet donc de stabiliser le substrat d'estérase et facilite la conservation et l'utilisation de milieux de culture contenant ce type de substrats.
Note : Dans les exemples ci-dessus, les numéros annexés aux souches correspondent au numéro de chaque souche référencée dans la collection de la Demanderesse. L'intensité de coloration correspond à une échelle arbitraire dont la signification est la suivante : 0 pas d'activité
0,1 trace de coloration
0,5 coloration très pâle
1 coloration nette de faible intensité
2 coloration franche d'intensité moyenne 3 coloration intense
4 coloration très intense
Exemple 10 ; stabilité comparée de milieux gélifiés contenant un substrat d'osidase, le 6-Chloro-3-indoly-β-n-acétylgIucosaminide, solubilisé ou non en présence de Tween® 20
Deux solutions mères de substrat ont été réalisées : l'une à 50 g/1 dans le DMF, l'autre à 50 g/1 dans un mélange DMF (40%) Tween® 20 (60%). Ensuite un volume correspondant à une concentration finale de 175 mg/1 de substrat a été ajouté dans un milieu gélifié en surfusion, le milieu Columbia sans sang. Ces deux milieux ont été coulés en boîtes de Pétri d'un diamètre de 90 mm et conservés à +4°C pendant 8 semaines. Après trois semaines, six semaines, neuf semaines et douze semaines, deux milieux comme ceux décrits ci-dessus ont été réalisés extemporanement.
Des micro-organismes issus de la collection de la Demanderesse ont été ensemencés par isolement en trois cadrans à partir d'une suspension à 0,5 McFarland sur les deux milieux préparés extemporanement et les deux milieux conservés à +4°C. Les boîtes ont été incubées à 37°C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement après 24 et 48 heures d'incubation. La coloration de ces colonies ainsi que l'intensité de cette coloration ont été notées. Les résultats sont présentés dans les tableaux ci-dessous. TABLEAU 17
Figure imgf000027_0001
TABLEAU 18
Figure imgf000027_0002
TABLEAU 19
Figure imgf000028_0001
TABLEAU 20
Figure imgf000028_0002
I : intensité de coloration (échelle arbitraire) ; C : couleur ; TI : temps d'incubation M : magenta - : incolore
Le milieu contenant le substrat dissous dans le DMF seul présente une baisse très importante d'expression de l'activité β-N-acétylglucosaminidase dès trois semaines de conservation. Cette baisse est amplifiée dans le temps. Il n'est plus possible de détecter une activité à douze semaines. Le milieu contenant le substrat dissous dans le mélange DMF et Tween 20 présente une expression de l'activité β-N- acétylglucosaminidase constante dans le temps jusqu'à au moins six semaines. A neuf et douze semaines, il y a une légère baisse de l'expression de l'activité β-N- acétylglucosaminidase mais qui n'est pas rédhibitoire. Le Tween 20 permet donc de stabiliser le substrat de β-N-acétylglucosaminidase et facilite la conservation et l'utilisation de milieux de culture contenant ce type de substrats.
Dans les exemples ci-dessus, les numéros annexés aux souches correspondent au numéro de chaque souche référencée dans la collection de la Demanderesse. L'intensité de coloration correspond à une échelle arbitraire dont la signification est la suivante :
0 pas d'activité
0,1 trace de coloration
0,5 coloration très pâle 1 coloration nette de faible intensité
2 coloration franche d'intensité moyenne
3 coloration intense
4 coloration très intense

Claims

REVENDICATIONS
-1- Milieu de détection/identification de microorganismes et notamment de bactéries et/ou de levures à activité enzymatique, choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, du type de ceux comprenant notamment un milieu réactionnel et au moins un substrat d'estérases, d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, chromogène ou fluorogène, à l'exclusion des substrats comprenant un cation de 4-[2-(4-octanoyloxy- 3,5-diméthoxyphényl)-vinyl]-quinolinium-l-(propan-3-yle-acide carboxylique) et un anion, cette détection/identification reposant essentiellement sur la mise en évidence de l'activité esterase et/ou osidase et/ou peptidase et/ou sulfatase et/ou phosphatase, ledit milieu :
* est sous forme stable liquide ou gel prêt à l'emploi; * comporte :
- au moins un Ester de Sorbitan et d'Acide(s) Gras (ESAG), ou au moins un Acide Gras (AG) ou un mélange ESAG/AG, à titre d'agent stabilisant- émulsifiant,
- et éventuellement au moins un Solvant (S).
-2- Milieu selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il est obtenu par mélange d'au moins une solution-mère de substrat dans le solvant S et de l'ESAG, AG ou mélange ESAG/AG, avec au moins une partie des constituants du milieu de culture.
-3- Milieu selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que l'ESAG est sélectionné dans le groupe comprenant :
" Monolaurate de Sorbitan polyoxyéthyléné comprenant 20 motifs oxyde d'éthylène (O.E), -TWEEN® 20-;
Monopalmitate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 40-; " Monostéarate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 60-;
Tristéarate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 65-;
Monooléate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 80-;
Sesquioléate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 83-;
Trioléate de Sorbitan polyoxyéthyléné (20 O.E), -TWEEN® 85-; " et leurs mélanges. -4- Milieu selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que l'AG est sélectionné dans le groupe comprenant les acides gras saturés ou insaturés en C4-C20, preferentiellement les acides gras saturés ou insaturés en C6-C11 et plus preferentiellement les acides gras en C8-C9; et leurs mélanges.
-5- Milieu selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il comprend également au moins un tensioactif anionique, de préférence le 7-Ethyl- 2-méthyl-4-undécylhydrogénosulfate ou ses sels et plus particulièrement ses sels de sodium (TERGITOL-4 ®).
-6- Milieu selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que le substrat chromogène ou fluorogène, est constitué d'une partie cible de l'enzyme et d'une partie chromophore ou fluorophore, la partie cible étant sélectionnée dans le groupe comprenant notamment : - les glycosides, constitués par des unités mono-, di- et/ou polysaccharides, liés en α ou β à la fonction hydroxyle de la partie fluorophore ou chromophore; les acides α-aminés ou des peptides ; les acides organiques, tels que -O-CO(CH2)n-CH , avec n compris entre 0 et 20 ; un sulfate, un phosphate, un pyrosulfate, un pyrophosphate ou un phosphodiester ; la partie chromophore ou fluorophore étant sélectionnée dans le groupe comprenant notamment : - les Quinones/Anthraquinones et dérivés, . notamment la
Dihydroxyanthraquinone ( Alizarine) ; les amino- ou hydroxy- coumarines et dérivés ; les fluorescéines et dérivés ; les Indoxyles et dérivés.
-7- Milieu selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que le solvant S est sélectionné dans le groupe comprenant :
- les alcools, de préférence le Méthanol, l'Ethanol, le Méthoxyéthanol ;
- les amides, de préférence le DiMéthylFormamide (DMF) ; - les solvants soufrés, de préférence le DiMéthylSulfOxyde (DMSO) ;
- les solvants aqueux, de préférence l'eau, l'eau tamponnée ;
- et leurs mélanges. -8- Milieu selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que la proportion pondérale d'Ester de Sorbitan et d'Acide(s) Gras (ESAG) : solvant (S) est comprise entre 20 : 80 et 80 : 20, de préférence est comprise entre 30 : 70 et 70 : 30, et plus preferentiellement encore correspond à 40 : 60 ou à 60 : 40.
-9- Milieu selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que la concentration en [ESAG] dans le milieu est définie comme suit (en % en poids) :
0,1 < [ESAG] < 10, de préférence 0,5 < [ESAG] < 5, et plus preferentiellement encore 1,5 < [ESAG] < 3,5.
-10- Milieu selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisé en ce que la concentration en [substrat] dans le milieu, est définie comme suit (en mg/1) : 1 < [substrat] < 2000, de préférence 5 < [substrat] < 1500, et plus preferentiellement encore 25 < [substrat] < 1000.
-11- Milieu selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisé en ce que le milieu de culture qu'il comprend est sélectionné dans le groupe comprenant:
- les milieux sélectifs de type Mac Conkey, Columbia ANC, PALCAM, Sabouraud gentamycine-chloramphénicol, de préférence le milieu Mac Conkey,
- les milieux non sélectifs de type Columbia +/- sang, Trypcase Soja, Gélose nutritive, Sabouraud, de préférence le milieu Columbia.
-12- Milieu selon l'une quelconque des revendications 1 à 11, caractérisé en ce que les microorganismes à détecter/identifier font partie des microorganismes d'intérêt médical ou industriel, et notamment ceux du genre Salmonella, Pseudomonas, Listeria, Staphylococcus, Enterococcus ou Candida.
-13- Procédé d'obtention du milieu selon l'une quelconque des revendications 1 à 12 caractérisé en ce qu'il consiste essentiellement :
- à préparer au moins une solution-mère du substrat d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, chromogène ou fluorogène, dans le solvant S et d'au moins un ESAG, AG ou ESAG/AG, - à ajouter cette solution et d'éventuels autres additifs dans le milieu de culture,
- et à homogénéiser l'ensemble.
-14- Procédé détection/identification de souches à activité esterase et/ou osidase et/ou peptidase et/ou sulfatase et/ou phosphatase caractérisé en ce qu'il consiste :
- à ensemencer le milieu selon l'une quelconque des revendications 1 à 12 ou le milieu obtenu par le procédé selon la revendication 13, avec les bactéries à analyser; - à incuber le milieu ensemencé dans des conditions appropriées,
- et à lire et interpréter les colorations autour des colonies, lesquelles colorations révélant l'hydrolyse du substrat par les bactéries.
-15- Utilisation d'Ester(s) de Sorbitan et d'Acide(s) Gras (ESAG), d'Acide(s) Gras (AG) ou de ESAG/AG, à titre d'agent stabilisant-émulsifiant de milieu (liquide ou gel) de détection/identification de microorganismes, notamment de bactéries ou de levures, à activité enzymatique choisie parmi les activités estérases et/ou osidases et/ou peptidases et/ou sulfatases et/ou phosphatases, ce milieu comprenant notamment un milieu de culture et au moins un substrat d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, chromogène ou fluorogène, à l'exclusion des substrats comprenant un carboxylate de 4-[2-(4-octanoyloxy-3,5- diméthoxyphényl)-vinyl]-quinolinium-l-(propan-3-yle) et un anion, éventuellement en association avec au moins un solvant S du substrat d'estérases et/ou d'osidases et/ou de peptidases et/ou de sulfatases et/ou de phosphatases, chromogène ou fluorogène, présent dans le milieu.
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