WO2002012550A1 - Biosensor amperometrico composito par la determinacion de colesterol en alimentos - Google Patents
Biosensor amperometrico composito par la determinacion de colesterol en alimentos Download PDFInfo
- Publication number
- WO2002012550A1 WO2002012550A1 PCT/ES2001/000304 ES0100304W WO0212550A1 WO 2002012550 A1 WO2002012550 A1 WO 2002012550A1 ES 0100304 W ES0100304 W ES 0100304W WO 0212550 A1 WO0212550 A1 WO 0212550A1
- Authority
- WO
- WIPO (PCT)
- Prior art keywords
- cholesterol
- composite
- biosensor
- graphite
- foods
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/001—Enzyme electrodes
- C12Q1/005—Enzyme electrodes involving specific analytes or enzymes
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Immunology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
El biosensor amperométrico compósito para la determinación de colesterol en alimentos consiste en una matriz electródica rígida y renovable por pulido fabricada con grafito y Teflón en polvo (70 %) en la que se inmovilizan mediante simple inclusión física las enzimas colesterol oxidasa y peroxidasa junto con el mediador ferrocianuro potásico. El electrodo bienzimático compósito es compatible en medios predominantemente no acuosos como son las micelas inversas constituidas por un disolvente orgánico (acetato de etilo) como fase continua, una pequeña cantidad de una disolución acuosa de un electrólito apropiado (4 % de una disolución reguladora de fosfato de pH 7,4), como fase dispersa y un tensoactivo (dioctilsulfosuccinato de sodio 0,1 M) como agente emulsificante. Esto permite la determinación directa del colesterol en estos medios una vez que se ha extraído del alimento utilizando como disolvente extractante el mismo disolvente con el que se forman las micelas inversas (acetato de etilo).
Description
TÍTULO:
Biosensor amperométrico compósito para la deteπninación de colesterol en alimentos
OBJETO DE LA INVENCIÓN
La presente invención, según se expresa en el enunciado de esta memoria descriptiva, se refiere a un electrodo enzimático compósito para la determinación de colesterol, tanto libre como total , en alimentos. De forma más concreta, el biosensor consiste en una matriz electródica rígida construida con grafito y Teflón en la que se inmovilizan por simple atrapamiento físico dos enzimas, colesterol oxidasa y peroxidasa, junto con el mediador redox, ferrocianuro potásico. Este tipo de matriz electródica aporta una serie de ventajas relevantes desde un punto de vista práctico con respecto a otros diseños electródicos. Además de algunas características generales, que se comentarán mas adelante, una de las ventajas más interesantes de la incorporación de enzimas en matrices compósitas de grafito y Teflón es la compatibilidad con disolventes orgánicos o predominantemente orgánicos. Esta cualidad es aprovechable para la deteπninación de colesterol en alimentos. Dado que esta determinación implica su extracción de la muestra con disolventes orgánicos, la implementación de metodologías analíticas capaces de ser aplicadas en medios no acuosos es de especial interés en este caso.
En la presente invención se hace uso de un medio de trabajo formado por micelas inversas. Estas micelas están constituidas por un disolvente orgánico (el mismo utilizado para la extracción del colesterol del alimento) como fase continua, una pequeña cantidad de una disolución acuosa de un electrólito soporte adecuado, como fase dispersa, y un tensoactivo como agente emulsificante. Estos medios permiten la determinación enzimática de sustancias escasamente solubles en agua (como el colesterol), y permiten un sencillo control y optimización de la cantidad de agua que se necesita para la hidratación, y por consiguiente, para el funcionamiento de las enzimas implicadas.
ESTADO DE LA TÉCNICA
En la bibliografía científica se describe una amplia variedad de métodos analíticos para la determinación de colesterol en alimentos. Estos métodos incluyen gravimetría, espectrofotometría y cromatografía (Official Methods of Analysis of AOAC International, 16th. De., Arlington, 1999). Estos métodos resultan largos y laboriosos o implican el empleo de reactivos y equipamiento costosos. Por ello, el empleo de ensayos enzimáticos rápidos, fiables y baratos constituye una interesante estrategia a seguir. Entre ellos cabe destacar el kit para ensayo colorimétrico comercializado por Boehringer (Cat. No. 139 050), que implica la incubación de 1 muestra en una disolución de la enzima colesterol oxidasa (COD) durante una hora. Además, la determinación de colesterol total necesita un tratamiento de la muestra del alimento en el que se realiza la liidrólisis metanólica de los esteres de colesterol antes de proceder a la incubación. En la bibliografía científica aparecen también diversos desarrollos de biosensores utilizables para la determinación de colesterol, que emplean COD para catalizar la oxidación de colesterol por el oxígeno molecular, originando peróxido de hidrógeno como producto de la reacción. La formación de H2O2 se monitoriza bien espectrofotométricamente o bien electroquímicamente, para lo que se han desarrollado un gran número de procedimientos más o menos sofisticados que pueden implicar la coinmovilización de otras enzimas junto con COD. Desde un punto de vista electroquímico, uno de los diseños más útiles consiste en coinmovilizar COD con peroxidasa y un mediador apropiado (véase, por ejemplo, L. Charpentier and N. El Murr, Anal. Chim. Acta, 318 (1994) 89), lo que permite utilizar un potencial bajo para la detección de H2O2 y minimizar así muchas interferencias potenciales por parte de sustancias electroactivas presentes comúnmente en muestras que contienen colesterol. Sin embargo, muchos de los biosensores que se han reportado son demasiado complejos, o no presentan una buena estabilidad, o requiren tratamientos complicados de la muestra , o no son aplicables directamente en los disolventes utilizados para extraer el colesterol de los alimentos, lo que lleva a que su implementación comercial sea difícil cuando no imposible. Estos inconvenientes
prácticos son los que se resuelven con la invención que se presenta en la que se ha desarrollado un biosensor compósito amperométrico bienzdmático para la determinación de colesterol libre y total en alimentos. Las enzimas COD y peroxidasa, junto con el mediador ferrocianuro potásico se incorporan en la matriz de grafito y Teflón y se emplea como medio de trabajo micelas inversas formadas con acetato de etüo como disolvente orgánico, en el cual el colesterol es soluble.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
Para conseguir las características ventajosas preconizadas y eliminar los inconvenientes reflejados en el apartado anterior, la presente invención se refiere a un procedimiento para preparar electrodos bienzimáticos compósitos rígidos a base de grafito y Teflón, compatibles en medios predominantemente no acuosos. El procedimiento se caracteriza por preparar los bioelectrodos en forma de pastillas según la meto dología que se expone a continuación.
El grafito en polvo, las enzimas COD y peroxidasa y el mediador ferroceno, cuyos contenidos han sido previamente optimizados, se mezclan mediante agitación mecánica durante 3 horas en un pequeño volumen de una disolución reguladora de fosfato de pH 7,4 a 4° C. Tras evaporar el agua mediante el paso de una corriente de Ar, se añade la cantidad optimizada de Teflón en polvo, mezclándose vigorosamente. La mezcla, que contiene un porcentaje de Teflón del 70%, se prensa en forma de pastillas con un prensa de IR a 5.000 kg cm"2 durante 10 minutos. Se taladran porciones cilindricas de la pastilla de 3.0 mm de diámetro y cada porción, que constituye el electrodo enzimático, es insertada mediante presión en un tubo de Teflón. El contacto eléctrico se realiza con un tornillo de acero inoxidable de punta plana.
Mediante este procedimiento el biosensor enzimático se fabrica por simple atrapamiento físico de las enzimas en la matriz del electrodo, sin necesidad de llevar a cabo uniones covalentes de la enzima al grafito. Esta metodología es diferente de otros procedimientos de fabricación de biosensores compósitos y hace que el proceso de fabricación sea más sencillo, más rápido y más barato. Además, presenta una serie
de importantes ventajas prácticas con respecto a otros diseños. Así, se obtienen depósitos tridimensionales de biocomponente(s) cuya superficie puede ser fácilmente regenerada por pulido, cuando sea necesario hacerlo. Así mismo, la posibilidad de incorporar en el seno de la matriz electródica otros componentes (mediadores, cofactores u otras biomoléculas), como ocurre en este caso, permite la fabricación de biosensores versátiles.
Las medidas de colesterol con el biosensor se llevan cabo mediante amperometría, midiendo la corriente, cuando se alcanza el estado estacionario, a un potencial constante de + 0,10 V frente a Ag/AgCl, en disoluciones formadas por las micelas inversas constituidas por acetato de etilo como disolvente orgánico, un 4% de disolución reguladora de fosfato de pH 7,4, como fase acuosa dispersa, y una concentración 0,1 M de dioctilsulfosuccinato de sodio (AOT), como agente emulsifícante. La medida en este tipo de medio predominantemente no acuoso es otra característica distintiva de la invención que se presenta con respecto a las existentes. La estabilidad del electrodo compósito bienzimático en el medio mencionado es buena, como se pone de manifiesto cuando se consideran diferentes aspectos:
1) Repetibilidad de la respuesta amperométrica sin regeneración de la superficie electródica.
2) Repetibilidad de la respuesta amperométrica cuando la superficie del electrodo se regenera por pulido.
3) Tiempo de vida útil de un biosensor individual. En la Figura 2 se muestra el gráfico de control construido, llevando a cabo cada día tres medidas de colesterol 5,0 x 10"4 M. Cuando un valor medio queda fuera del límite de control inferior, el pulido de la superficie electródica durante 5 segundos permite restaurar la señal analítica dentro de los límites de control. A partir de aproximadamente 30 días, la respuesta amperométrica no puede ser recuperada por pulido, siendo éste por tanto el periodo de vida útil del biosensor enzimático compósito.
4) Reproducibilidad en la fabricación de diferentes electrodos fabricados a partir de la misma pastilla madre y a partir de diferentes pastillas. El calibrado para colesterol en las micelas inversas presenta un intervalo de linealidad entre 1.0 x 10"5 y 3.0 x 10"3 M (r = 0.9983), con una
endiente de (269+4) μA mol"1 L. El límite de detección, calculado según el criterio 3sb/m, es de 6.2 x lCήvl, el cual es comparable a los reportados en la bibliografía para biosensores amperométricos en medio acuoso.
El biosensor bienzimático compósito se emplea para realizar el análisis de colesterol libre y total en alimentos, aprovechando las ventajas que ofrece su compatibilidad con un medio predominantemente no acuoso, como es las micelas inversas. En este medio, ni los componentes habituales del alimento, ni aditivos, conservantes o colorantes a los niveles de concentración usuales en que pueden estar presentes en las muestras originan interferencias significativas sobre la señal del analito. Como se especifica mas adelante, el empleo del biosensor en el medio micelar inverso facilita enormemente el tratamiento de la muestra, especialmente cuando se trata de la determinación de colesterol libre. En este caso, el procedimiento es extremadamente simple, implicando solamente la extracción del colesterol con el disolvente orgánico que se emplea para preparar las micelas inversas. En el caso de la determinación de colesterol total, el tratamiento de la muestra es más complejo, ya que, dependiendo del tipo de muestra a analizar, puede implicar diversas etapas (hidrólisis, precipitación y extracción) previas a la formación de la micela inversa De todos modos, como también se pondrá de manifiesto mas adelante, estas etapas son similares, o incluso más sencillas, que las que se deben utilizar con los métodos oficiales o con métodos alternativos existentes en el mercado.
DESCRIPCIÓN DE LOS DIBUJOS
Se acompañan dos figuras que representan lo siguiente:
La Figura 1 muestra un esquema de un electrodo compósito utilizable para la deteπninación de colesterol en alimentos en el medio de micelas inversas. (1) Contacto eléctrico; (2) cuerpo de Teflón; (3) matriz electródica compósita de grafito- Teflón-COD-peroxidasa-mediador
La Figura 2 muestra el gráfico de control construido para el seguimiento de la respuesta amperométrica del biosensor con el tiempo para una disolución de colesterol 5.0 x 10"4 M en el medio de micelas inversas. Los límites de control
superior (1) e inferior (2) se consideran como +3 x la desviación estándar del valor medio de 10 medidas sucesivas llevadas a cabo sin regeneración de la superficie electródica (valor central). (O) media de las medidas realizadas diariamente sin pulir; (D) medida realizada después de pulir la superficie electródica
MODO DE REALIZACIÓN DE LA INVENCIÓN.
La presente invención, biosensor amperométrico compósito para la deteπninación de colesterol en alimentos, se ilustra mediante los siguientes ejemplos, los cuales no son limitativos de su alcance.
Ejemplo 1. Deteπninación de colesterol en mantequilla a) Análisis de colesterol libre.
Se pesan con exactitud 1,75 g de mantequilla y se disuelven en 2,5 mL de acetato de etilo mediante agitación mecánica durante 5 minutos. Se deja decantar el residuo insoluble, y se lleva a cabo la determinación de colesterol libre por amperometría a + 0,1 V, transfiriendo una alícuota de 100 μL del extracto a la célula elec oquímica que contiene la trúcela inversa empleada como medio de trabajo. La determinación se realiza aplicando el método de adiciones estándar, lo que implica la adición de alícuotas sucesivas de 50 μL de una disolución patrón de colesterol 5.0 x 10"3 M en la micela inversa. b) Análisis de colesterol total.
Se pesan con exactitud aproximadamente 7.5 g de la muestra y se añaden 20 mL de una disolución 1 M de KOH en metanol y 10 L de acetato de etilo. La mezcla se hierve a reflujo durante 30 minutos y, después de centrifugar a 4.000 rpm durante 5 minutos, el extracto se transfiere a un matraz aforado de 50 mL enrasando con acetato de etilo. Se transfiere entonces una alícuota de 200 μL a la célula electroquímica, siguiéndose el mismo procedimiento comentado anteriormente para la determinación amperométrica de colesterol.
Ejemplo 2. Determinación de colesterol en manteca de cerdo a) Análisis de colesterol libre.
Se emplea el mismo procedimiento que para la mantequilla, con la modificación de que se lleva a cabo una separación del residuo insoluble mediante centrifugación a 4.000 rpm durante 10 minutos. b) Análisis de colesterol total
Se pesan 3,75 gramos de manteca y se añaden 10 mL de una disolución reciente de KOH 1 M en metano! Tras hervir a reflujo durante 30 minutos, se añaden 15 mL de una disolución de HC1 8 M y se extrae el colesterol en tres porciones de 10 mL de n-hexano. Se mezclan los extractos y se evapora el disolvente orgánico en un rotavapor. Finalmente el residuo sólido se disuelve en 10 mL de la disolución de micelas inversas. Se transfiere una alícuota de 50 μL a la célula electroquímica, y se usa el método de adiciones estándar para la deteπrtinación de colesterol.
Ejemplo 3. Determinación de colesterol en yema de huevo a) Análisis de colesterol libre
Se pesan 4,84 gramos de yema de huevo y se disuelven en 25 mL de acetato de etilo. La mezcla se agita mecánicamente durante 5 minutos. Se transfiriere una alícuota de 50 μL a la célula electroquímica y se sigue el mismo procedimiento que para la muestra de mantequilla. b) Análisis de colesterol total
Se pesan con exactitud 0.5 gramos de yema de huevo y se hierve a reflujo durante 30 minutos con 10 mL de una disolución 1 M de KOH en metanol. Después de enfriar, se añaden 15 mL de una disolución de ácido tricloroacético al 20%. A continuación, se llevan a cabo tres extracciones sucesivas con 10 mL de n-hexano cada una, siguiéndose después el mismo procedimiento que se ha mencionado para la manteca de cerdo.
En todos los casos se han analizado tres muestras de cada alimento, llevándose a cabo tres determinaciones para cada muestra Los resultados se resumen en la siguiente Tabla, habiéndose comparado con los obtenidos mediante la aplicación del
kit de ensayo eiϊ-imático comercializado por Boehringer, que implica una hidrólisis metanólica, la incubación con la enzima (COD) y una medida espectrofotométrica.
Aplicando el test t de Student se puede deducir que no existen diferencias significativas en ningún caso entre los resultados obtenidos por ambos métodos a un nivel de significación de 0.05. Hay que resaltar que no fue posible la deteπrώiación de colesterol libre en yema de huevo utilizando el kit de Boehringer dada la turbidez de las disoluciones que se obtienen empleando isopropanol como disolvente extractante.
De los resultados obtenidos, puede deducirse que, para un determinado tipo de alimento, existe una relación constante entre el colesterol libre y el colesterol total.
Por consiguiente, teniendo en cuenta que el tratamiento de la muestra para el análisis del colesterol libre es muy simple y rápido en todos los casos con la metodología aplicada en esta invención, debe ser posible determinar solamente el colesterol libre
para una muestra dada y aplicar entonces el factor correspondiente para obtener el contenido en colesterol total. Esta es una ventaja importante del electrodo compósito bienzimático con respecto al kit enzimático, con el cual (véase por ejemplo los resultados para mantequilla) se obtienen altas desviaciones estándar en el análisis de colesterol libre, probablemente como consecuencia de la pobre solubilidad de la muestra en el disolvente empleado (isopropanol).
Por último señalar que, aunque la hidrólisis metanólica de los esteres de colesterol es similar tanto en el método seguido por nosotros como en el test de Boehringer, el tiempo de incubación al que se someten las muestras en una disolución de COD en el método de Boehringer, origina un tiempo de análisis mucho mayor (aproximadamente 1 hora más), así como un mayor consumo de reactivos cuando se compara con la metodología aplicada utilizando el electrodo bienzimático compósito en las micelas inversas.
Claims
1. Biosensor compósito para determinar colesterol en alimentos consistente en una matriz electródica rígida caracterizada por estar fabricada con una mezcla de grafito y Teflόn en la que se coinmovilizan las enzimas colestrol oxidasa y peroxidasa, junto con el mediador.
2. Biosensor compósito para determinar colesterol en alimentos, según la reivindicación 1, caracterizado porque la inmovilización de las enzimas en la matriz electródica se lleva a cabo por simple atrapamiento físico sin realizar ningún tipo de reacción química entre las enzimas y el grafito.
3. Biosensor compósito para determinar colesterol en alimentos, según la reivindicación 1 y 2, caracterizado por estar fabricado con una relación de grafito y Teflón adecuada para permitir la obtención de matrices electródicas rígidas mediante prensado.
4. Biosensor compósito para determinar colesterol en alimentos, según las reivindicaciones 1, 2 y 3 caracterizado por contener en la matriz electródica un mediador redox adecuado para monitorizar electroquímicamente la reacción enzimática
5. Biosensor compósito para determinar colesterol en alimentos, según las reivindicaciones 1,2, 3 y 4 caracterizado porque la medida de la señal analítica se realiza por amperometría en disoluciones con agitación constante, aplicando un potencial constante adecuado.
6. Procedimiento para el análisis de colesterol libre y total en alimentos utilizando el biosensor compósito, según las reividicaciones 1, 2, 3 ,4 y 5, caracterizado por emplear como medio de trabajo micelas inversas.
7. Procedimiento para el análisis de colesterol libre y total en alimentos utilizando el biosensor compósito, según las reividicaciones 1, 2, 3, 4 y 5, caracterizado porque las micelas inversas están formadas por un disolvente orgánico en el que se extrae el colesterol, como fase continua, un porcentaje pequeño de una disolución reguladora de pH, como fase dispersa y una concentración adecuada de un tensoactivo apropiado como agente emulsificante.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
AU2001282142A AU2001282142A1 (en) | 2000-07-28 | 2001-07-27 | Composite amperometric biosensor for determining cholesterol in foodstuffs |
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ESP200001918 | 2000-07-28 | ||
ES200001918A ES2167258B2 (es) | 2000-07-28 | 2000-07-28 | Biosensor amperometrico composito para la determinacion de colesterol en alimentos. |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
WO2002012550A1 true WO2002012550A1 (es) | 2002-02-14 |
Family
ID=8494495
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PCT/ES2001/000304 WO2002012550A1 (es) | 2000-07-28 | 2001-07-27 | Biosensor amperometrico composito par la determinacion de colesterol en alimentos |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
AU (1) | AU2001282142A1 (es) |
ES (1) | ES2167258B2 (es) |
WO (1) | WO2002012550A1 (es) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE10211741A1 (de) * | 2002-03-14 | 2003-10-09 | November Ag Molekulare Medizin | Verfahren zur Behandlung einer Kohlenstoff-Elektrode |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS60247150A (ja) * | 1984-05-23 | 1985-12-06 | Sadaichi Murai | pHおよびイオン濃度測定に使用する比較電極用カ−ボン電極の製造方法 |
EP0251915A2 (en) * | 1986-06-27 | 1988-01-07 | Terumo Kabushiki Kaisha | Enzyme sensor |
EP0352925A2 (en) * | 1988-07-28 | 1990-01-31 | Cambridge Life Sciences Plc | Enzyme electrodes and improvements in the manufacture thereof |
EP0422623A2 (de) * | 1989-10-13 | 1991-04-17 | Gesellschaft für Biotechnologische Forschung mbH (GBF) | Enzymelektrode und deren Verwendung |
US5312590A (en) * | 1989-04-24 | 1994-05-17 | National University Of Singapore | Amperometric sensor for single and multicomponent analysis |
US5695947A (en) * | 1995-06-06 | 1997-12-09 | Biomedix, Inc. | Amperometric cholesterol biosensor |
-
2000
- 2000-07-28 ES ES200001918A patent/ES2167258B2/es not_active Expired - Fee Related
-
2001
- 2001-07-27 AU AU2001282142A patent/AU2001282142A1/en not_active Abandoned
- 2001-07-27 WO PCT/ES2001/000304 patent/WO2002012550A1/es active Application Filing
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS60247150A (ja) * | 1984-05-23 | 1985-12-06 | Sadaichi Murai | pHおよびイオン濃度測定に使用する比較電極用カ−ボン電極の製造方法 |
EP0251915A2 (en) * | 1986-06-27 | 1988-01-07 | Terumo Kabushiki Kaisha | Enzyme sensor |
EP0352925A2 (en) * | 1988-07-28 | 1990-01-31 | Cambridge Life Sciences Plc | Enzyme electrodes and improvements in the manufacture thereof |
US5312590A (en) * | 1989-04-24 | 1994-05-17 | National University Of Singapore | Amperometric sensor for single and multicomponent analysis |
EP0422623A2 (de) * | 1989-10-13 | 1991-04-17 | Gesellschaft für Biotechnologische Forschung mbH (GBF) | Enzymelektrode und deren Verwendung |
US5695947A (en) * | 1995-06-06 | 1997-12-09 | Biomedix, Inc. | Amperometric cholesterol biosensor |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
DATABASE DERWENT [online] LONDON: DERWENT PUBLICATIONS LTD; accession no. Questel Database accession no. 1986-025019 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE10211741A1 (de) * | 2002-03-14 | 2003-10-09 | November Ag Molekulare Medizin | Verfahren zur Behandlung einer Kohlenstoff-Elektrode |
DE10211741B4 (de) * | 2002-03-14 | 2005-12-01 | November Ag | Verfahren zum elektrochemischen Detektieren eines Analyten |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ES2167258B2 (es) | 2003-03-01 |
ES2167258A1 (es) | 2002-05-01 |
AU2001282142A1 (en) | 2002-02-18 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US10895550B2 (en) | Multi-region and potential test sensors, methods, and systems | |
Mano | Engineering glucose oxidase for bioelectrochemical applications | |
Schaffar | Thick film biosensors for metabolites in undiluted whole blood and plasma samples | |
US8758591B2 (en) | Electrochemical nanocomposite biosensor system | |
US4820636A (en) | Electrochemical assay for cis-diols | |
US6241863B1 (en) | Amperometric biosensors based on redox enzymes | |
EP1802962B1 (en) | Concentration determination in a diffusion barrier layer | |
Choi et al. | Amperometric glucose biosensor based on sol–gel-derived metal oxide/Nafion composite films | |
Vidal et al. | A chronoamperometric sensor for hydrogen peroxide based on electron transfer between immobilized horseradish peroxidase on a glassy carbon electrode and a diffusing ferrocene mediator | |
JP3965212B2 (ja) | フルクトサミンの電気化学的測定 | |
Ikariyama et al. | One step fabrication of microbiosensor prepared by the codeposition of enzyme and platinum particles | |
JP2000510230A (ja) | 大豆ペルオキシダーゼ電気化学センサ | |
Jobst et al. | Thin-film Clark-type oxygen sensor based on novel polymer membrane systems for in vivo and biosensor applications | |
Churchouse et al. | Needle enzyme electrodes for biological studies | |
WO1990012487A2 (en) | Method and reagent for determination of an analyte via enzymatic means using a ferricyanide/ferric compound system | |
Calvo-Marzal et al. | Determination of reduced glutathione using an amperometric carbon paste electrode chemically modified with TTF–TCNQ | |
EP2679990B1 (en) | Enzyme electrode | |
Shu et al. | A reagentless amperometric electrode based on carbon paste, chemically modified with d‐lactate dehydrogenase, NAD+, and mediator containing polymer for d‐lactic acid analysis. I. Construction, composition, and characterization | |
Stredansky et al. | Determination of D-fructose in foodstuffs by an improved amperometric biosensor based on a solid binding matrix | |
Cayuela et al. | Development of a bienzymic graphite–Teflon composite electrode for the determination of hypoxanthine in fish | |
Milagres et al. | Immobilized ferrocene and glucose oxidase on titanium (IV) oxide grafted onto a silica gel surface and its application as an amperometric glucose biosensor | |
Varma et al. | Prussian blue-glutamate oxidase modified glassy carbon electrode: A sensitive l-glutamate and β-N-oxalyl-α, β-diaminopropionic acid (β-ODAP) sensor | |
Lobo et al. | A comparative study of some phenoxazine and phenothiazine modified carbon paste electrodes for ethanol determination | |
Lin et al. | Nickel hexacyanoferrate modified screen-printed carbon electrode for sensitive detection of ascorbic acid and hydrogen peroxide | |
WO2002012550A1 (es) | Biosensor amperometrico composito par la determinacion de colesterol en alimentos |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
AK | Designated states |
Kind code of ref document: A1 Designated state(s): AU CA JP US |
|
AL | Designated countries for regional patents |
Kind code of ref document: A1 Designated state(s): AT BE CH CY DE DK ES FI FR GB GR IE IT LU MC NL PT SE TR |
|
121 | Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application | ||
122 | Ep: pct application non-entry in european phase | ||
NENP | Non-entry into the national phase |
Ref country code: JP |