WO1997033916A1 - Anticuerpos monoclonales ior c5 para el diagnostico y tratamiento de tumores colorrectales - Google Patents

Anticuerpos monoclonales ior c5 para el diagnostico y tratamiento de tumores colorrectales Download PDF

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WO1997033916A1
WO1997033916A1 PCT/CU1997/000002 CU9700002W WO9733916A1 WO 1997033916 A1 WO1997033916 A1 WO 1997033916A1 CU 9700002 W CU9700002 W CU 9700002W WO 9733916 A1 WO9733916 A1 WO 9733916A1
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monoclonal antibodies
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colon
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PCT/CU1997/000002
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Normando Enrique Iznaga Escobar
Alejo Antonio MORALES MORALES
Gilda NUÑEZ GANDOLFF
Mayra Ramos Zuzarte
Ana María VAZQUEZ LOPEZ
Blanca Rosa Tormo Bravo
Juan Perfecto OLIVA GONZALEZ
Nelson Víctor RODRIGUEZ MESA
Josefa Lombardero Valladares
Cristina Mateo De Acosta Del Rio
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Centro De Inmunologia Molecular (Cim)
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    • A61K51/08—Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins
    • A61K51/10—Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody
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    • A61K51/1063—Antibodies or immunoglobulins; Fragments thereof, the carrier being an antibody, an immunoglobulin or a fragment thereof, e.g. a camelised human single domain antibody or the Fc fragment of an antibody against animal or human tumor cells or tumor cell determinants the tumor cell being from stomach or intestines
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    • C07K2319/00—Fusion polypeptide

Definitions

  • the present invention relates to the branch of Nuclear Medicine and in particular provides a reagent and a pharmaceutical composition containing monoclonal antibodies useful in the mapping with radioactive isotopes for the diagnosis and therapy of malignant neoplasms.
  • a reagent and a pharmaceutical composition containing monoclonal antibodies useful in the mapping with radioactive isotopes for the diagnosis and therapy of malignant neoplasms.
  • radioisotopes for the monoclonal antibody (AcMs) mapping is well known.
  • These compositions can be administered to humans to visualize or monitor the functioning of various parts of the body or to determine the presence and location of certain antigens, antibodies, hormones and the like.
  • Radionuclides include isotopes of the Iodine, Indian, Technetium and the Rhenium. It is also known that proteins can be labeled with Tc-99m and its analogs to form a compound that is used for imaging diagnosis.
  • Mo99 molybdenum-99 generator
  • NaTcO sodium pertechnetate
  • the pertechnetate is mixed with a reducing agent, such as stannous fluoride (SnF2) in order to reduce Tc-99m from the 7 + oxidation state, to 3 + , 4 + or 5 + oxidation states in the presence of the protein that It must be marked with the radioisotope.
  • SnF2 stannous fluoride
  • the other route is that of direct tide, which consists in using a reducing agent (SnC, 2-mercaptoethanol (2-ME), dithiothreitol (DTT), ascorbic acid (AA) and similar) to reduce the disulfide bridges of the residues from protein cysteine to sulfydryl groups (SH), which are relatively easy to conjugate with Tc-99m due to their high capacity to form coordination complexes.
  • a reducing agent SnC, 2-mercaptoethanol (2-ME), dithiothreitol (DTT), ascorbic acid (AA) and similar
  • the first direct method capable of achieving a strong bond between protein and Tc-99m for "in vivo" applications was the pre-staining method (US Patent No. 4 424 200).
  • the AcMs are treated with SnCb in the presence of phthalate and tartrate salts (pH 5.6) for 21 hours in a nitrogen gas atmosphere.
  • the aforementioned solution is used to reduce the AcMs and therefore expose the reactive SH groups; to protect reactive groups or SH from reduced AcMs and prevent reformation of disulfide bridges; reduce the sodium pertechnetate and complex the reduced Tc-99m and transfer it to the binding sites of the SH groups in the reduced AcMs.
  • Other authors reduce the disulfide bridges of AcMs with monothiols such as 2-ME or 2-mercaptoethylamine (2-MEA) (Schwarz A. and Steinstrasser A., Journal of Nuclear Medicine 28, p. 721, 1987; Patent Application European No. EP 0 271 806 A2). In these publications they use Sn 2+ to reduce pertechnetate and reduced Tc-99m complex it with weak ligands such as phosphonates or pyrophosphates, which are responsible for transferring Tc-99m to high affinity sites of the antibody.
  • Ascorbic acid has also been used to reduce AcMs at a molar ratio of 3500: 1 (AA: AcM).
  • AcM Ascorbic acid
  • Na2S2 ⁇ sodium dithionite bubbled with nitrogen to reduce the pertechnetate and transfer it to the binding sites of the reduced AcMs, reaching tidal efficiencies greater than 95% (Thakur ML et al, Nuclear Medicine Biology 18, p. 227-233, 1991).
  • the AcMs have shown sufficient potential to serve as carriers of radioisotopes and direct them towards the associated tumor antigens.
  • compositions with radioactive isotope labeled antibodies which emit radiation at levels that can be detected after being administered in humans are well known. (Mach JP et al, Sem. In Nuc ⁇ . Med. 19. p. 262-281, 1989; Behr TM et al, J. Nuc ⁇ . Med. 36, p. 430-441, 1995). These compositions are used to visualize and monitor the functioning of various parts of the human body or are used in the diagnosis to determine the presence or absence of certain antigens, antibodies, hormones and the like.
  • Some radiolabeled antibodies have been used to detect tumors that are associated with the carcinoembryonic antigen (CEA).
  • CEA carcinoembryonic antigen
  • the antibodies against CEA labeled with 1- 131 or 1- 125 are used to detect tumors that produce CEA or are associated with this marker (US Patent No. 3 663 684, US No. 3 867 363 and US No. 3 927 193 ).
  • AcMs can be labeled with Tc-99m in order to form agents for "in vivo" diagnosis.
  • the ior C5 AcMs antibodies of murine origin of isotype IgGl generated from the immunization of Balb / c mice with the human culture cell line SW11 16 (colorectal adenocarcinoma) and the fusion of the splenocytes of the selected mouse with the myeloma line non-secretory murine SP 2 / O Agl4 (Vázquez AM et al, Hybridoma 11, p. 245-256, 1992), recognize an antigen preferentially expressed on the surface and cytoplasm of malignant and normal colorectal cells. They do not recognize the CEA, Lewis a, Le is b, Lewis sialylated antigens, or the membrane antigens of the peripheral mononuclear cells, or the red blood cells.
  • SW1116 showed that these AcMs recognize a glycoprotein complex called ior C2, composed of a band greater than 145 KDa and a lower band of 190 KDa (Vázquez AM et al, Year Immunol., Basel, Karger, vol. 7, p. 137-145, 1993).
  • mAbs recognize in normal human tissues epithelial determinants of restricted distribution that are predominantly expressed in the food channel and its embryological derivatives. They also recognize all intestinal villi, in the gut intestine the pattern is homogeneous and in the lung it recognizes the bronchi (ciliation of the ciliated pseudostratified respiratory epithelium and caliciform cell dizziness).
  • the immunostaining of the cells of most of the glands of the adenocarcinomas of the colon varies markedly in intensity within the same tumor, resulting in a pattern of heterogeneous immunohistochemical marking.
  • the marking is apical and generally marks the mucus of the goblet cells and the intraluminally secreted material.
  • the novelty of the present invention is to provide a composition containing monoclonal antibodies that recognize the ior C2 associated tumor antigen, in particular, the ior C5 monoclonal antibodies, as well as their chimeric and humanized variants, and a weak ligand with the reducing agent Sn 2+ to carry out the transfer of the radio markers Tc-99m, Re-186, Re-188 and the like.
  • This composition is useful for radioimmunotherapy and the diagnosis by immunogammagraphy of colorectal tumors, metastases and recurrences.
  • the ior C5 AcMs are antibodies of murine origin with high specificity, of IgGl isotype that recognize the highly expressed C2 antigen on the surface and in the cytoplasm of normal and malignant colorectal cells respectively.
  • the ior C5 AcMs were obtained by immunization of Balb / c mice with the human culture cell line SW1116 (colorectal adenocarcinoma) and fusion of the splenocytes of the selected mouse with the non-secretory murine myeloma line SP 2 / O Agl4. Its generation, characterization and reactivities have been described in detail by Vázquez A. M. et al. (Hybridoma 11, p. 245-256, 1992).
  • the hybridoma producing said monoclonal antibodies has been deposited under the regulations of the Budapest Treaty for the purposes of this patent application (No. of deposit pending receipt).
  • the LAM is filtered by a 50 mm diameter Polycarbonate (Sartorius) filter, then passed through a prefilter (Glass Fiber Filter) for the removal of coarse particles and subsequently filtered through cellulose acetate membranes of 0.8 ⁇ m and 0.45 ⁇ m.
  • a prefilter Glass Fiber Filter
  • the LAM is diluted with the same volume of 1.5M Glycine Buffer, 3M NaCl pH 8.9 and for purification a X/20 26/20 column (5.3 cm 2 area ) packed with 50 ml of Protein A sepharose 4 Fast Flow gel is used and the same volume of the sample as of Tampon to be eluted at 80 cm / h (7 ml / min) is applied.
  • the column is previously equilibrated with at least 5 bed volumes.
  • the eluted fraction is passed through a 50/30 XK column packed with G-25 M sephadex in phosphate buffered saline (PBS) and the eluted protein fraction of this step is filtered under aseptic conditions under a laminar flow with a 0.22 ⁇ m membrane .
  • PBS phosphate buffered saline
  • the fractions collected from 8 different batches are mixed and concentrated in hemodialysis cartridges until the concentration of the AcMs reaches a value of 5 mg / ml measured by optical density (OD) measurements at 280 nm.
  • the following quality controls are carried out on the purified ones: protein concentration by Lowry Method, protein concentration by OD at 280 nm, biological activity by competitive ELISA method, electrophoresis (purity), isoelectric focusing (isoelectric point) and measured the stability of the AcMs. 3. Obtaining Chimeric Monoclonal Antibodies.
  • VH and VK chains were amplified by the Polymerase Chain Reaction (PCR) method using specific oligonucleotides.
  • PCR Polymerase Chain Reaction
  • cDNA complementary DNA purified from the VH and VK chains was cloned into the M 13 vector. Twelve independent clones were sequenced by the dideoxide method using T7 DNA Pol (Pharmacia). The sequences of VH and VK have a high relationship with subgroup 2 of Kabat.
  • the cDNA is reamplified by PCR using specific oligonucleotides.
  • the amplified cDNAs were digested with PstI and BstEII for the VH gene and with PvuII and BglII for the VK gene.
  • the fragments were cloned in the M13-VHPCR1 vector (digested with PstI and BstEII) or in the MI 3- VKPCR1 vector (digested with PvuII and Be II).
  • the details of the vectors are referred to in Orlandi, R. et al. (Proc. Nati. Acad. Sci. USA 86: 3833-3837, 1989).
  • the M 13VHPCR-C5 and M 13VKPCR-C5 containing the V gene inserts were directly identified by sequencing.
  • the VH gene in conjunction with the Ig heavy chain promoter and the appropriate splicing DNA sites and the signal seed sequence were cut from the M 13 vectors by digestion with HindIII and BamHI and cloned into an expression vector (pSVgpt) .
  • pSVgpt an expression vector
  • the constant region of human IgGl (Takahashi, N. et al. Cell 29: 718-749, 1982) was added as a BamHI fragment.
  • the resulting construction was C5VH-pSVgpt.
  • C5VK-pSVhyg The construction of C5VK-pSVhyg was essentially the same except that the gpt gene was replaced by the hygromycin resistance gene and the constant region of the human Kappa chain was added (Heiter, PA et al, Cell 22: 197-207, 1980)
  • NSO cells were electroporated with 4 ⁇ g of the gamma 1 region of the C5VH-CMMAR chimeric vector and 8 ⁇ g of the kappa constant region of the C5VK-CMMARhyg chimeric, were liberalized by digestion with PVUI.
  • the DNAs were mixed, precipitated in ethanol and dissolved in 25 ⁇ l of water.
  • Approximately 10 7 NSO cells were grown to semiconfluence, obtained by centrifugation and resuspended in 0.5 ml DMEN together with the digested DNA in an electroporation cuvette.
  • a pulse of 170 volts and 960 ⁇ F was applied to the cells and left on ice for 30 minutes.
  • the cells were placed in 20 ml DMEN plus 10% fetal bovine serum and left to recover for 48 hours.
  • the cells were then distributed 96-well plates and selective medium (DMEN, 10% fetal bovine serum, 0.8 ⁇ g / ml mycophenolic acid, 250 ⁇ g / ml xanthine) was applied.
  • DMEN 10% fetal bovine serum, 0.8 ⁇ g / ml mycophenolic acid, 250 ⁇ g / ml xanthine
  • 96 well microtiter plates for ELISA were coated with the anti-human IgG goat conjugate, specific gamma chain (Sera Lab). After washing with PBST (phosphate buffered saline containing 0.02% tween 20, pH 7.5), 20 ⁇ l of culture medium the plates containing the transfectomas were added to each well of the microtiter plate 1 hour at 37 ° C.
  • PBST phosphate buffered saline containing 0.02% tween 20, pH 7.5
  • the plates are then washed with PBST and the conjugate with goat peroxidase anti-human Kappa, specific light chain (Sera-Lab) is added and incubated at 37 ° C for 1 hour.
  • the contents of the wells are thrown away and these are washed with PBST and the substrate buffer containing o-phenylediamine is added.
  • the reactions were stopped after a few minutes by adding sulfuric acid and the absorbance at 492 nm was measured.
  • the ior C5 antibodies concentrated by ultrafiltration in Centricon-30 (Amicon, MA) in phosphate buffered saline (PBS) pH 7.4 are reduced by the method described in European Patent Application EP No. 0 271 806 A2, through a reduction with 2-mercaptoethanol (2-ME) at a molar ratio in excess of 2000: 1 (2-ME: AcMs) at room temperature for 30 minutes.
  • Reduced antibodies were purified to remove excess 2 -ME using a Sephadex G-25 M column (Pharmacia Biotech, Sweden) and PBS pH 7.4 bubbled with nitrogen as the mobile phase.
  • composition object of the present invention comprises two basic components:
  • the ior C5 monoclonal antibodies their chimeric or humanized variants, fragments and / or derivatives thereof.
  • composition according to the invention includes a reducing agent to reduce Tc-99m from oxidation state 7+ to oxidation states 5+, 4+ and 3+, which are physiologically acceptable and the use can be carried out with an exchange process with a weak ligand to bind Tc-99m or its analogs to the desired antibody preparation.
  • the Tc-99m must be added to the composition by the user prior to administration to humans.
  • the use of Tc-99m offers excellent images by immuno scintigraphy.
  • the Tc-99m is retained by the AcMs by a chelate mechanism and the radiopharmaceutical is formed under reduction conditions to minimize or prevent the irreversible reaction through which the Tc-99m is separated from the AcMs.
  • the Tc-99m can be obtained as sodium pertechnetate from a conventional 99j generator [ 0 / 99m' ⁇ c . Any source of pharmaceutical grade Tc-99m can be used in the present invention.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is obtained using the following methodology:
  • the ior C5 antibodies concentrated by ultrafiltration in Centricon-30 (Amicon, MA) in phosphate buffered saline (PBS) pH 7.4 was reduced by the described method (Schwarz and Steinstrasse, 1987 and modified by Mather and Ellison, 1990) through a reduction with 2-mercaptoethanol (2-ME) at a molar ratio in excess of 2000: 1 (2-ME: AcMs) at room temperature for 30 minutes.
  • the reduced antibody was purified to remove excess 2-ME using a Sephadex G-25 M column (Pharmacia Biotech, Sweden) and PBS pH 7.4 bubbled with nitrogen as the mobile phase. 2 ml fractions were collected and the reduced antibody concentration was determined by optical density measurements at 280 nm on a UV / Visible spectrophotometer (Ultrospec, Pharmacia, Sweden).
  • the protein concentration was 2.5-5.0 at the peak.
  • This solution containing MAbs reduced and the weak ligand is used in lyophilized form or is prepared instant, and for radiolabelling reconstituted with 0.1- 100 mCi (3.7- 3700 MBq) of 99m ⁇ c 04 (per mg MAb) as generator eluate ⁇ 9 Mo / 99rn Tc (Elumatic II Amersham, UK) and wait for 15 minutes at room temperature to achieve high tidal efficiency.
  • Quality control is performed by ascending paper chromatography (Whatman 3 MM) 6. Radiolabeling of Fragments.
  • F (ab ') 2 fragments of the AcMs can also be labeled by the method described above.
  • F (ab ') 2 fragment is obtained by digestion of the AcMs with pepsin followed by chromatographic purification that separates the F (ab') 2 fragments from the rest of the by-products of pepsin digestion.
  • the process of reducing the disulfide bridges in the fragment is carried out according to the method described above, the purification step is carried out by a PD-10 Sephadex G-25 M gel filtration column to remove the excess of 2-ME, the concentration of the reduced fragments is determined by optical density measurements at 280 nm as described above, the numbers of sulfydryl groups per fragment molecule are determined, the reduction solution of the pertechnetate is added and finally Add the desired amount of sodium pertechnetate.
  • the selective binding of the pharmaceutical composition to the tumor cells of the colon and rectum, metastases and recurrences that express the ior C2 antigen, once administered intravenously to humans, is monitored by immunogammographic methods through a gamma camera.
  • the accumulation of AcMs ior C5 in tumor cells is determined by these immuno-scintigraphic images with anterior and posterior flat views.
  • Full-body images are acquired with views before and after 10 minutes, 1, 3, 5 and 24 hours after the radiopharmaceutical was administered using the gantry at a speed of 20 cm / min. Acquisition times are approximately 20-25 minutes each.
  • Full body images are recorded on a 512x2048 matrix computer for further processing.
  • the ior monoclonal antibodies are antibodies of murine origin of isotype IgGl, which were obtained by immunization of Balb / c mice with the human culture cell line SW1 116 (colorectal adenocarcinoma) and fusion of the splenocytes of the mouse selected with the line of non-secretory murine myeloma SP 2 / O Ag ⁇ 4 and were purified by affinity chromatography on Protein A sepharose 4 Fast Flow.
  • the hybridoma producing said monoclonal antibodies has been deposited under the regulations of the Budapest Treaty for the purposes of this patent application (No. of deposit pending receipt).
  • VH and VK chains were amplified by the Polymerase Chain Reaction (PCR) method using specific oligonucleotides.
  • cDNA complementary DNA
  • the complementary DNA (cDNA) purified from the VH and VK chains was cloned into the MI 3 vector. Twelve independent clones were sequenced by the dideoxide method using T7 DNA Pol (Pharmacia). The sequences of VH and VK have a high relationship with subgroup 2 of Kabat.
  • the cDNA is reamplified by PCR using specific oligonucleotides.
  • the amplified cDNAs were digested with PstI and BstEII for the VH gene and with PvuII and BglII for the VK gene.
  • the fragments were cloned in the M13-VHPCR1 vector (digested with PstI and BstEII) or in the M13-VKPCR1 vector (digested with PvuII and Be II).
  • the details of the vectors (Orlandi, R et al. Proc. Nati. Acad. Sci. USA 86: 3833-3837, 1989).
  • the M 13VHPCR-C5 and M 13VKPCR-C5 containing the V gene inserts were directly identified by sequencing.
  • the VH gene in conjunction with the Ig heavy chain promoter and the appropriate splicing DNA sites and signal peptide sequence were cut from the M13 vectors by digestion with HindIII and BamHI and cloned into an expression vector (pSVgpt). Then the constant region of human IgGl (Takahashi, N. et al. Cell 29: 718-749, 1982) was added as a BamHI fragment.
  • the resulting construction was C5VH-pSVgpt.
  • C5VK-pSVhyg The construction of C5VK-pSVhyg was essentially the same except that the gpt gene was replaced by the hygromycin resistance gene and the constant region of the human Kappa chain was added (Heiter, PA et al, Cell 22: 197-207, 1980)
  • NSO cells were electroporated with 4-8 ⁇ g of the gamma 1 region of the C5VH-CMMAR chimeric vector and 8-16 ⁇ g of the kappa constant region of the C5VK-CMMARhyg chimeric, were liberalized by digestion with PVUI.
  • the DNAs were mixed, precipitated in ethanol and dissolved in 25 ⁇ l of water.
  • Approximately 10 7 NSO cells were grown to semiconfluence, obtained by centrifugation and resuspended in 0.5-1.0 ml DMEN together with the digested DNA in an electroporation cuvette.
  • a pulse of 170 volts and 960 ⁇ F was applied to the cells and left on ice for 30 minutes.
  • the cells were placed in 20 ml DMEN plus 10% fetal bovine serum and left to recover for 48 hours.
  • the cells were then distributed 96-well plates and selective medium (DMEN, 10% fetal bovine serum, 0.8 ⁇ g / ml mycophenolic acid, 250 ⁇ g / ml xanthine) was applied.
  • DMEN 10% fetal bovine serum, 0.8 ⁇ g / ml mycophenolic acid, 250 ⁇ g / ml xanthine
  • 96 well microtiter plates for ELISA were coated with the anti-human IgG goat conjugate, specific gamma chain (Sera Lab). After washing with PBST (phosphate buffered saline) containing 0.02% tween 20, pH 7.5), 20 ⁇ l of culture medium of the plates containing the transfectomas were added to each well of the microtiter plate 1 hour at 37 ° C. The plates are then washed with PBST and the conjugate with goat peroxidase anti-human Kappa, specific light chain (Sera-Lab) is added and incubated at 37 ° C for 1 hour.
  • PBST phosphate buffered saline
  • 0.02% tween 20 20 ⁇ l of culture medium of the plates containing the transfectomas were added to each well of the microtiter plate 1 hour at 37 ° C.
  • the plates are then washed with PBST and the conjugate with goat peroxidase anti-human Kappa, specific light chain
  • EXAMPLE 3 Process of obtaining a radiolabelled composition by the direct method of marking.
  • the ior C5 antibodies obtained according to the procedure of Example 1 were reduced in phosphate buffered saline (PBS) pH 7.4 (European Patent Application No. 0 271 806 A2) through a reduction with 2-mercaptoethanol (2-ME) to a molar ratio in excess of 2000: 1 (2-ME: AcMs) at room temperature for 30 minutes.
  • Reduced antibodies were purified to remove excess 2-ME using a Sephadex G-25 M column (Pharmacia Biotech, Sweden) and PBS pH 7.4 bubbled with nitrogen as the mobile phase.
  • EXAMPLE 4 Obtaining the pharmaceutical composition.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is obtained using the following methodology:
  • the ior C5 antibodies obtained according to the procedure of Example 1 were reduced in phosphate buffered saline (PBS) pH 7.4 (European Patent Application No. 0 271 806 A2) through a reduction with 2-mercaptoethanol (2-ME) to a molar ratio in excess of 2000: 1 (2-ME: AcMs), at room temperature for 30 minutes.
  • the reduced antibody was purified to remove excess 2-ME using a Sephadex G-25M column (Pharmacia Biotech, Sweden) and PBS pH 7.4 bubbled with nitrogen as the mobile phase. 2 ml fractions were collected and the reduced antibody concentration was determined by optical density measurements at 280 nm on a UV / Visible spectrophotometer (Ultrospec, Pharmacia, Sweden). The protein concentration turned out to be 2.5-5.0 at the peak.
  • This solution containing the reduced AcMs and the weak ligand is used in lyophilized form or prepared instantly, and for radiolabeling it is reconstituted with 0.1-100 mCi (3.7-3700 MBq) of 9 9 m TcO4 (per mg of AcMs ) as generator eluate 9] and [ 0 / 99m ⁇ c (Elumatic II Amersham, UK) twenty
  • EXAMPLE 5 Radiolabeling of F (ab ') 2 fragments of AcM ior C5.
  • F (ab ') 2 fragment was obtained by digestion of the AcM with pepsin followed by chromatographic purification that separated the F (ab') 2 fragments from the rest of the by-products of pepsin digestion and the purity that was obtained after purification was greater than 95%.
  • Example 3 The method described in Example 3 was used for the reduction of the disulfide bridges in the fragment, where the purification step was also included using the PD-10 Sephadex G-25 M gel filtration column and the pertechnetate reduction solution .
  • EXAMPLE 6 Determination of the immunoreactivity of reduced AcMs.
  • This example illustrates that in the present invention using 2-ME as the reducing agent of Example 2 followed by purification through a PD-10 sephadex G-25M gel filtration column, the immunoreactivity of the AcMs is not affected.
  • a competition ELISA system was used with the antigen and the native (non-reduced) and reduced AcMs were compared using standard curves with decreasing concentrations of the AcMs. Affinity constants were calculated for the concentration corresponding to 50% inhibition and found to be similar between native and reduced AcMs.
  • EXAMPLE 7 Binding of ior C5 antibodies labeled with Tc-99m to colorectal cancer cells.
  • the flat images with anterior and posterior view of the head, thorax, liver and pelvis were made in a gamma camera. Images at 1, 2, 3, 5 and 24 hours were acquired using a statistic of 700,000 counts per acquisition.
  • the images were saved on the computer in a 128x128 matrix for later use.
  • the accumulation of AcMs ior C5 in tumor cells was determined by these immuno-scintigraphic images with anterior and posterior flat views.
  • the images acquired in the aforementioned time intervals clearly show how with the monoclonal antibodies of the present invention, tumors in the ascending colon, descending colon and anal canal can be detected during the first three hours after administration of the radiopharmaceutical, as well as Hepatic and splenic angle metastases, lesions not seen before by other imaging methods such as X-rays, Ultrasound, Computed Axial Tomography (CAT Scans) and Nuclear Magnetic Resonance (NMR).
  • CAT Scans Computed Axial Tomography
  • NMR Nuclear Magnetic Resonance
  • EXAMPLE 8 Biodistribution in normal organs of the ior C5 antibodies labeled with Tc-99m.
  • Full body images were obtained using a Gamma Camera adjusted with high resolution medium energy collimator to increase side views. The images were acquired using a 20% window centered on 140 Kev which is the emission energy of the Tc-99m. Anterior and posterior full body images were acquired at 10 minutes, 1, 3, 5 and 24 hours after the radiopharmaceutical was administered using the gantry at a rate of 20 cm / min. Acquisition times were approximately 25 minutes each. Full body images were recorded on a 512x2048 matrix computer for further processing.

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Abstract

La presente invención se relaciona con la rama de la Medicina Nuclear y en particular con la aplicación del anticuerpo monoclonal ior C5 para el diagnóstico y terapia de tumores colorrectales, sus metástasis y recidivas. Para ello la presente invención proporciona una composición que contiene anticuerpos monoclonales que reconocen el antígeno ior C2 y un ligando débil con el agente reductor Sn2+ para realizar la transferencia del Tc-99m, Re-186, Re-188 y sus similares, útil para el diagnóstico por inmunogammagrafía y radioinmunoterapia de tumores colorrectales, metástasis y recidivas.

Description

ANTICUERPOS MONOCLONALES IOR C5 PARA EL DIAGNOSTICO Y TRATAMIENTO DE TUMORES COLORRECTALES.
Sector Técnico La presente invención se relaciona con la rama de la Medicina Nuclear y en particular proporciona un reactivo y una composición farmacéutica que contienen anticuerpos monoclonales útiles en el mareaje con isótopos radioactivos para el diagnóstico y la terapia de neoplasias malignas. Técnica anterior La utilización de radioisótopos para el mareaje de anticuerpos monoclonales (AcMs) es bien conocida. Estas composiciones pueden ser administradas a los humanos para visualizar o monitorear el funcionamiento de varias partes del cuerpo o para determinar la presencia y localización de determinados antígenos, anticuerpos, hormonas y sus similares.
También pueden ser utilizadas para el tratamiento de determinados estadios de la enfermedad. Tradicionalmente para estos propósitos se han utilizado una variedad de radionúclidos que incluyen isótopos del Iodo, Indio, Tecnecio y el Renio. Además se conoce que las proteínas pueden ser marcadas con Tc-99m y sus análogos para formar un compuesto que es utilizado para el diagnóstico por imágenes.
Entre los isótopos más utilizados en Medicina Nuclear el Tc-99m es el más apropiado para aplicaciones en el diagnóstico por imágenes, debido a sus excelentes propiedades como radionúclido (Energía de emisión gamma E = 140 Kev, Tiempo de vida media T 2 = 6.02 horas), así como, su fácil disponibilidad al obtenerse a partir de un generador de molibdeno-99 (Mo99) en forma de pertecnetato sódico (NaTcO ). El pertecnetato se mezcla con un agente reductor, como el fluoruro estañoso (SnF2) con el objetivo de reducir al Tc-99m del estado de oxidación 7+, a estados de oxidación 3+, 4+ o 5+ en presencia de la proteína que ha de ser marcada con el radioisótopo. Existen dos vías fundamentales para el mareaje de AcMs con Tc-99m: una es la vía indirecta mediante la cual el Agente Quelante Bifuncional (AQBF) se une a la proteína a través de un grupo funcional (en los residuos de lisina y arginina de las cadenas peptídicas) y el Tc-99m se acopla a través del otro grupo funcional o grupo del quelato (Krejcarek G. E. y Tucker K. L., Bioch. and Biophys. Res. Co mun. 77, pág. 581-585, 1977).
Otros métodos han sido descritos por diferentes autores (Patentes US No. 4 668 503; US No. 4 479 930 y US No. 4 670 545; Baidoo K. E. te al, Cáncer Res. (Suppl.) 50, pág. 799s-803s, 1990). Todos los AQBF tienen sus limitaciones, dentro de las que se incluyen, la complejidad del procedimiento de radiomarcaje, el tiempo que se requiere para acomplejar el radioisótopo y la introducción y presencia de sustancias que pueden afectar la integridad, estabilidad y reconocimiento inmuno lógico de la proteína. La otra vía es la de mareaje directo, que consiste en utilizar un agente reductor (SnC , 2-mercaptoetanol (2-ME), ditiotreitol (DTT), ácido ascórbico (AA) y sus similares) para reducir los puentes disulfuros de los residuos de cisteína de la proteína a grupos sulfidrilos (SH), los cuales se conjugan relativamente fácil al Tc-99m debido a su alta capacidad de formar complejos de coordinación.
El primer método directo capaz de lograr una unión fuerte entre la proteína y el Tc-99m para aplicaciones "in vivo" fue el método de pre- estañamiento (Patente US No. 4 424 200) . En este método los AcMs se tratan con SnCb en presencia de sales de ftalato y tartrato (pH 5.6) durante 21 horas en atmósfera de nitrógeno gaseoso.
La solución antes mencionada se utiliza para reducir los AcMs y por consiguiente exponer los grupos SH reactivos; para proteger los gru o SH reactivos de los AcMs reducidos y prevenir la reformación de los puentes disulfuros; reducir el pertecnetato sódico y acomplejar el Tc-99m reducido y transferirlo a los sitios de unión de los grupos SH en los AcMs reducidos. Otros autores reducen los puentes de disulfuro de los AcMs con monotioles como el 2-ME o 2-mercaptoetilamina (2-MEA) (Schwarz A. y Steinstrasser A. , Journal of Nuclear Medicine 28, p. 721 , 1987; Solicitud de Patente Europea No. EP 0 271 806 A2). En estas publicaciones utilizan el Sn2+ para reducir el pertecnetato y el Tc-99m reducido lo acomplejan con ligandos débiles como los fosfonatos o pirofosfatos, que son los encargados de transferir el Tc-99m a los sitios de alta afinidad del anticuerpo.
Una variante modificada del método fue publicada por Mather S. J. y Ellison D. ("Reduction mediated Technetium-99m labeling of Monoclonal antibodies". J. Nucí. Med. 31, pág. 692-697, 1990).
Algunos autores utilizan DTT para reducir los puentes disulfuros del AcM, posteriormente protegen los grupos SH reactivos con Zn2+ y otros reactivos que son derivados de grupos sulfidrilos y utilizan sales de tartrato para acomplejar y transferir el radionúclido reducido a los sitios de unión del monoclonal (Patente US No. 4 877 868; Solicitud de Patente Europea No EP 0 237 150) .
Otros estudios han sido realizados por este método y en los mismos se utilizaron DTT para reducir los anticuerpos y como acomplejantes sales de tartrato o glucoheptonato y sus análogos (Pak K. Y. et al, J. Nucí. Med. 30, pág. 793, 1989; Solicitud Internacional PCT WO 88/07382).
También ha sido utilizado el ácido ascórbico (AA) para reducir los AcMs a una relación molar de 3500 : 1 (AA : AcM). En este trabajo utilizaron soluciones de ditionita sódica (Na2S2θ ) burbujeada con nitrógeno para reducir el pertecnetato y transferirlo a los sitios de unión de los AcMs reducidos alcanzándose eficiencias de mareaje mayores de 95% (Thakur M. L. et al, Nuclear Medicine Biology 18, pág. 227-233, 1991).
Todos los métodos directos de mareaje antes mencionados son ampliamente utilizados en la actualidad debido a que evitan la conjugación de los AcMs con los AQBF como sucede en los métodos indirectos, la reducción es controlada con facilidad, no hay pérdida de la inmunoreactividad de la molécula por su ligando, puede ser adaptable a procedimiento de mareaje instantáneo y se alcanza una eficiencia de mareaje elevada 95%.
De todos los métodos directos de mareaje, la metodología basada en el uso de 2 -ME para el radiomarcaje cuantitativo de AcMs con Tc-99rn sin pérdidas en la integridad de la molécula, ni en su actividad biológica ha sido bien documentada y actualmente es la más apropiada para estudios clínicos
(Baum R. P. et al, Nucí. Med. Communications 10, pág. 345-352, 1989). Han sido probadas diferentes formas de tratamiento del carcinoma colorectal siendo la resección quirúrgica del tumor la única que ha resultado curativa. La cirugía permite alcanzar altos porcientos de sobrevida en los casos que son detectados tempranamente, pero desafortunadamente la mayoría de los casos son diagnosticados en etapas en las que el tumor ya ha hecho metástasis.
Actualmente la estrategia a seguir para aumentar la sobrevida general ante la enfermedad abarca el diagnóstico, la terapéutica y la epidemiología.
Los investigadores están evaluando métodos que permitan diagnosticar precozmente la enfermedad, o sea, en estados en que aún no se haya producido la diseminación hacia las capas más externas del órgano, etapas en las que aún es quirúrgicamente curable. De la misma forma el conocimiento de los factores epidemiológicos y el desarrollo de nuevos métodos terapéuticos más eficaces contribuirán al incremento de la sobrevida.
El uso de anticuerpos monoclonales (AcMs) marcados con isótopos radioactivos para la detección del cáncer por métodos inmunogammagráficos ha centrado la atención en los proyectos de investigación de los últimos años. Los AcMs han mostrado potencial suficiente para servir como portadores de radioisótopos y dirigirlos hacia los antígenos tumor asociados.
La utilización de composiciones con anticuerpos marcados con isótopos radioactivos, los cuales emiten radiaciones en niveles que pueden ser detectadas después de ser administradas en humanos es bien conocido (Mach J. P. et al, Sem. in Nucí. Med. 19. pág. 262-281, 1989; Behr T. M. et al, J. Nucí. Med. 36, pág.430-441 , 1995). Estas composiciones son utilizadas para visualizar y monitorear el funcionamiento de varias partes del cuerpo humano o son utilizadas en el diagnóstico para determinar la presencia o ausencia de determinados antígenos, anticuerpos, hormonas y sus similares.
Algunos anticuerpos radiomarcados han sido utilizados para detectar tumores que están asociados con el antígeno carcinoembrionario (CEA). Los anticuerpos contra el CEA marcados con 1- 131 o 1- 125 son utilizados para detectar tumores que producen CEA o están asociados con este marcador (Patentes US No. 3 663 684, US No. 3 867 363 y US No. 3 927 193). También se conoce que los AcMs pueden ser marcados con Tc-99m con el objetivo de conformar agentes para el diagnóstico "in vivo".
Los AcMs ior C5, anticuerpos de origen murino de isotipo IgGl generados a partir de la inmunización de ratones Balb/c con la línea celular de cultivo humana SW11 16 (adenocarcinoma colorrectal) y la fusión de los esplenocitos del ratón seleccionado con la línea de mieloma murino no secretora SP 2/O Agl4 (Vázquez A. M. et al, Hybridoma 11 , pag. 245-256, 1992), reconocen un antígeno expresado preferencialmente en la superficie y citoplasma de células colorrectales malignas y normales. No reconocen a los antígenos CEA, Lewis a, Le is b, Lewis a sialilado, ni a los antígencs de membrana de las células mononucleares periféricas, ni de los glóbulos rojos.
Estudios de western blotting utilizando extractos de membrana de la línea
SW1116 mostraron que estos AcMs reconocen un complejo glicoproteico al que se denominó ior C2, compuesto por una banda mayor de 145 KDa y una menor de 190 KDa (Vázquez A. M. et al, Year Immunol., Basel, Karger, vol. 7, pág. 137- 145, 1993).
Estos AcMs reconoces en tejidos humanos normales determinantes epiteliales de distribución restringida que están predominantemente expresados en el canal alimentario y sus derivados embriológicos. Reconocen además todas las vellosidades intestinales, en el intestino g ueso el patrón es homogéneo y en pulmón reconoce los bronquios (mareaje del epitelio respiratorio pseudoestratificado ciliado y mareaje de células caliciformes).
La inmunotinción de las células de la mayoría de las glándulas de los adenocarcinomas del colon, varía marcadamente en intensidad dentro del mismo tumor, resultando en un patrón de mareaje inmunohistoquímico heterogéneo. El mareaje es apical y en general marca el mucus de las células caliciformes y el material secretado intraluminalmente .
El mareaje positivo y la identificación del antígeno por métodos de western blotting e inmunohistoquímicos en un grupo heterogéneo de células cancerígenas, su mareaje heterogéneo en los tejidos de adenocarcinomas colorrectales y su expresión homogénea en la mucosa normal en estudios realizados "in vitro" sugieren que: a) el antígeno en cuestión es único y que es sintetizado por las células malignas de colon b) puede ser utilizado para el diagnóstico de tumores colorrectales, metástasis y recidivas por métodos inmunogammagráficos.
Mientras que el mareaje de los anticuerpos ior C5 con peroxidasa y con fluoresceína son muy efectivos para la identificación y localización de células tumorales "in vitro", estas composiciones marcadas no son apropiadas para uso "in vivo" debido a que no permiten la visualización por ninguno de los sistemas de detección existentes que utilizan métodos inmunogammagráficos y por consiguiente, no tienen un amplio uso ya que están simplificados sólo a técnicas inmunohistoquímicas que requieren de microscopio óptico o electrónico, para la identificación positiva de las muestras de biopsias.
Otra de las posibles consecuencias desfavorables que aparecen con los antígenos tumor asociados, es que al utilizar anticuerpos monoclonales radiomarcados, donde éstos se unen directamente a las células tumorales que expresan este antígeno pueden obtenerse imágenes imperfectas debido a la baja sensibilidad de las células tumorales, ya que el anticuerpo frecuentemente tiene un número limitado de sitios de unión. De este modo, la célula solamente puede ser capaz de acomodar una molécula de anticuerpo radiomarcado en un sólo sitio antigénico. Así, la densidad de moléculas radiomarcadas en la superficie de la célula puede no ser suficiente para distinguir la célula tumoral del resto de las células en los tejidos, debido a la baja especificidad.
Hasta el momento actual no se ha reportado ningún estudio en el que se describa la localización del antígeno ior C2 en las células tumorales, metástasis y/o recidivas por métodos inmunogammagráficos fundamentalmente, utilizando anticuerpos monoclonales contra este antígeno, marcados con Tc-99m, Re- 186, Re- 188 y sus similares.
La novedad de la presente invención consiste en proporcionar una composición que contiene anticuerpos monoclonales que reconocen el antígeno tumor asociado ior C2, en particular, los anticuerpos monoclonales ior C5, así como sus variantes quiméricas y humanizadas, y un ligando débil con el agente reductor Sn2+ para realizar la transferencia de los radiomarcadores Tc-99m, Re- 186, Re- 188 y sus similares. Dicha composición es útil para la radioinmunoterapia y el diagnóstico por inmunogammagrafía de tumores colorrectales, metástasis y recidivas. Además, con los datos obtenidos a partir de estudios realizados "in vivo" se demuestra que el patrón de biodistribución del antígeno C2 observado en humanos con la composición de la presente invención es diferente al reportado en estudios anteriores in vitro empleando los anticuerpos monoclonales ior C5 (Vázquez A. M. et al, Year Immunol., Basel, Karger, vol. 7, pág. 137- 145, 1993). En estos estudios se había observado la presencia de dicho antígeno tanto en células normales como en células malignas. Con el empleo de la composición de la presente invención se logra una distinción selectiva de las células afectadas en relación a las células normales, ya que sólo son radiomarcadas las células malignas lo que hace presumir una localización intracitoplasmática de dicho antígeno en las células normales y superficial en el caso de las células malignas. Este hallazgo hace a la presente solución técnica muy útil para su empleo en métodos de detección "in vivo" empleando técnicas inmunogammagráficas. Divulgación de la Invención
1. Obtención del AcM. Los AcMs ior C5 son anticuerpos de origen murino con alta especificidad, de isotipo IgGl que reconocen al antígeno C2 altamente expresado en la superficie y en el citoplasma de las células colorrectales normales y malignas respectivamente. Los AcMs ior C5 fueron obtenidos por la inmunización de ratones Balb/c con la línea celular de cultivo humana SW1116 (adenocarcinoma colorrectal) y la fusión de los esplenocitos del ratón seleccionado con la línea de mieloma murino no secretora SP 2/ O Agl4. Su generación, caracterización y reactividades han sido descritas en detalles por Vázquez A. M. y colaboradores (Hybridoma 11 , pág. 245-256, 1992). El hibridoma productor de dichos anticuerpos monoclonales ha sido depositado bajo las regulaciones del Tratado de Budapest a los fines de la presente solicitud de patente (No. de depósito pendiente de recibir).
2. Purificación de los AcMs.
Estos anticuerpos son purificados a partir de Líquido Ascítico Murino
(LAM). El LAM se filtra por un filtro de Policarbonato (Sartorius) con 50 mm de diámetro, después se pasa por un prefiltro (Filtro de Fibras de Cristal) para la remoción de partículas gruesas y posteriormente se filtra a través de membranas de acetato de celulosa de 0.8 μm y 0.45 μm.
El LAM se diluye con igual volumen de Tampon Glicina 1.5 M, NaCl 3M pH 8.9 y para la purificación se utiliza una columna XK 26/20 (área 5,3 cm2) empacada con 50 mi de gel de Proteína A sepharosa 4 Fast Flow y se aplica igual volumen de la muestra que de Tampon a eluir a 80 cm/h (7 ml/min).
La columna se equilibra previamente con al menos 5 volúmenes de lecho.
Después de la aplicación la columna se lava con 5- 10 volúmenes de lecho de gel del tampon anterior. La elución se realiza con Tampón Citrato (Acido Cítrico) 0.1 M pH 6.0 a una velocidad de 60 cm/h (5.3 ml/min) y la columna se regenera con Tampón Citrato 0.1 M pH 3.0 a una velocidad de 80 cm/h.
La fracción eluída se pasa por una columna XK 50/30 empacada con sephadex G-25 M en tampón fosfato salino (PBS) y la fracción de proteína eluída de este paso se filtra en condiciones asépticas bajo un flujo laminar con una membrana de 0.22 μm.
Por último las fracciones recolectadas de 8 batch diferentes se mezclan y se concentran en cartuchos de hemodiálisis hasta que la concentración de los AcMs alcanza un valor de 5 mg/ml medida por mediciones de densidad óptica (DO) a 280 nm. A los purificados se le realizan los controles de calidad siguientes: concentración de proteínas por Método Lowry, concentración de proteínas por DO a 280 nm, actividad biológica por método ELISA de competencia, electroforesis (pureza), focalización isoeléctrica (punto isoeléctrico) y se mide la estabilidad de los AcMs. 3. Obtención de Anticuerpos Monoclonales Quiméricos.
- Cío naje de la Secuencia Molecular:
Las cadenas VH y VK fueron amplificadas por el método de la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) utilizando oligonucleótidos específicos. El DNA complementario (cDNA) purificado de las cadenas VH y VK fue clonado en el vector M 13. Doce clones independientes fueron secuenciados por el método del dideóxido utilizando T7 DNA Pol (Pharmacia). La secuencias de VH y VK tienen alta relación con el subgrupo 2 de Kabat.
- Construcción de los genes quiméricos:
Se reamplifica el cDNA por PCR utilizando oligonucleótidos específicos. Los cDNA amplificados fueron digeridos con PstI y BstEII para el gen de VH y con PvuII y BglII para el gen de VK. Los fragmentos se clonaron en el vector M13-VHPCR1 (digeridos con PstI y BstEII) o en el vector MI 3- VKPCR1 (digerido con PvuII y Be II). Los detalles de los vectores son referidos en Orlandi, R. y colaboradores (Proc. Nati. Acad. Sci. USA 86:3833- 3837, 1989). El M 13VHPCR-C5 y M 13VKPCR-C5 que contienen los insertos de los genes V fueron identificados directamente por la secuenciación. El gen VH conjuntamente con el promotor de la cadena pesada de la Ig y los sitios apropiados del DNA splicing y la secuencia del pepito señal fueron cortados de los vectores M 13 por digestión con HindIII y BamHI y clonados en un vector de expresión (pSVgpt). Entonces la región constante de la IgGl humana (Takahashi, N. et al. Cell 29:718-749, 1982) fue adicionada como un fragmento BamHI. La construcción resultante fue C5VH-pSVgpt. La construcción de C5VK-pSVhyg fue esencialmente la misma excepto que el gen gpt fue reemplazado por el gen de resistencia a la higromicina y se adicionó la región constante de la cadena Kappa humana (Heiter, P. A. et al, Cell 22: 197-207, 1980)
- Expresión del vector quimérico y el humanizado en células NSO. Las células NSO fueron electroporadas con 4 μg de la región gamma 1 del vector quimérico C5VH-CMMAR y 8 μg de la región constante kappa del quimérico C5VK-CMMARhyg, fueron liberalizados por digestión con PVUI. Los DNA fueron mezclados, precipitados en etanol y disueltos en 25 μl de agua. Aproximadamente 107 células NSO fueron crecidas hasta la semiconfluencia, obtenidas por centrifugación y resuspendidas en 0.5 mi DMEN conjuntamente con el DNA digerido en una cubeta de electroporación. Después de 5 minutos en hielo, a las células se les aplicó un pulso de 170 volts y 960 μF (Gene-Pulser, Bio-Rad) y se dejan en hielo por 30 minutos. Las células fueron colocadas en 20 mi DMEN más 10 % suero fetal bovino y se dejan a que se recobren por 48 horas. Después las células fueron distribuidas placas de 96 pozos y se les aplicó medio selectivo (DMEN, 10 % suero fetal bovino, 0.8 μg/ml de ácido micofenólico, 250 μg/ml de xanthine) . Los clones transfectados se detectaron visualmente 14 días después. La presencia de los anticuerpos quiméricos y humanizados en el medio de los pozos que contienen los clones transfectados fue medida por ELISA. Las placas de Microtítulos de 96 pozos para ELISA fueron recubiertas con el conjugado goat anti-human IgG, cadena gamma específica (Sera Lab) . Después de lavarse con PBST (phosphate buffered saline que contiene 0.02 % tween 20, pH 7.5), 20 μl de medio de cultivo de las placas que contienen los transfectomas se le adicionaron a cada pozo de la placa de microtítulos 1 hora a 37°C.
Después las placas se lavan con PBST y se adiciona el conjugado con peroxidasa goat anti-human Kappa, cadena ligera específica (Sera-Lab) y se incuba a 37°C durante 1 hora. Se bota el contenido de los pozos y éstos se lavan con PBST y se adiciona el buffer sustrato que contiene o- phenylediamine. La reacciones fueron detenidas después de unos minutos añadiendo ácido sulfúrico y se midió la absorbancia a 492 nm.
4. Obtención y utilización de una composición radiomarcada para el diagnóstico y/o terapia de tumores colorectales.
La obtención de la composición radiomarcada de la presente invención se obtiene utilizando la siguiente metodología :
Los anticuerpos ior C5 concentrados por ultrafiltración en Centricon-30 (Amicon, MA) en tampón fosfato salino (PBS) pH 7.4 son reducidos por el método descrito en la Solicitud de Patente Europea EP No. 0 271 806 A2, a través de una reducción con 2-mercaptoetanol (2-ME) a una relación molar en exceso de 2000: 1 (2-ME : AcMs) a temperatura ambiente durante 30 minutos. Los anticuerpos reducidos fueron purificados para eliminar el exceso de 2 -ME usando una columna Sephadex G-25 M (Pharmacia Biotech, Suecia) y PBS pH 7.4 burbujeado con nitrógeno como fase móvil. Se colectaron fracciones de 2 mi y la concentración de los anticuerpos reducidos se determinó por mediciones de densidad óptica a 280 nm en un espectrofotómetro UV/ Visible (Ultrospec, Pharmacia, Suecia). La concentración de la proteína resultó ser de 2.5-5.0 en el pico. Alícuotas de 1- 10 mg de los anticuerpos reducidos se dispensaron en viales de 10 mi y se congelaron instantáneamente con nitrógeno líquido. Después se reconstituyó el Kit MDP comercial Amerscan Medronate II (Amersham. UK, que contiene 5 mg de ácido medrónico, 0.34 mg de fluoruro estañoso y 2 mg sodium p-aminobenzoate) con 5 mi de solución salina burbujeada con nitrógeno. 50- 100 μl de esta solución se añadieron por cada 1 mg de los anticuerpos reducidos para dar una concentración de MDP, fluoruro estañoso y ácido p-aminobenzoico de 50- 100, 3.4-6.8 y 20-40 μg por mg de anticuerpos respectivamente. La solución con los AcMs reducidos y el ligando débil se congela en nitrógeno liquido de nuevo y los productos congelados se liofilizaron por 24 horas, sellados al vacío y se guardan a 4°C hasta su uso.
La composición objeto de la presente invención comprende dos componentes básicos:
1. Los anticuerpos monoclonales ior C5, sus variantes quiméricas o humanizadas, fragmentos y/o derivados de éstos. 2. Un agente reductor capaz de reducir al Tc-99m de Te (7+) a Tc(5+), Tc(4+) y un acomplejante débil para realizar el intercambio del Tc-99m con el anticuerpo.
Las ventajas fundamentales de la composición de acuerdo con la invención es que entre sus componentes incluye un agente reductor para reducir al Tc-99m del estado de oxidación 7+ a los estados de oxidación 5+, 4+ y 3+, los cuales son fisiológicamente aceptables y el uso puede ser llevado a cabo con un proceso de intercambio con un ligando débil para unir el Tc-99m o sus análogos a la preparación de anticuerpo deseada.
El Tc-99m debe ser adicionado a la composición por el usuario previo a la administración a humanos. La utilización del Tc-99m ofrece imágenes excelentes por inmuno gammagrafia. El Tc-99m se retiene por los AcMs por un mecanismo de quelatos y el radiofármaco se forma bajo condiciones de reducción para minimizar o prevenir la reacción irreversible a través de la cual el Tc-99m se separa de los AcMs. El Tc-99m se puede obtener como pertecnetato sódico desde un generador convencional de 99j [0/99m'τc. Cualquier fuente de Tc-99m con calidad farmacéutica puede ser utilizado en la presente invención.
5. Obtención de la composición farmacéutica.
La composición farmacéutica de la presente invención se obtiene utilizando la siguiente metodología : Los anticuerpos ior C5 concentrados por ultrafiltración en Centricon-30 (Amicon, MA) en tampón fosfato salino (PBS) pH 7.4 fue reducido por el método descrito (Schwarz y Steinstrasse, 1987 y modificado por Mather y Ellison, 1990) a través de una reducción con 2-mercaptoetanol (2-ME) a una relación molar en exceso de 2000: 1 (2-ME : AcMs) a temperatura ambiente durante 30 minutos. El anticuerpo reducido se purificó para eliminar el exceso de 2-ME usando una columna Sephadex G-25 M (Pharmacia Biotech, Suecia) y PBS pH 7.4 burbujeado con nitrógeno como fase móvil. Se colectaron fracciones de 2 mi y la concentración del anticuerpo reducido se determinó por mediciones de densidad óptica a 280 nm en un espectrofotómetro UV/ Visible (Ultrospec, Pharmacia, Suecia). La concentración de la pro teína resultó ser de 2.5-5.0 en el pico.
Alícuotas de 1- 10 mg de los anticuerpos reducidos se dispensaron en viales de 10 mi y se congelaron instantáneamente con nitrógeno líquido. Después se reconstituyó el Kit MDP comercial Amerscan Medronate II (Amersham. UK, que contiene 5 mg de ácido medrónico, 0.34 mg de fluoruro estañoso y 2 mg sodium p-aminobenzoate) con 5 mi de solución salina burbujeada con nitrógeno, 50- 100 μl de esta solución se añadieron por cada 1 mg de anticuerpos reducidos para dar una concentración de MDP, fluoruro estañoso y ácido p-aminobenzoico de 50, 3.4 y 20 μg por mg de anticuerpos respectivamente.
Esta solución que contiene los AcMs reducidos y el ligando débil se utiliza en forma liofilizada o se prepara al instante, y para el radiomarcaje se reconstituye con 0.1- 100 mCi (3.7- 3700 MBq) de 99mχc04 (por cada mg de AcMs) como eluato del generador ^9Mo/99rnTc (Elumatic II Amersham, UK) y se espera durante 15 minutos a temperatura ambiente para alcanzar una alta eficiencia de mareaje.
Control de la Calidad de Radiomarcaje.
El control de calidad se realiza por cromatografía de papel ascendente (Whatman 3 MM) 6. Radiomarcaje de Fragmentos.
Los fragmentos F(ab')2 de los AcMs también pueden ser marcados por el método descrito anteriormente. El fragmento F(ab')2 se obtiene por digestión de los AcMs con pepsina seguido de una purificación cromatográfica que separa los fragmentos F(ab')2 del resto de los subproductos de la digestión con pepsina.
Posterior al paso de purificación se realiza el proceso de reducción de los puentes disulfuro en el fragmento según el método descrito anteriormente, se realiza el paso de purificación por una columna de filtración en gel PD- 10 Sephadex G-25 M para eliminar el exceso de 2-ME, se determina la concentración de los fragmentos reducidos por mediciones de densidad óptica a 280 nm como se describe arriba, se determinan los números de grupos sulfidrilos por molécula de fragmento, se le añade la solución de reducción del pertecnetato y por último se le adiciona la cantidad deseada de pertecnetato sódico.
7. Determinación de la inmunorreactividad de los AcMs reducidos. En la presente invención se utiliza un sistema ELISA de competencia con el antígeno y se comparan los AcMs nativos (no reducidos) y los reducidos utilizando curvas patrones con concentraciones decrecientes de los AcMs. Se calculan las constantes de afinidad para las concentraciones correspondiente al 50 % de inhibición y se determina si son similares las afinidades entre los AcMs nativos y los reducidos.
Por este método se determina que el proceso de reducción de los anticuerpos y sus fragmentos con 2 -ME, seguido de la purificación a través de una columna de filtración en gel PD- 10 sephadex G-25 M, no afecta la inmunorreactividad de los anticuerpos y sus fragmentos, ni su reconocimiento por el antígeno, ni provoca cambios estructurales en la integridad de la molécula. 8. Monitoreo de la composición farmacéutica.
La unión selectiva de la composición farmacéutica a las células tumorales de colon y recto, metástasis y recidivas que expresan el antígeno ior C2, una vez administrada por vía endovenosa a humanos se monitorea por métodos inmunogammagráficos a través de una cámara gamma.
Se realizan imágenes planas con vista anterior y posterior de la cabeza, tórax, hígado y pelvis con ayuda de una cámara gamma. Se realizan adquisiciones a 1, 2, 3, 5 y 24 horas, utilizando una estadística de 700 000 conteos por adquisición. Las imágenes se guardan en la computadora en una matrix de 128x128 para su posterior utilización.
La acumulación de los AcMs ior C5 en las células tumorales se determina por estas imágenes inmuno gammagráficas con vistas planas anteriores y posteriores.
9. Monitoreo de la biodistribución de la composición. La biodistribución en órganos normales de la composición de la presente invención se monitorea a través de imágenes de cuerpo completo que se obtienen utilizando una Cámara Gamma ajustada con colimador de energía media de alta resolución para incrementar las vistas laterales. Las imágenes se adquieren utilizando una ventana de 20 % centrada en 140 Kev que es la energía de emisión del Tc-99m.
Se adquieren imágenes de cuerpo completo con vistas anteriores y posteriores a los 10 minutos, 1 , 3, 5 y 24 horas después de administrado el radiofármaco utilizando el gantry a una velocidad de 20 cm/min. Los tiempos de adquisición son de aproximadamente entre 20-25 minutos cada uno.
Las imágenes de cuerpo completo se graban en una computadora en matrix de 512x2048 para su posterior procesamiento.
La invención se describe con más detalles por medio de los siguientes ejemplos. EJEMPLO 1: Preparación de los anticuerpos monoclonales ior C5.
Los anticuerpos monoclonales ior son anticuerpos de origen murino de isotipo IgGl , los cuales fueron obtenidos mediante la inmunización de ratones Balb/c con la línea celular de cultivo humana SW1 116 (adenocarcinoma colorrectal) y la fusión de los esplenocitos del ratón seleccionado con la línea de mieloma murino no secretora SP 2 /O Agí 4 y se purificaron por cromatografía de afinidad en Proteína A sepharosa 4 Fast Flow.
El hibridoma productor de dichos anticuerpos monoclonales ha sido depositado bajo las regulaciones del Tratado de Budapest a los fines de la presente solicitud de patente (No. de depósito pendiente de recibir).
EJEMPLO 2. Obtención de los Anticuerpos Monoclonales Quiméricos.
- Clonaje de la Secuencia Molecular: Las cadenas VH y VK fueron amplificadas por el método de la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) utilizando oligonucleótidos específicos. El DNA complementario (cDNA) purificado de las cadenas VH y VK fue clonado en el vector MI 3. Doce clones independientes fueron secuenciados por el método del dideóxido utilizando T7 DNA Pol (Pharmacia) . La secuencias de VH y VK tienen alta relación con el subgrupo 2 de Kabat.
- Construcción de los genes quiméricos:
Se reamplifica el cDNA por PCR utilizando oligonucleótidos específicos. Los cDNA amplificados fueron digeridos con PstI y BstEII para el gen de VH y con PvuII y BglII para el gen de VK. Los fragmentos se clonaron en el vector M13-VHPCR1 (digeridos con PstI y BstEII) o en el vector M13- VKPCR1 (digerido con PvuII y Be II). Los detalles de los vectores (Orlandi, R et al. Proc. Nati. Acad. Sci. USA 86:3833-3837, 1989). El M 13VHPCR-C5 y M 13VKPCR-C5 que contienen los insertos de los genes V fueron identificados directamente por la secuenciación. El gen VH conjuntamente con el promotor de la cadena pesada de la Ig y los sitios apropiados del DNA splicing y la secuencia del péptido señal fueron cortados de los vectores M13 por digestión con HindIII y BamHI y clonados en un vector de expresión (pSVgpt). Entonces la región constante de la IgGl humana (Takahashi, N. et al. Cell 29:718-749, 1982) fue adicionada como un fragmento BamHI. La construcción resultante fue C5VH-pSVgpt. La construcción de C5VK-pSVhyg fue esencialmente la misma excepto que el gen gpt fue reemplazado por el gen de resistencia a la higromicina y se adicionó la región constante de la cadena Kappa humana (Heiter, P. A. et al, Cell 22: 197-207, 1980)
- Expresión del vector quimérico y el humanizado en células NSO. Las células NSO fueron electroporadas con 4-8 μg de la región gamma 1 del vector quimérico C5VH-CMMAR y 8- 16 μg de la región constante kappa del quimérico C5VK-CMMARhyg, fueron liberalizados por digestión con PVUI. Los DNA fueron mezclados, precipitados en etanol y disueltos en 25 μl de agua. Aproximadamente 107 células NSO fueron crecidas hasta la semiconfluencia, obtenidas por centrifugación y resuspendidas en 0.5- 1.0 mi DMEN conjuntamente con el DNA digerido en una cubeta de electroporación. Después de 5 minutos en hielo, a las células se les aplicó un pulso de 170 volts y 960 μF (Gene-Pulser, Bio-Rad) y se dejan en hielo por 30 minutos. Las células fueron colocadas en 20 mi DMEN más 10 % suero fetal bovino y se dejan a que se recobren por 48 horas. Después las células fueron distribuidas placas de 96 pozos y se les aplicó medio selectivo (DMEN, 10 % suero fetal bovino, 0.8 μg/ml de ácido micofenólico, 250 μg/ml de xanthine). Los clones transfectados se detectaron visualmente 14 días después. La presencia de los anticuerpos quiméricos y humanizados en el medio de los pozos que contienen los clones transfectados fue medida por ELISA. Las placas de Microtítulos de 96 pozos para ELISA fueron recubiertas con el conjugado goat anti-human IgG, cadena gamma específica (Sera Lab). Después de lavarse con PBST (phosphate buffered saline) que contiene 0.02 % tween 20, pH 7.5), 20 μl de medio de cultivo de las placas que contienen los transfectomas se le adicionaron a cada pozo de la placa de microtítulos 1 hora a 37°C. Después las placas se lavan con PBST y se adiciona el conjugado con peroxidasa goat anti-human Kappa, cadena ligera específica (Sera-Lab) y se incuba a 37°C durante 1 hora. Se bota el contenido de los pozos y éstos se lavan con PBST y se adiciona el buffer sustrato que contiene o- phenylediamine. La reacciones fueron detenidas después de unos minutos añadiendo ácido sulfúrico y se midió la absorbancia a 492 nm.
EJEMPLO 3 : Proceso de obtención de una composición radiomarcada por el método directo de mareaje. Los anticuerpos ior C5 obtenidos según el procedimiento del Ejemplo 1 fueron reducidos en tampón fosfato salino (PBS) pH 7.4 (Solicitud de Patente Europea No. 0 271 806 A2) a través de una reducción con 2-mercaptoetanol (2-ME) a una relación molar en exceso de 2000: 1 (2-ME : AcMs) a temperatura ambiente durante 30 minutos. Los anticuerpos reducidos se purificaron para eliminar el exceso de 2-ME usando una columna Sephadex G-25 M (Pharmacia Biotech, Suecia) y PBS pH 7.4 burbujeado con nitrógeno como fase móvil. Se colectaron fracciones de 2 mi y la concentración de dichos anticuerpos reducidos se determinó por mediciones de densidad óptica a 280 nm en un espectrofotómetro UV/Visible (Ultrospec, Pharmacia, Suecia). La concentración de la proteína resultó ser de 2.5-5.0 en el pico.
Alícuotas de 1- 10 mg de los anticuerpos reducidos se dispensaron en viales de 10 mi y se congelaron instantáneamente con nitrógeno líquido. Después se reconstituyó el Kit MDP comercial Amerscan Medronate II (Amersham. UK, que contiene 5 mg de ácido medrónico, 0.34 mg de fluoruro estañoso y 2 mg sodium p-aminobenzoate) con 5 mi de solución salina burbujeada con nitrógeno, 50- 100 μl de esta solución se añadieron por cada 1 mg de anticuerpos reducidos para dar una concentración de MDP, fluoruro estañoso y ácido p-aminobenzoico de 50- 100, 3.4-6.8 y 20-40 μg por mg de anticuerpos respectivamente: La solución con los AcMs reducidos y el ligando débil se congela en nitrógeno líquido de nuevo y los productos congelados se liofilizaron por 24 horas, sellados al vacío y se guardan a 4°C hasta su uso.
EJEMPLO 4 : Obtención de la composición farmacéutica. La composición farmacéutica de la presente invención se obtiene utilizando la siguiente metodología :
Los anticuerpos ior C5 obtenidos según el procedimiento del Ejemplo 1 se redujeron en tampón fosfato salino (PBS) pH 7.4 (Solicitud de Patente Europea No. 0 271 806 A2) a través de una reducción con 2-mercaptoetanol (2-ME) a una relación molar en exceso de 2000: 1 (2-ME : AcMs), a temperatura ambiente durante 30 minutos. El anticuerpo reducido se purificó para eliminar el exceso de 2-ME usando una columna Sephadex G- 25 M (Pharmacia Biotech, Suecia) y PBS pH 7.4 burbujeado con nitrógeno como fase móvil. Se colectaron fracciones de 2 mi y la concentración del anticuerpo reducido se determinó por mediciones de densidad óptica a 280 nm en un espectrofotómetro UV/ Visible (Ultrospec, Pharmacia, Suecia). La concentración de la proteína resultó ser de 2.5-5.0 en el pico.
Alícuotas de 1- 10 mg de los anticuerpos reducidos se dispensaron en viales de 10 mi y se congelaron instan táneamente con nitrógeno líquido. Después se reconstituyó el Kit MDP comercial Amerscan Medro ate II (Amersham. UK, que contiene 5 mg de ácido medrónico, 0.34 mg de fluoruro estañoso y 2 mg sodium p-aminobenzoate) con 5 mi de solución salina burbujeada con nitrógeno, 50-100 μl de esta solución se añadieron por cada 1 mg de anticuerpo reducido para dar una concentración de MDP, fluoruro estañoso y ácido p-aminobenzoico de 50- 100, 3.4-6.8 y 20-40 μg por mg de anticuerpos respectivamente.
Esta solución que contiene los AcMs reducidos y el ligando débil se utiliza en forma liofilizada o se prepara al instante, y para el radiomarcaje se reconstituye con 0.1- 100 mCi (3.7- 3700 MBq) de 99mTcO4 (por cada mg de AcMs) como eluato del generador 9 ]y[0/99mτc (Elumatic II Amersham, UK) 20
y se espera durante 15 minutos a temperatura ambiente para alcanzar una alta eficiencia de mareaje.
EJEMPLO 5 : Radiomarcaje de fragmentos F(ab')2 del AcM ior C5. El fragmento F(ab')2 se obtuvo por digestión del AcM con pepsina seguido de una purificación cromatográfica que separó los fragmentos F(ab')2 del resto de los subproductos de la digestión con pepsina y la pureza que se obtuvo después de la purificación fue mayor del 95 %.
El método descrito en el Ejemplo 3 se empleó para la reducción de los puentes disulfuro en el fragmento, donde además se incluyó el paso de purificación usando la columna de filtración en gel PD- 10 Sephadex G-25 M y la solución de reducción del pertecnetato.
EJEMPLO 6 : Determinación de la inmunorreactividad de los AcMs reducidos.
Este ejemplo ilustra que en la presente invención usando el 2-ME como agente reductor del ejemplo 2 seguido de la purificación a través de una columna de filtración en gel PD- 10 sephadex G-25 M, no se afecta la inmunorreactividad de los AcMs. Se utilizó un sistema ELISA de competencia con el antígeno y se compararon los AcMs nativos (no reducidos) y los reducidos utilizando curvas patrones con concentraciones decrecientes de los AcMs. Se calcularon las constantes de afinidad para la concentración correspondiente al 50 % de inhibición y se encontró que eran similares entre el AcMs nativos y los reducidos.
EJEMPLO 7 : Unión de los anticuerpos ior C5 marcados con Tc-99m a las células de cáncer colorrectal.
Las imágenes planas con vista anterior y posterior de la cabeza, tórax, hígado y pelvis fueron realizadas en una cámara gamma. Imágenes a la 1, 2, 3, 5 y 24 horas fueron adquiridas utilizando una estadística de 700 000 conteos por adquisición.
Las imágenes fueron guardadas en la computadora en una matrix de 128x128 para su posterior utilización. La acumulación de los AcMs ior C5 en las células tumorales se determinó por estas imágenes inmuno gammagráficas con vistas planas anteriores y posteriores. Las imágenes adquiridas en los intervalos de tiempos antes mencionados muestran claramente como con los anticuerpos monoclonales de la presente invención pueden ser detectados durante las primeras tres horas después de administrado el radiofármaco tumores en el colon ascendente, colon descendente y en el canal anal, asi como metástasis hepáticas y en ángulo esplénico, lesiones no vistas antes por otros métodos imageneológicos como los Rayos X, el Ultrasonido, la Tomografia Axial Computadorizada (CAT Scans) y la Resonancia Magnética Nuclear (NMR). La gran selectividad de estos anticuerpos por los tumores colorrectales, sus metástasis y recidivas propicia que a las 24 hrs después de administrado el radiofármaco en las lesiones se localizan entre un 1 y 3 % de la dosis inyectada por cada 100 g de tumor.
EJEMPLO 8 : Biodistribución en órganos normales de los anticuerpos ior C5 marcado con Tc-99m.
Imágenes de cuerpo completo fueron obtenidas usando una Cámara Gamma ajustada con colimador de energía media de alta resolución para incrementar las vistas laterales. Las imágenes fueron adquiridas utilizando una ventana de 20 % centrada en 140 Kev que es la energía de emisión del Tc-99m. Imágenes de cuerpo completo anterior y posterior fueron adquiridas a los 10 minutos, 1, 3, 5 y 24 horas después de administrado el radiofármaco utilizando el gantry a una velocidad de 20 cm/min. Los tiempos de adquisición fueron aproximadamente de 25 minutos cada uno. Las imágenes de cuerpo completo fueron grabadas en una computadora en matrix de 512x2048 para su posterior procesamiento. Con ayuda de regiones de interés que se dibujaron sobre los principales órganos fuentes se determinaron los patrones de biodistribución en órganos normales, los cuales mostraron que durante las primeras 5 horas después de administrado el radiofármaco la mayor parte de la actividad se encuentra en el torrente sanguíneo y en los órganos parenquimatosos. Sólo un bajo porciento de la actividad se excreta en las primeras horas por orina.
Entre las 1 y 5 horas se observó buen contraste en los pulmones, el hígado y los ríñones, así como disminución de la perfusión de los músculos periféricos, aunque la actividad en el torrente sanguíneo continuó elevada. Las imágenes tomadas a las 24 horas después de la inyección muestran una actividad baja en sangre y en el cuerpo completo (Tabla 1).
Tabla 1: Biodistribución en órganos normales de los AcMs ior C5 marcados con Tc-99m.
% de la Dosis Inyectada
Órgano Fuente 10 min 1 hr 3 hr ' 5 hr 24 hr
Corazón 7.9 6.8 4.5 3.8 0.3
Hígado 9.4 8.3 6.0 5.3 0.6
Bazo 1.4 1.2 0.5 0.7 0
Ríñones 3.7 3.6 2.4 2.6 0.2
Vejiga 0.5 0.4 0.4 0.8 0.0
Pulmones 4.0 3.5 2.3 2.05 0.1
Resto Cuerpo 67.9 58.8 48.0 38.5 1.0
Cuerpo Entero 100 87.0 67.7 56.5 2.6
Con estos datos obtenidos en estudios "in vivo" se demuestra que el patrón de biodistribución del antígeno C2 observado en humanos con la composición de la presente invención es diferente al reportado en estudios anteriores empleando los anticuerpos monoclonales ior C5 (Vázquez A. M. et al, Year Immunol., Basel, Karger, vol. 7, pág. 137- 145, 1993). En estos estudios se había observado la presencia de dicho antígeno tanto en células normales como en células malignas. Con el empleo de la composición de la presente invención se logra una distinción selectiva de las células afectadas en relación a las células normales, ya que sólo son radiomarcadas las células malignas lo que hace presumir una localización intracitoplasmática de dicho antígeno en las células normales y superficial en el caso de las células malignas. Este hallazgo hace a la presente solución técnica muy útil para su utilización en métodos de detección inmunogammagráficos.

Claims

24REIVINDICACIONES
1. Anticuerpos monoclonales que reconocen el antígeno ior C2 presente en tumores malignos de colon y recto, epitopes similares al mismo, mezcla de éstos o cualesquiera antígeno tumor asociado relacionado con dicho antígeno caracterizados por ser útiles en el diagnóstico y /o tratamiento de tumores malignos de colon y recto, sus metástasis y recidivas.
2. Anticuerpos monoclonales según la reivindicación 1 caracterizados porque son los anticuerpos monoclonales murinos C5 así como cualquier variante humanizada o quimérica obtenida a partir de ellos.
3. Anticuerpos monoclonales según las reivindicaciones 1 y 2 caracterizados porque los anticuerpos monoclonales murinos C5 son obtenidos a partir del hibridoma de igual nombre (Número de Depósito pendiente).
4. Anticuerpos monoclonales según la reivindicación 1 caracterizado porque son anticuerpos antiidiotipo generados por los anticuerpos monoclonales de la reivindicación 2.
5. Anticuerpos monoclonales según la reivindicación 1 caracterizado porque son anticuerpos anti-antiidiotipo que reconocen al antígeno ior C2.
6. Uso de los anticuerpos de las reivindicaciones de la 1 a la 5 para la fabricación de una composición farmacéutica útil en el tratamiento tumores malignos de colon y recto, sus metástasis y recidivas.
7. Uso de los anticuerpos de las reivindicaciones de la 1 a la 5 para la fabricación de una composición útil para la localización e identificación "in vivo" de tumores malignos de colon y recto, sus metástasis y recidivas.
8. Composición farmacéutica para el tratamiento de tumores malignos de colon y recto, sus metástasis y recidivas caracterizada porque contiene uno de los anticuerpos monoclonales de las reivindicaciones de la 1 a la 5 y un excipiente apropiado para su aplicación.
9. Composición según la reivindicación 8 caracterizada porque contiene fragmentos de dichos anticuerpos u otras transformaciones obtenibles a partir de los mismos.
10. Composición para la localización e identificación "in vivo" de tumores malignos de colon y recto, sus metástasis y recidivas caracterizada porque contiene uno de los anticuerpos monoclonales de las reivindicaciones de la 1 a la 5.
11. Composición según la reivindicación 10 caracterizada porque contiene además compuestos para el radiomarcaje de dichos anticuerpos, los cuales se mezclan con los mismos para producir una solución acuosa administrable.
12. Composición según la reivindicación 11, caracterizada porque los radiomarcadores pueden ser el tecnecio 99, el renio 186, el renio 188 o sus análogos.
13. Método diagnóstico para la detección de tumores malignos de colon, sus metástasis y recidivas "in vivo" caracterizado por la administración de una composición fisiológicamente aceptable que contiene cualquiera de los anticuerpos de la reivindicaciones de la 1 a la 5 los cuales han sido previamente marcados con Tc-99m o sus análogos y el monitoreo de la biodistribución de dicha composición por métodos de inmunogammagrafía.
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