WO1996029400A1 - Procede de regulation de l'expression d'un gene dans un baculovirus, par un site de fixation d'un recepteur de l'acide retinoique, et vecteur pour la mise en ×uvre dudit procede - Google Patents

Procede de regulation de l'expression d'un gene dans un baculovirus, par un site de fixation d'un recepteur de l'acide retinoique, et vecteur pour la mise en ×uvre dudit procede Download PDF

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WO1996029400A1
WO1996029400A1 PCT/FR1996/000437 FR9600437W WO9629400A1 WO 1996029400 A1 WO1996029400 A1 WO 1996029400A1 FR 9600437 W FR9600437 W FR 9600437W WO 9629400 A1 WO9629400 A1 WO 9629400A1
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baculovirus
gene
expression
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PCT/FR1996/000437
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Gérard Devauchelle
Marie-Hélène OGLIASTRO
Martine Cerutti
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Institut National De La Recherche Agronomique (Inra)
Centre National De La Recherche Scientifique (Cnrs)
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    • C12N2710/14141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2710/14143Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector

Definitions

  • the present invention relates to new expression vectors obtained from baculovirus.
  • Baculoviruses represented by the Autographa califomica nuclear polyhedrosis virus (AcMNPV), have several promoters, active at different stages of the viral replication cycle. Some of these promoters are used in genetic engineering to control the expression of heterologous genes inserted into the baculovirus genome. Among the most commonly used, there are two strong late promoters: that of polyhedrin (polh) and that of the P10 polypeptide, which are only active at the end of the infection cycle, after replication of the viral genome, and which allow the genes under their control to be expressed at a high level.
  • polyhedrin polyhedrin
  • P10 polypeptide that are only active at the end of the infection cycle, after replication of the viral genome, and which allow the genes under their control to be expressed at a high level.
  • polyhedrin promoter the sequence located between the positions (-71 and + ⁇ ) defined with respect to A (+ l) of the polyhedrin ATG
  • P10 promoter the sequence located between the positions (-70 and +1) defined relative to the A (+ 1) of the ATG of the P10 polypeptide.
  • a vector capable of expressing a foreign gene under transcriptional control of a promoter of said baculovirus one generally proceeds, according to methods known in themselves, to the construction of a transfer vector containing said promoter, then to recombination with the DNA of the wild virus, and finally to the selection of the recombinants.
  • the early genes are first expressed: the transcription of these genes involves the RNA polymerase II of the host cell.
  • late and very late genes such as polh and P10 are transcribed by a particular RNA polymerase, of at least partly viral origin, insensitive to ⁇ -amanitine.
  • a / GTAAG motif common to all late genes constitutes the site of initiation of transcription. This motif is essential for the recognition of these promoters by RNA polymerase and therefore for their activity. However, the mechanisms that govern transcriptional activation are not yet fully understood. Previous work by the team of
  • the inventors have shown that it is particularly advantageous, to increase the level of expression of a heterologous gene placed under the control of one of the two very late strong polh or P10 promoters, to construct a baculovirus in which only one of these two strong late promoters is inactivated, and to express said gene under control of the remaining promoter.
  • the Inventors had the idea of studying the influence of the coding sequence of the P10 gene on its expression. For this purpose, they made, from the wild baculovirus AcMNPV, constructions comprising the reporter gene CAT inserted at one of the positions +16, +150, or +230 of the sequence coding for P10 (these positions are defined relative to A (+1) of the ATG initiation codon of P10), and studied the simultaneous expression of the reporter gene CAT and the polyedrine gene, in the recombinant viruses (respectively named AcCAT + 16, AcCAT + 150, and AcCAT + 230) obtained, relative to the wild baculovirus AcMNPV and to the modified baculovirus AcSLP33 (in which the P10 promoter is inactivated).
  • the inventors have thus been able to observe that when the reporter gene is inserted at +16 (this insertion is accompanied by the deletion of part of the sequence coding for P10), the expression of the reporter gene is weak and that of the gene polyhedrin increases very significantly, although the P10 promoter is intact, until it reaches a level comparable to that observed in a virus where the P10 promoter is inactivated, such as the AcSLP33 virus.
  • the reporter gene when the reporter gene is inserted further downstream (+150 or +230), the expression of said gene increases, and that of polyhedrin decreases to return to a basic level comparable to that observed in the wild baculovirus AcMNPV.
  • the inventors sought to express the isoforms ⁇ and ⁇ of the human retinoic acid receptor (hRAR) in insect cells, and for this purpose built to starting from wild baculoviruses AcMNPV, recombinant baculoviruses which respectively express said ⁇ or ⁇ isoforms under the control of the polyhedrin promoter.
  • hRAR human retinoic acid receptor
  • This activation is manifested by a level of mRNA which is 2 times higher than the control (constituted by the wild baculovirus AcMNPV) in the case of the ⁇ receptor, and 5 times higher in the case of the ⁇ receptor: it is therefore a question of 'activation at the transcriptional level.
  • this activation is observed not only during the transfection of a cell with a double-recombinant virus, but also during the co-transfection of a cell with two plasmids (one expressing an RAR, and l other carrying a RARE domain located in the P10 gene); it is therefore a ⁇ rans-activation.
  • the inventors established a comparison between the results of the two series of experiments described above and proceeded to analyze the sequence of the P10 region, in order to search for the possible existence of sequences related to those constituting sites of fixation for nuclear receptors, and in particular for retinoic receptors.
  • RARs Retinoic acid receptors
  • nuclear receptors also includes, for example, in vertebrates, vitamin D3 receptors, or thyroid receptors.
  • RXRs receptors
  • RXRs which are like RARs, activated by retinoic acid or by other retinoids have also been described.
  • nuclear receptors are capable of activating the transcription of a target gene. This activation involves firstly the binding of these nuclear receptors with their specific ligand, and on the other hand, their attachment to DNA, which involves the recognition of short consensus DNA sequences called “response elements" generally located upstream of the target gene.
  • the RARs and RXRs thus recognize consensus sequences which are repeated one or more times, in tandem or in palindrome, and define portions of DNA called respectively RARE or RXRE elements [GORDMAN et al. Mol. Cell. Biol. 2, 1044-1051 (1982)]. Different consensus sequences have been identified.
  • the elements of response to the RAR ⁇ receptor include tandem repeats of the GTTCAC sequence;
  • PCT application WO 92/16658 describes RXRE response elements, and in particular an RXRE element obtained from the promoter of the rat CRBPII gene, which comprises tandem repeats of the AGGTCA sequences.
  • the response elements to nuclear receptors have a variable specificity. Some, such as the thyroid hormone receptor response (TRE) elements respond not only to their own receptor but also to RARs and RXRs. Others are more specific, such as the RAR ⁇ receptor response elements, which respond only weakly to RXRs. Others, such as the RXRE element which is described in PCT application WO 92/16658 can fix RAR or RXR receptors, but only the latter cause a response which causes the activation of the promoter placed downstream of this RXRE element. This tra ⁇ s-activation by the RXRs is blocked in the presence of RARs.
  • TRE thyroid hormone receptor response
  • PCT application WO 92/16658 proposes the use of the RXRE response elements which it describes to study the transactivation of genes by RXR receptors, and the blocking of this transactivation in the presence of XRA receptors in cells of mammals, birds or insects.
  • PCT Application WO 92/14695 mentions several response elements which would be usable with the XR2C receptor, • in fact, it only describes the use of this receptor with a TRE response element placed upstream of the Drosophila ADH promoter.
  • Analysis of the sequence of the P10 region carried out by the inventors revealed the existence in the P10 gene of an intragenic sequence GTTGACAGTGTTCA, similar to a consensus sequence recognized by the RARs, and therefore constituting a RARE element putative. This sequence is localized, in wild type AcMNPV, in position +61 with respect to A (+ 1) of the initiation codon ATG of P10.
  • the present invention relates to these means of regulation, which include several variants.
  • the activation of a baculovirus promoter in a host cell in particular of a strong late promoter such as the PI O or polh promoter is obtained in the presence of the gene product RAR in the same host cell, and of a RARE type sequence, located in cis and close to said baculovirus promoter.
  • a RARE sequence is "near a promoter" if it is located downstream or upstream of said promoter, at a distance of between 10 and 10,000 bp, preferably less than 100 bpb, of the initiation site of the transcription of said promoter.
  • the subject of the present invention is a method for regulating the expression of a gene placed under transcriptional control of a baculovirus promoter in an expression vector comprising a RARE type sequence located close to said baculovirus promoter, which method is characterized in that the expression of said gene is carried out in the presence of the translation product of a gene coding for a hormonal receptor of the RAR type.
  • the baculovirus promoter can for example be the PI O promoter, the polh promoter, one of the promoters of the IE1, IEN genes, or a synthetic promoter.
  • it is a strong late promoter, such as the PI O promoter, or the polh promoter.
  • the hormone receptor of the type is the hormone receptor of the type
  • RAR is a RAR ⁇ receptor, a RAR ⁇ receptor, or a RAR ⁇ receptor
  • the RARE DNA sequence is a sequence
  • the expression of the gene placed under transcriptional control of said baculovirus promoter is carried out in the presence, in the same cell, of a gene expressing a hormone receptor for RAR type.
  • the baculovirus promoter and the gene expressing a hormone receptor of the RAR type can be carried by the same DNA molecule, or by two different DNA molecules.
  • the gene expressing a hormone receptor of the RAR type can be placed under the control of a promoter any one, provided that said promoter is expressed in the host cell.
  • it is placed under the control of a second baculovirus promoter; this second promoter and that under whose control the gene of interest is expressed, may be identical or different.
  • expression vectors known in themselves, which do not carry a gene expressing a hormone receptor of the RAR type, and which comprise at least minus the part of the PI O gene constituted by the promoter of said gene, followed by the portion of sequence coding for the PIO protein which comprises the sequence GTTGACAGTGTTCA, said promoter and said coding sequence being arranged in an identical manner to that of the wild PI O gene.
  • These vectors can be used in the presence, in the same host cell, of another DNA molecule expressing a hormone receptor of the RAR type.
  • Recombinant vectors in accordance with the invention which can be used for the implementation of a process in which the baculovirus promoter and the gene expressing a hormonal receptor of the RAR type are carried by two different DNA molecules, consist of baculoviruses recombinants, comprising a DNA sequence constituting a binding site for a hormone receptor of the RAR type, placed near a baculovirus promoter under whose control it is desired to express a gene coding for a protein of interest, provided that, if the baculovirus promoter is the P10 promoter, and the RARE sequence is the GTTGACAGTGTTCA sequence, said sequence is located, relative to said promoter, in a different location than that which it occupies in the wild P10 gene, or is separated of said promoter by a sequence different from that which separates it from the wild-type PIO promoter.
  • recombinant vectors in accordance with the invention which can be used for the implementation of a process in which the baculovirus promoter and the gene expressing a hormone receptor of the RAR type are carried by the same DNA molecule, consist of recombinant baculoviruses, comprising a RARE DNA sequence constituting a binding site for a hormonal receptor of the RAR type, placed near a first baculovirus promoter, under the control of which it is desired to express a gene coding for a protein of interest , and a DNA sequence coding for a hormone receptor of the RAR type placed under transcriptional control of a second baculovirus promoter.
  • the first and second promoters can for example be the PI O promoter, the polh promoter, the promoters of the IE1, IEN genes, or synthetic promoters. A copy of the first promoter can also be used as the second promoter.
  • the first promoter is the PI O promoter, and the second promoter the polh promoter, or else a second copy of the PI O promoter.
  • the first promoter is the polh promoter, and the second promoter the Pl O promoter, or else a second copy of the polh promoter.
  • the hormone receptor of the type is the hormone receptor of the type
  • RAR is a RAR ⁇ receptor, a RAR ⁇ receptor, or a RAR ⁇ receptor
  • the RARE DNA sequence is a sequence as defined in the sequence list in the appendix, under the number SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 2 .
  • the RARE DNA sequence is placed downstream of the first promoter.
  • these vectors further comprise at least one sequence heterologous coding for the protein of interest that is to be expressed, placed under transcriptional control of the first promoter, or at least one site for the insertion of said sequence.
  • Vectors in accordance with the invention are, for example, double-recombinant viruses, obtained from the recombinant viruses Ac + 150 and Ac + 230 described above, by insertion of a gene coding for one of the RAR ⁇ or RAR ⁇ receptors of the retinoic acid, under the control of the polyhedrin promoter.
  • an activation of the polh promoter similar to that observed in the expression vectors where the PI O promoter is inactivated is obtained by using expression vectors devoid of the entire sequence coding for the PIO protein.
  • the subject of the present invention is recombinant vectors which can be used to increase the expression of a gene under transcriptional control of the baculovirus polyhedrin promoter, and which consist of modified baculoviruses, comprising a polyhedrin promoter and a intact and functional PI O promoter, and in which the vicinity of the PI O promoter is devoid of any sequence constituting a binding site for a hormone receptor of the RAR type.
  • vectors conforming to this second variant of the invention they lack the entire sequence coding for the PIO protein.
  • vectors in accordance with this variant of the invention further comprise at least one sequence, coding for a heterologous protein which it is desired to express, placed under transcriptional control of the promoter of the polyhedrin, or at least one site for the insertion of said sequence.
  • Vectors conforming to this second variant of the invention can for example be obtained from a recombinant virus Ac + 16.
  • vectors in accordance with this second variant of the invention further comprise a DNA sequence coding for a hormonal receptor of the RAR type, which sequence is placed under transcriptional control of a baculovirus promoter other than the promoter PI O.
  • the inventors have observed that when a gene (such as for example the CAT reporter gene) is inserted under transcriptional control of the PI O promoter, and in the absence of the RARE sequence, there is not only an absence of activation, but even an inhibition of its expression during co-expression with RARs.
  • a gene such as for example the CAT reporter gene
  • Vectors of this type can be obtained from Ac + 16 by insertion of a gene coding for one of the RAR ⁇ or RAR ⁇ receptors of retinoic acid, under the control of the polyhedrin promoter;
  • Vectors in accordance with the invention can constitute transfer vectors or expression vectors. They can be obtained from any baculovirus or construct (such as a transfer vector) derived from baculovirus, provided that said baculovirus or said construct comprises the sequences constituting the promoter of the IOP, as defined above. above.
  • CAT Chloramphenicol Acetyl Transferase
  • Figure 2 represents a map of the region Pl O, showing the positions concerned.
  • the plasmid pMH16 is derived from the transfer vector pGml6.
  • the vector pGml6 contains an insert obtained from the EcoRI-P fragment of the baculovirus GmMNPV, mutated as indicated above at the site of initiation of translation of PIO, and where the sequence between the bases +16 and +265 of the PI O gene, has been deleted, and replaced by a BglII linker.
  • a HindIII-Nsil fragment of 1900 bp isolated from the HindIII-Q fragment of AcMNPV, which contains the hr5 sequences and the p26 gene, was introduced between the HindiII and Nsil sites of pGml6.
  • the plasmids pMH150 and pMH230 derive from the same construction, which was carried out by inserting an Nsil-EcoRI fragment of 1900 bp carrying the mutations indicated above of the EcoRI-P fragment of AcMNPV, between the Nsil and Kpnl sites of the HindIII fragment -0 of AcMNPV, previously cloned in the vector pUC18. To obtain the plasmid pMH150, the fragment
  • BglII-BanI of pBLCAT2 comprising the sequence coding for CAT, was introduced at the BglII site located at position +150 in the sequence coding for IOP.
  • said fragment BglII-BanI was introduced at the HindiII site located at position +230 in the sequence coding for IOP.
  • Figure 3 schematically represents the inserts of plasmids pMH16, pMH150, and pMH230.
  • Plasmid pPH-RAR ⁇ and pPH-RAR ⁇ A Kpnl-Stul fragment of 1518 bp, or an Ncol-Smal fragment of 1564 bp, comprising all of the sequences coding respectively for the elements hRAR ⁇ [PETROVITCH et al. Nature, vol. 330, p. 444-450 (1987)] and hRAR ⁇ [BENBROOK et al., Nature, vol. 333, p. 669-672 (1988)] were introduced downstream of the polyhedrin promoter, in the SmaI site of the plasmid pGmAc34T [DAVRINCHE et al. Biochem. Biophys. Res. Corn., Vol 195, p. 469-477].
  • Sf9 cells are co-transfected by lipofection (DOTAP, BOEHRINGER MANNHEIM), with 10 ⁇ g of vector, and 1 ⁇ g of viral DNA.
  • the recombinations at the polyhedrin site are carried out by co-transfection of the plasmid concerned with DNA from wild-type AcMNPV virus, while the recombinations at the PIO site are carried out by co-transfection of the plasmid concerned with the DNA of a baculovirus modified (AcSLP10) in which the promoter and the polyhedrin gene have been excised, and the sequence coding for the polyhedrin replaced under the control of the PI O promoter.
  • AcSLP10 baculovirus modified
  • Figure 4 schematically represents the different recombinant viruses obtained.
  • the promoters (PI O and polyhedrin) are represented by a solid black rectangle
  • the sequence PI O is represented by a solid white rectangle
  • the sequence coding for polyhedrin is represented by a tight dotted rectangle (J)
  • the sequences coding for RARs are represented by a spaced dotted rectangle ()
  • the sequence coding for CAT is represented by a hatched rectangle.
  • Figure 4A represents, from top to bottom:
  • FIG. 4B schematically represents the recombinants carrying the CAT gene at different positions within the PI O sequence (+16, +150 and +230), and the RAR or ⁇ gene at the polyhedrin locus:
  • EXAMPLE 2 EXPRESSION OF PIO IN RAR RECOMBINANTS.
  • the cells podoptera frugiperda Sf9 are maintained at 28 ° C. in TC100 medium (GIBCO / BRL) supplemented with 5% of heat-inactivated fetal calf serum.
  • the cells are infected with a viral suspension (wild-type AcMNPV, or recombinant to be tested) with a multiplicity of infection of 10 PFU (Beach Forming Units) per cell. After one hour of adsorption, the viral inoculum is replaced by a fresh culture medium.
  • a viral suspension wild-type AcMNPV, or recombinant to be tested
  • PFU Beach Forming Units
  • the cells respectively infected with AcMNPV, AcRAR ⁇ PlO, AcRAR ⁇ PlO, AcRAR ⁇ PlO, AcRAR ⁇ PlO, AcRAR ⁇ PlO, were harvested 48 hours after infection, washed in cold PBS buffer, then re-suspended in sample buffer and brought to the boil for 5 min.
  • the same preparation is carried out from non-infected cells.
  • the total proteins of each preparation are analyzed by SDS-PAGE, on a 12% polyacrylamide gel. The gels are colored with seated Coo blue.
  • RNAs were isolated, from the infected cells, 48 h and 72 h after infection, and analyzed by dot-blot hybridization. ", using RNA probes labeled with P32, complementary to the PI O and 39K sequences, and obtained using the PROMEGA RIBOPROBE kit (PROMEGA, France). The counting is done in a scintillation counter.
  • the baculoviruses AcP10CAT16, AcP10CAT150, and AcP10CAT230 respectively contain the reporter gene 0 CAT at position +16, +150 and +230 in the sequence coding for IOP, and the gene coding for polyedrine under the control of its own promoter; the baculoviruses AcRAR ⁇ CAT16, AcRAR ⁇ CAT16, AcRAR ⁇ CAT150, AcRAR ⁇ CAT150, AcRAR ⁇ CAT230, and AcRAR ⁇ CAT230 respectively contain the reporter gene CAT in position +16, +150 and +230 in the sequence encoding IOP, and, in addition, the gene encoding an ⁇ or ⁇ receptor for retinoic acid under the control of the polyhedrin promoter.
  • These different vectors are obtained as described in Example 1 above.
  • the presence of the CAT protein as well as the CAT activity are sought on the cell extracts prepared from Sf9 cells infected with these different vectors and harvested 48 hours after infection.
  • the expression of the CAT gene is determined after immunoelectrophoretic transfer: the total proteins are analyzed by SDS-PAGE as described in Example 1 above, and transferred to the nitrocellulose membrane. CAT is detected with anti-CAT antibodies (5 PRIME> 3 PRIME INC.), Or by measurement of CAT activity, according to the conventional method described by GORMAN et al. [Mol. Cell. Biol. No. 2, 1044-1051 (1982). The acetylated forms of the substrate (Ac-CM) are separated from the native substrate (CM), by ascending chromatography on a thin layer of silica.

Abstract

L'invention est relative à un vecteur recombinant, utilisable pour réguler l'expression d'un gène placé sous contrôle du promoteur P10 ou du promoteur polyédrine du baculovirus, par l'intermédiaire d'une séquence constituant un site de fixation pour un récepteur hormonal du type RAR.

Description

PROCEDE DE REGULATION DE L'EXPRESSION D'UN GENE DANS UN BACULOVIRUS, PAR UN SITE DE FIXATION D'UN RECEPTEUR DE L'ACIDE RETINOIQUE, ET VECTEUR POUR LA MISE EN OEUVRE DUDIT PROCEDE. La présente Invention est relative à de nouveaux vecteurs d'expression obtenus à partir de baculovirus.
Les baculovirus, représentés par le virus de la polyédrose nucléaire Autographa califomica (AcMNPV) , possèdent plusieurs promoteurs, actifs à différentes phases du cycle de réplication virale. Certains de ces promoteurs sont utilisés en génie génétique pour contrôler l'expression de gènes hétérologues insérés dans le génome du baculovirus. Parmi les plus couramment employés, on citera deux promoteurs très tardifs forts : celui de la polyédrine (polh) et celui du polypeptide P10, qui ne sont actifs qu'en fin de cycle d'infection, après la réplication du génome viral, et qui permettent d'exprimer à un niveau élevé les gènes placés sous leur contrôle.
Les promoteurs polh et P10 sont décrits de manière détaillée dans les publications suivantes POSSEE et HOWARD [Nucleic Acid Research, vol. 15, p. 10233-10248 (1987)], pour le promoteur de la polyédrine, et QIN et al. [J. Gen. Virol. vol. 70, p. 1273-1279, (1989)] pour le promoteur P10. On définit généralement comme : "promoteur de la polyédrine" la séquence localisée entre les positions (-71 et +ι) définies par rapport au A(+l) de l'ATG de la polyédrine, et comme : "promoteur P10" la séquence localisée entre les positions (-70 et +1) définies par rapport au A(+l) de l'ATG du polypeptide P10.
Pour obtenir, à partir d'un baculovirus, un vecteur capable d'exprimer un gène étranger sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur dudit baculovirus, l'on procède généralement, selon des méthodes connues en elles-mêmes, à la construction d'un vecteur de transfert renfermant ledit promoteur, puis à la recombinaison avec l'ADN du virus sauvage, et enfin à la sélection des recombinants. Lors du cycle de réplication du baculovirus s'expriment d'abord les gènes précoces : la transcription de ces gènes fait intervenir l'ARN polymérase II de la cellule-hôte.
Ultérieurement, les gènes tardifs et très tardifs comme polh et P10, sont transcrits par une ARN polymérase particulière, d'origine au moins en partie virale, insensible à l'α-amanitine.
Un motif A/GTAAG commun à tous les gènes tardifs, constitue le site d'initiation de la transcription. Ce motif est indispensable à la reconnaissance de ces promoteurs par l'ARN polymérase et donc à leur activité. Les mécanismes qui gouvernent l'activation transcriptionnelle ne sont toutefois pas encore précisément connus. Des travaux précédents de l'équipe des
Inventeurs ont montré qu'il est particulièrement intéressant, pour augmenter le niveau d'expression d'un gène hétérologue placé sous contrôle de l'un des deux promoteurs très tardifs forts polh ou P10, de construire un baculovirus dans lequel un seul de ces deux promoteurs tardifs forts est inactivé, et de faire exprimer ledit gène sous contrôle du promoteur restant.
Ce principe a servi de base à la construction de plusieurs baculovirus modifiés [Demande Européenne n° 91 913 605.1, aux noms de l' INSTITUT NATIONAL DE LA RECHERCHE AGRONOMIQUE (I.N.R.A.) et du CENTRE NATIONAL DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE (C.N.R.S.) ; CHAABIHI et al., J. Virol . , 67, 2664-2671 (1993)], dans lesquels soit le promoteur P10 (baculovirus dénommé AcSLP33, par exemple), soit le promoteur de la polyédrine (baculovirus dénommé AcSLPIO, par exemple) est inactivé par délétion . Dans le cadre de la poursuite de leurs travaux sur la régulation de l'expression chez les baculovirus, les Inventeurs ont eu l'idée d'étudier l'influence de la séquence codante du gène P10 sur l'expression de celui- ci. Dans ce but, ils ont réalisé, à partir du baculovirus sauvage AcMNPV, des constructions comprenant le gène rapporteur CAT inséré à l'une des positions +16, +150, ou +230 de la séquence codant pour la P10 (ces positions sont définies par rapport au A (+1) du codon d'initiation ATG de la P10) , et ont étudié l'expression simultanée du gène rapporteur CAT et du gène de la polyédrine, dans les virus recombinants (dénommés respectivement AcCAT+16, AcCAT+150, et AcCAT+230) obtenus, par rapport au baculovirus sauvage AcMNPV et au baculovirus modifié AcSLP33 (dans lequel le promoteur P10 est inactivé) .
Les virus recombinants AcCAT+16, AcCAT+150, et AcCAT+230, sont schématisés à la Figure 1.
Les Inventeurs ont ainsi pu constater que lorsque le gène rapporteur est inséré en +16 (cette insertion s'accompagne de la délétion d'une partie de la séquence codant pour la P10) , l'expression du gène rapporteur est faible et celle du gène de la polyédrine augmente très significativement, bien que le promoteur de la P10 soit intact, jusqu'à atteindre un niveau comparable à celui observé dans un virus où le promoteur de la P10 est inactivé, tel que le virus AcSLP33.
En revanche, lorsque le gène rapporteur est inséré plus en aval (+150 ou +230), l'expression dudit gène augmente, et celle de la polyédrine diminue pour revenir à un niveau de base comparable à celui observé dans le baculovirus sauvage AcMNPV.
D'autre part, au cours d'autres expérimentations entreprises indépendamment, les Inventeurs ont cherché à exprimer les isoformes α et γ du récepteur humain de l'acide rétinoique (hRAR) dans des cellules d'insectes, et ont dans ce but construit à partir de baculovirus sauvages AcMNPV, des baculovirus recombinants qui expriment respectivement lesdites isoformes α ou γ sous contrôle du promoteur de la polyédrine. Or, au cours de ces expérimentations ils ont observé une surexpression inattendue du gène P10 dans ces baculovirus.
Cette activation se manifeste par un taux d'ARNm qui est 2 fois supérieur au témoin (constitué par le baculovirus sauvage AcMNPV, ) dans le cas du récepteur α, et 5 fois supérieur dans le cas du récepteur γ : il s'agit donc d'une activation au niveau transcriptionnel.
D'autre part cette activation est observée non seulement lors de la transfection d'une cellule avec un virus double-recombinant, mais également lors de la co- transfection d'une cellule avec deux plasmides (l'un exprimant un RAR, et l'autre portant un domaine RARE localisé dans le gène P10) ; il s'agit donc d'une ϋrans- activation.
Les Inventeurs ont établi un rapprochement entre les résultats des deux séries d'expérimentations relatées ci-dessus et ont procédé à l'analyse de la séquence de la région P10, afin de rechercher l'existence éventuelle de séquences apparentées à celles constituant des sites de fixation pour des récepteurs nucléaires, et en particulier pour des récepteurs rétinoïques.
Les récepteurs de l'acide rétinoïque (RARs) appartiennent à la famille des "récepteurs nucléaires", qui comprend également, par exemple, chez les vertébrés, les récepteurs de la vitamine D3, ou les récepteurs thyroïdiens. D'autres récepteurs, dénommés RXRs, et qui sont comme les RARs, activés par l'acide rétinoïque ou par d'autres rétinoides ont également été décrits.
On sait que les récepteurs nucléaires sont capables d'activer la transcription d'un gène-cible. Cette activation fait intervenir d'une part la liaison de ces récepteurs nucléaires avec leur ligand spécifique, et d'autre part leur fixation à l'ADN, qui implique la reconnaissance de courtes séquences consensus d'ADN dénommées « éléments de réponse » généralement situées en amont du gène-cible. Les RARs et RXRs reconnaissent ainsi des séquences consensus qui sont répétées une ou plusieurs fois, en tandem ou en palindrome, et définissent des portions d'ADN dénommées respectivement éléments RARE ou RXRE [GORDMAN et al. Mol. Cell. Biol. 2, 1044-1051 (1982)] . Différentes séquences consensus ont été identifiées. Par exemple, les éléments de réponse au récepteur RARβ, qui sont décrits dans la Demande PCT WO 91/07488, comprennent des répétitions en tandem de la séquence GTTCAC ; la Demande PCT WO 92/16658 décrit des éléments de réponse RXRE, et en particulier un élément RXRE obtenu à partir du promoteur du gène CRBPII de rat, qui comprend des répétitions en tandem de la séquences AGGTCA.
Les éléments de réponse aux récepteurs nucléaires ont une spécificité variable. Certains, comme les éléments de réponse au récepteur de l'hormone thyroïdienne (TRE) répondent non seulement à leur propre récepteur mais également aux RARs et aux RXRs. D'autres sont plus spécifiques, comme les éléments de réponse au récepteur RARβ, qui ne répondent que faiblement aux RXRs. D'autres, comme l'élément RXRE qui est décrit dans la Demande PCT WO 92/16658 peuvent fixer des récepteurs RAR ou RXR, mais seuls ces derniers provoquent une réponse qui entraîne l'activation du promoteur placé en aval de cet élément RXRE. Cette traπs-activation par les RXRs est bloquée en présence de RARs.
Il existe également chez les insectes des protéines voisines des RARs ; il s'agit en particulier du récepteur hormonal de l'ecdysone (EcR) et de la protéine USP de la Drosophile. La Demande PCT WO 92/14695 décrit un récepteur de type RXR, dénommé XR2C, obtenu à partir de la drosophile. Il a été proposé de placer des éléments de réponse aux RARs ou aux RXRs en amont du promoteur d'un gène, à une distance dudit promoteur comprise entre 30pb et lOOOOpb, afin d'obtenir l'activation dudit gène par l'intermédiaire de récepteurs RAR ou RXR exprimés dans la même cellule. Par exemple, la Demande PCT WO 91/07488 propose l'utilisation des éléments de réponse au récepteur RARβ, pour activer la transcription de gènes dans des cellules de mammifères. La Demande PCT WO 92/16658 propose l'utilisation des éléments de réponse RXRE qu'elle décrit pour étudier la trans-activâtion de gènes par des récepteurs RXR, et le blocage de cette trans-activâtion en présence de récepteurs XRA dans des cellules de mammifères, d'oiseaux ou d'insectes. La Demande PCT WO 92/14695 mentionne plusieurs éléments de réponse qui seraient utilisables avec le récepteur XR2C , en fait, elle ne décrit l'utilisation de ce récepteur qu'avec un élément de réponse TRE placé en amont du promoteur ADH de drosophile. L'analyse de la séquence de la région P10, effectuée par les Inventeurs a révélé l'existence dans le gène de la P10, d'une séquence intragénique GTTGACAGTGTTCA, similaire à une séquence consensus reconnue par les RARs, et constituant donc un élément RARE putatif. Cette séquence est localisée, chez AcMNPV de type sauvage, en position +61 par rapport au A(+l) du codon d'initiation ATG de la P10.
Des expériences complémentaires effectuées par les Inventeurs ont permis de montrer que l'activation du gène PI O, ou d'un gène rapporteur placé sous contrôle transcriptionnel du promoteur P10 , en présence du produit d'un gène RAR placé sous contrôle du promoteur de la polyédrine, intervient à condition que le domaine de type RARE localisé dans le gène PI O soit présent. En outre, cette activation intervient également lorsque le domaine de type RARE est enlevé de sa position initiale et replacé dans une autre position à proximité du promoteur PIO, en amont ou en aval de ce promoteur. Enfin, si l'on place, de la même façon, le domaine de type RARE à proximité d'un autre promoteur, on observe l'activation de cet autre promoteur. Dans tous les cas, cet élément RARE est actif qu'il soit placé en amont ou en aval du promoteur, et quelle que soit son orientation par rapport à celui-ci.
L'analyse de séquence du gène PI O chez les baculovirus Choristoneura fumiferana NPV et Bombyx mori NPV révèle la conservation du motif RARE. Ces baculovirus peuvent donc, au même titre que AcMNPV, être utilisés pour la mise en oeuvre de la présente Invention.
La mise en évidence par les Inventeurs, de cette séquence intragénique de type RARE, et de son rôle effectif dans la régulation de l'expression du gène PI O, permettent de proposer de nouveaux moyens de régulation de l'expression de gênes hétérologues codant pour des protéines d'intérêt, sous contrôle de promoteurs de baculovirus.
La présente Invention concerne ces moyens de régulation, qui comportent plusieurs variantes.
Selon une première variante de l'Invention, 1'activation d'un promoteur de baculovirus dans une cellule-hôte, en particulier d'un promoteur tardif fort tel que le promoteur PI O ou polh est obtenue en présence du produit d'un gène RAR dans la même cellule-hôte, et d'une séquence de type RARE, située en cis et à proximité dudit promoteur de baculovirus. Au sens de la présente Invention, on considère qu'une séquence RARE est "à proximité d'un promoteur" si elle située en aval ou en amont dudit promoteur, à une distance comprise entre 10 et 10000 pb, de préférence inférieure à lOOOpb, du site d'initiation de la transcription dudit promoteur. 8 La présente Invention a pour objet un procédé pour réguler l'expression d'un gène placé sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur de baculovirus dans un vecteur d'expression comprenant une séquence de type RARE située à proximité dudit promoteur de baculovirus, lequel procédé est caractérisé en ce que l'on procède à l'expression dudit gène en présence du produit de traduction d'un gène codant pour un récepteur hormonal du type RAR. Le promoteur de baculovirus peut par exemple être le promoteur PI O, le promoteur polh, l'un des promoteurs des gènes IE1 , IEN, ou un promoteur synthétique. Avantageusement, il s'agit d'un promoteur tardif fort, tel que le promoteur PI O, ou le promoteur polh .
De préférence, le récepteur hormonal du type
RAR est un récepteur RARα, un récepteur RARβ, ou un récepteur RARγ, et la séquence d'ADN RARE est une séquence
(identifiée dans la liste de séquence en annexe sous le numéro SEQ ID NO :1) répondant à la formule générale GTTGANNNNGTTCA où N représente A, ou C, ou G ou T, et en particulier la séquence GTTGACAGTGTTCA, identifiée dans la liste de séquence en annexe sous le numéro SEQ ID NO :2. Selon un mode de mise en oeuvre préféré d'un procédé conforme à l'Invention, l'expression du gène placé sous contrôle transcriptionnel dudit promoteur de baculovirus est effectuée en présence, dans la même cellule, d'un gène exprimant un récepteur hormonal du type RAR.
Le promoteur de baculovirus et le gène exprimant un récepteur hormonal du type RAR peuvent être portés par une même molécule d'ADN, ou bien par deux molécules d'ADN différentes. Le gène exprimant un récepteur hormonal du type RAR peut être placé sous contrôle d'un promoteur quelconque, pourvu que ledit promoteur s'exprime dans la cellule hôte. Avantageusement, il est placé sous contrôle d'un second promoteur de baculovirus ; ce second promoteur et celui sous contrôle duquel est exprimé le gène d'intérêt, peuvent être identiques ou différents.
Pour la mise en œuvre d'un procédé conforme à l'invention, on peut par exemple utiliser des vecteurs d'expression, connus en eux-mêmes, qui ne portent pas de gène exprimant un récepteur hormonal du type RAR, et qui comprennent au moins la partie du gène PI O constituée par le promoteur dudit gène, suivi de la portion de séquence codant pour la protéine PIO qui comprend la séquence GTTGACAGTGTTCA, ledit promoteur et ladite séquence codante étant disposés de manière identique à celle du gène PI O sauvage. Ces vecteurs sont utilisables en présence, dans la même cellule hôte, d'une autre molécule d'ADN exprimant un récepteur hormonal du type RAR.
On peut également utiliser de nouveaux vecteurs recombinants, qui font partie de l'objet de la présente Invention.
Des vecteurs recombinants conformes à l'Invention, utilisables pour la mise en œuvre d'un procédé dans lequel le promoteur de baculovirus et le gène exprimant un récepteur hormonal du type RAR sont portés par deux molécules d'ADN différentes, sont constitués par des baculovirus recombinants, comprenant une séquence d'ADN constituant un site de fixation pour un récepteur hormonal du type RAR, placée à proximité d'un promoteur de baculovirus sous contrôle duquel on veut exprimer un gène codant pour une protéine d'intérêt, à condition que, si le promoteur de baculovirus est le promoteur P10, et la séquence RARE est la séquence GTTGACAGTGTTCA, ladite séquence soit située, par rapport audit promoteur, à un emplacement différent de celui qu'elle occupe dans le gène P10 sauvage, ou soit séparée dudit promoteur par une séquence différente de celle qui la sépare du promoteur PIO sauvage.
D'autres vecteurs recombinants conformes à l'invention, utilisables pour la mise en œuvre d'un procédé dans lequel le promoteur de baculovirus et le gène exprimant un récepteur hormonal du type RAR sont portés par la même molécule d'ADN, sont constitués par des baculovirus recombinants, comprenant une séquence d'ADN RARE constituant un site de fixation pour un récepteur hormonal du type RAR, placée à proximité d'un premier promoteur de baculovirus, sous contrôle duquel on veut exprimer un gène codant pour une protéine d'intérêt, et une séquence d'ADN codant pour un récepteur hormonal du type RAR placée sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur de baculovirus.
Le premier et le second promoteur peuvent par exemple être le promoteur PI O, le promoteur polh, les promoteurs des gènes IE1 , IEN, ou des promoteurs synthétiques. On peut également utiliser comme second promoteur une copie du premier promoteur.
Avantageusement, le premier promoteur est le promoteur PI O, et le second promoteur le promoteur polh, ou bien une seconde copie du promoteur PI O . De manière également avantageuse, le premier promoteur est le promoteur polh, et le second promoteur le promoteur Pl O , ou bien une seconde copie du promoteur polh .
De préférence, le récepteur hormonal du type
RAR est un récepteur RARα, un récepteur RARβ, ou un récepteur RARγ, et la séquence d'ADN RARE est une séquence telle que définie dans la liste de séquences en annexe, sous le numéro SEQ ID NO:l ou SEQ ID NO:2.
Avantageusement, la séquence d'ADN RARE est placée en aval du premier promoteur.
Selon un mode de réalisation préféré, ces vecteurs comprennent en outre au moins une séquence hétérologue codant pour la protéine d'intérêt que l'on veut exprimer, placée sous contrôle transcriptionnel du premier promoteur, ou au moins un site pour l'insertion de ladite séquence. Des vecteurs conformes à l'invention sont par exemple les virus double-recombinants, obtenus à partir des virus recombinants Ac+150 et Ac+230 décrits ci- dessus, par insertion d'un gène codant pour un des récepteurs RARα ou RARγ de l'acide rétinoïque, sous contrôle du promoteur de la polyédrine.
Selon une deuxième variante de l'invention, une activation du promoteur polh similaire à celle observée dans les vecteurs d'expression où le promoteur PI O est inactivé est obtenue en utilisant des vecteurs d'expression dépourvus de la totalité de la séquence codant pour la protéine PIO.
Conformément à cette deuxième variante, la présente Invention a pour objet des vecteurs recombinants, utilisables pour augmenter l'expression d'un gène sous contrôle transcriptionnel du promoteur polyédrine de baculovirus, et qui sont constitués par des baculovirus modifiés, comprenant un promoteur polyédrine et un promoteur PI O intacts et fonctionnels, et où le voisinage du promoteur PI O est dépourvu de toute séquence constituant un site de fixation pour un récepteur hormonal du type RAR.
Selon un mode de réalisation préféré des vecteurs conformes à cette deuxième variante de l'Invention, ils sont dépourvus de la totalité de la séquence codant pour la protéine PIO.
Selon un autre mode de réalisation préféré des vecteurs conformes à cette variante de l'Invention, ils comprennent en outre au moins une séquence, codant pour une protéine hétérologue que l'on souhaite exprimer, placée sous contrôle transcriptionnel du promoteur de la polyédrine, ou au moins un site pour l'insertion de ladite séquence.
Des vecteurs conformes à cette deuxième variante de l'invention peuvent par exemple être obtenus à partir d'un virus recombinant Ac+16.
Selon un autre mode de réalisation préféré des vecteurs conformes à cette deuxième variante de l'Invention, ils comprennent en outre une séquence d'ADN codant pour un récepteur hormonal du type RAR, laquelle séquence est placée sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur de baculovirus autre que le promoteur PI O .
En effet, les Inventeurs ont observé que lorsqu'un gène, (tel que par exemple le gène rapporteur CAT) est inséré sous contrôle transcriptionnel du promoteur PI O, et en l'absence de la séquence RARE, on note non seulement une absence d'activation, mais même une inhibition de son expression lors de la co-expression avec les RARs.
Des vecteurs de ce type peuvent être obtenus à partir de Ac+16 par insertion d'un gène codant pour un des récepteurs RARα ou RARγ de l'acide rétinoïque, sous contrôle du promoteur de la polyédrine;
Des vecteurs conformes à l'Invention, peuvent constituer des vecteurs de transfert ou des vecteurs d'expression. Ils peuvent être obtenus à partir de n'importe quel baculovirus ou construction (telle qu'un vecteur de transfert) dérivée de baculovirus, à condition que ledit baculovirus ou ladite construction comprenne les séquences constituant le promoteur de la PIO, telles que définies ci-dessus.
La présente Invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de construction et de mise en oeuvre de vecteurs d'expression conformes à l'Invention. II doit être bien entendu toutefois que ces exemples sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'Invention dont ils ne constituent en aucune manière une limitation.
Les protocoles utilisés dans les exemples qui suivent font appel à des techniques classiques du génie génétique, telles que celles décrites par SAMBROOK et al. [Molecular cloning : A Laboratory Manual ; Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory, 1989] , ou par O'REILLY et al. [Baculovirus Expression Vectors : A Laboratory Manual ; Freeman and Cie, New York, (1992)] pour la manipulation de l'ADN de baculovirus. Les conditions particulières à chaque expérimentation sont, s'il y a lieu, précisées dans l'exemple correspondant.
EXEMPLE 1 1) ADN plas idiques et vecteurs de transfert
Une série de trois vecteurs de transfert dénommés respectivement pMH16, pMH150, et pMH230, a été construite, afin d'introduire le gène bactérien codant pour la CAT (Chloramphénicol Acétyl Transférase) dans la séquence codant pour la PIO, aux positions +16, +150, et +230.
La Figure 2 représente une carte de la région Pl O , montrant les positions concernées.
Dans ces trois constructions, le codon ATG de la PIO a été muté en AGC, et un site de restriction PvuII a été créé (séquence ATG TCA mutée en AGC TGA) . - pMHlβ
Le plasmide pMH16 est dérivé du vecteur de transfert pGml6. Le vecteur pGml6 contient un insert obtenu à partir du fragment EcoRI-P du baculovirus GmMNPV, muté comme indiqué ci-dessus au niveau du site d'initiation de la traduction de PIO, et où la séquence comprise entre les bases +16 et +265 du gène PI O, a été délétée, et remplacée par un lieur BglII. Pour obtenir pMH16, un fragment HindIII-Nsil de 1900 pb, isolé à partir du fragment HindiII-Q de AcMNPV, qui contient les séquences hr5 et le gène p26, a été introduit entre les sites HindiII et Nsil de pGml6.
Le fragment BglII-BanI de 790 pb obtenu à partir du plasmide pBLCAT2 (LUCKOW and SCHUTZ, Nucleic Acid Res., 15, (13) 5940 (1987), et comprenant la séquence codant pour la CAT, a ensuite été introduit dans le plasmide, au site BglII.
- pMH150 et pMH230 :
Les plasmides pMH150 et pMH230 dérivent d'une même construction, qui a été réalisée en insérant un fragment Nsil-EcoRI de 1900 pb portant les mutations indiquée ci-dessus du fragment EcoRI-P de AcMNPV, entre les sites Nsil et Kpnl du fragment HindIII-0 de AcMNPV, préalablement clone dans le vecteur pUC18. Pour obtenir le plasmide pMH150, le fragment
BglII-BanI de pBLCAT2 comprenant la séquence codant pour la CAT, a été introduit au site BglII situé en position +150 dans la séquence codant pour la PIO . Pour obtenir le plasmide pMH230, ledit fragment BglII-BanI a été introduit au site HindiII situé en position +230 dans la séquence codant pour la PIO.
La Figure 3 représente schématiquement les inserts des plasmides pMH16, pMH150, et pMH230.
- Plasmide pPH-RARα et pPH-RARγ Un fragment Kpnl-Stul de 1518 pb, ou un fragment Ncol-Smal de 1564 pb, comprenant la totalité des séquences codant respectivement pour les éléments hRARα [PETROVITCH et al. Nature, vol. 330, p. 444-450 (1987)] et hRARγ [BENBROOK et al., Nature, vol. 333, p. 669-672 (1988)] ont été introduits en aval du promoteur de la polyédrine, dans le site Smal du plasmide pGmAc34T [DAVRINCHE et al. Biochem. Biophys. Res. Corn., vol 195, p. 469-477] . - Plasmides pRARα(PlO) et pRARγ(PlO)
De la même manière, les séquences codant pour les éléments hRAR ont été introduites au site BglII du plasmide pMH16. 2) Obtention de baculovirus recombinants :
Pour chacun des vecteurs de transfert décrits ci-dessus 4.106 cellules Sf9 sont co-transfectées par lipofection (DOTAP, BOEHRINGER MANNHEIM) , avec lOμg de vecteur, et lμg d'ADN viral. Les recombinaisons au site de la polyédrine sont effectuées en co-transfectant le plasmide concerné avec de l'ADN de virus AcMNPV sauvage, tandis que les recombinaisons au site PIO sont effectuées en co- transfectant le plasmide concerné avec l'ADN d'un baculovirus modifié (AcSLPlO) dans lequel le promoteur et le gène de la polyédrine ont été excisés, et la séquence codant pour la polyédrine replacée sous contrôle du promoteur PI O .
Deux clones de chaque recombinant ont été purifiés indépendamment.
La Figure 4 représente schématiquement les différents virus recombinants obtenus. Les promoteurs {PI O et polyédrine) sont représentés par un rectangle de couleur noire unie, la séquence PI O est représentée par un rectangle de couleur blanche unie, la séquence codant pour la polyédrine est représentée par un rectangle en pointillés serrés ( J , les séquences codant pour les RARs sont représentées par un rectangle en pointillés espacés ( ) , la séquence codant pour la CAT est représentée par un rectangle hachuré.
La Figure 4A représente, de haut en bas :
- le virus AcMNPV sauvage ;
- un virus dépourvu du promoteur et du gène polyédrine (AcD3) ; - un virus obtenu après recombinaison d'un plasmide pPH-RAR avec l'ADN de virus sauvage (AcRARPlO) ; - un virus obtenu après recombinaison d'un plasmide pPH-RAR avec l'ADN de virus dépourvu du promoteur et du gène PIO(AcRARΔPlO) ;
- un virus obtenu après recombinaison d'un plasmide pRAR(PlO) avec l'ADN de virus dépourvu du promoteur polyédrine (AcSLPIORAR) ;
- un virus obtenu après recombinaison d'un plasmide pRAR(PlO) avec l'ADN de virus sauvage (AcPHRAR) .
La Figure 4B représente schématiquement les recombinants portant le gène CAT à différentes positions à l'intérieur de la séquence PI O (+16, +150 et +230), et le gène RAR ou γ au locus polyédrine :
- un virus obtenu après recombinaison d'un des plasmides pMH16, pMH150, ou pMH230 avec l'ADN de virus sauvage (AcPlOCAT) , -
- un virus obtenu après recombinaison d'un plasmide pPH-RAR avec l'ADN de virus AcPlOCAT (AcRARCAT) ;
EXEMPLE 2 : EXPRESSION DE PIO DANS LES RECOMBINANTS RAR. Les cellules { Spodoptera frugiperda Sf9) sont maintenues à 28°C dans du milieu TC100 (GIBCO/BRL) supplémenté avec 5% de sérum de veau foetal inactivé par la chaleur.
Les cellules sont infectées par une suspension virale (AcMNPV sauvage, ou recombinant à tester) avec une multiplicité d'infection de 10 PFU (Plage Forming Units) par cellule. Après une heure d'adsorption, l' inoculum viral est remplacé par un milieu de culture frais.
Les cellules respectivement infectées avec AcMNPV, AcRARαPlO, AcRARγPlO, AcRARαΔPlO, AcRARγΔPlO, ont été récoltées 48 heures après infection, lavées dans du tampon PBS froid, puis re-suspendues dans du tampon d'échantillon et portées à ébullition pendant 5 mn. La même préparation est effectuée à partir de cellules non- infectées. Les protéines totales de chaque préparation sont analysées par SDS-PAGE, sur un gel de polyacrylamide à 12%. Les gels sont colorés avec du bleu de Coo assie.
La comparaison des profils électrophorétiques des protéines totales de cellules infectées avec les recombinants RAR (AcRARαPlO et AcRARγPlO) , avec le profil électrophorétique de protéines totales des cellules infectées avec le baculovirus de type sauvage AcMNPV, montre qu'une protéine d'un poids moléculaire apparent de 10 kDa est surproduite dans les cellules infectées avec les recombinants RAR. Cette surproduction est particulièrement importante dans les cellules infectées avec le recombinant AcRARγPlO. La bande de poids moléculaire apparent 10 kDa n'apparaît pas dans le profil des protéines totales de cellules infectées avec des recombinants AcRARαΔPlO et AcRARγΔPlO.
Pour vérifier si les observations ci-dessus reflètent une augmentation de la transcription du gène PIO, les ARN cytoplasmiques totaux ont été isolés, à partir des cellules infectées, 48 h et 72 h après l'infection, et analysées par hybridation "dot-blot", en utilisant des sondes d'ARN marquées au P32, complémentaires des séquences PI O et 39K, et obtenues en utilisant le kit PROMEGA RIBOPROBE (PROMEGA, France) . Le comptage est fait dans un compteur à scintillation.
Les résultats sont illustrés par le tableau I ci-dessous, qui se réfère aux vecteurs représentés sur les figures 4A et 4B.
Figure imgf000020_0001
L'examen des valeurs moyennes mesurées 48 h 5 après infection révèle que la quantité d'ARNm de PIO produite par les recombinants AcRARαPlO et AcRARγPlO est respectivement, deux fois et quatre fois plus élevée, que celle observée avec le baculovirus sauvage, ou avec le baculovirus AcD3 dépourvu du promoteur de la polyédrine. 0 Les résultats obtenus 72 heures après l'infection sont très similaires à ceux observés 48 heures après infection. Dans le même temps on n'observe pas de différence significative entre les différents vecteurs, au niveau de la production de l'ARNm de 39K, mesurée à 5 titre de contrôle interne.
EXEMPLE 3 : EXPRESSION DU GENE RAPPORTEUR CAT SOUS CONTROLE DU PROMOTEUR PIO
Les baculovirus AcP10CAT16, AcP10CAT150, et AcP10CAT230 contiennent respectivement le gène rapporteur 0 CAT en position +16, +150 et +230 dans la séquence codant pour la PIO, et le gène codant pour la polyédrine sous contrôle de son propre promoteur ; les baculovirus AcRARαCAT16, AcRARγCAT16 , AcRARαCAT150, AcRARγCAT150 , AcRARαCAT230, et AcRARγCAT230 contiennent respectivement 5 le gène rapporteur CAT en position +16, +150 et +230 dans la séquence codant pour la PIO, et, en outre, le gène codant pour un récepteur α ou γ de l'acide rétinoïque sous contrôle du promoteur de la polyédrine. Ces différents vecteurs sont obtenus comme décrit à l'exemple 1 ci- dessus.
La présence de la protéine CAT ainsi que 1'activité CAT sont recherchées sur les extraits cellulaires préparés à partir des cellules Sf9 infectées par ces différents vecteurs et récoltées 48 heures après infection.
L'expression du gène CAT est déterminée après transfert immunoélectrophorètique : les protéines totales sont analysées par SDS-PAGE comme décrit à l'exemple l ci-dessus, et transférées sur membrane de nitrocellulose. La CAT est détectée avec des anticorps anti-CAT (5 PRIME>3 PRIME INC.), ou par mesure de l'activité CAT, selon la méthode classique décrite par GORMAN et al. [Mol. Cell. Biol. n° 2, 1044-1051 (1982) . Les formes acétylées du substrat (Ac-CM) sont séparées du substrat natif (CM) , par chromatographie ascendante sur couche mince de silice.
Dans le cas des cellules infectées par les vecteurs de type +150 et +230, et co-exprimant un gène codant pour un récepteur α ou γ de l'acide rétinoïque.on constate en immuntransfert, pour les virus AcRARαCAT150, AcRARγCAT150, AcRARαCAT230, et AcRARγCAT230, une très nette augmentation du signal correspondant à la CAT par rapport aux virus AcP10CAT150 et AcP10CAT230. Les résultats observés sont confirmés par la mesure de l'activité CAT. LISTE DE SEQUENCES
(1) INFORMATIONS GENERALES: (i) DEPOSANT:
(A) NOM: INSTITUT NATIONAL DE LA RECHERCHE AGRONOMIQUE
- I.N.R.A.
(B) RUE: 147, RUE DE L'UNIVERSITE
(C) VILLE: PARIS CEDEX 07
(E) PAYS: FRANCE
(F) CODE POSTAL: 75341
(A) NOM: CENTRE NATIONAL DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE
- C.N.R.S.
(B) RUE: 3, RUE MICHEL ANGE
(C) VILLE: PARIS CEDEX 16
(E) PAYS: FRANCE
(F) CODE POSTAL: 75794 (A) NOM: DEVAUCHELLE GERARD
(B) RUE: 137, CHEMIN DE L'ESPERVETTE
(C) VILLE: SAINT-CHRISTOL-LEZ-ALES
(E) PAYS: FRANCE
(F) CODE POSTAL: 30380 (A) NOM: OGLIASTRO MARIE-HELENE
(B) RUE: 28, RUE D'AVEJAN
(C) VILLE: ALES
(E) PAYS: FRANCE
(F) CODE POSTAL: 30100 (A) NOM: CERUTTI MARTINE
(B) RUE: 2997, ROUTE DE MONTEZE
(C) VILLE: SAINT-CHRISTOL-LES-ALES
(E) PAYS: FRANCE
(F) CODE POSTAL: 30380
(ii) TITRE DE L' INVENTION: PROCEDE DE REGULATION DE L'EXPRESSION D'UN GENE DANS UN BACULOVIRUS, PAR UN SITE DE FIXATION D'UN RECEPTEUR DE L'ACIDE RETINOÏQUE, ET VECTEUR POUR LA MISE EN OEUVRE DUDIT PROCEDE. (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 2
(iv) FORME DECHIFFRABLE PAR ORDINATEUR:
(A) TYPE DE SUPPORT: Floppy disk
(B) ORDINATEUR: IBM PC compatible
(C) SYSTEME D' EXPLOITATION: PC-DOS/MS-DOS
(D) LOGICIEL: PatentIn Release #1.0, Version #1.30 (OEB)
(vi) DONNEES DE LA DEMANDE ANTERIEURE:
(A) NUMERO DE LA DEMANDE: 95 03412
(B) DATE DE DEPOT: 23-MAR-1995
(2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 1:
(i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
(A) LONGUEUR: 14 paires de bases
(B) TYPE: nucléotide
(C) NOMBRE DE BRINS: double
(D) CONFIGURATION: linéaire
(xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1:
GTTGANNNNG TTCA 14
(2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 2:
(i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
(A) LONGUEUR: 14 paires de bases
(B) TYPE: nucléotide
(C) NOMBRE DE BRINS: double
(D) CONFIGURATION: linéaire
(xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 2:
GTTGACAGTG TTCA 14

Claims

REVENDICATIONS 1) Procédé pour réguler l'expression d'un gène placé sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur de baculovirus dans un vecteur d'expression comprenant une séquence de type RARE située à proximité dudit promoteur de baculovirus, lequel procédé est caractérisé en ce que l'on procède à l'expression dudit gène en présence du produit de traduction d'un gène codant pour un récepteur hormonal du type RAR. 2) Procédé selon la revendication l, caractérisé en ce que ledit promoteur de baculovirus est le promoteur PI O ou le promoteur polh .
3) Procédé selon une quelconque des revendications 1 ou 2 caractérisé en ce que le récepteur hormonal du type RAR est un récepteur RARα, un récepteur RARβ, ou un récepteur RARγ.
4) Procédé selon une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que la séquence d'ADN RARE est une séquence, identifiée dans la liste de séquence en annexe sous le numéro SEQ ID NO :l, répondant à la formule générale GTTGANNNNGTTCA, où N représente A, ou C, ou G, ou T.
5) Vecteur utilisable pour réguler l'expression d'un gène sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur de baculovirus, caractérisé en ce qu'il est constitué par un baculovirus recombinants, comprenant une séquence d'ADN constituant un site de fixation pour un récepteur hormonal du type RAR, placée à proximité d'un promoteur de baculovirus sous contrôle duquel on veut exprimer un gène codant pour une protéine d'intérêt, à condition que, si le promoteur de baculovirus est le promoteur PIO, et la séquence RARE est la séquence GTTGACAGTGTTCA, ladite séquence soit située, par rapport audit promoteur, à un emplacement différent de celui qu'elle occupe dans le gène PIO sauvage, ou soit séparée dudit promoteur par une séquence différente de celle qui la sépare du promoteur PI O sauvage.
6) Vecteur utilisable pour réguler l'expression d'un gène sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur de baculovirus, caractérisé en ce qu'il est constitué par un baculovirus recombinant, comprenant une séquence d'ADN RARE constituant un site de fixation pour un récepteur hormonal du type RAR, placée à proximité d'un premier promoteur de baculovirus, sous contrôle duquel on veut exprimer un gène codant pour une protéine d'intérêt, et une séquence d'ADN codant pour un récepteur hormonal du type RAR placée sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur de baculovirus.
7) Vecteur selon une quelconque des revendications 5 ou 6, caractérisé en ce qu'il comprend en outre au moins une séquence codant pour une protéine hétérologue, ou au moins un site pour l'insertion de ladite séquence, sous contrôle transcriptionnel du promoteur à proximité duquel est placée la séquence RARE. 8) Vecteur recombinant, utilisable pour augmenter l'expression d'un gène sous contrôle transcriptionnel du promoteur polh de baculovirus, caractérisé en ce qu'il est constitué par un baculovirus modifié, comprenant la totalité des séquences constituant le promoteur de polh , et la totalité des séquences constituant le promoteur du polypeptide PIO, et dont le voisinage du promoteur PI O est dépourvu de toute séquence constituant un site de fixation pour un récepteur hormonal du type RAR. 9) Vecteur selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il est dépourvu de la totalité de la séquence codante de la PIO . 10) Vecteur selon une quelconque des revendications 8 ou 9, caractérisé en ce qu'il comprend en outre au moins une séquence, codant pour une protéine hétérologue que l'on souhaite exprimer, placée sous contrôle transcriptionnel du promoteur de la polyédrine, ou au moins un site pour l'insertion de ladite séquence.
PCT/FR1996/000437 1995-03-23 1996-03-22 Procede de regulation de l'expression d'un gene dans un baculovirus, par un site de fixation d'un recepteur de l'acide retinoique, et vecteur pour la mise en ×uvre dudit procede WO1996029400A1 (fr)

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