WO1996008576A1 - Procede d'obtention d'acide vanillique et de vanilline par bioconversion par une association de microorganismes filamenteux - Google Patents

Procede d'obtention d'acide vanillique et de vanilline par bioconversion par une association de microorganismes filamenteux Download PDF

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acid
vanillin
vanillic acid
culture
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Laurence Lesage-Meessen
Michel Delattre
Mireille Haon
Marcel Asther
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Institut National De La Recherche Agronomique - I.N.R.A.
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    • C12P7/40—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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    • C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
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    • Y10S435/913—Aspergillus
    • Y10S435/917—Aspergillus niger

Definitions

  • the present invention relates to obtaining vanillic acid and vanillin by bioconversion.
  • vanillin is the most used flavor in the food industry.
  • the production of natural vanillin from vanilla pods covers only 20% of market needs and its cost price is around 25 OOOF / kg.
  • Vanillin can also be obtained by chemical synthesis; however, this method of production, if it is suitable for the manufacture of perfumes and cosmetics, can raise legislative difficulties in the agrifood industries.
  • synthetic aromas also tend to be less appreciated by consumers than aromas of natural origin. This is why it is sought to obtain aromatic compounds produced by biological processes, which use microorganisms (bacteria, yeasts, fungi), animal or plant cells or their enzymatic systems.
  • Vanillin is produced by certain plants and microorganisms, in particular mushrooms, where it constitutes one of the degradation products of precursors with an aromatic nucleus (ferulic acid and vanillic acid).
  • European patent application 453 368 in the name of the company PERNOD-RICARD describes the production of natural vanillin by bioconversion of ferulic acid or vanillic acid, in the presence of a filamentous fungus from the group of Basidiomycetes, Pycnoporus cinnaJbarinus . In this fungus, four metabolic pathways for the transformation of ferulic acid have been identified:
  • - Route 3 the vanillic acid resulting from route 2 is reduced to vanillin by Reductase I. The vanillin produced can then be reduced by Reductase II to vanillic alcohol.
  • - Route 4 the vanillic acid resulting from route 2 is hydroxylated and decarboxylated to methoxyhydroquinone, by the action of an intracellular vanillate hydroxylase.
  • the present invention aims to improve the yield of natural vanillin production by bioconversion from precursors with an aromatic nucleus
  • the subject of the present invention is a process for obtaining vanillic acid by bioconversion from ferulic acid, which process is characterized laughed at in that said bioconversion is carried out using a culture comprising at least one strain of a filamentous fungus chosen from the group consisting of Ascomycetes and Basidiomycetes, or at least one strain of Actinomycete.
  • the present invention also relates to a process for obtaining vanillin by bioconversion from ferulic acid, which process is caracté ⁇ ized in that it comprises: - a step of transformation of ferulic acid into vanillic acid by the process defined above;
  • the two stages are carried out sequentially.
  • the process in accordance with the invention comprises: a step during which ferulic acid is added to a culture comprising at least one strain of a filamentous fungus chosen from the group consisting of Ascomycetes and Basidiomycetes , or at least one strain of Actinomycete, and the vanillic acid produced is collected;
  • the mushrooms used in each of the stages are cultivated separately until a biomass is obtained having the capacities necessary for bioconversion (that is to say a biomass of at least 0.5 g of dry matter per liter of culture), and the cultures obtained are then used successively.
  • feruic acid is added to a culture comprising, for the transformation of ferulic acid into vanillic acid, at least one strain of a filamentous fungus chosen from the group consisting of Ascomycetes and Basidiomycetes, or at least one strain of Actinomycete, and, for the transformation of vanillic acid into vanillin, at least one strain of Basidiomycete which may be identical to or different from that used to transform the ferocious cide ⁇ liquefy vanillic acid, and collect the vanillin produced.
  • the mushrooms used for the transformation of ferulic acid into vanillic acid and those used for the transformation of vanillic acid into vanillin are cultivated separately until a bio ⁇ mass is obtained possessing the capacities necessary for bioconversion, and the cultures obtained are then grouped together to obtain a co-culture allowing bioconversion to be carried out in a single step.
  • preferred Ascomycetes belong to the genera Eurotium, Penicillium, and Aspergillus; preferred Basidiomycetes belong to the genera Bjerkandera, Nidula, Nidularia, Phanerochaete, JPycnoporus, Trametes, Lentinus, and Isch oderma, - preferred Actinomycetes belong to Streptojnyces.
  • preferred Basidiomycetes belong to the genera BjerJandera, Nidula, iVidularia, Phanerochaete, Pycn ⁇ porus, Trametes, Lentinus, and Ischnoderma. Table I below mentions, in a nonlimiting manner, a few species suitable for implementing the method according to the invention, and a few strains tested by the inventors, and which have proved to be particularly effective in this context.
  • the organisms can be cultivated in the form of free cells, or in the form of cells immobilized on a hydrophilic or hydrophobic support, preferably rough.
  • Cultures are carried out, in a conventional manner, from an inoculum which can be constituted by spores, by fragments of mycelium, or by a preculture of mycelium.
  • the culture medium comprises a source of carbon, at least one source of nitrogen, mineral salts, and is supplemented with yeast extract.
  • the constituents of this medium can be those which are conventionally used for the culture of the species of fungus concerned.
  • the inventors have found that when the carbon source used comprises or consists of at least one phospholipid, an acceleration of the bioconversion is observed, in particular with regard to the bioconversion of ferulic acid into vanillic acid.
  • the culture medium comprises at least one phospholipid chosen from the group consisting of phosphatidylcholine, lysophosphatidylcholine, phosphatidylethanolamine,
  • this phospholipid or mixture of phospholipids is used at a concentration of between 0.1 and 20 g / l.
  • a mixture of soy phospholipids can be used comprising:
  • cellobiose as the sole source of carbon for the fungus, or in addition to another source of carbon, for example a sugar such as maltose, makes it possible to very significantly limit the production of methoxyhydroquinone, and therefore increasing the bioconversion yield of vanillic acid into vanillin.
  • the carbon source used or comprises or consists of cellobiose.
  • the culture medium comprises cello ⁇ biose.
  • Cellobiose can be added from the start of the culture, at a concentration of between 0.5 g / 1 and 10 g / 1, preferably 5 g / 1, and / or shortly before, or simultaneously with the addition of ferulic acid or vanillic acid, at a concentration in this case between 0.5 g / 1 and 5 g / 1, preferably 2.5 g / 1.
  • the precursor is added to the culture, namely either ferric acid, then vanillic acid, in the case of the first variant of the process, or ferulic acid, in the case of the second variant of the process. It is advantageous to add, at the same time as the precursor, a quantity, between 0.01 and 5 g / 1 of at least one product constituting a source of carbon, or a source of nitrogen, or of mineral salts, or lipids, or a mixture of these different products.
  • carbon sources that can be used for this purpose, maltose, cellobiose, galacturonic acid, xylose, rhamnose, arabinose; among the sources of nitrogen, ammonium tartrate, yeast extract; among the mineral salts, the calcium, potassium and magnesium salts; among lipids, emulsified fatty acids, and phospholipids.
  • Ferulic acid is a readily available, inexpensive raw material. It is present for example in the parietal fraction of agricultural by-products such as beet pulp (0.9% of dry weight) or cereal bran (2.0% of dry weight in corn bran) . Vanillic acid can in particular be produced from ferulic acid during the first step of the process according to the invention.
  • Ferulic acid can be used in free form or in bound form; the term “ferulic acid bound” means an ester of a sugar or of an oligosaccharide with ferulic acid.
  • Free ferulic acid or vanillic acid can be added as such, in the form of crystals, or in the form of a solution of their sodium, potassium, or ammonium salts.
  • ferulic acid or vanillic acid are added in an amount of 0.1 to 2 g / 1 of culture, preferably 0.3 g / 1. If you use bound ferulic acid, or a salt of ferulic acid, or vanillic acid, you will adjust the concentration so that it corresponds to the range of concentra- ferulic acid or vanillic acid indicated above.
  • the addition of ferulic acid or vanillic acid is carried out after 12 to 96 h of culture.
  • concentrations toxic for the fungus namely concentrations greater than 2 g / 1 for ferulic acid and 2 g / 1 for vanillic acid, sequential additions or continuously will be performed.
  • a nonionic resin preferably of hydrophobic type.
  • vanillic acid but also vanillin are toxic to fungi, at concentrations greater than 2 g / 1.
  • the use of resin traps these metabolites and keeps their concentrations below the toxicity threshold.
  • the use of resin to trap the vanillin also makes it possible to eliminate the latter from the reaction mixture before it is reduced to vanillic alcohol.
  • the vanillic acid or vanillin fixed on the resin can be recovered, by elution with an appropriate solvent, such as for example ethanol.
  • Non-ionic resins which can be used are, by way of non-limiting example, the following:
  • Resins XAD761 and S112 are preferred for fixing vanillic acid, and resins XAD2, XAD4, XAD7, and S112 are preferred for fixing vanillin.
  • the XAD2 resin makes it possible to fix 98% of the vanillin; the adsorption capacity of this resin is of the order of 20 mg of vanillin per gram of resin.
  • the addition of resin is carried out as soon as the vanillin appears.
  • the addition of resin can be carried out, for example, either directly in the culture vessel, or by circulation of the culture medium in an external loop containing the resin.
  • composition of the basic medium is given below: Composition of the medium: Maltose 20 g / 1
  • the medium is sterilized by autoclaving 20 min at 120 "C.
  • the inoculation is carried out with mycelial fragments, spores (2.10 ⁇ spores / ml), or a preculture of mycelium, as described in Application EP 453 368.
  • the cultures are incubated at 30 ° C. and subjected to shaking at 120 rpm.
  • ferulic acid or vanillic acid in the case of the implementation of the two-step process
  • ferulic acid or vanillic acid are added. They are used in the form of salt in solution in water; the solution has been previously sterilized by filtration (0.2 ⁇ m membrane). The solution is added in sufficient quantity to obtain a final concentration corresponding to 0.3 g of ferulic acid or vanillic acid per liter of culture.
  • composition of the basic medium is as follows: Glycerol 5 g / 1
  • Yeast extract 2 g / 1 The medium is sterilized by autoclaving 20 min at 120 ° C.
  • the inoculation is carried out by fragments of aerial mycelium taken from a solid malt / agar medium. After inoculation, the cultures are incubated at 30 ° C and subjected to stirring at 120 revolutions / min.
  • Ferulic acid in the form of a salt, is added at the very start of culture, at a concentration of 1 g / 1.
  • Bioconversion during the implementation of the process according to the invention is followed by the assay of the metabolites produced.
  • an aliquot of the culture medium is removed sté ⁇ rilly at regular time intervals. This aliquot is then filtered (0.2 ⁇ membrane) and an HPLC analysis of the filtrate is carried out to detect and measure the metabolites produced. HPLC analysis conditions
  • Ferulic acid was added continuously at a rate of 430 mg / 1 per 24 hours.
  • Ferulic acid in the form of a salt, is added at the very start of culture, at a concentration of 1 g / 1.
  • Ferulic acid and its metabolites are assayed as described in Example 1 above.
  • NAT 89 supplied by the company Natterman Phospholipid Gmbh (Cologne, Germany).
  • the composition of NAT 89 is as follows:
  • NAT89 (20 g / 1) was used as a carbon source in place of maltose in the cultures of Aspergillus niger. The results obtained show a faster bioconversion of ferulic acid into vanillic acid.
  • Microorganisms under the number 1-1471 This strain was cultured as indicated in Example 1 above.
  • Vanillic acid was added sequentially, namely: 0.3 g / 1 after 3 days of culture, then 0.3 g / 1 every day.
  • Vanillic acid and its metabolites are assayed as described in Example 1 above.
  • experiment 1 one observes from the fourth day a strong production of vanillic alcohol associated with the production of vanillin. By the seventh day, all of the vanillin produced had been metabolized to vanillic alcohol.
  • Vanillic acid was added sequentially, namely: 0.3 g / 1 after 3 days of culture., Then 0.3 g / 1 every day.
  • the carbon source used is maltose, at a concentration of 20 g / 1.
  • the carbon source used is cellobiose, at a rate of 5 g / 1.
  • Vanillic acid and its metabolites are assayed, as described in Example 1 above. The results, after 7 days of growth of the culture, are indicated in Table V below. Legend of Table V: Column 1: Number of the experiment; Column 2: Vanillic acid consumed (mg / 1); Column 3: Vanillin produced (mg / 1);
  • - Maltose 2C Carbon source: maltose at 20 g / 1 + addition of 0.25% (w / v) of cellobiose after 3 days, 4 days, 5 days, and 6 days of incubation, each addition preceding by 2 hours adding vanillic acid.
  • - Maltose 3C Carbon source: maltose at 20 g / 1 + addition of 0.35% (w / v) of cellobiose after 3 days, 4 days, 5 days, and 6 days of incubation, each addition preceding by 2 hours adding vanillic acid.
  • Maltose 4C Carbon source: maltose at 20 g / 1 + addition of 0.5% (w / v) of cellobiose after 3 days, 4 days, 5 days, and 6 days of incubation, each addition preceding by 2 hours adding vanillic acid.
  • Nidula niveo-tomentosa which is accessible from the ATCC under the number 38357. This strain was cultured as indicated in Example 1 above.
  • Vanillic acid was added sequentially, namely: 0.3 g / 1 after 3 days of culture, then 0.3 g / 1 every day.
  • Vanillic acid and its metabolites are assayed as described in Example 1 above.

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Abstract

L'invention est relative à l'obtention de l'acide vanillique et de la vanilline, par bioconversion à partir de l'acide férulique. La transformation de l'acide férulique en acide vanillique est effectuée par au moins un champignon filamenteux choisi dans le groupe constitué par les Ascomycètes et les Basidiomycètes, ou au moins une souche d'Actinomycète et la transformation de l'acide vanillique en vanilline est effectuée par au moins un champignon filamenteux de la classe des Basidiomycètes.

Description

PROCEDE D'OBTENTION D'ACIDE VANILLIQUE ET DE VANILLINE PAR BIOCONVERSION PAR UNE ASSOCIATION DE MICROORGANISMES
FILAMENTEUX . La présente Invention est relative à l'obtention d'acide vanillique et de vanilline par bioconversion.
Actuellement, la vanilline est l'arôme le plus utilisé dans les industries agro-alimentaires. Or, la production de vanilline naturelle à partir de gousses de vanille ne couvre que 20% des besoins du marché et son prix de revient est de l'ordre de 25 OOOF/kg.
La vanilline peut également être obtenue par synthèse chimique ; toutefois, cette méthode d'obtention, si elle convient pour la fabrication des parfums et des cosmétiques, peut soulever dans les industries agro¬ alimentaires des difficultés d'ordre législatif. En outre les arômes de synthèse ont tendance par ailleurs à être moins appréciés par les consommateurs que les arômes d'origine naturelle. C'est pourquoi l'on cherche à obtenir des composés aromatiques produits grâce à des procédés biolo¬ giques, qui mettent en oeuvre des microorganismes (bactéries, levures, champignons) , des cellules animales ou végétales ou leurs systèmes enzymatiques. La vanilline est produite par certains végé¬ taux et micooorganismes, en particulier des champignons, où elle constitue un des produits de dégradation de pré¬ curseurs à noyau aromatique (acide férulique et acide vanillique) . La Demande de brevet européen 453 368 au nom de la Société PERNOD-RICARD, décrit la production de vanilline naturelle par bioconversion d'acide férulique ou d'acide vanillique, en présence d'un champignon fila¬ menteux du groupe des Basidiomycètes, Pycnoporus cinnaJbarinus. Chez ce champignon, quatre voies métaboliques de transformation de l'acide férulique ont été identi¬ fiées :
- Voie 1 : l'acide férulique est réduit en aldéhyde coniférylique puis en alcool coniférylique ; différents dimères sont ensuite formés à partir de ce composé. Cette voie est mineure.
- Voie 2 : il y a coupure de la chaîne propénoïque de l'acide férulique avec perte de deux carbones et for- mation d'acide vanillique.
- Voie 3 : l'acide vanillique résultant de la voie 2 est réduit en vanilline par la Reductase I. La vanilline produite peut ensuite être réduite par la Reductase II en alcool vanillique. - Voie 4 : l'acide vanillique résultant de la voie 2 est hydroxylé et décarboxylé en méthoxyhydroquinone, par l'action d'une vanillate hydroxylase intracellulaire.
Dans les conditions décrites dans la Demande EP 453 368, la production de vanilline par P. cinnabarinus MIC11, à partir de 300 mg/1 d'acide féru¬ lique est au maximum de l'ordre de 45 mg/1 (rendement molaire de conversion de 20,5 %) , et à partir de 300 mg/1 d'acide vanillique, cette production est au maximum de l'ordre de 81,4 mg/1 (rendement molaire de conversion de 31%) .
La présente Invention a pour but d'améliorer le rendement de la production de vanilline naturelle par bioconversion à partir de précurseurs à noyau aromatique
(acide férulique et acide vanillique) . Dans ce but, les Inventeurs ont cherché à améliorer le rendement de conversion de l'acide férulique en acide vanillique, et le rendement de conversion de l'acide vanillique en vanilline.
La présente Invention a pour objet un procédé d'obtention de l'acide vanillique par bioconversion à partir de l'acide férulique, lequel procédé est caracté- risé en ce que ladite bioconversion est effectuée en uti¬ lisant une culture comprenant au moins une souche d'un champignon filamenteux choisi dans le groupe constitué par les Ascomycetes et les Basidiomycètes, ou au moins une souche d'Actinomycète.
La présente Invention a également pour objet un procédé d'obtention de vanilline par bioconversion à partir de l'acide férulique, lequel procédé est caracté¬ risé en ce qu'il comprend : - une étape de transformation de l'acide férulique en acide vanillique par le procédé défini ci- dessus ;
- une étape de transformation de l'acide vanillique en vanilline par au moins un champignon fila- menteux de la classe des Basidiomycètes.
Selon une première variante du procédé d'obtention de vanilline conforme à l'Invention, les deux étapes sont effectuées séquentiellement. Dans ce cas le procédé conforme à l'Invention comprend: - une étape au cours de laquelle on ajoute de l'acide férulique à une culture comprenant au moins une souche d'un champignon filamenteux choisi dans le groupe constitué par les Ascomycetes et les Basidiomycètes, ou au moins une souche d'Actinomycète, et l'on recueille l'acide vanillique produit ;
- une étape au cours de laquelle on ajoute 1'acide vanillique produit au cours de la première étape à une culture comprenant au moins une souche d'un champi¬ gnon filamenteux de la classe des Basidiomycètes, et l'on recueille la vanilline produite.
Pour mettre en oeuvre cette variante, les champignons utilisés dans chacune des étapes sont culti¬ vés séparément jusqu'à l'obtention d'une biomasse possé¬ dant les capacités nécessaires à la bioconversion (c'est à dire une biomasse d'au moins 0,5 g de matière sèche par litre de culture) , et les cultures obtenues sont ensuite utilisées successivement.
Selon une deuxième variante du procédé conforme à l'Invention, les deux étapes sont effectuées simultanément. Dans ce cas l'on ajoute de l'acide féru¬ lique à une culture comprenant, pour la transformation de l'acide férulique en acide vanillique, au moins une souche d'un champignon filamenteux choisi dans le groupe constitué par les Ascomycetes et les Basidiomycètes, ou au moins une souche d'Actinomycète, et, pour la transfor¬ mation de l'acide vanillique en vanilline, au moins une souche de Basidiomycète qui peut être identique à ou dif¬ férente de celle utilisée pour transformer l' cide féru¬ lique en acide vanillique, et l'on recueille la vanilline produite.
Pour mettre en oeuvre cette deuxième variante, les champignons utilisés pour la transformation de l'acide férulique en acide vanillique et ceux utilisés pour la transformation de l'acide vanillique en vanilline sont cultivés séparément jusqu'à l'obtention d'une bio¬ masse possédant les capacités nécessaires à la bioconver¬ sion, et les cultures obtenues sont ensuite regroupées pour obtenir une co-culture permettant de réaliser la bioconversion en une seule étape. Pour la bioconversion de l'acide férulique en acide vanillique, des Ascomycetes préférés appartiennent aux genres Eurotium, Pénicillium, et Aspergillus ; des Basidiomycètes préférés appartiennent aux genres Bjerkandera, Nidula, Nidularia , Phanerochaete , JPycnoporus, Trametes, Lentinus, et Isch oderma , - des Actinomycètes préférés appartiennent aux Streptojnyces.
Pour la bioconversion de l'acide vanillique en vanilline, des Basidiomycètes préférés appartiennent aux genres BjerJandera, Nidula, iVidularia, Phanerochaete, Pycnσporus, Trametes, Lentinus, et Ischnoderma. Le Tableau I ci-après mentionne, de façon non limitative, quelques espèces convenant à la mise en oeuvre du procédé selon l'Invention, et quelques souches testées par les Inventeurs, et qui se sont avérées parti¬ culièrement performantes dans ce cadre.
TABLEAU I
Espèces Exemple de souches utilisées
Actinomycètes :
- Streptomyces setonii ATCC 25497
Ascomycetes :
- Eurotium chevalier i
- Pénicillium verrucosum cyclopium
- Aspergillus oryzae
- Aspergillus versicolor
- Aspergillus niger LMTC N' 2.7 (CNCM 1-1472)
Basidiomycètes
- Ischnoderma benzoïmum CBS 250.30
- Bjerkandera adusta CBS 595.79
- Nidula niveo-tomentosa ATCC 38357
- Phanerochaete sordida IHEM 3730
- Phanerochaete chrys oεpori um MIC 247 (CNCM 1-1471)
- Pycnoporus cinnabarinus MUCL 38467
- Trame tes pini CBS 210.36
- Lentinus edodes CBS 454.59
Il est possible, selon les cas, de se procu¬ rer les différentes souches citées, auprès de la collec¬ tion MUCL, 3 place Croix du Sud, 1348, Louvain La Neuve, Belgique, auprès de la collection IHEM, 14 rue J. Wytsman, 1050, Bruxelles, Belgique, auprès de la collec¬ tion CBS, Oosterstraat 1, Postbus 273, NL-3740 AG Baarn, et auprès de la collection ATCC, 12301 Parkla n Drive, Rockville, Maryland 20852 USA.
D'autre part, la souche d 'Aspergillus niger LMTC 2.7 et la souche de Phanerochaete chrysosporium MIC 247 ont été déposées le 31 août 1994 auprès de la CNCM (Collection Nationale de Cultures de Microorganismes) tenue par l'Institut Pasteur, 26 rue du Docteur Roux, à Paris, sous les numéros respectifs 1-1472 et 1-1471.
Les organismes peuvent être cultivés sous forme de cellules libres, ou sous forme de cellules immo¬ bilisées sur un support hydrophile ou hydrophobe, de pré¬ férence rugueux.
Les cultures sont effectuées, de manière classique, à partir d'un inoculum qui peut être constitué par des spores, par des fragments de mycélium, ou par une préculture de mycélium. Le milieu de culture comporte une source de carbone, au moins une source d'azote, des sels minéraux, et est additionné d'extrait de levure. Les constituants de ce milieu peuvent être ceux qui sont classiquement utilisés pour la culture de l'espèce de champignon concernée.
Toutefois, les Inventeurs ont constaté que lorsque la source de carbone utilisée comprend ou est constituée par au moins un phospholipide, on observe une accélération de la bioconversion, en particulier en ce qui concerne la bioconversion de l'acide férulique en acide vanillique.
Avantageusement, le milieu de culture com¬ prend au moins un phospholipide choisi dans le groupe constitué par la phosphatidylcholine, la lysophosphati- dylcholine, la phosphatidyléthanolamine,
1'acylphosphatidyléthanolamine, le phosphatidylinositol, et l'acide phosphatidique.
Préférentiellement ce phospholipide ou mélange de phospholipides est utilisé à une concentration comprise entre 0,1 et 20 g/1. Par exemple on peut utiliser un mélange de phospholipides de soja comprenant :
12 % de phosphatidylcholine et lysophosphatidyl- choline ; - 31 % de phosphatidyléthanolamine et acylphosphatidyl- éthanolamine ;
- 27 % de phosphatidylinositol ;
- 30 % d'acide phosphatidique.
Pour améliorer le rendement de bioconversion de l'acide férulique en acide vanillique, on peut également activer la béta-oxydation peroxysomale.
Les Inventeurs ont en outre observé que l'utilisation de cellobiose comme seule source de carbone du champignon, ou en complément d'une autre source de carbone, par exemple d'un sucre tel que le maltose, per¬ met de limiter très significativement la production de méthoxyhydroquinone, et donc d'augmenter le rendement de bioconversion de l'acide vanillique en vanilline.
Selon un mode de mise en oeuvre préféré du procédé conforme à l'Invention, la source de carbone uti¬ lisée comprend ou est constituée par du cellobiose.
Selon une disposition préférée de ce mode de mise en oeuvre, le milieu de culture comprend du cello¬ biose. Le cellobiose peut être ajouté dès le début de la culture, à une concentration comprise entre 0,5 g/1 et 10 g/1, préférentiellement 5 g/1, et/ou peu de temps avant, ou simultanément à l'addition de l'acide férulique ou de l'acide vanillique, à une concentration comprise dans ce cas entre 0,5 g/1 et 5 g/1, préférentiellement 2,5 g/1.
Pour initier la bioconversion, on additionne à la culture le précurseur, à savoir soit l'acide féru¬ lique, puis l'acide vanillique, dans le cas de la pre- mière variante du procédé, soit l'acide férulique, dans le cas de la deuxième variante du procédé. Il est avantageux d'ajouter en même temps que le précurseur, une quantité, comprise entre 0,01 et 5 g/1 d'au moins un produit constituant une source de carbone, ou une source d'azote, ou de sels minéraux, ou de lipides, ou d'un mélange de ces différents produits.
On citera parmi les sources de carbone utili¬ sables dans ce but, le maltose, le cellobiose, l'acide galacturonique, le xylose, le rhamnose, l'arabinose ; parmi les sources d'azote, le tartrate diammonium, l'extrait de levure ; parmi les sels minéraux, les sels de calcium, de potassium, de magnésium ; parmi les lipides, les acides gras émulsifiés, et les phospholi- pides.
L'acide férulique est une matière première aisément disponible, et peu coûteuse. Il est présent par exemple dans la fraction pariétale de sous-produits agri¬ coles tels que les pulpes de betterave (0,9% du poids sec) ou les sons de céréales (2,0% du poids sec dans les sons de maïs). L'acide vanillique peut en particulier être produit à partir de l'acide férulique au cours de la première étape du procédé conforme à l'Invention.
L'acide férulique peut être utilisé sous forme libre ou bien sous forme liée ; on entend par acide férulique lié un ester d'un sucre ou d'un oligosaccharide avec l'acide férulique.
L'acide férulique libre ou l'acide vanillique peuvent être ajoutés tels quels, sous forme de cristaux, ou sous forme d'une solution de leurs sels de sodium, potassium, ou ammonium. Selon un mode de mise en oeuvre préféré du procédé conforme à l'invention, l'acide férulique ou l'acide vanillique sont ajoutés à raison de 0,1 à 2 g/1 de culture, de préférence 0,3 g/1. Si l'on utilise l'acide férulique lié, ou bien un sel d'acide férulique, ou d'acide vanillique, on ajustera la concentration de manière à ce qu'elle corresponde à la gamme de concentra- tions en acide férulique ou en acide vanillique indiquée ci-dessus.
Selon un autre mode de mise en oeuvre préféré du procédé conforme à l'invention, l'ajout de l'acide férulique ou de l'acide vanillique s'effectue après 12 à 96 h de culture. Toutefois, lorsque l'ajout en une seule fois aboutirait à des concentrations toxiques pour le champignon, à savoir des concentrations supérieures à 2 g/1 pour l'acide férulique et à 2 g/1 pour l'acide vanillique, des ajouts séquentiels ou en continu seront effectués.
Les Inventeurs ont en outre observé qu'il était possible et particulièrement avantageux, de mettre en oeuvre le procédé selon l'Invention en présence d'une résine non-ionique, de préférence de type hydrophobe. En effet, non seulement l'acide vanillique, mais également la vanilline sont toxiques pour les champignons, à des concentrations supérieures à 2 g/1. L'utilisation de résine permet de piéger ces métabolites et de maintenir leurs concentrations en dessous du seuil de toxicité.
D'autre part, l'utilisation de résine pour piéger la vanilline permet également d'éliminer celle-ci du mélange réactionnel avant qu'elle soit réduite en alcool vanillique. L'acide vanillique ou la vanilline fixés sur la résine peuvent être récupérés, par élution avec un solvant approprié, tel par exemple que l'éthanol.
Des résines non-ioniques pouvant être utili¬ sées sont, à titre d'exemple non-limitatif, les suivantes :
- Résines AMBERLITE : XAD2 ; XAD4 ; XAD7 ;
- Résine DUOLITE : XAD761 ;
- Résine DOWEX : S112
Les résines XAD761 et S112 sont préférées pour fixer l'acide vanillique, et les résines XAD2, XAD4, XAD7, et S112, sont préférées pour fixer la vanilline. A titre d'exemple, la résine XAD2 permet de fixer 98% de la vanilline ; la capacité d'adsorption de cette résine est de l'ordre de 20 mg de vanilline par gramme de résine. Préférentiellement, l'ajout de résine est effectué dès l'apparition de la vanilline.
L'ajout de résine peut s'effectuer, par exemple, soit directement dans le récipient de culture, soit par circulation du milieu de culture dans une boucle externe contenant la résine.
Pour éliminer l'acide vanillique et la vanil¬ line du milieu de culture et les récupérer au fur et à mesure de leur production, il est également possible de faire appel à d'autres techniques, telles que l'ultrafiltration, l'osmose inverse ou la capture sur charbon actif.
Pour améliorer de façon significative le ren¬ dement de bioconversion de l'acide vanillique en vanil¬ line, on peut également choisir une souche de basidio- mycète qui ne forme que très peu d'alcool vanillique, et accumule la vanilline produite.
Il s'agit par exemple de basidiomycètes de 1'ordre des Nidulariales.
La vanilline produite devenant très rapide- ment toxique pour le métabolisme du champignon, il est avantageux dans ce cas de la piéger en utilisant une résine, comme indiqué ci-dessus.
La présente Invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre du procédé conforme à l'Invention.
Il doit être bien entendu toutefois que ces exemples sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'Invention dont ils ne constituent en aucune manière une limitation. EXEMPLE 1 : Réalisation des cultures
A) Champignons :
La composition du milieu de base est donnée ci-dessous : Composition du milieu : Maltose 20 g/1
Tartrate diammonium 1,842 g/1 KH2P0 0,2 g/1
CaCl2, 2 H20 0,0132 g/1
MgS04, 7H20 0,5 g/1 Extrait de levure 0,5 g/1
Le milieu est stérilisé par autoclavage 20 min à 120 "C.
L'inoculation est effectuée par des fragments mycéliens, des spores (2.10^ spores/ml) , ou une pré- culture de mycélium, comme décrit dans la Demande EP 453 368.
Après inoculation, les cultures sont incubées à 30"C et soumises à une agitation de 120 tours/min.
Après 12 à 96 h de culture, l'acide férulique ou l'acide vanillique (dans le cas de la mise en oeuvre du procédé en deux étapes) sont ajoutés. Ils sont utili¬ sés sous forme de sel en solution dans l'eau ; la solu¬ tion a été préalablement stérilisée par filtration (membrane de 0,2μm). La solution est ajoutée en quantité suffisante pour obtenir une concentration finale corres¬ pondant à 0,3 g d'acide férulique ou d'acide vanillique par litre de culture.
B) Actinomycètes :
La composition du milieu de base est la suivante : Glycérol 5 g/1
Extrait de levure 2 g/1 Le milieu est stérilisé par autoclavage 20 min à 120 'C.
L'inoculation est effectuée par des fragments de mycélium aérien prélevés sur un milieu solide malt/agar. Après inoculation, les cultures sont incubées à 30*C et soumises à une agitation de 120 tours/min.
L'acide férulique, sous forme de sel, est ajouté en tout début de culture, à la concentration de 1 g/1.
C) Suivi de la bioconversion :
La bioconversion, au cours de la mise en oeuvre du procédé conforme à l'Invention est suivie par le dosage des métabolites produits. Pour procéder à ce dosage, un aliquot du milieu de culture est prélevé sté¬ rilement à intervalles de temps réguliers. Cet aliquot est ensuite filtré (membrane de 0.2 μ ) et une analyse par HPLC du filtrat est réalisée, pour détecter et doser les métabolites produits. Conditions d'analyse HPLC
- phase inverse = colonne BONDAPACK Cl8
- solvant : CH3COOH 0,01 % dans H20/méthanol
- détection en UV à 280 n
EXEMPLE 2 ; Bioconversion de l'acide féruliσue en acide anillique
A) Par un champignon
La souche d ' Aspergillus niger MIC 373, dépo¬ sée le 31 août 1994 auprès de la Collection Nationale de Culture de Microorganismes sous le numéro 1-1472, a été mise en culture comme indiqué à l'exemple 1 ci-dessus.
L'acide férulique a été ajouté en continu à raison de 430 mg/1 par 24 heures.
L'acide férulique et ses métabolites sont dosés comme décrit à l'exemple 1 ci-dessus. Les résultats obtenus après 15 jours de croissance de la culture sont indiqués dans le Tableau II ci dessous. Légende du Tableau II :
Colonne 1 Acide férulique consommé (mg/1) ; Colonne 2 Acide vanillique produit (mg/1) ;
Colonne 3 Methoxyhydroquinone produite (mg/1) Colonne 4 : Rendement molaire (%) ; le rendement molaire est défini comme le nombre de moles d'acide vanillique produites pour 100 moles d'acide férulique consommées.
TABLEAU II
1 2 3 4
5055 3600 109 82
On observe une consommation totale de l'acide férulique ajouté. Celui-ci est transformé en grande majo¬ rité (82%) en acide vanillique qui est faiblement (2%) métabolisé en méthoxyhydroquinone, et pas du tout en vanilline et alcool vanillique. B) Par un actinomycète : La souche de Streptomyces setonii ATCC 25497 a été mise en culture comme indiqué à l'exemple 1 ci- dessus.
L'acide férulique, sous forme de sel, est ajouté en tout début de culture, à la concentration de 1 g/1.
L'acide férulique et ses métabolites sont dosés comme décrit à l'exemple 1 ci-dessus.
Les résultats obtenus après 100 heures de croissance de la culture sont indiqués dans le Tableau III ci dessous.
Légende du Tableau III :
Colonne 1 : Acide férulique consommé (mg/1) ; Colonne 2 : Acide vanillique produit (mg/1) ; Colonne 3 : Rendement molaire (%) . TABLEAU III
1 2 3
880 332 43 EXEMPU 3 : Activation de la bioconveraion de l'acide féru ique en acide vanill çJ? par ajout de hospholi deg de soia
La source de phospholipides utilisée est le NAT 89 fourni par la Société Natterman Phospholipid Gmbh (Cologne, Allemagne) . La composition du NAT 89 est la suivante :
12 % de phosphatidylcholine et de lysophosphatidyl- choline 31 % de phosphatidylethanolamine et acyl-phosphati- dylethanolamine
27 % de phosphatidylinositol 30 % d'acide phosphatidique
Le NAT89 (20 g/1) a été utilisé comme source de carbone à la place du maltose dans les cultures d'Aspergillus niger. Les résultats obtenus montrent une bioconversion plus rapide de l'acide férulique en acide vanillique.
EXEMPLE 4 ; Activation de la bioconversion de l'acide vanillique en vanilline par l'utilisation de résine
Pour illustrer cet exemple, une souche repré¬ sentative d'une espèce de Basidiomycète produisant prin¬ cipalement de l'alcool vanillique a été choisie.
Il s'agit de la souche MIC 247 de Phanerochaete chrysosporium, déposée le 31 août 1994 auprès de la Collection Nationale de Culture de
Microorganismes sous le numéro 1-1471. Cette souche a été mise en culture comme indiqué à l'exemple 1 ci-dessus.
L'acide vanillique a été ajouté séquentielle- ment, à savoir : 0,3 g/1 au bout de 3 jours de culture, puis 0,3 g/1 tous les jours.
Pour l'expérience 2, de la résine XAD2
(AMBERLITE) stérile est ajoutée à raison de 10%
(poids/volume) après 3 jours + 6h de culture du champi- gnon, soit 6 h après l'ajout d'acide vanillique (à
300 mg/1) . L'acide vanillique et ses métabolites sont dosés comme décrit à l'exemple 1 ci-dessus.
Les résultats, indiqués dans le Tableau IV ci-dessous, sont donnés après 4 jours et 7 jours (Expérience 1), ou après 6 jours (expérience 2), de croissance de la culture. Légende du Tableau IV : Colonne 1 : Numéro de l'expérience, et âge de la cul¬ ture ; Colonne 2 : Acide vanillique consommé (mg/1) ; Colonne 3 : Vanilline produite (mg/1) ; Colonne 4 : Alcool vanillique produit (mg/1) ; Colonne 5 : Méthoxyhydroquinone produite (mg/1) ; Colonne 6 : Rendement molaire (%) ; le rendement molaire est ici défini comme le nombre de moles de vanilline pro¬ duites pour 100 moles d'acide vanillique consommées.
TABLEAU IV
1 2 3 4 5 6
N*l ._
4 j 277 125 89 17 50
7 j 1545 3 762 175 0,2
N'2
6j 838 628 51 86 82
Dans l'expérience 1, on observe dès le qua¬ trième jour une forte production d'alcool vanillique associée à la production de vanilline. Au septième jour, toute la vanilline produite a été métabolisée en alcool vanillique.
Dans l'expérience 2, la vanilline a été fixée par la résine au fur et à mesure de sa production (94 % de la vanilline produite a été fixée sur la résine utilisée), avant qu'elle ne soit transformée en alcool vanillique.
EXEMPLE 5 ι Activation de la bioconversion de l'acide
YΩniJ~>If"* m τmτmiina par l'utilisation de cellobiose Pour illustrer cet exemple, une souche repré¬ sentative d'une espèce de Basidiomycete produisant prin¬ cipalement de la méthoxyhydroquinone a été choisie.
Il s'agit de la souche MUCL 38467 de Pycnoporus cinnabarinus . Cette souche a été mise en cul- ture comme indiqué à l'exemple 1 ci-dessus.
L'acide vanillique a été ajouté séquentielle¬ ment, à savoir : 0,3 g/1 au bout de 3 jours de culture., puis 0,3 g/1 tous les jours.
Pour l'expérience 1, la source de carbone utilisée est le maltose, à une concentration de 20 g/1.
Pour l'expérience 2, la source de carbone utilisée est le cellobiose, à raison de 5 g/1.
L'acide vanillique et ses métabolites sont dosés, comme décrit à l'exemple 1 ci-dessus. Les résultats, après 7 jours de croissance de la culture, sont indiqués dans le Tableau V ci-dessous. Légende du Tableau V : Colonne 1 : Numéro de l'expérience ; Colonne 2 : Acide vanillique consommé (mg/1) ; Colonne 3 : Vanilline produite (mg/1) ;
Colonne 4 : Méthoxyhydroquinone produite (mg/1) ; Colonne 5 : Alcool vanillique produit (mg/1) ; Colonne 6 : Rendement molaire (%) ; le rendement molaire est défini comme le nombre de moles de vanilline pro- duites pour 100 moles d'acide vanillique consommées. TABLEAU V
1 2 3 4 5 6
N*l 1198 166 709 30 15
N*2 941 481 62 70 59
Dans l'expérience 1, on observe après 7 jours de culture des productions élevées en vanilline mais aussi en méthoxyhydroquinone. Dans l'expérience 2, l'utilisation de cello¬ biose comme source de carbone, a permis de limiter très significativement la production de méthoxyhydroquinone, et d'augmenter celle de vanilline.
Dans une deuxième série d'expériences décrites ci-dessous, où le maltose est utilisé comme source de carbone principale, l'ajout de cellobiose avant l'ajout du précurseur permet également de limiter très significativement la production de méthoxyhydroquinone et d'augmenter celle de vanilline. Les milieux et conditions de culture suivants ont été utilisés:
- Maltose 1 : Seule source de carbone : maltose à 20 g/1.
- Maltose 2 : Source de carbone : maltose à 20 g/1 + addition de 0,25% (p/v) de cellobiose après 3 jours d'incubation, 2 h avant l'ajout d'acide vanillique.
- Maltose 3 : Source de carbone : maltose à 20 g/1 + addition de 0,35% (p/v) de cellobiose après 3 jours d'incubation, 2 h avant l'ajout d'acide vanillique.
- Maltose 4 : Source de carbone : maltose à 20 g/1 + addition de 0,5% (p/v) de cellobiose après 3 jours d'incubation, 2 h avant l'ajout d'acide vanillique.
- Maltose 2C : Source de carbone : maltose à 20 g/1 + addition de 0,25% (p/v) de cellobiose après 3 jours, 4 jours, 5 jours, et 6 jours d'incubation, chaque ajout précédant de 2 heures l'ajout d'acide vanillique. - Maltose 3C : Source de carbone : maltose à 20 g/1 + addition de 0,35% (p/v) de cellobiose après 3 jours, 4 jours, 5 jours, et 6 jours d'incubation, chaque ajout précédant de 2 heures l'ajout d'acide vanillique.
- Maltose 4C : Source de carbone : maltose à 20 g/1 + addition de 0,5% (p/v) de cellobiose après 3 jours, 4 jours, 5 jours, et 6 jours d'incubation, chaque ajout précédant de 2 heures l'ajout d'acide vanillique.
Les résultats sont indiqués dans le Tableau VI ci-dessous. Légende du Tableau VI : Colonne 1 : Numéro de l'expérience ; Colonne 2 : Acide vanillique consommé (mg/1) ; Colonne 3 : Vanilline produite (mg/1) ; Colonne 4 : Méthoxyhydroquinone produite (mg/1) ; Colonne 5 : Alcool vanillique produit (mg/1) ; Colonne 6 : Rendement molaire (%) ; le rendement molaire est ici défini comme le nombre de moles de vanilline pro¬ duites pour 100 moles d'acide vanillique consommées.
TABLEAU VI
1 2 3 4 5
Maltosel 1198 166 709 30 14
Maltose2 1199 342 466 26 28
Maltose3 1192 447 350 27 37
Maltose4 1195 388 393 25 32
Maltose2C 1198 583 541 76 49
Maltose3C 1198 457 526 72 51
Maltose4C 1197 642 476 62 54 Exemple 6 . Utilisation d'une souche produisant principa¬ lement de la vanilline
Pour illustrer cet exemple, une souche repré¬ sentative d'une espèce de Basidiomycete accumulant la vanilline a été choisie.
Il s'agit d'une souche de Nidula niveo-tomentosa qui est accessible auprès de l'ATCC sous le numéro 38357. Cette souche a été mise en culture comme indiqué à l'exemple 1 ci-dessus.
L'acide vanillique a été ajouté séquentielle¬ ment, à savoir : 0,3 g/1 au bout de 3 jours de culture, puis 0,3 g/1 tous les jours.
L'acide vanillique et ses métabolites sont dosés comme décrit à l'exemple 1 ci-dessus.
Les résultats, au 8ème jour de croissance de la culture, sont indiqués dans le Tableau VII ci-dessous. Légende du Tableau VII :
Colonne 1 : Acide vanillique consommé (mg/1) ; Colonne 2 : Vanilline produite (mg/1) ; Colonne 3 : Alcool vanillique produit (mg/1) ; Colonne 4 : Méthoxyhydroquinone produite (mg/1) ; Colonne 5 : Rendement molaire (%) .
TABLEAU VII
1 2 3 4 5
1252 444 20 334 39
Cette souche accumulant la vanilline pro¬ duite, très peu d'alcool vanillique est obtenu.
Pour optimiser l'utilisation de cette souche, on peut d'une part piéger la vanilline au fur et à mesure de sa production, par exemple en utilisant des résines comme décrit à l'exemple 4 ci-dessus, et d'autre part ajouter du cellobiose afin de limiter la quantité de méthoxyhydroquinone produite, comme décrit à l'exemple 5 ci-dessus.

Claims

REVENDICATIONS
1) Procédé d'obtention de l'acide vanillique par bioconversion à partir de l'acide férulique, caracté¬ risé en ce que ladite bioconversion est effectuée en uti- lisant une culture comprenant au moins une souche d'un champignon filamenteux choisi dans le groupe constitué par les Ascomycetes et les Basidiomycètes, ou au moins une souche d'Actinomycète.
2) Procédé d'obtention de vanilline par bio- conversion à partir de l'acide férulique, lequel procédé est caractérisé en ce qu'il comprend : une étape de transformation de l'acide férulique en acide vanillique par un procédé selon la revendication 1 ; - une étape de transformation de 1 'acide vanillique en vanilline par au moins un champignon fila¬ menteux de la classe des Basidiomycètes.
3) Procédé d'obtention de vanilline selon la revendication 2, caractérisé en ce qu'il comprend: - une étape au cours de laquelle l'on ajoute de 1 'acide férulique à une culture comprenant au moins une souche d'un champignon filamenteux choisi dans le groupe constitué par les Ascomycetes et les Basidiomycètes, ou au moins une souche d'Actinomycète, et l'on recueille l'acide vanillique produit ;
- une étape au cours de laquelle on ajoute l'acide vanillique produit au cours de la première étape à une culture comprenant au moins une souche d'un champi¬ gnon filamenteux de la classe des Basidiomycètes, et l'on recueille la vanilline produite.
4) Procédé d'obtention de vanilline selon la revendication 2, caractérisé en ce que l'on ajoute de 1'acide férulique à une culture comprenant au moins une souche d'un champignon filamenteux choisi dans le groupe constitué par les Ascomycetes et les Basidiomycètes, ou au moins une souche d'Actinomycète, et l'on recueille la vanilline produite.
5) Procédé selon une quelconque des revendi¬ cations 1 à 4, caractérisé en ce que 1 'on met en oeuvre au moins une souche choisie dans le groupe constitué par : les souches d'Ascomycetes appartenant aux genres Eurotium, Pénicillium, et Aspergillus ; les souches de Basidiomycètes appartenant aux genres Bjerkandera, Nidula, Nidularia, Phanerochaete, Pycnoporus, Trametes, Lentinus, et Ischnoderma, et les souches d'Actinomycètes appartenant au genre Streptomyces.
6) Procédé selon la revendication 5, caracté¬ risé en ce que 1 'on met en oeuvre une souche d 'Aspergillus niger déposée le 31 août 1994 auprès de la CNCM, sous le numéro 1-1472.
7) Procédé selon une quelconque des revendi¬ cations 2 à 6, caractérisé en ce que l'on met en oeuvre, pour la deuxième étape au moins une souche choisie dans le groupe constitué par des Basidiomycètes appartenant aux genres Bjerkandera, Nidula, Nidularia, Phanerochaete, Pycnoporus, Trametes, Lentinus, et Ischnoderma .
8) Procédé selon la revendication 7, caracté¬ risé en ce que l'on met en oeuvre une souche de Phanerochaete chrysosporium déposée le 31 août 1994 auprès de la CNCM, sous le numéro 1-1471.
9) Procédé selon une quelconque des revendi¬ cations 1 à 8, caractérisé en ce que le milieu de culture comporte une source de carbone qui comprend ou est constituée par au moins un phospholipide. 10) Procédé selon la revendication 9 caracté¬ risé en ce que ledit phospholipide est choisi dans le groupe constitué par la phosphatidylcholine, la lysophos- phatidylcholine, la phosphatidyléthanolamine, 1'acylphosphatidyléthanolamine, le phosphatidylinositol, et l'acide phosphatidique. 11) Procédé selon une quelconque des revendi¬ cations 9 ou 10 caractérisé en ce que ledit phospholipide ou mélange de phospholipides est utilisé à une concentra¬ tion comprise entre 0,1 et 20 g/1. 12) Procédé selon une quelconque des revendi¬ cations 1 à 11, caractérisé en ce que le milieu de cul¬ ture comporte une source de carbone qui comprend ou est constituée par du cellobiose.
13) Procédé selon la revendication 12, carac- térisé en ce que le milieu de culture comprend du cello¬ biose à une concentration comprise entre 0,5 g/1 et 10 g/1.
14) Procédé selon la revendication 13, carac¬ térisé en ce que le milieu de culture comprend du cello- biose à une concentration d'environ 5g /l.
15) Procédé selon une quelconque des revendi¬ cations 1 à 14, caractérisé en ce que l'acide férulique est ajouté à raison de 0,1 à 2 g/1.
16) Procédé selon une quelconque des revendi- cations 2 à 15, caractérisé en ce que l'acide vanillique est ajouté à raison de 0,1 à 2 g/1.
17) Procédé selon une quelconque des revendi¬ cations 1 à 16, caractérisé en ce qu'il est mis en oeuvre en présence d'une résine hydrophobe. 18) Procédé selon la revendication 17, carac¬ térisé en ce que ladite résine de type hydrophobe est choisie dans le groupe constitué par les résines XAD2, XAD4, XAD7, XAD761, et S112.
PCT/FR1995/001173 1994-09-13 1995-09-13 Procede d'obtention d'acide vanillique et de vanilline par bioconversion par une association de microorganismes filamenteux WO1996008576A1 (fr)

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EP95930580A EP0781345B1 (fr) 1994-09-13 1995-09-13 Procede d'obtention d'acide vanillique et de vanilline par bioconversion par une association de microorganismes filamenteux
DE69506724T DE69506724T2 (de) 1994-09-13 1995-09-13 Verfahren zur gewinnung von vanillinsäure und vanillin durch biokonversion mit einer kombination von filamentösen mikroorganismen
US08/793,899 US5866380A (en) 1994-09-13 1995-09-13 Methods for bioconversion of ferulic acid to vanillic acid or vanillin and for the bioconversion of vanillic acid to vanillin using filamentous fungi

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