WO1996005862A1 - Utilisation de sels de derives cationiques de porphine comme agents photosensibilisants de bacteries de type gram-negatif - Google Patents

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porphine
cationic
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gram
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Giulio Jori
Giulio Bertoloni
Michèle MERCHAT
Paolo Giacomoni
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L'oreal
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    • A61K31/4425—Pyridinium derivatives, e.g. pralidoxime, pyridostigmine
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    • Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Definitions

  • the present invention relates to the use of salts of canonical porphine derivatives as photosensitizing agents of gram-negative bacteria.
  • Hp hemato-porphyrin
  • envelope is understood to mean, according to the invention, the well-known external structure of gram-negative bacteria and which, schematically, consists of the cytoplasmic membrane, of a periplasm comprising approximately in its middle a layer of murine, d '' an outer membrane formed of a bilayer of phospholipids and a capsule formed essentially of lipopolysaccharides and lipoproteins.
  • bacteria of this type mention may in particular be made of those belonging to the family of Enterobacteriaceae and in particular bacteria of the genera Escherichia such as E. coli, Enterobacter such as E.aerogenes and Proteus such as P. mirabilis, the family of Pseudomonadaceae and in particular of the genus Pseudomonas such as Ps.aeruginosa, the family of Vibrionaceae and in particular of the genus Vibrio such as V. anguillarum.
  • the present invention therefore relates to the use, as a photosensitizing agent of gram-negative bacteria, of a salt of cationic derivative of porphine, substituted in position 5, 10, 15, and / or 20 of the porphine nucleus, corresponding to the following formula:
  • Rj, R 2 , R 3 , R 4 identical or different, represent a hydrogen atom, a phenyl radical or a radical having one of the following formulas:
  • photosensitizing agent for bacteria means an agent having the capacity, in combination with light irradiation, to cause or promote the destruction of bacteria.
  • the salts of cationic porphine derivatives used according to the invention absorb radiation of wavelength between approximately 340 nm and 650 nm and therefore in particular to radiation corresponding to the visible, the use of which is particularly advantageous insofar as those - these are readily available, penetrate well into water and are not mutagenic.
  • the monovalent anion is in particular a halide anion such as an iodide or chloride anion or a tosylate.
  • a halide anion such as an iodide or chloride anion or a tosylate.
  • the salts of cationic porphine derivatives corresponding to the formula (I) defined above there may be mentioned in particular the iodides, chlorides and tosylates of 5,10,15,20-tetra (3-N-methyl pyridinium) porphine of 5,10- [di (phenyl)] - 15,20- [di (4-N-methyl pyridinium)] porphine, 5,10,15,20-tetra (4-N-trimethyl anilinium) po ⁇ phine and 5,15,70-tri (4-methylpyridinium) 10- (phenyl) porphine.
  • the salts of cationic porphine derivatives used according to the invention are known compounds.
  • T 3 MPyP "by the company Mid Center, the tetra-chloride of 5.10- [di (phenyl)] - 15.20- [di (4-N-methyl pyridinium)] porphine marketed under the name of" Chloride D 2 PhD 2 MPyP "by the company Mid Center and the 5,15,20-tri (4-N-methyl pyridinium) l ⁇ - (phenyl) porphine tritosylate marketed under the name" Tosylate T 3 MPyPhP ".
  • salts of cationic porphine derivatives as defined above as photosensitizers of bacteria of gram-positive type, of viruses or of eukaryotic cells such as yeasts.
  • salts of cationic porphine derivatives directly, it is also possible to use them after immobilization on a solid support, for example by establishing a covalent bond via groups reagents on the solid support, or through a spacer arm, according to the methods known from the state of the art.
  • this type of attachment can in particular be envisaged when at least one and at most three of the radicals Rj to R 4 represents a p-anilino radical and when the solid support carries carboxylic acid functions.
  • the porphine derivative of which at least one and at most three of the radicals Rj to R represents a radical of formula (iii) is then attached to the support via at least one amide function.
  • the salts of cationic derivatives of porphine can also be attached to a container allowing light to pass through, and thus advantageously be used as a preservative for various compositions contained in said container, the composition after sampling being both free from any contamination.
  • the salts of cationic porphine derivatives as defined above are used for the preparation of a therapeutic composition intended for treating infections comprising or liable to include bacteria of gram-negative type .
  • infections comprising bacteria of the gram-negative type
  • infection likely to include gram-negative bacteria is meant any infection in which the presence of gram-negative bacteria can be reasonably suspected.
  • the therapeutic composition thus obtained has a wide spectrum of action.
  • This composition can be used in a particularly advantageous way for treating infections whose infectious agents have become resistant to conventional treatments and especially antibiotics.
  • This therapeutic composition can be administered internally, hearing or parenterally, or externally. However, it is preferably administered externally. According to the latter, the salts of cationic porphine derivatives as defined above are generally applied in an amount between about 1 ⁇ g / cm 2 to 300 ⁇ g / cm 2 of tissue to be treated and preferably between 10 and 40 ⁇ g / cm 2 .
  • the therapeutic compositions contain in a pharmaceutically acceptable vehicle the salts of cationic porphine derivatives according to the invention in an amount sufficient for the desired application.
  • compositions for topical application solvents which have the particularity of penetrating only into the epidermis.
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • hydroalcoholic solutions composed of a mixture of ethanol and water in a volume to volume ratio of between 9: 1 and 6: 4 and the solutions of propylene carbonates stabilized by hydroxypropylcellulose resins.
  • compositions for topical application marketed under the name of "azone” ® by the company O.R.D. Inc.
  • compositions for topical application may in particular be in the form of aqueous dispersions of liposomes containing, within their lipid layer, the salts of cationic derivatives of porphine as defined above, or else may be in the form of solutions of salts of cationic derivatives of porphines.
  • the site of action of the therapeutic composition comprising the salts of cationic porphine derivatives as defined above, is essentially located at the surface part of the individual treat.
  • the salts of cationic porphine derivatives according to the invention sensitize their target in particular to radiation of wavelength of the order of 650 nm, the latter having a relatively high coefficient of penetration into mammalian tissues. As the residual energy, two centimeters from the surface of the skin, is sufficient to obtain the desired effect, it is therefore possible to treat sites located at this depth. It is then sufficient to obtain the desired effect to illuminate the area to be treated.
  • optical fibers This can be used in particular for the treatment of vaginal mucosa as well as pulmonary mucosa.
  • composition is applied to the tissue to be treated and then irradiated six hours after the area to be treated with light of wavelength between 550 and 650 nm at a rate of approximately 180 m watts / cm 2 for a total dose of the order of 100 joules / cm 2 .
  • the irradiation with wavelengths between 550 and 650 nm gives the treatment with the therapeutic compositions as defined above a particularly satisfactory safety. In fact, these wavelengths are not absorbed by the cells of the epidermis and therefore do not exhibit any toxicity with respect thereto.
  • the present invention also relates to a process for reducing contamination, in particular bacterial contamination, of a substrate comprising the steps consisting in:
  • the distance between a contaminant which it is desired to photosensitize and a salt of cationic derivative of porphine is generally less than or equal to 2 mm and preferably less than 1 mm.
  • effective amount an amount capable of reducing the contamination rate of the treated substrate below a predetermined threshold. This amount can be determined in each case by routine experiments. This quantity obviously depends on the volume of substrate to be treated when the latter is liquid or gaseous, or on the surface of the substrate to be treated when the latter is solid. For example, for liquid or gaseous substrates, an amount generally greater than 1 ⁇ g / ml and in particular greater than 10 ⁇ g / ml is used.
  • an amount greater than 10 ⁇ g / cm 2 and in particular greater than 20 ⁇ g / cm 2 is generally used.
  • the substrate to be treated is brought into contact with the photosensitizing agent, for a sufficient time which can be determined in each case by routine experiments.
  • the time during which the substrate is placed in the presence of at least one salt of cationic derivative of porphine in step (i) is generally between 2 minutes and
  • step (ii) is generally greater than or equal to approximately 15 minutes and preferably greater than or equal to approximately 30 minutes.
  • any light source emitting at least one wavelength between 340 and 650 nm can be used.
  • the light used can be complex and include different radiations of wavelengths included in the range defined above but can also include radiations of wavelength less than 340 nm or more than 650 nm, these n '' being obviously little or not absorbed by the salts of cationic derivatives of porphine.
  • White light is used in particular, and in particular natural light.
  • the salts of cationic porphine derivatives used in the first step are in immobilized form on a solid support. We can then easily separate the decontaminated substrate from the solid support and reuse the latter in a new decontamination cycle.
  • the substrates which can be treated by the process as defined above can be any liquid, gaseous or solid product (or mixture of products) capable of being contaminated, in particular by bacteria of the gram-negative type.
  • the first step of the decontamination process for this type of substrate can be carried out by immersion in a suspension of salts of cationic porphine derivatives as defined above or by contact with a solid support on which are immobilized salts of cationic porphine derivatives such as as defined above.
  • the first step of the decontamination process for this type of substrate can be carried out by adding the salts of cationic porphine derivatives as defined above or by immersion of a solid support on which are immobilized salts of cationic porphine derivatives as defined previously.
  • the implementation of the method as described above is generally carried out in a closed circuit, this circuit comprising a pump, mechanical filters such as sieves or sand making it possible to remove bulky materials in suspension, resins on which the salts of cationic porphine derivatives as defined above are fixed and lamps.
  • the first step of the decontamination process in the case of a gaseous type substrate can be carried out in particular by bringing this substrate into contact with immobilized salts of cationic porphine derivatives as defined above.
  • the gaseous substrate is placed in the presence of salts of cationic derivatives of porphine in a closed container.
  • the gas to be treated is circulated so that it comes into contact with a solid support on which the salts of cationic porphine derivatives are immobilized.
  • T 3 MPyPhP 5,15,20-tri (4-N-methyl pyridinium) - 10- (phenyl) porphine tritosylate
  • T 4 MAP 5,10,15,20-tetra (4-N-trimethyl anilinium) porphine tetraiodide
  • Hp hematoporphyrin
  • TPPS 4 5,10,15,20-tetra (4-sulfonatophenyl) porphine
  • a first measurement of the percentage of surviving cells is then carried out on the suspension by removing 200 ⁇ l of the suspension, optionally diluting then spreading 50 ⁇ l of the suspension or one of its dilutions, on a suitable sterile nutritive medium of the type BHI (marketed by the company Difco) + 1.5% agar, incubation at 37 ° C for 24 hours then counting of the colonies formed.
  • a suitable sterile nutritive medium of the type BHI (marketed by the company Difco) + 1.5% agar
  • suspensions of Eseriolicida and V. anguillarum are also produced in a 2% NaCl saline buffer which is incubated at room temperature for 5 minutes.
  • a first measurement is also made of the percentage of surviving cells, the culture medium however being supplemented with NaCl (1.5%) and the incubation taking place at 20 ° C. instead of 37 ° C.
  • each suspension maintained at the temperature used for incubation, is irradiated with visible light (8 mwatts / cm 2 ) using 4 tungsten lamps 250 of Osram type, that is to say ie emitting at wavelengths between 380 nm and 800 nm.
  • the percentage of surviving cells measured according to the same procedure as described above, is determined after 1, 15 and 30 minutes of irradiation.
  • FIG. 3 it can be seen that when an E.coli suspension is incubated in the presence of TPPS 4 , the percentage of surviving cells after irradiation remains constant while the incubation of a suspension of E. seriolicida in the presence of TPPS 4 causes after irradiation a decrease in the percentage of surviving cells.
  • TPPS 4 which is an anionic derivative of porphine therefore only photosensitises gram positive bacteria.
  • Hp which is an anionic derivative of porphine substituted in positions 7 and 12 by a hydroxyethyl radical, in 3, 8, 13 and 17 by a methyl radical and in 2 and 8 by a propionic acid radical therefore photosensitizes only gram-type bacteria positive.
  • V. anguillarum having undergone a pretreatment with CaCl 2 then incubation in the presence of Hp.
  • To do this to 100 ml of CaCl 2 solution, containing 10 7 cells / ml of V. anguillarum, incubated at 20 ° C for 1 hour, 100 ⁇ g of Hp are added. Then the suspension thus obtained is incubated for 5 minutes in the dark, irradiated according to the procedure described in Example 1.
  • E.aerogenes 100 ⁇ g of T 4 MAP are added at room temperature, then the suspension thus obtained is incubated for 5 minutes in the dark. The suspension is then irradiated for 30 minutes, at 37 ° C., with visible light (8 mwatts / cm 2 ) using 4 tungsten lamps, 250 w, of Osram type. The percentage of surviving cells is then measured according to the procedure described in Example 1.
  • the salts of cationic porphine derivatives according to the invention make it possible to obtain, after irradiation, a percentage of surviving cells of less than 10%. It may also be noted that when the gram-negative bacteria have been pretreated with CaCl 2 , incubated in the presence of Hp, then irradiated with visible light, the percentage of surviving cells is still 10%.

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Abstract

Utilisation comme agents photosensibilisants de bactéries de type gram-négatif, de sels de dérivés cationiques de porphine. Ces sels répondent à la formule générale (I), dans laquelle R1, R2, R3, R4, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène, un radical phényle ou un radical ayant l'une des formules (i), (ii), et (iii); X- représentant un anion monovalent, sous réserve que l'un au moins des radicaux R¿1?, R2, R3 ou R4 représente l'un des radicaux de formule (i) à (iii) mais à l'exclusion de R1, R2, R3 et R4 identiques et représentant le radical de formule (i). En traitant un substrat avec un sel de formule (I), puis en le soumettant à une irradiation lumineuse, on peut réduire la contamination de ce substrat.

Description

Utilisation de sels de dérivés cationiαues de porphine comme agents photosensibilisants de bactéries de type gram-négatif.
La présente invention a pour objet l'utilisation de sels de dérivés canoniques de porphine comme agents photosensibilisants de bactéries de type gram-négatif.
La photosensibilisation de différentes cibles a fait l'objet de nombreuses études. Ainsi il a été décrit dans "Photodynamic therapy of tumors and other diseases using porphyrins" Spikes, Lasers in Médical Science, vol. 2.3, 1987, l'utilisation d'hémato- porphyrine (Hp), c'est-à-dire d'un dérivé anionique de porphine substitué en positions 7 et 12 par un radical hydroxyéthyle, en 3, 8, 13 et 17 par un radical méthyle et en 2 et 8 par un radical acide propionique pour photosensibiliser des cellules cancéreuses. Il a également été décrit dans cet article, la possibilité de photosensibiliser in vivo des virus et en particulier le virus de l'herpès à l'aide d'un dérivé anionique de porphine, la 5,10,15,20 tétra-(4-sulfonatophényl) porphine (TPPS4). La photosensibilisation de microorganismes procaryotes ou eucaryotes tels que des champignons, des levures et des bactéries a également été envisagée. S 'il est possible de photosensibiliser la plupart de ces microorganismes à l'aide de différents agents photosensibilisants et en particulier de dérivés de porphine, les bactéries de type gram-négatif s'avèrent toutefois totalement résistantes à cette photosensibilisation. Dans la mesure où la résistance de ces bactéries a été attribuée à la structure particulière de leur enveloppe, il a été envisagé dans "Photodynamic inactivation of Gram-negative bacteria : problems and possible solutions" J. Photochem. Photobiol. B. Biol, 14, 1992, de recourir à un traitement préalable d'altération de leur enveloppe à l'aide soit d'acide éthylènediaminetétraacétique (EDTA) ou d'un agent polycationique de désorganisation de la membrane en vue de réussir à photosensibiliser ces bactéries de type gram-négatif. Ces traitements préalables d'altération de l'enveloppe de chaque bactérie de type gram-négatif que l'on souhaite photosensibiliser sont bien entendu difficiles à mettre en oeuvre et ceci particulièrement à grande échelle et donc peu réalisables en pratique.
On a maintenant constaté de façon surprenante et inattendue qu'en utilisant une famille particulière de sels de dérivés cationiques de porphine présentant une ou plusieurs substitutions en position(s) 5, 10, 15 et/ou 20 du noyau porphine, il était possible de photosensibiliser des bactéries de type gram-négatif sans avoir recours à un traitement préalable particulier d'altération de l'enveloppe de ces bactéries.
Par enveloppe, on entend selon l'invention la structure externe bien connue des bactéries de type gram-négatif et qui, de façon schématique, est constituée de la membrane cytoplasmique, d'un périplasme comprenant environ en son milieu une couche de muréine, d'une membrane externe formée d'une bicouche de phospholipides et d'une capsule formée essentiellement de lipopolysaccharides et de lipoprotéines.
Parmi les bactéries de ce type, on peut citer notamment celles appartenant à la famille des Enterobacteriaceae et notamment les bactéries des genres Escherichia telles que E.coli, Enterobacter telles que E.aerogenes et Proteus tel que P. mirabilis, la famille des Pseudomonadaceae et en particulier du genre Pseudomonas telles que Ps.aeruginosa, la famille des Vibrionaceae et en particulier du genre Vibrio telles que V .anguillarum.
La présente invention a donc pour objet l'utilisation, comme agent photosensibilisant de bactéries de type gram-négatif, d'un sel de dérivé cationique de porphine, substitué en position 5, 10, 15, et/ou 20 du noyau porphine, répondant à la formule suivante :
Figure imgf000004_0001
dans laquelle :
Rj, R2, R3, R4, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène, un radical phényle ou un radical ayant l'une des formules suivantes :
Figure imgf000004_0002
X" représentant un anion monovalent, sous réserve que l'un au moins des radicaux Rlt R2, R3 ou R4 représente l'un des radicaux de formule (i) à (iii) ci-dessus mais à l'exclusion de Rlt R2, R3 et R4 étant identiques et représentant le radical de formule (i).
Par agent photosensibilisant de bactéries, on entend un agent ayant la capacité, en association avec une irradiation lumineuse, de provoquer ou favoriser la destruction des bactéries. Les sels de dérivés cationiques de porphine utilisés selon l'invention absorbent des radiations de longueur d'onde comprise entre environ 340 nm et 650 nm et donc en particulier à des radiations correspondant au visible dont l'utilisation est particulièrement avantageuse dans la mesure où celles-ci sont facilement disponibles, pénètrent bien dans l'eau et ne sont pas mutagènes. Parmi les sels de dérivés cationiques de porphine de formule (I), on utilise de préférence ceux pour lesquels, deux au moins des radicaux Rj, R2, R3 ou R représentent un radical ayant une des formules (i) à (iii) telles que définies précédemment.
Selon un mode de réalisation préféré, l'anion monovalent est notamment un anion halogénure tel qu'un anion iodure ou chlorure ou un tosylate. Parmi les sels de dérivés cationiques de porphine répondant à la formule (I) définie ci-dessus, on peut citer en particulier les iodures, chlorures et tosylates de 5,10,15,20-tétra(3-N-méthyl pyridinium) porphine de 5,10-[di(phényl)]- 15,20-[di(4-N-méthyl pyridinium)]porphine, de 5,10,15,20-tétra (4-N-triméthyl anilinium)poιphine et de 5,15,70-tri(4-méthylpyridinium) 10-(phényl)porphine. Les sels de dérivés cationiques de porphine utilisés selon l'invention sont des composés connus.
Parmi ceux-ci, on peut citer notamment, le tétraiodure de 5,10,15,20-tétra(4-N- triméthyl anilinium)porphine commercialisé sous la dénomination de "Iodure T4MAP", par les Sociétés Alpha Product et Mid Center, le tétrachlorure de 5,10,15,20-tétra (3-N-méthyl pyridinium )porphine commercialisé sous la dénomination de "Chlorure
T3MPyP" par la Société Mid Center, le tétrachlorure de 5,10-[di(phényl)]-15,20- [di(4-N-méthyl pyridinium)] porphine commercialisé sous la dénomination de "Chlorure D2PhD2MPyP" par la Société Mid Center et le tritosylate de 5,15,20-tri(4-N-méthyl pyridinium) lθ-(phényl) porphine commercialisé sous la dénomination de "Tosylate T3MPyPhP".
On peut également utiliser les sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment comme agents photosensibilisants de bactéries de type gram-positif, de virus ou de cellules eucaryotes telles que des levures.
S'il est possible selon l'invention d'utiliser directement les sels de dérivés cationiques de porphine, il est également possible de les utiliser après immobilisation sur un support solide, par exemple par établissement d'une liaison covalente par l'intermédiaire de groupes réactifs présents sur le support solide, ou par l'intermédiaire d'un bras espaceur, selon les méthodes connues de l'état de la technique.
Selon l'invention, ce type de fixation peut être notamment envisagé lorsque l'un au moins et trois au plus des radicaux Rj à R4 représente un radical p-anilino et lorsque le support solide est porteur de fonctions acides carboxyliques. Le dérivé de porphine dont l'un au moins et trois au plus des radicaux Rj à R représente un radical de formule (iii) est alors fixé sur le support par l'intermédiaire d'au moins une fonction amide.
D'autres méthodes de fixation de dérivés de porphine sur des supports solides sont possibles par l'intermédiaire de groupes réactifs susceptibles d'être introduits soit sur les noyaux pyrroles soit sur l'un au moins des substituants Rj à R4 et ceci en fonction de la nature des groupes réactifs présents sur le support solide.
Comme supports solides porteurs de fonctions acides carboxyliques, on peut notamment citer les résines vendues sous les dénomination de "Amberlite IRC50"®,
"Ionac CGC-270"®, "Rexyn 102"® et "Permulit H 70"®. Ces supports peuvent se présenter sous différentes formes telles que des plaques, poreuses ou non, des billes de différents diamètres ou sous toutes autres formes p articulaires.
Les sels de dérivés cationiques de porphine peuvent être également fixés à un récipient laissant passer la lumière, et ainsi être avantageusement utilisés en tant qu'agent conservateur de différentes compositions contenues dans ledit récipient, la composition après prélèvement étant à la fois exempte de toute contamination, en particulier par des bactéries de type gram-négatif mais également de sels de dérivés cationiques de porphine. Selon un autre mode de réalisation particulier de l'invention, on utilise les sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment pour la préparation d'une composition thérapeutique destinée à traiter des infections comprenant ou susceptibles de comprendre des bactéries de type gram-négatif.
Parmi les infections comprenant des bactéries de type gram-négatif, on peut citer notamment des affections génitales impliquant notamment E.coli et des affections dermatologiques telles que celles provoquées par Ps.aeruginosa. Par infection susceptible de comprendre des bactéries de type gram-négatif, on entend toute infection dans laquelle la présence de bactéries de type gram-négatif peut être raisonnablement suspectée.
Dans la mesure où les sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment photosensibilisent également des bactéries de type gram-positif, la composition thérapeutique ainsi obtenue présente un large spectre d'action. Cette composition peut être utilisée de façon particulièrement avantageuse pour traiter des infections dont les agents infectieux sont devenus résistants aux traitements classiques et en particulier aux antibiotiques.
Cette composition thérapeutique peut être administrée par voie interne, entende ou parentérale, ou par voie externe. Cependant, elle est de préférence administrée par voie externe. Selon cette dernière, les sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment sont généralement appliqués en une quantité comprise entre environ 1 μg/cm2 à 300 μg/cm2 de tissus à traiter et de préférence comprise entre 10 et 40 μg/cm2.
Les compositions thérapeutiques contiennent dans un véhicule pharmaceutiquement acceptable les sels de dérivés cationiques de porphine selon l'invention en une quantité suffisante pour l'application recherchée.
Parmi ceux-ci, on utilise avantageusement dans les compositions à application topique, des solvants qui ont la particularité de ne pénétrer que dans l'épiderme.
Comme solvants présentant cette caractéristique, on peut notamment citer le diméthyl sulfoxide (DMSO), les solutions hydroalcooliques composées d'un mélange d'éthanol et d'eau dans un rapport volume à volume compris entre 9 : 1 et 6 : 4 et les solutions de propylène carbonatées stabilisées par des résines d'hydroxypropylcellulose.
On peut également utiliser une composition à application topique commercialisée sous la dénomination d'"azone"® par la Société O.R.D. Inc.
Les compositions thérapeutiques à application topique peuvent notamment se présenter sous forme de dispersions aqueuses de liposomes contenant au sein de leur couche lipidique les sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment ou bien encore se présenter sous forme de solutions de sels de dérivés cationiques de porphines.
Dans la mesure où la destruction de l'agent infectieux requiert la présence de lumière, le site d'action de la composition thérapeutique comprenant les sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment, est essentiellement localisé à la partie superficielle de l'individu à traiter. Toutefois, les sels de dérivés cationiques de porphine selon l'invention sensibilisent leur cible notamment à des radiations de longueur d'onde de l'ordre de 650 nm, ces dernières présentant un coefficient de pénétration dans les tissus de mammifère relativement élevés. L'énergie résiduelle, à deux centimètres de la surface de la peau, étant suffisante pour obtenir l'effet recherché, il est donc possible de traiter des sites situés à cette profondeur. Il suffit alors pour l'obtention de l'effet recherché d'éclairer la zone à traiter.
Il est également possible d'éclairer la zone à traiter à l'aide de fibres optiques. Ceci peut être notamment utilisé pour le traitement des muqueuses vaginales ainsi que des muqueuses pulmonaires.
On applique la composition sur le tissu à traiter puis, irradie six heures après la zone à traiter par de la lumière de longueur d'onde comprise entre 550 et 650 nm à raison d'environ 180 m watts/cm2 pour une dose totale de l'ordre de 100 joules/cm2.
L'irradiation par des longueurs d'onde comprises entre 550 et 650 nm confère au traitement à l'aide des compositions thérapeutiques telles que définies précédemment une innocuité particulièrement satisfaisante. En effet, ces longueurs d'onde ne sont pas absorbées par les cellules de l'épiderme et ne présentent donc pas de toxicité vis-à-vis de celles-ci.
La présente invention a également pour objet un procédé de réduction de la contamination, notamment de la contamination bactérienne, d'un substrat comprenant les étapes consistant à :
(i) mettre ledit substrat en présence d'une quantité efficace d'au moins un sel de dérivé cationique de porphine tel que défini précédemment, et
(ii) soumettre ledit substrat à de la lumière de longueur d'onde comprise entre 340 et 650 nm. S'il est souhaitable dans le procédé tel que décrit précédemment que les sels de dérivés cationiques de porphine soient présents lorsque le substrat est soumis à la lumière, il n'est toutefois pas nécessaire que chaque contaminant dont on souhaite la destruction soit en contact direct avec un sel de dérivé cationique de porphine.
La distance entre un contaminant que l'on souhaite photosensibiliser et un sel de dérivé cationique de porphine est généralement inférieure ou égale à 2 mm et de préférence inférieure à 1 mm.
Par quantité efficace, on entend une quantité capable de réduire le taux de contamination du substrat traité en-dessous d'un seuil prédéterminé. Cette quantité peut être déterminée dans chaque cas par des expériences de routine. Cette quantité dépend évidemment du volume de substrat à traiter lorsque celui-ci est liquide ou gazeux, ou de la surface de substrat à traiter lorsque celui-ci est solide. Par exemple, pour des substrats liquides ou gazeux, on utilise une quantité généralement supérieure à 1 μg/ml et en particulier supérieure à 10 μg/ml.
Pour des substrats solides, on utilise généralement une quantité supérieure à 10 μg/cm2 et en particulier supérieure à 20 μg/cm2.
De préférence, pour mettre en oeuvre le procédé de l'invention, on met en contact le substrat à traiter avec l'agent photosensibilisant, pendant un temps suffisant qui peut être déterminé dans chaque cas par des expériences de routine.
Le temps durant lequel le substrat est mis en présence d'au moins un sel de dérivé cationique de porphine dans l'étape (i) est généralement compris entre 2 minutes et
60 minutes et de préférence supérieur ou égal à environ 5 minutes. Cette étape est réalisée de préférence en absence de lumière. Le temps durant lequel le substrat contenant les sels de dérivés cationiques de porphine est exposé à la lumière selon l'étape (ii) est généralement supérieur ou égal à environ 15 minutes et de préférence supérieur ou égal à environ 30 minutes.
Toutefois, celui-ci peut être modulé en fonction de l'intensité de la lumière à laquelle est soumis le substrat.
Comme source lumineuse, on peut utiliser toute source lumineuse émettant à au moins une longueur d'onde comprise entre 340 et 650 nm. Bien entendu, la lumière utilisée peut être complexe et comprendre différentes radiations de longueurs d'onde comprises dans l'intervalle défini précédemment mais peut également comprendre des radiations de longueur d'onde inférieure à 340 nm ou supérieure à 650 nm, celles-ci n'étant évidemment pas ou peu absorbées par les sels de dérivés cationiques de porphine. On utilise notamment une lumière blanche et en particulier de la lumière naturelle.
Selon un mode de réalisation particulier du procédé de réduction de la contamination d'un substrat tel que défini précédemment, les sels de dérivés cationiques de porphine utilisés dans la première étape, c'est-à-dire l'étape (i), sont sous forme immobilisée sur un support solide. On peut ainsi facilement séparer ensuite le substrat décontaminé du support solide et réutiliser ce dernier dans un nouveau cycle de décontamination.
Les substrats pouvant être traités par le procédé tel que défini précédemment, peuvent être tout produit (ou mélange de produits) liquide, gazeux ou solide susceptible d'être contaminé, notamment par des bactéries de type gram-négatif.
Parmi les substrats solides, on peut citer par exemple des récipients et en particulier ceux constitués par un matériau thermosensible. La première étape du procédé de décontamination de ce type de substrat peut être réalisée par immersion dans une suspension de sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment ou par contact avec un support solide sur lequel sont immobilisés des sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment.
Parmi les substrats liquides, on peut citer diverses solutions et dispersions, de viscosité variable, ainsi que de l'eau. La première étape du procédé de décontamination de ce type de substrat peut être réalisée par addition des sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment ou par immersion d'un support solide sur lequel sont immobilisés des sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment.
Par le procédé tel que décrit précédemment, on peut ainsi réduire la contamination de l'eau utilisée en aquaculture, de l'eau de piscine, mais également décontaminer des effluents industriels et même obtenir de l'eau potable.
La mise en oeuvre du procédé tel que décrit précédemment est généralement réalisée en circuit fermé, ce circuit comprenant une pompe, des filtres mécaniques tel que des tamis ou du sable permettant d'éliminer les matières volumineuses en suspension, des résines sur lesquelles sont fixés les sels de dérivés cationiques de porphine tels que définis précédemment et des lampes. La première étape du procédé de décontamination, dans le cas d'un substrat de type gazeux peut être notamment réalisée par la mise en présence de ce substrat avec des sels de dérivés cationiques de porphine immobilisés tels que définis précédemment. Selon un mode de réalisation particulier, le substrat gazeux est mis en présence de sels de dérivés cationiques de porphine dans un récipient clos. Selon un autre mode de réalisation, on fait circuler le gaz à traiter de façon qu'il vienne au contact d'un support solide sur lequel sont immobilisés les sels de dérivés cationiques de porphine.
Les exemples suivants illustrent l'invention.
Dans ceux-ci les abréviations suivantes ont pour signification :
T3MPyPhP = tritosylate de 5,15,20-tri(4-N-méthyl pyridinium)- 10-(phényl)porphine
T4MAP = tétraiodure de 5,10,15,20-tétra(4-N-triméthyl anilinium)porphine
Hp = hématoporphyrine
TPPS4 = 5,10,15,20-tétra(4-sulfonatophényl)porphine
EXEMPLE 1 : Effet de l'irradiation par de la lumière visible après photosensibilisation par TiMPyPhP
A 10 ml d'un tampon phosphate salin (PBS), contenant 107 cellules/ml d'E.coli, on ajoute 100 μg de T3MPyPhP. Le mélange ainsi obtenu est incubé à l'obscurité à température ambiante pendant 5 minutes.
On effectue alors sur la suspension une première mesure du pourcentage de cellules survivantes par prélèvement de 200 μl de la suspension, éventuellement dilution puis étalement de 50 μl de la suspension ou de l'une de ses dilutions, sur un milieu nutritif approprié stérile de type BHI (commercialisé par la Société Difco) + agar 1,5 %, incubation à 37°C pendant 24 heures puis dénombrement des colonies formées.
Selon le même mode opératoire que décrit précédemment, on réalise également des suspensions de Eseriolicida, de V.anguillarum dans un tampon salin à 2 % de NaCl que l'on incube à température ambiante pendant 5 minutes.
Selon le même mode opératoire que décrit précédemment, on effectue également une première mesure du pourcentage de cellules survivantes, le milieu de culture étant toutefois supplémenté en NaCl (1,5 %) et l'incubation ayant lieu à 20°C au lieu de 37°C. D'autre part, chaque suspension, maintenue à la température utilisée pour l'incubation, est irradiée par de la lumière visible (8 mwatts/cm2) à l'aide de 4 lampes au tungstène 250 de type Osram, c'est-à-dire émettant à des longueurs d'onde comprises entre 380 nm et 800 nm. Le pourcentage de cellules survivantes mesuré selon le même mode opératoire que décrit précédemment, est déterminé après 1, 15 et 30 minutes d'irradiation.
Les résultats obtenus sont présentés dans la figure 1.
On constate donc d'après la figure 1 que l'incubation en présence de T3MPyPhP suivie d'une irradiation par de la lumière visible réduit le pourcentage de cellules survivantes que ce soit pour des bactéries de type gram-négatif comme le montrent les courbes obtenues sur des suspensions de V.anguillarum et E.coli, ou pour des bactéries de type gram positif comme le montre la courbe obtenue sur une suspension de E eriolicida.
Des essais parallèles ont été réalisés selon un mode opératoire analogue à celui décrit précédemment mais sans irradiation des suspensions par la lumière visible. Aucun effet cytotoxique n'a pu être détecté tant sur les suspensions de bactéries de type gram positif (Ejeriolicida) que sur les suspensions de bactéries de type gram-négatif {E.coli et V .anguillarum)
La réduction du pourcentage de cellules survivantes observée résulte par conséquent d'une photosensibilisation.
EXEMPLE 2 : Effet de l'irradiation par de la lumière visible après photosensibilisation par TΛMAP
Selon le même mode opératoire que décrit à l'exemple 1, on a mis en évidence la photosensibilisation de bactéries de type gram-négatif (V .anguillarum) et de bactéries de type gram positif (E.seriolicida) par T4MAP.
Les résultats sont présentés dans la figure 2.
On constate selon la figure 2 que l'incubation en présence de T4MAP suivie d'une irradiation par de la lumière visible réduit le pourcentage de cellules survivantes, que les bactéries soient de type gram-négatif ou qu'elles soient de type gram positif.
T MAP photosensibilise donc les bactéries de type gram positif et de type gram-négatif. EXEMPLE 3 : Comparatifs
Selon le même mode opératoire que décrit à l'exemple 1, on a réalisé des expériences de photosensibilisation à l'aide de TPPS4 commercialisé sous cette dénomination par la Société Mid Center (figure 3) et de Hp commercialisé sous la dénomination de "Hematoporphyrine IX dihydrochlorure"® par les Sociétés Mid Center et Alpha Product (figure 4).
Selon la figure 3, on constate que lorsqu'on incube une suspension de E.coli en présence de TPPS4, le pourcentage de cellules survivantes après irradiation reste constant tandis que l'incubation d'une suspension de E.seriolicida en présence de TPPS4 entraîne après irradiation une diminution du pourcentage de cellules survivantes.
TPPS4 qui est un dérivé anionique de porphine ne photosensibilise donc que des bactéries de type gram positif.
De même, selon la figure 4, on constate que l'incubation en présence de Hp suivie d'une irradiation par de la lumière visible entraîne une diminution du pourcentage de cellules survivantes dans une suspension de E.seriolicida (gram positif), tandis que le pourcentage de cellules survivantes mesuré à partir d'une suspension de V .anguillarum (gram-négatif) ne présente aucune diminution.
Hp qui est un dérivé anionique de porphine substitué en positions 7 et 12 par un radical hydroxyéthyle, en 3, 8, 13 et 17 par un radical méthyle et en 2 et 8 par un radical acide propionique ne photosensibilise donc que des bactéries de type gram positif.
Il apparait donc que seuls les sels de dérivés cationiques de porphine substitués en position 5, 10, 15 et/ou 20 selon l'invention sont capables de photosensibiliser non seulement des bactéries de type gram positif, mais également des bactéries de type gram-négatif.
EXEMPLE 4 ; Effet de l'irradiation par de la lumière visible sur différentes souches bactériennes incubées en présence de différents dérivés de porphine
1) Bactéries de type gram positif :
a) E.seriolicida
A 10 ml d'une solution de NaCl 2 % contenant 107 cellules/ml de E.seriolicida, on ajoute, à température ambiante 100 μg de T3MPyPhP. Après une incubation à l'obscurité, à température ambiante, pendant 5 minutes, on irradie à 20°C pendant 30 minutes la suspension par de la lumière visible (8 mwatts/cm2) à l'aide de 4 lampes au tungstène, 250 w de type Osram, c'est-à-dire émettant à des longueurs d'onde comprises entre 380 nm et 800 nm. On mesure alors le pourcentage de cellules survivantes selon le mode opératoire décrit à l'exemple 1. Selon le même mode opératoire que décrit précédemment, on incube des suspensions de Eseriolicida en présence de Hp, T4MAP ou de TPPS . Ces suspensions sont ensuite irradiées.
b) S.epidermidis
A 10 ml d'un tampon phosphate salin contenant 107 cellules/ml de S.epidermidis, on ajoute, à température ambiante, 100 μg de T3MPyPhP. Après incubation à l'obscurité, à température ambiante, pendant 5 minutes, on irradie à 37°C pendant 30 minutes, la suspension par de la lumière visible b(8 mwatts/cm2) à l'aide de 4 lampes au tungstène, 250 w, de type Osram. On effectue alors une mesure du pourcentage de cellules survivantes selon le même mode opératoire que décrit à l'exemple 1.
2) Bactéries de type gram-négatif :
a) V.anguillarum
A 10 ml d'une solution de NaCl 2 % contenant 107 cellules/ml de V '.anguillarum, à température ambiante, on ajoute 100 μg de T3MPyPhP, puis incube la suspension ainsi obtenue pendant 5 minutes à l'obscurité à température ambiante. On irradie alors pendant 30 minutes la suspension, à 20°C, par de la lumière visible
(8 mwatts/cm2) à l'aide de 4 lampes au tungstène, 250 w, de type Osram, c'est-à-dire émettant à des longueurs d'onde comprises entre 380 nm et 800 nm. On mesure alors le pourcentage de cellules survivantes selon le mode opératoire décrit à l'exemple 1.
Selon le même mode opératoire que décrit précédemment, on évalue également la photosensibilisation de suspensions de V .anguillarum en présence soit de T MAP soit de TPPS4. En outre, on étudie également la photosensibilisation d'une suspension de
V .anguillarum ayant subi un prétraitement par du CaCl2 puis incubation en présence de Hp. Pour ce faire, à 10 ml d'une solution CaCl2, contenant 107 cellules/ml de V. anguillarum, incubée à 20°C pendant 1 heure, on ajoute 100 μg de Hp. Puis on incube la suspension ainsi obtenue pendant 5 minutes à l'obscurité, l'irradie selon le mode opératoire décrit à l'exemple 1.
b) E.coli
A 10 ml d'une solution de tampon phosphate salin contenant 107 cellules/ml de E.coli, à température ambiante, on ajoute 100 μg de T3MPyPhP, puis incube la suspension ainsi obtenue pendant 5 minutes à l'obscurité. On irradie alors la suspension, à 37°C pendant 30 minutes, par de la lumière visible (8 mwatts/cm2) à l'aide de 4 lampes au tungstène, 250 w, de type Osram. On mesure alors le pourcentage de cellules survivantes selon le mode opératoire décrit à l'exemple 1. Selon le mode opératoire décrit précédemment, on évalue également la photosensibilisation d'une suspension de E.coli en présence de TPPS4.
c) E.aerogenes
A 10 ml d'une solution de tampon phosphate salin contenant 107 cellules/ml de
E.aerogenes, on ajoute à température ambiante 100 μg de T4MAP, puis incube la suspension ainsi obtenue pendant 5 minutes à l'obscurité. On irradie alors pendant 30 minutes la suspension, à 37°C, par de la lumière visible (8 mwatts/cm2) à l'aide de 4 lampes au tungstène, 250 w, de type Osram. On mesure alors le pourcentage de cellules survivantes selon le mode opératoire décrit à l'exemple 1.
d) P. mirabilis
A 10 ml d'une solution de tampon phosphate salin contenant 107 cellules/ml de P mirabilis, à température ambiante, on ajoute 100 μg de T4MAP, puis incube la suspension ainsi obtenue pendant 5 minutes à l'obscurité. On irradie alors pendant 30 minutes la suspension, à 37°C, par de la lumière visible (8 mwatts/cm2) à l'aide de 4 lampes au tungstène, 250 w, de type Osram. On mesure alors le pourcentage de cellules survivantes selon le mode opératoire décrit à l'exemple 1.
Les résultats sont présentés dans le tableau 1 ci-dessous.
TABLEAU 1
Pourcentage de bactéries survivantes après 30 minutes d'irradiation par de la lumière visible, en présence de divers agents photosensibilisants (10 μg/ml)
Dérivés de porphine * Hp TPPS4 T«MAP TaMPyPhP
10 μg/ml 10 μg/ml 10 μg/ml 10 μg/ml
E.seriolicida 10 "* 10 -3 10 -7 4.10 '5 (10 mn)
Gram + S.agalactiae - - 10 •* -
S.epidermidis - - - -
V. anguillarum ** 10 > 10 1 10 -*
Gram - E.coli - > 10 - 10 -5
E.aerogenes - - 10 -4 -
P.mirabilis - - 1
* * prétraitement par incubation en présence de CaCh
D'après le tableau ci-dessus, on constate donc que quelque soit le dérivé de porphine utilisé, l'incubation d'une suspension de bactérie de type gram positif avec l'un de ces dérivés, suivie d'une irradiation par de la lumière visible entraîne une diminution importante du pourcentage de cellules survivantes.
Par contre, lorsque les souches bactériennes testées sont de type gram-négatif, seules les sels de dérivés cationiques de porphine selon l'invention permettent d'obtenir après irradiation un pourcentage de cellules survivantes inférieur à 10 %. On peut d'ailleurs noter que lorsque les bactéries de type gram-négatif ont été prétraitées par du CaCl2, incubées en présence de Hp, puis irradiées par de la lumière visible, le pourcentage de cellules survivantes est encore de 10 %.
Il apparait donc que seuls les sels de dérivés cationiques de porphine selon l'invention photosensibilisent efficacement les bactéries de type gram-négatif.

Claims

REVENDICATIONS
1. Utilisation comme agent photosensibilisant de bactéries de type gram-négatif, d'un sel de dérivé cationique de porphine répondant à la formule générale suivante :
Figure imgf000016_0001
dans laquelle :
Ri, R2, R3, R4, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène, un radical phényle ou un radical ayant l'une des formules suivantes :
Figure imgf000016_0002
X" représentant un anion monovalent, sous réserve que l'un au moins des radicaux R^ R2, R3 ou R représente l'un des radicaux de formule (i) à (iii) mais à l'exclusion de Rj, R2, R3 et R étant identiques et représentant le radical de formule (i).
2. Utilisation selon la revendication 1, caractérisée par le fait qu'au moins deux des radicaux R^ R2, R3 et R représentent un des radicaux de formule (i) à (iii) telle que définie dans la revendication 1.
3. Utilisation selon la revendication 1 ou 2, caractérisée par le fait que ledit anion monovalent est un anion halogénure, choisi parmi un anion iodure ou chlorure ou un anion tosylate.
4. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que ledit sel de dérivé cationique de porphine de formule (I) est choisi parmi les iodures, chlorures ou tosylates de 5,10, 15,20-tétra (3N-méthyl pyridinium) porphine, de 15,20-[di(phényl)]- 5,10-[di(4N-méthyl pyridinium)] porphine de 5,10,15,20-tétra(4N-triméthyl anilinium)porphine et de 5,15,20-tri(4-méthyl pyridinium) 10-(phényl)porphine.
5. Utilisation selon l'une quelconque des revendication précédentes, caractérisée par le fait que ledit sel de dérivé cationique de porphine est également un agent capable de photosensibiliser des bactéries de type gram-positif, des virus et des levures.
6. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que ledit sel de dérivé cationique de porphine est immobilisé sur un support solide.
7. Utilisation d'un sel de dérivé cationique de porphine tel que défini selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, pour la préparation d'une composition thérapeutique destinée à traiter des infections comprenant ou susceptible de comprendre des bactéries de type gram-négatif.
8. Procédé de réduction de la contamination d'un substrat caractérisé par le fait qu'il comprend les étapes consistant à :
(i) mettre ledit substrat en présence d'une quantité efficace d'au moins un sel de dérivé cationique de porphine tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4« et
(ii) soumettre ledit substrat à de la lumière de longueur d'onde comprise entre 340 nm et 650 nm.
9. Procédé selon la revendication 8, caractérisé par le fait que la quantité de sels de dérivés cationiques de porphine est supérieure à 1 μg/ml de substrat liquide ou gazeux à décontaminer.
10. Procédé selon la revendication 8, caractérisé par le fait que la quantité de sels de dérivés cationiques de porphine est supérieure à 10 μg/cm2 de surface de substrat solide à décontaminer.
11. Procédé selon l'une quelconque des revendications 8 à 10, caractérisé par le fait que dans l'étape (i), le temps durant lequel ledit substrat est mis en présence d'au moins un sel de dérivé cationique de porphine est compris entre 2 minutes et 60 minutes.
12. Procédé selon la revendication 11, caractérisé par le fait que ledit temps durant lequel ledit substrat est mis en présence d'au moins un sel de dérivé cationique de porphine est supérieur ou égal à environ 5 minutes.
13. Procédé selon l'une quelconque des revendications 8 à 12, caractérisé par le fait que dans l'étape (ii), le temps d'exposition dudit substrat à de la lumière est supérieur ou égal à environ 15 minutes.
14. Procédé selon la revendication 13, caractérisé par le fait que ledit temps d'exposition est supérieur ou égal à environ 30 minutes.
15. Procédé selon l'une quelconque des revendications 8 à 14, caractérisé par le fait que la lumière utilisée à l'étape (ii) est de la lumière blanche.
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