WO1993002181A1 - Utilisation de carbonate de calcium poreux comme materiau support de culture de cellules in vitro - Google Patents

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WO1993002181A1
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porous
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Geneviève Guillemin
Pascal Christel
Jean-Louis Patat
Alain Meunier
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Inoteb
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0068—General culture methods using substrates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/10—Mineral substrates
    • C12N2533/18—Calcium salts, e.g. apatite, Mineral components from bones, teeth, shells

Definitions

  • porous calcium carbonate as a support material for cell culture in vitro.
  • the present invention relates to the use of porous calcium carbonate, in particular of porous coral skeleton as a support material for in vitro culture of eukaryotic or prokaryotic cells.
  • eukaryotic cells do not grow on certain materials, and it is not possible to predict whether a given material will be suitable for the in vitro culture of these cells.
  • the in vitro culture of plant cells is likely to allow the production and isolation of natural substances by overcoming the limitations and hazards of growing in the ground.
  • Plant cells are much more sensitive than bacteria to the shearing effects caused by the systems usually used in fermenters. It is therefore
  • any fragment of a plant can be grown in an isolated state and under sterile conditions.
  • Undifferentiated cells are able to synthesize metabolites which normally are found only in certain specific organs of the plant.
  • plant cells maintained in vitro often have strong biotransformation capacities.
  • a derivative of salycilic acid exhibits faster analgesic activity than that of aspirin as well as better gastric tolerance.
  • bone marrow cells which are precursors of cells of the immune system, are very difficult to cultivate in vitro, although such a culture is of great interest in the field of allografts or autografts.
  • coral can constitute a biodegradable bone prosthesis, the rehabitation of which by bone as degradation will be favored by cultured cells thus reintroduced.
  • baculovirus e.g. baculovirus
  • filamentous fungi in particular ascomycetes, in particular yeasts (for example Aspergillus, penicillium, etc.). Mention may more particularly be made of the culture of A. FLAVIUS, for the production of aflatoxins, or the culture of A. NIGER for the production of different organic acids.
  • porous calcium carbonate in particular in the form of aragonite, and in particular the porous coral skeleton, constitutes one. particularly advantageous support material for the in vitro culture of cells, and in particular of the various types of cells mentioned above.
  • the present invention therefore relates to the use of a porous material, consisting essentially of calcium carbonate, as a three-dimensional solid support for in vitro culture of eukaryotic cells.
  • the coral In order for the coral to be able to be used as a true three-dimensional culture support, it should be used in the form of fragments generally having dimensions greater than 0.5 mm and in particular greater than 1 mm.
  • This material may for example be in the form of cylinders, spheres, plates, etc.
  • Such materials can be obtained, for example, as follows: the pieces of raw coral are abundantly rinsed with running water, dried and cut into sections, then put into the desired shape and dimensions, according to known methods. These sections are immersed in a 12 g / l sodium hypochlorite solution for 48 hours, then rinsed under running water for 48 hours, and dried. Finally, sterilization by gamma radiation is carried out.
  • One of the advantages of using the coral skeleton is that, in this skeleton, the pores are communicating, so that all the parts of the skeleton, even in the form of parts of relatively large dimensions, are usable. This communication of the pores further promotes complete invasion of the support material by the cultured cells, and the yield of the culture, relative to the volume of support material used, is therefore optimum. This volumetric yield is obviously high, since coral constitutes a three-dimensional support.
  • a support material a material having pore diameters between 5C and 250 ⁇ ir, with a porosity, that is to say the volume of the pores relative to the total volume of the material, generally between 20 and 80%.
  • culture media and conditions used according to the invention are those which are suitable for the cell.
  • the invention relates to the use of a coral skeleton as a support material in the in vitro culture of all eukaryotic cells, in particular plant or animal cells, including human cells.
  • They may, for example, be fibroblasts, endothelial cells, bone marrow cells, including totipotent stem cells, osteoblasts; or even transformed cells such as hybridomas, etc.
  • a subject of the invention is also a method for cultivating eukaryotic cells in vitro, characterized in that a culture medium comprising a solid three-dimensional support of porous calcium carbonate immersed in a suitable liquid nutritive medium is seeded with said cells .
  • the support material, the culture medium and / or said eukaryotic cells are in particular as defined
  • the culture is carried out at a pH suitable for the multiplication of the cultured cell. This pH is preferably greater than 7, to avoid significant dissolution of the support material. If necessary, the pH is adjusted during cultivation using an appropriate pH modifier.
  • a nutritive liquid containing in particular mineral elements a source of nitrogen and various additives is used, such as, for example, HELLER microelements.
  • sources of carbon, nitrogen, mineral and vitamin elements and specific hormones are used for the cultivation of plant cells to avoid the shearing effects caused by the systems usually used in fermenters.
  • the nutrient medium contains sources of carbon and nitrogen and mineral and vitamin elements.
  • the proportion, by volume, of the solid support relative to the total volume (liquid + solid), is greater than 5%, and in particular greater than 10%; it is most often less than or equal to 50%.
  • trypsinization can be carried out, for example, in a known manner.
  • the method of the invention can be implemented by successively cultivating, on the same support, two different cells of the same animal species. Such a method is interesting in particular for cultivating certain cells such as bone marrow cells (stem cells or osteoblasts) which grow more easily on a base of cells (such as endothelial cells or fibroblasts) than directly on the solid support.
  • a subject of the invention is also the cell culture product consisting of a three-dimensional support of porous calcium carbonate inhabited by eukaryotic cells, this product of culture can in particular be obtained according to the processes which have just been defined.
  • the culture product according to the invention can consist in particular of the solid support coated with a covering of endothelial cells or fibroblasts.
  • the culture product of the invention can also be a support coated with such a covering, itself coated with bone marrow stem cells and / or osteoblasts.
  • a cellular coating (fibroblasts) of coral implants is produced and then these implants are coated with fibroblasts from the patient's bone marrow.
  • Material porous coral (porosity volume: 50%) in the form of pellets diameter: 30 nm, thickness: 1 mm.
  • Culture medium M199 supplemented with 10% fetal calf serum and 1% antibiotics (penicillin-streptomycin).
  • Cell type rat epidermal fibroblasts.
  • the skin is pinched using a curved forceps, then with a scapel the skin between the two jaws of the forceps is cut and the flap is deposited in a saline solution containing high concentration antibiotics (6%). Each piece is then cut into small squares with clearly cut edges of about 2 mm 2 .
  • the biopales are rinsed three times in the culture medium containing a concentration of penicillin streptomycin 6, 4 then 2 times greater than the normal concentration.
  • the biopsies are cut from pieces of 2 mm 2 by "frank"cuts; they are placed in plastic culture dishes.
  • the biopsies are allowed to adhere to the support before adding the culture medium, to which fetal calf serum will have been added at a rate of 10% minimum. Good adhesion is obtained by leaving the bottles standing without medium, for 40 to 60 minutes in the incubator before resting them.
  • the boxes should then be kept stationary, and after two or three days, the fibroblasts begin to proliferate around the explants.
  • the medium must then be changed every two or three days because the fibroblasts are eliminated as soon as proliferation has started and the first subculture can be carried out. If fibroblasts coexist in primary cultures with cells that are more difficult to cultivate (such as myoblasts or endothelial cells), fibroblasts are selected by the poor culture medium (which fibroblasts resist but not the other cell types).
  • fibroblasts When the fibroblasts have reached confluence, that is to say that the inhibition of contact prevents them from proliferating further, we pass, after subculturing, to a three-dimensional culture. In this type of culture, cells proliferate in three dimensions on a three-dimensional support.
  • the bone marrow is recovered by sampling from the rat in vials containing calciparin (3 ml / 500 ml).
  • the cells are well dispersed and then placed on Ficoll at the rate of 12 ml of Ficoll for 20 ml of marrow solution, at 18 ° C.
  • the whole is centrifuged at 1600 rpm for 20 min, in a stable centrifuge without brake. We can thus isolate stem cells.
  • the culture medium containing the coral lined with fibroblasts, is then inoculated with 10 7 stem cells per ml of liquid nutritive medium.
  • EXAMPLE 2 Culture of embryonic fibroblast of human pounon.
  • the support material consists of spheres or
  • the spheres are 3 to 4 mm in diameter, the cylinders have dimensions of 3 mm in diameter and 4 mm in length.
  • the cultured cell is the MRC5 line, which is a human lung embryonic fibroblast line.
  • the culture is carried out in multiwell culture plates.
  • the inoculation is carried out at the rate of 1 ml of medium containing 50,000 cells.
  • the culture medium is Williams medium supplemented with 5% newborn calf serum.
  • the supports are then covered with the culture medium.
  • the plates are placed in an enclosure thermostatically controlled at 37 ° C. in a humid atmosphere (air at 5% CO 2 ). After 24 hours of incubation, the supports are resumed sterile and incubated in other plates containing new medium at 37 ° C., and it is re-cultured in the same
  • the medium is changed every two days, the total duration of the culture being 7 days.
  • the cellular biomass was evaluated by assaying the proteins according to the Lowry method, as well as by DNA staining with methylene blue.
  • EXAMPLE 3 Culture of a hybridoma producing a monoclonal antibody.
  • the hybridoma secretes a monoclonal anti-folate antibody.

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Abstract

Utilisation d'un matériau poreux, constitué essentiellement de carbonate de calcium polycristallin, comme support solide tridimensionnel de culture in vitro de cellules eucaryotes, le matériau étant par exemple constitué de squelette de corail poreux; et produit de culture cellulaire obtenu, constitué par un tel support poreux habité par des cellules eucaryotes ou procaryotes. On peut aussi faire croître successivement des couches de cellules différentes sur le support. Application notamment à la culture de cellules endothéliales, de fibroblastes et de cellules de moelle osseuse.

Description

Utilisation _de__carbonate de calcium poreux comme matériau support de culture de cellules_in vitro.
La présente invention a pour objet l'utilisation de carbonate de calcium poreux, en particulier de squelette de corail poreux comme matériau support de culture in vitro de cellules eucaryotes ou procaryotes.
On sait que la plupart des cellules eucaryotes ne peuvent être cultivées in vitro que sur un support solide. De telles cultures sont généralement effectuées dans des conteneurs ou fioles dans lesquelles la multiplication cellulaire s'arrête lorsqu'une couche monocellulaire tapisse entièrement la partie de la paroi en contact avec le milieu nutritif liquide.
De tels procédés de culture présentent l'inconvénient de nécessiter la manipulation d'un nombre élevé de conteneurs.
Par ailleurs, les cellules eucaryotes ne croissent pas sur certains matériaux, et il n'est pas possible de prédire si un matériau donné conviendra à la culture in vitro de ces cellules.
Il existe actuellement des besoins importants de culture in. vitro de cellules eucaryotes dans divers domaines.
Par exemple, la culture in vitro de cellules végétales est susceptible de permettre la production et l'isolement de substances naturelles en s' affranchissant des limitations et des aléas de la culture en pleine terre.
Les cellules végétales sont nettement plus sensibles que les bactéries aux effets de cisaillement provoqués par les systèmes habituellement employés dans les fermenteurs. Il est donc
intéressant de cultiver ces cellules sur support solide. Sous l'action d'hormones, dont la concentration est définie dans chaque cas, on peut cultiver à l'état isolé et en conditions stériles n'importe quel fragment d'une plante. Les cellules indifférentiées (cals) sont capables de synthétiser des metabolites qui normalement ne se retrouvent que dans certains organes spécifiques de la plante.
A l'heure actuelle, ce sont surtout des principes actifs médicamenteux qui sont produits, de même que diverses essences, arômes, colorants et pesticides dont la complexité moléculaire rend la synthèse chimique trop difficile et/ou trop onéreuse. A titre d'applications des cultures de cellules végétales, on peut citer :
- production d'anthraquinones par GALLIUM APARINE ;
- Production d'un anticancéreux, la tripdiolide, par
TRYTERIZHIUM WILFOKDII ;
- Production d'un antispasmodique (l'atropine) par ATROPE
BELLADONA ;
- production d'alcaloïdes par PAPAYER SOMNIFERUM.
De plus, les cellules végétales maintenues in vitro ont souvent de fortes capacités de biotransformation. Par exemple un dérivé de l'acide salycilique présente une activité analgique plus rapide que celle de l'aspirine ainsi qu'une meilleure tolérance gastrique.
De même, il est souhaitable de pouvoir cultiver in vitro de nombreuses cellules animales, par exemple dans un but médical. On sait que les cellules de moelle osseuse, qui sont des précurseurs des cellules du système immunitaire, sont très difficiles à cultiver in vitro, bien qu'une telle culture présente un grand intérêt dans le domaine des allogreffes ou des autogreffes.
L'intérêt d'une bonne multiplication cellulaire in vitro s'étend aux cellules modifiées par recombinaison génétique. Jusqu'à présent de telles cellules ne peuvent être cultivées, en pratique, que si elles sont imraortaliséeε par hybridation avec des cellules cancéreuses ou par transformation à l'aide d'un virus.
Un autre intérêt de la culture de cellules in vitro serait, chez un patient souffrant d'une perte de substance osseuse, actuelle ou prévisible, le prélèvement de cellules osseuses chez ce patient, la mise en culture in vitro de ces cellules sur un support convenable, et ultérieurement l'introduction dudit support
comprenant les cellules ainsi cultivées afin de combler la perte de substance. On sait en effet que le corail peut constituer une prothèse osseuse biodégradable, dont la réhabitation par l'os à mesure de la dégradation sera favorisée par des cellules cultivées ainsi réintroduites.
Il est également intéressant d'améliorer les procédés de culture de lignées cellulaires telles que les lignées CHO, VERO, ou les hybridones, en vue de la production de protéines, de vaccins, d'hormones, d'anticorps, etc ... Il en va de même pour les cultures de cellules d'insectes en vue de la production de protéines recombinanteε ou de virus
(par exemple baculovirus).
Un autre domaine intéressant est la culture de champignons filamenteux, notamment d'ascomycètes, en particulier de levures (par exemple Aspergilluε, pénicillium, etc ...). On peut citer plus particulièrement la culture d'A. FLAVIUS, pour la production d ' aflatoxines, ou la culture d'A. NIGER pour la production de différents acides organiques.
On a maintenant découvert que le carbonate de calcium poreux, en particulier sous la forme d'aragonite, et notamment le squelette de corail poreux, constitue un. matériau support particulièrement intéressant pour la culture in vitre de cellules, et en particulier des divers types de cellules mentionnés ci-dessus.
Dans la suite de la description on fera référence par commodité au squelette de corail, dont on sait qu'il est constitué de cristaux de carbonate de calcium (aragonite), ou plus simplement au corail, mais il convient de préciser que ces expressions doivent être interprétées ici comme désignant tout matériau calcaire poreux, naturel ou synthétique, notamment sous forme
polycristalline.
La présente invention a donc pour objet l'utilisation d'un matériau poreux, constitué essentiellement de carbonate de calcium, comme support solide tridimensionnel de culture in vitro de cellules eucaryotes.
Pour que le corail puisse être utilisé comme véritable support de culture tridimensionnel, il convient de l'utiliser sous la forme de fragments ayant généralement des dimensions supérieures à 0,5 mm et en particulier supérieures à 1 mm.
Ce matériau peut se présenter par exemple sous la forme de cylindres, de sphères, de plaques, etc...
De tels matériaux peuvent être obtenus par exemple de la façon suivante : les morceaux de corail brut sont abondamment rincés à l'eau courante, séchés et débités en tronçons, puis mis sous la forme et aux dimensions désirées, selon les méthodes connues. Ces tronçons sont plongés dans une solution d'hypochlorite de sodium à 12 g/1 pendant 48 heures, puis rincés à l'eau courante pendant 48 heures, et séchés. Finalement, on effectue une stérilisation par rayonnement gamma.
L'un des intérêts de l'utilisation du squelette de corail est que, dans ce squelette, les pores sont communiquants, de sorte que toutes les parties du squelette, même sous forme de pièces de dimensions relativement importantes, sont utilisables. Cette communication des pores favorise en outre un envahissement complet du matériau support par les cellules cultivées, et le rendement de la culture, rapporté au volume de matériau support utilisé, est donc optimum. Ce rendement volunique est évidemment élevé, puisque le corail constitue un support tridimensionnel.
De préférence, en utilise comme matériau support un matériau ayant des diamètres de pores compris entre 5C et 250 μir , avec une porosité, c'est-à-dire le volυBie des pores par rapport au volume total du matériau, comprise généralement entre 20 et 80 % .
C'est le cas notamment avec le corail des genres Porites, Acropora, Goniopora, Lobophyllia, Symphyllia, et Millipora.
Bien entendu, les milieux et conditions de culture utilisés selon l'invention sont ceux qui conviennent à la cellule
particulière qui est cultivée. Ces milieux et conditions de cultures sont bien connus ou peuvent être déterminés par de simples expériences de routine.
L'invention concerne l'utilisation de squelette de corail comme matériau support dans la culture in vitro de toutes cellules eucaryotes, notamment végétales ou animales, y compris des cellules humaines.
Il peut s'agir par exemple de fibroblastes, de cellules endothéliales, de cellules de moelle osseuse, y compris les cellules souches totipotentes, les ostéoblastes ; ou encore des cellules transformées telles que des hybridomes, etc..
L'invention a également pour objet un procédé pour cultiver des cellules eucaryotes in vitro, caractérisé par le fait que l'on ensemence avec lesdites cellules un milieu de culture comprenant un support solide tridimensionnel en carbonate de calcium poreux immergé dans un milieu nutritif liquide approprié.
Le matériau support, le milieu de culture et/ou lesdites cellules eucaryotes sont en particulier tels que définis
précédemment.
La culture est effectuée à un pH convenant à la multiplication de la cellule cultivée. Ce pH est de préférence supérieur à 7, pour éviter une dissolution notable du matériau support. Si nécessaire, on ajuste le pH en cours de culture à l'aide d'un modificateur de pH approprié.
Pour la culture de cellules végétales, on utilise un liquide nutritif contenant notamment des éléments minéraux, une source d'azote et divers additifs comme par exemple les micro-éléments de HELLER.
De façon préférentielle, on utilise pour la culture de cellules végétales des sources de carbone, d'azote, des éléments minéraux et vitaminiques et des hormones spécifiques pour éviter les effets de cisaillement provoqués par les systèmes habituellement employés dans les fermenteυrs.
Pour la culture de champignons filamenteux (ascomycètes), le milieu nutritif contient des sources de carbone et d'azote et des éléments minéraux et vitaminiques.
Généralement, la proportion, en volume, du support solide par rapport au volume total (liquide + solide), est supérieure à 5 %, et en particulier supérieure à 10 % ; elle est le plus souvent inférieure ou égale à 50 %.
Pour recueillir les cellules après culture, si désiré, on peut effectuer par exemple une trypsinisation, de façon connue. Dans un mode de réalisation particulier, on peut mettre en oeuvre le procédé de l'invention en cultivant successivement, sur un même support, deux cellules différentes d'une même espèce animale. Un tel procédé est intéressant notamment pour cultiver certaines cellules telles que les cellules de moelle osseuse (cellules souches ou ostéoblastes) qui croissent plus facilement sur une assise de cellules (telles que des cellules endothéliales ou des fibroblastes) que directement sur le support solide.
L'invention a également pour objet le produit de culture cellulaire constitué par un support tridimensionnel de carbonate de calcium poreux habité par des cellules eucaryotes, ce produit de culture pouvant notamment être obtenu selon les procédés qui viennent d'être définis.
Le produit de culture selon l'invention peut être constitué notamment par le support solide revêtu d'un tapissage de cellules endothéliales ou de fibroblastes. Le produit de culture de l'invention peut également être un support revêtu d'un tel tapissage lui-même revêtu de cellules souches de moelle osseuse et/ou d'ostéoblastes.
Les exemples suivants illustrent l'invention sans toutefois la limiter.
EXEMPLE 1 : Culture de cellules de moelle osseuse
Il est réalisé un revêtement cellulaire (fibroblastes) d'implants coralliens puis on imprègne ces implants revêtus de fibroblastes de moelle osseuse du patient.
1. REVETEMENT FIBROBLATIQUE
1.1. Matériel
Matériau : corail porites (volume de porosité : 50 %) sous forme de pastilles diamètre : 30 nm, épaisseur : 1 mm.
Milieu de culture : M199 supplémenté par 10 % de sérum de veau foetal et 1 % d'antibiotiques (pénicilline-streptomycine).
Type cellulaire : fibroblastes epidermiques de rat.
1.2. Méthodes
Obtention d'une culture de fibroblastes epidermiques de rat par la méthode des explants ;
Après avoir été rasée, la peau est pincée à l'aide d'une pince courbe, puis avec un scapel on découpe la peau comprise entre les deux mors de la pince et on dépose le lambeau dans une solution saline contenant des antibiotiques à forte concentration (6 %). Chaque morceau est ensuite redécoupé en petits carrés aux bords nettement tranchés de 2 mm2 environ. On rince les biopales à trois reprises dans le milieu de culture contenant une concentration de pénicilline streptomycine 6, 4 puis 2 fois supérieure à la concentration normale.
On découpe les biopsies de morceaux de 2 mm2 par coupures "franches" ; on les dépose dans des boîtes de culture plastique.
On laisse les biopsies adhérer au support avant d'ajouter le milieu de culture, auquel on aura ajouté du sérum de veau foetal à raison de 10 % minimum. Une bonne adhésion est obtenue en laissant les flacons debout sans milieu, pendant 40 à 60 minutes dans l'incubateur avant de les reposer.
Il convient ensuite de conserver les boîtes immobiles, et au bout de deux oυ trois jours, les fibroblastes commencent à proliférer autour des expiants. Le milieu doit alors être changé tous les deux ou trois jours car les fibroblastes sont éliminés dès que la prolifération a démarré et la première sous-culture peut être réalisée. Si les fibroblastes coexistent dans des cultures primaires avec des cellules plus délicates à cultiver (comme des myoblastes ou des cellules endothéliales), on sélectionne les fibroblastes par la pauvreté du milieu de culture (à laquelle des fibroblastes résistent mais pas les autres types cellulaires).
Lorsque les fibroblastes ont atteint la confluence, c'est-à-dire que l'inhibition de contact les empêches de proliférer davantage, on passe, après repiquage, à une culture tridimensionnelle. Dans ce type de culture, les cellules prolifèrent dans les trois dimensions sur un support tridimensionnel.
Pour réaliser cette culture, ces solutions cellulaires sont déposée sur des pastilles de corail Porites de 1 mm de diamètre et 1 mm d'épaisseur, le tout dans des boîtes 6 puits ou dans des boîtes de pétri de. 35 mm de diamètre. Des quantifications de croissance cellulaire sont faites à intervalles réguliers de façon à évaluer l'augmentation du nombre de cellules contenues dans les pastilles coraliennes.
Une fois que le corail est tapissé de fibroblastes, on passe à la deuxième étape : l'imprégnation par des cellules contenues dans de la moelle osseuse fraîche, soit totale, soit épurée des cellules non-nucléées (hématies et adipocytes). 2. CULTURE DE CELLULES DE MOELLE OSSEUSE
La moelle osseuse est récupérée par prélèvement chez le rat dans des flacons contenant de la calciparine (3ml/500 ml). Les cellules sont bien dispersées puis mises sur Ficoll à raison de 12 ml de Ficoll pour 20 ml de solution de moelle, à 18°C. L'ensemble est centrifugé à 1 600 tours/min pendant 20 min, dans une centrifugeuse stable ne comportant pas de frein. On peut ainsi isoler les cellules souches.
On ensemence alors le milieu de culture, contenant le corail tapissé de fibroblastes, avec 107 cellules souches par ml de milieu nutritif liquide.
On observe un développement tridimensionnel important des cellules de moelle osseuse.
On a obtenu des résultats analogues en cultivant d'abord des fibroblastes de derme humain, puis des cellules de moelle osseuse humaire.
EXEMPLE 2 : Culture de fibroblaste embryonnaire de pounon humain.
Le matériau support est constitué de sphères ou de
cylindres de squelette de corail du genre Porites. Les sphères ont 3 à 4 mm de diamètre, les cylindres ont des dimensions de 3 mm de diamètre et 4 mm de longueur.
On a utilisé soit du squelette de corail ayant 20 % de porosité, soit du squelette ayant 50 % de porosité. La cellule cultivée est la lignée MRC5, qui est une lignée de fibroblaste embryonnaire de poumon humain.
La culture est mise en oeuvre dans des plaques de culture multipuits. L'inoculation est effectuée à raison de 1 ml de milieu contenant 50000 cellules.
Le milieu de culture est le milieu Williams supplémenté avec 5 % de sérum de veau nouveau-né. Les supports sont ensuite recouverts avec le milieu de culture. Les plaques sont mises dans une enceinte thermostatée à 37°C sous atmosphère humide (air à 5 % de CO2). Après 24 heures d'incubation, les supports sont repris stérilement et mis en incubation dans d'autres plaques contenant du milieu neuf à 37°C, et on remet en culture dans les mêmes
conditions que précédemment. Ensuite le milieu est changé tous les deux jours, la durée totale de la culture étant de 7 jours.
Au bout de 7 jours de culture, on a évalué la biomasse cellulaire par dosage des protéine selon la méthode de Lowry, ainsi que par la coloration de l'ADN par le bleu de méthylène.
On a observé une bonne croissance cellulaire aussi bien avec les supports sous forme de sphères que sous forme de cylindres.
La croissance est plus forte sur les matériaux à 20 % de porosité que sur les matériaux à 50 % de porosité.
EXEMPLE 3 : Culture d'un hybridome producteur d'un anticorps monoclonal.
L'hybridome sécrète un anticorps monoclonal anti-folate.
Il est cultivé en milieu RPMI, supplémenté avec 5 % de sérum de veau nouveau-né.
Les autres conditions de culture sont les mêmes que celles décrites à l'exemple 2.
La croissance cellulaire a été mise en évidence par la détermination, selon la technique ELISA., de la quantité d'anticorps monoclonaux produits.

Claims

REVENDICATIONS
1. Utilisation d'un matériau poreux, constitué essentiellement de carbonate de calcium polycristallin, comme support solide tridimensionnel de culture in vitro de cellules.
2. Utilisation selon la revendication 1, caractérisée par le fait que ledit matériau est constitué d' aragonite.
3. Utilisation selon la revendication 1, caractérisée par le fait que ledit support est constitué par des fragments de squelette de corail poreux.
4. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que ledit support est constitué de fragments ayant la forme et les dimensions désirées, ces dimensions étant supérieures à 0,5 mm et en particulier supérieures à 1 mm.
5. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que ledit support se présente sous la forme de cylindres, de sphères ou de plaques.
6. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que les diamètres des pores sont compris entre 50 et 250 μm.
7. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que le volume des pores représente de 20 à 80 % du volume total du support.
8. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 3 à 7, caractérisée par le fait que ledit corail est choisi parmi les genres Porites, Acropora, Gonxopora, Lobophyllia, Symphyllia et Millipora.
9. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que ledit support solide est immergé dans un milieu nutritif liquide.
10. Utilisation selon la revendication précédente, caractérisée par le fait que la proportion en volume du support solide par rapport au volume total (liquide + solide) est supérieure à 5 % et en particulier supérieure à 10 %.
11. Procédé pour cultiver des cellules eucaryotes in vitro, caractérisé par le fait que l'on ensemence avec lesdites cellules un milieu de culture comprenant un support solide tridimensionnel en carbonate de calcium poreux immergé dans un milieu nutritif liquide approprié.
12. Procédé selon la revendication précédente, caractérisé par le fait que ledit support et/ou ledit milieu liquide est tel que défini dans l'une quelconque des revendications 2 à 10.
13. Procédé selon l'une quelconque des revendications 11 et 12, caractérisé par le fait que lesdites cellules sont choisies parmi les cellules végétales, les cellules animales, et les cellules de champignons filamenteux.
14. Procédé selon la revendication précédente, caractérisé par le fait que lesdites cellules sont des cellules humaines, des cellules d'insectes, des cellules végétales indifférenciées, ou des cellules de levures.
15. Procédé selon l'une quelconque des revendications 13 et 14, caractérisé par le fait que lesdites cellules sont choisies parmi les fibroblastes, les cellules endotheliales, les cellules de moelle osseuse, y compris les cellules souches totipotentes, et les ostéoblastes.
16. Procédé selon l'une quelconque des revendications 11 et 12, caractérisé par le fait que lesdites cellules sont des cellules transformées, en particulier des hybridomes.
17. Procédé selon l'une quelconque des revendications 11 à 15, caractérisé par le fait que l'on cultive successivement, sur un même support, deux cellules différentes d'une même espèce animale.
18. Procédé, selon la revendication précédente, caractérisé par le fait que l'on cultive d'abord des fibroblastes, ou des cellules endotheliales, puis que l'on cultive ensuite des cellules de moelle osseuse.
19. Procédé selon la revendication précédente, caractérisé par le fait que lesdites cellules de moelle osseuse sont des cellules souches totipotentes ou des ostéoblastes.
20. Produit de culture cellulaire caractérisé par le fait qu'il est constitué par un support de carbonate de calcium
tridimensionnel poreux habité par des cellules eucaryotes.
21. Produit selon la revendication 20, caractérisé par le fait qu'il peut être obtenu selon le procédé de l'une quelconque des revendications 11 à 19.
22. Produit selon la revendication 20 ou 21, caractérisé par le fait que ledit support est revêtu d'un tapissage de cellules endotheliales ou de fibroblastes.
23. Produit selon la revendication précédente, caractérisé par le fait que ledit tapissage est lui-même revêtu de cellules souches de moelle osseuse et/ou d'ostéoblastes.
24 Produit selon la revendication 22 ou 23, caractérisé par le fait que lesdites cellules sont des cellules humaines.
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