TWI796563B - 製造抗體之方法 - Google Patents

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Abstract

尤其提供改良抗體(諸如雙特異性抗體)之重鏈及輕鏈之配對的方法。亦提供使用此類方法產生之抗體(例如雙特異性抗體)、文庫及篩選此類文庫之方法。

Description

製造抗體之方法
開發雙特異性抗體作為用於人類疾病之治療劑具有巨大臨床潛力。然而，呈IgG型式之雙特異性抗體的生產已具挑戰性，此係因為抗體重鏈已演變成以相對雜亂之方式結合抗體輕鏈。作為此雜亂配對之結果，單一細胞中兩個抗體重鏈及兩個抗體輕鏈之相伴表現天然地導致例如重鏈同源二聚及重鏈/輕鏈配對之亂序。
一種避開重鏈同源二聚問題之方法，稱為『杵臼』，旨在藉由將突變引入CH 3結構域中以修飾接觸界面來促成兩個不同抗體重鏈之配對。在一個重鏈上，原始胺基酸由具有短側鏈之胺基酸置換以創造『臼』。反之，將具有大側鏈之胺基酸引入其他CH 3結構域中以創造『杵』。藉由共表現此兩個重鏈(及兩個一致輕鏈，其必須適於兩個重鏈)，觀測到異源二聚體形成(『杵-臼』)對比同源二聚體形成(『臼-臼』或『杵-杵』)之高產率(Ridgway, J. B., Protein Eng. 9 (1996) 617-621；Merchant等人 「An efficient route to human bispecific IgG.」 Nat Biotechnol. 1998; 16:677-81；Jackman等人 「Development of a two-part strategy to identify a therapeutic human bispecific antibody that inhibits IgE receptor signaling.」 J Biol Chem. 2010;285:20850-9；及WO 96/027011)。
使重鏈/輕鏈之亂序降至最低已歸因於抗體Fab內複雜之多結構域異源二聚相互作用而更加困難。旨在解決重鏈/輕鏈亂序之雙特異性抗體型式包括：DVD-Ig (雙重可變結構域Ig) (Nature Biotechnology 25, 1290-1297 (2007))；互換Ig (CROSSMAB™) (Schaefer W等人 (2011) PNAS 108(27): 11187-11192)；二合一Ig (Science 2009, 323, 1610)；BiTE®抗體(PNAS 92(15):7021-7025; 1995)；及Lewis 等人 (2014) 「Generation of bispecific IgG antibodies by structure-based design of an orthogonal Fab interface.」Nat Biotechnol 32, 191-8；Liu等人 (2015) 「A Novel Antibody Engineering Strategy for Making Monovalent Bispecific Heterodimeric IgG Antibodies by Electrostatic Steering Mechanism.」J Biol Chem . 2015年1月12日線上公開, doi:10.1074/jbc.M114.620260；Mazor等人 2015. 「Improving target cell specificity using a novel monovalent bispecific IgG design.」Mabs. 2015年1月26日線上公開, doi: 10.1080/19420862.2015.1007816；WO 2014/081955、WO 2014/082179及WO 2014/150973中所述之策略。
儘管如此，在此項技術中仍需要減少錯配之重鏈/輕鏈副產物且增加正確裝配之雙特異性抗體之產率的方法。
提供一種改良抗體之重鏈及輕鏈之優先配對的方法，該方法包括以下步驟：將輕鏈可變結構域(VL )之位置94或VL 之位置96處之至少一個胺基酸自不帶電殘基取代為選自由天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)組成之群的帶電殘基，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，該方法包括以下步驟：將位置94及位置96處之胺基酸中之每一者自不帶電殘基取代為帶電殘基。在一些實施例中，位置94處之胺基酸經D取代。在一些實施例中，位置96處之胺基酸經R取代。在一些實施例中，位置94處之胺基酸經D取代且位置96處之胺基酸經R取代。在一些實施例中，將重鏈可變結構域(VH )之位置95處之胺基酸自不帶電殘基取代為選自由天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)組成之群的帶電殘基，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，VL 之位置94處之胺基酸經D取代，VL 之位置96處之胺基酸經R取代，且VH 之位置95處之胺基酸經D取代。
在一些實施例中，本文所提供之方法進一步包括使抗體(例如已經修飾以改良重鏈及輕鏈之優先配對之抗體)經受至少一個親和力成熟步驟，其中VL 之位置94處之經取代胺基酸未隨機化。另外或替代地，在一些實施例中，VL 之位置96處之經取代胺基酸未隨機化。另外或替代地，在一些實施例中，VH 之位置95處之經取代胺基酸未隨機化。
在一些實施例中，抗體為選自由以下組成之群的抗體片段：Fab、Fab'、F(ab')2 、單臂抗體及scFv或Fv。在一些實施例中，抗體為人類抗體、人源化抗體或嵌合抗體。在一些實施例中，抗體包含人類IgG Fc區。在一些實施例中，人類IgG Fc區為人類IgG1、人類IgG2、人類IgG3或人類IgG4 Fc區。在一些實施例中，抗體為單特異性抗體。在一些實施例中，抗體為多特異性抗體。
在一些實施例中，多特異性抗體為雙特異性抗體。在一些實施例中，雙特異性抗體包含第一CH 2結構域(CH 21 )、第一CH 3結構域(CH 31 )、第二CH 2結構域(CH 22 )及第二CH 3結構域；其中CH 32 經改變以使得在CH 31 /CH 32 界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較大側鏈體積之一或多個胺基酸殘基置換，從而在CH 32 之表面上產生與CH 31 相互作用之隆凸；且其中CH 31 經改變以使得在CH 31 /CH 32 界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較小側鏈體積之胺基酸殘基置換，從而在CH 31 之表面上產生與CH 32 相互作用之凹穴。在一些實施例中，雙特異性抗體包含第一CH 2結構域(CH 21 )、第一CH 3結構域(CH 31 )、第二CH 2結構域(CH 22 )及第二CH 3結構域；其中CH 31 經改變以使得在CH 31 /CH 32 界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較大側鏈體積之一或多個胺基酸殘基置換，從而在CH 31 之表面上產生與CH 32 相互作用之隆凸；且其中CH 32 經改變以使得在CH 31 /CH 32 界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較小側鏈體積之胺基酸殘基置換，從而在CH 32 之表面上產生與CH 31 相互作用之凹穴。在一些實施例中，隆凸為杵突變。在一些實施例中，杵突變包含T366W，其中胺基酸編號係根據EU索引。在一些實施例中，凹穴為臼突變。在一些實施例中，臼突變包含T366S、L368A及Y407V中之至少一者、至少兩者或全部三者，其中胺基酸編號係根據EU索引。
亦提供藉由本文所述之方法中之任一者(或組合)生產之抗體。
相關申請案之交叉引用
本申請案主張2019年4月9日申請之美國臨時申請案第62/845,59號之優先權益，該臨時申請案之內容以全文引用之方式併入本文中。 在ASCII文本檔案上提交序列表
在ASCII文本檔案上之以下提交之內容以全文引用之方式併入本文中：電腦可讀形式(CRF)之序列表(檔案名：146392047743SEQLIST.TXT，記錄日期：2020年5月4日，大小：9 KB)。
雙特異性抗體為具前景之治療劑類別，此係因為其雙重特異性允許例如將有效負荷遞送至靶向位點、同時阻斷兩個信號傳導路徑、將免疫細胞遞送至腫瘤細胞，等等。然而，雙特異性抗體(例如雙特異性IgG或「BsIgG」)之生產仍有技術挑戰，此係因為單一細胞中兩個抗體重鏈及兩個抗體輕鏈之共表現天然地導致例如重鏈同源二聚及重鏈/輕鏈配對之亂序。本文所述之方法係基於申請者之以下發現：優先抗體重鏈/抗體輕鏈可受CDR-H3及CDR-L3中之特定胺基酸位置處之殘基強烈影響。此外，申請者發現，在許多情況下此類殘基轉移至其他無關抗體中之相應胺基酸位置增加正確裝配之BsIgG之產率。
除非本文另有定義，否則本文所用之所有技術及科學術語具有與一般熟習本發明所屬技術者通常所理解之含義相同的含義。Singleton等人, DICTIONARY OF MICROBIOLOGY AND MOLECULAR BIOLOGY, 第2版, John Wiley and Sons, New York (1994)及Hale與Margham, THE HARPER COLLINS DICTIONARY OF BIOLOGY, Harper Perennial, NY (1991)向熟習此項技術者提供本發明中所用之許多術語的綜合詞典。儘管類似或等效於本文所述之彼等之任何方法及材料可用於本發明之實踐或測試，但描述較佳方法及材料。數值範圍包括界定範圍之數值。除非另有指示，否則分別地，核酸自左至右以5'至3'取向書寫；胺基酸序列自左至右以胺基至羧基取向書寫。對於此項技術之定義及術語，實踐者尤其指向Sambrook等人, 1989及Ausubel FM等人, 1993。應瞭解，本發明不限於所述之特定方法、方案及試劑，因為此等可變化。
數值範圍包括界定範圍之數值。
除非另有指示，否則分別地，核酸自左至右以5'至3'取向書寫；胺基酸序列自左至右以胺基至羧基取向書寫。
本文所提供之標題不限制可藉由參考整體說明書而具有之各種態樣或實施例。因此，下文緊接所定義之術語藉由參考整體說明書更全面地定義。 定義
本文中之術語「抗體」以最廣泛之意義使用且係指包含兩個重鏈及兩個輕鏈之任何免疫球蛋白(Ig)分子及其任何片段、突變體、變異體或衍生，只要其展現所需生物活性(例如抗原決定基結合活性)即可。抗體之實例包括如本文所述之單株抗體、多株抗體、多特異性抗體(例如雙特異性抗體)及抗體片段。抗體可為小鼠、嵌合、人類、人源化及/或親和力成熟的。
作為參考框架，如本文所用之免疫球蛋白將指免疫球蛋白G (IgG)之結構。然而，熟習此項技術者將瞭解/認識到任何免疫球蛋白類別之抗體可在本文所述之本發明方法中利用。為清楚起見，IgG分子含有一對重鏈(HC)及一對輕鏈(LC)。各LC具有一個可變結構域(VL )及一個恆定結構域(CL )，而各HC具有一個可變(VH )及三個恆定結構域(CH 1、CH 2及CH 3)。CH 1及CH 2結構域係由鉸鏈區連接。此結構在此項技術中為熟知的。
簡言之，基本4鏈抗體單元為由兩個輕(L)鏈及兩個重(H)鏈組成之異源四聚醣蛋白(IgM抗體由5個基本異源四聚單元連同稱為J鏈之額外多肽組成，且因此含有10個抗原結合位點，而經分泌之IgA抗體可聚合形成包含2-5個基本4鏈單元連同J鏈之多價裝配體)。在IgG之情況下，4鏈單元一般為約150,000道爾頓。各L鏈係由一個共價二硫鍵連接至H鏈，而兩個H鏈係由一或多個二硫鍵連接至彼此，此視H鏈同型而定。各H及L鏈亦具有規則間隔之鏈內二硫橋。各H鏈在N端具有可變結構域(VH )，繼之以α及γ鏈中之每一者之三個恆定結構域(CH )及µ及ε同型之四個CH 結構域。各L鏈在N端具有可變結構域(VL )，繼之以在其另一端之恆定結構域(CL )。VL 與VH 對準且CL 與重鏈(CH 1)之第一恆定結構域對準。據信特定胺基酸殘基在輕鏈與重鏈可變結構域之間形成界面。VH 及VL 之配對一起形成單一抗原結合位點。對於不同類別之抗體之結構及特性，參見例如Basic and Clinical Immunology, 第8版, Daniel P. Stites, Abba I. Terr及Tristram G. Parslow (編), Appleton及Lange, Norwalk, CT, 1994, 第71頁及第6章。
來自任何脊椎動物物種之L鏈基於其恆定結構域之胺基酸序列可指派為兩種明顯不同類型之一，稱為κ及λ。視免疫球蛋白重鏈(Ch)之恆定結構域之胺基酸序列而定，免疫球蛋白可指派為不同類別或同型。存在五種類別之免疫球蛋白：IgA、IgD、IgE、IgG及IgM，分別具有指定為α、δ、γ、ε及µ之重鏈。γ及α類別以CH 序列及功能中之相對微小差異為基礎進一步分成子類，例如，人類表現以下子類：IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA1及IgA2。
術語「CL 結構域」包含免疫球蛋白輕鏈之恆定區結構域，其例如自約Kabat位置107A延伸至216 (EU位置108-214 (κ))。κ C結構域之Eu/Kabat轉換表自www(dot)imgt(dot)org/IMGTScientificChart/Numbering/Hu_IGKCnber.html線上可用，且λ C結構域之Eu/Kabat轉換表自www(dot)imgt(dot)org/IMGTScientificChart/Numbering/Hu_IGLCnber.html線上可用。CL 結構域與VL 結構域相鄰且包括免疫球蛋白輕鏈之羧基端。
如本文所用之術語人類IgG之「CH 1結構域」包含免疫球蛋白重鏈之第一(最末胺基端)恆定區結構域，其例如自Kabat編號系統中之約位置114延伸至223 (EU位置118-215)。CH 1結構域與VH 結構域相鄰且在免疫球蛋白重鏈分子之鉸鏈區之胺基端，不形成免疫球蛋白重鏈之Fc區之一部分，且能夠與免疫球蛋白輕鏈恆定結構域(亦即，「CL」)二聚。IgG1重鏈之EU/Kabat轉換表自www(dot)imgt(dot)org/IMGTScientificChart/Numbering/Hu_IGHGnber.html線上可用。
術語人類IgG Fc區之「CH 2結構域」通常包含根據EU編號系統之IgG之殘基約231至約340。CH 2結構域之獨特之處在於其不與另一個結構域緊密配對。而實際上，兩個N連接分支碳水化合物鏈間插於完整原生IgG分子之兩個CH 2結構域之間。已推測碳水化合物可提供結構域-結構域配對之替代物且幫助穩定CH 2結構域。Burton, Mol. lmmunol.22:161-206 (1985)。
術語「CH 3結構域」包含在Fc區中之CH 2結構域之C端之殘基(亦即，自根據EU編號系統之IgG之約胺基酸殘基341至約胺基酸殘基447)。
如本文所用之術語「Fc區」一般係指包含免疫球蛋白重鏈之C端多肽序列之二聚體複合物，其中C端多肽序列為藉由完整抗體之木瓜蛋白酶消化可獲得之多肽序列。Fc區可包含原生或變異體Fc序列。儘管免疫球蛋白重鏈之Fc序列之邊界可能變化，但人類IgG重鏈Fc序列包含約位置Cys226，或自約位置Pro230至Fc序列之羧基端。除非本文另有規定，否則Fc區或恆定區中胺基酸殘基之編號係根據EU編號系統，亦稱為EU索引，如Kabat等人,Sequences of Proteins of Immunological Interest , 第5版 Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD, 1991中所述。免疫球蛋白之Fc序列一般包含兩個恆定結構域，CH 2結構域及CH 3結構域，且視情況包含CH 4結構域。本文中之「Fc多肽」意指構成Fc區之多肽之一，例如單體Fc。Fc多肽可獲自任何適合之免疫球蛋白，諸如人類IgG1、IgG2、IgG3或IgG4亞型、IgA、IgE、IgD或IgM。Fc多肽可獲自小鼠，例如小鼠IgG2a。Fc區包含由二硫鍵保持在一起之兩個H鏈之羧基端部分。抗體之效應功能係由Fc區中之序列決定；此區亦為由某些類型之細胞上所發現之Fc受體(FcR)識別之部分。在一些實施例中，Fc多肽包含一部分或全部野生型鉸鏈序列(一般在其N端)。在一些實施例中，Fc多肽不包含功能性或野生型鉸鏈序列。
如本文所用之「Fc組分」係指Fc區之鉸鏈區、CH 2結構域或CH 3結構域。
在某些實施例中，Fc區包含IgG Fc區，較佳來源於野生型人類IgG Fc區。在某些實施例中，Fc區來源於「野生型」小鼠IgG，諸如小鼠IgG2a。「野生型」人類IgG Fc或「野生型」小鼠IgG Fc意指分別在人類群體或小鼠群體內天然存在之胺基酸序列。當然，正如Fc序列可能在個體之間略有變化，可對野生型序列作出一或多個變更且仍處於本發明之範疇內。舉例而言，Fc區可含有變更，諸如醣基化位點中之突變或包括非天然胺基酸。
術語「可變區」或「可變結構域」係指抗體結合至抗原中所涉及之抗體重或輕鏈之結構域。原生抗體之重鏈及輕鏈(分別為VH 及VL )之可變結構域一般具有類似結構，其中各結構域包含四個保守構架區(FR)及三個高變區(HVR)。(參見例如Kindt等人Kuby Immunology , 第61版, W.H. Freeman and Co., 第91頁 (2007)。) 單一VH 或VL 結構域可足以賦予抗原結合特異性。此外，結合特定抗原之抗體可分別使用來自結合該抗原之抗體之VH 或VL 結構域以篩選互補VL 或VH 結構域之文庫來分離。參見例如Portolano等人,J. Immunol. 150:880-887 (1993)；Clarkson等人,Nature 352:624-628 (1991)。
如本文所用之術語「高變區」或「HVR」係指序列高度可變且決定抗原結合特異性之抗體可變結構域之區中之每一者，例如「互補決定區」 (「CDR」)。
一般而言，抗體包含六個CDR：三個在VH 中(CDR-H1、CDR-H2、CDR-H3)，且三個在VL 中(CDR-L1、CDR-L2、CDR-L3)。本文中之例示性CDR包括： (a)  存在於胺基酸殘基26-32 (L1)、50-52 (L2)、91-96 (L3)、26-32 (H1)、53-55 (H2)及96-101 (H3)處之高變環(Chothia及Lesk, J. Mol. Biol. 196:901-917 (1987))； (b)  存在於胺基酸殘基24-34 (L1)、50-56 (L2)、89-97 (L3)、31-35b (H1)、50-65 (H2)及95-102 (H3)處之CDR (Kabat等人, Sequences of Proteins of Immunological Interest, 第5版 Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1991))；及 (c)  存在於胺基酸殘基27c-36 (L1)、46-55 (L2)、89-96 (L3)、30-35b (H1)、47-58 (H2)及93-101 (H3)處之抗原接觸(MacCallum等人 J. Mol. Biol. 262: 732-745 (1996))。
除非另有指示，否則CDR係根據Kabat等人 (同上)確定。熟習此項技術者將瞭解，CDR指名亦可根據Chothia (同上)、McCallum (同上)或任何其他科學上接受之命名系統確定。
「構架」或「FR」係指除互補決定區(CDR)以外之可變結構域殘基。可變結構域之FR一般由四個FR結構域組成：FR1、FR2、FR3及FR4。因此，CDR及FR序列在VH (或VL )中一般按以下順序出現：FR1-CDR-H1(CDR-L1)-FR2-CDR-H2(CDR-L2)-FR3-CDR-H3(CDR-L3)-FR4。
如本文所用之片語「抗原結合臂」、「標靶分子結合臂」、「標靶結合臂」及其變型係指具有特異性地結合所關注標靶之能力的抗體(諸如雙特異性抗體)之組成部分。一般且較佳地，抗原結合臂為免疫球蛋白多肽序列之複合物，例如免疫球蛋白輕及重鏈之CDR及/或可變結構域序列。
「標靶」或「標靶分子」係指由抗體(諸如雙特異性抗體)之結合臂識別之部分。舉例而言，視情形而定，若抗體為多特異性抗體(例如雙特異性抗體)，則標靶可為單一分子上或不同分子上之抗原決定基，或病原體或腫瘤細胞。熟習此項技術者將瞭解，標靶係由標靶結合臂之結合特異性確定且不同標靶結合臂可識別不同標靶。標靶較佳以高於1 μM Kd之親和力(根據此項技術中已知之方法，包括本文所述之方法)結合至抗體(例如雙特異性抗體)。標靶分子之實例包括但不限於血清可溶性蛋白質及/或其受體(諸如細胞激素及/或細胞激素受體)、黏附素、生長因子及/或其受體、激素、病毒粒子(例如RSV F蛋白質、CMV、葡萄球菌A、流感、C型肝炎病毒)、微生物(例如細菌細胞蛋白質、真菌細胞)、黏附素、CD蛋白質及其受體。
如本文所用之術語「界面」係指由第一抗體結構域中之一或多個胺基酸與第二抗體結構域之一或多個胺基酸之相互作用產生之締合表面。例示性界面包括例如CH 1/CL 、VH /VL 及CH 3/CH 3。在一些實施例中，界面包括例如形成界面之胺基酸之間的氫鍵、靜電相互作用或鹽橋。
「完整」或「全長」抗體之一個實例為包含抗原結合臂以及CL 及至少重鏈恆定結構域CH 1、CH 2及CH 3之抗體。恆定結構域可為原生序列恆定結構域(例如人類原生序列恆定結構域)或其胺基酸序列變異體。
如本文所用之術語「單株抗體」係指獲自實質上均質抗體之群體的抗體，亦即，組成該群體之個別抗體為一致的及/或結合相同抗原決定基，例外為例如含有天然存在之突變或在單株抗體製劑生產期間出現之可能變異體抗體，此類變異體一般微量存在。與典型地包括針對不同決定子(抗原決定基)之不同抗體的多株抗體製劑成對比，單株抗體製劑之各單株抗體針對抗原上之單一決定子。因此，修飾語「單株」指示獲自抗體之實質上均質群體之抗體的特徵，且不應解釋為需要藉由任何特定方法生產抗體。舉例而言，根據本發明之單株抗體可藉由多種技術製造，包括但不限於融合瘤方法、重組DNA方法、噬菌體呈現方法及利用含有全部或一部分人類免疫球蛋白基因座之轉殖基因動物之方法，用於製造單株抗體之此類方法及其他例示性方法描述於本文中。
「裸抗體」係指不接合至異源部分(例如細胞毒性部分)或放射性標記之抗體。裸抗體可存在於醫藥組合物中。
「原生抗體」係指具有不同結構之天然存在之免疫球蛋白分子。舉例而言，原生IgG抗體為約150,000道爾頓之異源四聚醣蛋白，由二硫鍵鍵結之兩個一致輕鏈及兩個一致重鏈組成。自N端至C端，各重鏈具有可變結構域(VH )，亦稱為可變重結構域或重鏈可變區，繼之以三個恆定重結構域(CH 1、CH 2及CH 3)。類似地，自N端至C端，各輕鏈具有可變結構域(VL )，亦稱為可變輕結構域或輕鏈可變區，繼之以恆定輕(CL )結構域。
「單特異性」係指抗體僅結合一個抗原決定基之能力。「雙特異性」係指抗體結合兩個不同抗原決定基之能力。「多特異性」係指抗體結合多於一個抗原決定基之能力。在某些實施例中，多特異性抗體涵蓋雙特異性抗體。對於雙特異性及多特異性抗體，抗原決定基可在同一抗原上，或各抗原決定基可在不同抗原上。在某些實施例中，雙特異性抗體結合至兩個不同抗原。在某些實施例中，雙特異性抗體結合至一個抗原上之兩個不同抗原決定基。在某些實施例中，多特異性抗體(諸如雙特異性抗體)以約≤ 1 μM、約≤ 100 nM、約≤ 10 nM、約≤ 1 nM、約≤ 0.1 nM、約≤ 0.01 nM或約≤ 0.001 nM (例如約10-8 M或更小，例如約10-8 M至約10-13 M，例如約10-9 M至約10-13 M)之解離常數(Kd)結合至各抗原決定基。
本文中之術語「多特異性抗體」以最廣泛之意義使用，係指能夠結合兩個或更多個抗原之抗體。在某些態樣中，多特異性抗體係指雙特異性抗體，例如人類雙特異性抗體、人源化雙特異性抗體、嵌合雙特異性抗體或小鼠雙特異性抗體。
「抗體片段」包含完整抗體之一部分，較佳為完整抗體之VH 及VL 。抗體片段之實例包括Fab、Fab'、F(ab')2、ScFv及Fv片段；由抗體片段形成之單臂抗體及多特異性抗體。
抗體可為「嵌合」抗體，其中重及/或輕鏈之一部分與來源於特定物種或屬於特定抗體類別或子類之抗體中之相應序列一致或同源，而該(該等)鏈之其餘部分與來源於另一物種或屬於另一抗體類別或子類之抗體中之相應序列一致或同源，以及此類抗體之片段，前提條件為該等片段展現所需生物活性(美國專利第4,816,567號；及Morrison等人, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81 :6851-6855 (1984))。本文中所關注之嵌合抗體包括靈長源化抗體，其包含來源於非人類靈長類動物(例如舊世界猴、猿，等等)之可變結構域抗原結合序列及人類恆定區序列。
非人類(例如囓齒動物)抗體之「人源化」形式為含有來源於非人類抗體之最小序列之嵌合抗體。在大多數情況下，人源化抗體為人類免疫球蛋白(接受體抗體)，其中來自接受體之高變區之殘基由來自諸如小鼠、大鼠、兔或非人類靈長類動物之非人類物種(供體抗體)之高變區之殘基置換，該等人源化抗體具有所需抗體特異性、親和力及能力。在一些情況下，人類免疫球蛋白之構架區(FR)殘基由相應非人類殘基置換。此外，人源化抗體可包含接受體抗體中或供體抗體中未發現之殘基。作出此等修飾以進一步改進抗體效能。一般而言，人源化抗體將包含實質上所有之至少一個且典型地兩個可變結構域，其中所有或實質上所有高變環對應於非人類免疫球蛋白之彼等且所有或實質上所有FR為人類免疫球蛋白序列之彼等。人源化抗體視情況亦將包含免疫球蛋白恆定區(Fc)之至少一部分，典型地屬於人類免疫球蛋白。對於進一步細節，參見Jones等人, Nature 321:522-525 (1986)；Riechmann等人, Nature 332:323-329 (1988)；及Presta, Curr. Op. Struct. Biol. 2:593-596 (1992)。
術語「醫藥組合物」或「醫藥調配物」係指如下製劑，其呈允許其中所含之活性成分之生物活性有效之形式，且不含對醫藥組合物將投與之個體具有不可接受之毒性的額外組分。
「醫藥學上可接受之載劑」係指醫藥組合物或調配物中除活性成分以外之成分，其對個體無毒。醫藥學上可接受之載劑包括但不限於緩衝劑、賦形劑、穩定劑或防腐劑。
如本文所用之「複合物」或「複合」係指彼此經並非肽鍵之鍵及/或力(例如凡得瓦力(van der Waals force)、疏水力、親水力)相互作用之兩個或更多個分子之締合。在一個實施例中，複合物為異源多聚的。應瞭解，如本文所用之術語「蛋白質複合物」或「多肽複合物」包括具有接合至蛋白質複合物中之蛋白質之非蛋白質實體(例如包括但不限於化學分子，諸如毒素或偵測劑)的複合物。
「結合所關注之抗原」之抗體(諸如單特異性或多特異性抗體)為以足夠親和力結合抗原，例如蛋白質之抗體，以使得該抗體適用作靶向蛋白質或表現該蛋白質之細胞或組織的診斷劑及/或治療劑，且不顯著地與其他蛋白質相互作用。在此類實施例中，如藉由螢光活化細胞分選(FACS)分析或放射免疫沈澱(RIA)或ELISA所確定，抗體與「非標靶」蛋白質之結合程度將小於抗體與其特定標靶蛋白質之結合的約10%。關於抗體與標靶分子之結合，術語「特異性結合」或「特異性地結合至」或「特異性針對」特定多肽或特定多肽標靶上之抗原決定基意指可量測地不同於非特異性相互作用(例如非特異性相互作用可為結合至牛血清白蛋白或酪蛋白)之結合。特異性結合可例如藉由與對照分子之結合相比較確定分子之結合來量測。舉例而言，特異性結合可藉由與類似於標靶之對照分子，例如過量非標記標靶競爭來確定。在此種情況下，若經標記標靶與探針之結合由過量未標記標靶競爭性地抑制，則指示特異性結合。如本文所用之術語「特異性結合」或「特異性地結合至」或「特異性針對」特定多肽或特定多肽標靶上之抗原決定基可例如由對標靶具有以下Kd之分子展現：至少約200 nM，或者至少約150 nM，或者至少約100 nM，或者至少約60 nM，或者至少約50 nM，或者至少約40 nM，或者至少約30 nM，或者至少約20 nM，或者至少約10 nM，或者至少約8 nM，或者至少約6 nM，或者至少約4 nM，或者至少約2 nM，或者至少約1 nM，或更高親和力。在一個實施例中，術語「特異性結合」係指多特異性抗體結合至特定多肽或特定多肽上之抗原決定基而不實質上結合至任何其他多肽或多肽抗原決定基之結合。
「結合親和力」一般係指分子(例如抗體，諸如雙特異性或多特異性抗體)之單一結合位點與其結合搭配物(例如抗原)之間的非共價相互作用之總和之強度。除非另有指示，否則如本文所用之「結合親和力」係指反映結合對之成員(例如抗體與抗原)之間的1:1相互作用之固有結合親和力。分子X對其搭配物Y之親和力一般可由解離常數(Kd)表示。舉例而言，Kd可為約200 nM或更小、約150 nM或更小、約100 nM或更小、約60 nM或更小、約50 nM或更小、約40 nM或更小、約30 nM或更小、約20 nM或更小、約10 nM或更小、約8 nM或更小、約6 nM或更小、約4 nM或更小、約2 nM或更小，或約1 nM或更小。親和力可藉由此項技術中已知之常用方法來量測，包括本文所述之彼等。低親和力抗體一般緩慢結合抗原且傾向於易解離，而高親和力抗體一般更快結合抗原且傾向於保持結合更長時間。量測結合親和力之多種方法在此項技術中為已知的，其中任一者可用於達成本發明之目的。
在一個實施例中，「Kd」或「Kd值」係藉由使用表面電漿子共振檢定來量測。舉例而言，Kd值可使用BIAcore™-2000或BIAcore™-3000 (BIAcore, Inc., Piscataway, NJ)在25℃下用經固定之標靶(例如抗原) CM5晶片以-10個反應單位(RU)來確定。簡言之，在一個實例中，根據供應商之說明書用N-乙基-N'-(3-二甲胺基丙基)-碳化二亞胺鹽酸鹽(EDC)及N-羥基丁二醯亞胺(NHS)活化羧甲基化葡聚糖生物感測器晶片(CM5, BIAcore Inc.)。將抗原用10 mM乙酸鈉(pH 4.8)稀釋至5 μg/ml (約0.2 μM)，隨後以5 μl/min之流動速率注射以達到約10個反應單位(RU)之偶合蛋白質。在注射抗原之後，注射1 M乙醇胺以阻斷未反應之基團。對於動力學量測，將Fab之兩倍連續稀釋液(例如0.78 nM至500 nM)於含0.05% Tween 20之PBS (PBST)中在25℃下以約25 μl/min之流動速率注射。使用簡單1:1朗謬結合模型(one-to-one Langmuir binding model) (BIAcore評價軟體版本3.2)藉由同時擬合締合及解離感測圖來計算締合速率(kon )及解離速率(koff )。平衡解離常數(Kd)以比率koff /kon 計算。參見例如Chen等人, J. Mol. Biol. 293:865-881 (1999)。若藉由上述表面電漿子共振檢定，締合速率超過106 M-1 s-1 ，則締合速率可藉由使用螢光淬滅技術來確定，該螢光淬滅技術量測在25°C下20 nM抗抗原抗體(Fab形式)於PBS (pH 7.2)中在漸增濃度之抗原存在下之螢光發射強度(激發 = 295 nm；發射 = 340 nm，16 nm帶通)的增加或減小，如在分光計，諸如配備停流之分光光度計(Aviv Instruments)或具有攪拌式光析槽之8000系列SLM-Aminco分光光度計(ThermoSpectronic)中所量測。
除非另有規定，否則關於根據本文所提供之方法製造之抗體(例如經修飾之抗體，諸如經修飾之雙特異性抗體)，諸如抗體(例如雙特異性抗體)、其片段或衍生物之「生物上具活性」及「生物活性」及「生物特徵」意指具有結合至生物分子之能力。
「經分離」當用於描述各種異源多聚體多肽時意指已自表現其之細胞或細胞培養物中分離及/或回收之異源多聚體。其天然環境之污染物組分為將干擾異源多聚體之診斷或治療用途之物質，且可包括酶、激素及其他蛋白質性或非蛋白質性溶質。在某些實施例中，異源多聚體將經純化(1)達到如藉由勞立法(Lowry method)確定之大於95重量%蛋白質，且最佳大於99重量%；(2)達到足以獲得藉由使用旋杯定序儀確定之至少15個殘基之N端或內部胺基酸序列之程度；或(3)達到藉由SDS PAGE在還原或非還原條件下使用考馬斯藍(Coomassie blue)或較佳銀染色確定之均質性。然而，經分離之多肽通常將藉由至少一個純化步驟製備。
抗體(諸如雙特異性抗體)一般經純化至實質均質性。片語「實質上均質」、「實質上均質形式」及「實質均質性」用於指示產物實質上不含源自於非所需多肽組合(例如重鏈同源二聚體及/或亂序之重鏈/輕鏈對)之副產物。
以純度表述，實質均質性意指副產物之量不超過10重量%、9重量%、8重量%、7重量%、6重量%、4重量%、3重量%、2重量%或1重量%，或小於1重量%。在一個實施例中，副產物低於5%。
「生物分子」係指核酸、蛋白質、碳水化合物、脂質及其組合。在一個實施例中，生物分子存在於自然界中。
除非上下文另有指示，否則術語「第一」多肽(諸如重鏈(HC1或HC1 )或輕鏈(LC1或LC1 ))及「第二」多肽(諸如重鏈(HC2或HC2 )或輕鏈(LC2或LC2 ))及其變型僅為通用標識語，且不應視為鑑別使用本文所提供之方法產生之抗體(諸如雙特異性抗體)之特異性或特定多肽或組分。
除非另有指示，否則根據製造商之說明書使用實例中所提及之市售試劑。在以下實例中及貫穿本說明書由ATCC寄存編號鑑別之彼等細胞之來源為美國菌種保藏中心(American Type Culture Collection；Manassas, VA)。除非另有註釋，否則本發明使用重組DNA技術之標準程序，諸如上文及以下教科書中所述之彼等：Sambrook等人 (同上)；Ausubel等人, Current Protocols in Molecular Biology (Green Publishing Associates and Wiley Interscience, NY, 1989)；Innis等人, PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications (Academic Press, Inc., NY, 1990)；Harlow等人, Antibodies: A Laboratory Manual (Cold Spring Harbor Press, Cold Spring Harbor, 1988)；Gait, 寡核苷酸 Synthesis (IRL Press, Oxford, 1984)；Freshney, Animal Cell Culture, 1987；Coligan等人, Current Protocols in Immunology, 1991。
本文中提及「約」某個值或參數係指熟習此項技術者易於瞭解之各別值之常見誤差範圍。本文中提及「約」某個值或參數包括(且描述)針對彼值或參數本身之態樣。舉例而言，提及「約X」之描述包括「X」之描述。
應瞭解，本文所述之本發明之態樣及實施例包括「包含態樣及實施例」、「由態樣及實施例組成」及「基本上由態樣及實施例組成」。
本文所引用之所有參考文獻，包括專利申請案及公開案，藉此以全文引用之方式併入。 改良重鏈 / 輕鏈配對選擇性之方法
本申請案係基於鑑別VL (例如抗體輕鏈或其片段之VL )及VH (例如抗體重鏈或其片段之VH )中之胺基酸位置處在優先重鏈/輕鏈配對中起作用之殘基。
如下文進一步詳細描述，本文所提供之方法包括在重鏈及/或輕鏈多肽之可變結構域內，例如尤其在CDR序列內之特定殘基處引入一或多個取代。如一般熟習此項技術者將瞭解，可採用各種編號規約用於指定抗體可變區序列內之特定胺基酸殘基。通常所用之編號規約包括Kabat及EU索引編號(參見Kabat等人,Sequences of Proteins of Immunological Interest , 第5版, Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1991))。包括用於可變結構域之修正或替代編號系統之其他規約包括Chothia (Chothia C, Lesk AM (1987),J Mal Biol 196: 901-917；Chothia等人 (1989),Nature 342: 877-883)、IMGT (Lefranc等人 (2003),Dev Comp Immunol 27: 55-77)，及AHo (Honegger A, Plückthun A (2001)J Mol Biol 309: 657-670)。此等參考文獻提供用於界定抗體序列之可變區胺基酸殘基之位置的免疫球蛋白可變區之胺基酸序列編號方案。
除非本文另有明確規定，否則對實例及申請專利範圍中出現之免疫球蛋白重鏈可變區(亦即，VH )胺基酸殘基(亦即，編號)之所有提及係基於Kabat編號系統，除非另有特別指示，否則對VL 殘基之所有提及同樣如此。對實例及申請專利範圍中出現之免疫球蛋白重鏈恆定區CH 1、CH 2及CH 3殘基(亦即，編號)之所有提及係基於EU系統，除非另有特別指示，否則對CL 殘基之所有提及同樣如此。利用根據Kabat或EU索引編號之殘基編號之知識，一般熟習此項技術者根據任何通常所用之編號規約可鑑別本文所述之胺基酸序列修飾。
儘管本文所提供之項目、組分或要素(諸如「抗體」、「取代」或「取代突變」)可以單數描述或主張，但除非明確規定限於單數，否則複數涵蓋於本文之範疇內。
如下文更詳細描述，本文提供改良抗體(包括雙特異性抗體)中之正確重鏈/輕鏈配對之方法，該方法包括將一或多個取代引入VH 及/或VL 中。亦提供改良抗體(例如正確裝配之雙特異性抗體)之產率的方法，該方法包括將一或多個取代引入抗體之VH 及/或VL 中，其中使用特定方法(例如此項技術中已知之方法)生產之包含取代之抗體(例如雙特異性抗體)的產率高於使用相同方法生產之未經取代之抗體(例如雙特異性抗體)的產率。先前努力專注於將一或多個胺基酸取代引入可變結構域之構架區中。參見例如Froning等人, Protein Science, 2017, 26:2021-38。Liu等人, J. Biol. Chem. 2015, 290:7535-62。Lewis等人, Nature Biotechnology, 2014, 32:191-202。
在一些實施例中，本文所提供之方法進一步包括在Fc區中引入一或多個修飾以促進抗體(諸如雙特異性抗體)之兩個重鏈之異源二聚。 重鏈及輕鏈可變結構域中之取代突變
本文提供一種改良抗體之重鏈及輕鏈之配對(諸如優先配對)的方法，該方法包括以下步驟：將輕鏈可變結構域(VL )之位置94或VL 之位置96處之至少一個胺基酸(例如「原始胺基酸」)自不帶電殘基取代為選自天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)之帶電殘基，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，該方法包括以下步驟：將位置94及位置96處之兩個胺基酸(例如原始胺基酸)自不帶電殘基取代為帶電殘基，例如D、R、E或K。在一些實施例中，該方法包括提供其中引入上文所論述之一或多個取代之抗體。在一些實施例中，該方法包括提供結合本文別處所述之一個(或多個)例示性標靶之抗體(諸如雙特異性或多特異性抗體)。
優先配對描述當在第一多肽與第二多肽之間發生配對的同時存在一或多個額外不同多肽(例如一或多個額外重鏈及/或輕鏈)時第一多肽(諸如重鏈)與第二多肽(諸如輕鏈)之配對模式。在一些實施例中，當HC1 與至少LC1 及LC2 共表現時，若HC1 /LC1 重鏈-輕鏈配對之量大於HC1 /LC2 配對之量，則在例如抗體(例如雙特異性抗體)之HC1 與LC1 之間發生優先配對。同樣地，當HC2 與至少LC1 及LC2 共表現時，若HC2 /LC2 重鏈-輕鏈配對之量大於HC2 /LC1 配對之量，則在例如多特異性抗體(例如雙特異性抗體)之HC2 與LC2 之間發生優先配對。如本文別處進一步詳細描述，HC1 /LC1 、HC1 /LC2 、HC2 /LC1 及HC2 /LC2 配對可藉由此項技術中已知之方法，例如液相層析質譜法(LCMS)量測。
在一些實施例中，術語「原始胺基酸」係指在即將例如經帶電胺基酸(諸如D、R、E或K)取代之前，存在於特定位置，例如VL 之位置94及/或位置96處之胺基酸。在一些實施例中，術語「不帶電胺基酸」或「不帶電殘基」係指在生理pH值，例如介於約6.8與約7.5之間、約6.9與約7.355之間或約6.95與7.45之間的pH值下既不帶正電(諸如質子化)亦不帶負電(諸如去質子化)之胺基酸。在一些實施例中，「帶電胺基酸」係指在生理pH值，例如介於約6.8與約7.5之間、約6.9與約7.355之間或約6.95與7.45之間的pH值下帶正電(諸如質子化)或帶負電(諸如去質子化)之胺基酸。在一些實施例中，不帶電胺基酸殘基為並非D、R、E或K之胺基酸殘基。在一些實施例中，位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代。在一些實施例中，位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經R取代。在一些實施例中，位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代，且位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經R取代。
在一些實施例中，該方法進一步包括將重鏈可變結構域(VH )之位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)自不帶電殘基取代為選自天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)之帶電殘基，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代。在一些實施例中，VL 之位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代，VL 之位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經R取代，且VH 之位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代。
亦提供一種改良抗體之重鏈及輕鏈之配對(諸如同源配對，亦即，同源VH 與VL 、Fab及HC與LC之優先配對)的方法，該方法包括以下步驟：將重鏈可變結構域(VH )之位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)自不帶電殘基取代為選自天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)之帶電殘基，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代。
本文亦提供一種改良抗體之重鏈及輕鏈之配對(諸如同源配對)的方法，該方法包括以下步驟：將輕鏈可變結構域(VL )之位置91、VL 之位置94或VL 之位置96處之至少一個胺基酸(例如「原始胺基酸」)自非芳族殘基取代為選自色胺酸(W)、苯丙胺酸(F)及酪胺酸(Y)之芳族殘基，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，該方法包括以下步驟：將位置91、位置94或位置96處之至少兩個胺基酸(例如原始胺基酸)自非芳族殘基取代為選自W、F及Y之芳族殘基。在一些實施例中，該方法包括以下步驟：將位置94及位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)自非芳族殘基取代為選自W、F及Y之芳族殘基。在一些實施例中，該方法包括以下步驟：將位置91、位置94及位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)中之每一者自非芳族殘基取代為選自W、F及Y之芳族殘基。在一些實施例中，該方法包括提供其中引入上文所論述之一或多個取代之抗體。在一些實施例中，該方法包括提供結合本文別處所述之一個(或多個)例示性標靶之抗體(諸如雙特異性或多特異性抗體)。
在一些實施例中，「原始胺基酸」係指在即將經芳族胺基酸(例如W、F及Y)取代之前，存在於VL 之位置91、位置94及/或位置96處之胺基酸(例如非芳族胺基酸)。在一些實施例中，術語「非芳族胺基酸」或「非芳族殘基」係指不包含芳環之胺基酸。在一些實施例中，「非芳族殘基」係指並非W、F或Y之胺基酸殘基。
在一些實施例中，位置91處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代。在一些實施例中，位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代。在一些實施例中，位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經W取代。在一些實施例中，位置91處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代，且位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代。在一些實施例中，位置91處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代，且位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經W取代。在一些實施例中，位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代，且位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經W取代。在一些實施例中，位置91處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代，位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代，且位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經W取代。
在一些實施例中，該方法進一步包括將重鏈可變結構域(VH )之位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)自不帶電殘基取代為選自天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)之帶電殘基，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，該方法進一步包括將重鏈可變結構域(VH )之位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)自非芳族殘基取代為選自色胺酸(W)、苯丙胺酸(F)及酪胺酸(Y)之芳族殘基。
在一些實施例中，將上文所述之一或多個取代引入抗體片段，例如包含VL 結構域及VH 結構域之抗體片段中。此類抗體片段包括但不限於例如Fab、Fab'、單特異性F(ab')2 、雙特異性F(ab')2 、單臂抗體、ScFv、Fv，等等。
在一些實施例中，其中引入上文所述之一或多個取代之抗體為人類抗體、人源化抗體或嵌合抗體。在一些實施例中，抗體包含κ輕鏈。在一些實施例中，抗體包含λ輕鏈。在某些實施例中，VL 包含KV1或KV4人類生殖系家族之構架序列。在一些實施例中，VH 包含HV2或HV3人類生殖系家族之構架序列。在一些實施例中，抗體包含鼠類Fc區。在一些實施例中，抗體包含人類Fc區，諸如人類IgG Fc區，例如人類IgG1、人類IgG2、人類IgG3m或人類IgG4 Fc區。在一些實施例中，抗體為單特異性抗體。在一些實施例中，抗體為多特異性抗體，例如雙特異性抗體。
在某些實施例中，其中引入上文所述之一或多個取代之抗體為雙特異性抗體，其包含與第一VH (VL 1)配對之第一VL (VL 1)及與第二VH (VH 2)配對之第二VL (VL 2)，其中VL 1包含Q38K取代突變，VH 1包含Q39E取代突變，VL 2包含Q38E取代突變，VH 2包含Q39K取代突變，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，VL 1包含Q38E取代突變，VH 1包含Q39K取代突變，VL 2包含Q38K取代突變，VH 2包含Q39E取代突變，其中胺基酸編號係根據Kabat。一般熟習此項技術者將顯而易見，術語「VL 1」、「VH 1」、「VL 2」及「VH 2」為任意指名，且例如在本文實施例中之任一者中之「VL 1」及「VL 2」可顛倒。
另外或替代地，在一些實施例中，其中引入上文所述之一或多個取代之抗體為雙特異性抗體，其包含：包含第一CH 1結構域(CH 11 )之第一重鏈(HC1 )、包含第一CL 結構域(CL1 )之第一輕鏈(LC1 )、包含第二CH 1結構域(CH 12 )之第二重鏈(HC2 )及包含第一CL 結構域(CL2 )之第二輕鏈(LC2 )。一般熟習此項技術者將顯而易見，術語「HC1 」、「HC2 」、「LC1 」、「LC2 」等等為任意指名，且例如在本文實施例中之任一者中之「HC1 」及「HC2 」可顛倒。亦即，上文描述為在H1之CH 1結構域及L1之CL 結構域中之突變中之任一者可替代地在H2之CH 1結構域及L2之CL 結構域中。在一些實施例中，該方法進一步包括將CH 11 中之S183用E取代、CL1 中之V133用K取代、CH 12 中之S183用K取代且CL2 中之V133用E取代，其中胺基酸編號係根據EU索引。在一些實施例中，該方法進一步包括將CH 11 中之S183用K取代、CL1 中之V133用E取代、CH 12 中之S183用E取代且CL2 中之V133用K取代，其中胺基酸編號係根據EU索引。參見例如Dillon等人 (2017) MABS 9(2): 213-230及WO2016/172485。在一些實施例中，HC1 進一步包含第一CH 2 (CH 21 )結構域及/或第一CH 3 (CH 31 )結構域。另外或替代地，在一些實施例中，HC2 進一步包含第二CH 2 (CH 22 )結構域及/或第二CH 3 (CH 32 )結構域。在一些實施例中，CH 32 經改變以使得在CH 31 /CH 32 界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較大側鏈體積之一或多個胺基酸殘基置換，從而在CH 32 之表面上產生與CH 31 相互作用之隆凸；且CH 31 經改變以使得在CH 31 /CH 32 界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較小側鏈體積之胺基酸殘基置換，從而在CH 31 之表面上產生與CH 32 相互作用之凹穴。在一些實施例中，CH 31 經改變以使得在CH 31 /CH 32 界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較大側鏈體積之一或多個胺基酸殘基置換，從而在CH 31 之表面上產生與CH 32 相互作用之隆凸；且CH 32 經改變以使得在CH 31 /CH 32 界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較小側鏈體積之胺基酸殘基置換，從而在CH 32 之表面上產生與CH 31 相互作用之凹穴。在一些實施例中，隆凸為杵突變，例如包含T366W之杵突變，其中胺基酸編號係根據EU索引。在一些實施例中，凹穴為臼突變，例如包含T366S、L368A及Y407V中之至少一者、至少兩者或全部三者之臼突變，其中胺基酸編號係根據EU索引。關於杵臼突變之額外細節提供於例如US 5,731,168、US 5,807,706、US 7,183,076中，其內容以全文引用之方式併入本文中。在一些實施例中，雙特異性抗體之HC1 /LC1 對結合至第一抗原，且雙特異性抗體之HC2 /LC2 對結合至第二抗原。在一些實施例中，雙特異性抗體之HC1 /LC1 對結合至第一抗原之第一抗原決定基，且雙特異性抗體之HC2 /LC2 對結合至第一抗原之第二抗原決定基。
提供一種製造(諸如修飾或工程改造)抗體(諸如雙特異性抗體)以獲得具有改良之優先重鏈/輕鏈配對之經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)的方法，該方法包括將輕鏈可變結構域(VL )之位置94及/或VL 之位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)自不帶電殘基取代為選自天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)之帶電殘基，以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，該方法包括以下步驟：將位置94及位置96處之至少兩個胺基酸(例如原始胺基酸)自不帶電殘基取代為帶電殘基，例如D、R、E或K，以獲得經修飾之抗體(例如雙特異性抗體)。在一些實施例中，經修飾之抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)結合至本文別處所述之例示性標靶。在許多情況下，結合至此類標靶之抗體之重鏈及輕鏈之序列公開可用且可對準及映射至Kabat編號方案，接著針對Kabat序列資料庫掃描以鑑別有待取代之位置。
在一些實施例中，位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經R取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代，且位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經R取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。
在一些實施例中，該方法進一步包括將重鏈可變結構域(VH )之位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)自不帶電殘基取代為選自天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)之帶電殘基，以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，VL 之位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代，VL 之位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經R取代，且VH 之位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。
亦提供一種製造(諸如修飾或工程改造)抗體(諸如雙特異性抗體)以獲得具有改良之優先重鏈/輕鏈配對之經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)的方法，該方法包括將重鏈可變結構域(VH )之位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)自不帶電殘基取代為選自天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)之帶電殘基，以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)經D取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。
亦提供一種製造(諸如修飾或工程改造)抗體(諸如雙特異性抗體)以獲得具有改良之優先重鏈/輕鏈配對之經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)的方法，該方法包括將輕鏈可變結構域(VL )之位置91、VL 之位置94及/或VL 之位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)自非芳族殘基取代為選自色胺酸(W)、苯丙胺酸(F)及酪胺酸(Y)之芳族殘基以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，該方法包括以下步驟：將位置91、位置94或位置96處之至少兩個胺基酸(例如原始胺基酸)自非芳族殘基取代為選自W、F及Y之芳族殘基以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，該方法包括以下步驟：將位置94及位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)自非芳族殘基取代為選自W、F及Y之芳族殘基以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，該方法包括以下步驟：將位置91、位置94及位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)中之每一者自非芳族殘基取代為選自W、F及Y之芳族殘基以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，經修飾之抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)結合至本文別處所述之例示性標靶。
在一些實施例中，位置91處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經W取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，位置91處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代，且位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，位置91處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代，且位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經W取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代，且位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經W取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。在一些實施例中，位置91處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代，位置94處之胺基酸(例如原始胺基酸)經Y取代，且位置96處之胺基酸(例如原始胺基酸)經W取代以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。
在一些實施例中，該方法進一步包括將重鏈可變結構域(VH )之位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)自不帶電殘基取代為選自天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)之帶電殘基，以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，該方法進一步包括將重鏈可變結構域(VH )之位置95處之胺基酸(例如原始胺基酸)自非芳族殘基取代為選自色胺酸(W)、苯丙胺酸(F)及酪胺酸(Y)之芳族殘基以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。
在一些實施例中，製造(諸如修飾或工程改造)抗體(諸如雙特異性抗體)之方法包括修飾VH 及/或VL ，例如，藉由將上文所論述之取代中之一或多者引入VH 及/或VL 中以獲得經修飾之VH 及/或經修飾之VL ，及將經修飾之VH 及/或經修飾之VL 移植至抗體(諸如雙特異性抗體)上以獲得經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)。
在一些實施例中，使根據本文所述之方法經取代、修飾及/或工程改造之VH /VL 對經受至少一個親和力成熟步驟(例如1、2、3、4、5、6、7、8、9、10個或多於10個親和力成熟步驟)。親和力成熟為使例如藉由本文所述之方法獲得之抗體之重鏈/輕鏈對經受選擇對標靶(例如標靶配位體或標靶抗原，如下文進一步詳細描述)之親和力增加之方案的過程(參見Wu等人 (1998)Proc Natl Acad Sci USA . 95, 6037-42)。關於抗體之親和力成熟之細節亦詳述於例如Merchant等人 (2013)Proc Natl Acad Sci U S A. 110(32): E2987-96；Julian等人 (2017)Scientific Reports. 7: 45259；Tiller等人 (2017)Front. Immunol. 8: 986；Koenig等人 (2017)Proc Natl Acad Sci U S A. 114(4): E486-E495；Yamashita等人 (2019)Structure. 27, 519-527；Payandeh等人 (2019)J Cell Biochem. 120: 940-950；Richter等人 (2019)mAbs. 11(1): 166-177；及Cisneros等人 (2019)Mol. Syst. Des. Eng. 4: 737-746中。在某些實施例中，藉由本文中之方法獲得之重鏈/輕鏈對之VH 及/或VL 中之一或多個胺基酸位置經隨機化(亦即，在除上文所提及之彼等，亦即，VL 中之位置91、94及/或96及視情況VH 中之位置95以外之位置處)以產生重鏈/輕鏈變異體之文庫。接著篩選VH /VL 變異體之文庫以鑑別對標靶具有所需親和力之彼等變異體。因此，在某些實施例中，本文所述之方法進一步包括以下步驟：(a)使藉由本文中之方法獲得之重鏈/輕鏈對之CDR-H1、CDR-H2、CDR-H3、CDR-L1、CDR-L2及/或CDR-L3在一或多個位置處誘變或隨機化以產生VH /VL 變異體之文庫，(b)使VH /VL 變異體之文庫與標靶(例如標靶配位體或標靶抗原)接觸，(c)偵測標靶與VH /VL 變異體之結合，及(d)獲得特異性地結合標靶之VH /VL 變異體。如上文所提及，不靶向抗原結合結構域變異體中之VL 中之位置91、94及/或96及視情況VH 中之位置95用於進一步隨機化。使抗體(或其片段抗原結合片段)之CDR-H1、CDR-H2、CDR-H3、CDR-L1、CDR-L2及/或CDR-L3誘變之方法在此項技術中為已知的，且在本文別處論述。關於文庫及文庫篩選之細節在本文別處提供。
在某些實施例中，本文所述之方法進一步以下步驟：(e)確定特異性地結合標靶之VH /VL 變異體(亦即，親和力成熟之VH /VL 對)之核酸序列。在一些實施例中，本文所述之方法進一步包括以下步驟：(f)將親和力成熟之VH /VL 對移植至抗體(諸如雙特異性抗體)上以獲得親和力成熟之經修飾抗體(例如親和力成熟之經修飾雙特異性抗體)。在一些實施例中，本文所述之方法進一步包括以下步驟：(g)例如使用下文所述之方法評估親和力成熟之VH /VL 對展示優先配對/優先裝配之程度。
本文亦提供根據上文所述之方法中之任一者或組合生產之抗體(例如單特異性、雙特異性或多特異性抗體)或抗體片段。 抗體重鏈及輕鏈之優先配對 / 優先裝配
如上文所提及，優先配對描述當在第一多肽與第二多肽之間發生配對的同時存在一或多個額外不同多肽(例如一或多個額外重鏈及/或輕鏈)時第一多肽(諸如重鏈)與第二多肽(諸如輕鏈)之配對模式。當HC1 與至少LC1 及LC2 共表現時，若HC1 /LC1 重鏈-輕鏈配對之量大於HC1 /LC2 配對之量，則在例如抗體(例如雙特異性抗體)之HC1 與LC1 之間發生優先配對(例如同源配對)。同樣地，當HC2 與至少LC1 及LC2 共表現時，若HC2 /LC2 重鏈-輕鏈配對之量大於HC2 /LC1 配對之量，則在例如多特異性抗體(例如雙特異性抗體)之HC2 與LC2 之間發生優先配對(例如同源配對)。如本文別處進一步詳細描述，HC1 /LC1 、HC1 /LC2 、HC2 /LC1 及HC2 /LC2 配對可藉由此項技術中已知之方法，例如液相層析質譜法(LCMS)量測。
在某些實施例中，本文所提供之方法用於產生(諸如生產)抗體(例如雙特異性抗體)，其中HC1 與LC1 優先配對。另外或替代地，本文所提供之方法用於產生(諸如生產)抗體(例如雙特異性抗體)，其中HC2 與LC2 優先配對。在某些實施例中，本文所提供之方法用於產生(諸如生產)抗體(例如雙特異性抗體)，其中HC1 與LC1 優先配對且HC2 與LC2 優先配對。在某些實施例中，當藉由本文所提供之方法產生之抗體(例如雙特異性抗體)之HC1 與HC2 、LC1 及LC2 共表現時，包含所需配對(例如HC1 /LC1 及HC2 /LC2 )之雙特異性抗體以如下相對產率生產：至少約30%、至少約35%、至少約40%、至少約45%、至少約50%、至少約55%、至少約60%、至少約70%、至少約71%、至少約71%、至少約72%、至少約73%、至少約74%、至少約75%、至少約76%、至少約77%、至少約78%、至少約79%、至少約80%、至少約81%、至少約82%、至少約83%、至少約84%、至少約85%、至少約86%、至少約87%、至少約88%、至少約89%、至少約90%、至少約91%、至少約92%、至少約93%、至少約94%、至少約95%、至少約96%、至少約97%、至少約99%或大於約99%，包括此等值之間的任何範圍。如實例中所述，包含所需配對(例如HC1 /LC1 及HC2 /LC2 )之雙特異性抗體之相對產率可使用例如質譜法確定。
在某些實施例中，使用本文所提供之方法產生之抗體(諸如雙特異性抗體)之經表現多肽以改良之特異性裝配以減少錯配之重鏈及輕鏈產生。在某些實施例中，本文所提供之抗體(例如雙特異性抗體)之CH 1之VH 結構域在生產期間與LC1 之VL 結構域一起裝配(諸如優先裝配)。 評估正確配對 / 優先配對 / 優先裝配之方法
根據本文所述之方法製造之經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)之HC1 與LC1 之優先配對、正確配對及/或優先裝配可使用一般熟習此項技術者所熟知之多種方法中之任一者確定。舉例而言，經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)中之HC1 與LC1 之優先配對程度可經由輕鏈競爭檢定(LCCA)來確定。2013年10月3日申請之國際專利申請案PCT/US2013/063306描述LCCA之各種實施例且出於所有目的以全文引用之方式併入本文中。方法允許定量分析在共表現之蛋白質之混合物內重鏈與特異性輕鏈之配對且可用於確定當重鏈及輕鏈共表現時一個特定免疫球蛋白重鏈是否與兩個免疫球蛋白輕鏈中之一者選擇性締合。方法簡單地描述如下：將至少一個重鏈及兩個不同輕鏈在細胞中以使得重鏈為有限配對反應物之比率共表現；視情況自細胞中分離經分泌之蛋白質；使結合至重鏈之免疫球蛋白輕鏈多肽與經分泌之蛋白質之其餘部分分離以產生經分離之重鏈配對部分；偵測經分離之重鏈部分中之各不同輕鏈之量；及分析經分離之重鏈部分中之各不同輕鏈之相對量以確定至少一個重鏈與輕鏈中之一者選擇性配對之能力。
在某些實施例中，根據本文所提供之方法製造之經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性或多特異性抗體)之HC1 與LC1 之優先配對係經由質譜法(諸如液相層析-質譜法(LC-MS)、原生質譜法、酸性質譜法，等等)量測。質譜法用於使用其分子量之差異定量包括各輕鏈之相對異源二聚體群體以鑑別各不同種類。在某些實施例中，藉由如本文所述之LC-MS確定正確或優先配對。在某些實施例中，量測Fv或Fab之正確或優先配對。 多特異性抗體型式
根據本文所提供之方法製造之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)可按此項技術中已知之多種雙特異性或多特異性抗體型式中之任一者使用。在此項技術中已開發眾多型式以解決由具有多重結合特異性之分子所提供之治療機會。已描述若干方法以製備雙特異性抗體，其中特異性抗體輕鏈或片段與特異性抗體重鏈或片段配對。
舉例而言，在CH 1/CL 界面中促進同源Fab或HC與LC配對之選擇性配對之突變描述於Dillon等人 (2017) MABS 9(2): 213-230及WO2016/172485中，其內容以全文引用之方式併入本文中。
杵臼為用於抗體之CH 3結構域之異源二聚技術。先前，杵臼技術已應用於生產具有單一常見輕鏈(LC)之人類全長雙特異性抗體(Merchant等人 「An efficient route to human bispecific IgG.」 Nat Biotechnol. 1998; 16:677-81；Jackman等人 「Development of a two-part strategy to identify a therapeutic human bispecific antibody that inhibits IgE receptor signaling.」 J Biol Chem. 2010;285:20850-9)。亦參見WO1996027011，其出於所有目的以全文引用之方式併入本文中。
使用本文所提供之方法產生之抗體(諸如雙特異性抗體)可經進一步修飾以包含對於形成異源二聚體之偏好強於同源二聚體之一或多個其他異源二聚結構域。說明性實例包括但不限於例如WO2007147901 (Kjærgaard等人 - Novo Nordisk：描述離子相互作用)；WO 2009089004 (Kannan等人 - Amgen：描述靜電轉向作用)；WO 2010/034605 (Christensen等人 - Genentech；描述捲曲螺旋)。亦參見例如Pack, P.及Plückthun, A., Biochemistry 31, 1579-1584 (1992)，描述白胺酸拉鏈；或Pack等人, Bio/Technology 11, 1271-1277 (1993)，描述螺旋-轉角-螺旋基元。片語「異源多聚結構域」及「異源二聚結構域」在本文中可互換使用。在某些實施例中，使用本文所提供之方法生產之抗體(諸如雙特異性抗體)包含一或多個異源二聚結構域。
美國專利公開案第2009/0182127號(Novo Nordisk, Inc.)描述藉由修飾Fc界面處及輕-重鏈對之CH 1:CL 界面處之胺基酸殘基來產生雙特異性抗體，其減少一對之輕鏈與另一對之重鏈相互作用之能力。
用於製造多特異性抗體之技術包括但不限於具有不同特異性之兩個免疫球蛋白重鏈-輕鏈對之重組共表現(參見Milstein及Cuello, Nature 305: 537 (1983))及「杵臼」工程改造(參見例如美國專利第5,731,168號及Atwell等人, J. Mol. Biol. 270:26-35 (1997))。多特異性抗體亦可藉由以下方式製造：對靜電轉向作用進行工程改造用於製造抗體Fc-異源二聚分子(參見例如WO 2009/089004)；使兩個或更多個抗體或片段交聯(參見例如美國專利第4,676,980號及Brennan等人, Science, 229: 81 (1985))；及使用白胺酸拉鏈以生產雙特異性抗體(參見例如Kostelny等人, J. Immunol., 148(5):1547-1553 (1992)及WO 2011/034605)。
多特異性抗體亦可以不對稱形式提供，其在相同抗原特異性之一或多個結合臂中具有結構域互換，亦即，藉由交換VH /VL 結構域(參見例如WO 2009/080252及WO 2015/150447)、CH 1/C) 結構域(參見例如WO 2009/080253)或完整Fab臂(參見例如WO 2009/080251、WO 2016/016299，亦參見Schaefer等人, PNAS, 108 (2011) 1187-1191及Klein等人, MAbs 8 (2016) 1010-20)。在一個態樣中，多特異性抗體包含交叉Fab片段。術語「交叉Fab片段」或「xFab片段」或「互換Fab片段」係指Fab片段，其中重及輕鏈之可變區或恆定區經交換。交叉Fab片段包含由輕鏈可變區(VL )及重鏈恆定區1 (CH 1)組成之多肽鏈，及由重鏈可變區(VH )及輕鏈恆定區(CL )組成之多肽鏈。不對稱Fab臂亦可藉由將帶電或不帶電胺基酸突變引入結構域界面中以引導正確Fab配對來進行工程改造。參見例如WO 2016/172485。
各種雙特異性及多特異性抗體型式之評述提供於Klein等人, (2012)mAbs 4:6, 653-663及Spiess等人 (2015) 「Alternative molecular formats and therapeutic applications for bispecific antibodies.」Mol. Immunol. 67 (2015) 95-106中。
在一些實施例中，將藉由本文所提供之方法製造之經修飾之抗體(例如經修飾之雙特異性抗體)重新編排為上文所述之多特異性抗體型式中之任一者以進一步確保正確重/輕鏈配對。 抗體之生產及純化 培養宿主細胞
在某些實施例中，根據本文所提供之方法製造之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性或多特異性抗體)可藉由以下方式生產：(a)將一組編碼HC1 、HC2 、LC1 及LC2 之聚核苷酸引入宿主細胞中；及(b)培養宿主細胞以生產抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)。在某些實施例中，將編碼LC1 及LC2 之聚核苷酸按預定比率(例如莫耳比或重量比)引入宿主細胞中。在某些實施例中，將編碼LC1 及LC2 之聚核苷酸引入宿主細胞中以使得LC1 :LC2 之比率(例如莫耳比或重量比)為約1:1、約1:1.5、約1:2、約1:2.5、約1:3、約1:3.5、約1:4、約1:4.5、約1:5、約1:5.5、約1.5:1、約2:1、約2.5:1、約3:1、約3.5:1、約4:1、約4.5:1、約5:1或約5.5:1，包括此等值之間的任何範圍。在某些實施例中，比率為莫耳比。在某些實施例中，比率為重量比。在某些實施例中，將編碼HC1 及HC2 之聚核苷酸按預定比率(例如莫耳比或重量比)引入宿主細胞中。在某些實施例中，將編碼HC1 及HC2 之聚核苷酸引入宿主細胞中以使得HC1 :HC2 之比率(例如莫耳比或重量比)為約1:1、約1:1.5、約1:2、約1:2.5、約1:3、約1:3.5、約1:4、約1:4.5、約1:5、約1:5.5、約1.5:1、約2:1、約2.5:1、約3:1、約3.5:1、約4:1、約4.5:1、約5:1或約5.5:1，包括此等值之間的任何範圍。在某些實施例中，比率為莫耳比。在某些實施例中，比率為重量比。在某些實施例中，將編碼HC1 、HC2 、LC1 及LC2 之聚核苷酸按預定比率(例如莫耳比或重量比)引入宿主細胞中。在某些實施例中，將編碼HC1 、HC2 、LC1 及LC2 之聚核苷酸引入宿主細胞中以使得HC1 + HC2 :LC1 + LC2 之比率(例如莫耳比或重量比)為約5:1、約5:2、約5:3、約5:4、約1:1、約4:5、約3:5、約2:5或約1:5，包括此等值之間的任何範圍。在某些實施例中，將編碼LC1 、LC2 、HC1 及HC2 之聚核苷酸引入宿主細胞中以使得LC1 + LC2 :HC1 + HC2 之比率(例如莫耳比或重量比)為約1:1:1:1、約2.8:1:1:1、約1.4:1:1:1、約1:1.4:1:1、約1:2.8:1:1、約1:1:2.8:1、約1:1:1.4:1、約1:1:1:2.8或約1:1:1:1.4，包括此等值之間的任何範圍。在某些實施例中，比率為莫耳比。在某些實施例中，比率為重量比。
在某些實施例中，生產根據本文所提供之方法製造之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性或多特異性抗體)進一步包括確定用於引入細胞中之聚核苷酸的最佳比率。在某些實施例中，質譜法用於確定抗體產率(諸如雙特異性抗體產率)，且調整最佳鏈比率以使蛋白質產率(諸如雙特異性抗體產率)達到最大。在某些實施例中，生產根據本文所提供之方法產生之抗體(諸如雙特異性或多特異性抗體)進一步包括自細胞培養物中收集或回收抗體。在某些實施例中，生產根據本文所提供之方法產生之抗體(諸如雙特異性或多特異性抗體)進一步包括純化所收集或回收之抗體。
用於生產根據本文所提供之方法製造之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)的宿主細胞可在多種培養基中培養。市售培養基，諸如漢氏F10 (Ham's F10) (Sigma)、最低必須培養基((MEM)，(Sigma))、RPMI-1640 (Sigma)及達爾伯克改良伊格爾培養基(Dulbecco's Modified Eagle's Medium) ((DMEM)，Sigma)適合於培養宿主細胞。另外，Ham等人,Meth. Enz . 58:44 (1979)；Barnes等人,Anal. Biochem . 102:255 (1980)；美國專利第4,767,704號、第4,657,866號、第4,927,762號、第4,560,655號或第5,122,469號；WO 90/03430；WO 87/00195；或美國專利參考案30,985中所述之培養基中之任一者可用作宿主細胞之培養基。此等培養基中之任一者必要時可補充有激素及/或其他生長因子(諸如胰島素、轉鐵蛋白或表皮生長因子)、鹽(諸如氯化鈉、鈣、鎂及磷酸鹽)、緩衝液(諸如HEPES)、核苷酸(諸如腺苷及胸苷)、抗生素(諸如GENTAMYCIN™藥物)、微量元素(定義為通常以微莫耳範圍內之最終濃度存在之無機化合物)及葡萄糖或等效能源。任何其他必要補充物亦可以將為熟習此項技術者所知之適當濃度包括在內。培養條件，諸如溫度、pH值及其類似條件，為先前與經選擇用於表現之宿主細胞一起使用之彼等條件，且將為一般熟習此項技術者顯而易見。 收集或回收及純化抗體
在相關態樣中，生產根據本文所述之方法製造之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)包括在允許表現經修飾之抗體之條件下培養上文所述之宿主細胞及回收(諸如收集)經修飾之抗體。在某些實施例中，生產根據本文所述之方法製造之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)進一步包括純化所回收之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)以獲得實質上均質之製劑，例如用於進一步檢定及使用。
根據本文所述之方法製造之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)可細胞內生產，或直接分泌至培養基中。若細胞內生產此種經修飾之抗體，則作為第一步，例如藉由離心或超濾來移除特定碎片，亦即，宿主細胞或溶解之片段。在根據本文所述之方法製造之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)分泌至培養基中之情況下，一般首先使用市售蛋白質濃縮過濾器，例如Amicon或Millipore Pellicon超濾單元濃縮來自此類表現系統之上清液。在前述步驟中之任一者中可包括諸如PMSF之蛋白酶抑制劑以抑制蛋白水解且可包括抗生素以防止外源污染物生長。
可採用此項技術中已知之標準蛋白質純化方法以獲得根據本文所述之方法自細胞製造之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)的實質上均質製劑。以下程序例示適合之純化程序：在免疫親和或離子交換管柱上分級、乙醇沈澱、逆相HPLC、在二氧化矽上或陽離子交換樹脂(諸如DEAE)上層析、層析聚焦、SDS-PAGE、硫酸銨沈澱及使用例如Sephadex G-75之凝膠過濾。
另外或替代地，使用本文所述之方法製造之經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)可使用例如羥磷灰石層析、凝膠電泳、透析及親和層析來純化，其中親和層析為較佳純化技術。
在某些態樣中，將來源於如上文所述之細胞培養基之製劑施加至蛋白質A固定之固相上以允許經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)特異性結合至蛋白質A。接著洗滌固相以移除非特異性地結合至固相之污染物。藉由溶離至含有離液劑或溫和洗滌劑之溶液中自固相回收經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)。例示性離液劑及溫和洗滌劑包括但不限於胍鹽酸鹽、脲、過氯酸鋰、精胺酸、組胺酸、SDS (十二烷基硫酸鈉)、Tween、Triton及NP-40，其全部市售可得。
蛋白質A作為親和配位體之適宜性視存在於抗體(諸如雙特異性抗體)中之任何免疫球蛋白Fc結構域之種類及同型而定。蛋白質A可用於純化基於人類γ1、γ2或γ4重鏈之抗體(Lindmark等人,J. Immunol. Meth . 62:1-13 (1983))。蛋白質G經推薦用於所有小鼠同型且用於人類γ3 (Guss等人,EMBO J. 5:15671575 (1986))。親和配位體所附著之基質最常為瓊脂糖，但其他基質為可用的。機理上穩定之基質，諸如可控孔徑玻璃或聚(苯乙烯二乙烯基)苯允許比用瓊脂糖可達成更快之流動速率及更短之加工時間。在經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)包含CH 3結構域之情況下，Bakerbond ABX™樹脂(J. T. Baker, Phillipsburg, NJ)適用於純化。視有待回收之抗體(諸如雙特異性抗體)而定，用於蛋白質純化之其他技術，諸如在離子交換管柱上分級、乙醇沈澱、逆相HPLC、在二氧化矽上層析、在肝素SEPHAROSE™上層析、在陰離子或陽離子交換樹脂(諸如聚天冬胺酸管柱)上層析、層析聚焦、SDS-PAGE及硫酸銨沈澱亦為可用的。
在一或多個任何初步純化步驟之後，可使包含經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)及污染物之混合物經受使用pH值介於約2.5-4.5之間的溶離緩衝液之低pH值疏水相互作用層析，較佳在低鹽濃度(例如約0-0.25M鹽)下進行。經修飾之抗體(諸如經修飾之雙特異性抗體)之生產可替代地或另外(針對前述特定方法中之任一者)包括透析包含多肽混合物之溶液。 文庫及文庫篩選
本文亦提供展現優先配對之重鏈/輕鏈對(或其抗原結合片段)之文庫。
舉例而言，本文提供一種包含複數個抗原結合結構域變異體之文庫，各抗原結合結構域變異體包含不同抗體重鏈結構域(VH )及不同抗體輕鏈結構域(VL )，其中各VH 包含不同CDR-H1、CDR-H2及CDR-H3序列，其中各VL 包含不同CDR-L1、CDR-L2及CDR-L3序列，且其中各VL 中之位置94或各VL 之位置96處之至少一個胺基酸為選自天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)之帶電殘基，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，各VL 之位置94及位置96處之兩個胺基酸均為獨立地選自D、R、E及K之帶電殘基。在一些實施例中，各VL 之位置94處之胺基酸為D。在一些實施例中，各VL 之位置96處之胺基酸為R。在一些實施例中，各VL 之位置94處之胺基酸為D且各VL 之位置96處之胺基酸為R。在一些實施例中，各VH 之位置95處之胺基酸為選自D、R、E及K之帶電殘基。在一些實施例中，各VH 之位置95處之胺基酸為D。在一些實施例中，各VL 之位置94處之胺基酸為D，各VL 之位置96處之胺基酸為R，且各VH 之位置95處之胺基酸為D。
本文亦提供一種包含複數個抗原結合結構域變異體之文庫，各抗原結合結構域變異體包含不同抗體重鏈結構域(VH )及不同抗體輕鏈結構域(VL )，其中各VH 包含不同CDR-H1、CDR-H2及CDR-H3序列，其中各VL 包含不同CDR-L1、CDR-L2及CDR-L3序列，且其中各VL 之位置91、各VL 中之位置94或各VL 之位置96處之至少一個胺基酸為選自色胺酸(W)、苯丙胺酸(F)及酪胺酸(Y)之芳族殘基，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，各VL 之位置91、位置94或位置96 (例如位置91及94、位置91及96或位置94及96)處之至少兩個胺基酸為選自W、F及Y之芳族殘基。在一些實施例中，各VL 之位置91處之胺基酸為Y。在一些實施例中，各VL 之位置94處之胺基酸為Y。在一些實施例中，各VL 之位置96處之胺基酸為W。在一些實施例中，各VL 之位置91處之胺基酸為Y，且各VL 之位置94處之胺基酸為Y。在一些實施例中，各VL 之位置91處之胺基酸為Y，且各VL 之位置96處之胺基酸為W。在一些實施例中，各VL 之位置94處之胺基酸為Y，且各VL 之位置96處之胺基酸為W。在一些實施例中，各VL 之位置91處之胺基酸為Y，各VL 之位置94處之胺基酸為Y，且各VL 之位置96處之胺基酸為W。在一些實施例中，各VH 之位置95處之胺基酸為選自天冬胺酸(D)、精胺酸(R)、麩胺酸(E)及離胺酸(K)之帶電殘基，其中胺基酸編號係根據Kabat。在一些實施例中，各VH 之位置95處之胺基酸為選自色胺酸(W)、苯丙胺酸(F)及酪胺酸(Y)之芳族殘基。
在某些實施例中，文庫為多肽文庫(諸如複數個本文所述之多肽中之任一者)。在某些實施例中，本文所提供之多肽文庫為多肽呈現文庫。可篩選此類多肽呈現文庫以選擇及/或引出具有所需特性之結合蛋白質用於廣泛多種效用，包括但不限於治療、預防、獸醫學、診斷、試劑或材料應用。在某些實施例中，文庫為核酸文庫(諸如複數個本文所述之核酸中之任一者)，其中各核酸(或一組核酸)編碼本文所述之不同抗原結構域結合變異體。在一些實施例中，文庫為各自包含(且例如表現)不同核酸(或一組核酸)之複數個宿主細胞(例如原核或真核宿主細胞)，其中各不同核酸(或一組核酸)編碼本文所述之不同抗原結構域結合變異體。
在某些實施例中，本文所提供之文庫包含至少2、3、4、5、10、30、100、250、500、750、1000、2500、5000、7500、10000、25000、50000、75000、100000、250000、500000、750000、1000000、2500000、5000000、7500000、10000000個或多於10000000個不同抗原結合結構域，包括此等值之間的任何範圍。在某些實施例中，本文所提供之文庫具有約2、約5、約10、約50、約100、約250、約500、約750、約103 、約104 、約105 、約106 、約107 、約108 、約109 、約1010 、約1011 、約1012 、約1013 、約1014 或多於約1014 (諸如約1015 或約1016 )之序列多樣性，包括此等值之間的任何範圍。
在某些實施例中，經由遺傳工程改造產生本文所提供之文庫。先前已描述用於誘變及後續文庫構築之多種方法(以及用於篩選或選擇之適當方法)。此類誘變方法包括但不限於例如易錯PCR、環改組或寡核苷酸定點誘變、隨機核苷酸插入或在重組之前的其他方法。關於此等方法之進一步細節描述於例如Abou-Nadler等人 (2010)Bioengineered Bug s 1, 337-340；Firth等人 (2005)Bioinformatics 21, 3314-3315；Cirino等人 (2003)Methods Mol Biol 231, 3-9；Pirakitikulr (2010)Protein Sci 19, 2336-2346；Steffens等人 (2007)J. Biomol Tech 18, 147-149；及其他文獻中。因此，在某些實施例中，提供經由遺傳工程改造技術產生之多特異性抗原結合蛋白質文庫。
在某些實施例中，經由試管內轉譯產生本文所提供之文庫。簡言之，試管內轉譯需要將一或多個蛋白質編碼序列選殖至含有啟動子之載體中，藉由用RNA聚合酶轉錄一或多個經選殖之序列產生mRNA，及藉由例如使用無細胞提取物試管內轉譯此mRNA合成蛋白質。可簡單地藉由改變經選殖之蛋白質編碼序列產生所需突變體蛋白質。可在小麥胚芽提取物中或在兔網狀紅血球溶解產物中有效轉譯許多mRNA。關於試管內轉譯之進一步細節描述於例如Hope等人 (1985)Cell 43, 177-188；Hope等人 (1986)Cell 46, 885-894；Hope等人 (1987)EMBO J. 6, 2781-2784；Hope等人 (1988)Nature 333, 635-640；及Melton等人 (1984)Nucl. Acids Res. 12, 7057-7070中。
因此，提供編碼本文所述之多肽呈現文庫之複數個核酸分子。本文亦提供可操作地連接至複數個核酸分子之表現載體。亦提供一種藉由提供編碼本文所述之複數個抗原結合結構域之複數個核酸及表現該等核酸來製造本文所提供之文庫的方法。
在某些實施例中，經由化學合成產生本文所提供之文庫。固相及液相肽合成之方法在此項技術中為熟知的且詳細描述於例如Methods of Molecular Biology,35 , Peptide Synthesis Protocols, (M. W. Pennington及B. M. Dunn編), Springer, 1994；Welsch等人 (2010)Curr Opin Chem Biol 14, 1-15；Methods of Enzymology,289 , Solid Phase Peptide Synthesis, (G. B. Fields編), Academic Press, 1997；Chemical Approaches to the Synthesis of Peptides and Proteins, (P. Lloyd-Williams, F. Albericio及E. Giralt編), CRC Press, 1997；Fmoc Solid Phase Peptide Synthesis, A Practical Approach, (W. C. Chan, P. D. White編), Oxford University Press, 2000；Solid Phase Synthesis, A Practical Guide, (S. F. Kates, F Albericio編), Marcel Dekker, 2000；P. Seneci, Solid-Phase Synthesis and Combinatorial Technologies, John Wiley & Sons, 2000；Synthesis of Peptides and Peptidomimetics (M. Goodman, Editor-in-chief, A. Felix, L. Moroder, C. Tmiolo編), Thieme, 2002；N. L. Benoiton, Chemistry of Peptide Synthesis, CRC Press, 2005；Methods in Molecular Biology, 298, Peptide Synthesis and Applications, (J. Howl編) Humana Press, 2005；及Amino Acids, Peptides and Proteins in Organic Chemistry, 第3卷, Building Blocks, Catalysts and Coupling Chemistry, (A. B. Hughs編) Wiley-VCH, 2011中。因此，在某些實施例中，提供經由化學合成技術產生之多特異性抗原結合蛋白質文庫。
在某些實施例中，本文所提供之文庫為呈現文庫。在某些實施例中，呈現文庫為噬菌體呈現文庫、噬菌粒呈現文庫、病毒呈現文庫、細菌呈現文庫、酵母呈現文庫、λgt11文庫、CIS呈現文庫及試管內區室化文庫或核糖體呈現文庫。製造及篩選此類呈現文庫之方法為熟習此項技術者所熟知且描述於例如Molek等人 (2011)Molecules 16, 857-887；Boder等人, (1997)Nat Biotechnol 15, 553-557；Scott等人 (1990)Science 249, 386-390；Brisette等人 (2007)Methods Mol Biol 383, 203-213；Kenrick等人 (2010)Protein Eng Des Sel 23, 9-17；Freudl等人 (1986)J Mol Biol 188, 491-494；Getz等人 (2012)Methods Enzymol 503, 75-97；Smith等人 (2014)Curr Drug Discov Technol 11, 48-55；Hanes等人 (1997)Proc Natl Acad Sci USA 94, 4937-4942；Lipovsek等人, (2004)J Imm Methods 290, 51-67；Ullman等人 (2011) Brief. Funct. Genomics, 10, 125-134；Odegrip等人 (2004)Proc Natl Acad Sci USA 101, 2806-2810；及Miller等人 (2006) Nat Methods 3, 561-570中。
在某些實施例中，本文所提供之文庫為例如藉由Szostak等人之US 6258558、US 6261804、US 5643768及US 5658754中所述之技術產生之RNA蛋白質融合文庫。在某些實施例中，本文所提供之文庫為例如US 6416950中所述之DNA蛋白質文庫。 篩選方法
可篩選本文所提供之文庫以鑑別對所關注之標靶(例如抗原)具有高親和力之抗原結合變異體。因此，本文提供一種獲得結合所關注之標靶(例如本文別處所述之所關注之標靶)之抗原結合變異體的方法。
在某些實施例中，該方法包括a)使本文所述之文庫在允許結合所關注之標靶之條件下與文庫中特異性地結合標靶之抗原結合結構域變異體接觸，(b)偵測標靶與特異性地結合標靶之抗原結合結構域變異體之結合(例如偵測包含標靶及特異性地結合標靶之抗原結合結構域變異體之複合物)，及(c)獲得特異性地結合標靶之抗原結合結構域變異體。在一些實施例中，該方法進一步包括使由此鑑別之抗原結合結構域變異體經受至少一個親和力成熟步驟，其中不選擇抗原結合結構域變異體之VL 中之位置91、位置94及/或位置96處之胺基酸用於隨機化。在一些實施例中，不選擇VH 中之位置95處之胺基酸用於隨機化。
在一些實施例中，該方法進一步包括生產包含結合所關注之標靶之抗原結合結構域變異體(例如結合所關注之標靶之親和力成熟抗原結合結構域變異體)的抗體(諸如雙特異性抗體或多特異性抗體)。
在某些實施例中，提供包含標靶及特異性地結合至標靶之抗原結合結構域變異體之複合物。在某些實施例中，該方法進一步包括確定抗原結合結構域變異體之VH 及/或VL 之一或多個核酸序列。
親和力成熟為使抗原結合結構域變異體經受選擇對標靶(例如標靶配位體或標靶抗原)之親和力增加之方案的過程(參見Wu等人 (1998)Proc Natl Acad Sci USA . 95, 6037-42)。在某些實施例中，在自文庫篩選鑑別之後使特異性地結合第一標靶配位體之抗原結合結構域變異體進一步隨機化(亦即，在除上文所提及之彼等，亦即，VL 中之位置91、94及/或96及視情況VH 中之位置95以外之位置處)。舉例而言，在某些實施例中，獲得特異性地結合第一標靶配位體之抗原結合結構域變異體之方法進一步包括(e)使先前所鑑別之抗原結合結構域變異體之CDR-H1、CDR-H2、CDR-H3、CDR-L1、CDR-L2及/或CDR-L3誘變或隨機化以產生進一步抗原結合結構域變異體，(f)使第一標靶配位體與進一步隨機化之抗原結合結構域變異體接觸，(g)偵測標靶與進一步隨機化之抗原結合結構域變異體之結合，及(h)獲得特異性地結合標靶之進一步隨機化之抗原結合結構域變異體。如上文所提及，不靶向抗原結合結構域變異體中之VL 中之位置91、94及/或96及視情況VH 中之位置95用於進一步隨機化。使抗原結合結構域之CDR-H1、CDR-H2、CDR-H3、CDR-L1、CDR-L2及/或CDR-L3誘變之方法在此項技術中為已知的，且可包括例如隨機誘變、CDR步移誘變或依序及平行最佳化、藉由基於結構之合理設計誘變、位點特異性誘變、基於酶之誘變、基於化學之誘變及用於合成抗體基因產生之基因合成方法。參見例如Yang等人, 1995, CDR Walking Mutagenesis for the Affinity Mutation of a Potent Human Anti-HIV-1 Antibody into the Picomolar Range, J. Mol. Biol. 254:392-40，及Lim等人, 2019, Review: Cognizance of Molecular Methods for the Generation of Mutagenic Phage Display Antibody Libraries for Affinity Maturation, Int. J. Mol. Sci, 20:1861，其內容均以全文引用之方式併入本文中。
在某些實施例中，該方法進一步包括(i)確定特異性地結合標靶之抗原結合結構域變異體之核酸序列。
在某些實施例中，進一步隨機化之抗原結合結構域變異體包含至少一個或至少兩個隨機化之CDR，其先前在第一文庫中未隨機化。可進行多輪隨機化(亦即，除VL 中之位置91、94及/或96及視情況VH 中之位置95以外)、篩選及選擇直至獲得對標靶具有足夠親和力之一或多個抗原結合結構域變異體。因此，在某些實施例中，步驟(e)-(h)或步驟(e)-(i)重複一次、兩次、三次、四次、五次、六次、七次、八次、九次、十次或多於十次以鑑別特異性地結合第一標靶配位體之一或多個抗原結合結構域變異體。在一些實施例中，已經歷兩輪或更多輪隨機化、篩選及選擇之一或多個抗原結合結構域變異體結合標靶之親和力至少與已經歷一輪隨機化、篩選及選擇之一或多個抗原結合結構域變異體之彼等親和力一般高。
可藉由此項技術中已知之任何技術篩選本文所述之抗原結合結構域變異體之文庫用於引出特異性地結合標靶配位體之新的或經改良之結合蛋白質。在某些實施例中，將標靶配位體固定於固體支撐物(諸如管柱樹脂或微量滴定盤孔)上，且使標靶配位體與候選多特異性抗原結合蛋白質之文庫(諸如本文所述之任何文庫)接觸。選擇技術可為例如噬菌體呈現(Smith (1985)Science 228, 1315-1317)、mRNA呈現(Wilson等人 (2001)Proc Natl Acad Sci USA 98: 3750-3755)、細菌呈現(Georgiou等人 (1997)Nat Biotechnol 15:29-34.)、酵母呈現(Boder及Wittrup (1997)Nat. Biotechnol . 15:553-5577)或核糖體呈現(Hanes及Plückthun (1997)Proc Natl Acad Sci U S A 94:4937-4942及WO2008/068637)。
在某些實施例中，抗原結合結構域變異體之文庫為噬菌體呈現文庫。在某些實施例中，提供呈現本文所述之抗原結合結構域變異體之噬菌體粒子。在某些實施例中，提供呈現能夠結合至標靶配位體之本文所述之抗原結合結構域變異體之噬菌體粒子。
噬菌體呈現為將複數個多特異性抗原結合蛋白質變異體呈現為與噬菌體粒子表面上之外殼蛋白質之融合蛋白質的技術(Smith, G. P. (1985)Science , 228:1315-7；Scott, J. K.及Smith, G. P. (1990)Science 249: 386；Sergeeva, A.等人 (2006)Adv. Drug Deliv. Rev. 58:1622-54)。噬菌體呈現之效用在於可針對以高親和力結合至標靶分子之彼等序列快速且有效地分選選擇性隨機化之蛋白質變異體(或隨機選殖之cDNA)之大文庫。
肽(Cwirla, S. E.等人 (1990)Proc. Natl. Acad. Sci. USA , 87:6378)或蛋白質(Lowman, H. B.等人 (1991)Biochemistry , 30:10832；Clackson, T.等人 (1991)Nature , 352: 624；Marks, J.D.等人 (1991),J. Mol. Biol. , 222:581；Kang, A. S.等人 (1991)Proc. Natl. Acad. Sci. USA , 88:8363)文庫在噬菌體上之呈現已用於篩選數百萬多肽或寡肽中具有特異性結合特性者(Smith, G. P. (1991)Current Opin. Biotechnol ., 2:668；Wu等人 (1998)Proc Natl Acad Sci USA . May 95, 6037-42)。多價噬菌體呈現方法已用於經由與絲狀噬菌體之基因III或基因VIII融合而呈現小隨機肽及小蛋白質。(Wells及Lowman,Curr. Opin. Struct. Biol. , 3:355-362 (1992)及其中所引用之參考文獻。) 在單價噬菌體呈現中，蛋白質或肽文庫融合至基因III或其一部分，且在野生型基因III蛋白質存在下以低水準表現以使得噬菌體粒子呈現融合蛋白質之一個複本或不呈現融合蛋白質。親合力作用相對多價噬菌體減小以使得分選以固有配位體親和力為基礎，且使用簡化DNA操作之噬菌粒載體。(Lowman及Wells,Methods: A companion to Methods in Enzymology , 3:205-0216 (1991)。)
分選抗原結合結構域變異體之噬菌體文庫需要大量變異體之構築及增殖、使用標靶配位體進行親和純化之程序及評價結合富集之結果的方式(參見例如US 5223409、US 5403484、US 5571689及US 5663143)。
大多數噬菌體呈現方法使用絲狀噬菌體(諸如M13噬菌體)。λ形噬菌體呈現系統(參見WO1995/34683、US 5627024)、T4噬菌體呈現系統(Ren等人 (1998)Gene 215:439；Zhu等人 (1998)Cancer Research , 58:3209-3214；Jiang等人, (1997)Infection & Immunity , 65:4770-4777；Ren等人 (1997)Gene , 195:303-311；Ren (1996)Protein Sci. , 5:1833；Efimov等人 (1995)Virus Genes , 10:173)及T7噬菌體呈現系統(Smith及Scott (1993)Methods in Enzymology , 217: 228-257；US. 5766905)亦為已知的。
現已開發基本噬菌體呈現概念之許多其他改良及變型。此等改良增強呈現系統之以下能力：針對與所選標靶分子之結合篩選肽文庫及呈現功能蛋白質以有潛力針對所需特性篩選此等蛋白質。已開發用於噬菌體呈現反應之組合反應裝置(WO 1998/14277)且噬菌體呈現文庫已用於分析及控制雙分子相互作用(WO 1998/20169；WO 1998/20159)及受限螺旋肽之特性(WO 1998/20036)。WO 1997/35196描述分離親和配位體之方法，其中使噬菌體呈現文庫與配位體將結合至標靶分子之一種溶液及親和配位體將不結合至標靶分子之第二溶液接觸，以選擇性分離結合配位體。WO 1997/46251描述用親和純化之抗體生物淘選隨機噬菌體呈現文庫，接著分離結合噬菌體之方法，繼之以使用微量盤孔分離高親和力結合噬菌體之微量淘選過程。此種方法可應用於本文所揭示之抗原結合結構域變異體之文庫。亦已報導使用金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus )蛋白質A作為親和標籤(Li等人 (1998)Mol Biotech. 9:187)。WO 1997/47314描述使用受質消減文庫以使用可為噬菌體呈現文庫之組合文庫區分酶特異性。選擇特異性結合蛋白質之額外方法描述於US 5498538、US 5432018及WO 1998/15833中。產生肽文庫及篩選此等文庫之方法亦揭示於US 5723286、US 5432018、US 5580717、US 5427908、US 5498530、US 5770434、US 5734018、US 5698426、US 5763192及US 5723323中。 例示性抗原 / 標靶分子
可由使用本文所提供之方法生產之抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)靶向之分子的實例包括但不限於可溶性血清蛋白質及其受體及其他膜結合蛋白質(例如黏附素)。在另一個實施例中，本文所提供之多特異性抗原結合蛋白質能夠結合一個、兩個或更多個細胞激素、細胞激素相關蛋白質及細胞激素受體，其選自由以下組成之群：8MPI、8MP2、8MP38 (GDFIO)、8MP4、8MP6、8MP8、CSFI (M-CSF)、CSF2 (GM-CSF)、CSF3 (G-CSF)、EPO、FGF1 (αFGF)、FGF2 (βFGF)、FGF3 (int-2)、FGF4 (HST)、FGF5、FGF6 (HST-2)、FGF7 (KGF)、FGF9、FGF1 0、FGF11、FGF12、FGF12B、FGF14、FGF16、FGF17、FGF19、FGF20、FGF21、FGF23、IGF1、IGF2、IFNA1、g1。
IFNA2、IFNA4、IFNA5、IFNA6、IFNA7、IFN81、IFNG、IFNWI、FEL1、FEL1 (EPSELON)、FEL1 (ZETA)、IL 1A、IL 1B、IL2、IL3、IL4、IL5、IL6、IL7、IL8、IL9、IL1 0、IL 11、IL 12A、IL 12B、IL 13、IL 14、IL 15、IL 16、IL 17、IL 17B、IL 18、IL 19、IL20、IL22、IL23、IL24、IL25、IL26、IL27、IL28A、IL28B、IL29、IL30、PDGFA、PDGFB、TGFA、TGFB1、TGFB2、TGFBb3、LTA (TNF-β)、LTB、TNF (TNF-α)、TNFSF4 (OX40配位體)、TNFSF5 (CD40配位體)、TNFSF6 (FasL)、TNFSF7 (CD27配位體)、TNFSF8 (CD30配位體)、TNFSF9 (4-1 BB配位體)、TNFSF10 (TRAIL)、TNFSF11 (TRANCE)、TNFSF12 (APO3L)、TNFSF13 (April)、TNFSF13B、TNFSF14 (HVEM-L)、TNFSF15 (VEGI)、TNFSF18、HGF (VEGFD)、VEGF、VEFGA、VEGFB、VEGFC、IL1R1、IL1R2、IL1RL1、IL1RL2、IL2RA、IL2RB、IL2RG、IL3RA、IL4R、IL5RA、IL6R、IL7R、IL8RA、IL8RB、IL9R、IL10RA、IL10RB、IL 11RA、IL12RB1、IL12RB2、IL13RA1、IL13RA2、IL15RA、IL17R、IL18R1、IL20RA、IL21R、IL22R、IL1HY1、IL1RAP、IL1RAPL1、IL1RAPL2、IL1RN、IL6ST、IL18BP、IL18RAP、IL22RA2、AIF1、HGF、LEP (瘦素(leptin))、PTN及THPO。
在另一個實施例中，標靶分子為趨化激素、趨化激素受體或趨化激素相關蛋白質，其選自由以下組成之群：CCLI (1-309)、CCL2 (MCP-1/MCAF)、CCL3 (MIP-Iα)、CCL4 (MIP-Iβ)、CCL5 (RANTES)、CCL7 (MCP-3)、CCL8 (mcp-2)、CCL11 (伊紅趨素(eotaxin))、CCL 13 (MCP-4)、CCL 15 (MIP-Iδ)、CCL 16 (HCC-4)、CCL 17 (TARC)、CCL 18 (PARC)、CCL 19 (MDP-3b)、CCL20 (MIP-3α)、CCL21 (SLC/次級非淋巴組織趨化激素-2 (exodus-2))、CCL22 (MDC/ STC-1)、CCL23 (MPIF-1)、CCL24 (MPIF-2/ 伊紅趨素-2)、CCL25 (TECK)、CCL26 (伊紅趨素-3)、CCL27 (CTACK/ ILC)、CCL28、CXCLI (GROI)、CXCL2 (GR02)、CXCL3 (GR03)、CXCL5 (ENA-78)、CXCL6 (GCP-2)、CXCL9 (MIG)、CXCL 10 (IP 10)、CXCL 11 (1-TAC)、CXCL 12 (SDFI)、CXCL 13、CXCL 14、CXCL 16、PF4 (CXCL4)、PPBP (CXCL7)、CX3CL 1 (SCYDI)、SCYEI、XCLI (淋巴細胞趨化激素(lymphotactin))、XCL2 (SCM-Iβ)、BLRI (MDR15)、CCBP2 (D6/ JAB61)、CCRI (CKRI/ HM145)、CCR2 (mcp-IRB IRA)、CCR3 (CKR3/ CMKBR3)、CCR4、CCR5 (CMKBR5/ ChemR13)、CCR6 (CMKBR6/ CKR-L3/ STRL22/ DRY6)、CCR7 (CKR7/ EBII)、CCR8 (CMKBR8/ TER1/ CKR-L1)、CCR9 (GPR-9-6)、CCRL1 (VSHK1)、CCRL2 (L-CCR)、XCR1 (GPR5/ CCXCR1)、CMKLR1、CMKOR1 (RDC1)、CX3CR1 (V28)、CXCR4、GPR2 (CCR10)、GPR31、GPR81 (FKSG80)、CXCR3 (GPR9/CKR-L2)、CXCR6 (TYMSTR/STRL33/ Bonzo)、HM74、IL8RA (IL8Rα)、IL8RB (IL8Rβ)、LTB4R (GPR16)、TCP10、CKLFSF2、CKLFSF3、CKLFSF4、CKLFSF5、CKLFSF6、CKLFSF7、CKLFSF8、BDNF、C5R1、CSF3、GRCC10 (C10)、EPO、FY (DARC)、GDF5、HDF1、HDF1α、DL8、PRL、RGS3、RGS13、SDF2、SLIT2、TLR2、TLR4、TREM1、TREM2及VHL。
在另一個實施例中，使用本文所提供之方法生產之抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)能夠結合一或多個選自由以下組成之群的標靶：ABCF1；ACVR1；ACVR1B；ACVR2；ACVR2B；ACVRL1；ADORA2A；蛋白聚糖(Aggrecan)；AGR2；AICDA；AIF1；AIG1；AKAP1；AKAP2；AMH；AMHR2；ANGPTL；ANGPT2；ANGPTL3；ANGPTL4；ANPEP；APC；APOC1；AR；AZGP1 (鋅-a-醣蛋白)；B7.1；B7.2；BAD；BAFF (BLys)；BAG1；BAI1；BCL2；BCL6；BDNF；BLNK；BLRI (MDR15)；BMP1；BMP2；BMP3B (GDF10)；BMP4；BMP6；BMP8；BMPR1A；BMPR1B；BMPR2；BPAG1 (網蛋白(plectin))；BRCA1；C19orf10 (IL27w)；C3；C4A；C5；C5R1；CANT1；CASP1；CASP4；CAV1；CCBP2 (D6/JAB61)；CCL1 (1-309)；CCL11 (伊紅趨素)；CCL13 (MCP-4)；CCL15 (MIP1δ)；CCL16 (HCC-4)；CCL17 (TARC)；CCL18 (PARC)；CCL19 (MIP-3β)；CCL2 (MCP-1)；MCAF；CCL20 (MIP-3α)；CCL21 (MTP-2)；SLC；次級非淋巴組織趨化激素-2；CCL22 (MDC/STC-1)；CCL23 (MPIF-1)；CCL24 (MPIF-2/伊紅趨素-2)；CCL25 (TECK)；CCL26 (伊紅趨素-3)；CCL27 (CTACK/ ILC)；CCL28；CCL3 (MTP-Iα)；CCL4 (MDP-Iβ)；CCL5(RANTES)；CCL7 (MCP-3)；CCL8 (mcp-2)；CCNA1；CCNA2；CCND1；CCNE1；CCNE2；CCR1 (CKRI/ HM145)；CCR2 (mcp-IRβ/ RA)；CCR3 (CKR/CMKBR3)；CCR4；CCR5 (CMKBR5/ ChemR13)；CCR6 (CMKBR6/CKR-L3/ STRL22/ DRY6)；CCR7 (CKBR7/ EBI1)；CCR8 (CMKBR8/ TER1/ CKR-L1)；CCR9 (GPR-9-6)；CCRL1 (VSHK1)；CCRL2 (L-CCR)；CD164；CD19；CD1C；CD20；CD200；CD22；CD24；CD28；CD3；CD37；CD38；CD3E；CD3G；CD3Z；CD4；CD40；CD40L；CD44；CD45RB；CD52；CD69；CD72；CD74；CD79A；CD79B；CDS；CD80；CD81；CD83；CD86；CDH1 (E-鈣黏蛋白(E-cadherin))；CDH10；CDH12；CDH13；CDH18；CDH19；CDH20；CDH5；CDH7；CDH8；CDH9；CDK2；CDK3；CDK4；CDK5；CDK6；CDK7；CDK9；CDKN1A (p21/WAF1/Cip1)；CDKN1B (p27/Kip1)；CDKN1C；CDKN2A (P16INK4a)；CDKN2B；CDKN2C；CDKN3；CEBPB；CER1；CHGA；CHGB；殼糖酶(Chitinase)；CHST10；CKLFSF2；CKLFSF3；CKLFSF4；CKLFSF5；CKLFSF6；CKLFSF7；CKLFSF8；CLDN3;CLDN7 (密連蛋白-7 (claudin-7))；CLN3；CLU (叢生蛋白(clusterin))；CMKLR1；CMKOR1 (RDC1)；CNR1；COL 18A1；COL1A1；COL4A3；COL6A1；CR2；CRP；CSFI (M-CSF)；CSF2 (GM-CSF)；CSF3 (GCSF)；CTLA4；CTNNB1 (b-連環蛋白(b-catenin))；CTSB (組織蛋白酶B (cathepsin B))；CX3CL1 (SCYDI)；CX3CR1 (V28)；CXCL1 (GRO1)；CXCL10 (IP-10)；CXCL11 (I-TAC/IP-9)；CXCL12 (SDF1)；CXCL13；CXCL14；CXCL16；CXCL2 (GRO2)；CXCL3 (GRO3)；CXCL5 (ENA-78/LIX)；CXCL6 (GCP-2)；CXCL9 (MIG)；CXCR3 (GPR9/CKR-L2)；CXCR4；CXCR6 (TYMSTR/STRL33/Bonzo)；CYB5；CYC1；CYSLTR1；DAB2IP；DES；DKFZp451J0118；DNCLI；DPP4；E2F1；ECGF1；EDG1；EFNA1；EFNA3；EFNB2；EGF；EGFR；ELAC2；ENG；ENO1；ENO2；ENO3；EPHB4；EPO；ERBB2 (Her-2)；EREG；ERK8；ESR1；ESR2；F3 (TF)；FADD；FasL；FASN；FCER1A；FCER2；FCGR3A；FGF；FGF1 (αFGF)；FGF10；FGF11；FGF12；FGF12B；FGF13；FGF14；FGF16；FGF17；FGF18；FGF19；FGF2 (bFGF)；FGF20；FGF21；FGF22；FGF23；FGF3 (int-2)；FGF4 (HST)；FGF5；FGF6 (HST-2)；FGF7 (KGF)；FGF8；FGF9；FGFR3；FIGF (VEGFD)；FELl (EPSILON)；FILl (ZETA)；FLJ12584；FLJ25530；FLRTI (纖連蛋白(fibronectin))；FLT1；FOS；FOSL1 (FRA-1)；FY (DARC)；GABRP (GABAa)；GAGEB1；GAGEC1；GALNAC4S-6ST；GATA3；GDF5；GFI1；GGT1；GM-CSF；GNASI；GNRHI；GPR2 (CCR10)；GPR31；GPR44；GPR81 (FKSG80)；GRCCIO (C10)；GRP；GSN (凝溶膠蛋白(Gelsolin))；GSTP1；HAVCR2；HDAC4；HDAC5；HDAC7A；HDAC9；HGF；HIF1A；HOP1；組織胺及組織胺受體；HLA-A；HLA-DRA；HM74；HMOXI；HUMCYT2A；ICEBERG；ICOSL；1D2；IFN-a；IFNA1；IFNA2；IFNA4；IFNA5；IFNA6；IFNA7；IFNB1；IFNγ；DFNW1；IGBP1；IGF1；IGF1R；IGF2；IGFBP2；IGFBP3；IGFBP6；IL-l；IL10；IL10RA；IL10RB；IL11；IL11RA；IL-12；IL12A；IL12B；IL12RB1；IL12RB2；IL13；IL13RA1；IL13RA2；IL14；IL15；IL15RA；IL16；IL17；IL17B；IL17C；IL17R；IL18；IL18BP；IL18R1；IL18RAP；IL19；IL1A；IL1B；ILIF10；IL1F5；IL1F6；IL1F7；IL1F8；IL1F9；IL1HY1；IL1R1；IL1R2；IL1RAP；IL1RAPL1；IL1RAPL2；IL1RL1；IL1RL2, ILIRN；IL2；IL20；IL20RA；IL21 R；IL22；IL22R；IL22RA2；IL23；IL24；IL25；IL26；IL27；IL28A；IL28B；IL29；IL2RA；IL2RB；IL2RG；IL3；IL30；IL3RA；IL4；IL4R；IL5；IL5RA；IL6；IL6R；IL6ST (醣蛋白130)；EL7；EL7R；EL8；IL8RA；DL8RB；IL8RB；DL9；DL9R；DLK；INHA；INHBA；INSL3；INSL4；IRAK1；ERAK2；ITGA1；ITGA2；ITGA3；ITGA6 (a6整合素(a6 integrin))；ITGAV；ITGB3；ITGB4 (b4整合素(b4 integrin))；JAG1；JAK1；JAK3；JUN；K6HF；KAI1；KDR；KITLG；KLF5 (GC Box BP)；KLF6；KLKIO；KLK12；KLK13；KLK14；KLK15；KLK3；KLK4；KLK5；KLK6；KLK9；KRT1；KRT19 (角蛋白19 (Keratin 19))；KRT2A；KHTHB6 (毛髮特異性H型角蛋白(hair-specific type H keratin))；LAMAS；LEP (瘦素)；Lingo-p75；Lingo-Troy；LPS；LTA (TNF-b)；LTB；LTB4R (GPR16)；LTB4R2；LTBR；MACMARCKS；MAG或OMgp；MAP2K7 (c-Jun)；MDK；MIB1；中期因子(midkine)；MEF；MIP-2；MKI67；(Ki-67)；MMP2；MMP9；MS4A1；MSMB；MT3 (金屬硫蛋白-111 (metallothionectin-111))；MTSS1；MUC1 (黏蛋白(mucin))；MYC；MY088；NCK2；神經蛋白聚糖(neurocan)；NFKB1；NFKB2；NGFB (NGF)；NGFR；NgR-Lingo；NgR-Nogo66 (Nogo)；NgR-p75；NgR-Troy；NME1 (NM23A)；NOX5；NPPB；NR0B1；NR0B2；NR1D1；NR1D2；NR1H2；NR1H3；NR1H4；NR112；NR113；NR2C1；NR2C2；NR2E1；NR2E3；NR2F1；NR2F2；NR2F6；NR3C1；NR3C2；NR4A1；NR4A2；NR4A3；NR5A1；NR5A2；NR6A1；NRP1；NRP2；NT5E；NTN4；ODZI；OPRD1；P2RX7；PAP；PART1；PATE；PAWR；PCA3；PCNA；POGFA；POGFB；PECAM1；PF4 (CXCL4)；PGF；PGR；磷酸酶蛋白聚糖(phosphacan)；PIAS2；PIK3CG；PLAU (uPA)；PLG；PLXDC1；PPBP (CXCL7)；PPID；PRI；PRKCQ；PRKDI；PRL；PROC；PROK2；PSAP；PSCA；PTAFR；PTEN；PTGS2 (COX-2)；PTN；RAC2 (p21 Rac2)；RARB；RGSI；RGS13；RGS3；RNF110 (ZNF144)；ROBO2；S100A2；SCGB1D2 (親脂性蛋白B (lipophilin B))；SCGB2A1 (乳腺珠蛋白2 (mammaglobin2))；SCGB2A2 (乳腺珠蛋白1 (mammaglobin 1))；SCYEI (內皮單核細胞活化細胞激素)；SDF2；SERPINA1；SERPINA3；SERP1NB5 (乳腺絲抑蛋白(maspin))；SERPINE1 (PAI-1)；SERPDMF1；SHBG；SLA2；SLC2A2；SLC33A1；SLC43A1；SLIT2；SPPI；SPRR1B (Sprl)；ST6GAL1；STABI；STAT6；STEAP；STEAP2；TB4R2；TBX21；TCPIO；TOGFI；TEK；TGFA；TGFBI；TGFB1II；TGFB2；TGFB3；TGFBI；TGFBRI；TGFBR2；TGFBR3；THIL；THBSI (血小板反應蛋白-1 (thrombospondin-1))；THBS2；THBS4；THPO；TIE (Tie-1)；TMP3；組織因子；TLR1；TLR2；TLR3；TLR4；TLR5；TLR6；TLR7；TLR8；TLR9；TLR10；TNF；TNF-a；TNFAEP2 (B94)；TNFAIP3；TNFRSFIIA；TNFRSF1A；TNFRSF1B；TNFRSF21；TNFRSF5；TNFRSF6 (Fas)；TNFRSF7；TNFRSF8；TNFRSF9；TNFSF10 (TRAIL)；TNFSF11 (TRANCE)；TNFSF12 (AP03L)；TNFSF13 (April)；TNFSF13B；TNFSF14 (HVEM-L)；TNFSF15 (VEGI)；TNFSF18；TNFSF4 (OX40配位體)；TNFSF5 (CD40配位體)；TNFSF6 (FasL)；TNFSF7 (CD27配位體)；TNFSFS (CD30配位體)；TNFSF9 (4-1 BB配位體)；TOLLIP；Toll樣受體；TOP2A (拓撲異構酶Ea)；TP53；TPM1；TPM2；TRADD；TRAF1；TRAF2；TRAF3；TRAF4；TRAF5；TRAF6；TREM1；TREM2；TRPC6；TSLP；TWEAK；VEGF；VEGFB；VEGFC；多能蛋白聚糖(versican)；VHL C5；VLA-4；XCL1 (淋巴細胞趨化激素)；XCL2 (SCM-1b)；XCRI (GPR5/CCXCRI)；YY1；及ZFPM2。
使用本文所提供之方法生產之抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)之較佳分子性標靶分子包括CD蛋白質，諸如ErbB受體家族，諸如EGF受體、HER2、HER3或HER4受體之CD3、CD4、CDS、CD16、CD19、CD20、CD34、CD64、CD200成員；細胞黏附分子，諸如LFA-1、Mac1、p150.95、VLA-4、ICAM-1、VCAM、α4/β7整合素及αv/β3整合素，包括其α或β次單元(例如抗CD11a、抗CD18或抗CD11b抗體)；生長因子，諸如VEGF-A、VEGF-C；組織因子(TF)；α干擾素(αIFN)；TNFα；介白素，諸如IL-1 β、IL-3、IL-4、IL-5、IL-S、IL-9、IL-13、IL 17 AF、IL-1S、IL-13R α1、IL13R α2、IL-4R、IL-5R、IL-9R、IgE；血型抗原；flk2/flt3受體；肥胖(OB)受體；mpl受體；CTLA-4；RANKL、RANK、RSV F蛋白質、蛋白質C，等等。
在一個實施例中，使用本文所提供之方法生產之抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)結合低密度脂蛋白受體相關蛋白質(LRP)-1或LRP-8或轉鐵蛋白受體，及至少一個選自由以下組成之群的標靶：1) β-分泌酶(BACE1或BACE2)、2) α-分泌酶、3) γ-分泌酶、4) τ-分泌酶、5)澱粉樣蛋白前驅蛋白(APP)、6)死亡受體6 (DR6)、7)澱粉樣蛋白β肽、8) α-突觸核蛋白(alpha-synuclein)、9)帕金蛋白(Parkin)、10)亨廷頓蛋白(Huntingtin)、11) p75 NTR及12)半胱天冬酶-6 (caspase-6)。
在一個實施例中，使用本文所提供之方法生產之抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)結合至至少兩個選自由以下組成之群的標靶分子：IL-1 α及IL-1 β、IL-12及IL-1S；IL-13及IL-9；IL-13及IL-4；IL-13及IL-5；IL-5及IL-4；IL-13及IL-1β；IL-13及IL-25；IL-13及TARC；IL-13及MDC；IL-13及MEF；IL-13及TGF-~；IL-13及LHR促效劑；IL-12及TWEAK、IL-13及CL25；IL-13及SPRR2a；IL-13及SPRR2b；IL-13及ADAMS、IL-13及PED2、IL17A及IL 17F、CD3及CD19、CD138及CD20；CD138及CD40；CD19及CD20；CD20及CD3；CD3S及CD13S；CD3S及CD20；CD3S及CD40；CD40及CD20；CD-S及IL-6；CD20及BR3、TNF α及TGF-β、TNF α及IL-1 β；TNF α及IL-2、TNF α及IL-3、TNF α及IL-4、TNF α及IL-5、TNF α及IL6、TNF α及IL8、TNF α及IL-9、TNF α及IL-10、TNF α及IL-11、TNF α及IL-12、TNF α及IL-13、TNF α及IL-14、TNF α及IL-15、TNF α及IL-16、TNF α及IL-17、TNF α及IL-18、TNF α及IL-19、TNF α及IL-20、TNF α及IL-23、TNF α及IFN α、TNF α及CD4、TNF α及VEGF、TNF α及MIF、TNF α及ICAM-1、TNF α及PGE4、TNF α及PEG2、TNF α及RANK配位體、 TNF α及Te38、TNF α及BAFF、TNF α及CD22、TNF α及CTLA-4、TNF α及GP130、TNF a及IL-12p40、VEGF及HER2、VEGF-A及HER2、VEGF-A及PDGF、HER1及HER2、VEGFA及ANG2、VEGF-A及VEGF-C、VEGF-C及VEGF-D、HER2及DR5、VEGF及IL-8、VEGF及MET、VEGFR及MET受體、EGFR及MET、VEGFR及EGFR、HER2及CD64、HER2及CD3、HER2及CD16、HER2及HER3；EGFR (HER1)及HER2、EGFR及HER3、EGFR及HER4、IL-14及IL-13、IL-13及CD40L、IL4及CD40L、TNFR1及IL-1 R、TNFR1及IL-6R及TNFR1及IL-18R、EpCAM及CD3、MAPG及CD28、EGFR及CD64、CSPGs及RGM A；CTLA-4及BTN02；IGF1及IGF2；IGF1/2及Erb2B；MAG及RGM A；NgR及RGM A；NogoA及RGM A；OMGp及RGM A；POL-l及CTLA-4；及RGM A及RGM B。
視情況接合至其他分子之可溶性抗原或其片段可用作用於產生抗體之免疫原。對於跨膜分子，諸如受體、此等之片段(例如受體之細胞外結構域)可用作免疫原。或者，表現跨膜分子之細胞可用作免疫原。此類細胞可來源於天然來源(例如癌細胞株)或可為已藉由重組技術轉型以表現跨膜分子之細胞。適用於製備抗體之其他抗原及其形式將為熟習此項技術者顯而易見。 活性檢定
可藉由此項技術中已知之各種檢定對使用本文所提供之方法生產之抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)的物理/化學特性及生物功能進行特徵化。此類檢定包括但不限於N端定序、胺基酸分析、非變性尺寸排阻高壓液相層析(HPLC)、質譜法、離子交換層析及木瓜蛋白酶消化。
在某些實施例中，分析使用本文所提供之方法生產之抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)的生物活性。在一些實施例中，測試使用本文所提供之方法生產之抗體(例如雙特異性或多特異性抗體)的抗原結合活性。此項技術中已知且可用於本文中之抗原結合檢定包括但不限於使用以下技術之任何直接或競爭結合檢定：諸如西方墨點法、放射免疫檢定、ELISA (酶聯免疫吸附檢定)、「夾心」免疫檢定、免疫沈澱檢定、螢光免疫檢定及蛋白質A免疫檢定。
前述書面描述視為足以使熟習此項技術者能夠實踐本發明。提供以下實例僅用於說明性目的，且不欲以任何方式限制本發明之範疇。實際上，除本文展示及描述之彼等以外之各種修改自前述描述將為熟習此項技術者顯而易見且處於隨附申請專利範圍之範疇內。 實例 實例 1 ：方法及材料 抗體構築體設計及合成
以下實例中之所有抗體皆使用Kabat (Kabat等人 「Sequences of Proteins of Immunological Interest.」 Bethesda, MD: NIH, 1991)及EU (Edelman等人 「The covalent structure of an entire gammaG immunoglobulin molecule.」Proc Natl Acad Sci U S A 1969; 63:78-85)編號系統分別對可變及恆定結構域進行編號。如先前所述(Dillon等人 「Efficient production of bispecific IgG of different isotypes and species of origin in single mammalian cells.」MAbs 2017; 9:213-30)，藉由基因合成(GENEWIZ®)產生抗體構築體且在適用情況下次選殖至表現質體(pRK5)中。使本研究中之所有抗體HC去糖基化(N297G突變)且缺失羧基端離胺酸(∆K447)以減少產物異質性且從而促進BsIgG藉由LCMS準確定量(Dillon等人 (如下)；Yin等人 「Precise quantification of mixtures of bispecific IgG produced in single host cells by liquid chromatography-Orbitrap high-resolution mass spectrometry.」MAbs 2016; 8:1467-76)。對本研究中之所有BsIgG之兩組分HC進行工程改造以在第一所列抗體中含有『杵』突變(例如T366W)或在第二所列抗體中含有『臼』突變(例如T366S:L368A:Y407V)以促進HC異源二聚(Atwell等人 「Stable heterodimers from remodeling the domain interface of a homodimer using a phage display library.」J Mol Biol 1997; 270:26-35)。
對於本研究中之少數BsIgG，明智地製造FR突變以提供正確配對與錯配之BsIgG種類之間足夠的質量差異用於藉由LCMS分析更準確定量。雙特異性IgG產率之準確定量所需要之質量差異≤118 Da (Yin等人 (如下))。特定而言，抗體及突變當與抗CD3或變異體( 表 A 中)、抗IL-1β或抗GFRα ( 表 B )組合時為抗HER2 VL R66G；當與抗ANG2或變異體( 表 F 中)組合時為抗VEGFA VL F83A；當與抗因子D 25D7 v1或抗IL-33或抗HER2 ( 表 G2 中)組合時為抗CD3 VL N34A:F83A；當與抗CD3組合時為抗RSPO3 VL F83A；當與抗SIRPα或抗因子D 20D12 v1組合時為抗EGFR VL F83A；以及當與抗GFRα1 ( 表 B 或 圖 1A-1F )組合時為抗IL-4 VL N31A:F83A。基於與親本抗體之比較，所選殘基對BsIgG產率無可偵測之影響。抗體表現及純化
如先前所述(Dillon等人 (同上))在源自HEK293之EXPI293F™細胞中短暫表現所有BsIgG。將對應於兩個LC及兩個HC之四個質體共轉染至EXPI293F™細胞(Thermo Fisher Scientific)中。改變各實驗之LC DNA且如先前所述(Dillon等人 (同上))報導在最佳HC:LC比率下之最高雙特異性產率。將兩個HC之比率固定於1:1。在37℃振盪下使經轉染之細胞培養物(30 mL)生長7天。藉由蛋白質A親和層析(TOYOPEARL® AF-rProtein A, Tosoh Bioscience)以高通量方式純化來自經過濾之細胞培養物上清液之BsIgG。藉由尺寸排阻層析使用ZENIX®-C SEC-300管柱(10 mm × 300 mm，3 μm粒度，Sepax Technology)移除諸如聚集體及半IgG1 之雜質。使用1.5之消光係數A0.1% 280nm 計算IgG1 濃度。在蛋白質A層析之後藉由用蛋白質濃度乘以溶離體積來估算純化產量。BsIgG 藉由 SEC HPLC 之分析特徵化
在等度條件下經由尺寸排阻層析在連接至HPLC管柱(DIONEX™ UltiMate 3000, Thermo Fisher Scientific)之TSKGEL® SuperSW3000管柱(4.6 × 150 mm，4 μm) (Tosoh Bioscience)上層析BsIgG樣品(20 μL)。移動相為200 mM磷酸鉀及250 mM氯化鉀(pH 7.2)，流動速率0.3 mL/min，在280 nm波長下進行吸光度量測。藉由高解析度 LCMS 之 BsIgG 產率確定
如先前所述經由質譜法(Thermo Fisher EXACTIVE™ Plus Extended Mass Range ORBITRAP™)進行BsIgG產率(正確配對之LC種類對比全部三個錯配之IgG1 種類之強度)之定量，且在不同質量峰之間未呈現反應偏向(參見Yin等人 (如下))。
對於變性質譜法，將樣品(3 μg)注射至使用Dionex ULTIMATE™ 3000快速分離液相層析(RSLC)系統之加熱至80℃之逆相液相層析管柱(MABPAC™, Thermo Fisher Scientific, 2.1 mm × 50 mm)上。二元梯度泵用於遞送溶劑A (含有0.1%甲酸及0.02%三氟乙酸之99.88%水)及溶劑B (含有9.88%水加上0.1%甲酸及0.02%三氟乙酸之90%乙腈)，以300 μL/min經4.5 min之梯度為20%至65%溶劑B。使溶劑經0.1 min逐步變化至90%溶劑B且在90%下保持6.4 min以清潔管柱。最後，使溶劑經0.1 min逐步變化至20%溶劑B且保持3.9 min用於再平衡。經由電噴霧電離至質譜儀中線上分析樣品，使用以下參數用於數據擷取：3.90 kV噴霧電壓；325℃毛細管溫度；200 S-透鏡RF水準；ESI源中之15鞘流氣流動速率及4 AUX氣體流動速率；1,500至6,000m/z 掃描範圍；去溶劑化、源內CID 100 eV，CE 0；在m/z 200下17,500之解析度；正極性；10次微掃描；3E6 AGC標靶；固定AGC模式；0平均化；25 V源DC偏移；8 V注射平極DC；7 V交互平極透鏡；6 V彎曲平極DC；0 V傳輸多極DC調諧偏移；0 V C-阱入口透鏡調諧偏移；及2之截留氣壓力設定。
對於原生質譜法，將樣品(10 μg)注射至使用Dionex ULTIMATE™ 3000 RSLC系統之加熱至30℃之Acquity UPLC™ BEH尺寸排阻層析管柱(Waters, 4.6 mm × 150 mm)上。等度層析操作(10 min)利用含有50 mM乙酸銨(pH 7.0)之水性移動相，流動速率300 μL/min。
經由電噴霧電離至質譜儀中線上分析樣品，使用以下參數用於數據擷取：4.0 kV噴霧電壓；320℃毛細管溫度；200 S-透鏡RF水準；ESI源中之4鞘流氣流動速率及0 AUX氣體流動速率；300至20,000m/z 掃描範圍；去溶劑化、源內CID 100 eV，CE 0；在m/z 200下17,500之解析度；正極性；10次微掃描；1E6 AGC標靶；固定AGC模式；0平均化；25 V源DC偏移；8 V注射平極DC；7 V交互平極透鏡；6 V彎曲平極DC；0 V傳輸多極DC調諧偏移；0 V C-阱入口透鏡調諧偏移；及2之截留氣壓力設定。
使用Protein Metrics Intact Mass™軟體及Thermo Fisher BIOPHARMA FINDER™ 3.0軟體分析所擷取之質譜數據。來自各樣品之解卷積光譜之正確配對之LC種類之信號強度用於相對於三個錯配之IgG1 種類定量。HC同源二聚體及半IgG為不可偵測的或以微量存在且自計算中排除。藉由使用先前所述之代數公式(參見Yin等人 (如下))自BsIgG與雙重LC錯配之IgG1 的同量異位混合物估算正確LC配對之BsIgG。BsIgG 之 SDS-PAGE 凝膠分析
藉由SDS-PAGE分析藉由蛋白質A及尺寸排阻層析純化之BsIgG。分別在存在及不存在DTT之情況下製備樣品用於分析還原與非還原條件下之電泳移動率。在95℃下將與樣品染料混合之樣品與DTT一起加熱5 min或不與DTT一起加熱1 min，且在120 V下於4-20% Tris-甘胺酸凝膠(Bio-Rad)上經電泳。接著將凝膠用GELCODETM 藍色蛋白質染料(Thermo Fisher Scientific)染色且在水中脫色。對於各樣品加載等量蛋白質(6 μg)。動力學結合實驗
在BIAcore T200儀器(GE Healthcare)上使用表面電漿子共振進行動力學結合實驗。將抗Fab (GE Healthcare)固定[約12000個共振單位(RU)]於CM5感測器晶片上。將親本及突變體Fab捕獲至經固定之表面上且評估分析物之結合。使用3分鐘之注射時間、50 µl/min之流動速率在25℃之溫度下產生以下分析物濃度之感測圖：0、0.293、1.17、4.6875、18.75、75、300 nM HER2-ECD (自有)及VEGF-C (Cys156Ser) (R&D Systems，目錄號752-VC)；0、0.0195、0.0781、0.3125、1.25、5、20 mM VEGF165 (R&D Systems，目錄號293-VE)及IL-13 (自有)；0、0.0732、0.293、1.17、4.6875、18.75、75 nM MET-R Fc (R&D Systems，目錄號8614-MT)、IL-1β (R&D Systems，目錄號201-LB/CF)、EGFR Fc (R&D Systems，目錄號344-ER)；0、0.976、3.906、15.625、62.5、250 nM生物素化CD3 (自有)。在注射分析物之後監測解離900秒。所使用之操作緩衝液為10 mM HEPES (pH 7.4)、150 mM NaCl、0.003% EDTA、0.05% Tween (HBS-EP+, GE Healthcare)。在每次注射之後用10 mM甘胺酸(pH 2.1)再生晶片表面。使用雙空白參考(扣除零分析物濃度及空白參考池)校正感測圖。接著使用1:1朗謬模型由製造商所提供之軟體分析感測圖。 實例 2 ：闡明重鏈 / 輕鏈配對偏好以有助於單一細胞中雙特異性 IgG 之裝配 引言
在此處所述之研究中，高通量生產及高解析度LCMS分析(Dillon等人 「Efficient production of bispecific IgG of different isotypes and species of origin in single mammalian cells.」MAbs 2017; 9:213-30；Yin等人 「Precise quantification of mixtures of bispecific IgG produced in single host cells by liquid chromatography-Orbitrap high-resolution mass spectrometry.」MAbs 2016; 8:1467-76)用於調查99個具有杵臼HC而無Fab突變之不同抗體對的BsIgG產率。三分之一的抗體對顯示高(＞65%) BsIgG產率，與強固有同源HC/LC鏈配對偏好一致。對於此類抗體對在兩個CH 1/CL 結構域界面處安置先前所鑑別之電荷突變(Dillon等人 「Efficient production of bispecific IgG of different isotypes and species of origin in single mammalian cells.」MAbs 2017; 9:213-30)用於增強BsIgG產生。緊接著，吾等研究一個或兩個臂中之同源鏈配對偏好是否為BsIgG之高產率所需。突變分析用於鑑別CDR H3及L3中對高BsIgG產率有貢獻之特異性殘基。接著將所鑑別之CDR H3及L3及特異性殘基插入顯示隨機HC/LC鏈配對之其他可用之無關抗體中以確定其對BsIgG產率之影響。最後，突變分析用於研究鏈間二硫鍵對BsIgG產率之影響。組成性抗體對對於 BsIgG 產率之影響
先前，對於兩個雙特異性抗體，亦即，抗EGFR/MET及抗IL-13/IL-4觀測到具有杵臼重鏈(HC)突變而無Fab臂突變之BsIgG之高產率(＞65%) (Dillon等人 (如下))。為研究同源重鏈/輕鏈(HC/LC)配對偏好出現之強度及頻率，一大組抗體對(n = 99)用於產生BsIgG。為簡單起見，本研究中之所有雙特異性抗體皆用人類IgG1 HC恆定結構域構築。結合至IL-13、IL-4、MET、EGFR、HER2或CD3之六個抗體(Dillon等人 (如下))用於構築全部15個可能BsIgG1 之矩陣。緊接著，將此六個抗體與14個額外抗體一起排列，該等額外抗體主要為κ LC同型，其中三個為λ LC同型(抗DR5、抗α5 β1 、抗RSPO2) (參見下 表 A )。在 表 A 中，藉由使用專用比對工具將LC及HC序列與人類抗體生殖系基因譜系相比較來鑑別生殖系基因家族。報導具有生殖系基因區段之最接近匹配。除三個完全人類抗體(抗CD33、抗PDGF-C、抗Flu B)以外，本研究中所用之所有抗體皆為人源化抗體。 表 A ：評價 LC/HC 配對偏好之不同抗體之生殖系基因家族及 LC 同型分析。
抗體 / 純系 抗原結合特異性 LC 同型 生殖系基因家族 參考文獻
VL VH
來瑞珠單抗 IL-13 κ KV4 HV2 Ultsch等人
19C11 IL-4 κ KV1 HV3 Spiess等人
奧納妥珠單抗/5D5 MET κ KV1 HV3 Merchant等人
D1.5 EGFR κ KV1 HV3 Schaefer等人
曲妥珠單抗(Trastuzumab)/humAb4D5-8 HER2 κ KV1 HV3 Carter等人
humAbUCHT1 v9 CD3 κ KV1 HV3 Rodrigues等人
25D7 v1 因子D κ KV4 HV2 na
5D6 RSPO3 κ KV1 HV4 na
10C12 IL-33 κ KV3 HV3 na
19D1 v4.1 SIRPα κ KV1 HV1 na
20D12 v1 因子D κ KV1 HV1 na
8E11 v2 LGR5 κ KV4 HV1 na
2H12 v6.11 IL-1β κ KV1 HV3 na
7C9 v8 GFRα1 κ KV1 HV3 Bhakta等人
阿泊單抗(Apomab) DR5 λ LV3 HV3 Adams等人
1A1 RSPO2 λ LV2 HV3 na
na α5 β1 λ LV3 HV3 na
46B8 FluB κ KV2 HV5 na
1E5 v3.1 PDGF-C κ KV4 HV1 na
GM15.33 CD33 κ KV2 HV1 na
KV = κ可變；LV = λ可變；HV = 重可變；na = 不可用。 1.    Merchant M, Ma X, Maun HR, Zheng Z, Peng J, Romero M, Huang A, Yang NY, Nishimura M, Greve J, et al. Monovalent antibody design and mechanism of action of onartuzumab, a MET antagonist with anti-tumor activity as a therapeutic agent. Proc Natl Acad Sci U S A 2013; 110:E2987-96. 2.    Schaefer G, Haber L, Crocker LM, Shia S, Shao L, Dowbenko D, Totpal K, Wong A, Lee CV, Stawicki S, et al. A two-in-one antibody against HER3 and EGFR has superior inhibitory activity compared with monospecific antibodies. Cancer Cell 2011; 20:472-86. 5.    Ultsch M, Bevers J, Nakamura G, Vandlen R, Kelley RF, Wu LC, Eigenbrot C. Structural basis of signaling blockade by anti-IL-13 antibody lebrikizumab. J Mol Biol 2013; 425:1330-9. 6.    Spiess C, Bevers J, 3rd, Jackman J, Chiang N, Nakamura G, Dillon M, Liu H, Molina P, Elliott JM, Shatz W, et al. Development of a human IgG4 bispecific antibody for dual targeting of interleukin-4 (IL-4) and interleukin-13 (IL-13) cytokines. J Biol Chem 2013; 288:26583-93. 8.    Carter P, Presta L, Gorman CM, Ridgway JB, Henner D, Wong WL, Rowland AM, Kotts C, Carver ME, Shepard HM. Humanization of an anti-p185HER2 antibody for human cancer therapy. Proc Natl Acad Sci U S A 1992; 89:4285-9. 9.    Rodrigues ML, Shalaby MR, Werther W, Presta L, Carter P. Engineering a humanized bispecific F(ab')2 fragment for improved binding to T cells. Int J Cancer Suppl 1992; 7:45-50. 10.  Bhakta S, Crocker LM, Chen Y, Hazen M, Schutten MM, Li D, Kuijl C, Ohri R, Zhong F, Poon KA, et al. An anti-GDNF family receptor alpha 1 (GFRA1) antibody-drug conjugate for the treatment of hormone receptor-positive breast cancer. Mol Cancer Ther 2018; 17:638-49. 11.  Adams C, Totpal K, Lawrence D, Marsters S, Pitti R, Yee S, Ross S, Deforge L, Koeppen H, Sagolla M, et al. Structural and functional analysis of the interaction between the agonistic monoclonal antibody Apomab and the proapoptotic receptor DR5. Cell Death Differ 2008; 15:751-61.
緊接著，將下 表 B 中所示之抗體對以最佳化之鏈比率在源自HEK293之EXPI293F™細胞中共表現，且用先前所述方法之改良版本(參見Dillon等人, Yin等人 (如下))確定BsIgG之產率。無一抗體對含有Dillon等人 (如下)中所述之Fab突變。所有雙特異性抗體對包含杵臼突變用於重鏈異源二聚。
在抗體對共表現及蛋白質A層析之後，藉由尺寸排阻層析(SEC)進一步純化經純化之IgG1 彙集物以移除在藉由高解析度LCMS定量之前所存在之任何少量聚集體及半IgG1 。使用先前開發之代數公式(參見Yin等人 (如下))估算亦含有LC亂序之IgG1 之同量異位(亦即，相同分子質量)混合物中正確裝配之BsIgG之產率。 表 B 中所示之數據為來自最佳化LC DNA比率之BsIgG之產率。＞65%之BsIgG產率以粗體指示。mAb-1之HC含有『臼』突變(T366S:S368A:Y407V)且mAb-2之HC含有『杵』突變(T366W) (Atwell等人 「Stable heterodimers from remodeling the domain interface of a homodimer using a phage display library.」J Mol Biol 1997; 270:26-35)。 表 B ：用於研究 BsIgG 產率之半抗體對
mAb-1
mAb-2 IL-13 MET EGFR CD3 IL-4 HER2
IL-13 NA 87.6 87.0 75.2 70.3 66.6
MET 86.6 NA 72.3 60.7 53.1 59.9
EGFR 86.3 72.4 NA 23.9 45.4 22.0
CD3 75.5 54.8 32.5 NA 25.0 22.7
IL-4 68.7 58.0 44.1 26.9 NA 22.6
HER2 64.6 65.4 21.6 24.1 25.0 NA
                    
DR5 90.4 95.1 53.3 53.4 53.8 34.7
FluB 87.7 69.5 52.3 32.0 60.8 72.7
RSPO3 84.7 58.6 82.1 40.6 26.0 22.0
因子D 25D7 v1 83.6 73.1 69.3 83.1 35.5 68.7
RSPO2 83.5 51.1 78.5 38.7 22.3 71.3
IL-13 74.2 63.5 80.4 77.8 63.7 65.9
GFRα1 73.9 40.6 77.5 79.6 33.5 68.0
PDGF-C 61.2 71.0 54.6 56.0 34.2 24.3
CD33 49.8 58.8 49.6 36.4 56.5 51.5
α5 β1 45.9 62.2 31.0 41.4 48.4 72.6
IL-33 45.6 21.4 30.9 20.4 42.4 46.6
SIRPα 41.7 31.0 22.6 60.6 47.9 31.8
因子D 20D12 v1 23.5 29.8 58.0 36.0 22.6 69.6
LGR5 21.7 56.2 53.8 23.6 22.8 22.1
NA= 不適用；單特異性抗體。
99個獨特抗體對之BsIgG1 產率在極廣泛之範圍內變化：22-95% (參見 表 B )。顯著地，對於大多數(＞80%)抗體對觀測到非隨機HC/LC配對(＞30% BsIgG1 產率)，其中對於33個及48個抗體對分別觀察到高(＞65%)及中間(30-65%) BsIgG1 產率。對於兩個抗體對(抗MET/DR5及抗IL-13/DR5)量測到BsIgG1 之近定量(＞90%)形成。
圖 1A-1F 展示BsIgG1 之低產率(＜30%，例如抗LGR5/IL-4，參見 圖 1A 及 1B )、中間產率(30%-65%，例如抗SIRPα/IL-4，參見 圖 1C 及 1D )及高產率(＞65%，例如抗MET/DR5，參見 圖 1E 及 1F )之代表性實例的高解析度LCMS數據。將相應抗體對短暫共轉染至源自HEK293之EXPI293F™細胞中。如Dillon等人 (如下)及Yin等人 (如下)中所述，在藉由高解析度LCMS定量BsIgG1 產率之前，藉由蛋白質A層析及尺寸排阻層析純化IgG1 種類。 圖 1A 、 1C 及 1E 中所示之數據為電荷態38+及39+之質量包絡，且 圖 1B 、 1D 及 1F 展示相應解卷積數據且提供代表所存在之不同IgG1 種類之動畫。
所研究之各抗體之BsIgG1 產率視其搭配抗體而定在廣泛範圍內變化。舉例而言，抗MET抗體之BsIgG1 產率自低至與抗IL-33配對時之約21%變化至高達與抗DR5配對時之約95% ( 表 B )。為研究『杵』及『臼』突變對同源HC/LC配對偏好之任何影響，用含有mAb1中之『杵』突變及mAb2中之『臼』突變的HC生產BsIgG1 ，反之亦然( 表 B )。BsIgG1 之產率在所測試之所有情況(n = 15)下受HC含有『杵』及『臼』突變之影響最小( 表 B )。藉由蛋白質A層析自30 mL培養物中之IgG種類之回收變化超過約5倍(1.5至8.0 mg)。
上述結果指示無Fab突變之BsIgG1 之高產率為依賴於組成性抗體對之常見現象。CH 1/CL 界面電荷突變對具有同源 HC/LC 配對偏好之抗體對之 BsIgG1 產率的影響
先前，在全部四個結構域/結構域界面(亦即，兩個VH /VL 及兩個CH 1/CL )處之突變聯合杵臼HC突變之組合用於在單一哺乳動物宿主細胞中不同同型之BsIgG之近定量裝配(參見Dillon等人 (如下))。此處，鑑別出產生無任何Fab突變之BsIgG1 之高產率之抗體對( 表 B )。此等抗體對之不同之處在於其可變結構域序列，而恆定結構域，亦即，IgG1 CH 1及k CL ，在大多數情況下一致。假設對於此類抗體對，在單獨兩個CH 1/CL 界面處之突變可能足以使正確裝配之雙特異性抗體之產率提高至約100%。選擇十一個不同抗體對，且在存在或不存在先前所報導之CH 1/CL 結構域界面電荷突變之情況下比較BsIgG1 之產率(參見Dillon等人 (如下))。特定而言，『杵』臂經工程改造成具有CL V133E及CH 1 S183K突變且『臼』臂具有CL V133K及CH 1 S183E突變(參見Dillon等人 (如下))。在兩個CH 1/CL 界面處之電荷突變使所有抗體對之BsIgG1 產率在大多數(9/11)情況下增加約12-34%達到≥ 90% BsIgG1 產率( 圖 2 )。對於 圖 2 中之電荷對變異體，該對中之第一所列抗體含有CL V133E及CH 1 S183K突變，且第二所列抗體含有CL V133K及CH 1 S183E突變(參見Dillon等人 (如下))。BsIgG1 之90%產率由 圖 2 中之水平虛線指示。CL V133E及CH 1 S183K突變不影響抗體對其標靶抗原之親和力(數據未示出)。BsIgG 之一個臂中之同源 HC/LC 配對偏好對 BsIgG 產率之影響
研究對於一些抗體對所觀測之BsIgG1 之高產率的機理基礎。在本研究中基於無Fab突變之BsIgG1 之高產率選擇兩個抗體對，亦即，抗EGFR/MET及抗IL-4/IL-13 (參見 表 B 及Dillon等人 (如下))。先驗地，一個或兩個Fab可展現對BsIgG1 之高產率有貢獻之同源HC/LC配對偏好。採用三個鏈共表現實驗以區分此等可能性。將具有『杵』或『臼』突變之單一HC (HC1)與其同源LC (LC1)及競爭性非同源LC (LC2)一起在Expi293F™細胞中短暫共表現( 圖 3 )。 圖 3 中之星號表示HC中「杵」或「臼」突變之存在。(抗EGFR、抗IL13及抗HER2之HC含有「杵」突變(T366W)，而抗MET、抗IL4及抗CD3之HC含有「臼」突變(T366S:S368A:Y407V) (參見Atwell等人 「Stable heterodimers from remodeling the domain interface of a homodimer using a phage display library.」J Mol Biol 1997; 270:26-35)。) 藉由蛋白質A親和層析自相應細胞培養物上清液中純化所得半IgG種類且藉由高解析度LCMS評估同源及非同源HC/LC配對之程度(Dillon等人及Yin等人 (如下))。藉由定量半IgG1 種類計算同源HC/LC配對之百分比。
如下 表 C 中所示，抗MET HC顯示對其同源LC之偏好(約71%)強於非同源抗EGFR LC，而抗EGFR HC顯示對其同源LC之偏好(約56%)僅略超過非同源抗MET LC。抗IL-13 HC顯示對其同源LC之偏好(81%)強於非同源抗IL-4 LC，而抗IL-4 HC顯示對其同源LC無偏好(49%)。此等數據與抗EGFR/MET之高BsIgG1 產率分別由抗MET及抗EGFR抗體之強及弱同源HC/LC配對偏好引起的概念一致。相比之下，抗IL-13/IL-4之高BsIgG1 產率表觀上反映單獨抗IL-13抗體之強同源HC/LC配對偏好。因此，在一個或兩個臂中之同源HC/LC配對偏好可表觀上足以用於單一細胞中BsIgG1 之高產率而無需Fab突變。 表 C ：在共表現之後抗體同源鏈偏好之定量。
HC1 LC1 LC2 HC/LC 配對 (%)
同源 非同源
MET MET EGFR 70.6 29.4
EGFR MET EGFR 56.4 43.6
IL-13 IL-13 IL-4 81.0 19.0
IL-4 IL-13 IL-4 49.1 50.9
HER2 HER2 CD3 51.0 49.0
CD3 HER2 CD3 46.4 53.6
抗HER2/CD3基於其BsIgG1 之低產率而選作本研究之對照(參見 表 B 及Dillon等人 (如下))。抗HER2 HC顯示對其同源LC之配對偏好不超過非同源抗CD3 LC。類似地，抗CD3 HC顯示對其同源LC之配對偏好不超過非同源抗HER2 LC (參見 表 C )。
亦評價當在單一宿主細胞中共表現時HC與其同源輕鏈(LC) 或 非同源LC之配對。簡言之，將各HC與其同源LC或非同源LC一起共轉染至源自HEK293之EXPI293F™細胞中。藉由蛋白質A層析自細胞培養物上清液中純化IgG1及半IgG1種類且藉由LC-MS分析。(Labrijn等人 「Efficient generation of stable bispecific IgG1 by controlled Fab-arm exchange.」Proc Natl Acad Sci U S A 2013; 110:5145-50；Spiess C等人 「Bispecific antibodies with natural architecture produced by co-culture of bacteria expressing two distinct half-antibodies.」Nat Biotechnol 2013; 31:753-8)。藉由定量半IgG1種類計算同源HC/LC配對之百分比。藉由用抗體濃度乘以自高通量蛋白質A層析步驟獲得之溶離體積來估算蛋白質表現產量。抗EGFR、抗IL-13及抗HER2之HC含有『杵』突變(T366W)，而抗MET、抗IL-4及抗CD3之HC含有『臼』突變(T366S:S368A:Y407V) (參見Spiess等人 「Alternative molecular formats and therapeutic applications for bispecific antibodies.」Mol Immunol 2015; 67:95-106)。在不存在競爭之情況下，如由所測試之全部六個不同錯配HC/LC對判斷，HC可與非同源LC一起有效地裝配(參見下 表 D )。 表 D ：當在單一宿主細胞中共表現時 HC 與其同源輕鏈 (LC) 或非同源 LC 之配對
HC LC 半 IgG1 表現產量 (mg)
HC-LC 配對 (%)
MET MET 100.0 6.3
MET EGFR 100.0 6.7
EGFR EGFR 100.0 5.1
EGFR MET 100.0 6.6
IL-13 IL-13 100.0 3.0
IL-13 IL-4 100 1.9
IL-4 IL-4 100 4.8
IL-4 IL-13 100 3.1
HER2 HER2 100 5.4
HER2 CD3 100 6.1
CD3 CD3 100 4.1
CD3 HER2 100 5.0
抗 MET CDR L3 及 CDR H3 對抗 EGFR/MET BsIgG1 之產率的貢獻
研究抗MET抗體中對抗EGFR/MET BsIgG1 之高雙特異性產率有貢獻之序列決定子。抗EGFR與抗MET抗體之間的胺基酸序列差異全部位於CDR內，加上一個緊鄰CDR H3之額外構架區(FR)殘基VH 94 ( 圖 4 )。此等抗體之其餘FR加上Ck 及CH 1恆定結構域序列為一致的( 圖 4 )。如由與其抗原複合之抗MET Fab之X射線晶體結構(蛋白質資料庫(PDB)標識碼4K3J)所證明(參見Merchant等人 「Monovalent antibody design and mechanism of action of onartuzumab, a MET antagonist with anti-tumor activity as a therapeutic agent.」Proc Natl Acad Sci U S A 2013; 110:E2987-96)，CDR L3及H3為在抗MET抗體之VH /VL 結構域界面處最廣泛涉及之CDR。此等觀測結果促成以下假設：抗MET抗體之CDR L3及H3可對抗EGFR/MET BsIgG1 之高雙特異性產率有貢獻。與此觀點一致，抗MET抗體之CDR L3與H3兩者經來自抗CD3抗體之相應序列置換導致雙特異性產率之實質性損失(約85%至33%， 圖 5A )。相比之下，置換抗EGFR/MET雙特異性抗體之抗EGFR臂之CDR L3與H3兩者僅引起BsIgG產率之少量降低(約85%至75%， 圖 5A )。置換抗EGFR與抗MET臂兩者之CDR L3及H3引起隨機HC/LC配對。此等數據支持以下概念：抗MET之CDR L3及H3對抗EGFR/MET BsIgG1 所觀測之高雙特異性產率作出主要貢獻，而抗EGFR之CDR L3及H3作出次要貢獻。來自抗MET抗體之CDR L1及H1或CDR L2及H2經相應抗CD3抗體序列置換對抗EGFR/MET BsIgG之雙特異性產率具有極少乃至無影響( 圖 6 )。抗 METCDR L3 及 CDR H3 內之殘基對抗 EGFR/MET BsIgG1 之產率的貢獻
緊接著，研究在抗MET抗體之CDR L3及H3內對抗EGFR/MET BsIgG1 之高雙特異性產率有貢獻之殘基。抗MET Fab之X射線晶體結構(PDB寄存碼4K3J)揭露CDR L3與H3之間的接觸殘基( 圖 7 )且用於指導選擇供突變分析之殘基。抗MET CDR L3及H3之丙胺酸掃描誘變(Cunningham等人 「High-resolution epitope mapping of hGH-receptor interactions by alanine-scanning mutagenesis.」 Science 1989; 244:1081-5)用於映射對抗EGFR/MET BsIgG1 之高雙特異性產率有貢獻之殘基。 表 E1 ：抗 MET 抗體之 CDR L3 及 H3 接觸殘基之丙胺酸掃描誘變
抗 EGFR/MET BsIgG1
抗 MET 變異體 產率 (%)
CDR L3 CDR H3
親本 親本 83.6 ± 3.5
Y91A 親本 57.3 ± 1.0
Y92A 親本 89.5 ± 0.2
Y94A 親本 68.2 ± 4.9
P95A 親本 85.8 ± 1.0
W96A 親本 70.1 ± 0.9
Y91A:Y94A 親本 22.6 ± 0.4
Y91A:W96A 親本 35.1 ± 1.7
Y94A:W96A 親本 56.0 ± 0.2
Y91A:Y94A:W96A 親本 23.2 ± 0.2
親本 Y95A 74.9 ± 0.9
親本 R96A 78.3 ± 2.8
親本 S97A 82.7 ± 3.9
親本 Y98A 79.0 ± 0.1
親本 V99A 79.8 ± 0.9
親本 T100A 85.5 ± 0.7
親本 P100Aa 64.7 ± 4.7
親本 V99A:P100aA 72.8 ± 4.2
如上 表 E1 中所示，CDR L3中之VL Y91A突變引起所測試之12個單一丙胺酸突變體中之任一者之雙特異性產率的最大降低(84%至57%)。CDR L3中之少至兩個丙胺酸置換，亦即，VL Y91A:Y94A，消除高雙特異性產率(84%至23%)。因此，CDR L3殘基VL Y91及Y94似乎對抗EGFR/MET BsIgG1 之高雙特異性產率作出關鍵性貢獻。如由自蛋白質A層析所回收之產率估算(數據未示出)，所有突變體之表現效價與親本BsIgG1 相當。 表 E1 中所示之數據代表使用最佳化HC/LC DNA比率之兩個獨立實驗之±標準差(參見 表 B )。
經由表面電漿子共振(SPR)確定 表 E1 中之親本抗MET Fab及抗MET Fab變異體子組對MET之親和力。締合速率(kon )、解離速率(koff )及結合親和力(KD )示於 表 E2 中(n.d. 指示未偵測到結合)。CDR L3中之P95A取代不影響抗MET Fab變異體與MET之結合。CDR L3中之其他單一丙胺酸取代不同程度地降低親和力。對於在CDR L3中具有Y91A:Y94A或Y91A:W96A雙重取代之抗Met Fab變異體未偵測到與抗原之結合。 表 E2
親本抗 MET Fab 及 Fab 變異體
CDR L3 CDR H3 k on (x 104 M-1 s-1 ) k off (x 10-4 s-1 ) K D (nM)
親本 親本 17.9 ＜ 0.1 ＜ 0.05
Y91A 親本 7.0 0.6 0.8
Y92A 親本 17.2 1.9 1.1
Y94A 親本 11.5 6.5 5.7
P95A 親本 15.3 ＜ 0.1 ＜ 0.06
W96A 親本 8.4 1.7 2.1
Y91A:Y94A 親本 n.d. n.d. n.d.
Y91A:W96A 親本 n.d. n.d. n.d.
抗 IL13CDR L3 及 CDR H3 對抗 IL13/IL14 BsIgG1 之產率的貢獻
鑒於發現抗MET抗體之CDR L3中之特異性殘基對抗EGFR/MET BsIgG1 之高雙特異性產率為重要的，假定類似原理可應用於對抗IL-13/IL-4 BsIgG1 之高雙特異性產率有貢獻之抗IL-13抗體。類似實驗策略用於研究此可能性。此兩個抗體對之間的一個顯著差異在於抗IL-13及抗IL-4抗體之CDR與FR序列兩者均不同( 圖 8 )，而抗MET及抗EGFR抗體具有一致FR序列(除VH 94以外)且其CDR序列不同( 圖 4 )。
抗IL-13抗體之CDR L3及H3經來自抗CD3抗體之相應序列置換導致抗IL-13/IL-4 BsIgG1 之雙特異性產率之實質性損失(約72%至37%， 圖 5B )。相比之下，當以類似方式置換抗IL-4抗體之CDR L3及H3時觀測到略微增加( 圖 5B )。此等結果表明抗IL-13抗體之CDR L3及H3對抗IL-13/IL-4 BsIgG1 之高雙特異性產率有貢獻。
抗IL-13 CDR L3及H3之丙胺酸掃描突變分析(Cunningham等人 (如下))用於映射對抗IL-13/IL-4 BsIgG1 之高雙特異性產率有貢獻之殘基。與IL-13複合之抗IL-13 Fab之X射線晶體結構(PDB寄存碼4I77，參見Ultsch等人 「Structural basis of signaling blockade by anti-IL-13 antibody lebrikizumab.」J Mol Biol 2013; 425:1330-9)揭露CDR L3與H3之間的接觸殘基( 圖 9 )且用於選擇供突變分析之殘基(下 表 F1 )。CDR L3突變VL R96A引起對於CDR L3及H3所測試之九個單一丙胺酸突變體中之任一者之雙特異性產率的最大降低且消除高雙特異性產率(72%至29%)。CDR H3中之少至兩個丙胺酸置換，亦即，VH D95A:P99A，亦消除高雙特異性產率(72%至26%)。如由自蛋白質A層析所回收之產率估算(數據未示出)，所有突變體之表現效價與親本BsIgG1 相當。 表 F1 中所示之數據代表使用最佳化HC/LC DNA比率之兩個獨立實驗之±標準差(參見 表 B )。 表 F1 ：抗 IL13 抗體之 CDR L3 及 H3 接觸殘基之丙胺酸掃描誘變
抗 IL-13/IL-4 BsIgG1
抗 IL13 變異體 產率 (%)
CDR L3 CDR H3
親本 親本 71.8 ± 1.6
N91A 親本 65.4 ± 2.1
N92A 親本 69.7 ± 1.1
D94A 親本 78.1 ± 3.3
R96A 親本 28.7 ± 1.4
N91A:D94A 親本 68.7 ± 3.5
D94A:R96A 親本 24.8 ± 2.1
N91A:D94A:R96A 親本 36.8 ± 0.1
親本 D95A 55.9 ± 0.1
親本 Y97A 77.0 ± 1.9
親本 Y98A 63.7 ± 0.7
親本 P99A 72.5 ± 1.3
親本 Y100A 55.7 ± 2.8
親本 D95A:P99A 26.1 ± 2.9
因此，如由此處所研究之抗EGFR/MET與抗IL-13/IL-4 BsIgG1 兩者判斷，CDR L3及/或H3可對高雙特異性產率作出關鍵性貢獻。
經由SPR確定 表 F1 中之親本抗IL-13 Fab及抗IL-13 Fab變異體子組對IL-13之親和力。締合速率(kon )、解離速率(koff )及結合親和力(KD )示於 表 F2 中(n.d. 指示未偵測到結合)。CDR L3中之N92A及D94A取代均不影響抗IL-13 Fab變異體與IL-13之結合。CDR L3中之R96A取代導致結合親和力損失約10倍，CDR L3中之D94:R96A雙重取代同樣如此。CDR H3中之其他單一丙胺酸取代不同程度地降低親和力。對於CDR H3中之D95A:P99A雙重取代未偵測到與抗原之結合。 表 E2.
親本抗IL-13 Fab及Fab變異體
CDR L3 CDR H3 k on (x 104 M-1 s-1 ) k off (x 10-4 s-1 ) K D (nM)
親本 親本 117.1 0.5 0.05
N92A 親本 103.0 0.3 0.03
D94A 親本 124.3 0.3 0.02
R96A 親本 82.5 4.4 0.5
D94A:R96A 親本 52.8 3.7 0.7
親本 D95A 88.2 11.1 1.3
親本 P99A 150.4 26.9 1.8
親本 D95A:P99A n.d. n.d. n.d.
CDR L3 及 CDR H3 對 BsIgG1 產率之影響
緊接著，進行一系列實驗以確定來自此等抗體之CDR L3及H3是否可足以提供其他抗體對之高雙特異性產率。選擇具有低雙特異性產率之兩個抗體對，亦即，抗HER2/CD3 (22-24%)及抗VEGFA/ANG2 (24%) (參見 表 B 及Dillon等人 (如下))，且將此兩個BsIgG1 中之每一者之一個臂之CDR L3及H3用來自抗MET或抗IL-13抗體之相應CDR序列置換。對於抗HER2/CD3 ( 圖 10A )與抗VEGFA/ANG2 ( 圖 10B )兩者，在四種CDR L3及H3募集情況中之三者中觀測到BsIgG1 產率之實質性增加(自約24%直至40-65%)。圖10A 及10B 中所呈現之數據來自最佳化LC DNA比率。圖10A 及10B 中之數據指示來自具有同源HC/LC配對偏好之抗體之CDR L3及H3之募集可提高無配對偏好之BsIgG1 之產率，但並非始終如此。
研究來自抗IL-13抗體之單一關鍵性殘基募集至其他抗體中對BsIgG1產率之影響。參見下 表 G1 。胺基酸編號係根據Kabat。含有可變結構域突變之抗體以粗體指示。所示數據來自最佳化LC DNA比率。在位置95處具有天冬胺酸殘基(D95)之抗VEGFC未突變。 表 G1 ：來自抗 IL13 抗體之單一關鍵性殘基募集至其他抗體中以研究對 BsIgG1 產率之影響
BsIgG1 CDR L3 CDR H3 BsIgG1 產率 (%)
抗HER2/CD3 親本 親本 24.0
抗HER2 /CD3 T94D 親本 47.5
抗HER2 /CD3 P96R 親本 40.1
抗HER2 /CD3 親本 W95D 36.0
抗VEGFA/ANG2 親本 親本 22.1
抗VEGFA /ANG2 V94D 親本 23.8
抗VEGFA /ANG2 W96R 親本 23.5
抗VEGFA /ANG2 親本 Y95D 22.7
抗VEGFC/CD3 親本 親本 24.1
抗VEGFC /CD3 T94D 親本(D95) 44.0
抗VEGFC /CD3 P96R 親本(D95) 31.7
當將抗IL-13之配對偏好之兩個或更多個關鍵性殘基移植至抗HER2、抗VEGFA或抗VEGFC抗體中之相應位置時，觀測到雙特異性產率之一些增加，但小於親本抗IL-13/IL-4 BsIgG1 (參見下 表 G2 )。在 表 G2 中，含有可變結構域突變之抗體以粗體指示，且胺基酸編號係根據Kabat。含有可變結構域突變之抗體呈粗體加下劃線文本。所示數據代表使用最佳化LC DNA比率之兩個獨立實驗之平均值±SD。在位置95處具有天冬胺酸殘基(D95)之抗VEGFC未突變。 表 G2 ：來自抗 IL13 抗體之關鍵性胺基募集至其他抗體中以研究對 BsIgG1 產率之影響
BsIgG1 CDR L3 CDR H3 BsIgG1 產率 (%)
抗HER2/CD3 親本 親本 24.0
抗 HER2 /CD3 T94D:P96R 親本 31.8
抗 HER2 /CD3 親本 W95D 36.0
抗 HER2 /CD3 T94D:P96R W95D 47.4
抗VEGFA/ANG2 親本 親本 22.1
抗 VEGFA /ANG2 V94D:W96R 親本 52.5
抗 VEGFA /ANG2 親本 Y95D 22.7
抗 VEGFA /ANG2 V94D:W96R Y95D 59.1
抗VEGFC/CD3 親本 親本(D95) 24.1
抗 VEGFC /CD3 T94D:P96R 親本(D95) 50.4
總之，此等結果表明在CDR L3之位置94及96 (Kabat編號)處及CDR H3之位置95 (Kabat編號)處之帶電殘基(諸如D及R)可影響一些但並非所有抗體對之配對偏好。
經由SPR確定 表 G1 及 G2 中之親本抗HER2、抗VEGFA及抗VEGFC Fab以及抗HER2、抗VEGFA及抗VEGFC Fab變異體子組對其各別標靶之親和力。締合速率(kon )、解離速率(koff )及結合親和力(KD )示於 表 G3 中(n.d. 指示未偵測到結合)。將來自抗IL13之關鍵性殘基轉移至其他抗體導致結合親和力損失。顯著地，抗HER2之CDR-L3中之T94D取代使抗HER2/抗CD3 BsAb之BsIgG1 產率自24%增至約50%，而僅使抗HER2對HER2之親和力降低20倍。類似地，VEGFA之CDR-L3中之V94D:W96R雙重取代使抗VEGFA/抗ANG2 BsAb之BsIgG1 產率自約22%增至約52%，而僅使抗VEGFA對VEGFA之親和力降低約20倍。 表 G3
Fab CDR L3 CDR H3 k on (x 104 M-1 s1 ) k off (x 10-4 s1 ) K D (nM)
抗HER2 親本 親本 10.4 1.3 1.2
T94D 親本 6.9 16.8 24.4
P96R 親本 7.0 149.5 212.9
親本 W95D 8.0 29.4 36.5
T94D:P96R 親本 n.d. n.d. n.d.
T94D:P96R W95D n.d. n.d. n.d.
抗VEGFA 親本 親本 65.4 ＜ 0.1 ＜ 0.015
V94D 親本 59.8 ＜ 0.1 ＜ 0.016
W96R 親本 13.3 9.1 6.8
親本 Y95D 92.6 6.0 0.6
V94D:W96R 親本 163.8 4.7 0.3
T94D:P96R W95D n.d. n.d. n.d.
抗VEGFC 親本 親本 17.1 14.1 8.2
V94D 親本 n.d. n.d. n.d.
W96R 親本 n.d. n.d. n.d.
親本 Y95D n.d. n.d. n.d.
與表 G1 及 G2 中所示之結果成對比，當將抗cMet之配對偏好之關鍵性殘基移植至抗HER2、抗VEGFA或抗VEGFC抗體中之相應位置時，在大多數情況下觀測到雙特異性產率之少量增加。參見下 表 G4 。在 表 G4 中，含有可變結構域突變之抗體以粗體指示，且胺基酸編號係根據Kabat。 表 G4 ：來自 抗 cMet 抗體 之關鍵性胺基募集至其他抗體中以研究對 BsIgG1 產率 之影響
BsIgG1 CDR L3 CDR H3 BsIgG1 產率 (%)
抗HER2/CD3 親本 親本 24.0
抗 HER2 /CD3 H91Y 親本 23.6
抗 HER2 /CD3 T94Y 親本 31.0
抗 HER2 /CD3 P96W 親本 26.2
抗 HER2 /CD3 H91Y:T94Y 親本 24.2
抗 HER2 /CD3 H91Y:P96W 親本 23.4
抗 HER2 /CD3 T94Y:P96W 親本 22.7
抗 HER2 /CD3 H91Y:T94Y:P96W 親本 23.6
抗VEGFA/ANG2 親本(Y91,W96) 親本 22.1
抗 VEGFA /ANG2 (Y91)V94Y(W96) 親本 23.6
抗VEGFC/CD3 親本 親本 23.9
抗 VEGFC /CD3 S91Y 親本 22.6
抗 VEGFC /CD3 T94Y 親本 33.6
抗 VEGFC /CD3 P96W 親本 47.7
抗 VEGFC /CD3 S91Y:T94Y 親本 22.4
抗 VEGFC /CD3 S91Y:P96W 親本 59.0
抗 VEGFC /CD3 T94Y:P96W 親本 36.4
抗 VEGFC /CD3 S91Y:T94Y:P96W 親本 47.8
抗HER2/EGFR 親本 親本 21.4
抗 HER2 /EGFR H91Y:T94Y 親本 22.3
抗 HER2 /EGFR H91Y:P96W 親本 24.2
抗 HER2 /EGFR T94Y:P96W 親本 23.4
抗 HER2 /EGFR H91Y:T94Y:P96W 親本 33.6
鏈間二硫鍵對 BsIgG1 產率之貢獻
先前，假設在HC與LC之間形成鏈間二硫鍵充當防止鏈交換之動力學陷阱(kinetic trap) (Dillon等人 (如下))。進行實驗以研究HC與LC之間的二硫鍵是否影響具有明顯同源鏈偏好之兩個BsIgG1 (抗EGFR/MET及抗IL-13/IL-4)及具有隨機HC/LC配對之兩個對照(抗HER2/CD3及抗VEGFA/VEGFC)之雙特異性產率。簡言之，使用半胱胺酸至絲胺酸突變：LC C214S及HC C220S產生缺乏鏈間二硫鍵之BsIgG1 變異體。藉由SDS PAGE驗證經工程改造之變異體中之鏈間二硫鍵的移除。如 圖 11 中所指示，使樣品在還原或非還原條件下經電泳。分析四個不同BsIgG1：抗HER2/CD3 (泳道1)；抗VEGFA/VEGFC (泳道2)；抗EGFR/MET (泳道3)；及抗IL13/IL14 (泳道4)。如下 表 H 中所示，如藉由原生質譜法判斷，未發現鏈間二硫鍵影響所測試之四個抗體對中之任一者之BsIgG1 產率的明確證據。親本及二硫鍵工程改造之變異體之BsIgG1 產率為類似的。表H中之數據為使用最佳化DNA輕鏈比率之三個生物重複實驗之平均值±標準差。 表 H ：用以確定 HC 與 LC 之間的二硫鍵對 BsIgG1 產率之影響的突變分析。
BsIgG1 產率 (%)
BsIgG1 具有 HC/LC 二硫鍵之親本 無 HC/LC 二硫鍵之變異體
抗EGFR/MET 81.1 ± 1.4 82.8 ± 2.6
抗IL-13/IL-4 73.3 ± 4.5 75.1 ± 0.8
抗HER2/CD3 24.5 ± 0.8 27.0 ± 2.4
抗VEGFA/VEGFC 28.8 ± 5.9 38.0 ± 6.0
總而言之，本研究證實在單一細胞中產生BsIgG之同源HC/LC配對偏好為極其依賴於特異性抗體對之常見現象。機理上，此鏈配對偏好可受CDR H3及L3中之殘基強烈影響。實際上，可利用此配對偏好以減少用於驅動單一細胞中之BsIgG1 及潛在其他同型之BsIgG之產生的Fab突變數目。 額外參考文獻 Brinkmann U, Kontermann RE. The making of bispecific antibodies. mAbs 2017; 9:182-212. Carter PJ, Lazar GA. Next generation antibody drugs: pursuit of the 'high-hanging fruit'. Nat Rev Drug Discov 2018; 17:197-223. Sanford M. Blinatumomab: first global approval. Drugs 2015; 75:321-7. Oldenburg J, Mahlangu JN, Kim B, Schmitt C, Callaghan MU, Young G, Santagostino E, Kruse-Jarres R, Negrier C, Kessler C, et al. Emicizumab prophylaxis in hemophilia A with inhibitors. N Engl J Med 2017; 377:809-18. Scott LJ, Kim ES. Emicizumab-kxwh: First Global Approval. Drugs 2018; 78:269-74. Suresh MR, Cuello AC, Milstein C. Bispecific monoclonal antibodies from hybrid hybridomas. Methods Enzymol 1986; 121:210-28. Fischer N, Elson G, Magistrelli G, Dheilly E, Fouque N, Laurendon A, Gueneau F, Ravn U, Depoisier JF, Moine V, et al. Exploiting light chains for the scalable generation and platform purification of native human bispecific IgG. Nat Commun 2015; 6:6113. Strop P, Ho WH, Boustany LM, Abdiche YN, Lindquist KC, Farias SE, Rickert M, Appah CT, Pascua E, Radcliffe T, et al. Generating bispecific human IgG1 and IgG2 antibodies from any antibody pair. J Mol Biol 2012; 420:204-19. Vaks L, Litvak-Greenfeld D, Dror S, Matatov G, Nahary L, Shapira S, Hakim R, Alroy I, Benhar I. Design principles for bispecific IgGs, opportunities and pitfalls of artificial disulfide bonds. Antibodies 2018; 7. Schaefer W, Völger HR, Lorenz S, Imhof-Jung S, Regula JT, Klein C, Mølhøj M. Heavy and light chain pairing of bivalent quadroma and knobs-into-holes antibodies analyzed by UHR-ESI-QTOF mass spectrometry. MAbs 2016; 8:49-55. Bönisch M, Sellmann C, Maresch D, Halbig C, Becker S, Toleikis L, Hock B, Ruker F. Novel CH1:CL interfaces that enhance correct light chain pairing in heterodimeric bispecific antibodies. Protein Eng Des Sel 2017; 30:685-96. Kitazawa T, Igawa T, Sampei Z, Muto A, Kojima T, Soeda T, Yoshihashi K, Okuyama-Nishida Y, Saito H, Tsunoda H, et al. A bispecific antibody to factors IXa and X restores factor VIII hemostatic activity in a hemophilia A model. Nature Medicine 2012; 18:1570-4. Sampei Z, Igawa T, Soeda T, Funaki M, Yoshihashi K, Kitazawa T, Muto A, Kojima T, Nakamura S, Hattori K. Non-antigen-contacting region of an asymmetric bispecific antibody to factors IXa/X significantly affects factor VIII-mimetic activity. MAbs 2015; 7:120-8. Sampei Z, Igawa T, Soeda T, Okuyama-Nishida Y, Moriyama C, Wakabayashi T, Tanaka E, Muto A, Kojima T, Kitazawa T, et al. Identification and multidimensional optimization of an asymmetric bispecific IgG antibody mimicking the function of factor VIII cofactor activity. PLoS One 2013; 8:e57479. Carter PJ. Introduction to current and future protein therapeutics: a protein engineering perspective. Exp Cell Res 2011. Wu H, Pfarr DS, Johnson S, Brewah YA, Woods RM, Patel NK, White WI, Young JF, Kiener PA. Development of motavizumab, an ultra-potent antibody for the prevention of respiratory syncytial virus infection in the upper and lower respiratory tract. J Mol Biol 2007; 368:652-65. Cooke HA, Arndt J, Quan C, Shapiro RI, Wen D, Foley S, Vecchi MM, Preyer M. EFab domain substitution as a solution to the light-chain pairing problem of bispecific antibodies. MAbs 2018; 10:1248-59. Tiller KE, Li L, Kumar S, Julian MC, Garde S, Tessier PM. Arginine mutations in antibody complementarity-determining regions display context-dependent affinity/specificity trade-offs. J Biol Chem 2017; 292:16638-52. Dashivets T, Stracke J, Dengl S, Knaupp A, Pollmann J, Buchner J, Schlothauer T. Oxidation in the complementarity-determining regions differentially influences the properties of therapeutic antibodies. MAbs 2016; 8:1525-35. Lamberth K, Reedtz-Runge SL, Simon J, Klementyeva K, Pandey GS, Padkjaer SB, Pascal V, Leon IR, Gudme CN, Buus S, et al. Post hoc assessment of the immunogenicity of bioengineered factor VIIa demonstrates the use of preclinical tools. Sci Transl Med 2017; 9. Harding FA, Stickler MM, Razo J, DuBridge R. The immunogenicity of humanized and fully human antibodies. mAbs 2014; 2:256-65. Sekiguchi N, Kubo C, Takahashi A, Muraoka K, Takeiri A, Ito S, Yano M, Mimoto F, Maeda A, Iwayanagi Y, et al. MHC-associated peptide proteomics enabling highly sensitive detection of immunogenic sequences for the development of therapeutic antibodies with low immunogenicity. MAbs 2018; 10:1168-81. Schachner L, Han G, Dillon M, Zhou J, McCarty L, Ellerman D, Yin Y, Spiess C, Lill JR, Carter PJ, et al. Characterization of chain pairing variants of bispecific IgG expressed in a single host cell by high-resolution native and denaturing mass spectrometry. Anal Chem 2016; 88:12122-7. 實例 3 ：實例 2 中所產生之經修飾抗體之親和力成熟
使實例2中所產生之 表 I 中之例示性抗體經受親和力成熟以改良該等抗體對其各別標靶抗原之親和力。 表 I
抗體 CDR L3* CDR H3* 用於親和力成熟之例示性候選物 ( 達到約 20-40 倍以恢復親本親和力 )
抗HER2 T94D 親本 經修飾抗體之KD 比未經修飾之親本約低20倍**
親本 W95D 經修飾抗體之KD 比未經修飾之親本約低30倍**
抗VEGFA V94D 親本 經修飾抗體之KD 與未經修飾之親本相當(且必要時，可視情況進一步進行親和力成熟)**
親本 Y95D 經修飾抗體之KD 比未經修飾之親本約低38倍**
V94D:W96R 親本 經修飾抗體之KD 比未經修飾之親本約低2 0倍**
*胺基酸編號係根據Kabat。 **參見 表 G3 。
簡言之，將突變引入 表 I 中之抗體之CDR中以產生各抗體之一或多個多肽文庫(例如噬菌體呈現或細胞表面呈現文庫)。引入各抗體之CDR-L3及/或CDR-H3中以改良雙特異性產率之一或多個胺基酸取代(參見 表 I )保持固定且在文庫構築期間未隨機化。舉例而言，如Wark等人 (2006)Adv Drug Deliv Rev. 58: 657-670；Rajpal等人 (2005)Proc Natl Acad Sci U S A . 102: 8466-8471中所述，接著藉由淘選或細胞分選來篩選各文庫，以鑑別以高親和力結合標靶抗原(亦即，HER2、VEGFA或VEGFC)之抗體變異體。接著分離此類變異體，且例如經由表面電漿子共振確定該等變異體對其標靶抗原之親和力，且與 表 I 中所示之抗體及 表 I 中之抗體所來源之親本抗體相比較(參見例如 表 G3 )。進行至少一輪(諸如2、3、4、5、6、7、8、9或10輪中之至少任一者)之親和力成熟以鑑別高親和力抗HER2變異體、高親和力抗VEGFA變異體及高親和力抗VEGFC變異體。確定對其各別標靶抗原具有高親和力之抗體變異體之序列。
緊接著，進一步分析上文所述之篩選中鑑別之變異體以評估其對雙特異性抗體產率之影響。簡言之，將高親和力抗HER2、抗VEGFA及抗VEGFC變異體重新編排為雙特異性抗體。例示性雙特異性抗體包括但不限於例如抗HER2/抗CD3、抗VEGFA/抗ANG2及抗VEGFC/抗CD3 (參見上 表 G1 及 G2 )。舉例而言，根據實例1中詳述之方法表現及純化雙特異性抗體。如實例1中詳述，例如經由尺寸排阻層析、高解析度LCMS及/或SDS-PAGE凝膠分析來評估正確裝配之雙特異性抗體之產率。使用例如 表 G1 及 G2 中所示之雙特異性抗體平行進行對照試驗。將包含經由文庫篩選所鑑別之高親和力抗HER2抗體變異體、高親和力抗VEGFA變異體或抗VEGFC變異體之雙特異性抗體之產率與包含 表 I 中所示之抗HER2、抗VEGFA或抗VEGFC抗體之雙特異性抗體之產率相比較。經受一或多個親和力成熟步驟且進一步檢定改良之親和力及BsAb產率(亦即，如上文所述)之額外經修飾抗體示於 表 G3 中。 額外參考文獻 Merchantet al. (2013)Proc Natl Acad Sci U S A. 110(32): E2987-96 Julianet al. (2017)Scientific Reports. 7: 45259 Tilleret al. (2017)Front. Immunol. 8: 986 Koeniget al. (2017)Proc Natl Acad Sci U S A. 114(4): E486-E495 Yamashitaet al. (2019)Structure. 27, 519-527 Payandehet al. (2019)J Cell Biochem. 120: 940-950 Richteret al. (2019)mAbs. 11(1): 166-177 Cisneroset al. (2019)Mol. Syst. Des. Eng. 4: 737-746
提供前述實例僅用於說明性目的，且不欲以任何方式限制本發明之範疇。除本文展示及描述之彼等以外之本發明之各種修改自前述描述將為熟習此項技術者顯而易見且處於隨附申請專利範圍之範疇內。
圖 1A 及1B 提供抗LGR5/抗IL4雙特異性抗體之高解析度液相層析質譜法(LCMS)數據，亦即，低產率BsIgG之代表性實例。圖 1A 展示電荷態38+及39+之質量包絡。圖 1B 展示相應解卷積數據。圖 1C 及1D 提供抗SIRPα/抗IL4雙特異性抗體之高解析度LCMS數據，亦即，中間產率BsIgG之代表性實例。圖 1C 展示電荷態38+及39+之質量包絡。圖 1D 展示相應解卷積數據。圖 1E 及1F 提供抗Met/抗DR5雙特異性抗體之高解析度LCMS數據，亦即，高產率BsIgG之代表性實例。圖 1E 展示電荷態38+及39+之質量包絡。圖 1F 展示相應解卷積數據。圖 2 提供用以確定併入CH 1/CL 電荷對取代突變是否增加BsIgG產率所進行之實驗的結果，其證實強的固有HC/LC配對偏好。圖 3 說明用以研究抗EGFR/抗MET BsIgG及抗IL-4/抗IL-13 BsIgG中優先HC/LC配對之機理基礎所進行之實驗的設計。此實驗之結果提供於 表 C 中。圖 4A 提供抗MET抗體奧納妥珠單抗(onartuzumab) (參見Merchant等人 (2013)PNAS USA 110: E2987-2996) (SEQ ID NO: 1)及抗EGFR抗體D1.5 (參見Schaefer等人 (2011)Cancer Cell 20: 472-486) (SEQ ID NO: 2)之輕鏈可變結構域(VL )之比對。胺基酸殘基係根據Kabat編號。來自Kabat等人 Sequences of Proteins of Immunological Interest. Bethesda, MD: NIH, 1991之序列定義及Chothia與Lesk (1987)J Mol Biol 196: 901-917之結構定義之CDR加陰影。圖 4B 提供抗MET抗體奧納妥珠單抗(SEQ ID NO: 3)及抗EGFR抗體D1.5 (SEQ ID NO: 4)之重鏈可變結構域(VH )之比對。胺基酸殘基係根據Kabat編號。來自Kabat等人 Sequences of Proteins of Immunological Interest. Bethesda, MD: NIH, 1991之序列定義及Chothia與Lesk (1987)J Mol Biol 196: 901-917之結構定義之CDR加陰影。圖 5A 提供用以評估抗EGFR/抗MET雙特異性抗體之抗EGFR臂之互補決定區(CDR) L3及CDR H3對BsIgG產率之貢獻所進行之實驗的結果。亦提供用以評估抗EGFR/抗MET雙特異性抗體之抗MET臂之CDR L3及CDR H3對BsIgG產率之貢獻所進行之實驗的結果。圖 5B 提供用以評估抗IL-4/抗IL-13雙特異性抗體之抗IL-4臂之CDR L3及CDR H3對BsIgG產率之貢獻所進行之實驗的結果。亦提供用以評估抗IL-4/抗IL-13雙特異性抗體之抗IL-13臂之CDR L3及CDR H3對BsIgG產率之貢獻所進行之實驗的結果。圖 6 提供用以評估抗EGFR/抗MET雙特異性抗體之CDR-L1 + CDR-H1、CDR-L2 + CDR-H2及CDR-L3 + CDR-H3對BsIgG產率之貢獻所進行之實驗的結果。圖 7 提供突出顯示CDR L3及CDR H3接觸殘基之抗MET Fab (PDB 4K3J)之X射線結構。圖 8A 提供抗IL-13抗體來瑞珠單抗(lebrikizumab) (參見Ultsch等人 (2013)J Mol Biol 425: 1330-1339) (SEQ ID NO: 5)及抗IL-4抗體19C11 (參見Spiess等人 (2013) J Biol Chem 288: 265:83-93) (SEQ ID NO: 6)之輕鏈可變結構域(VL )之比對。來自Kabat之序列定義及Chothia與Lesk之結構定義之CDR加陰影。圖 8B 提供抗IL-13抗體來瑞珠單抗(SEQ ID NO: 7)及抗IL-4抗體19C11 (SEQ ID NO: 8)之重鏈可變結構域(VH )之比對。胺基酸殘基係根據Kabat編號。來自Kabat之序列定義及Chothia與Lesk之結構定義之CDR加陰影。 圖9 提供突出顯示CDR L3及CDR H3接觸殘基之抗IL-13 Fab (PDB 4I77)之X射線結構。圖 10A 提供用以評估以下各項對BsIgG產率之影響所進行之實驗的結果：(a) 將抗CD3/抗HER2雙特異性抗體之抗CD3臂之CDR L3及CDR H3用抗MET之CDR L3及CDR H3置換；(b) 將抗CD3/抗HER2雙特異性抗體之抗HER2臂之CDR L3及CDR H3用抗MET之CDR L3及CDR H3置換；(c) 將抗CD3/抗HER2雙特異性抗體之抗CD3臂之CDR L3及CDR H3用抗IL-13之CDR L3及CDR H3置換；及(d) 將抗CD3/抗HER2雙特異性抗體之抗HER2臂之CDR L3及CDR H3用抗IL-13之CDR L3及CDR H3置換。圖 10B 提供用以評估以下各項對BsIgG產率之影響所進行之實驗的結果：(a) 將抗VEGFA/抗ANG2雙特異性抗體之抗VEGFA臂之CDR L3及CDR H3用抗MET之CDR L3及CDR H3置換；(b) 將抗VEGFA/抗ANG2雙特異性抗體之抗ANG2臂之CDR L3及CDR H3用抗MET之CDR L3及CDR H3置換；(c) 將抗VEGFA/抗ANG2雙特異性抗體之抗VEGFA臂之CDR L3及CDR H3用抗IL-13之CDR L3及CDR H3置換；及(d) 將抗VEGFA/抗ANG2雙特異性抗體之抗ANG2臂之CDR L3及CDR H3用抗IL-13之CDR L3及CDR H3置換。圖 11 提供用以評估以下雙特異性抗體之鏈間二硫鍵對BsIgG產率之貢獻所進行之實驗的結果：(1)抗HER2/抗CD3；(2)抗VEGFA/抗VEGFC；(3)抗EGFR/抗MET；及(4)抗IL13/抗IL-4。
Figure 12_A0101_SEQ_0001
Figure 12_A0101_SEQ_0002
Figure 12_A0101_SEQ_0003
Figure 12_A0101_SEQ_0004
Figure 12_A0101_SEQ_0005

Claims (12)

  1. 一種改良雙特異性抗體之第一重鏈及第一輕鏈之優先配對的方法，該雙特異性抗體包含第一重鏈、第一輕鏈、第二重鏈及第二輕鏈，其中該第一重鏈與第一輕鏈形成結合第一抗原之對(pair)，且其中該第二重鏈與第二輕鏈形成結合第二抗原之對，該方法包括以下步驟：將該第一輕鏈之輕鏈可變結構域(VL)之位置94處之不帶電胺基酸取代為天冬胺酸(D)，將該第一輕鏈之VL之位置96處之不帶電胺基酸取代為精胺酸(R)，及將該第一重鏈之重鏈可變結構域(VH)之位置95處之不帶電胺基酸取代為天冬胺酸(D)，其中胺基酸編號係根據Kabat。
  2. 如請求項1之方法，其中將該VL之位置94處、該VL之位置96處及該VH之位置95處之取代引入抗HER2/抗CD3雙特異性抗體之抗HER2臂中、引入抗VEGFA/抗ANG2雙特異性抗體之抗VEGFA臂中或引入抗VEGFC/抗CD3雙特異性抗體之抗VEGFC臂中。
  3. 如請求項1之方法，該方法進一步包括使該雙特異性抗體經受至少一個親和力成熟步驟，其中該VL之位置94處之經取代胺基酸、該VL之位置96處之經取代胺基酸及該VH之位置95處之經取代胺基酸未隨機化。
  4. 如請求項1之方法，其中該雙特異性抗體為人類抗體、人源化抗體或嵌合雙特異性抗體。
  5. 如請求項1之方法，其中該雙特異性抗體包含人類IgG Fc區。
  6. 如請求項5之方法，其中該人類IgG Fc區為人類IgG1、人類IgG2、人類IgG3或人類IgG4 Fc區。
  7. 如請求項6之方法，其中該人類IgG Fc區包含第一CH2結構域(CH21)、第一CH3結構域(CH31)、第二CH2結構域(CH22)及第二CH3結構域；(a)其中CH32經改變以使得在CH31/CH32界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較大側鏈體積之一或多個胺基酸殘基置換，從而在CH32之表面上產生與CH31相互作用之隆凸(protuberance)；且其中CH31經改變以使得在CH31/CH32界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較小側鏈體積之胺基酸殘基置換，從而在CH31之表面上產生與CH32相互作用之凹穴；或(b)其中CH31經改變以使得在CH31/CH32界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較大側鏈體積之一或多個胺基酸殘基置換，從而在CH31之表面上產生與CH32相互作用之隆凸；且其中CH32經改變以使得在CH31/CH32界面內，一或多個胺基酸殘基經具有較小側鏈體積之胺基酸殘基置換，從而在CH32之表面上產生與CH31相互作用之凹穴(cavity)。
  8. 如請求項7之方法，其中該隆凸為杵(knob)突變。
  9. 如請求項8之方法，其中該杵突變包含T366W，其中胺基酸編號係根據EU索引。
  10. 如請求項7之方法，其中該凹穴為臼(hole)突變。
  11. 如請求項10之方法，其中該臼突變包含T366S、L368A及Y407V中之至少一者、至少兩者或全部三者，其中胺基酸編號係根據EU索引。
  12. 一種抗體，其係藉由如請求項1之方法產生。
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