TWI500770B - Hoxa9基因作為檢測肝癌生物標記的用途 - Google Patents
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Description
本發明係關於HOXA9基因作為檢測肝癌生物標記的用途,而根據此項用途,本發明提出一種肝癌的檢測方法。
肝癌為全球相當盛行的惡性腫瘤之一,而且肝癌在早期難以被檢測到,因而會導致預後不良及高死亡率。基於分子生物學的研究迅速發展,對肝癌形成相關的分子機制充分瞭解將有助於提供更好的檢測策略。
近來,已有更多的研究報導顯示DNA甲基化圖譜的變化與肝癌息息相關。其中,腫瘤抑制基因(tumor suppressor gene,TSG)的不正常高度甲基化不僅見於肝癌的癌前病變及癌病變,且更可於病患的血清/血漿及其臨床診斷前的血清/血漿中被檢測到,如CDKN2A基因(請參閱Clin Cancer Res 2007;138:2378-2384)。因此,過去咸信DNA甲基化可用於協助肝癌的檢測。
根據先前的文獻報導,肝癌中的腫瘤抑制基因可以透過其啟動子區域的甲基化而失去活性的(請參閱J Clin Invest 2007;1179:2713-2722),此結論意謂著腫瘤抑制基因具有潛力作為診斷及預後的甲基化生物標記。然而,過去大多數的研究著重在單一基因或少數基因的鑑定。
目前,已建立全基因體甲基化分析(genome-wide methylation assay)的方法來用於肝癌的研究。此外,使用DNA混合樣本的新穎策略也已被用來評估群組DNA甲基化的均值,以減少研究用之亞硫酸鹽處理的DNA量。
本發明乃是本發明人先利用全基因體的流程及混合DNA的策略研究肝癌中的DNA甲基化圖譜,再進一步篩選出肝癌中可能的甲基化生物標記所做出的研究。根據這項研究結果,證實了Homeobox A9(HOXA9)基因可用來作為檢測肝癌的甲基化生物標記。
於是,本發明之一目的是在提出一種肝癌的檢測方法,係包括以下步驟:檢測一取自於一待測個體之生物檢體中HOXA9基因之CpG位點的甲基化程度;以及分析檢測步驟的結果,其中待測個體之生物檢體中HOXA9基因之CpG位點的甲基化程度高於另一取自於一不具肝癌正常個體之生物檢體中HOXA9基因之CpG位點的甲基化程度時,代表待測個體具有罹患肝癌的可能性,而且此二生物檢體係選自於由血液、血清及血漿所組成的群組。
根據本發明之一較佳實施例,檢測步驟是利用甲基化特異性聚合酶連鎖反應(methylation-specific PCR,MS-PCR)、定量甲基化特異性聚合酶連鎖反應(quantitative methylation-specific PCR,Q-MSP)、亞硫酸鹽定序(bisulfite sequencing,BS)、微陣列(microarray)、質譜儀分析(mass spectrometer)、變性高效液相色譜(denaturing high-performance liquid chromatography,DHPLC)、焦磷酸定序(pyrosequencing)或南方點墨法(Southern blot assay)來檢測待測個體之生物檢體中HOXA9基因之CpG
位點的甲基化程度。
根據本發明之一較佳實施例,待測個體之生物檢體中HOXA9基因的CpG位點至少包括:一如SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列。
本發明之另一目的是在提出一種肝癌的檢測方法,係包括以下步驟:檢測一取自於一待測個體之生物檢體中HOXA9基因之CpG位點的甲基化程度與胎兒球蛋白(α-fetoprotein,AFP)的表現量;以及分析檢測步驟的結果,其中待測個體之生物檢體中HOXA9基因之CpG位點的甲基化程度高於另一取自於一不具肝癌正常個體之生物檢體中HOXA9基因之CpG位點的甲基化程度,且待測個體之生物檢體中胎兒球蛋白的表現量高於10ng/ml時,代表待測個體具有罹患肝癌的可能性,而且此二生物檢體係選自於由血液、血清及血漿所組成的群組。
根據本發明之一較佳實施例,檢測步驟是利用甲基化特異性聚合酶連鎖反應、定量甲基化特異性聚合酶連鎖反應、亞硫酸鹽定序、微陣列、質譜儀分析、變性高效液相色譜、焦磷酸定序或南方點墨法來檢測待測個體之生物檢體中HOXA9基因之CpG位點的甲基化程度。
根據本發明之一較佳實施例,檢測步驟是利用西方點墨法(Western blot assay)、酵素連結免疫吸附分析(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)、放射免疫分析(radioimmunoassay,RIA)或免疫色層分析(immunochromatographic test,ICT)來檢測待測個體之生物檢體中胎兒球蛋白的表現量。
根據本發明之一較佳實施例,待測個體之生物檢體中
HOXA9基因的CpG位點至少包括:一如SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列。
第1圖為肝癌中甲基化生物標記的篩選流程圖。
第2(A)圖為HOXA9基因之啟動子區域的位置圖,其中每一直豎線條代表CpG位點。
第2(B)圖為不同細胞株中HOXA9基因的RT-PCR結果圖。
第2(C)圖為不同細胞株中HOXA9基因的MS-PCR結果圖。
第2(D)圖為不同細胞株中HOXA9基因的BS結果圖,其中每一實心圓點代表甲基化的CpG位點,而每一空心圓點代表未甲基化的CpG位點。
第3(A)圖及第3(B)圖為不同組織中HOXA9基因的Q-MSP結果圖。
第3(C)圖為肝癌病患之腫瘤組織中HOXA9基因甲基化的ROC曲線圖。
第4(A)圖為不同個體之血漿中HOXA9基因的Q-MSP結果圖。
第4(B)圖為肝癌病患之血漿中HOXA9基因甲基化的ROC曲線圖。
第5圖為肝癌病患之腫瘤組織及對應這些病患之血漿的甲基化分析結果圖。
為讓本發明上述及/或其他目的、功效、特徵能更明顯易懂,下文特舉具體實施例,作詳細說明。
實驗材料與流程
I、臨床檢體
為進行微陣列,從台灣肝癌網(Taiwan Liver Cancer
Network,TLCN)取得5個正常的肝臟血管瘤(liver hemangioma)組織及15對肝癌病患的腫瘤組織與周邊非腫瘤組織。為進行驗證,從TLCN取得29個正常的肝臟血管瘤組織,並從三軍總醫院取得40對肝癌病患的腫瘤組織與周邊非腫瘤組織以及對應這些病患組織的血漿。為進行其他驗證,從TLCN取得60對肝癌病患的腫瘤組織與周邊非腫瘤組織。供進行上述驗證之病患的臨床病理特徵請見於表1。從雙和醫院取得34個控制組血漿。本實驗的所有臨床檢體業經臺北醫學大學人體試驗委員會及TLCN使用委員會同意執行。
II、細胞株
從美國菌種中心(American Type Culture Collection,ATCC)購買正常肝臟細胞株THLE-3以及肝癌細胞株HepG2、Hep3B與SK-HEP1,至於其餘的肝癌細胞株TONG、Mahlavu、PLC/PRF/5、HuH6、HuH7及HA22T則由長庚大學林光輝教授提供。為進行去甲基化藥物5-氮-2’-去氧胞核苷(5-aza-2’-deoxycytidine,5DAC)的處理,依Cancer 2006;1073:579-590所述的方法培養肝癌細胞株。
III、甲基化陣列
如第1圖所示,將肝臟組織的檢體分為7類,並對此不同類型檢體的混合DNA及細胞株的DNA進行Illumina Infinium甲基化分析。其中,β值係表示每一探針輸出的甲基化指數,且β值是介於0至1之間,代表著甲基化訊號相對於整體訊號的強度比例。而且,此一數值可用來計算檢體間甲基化程度的差異。
IV、表現及甲基化分析
表現及甲基化分析係依據Cancer 2006;1073:579-590及Cancer 2010;11618:4266-4274揭示的方法操作。其中,SEQ ID NO:3及SEQ ID NO:4所示的核苷酸序列是作為檢測HOXA9基因之甲基化程度的BS引子對,而SEQ ID NO:5及SEQ ID NO:6所示的核苷酸序列是作為檢測HOXA9基因之甲基化程度的MS-PCR引子對或Q-MSP引子對。如第
2(A)圖所示,BS引子對是對應於HOXA9基因之一啟動子區域(SEQ ID NO:1),而MS-PCR引子對或Q-MSP引子對是對應於HOXA9基因之另一啟動子區域(SEQ ID NO:2)。
V、統計分析
分析結果係使用Prism software(版本4.03,Graphpad Software Inc,拉霍亞,加州,美國)。其中,費雪精確性檢定(Fisher’s exact test)、卡方檢定(Chi-square test)及學生t檢定(Student’s t-test)可評估甲基化程度與疾病狀態或臨床指標的相關性;受試者操作特徵曲線(Receiver operating characteristic,ROC)可決定基因的診斷準確性,而靈敏度及特異度則是用來評估每一種組合。
實驗結果
I、肝癌中甲基化基因的鑑定
請參照第1圖,先利用甲基化陣列及混合DNA策略分析肝臟組織及細胞株中共27,578個CpG位點的甲基化圖譜。經基因過濾後,利用重複探針的個數及其β值的差異將3,778個探針(對應1,968種高度甲基化基因及956種低度甲基化基因)分類。接著,搭配先前的文獻報導(如Carcinogenesis 2008;2910:1901-1910、Cancer Sci 2010;1016;1501-1510、PLoS One 2010;53:e9749、J Korean Med Sci 2010;258:1152-1159、PLoS One 2011;65:e19862、Int J Cancer 2012;1306:1319-1328及Methods 2010;523:255-258)來比較此1,968種高度甲基化基因,並透過KEGG(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes)路徑分析發現10種與此些不正常基因相關的路徑(如表2所示)。最後,選取34種基因進行驗證,而在這些基
因中,有16種基因於肝癌中高度甲基化,其餘18種基因則在先前的陣列分析結果或其他癌症中已被確認。
II、所選基因於細胞株中之基因表現與啟動子區域甲基化的關聯性
首先,利用反轉錄聚合酶連鎖反應(reverse transcription PCR,RT-PCR)分析所選基因於細胞株中的表現量。分析結果顯示於第2(B)圖,除MSX1、HOXD4、CNTNAP2、PLAU及BMP7等5種基因外,HOXA9基因及其他28種基因於控制組肝臟組織及THLE-3中均有表現,而且此29種基因於超過一半的肝癌細胞株中有降低表現。此外,經過DNA甲基轉移酶(DNA methyltransferase)抑制劑5DAC的處理後,這29種基因中之部分者的表現量有復原的跡象,此結果說明著這些基因的降低表現可能與DNA甲基化有關。
接著,利用MS-PCR及BS分析這29種基因於細胞株中的甲基化程度。MS-PCR分析結果顯示於第2(C)圖,除EYA4、PYCARD、
LOX及F2R等4種基因外,HOXA9基因及其餘24種基因於肝癌細胞株中均可檢測到啟動子區域的甲基化。此外,於5DAC的處理後,這些甲基化的訊號條帶有減少的趨勢。BS分析結果顯示於第2(D)圖,可看出肝癌細胞株中HOXA9基因之啟動子區域的甲基化程度確實較正常細胞株中HOXA9基因之啟動子區域的甲基化程度高。
III、所選基因於組織檢體中之甲基化程度的研究
首先,利用MS-PCR確認HOXA9基因及其餘24種基因於組織檢體中的甲基化頻率,並選擇HOXA9基因及NEUROG1、TNFESF10C、IRAK3、GFPT2、ZNF177、DPYSL4、ELOVL4、FSD1、CACNA1G等其他9種基因來進一步分析29個肝臟血管瘤組織及30對肝癌病患的腫瘤組織及周邊非腫瘤組織。總括來說,HOXA9及這9種基因於腫瘤組織中普遍地被甲基化(如表3所示,33.3%-76.6%),並可將這10種基因歸納出三種不同的甲基化圖譜分別為:(1)啟動子區域於控制組肝臟組織及腫瘤組織中均被甲基化,但腫瘤組織中的啟動子區域甲基化程度相對於控制組肝臟組織中者明顯,像是HOXA9基因;(2)啟動子區域於控制組肝臟組織及腫瘤組織中均被甲基化,像是NEUROG1基因;及(3)啟動子區域僅於腫瘤組織中被甲基化,像是ZNF177基因。然而,在這10種基因中,特別是HOXA9基因,其於腫瘤組織中普遍地被甲基化(76.7%,23/30)但鮮少於控制組肝臟組織中被甲基化(8.3%,2/24),因而顯得極為重要。
表3、所選10種基因於肝臟組織中的甲基化頻率
接著,利用BS及Q-MSP進一步地確認HOXA9基因於不同組織檢體中的甲基化程度。Q-MSP分析結果如第3(A)圖及第3(B)圖所示,而此處的甲基化程度係利用dCp值表示,其中dCp值為HOXA9基因以Q-MSP測得的門檻循環值(cycle threshold value)扣除內控制組(internal control)COL2A基因以Q-MSP測得的門檻循環值得到的差。一般來說,下文所提的「dCp值」若無特別定義,則依照此處說明來定義。根據第3(A)圖及第3(B)圖,可看出HOXA9基因於腫瘤組織中的dCp值均比其於其他組織中的dCp值低,這表示說,肝癌病患的腫瘤組織中HOXA9基因的甲基化程度相對地高。如第3(C)圖所示,以HOXA9基因甲基化之ROC曲線下的面積(AUC)來區別腫瘤組織與控制組組織,而AUC約為0.961。
如表4所示,HOXA9基因具有相對於已知肝癌生物標記CDKN2A基因高的敏感度(92.5% vs.77.5%)及與CDKN2A基因相同的特異度(93.8%),故更適合用來檢測肝癌。HOXA9基因和CDKN2A基因
的結合測試可得到上升的敏感度(95.0%)及降低的特異度(87.5%)。然而,根據表5,可看出HOXA9基因的甲基化、CDKN2A基因的甲基化及臨床病理特徵無關聯性。
據上述實驗結果,說明著HOXA9基因與其餘的9種基因於肝癌病患之腫瘤組織中的甲基化程度均高於同一基因於其他組織中的甲基化程度。
IV、HOXA9基因於腫瘤組織對應之血漿中的甲基化程度的研究
利用Q-MSP比較HOXA9基因於控制組血漿中或肝癌病患之血漿中的甲基化程度。Q-MSP分析結果如第4(A)圖所示,可看出HOXA9基因於肝癌病患之血漿中的甲基化程度較其於控制組血漿中者高。另提出,CDKN2A基因於控制組或肝癌病患之任一血漿中均無法檢測到甲基化。如第4(B)圖所示,以HOXA9基因甲基化之ROC曲線下的面積(AUC)來區別控制組血漿或肝癌病患的血漿,而AUC約為0.836。
如表6所示,HOXA9基因的敏感度與特異度分別為73.0%及97.1%。此外,HOXA9基因和AFP的結合測試可得到較單一特徵測試高的敏感度(97.1%)。
如第5圖所示,分析40個肝癌病患的腫瘤組織及血漿後,可得到29位病患的血漿有HOXA9基因甲基化的現象。
綜合上述具體實施例,證實了本發明利用待測個體之血漿、血清或血液中HOXA9基因之CpG位點的甲基化程度來判斷待測個體是否具有罹患肝癌的可能性。而,上述生物檢體透過簡易的醫學技術即可取得,不僅帶給肝癌的檢測便利性,更帶來了準確性。
惟以上所述者,僅為本發明之較佳實施例,但不能以此限定本發明實施之範圍;故,凡依本發明申請專利範圍及發明說明書內容所作之簡單的等效改變與修飾,皆仍屬本發明專利涵蓋之範圍內。
<110> 臺北醫學大學
<120> HOXA9基因作為檢測肝癌生物標記的用途
<160> 6
<210> 1
<211> 532
<212> DNA
<213> 智人
<220>
<223> HOXA9基因的啟動子區域
<400> 1
<210> 2
<211> 122
<212> DNA
<213> 智人
<220>
<223> HOXA9基因的啟動子區域
<400> 2
<210> 3
<211> 28
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> BS正向引子
<400> 3
<210> 4
<211> 28
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> BS反向引子
<400> 4
<210> 5
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> MS-PCR正向引子或Q-MSP正向引子
<400> 5
<210> 6
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> MS-PCR反向引子或Q-MSP反向引子
<400> 6
Claims (7)
- 一種肝癌的檢測方法,係包括:檢測一取自於一待測個體之生物檢體中HOXA9基因之包括SEQ ID NO:2所示之核苷酸序列之CpG位點的甲基化程度;以及分析該檢測步驟的結果,其中該待測個體之生物檢體中該CpG位點的甲基化程度高於另一取自於一不具肝癌正常個體之生物檢體中該CpG位點的甲基化程度時,代表該待測個體具有罹患肝癌的可能性,而且該等生物檢體係選自於由血液、血清及血漿所組成的群組。
- 如請求項第1項所述之肝癌的檢測方法,其中該檢測步驟是利用甲基化特異性聚合酶連鎖反應(methylation-specific PCR,MSP)、定量甲基化特異性聚合酶連鎖反應(quantitative methylation-specific PCR,Q-MSP)、亞硫酸鹽定序(bisulfite sequencing,BS)、微陣列(microarray)、質譜儀分析(mass spectrometer)、變性高效液相色譜(denaturing high-performance liquid chromatography,DHPLC)、焦磷酸定序(pyrosequencing)或南方點墨法(Southern blot assay)來檢測該待測個體之生物檢體中HOXA9基因之CpG位點的甲基化程度。
- 如請求項第1項所述之肝癌的檢測方法,其中該CpG位點係包括:一如SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列。
- 一種肝癌的檢測方法,係包括:檢測一取自於一待測個體之生物檢體中HOXA9基因之包括SEQ ID NO:2所示之核苷酸序列之CpG位點的甲基化程度與胎兒球蛋白(α-fetoprotein,AFP)的表現量;以及 分析該檢測步驟的結果,其中該待測個體之生物檢體中該CpG位點的甲基化程度高於另一取自於一不具肝癌正常個體之生物檢體中該CpG位點的甲基化程度,且該待測個體之生物檢體中胎兒球蛋白的表現量高於10ng/ml時,代表該待測個體具有罹患肝癌的可能性,而且該等生物檢體係選自於由血液、血清及血漿所組成的群組。
- 如請求項第4項所述之肝癌的檢測方法,其中該檢測步驟是利用甲基化特異性聚合酶連鎖反應、定量甲基化特異性聚合酶連鎖反應、亞硫酸鹽定序、微陣列、質譜儀分析、變性高效液相色譜、焦磷酸定序或南方點墨法來檢測該待測個體之生物檢體中HOXA9基因之CpG位點的甲基化程度。
- 如請求項第4項所述之肝癌的檢測方法,其中該檢測步驟是利用西方點墨法(Western blot assay)、酵素連結免疫吸附分析(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)、放射免疫分析(radioimmunoassay,RIA)或免疫色層分析(immunochromatographic test,ICT)來檢測該待測個體之生物檢體中胎兒球蛋白的表現量。
- 如請求項第4項所述之肝癌的檢測方法,其中該CpG位點係包括:一如SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列。
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