TWI440747B - 篩選糖蛋白生成之誘導劑之方法 - Google Patents

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Description

篩選糖蛋白生成之誘導劑之方法
本發明係關於改良糖蛋白產量的經改良之宿主細胞及培養方法。
製藥業及實驗室在包括成本節約、時間節省及製造產量在內的諸多方面均十分需要增加重組宿主蛋白產量之方法。在商業生物製藥方法中用丁酸鈉處理已成為一種增加細胞培養物中蛋白產量之方式。然而，增加的蛋白質產量之引伸益處有時會由丁酸鈉之毒副作用抵消。
丁酸鈉係可抑制組蛋白脫乙醯基酶(HDAC)酵素之短鏈脂肪酸，其中組蛋白脫乙醯基酶負責保持細胞核中染色質之結構(Davie，J .Nutrition 133：2485S-2493S，2003)。活性喪失可導致藉助組蛋白之正常乙醯化作用及脫乙醯化作用過程進行的基因轉錄調節發生變化(Prasad等人，In Vitro 12：125-132，1976)。轉錄調節的改變已顯示會增加在活體外產生重組蛋白質之細胞系的比產率。舉例而言，丁酸鈉已顯示可增加中國倉鼠卵巢(CHO)細胞中分泌之重組促卵泡素(FSH)、組織纖維蛋白溶酶原激活劑(tPA)、促紅血球生成素(EPO)及血小板生成素(TPO)的合成(Sung等人，J .Biotechnology 112：323-335，2004；Hendrick等人，Cytotechnology 36：71-83，2001；Chung等人，Microbiol .Biotechnol ,11，1087-1092，2001；Chotigeat等人，Cytotechnology 15：217-221，1994；Chang等人，Free Radical Research 30：85-91，1999)。負責此等增加之精確機制尚不確定。丁酸鈉處理已顯示可瞬時增加重組蛋白質之mRNA量，從而引起所得蛋白生物合成之增加(Yuan等人，J .Biol .Chem .260：3778-3783，1985)。
先前已在結腸癌研究中所涉及之細胞系中研究了由丁酸鈉引起的基因表現之改變。該等研究證明，丁酸鈉可改變與細胞週期進程、分化、細胞因子傳訊及凋亡有關之多基因表現。然而，該等研究受限於相對較小之基因亞組且未確定基因是否與蛋白生物合成有關。(Joseph等人，Oncogene 23：6304-6315，2004；Tabuchi等人，Biochem .Biophys .Research Comm .293：1287-1294，2002；Iacomino等人，Biochem .Biophys .Research Comm .285：1280-1289，2001；Mariadason等人，Cancer Res .60：4561-4572，2000；Delia Ragione等人，FEBS Letters 499，199-204，2001)。
α1,2甘露糖苷酶I酵素(MAN1C1)係與糖蛋白N連接之寡糖加工有關之酵素，該加工已闡述於Tremblay等人(Glycobiology 8：585-595，1998)及Gonzalez等人(J .Biol .Chem .274：21375-21386，1999)中。該酵素可藉由自高甘露糖寡糖上去除末端甘露糖來催化與該高甘露糖寡糖結構加工有關的第一個甘露糖修整步驟。N末端糖基化作用涉及內質網(ER)及高爾基體二者中各種單糖之加入及去除(Kornfeld等人，Ann .Rev .Biochem .54：631-664，1985)。 在ER中，N連接之糖基化作用伴隨有新生糖蛋白經由與分 子伴娘相互作用折疊成其天然結構(Ellgaard等人，Science 286：1882-1888，1999；Jakob等人，J .Cell Biol .142：1223-1233，1998)。已將此過程稱作ER質量控制，且若該過程因錯誤折疊之蛋白而被阻斷，則通常會出現該蛋白之ER相關降解或ERAD的起始(Ellgaard等人，Curr .Opin .Cell Biol .13：431-437，2001；Sifers，Science 299：1330-1331，2003；Oda等人，Science 299：1394-1397，2003；Molinari等人，Science 299：1397-1400，2003；Hurtley等人，Ann .Rev .Cell Biol .5：277-307,1989)。由α1,2甘露糖苷酶I酵素(MAN1C1)去除Man9 至Man8 之末端甘露糖已顯示可影響ERAD反應之起始(Liu等人，J .Biol .Chem .274：5861-5867，1999；Grinna等人J .Biol .Chem .255，2255-2258，1980)。
鑒於蛋白質產生誘導劑(例如丁酸鈉)之毒性，需要用其他方式來增加細胞培養物中重組蛋白質之總產量。
本發明提供經改造可過度表現α1,2甘露糖苷酶(MAN1C1)及感興趣之糖蛋白或蛋白質之宿主細胞，該等宿主細胞可包含經操作方式連接至編碼MAN1C1之核酸上的異源表現控制序列及經操作方式連接至編碼該糖蛋白之核酸上的異源表現控制序列。藉由業內已知的任何方法對該等宿主細胞加以改造以使其過度表現MAN1C1與感興趣之糖蛋白中之一或二者，該方法包括用包含一編碼該蛋白之核酸的載體轉染(其中該核酸係經操作方式連接至異源 表現控制序列上)，或用可上調內源蛋白之表現的表現控制序列轉染。
本發明進一步提供產生感興趣之糖蛋白之方法，其包括如下步驟：在培養基中培養本發明之任何宿主細胞；且自該宿主細胞或培養基中回收該糖蛋白。該宿主細胞係培養在可誘導MAN1C1蛋白表現增加或感興趣之糖蛋白之比產率增加之條件下。本發明進一步涵蓋，此宿主細胞所表現MAN1C1蛋白的量可增加所產生之該糖蛋白的量(皮克/毫克蛋白)或比產率(皮克/細胞/天)。該糖蛋白產量或比產率之改良可為(例如)至少2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、10倍、15倍、或20倍或更高。
本發明亦涵蓋增加感興趣之糖蛋白產量之方法，其包括在培養基中進一步加入蛋白質產生誘導劑之步驟。蛋白質產生誘導劑為熟習此項技術者所熟知並在本文中進一步提供。
本發明之宿主細胞及方法可用於製備任何感興趣之糖蛋白或蛋白質。例示性糖蛋白包括紅血球生成刺激分子，例如促紅血球生成素或達貝泊汀(darbepoetin)、或其類似物、變體或衍生物。本發明之宿主細胞可為(但不限於)哺乳動物細胞、CHO細胞、人類細胞、BHK細胞、NS/0細胞、HT-1080細胞、或熟習此項技術者已知可用的任何其他細胞。
在另一態樣中，本發明提供篩選蛋白質產生誘導劑之方法，其包括如下步驟：使宿主細胞與候選化合物接觸；測 定MAN1C1之表現量；且若MAN1C1之表現量增加，則將該候選化合物鑑別為蛋白質產生誘導劑。此一方法涵蓋測定mRNA的表現量或蛋白質的表現量。
自下列詳細說明可明瞭本發明之其他特徵及優點。然而，應瞭解，在闡述本發明之例示性實施例時，所給出之詳細說明及具體實例僅用於舉例說明之目的，此乃因熟習此項技術者自該詳細說明可明瞭涵蓋於本發明之精神及範圍內的各種改變及修改。
本發明提供用於增加宿主細胞中感興趣蛋白質之重組產量之材料及方法。本文所用"感興趣蛋白質"係指所欲大量重組產生之蛋白質(不同於MAN1C1)。
更具體而言，本發明包括已額外經改造可過度表現α1,2甘露糖苷酶I酵素(MAN1C1)以產生感興趣重組蛋白質的宿主細胞、含有此等宿主細胞之細胞培養物及增加該感興趣重組蛋白質的產量方法，該方法包括在可將MAN1C1的表現高於正常量之條件下培養此等宿主細胞。MAN1C1之較高表現量導致感興趣蛋白質之比產率及/或蛋白質產量之改良。
本發明亦涵蓋改良蛋白產量或增加比產率的方法，其涉及藉助引入可增加MAN1C1蛋白產量之化學誘導劑或可增加所表現之MAN1C1之比活性的化學誘導劑來增加宿主細胞中MAN1C1之活性量。
本發明涵蓋其中該改良之比產率相當於至少2皮克糖蛋 白/細胞/天之方法。在例示性實施例中，該比產率相當於至少3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、20、25、30、35、40、45、50、60、70、80、90或100皮克糖蛋白/細胞/天。然而，本發明涵蓋尤其在藉助額外誘導劑情況下達成的更大比產率。
本發明確定，丁酸鈉增加蛋白產量的一個機制係經由上調MAN1C1之表現的基因，其係與蛋白糖基化作用有關之基因。本文所述的數據顯示MAN1C1表現之高量並未明顯改變糖蛋白之糖基化作用，但出人意料地增加了所產生之重組蛋白質的量。據顯示，在用丁酸鈉處理細胞時，MAN1C1 mRNA的表現可在24小時時間內明顯增加約10倍以上，且在5天時間內增加40倍以上。用可降低MAN1C1蛋白表現之siRNA處理表現感興趣重組蛋白質之宿主細胞，可使丁酸鈉誘導之感興趣蛋白質產量之增加降低50%。此外，不存在丁酸鈉之情況下，MAN1C1之過度表現使感興趣蛋白質之產量增加2至3倍。因此，MAN1C1表現之增加有助於感興趣蛋白質之比產率的增加。
術語"分離之核酸"係指本發明之核酸不含至少一種天然狀態下與其結合之污染核酸。"核酸"係指DNA或RNA序列，視情況包含人工鹼基或鹼基類似物。
術語"一致性"(或"百分比一致性")係由特定數學模型或電腦程式(即，"演算法")測量兩個或兩個以上具有空位比對(若存在)之序列間相似性的一致性匹配百分比之量度。術語"相似性"係一相關概念，但與"一致性"不同，其既包括 一致性匹配亦包括保守取代匹配。可容易地藉由已知方法計算相關核酸分子及多肽之一致性與相似性。確定一致性及/或相似性之較佳方法經設計可給出所測試序列間之最大匹配。確定一致性及相似性之方法闡述於可公開獲得之電腦程式中。確定兩個序列間之一致性及相似性的例示性電腦程式方法包括(但不限於)GCG程式包，包括GAP(Devereux等人，Nucl .Acids .Res .12：387,1984；Genetics Computer Group，University of Wisconsin，Madison，Wis.)、BLASTP、BLASTN及FASTA(Altschul等人，J .Mol .Biol .215：403-410，1990))。BLASTX程式係可自美國國家生物技術中心(National Center for Biotechnology Information，NCBI)及其他來源(BLAST Manual，Altschul等人，NCB/NLM/NIH Bethesda，Md.20894；Altschul等人，上述文獻)公開獲得。亦可使用熟知的Smith-Waterman演算法來確定一致性。用於多肽序列比較之較佳參數包括下列：演算法：Needleman等人，J .Mol .Biol .48：443-453，1970；比較矩陣：BLOSUM 62 from Henikoff等人，Proc .Natl .Acad .Sci .USA 89：10915-10919，1992)；空位罰分：12；空位長度罰分：4；相似性臨限值：0。GAP程式可與上述參數一起使用(其中末端空位無罰分)。用於核酸分子序列比較之較佳參數包括下列：演算法：Needleman等人，J.Mol.Biol.，48：443-453，1970；比較矩陣：匹配=+10，錯配=0；空位罰分：50，空位長度罰分：3。GAP程式亦可與上述參數一起使用。熟習此項技 術者可使用其他例示性演算法、空位開放罰分、空位擴展罰分、比較矩陣、相似性臨限值等。
術語"經操作方式連接"係指表現控制序列與另一核酸序列之間的功能性連接，其中該表現控制序列可指導對應於另一序列之核酸的轉錄。
短語"嚴苛雜交條件"係指其中探針與其目標序列(通常在核酸之複雜混合物中)雜交，而不與其它序列雜交之條件。雜交嚴苛性主要由溫度、離子強度及變性劑(例如甲醯胺)濃度決定。用於雜交及洗滌之"高嚴苛條件"之實例係0.015 M氯化鈉；0.0015 M檸檬酸鈉在65℃至68℃下進行；或0.015 M氯化鈉、0.0015 M檸檬酸鈉及50%甲醯胺在42℃下進行。參見Sambrook、Fritsch及Maniatis，Molecular Cloning：A Laboratory Manual，第2版，Cold Spring Harbor Laboratory，(Cold Spring Harbor，N.Y.1989)，(1989)及Anderson等人，Nucleic Acid Hybridisation：Hybridization：a practical approach，第4章，IRL Press Limited(Oxford，England)，Limited，Oxford，England(1999)。典型"中等嚴苛"條件之實例係0.015 M氯化鈉、0.0015 M檸檬酸鈉在50℃至65℃下進行；或0.015 M氯化鈉、0.0015 M檸檬酸鈉及20%甲醯胺在37℃至50℃下進行。舉例而言，50℃下於0.015 M鈉離子中進行之"中等嚴苛"條件會允許有約21%之錯配。
熟習此項技術者會瞭解"高"及"中等"嚴苛條件之間不存在絕對差別。例如，在0.015 M鈉離子(無甲醯胺)下，完全 匹配之長DNA的解鏈溫度為約71℃。在65℃(以相同離子強度)洗滌時，此會允許有約6%之錯配。為獲得更多的遠緣序列，熟習此項技術者可簡單地降低溫度或提高離子強度。
術語"載體"用來指用於向宿主細胞轉移編碼資訊之任何分子(例如，核酸、質粒或病毒)。
術語"表現載體"係指適用於宿主細胞且含有可指導及/或控制期望核酸序列之表現的核酸序列("表現控制序列")之載體。適宜表現控制序列包括組成型或誘導型或調節型啟動子、增強子或一組轉錄因子結合位點。"表現"包括(但不限於)指導蛋白質產生之過程，例如轉錄、轉譯、及RNA剪接(若存在內含子)。
經操作方式連接至核酸上的"異源"表現控制序列係指經操作方式連接至核酸(包括基因)上之表現控制序列，該核酸不同於該表現控制序列在其天然狀態下經操作方式與之相連之基因。
術語"宿主細胞"用來指已受到轉形或能夠用核酸序列轉形且能夠表現所選感興趣基因之細胞。該術語包括親本細胞之後代，不論該後代在形態或基因構成上是否與原始親本相一致，只要所選基因存在即可。
本文所用"經改造可過度表現"蛋白(或編碼該蛋白之核酸)之宿主細胞係指與未經改造之宿主細胞相比，經改造的宿主細胞(包括其後代)可使該蛋白的表現高於正常情況之量。因此，此類中涵蓋表現對宿主細胞而言為外源之蛋 白質、並非由宿主細胞天然表現之蛋白質或由宿主細胞以相對較低之天然表現量，但在宿主細胞改造後表現量增加之蛋白質。
本文所用各部分標題僅係為了組織目的而不能將其理解為以任何方式限制所述標的物。
增加a1,2-甘露糖苷酶(MAN1C1)活性
本發明涵蓋，可藉助業內已知的任何方氏(包括加入化學誘導劑或藉助MAN1C1酵素之過度表現)來達成在產生感興趣蛋白質期間增加宿主細胞中α1,2-甘露糖苷酶(MAN1C1)之活性量。宿主細胞過度表現之MAN1C1酵素可具有與宿主細胞之內源或天然MAN1C1相同或類似之序列。因此，可在人類宿主細胞中過度表現人類MAN1C1，可在CHO宿主細胞中過度表現CHO MAN1C1，且可以類似方式在其他宿主細胞中過度表現行使MAN1C1功能之天然酵素。然而，可使用以相同方式在期望之宿主細胞行使功能之任何MAN1C1酵素，包括直向同源物或生物活性片段、變體、類似物或衍生物。
本文所用"類似物"係指相對於親本序列具有插入、缺失或取代同時仍大體上保持親本序列之生物活性(使用熟習此項技術者已知的生物分析所測定者)之核苷酸或胺基酸序列。"變體"包括親本序列的天然存在之等位變體、剪接變體、或多態形式。天然存在、變體或類似物多肽之"衍生物"包括彼等已受到化學修飾可(例如)連接可溶於水之聚合物(例如，聚乙二醇)、放射性核素、或其他診斷或靶向 或治療部分(其中任一種均可藉助連接子直接或間接連接)之衍生物。
對MAN1C1多肽而言之"生物活性"意指在改良比產率方面保留類似活性(例如作為每一細胞每天所產生之感興趣蛋白質量所量測者)或在自適宜的含有甘露糖之底物去除甘露糖方面保留類似酵素活性的其片段、變體、衍生物或類似物。對MAN1C1核酸而言之"生物活性"意指編碼此一生物活性MAN1C1多肽之核酸。
例示性人類MAN1C1之核苷酸及胺基酸序列分別列示於SEQ ID NO：1及2中。SEQ ID NO：1之多核苷酸的331至2223位核苷酸編碼SEQ ID NO：2之MAN1C1多肽。人類MAN1C1之核苷酸及多肽序列(分別為SEQ ID NO：1及2)由Tremblay等人(J .Biol .Chem .275：31655-31660，2000)鑑別並以Genbank登錄號AF261655提供。MAN1C1之其他直向同源物及變體之例示性多核苷酸及多肽序列以Genbank登錄號AB209275(SEQ ID NO：12及13)及DV567987(SEQ ID NO：14)識別。
本文所用術語"MAN1C1"係指人類MAN1C1(由SEQ ID NO：1之多核苷酸編碼的SEQ ID NO：2之多肽)、其直向同源物或該人類酵素或直向同源物之生物活性片段、變體、類似物或衍生物。例示性類似物保留與親本序列胺基酸之65%或更高之一致性，或70%、75%、80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、或99%或更高之一致性。例示性片段包括由MAN1C1多肽的至少 25、50、75、100、或更多胺基酸殘基構成之片段。其他例示性MAN1C1片段、變體、類似物或衍生物包括彼等由會在高嚴苛或中等嚴苛條件下與SEQ ID NO：1之核苷酸序列或SEQ ID NO：1之核苷酸序列的任何其他直向同源物雜交之核酸編碼者。
本文所用術語"MAN1C1核酸"或"MAN1C1多核苷酸"係指編碼任一前述多肽之核酸，包括如SEQ ID NO：1中所列示之核苷酸序列、或包含與其具有至少約65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%或100%一致性之核苷酸序列的核酸、或在本文所定義之中等或高嚴苛條件下與SEQ ID NO：1或SEQ ID NO：1之核苷酸序列之任何其他直向同源物之補體雜交的核酸。
亦瞭解，MAN1C1核酸包括SEQ ID NO：1之MAN1C1核酸或任何其他直向同源物之等位或剪接變體，並包括與任一上述核苷酸序列互補之核苷酸序列。
在已自一物種中鑑別出編碼MAN1C1多肽之基因的情形中，該基因的全部或一部分可用作探針或引子以自其他物種中鑑別出相應基因(直向同源物，或"物種同係物")或自相同物種中鑑別出相關基因(同係物)。探針或引子可用於據信可表現MAN1C1基因之來自各種組織來源之基因組DNA或cDNA庫的雜交篩選或PCR擴增。雜交嚴苛度之適宜條件可由業內普通技術者確定。可利用生物信息學技術來鑑別直向同源物，其中對來自各種哺乳動物或其他物種之序列集合加以篩選以選出展現出明顯的與已知MAN1C1 序列之同源性的核苷酸或多肽序列。編碼MAN1C1多肽之核酸亦可藉由表現選殖鑑別，該表現選殖採用基於經表現蛋白質之特性的陽性純系檢測。通常，藉由抗體或其他結合夥伴(例如，受體或配體)與在宿主細胞表面表現並展示之經選殖蛋白之結合來篩選核酸庫。用可檢測之標記修飾抗體或結合夥伴以鑑別彼等表現所欲純系的細胞。
儘管本發明主要涵蓋過度表現MAN1C1，即，在經改造之宿主細胞中以高於未經改造之宿主細胞在正常情況下之量表現，但本發明亦涵蓋用於降低或抑制細胞中MAN1C1之表現的方法，例如藉助投予siRNA或反義化合物。
蛋白質產生誘導劑
本發明亦涵蓋組合使用其他已知的蛋白質產生誘導劑及可過度表現MAN1C1及另一感興趣蛋白質之宿主細胞，以進一步增加感興趣蛋白質之總產量。已知誘導劑包括(但不限於)下列化合物：N-乙醯基-L-半胱胺酸、放線菌素D(Actinomycin D)、7-胺基-巴非黴素Al(7-Amino-Bafilamycin Al)(灰色鏈黴菌(Streptomyces griseus ))、鈣感光蛋白C(Calphostin C)(支孢樣支孢黴(Cladosporium cladosporioides ))、喜樹鹼(Camptothecin)(喜樹(Camptotheca acuminata ))、CAPE、2-氯-2'-脫氧腺苷、5'-三磷酸2-氯-2'-去氧腺苷四鋰鹽、放線菌酮(Cycloheximide)、單水合環磷醯胺(Cyclophosphamide Monohydrate)、環孢素(Cyclosporine)(多孢木黴菌(Trichoderma polysporum ))、氫氯酸道諾黴素(Daunorubicin Hydrochloride)、地塞米松 (Dexamethasone)、氫氯酸多柔比星(Doxorubicin Hydrochloride)、(-)-表沒食子兒茶素沒食子酸酯((-)-Epigallocatechin Gallate)、依託泊苷(Etoposide)、磷酸依託泊苷(Etoposide Phosphate)、ET-18-OCH3、5-氟尿嘧啶(5-Fluorouracil)、H-7二氫氯酸鹽、染料木黃酮(Genistein)、4-羥基壬烯醛(4-Hydroxynonenal)、4-羥基苯基視黃醯胺(4-Hydroxyphenylretinamide)、羥基脲(Hydroxyurea)、IL-1β抑制劑、(±)-S-亞硝基-N-乙醯基青黴胺、S-亞硝基谷胱甘肽、佛波醇-12-肉豆蔻酸酯-13-乙酸酯、二氫氯酸嘌羅黴素(Puromycin Dihydrochloride)、1-吡咯啶二硫代甲酸銨鹽、二水合槲皮素(Quercetin Dihydrate)、雷帕黴素(Rapamycin)、丁酸鈉、4-苯基丁酸鈉、D-赤-鞘胺醇、N-乙醯基-D-赤-鞘胺醇、N-辛醯基-星狀孢子素(N-Octanoyl-Staurosporine)(鏈黴菌屬菌(Streptomyces sp .))、舒林酸(Sulindac)、毒胡蘿蔔內酯(Thapsigargin)、TRAIL(大腸桿菌(E.coli))、曲古抑菌素A(Trichostatin A)(鏈黴菌屬菌(Streptomyces sp.))、氫氯酸(±)-維拉帕米((±)-Verapamil Hydrochloride)、(藜蘆定Veratridine)、1α,25-二羥基維他命D3及琥珀酸維他命E(VWR及Calbiochem)。
本發明進一步涵蓋可藉由MAN1C1活性的增加(例如經由增加MAN1C1表現)來鑑別可改良蛋白產量之其他化學物質。MAN1C1活性之增加可如Tremblay等人(2000，上述文獻)所述測定。
MAN1C1表現之增加可藉由如實例4(使用Affymetrix晶 片)或實例5(定量PCR)中所述量測所產生之MAN1C1 mRNA的相對量或經由ELISA、HPLC或其他業內已知方法或如Tremblay等人(2000，上述文獻)所述量測所產生之MAN1C1蛋白來測定。
用於重組產生之感興趣蛋白質
宿主細胞過度表現之感興趣重組蛋白質可為對細胞而言為內源(天然)或外源之任何多肽。例示性的感興趣蛋白質係糖蛋白，包括分泌之糖蛋白。在例示性實施例中，該感興趣之糖蛋白係紅血球生成刺激分子，如下文所述。
所產生之感興趣重組蛋白質的量可量測為"比產率"，其係每一細胞每天所產生之感興趣蛋白質的量。所產生之感興趣重組蛋白質的量亦可藉由單位量細胞蛋白中所產生之感興趣蛋白質的量來量測。量測比產率或蛋白質產量之方法為業內所熟知。
可使用本發明之材料及方法增加其表現的感興趣之重組蛋白質可為對該細胞而言為內源或外源之任何多肽。例示性感興趣之重組蛋白質係糖蛋白，尤其為N糖基化之糖蛋白。感興趣之例示性糖蛋白包括分泌之糖蛋白，例如紅血球生成刺激分子。
在本文中，術語"多肽"與"蛋白質"可互換使用。
本文所用術語"紅血球生成刺激分子"包括人類促紅血球生成素(SEQ.ID NO.：3)或其生物活性變體、衍生物或類似物，包括該蛋白質或類似物的經化學修飾之衍生物。SEQ ID NO：3之1位至165位胺基酸構成成熟蛋白質。另一 例示性紅血球生成刺激分子為達貝泊汀(SEQ ID NO：5)。SEQ.ID NO：5之1位至165位胺基酸構成成熟蛋白質。本發明亦涵蓋促紅血球生成素(SEQ ID NO.：3)或達貝泊汀(SEQ.ID NO：5)之類似物，該等類似物與SEQ.ID NO：3或SEQ.ID NO：5分別具有65%、70%、75%、80%、85%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%或99%之一致性同時仍保留紅血球生成活性。
重組人類促紅血球生成素之例示性序列、製造、純化及用途闡述於諸多專利公開案中，包括(但不限於)Lin之美國專利第4,703,008號及Lai等人之美國專利第4,667,016號，二者均以引用方式全部併入本文中。達貝泊汀係rHuEPO之胺基酸序列中具有五處變化之高糖化促紅血球生成素類似物，該等變化可提供兩個額外的糖鏈。更具體而言，達貝泊汀在SEQ ID NO：5之胺基酸殘基30及88處含有兩個額外的N連接之糖鏈。達貝泊汀及其他促紅血球生成素類似物之例示性序列、製造、純化及用途闡述於諸多專利公開案中，包括Strickland等人之91/05867、Elliott等人之WO 95/05465、Egrie等人之WO 00/24893及Egrie等人之WO 01/81405，各自均以引用方式全部併入本文中。天然存在或類似物多肽之衍生物包括彼等以受到化學修飾可(例如)連至可溶於水之聚合物(例如，聚乙二醇化者)、放射性核素或其他診斷或靶向或治療部分上的衍生物。
術語"紅血球生成活性"意指如活體內分析(例如，Exhypoxic Polycythermic小鼠分析)中所展現之刺激紅血球 生成之活性。例如參見，Cotes及Bangham，Nature 191：1065(1961)。
使用本發明之材料及方法可增加重組產生之其他感興趣多肽，包括細胞因子、免疫球蛋白樣蛋白、抗體及肽體(peptibodies)、及任何此等蛋白之類似物、變體或衍生物。
例示性的感興趣蛋白質包括粒細胞集落刺激因子(GCSF)、幹細胞因子、來普汀、荷爾蒙、細胞因子、造血因子、生長因子、減肥因子、營養因子、消炎因子、受體或可溶受體，例如p80 TNF-R之可溶片段、酵素及任何前述各物之Fc融合體。其他實例包括胰島素、胃泌素、泌乳素、促腎上腺皮質素(ACTH)、促甲狀腺激素(TSH)、黃體生成素(LH)、促卵泡素(FSH)、人類絨毛膜促性腺激素(HCG)、胃動素、干擾素(α、β、γ)、介白素(IL-1至IL-12)、腫瘤壞死因子(TNF)、腫瘤壞死因子-結合蛋白(TNF-bp)或TNF受體-I或-II、腦源性神經營養因子(BDNF)、神經膠質源性神經營養因子(GDNF)、神經營養因子3(NT3)、成纖維細胞生長因子(FGF)、神經營養生長因子(NGF)、骨生長因子，例如護骨素(OPG)、胰島素樣生長因子(IGF)、巨噬細胞集落刺激因子(M-CSF)、粒細胞巨噬細胞集落刺激因子(GM-CSF)、巨核細胞源性生長因子(MGDF)、角化細胞生長因子(KGF)、血小板生成素、血小板源性生長因子(PGDF)、集落刺激生長因子(CSF)、骨形態發生蛋白(BMP)、過氧化物歧化酶(SOD)、組織纖維蛋 白溶酶原激活劑(TPA)、尿激酶、鏈激酶、或激肽釋放酶、任何此等蛋白之受體或可溶受體、酵素、變體、衍生物或類似物，包括Fc融合體。
本文所用術語"抗體"包括全裝配抗體、單株抗體(包括人類、人源化或嵌合抗體)、多株抗體、多特異性抗體(例如，雙特異性抗體)、Maxibody及可結合抗原之抗體片段(例如，Fab'、F'(ab)2 、Fv、單鏈抗體、雙抗體)，包括前述各物之互補決定區(CDR)，只要其展現期望之生物活性即可。
例示性抗體係Herceptin®(曲司佐單抗(Trastuzumab))、可特異結合人類表皮生長因子受體2(Her2)原致癌基因之胞外結構域之重組DNA源性人源化單株抗體；及Rituxan®(利妥昔單抗(Rituximab))，一種針對CD20抗原之基因改造之嵌合鼠類/人類單株抗體(見於正常及惡化B淋巴細胞表面)。其他例示性抗體包括Avastin®(貝伐單抗(bevacizumab))、Bexxar®(托西莫單抗(Tositumomab))、Campath®(阿侖單抗(Alemtuzumab))、Erbitux®(西妥昔單抗(Cetuximab))、Humira®(阿達木單抗(Adalimumab))、Raptiva®(伊伏利單抗(efalizumab))、Remicade®(英夫利昔單抗(Infliximab))、ReoPro®(阿昔單抗(Abciximab))、Simulect®(巴利昔單抗(Basiliximab))、Synagis®(帕利珠單抗(Palivizumab))、Xolair®(奧馬珠單抗(Omalizumab))、Zenapax®(達克珠單抗(Daclizumab))、Zevalin®(替坦異貝莫單抗(Ibritumomab Tiuxetan))、或Mylotarg®(吉妥單抗 (gemtuzumab ozogamicin))、任何此等抗體之受體或可溶受體、酵素、變體、衍生物或類似物。
肽體即包含與至少一個抗原結合肽相連之抗體Fc結構域的分子一般闡述於2000年5月4日公開之PCT公開案WO 00/24782中。免疫球蛋白樣蛋白即免疫球蛋白超家族之成員含有一或多個以類似於抗體可變區各部分之結構折疊之免疫球蛋白樣結構域。
改造宿主細胞使其過度表現蛋白質
可以業內已知的多種方法改造宿主細胞以使其過度表現蛋白質，該等方法包括(但不限於)插入編碼期望之蛋白質的外源核酸(視情況作為表現載體的一部分)；插入外源表現控制序列以使其引起編碼期望之蛋白質之宿主細胞內源基因的表現增加；或活化宿主細胞內源表現控制序列以增加編碼期望之蛋白質之內源基因的表現。
宿主細胞之培養物可根據業內已知的任何方法製備，且使此等宿主細胞生長及回收該等細胞所產生之重組蛋白質(無論是自細胞抑或自培養基回收)的方法為業內已知。該等培養方法會涉及向培養基中加入蛋白質產生之化學誘導劑。例示性宿主細胞及程序在下文闡述。
可使用標準連接技術將編碼MAN1C1多肽之核酸插入適宜表現載體中。表現載體視情況可包含啟動子、一或多個增強子序列、複製起始點、轉錄終止序列、含有供體及受體剪接位點之完整內含子序列、編碼用於多肽分泌之前導序列或訊號序列之序列、核糖體結合位點、聚腺苷酸化序 列、用於插入編碼多肽之核酸以進行表現之多接頭區及/或選擇標記元件。下文將分別論述每一此等序列。
視情況，該載體可包含"標籤"編碼序列，即，位於MAN1C1多肽編碼序列之5'或3'端之寡核苷酸序列；該寡核苷酸分子編碼polyHis(例如hexaHis)，或另一"標籤"，例如FLAG、HA(血凝集素蛋白病毒)或myc，存在用於彼等之市售抗體。此標籤在多肽表現時通常與多肽融合，且可用作自宿主細胞中檢測或親和純化MAN1C1多肽之方法。
適宜載體包括(但不限於)黏質體、質體或經修飾之病毒，但會瞭解該載體系統須與所選宿主細胞相容。可藉由業內已知的任何方法將核酸轉移至宿主細胞中，該方法包括(例如)藉助脂質體介導之轉形、受體介導之轉形(配體-DNA複合體)、電穿孔、DNA之微注射、細胞融合、DEAE-葡聚糖、氯化鈣、磷酸鈣沉澱、微粒轟擊、用病毒載體感染、脂轉染、轉染或同源重組。
本發明亦涵蓋使用利用控制元件之同源重組或其他重組產生方法，其中將該等控制元件導入已含有編碼MAN1C1多肽之DNA的細胞中。例如，可使用同源重組方法修飾含有正常情況下轉錄沉默之MAN1C1基因或表現量低之基因的細胞，從而產生可表現治療有效量之MAN1C1多肽的細胞。同源重組係一種起初開發用於靶向基因以誘導或校正轉錄活性基因中之突變的技術(Kucherlapati，Prog .Nucl .Acid Res .& Mol .Biol .36：301，1989)。基礎技術經發展可作為一種用於向哺乳動物基因組之具體區引入具體突變 (Thomas等人，Cell 44 ：419-428,1986；Thomas等人，Cell 51：503-512，1987；Doetschman等人，Proc.Natl.Acad.Sci.85：8583-8587,1988)或校正有缺陷基因內具體突變(Doetschman等人，Nature 330：576-578，1987)之方法。例示性同源重組技術闡述於美國專利第5,272,071號(歐洲專利第9193051號、歐洲公開案第505500號、PCT/US90/07642、國際公開案第WO 91/09955號)。
藉助同源重組，可藉由使插入基因組之DNA序列與靶向DNA連接來指導其到達感興趣基因的具體區。該靶向DNA係一與基因組DNA的一個區互補(同源)之核苷酸序列。可使與基因組的一具體區互補之靶向DNA小片段在DNA複製過程中與親本鏈接觸。藉助共有之同源區與內源DNA其他片段雜交且從而重組係已插入細胞之DNA的一般特性。若此互補鏈連至含有一突變或一不同序列或一額外核苷酸之寡核苷酸上，則重組結果為將其併入新合成鏈中。作為校正讀碼功能之結果，新DNA序列可能用作模板。因此，將轉移DNA併入基因組中。
連接至此等靶向DNA片段上者係可與MAN1C1多肽之表現相互作用或對其加以控制之DNA區，例如，側翼序列。例如，以足以影響編碼期望之MAN1C1多肽之DNA轉錄的接近程度及取向將啟動子及/或增強子元件或外源轉錄調節元件(視情況包括內含子)插入目的宿主細胞之基因組中。控制元件可控制宿主細胞基因組中所存在之DNA的一部分。因此，MAN1C1多肽之表現可不藉由轉染編碼 MAN1C1基因自身之DNA而是藉助與可為MAN1C1多肽轉錄提供具有識別訊號之內源基因序列的DNA調節區段偶接之靶向DNA(含有與感興趣內源基因同源之各區)來達成。
在一例示性實施例中，以可產生一新轉錄單位之方式將包含至少一調節序列、一外顯子及一剪接供體位點之DNA引入染色體DNA中(新轉錄單位中DNA構造中所存在之該調節序列、該外顯子及該剪接供體位點係以經操作方式連至該內源基因上)。
本文所述之過度表現涵蓋活化(或引起表現)正常情況下在所得細胞中沉默(不表現)之基因以及增加在所得細胞中並不以生理顯著量表現之基因的表現。
位點特異性重組系統(例如Cre/loxP、FLP/FRT)為業內已知(Sauer，Curr.Opin.Biotechnol.521-527，1994；Saner，Meth.Enzymol.225：890-900，1993)。
增加或引起MAN1C1多肽自細胞內源MAN1C1基因之表現的額外方法涉及以使MAN1C1多肽自細胞內源MAN1C1基因的產生重新開始或增加的方式增加可上調該基因表現及/或降低會下調該基因表現之轉錄抑制劑之表現的轉錄因子之表現。
因此，本發明涵蓋其中已插入編碼MAN1C1之核酸的宿主細胞，該核酸視情況以可操作方式連接至表現控制序列上且視情況作為表現載體的一部分。本發明亦涵蓋其中已以可增加MAN1C1表現之方式插入一異源表現控制序列之宿主細胞，包括其中天然MAN1C1基因以可操作方式連接 至一異源表現控制序列上的宿主細胞。
用於重組蛋白質質產生之業內已知的任何宿主細胞或宿主均可使用，包括酵母細胞、植物細胞、植物、昆蟲細胞及哺乳動物細胞以及轉基因動物。例示性酵母細胞包括畢赤酵母屬(Pichia )，例如巴氏畢赤酵母菌(P .pastoris )、及酵母菌屬(Saccharomyces )，例如釀酒酵母菌(S .cerevisiae )以及稷酒裂殖酵母菌(Schizosaccharomyces pombe )；克魯維酵母屬(Kluyveromyces )，例如紮克替克魯維酵母菌(K .Zactis )、脆壁克魯維酵母菌(K .fragilis )、保加利亞克魯維酵母菌(K .bulgaricus )、維克瑞米克魯維酵母菌(K .wickeramii )、瓦爾替克魯維酵母菌(K .waltii )、果蠅克魯維酵母菌(K .drosophilarum )、耐熱克魯維酵母菌(K .thernotolerans )、及馬克斯克魯維酵母(K .marxianus )、假絲克魯維酵母(K .yarrowia )； 裏氏木黴(Trichoderma reesia )、粗糙脈孢菌(Neurospora crassa )、許旺酵母屬(Schwanniomyces )，例如西方許旺酵母菌(Schwanniomyces occidentalis )、脈孢菌屬(Neurospora )、青黴菌(Penicillium )、彎頸黴屬(Totypocladium )、曲黴菌屬(Aspergillus )，例如構巢曲黴菌(A .nidulans )、黑曲黴菌(A .niger )、漢遜酵母屬(Hansenula )、念珠菌屬(Candida )、克勒克酵母屬(Kloeckera )、球擬酵母菌屬(Torulopsis )、及紅酵母屬(Rhodotorula )。例示性昆蟲細胞包括苜蓿銀紋夜蛾(Autographa californica )及草地黏蟲(Spodoptera frugiperda )及果蠅屬(Drosophila )。例示性哺乳動物細胞包括多種CHO、BHK、HEK-293、 NS0、YB2/3、SP2/0及人類細胞，例如PER-C6或HT1080、以及VERO、HeLa、COS、MDCK、NIH3T3、Jurkat、Saos、PC-12、HCT 116、L929、Ltk-、WI38、CV1、TM4、W138、Hep G2、MMT、白血病細胞系、胚胎幹細胞或受精卵細胞。
培養方法與多肽產生
本發明亦提供在可增加MAN1C1蛋白表現且從而使任何本文所述感興趣之重組蛋白質之比產率或蛋白質產量增加的條件下培養宿主細胞(即使之生長)的方法。該等方法可進一步包括自宿主細胞或培養基中回收所產生之感興趣重組蛋白質的步驟。
在感興趣重組蛋白質被分泌入培養基時，可定期收集培養基，以使在若干收集週期中可一直使用相同宿主細胞。在例示性實施例中，按三個分批收集週期培育產生紅血球生成刺激分子之宿主細胞。對於每一週期，收集培養基並更換為替換經收集之培養基的新鮮培養基。第一週期可持續(例如)8天；第二週期可持續(例如)7天；且第三週期可持續(例如)5天。
多種培養系統為業內已知，包括T-培養瓶、旋轉器及振盪器培養瓶、滾瓶及攪拌罐生物反應器。滾瓶培養一般藉由將細胞接種至部分(例如，容量的10%至30%)裝有培養基並經緩慢旋轉之滾瓶中、使細胞黏附至滾瓶側壁並使其生長至匯合來實施。藉由傾析出上清液來收集細胞培養基，將其更換為新鮮培養基。貼壁依賴型細胞亦可在微載 體(例如聚合物球體)上培養，該等微載體係懸浮於攪拌罐生物反應器中。另一選擇，可使細胞生長於單細胞懸浮液中。
培養基可以一批次方法(例如其中將培養基以一批形式一次加入細胞中)或以其中定期加入小批量培養基之批次補料方法加入。可在培養期間若干次培養結束時收集培養基。連續灌注生產過程亦為業內已知，且涉及向培養物中連續進料新鮮培養基，同時自反應器中連續取出相同體積。灌注培養一般會達成高於批次培養之細胞密度且可保持數周或數月以重複收集。
可使用為熟練技術者所熟知的標準培養基培養本發明之宿主細胞。該培養基通常會含有細胞生長及存活所必需之所有營養物質。用於培養真核細胞之適宜培養基係Roswell Park Memorial Institute培養基1640(RPMI 1640)、最低必需培養基(MEM)及/或杜貝克改良鷹氏培養基(DMEM)，經培養之特定細胞系所指定的所有此等培養基可補充有血清及/或生長因子。用於昆蟲培養之適宜培養基係需要時補充有酵母粉(yeastolate)、乳白蛋白水解物及/或胎牛血清的Grace's培養基。
通常，添加可用於轉化細胞之選擇性生長的抗生素或其他化合物以用作培養基之補充物。所使用之化合物可由用來轉化宿主細胞之質粒上的選擇標記元件決定。例如，在該選擇標記元件係卡那黴素抗性之情形中，加入培養基中之化合物會係卡那黴素。用於選擇性生長之其他化合物包 括氨苄青黴素、四環素、遺傳黴素及新黴素。
宿主細胞所產生之MAN1C1多肽的量及期望之感興趣重組蛋白質的量可使用業內已知的標準方法估測。該等方法包括(但不限於)西方點漬分析、SDS聚丙烯醯胺凝膠電泳、非變性凝膠電泳、高效液相層析(HPLC)分離、免疫沉澱及/或活性分析(例如DNA結合凝膠轉移分析)。本發明亦涵蓋可使用業內已知及本文所述之標準方法評估感興趣蛋白質之比產率(表示為皮克/細胞/天)。
實例
參考下列非限制性實例更詳盡地闡述本發明，提供該等實例僅為更全面舉例說明本發明，但不應將其理解為限制本發明之範圍。該等實例舉例說明本發明所使用之各種方法，例如細胞培養方法；藉由RP-HPLC進行之重組HuEPO定量；使用Affymetrix晶片進行之基因表現分析；所選基因之實時定量PCR；MAN1C1 siRNA之使用；及MAN1C1選殖與表現。該等實例亦舉例說明丁酸鈉對rHuEPO比產率及細胞週期進程之影響；丁酸鈉對MAN1C1表現之影響；MAN1C1小干擾RNA(siRNA)對rHuEPO比產率之影響；及MAN1C1過度表現對rHuEPO比產率之影響。
此等實例中所述之技術係本發明所述可在本發明實施中良好運作且同樣構成本發明實施之例示性模式之技術。可在所揭示之具體方法中進行許多改變且在不偏離本發明之精神及範圍之情況下仍舊達成同樣或類似結果。該等改變意欲作為本發明之態樣。
實例1 細胞培養方法
在下文所列示之各實施例中均使用用人類EPO cDNA之質粒轉染的人類腎纖維肉瘤細胞系即HT1080(Rasheed等人，Cancer 33：1027-1033，1974)。用抗生素遺傳黴素(Gibco)保持用於保留轉染質粒之選擇壓力。在通風T-培養瓶(75平方公分)(Corning)中使細胞以貼壁單層形式生長，接種密度為2.1×104 個細胞/平方公分，該等培養瓶存於37℃下加濕之12% CO2 培養箱中。使細胞在補充有1×非必需胺基酸、5毫克/公升遺傳黴素及1.5克/公升碳酸氫鈉(所有均來自Gibco)之含有10%血清之DMEM培養基中生長4天至5天。細胞達到匯合後，用PBS對其進行洗滌以去除血清且更換為補充有1×非必需胺基酸(Gibco)、1.5克/公升碳酸氫鈉及2克/公升葡萄糖之無血清1：1DMEM/F-12培養基，保持5天至7天時間。在加入無血清培養基之同一天用2 mM丁酸鈉(Sigma)處理實驗培養基。
實例2 藉由RP-HPLC進行之重組HuEPO定量
為確定細胞培養基中所產生之重組人類促紅血球生成素(rHuEPO)的量，藉由反相HPLC分析200微升培養基。在配有保護管柱之分析型苯乙烯/二乙烯基苯HPLC管柱(Polymer Labs)上使用17分鐘內存於0.1% TFA中之30%至65% CH3 CN之線性梯度(Sigma)分離樣品。細胞培養物中所表現之rHuEPO的保留時間係約15.5分鐘並與純rHuEPO 標準品(Amgen公司)相對應。藉由與純rHuEPO之標準曲線相比較來定量未知樣品之經積分峰面積。
實例3 使用Affymetrix晶片進行之基因表現分析
在存在及不存在丁酸鈉之情況下於24小時內使用寡核苷酸微陣列及HU133A Affymetrix晶片(Affymetrix)研究HT1080細胞中之基因表現。所有實驗均根據Affymetrix程序實施。總共分析24個晶片-12個來自經丁酸鈉處理之細胞且12個為對照。首先將來自Affymetrix軟體之基因表現數據輸入GeneSpring®(版本6.0)中並使用該軟體之整體標準化程序標準化。將小於0.01之數值設為0.01且用每一量測值除以該樣品所有量測值之50%。然後用每一基因除以所有樣品中其量測值之中值，且若原始數值之中值小於10，則用該基因的每一量測值除以10。然後根據處理類型(對照或丁酸鈉)及時間(3小時、6小時、12小時及24小時)對每一晶片之樣品數據進行分組。將來自表現數據之結果與可公開自四個類別(聚糖降解、聚糖轉移酶、聚糖運輸及糖核苷酸，如由Consortium基因列表所定義)中所存在之基因的功能Glycomics cDNA陣列(GLYCOv2基因晶片)之Consortium的基因列表加以比較。
實例4 所選基因之實時定量PCR
利用TaqMan(Applied Biosystems公司)逆轉錄實時定量PCR(qRT-PCR)來確認使用Affymetrix晶片所觀察到之 mRNA表現變化。使用引子表現軟體(Applied Biosystems Incorporated)生成針對MAN1C1及rHuEPO之探針。MAN1C1：正向-GGA GCC CCA GAG CCA AGT(SEQ ID NO：6)；反向-GCC AAG CAA ACT GCA TCA TCT(SEQ ID NO：7)；TaqMan-ECG AGC CCA GCG GGA GAA AAT CAX(E=6-FAM；X=Tamra)(SEQ ID NO：8)。rHuEPO：正向-GTT AAT TTC TAT GCC TGG AAG AGG AT(SEQ ID NO：9)；反向-CCA GGC CCT GCC AGA CTT(SEQ ID NO：10)；TaqMan-EAG GTC GGG CAG CAG GCC GTX(E=6-FAM；X=Tamra)(SEQ ID NO：11)。對於每一分析使用ABI 7000或7900(Applied Biosystems公司)，其中使用下列熱循環參數；1個循環，50℃下30分鐘；1個循環，95℃下10分鐘；40個循環，94℃下15秒及60℃下60秒。對於對照及經丁酸鈉處理之細胞以一式三份之形式分析來自至少三個獨立細胞培養物之RNA樣品。所有經處理基因之循環臨限(Ct)值對照持家基因即GAPDH(Applied Biosystems公司，組成部分編號4310884E)進行標準化，以校正RNA濃度之誤差。將數據報告為Ct量之"倍數變化"或"百分比變化"已將經丁酸鈉處理之樣品與對照樣品加以比較。
實例5 MAN1C1 siRNA
使HT1080細胞在75平方公分之通風T-培養瓶中於補充有1×非必需胺基酸及1.5克/公升碳酸氫鈉之含有10%血清之DMEM培養基(所有均購自Gibco)中生長4天。細胞達到匯 合後，用1×PBS對其進行洗滌且隨後用50微升siPORTTM Amine轉染劑加60 μM小抑制RNA(siRNA)(Ambion)(存於15毫升含有10%血清之DMEM培養基中)對其處理48小時或不進行處理。然後用PBS洗滌培養物以去除血清並更換成含有或不含50微升siPORTTM Amine及60 μM siRNA之15毫升無血清DMEM：F12培養基。然後使培養物在存在或不存在2 mM丁酸鈉之情況下生長5天時間。收集培養基樣品並在無血清改變後的第1天、第3天及第5天分析rHuEPO及mRNA量。
實例6 MAN1C1選殖及表現
使用含有MAN1C1之cDNA序列(SEQ ID NO：1)及側翼attL 重組位點之pENTRTM 221入門載體(Invitrogen-純係ID：IOH42767)。根據gateway技術程序，實施利用入門純係LR ClonaseTM 兩個attL 位點以及目的pcDNA3.1/nV5-DESTTM 載體兩個attR 位點進行之重組並藉由在氨苄青黴素選擇下轉化DH5a感受態細胞來確認。(目的載體含有在重組反應中允許陰性選則之ccdB 基因。)藉由重組後目的載體之限制性內切酶消化及利用BamHI之轉化確認正確重組反應(數據未顯示)。利用Giga Prep質粒DNA套組(Qiagen)之製造商程序得到質粒DNA製備物(約3毫克)。
如下實施HT1080細胞之轉染：以1.6×106 個細胞接種T-培養瓶(75平方公分)並使其在轉染前生長4至5天。將16微克、32微克或64微克質粒DNA加入2毫升DMEM：F12培養 基中。此外，將59微升Lipofectamine 2000(Invitrogen)加入另外2毫升DMEM：F12培養基中並培育5分鐘。然後將DNA與Lipofectamine的兩個混合物合併，且在室溫培育20分鐘。用1×PBS洗滌T-培養瓶後，加入整個混合物(約4毫升)並將其在37℃/12% CO2 培養箱中培育2小時。在每一T-培養瓶中加入額外11毫升新鮮DMEM：F12培養基，並在24小時後開始取樣。
實例7 丁酸鈉可增加rHuEPO比產率並阻斷細胞週期進程
檢查丁酸鈉處理對HT1080細胞週期及rHuEPO比產率之影響。用丁酸鈉(2 mM)處理之細胞使重組人類促紅血球生成素(rHuEPO)比產率與對照培養物相比增加了大約4倍(圖1)。然而，與丁酸鈉使細胞變為G0/G1期(其中其他研究者已報告稱蛋白合成最大化(Kim等人，Biotech .Bioeng .71：184，2001))不同，處於G0/G1、S及G2/M期之細胞群體與對照培養物相比在整個5天培養過程中均保持相對恆定。此等差異可能歸因於如上所示之培養方法，該方法使細胞在加入丁酸鈉之前達到匯合，而先前報告關注加入丁酸鈉時細胞週期對指數生長細胞之影響。因此，單細胞週期數據無法獨自作為所量測之rHuEPO比產率增加的原因。
實例8 丁酸鈉可增加MAN1C1表現
用HT1080培養物中產生的重組HuEPO作為模型糖蛋白 以研究丁酸鈉對與蛋白糖基化作用有關之基因的影響。培養過程中用2 mM丁酸鈉處理HT1080細胞使糖核苷酸池及rHuEPO上所存在之寡糖結構產生諸多表型改變。
為確定此等表型改變是否與基因改變有關，在24小時時間內於存在或不存在丁酸鈉之情況下使用寡核苷酸微陣列及HU133A Affymetrix晶片(Affymetrix)研究HT1080細胞中之基因表現。
鑑別出潛在限速酵素即α1,2甘露糖苷酶I酵素(MAN1C1)與糖蛋白N連接之寡糖加工有關。丁酸鈉誘導之MAN1C1 mRNA的相對改變列示於下方表1中。在用丁酸鈉處理細胞時，該基因之表現在整個24小時過程中增加大約10倍(表1)。在5天時間內藉由qRT-PCR對用丁酸鈉處理之HT1080細胞中的MAN1C1表現進行後續確認，顯示與對照培養物相比增加>40倍(表1)。
實例9 MAN1C1小干擾RNA(siRNA)可降低rHuEPO比產率
丁酸鈉對MAN1C1表現之增加的影響與對rHuEPO比產率之增加的影響之間是否存在聯繫，在存在及不存在丁酸鈉之情況下用針對MAN1C1之小干擾RNA(siRNA)處理細胞。在對照條件下用siRNA處理對rHuEPO QP 沒有影響，但在用丁酸鈉及siRNA同時處理細胞時與單獨用丁酸鈉處理比較使rHuEPO QP 降低50%(圖2A)。如先前所示，丁酸鈉處理使MAN1C1 mRNA量與對照培養物相比得到增加(圖2B)，然而，同時用丁酸鈉及siRNA處理之細胞在MAN1C1 mRNA量上與單獨用丁酸鈉處理之細胞相比降低約30%(圖2B)。應注意，MAN1C1 mRNA量在經丁酸鈉及siRNA處理之細胞中仍高於對照(圖2B)。此與在單獨用丁酸鈉處理之細胞及用丁酸鈉及siRNA處理之細胞二者中rHuEPO QP 均高於對照有關，但QP 之絕對量降低(圖2A)。
為確定比產率量測值之變化並非由歸因於siRNA處理之目標作用的rHuEPO mRNA量降低所引起，在相同的5天時間內量測rHuEPO mRNA量。如圖3中所示，rHuEPO mRNA量在第1天及第5天時於用丁酸鈉(+/-)siRNA處理之細胞中保持一致，且在第5天時稍高於對照培養物。此數據確認，用於MAN1C1之siRNA處理並未藉由降低rHuEPO mRNA豐度來改變rHuEPO表現量。
實例10 MAN1C1之過度表現可增加rHuEPO之比產率
為確認MAN1C1能夠在不使用丁酸鈉處理之情況下使rHuEPO QP 增加，轉染細胞以在對照條件下過度表現MAN1C1。如在表2(列示於下方)中所見，當將16微克至64微克MAN1C1質粒DNA轉染入細胞時，量測到MAN1C1mRNA量與未經轉染(對照)細胞相比大大增加(>1000倍)。
MAN1C1在對照條件下(例如不加入丁酸鈉)之瞬時表現使rHuEPO比產率增加2倍至3倍，增加倍數取決於轉染之質粒DNA的量(圖4)。儘管rHuEPO產率量低於單獨使用丁酸鈉時之產率，但該數據確認丁酸鈉增加了MAN1C1表現，MAN1C1表現增加轉而有助於增加rHuEPO比產率。
本說明書中引用之所有公開案、專利案及專利申請案均以引用方式全部併入本文中，包括(但不限於)與引用理由相關之材料，好似明確並逐個表明每一單獨公開案或專利申請案均以引用方式併入一般。儘管以經由出於理解清楚 之目的的舉例說明及實例相當詳細地闡述了前述發明，但根據本發明之教示熟習此項技術者會明瞭，可在不偏離隨附申請專利範圍之精神或範圍的情況下對本發明進行某些改動及修改。
圖1顯示在培養5天內丁酸鈉存在下量測之rHuEPO比產率(QP )。
圖2A顯示在5天時間內丁酸鈉存在下MAN1C1 siRNA處理對rHuEPO QP 之影響。圖2B顯示用丁酸鈉或丁酸鈉加siRNA處理之HT1080細胞中MAN1C1 mRNA量之倍數變化。
圖3顯示針對MAN1C1之siRNA存在與不存在下用丁酸鈉處理之HT1080細胞中rHuEPO mRNA量的變化。
圖4顯示用不同量之MAN1C1 DNA瞬時轉染後rHuEPO比產率之變化。
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<213> 川鰈
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Claims (3)

  1. 一種篩選感興趣之外源性糖蛋白生成之誘導劑的方法，其包含如下步驟：(a)使經改造可過度表現感興趣之外源性糖蛋白之宿主細胞與候選化合物接觸，(b)測定α 1,2甘露糖苷酶(MAN1C1)之表現量，及(c)若該MAN1C1之表現量增加，則將該候選化合物鑑別為使感興趣之外源性糖蛋白生成增加的誘導劑。
  2. 請求項1之方法，其中測定MAN1C1 mRNA的表現量。
  3. 如請求項1之方法，其中測定MAN1C1蛋白的表現量。
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