TW202229858A - 從生物分子組成物中檢測和去除聚乙烯基磺酸鹽 - Google Patents

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Abstract

本揭露提供了用於評估樣本中抑制PCR反應的聚陰離子化合物的存在和水平之材料及方法，包括針對聚乙烯基磺酸鹽的存在以及視需要量的測定；以及提供了使用各種方法，包括基於滴定的技術從緩衝溶液和蛋白質溶液中減少或去除此類化合物之材料及方法。

Description

從生物分子組成物中檢測和去除聚乙烯基磺酸鹽
本揭露總體上關於生物分子純化領域，更具體地，關於蛋白質純化。
生物製品和生物仿製藥的潛力現在正在實現，該等治療類別對人類和其他動物疾病和病症的可用治療庫做出了越來越大的貢獻。該等產品，包括重組蛋白、各種形式的抗體及其保留結合能力的片段、和疫苗，都在宿主細胞中表現，包括細菌、酵母、動物細胞（如哺乳動物細胞）和連續細胞系。正如在細胞培養中發現的那樣，該等產品與各種污染物質（包括宿主細胞DNA的片段）混合。此外，殘留量的宿主細胞DNA可以在嚴格的純化過程中存活下來，在純化的蛋白質（如生物製品）的製備中作為有害雜質殘留。投與給動物（例如人類患者）的蛋白質配製物中包含的殘留宿主細胞DNA可能會引發不希望有的免疫反應或增加患癌症的風險。因此，世界各地的監管機構都對投與給人類的配製物中所含宿主細胞DNA的濃度進行了限制。世界衛生組織（WHO）和歐盟（EU）允許殘留宿主細胞DNA的量高達10 ng/劑量，而美國食品和藥物管理局允許不超過100 pg/劑量。需要用於檢測和定量低水平宿主細胞DNA的準確、精確和靈敏之方法，以確保用於投與的純化的蛋白質配製物低於該等閾值。此外，用於有效生產該等蛋白質的細胞培養物含有宿主細胞DNA以外的雜質。其中一些雜質，例如小分子化合物，會對該等細胞產生的生物製品和生物仿製藥（即，靶蛋白）產生直接的有害影響，例如藉由抑制靶蛋白的轉錄或翻譯，抑制表現的靶蛋白之活性，或藉由在靶蛋白經歷純化過程時干擾測量或監測靶蛋白的努力。
在基於培養的重組靶蛋白表現中使用的活細胞中通常存在的一些聚陰離子化合物可以作為細胞培養物中的雜質被發現。此外，在緩衝液和細胞培養基中發現的該等聚陰離子化合物中的一些係各種酶的已知抑制劑。聚乙烯基磺酸鹽（PVS）係聚陰離子化合物，係幾種酶（包括RNA酶和DNA聚合酶）的已知抑制劑。PVS還已知存在於2-(N-𠰌啉代)-乙磺酸（MES）的製劑中，MES係生物治療劑加工和純化操作中的常見緩衝液。PVS也可能（不希望地）存在於其他緩衝系統中，例如Goods緩衝液（其使用乙烯基磺酸鹽作為起始材料）。
因此，本領域一直需要對包含在旨在投與給人或其他動物的蛋白質配製物中的宿主細胞DNA進行準確定量之方法。此外，仍然需要從旨在用於這樣的投與的蛋白質配製物中減少或去除這樣的雜質之方法。
本揭露提供了測定聚陰離子PCR抑制劑例如聚乙烯基磺酸鹽化合物之方法。該等化合物抑制多種酶，包括核酸聚合酶，例如DNA聚合酶。甚至現在在PCR擴增方法中占主導地位的DNA聚合酶的工程化形式也受到該等化合物的抑制，並且本文的揭露內容提供了檢測和定量該等抑制性化合物之方法。本揭露還提供了從緩衝液（例如MES和Goods緩衝液）以及蛋白質溶液中去除這樣的化合物之方法。該等方法藉由提供監測PCR抑制劑的主要類別的存在之方法，在生物製品和蛋白質的加工方面提供了重大進步，該等PCR抑制劑給監測細胞培養中產生的生物製品純度的努力造成挫折，其中必須監測宿主DNA以確保目的蛋白的純度足以用作人類和/或其他動物的治療劑。
在一方面，本揭露提供了一種用於定量樣本中聚陰離子PCR抑制劑之方法，該方法包括：a) 製備包含至少四個成員的樣本的稀釋系列；b) 用恒定量的可與宿主細胞DNA區分的模板DNA加標該稀釋系列的每個成員；c) 對該稀釋系列的每個成員和在沒有任何樣本的情況下該恒定量的模板DNA進行PCR測定；d) 生成聚陰離子抑制劑標準曲線；e) 將該稀釋系列的PCR測定結果與在沒有任何樣本的情況下該恒定量的模板DNA的PCR測定結果進行比較；以及f) 鑒定該樣本中聚陰離子PCR抑制劑的濃度。在一些實施方式中，樣本中聚陰離子PCR抑制劑的濃度係由以下定義的範圍：該稀釋系列中顯示完全加標回收的最低稀釋的成員中和該稀釋系列中未顯示完全加標回收的最高稀釋的成員中聚陰離子PCR抑制劑的濃度。在一些實施方式中，稀釋系列中的成員數量為5、6、7、8、9、10、12、15或20個，從而相對於藉由測定稀釋系列的較少成員提供的範圍，縮小樣本中聚陰離子PCR抑制劑的濃度範圍。在一些實施方式中，恒定量的模板DNA係至少100 pg。在一些實施方式中，聚陰離子PCR抑制劑係碸（磺酸鹽）化合物，例如聚乙烯基磺酸鹽。在一些實施方式中，聚乙烯基磺酸鹽係用於生成聚陰離子抑制劑標準曲線的聚陰離子PCR抑制劑，並且樣本中聚陰離子PCR抑制劑的濃度係以聚乙烯基磺酸鹽濃度當量的單位。一些實施方式進一步包括用一種或多種量的聚陰離子PCR抑制劑（例如聚乙烯基磺酸鹽）加標充分稀釋以恢復擴增的樣本，從而證明添加抑制劑時擴增的恢復受損或丟失。
本揭露的另一方面關於一種從緩衝溶液中去除聚陰離子PCR抑制劑（聚陰離子雜質）之方法，該方法包括：a) 製備酸性緩衝物質、鹼性緩衝物質或其組合的緩衝溶液；b) 將該緩衝溶液與陰離子交換介質接觸；以及c) 將該緩衝溶液與聚陰離子雜質分離，從而從該緩衝溶液中去除該聚陰離子雜質。本揭露的一個相關方面提供了一種從緩衝溶液中去除聚陰離子PCR抑制劑之方法，該方法包括：a) 製備酸性緩衝物質、鹼性緩衝物質或其組合的緩衝溶液；b) 將該緩衝溶液與混合模式樹脂接觸；以及c) 將該緩衝溶液與聚陰離子雜質分離，從而從該緩衝溶液中去除該聚陰離子雜質。在用於去除聚陰離子PCR抑制劑的上述任一方法中，用於該方法的緩衝液的體積沒有限制並且可以從毫升範圍內的小分析體積擴展到關於許多升的商業規模緩衝製劑。在任一去除方法的一些實施方式中，聚陰離子雜質係碸（磺酸鹽）化合物，例如聚乙烯基磺酸鹽。在任一去除方法的一些實施方式中，緩衝溶液係Good緩衝溶液，例如2-(N-𠰌啉代)-乙磺酸（MES）緩衝溶液。在任一去除方法的一些實施方式中，緩衝溶液包含緩衝鹽或該緩衝鹽的酸物質。每種去除方法的一些實施方式還包括將至少一種改性化合物添加到緩衝溶液中。在任一去除方法的一些實施方式中，改性化合物係非緩衝鹽、賦形劑或兩者。
在關於陰離子交換介質的去除方法的一些實施方式中，陰離子交換介質係二乙基胺基乙基改性的基質、二甲基胺基乙基改性的基質、二甲基胺基丙基改性的基質、聚乙烯亞胺改性的基質、季銨化聚乙烯亞胺改性的基質、完全季銨化的胺改性的基質、含陰離子交換改性矽藻土的深度過濾器、陰離子交換膜吸附劑、耐鹽陰離子交換膜吸附劑、Macro-Prep 25Q、TSK-Gel Q、Poros Q、快流速Q瓊脂糖凝膠、Q HyperD、Q氧化鋯、源30Q（Source 30Q）、Fractogel EMD TMAE、表現離子Q（Express-Ion Q）、快流速DEAE瓊脂糖凝膠（DEAE Sepharose Fast Flow）、Poros 50 D、Fractogel EMD DEAE (M)、MacroPrep DEAE支持物（MacroPrep DEAE Support）、DEAE陶瓷HyperD 20（DEAE Ceramic HyperD 20）、東洋珍珠DEAE 650 M（Toyopearl DEAE 650 M）、Capto Q、Sartobind Q膜吸附劑（Sartobind Q membrane absorber）、Posidyne帶電膜（Posidyne charged membrane）、Amberlite ®（聚胺）改性的基質、含陰離子交換改性矽藻土的深度過濾器、陰離子交換膜吸附劑、耐鹽陰離子交換膜吸附劑、Macro-Prep 25Q、TSK-Gel Q、Poros Q、快流速Q瓊脂糖凝膠、Q HyperD、Q氧化鋯、源30Q（Source 30Q）、Fractogel EMD TMAE、表現離子Q（Express-Ion Q）、快流速DEAE瓊脂糖凝膠（DEAE Sepharose Fast Flow）、Poros 50 D、Fractogel EMD DEAE (M)、MacroPrep DEAE支持物（MacroPrep DEAE Support）、DEAE陶瓷HyperD 20（DEAE Ceramic HyperD 20）、東洋珍珠DEAE 650 M（Toyopearl DEAE 650 M）、Capto Q、Sartobind Q膜吸附劑（Sartobind Q membrane absorber）、Posidyne帶電膜（Posidyne charged membrane）、Amberlite ®（亞胺基二乙酸）改性的基質、Amberlite ®I型（三烷基苄基銨）改性的基質、Amberlite ®II型（二甲基-2-羥基乙基苄基銨）改性的基質、Dowex ®（聚胺）改性的基質、Dowex ®I型（三甲基苄基銨）改性的基質、Dowex ®II型（二甲基-2-羥基乙基苄基銨）改性的基質、Dowex ®（混合床）CaptoTM附著陰離子交換多模式介質、Capto ®附著陰離子交換多模式、PPA Hypercel、HEA Hypercel、或Duolite ®（聚胺）改性的基質。在關於混合模式樹脂的去除方法的一些實施方式中，混合模式樹脂係Capto ®Adhere陰離子交換多模式樹脂、PPA Hypercel樹脂或HEA Hypercel樹脂。本領域已知的任何基質都適用於該去除方法，包括但不限於纖維素、瓊脂糖、Sepharose ®、甲基丙烯酸聚合物、具有聚合水凝膠的陶瓷支架和專有基質。
關於陰離子交換介質的去除方法的一些實施方式提供了每mL陰離子交換介質結合高達15 mg、9 mg或3 mg PVS的陰離子交換介質。關於混合模式樹脂的去除方法的一些實施方式提供了每mL混合模式樹脂結合高達15 mg、9 mg或3 mg PVS的混合模式樹脂。在關於陰離子交換介質的去除方法的一些實施方式中，陰離子交換介質係聚陽離子化合物，其係與聚陰離子雜質（分析物）形成錯合物的滴定劑。在一些實施方式中，陰離子交換介質係基於季銨的聚合物。在關於陰離子交換介質的去除方法的一些實施方式中，聚陽離子化合物以足以至少達到滴定聚陰離子雜質分析物的當量點的量添加。如本文所用，當量點係滴定中當添加足夠的滴定劑以結合所有分析物時的點，並且是滴定點的同義詞。
本揭露的另一方面關於一種從蛋白質溶液中去除聚陰離子緩衝液雜質之方法，該方法包括：a) 將含有陰離子緩衝液雜質的蛋白質溶液的pH值調至比該蛋白質的等電點低不超過4個pH單位的pH；b) 將該蛋白質溶液與陰離子交換介質接觸；以及c) 將該蛋白質與該陰離子緩衝液雜質分離。在相關方面，本揭露提供了一種從蛋白質溶液中去除聚陰離子緩衝液雜質之方法，該方法包括：a) 將含有陰離子緩衝液雜質的蛋白質溶液的pH值調至比該蛋白質的等電點低不超過4個pH單位的pH；b) 將該蛋白質溶液與混合模式樹脂接觸；以及c) 將該蛋白質與該陰離子緩衝液雜質分離。在該等基於pH的去除方法中的任一種的一些實施方式中，將pH調節為比蛋白質的等電點低不超過2個pH單位。在關於陰離子交換介質的基於pH的去除方法的一些實施方式中，陰離子交換介質係二乙基胺基乙基改性的基質、二甲基胺基乙基改性的基質、二甲基胺基丙基改性的基質、聚乙烯亞胺改性的基質、季銨化聚乙烯亞胺改性的基質、完全季銨化的胺改性的基質、含陰離子交換改性矽藻土的深度過濾器、陰離子交換膜吸附劑、耐鹽陰離子交換膜吸附劑、Macro-Prep 25Q、TSK-Gel Q、Poros Q、快流速Q瓊脂糖凝膠、Q HyperD、Q氧化鋯、源30Q、Fractogel EMD TMAE、表現離子Q、快流速DEAE瓊脂糖凝膠、Poros 50 D、Fractogel EMD DEAE (M)、MacroPrep DEAE支持物、DEAE陶瓷HyperD 20、東洋珍珠DEAE 650 M、Capto Q、Sartobind Q膜吸附劑、Posidyne帶電膜、Amberlite ®（聚胺）改性的基質、Amberlite ®（亞胺基二乙酸）改性的基質、Amberlite ®I型（三烷基苄基銨）改性的基質、Amberlite ®II型（二甲基-2-羥基乙基苄基銨）改性的基質、Dowex ®（聚胺）改性的基質、Dowex ®I型（三甲基苄基銨）改性的基質、Dowex ®II型（二甲基-2-羥基乙基苄基銨）改性的基質、Dowex ®（混合床）、Capto ®附著陰離子交換多模式、PPA Hypercel、HEA Hypercel、或Duolite ®（聚胺）改性的基質。如上所述，本領域已知的任何基質都適用於根據本揭露之方法。在關於混合模式樹脂的基於pH的去除方法的一些實施方式中，混合模式樹脂係Capto ®附著陰離子交換多模式、PPA Hypercel或HEA Hypercel。
本揭露的又一方面係用於檢測緩衝溶液中的聚陰離子酶抑制劑的滴定方法，該方法包括：(a) 使緩衝溶液與聚陽離子化合物接觸；(b) 向 (a) 中的溶液中添加聚陰離子化合物，其中與未錯合的聚陰離子化合物相比，當與聚陽離子化合物錯合時，該聚陰離子化合物表現出可檢測特性的變化；(c) 用不同濃度的該緩衝溶液或不同濃度的該聚陽離子化合物重複步驟 (a) 和 (b)；以及 (d) 檢測滴定點處該可檢測特性的變化，從而檢測該聚陰離子酶抑制劑。在一些實施方式中，緩衝液濃度係變化的，從而產生緩衝液的稀釋系列。在一些實施方式中，聚陽離子化合物的濃度係變化的。在一些實施方式中，聚陰離子酶抑制劑係聚乙烯基磺酸鹽或其衍生物。在一些實施方式中，聚陽離子化合物係非pH依賴性聚陽離子化合物或pH依賴性聚陽離子化合物。在一些實施方式中，非pH依賴性聚陽離子化合物係基於季銨的聚合物。在一些實施方式中，pH依賴性聚陽離子化合物係聚胺。在一些實施方式中，基於季銨的聚合物係海美溴銨（HDBr）、聚(二烯丙基)二甲基氯化銨（pDADMAC）或甲基二醇殼聚糖。在一些實施方式中，基於季銨的聚合物係海美溴銨（HDBr）或聚(二烯丙基)二甲基氯化銨（pDADMAC）。在一些實施方式中，基於季銨的聚合物係海美溴銨（HDBr）。
在一些實施方式中，聚陰離子化合物係染料。在一些實施方式中，染料係鉻黑T（ECBT）、鉻藍黑R（鈣試劑（Calcon））或偶氮磺鈉鹽。在一些實施方式中，染料係鉻黑T（ECBT）。在一些實施方式中，緩衝液係Good緩衝液。在一些實施方式中，Good緩衝液包含聚乙磺酸衍生物或聚丙烷磺酸衍生物。在一些實施方式中，Good緩衝液係MES、雙-三甲烷、ADA、雙-三丙烷、PIPES、ACES、MOPSO、氯化氯胺、MOPS、BES、AMPB、HEPES、DIPSO、MOBS、乙醯胺基甘胺酸、TAPSO、TEA、POPSO、HEPPSO、EPS、HEPPS、Tricine、Tris、甘胺醯胺、甘胺醯甘胺酸、HEPBS、N-二羥乙甘胺酸、TAPS、AMPB、CHES、CAPSO、AMP、CAPS或CABS。在一些實施方式中，未錯合的聚陰離子化合物使用螢光法或分光光度法檢測。在一些實施方式中，該方法進一步包括根據檢測可檢測特性的變化所需的聚陰離子化合物的量來確定聚陰離子酶抑制劑的濃度。
本揭露的另一方面關於用於定量樣本中聚陰離子PCR抑制劑之方法，該方法包括：(a) 使包含聚陰離子PCR抑制劑的樣本與聚陽離子化合物的至少一個等分部份接觸；(b) 添加聚陰離子指示染料，其量足以檢測染料的游離形式；以及 (c) 基於檢測聚陰離子指示染料的游離形式所需的聚陽離子化合物的量來定量聚陰離子PCR抑制劑。本揭露的一個相關方面關於一種去除樣本中聚陰離子雜質之方法，該方法包括：(a) 使包含聚陰離子雜質的流體與聚陽離子平衡離子接觸；以及 (b) 將該流體與跟該聚陽離子平衡離子錯合的聚陰離子雜質分離，從而從該流體中去除該聚陰離子雜質。在一些實施方式中，聚陰離子雜質係聚陰離子PCR抑制劑。在一些實施方式中，聚陰離子雜質和聚陽離子平衡離子的錯合物藉由沈澱去除。在一些實施方式中，聚陽離子平衡離子藉由連接到結合對的成員或磁性顆粒而衍生化，以促進從流體中去除聚陰離子雜質和聚陽離子平衡離子的錯合物。示例性結合對包括但不限於抗原/抗體對、生物素/鏈黴親和素、磁性顆粒/含鐵材料、聚組胺酸/金屬離子（例如、鎳）對，等等。
根據以下詳細描述和附圖以及請求項，所揭露主題的其他特徵和優點將是顯而易見的。
藉由引用併入以電子方式提交的材料
作為本揭露的一部分之序列表以文字檔的形式與本說明書同時提交。含有序列表的文字檔之名稱為「55057_Seqlisting.txt」，創建於2021年10月4日，並且大小為1,070位元組。序列表之主題藉由引用以其整體併入本文。
MES（2-(N-𠰌啉代)-乙磺酸）緩衝液和其他Good緩衝液係生物製品製程中常見的緩衝液，可將pH控制在pH 6左右（MES的pKa為6.15）。MES的合成關於𠰌啉環與乙烯基磺酸鹽的邁克爾加成。常見的副反應係乙烯基磺酸鹽的寡聚/多聚，形成聚陰離子聚乙烯基磺酸鹽。聚乙烯基磺酸鹽係用於量化殘留宿主細胞去氧核糖核酸（DNA）的定量聚合酶鏈反應（qPCR）測定的強效抑制劑，導致測定對照中的未藉由的加標回收和無效的測試結果。抑制DNA測定的PVS水平遠低於會引起安全問題的PVS水平。然而，無法藉由有效的加標回收對照來確定宿主細胞DNA含量，會影響純化的蛋白質（如生物製品）的批次表徵，以及這樣的批次的釋放和處置。
本揭露提供了測定存在於對低水平聚陰離子化合物敏感的細胞培養基或由其衍生的流體（例如哺乳動物細胞培養基或流體）中的聚陰離子化合物之方法。該揭露揭示了細胞培養流體中低水平的聚陰離子對監測一般蛋白質和特別是生物製品的純化的努力造成挫折，增加了獲得治療用途批准所需的時間和費用。本揭露之方法提供了用於監測聚陰離子雜質減少至極小或不存在的濃度的簡單且有效之方法。最近蛋白質（例如生物製品（即治療性抗體和抗體片段））的商業化生產製程的爆發給行業帶來了越來越大的壓力，需要開發蛋白質純化製程，以有效地產生適用於治療劑中配製物的純蛋白質產物的高產率，並且本揭露之方法提供了答案，其有助於簡單有效地監測具有不同純度的含蛋白質細胞培養流體中常見的聚陰離子雜質。本文揭露的聚陰離子雜質存在於通常被認為係純化的含蛋白質流體（例如溶液）中的知識導致所揭露的從含蛋白質流體（例如溶液）中減少或去除聚陰離子雜質之方法。本揭露揭示，即使在此類流體中，也可以發現多陰離子雜質的水平會干擾酶，例如DNA聚合酶（通常用於測定蛋白質溶液的純度）。例如，qPCR經常用於在旨在從細胞培養物（例如哺乳動物細胞培養物）中獲取蛋白質的純化過程中監測宿主細胞DNA的水平。鑒於發現在純化過程中存在甚至痕量的聚陰離子雜質（其干擾了監測純度的努力），本揭露提供了從先前技術中被認為係純的蛋白質溶液中減少或去除聚陰離子雜質之方法。
等聚陰離子化合物，例如聚(乙烯基磺酸)（PVS）係Good緩衝液（例如MES緩衝液）中的聚合物雜質。該等聚陰離子化合物，例如PVS，相對於緩衝化合物，例如MES，以百萬分率範圍內的低水平存在於這樣的緩衝液中。Good緩衝液中存在該等雜質係一個重要問題，因為這樣的緩衝液用於製造治療性蛋白質，而該等雜質，尤其是PVS，係可能干擾DNA的定量PCR（qPCR）檢測的強效聚合酶抑制劑。通常需要對從培養物中純化的治療性蛋白質的配製物中的宿主細胞核酸（例如DNA）進行測量，以評估旨在用於人類的治療劑的安全性。因此，Good緩衝液（例如MES）中存在聚陰離子化合物（例如PVS）會藉由干擾宿主細胞DNA的qPCR檢測而導致治療性蛋白質批次不符合人類投與的驗收標準。
本文揭露了關於基於分析物（例如，PVS）與帶相反電荷的高分子量滴定劑的錯合進行滴定之方法。這種相互作用導致了極高的平衡締合常數（Ka），並且可以藉由光譜法（例如，比色法或光度法）檢測終點。圖10提供了用於使用海美溴銨（HDBr）（示例性滴定劑）滴定PVS之檢測方案總結。
本揭露之方法包括確認宿主細胞DNA作為蛋白質配製物中的雜質的基於核酸酶的測定的準確性之方法。例如，本文揭露之方法可用於確認宿主細胞DNA的核酸的基於酶的測定，例如聚合酶鏈反應（ 即，PCR）。在所揭露之方法中有用的示例性PCR測定係定量PCR或qPCR，其提供了用於確定樣本中DNA量的快速、廉價、準確、精確和靈敏之方法。因此，確認蛋白質流體、溶液、製劑或配製物中宿主細胞DNA雜質濃度的較佳之方法包括使用qPCR對樣本（例如細胞培養樣本）中的DNA進行定量並與聚陰離子PCR抑制劑標準曲線進行比較確定蛋白質流體、溶液、製劑或配製物中聚陰離子PCR抑制劑的濃度，以確認宿主細胞DNA測定結果。本揭露的相關方面藉由提供從具有不同純度的細胞培養流體，即含蛋白質的流體或溶液中減少或去除這樣的抑制劑之方法，以及提供藉由從其中可以放置這樣的蛋白質的緩衝液中去除這樣的抑制劑之方法，來解決核酸酶抑制的問題。
本文揭露之方法可用於減少或去除在以下中發現的一種或多種聚陰離子化合物，例如聚陰離子化合物：在細胞培養物中，例如哺乳動物細胞培養物中，或在治療配製物中發現的緩衝液中，例如在2-(N-𠰌啉代)-乙磺酸（MES）或Goods緩衝液中。根據本揭露內容之方法減少或去除的一組示例性聚陰離子化合物係磺酸鹽化合物，以聚乙烯基磺酸鹽（ 即，聚乙烯磺酸鹽）為代表。本揭露考慮減少或去除聚陰離子化合物，而不管相關聚合物的尺寸或尺寸範圍。可以使用本揭露之方法去除的聚陰離子雜質還包括多金屬氧酸鹽（即，POM）、蛋白聚糖（儲存庫）、糖胺聚糖（例如肝素、硫酸軟骨素、硫酸葡聚糖）、聚麩胺酸鹽、多糖、肌動蛋白微絲和肌動蛋白微管、聚乙烯基磺酸鹽、聚丙烯酸和磷酸肌醇。
根據本揭露之方法使用陰離子交換介質將聚陰離子雜質與被純化的蛋白質例如生物製品分離。本領域已知的任何陰離子交換介質均可用於所揭露之方法，包括但不限於弱鹼性基團如二乙基胺基乙基（DEAE）和二甲基胺基乙基（DMAE）、二甲基胺基丙基（DMAP），或強鹼性基團如季胺基乙基（Q）、三甲基銨乙基（TMAE）和季胺基乙基（QAE））可用於陰離子交換。示例性陰離子交換介質係通用健康醫療集團（GE Healthcare）Q-Sepharose FF ®、Q-Sepharose BB ®、Q-Sepharose XL ®、Q-Sepharose HP ®、Mini Q™、Mono Q、Mono P DEAE Sepharose FF ®、Source™ 15Q、Source™ 30Q、Capto Q™、Streamline DEAE ®、Streamline QXL ®；應用生物系統公司（Applied Biosystems）Poros™ HQ 10 和20 μm自填充、Poros™ HQ 20和50 μm、Poros™ PI 20 和50 μm、Poros™ D 50 μm Tosohaas Toyopearl ®DEAE 650S M 和C、Super Q 650、QAE 550C；頗爾公司（Pall Corporation）DEAE HyperD™、Q Ceramic HyperD™、Mustang Q膜吸收器：Merck KG2A Fractogel DMAE ®、FractoPrep DEAE、FractoPrep TMAE、Fractogel EMD DEAE ®、Fractogel EMD TMAE ®；和Sartorious Sartobind Q ®膜吸收器。本領域已知的包含陰離子交換劑的任何混合模式或多模式介質均可用於所揭露之方法，包括但不限於Capto ®附著陰離子交換多模式、PPA Hypercel或HEA Hypercel介質。此外，所揭露之方法可包括使用聚陰離子結合蛋白，例如α-突觸核蛋白、tRNA/rRNA甲基轉移酶和/或小熱休克蛋白。在一些較佳的實施方式中，Hybrid Purifier ®除了用作深度過濾器之外還用作陰離子交換介質。還較佳的是用作陰離子交換介質的Viresolve預過濾器（VPF）。
可用於確認例如細胞培養樣本的宿主細胞DNA測定的準確性的本揭露方法可以使用任何基於酶的核酸測定，例如PCR的任何變體形式。用於此類方法的較佳的類型的PCR係qPCR。PCR（包括qPCR）非常適合檢測和定量來自培養細胞的DNA，例如在組織培養流體中作為雜質發現的宿主細胞DNA。qPCR的一個優點係能夠檢測和定量每輪PCR後發生的螢光增加。為了提供這種能力，正向和反向引物被設計為位於目的靶DNA序列的側翼，並且靶特異性探針被設計為與兩個引物之間的互補序列雜交。探針由寡核苷酸序列組成，其中在其5'端有螢光團分子，在其3'端有猝滅劑分子。當螢光團靠近猝滅劑時，螢光被最小化。然而，在靶序列存在的情況下，探針可以與靶序列退火，隨後被 Taq聚合酶的外切核酸酶活性切割。一旦探針因正向引物的延伸而被切割，探針的螢光團就不再猝滅，這會導致螢光增加，這係存在靶DNA序列的直接結果。在熱循環的延伸階段，在qPCR的每個循環過程中監測螢光，並為每個反應確定閾值循環。閾值循環係其中來自給定反應的螢光顯著高於背景螢光的循環。閾值循環值與反應中起始DNA的量成反比。將每個樣本的循環閾值與標準曲線的閾值進行比較，從而可以對含有未知量DNA的樣本進行定量。
熟悉該項技術者可以容易地確定的在qPCR中起作用的任何一組引物都適用於本揭露之方法。示例性的qPCR引物係從對CHO細胞特異的重複序列衍生並由此與其特異性雜交的引物。靶向的CHO細胞特異性序列係68個鹼基的區域，如下所示：5’-GAAATCGGGCTGCCTGAGTCCCGAGTGCGGGTGTGGTTTCAGAACCGCCGAAGTCGTTCGGGGATGGT-3’（SEQ ID NO: 1）。該序列的5'端與正向引物具有相同的序列，該序列的3'端係反向引物的互補序列，並且螢光團標記的探針靶向該等序列之間的區域。正向、反向和探針序列如下：RepA正向引物：5’-GAA ATC GGG CTG CCT GAG T-3’（SEQ ID NO: 2）；RepA反向引物：5’-ACC ATC CCC GAA CGA CTT C-3’（SEQ ID NO: 3）；和RepA探針：5’-CC GAG TGC GGG TGT GGT TT-3’（SEQ ID NO: 4）。RepA探針在5'端包含螢光基團，並且在3'端包含猝滅基團。
宿主細胞DNA雜質的qPCR測定按照常規進行。從樣本中提取DNA後，添加qPCR試劑，包括qPCR引物、DNA聚合酶，例如熱穩定聚合酶（例如，Taq ®DNA聚合酶）和適當量的所需核苷三磷酸，如本領域已知的。對於一些樣本，以適合qPCR擴增的DNA形式添加了DNA加標對照。添加到加標樣本中的加標量為100 pg CHO基因組DNA。其他樣本保持未加標。加標樣本和未加標樣本之間的結果差異允許計算加標回收百分比。換言之，加標回收百分比藉由以下給出：[(以pg的加標結果-以pg的未加標結果)/以pg的加標量] x 100。
可以從96孔板的各個孔中測量螢光。由於該測量係在40個熱循環結束時的反應完成之前獲得的，因此可以即時確定已發生的PCR程度。PCR係藉由監測作為循環數的函數的螢光增加來測量的。
qPCR可以在QuantStudio7即時qPCR儀器等儀器上進行。螢光可以作為循環數的函數進行監測，其中螢光發射信號檢測發生在擴增的延伸階段。對於在板上運行的每個樣本，在每個循環中生成歸一化報告信號（R n）。將每個孔的閾值循環值與標準曲線進行比較（閾值循環的線性回歸相比於log(每個反應中DNA的輸入質量)，以允許對未知值進行插補。
使用qPCR測定核酸已變得廣泛，因此，現在有可用的套組（kit）來協助此類測定。本領域已知的任何已知方案和任何套組可用於本揭露之方法中。示例性方案係實例1和Verardo等人Biotechnol. Prog.[生物技術進展] 28:428-434 (2012)（在此藉由引用併入相關部分）中描述的用於殘留宿主細胞DNA定量的TaqMan® qPCR方法的方案。示例性套組係PrepSEQ ®殘留DNA樣本製備套組（Applied Biosystems ®，Beverly係市名稱，貝芙麗市（Beverly），麻塞諸塞州）。
開發可用於確認含蛋白質流體中宿主細胞DNA雜質的存在和量的本揭露方法以解決本文揭露的以下問題：基於酶的核酸測定中的相對較低的聚陰離子抑制劑水平在純化過程中在含蛋白質的流體中持續存在。該等方法的一些實施方式藉由連續稀釋樣本和將結果與標準曲線進行比較，在保持提供準確和精確結果的能力的同時實現了顯著的靈敏度。樣本，例如來自細胞培養物的樣本，根據本領域已知的任何方案連續稀釋，前提係樣本的每個等分部份的稀釋程度係已知的。合適的稀釋方案係恒定的兩倍稀釋，其中用等體積的合適溶液（例如PCR緩衝溶液）稀釋樣本的等分部份，以產生2 : 1的稀釋度。然後將該稀釋液的等分部份本身按2 : 1稀釋，從而產生一系列從2 : 1到2 n: 1的稀釋，其中n係等分部份的數量。確定稀釋的樣本的實際等分部份數量在本領域技術範圍內；通常，等分部份的數量範圍為4-10個等分部份。本揭露之方法進一步考慮添加或加標對照模板DNA以監測樣本及其稀釋液中的擴增水平。對照模板DNA或加標對照可與樣本或其稀釋液中可能存在的宿主細胞DNA雜質區分開來，並且加標對照將具有PCR引物結合位點。可以將對照模板DNA或加標對照添加到樣本的原始稀釋系列中、添加到原始稀釋系列的每個等分部份的分離部分中，或添加到與原始稀釋系列一起製備的樣本的第二稀釋系列中。
在本揭露之方法中使用稀釋系列來確認是否存在宿主細胞DNA雜質，起初可能看起來違反直覺或適得其反，因為在稀釋樣本時，也稀釋了該樣本中的任何雜質，可能使更難檢測和定量。然而，基於酶的核酸檢測（例如PCR（例如qPCR））的極高靈敏度能夠克服這種稀釋並檢測極少量的宿主細胞DNA雜質。此外，在本揭露之方法中包括稀釋系列還有另一個原因。樣本的連續稀釋也會連續稀釋該等敏感的基於酶的核酸檢測中使用的酶（例如DNA聚合酶）的任何抑制劑。如本文所述，本文揭露之方法部分基於發現核酸測定中使用的酶的相對低水平的聚陰離子抑制劑，為了方便參考，稱為聚陰離子PCR抑制劑。在製備樣本的稀釋系列時，也必須製備任何聚陰離子PCR抑制劑的稀釋系列。這提供了確定樣本稀釋水平的機會，在該水平下由於DNA聚合酶介導的聚合，存在抑制的釋放和基於酶的擴增的恢復。由於系列中存在有限數量的稀釋，因此結果可能會產生聚陰離子PCR抑制劑濃度之範圍，從證明PCR活性恢復或加標回收的最少稀釋樣本到仍然表現出對PCR活性的抑制的最稀釋樣本。熟悉該項技術者能夠藉由從稀釋系列中添加或減去等分部份來縮小或擴大檢測到和定量的抑制劑之濃度範圍。技術人員還理解，聚陰離子PCR抑制劑的標準曲線允許將相對稀釋轉化為實際濃度，這係基於在存在所需試劑（例如TaqMan ®通用PCR母混合物，應用生物系統公司）但不存在任何樣本或其稀釋的情況下，由經受對照模板DNA（加標對照）的基於酶的核酸測定的純聚陰離子PCR抑制劑的系列稀釋而構建的標準曲線。標準曲線確定了聚陰離子PCR抑制劑的絕對濃度和觀察到的核酸擴增水平，然後可以將其轉移到樣本稀釋系列中看到的結果。該方法考慮使用任何已知的聚陰離子PCR抑制劑產生標準曲線，其中聚乙烯基磺酸鹽（聚乙烯磺酸鹽）係適用於構建標準曲線的較佳的聚陰離子PCR抑制劑。在使用PVS的情況下，濃度以PVS當量表示。在許多情況下，PVS當量係樣本或其稀釋液中PVS的實際濃度，因為已知聚陰離子PCR抑制劑的身份係PVS。
經受本揭露之方法的樣本係細胞培養流體或者係在純化蛋白質例如生物製品和生物仿製藥的過程中源自細胞培養流體之流體。樣本可以是適合檢測雜質的任何體積，並且可以從正在進行的細胞培養物、從細胞培養物的連續流出物或從排出的細胞培養物批次獲得。樣本可以毫不延遲地獲得和處理，或者可以從儲罐獲得或在合適的溫度下儲存，通常為4°C。
除了確認含有細胞培養物中產生的蛋白質的具有不同純度的配製物是否含有宿主DNA雜質之方法之外，本揭露還提供用於減少或去除雜質之方法，這部分地基於以下發現：部分純化的蛋白質配製物可能含有一定水平的聚陰離子PCR抑制劑，儘管在高度純化的蛋白質配製物中通常水平很低，但必須解決該等問題，以滿足負責確保藥物配製物質量的監管機構之要求。因此，本揭露的另一方面關於從含蛋白質的溶液中去除聚陰離子PCR抑制劑例如PVS之方法。藉由揭露在從細胞培養物和蛋白質的純化過程中獲得的含該等蛋白質的溶液中存在相對低水平的聚陰離子PCR抑制劑而獲悉，技術人員將能夠使樣本（或其稀釋液）與任何已知的陰離子交換介質接觸以結合聚陰離子PCR抑制劑，導致其從含蛋白質樣本或其稀釋液中分離和去除。為有利於進行減少或去除的努力，將樣本或其稀釋液的pH調節為比樣本中的蛋白質靶或被純化的蛋白質的pI低2-4個pH單位。在該pH範圍內，目的蛋白質將不具有淨負電荷，但PVS將顯示其全部負電荷，導致PVS而不是目的蛋白質容易與本領域已知的陰離子交換樹脂結合。
被純化的蛋白質，例如重組蛋白質或多肽，可以是均聚的或雜聚的，並且可以具有科學或商業利益，包括基於蛋白質的治療劑。目的生物分子（ 例如，蛋白質如生物製品或生物仿製藥）包括分泌型蛋白質、非分泌型蛋白質、細胞內蛋白質或膜結合蛋白質等。目的生物分子可以使用細胞培養方法藉由重組動物細胞系產生，並且可以被稱為「重組蛋白質」。所表現的一種或多種蛋白可以在細胞內產生或被分泌到培養基中，從培養基中可以回收和/或收集該蛋白。術語「分離的蛋白質」或「分離的重組蛋白質」係指目的多肽或蛋白質，該目的多肽或蛋白質從會干擾其治療、診斷、預防、研究或其他用途的蛋白質或多肽或其他雜質中純化出來。目的生物分子包括藉由結合靶、特別是下面列出的那些中的靶而發揮治療作用的蛋白質，包括從其衍生的靶、與其相關的靶及其修飾。
「純化」意味著藉由從組成物中去除（部分或完全）至少一種產品相關的雜質來提高組成物中蛋白的純度。蛋白質的回收和純化由任何下游過程完成，特別是收穫操作，從而產生更「均質」的蛋白質組成物，其滿足產率和產品品質目標（例如減少與產品相關的雜質和提高產品品質）。
如本文所用，術語「分離的」意指 (i) 不含至少一些通常與其一起被發現的蛋白或多核苷酸，(ii) 基本上不含來自相同來源的其他蛋白或多核苷酸，例如來自相同物種，(iii) 與至少約50%的在自然界與其相關的多核苷酸、脂質、碳水化合物或其他物質分離，(iv) 可操作地與在自然界與其不相關的多肽相關（藉由共價或非共價相互作用），或 (v) 在自然界中不存在。
目的生物分子（ 例如蛋白質）包括「抗原結合蛋白」。「抗原結合蛋白」係指包括抗原結合區或抗原結合部分的蛋白質或多肽，該抗原結合區或抗原結合部分對與其結合的另一分子（抗原）具有親和力。抗原結合蛋白涵蓋抗體、肽體、抗體片段、抗體衍生物、抗體類似物、融合蛋白（包括單鏈可變片段（scFv）和雙鏈（雙價）scFv、突變蛋白、多特異性蛋白和雙特異性蛋白）。
scFv係單鏈抗體片段，它具有連接在一起的抗體重鏈和輕鏈的可變區。參見美國專利案號7,741,465和6,319,494以及Eshhar等人, Cancer Immunol Immunotherapy [癌症免疫學免疫療法](1997) 45: 131-136。scFv保留了親本抗體與靶抗原特異性相互作用的能力。
術語「抗體」包括任何同種型或亞類的糖基化免疫球蛋白和非糖基化免疫球蛋白，或者其與完整抗體競爭特異性結合的抗原結合區。除非另外說明，否則抗體包括人的、人源化的、嵌合的、多特異性的、單株的、多株的、特異性IgG（heteroIgG）、雙特異性的抗體、及其寡聚物或抗原結合片段。抗體包括lgG1型、lgG2型、lgG3型或lgG4型。還包括具有抗原結合片段或抗原結合區的蛋白，如Fab、Fab'、F(ab')2、Fv、雙抗體、Fd、dAb、最大抗體（maxibody）、單鏈抗體分子、單結構域V HH、互補決定區（CDR）片段、scFv、雙抗體、三抗體、四抗體和至少包含足以使特異性抗原與靶多肽結合的免疫球蛋白的一部分的多肽。
還包括人的、人源化的和其他抗原結合蛋白，如人抗體和人源化抗體，該抗原結合蛋白當投與於人時不會產生明顯有害的免疫反應。
還包括經修飾的蛋白，如經非共價鍵、共價鍵或者共價鍵和非共價鍵兩者化學修飾的蛋白。還包括進一步包含一種或多種譯後修飾的蛋白，其可以藉由細胞修飾系統或由酶和/或化學方法離體引入或以其他方式引入的修飾製得。
「多特異性蛋白」和「多特異性抗體」在本文用於指重組工程化以同時結合和中和同一抗原上的至少兩個不同抗原或至少兩個不同表位的蛋白。例如，多特異性蛋白可以被工程化以靶向與針對腫瘤的靶向細胞毒性劑或感染劑組合的免疫效應子。雙特異性蛋白包括三特異性抗體、四價雙特異性抗體、不含抗體組分多特異性蛋白（如雙抗體、三抗體或四抗體、微型體）、和能夠結合多個靶標的單鏈蛋白。Coloma, M.J.等人, Nature Biotech [自然生物技術]. 15 (1997) 159-163。
最常見和最多樣化的多特異性蛋白係結合兩種抗原的蛋白，在本文中稱為「雙特異性」、「雙特異性構建體」、「雙特異性蛋白質」和「雙特異性抗體」。雙特異性蛋白可分為兩大類：免疫球蛋白G（IgG）樣分子和非IgG樣分子。IgG樣分子保留Fc介導的效應子功能，如抗體依賴性細胞介導的細胞毒性（ADCC）、補體依賴性細胞毒性（CDC）和抗體依賴性細胞吞噬作用（ADCP），Fc區有助於改善溶解性和穩定性並且促進一些純化操作。非IgG樣分子較小，可增強組織穿透力（參見Sedykh等人, Drug Design, Development and Therapy [藥物設計、開發與療法] 18(12), 195-208, 2018；Fan等人, J Hematol & Oncology [血液與腫瘤學雜誌] 8:130-143, 2015；Spiess等人, Mol Immunol [分子免疫學] 67, 95-106, 2015；Williams等人, 第41章 Process Design for Bispecific Antibodies in Biopharmaceutical Processing Development [生物製藥處理開發中雙特異性抗體的過程設計], Design and Implementation of Manufacturing Processes [製造過程的設計與實現], Jagschies等人編輯, 2018, 第837-855頁。雙特異性蛋白有時被用作具有對不同抗原或表位數目的結合特異性的另外組分的框架，增加了分子的結合特異性。
包括雙特異性抗體的雙特異性蛋白的形式正在不斷發展，並且包括但不限於單鏈抗體、四源雜交瘤（quadromas）、杵臼結構（knobs-in-holes）、交叉單株抗體（cross-MAbs）、雙可變結構域IgG（DVD-IgG）、IgG-單鏈Fv（scFv）、scFv-CH3 KIH、雙功能Fab（DAF）、半-分子交換、κλ-體、串聯scFv、scFv-Fc、雙抗體、單鏈雙抗體（sc雙抗體）、sc雙抗體-CH3、三抗體、微型抗體、微型體、TriBi微型體、串聯雙抗體、sc雙抗體-HAS、串聯scFv-毒素、雙親和重定向分子（dual-affinity retargeting molecules，DARTs）、奈米抗體、奈米抗體-HSA、對接和鎖定（DNL）、股交換工程化結構域 SEED體（SEEDbody）、三功能抗體（Triomab）、白胺酸拉鍊（LUZ-Y）、XmAb ®；Fab-臂交換、DutaMab、DT-IgG、電荷對（charged pair）、Fcab、正交Fab、IgG(H)-scFv、scFV-(H)IgG、IgG(L)-scFV、IgG(L1H1)-Fv、IgG(H)-V、V(H)-IgG、IgG(L)-V V(L)-IgG、KIH IgG-scFab、2scFV-IgG、IgG-2scFv、scFv4-Ig、Zy體、DVI-Ig4（四位一體）、Fab-scFv、scFv-CH-CL-scFV、F(ab’)2-scFv2、scFv-KIH、Fab-scFv-Fc、四價HCAb、sc雙抗體-Fc、雙抗體-Fc、胞內抗體、ImmTAC、HSA體（HSABody）、IgG-IgG、Cov-X-體、scFv1-PEG-scFv2、雙特異性T細胞銜接子（BiTE ®）和半衰期延長的雙特異性T細胞銜接子（HLE BiTE ®）、heteroIg BiTE ®（Fan, 同上；Spiess, 同上；Sedykh, 同上；Seimetz等人, Cancer Treat Rev [癌症治療評論] 36(6) 458-67, 2010；Shulka和Norman, 第26章 Downstream Processing of Fc Fusion Proteins, Bispecific Antibodies, and Antibody-Drug Conjugates [Fc融合蛋白、雙特異性抗體和抗體藥物軛合物的下游處理], 在第二版Process Scale Purification of Antibodies [抗體的生產規模純化] 中, Uwe Gottschalk編輯, p559-594, John Wiley & Sons [約翰威立父子公司], 2017；Moore等人, MAbs[單株抗體] 3:6，546-557，2011）。目的生物分子（ 例如，蛋白質）還可以包括重組融合蛋白，該重組融合蛋白包括例如多聚化結構域，如白胺酸拉鍊、捲曲螺旋、免疫球蛋白的Fc部分等。還包括包含分化抗原的全部或部分胺基酸序列的蛋白（稱為CD蛋白）或其配位基或與該等中的任一個基本上相似的蛋白。
目的生物分子（ 例如，蛋白質，如生物製品和生物仿製藥）還可以包括基因工程化受體，諸如嵌合抗原受體（CAR或CAR-T）和T細胞受體（TCR），以及包含與該靶向抗原相互作用的抗原結合分子的其他蛋白質。藉由摻入與靶抗原相互作用的抗原結合分子，CAR可以被工程化以結合抗原（諸如細胞表面抗原）。CAR典型地將抗原結合結構域（諸如scFv）與一個或多個共刺激（「傳訊」）結構域和一個或多個活化結構域串聯在一起。
在一些實施方式中，目的生物分子可包括群落刺激因子，例如粒細胞群落刺激因子（G-CSF）。此類G-CSF藥劑包括但不限於Neupogen®（非格司亭）和Neulasta ®（培非格司亭）。還包括紅血球生成刺激劑（ESA），如Epogen ®（依伯汀α）、Aranesp ®（達貝泊汀α）、Dynepo®（依伯汀δ）、Mircera ®（甲氧基聚乙二醇-依伯汀β）、Hematide®、MRK-2578，INS-22，Retacrit ®（依伯汀ζ）、Neorecormon ®（依伯汀β）、Silapo ®（依伯汀ζ）、Binocrit ®（依伯汀α）、依伯汀αHexal、Abseamed ®（依伯汀α）、Ratioepo ®（依伯汀θ）、Eporatio ®（依伯汀θ）、Biopoin ®（依伯汀θ）、依伯汀α、依伯汀β、依伯汀ζ、依伯汀θ和依伯汀δ、依伯汀ω、依伯汀ι、組織纖溶酶原活化劑、GLP-1受體促效劑、以及前述任何內容的分子或其變體或類似物和生物仿製藥。
在一些實施方式中，目的生物分子可以包括與一種或多種CD蛋白質、HER受體家族蛋白質、細胞黏附分子、生長因子、神經生長因子、成纖維細胞生長因子、轉化生長因子（TGF）、胰島素樣生長因子、骨誘導因子、胰島素和胰島素相關蛋白、凝血和凝血相關蛋白、群落刺激因子（CSF）、其他血液和血清蛋白血型抗原特異性結合的蛋白質；受體、受體相關蛋白、生長激素、生長激素受體、T細胞受體；神經營養因子、神經營養蛋白、鬆弛素（relaxin）、干擾素、白介素、病毒抗原、脂蛋白、整聯蛋白、類風濕因子、免疫毒素、表面膜蛋白、運輸蛋白、歸巢受體、位址素、調節蛋白和免疫黏附素。
在一些實施方式中，目的生物分子單獨或以任何組合結合以下一種或多種蛋白質的蛋白質：CD蛋白（包括但不限於CD3、CD4、CD5、CD7、CD8、CD19、CD20、CD22、CD25、CD30、CD33、CD34、CD38、CD40、CD70、CD123、CD133、CD138、CD171和CD174）、HER受體家族蛋白（包括例如HER2、HER3、HER4和EGF受體）、EGFRvIII、細胞黏附分子（例如LFA-1、Mol、p150,95、VLA-4、ICAM-1、VCAM和α v/β 3整聯蛋白）、生長因子（包括但不限於例如血管內皮生長因子（「VEGF」））；VEGFR2、生長激素、促甲狀腺激素、卵泡刺激素、黃體生成素、生長激素釋放因子、甲狀旁腺激素、米勒管抑制物質（mullerian-inhibiting substance）、人巨噬細胞炎性蛋白（MIP-1-α）、促紅血球生成素（EPO）、神經生長因子（如NGF-β）、血小板源性生長因子（PDGF）、成纖維細胞生長因子（包括例如aFGF和bFGF）、表皮生長因子（EGF）、Cripto、轉化生長因子（TGF）（尤其包括TGF-α和TGF-β（包括TGF-β1、TGF-β2、TGF-β3、TGF-β4或TGF-β5））、胰島素樣生長因子-I和胰島素樣生長因子-II（IGF-I和IGF-II）、des(1-3)-IGF-I（腦IGF-I）和骨誘導因子、胰島素和胰島素相關蛋白（包括但不限於胰島素、胰島素A鏈、胰島素B鏈、胰島素原和胰島素樣生長因子結合蛋白）；（凝血蛋白和凝血相關蛋白，尤其如，VIII因子、組織因子、範威爾邦德（von Willebrand）因子、蛋白C、α-1-抗胰蛋白酶、纖溶酶原活化劑（如尿激酶和組織纖溶酶原活化劑（「t-PA」））、邦巴辛（bombazine）、凝血酶、血小板生成素和血小板生成素受體、群落刺激因子（CSF）（尤其包括以下物質：M-CSF、GM-CSF和G-CSF）、其他血液和血清蛋白（包括但不限於白蛋白、IgE和血型抗原）、受體和受體相關蛋白（包括例如flk2/flt3受體、肥胖（OB）受體、生長激素受體和T細胞受體）；神經營養因子，包括但不限於骨源性神經營養因子（BDNF）和神經營養蛋白-3、神經營養蛋白-4、神經營養蛋白-5或神經營養蛋白-6（NT-3、NT-4、NT-5或NT-6）；鬆弛素A鏈、鬆弛素B鏈和鬆弛素原、干擾素（包括例如干擾素α、干擾素β和干擾素γ）、白介素（IL）（例如IL-1至IL-10、IL-12、IL-15、IL-17、IL-23、IL-12/IL-23、IL-2Ra、IL1-R1、IL-6受體、IL-4受體和/或IL-13受體、IL-13RA2或IL-17受體、IL-1RAP、IL1-α、IL-1β、  病毒抗原，包括但不限於AIDS包膜病毒抗原、脂蛋白、降鈣素、升糖素、心鈉素、肺表面活性劑、腫瘤壞死因子-α和腫瘤壞死因子-β、腦啡肽酶、BCMA、IgKappa、ROR-1、ERBB2、間皮素、RANTES（受活化調節的正常T細胞表現與分泌因子）、小鼠促性腺激素相關肽、DNA酶、FR-α、抑制素和活化素、整合素、蛋白質A或D、類風濕因子、免疫毒素、骨成形性蛋白質質（BMP）、超氧化物歧化酶、表面膜蛋白、衰變加速因子（DAF）、AIDS包膜、運輸蛋白、歸巢受體、MIC（MIC-a、MIC-B）、ULBP 1-6、EPCAM、PSA、位址素、調節蛋白、免疫黏附素、抗原結合蛋白、生長激素、CTGF、CTLA4、嗜酸性粒細胞趨化因子（eotaxin）-1、MUC1、CEA、c-MET、密蛋白（Claudin）-18、GPC-3、EPHA2、FPA、LMP1、MG7、NY-ESO-1、PSCA、神經節苷脂GD2、神經節苷脂GM2、BAFF、OPGL（RANKL）、肌生成抑制素、Dickkopf-1（DKK-1）、Ang2、NGF、IGF-1受體、肝細胞生長因子（HGF）、TRAIL-R2、c-Kit、B7RP-1、PSMA、胎盤鈣黏素、NKG2D-1、計劃性細胞死亡蛋白1和配位基、PD1和PDL1、甘露糖受體/hCGβ、C型肝炎病毒、間皮素dsFv[PE38軛合物、嗜肺軍團菌（lly）、gpA33、B7H3、IFN γ、γ干擾素誘導蛋白10（IP10）、IFNAR、TALL-1、胸腺基質淋巴細胞生成素（TSLP）、前蛋白轉化酶枯草桿菌蛋白酶/Kexin 9型（PCSK9）、幹細胞因子、Flt-3、降鈣素基因相關肽（CGRP）、OX40L、α4β7、血小板特異性（血小板糖蛋白Iib/IIIb（PAC-1）、轉化生長因子β（TFGβ）、透明帶精子結合蛋白3（ZP-3）、TWEAK、血小板衍生的生長因子受體α（PDGFRα）、硬化蛋白（sclerostin）以及任何前述內容的生物活性片段或變體。
在一些實施方式中，目的生物分子包括阿昔單抗、阿達木單抗、阿德木單抗、阿柏西普、阿侖單抗、阿利庫單抗、阿那白滯素、阿塞西普、巴厘昔單抗、貝利木單抗、貝伐單抗、生物素單抗（biosozumab）、本妥昔單抗、布羅達單抗、莫坎妥珠單抗、康納單抗、西妥昔單抗、塞妥珠單抗、可那木單抗、達利珠單抗、迪諾舒單抗（denosumab）、依庫麗單抗、依決洛單抗、依法利珠單抗、依帕珠單抗、依那西普、依伏庫單抗、加利昔單抗、蓋尼塔單抗、吉妥珠單抗、戈利木單抗、替伊莫單抗、英夫利昔單抗、易普利姆瑪、樂地單抗、魯昔單抗、左旋單抗（lxdkizumab）、馬帕木單抗、磷酸莫特沙尼（motesanib diphosphate）、莫羅單抗-CD3、那他珠單抗、奈西立肽、尼妥珠單抗、納武單抗、奧瑞珠單抗、奧法木單抗、奧馬珠單抗、奧普瑞白介素、帕利珠單抗、帕尼單抗、派姆單抗、帕妥珠單抗、培克珠單抗、蘭尼單抗、利妥木單抗、利妥昔單抗、羅米司亭、洛莫索珠單抗、沙格司亭、托珠單抗、托西莫單抗、曲妥單抗、優特克單抗、維多珠單抗、維西珠單抗、伏洛昔單抗、紮木單抗、紮魯木單抗、以及前述任何內容的生物仿製藥。
在一些實施方式中，目的生物分子可以包括博納吐單抗、卡妥索單抗、厄妥索單抗、索利托單抗、targomiRs、魯吉珠單抗（ABT981）、伐努賽珠單抗（RG7221）、壬托魯單抗（ABT122）、ozoralixumab（ATN103）、floteuzmab（MGD006）、帕妥昔珠單抗（AMG112、MT112）、lymphomun（FBTA05）、（ATN-103）、AMG211（MT111、Medi-1565）、AMG330、AMG420（B1836909）、AMG-110（MT110）、MDX-447、TF2、rM28、HER2Bi-aATC、GD2Bi-aATC、MGD006、MGD007、MGD009、MGD010、MGD011（JNJ64052781）、IMCgp100、銦標記的IMP-205、xm734、LY3164530、OMP-305BB3、REGN1979、COV322、ABT112、ABT165、RG-6013（ACE910）、RG7597（MEDH7945A）、RG7802、RG7813（RO6895882）、RG7386、BITS7201A（RG7990）、RG7716、BFKF8488A（RG7992）、MCLA-128、MM-111、MM141、MOR209/ES414、MSB0010841、ALX-0061、ALX0761、ALX0141；BII034020、AFM13、AFM11、SAR156597、FBTA05、PF06671008、GSK2434735、MEDI3902、MEDI0700、MEDI7352、以及其分子或變體或類似物，和上述任何一種的生物仿製藥。
根據本揭露所述之目的生物分子涵蓋所有前述內容，並且進一步包括包含上述任何抗體的1、2、3、4、5或6個互補決定區（CDR）的抗體。還包括這樣的變體，其包括與蛋白質形式的目的生物分子的參考胺基酸序列具有70%或更高、特別是80%或更高、更特別是90%或更高、再更特別是95%或更高、具體是97%或更高、更具體是98%或更高、再更具體是99%或更高同一性的胺基酸序列的區。在這方面的同一性可以使用多種熟知的且容易獲得的胺基酸序列分析軟體來確定。較佳的軟體包括實施史密斯-沃特曼（Smith-Waterman）演算法的那些軟體，該軟體被認為係搜索和比對序列問題的令人滿意的解決方案。還可以採用其他演算法，特別是在速度係重要考慮因素的情況下。可以用於此方面的用於DNA、RNA和多肽的比對和同源性匹配的常用程式包括FASTA、TFASTA、BLASTN、BLASTP、BLASTX、TBLASTN、PROSRCH、BLAZE和MPSRCH，後者係用於在MasPar製造的大規模並行處理器上執行的史密斯-沃特曼演算法的實施方式。
嵌合抗原受體摻入一個或多個共刺激（傳訊）結構域以增加其效力。參見美國專利案號7,741,465和6,319,494，以及Krause等人和芬尼等人（前述），Song等人, Blood [血液] 119:696-706 (2012)；Kalos等人, Sci Transl. Med. [科學·轉化醫學] 3:95 (2011)；Porter等人, N. Engl. J. Med. [新英格蘭醫學雜誌] 365:725-33 (2011), 以及Gross等人, Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. [藥理學與毒理學年度評論] 56:59-83 (2016)。適合的共刺激結構域可以來自（除其他來源外）CD28、CD28T、OX40、4-1BB/CD137、CD2、CD3（α、β、δ、ε、γ、ξ）、CD4、CD5、CD7、CD8、CD9、CD16、CD22、CD27、CD30、CD 33、CD37、CD40、CD 45、CD64、CD80、CD86、CD134、CD137、CD154、PD-1、ICOS、淋巴細胞功能相關抗原-1（LFA-1（CDl la/CD18）、CD247、CD276（B7-H3）、LIGHT（腫瘤壞死因子超家族成員14；TNFSF14）、NKG2C、Ig α（CD79a）、DAP-10、Fc γ受體、MHC I類分子、TNF、TNFr、整合素、傳訊淋巴細胞活化分子、BTLA、Toll配位基受體、ICAM-1、B7-H3、CDS、ICAM-1、GITR、BAFFR、LIGHT、HVEM（LIGHTR）、KIRDS2、SLAMF7、NKp80（KLRF1）、NKp44、NKp30、NKp46、CD19、CD4、CD8α、CD8β、IL-2R β、IL-2R γ、IL-7R α、ITGA4、VLA1、CD49a、ITGA4、IA4、CD49D、ITGA6、VLA-6、CD49f、ITGAD、CDl-ld、ITGAE、CD103、ITGAL、CDl-la、LFA-1、ITGAM、CDl-lb、ITGAX、CDl-lc、ITGBl、CD29、ITGB2、CD18、LFA-1、ITGB7、NKG2D、TNFR2、TRANCE/RANKL、DNAM1（CD226）、SLAMF4（CD244、2B4）、CD84、CD96（Tactile）、CEACAM1、CRT AM、Ly9（CD229）、CD160（BY55）、PSGL1、CD100（SEMA4D）、CD69、SLAMF6（NTB-A、Lyl08）、SLAM（SLAMF1、CD150、IPO-3）、BLAME（SLAMF8）、SELPLG（CD162）、LTBR、LAT、41-BB、GADS、SLP-76、PAG/Cbp、CD19a、CD83配位基、或其片段或組合。共刺激結構域可包含細胞外部分、跨膜部分和細胞內部分的一個或多個。
由於陰離子雜質如PVS的聚合性質，該等化合物可以藉由使用帶電粒子、帶電奈米粒子、陽離子聚合物、混合模式陽離子聚合物、智慧聚合物等的絮凝去除。PVS可以沈澱，然後使用絮凝劑藉由沈降或過濾去除。例如，可以將含有PVS的MES緩衝液暴露於Clarisolve® mPAA（陽離子智慧聚合物），隨後可以藉由添加刺激物以沈澱聚合物來將其去除。
以下實例揭露了用於從蛋白質和緩衝溶液中檢測和去除聚合陰離子雜質例如聚乙烯基磺酸鹽（PVS）之方法的功能實施方式。在某些情況下，減少但不完全去除PVS係有益的並且足以達到足夠的品質。在某些情況下，該等方法用於檢測和去除陰離子絮凝劑和殘留的陰離子絮凝劑。PVS的去除可以用陰離子交換介質完成，例如層析樹脂、離子交換樹脂、深度過濾器、合成型深度過濾器、帶電過濾器、膜層析裝置、混合模式樹脂及其組合。 實例 實例 1 聚乙烯基磺酸鹽的定量
使用用於DNA定量的qPCR測定法和稀釋系列（監測DNA加標回收）測量聚乙烯基磺酸鹽濃度。qPCR DNA測定在以下段落中進行了描述。
已經描述了用於殘留宿主細胞DNA定量的TaqMan™ qPCR方法（Verardo等人, Biotechnol. Prog.[生物技術進展] 28:428-434 (2012)），在相關部分併入本文。簡而言之，如有必要，將所有測試樣本在無核酸酶水中稀釋至所需的蛋白質濃度或體積，如所示，並在60°C用蛋白酶K（普洛麥格公司（Promega））消化2-24小時。使用標準離液鹽（碘化鈉）和酒精沈澱方案從樣本中提取DNA。將提取的DNA沈澱重新懸浮在無核酸酶的水中，並使用運行SDS軟體（4.1版）的ABI QuantStudio 7藉由qPCR總DNA分析來測量回收的DNA的整個體積。設計引物以擴增CHO細胞特異性重複DNA序列，並設計特異性探針以在它們之間退火。正向引物序列：5’ GAA ATC GGG CTG CCT GAG T 3’（SEQ ID NO: 2）；反向引物序列：5’ ACC ATC CCC GAA CGA CTT C 3’（SEQ ID NO: 3）；TaqMan ®探針序列：5’ ＜FAM＞CC GAG TGC GGG TGT GGT TT＜TAM＞ 3’（SEQ ID NO: 4）。探針在其5'端用螢光報告染料FAM（6-羧基螢光素）標記，在其3'端用淬滅染料TAMRA（6-羧基四甲基羅丹明；TAM）標記。使用標準反應循環條件（50°C 2分鐘，95°C 10分鐘，然後是95°C 15秒和60°C 1分鐘的40個循環）。使用 Taqman®通用PCR母混合物（應用生物系統公司）在96孔板中以50 μL反應體積進行反應。使用自動基線設置進行分析，相對閾值設置為落在每個基因靶的擴增圖的指數範圍內。從CHO宿主細胞中分離出的已知量的基因組DNA的標準曲線用於將標準曲線螢光水平與原始樣本中的DNA濃度相關聯。測量的DNA量被轉換為pg DNA/mg樣本的單位或以其他方式表示。所有量均藉由一式兩份或一式三份取樣進行測量並計算平均值。
藉由觀察樣本和PVS標準稀釋系列中的qPCR測定抑制來針對PVS分析樣本（見圖1）。100 pg DNA加標用作陽性DNA對照，其中可接受的加標回收在50%到150%之間。由雙去離子水組成的陰性對照顯示100%的回收率。針對PVS標準評估DNA加標回收，以確定「最小抑制濃度」和「最大非抑制濃度」（見圖2）。最小抑制濃度係表現出DNA測定干擾的樣本或PVS的最低濃度（ 即，未藉由的加標回收）。該值基本上提供了給定樣本的「最壞情況」抑制劑濃度。最大非抑制濃度係通過DNA加標回收的最高濃度，基本上提供最低的可測量PVS量。為簡單起見，在以下分析中使用最小抑制濃度和最大非抑制濃度之間的平均PVS濃度。在某些評估中，使用最壞情況濃度可能很重要。如實例2所示，可以針對整個測量濃度範圍調整允許的過程範圍。 實例 2 使用陰離子交換膜從緩衝溶液中去除聚乙烯基磺酸鹽
使用21.51 g/L的MES水合物製備100 mM MES緩衝液pH 6，然後用1 M氫氧化鈉滴定。陰離子交換膜（0.2 µm帶電尼龍過濾器，正面面積為2.8 cm 2；Posidyne®過濾器）用10 mL去離子（DI）水沖洗。然後將100 mM MES溶液沖洗通過AEX膜（10 mL）並收集。陰離子交換（AEX）流通池和MES緩衝液負載材料（在AEX之前）用於藉由DNA測定稀釋系列抑制進行PVS定量。正如預期的那樣，由於PVS的存在，負載材料沒有DNA加標回收（0%）。結果如表1所示。對於所有三個重複，針對DNA加標恢復率的體積轉變係相同的。因此，針對重複計算的PVS去除係相同的。在用於表徵該等AEX介質的MES批次中，觀察到PVS水平的100倍變異性。有效的膜負載水平取決於進入的PVS濃度（ 即，膜上的PVS激發）。「PVS去除負載範圍」係藉由以下來計算：針對100 mM MES緩衝溶液，使用最壞情況（觀察到的最大MES PVS水平）設置較低負載，使用最佳情況（觀察到的最低MES PVS水平）設置較高負載水平。可能的負載範圍非常大，這表明帶電尼龍膜定型取決於進入的PVS雜質水平。 [ 表 1] .用陰離子交換膜去除PVS
測試運行 緩衝液 DNA加標回收 平均PVS去除 上限PVS去除 下限PVS去除 PVS去除負載範圍
運行1 100 mM MES pH 6.0 95% 0.53 g/M 2 0.80 g/M 2 0.26 g/M 2 10至10,000 L/M 2
運行2 100 mM MES pH 6.0 127% 0.53 g/M 2 0.80 g/M 2 0.26 g/M 2 10至10,000 L/M 2
運行3 100 mM MES pH 6.0 130% 0.53 g/M 2 0.80 g/M 2 0.26 g/M 2 10至10,000 L/M 2
多孔介質（例如膜）的表面積與孔徑大致成正比。在表2中，假設表面積和結合能力係0.2 µm Posidyne過濾器的兩倍，對較小的0.1 µm孔徑Posidyne過濾器的較佳的負載範圍進行估計。在典型的緩衝液製備操作期間，該等負載水平有望提供穩健的PVS去除。 [ 表 2].針對去除PVS的較佳的Posidyne過濾器負載水平
過濾器 100 mM MES緩衝液負載
0.2 µm Posidyne過濾器 30 - 400 L/M 2
0.1 µm Posidyne過濾器 60 - 800 L/M 2
實例 3 使用合成型深度過濾器從緩衝溶液中去除聚乙烯基磺酸鹽
使用21.51 g/L的MES水合物製備100 mM MES緩衝液pH 6，然後用1 M氫氧化鈉滴定（指定為運行#1和#2）。以相同的方式製備第二MES樣本，但添加了2.04 g/L氯化鈉（針對35 mM NaCl，運行#3和#4）。合成型陰離子交換深度過濾器（Hybrid Purifier®，正面面積為2.5 cm 2）用90 mL DI水沖洗。然後將100 mM MES溶液沖洗通過AEX合成型深度過濾器（1800 mL）並收集。AEX流通池和MES緩衝液負載材料（在AEX合成型深度過濾器之前）用於藉由DNA測定稀釋系列抑制進行PVS定量。正如預期的那樣，由於PVS的存在，負載材料沒有DNA加標回收（0%）。結果如圖3和圖4以及表3所示。兩種條件下兩個重複的DNA加標回收相同，並且未觀察到PVS在抑制水平上的突破。「PVS去除負載範圍」係藉由以下來計算：針對100 mM MES緩衝溶液，使用最壞情況（觀察到的最大MES PVS水平）設置較低負載，使用最佳情況（觀察到的最低MES PVS水平）設置較高負載水平。 [ 表 3] .使用合成型深度過濾器去除PVS的結果
測試運行 緩衝液 DNA加標回收 PVS去除 PVS去除負載範圍*
運行1 100 mM MES pH 6.0 122% ≥ 5至16 g/M 2 ≥ 200至25,000 L/M 2
運行2 100 mM MES pH 6.0 118% ≥ 5至16 g/M 2 ≥ 200至25,000 L/M 2
運行3 100 mM MES pH 6.0 35 mM NaCl 118% ≥ 5至16 g/M 2 ≥ 200至25,000 L/M 2
運行4 100 mM MES pH 6.0 35 mM NaCl 116% ≥ 5至16 g/M 2 ≥ 200至25,000 L/M 2
運行5 100 mM MES pH 6.0 140% ≥ 16至49 g/M 2 ≥ 600至25,000 L/M 2
*對於具有較低PVS濃度的MES緩衝液，計算的上限在某些情況下 ＞ 600,000 L/M 2。25,000 L/M 2的最大值被報告為考慮到處理時間和其他考慮因素的過濾通量的實際限制。 實例 4 使用深度過濾器從緩衝溶液中去除聚乙烯基磺酸鹽
使用21.51 g/L的MES水合物製備100 mM MES緩衝液pH 6，然後用1 M氫氧化鈉滴定。帶正電荷的深度過濾器（Viresolve預過濾器（VPF），正面面積5 cm 2）用10 mL DI水沖洗。然後將100 mM MES溶液沖洗通過深度過濾器（10 mL）並收集。正如預期的那樣，由於PVS的存在，負載材料沒有DNA加標回收（0%）。深度過濾器池和MES緩衝液負載材料用於藉由DNA測定稀釋系列抑制進行PVS定量。結果如表4所示。 [ 表 4].針對去除PVS的較佳的深度過濾器負載水平
過濾器 100 mM MES緩衝液負載
Viresolve預過濾器（VPF） 15 - 200 L/M 2
實例 5 使用陰離子交換層析法介質從緩衝溶液中去除聚乙烯基磺酸鹽
使用21.51 g/L的MES水合物製備100 mM MES緩衝液pH 6，然後用1 M氫氧化鈉滴定。帶正電荷的陰離子交換（AEX）樹脂（Q-Capto™ ImpRes，10 mL預填充柱）用30 mL DI 水沖洗。然後將100 mM MES溶液沖洗通過柱（5370 mL）並收集。AEX池、級分和MES緩衝液負載材料用於經由DNA測定稀釋系列抑制進行PVS定量。結果顯示於圖5和表5中。正如預期的那樣，由於PVS的存在，負載材料沒有DNA加標回收（0%）。在確定最大PVS結合容量的第二實驗中，用14 mL DI水沖洗相同的AEX樹脂（Q-Capto™ ImpRes，5 mL Hi-Screen柱）。然後將100 mM MES溶液沖洗通過柱（500 mL），用20 mL DI水洗滌柱，然後將結合的內容物用3 M氯化鈉洗脫並收集。將PVS用稀釋系列進行定量，結果如表5所示。 [ 表 5] .針對PVS去除的較佳的負載和AEX樹脂的最大PVS結合容量
帶電樹脂 100 mM MES緩衝液負載 最大結合容量
Q-ImpRes ≥ 500 L緩衝液/L樹脂 20-13,000 μg/mL樹脂
實例 6 使用陰離子交換介質從含有蛋白質的溶液中去除聚乙烯基磺酸鹽
針對從含有等電點為8.8的融合蛋白（目的蛋白質）的溶液中流通去除PVS，測試了幾種陰離子交換（AEX）介質。所有介質都用DI水沖洗，然後用10 mL下列緩衝液平衡至測試pH：100 mM醋酸鹽pH 4.2、25 mM Tris pH 7.4和25 mM Tris pH 8.0。含有蛋白質的溶液（約1 mg/mL目的蛋白質）用濃縮形式的目標緩衝液進行調節，以達到表6中所示的目標pH和緩衝液濃度。然後以流通模式將經調節的蛋白質溶液負載到30 mg蛋白質/mL介質中。收集流通池並用於DNA測定測試。正如預期的那樣，由於PVS的存在，負載材料沒有DNA加標回收（0%）。在pH 4.2時，沒有觀察到顯著的PVS去除，導致DNA加標回收未藉由。儘管不希望受理論束縛，但這可能是由於目的蛋白質和聚合物抑制劑之間更強的結合，這係由於蛋白質上的高淨正電荷（pH遠低於蛋白質pI）。與目的蛋白質錯合的PVS在流通模式下大大降低了去除。在pH 7.4和pH 8.0觀察到顯著的PVS去除。同樣不希望受理論束縛，該等結果可能是由於目的蛋白質上的淨正電荷減少。這有效地提高了PVS與陰離子交換介質結合的可用性（即，與目的蛋白質的錯合強度較低）。該實驗中帶電膜（Posidyne過濾器）、純AEX介質（快流速Q瓊脂糖凝膠（Q-Sepharose Fast Flow））和具有AEX官能度的混合模式樹脂（Capto™附著）的容量相似。以大約1.5 µg/mL的介質研究的所有情況中的PVS容量相似。該等數據表明，當pH在蛋白質等電點的1到2個pH單位範圍內時，陰離子交換介質或含有陰離子交換的介質可將PVS與蛋白質溶液分離。 [ 表 6] .從含有蛋白質的溶液中去除PVS的條件和結果。
含有蛋白質的溶液 緩衝液 pH 陰離子交換介質 蛋白質溶液負載（mg/mL） PVS容量（μg/mL介質） DNA測定加標回收
融合蛋白 100 mM乙酸鹽 4.2 0.2 μm Posidyne過濾器 30 未確定 未藉由
快流速Q瓊脂糖凝膠 30 未藉由
Capto附著（Capto Adhere） 30 未藉由
25 mM Tris 7.4 0.2 μm Posidyne過濾器 30 ~1.5 通過
快流速Q瓊脂糖凝膠 30 ~1.5 通過
Capto附著（Capto Adhere） 30 ~1.5 通過
25 mM Tris 8.0 0.2 μm Posidyne過濾器 30 ~1.5 通過
快流速Q瓊脂糖凝膠 30 ~1.5 通過
Capto附著（Capto Adhere） 30 ~1.5 通過
~：約 實例 7 使用多模式層析介質測定聚乙烯基磺酸鹽結合容量
在該實驗中，測試了水平遠遠超出典型下游純化平臺預期的水平時的PVS加標，以建立PVS結合容量。測試了pH 6的100 mM MES緩衝液和pH 6的具有200 mM氯化鈉的100 mM MES緩衝液的典型方法條件。此外，測定了較高氯化鈉濃度（400 mM NaCl）下的PVS容量以代表最壞情況的緩衝液條件。
Capto™附著混合模式層析（MMC）樹脂（Cytiva）的PVS結合容量在實驗室規模進行測定。0.66 cm x 20 cm柱（15.7 mL樹脂）用三種加標30% PVS標準品的溶液進行激發，以達到1.5 mg/mL的PVS濃度（表7）。按照圖7中列出的程序對層析柱進行了測試。如上所述製備MES緩衝液以達到目標緩衝液濃度和pH。用去離子（DI）水沖洗柱後，PVS加標的緩衝液以250 cm/hr負載到柱上。每2個柱體積（CV）收集級分，進行60個CV。然後測試每個緩衝條件的前七個級分和級分7-15、16-24和25-30的池以定量PVS水平。一式三份測量每個級分或池。 [ 表 7] .針對確定PVS容量的實驗設計
緩衝溶液 負載30% PVS加標 （mg/mL） 重複（每個樣本） 注釋
100 mM MES pH 6.0 1.5* 3 級分F7-F15及隨後的提交池
100 mM MES，200 mM氯化鈉，pH 6.0 1.5* 3 級分F7-F15及隨後的提交池
100 mM MES，400 mM氯化鈉，pH 6.0 1.5* 3 級分F7-F15及隨後的提交池
*PVS水平係使用PVS標準曲線估計的。
Capto™附著混合模式樹脂使用陰離子交換和疏水配位基來支持兩種結合模式。增加NaCl表示減少了PVS的陰離子交換結合和增加了疏水相互作用。測定了較高氯化鈉濃度（400 mM NaCl）下的PVS容量以代表最壞情況的緩衝液條件。DNA qPCR加標回收測定的結果如表8所示。通過的DNA加標回收結果表明PVS的濃度對於使用當前DNA測定程序進行DNA定量係可接受的。使用PVS標準曲線，估計通過的結果和未通過的結果的PVS濃度。樹脂的PVS結合容量由結合的PVS量達至PVS突破決定（第一未藉由的DNA加標回收結果）並且如表8所示。混合模式樹脂對相應層析級分的結合容量也顯示在表8（第二列）中。400 mM NaCl緩衝液條件代表了最壞的情況，其中離子相互作用因鹽濃度增加而減少。這一觀察結果與聚乙烯基磺酸鹽的高帶電結構一致，每個聚合物重複單元都具有負磺酸鹽基團。 [ 表 8] .用於Capto™附著PVS去除研究的DNA qPCR測定加標回收評估
級分 PVS結合容量 DNA qPCR測定DNA加標回收結果
（mg PVS/ mL樹脂） 100 mM MES 100 mM MES， 100 mM MES，
pH 6.0 200 mM NaCl， 400 mM NaCl，
pH 6.0 pH 6.0
F1 N/A N/A* N/A* N/A*
F2 3 通過 通過 通過
F3 6 通過 通過 通過
F4 9 通過 通過 未藉由
F5 12 通過 通過 未藉由
F6 15 通過 通過 未藉由
F7-F15 18 未藉由 未藉由 未藉由
F16-F24 21 未藉由 未藉由 未藉由
F25-F30 48 未藉由 未藉由 未藉由
N/A-不適用，由於緩衝液交換效應，第一級分被確定為不具有代表性，隨後的級分不顯示qPCR干擾。
確定流通級分的DNA測定加標回收。通過的級分證明了可接受的PVS清除，第一未通過樣本定義了Capto™附著樹脂的PVS結合容量。例如，標準條件樣本（100 mM MES pH 6；100 mM MES、200 mM NaCl、pH 6）顯示出可接受的負載清除，直至級分7。級分7代表15 mg PVS/mL樹脂的PVS負載，並且負載高於此水平的PVS會導致一致的加標回收干擾（級分7-30的池都顯示未藉由的加標回收）。對最壞情況的分析，400 mM NaCl條件顯示級分4中的加標回收干擾。因此，最壞情況下的結合容量為9 mg PVS/mL樹脂。因此，對於混合模式樹脂，觀察到9至15 mg PVS/mL樹脂的結合容量。 實例 8 檢測和去除聚陰離子的滴定方法
獲得九批商業MES緩衝液並使用本文揭露的用於檢測和測量PVS的滴定方法進行分析。使用所揭露的檢測和測量PVS的滴定方法並使用qPCR對該等批次的MES緩衝液進行比較評估。實驗數據表明，該方法能夠靈敏檢測低水平的PVS，並準確且精確地檢測PVS水平的批次間變化。這樣的分析顯示，商業批次MES緩衝液（批次#I）含有顯著高水平的PVS，與使用PCR（例如qPCR）對生物樣本的宿主細胞核酸污染的緩衝液相關抑制作用的批次間變異性的觀察一致。
本實例和實例9中提供的數據表明，使用聚陽離子化合物如海美溴銨（ 即，HDBr）檢測和測量樣本中PVS的滴定方法對PVS比MES具有高度選擇性，其中K a, PVS＞＞ K a, MES。本文揭露的結果表明所揭露的滴定方法係可重複的（精確的）並且能夠在Good緩衝液（如MES）中檢測低水平的聚陰離子 ，例如PVS，其中定量限（ 即，LOQ）為約100-200 ng/ml。
本文揭露的方案描述了一種聚電解質滴定方法，用於在Good緩衝液（如2-(N-𠰌啉代)乙磺酸（MES）緩衝液中對聚陰離子（如聚乙烯基磺酸）（PVS）進行定量。該方法可擴展到由乙烯基磺酸生產的其他Good緩衝液（例如HEPES）。PVS檢測的基本機制基於與聚陽離子物質，例如海美溴銨（HDBr）的結合。圖10a提供了結合反應的示意圖。這種方法利用PVS和HDBr之間的高平衡締合常數（Ka）來實現相比於MES（單陰離子）的選擇性。實際上，聚陽離子和聚陰離子之間的Ka隨電荷位點的數量而急劇增加（與聚合物分子量正相關）。在滴定終點，過量的HDBr與陰離子指示劑分子鉻黑T（ECBT）締合，導致指示劑的UV-Vis吸光度譜發生變化（圖10b）。滴定的進程可以在單個波長（ 即，665 nm）進行跟蹤，並與樣本中PVS的濃度相關，例如，藉由計算所得S形曲線之拐點，如圖9所示。 用於實例 8 和 9 的材料和方法
在試劑製備中，使用常規技術製備測定緩衝液以產生包含50 mM硼酸鈉的緩衝液A，用鹽酸將pH調節至8.5，以及包含100 mM組合的碳酸鈉和碳酸氫鈉的緩衝液B，配製以產生pH 10.0的溶液。指示劑化合物或染料溶液，例如聚陰離子指示劑化合物，例如鉻黑T（ECBT；55 wt%），用作指示劑化合物。當指示劑化合物係ECBT時，將該材料的固體等分部份在室溫下儲存。為了製備示例性ECBT染料溶液，將125 mg ECBT添加到25 mL容量瓶中並記錄實際質量。將ECBT溶解在25 mL去離子（ 即，DI）水中，並等分到1.6 mL或5 mL聚丙烯微量離心管中，並在2-8°C儲存直至使用。所揭露方法的聚陽離子化合物係滴定劑，並且示例性滴定劑溶液係使用海美溴銨（HDBr）製備的。該材料儲存在2-8°C。為了製備該溶液，將18.7 mg HDBr直接稱重到玻璃瓶中並溶解在3.74 mL水中，得到5 mg/mL儲備溶液。然後分別藉由5 mg/ml HDBr溶液在補充有0.1 mM EDTA的50 mM硼酸鹽緩衝液中的1 : 20或1 : 100稀釋來製備0.05 μg/ml HDBr滴定劑。該溶液用作本文揭露的測定方法的滴定溶液。HDBr滴定劑溶液在15 mL聚丙烯離心管中製備為10 mL溶液，並在2-8°C儲存。
對於關於檢測和去除生物分子的滴定方法的實驗，從西格瑪奧德里奇公司（#278424）和阿爾法化學公司（Alfa Chemistry）（#ACM25053274）購買約30 wt%聚(乙烯基磺酸)（PVS）鈉鹽並稀釋以製備已知濃度範圍為0.1至20 µg/mL的PVS標準品。使用常規技術製備50 mM硼酸鹽緩衝液（pH 8.5）。100 mM碳酸鹽緩衝液（pH 10.0）由碳酸鈉（西格瑪奧德里奇公司#223484）和碳酸氫鈉（西格瑪奧德里奇公司#S6014）製備。碳酸鹽和碳酸氫鹽緩衝液補充有約0.1 mM乙二胺四乙酸（EDTA；MP生物醫藥公司（MP Biomedicals）#06133713）。1,5-二甲基-1,5-二氮雜十一亞甲基聚甲溴化物（海美溴銨；HDBr）購自西格瑪奧德里奇公司（107689）和卡博森斯公司（Carbosynth）（#FH165280）。鉻黑T（EBT或ECBT）購自西格瑪奧德里奇公司（#858390）。所有溶液均使用已純化至最小電阻率為18 MΩ-cm的水製備。藉由在0.2 µm Posidyne ®過濾器（2.8 cm 2表面積）上過濾，將100 mM MES水合物溶液中的PVS清除，並用作本文揭露實驗的樣本空白。 標準品製備
藉由在水中對儲備溶液進行連續稀釋，使用商業聚(乙烯基磺酸鹽)（PVS）儲備溶液來製備測定標準品（阿爾法化學公司，25 wt%，鈉鹽，批#A19X05191）。然後將表9中的PVS溶液加標入30 mM硼酸鹽緩衝液（補充有0.1 mg/mL EDTA）以製備已知PVS濃度的標準品。 [ 表 9] .
PVS 儲備稀釋係數 V 水 （mL ） V 標準 （mL ） 使用的稀釋 約 [PVS] （μg/mL ）
1 : 20 0.950 0.050 儲備 12500
1 : 400 0.950 0.050 1 : 20 625
1 : 2000 0.800 0.200 1 : 400 125
1 : 10000 0.800 0.200 1 : 2000 25
儲備溶液和標準溶液儲存在2-8°C。 樣本製備
如下製備100 mM MES水合物溶液（批次# I和II），pH調節至7.00 ± 0.05。將2.132 g MES水合物溶解在95 mL水中，並使用NaOH水溶液調節pH。使用常規的pH計測量pH。溶液儲存在2-8°C。 測定程序
雖然滴定可行性實驗係使用下面描述的簡單方案進行的，但可以藉由使用光度滴定儀儀器來自動化這裡描述的步驟，從而使這樣的實驗自動化。光譜儀的紫外燈和可見光燈在使用前藉由打開光譜儀加熱至少20分鐘。在每次測定之前使用標準溶液或樣本溶液對光譜儀進行空白化。所揭露的測定中使用的標準池係10 mm、1.5 mL的石英比色皿。標準品由在測定緩衝液中稀釋的PVS組成。藉由將100 mM MES作為示例性Good緩衝液與測定緩衝液混合來製備樣本。執行該步驟係因為示例性ECBT指示劑化合物在6-7的pH值範圍內發生顏色變化，而大於7的pH值高於MES的緩衝區。因此，如上所述，MES與鹼性緩衝液，即A或B混合，以確保ECBT指示劑去質子化。
初始實驗以1 : 1的比例混合緩衝液A和MES。預計更多的鹼性緩衝液（例如，B）與MES以不同體積比混合，將提高測定性能。
光譜儀空白化後，將少量ECBT溶液添加到標準品/樣本中。最初，將995 μL標準品/樣本與5 μL ECBT（5 mg/mL）混合，最終ECBT濃度為25 μg/mL。獲得全波長吸光度掃描。藉由將小體積（10-100 μL）的0.050 mg/mL HDBr溶液添加到比色皿中，測量每次添加HDBr之間的樣本吸光度，來滴定標準品/樣本溶液。用200 μL移液管混合溶液，在測量吸光度前讓溶液靜置約1分鐘。HDBr的體積在滴定過程中逐漸增加。例如，最初進行小體積（例如，10 μL）添加，因為吸光度譜在滴定早期發生了劇烈變化。當吸光度變化受稀釋影響更顯著時，在滴定後期添加更大的體積。在某些情況下（例如，對於具有較大PVS濃度的溶液），使用濃度更高的0.25 mg/mL HDBr溶液。然後對每個樣本重複前面的空白化光譜儀和向標準品/樣本中添加小體積指示劑化合物溶液的步驟。 數據分析。
從UV-vis光譜中，將665 nm處的吸光度針對添加的HDBr質量（以μg計）作圖。吸光度應針對溶液體積的變化進行校正以說明稀釋，這係藉由將A 665 nm乘以總溶液體積（即，溶液的原始體積[1.000 mL]，加上添加的滴定劑溶液的累積體積）。
圖11和12總結了評估結果。圖4顯示了相對於在三種不同PVS水平處加標的測定緩衝液的HDBr滴定劑的質量，在665 nm處的經體積校正的溶液吸光度。
圖12a顯示了相對於在三種不同PVS水平處加標的MES基質空白的HDBr滴定劑的質量，在665 nm處的經體積校正的溶液吸光度。對於0 ppm PVS標準品和樣本空白（即，MES空白），添加滴定劑導致A 665的初始急劇下降，其在溶液中添加約5.00 µg HDBr後穩定。藉由將商業來源的PVS加標入溶液中製備的其餘PVS標準品樣本需要更大量的滴定劑才能達到穩態吸光度。例如，7.5 ppm樣本（圖12a）僅在添加超過40 µg HDBr後才達到穩定的A 665。綜上所述，該等數據表明與樣本溶液中PVS量相關的滴定曲線（圖11和12a）存在明顯差異。圖12b藉由以下總結了這種關係：在50 mM硼酸鹽緩衝液（pH 8.5）（綠色三角形）或MES中製備的PVS標準品溶液的計算拐點進行作圖，該等溶液已加標PVS，隨後與50 mM硼酸鹽緩衝液（pH 8.5）混合以調節溶液pH（黑色方塊）。兩組數據的斜率相當，表明高濃度（100 mM）的MES的存在不會干擾PVS定量。此外，該等數據支持在100 mM MES溶液中檢測低至1.5 ppm（µg/mL）的PVS，在測定緩衝液中檢測低至0.3 ppm的PVS。
為了進一步評估滴定程序的性能，與PVS標準品一起評估了兩個不同批次的MES。將導致幾種產品的qPCR結果無效的MES水合物批（樣本I）與每個qPCR測定具有最小量的PVS的另一個MES樣本相比較（即，用於生成圖12a中的樣本空白的相同材料）。該評估的結果如圖13所示，顯示MES樣本I中存在可測量的PVS量，但陰性對照MES材料中沒有（這與PVS耗竭的基質空白無法區分）。該等結果表明，所揭露之方法可以準確地鑒定具有不合適的PVS水平的MES水合物材料。此外，不含PVS或具有不會干擾qPCR的中等水平PVS的MES水合物材料與不合適的MES材料可區分。 實例 9 自動滴定
PVS標準品溶液和MES樣本溶液的自動滴定使用配備智慧給料驅動器（#2.800.0010）和體積容量為20 mL的給料裝置（#6.303.2200）的Metrohm 907 Titrando儀器進行。在緊接滴定前向100 mL標準品溶液或樣本溶液中補充0.8-1.7 µg/mL EBT指示劑（例如，藉由在0.5-1.0 mg/mL EBT儲備液中加標）。藉由用HDBr以50-150 µL的體積增量單調滴定樣本來測定所得溶液。藉由使用浸入式光度測定探頭（光極（Optrode），#6.1115.000）連續測量660 nm處的樣本溶液吸光度來監測滴定進程，其中使用滴定曲線一階導數中的最大dU/dV確定滴定終點。
使用配備可在660 nm波長測量溶液吸光度的浸入式光度測定探頭的907 Titrando（萬通公司（Metrohm）進行自動PVS測量。滴定藉由0.05-0.15 mL HDBr滴定劑溶液的增量給料進行。在滴定劑增量之間，在下一個滴定劑體積給料之前，允許來自光度測定探頭的信號穩定。圖14（黑色跡線）以及相應的一階導數（紅色跡線）顯示了空白標準品的代表性滴定譜。一階導數出現最大值時的體積（ 即，圖14中約0.55 mL的V 滴定劑）表示滴定劑終點並用於確定PVS濃度。
樣本溶液的pH值在PVS的測量中起著重要作用，這係藉由影響PVS分析物上的陰離子電荷密度或間接藉由指示劑化合物質子化形成一價陰離子（H 2In -）（其與HDBr錯合後吸光度不發生變化）。上面在實例8中描述的實驗表明，將製備的MES溶液與鹼性緩衝液混合將是確保合適的樣本pH的可行方法。這種方法在自動滴定實驗中的使用（即，藉由在100 mM碳酸鹽緩衝液中以50 mM MES溶解MES樣本）藉由對MES樣本溶液中PVS加標回收的評估進行了驗證。對於該評估，將10 ppm PVS儲備溶液以不同濃度加標到對應於MES水合物批的樣本溶液中（樣本H；見表10）。這種材料在藉由滴定測定時產生的終點體積與空白標準品無法區分，表明PVS水平低於方法檢測限。
加標回收評估的結果顯示在圖15a中，該圖繪製了滴定終點體積相比於四種不同PVS水平下的PVS濃度（每個以一式三份進行測定）。為了比較，單獨在100 mM碳酸鹽緩衝液中製備的PVS標準品的結果顯示在圖15b中。對於兩組數據，滴定終點體積和PVS濃度之間的線性回歸產生了相似的斜率（0.99和0.95 mL/（µg/mL）），其中具有適當的線性確定係數（R 2= 0.99）。值得注意的是，加標回收數據（0.55 mL）的y軸截距幅度大於圖15b（0.43 mL）中標準曲線的幅度，這可能是由於MES樣本H中的PVS水平較低。此外，目視檢查圖16中顯示的PVS標準品（圖16A和16B）的代表性滴定曲線並且加標回收樣本（圖16C和16D）顯示較低pH或50 mM MES的存在對滴定譜沒有明顯可察覺的影響。總的來說，該等結果表明較低樣本pH或50 mM MES的存在對測量的PVS水平沒有可感知的影響。
在滴定程序的開發過程中，藉由用0.10 mg/mL HDBr滴定50 mM MES（溶解在100 mM碳酸鹽緩衝液中）來評估幾個MES水合物批次的PVS含量。將滴定終點與一系列PVS標準品溶液產生的結果進行比較。該等評估的結果在表10中給出。在該等樣本中，有MES水合物批（樣本I），其導致幾個治療性蛋白質批次的qPCR測定未藉由。樣本I的PVS水平（藉由滴定測量）係71 ± 4 µg PVS/克MES水合物，該值顯著高於任何其他測試樣本的PVS水平，這支持滴定在篩選具有不合適PVS水平的MES材料中的效用。 [ 表 10] .在滴定方法開發過程中評估MES水合物樣本的PVS
MES 水合物樣本 在100 mL 50 mM MES 中的[PVS] （μg/mL ） [PVS] ，乾基 （μg PVS/g MES 水合物）
A a 0.21 ± 0.07 21 ± 7
B a 0.38 ± 0.18 39 ± 19
C a 0.26 ± 0.09 27 ± 9
D b 0 c 0 c
E b 0.14 14
F b 0.25 25
G b 0.04 4
H b 0 c 0 c
l c 0.71 ± 0.04 71 ± 4
a一式三份評估樣本。 b在沒有重複測量的情況下評估樣本。 c樣本低於檢測限 （LOD ），產生陰性[PVS]。 實例 11 檢測方法比較
評估了用於檢測和測量蛋白質樣本（例如，生物樣本）中的聚陽離子（如PVS）的幾種方法。關於藉由PVS誘導報告物聚集連同濁度檢測的離子配位方法係一種簡單的低複雜度方法，但該方法未能可靠地檢測具有高水平PVS的MES緩衝液批。關於藉由螢光激發和檢測直接檢測水性PVS的基於螢光之方法係另一種簡單的低複雜度方法，但該方法被證明對於檢測PVS不可行。另一種基於螢光之方法關於PVS誘導螢光報告分子的猝滅，但由於相對於MES選擇性檢測PVS的能力有限，因此沒有顯示出希望。一種基於Good緩衝液中聚陽離子物理特性之方法係帶電荷氣溶膠檢測的尺寸排阻層析法（即SEC-CAD）。該方法能夠檢測MES緩衝液中的PVS，但該方法比其他方法複雜得多。評估了另一種離子配位方法，發現該方法（其關於聚電解質錯合和使用紫外-可見波長吸光度檢測的滴定）在提供Good緩衝液（包括但不僅限於表11中提供的Good緩衝液）中準確、精確和靈敏的PVS檢測和定量方面產生出乎意料的優異結果。除了提供準確度、精密度和靈敏度的優點之外，本文中作為滴定方法揭露的該方法係複雜性和成本低的直接方法。 [ 表 11] . Good 緩衝液
緩衝液 p K a 緩衝液 p K a
MES 6.15 POPSO 7.85
雙-三甲烷 6.60 HEPPSO 7.9
ADA 6.62 EPS 8.0
雙-三丙烷 6.80 HEPPS 8.1
PIPES 6.82 Tricine 8.15
ACES 6.88 Tris 8.2
MOPSO 6.95 甘胺醯胺 8.2
氯化膽胺 7.10 甘胺醯甘胺酸 8.2
MOPS 7.15 HEPBS 8.3
BES 7.17 N-二羥乙甘胺酸 8.35
AMPB 8.8 TAPS 8.55
HEPES 7.55 AMPB 8.8
DIPSO 7.6 CHES 9.3
MOBS 7.6 CAPSO 9.6
乙醯胺基甘胺酸 7.7 AMP 9.7
TAPSO 7.6 CAPS 10.4
TEA 7.8 CABS 10.7
如從引文的上下文中顯而易見的，本文引用的每篇參考文獻以其全部或相關部分藉由引用併入本文。
應當理解，雖然已經結合詳細描述對要求保護之主題進行了描述，但前面的描述旨在說明而非限制要求保護的主題之範圍，要求保護的主題之範圍由所附的請求項之範圍限定。其他方面、優點和修改在以下請求項之範圍內。
無
[ 圖 1.] DNA測定加標回收抑制相比於PVS標準品。
[ 圖 2.] 稀釋系列加標回收分析與標準曲線相比較以提供PVS濃度。
[ 圖 3.] 針對MES級分的加標回收數據。
[ 圖 4.] 針對MES級分的加標回收數據。
[ 圖 5.] 使用AEX樹脂針對MES級分的加標回收數據。
[ 圖 6.] 測定結果表明聚乙烯基磺酸鹽（PVS）係qPCR介導的DNA測定的強效抑制劑。
[ 圖 7.] 針對PVS加標激發之層析方法。
[ 圖 8.] (a) 2-(N-𠰌啉代)-乙磺酸（即，MES）的化學結構，顯示為酸性形式，MES水合物，以及顯示為鹼性形式，MES鈉鹽。(b) 化學反應，其產生能夠抑制對核酸具有活性的酶（例如RNA酶）的化合物。圖1 (b) 改編自Smith等人 Journal of Biological Chemistry[生物化學雜誌] 2003, 20934-20938中的圖。
[ 圖 9.] (a) 在0-1.0 ppm之間改變聚乙烯基磺酸鹽（PVS）的濃度顯示了從西格瑪奧德里奇公司（Sigma-Aldrich）獲得的兩個不同批次PVS標準品的線性校準曲線，該等標準品以30 wt%的水溶液提供。發現PVS的濃度在批次之間有顯著差異。然而，預期可以藉由稀釋來調整特定批次的濃度以用作合適的標準。(b) 使用海美溴銨（HDBr）滴定PVS的滴定曲線係在0-1.0 ppm的PVS濃度範圍內構建的。發現了大約1.5個數量級的線性範圍。
[ 圖 10.] (a) 使用HDBr滴定PVS並使用光譜終點檢測進行定量的示意圖。反應方案描述了PVS和HDBr之間由吸引性靜電相互作用驅動的錯合。在滴定終點，指示劑化合物（nD -）在與相鄰HDBr電荷位點締合後發生吸光度特性的變化。圖3(a) 中的藍色圓形「加」和「減」符號表示溶液中的背景鹽。(b) 該圖顯示了在臺式吸光度光譜儀上測量的空白樣本（ 即，50 mM硼酸鹽緩衝液，pH 8.5，補充有EBT指示劑化合物）的溶液吸光度變化，因為HDBr係逐漸滴定到溶液中。隨著HDBr濃度的增加，指示劑在665 nm處的吸光度降低，同時吸光度最大值從約630 nm移至593 nm。
[ 圖 11.] 滴定曲線，其繪製一系列PVS標準溶液在665 nm處歸一化的、體積校正的吸光度。
[ 圖 12.] (a) 在MES基質空白中製備的三種不同PVS標準品在665 nm處體積校正的溶液吸光度相比於HDBr（滴定劑）質量之圖。(b) 在50 mM硼酸鈉中製備的PVS標準品（綠色三角形）和與50 mM硼酸鈉混合的MES（黑色方塊）之間的滴定曲線拐點比較。
[ 圖 13.] 在MES基質空白製備的PVS標準品（黑色方塊）、MES陰性對照批次（SLBT8755；藍色菱形）和導致初始qPCR無效測定的MES批次（批次#I；紅色圓圈）的滴定曲線拐點之比較。
[ 圖 14.] 空白標準品（100 mM碳酸鹽緩衝液，補充以1.25 µg/mL鉻黑T（EBT）指示染料）用0.04 mg/mL海美溴銨滴定之代表性譜（HDBr；黑色跡線），和相應的一階導數（紅色跡線）。
[ 圖 15.] (a) 滴定終點體積相比於加標入溶解在100 mM碳酸鹽緩衝液中的50 mM MES中的PVS濃度之圖。(b) 在100 mM碳酸鹽緩衝液中製備的標準樣本的滴定終點體積相比於PVS濃度之圖。
[ 圖 16.] 以下的代表性滴定曲線：（A,B）在100 mM碳酸鹽緩衝液中以0（A）或0.75（B）µg/mL製備的PVS標準溶液；和（C,D）PVS以0（C）或0.70（D）µg/mL加標進入在100 mM碳酸鹽緩衝液中製備的50 mM MES（表10中的樣本H）。
無
 

          <![CDATA[<110>  美商安進公司（Amgen Inc.）]]>
          <![CDATA[<120>  從生物分子組成物中檢測和去除聚乙烯基磺酸鹽]]>
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Figure 12_A0101_SEQ_0001
Figure 12_A0101_SEQ_0002

Claims (37)

  1. 一種用於定量樣本中聚陰離子PCR抑制劑之方法，該方法包括： a) 製備包含至少四個成員的樣本的稀釋系列； b) 用恒定量的可與宿主細胞DNA區分的模板DNA加標該稀釋系列的每個成員； c) 對該稀釋系列的每個成員和在沒有任何樣本的情況下該恒定量的模板DNA進行PCR測定； d) 生成聚陰離子抑制劑標準曲線； e) 將該稀釋系列的PCR測定結果與在沒有任何樣本的情況下該恒定量的模板DNA的PCR測定結果進行比較；以及 f) 鑒定該樣本中聚陰離子PCR抑制劑的濃度。
  2. 如請求項1所述之方法，其中該樣本中聚陰離子PCR抑制劑的濃度係由以下定義的範圍：該稀釋系列中顯示完全加標回收的最低稀釋的成員中和該稀釋系列中未顯示完全加標回收的最高稀釋的成員中聚陰離子PCR抑制劑的濃度。
  3. 如請求項2所述之方法，其中該稀釋系列中的成員數量為5、6、7、8、9、10、12、15或20個，從而相對於請求項2中提供的範圍，縮小該樣本中該聚陰離子PCR抑制劑的濃度的範圍。
  4. 如請求項1所述之方法，其中該恒定量的模板DNA係至少100 pg。
  5. 如請求項1所述之方法，其中該聚陰離子PCR抑制劑係磺酸鹽化合物。
  6. 如請求項5所述之方法，其中該磺酸鹽化合物係聚乙烯基磺酸鹽。
  7. 如請求項1所述之方法，其中該聚乙烯基磺酸鹽係用於生成該聚陰離子抑制劑標準曲線的聚陰離子PCR抑制劑，並且該樣本中聚陰離子PCR抑制劑的濃度係以聚乙烯基磺酸鹽濃度當量的單位。
  8. 一種從緩衝溶液中去除聚陰離子PCR抑制劑之方法，該方法包括： a) 製備酸性緩衝物質、鹼性緩衝物質或其組合的緩衝溶液； b) 將該緩衝溶液與陰離子交換介質接觸；以及 c) 將該緩衝溶液與聚陰離子雜質分離，從而從該緩衝溶液中去除該聚陰離子雜質。
  9. 一種從緩衝溶液中去除聚陰離子PCR抑制劑之方法，該方法包括： a) 製備酸性緩衝物質、鹼性緩衝物質或其組合的緩衝溶液； b) 將該緩衝溶液與混合模式樹脂接觸；以及 c) 將該緩衝溶液與聚陰離子雜質分離，從而從該緩衝溶液中去除該聚陰離子雜質。
  10. 如請求項8或請求項9所述之方法，其中該聚陰離子雜質係磺酸鹽化合物。
  11. 如請求項10所述之方法，其中該磺酸鹽化合物係聚乙烯基磺酸鹽。
  12. 如請求項8或請求項9所述之方法，其中該緩衝溶液係Good緩衝溶液。
  13. 如請求項12所述之方法，其中該Good緩衝溶液係2-(N-𠰌啉代)-乙磺酸（MES）緩衝溶液。
  14. 如請求項8或請求項9所述之方法，其中該緩衝溶液包含緩衝鹽或該緩衝鹽的酸物質。
  15. 如請求項8或請求項9所述之方法，該方法還包括向該緩衝溶液中添加至少一種改性化合物。
  16. 如請求項15所述之方法，其中該改性化合物係非緩衝鹽、賦形劑或兩者。
  17. 如請求項8所述之方法，其中該陰離子交換介質係二乙基胺基乙基改性的基質、二甲基胺基乙基改性的基質、二甲基胺基丙基改性的基質、聚乙烯亞胺改性的基質、季銨化聚乙烯亞胺改性的基質、完全季銨化的胺改性的基質、含陰離子交換改性矽藻土的深度過濾器、陰離子交換膜吸附劑、耐鹽陰離子交換膜吸附劑、Macro-Prep 25Q、TSK-Gel Q、Poros Q、快流速Q瓊脂糖凝膠、Q HyperD、Q氧化鋯、源30Q、Fractogel EMD TMAE、表現離子Q、快流速DEAE瓊脂糖凝膠、Poros 50 D、Fractogel EMD DEAE (M)、MacroPrep DEAE支持物、DEAE陶瓷HyperD 20、東洋珍珠DEAE 650 M、Capto Q、Sartobind Q膜吸附劑、Posidyne帶電膜、Amberlite ®（聚胺）改性的基質、Amberlite ®（亞胺基二乙酸）改性的基質、Amberlite ®I型（三烷基苄基銨）改性的基質、Amberlite ®II型（二甲基-2-羥基乙基苄基銨）改性的基質、Dowex ®（聚胺）改性的基質、Dowex ®I型（三甲基苄基銨）改性的基質、Dowex ®II型（二甲基-2-羥基乙基苄基銨）改性的基質、Dowex ®（混合床）、Capto ®附著陰離子交換多模式、PPA Hypercel、HEA Hypercel、或Duolite ®（聚胺）改性的基質。
  18. 如請求項9所述之方法，其中該混合模式樹脂係Capto ®附著陰離子交換多模式樹脂、PPA Hypercel樹脂或HEA Hypercel樹脂。
  19. 如請求項8所述之方法，其中該陰離子交換介質結合高達15 mg PVS/mL陰離子交換介質。
  20. 如請求項8所述之方法，其中該陰離子交換介質結合高達9 mg PVS/mL陰離子交換介質。
  21. 如請求項8所述之方法，其中該陰離子交換介質結合高達3 mg PVS/mL陰離子交換介質。
  22. 如請求項9所述之方法，其中該混合模式樹脂結合高達15 mg PVS/mL混合模式樹脂。
  23. 如請求項9所述之方法，其中該混合模式樹脂結合高達9 mg PVS/mL混合模式樹脂。
  24. 如請求項9所述之方法，其中該混合模式樹脂結合高達3 mg PVS/mL混合模式樹脂。
  25. 如請求項8所述之方法，其中該陰離子交換介質係與聚陰離子雜質（分析物）形成錯合物的聚陽離子化合物。
  26. 如請求項25所述之方法，其中該聚陽離子化合物係基於季銨的聚合物。
  27. 如請求項25所述之方法，其中該聚陽離子化合物以足以至少達到滴定該聚陰離子雜質分析物的當量點的量添加。
  28. 一種從蛋白質溶液中去除聚陰離子緩衝液雜質之方法，該方法包括： a) 將含有陰離子緩衝液雜質的蛋白質溶液的pH調節至比該蛋白質的等電點低不超過4個pH單位的pH； b) 將該蛋白質溶液與陰離子交換介質接觸；以及 c) 將該蛋白質與該陰離子緩衝液雜質分離。
  29. 一種從蛋白質溶液中去除聚陰離子緩衝液雜質之方法，該方法包括： a) 將含有陰離子緩衝液雜質的蛋白質溶液的pH調節至比該蛋白質的等電點低不超過4個pH單位的pH； b) 將該蛋白質溶液與混合模式樹脂接觸；以及 c) 將該蛋白質與該陰離子緩衝液雜質分離。
  30. 如請求項28或請求項29所述之方法，其中將該pH調節為比該蛋白質的等電點低不超過2個pH單位。
  31. 如請求項28所述之方法，其中該陰離子交換介質係二乙基胺基乙基改性的基質、二甲基胺基乙基改性的基質、二甲基胺基丙基改性的基質、聚乙烯亞胺改性的基質、季銨化聚乙烯亞胺改性的基質、完全季銨化的胺改性的基質、含陰離子交換改性矽藻土的深度過濾器、陰離子交換膜吸附劑、耐鹽陰離子交換膜吸附劑、Macro-Prep 25Q、TSK-Gel Q、Poros Q、快流速Q瓊脂糖凝膠、Q HyperD、Q氧化鋯、源30Q、Fractogel EMD TMAE、表現離子Q、快流速DEAE瓊脂糖凝膠、Poros 50 D、Fractogel EMD DEAE (M)、MacroPrep DEAE支持物、DEAE陶瓷HyperD 20、東洋珍珠DEAE 650 M、Capto Q、Sartobind Q膜吸附劑、Posidyne帶電膜、Amberlite ®（聚胺）改性的基質、Amberlite ®（亞胺基二乙酸）改性的基質、Amberlite ®I型（三烷基苄基銨）改性的基質、Amberlite ®II型（二甲基-2-羥基乙基苄基銨）改性的基質、Dowex ®（聚胺）改性的基質、Dowex I型（三甲基苄基銨）改性的基質、Dowex ®II型（二甲基-2-羥基乙基苄基銨）改性的基質、Dowex ®（混合床）、Capto ®附著陰離子交換多模式、PPA Hypercel、HEA Hypercel、或Duolite ®（聚胺）改性的基質。
  32. 如請求項29所述之方法，其中該混合模式樹脂係Capto ®附著陰離子交換多模式、PPA Hypercel或HEA Hypercel。
  33. 一種用於定量樣本中聚陰離子PCR抑制劑之方法，該方法包括： (a)      使包含聚陰離子PCR抑制劑的樣本與聚陽離子化合物的至少一個等分部份接觸； (b)      添加聚陰離子指示染料，其量足以檢測該染料的游離形式；以及 (c)      基於檢測該聚陰離子指示染料的游離形式所需的聚陽離子化合物的量來定量該聚陰離子PCR抑制劑。
  34. 一種去除樣本中聚陰離子雜質之方法，該方法包括： (a)      使包含聚陰離子雜質的流體與聚陽離子平衡離子接觸；以及 (b)      將該流體與跟該聚陽離子平衡離子錯合的聚陰離子雜質分離，從而從該流體中去除該聚陰離子雜質。
  35. 如請求項34所述之方法，其中該聚陰離子雜質係聚陰離子PCR抑制劑。
  36. 如請求項34所述之方法，其中藉由沈澱去除聚陰離子雜質和聚陽離子平衡離子的錯合物。
  37. 如請求項34所述之方法，其中該聚陽離子平衡離子藉由連接到結合對的成員或磁性顆粒而衍生化，以促進從該流體中去除聚陰離子雜質和聚陽離子平衡離子的錯合物。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6319494B1 (en) 1990-12-14 2001-11-20 Cell Genesys, Inc. Chimeric chains for receptor-associated signal transduction pathways
IL104570A0 (en) 1992-03-18 1993-05-13 Yeda Res & Dev Chimeric genes and cells transformed therewith
EP2776577B1 (en) * 2011-11-07 2017-01-11 Qiagen GmbH Lysis method and lysis composition
CA3130451A1 (en) * 2019-02-28 2020-09-03 Day Zero Diagnostics, Inc. An improved method of preparing clinical samples for nucleic acid amplification

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