TW201639954A - 用於將甲烷轉化為產物之重組產醋酸細菌 - Google Patents
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Abstract
本發明提供一種重組產醋酸細菌,該細菌消耗包括CH4之受質且將該CH4之至少一部分轉化為產物。特定言之,該細菌可以包括外源性甲烷單加氧酶(MMO)、外源性亞硝酸還原酶(NIR)及外源性氧化氮歧化酶(NOD)中之一或多者。本發明進一步提供一種用於製造產物之方法,該方法包括向包括重組產醋酸細菌之培養物提供包括CH4之受質,藉此該細菌將該CH4之至少一部分轉化為產物。
Description
本申請案主張2015年2月23日申請之美國專利申請案第62/119,632號之權益,該美國專利申請案之全部內容以引用的方式併入本文中。
甲烷(CH4)為美國所排放的第二大普遍的溫室氣體,佔2012年源自人類活動的所有美國溫室氣體排放量的約9%。甲烷係由天然來源(諸如濕地)以及人類活動(諸如天然氣系統及農業)而排放。另外,甲烷在捕獲輻射方面比二氧化碳(CO2)有效得多,二氧化碳為美國所排放的最普遍的溫室氣體。實際上,同樣條件下,在100年時間內,相比較而言,甲烷對氣候變化之影響為二氧化碳之20倍(美國環境保護署(United States Environmental Protection Agency))。
甲烷氧化菌為經由中間物甲醇、甲醛及甲酸鹽將甲烷氧化為二氧化碳及水之微生物。甲烷氧化菌在減少自甲烷產量相對較高之自然環境釋放甲烷方面起到重要作用,該自然環境諸如稻田、填埋場、泥塘及沼澤。因此,環境科學家已注意到甲烷氧化菌在生物修復工作中之潛能,該生物修復工作亦即降低大氣甲烷濃度及緩解全球變暖效應。
好氧性甲烷氧化菌藉由在由甲烷單加氧酶催化之反應中使用氧
氣作為初始攻擊之高反應性共受質,克服了斷開甲烷之C-H鍵所需的高活化能(439kJ/mol)(Trotsenko,《應用微生物學進展(Adv Appl Microbiol)》,63:183-229,2008)。特定言之,甲烷單加氧酶使用來自NAD(P)H之兩個還原當量分裂O2之O-O鍵,藉此將一個原子還原為水且將第二原子併入受質中,得到甲醇:CH4+NAD(P)H+H++O2→CH3OH+NAD(P)++H2O。然而,包括甲烷及氧氣之氣態受質極易燃,使得好氧性甲烷氧化菌之工業規模生長即便不非常危險,亦存在問題。
在發現候選種神奇甲基產氧菌(Methylomirabilis oxyfera)(Ettwig,《自然(Nature)》,464:543-548,2010)之前,咸信單一微生物對甲烷之厭氧氧化在生物學上為不可能的(Wu,《生物化學會彙刊(Biochem Soc Trans)》,39:243-248,2011)。代替清除環境中之氧氣(如好氧性甲烷氧化菌)或藉由反轉甲烷生成驅動甲烷氧化(如甲烷氧化古細菌及還原細菌之互養同生菌中之產甲烷古細菌),神奇甲基產氧菌藉由將亞硝酸鹽經由氧化氮代謝成氧氣及二氮氣體產生氧氣,進行自我供應(Raghoebarsing,《自然》,440:918-921,2006;Ettwig,《應用與環境微生物學(Appl Environ Microbiol)》,75:3656-3662,2009;Hu,《環境微生物學報告(Environ Microbiol Rep)》,1:377-384,2009;Ettwig,《自然》,464:543-548,2010;Luesken,《環境微生物學(Environ Microbiol)》,14:1024-1034,2012)。隨後使用細胞內產生之氧氣,藉由涉及甲烷單加氧酶之經典的好氧性甲烷氧化路徑氧化甲烷(Ettwig,《自然》,464:543-548,2010)。
雖然神奇甲基產氧菌不像好氧性甲烷氧化菌一樣需要含有甲烷及氧氣之易燃性氣態受質,但神奇甲基產氧菌尚未在純培養物中得到分離、大規模生長或顯示出可產生任何有商業價值的產物。因此,仍
然強烈需要能夠將甲烷轉化為諸如醇或酸之有用產物的微生物及方法。
本發明提供一種重組產醋酸細菌,該細菌消耗包括CH4之受質且將該CH4之至少一部分轉化為產物。本發明進一步提供一種用於製造產物之方法,該方法包括向包括重組產醋酸細菌之培養物提供包括CH4之受質,藉此該細菌將該CH4之至少一部分轉化為產物。特定言之,該細菌可以包括外源性甲烷單加氧酶(MMO)、外源性亞硝酸還原酶(NIR)及外源性氧化氮歧化酶(NOD)中之一或多者。
在一個實施例中,該甲烷單加氧酶、亞硝酸還原酶或氧化氮歧化酶來源於神奇甲基產氧菌。甲烷單加氧酶可為神奇甲基產氧菌顆粒性甲烷單加氧酶A次單元(EC:1.14.13.25)(SEQ ID NO:1)、顆粒性甲烷單加氧酶B次單元(EC:1.14.13.25)(SEQ ID NO:3)、顆粒性甲烷單加氧酶C次單元(EC:1.14.13.25)(SEQ ID NO:5)或顆粒性甲烷單加氧酶C次單元2(EC:1.14.13.25)(SEQ ID NO:7)。甲烷單加氧酶可由以下編碼:神奇甲基產氧菌顆粒性甲烷單加氧酶A次單元(pmoA)(SEQ ID NO:2)、顆粒性甲烷單加氧酶B次單元(pmoB)(SEQ ID NO:4)、顆粒性甲烷單加氧酶C次單元(pmoC)(SEQ ID NO:6)或顆粒性甲烷單加氧酶C次單元2(pmoC2)(SEQ ID NO:8)。亞硝酸還原酶可為神奇甲基產氧菌亞硝酸還原酶細胞色素cd1型(EC:1.7.2.1)(SEQ ID NO:9)。亞硝酸還原酶可由神奇甲基產氧菌亞硝酸還原酶細胞色素cd1型(nirS)(SEQ ID NO:10)編碼。氧化氮歧化酶可為神奇甲基產氧菌細胞色素c氧化酶次單元I(EC:1.7.2.5)(SEQ ID NO:11或13)。氧化氮歧化酶可由神奇甲基產氧菌細胞色素c氧化酶次單元I(norZ)(SEQ ID NO:12或14)編碼。
在一個實施例中,本發明細菌進一步包括外源性甲醇甲基轉移
酶。甲醇甲基轉移酶可以來源於羅氏醋厭氧菌(Acetoanaerobium romashkovii)、卡氏醋酸桿菌(Acetobacterium carbolinicum)、脫鹵醋酸桿菌(Acetobacterium dehalogenans)、巴沙醋酸桿菌(Acetobacterium psammolithicum)、嗜冷醋酸桿菌(Acetobacterium tundrae)、伍氏醋酸桿菌(Acetobacterium woodii)、食甲基丁酸桿菌(Butyribacterium methylotrophicum)、克拉梭菌(Clostridium clariflavum)、甲酸醋酸梭菌(Clostridium formicoaceticum)、大梭菌(Clostridium magnum)、乙氧基苯并沃喃梭菌(Clostridium ethoxybenzovorans)、梅立德脫硫芽孢彎麴菌(Desulfosporosinus meridiei)、聚集真桿菌(Eubacterium aggregans)、黏液真桿菌(Eubacterium limosum)、馬爾德穆爾氏菌(Moorella mulderi)、熱醋酸穆爾氏菌(Moorella thermoacetica)、熱自養穆爾氏菌(Moorella thermoautotrophica)、食酸鼠孢菌(Sporomusa acidovorans)、食氣鼠孢菌(Sporomusa aerivorans)、馬隆尼卡鼠孢菌(Sporomusa malonica)、少食鼠孢菌(Sporomusa paucivorans)、銀醋酸鼠孢菌(Sporomusa silvacetica)、白蟻鼠孢菌(Sporomusa termitida)或嗜熱醋酸菌(Thermoacetogenium phaeum)。甲醇甲基轉移酶可為熱醋酸穆爾氏菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(EC:2.1.1.90)(SEQ ID NO:15)、熱醋酸穆爾氏菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(EC:2.1.1.246)(SEQ ID NO:17或19)、伍氏醋酸桿菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(EC:2.1.1.90)(SEQ ID NO:21)、黏液真桿菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(EC:2.1.1.90)(SEQ ID NO:23)或嗜熱醋酸菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(EC:2.1.1.90)(SEQ ID NO:25)。甲醇甲基轉移酶可由以下各者編碼:熱醋酸穆爾氏菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(mtaB)(SEQ ID NO:16)、熱醋酸穆爾氏菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(mtaA)(SEQ ID NO:18或20)、伍氏醋酸桿菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(mttB18)(SEQ
ID NO:22)、黏液真桿菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(mtaB)(SEQ ID NO:24)或嗜熱醋酸菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(mtaB)(SEQ ID NO:26)。
在一個實施例中,本發明細菌為梭菌屬(Clostridium)或醋酸桿菌屬(Acetobacterium)之成員。舉例而言,本發明細菌可來源於自產乙醇梭菌(Clostridium autoethanogenum)、永達爾梭菌(Clostridium ljungdahlii)、拉氏梭菌(Clostridium ragsdalei)或伍氏醋酸桿菌。在一較佳實施例中,本發明細菌來源於以DSMZ寄存編號DSM23693寄存之自產乙醇梭菌。
除CH4之外,受質亦可進一步包括CO、CO2及H2中之一或多者。在一個實施例中,受質可進一步包括NO2 -及NO3 -中之一或多者。在另一實施例中,CH4為本發明細菌之唯一碳源。CH4可源自例如天然氣、農業、填埋場、廢水或製造生物氣體之植物。
本發明細菌通常產生一或多種產物,諸如乙醇、醋酸鹽、丁醇、丁酸鹽、2,3-丁二醇、乳酸鹽、丁烯、丁二烯、甲基乙基酮(2-丁酮)、乙烯、丙酮、異丙醇、脂質、3-羥基丙酸鹽(3-HP)、異戊二烯、脂肪酸、2-丁醇、1,2-丙二醇及1-丙醇。
圖1為顯示由MMO、NIR及NOD催化之反應之圖。
圖2為顯示將甲烷利用模組併入產醋酸菌之伍德-永達爾路徑(Wood-Ljungdahl pathway)中之圖。
圖3為顯示使用醇脫氫酶(Adh)及醛脫氫酶(Ald)將甲烷轉化為甲酸鹽之圖。
「產醋酸菌」為產生或能夠產生醋酸鹽作為無氧呼吸產物之微生物。通常,產醋酸菌為使用伍德-永達爾路徑作為其能量守恆及合
成乙醯CoA及乙醯CoA衍生產物(諸如醋酸鹽)之主要機制的絕對厭氧細菌(Ragsdale,《生物化學與生物物理學學報(Biochim Biophys Acta)》,1784:1873-1898,2008)。產醋酸菌可使用各種碳源,該碳源包含二氧化碳、一氧化碳、甲酸鹽、甲醇、來自甲氧基化芳族化合物之甲基、糖、乙醛酸鹽、乙醇酸鹽、草酸鹽、乳酸鹽、丙酮酸鹽及短鏈脂肪酸(Ragsdale,《生物化學與生物物理學學報》,1784:1873-1898,2008)。然而,產醋酸菌從未顯示出使用CH4作為碳源。
本發明提供一種重組產醋酸細菌,該細菌消耗包括CH4之受質且將該CH4之至少一部分轉化為產物。另外,本發明提供一種用於製造產物之方法,該方法包括向包括重組產醋酸細菌之培養物提供包括CH4之受質,藉此該細菌將CH4轉化為產物。
特定言之,本發明細菌可以包括甲烷單加氧酶(MMO)、亞硝酸還原酶(NIR)及氧化氮歧化酶(NOD)中之一或多者。特定言之,本發明細菌可以包括外源性MMO、外源性NIR及外源性NOD中之一或多者。在一個實施例中,本發明細菌包括外源性MMO,但不包括外源性NIR或外源性NOD。在另一實施例中,本發明細菌包括外源性MMO、外源性NIR及外源性NOD中之每一者。MMO、NIR及NOD或編碼MMO、NIR及NOD之基因可以來源於任何適合微生物。較佳地,MMO、NIR及NOD或編碼MMO、NIR及NOD之基因來源於神奇甲基產氧菌。
甲烷單加氧酶(MMO)屬於氧化還原酶類且氧化甲烷及其他烷烴中之C-H鍵(EC:1.14.13.25)。特定言之,MMO使用來自NAD(P)H之兩個還原當量分裂O2之O-O鍵,藉此藉由2 e-還原將一個原子還原為水且將第二原子併入受質中,得到甲醇:CH4+O2+NAD(P)H+H+→CH3OH+NAD(P)++H2O。此外,已有描述表明,MMO可將CO氧化為CO2(Bédard,《微生物學評論(Microbiol Rev)》,53:68-84,
1989)。雖然甲烷氧化菌不能利用CO2,但包含一氧化碳營養型產醋酸菌(諸如自產乙醇梭菌)在內的諸多產醋酸菌能夠利用CO2。因此,MMO在產醋酸菌中之表現不僅將允許甲烷利用,而且增加CO氧化且增加CO2利用。MMO可為或可來源於神奇甲基產氧菌顆粒性甲烷單加氧酶A次單元(EC:1.14.13.25)(KEGG DAMO_2450)(SEQ ID NO:1)、顆粒性甲烷單加氧酶B次單元(EC:1.14.13.25)(KEGG DAMO_2448)(SEQ ID NO:3)、顆粒性甲烷單加氧酶C次單元(EC:1.14.13.25)(KEGG DAMO_2451)(SEQ ID NO:5)或顆粒性甲烷單加氧酶C次單元2(EC:1.14.13.25)(KEGG DAMO_2339)(SEQ ID NO:7)。另外,MMO可由包括或來源於以下各者之基因編碼:神奇甲基產氧菌顆粒性甲烷單加氧酶A次單元(pmoA)(KEGG DAMO_2450)(SEQ ID NO:2)、顆粒性甲烷單加氧酶B次單元(pmoB)(KEGG DAMO_2448)(SEQ ID NO:4)、顆粒性甲烷單加氧酶C次單元(pmoC)(KEGG DAMO_2451)(SEQ ID NO:6)或顆粒性甲烷單加氧酶C次單元2(pmoC2)(KEGG DAMO_2339)(SEQ ID NO:8)。
亞硝酸還原酶(NIR)催化亞硝酸根(NO2 -)還原為氧化氮(NO)(EC:1.7.2.1)。NIR可為或可來源於神奇甲基產氧菌亞硝酸還原酶細胞色素cd1型(nirS)(EC:1.7.2.1)(KEGG DAMO_2415)(SEQ ID NO:9)。另外,NIR可由包括或來源於神奇甲基產氧菌亞硝酸還原酶細胞色素cd1型(nirS)(KEGG DAMO_2415)(SEQ ID NO:10)之基因編碼。在某些實施例中,NIR天然(內源性)存在於諸如自產乙醇梭菌(YP_008699106)中。然而,即使在NIR天然存在之實施例中,亦有必要引入更能夠與MMO形成複合物及/或與MMO相互作用之額外外源性NIR。
氧化氮歧化酶(NOD)催化兩分子NO反應得到N2及O2。O2可隨
後即刻用於MMO反應中。NOD可為或可來源於神奇甲基產氧菌細胞色素c氧化酶次單元I(EC:1.7.2.5)(KEGG DAMO_2434或DAMO_2437)(SEQ ID NO:11或13)。另外,NOD可由包括或來源於神奇甲基產氧菌細胞色素c氧化酶次單元I(norZ)(KEGG DAMO_2434或DAMO_2437)(SEQ ID NO:12或14)之基因編碼。在某些實施例中,NOD天然(內源性)存在於諸如自產乙醇梭菌(YP008698458)中。然而,即使在NOD天然存在之實施例中,亦有必要引入更能夠與MMO形成複合物及/或與MMO相互作用之額外外源性NOD。
在某些實施例中,本發明細菌進一步包括外源性甲醇甲基轉移酶。甲醇甲基轉移酶負責將甲醇轉化成亞甲基四氫葉酸之甲基,其隨後可藉由產醋酸微生物之伍德-永達爾路徑之甲基轉移酶、類咕啉蛋白質及CO脫氫酶/乙醯CoA合成酶催化,轉移至乙醯CoA之甲基中。在一些微生物中,甲醇甲基轉移酶天然地(內源性)存在於諸如以下各者中:羅氏醋厭氧菌、卡氏醋酸桿菌、脫鹵醋酸桿菌、巴沙醋酸桿菌、嗜冷醋酸桿菌、伍氏醋酸桿菌、食甲基丁酸桿菌、克拉梭菌、甲酸醋酸梭菌、大梭菌、乙氧基苯并沃喃梭菌、梅立德脫硫芽孢彎麴菌、聚集真桿菌、黏液真桿菌、馬爾德穆爾氏菌、熱醋酸穆爾氏菌、熱自養穆爾氏菌、食酸鼠孢菌、食氣鼠孢菌、馬隆尼卡鼠孢菌、少食鼠孢菌、銀醋酸鼠孢菌、白蟻鼠孢菌及嗜熱醋酸菌。在此等實施例中,本發明細菌不需要包括外源性甲醇甲基轉移酶。然而,諸如自產乙醇梭菌之其他微生物不含原生甲醇甲基轉移酶。在此等微生物中,可能有必要向本發明細菌提供外源性甲醇甲基轉移酶。雖然伍德-永達爾路徑為ATP陰性(亦即,需要ATP進行甲酸鹽活化),但甲醇甲基轉移酶允許規避伍德-永達爾路徑之需要能量之步驟,為微生物提供額外能量進行產物合成。
甲醇甲基轉移酶可來源於任何適合微生物。特定言之,甲醇甲基轉移酶可以來源於羅氏醋厭氧菌、卡氏醋酸桿菌、脫鹵醋酸桿菌、巴沙醋酸桿菌、嗜冷醋酸桿菌、伍氏醋酸桿菌、食甲基丁酸桿菌、克拉梭菌、甲酸醋酸梭菌、大梭菌、乙氧基苯并沃喃梭菌、梅立德脫硫芽孢彎麴菌、聚集真桿菌、黏液真桿菌、馬爾德穆爾氏菌、熱醋酸穆爾氏菌、熱自養穆爾氏菌、食酸鼠孢菌、食氣鼠孢菌、馬隆尼卡鼠孢菌、少食鼠孢菌、銀醋酸鼠孢菌、白蟻鼠孢菌或嗜熱醋酸菌。
在一個實施例中,甲醇甲基轉移酶或編碼甲醇甲基轉移酶之基因來源於熱醋酸穆爾氏菌。甲醇甲基轉移酶可為或可來源於熱醋酸穆爾氏菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(EC:2.1.1.90)(KEGG Moth_1209)(SEQ ID NO:15)或甲醇:類咕啉甲基轉移酶(EC:2.1.1.246)(KEGG Moth_2346或Moth_2100)(SEQ ID NO:17或19)。另外,甲醇甲基轉移酶可由包括或來源於以下各者之基因編碼:熱醋酸穆爾氏菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(mtaB)(KEGG Moth_1209)(SEQ ID NO:16)或甲醇:類咕啉甲基轉移酶(mtaA)(KEGG Moth_2346或Moth_2100)(SEQ ID NO:18或20)。
在一個實施例中,甲醇甲基轉移酶或編碼甲醇甲基轉移酶之基因來源於伍氏醋酸桿菌(Kerby,《細菌學雜誌(J Bacteriol)》,155:1208-1218,1983)、黏液真桿菌(Genthner,《應用與環境微生物學》,42:12-19,1981)或嗜熱醋酸菌。甲醇甲基轉移酶可為或可來源於伍氏醋酸桿菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(EC:2.1.1.90)(KEGG Awo_c22760)(SEQ ID NO:21)、黏液真桿菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(EC:2.1.1.90)(KEGG ELI_2003)(SEQ ID NO:23)或嗜熱醋酸菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(EC:2.1.1.90)(KEGG Tph_c03590)(SEQ ID NO:26)。另外,甲醇甲基轉移酶可由包括或來源於以下各者之基因編碼:伍氏醋酸桿菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(mttB18)(KEGG
Awo_c22760)(SEQ ID NO:22)、黏液真桿菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(mtaB)(KEGG ELI_2003)(SEQ ID NO:24)或嗜熱醋酸菌甲醇:類咕啉甲基轉移酶(mtaB)(KEGG Tph_c03590)(SEQ ID NO:26)。
在某些實施例中,本發明細菌進一步包括外源性醇脫氫酶(Adh)及外源性醛脫氫酶(Ald)中之一者或兩者,該酶可為甲醇轉化為甲酸鹽(圖3)所需(Witthoff,《應用與環境微生物學》,79:6974-6983,2013)。在一些實施例中,本發明細菌可以天然地包括Adh或Ald,使得可以不需要外源性Adh或Ald。舉例而言,永達爾梭菌天然地包括兩種能夠將甲醇轉化為甲酸鹽之Adh酶(Tan,《基礎微生物學雜誌(J Basic Microbiol)》,54:996-1004,2014)。在自產乙醇梭菌中存在此等酶之同源物(KEGG CAETHG_0555及CAETHG_1841)。然而,即使在天然地包括Adh及Ald中之一者或兩者之細菌中,將外源性Adh或Ald併入本發明細菌中仍然可以增強甲酸鹽至甲醇之轉化。
「內源性」係指核酸或蛋白質存在於或表現於作為本發明重組細菌之來源的野生型或親本細菌中。舉例而言,內源性基因為天然地存在於作為本發明重組細菌之來源的野生型或親本細菌中之基因。在一個實施例中,內源性基因之表現可以藉由諸如外源性啟動子之外源性調控元件控制。
「外源性」係指核酸或蛋白質不存在於作為本發明細菌之來源的野生型或親本微生物中。在一個實施例中,外源性基因或酶可來源於異源品系或物種且引入本發明細菌中或在本發明細菌中表現。在另一實施例中,外源性基因或酶可以人工方式或以重組方式形成且引入本發明細菌中或在本發明細菌中表現。外源性核酸可經調適以整合至本發明細菌之基因組中或仍以染色體外狀態存在於本發明細菌中,例如質體中。
「酶活性」廣泛地指酶促活性,包含(但不限於)酶之活性、酶之量或酶催化反應之可利用性。因此,「增加」酶活性包含增加酶之活性、增加酶之量或增加酶催化反應之可利用性。
「突變」係指本發明細菌中之核酸或蛋白質相比於作為本發明細菌之來源的野生型或親本微生物而言已經過修飾。在一個實施例中,突變可為編碼酶之基因的缺失、插入或取代。在另一實施例中,突變可為酶中一或多種胺基酸之缺失、插入或取代。
「密碼子最佳化」係指核酸(諸如基因)突變以使特定品系或物種之核酸的轉譯最佳化或改善。密碼子最佳化可產生較快的轉譯速率或較高的轉譯準確性。在一較佳實施例中,本發明基因針對梭菌屬、尤其自產乙醇梭菌、永達爾梭菌或拉氏梭菌中之表現進行密碼子最佳化。在另一較佳實施例中,本發明基因針對自產乙醇梭菌LZ1561中之表現進行密碼子最佳化,自產乙醇梭菌LZ1561以DSMZ寄存編號DSM23693寄存。
「過度表現」係指本發明細菌中核酸或蛋白質之表現相比於作為本發明細菌之來源的野生型或親本細菌而言有所增加。過度表現可以藉由本領域中已知的任何手段達成,包含修飾基因複本數、基因轉錄率、基因轉譯率或酶降解率。
術語「基因修飾」廣泛地指微生物之基因組或核酸之操控。基因修飾方法包含異源基因表現、基因或啟動子插入或缺失、更改基因表現或不活化、酶工程、定向進化、基於知識之設計、隨機突變誘發方法、基因改組及密碼子最佳化。此類方法描述於例如Sambrook,《分子選殖實驗手冊(Molecular Cloning:A Laboratory Manual)》,冷泉港實驗室出版社(Cold Spring Harbor Laboratory Press),紐約州冷泉港(Cold Spring Harbor,NY),2001;Pleiss,《生物技術新見(Curr Opin Biotechnol)》,22:611-617,2011;Park,《蛋白質工程
與設計(Protein Engineering and Design)》,CRC出版社(CRC Press),2010中。
術語「變異體」包含序列不同於參考核酸及蛋白質之序列(諸如先前技術中所揭示或本文中所例示之參考核酸及蛋白質之序列)的核酸及蛋白質。本發明可以使用變異核酸或蛋白質實施,該變異核酸或蛋白質執行與參考核酸或蛋白質基本上相同的功能。舉例而言,變異蛋白可以執行與參考蛋白質基本上相同的功能或催化與參考蛋白質基本上相同的反應。變異基因可以編碼與參考基因相同或基本上相同的蛋白質。變異啟動子啟動一或多個基因之表現的能力可以與參考啟動子基本上相同。
此類核酸或蛋白質在本文中可以稱為「功能等效變異體」。舉例而言,核酸之功能等效變異體可以包含對偶基因變異體、基因片段、突變基因、多形現象及其類似者。來自其他微生物之同源基因亦為功能等效變異體之實例。此等基因包含諸如丙酮丁醇梭菌(Clostridium acetobutylicum)、拜氏梭菌(Clostridium beijerinckii)或永達爾梭菌之物種中之同源基因,其詳情在諸如Genbank或NCBI之網站上公開可用。功能等效變異體亦包含由於針對特定生物體之密碼子最佳化而引起序列變化之核酸。核酸之功能等效變異體較佳與參考核酸具有至少約70%、約80%、約85%、約90%、約95%、約98%或更大的核酸序列一致性(同源性百分比)。蛋白質之功能等效變異體較佳與參考蛋白質具有至少約70%、約80%、約85%、約90%、約95%、約98%或更大的胺基酸一致性(同源性百分比)。變異核酸或蛋白質之功能等效性可以使用此項技術中已知之任何方法評估。
核酸可以使用此項技術中已知之任何方法傳遞給本發明細菌。舉例而言,核酸可以按裸核酸形式傳遞,或者可以用一或多種試劑(例如,脂質體)調配。核酸可以視情況為DNA、RNA、cDNA或其
組合。在某些實施例中,可以使用限制抑制劑(Murray,《微生物學與分子生物學評論(Microbiol Molec Biol Rev)》,64:412-434,2000)。其他載體可以包含質體、病毒(包含噬菌體)、黏質體及人工染色體。在一較佳實施例中,使用質體將核酸傳遞給本發明細菌。
舉例而言,轉型(包含轉導或轉染)可以藉由電穿孔、超音波處理、聚乙二醇介導之轉型、化學或天然感受態、原生質體轉型、原噬菌體誘導或結合來達成(參見例如《分子選殖實驗手冊》,冷泉港實驗室出版社,紐約州冷泉港,1989)。關於若干一氧化碳營養型產醋酸菌,電穿孔之使用已有過報導,該一氧化碳營養型產醋酸菌包含永達爾梭菌(Köpke,PNAS,107:13087-13092,2010;WO/2012/053905)、自產乙醇梭菌(WO/2012/053905)、醋酸梭菌(Clostridium aceticum)(Schiel-Bengelsdorf,《合成生物學(Synthetic Biol)》,15:2191-2198,2012)及伍氏醋酸桿菌(Strätz,《應用與環境微生物學》,60:1033-1037,1994)。電穿孔之使用亦在梭菌中有過報導,該梭菌包含丙酮丁醇梭菌(Mermelstein,《生物技術(Biotechnol)》,10:190-195,1992)及解纖維梭菌(Clostridium cellulolyticum)(Jennert,《微生物學(Microbiol)》,146:3071-3080,2000)。原噬菌體誘導已關於一氧化碳營養型產醋酸菌得到證明,該一氧化碳營養型產醋酸菌包含糞味梭菌(Clostridium scatologenes)(Parthasarathy,《糞味梭菌ATCC 25775中之基因修飾系統對於突變體產生之研究(Development of a Genetic Modification System in Clostridium scatologenes ATCC 25775 for Generation of Mutants)》,碩士項目(Masters Project),西肯塔基大學(Western Kentucky University),2010),且結合已針對諸多梭菌進行描述,該梭菌包含艱難梭菌(Clostridium difficile)(Herbert,《歐洲微生物學會聯合會微生物學快報(FEMS Microbiol Lett)》,229:103-110,2003)及丙酮
丁醇梭菌(Williams,《普通微生物學雜誌(J Gen Microbiol)》,136:819-826,1990)。在具有活性限制酶系統之某些實施例中,可能有必要在將核酸引入本發明細菌中之前使核酸甲基化。
「微生物」為微觀生物體,尤其為細菌、古細菌、病毒或真菌。本發明微生物通常為細菌。如本文所用,「微生物」之引述應理解為涵蓋「細菌」。
術語「重組」指示,核酸、蛋白質或微生物為基因修飾或重組之產物。一般而言,術語「重組」係指核酸、蛋白質或微生物含有來源於多個來源之遺傳物質或由來源於多個來源之遺傳物質編碼,諸如兩種或更多種不同品系或物種的微生物。如本文所用,術語「重組」亦可用於描述微生物包括突變核酸或蛋白質,包含突變形式之內源性核酸或蛋白質。
「親本微生物」為用於產生本發明細菌之微生物。親本微生物可為天然存在之微生物(亦即,野生型微生物)或先前已經過修飾之微生物(亦即,突變或重組微生物)。本發明細菌可經修飾以表現或過度表現一或多種在親本微生物中不表現或不過度表現之酶。類似地,本發明細菌可經修飾以含有一或多個親本微生物所不含之基因。在一個實施例中,親本生物體為自產乙醇梭菌、永達爾梭菌或拉氏梭菌。在一較佳實施例中,親本微生物為自產乙醇梭菌LZ1561,其在2010年6月7日,根據布達佩斯條約(Budapest Treaty)之條款及所授予之寄存編號DSM23693,於2010年6月7日寄存在位於Inhoffenstraβ 7B,D-38124 Braunschwieg,Germany之德國微生物菌種保藏中心(Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH;DSMZ)。
術語「來源於」指示,核酸、蛋白質或微生物經不同的(例如,親本或野生型)核酸、蛋白質或微生物修飾或調適,以便產生新
的核酸、蛋白質或微生物。此類修飾或調適通常包含核酸或基因之插入、缺失、突變或取代。一般而言,本發明細菌來源於親本微生物。在一個實施例中,本發明細菌來源於自產乙醇梭菌、永達爾梭菌或拉氏梭菌。在一較佳實施例中,本發明細菌來源於以DSMZ寄存編號DSM23693寄存之自產乙醇梭菌LZ1561。
「產醋酸菌」為產生或能夠產生醋酸鹽作為無氧呼吸產物之微生物。通常,產醋酸菌為使用伍德-永達爾路徑作為其能量守恆及合成乙醯COA及乙醯CoA衍生產物(諸如醋酸鹽)之主要機制的絕對厭氧細菌(Ragsdale,《生物化學與生物物理學學報》,1784:1873-1898,2008)。通常,本發明細菌為產醋酸菌。本發明細菌可以選自或來源於梭菌屬、莫蠅屬(Morella)、羧基嗜熱菌屬(Carboxydothermus)、產醋菌屬(Acetogenium)、醋酸桿菌屬、醋厭氧菌屬、丁酸桿菌屬(Butyribaceterium)或消化鏈球菌屬(Peptostreptococcus)。在一較佳實施例中,本發明細菌為梭菌屬之成員。在一更佳實施例中,本發明細菌來源於自產乙醇梭菌、永達爾梭菌、拉氏梭菌或伍氏醋酸桿菌。在一甚至更佳實施例中,本發明細菌來源於以DSMZ寄存編號DSM23693寄存之自產乙醇梭菌。
「一氧化碳營養菌(carboxydotroph)」為能夠耐受高濃度一氧化碳(CO)之微生物。在一個實施例中,本發明細菌為一氧化碳營養菌。
本發明細菌可來源於一氧化碳營養型梭菌簇,包括物種自產乙醇梭菌、永達爾梭菌、拉氏梭菌及相關分離株,包含(但不限於)菌株自產乙醇梭菌JAI-1T(DSM10061)(Abrini,《微生物學文獻集(Arch Microbiol)》,161:345-351,1994)、自產乙醇梭菌LBS1560(DSM19630)(WO 2009/064200)、自產乙醇梭菌LZ1561(DSM23693)、永達爾梭菌PETCT(DSM13528=ATCC 55383)
(Tanner,《國際系統細菌學雜誌(Int J Syst Bacteriol)》,43:232-236,1993)、永達爾梭菌ERI-2(ATCC 55380)(美國專利5,593,886)、永達爾梭菌C-01(ATCC 55988)(美國專利6,368,819)、永達爾梭菌O-52(ATCC 55989)(美國專利6,368,819)、拉氏梭菌P11T(ATCC BAA-622)(WO 2008/028055);相關分離株,諸如「科氏梭菌(Clostridium coskatii)」(美國公開案2011/0229947);或突變菌株,諸如永達爾梭菌OTA-1(Tirado-Acevedo,《使用永達爾梭菌自合成氣製造生物乙醇(Production of Bioethanol from Synthesis Gas Using Clostridium ljungdahlii)》,博士論文(PhD thesis),北卡羅萊納州立大學(North Carolina State University),2010)。
此等菌株在梭菌rRNA簇I內形成子簇,且其16S rRNA基因超過99%一致,具有約30%的類似低GC含量。然而,DNA-DNA重締合及DNA指紋識別實驗顯示,此等菌株屬於不同物種(WO 2008/028055)。此簇之菌株由共同特徵定義,具有類似的基因型及表現型,且其均共享相同的能量守恆及醱酵代謝模式。此外,此簇之菌株缺乏細胞色素且經由Rnf複合物保存能量。此簇之所有物種具有類似的形態及大小(對數生長細胞介於0.5-0.7×3-5μm之間),嗜中溫(最佳生長溫度介於30-37℃之間),且絕對厭氧(Abrini,《微生物學文獻集》,161:345-351,1994;Tanner,《國際系統細菌學雜誌》,43:232-236,1993;及WO 2008/028055)。此外,其均共享相同的主要系統發育特點,諸如相同pH範圍(pH 4-7.5,且最佳初始pH為5.5-6),基於含CO氣體之自營生長強,生長速率類似,且代謝型態類似,以乙醇及醋酸作為主要醱酵最終產物,且在某些條件下形成少量2,3-丁二醇及乳酸(Abrini,《微生物學文獻集》,161:345-351,1994;Köpke,《生物技術新見》,22:320-325,2011;Tanner,《國際系統細菌學雜誌》,43:232-236,1993;及WO 2008/028055)。在所
有三個物種下同樣觀察到吲哚產生。
然而,種間區別在於各種糖(例如鼠李糖、阿拉伯糖)、酸(例如葡糖酸鹽、檸檬酸鹽)、胺基酸(例如精胺酸、組胺酸)或其他受質(例如甜菜鹼、丁醇)之受質利用。此外,發現一些物種對某些維生素(例如硫胺素、生物素)為營養缺陷型的,而其他物種則不是。已發現,負責氣體攝入之伍德-永達爾路徑基因之組織及數目在所有物種中相同,儘管核及胺基酸序列存在差異(Köpke,《生物技術新見》,22:320-325,2011)。此外,在一系列此等微生物中已顯示羧酸還原為其對應醇(Perez,《生物技術與生物工程(Biotechnol Bioeng)》,110:1066-1077,2012)。因此,此等特點並非一種微生物(如自產乙醇梭菌或永達爾梭菌)所特有,事實上為一氧化碳營養型合成乙醇之梭菌的通用特點,且可以預見,此等菌株之作用機制類似,但在效能方面可以存在差異。
術語「受質」係指本發明細菌之碳源及/或能量來源。通常,受質為包括甲烷(CH4)之氣態受質。本發明細菌通常將受質中之至少一部分CH4轉化為產物。在一個實施例中,CH4為本發明細菌之唯一碳源。CH4可源自例如天然氣、農業、填埋場、廢水或製造生物氣體之植物。
然而,受質時常亦包括一氧化碳(CO)。受質可以包括以體積計佔主要比例之CO,諸如約20%至99%、20%至70%、30%至60%或40%至55% CO。在特定實施例中,受質包括以體積計約25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%或60% CO。
雖然受質未必含有任何氫氣(H2),但H2之存在不應對產物形成不利且可以提高整體功效。舉例而言,在特定實施例中,受質可以包括近似比為2:1、1:1或1:2之H2:CO。在一個實施例中,受質包括以體積計小於約30%、20%、15%或10% H2。在其他實施例中,受質包括
低濃度H2,例如小於5%、小於4%、小於3%、小於2%或小於1% H2。在其他實施例中,受質基本上不含H2。受質亦可含有二氧化碳(CO2),例如以體積計約1%至80%或1%至30% CO2。在一個實施例中,受質包括以體積計小於約20% CO2。在其他實施例中,受質包括以體積計小於約15%、10%或5% CO2。在另一實施例中,受質基本上不含CO2。
在一個實施例中,受質包括CH4;及CO、CO2及H2中之一或多者。現有方法目前不能並行利用CH4及CO,儘管在許多氣流中均存在這兩種氣體。然而,本發明提供一種使用包括CH4及CO之受質的方法及能夠消耗此類受質之微生物,該微生物例如產醋酸細菌,其消耗至少包括CH4及CO之受質且將CH4及CO之至少一部分轉化為產物。受質包括PSA尾氣,自涉及氫氣製造及純化之製程產生的氣流。PSA尾氣可以包括CH4及CO。舉例而言,PSA尾氣可以包括約12% CO、25% H2、46% CO2及17% CH4。受質可以包括蒸汽甲烷重整尾氣,其包括CH4及CO。舉例而言,蒸汽甲烷重整尾氣可以包括約66% H2、9% CO2、22% CO及4% CH4。
受質可為以工業製程之副產物形式獲得或自一些其他來源獲得的廢氣,該其他來源諸如汽車廢氣或生物質氣化。在某些實施例中,工業製程選自由以下各者組成之群:含鐵金屬產品製造(諸如軋鋼廠製造)、非鐵產品製造、石油精煉方法、煤炭氣化、電力生產、碳黑生產、氨生產、甲醇生產及焦炭製造。在此等實施例中,可以使用任何便利方法將含CO氣體在其排放至大氣中之前自工業製程捕獲。CO可為合成氣之組分,合成氣亦即包括一氧化碳及氫氣之氣體。自工業製程產生之CO通常燃燒產生CO2且因此本發明在降低CO2溫室氣體排放方面具有特定實用性。受質之組成可對反應效率及/或成本具有顯著影響。舉例而言,氧氣(O2)之存在可降低厭氧醱酵方法之效率。
視受質之組成而定,可能需要處理、洗滌或過濾受質以移除任何不合需要之雜質,諸如毒物、不合需要之組分或粉塵粒子,及/或增加所要組分之濃度。
受質亦可為個別受質之摻合物。舉例而言,受質可以藉由摻合包括CH4之氣態受質與包括CO、CO2及H2中之一或多者之氣態受質獲得。
另外,受質可以包括氧化氮(NO)、亞硝酸根(NO2 -)及硝酸根(NO3 -)中之一或多者。NO為NOD所需受質,NOD催化兩分子NO反應得到N2及O2。O2隨後可以即刻用於藉由MMO進行甲烷氧化。氧化氮本身可以藉由NIR來源於NO2 -,NIR催化NO2 -還原為NO。NO2 -可以藉由硝酸還原酶來源於NO3 -,硝酸還原酶催化NO3 -還原為NO2 -。
儘管受質通常為氣態,但受質亦可以替代形式提供。舉例而言,受質可以使用微泡分散液產生劑溶解於經含CO氣體飽和之液體中(Hensirisak,《應用生物化學與生物技術(Appl Biochem Biotechnol)》,101:211-227,2002)。另外舉例而言,受質可吸附至固體載體上。此外,受質之某些組分(例如,CH4、CO、CO2及/或H2)可以氣態形式提供,而受質之其他組分(例如,NO2 -及/或硝酸根NO3 -)可以液體形式提供。
本發明細菌可經培養以產生一或多種產物。通常,在生物反應器中進行培養。術語「生物反應器」包含培養/醱酵裝置,其由一或多個容器、塔或管道配置組成,諸如連續攪拌槽反應器(CSTR)、固定細胞反應器(ICR)、滴流床反應器(TBR)、氣泡柱、氣升式醱酵罐、靜態混合器或適合於氣-液接觸之其他容器或其他裝置。在一些實施例中,生物反應器可以包括第一生長反應器及第二培養/醱酵反應器。可將受質提供給此等反應器中之一者或兩者。如本文所用,術語「培養」及「醱酵」可互換使用。此等術語涵蓋培養/醱酵過程之
生長階段及產物生物合成階段。
通常在含有足以允許細菌生長之營養物、維生素及/或礦物質之水性培養基中維持培養。較佳地,水性培養基為基本厭氧微生物生長培養基。適合培養基為此項技術中所已知且描述於例如美國專利5,173,429、美國專利5,593,886及WO 2002/008438中。
培養/醱酵有利地應該在適用於產生目標產物之條件下進行。應考慮到的反應條件包含壓力(或CO之分壓)、溫度、氣體流速、液體流速、培養基pH、培養基氧化還原電勢、攪拌速率(若使用連續攪拌槽反應器)、接種物含量、確保液相中之CO不會變成限制因素的最大氣體受質濃度及避免產物抑制的最大產物濃度。特定言之,可以控制含CO受質之引入速率來確保液相中之CO之濃度不會變成限制因素,因為在CO限制條件下,培養物會消耗產物。
在高壓下操作生物反應器允許增加自氣相至液相之氣體質量轉移速率。因此,在高於大氣壓之壓力下執行培養/醱酵通常較佳。此外,因為指定氣體轉化率在某種程度上為受質滯留時間之函數,且滯留時間指示生物反應器之所需體積,所以使用加壓系統可以大大減小所需生物反應器之體積,且因此降低培養/醱酵設備之資金成本。根據美國專利5,593,886中之實例,反應器體積可以與反應器操作壓力之增加呈線性比例減小。換言之,在10個大氣壓之壓力下操作的生物反應器所需之體積僅為在1個大氣壓之壓力下操作的生物反應器之體積的十分之一。另外,WO 2002/008438描述在30psig及75psig之壓力下進行氣體至乙醇醱酵,分別得到150公克/公升/天及369公克/公升/天的乙醇產率。相比之下,發現使用類似培養基及輸入氣體組成在大氣壓下進行的醱酵每天每公升產生少10倍與20倍之間的乙醇。
本發明細菌可以產生或經工程改造產生各種產物。舉例而言,產物可以包括以下各者中之一或多者:乙醇(WO 2007/117157)、醋
酸鹽(WO 2007/117157)、丁醇(WO 2008/115080及WO 2012/053905)、丁酸鹽(WO 2008/115080)、2,3-丁二醇(WO 2009/151342)、乳酸鹽(WO 2011/112103)、丁烯(WO 2012/024522)、丁二烯(WO 2012/024522)、甲基乙基酮(2-丁酮)(WO 2012/024522及WO 2013/185123)、乙烯(WO 2012/026833)、丙酮(WO 2012/115527)、異丙醇(WO 2012/115527)、脂質(WO 2013/036147)、3-羥基丙酸鹽(3-HP)(WO 2013/180581)、異戊二烯(WO 2013/180584)、脂肪酸(WO 2013/191567)、2-丁醇(WO 2013/185123)、1,2-丙二醇(WO 2014/0369152)及1-丙醇(WO 2014/0369152)。
本文所引用之所有參考文獻(包含公開案、專利申請案及專利)以引用的方式併入本文中,該引用程度就如同各參考文獻個別且特定指示以引用的方式併入且全文闡述於本文中一般。在本說明書中對任何先前技術之提及並非且不應視為承認先前技術形成任何國家所致力領域之公共常識的一部分。
除非本文另外指示或明顯與上下文相矛盾,否則在描述本發明之情況下(尤其在以下申請專利範圍之情況下),使用術語「一(a)」及「一個(an)」及「該」以及類似指示物應理解為涵蓋單數及複數。除非另外指示,否則術語「包括(comprising)」、「具有(having)」、「包含(including)」及「含有(containing)」應理解為開放式術語(亦即,意謂「包含(但不限於)(including,but not limited to)」)。除非本文中另外指示,否則本文中數值範圍之敍述僅意欲充當個別提及屬於所述範圍之各獨立值之速記方法,且各獨立值併入本說明書中,如同在本文中個別敍述一般。除非本文另外指示或明顯與上下文相矛盾,否則本文所述之所有方法可以任何適合順序進行。除非另外主張,否則使用本文所提供之任何及所有實例或例示性
語言(例如,「諸如」)僅意欲更好地闡明本發明而不對本發明之範疇造成限制。本說明書中之語言均不應理解為指明任何未主張之要素對於實踐本發明而言必不可少。
本發明之較佳實施例描述於本文中,包含本發明人已知之實施本發明的最佳模式。在閱讀前文描述之後,彼等較佳實施例之變化對於一般熟習此項技術者可變得顯而易見。本發明人期望熟習此項技術者適當時採用此類變化,且本發明人意欲以不同於本文中特定描述之方式來實踐本發明。因此,若適用法律允許,則本發明包含隨附於本文之申請專利範圍中所敍述之標的物的所有修改及等效物。此外,除非本文另外指示或另外明顯與上下文相矛盾,否則本發明涵蓋上述要素以其所有可能的變化形式之任何組合。
<110> 紐西蘭商藍瑟科技紐西蘭有限公司
<120> 用於將甲烷轉化為產物之重組產醋酸細菌
<130> LT115TW1
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<213> 嗜熱醋酸菌
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Claims (20)
- 一種重組產醋酸細菌,該細菌消耗包括CH4之受質且將該CH4之至少一部分轉化為產物。
- 如請求項1之細菌,其中該細菌包括外源性甲烷單加氧酶(MMO)、外源性亞硝酸還原酶(NIR)及外源性氧化氮歧化酶(NOD)中之一或多者。
- 如請求項2之細菌,其中該甲烷單加氧酶、亞硝酸還原酶或氧化氮歧化酶來源於神奇甲基產氧菌(Methylomirabilis oxyfera)。
- 如請求項2之細菌,其中該細菌進一步包括外源性甲醇甲基轉移酶。
- 如請求項1之細菌,其中該細菌為梭菌屬(Clostridium)或醋酸桿菌屬(Acetobacterium)之成員。
- 如請求項1之細菌,其中該細菌來源於自產乙醇梭菌(Clostridium autoethanogenum)、永達爾梭菌(Clostridium ljungdahlii)、拉氏梭菌(Clostridium ragsdalei)或伍氏醋酸桿菌(Acetobacterium woodii)。
- 如請求項1之細菌,其中該受質進一步包括CO、CO2及H2中之一或多者。
- 如請求項1之細菌,其中該受質進一步包括NO2 -及NO3 -中之一或多者。
- 如請求項1之細菌,其中CH4為該細菌之唯一碳源。
- 如請求項1之細菌,其中該產物包括以下中之一或多者:乙醇、醋酸鹽、丁醇、丁酸鹽、2,3-丁二醇、乳酸鹽、丁烯、丁二烯、甲基乙基酮(2-丁酮)、乙烯、丙酮、異丙醇、脂質、3-羥基丙酸鹽(3-HP)、異戊二烯、脂肪酸、2-丁醇、1,2-丙二醇及1-丙 醇。
- 一種用於製造產物之方法,該方法包括向包括如請求項1之細菌的培養物提供包括CH4之受質,藉此該細菌將該CH4之至少一部分轉化為產物。
- 如請求項11之方法,其中該細菌包括外源性甲烷單加氧酶(MMO)、外源性亞硝酸還原酶(NIR)及外源性氧化氮歧化酶(NOD)中之一或多者。
- 如請求項12之方法,其中該甲烷單加氧酶、亞硝酸還原酶或氧化氮歧化酶來源於神奇甲基產氧菌。
- 如請求項12之方法,其中該細菌進一步包括甲醇甲基轉移酶。
- 如請求項11之方法,其中該細菌為梭菌屬或醋酸桿菌屬之成員。
- 如請求項11之方法,其中該細菌來源於自產乙醇梭菌、永達爾梭菌、拉氏梭菌或伍氏醋酸桿菌。
- 如請求項11之方法,其中該受質進一步包括CO、CO2及H2中之一或多者。
- 如請求項11之方法,其中該受質進一步包括NO2 -及NO3 -中之一或多者。
- 如請求項11之方法,其中CH4為該細菌之唯一碳源。
- 如請求項11之方法,其中該產物包括以下中之一或多者:乙醇、醋酸鹽、丁醇、丁酸鹽、2,3-丁二醇、乳酸鹽、丁烯、丁二烯、甲基乙基酮(2-丁酮)、乙烯、丙酮、異丙醇、脂質、3-羥基丙酸鹽(3-HP)、異戊二烯、脂肪酸、2-丁醇、1,2-丙二醇及1-丙醇。
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