TR201904291A2 - TETRAHYMENA THERMOPHILA YAPAY KROMOZOMU 2 (TtAC2) VE REKOMBİNANT PROTEİN ÜRETİMİNDE KULLANIMI - Google Patents

TETRAHYMENA THERMOPHILA YAPAY KROMOZOMU 2 (TtAC2) VE REKOMBİNANT PROTEİN ÜRETİMİNDE KULLANIMI Download PDF

Info

Publication number
TR201904291A2
TR201904291A2 TR2019/04291A TR201904291A TR201904291A2 TR 201904291 A2 TR201904291 A2 TR 201904291A2 TR 2019/04291 A TR2019/04291 A TR 2019/04291A TR 201904291 A TR201904291 A TR 201904291A TR 201904291 A2 TR201904291 A2 TR 201904291A2
Authority
TR
Turkey
Prior art keywords
artificial chromosome
sequence
tetrahymena
nts
tetrahymena thermophila
Prior art date
Application number
TR2019/04291A
Other languages
English (en)
Inventor
Çaliseki̇ Mehmet
Fulya Üstüntanir Dede Ayça
Arslanyolu Muhi̇tti̇n
Original Assignee
Anadolu Ueniversitesi
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Anadolu Ueniversitesi filed Critical Anadolu Ueniversitesi
Priority to TR2019/04291A priority Critical patent/TR201904291A2/tr
Priority to PCT/TR2019/051165 priority patent/WO2020197518A1/en
Publication of TR201904291A2 publication Critical patent/TR201904291A2/tr

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/44Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from protozoa
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Mevcut buluş, SEQ ID NO: 4 ile en az %80 homolog bir nükleotid dizisine sahip olan ve SEQ ID NO: 1’e sahip modifiye edilmiş bir HSP70.2 promotoru, SEQ ID NO: 2’ye sahip 3´NTS dizisi ve SEQ ID NO: 3’e sahip “C3 orijin içeren 5´NTS, rDNA genleri ve 3´NTS” dizisi ihtiva eden Tetrahymena thermophila yapay kromozomu (TtAC2) ile ilgilidir. Tetrahymena thermophila makroçekirdek rDNA minikromozomunun biyotaklit edilmesi ile oluşturulmuş Tetrahymena thermophila yapay kromozomu ayrıca bir telomer dizisi, Neo4 kaseti ve TtsfGFP belirteç gen kaseti ihtiva etmektedir. Mevcut buluş kapsamında ayrıca, söz konusu Tetrahymena thermophila yapay kromozomunun elde edilmesi için bir yöntem sağlanmaktadır. Mevcut buluş diğer bir yönüyle Tetrahymena thermophila yapay kromozomun bir üretim sistemi/platformu olarak kullanılmasıyla homolog ve/veya heterolog genomik DNA, RNA ve/veya proteinler ve/veya türevlerini rekombinant olarak üretmek üzere bir yöntem sunmaktadır. Mevcut buluş diğer bir yönüyle Tetrahymena thermophila yapay kromozomunun homolog ve/veya heterolog genomik DNA, RNA ve/veya proteinleri ve/veya türevlerini rekombinant olarak üretmek amacıyla bir üretim sistemi/platformu olarak kullanımını sağlamaktadır.

Description

Tarifname TETRAHYMENA THERMOPHILA YAPAY KROMOZOMU 2 (TtACZ) VE REKOMBINANT PROTEIN ÜRETIMINDE KULLANIMI Bulusun Ilgili Oldugu Alan Mevcut bulus, SEQ ID NO: 4 ile en az %80 homolog olan bir nükleotid dizisine sahip olan ve SEQ SEQ ID NO: 3'e sahip "C3 orijin içeren 5'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS” dizisi ihtiva eden Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomu (TtACZ) ile ilgilidir. Tetrahymena thermophila makroçekirdek rDNA minikromozomunun biyotaklit edilmesi ile olusturulmus Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomu ayrica bir telomer dizisi, Neo4 kaseti ve TtsfGFP belirteç gen kaseti ihtiva etmektedir. Daha spesifik olarak mevcut bulus, içerdigi telomer dizisi sayesinde dogrusal veya dairesel formlarda kullanilabilen, bir kolunda “C3 orijin içeren S'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS" dizisi, diger kolunda ise 3'NTS dizisi, Neo4 kaseti ve bir belirteç gen kaseti ihtiva eden, yapisindaki modifiye edilmis HSP70.2 promotoru sayesinde isi soku indüklenmesiyle rekombinant protein üretiminde kullanilabilen bir Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomu ile ilgilidir.
Teknigin Bilinen Durumu Biyotaklit [Biyomimetikj, bir problem çözme veya var olan bir sistemin gelistirilmesi amaciyla dogadaki model ve sistemlerin taklit edilmesi anlamina gelmektedir. Bu bilim dali sayesinde, makro veya nano düzeydeki biyolojik çözümlerden esinlenen pek çok teknoloji gelistirilmistir.
Ekspresyon vektörlerinin biyotaklit ilkeleri ile olusturulmasiyla, transformasyon verimliligi ve hücre içi kararliligi yüksek vektörler elde edilmesi mümkün olmaktadir. Hücrelerin kendilerine ait yabani tip yapilari ile biyotaklit ürünlerini ayirt edemeyecegi benzerlikte vektörler olusturulmasi, moleküler biyoloji alanindaki biyotaklit uygulamalarinin amacidir.
Tetrahymena thermophi'la silli ökaryotik tek hücreli bir organizmadir ve en iyi karakterize edilmis tek hücreli ökaryotlardan biridir. Tetrahymena thermophi'la iki çekirdek tasir: transkripsiyonel olarak inaktif diploid kalitsal üremeyi saglayan mikroçekirdek (MIK) ve transkripsiyonel olarak aktif poliploid somatik makroçekirdek (MAK). Tetrahymena thermophila'nin biyolojik ve biyoteknolojik çalismalarda rekombinant protein ekspresyonu için alternatif bir model organizma olarak kullanimi uzun süredir bilinmektedir. Organizma, ilgili alanlarda sagladigi avantajlar sebebiyle odak noktasi olmustur. Bu avantajlar arasinda, hücre bölünme süresinin kisaligi [optimal kosullar altinda üreme süresi 1.5-3 saat araligindadir), üretilen proteinlere post- translasyonel modifikasyonlar ekleme yetenegi ve laboratuvarda uygun maliyetli ve kolay bir sekilde yetistirilebilmesi sayilabilir (AP. Turkewi'tz, E. Orias, G. Kapler, 2002. Functionalgenomics: the coming of age for Tetrahymena thermophila, Trends Genel: 18 35-40; Weide, T., Herrmann, L., Bockau, U., Niebur, N., Aldag, I., Laroy, W., Contreras, R., Tiedtke, A. ve Hartmann, M. W., 2006.
Secretion offuncti'onal human enzymes by Tetrahymena thermophila. BMC Bi'otechnol, 6: 19). Bu sebeple, Tetrahymena thermophi'lahin rekombinant protein üretimi amaciyla verimli ve etkili bir sekilde kullanilmasi büyük önem tasimaktadir. Organizmaya ilgilenilen bir geni veya genleri transforme etmek için mikroenjeksiyon, elektroporasyon ve biyolistik silah dahil olmak üzere pek çok yöntem kullanilmaktadir [Cassidy-Hanley, D., et. al. 1 997. Germli'ne and somatlc transformation Tetrahymena hücrelerini karistirmali tank (batch), beslemeli-karistirmali tank [fed-batch] ve sürekli beslemeli (continuous) biyoreaktörler ile yaklasik 2x107 hücre/ml hücre yogunlugu, 80 g/L kuru hücre agirligi ile 1000 L tank hacmi büyütme (scale-up] degerlerine ulasilarak üretmek mümkündür. Tipik bir reaktör süresi, inokülasyondan ürün toplamaya [harvest] kadar yaklasik 3-4 gün almaktadir.
Tetrahymena ribozomal RNA genleri [rDNA] en iyi karakterize edilmis ökaryotik genlerden biridir (Yu, G. L., Hasson, M., & Blackburn, E. H., 1988. Ci'rcular ribosomal DNA plasmids transform Tetrahymena thermophi'la by homologous recombi'nati'on with endogenous macronuclear ribosomal DNA. Proceedi'ngs ofthe NationalAcademy ofSci'ences ofthe United States ofAmeri'ca, 85(14}, 5151 - ). rDNA genleri, Tetrahymena orijin bölgesini tasiyan 5'NTS, subtelomerik bölgeleri içeren 3'NTS ve telomer dizisi ile birlikte palindromik olarak iki adet seklinde Tetrahymena'nin minikromozom adi verilen 21 kbç büyüklügündeki kromozomlarini (rDNA kromozomu] olustururlar. Bu rDNA kromozomlari, organizmanin makroçekirdeginde ekstrakromozomal olarak yaklasik 9000 kopyaya ulasirlar. Tetrahymena rDNA genleri ve orijin dizisi içeren vektörler, sahip olduklari avantajlardan dolayi organizmaya istenilen genlerin transformasyonu isleminde araci olarak siklikla kullanilmaktadirlar [Blomberg P, Randolph C, Yaa CH, Yao MC., 1997. Regulatorysequences for the amplifi'cati'on and replicati'on of the ribosomal DNA minichromosome in Tetrahymena extrachromosomal rDNA molecule from the ci'li'ate Tetrahymena thermophi'la strain BI868VII. kaseti, antibiyotik direnç geni, orijin ve telomer gibi elementlerin hepsi ayni anda bulunmamakta olup, kullanimda olan bu vektörler etkin transformasyon ve sonrasinda uzun süreli muhafazaya uygun bir kombinasyonla olusturulmamislardir.
Klonlama vektörü bir baska DNA parçasini bir konakçi organizmaya tasimak için araç olarak kullanilabilen bir DNA parçasi olarak tanimlanabilir. Klonlama vektörleri bir virüsten, prokaryotik bakteri hücrelerinden ya da daha yüksek bir organizma hücresinden elde edilen DNA dizilerinin birlestirilmesi ile olusturulabilir. Klonlama vektörleri, bir nükleik asit dizisinin konakçi organizmaya transfer edilmesi ve konakçi içerisinde DNA dizisinin miktarsal olarak arttirilmasi için kullanilan araci DNA dizileridir. Ideal bir klonlama vektörünün sahip oldugu özellikler su sekilde siralanabilir: konakçi organizmada rekombinasyon ya da mutasyon yoluyla istenmeyen degisikliklere yol açabilecek DNA elemanlari içermemesi, organizmaya transferinden sonra seleksiyona yardimci bir gen bulundurmasi, bir DNA parçasinin klonlanabilecegi bölge içerecek sekilde tasarlanmis olmasi, kontrol edilebilir ve kararli kopya sayisi saglayan bir orijin bölgesi tasimasi, vb.
Yapay kromozomlar hem klonlama vektörü hem ekspresyon vektörü olarak kullanilirlar. Plazmid veya lambda-faj türevi vektörlerin tasima kapasitesinden daha büyük DNA parçalarini tasiyabilirler. Diger klonlama vektörleri gibi yapay kromozomlar da, vektörün ve vektör ürününün konakçi hücredeki replikasyonu ve stabilitesi için gerekli olan nükleik asit elemanlarini içerir. Bu kisimlar hücre bölünmesinden sonra yavru hücrelerdeki vektörün kopya sayisinin sürekliligini saglarlar. Yapay kromozomlar, birkaç genin koordineli olarak ekspresyonunda veya büyük genler tarafindan kodlanan proteinlerin kararli, kontrollü ve yüksek düzeyde üretiminde ideal olarak kullanilan vektörlerdir. US 8,288,610 B2 patent belgesi yapay kromozomlar içeren bitki hücre hatlarinin hazirlanmasina iliskindir. Ilgili patent basvurusunda ayrica yapay kromozomlara heterolog nükleik asit eklenmesi, yapay kromozomlarin seçili hücrelere yönlendirilmesi ve yapay kromozomlarin izole edilmesi konu edilmistir. Bahsedilen yapay kromozomlar bitki hücrelerine yönlendirilmistir.
Antibiyotik direnç kasetleri klonlama ile vektör yapilandirmasinda kullanilan önemli araçlardir.
Antibiyotik direnci, pozitif transformantlarin kolayca ve etkili bir sekilde seçilmesini saglar.
Vektörü içeren transformant hücreler seçilen antibiyotik varliginda büyüyebilir, bu da transformasyonun basarili oldugunu ve vektörün hücre içinde islevini yerine getirdigini kanitlar.
Tetrahymena thermophila'da rekombinant protein üretimi yaygin olarak kullanilmaktadir.
Fonksiyonel insan enzimleri dahil olmak üzere farkli türlerden çok sayida protein, Tetrahymena'nin ekspresyon sistemi olarak kullanilmasiyla üretilmistir (Weide T., Herrmann L., Bockau U., Niebur N., Aldag I., Laroy W., Contreras R., Tiedtke A., Hartmann M. W, 2006. Secreti'on of functional human enzymes by Tetrahymena thermophila. BMC Biotechnol. 6:19). Bu nedenle, organizmaya özgü çesitli vektörler ve promotorlar gelistirilmistir. Bununla birlikte, mevcut tekniklerin ve araçlarin, yukarida tarif edilen avantajlari yaninda dezavantajlari da vardir. Ilk olarak, kullanilan vektörler çogunlukla daireseldir. Kullanimi ve transformasyonu kolay olmakla birlikte, dairesel vektörler transforme edilebilir nükleik asit baz çifti sayisini sinirlar. Bu da, büyük gen dizilerinin kodladigi proteinlerin vektörler tarafindan üretimini zorlastirir. Ayrica, metabolik yolaklar isbirligi içinde çalisan birkaç genin ekspresyonunu gerektirir. Bu nedenle, daha büyük gen dizileri tasiyabilen ifade sistemleri gereklidir. Mevcut vektörler hakkinda çözülmesi gereken bir baska problem, transformasyon verimliliginin yüksek düzeyde olmamasidir. Kopyasal verimlilik ve kararlilik, özellikle proteinin büyük miktarlarda üretilmesi gerekiyorsa, bir vektörün sahip olmasi gereken önemli özelliklerindendir.
Tetrahymena thermophi'la'da rekombinant protein üretimi için çalisilan promotorlar arasinda en yaygin kullanilan promotorlardan biri MTTl promotorudur. MTTl, Tetrahymena thermophila'da heterolog veya homolog genlerin yüksek seviyeli ekspresyonunu saglamak için kullanilan indüklenebilir-baskilanabilir bir promotordur. Tetrahymena thermophi'la'nin Cd-indüklenebilir metallotionin genine (MTTI) aittir. Promotorun aktivasyonu ve deaktivasyonu, kadmiyumun eklenmesi veya ortamdan kaldirilmasi ile gerçeklestirilir. Protein üretimi için etkili bir promotor olmasina ragmen, Cd agir bir metal oldugundan bu promotor iyi üretim uygulamalari için uygun degildir. Agir metaller zehirlidir ve hücre büyümesini engeller. Ayrica, kontamine olmus besiyerinin imha edilmesi zaman ve kaynak gerektirmektedir, çünkü agir metaller çevre ve insan için de bir tehdit olusturmaktadir. Konakçi organizma, insan ve çevre üzerinde daha az olumsuz etkiye sahip farkli bir promotorun kullanimi faydali olacaktir. yanit proteinleridir. Bu proteinleri kodlayan genler, isi ile oldugu gibi diger stres faktörleri ya da dis etkenler ile de uyarilabilir. Bu da hücrelerin, yüksek sicaklik gibi bir stres durumunda, yüksek seviyelerde HSP'ler üreterek tepki verdigi anlamina gelir. HSP'lerin düzenlenmesi kapsamli olarak çalisilmistir ve HSP promotorlarinin güçlü ve etkili promotorlar oldugu görülmüstür.
Ayrica, üretim sürecinde kimyasal maddelere ihtiyaç duymadan sicaklik degisiklikleri ile basitçe aktive edilip devre disi birakilabilirler. Bu nedenle, isi soku promotorlari, rekombinant çalismalar için uygundur ve yüksek seviyelerde kontrollü heterolog gen ekspresyonu için kullanilabilir. WO HSP90 promotorunun kullanimi hakkindadir. Ilgili promotorun silli Tetrahymena thermophi'la'da promotor dizisi GFP belirteç geninin ekspresyonunda kullanilmistir. Bu patent basvurusunda uzunlugundaki HSP70.2 promotor dizisi ve genin mRNA'sinin 5'UTR bölgesini, l-lSP'7Ü.2 geninin ATG baslangiç kodonundan itibaren protein kodlayan 21 bç uzunlugundaki kismini ve 6 bç uzunlugundaki BamHI restriksiyon enziminin klonlama bölgesini içermektedir.
Yukarida belirtilen hususlar göz önüne alindiginda, Tetrahymena thermophila'da rekombinant protein ekspresyonunda bir iyilestirme gerekli görülmektedir. Tetrahymena thermophila organizmasinin organizmal fabrika olarak kullaniminin yayginlastirilmasi, özellikle de DNA/RNA/protein kaynakli ilaç-enzim-hormon üretim çalismalarinda protein ekspresyon platformu olusturmak için vektör sistemi gelistirilmesi bulusun amaçlari arasindadir.
Sekillerin Kisa Açiklamasi Sekil 1, TtACZ yapay kromozomunu olusturan elemanlari ve dizileri, bu elemanlarin alindigi vektörleri ve TtACZ yapay kromozomunun dairesel formunu göstermektedir.
Sekil 2, A. TtAC2 dairesel ve dogrusal yapilari, B. TtsfGFP geninin expresyonunun SDS-PAGE görüntüsü, C. TtsfGFP geninin expresyonunun western blot görüntüsü, 1: ThermoFisher Scientific PageRulerTM Plus Prestained Protein Ladder, 10 ila belirteç DNA olarak kullanilmistir ve içerisinde ayrica pozitif kontrol olarak 6xHis-TtsfGFP [~27 kDa) bulunmaktadir, 2: Par+ TtACZ dairesel yapay kromozomu içeren hücre toplam proteini, 3: Par+ TtAC2 dogrusal yapay kromozomu içeren hücre toplam proteini, 4: Par- TtACZ dairesel yapay kromozomu içeren hücre toplam proteini, 5: Par- TtACZ dogrusal yapay kromozomu içeren hücre toplam proteini, D.
TtACZ yapay kromozomuna sahip hücrelerde seleksiyon sonrasi 5. ayda TtsfGFP geninin ekpresyonunun floresan mikroskop analizi ve E. TtACZ yapay kromozomuna sahip hücrelerde seleksiyon sonrasi 24. ayda gerçeklestirilen TtsfGFP geninin ekpresyonunun floresan mikroskop analizini göstermektedir.
Bulusun Ayrintili Açiklamasi Bu ayrintili açiklamada, mevcut bulusa konu olan Tetrahymena thermophii'a yapay kromozomunun elde edilme asamalari ve rekombinant protein üretimi için kullanimi, konunun daha iyi anlasilmasi için tarif edilmektedir.
Bahsedilen yapay kromozom, tek hücreli bir ökaryotik organizma olan Tetrahymena thermophila ve Tetrahymenidae familyasi üyesi diger siliat konak hücreler için tasarlanmistir. Bulusun amaci, hücre içi kararliligini uzun süre koruyan bir yapay kromozom olusturarak rekombinant proteinler üretmek ve Tetrahymena thermophfla'mn ekspresyon sistemi olarak kullaniminda verimliligini arttirmaktir. Mevcut bulus olan bu yapay kromozom [TtACZ] Tetrahymena thermophi'la rDNA minikromozomunun biyotaklitinin yapilmasiyla gelistirilmistir.
Biyoloji alaninda Tetrahymena thermophila iyi çalisilmis bir organizmadir. Kisa üreme süresiyle yüksek hücre yogunluklarina ulasabilme, laboratuvarda düsük maliyetle ve kolay sekilde yetistirilebilme ve üretilen proteinlerde post-translasyonel modifikasyonlari gerçeklestirebilme, bu organizmanin yaygin olarak kullanilmasinin nedenlerinden bazilaridir. Bu son özellik, özellikle ökaryotik kökenli proteinlerin üretiminde gereklidir, çünkü post-translasyonel modifikasyonlar ökaryotlarda protein fonksiyonunda önemli rol oynarlar. Bu nedenle, ökaryotik bir organizma olan Tetrahymena thermophi'la, rekombinant protein üretiminde prokaryotik konakçi organizmalara kiyasla bazi avantajlar saglar.
Yapay kromozomlar; orijin dizisi, telomer dizisi, seleksiyon için gerekli antibiyotik direnç kaseti ve indüklenebilir bir promotor gibi gerekli elemanlarin laboratuvar kosullarinda çogaltilmasi ve bir araya getirilmesiyle olusturulur. Bu "vektör iskeleti'ne" daha sonra ilgili protein veya enzimin gen dizisi eklenir. Mevcut bulusta, iskelet elemanlarinin kaynagi olarak kullanilan vektörler pUC19 [Yanisch-Perron C, Vieiraj, Messing f., 1985. Improved M13 phage cloning vectors and host (Machizuki, K., 2008. High effici'ency transformation of Tetrahymena using a coden-optimized neomyci'n resistance gene. Gene, 425{1), 79-83] olarak tercih edilmistir.
Mevcut bulusun yapay kromozomu bir yönüyle, SEQ ID NO: 1'e sahip modifiye edilmis bir HSP70.2 promotoru, SEQ ID NO: Z'ye sahip bir 3'NTS dizisi ve SEQ [D NO: 3'e sahip "C3 orijin içeren 5'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS” dizisi ihtiva eder.
Bulusun spesifik bir HSP70.2 promotoru, TtsfGFP kaseti içinde yer almakta olup SEQ ID NO: 1'de verilen nükleotid dizisine sahiptir. Bu dizide, rekombinant proteinlerin N-ucuna istemsiz eklenen yapay 11 amino asitlik HSP7Ü protein dizisini kodlayan gen bölgesinin ATG kodonunun G [guanin] bazinin T [timin) bazi ile mutasyon yoluyla degistirilmesi ile kodon ATT dönüstürülmüs ve böylece 11 amino asidi kodlayici dizi kodlayamaz forma modifiye edilmistir. Buna ek olarak, HSP70.2 promotor dizisinin 3' ucundaki Pmel enzim kesim dizisinden önce bir A (adenin) bazi eklenmistir.
Tetrahymena thermophi'la'da kullanilmak üzere birçok vektör ve promotor gelistirilmistir.
Tetmhymena thermophi'l'a'nin Cd-indüklenebilir metallotionin genine ait MTT1 promotoru, rekombinant protein üretiminde yaygin olarak kullanilmaktadir. Bununla birlikte, Cd agir bir metaldir ve Cd ile indüksiyon hem organizmaya hem de çevreye zarar verir. Bu nedenle Cd- indüklenebilir promotorlar, iyi üretim uygulamalari açisindan elverisli degildir. Diger taraftan, isi soku promotorlari, isi veya diger stres kosullari ile indüklenirler. Tüm ökaryotik hücrelerde bulunan isi soku genlerine aittirler. Transkripsiyonun indüksiyonu ve sonlandirilmasi, büyüme sicakliginin arttirilmasi veya azaltilmasi ile gerçeklestirilebilir. Dolayisiyla, mevcut bulusun spesifik modifiye edilmis HSP70.2 promotoru, iyi üretim uygulamalarina uygun bir sekilde büyüme sicakliginin arttirilmasi ile indüklenebilmesi sebebiyle önemli ve avantajlidir.
Mevcut bulusa ait Tetrahymena thermophila için üretilen yapay kromozom bir 3'NTS dizisi (SEQ SB210 susu genomik DNA'sindan spesifik primerlerle çogaltilabilir ve yapay kromozomu elde etmek için bir vektör iskeleti dizisine eklenebilir. Bulusun spesifik 3'NTS dizisi, Tetrahymena thermophila'da rDNA minikromozomu subtelomerik dizilerini içerir ve telomerler ile telomere yakin genlerin kararli bir sekilde çalismasini saglar. Böylece yapay kromozomun hücre içerisinde kalma süresinin arttirilmasina yardimci olur. Buna ek olarak 3'NTS dizisi, rekombinant protein üretimi için gerekli gen kasetleri ile telomer dizileri arasinda yer alarak, genlerin transkripsiyonunda meydana gelebilecek olasi telomer baskisini durdurur.
Mevcut bulusa ait Tetrahymena thermophila yapay kromozomu ayrica, “C3 orijin içeren 5'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS" dizisi [SEQ ID NO: 3] ihtiva eder. Mevcut bulusun spesifik rDNA lokusu ve C3 ori dizisi Tetrahymena thermophi'la C3.368.1 susu rDNA minikromozomundan spesifik primerlerle çogaltilarak, mevcut bulusun vektör iskeletine eklenebilir. TtACZ yapay kromozomunun bir kolunu olusturan rDNA lokusu ve C3 ori dizisi, Tetrahymena thermophi'la rDNA minikromozomunun biyotaklit edilmesi ve transformasyon sonrasi uzun süreli biyolojik muhafazasi açisindan önemlidir.
Mevcut bulusun bir yönünde, söz konusu vektör iskeleti pUC19 vektörüdür. Bulusun spesifik vektör iskeleti, klonlama bölgesindeki restriksiyon enzimi çesitliligi, vektör boyutunun küçük olmasi (2.6 kbç] ve orta seviye kopyali orijine (100+) sahip olmasi dolayisi ile avantajlidir.
Mevcut bulusun bir açidan, Tetrahymena thermophi'i'a için üretilen yapay kromozomda ayrica bir telomer dizisi ihtiva eder. Mevcut bulus baglaminda, bahsedilen telomer dizisi pPXV-GFP vektöründen kesilebilir, çogaltilabilir ve yapay kromozomu elde etmek için bir vektör iskeleti dizisine eklenebilir. Bulusa ait telomer kaseti, TtACZ yapay kromozomunun kullanimina dairesel ya da dogrusal bir biçimde izin verdigi için önemli ve avantajlidir. Dogrusal vektör kullanimi, vektöre eklenebilen sinirli dizi büyüklügü kisitinin kalkmasi avantajini sunar. Dolayisiyla yapay kromozomun dogrusal formu, daha fazla gen kaseti eklendiginde de vektörün kullanilabilir olmasini saglamaktadir. Bu yönüyle mevcut bulus, nispeten büyük protein(leri) kodlayan gen(ler]i ve/veya birkaç genin koordineli çalismasini gerektiren metabolik yolaklari arastirmak için faydalidir. Mevcut bulusun telomer kaset dizisi, dairesel vektörü dogrusal vektöre döndürmek için Sfil enzimi ile iki ucundan kesilen ve salinan bir parça dizi içermektedir.
Mevcut bulusa ait Tetrahymeno thermophi'la yapay kromozomu ayrica bir Neo4 neomisin direnç kaseti ihtiva eder. Mevcut bulusun spesifik Neo4 kaseti, pNe04 vektöründen spesifik primerlerle çogaltilarak mevcut bulusun vektör iskeleti pUC19'a eklenebilir. MTT1 promotoru yoluyla CdCIz ile indüklenebilen Neo4 kaseti, içerdigi Tetrahymena thermophilaýa kodon optimize edilmis neomisin direnç kaseti sayesinde pozitif transformantlarin artan antibiyotik baskilamasi ve azalan kadmiyum indüklemesi ile etkili bir sekilde seçilimine imkan tanimasi açisindan elverislidir.
Mevcut bulusa ait Tetrahymena thermophi'lo yapay kromozomu ayrica bir belirteç gen kaseti ihtiva eder. Elde edilen yapay kromozomun, konakçi organizmada rekombinant protein üretimini yönlendirebildigini göstermek için, TtsfGFP-öxHis geni içeren ekspresyon kaseti pVTtsfGFP vektöründen alinmis ve bazi dizisel degisiklikler yapilarak bir belirteç gen olarak TtACZ'ye yerlestirilmistir (Yilmaz, G., & Arslonyolu, M. 2015. Emcient expression of codon-adopted ojjînity tagged super folder green fluorescent protein for synchronous protein Iocali'zati'on and offini'g/ puri'fication studies in Tetrahymeno thermophila. BMC biotechnology, 15(1), 22). Kasette yer alan modifiye edilmis HSP7Ü.2 promotorunun [SEQ ID NO: 1] 151 ile indüklenebilmesi ve bu sayede belirteç genin üretiminin kimyasallara gerek kalmadan gerçeklesmesini saglamasi elverisli bir üretime imkan saglamaktadir.
Mevcut bulusa ait Tetrohymena thermophi'la yapay kromozomu (TtACZ) tarafindan TtsfGFP-6XHis proteininin üretilebilmesi, kromozom yapilandirmasinin ve transformasyonunun basarili oldugunu ve TtACZ'nin hücrede etkili bir sekilde çalistigini kanitlamaktadir. sfGFP proteini floresan isigi yayar, bu özellik sayesinde izlenmesi kolaylasir. Bulusta kullanilan belirteç genin yerine, homolog ve/veya heterolog genomik DNA, RNA ve/veya proteinler ve/veya türevlerini kodlayan bir DNA dizisi eklenebilir. Bu sayede mevcut bulus ait yapay kromozom, Tetrahymena thermophila'da istenilen herhangi bir dizinin rekombinant üretimi için kullanilabilir.
Böylelikle mevcut bulusun yapay kromozomu, bir kolunda “C3 orijin içeren 5'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS” dizisi (SEQ lD NO: 3] ve diger kolunda ise 3'NTS dizisi (SEQ ID NO: 2), Neo4 kaseti ve TtsfGFP belirteç gen kaseti bulunacak sekilde yapilandirilir. Her iki kolda bulunan gen kas etlerinin transkripsiyon yönü merkezden telomerlere dogru olacak sekilde yapilandirilir, bu sayede DNA replikasyonu ve transkripsiyonda görev alan komplekslerin ortaya çikabilecek olasi karsilasmasi, biyotaklit ile azaltilmis olur.
Mevcut bulusun tercih edilen yapilanmasinda, bulus kapsaminda yapilandirilan Tetrohymena thermophila yapay kromozomu [TtACZ] SEQ ID NO: 4'e en az %80 homolog olan bir nükleotid dizisine sahiptir.
Mevcut bulusa ait Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomu ihtiva ettigi telomer kaseti sayesinde, istege bagli olarak dairesel veya dogrusal formda bulunabilmektedir. Mevcut bulusun spesifik telomer kaset dizisi, dairesel kromozomun dogrusal kromozoma dönüstürülmesi için Sfil enzimi ile iki ucundan kesilip salinabilen bir parça dizi ihtiva etmektedir. Dogrusal formdaki yapay kromozomun uçlarinda yer alan telomer dizilerinin muhafazasi, 3'NTS dizileri ile saglanmaktadir.
Mevcut bulus bir baska yönü ile, yukarida tanimlanan Tetrahymena thermophila yapay kromozomunu (TtACZ) üretmek için asagidaki adimlari içeren bir yöntem saglamaktadir: - Tetrahymena thermophila yapay kromozomu için vektör iskeletinin sunulmasi, - iskelet vektöre modifiye edilmis bir HSP, bir telomer dizisi, bir 3'NTS dizisi [SEQ ID NO: 2), bir Neo4 kaseti ve "C3 orijin içeren 5'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS" dizisinin (SEQ ID NO: 3) rDNA minikromozomu biyotaklit edilerek yerlestirilmesi, ve - yapay kromozomun elde edilmesi.
Mevcut bulusa ait yöntemin tercih edilen uygulamasinda, söz konusu yöntem vektör iskelete ayrica TtsfGFP belirteç gen kaseti veya homolog ve/veya heterolog genomik DNA, RNA ve/veya proteinler ve/veya türevlerini kodlayan bir DNA dizisinin yerlestirilmesi adimini ihtiva etmektedir.
Mevcut bulusa ait yöntemin bir uygulamasinda, söz konusu vektör iskeleti pUC19'dur, böylece yöntem sonucunda elde edilen Tetrahymena thermophila yapay kromozomu SEQ ID NO: 4 ile en az %80 homolog olan bir nükleotid dizisine sahip olmaktadir.
Mevcut bulus diger bir yönüyle, Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomunun bir üretim sistemi/platformu olarak kullanilmasiyla homolog ve/veya heterolog genomik DNA, RNA ve/veya proteinleri ve/veya türevlerini rekombinant olarak üretmek için bir yöntem sunmaktadir. Söz konusu yöntem asagidaki adimlari ihtiva etmektedir: - makroçekirdegin rDNA minikromozomunda C3 orijin alleli disindaki çekinik bir allel içeren bir Tetrahymena thermophi'la veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücrenin sunulmasi, - makroçekirdek rDNA minikromozomunda baskin C3 orijini ihtiva eden dairesel ve/veya dogrusal Tetrahymena thermophil'a yapay kromozomunun [TtAC2) C3 orijin alleli disindaki çekinik bir allel içeren bir Tetrahymena thermophi'la veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücrenin makroçekirdegîne ekstrakromozomal olarak entegre edilmesi, ve - Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomunda tasinan DNA, RNA ve/veya proteinleri kodlayan bir homolog ve/veya heterolog dizinin kodladigi DNA, RNA ve/veya proteinin ve/veya türevlerinin Tetrahymena thermophi'la veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücre tarafindan üretilmesi.
Tetrahymena hücrelerine yeni olusturulan vektörlerin transferinde genellikle mikroenjeksiyon, elektroporasyon veya biyolistik silah yöntemleri tercih edilmektedir. Mevcut bulusa ait yöntemin tercih edilen uygulamalarinda, yapay koromozomun transferi için biyolistik silah yöntemi kullanilmaktadir. Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomu biyolistik silah yöntemi kullanilarak Tetrahymena thermophi'la veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücrenin makroçekirdegine yönlendirilebilir.
Mevcut bulusa ait yöntemin tercih edilen uygulamalarinda, söz konusu Tetrahymena thermophila veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücre kültürize edilmis vejetatif bir siliat hücresi veya konjugasyon yapan iki siliat hücresi olarak bulunmaktadir.
Mevcut bulus bir baska yönüyle, bulusa ait Tetrahymena thermophila yapay kromozomunun bir üretim sistemi/platformu olarak kullanilmasiyla homolog ve/veya heterolog genomik DNA, RNA ve/veya proteinleri ve/veya türevlerini rekombinant olarak üretme yöntemi sonucunda elde edilmis, en az bir homolog ve/veya heterolog dizi tasiyan TtACZ'nin transformasyonu ile olusturulmus transformant Tetrahymenidae familyasi üyesi siliat konak hücre sunmaktadir.
Mevcut bulus baska bir yönüyle, Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomunun homolog ve/veya heterolog genomik DNA, RNA ve/veya proteinleri ve/veya türevlerini rekombinant olarak üretmek amaciyla bir üretim sistemi/platformu olarak kullanimini saglamaktadir.
Dolayisiyla mevcut bulus modifiye edilmis bir HSP7Ü.2 promotoru (SEQ ID NO: 1), bir 3'NTS dizisi (SEQ ID NO: 2) ve "C3 orijin içeren 5'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS" dizisinin (SEQ ID NO: 3) pUC19 vektör iskeletine yerlestirilmesi ile olusturulmustur. Mevcut bulus kapsaminda vektör iskeletine ayrica bir telomer dizisi, Neo4 neomisin direnç kaseti ve TtsfGFP belirteç gen kaseti yerlestirilmektedir. Bu yapisiyla mevcut bulus, Tetrahymena thermophi'la'da veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücrede rekombinant protein üretimi için kullanilabilecek yeni bir yapay kromozom vektörüdür. Söz konusu Tetrahymena thermophila yapay kromozomu, SEQ ID NO: 4» ile en az %80 homoloji gösterir.
A) Tetrahymena Thermophi'la Yapay Kromozomunun (TtACZ) Yapilandirilmasi Bulusa konu olan TtACZ yapay kromozomunun yapilandirilmasinda, E. coli' klonlamasinda altyapi vektörü olarak pUC19 vektörü kullanilmistir (Yani'sch-Perron, C., Vlei'ra, j., & Messi'ng, ]. 1985. restriksiyon enzimi çesitliligi, vektör boyutunun küçük olmasi [2.6 kbç) ve orta seviye kopyali orijine (100+) sahip olmasidir. Biyotaklit tasarimina göre pUC19 vektörüne sirasiyla 3'NTS bölgesi (1.8 kbç), Neo4 kaseti [2 kbç), TtsfGFP kaseti [2 kbç], telomer bölgesi [2.4 kbç] ve C3 orijini içeren rDNA gen lokusu (10.6 kbç] klonlanmistir [Sekil 1). Bu adimlar sonucunda TtACZ yapay kromozomu elde edilmistir. Tetrahymena thermopliila yapay kromozomu TtACZ'yi olusturan elementler, dizilisleri ve yapay kromozomun büyüklügü Tetrahymena thermophlla makroçekirdek rDNA kromozomuna biyotaklit ile benzetilmistir [Sekil 1).
Yabani tip Tetrahymena rDNA kromozomu sentromer içermez, benzer sekilde TtAC2 yapay kromozomu da sentromer içermemektedir. Yapay kromozomda transkripsiyon yönü merkezden telomerlere dogru olacak sekilde yapilandirilmistir. Böylelikle bir kolunda rDNA lokusu diger kolunda ise belirteç gen (TtsfGFP) ve Ne04 kasetleri olacak sekilde bir yapay kromozom elde edilmistir. Dairesel formda kullanilabilen TtACZ yapay kromozomu, telomer bölgeleri arasinda yer alan Sfil kesim bölgesinden kesilerek dogrusal formda da kullanilabilmektedir. TtACZ yapay kromozomunun dairesel ve dogrusal formlari ile dairesel formun dogrusal forma dönüsümü Sekil 2-A'da gösterilmektedir. 1. 3'NTS Elementinin (3'n0n-transcribed spacer) Eklenmesi Tetrahymena thermophi'la makroçekirdek rDNA kromozomlarinin her iki ucunda, telomer ve rDNA gen dizisi arasinda kalan bölgede birer k0pya olarak 3'NTS bölgesi bulunmaktadir. 3'NTS bölgesi telomer iliskili DNA dizisi içerir. Bu telomer alti bölgelerin görevlerinden biri DNA lokusunu içeren kromozomlarin uç bölgelerinin replikasyonunu ve muhafazasini saglamaktir (Challoner, P. U., Amin, A. A., Pearlman, R. E., & Blackburn, E. H. 1985. Conservea' arrangements of repeated DNA sequences i'n nontranscri'bed spacers of ci'li'ate ribosomal RNA genes: evi'a'ence for transkripsiyon ve translasyon sonlandirici tekrarli DNA dizilerinden olusan elementleri içermeleridir. Son olarak ise, bu bölgeler telomer bölgesinde nükleozomlarin olusumundan sorumlu olup kromozomun DNA-protein kompleksine paketlenmesine yardimci olurlar (Budarß M. L., Blackburn, E. H. 1986. Chromati'n structure of the telomeri'c region and 3'-nontranscrlbed 1.8 kbç uzunlugundaki 3'NTS dizisini Polimeraz Zincir Reaksiyonu [PZR] ile üretmek için kaynak DNA olarak Tetrahymena thermophil'a SB210 irkindan saflastirilmis genomik DNA kullanilmistir.
Ilgili ileri ve geri primerler kullanilarak 3'NTS bölgesi üretilmîstir. Üretilen 1.8 kbç uzunlugundaki 3'NTS dizisinin uçlari ile pUC19 vektörü, Kpnl (Thermo, #EROSZ 1] ve Baml-lll [Thermo, vektörü ve 3 'NTS dizisi %0,6'11k agaroz jelde görüntülenmis ve 365 nm dalga boyundaki UV kabini altinda jelden kesilmistir. Daha sonra ilgili dizi ve vektör, jelden saflastirma kiti (Thermo, Genelet Gel Extraction Kit, #K0691] kullanilarak saflastirilmistir. Yapiskan uçlu 3'NTS dizisi ve pUC19 vektörü T4 DNA ligaz (NEB, MOZOZS) enzimi ile 16 saat boyunca 16°C'de inkübe edilerek birlestirilmis ve E. coli'XLIBlue kompotent hücrelerine 42°C'lik isi soku ile transforme edilmistir. 37°C'de 16 saat inkübasyon sonrasi transformant kompotent hücrelerden master tabak (amfisilin-LB agar içeren] yapilmis, seçilmis kolonilerin PZR ile taramasi yapilmistir. PZR ürünleri eklenmis LB sivi besiyerine, seçilen pozitif koloniler ekilerek inkübasyona alinmis ve 16 saat sonrasinda Thermo GeneJET plasmid miniprep kit (#KOSOZ] ile plazmidler saflastirilmistir. Bu islemler sonucunda pUC. pUC19-3'NTS vektörünün basarili olarak üretildigi, KpnI-BamHl restriksiyon enzimleriyle yapilan çiftli kesim parmak izi analizi ve Sall [Thermo, #ER0642) enzimleri ile tekli kesim yapilarak dogrulanmistir.
Bundan sonraki klonlama asamalari da benzer sekilde gerçeklestirilmistir. 2. Ne04 Gen Kasetinin Eklenmesi Neo4 kaseti, agir metal kadmiyum ile tetiklenebilen MTTl promotoru ve BTUZ sonlandirma dizisi içeren paramomisine dirençli Neo4 geni içermektedir. Bu kaset, yapay kromozom yapisina vektör içeren pozitif Tetrahymena thermophila hücrelerinin seçilebilmesi için eklenmektedir.
PZR reaksiyonunda kaynak DNA olarak pNeo4 (Mochi'zuki, K., 2008. High effi'ci'ency transformati'on of Tetmhymena using a codon-opti'mi'zed neomyci'n resistance gene. Gene, 425(1), 79-83] vektörü kullanilmis ve PZR reaksiyonu ile 2 kbç uzunlugundaki DNA çogaltilmistir. Söz konusu 2 kbç uzunlugundaki DNA bandi agaroz jelden saflastirilmistir. pUC19-3'NTS [TtAC2.1] vektörü ve Neo4 gen kaseti, Sall [Thermo, #ER0642] ve BamHII (Thermo, #EROÜSZJ restriksiyon enzimleri kullanilarak yapiskan uçlu hale getirilmis ve ligasyon ile birlestirilmistir. Elde edilen vektör E. coII' XL1Blue kompotent hücrelerine 42°C'lik isi soku ile transforme edilmistir. Koloni PZR ile pozitif koloniler saptanmistir. Plazmid izolasyonu sonrasinda, çiftli Sall (Thermo, #ER0642] ve BamHIl vektörünün basarili bir sekilde olusturuldugu dogrulanmistir [Sekil 1). 3. TtsfGFP Gen Kasetinin Eklenmesi Bulus kapsaminda GFP gen kaseti, Tetrahymena thermophila yapay kromozomu TtACZlnin kullanilmasiyla rekombinant protein, terapötik ilaç veya enzimlerin üretilebilirligini göstermek amaciyla, belirteç gen olarak kullanilmistir. Rekombinant protein üretiminde promotor tetikleyicisi olarak toksik maddelerin veya agir metallerin kullanimi “Iyi Üretim Uygulamalari” (IÜU veya GMP] kurallarina uygun bulunmamaktadir. Bu yüzden GFP gen kasetinde, fiziksel olarak 151 soku ile tetiklenebilen ve iyi üretim uygulamalarina uygun olan modifiye HSP70.2 promotoru kullanilmistir. Ayrica transkripsiyon ve translasyon durdurucu BTU2 terminasyon dizisi de bu kasette yer almaktadir. HSP70.2 promotoru [Heat Shock Promotor) (Barchetta, 5., La Terza, A., Ballarini, P., Pucciarelli, S., & Miceli, C. 2008. Combination oftwo regulatory elements in the Tetrahymena thermophila HSP70-1 gene controls heat Shock activation. Eukaijiotic cell, 7[2), robust inducible-repressible promotergreatly facilitates gene knockouts, conditional expression, and overexpression ofhomologous and heterologous genes in Tetrahymena thermophila. Proceedings of kaset sentetik olarak Shinegene Firmasi'na ürettirilmistir.
Sentetik olarak ürettirilen ve pUC57 vektörüne klonlanmis olan HSP70.2 promotoru ile BTU2 dizileri PZR reaksiyonuyla çogaltilmistir. Bu reaksiyonla; HSP70.2 promotor dizisinin 3' ucuna Ascl restriksiyon dizisi, BTU2 terminasyon dizisi öncesine ise Pmel restriksiyon dizisi eklenmistir.
Yapay kromozom tasarimina TtsfGFP gen kasetinin eklenebilmesi için, pVTtsfGFP vektöründen TtsfGFP geni Ascl ve Pmel restriksiyon dizisi içeren primerlerle çogaltilmistir (Yilmaz, G., & Arslanyolu, M. 2015. Ejýîcient expression of codon-adapted affinity tagged super folder green fluorescent protein for synchronous protein locolization and aßinity purification studies in Tetrahymena thermophila. BMC biotechnology, 150], 22). TtsfGFP geni l-lSP7Ü.2 promotoru ile BTU2 dizileri arasina örtüsen PZR yöntemi ile yerlestirilmis ve birlestirme sirasinda ayrica TtsfGFP'nin C' ucuna 6xHis afinite takisini kodlayici dizi de eklenmistir. Örtüsen PZR teknigi ile birlestirilen Cfr9l-HSP70.2/TtsfGFP-6xl-lis/BTU-BamHl gen ekspresyon kaseti içeren vektörün DNA'sinin E. coli'ye transformasyonu gerçeklestirilmistir. Pozitif E. coli transformantlarindan saflastirilan vektör DNA'si ve uçlari yapiskan hale getirilmis TtsfGFP-6XHis kaseti agaroz jelden saflastirilan pUC19-3'NTS-Neo4 (TtAC2.2] vektörü ile hazirlanmis olan TtsfGFP-ßxl-lis kaseti ligasyon ile birlestirilmis, E. coli'ye transforme edilmistir. Koloni PZR islemleri ile taranip bulunan pozitif klonlardan izole edilen plazmid, BamHl ve Cfr91 enzimleriyle çift enzim kesimine, EcoRl ve Hindlll enzimleriyle ise tek enzim kesimlerine alinmis ve TtsfGFP-öxHis gen kasetinin varligi teyit edilmistir. Yeni olusturulan bu vektör pUC olarak isimlendirilmistir [Sekil 1).
Tasarlanan yapay kromozomun hem dairesel hem de dogrusal olarak kullanimi planlanmaktadir.
Dogrusal formda kromozomun uçlarinin korunmasi için biyotaklite uygun olarak telomerlerin de kromozomun uçlarina eklenmesi gerekmektedir. Telomer dizileri genel olarak dogrusal kromozom uçlarinin kararliligmin korunmasi, uçlarda DNA replikasyonun tamamlanmasi, mayoz ve karyokinesis sirasinda nükleer tasimanin gerçeklestirilmesi gibi roller üstlenmektedirler (Kirk, K. E., Blackburn, E. H. 1995. An unusual sequence arrangernent in the telomeres of the germ-line micronucleus in Tetrahymena thermophila. Genes & development, 9(1), 59-71).
Tetrahymena thermophila telomer kaseti, pPXV-GFP vektörünün [Hauser, K., Haynes, W. 1., Kung, C., Plattner, H., 8: Kissmehl, R. [2000). Expression of the green fluorescent protein in Paramecium tetraurelia. European journal of cell biology, 79(2), 144-149) kaynak DNA olarak kullanildigi, Apal ve XhoI restriksiyon enzimlerini uygun konumlara ekleyen primerlerin kullanildigi PZR reaksiyonu ile 2.4 kbç uzunlugundaki ürün olarak üretilmistir. Satlastirilmis pUC19-3'NTS-Neo4- TtsfGFP [TtAC2.3) vektörü ve telomer kaset dizisi, Apal (Thermo, #ER1411] ve Xhol (Thermo, islemleri sonrasinda olusan pUCl9-3'NTS-Neo4-TtsfGFP-Telomer (TtAC2.4] vektörünün telomer kaset dizisi içerdigi, Xhol ve Apal çiftli enzim kesimi ve SfiI tekli enzim kesimiyle dogrulanmistir . Tetrahymena thermophila "C3 orijin içeren S'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS" Dizisinin Eklenmesi Yabani tip 21 kbç uzunlugundaki Tetrahymena thermophila makroçekirdek rDNA kromozomu, orijin bölgesi (5'NTS) [Reischmann, K. P., Zhang, Z., & Kapler, G. M. 1999. Long range cooperative interactions regulate the initiation of replication in the Tetrahymena thermophila rDNA dizisini palindromik oryantasyonda 2 kopya olarak içermekte olup uçlarda telomer ile korunmaktadir. Tetrahymena thermophila rDNA orijin dizisini içeren 5'NTS allelleri farklilasmistir ve B tipi allel 42 bazlik delesyonundan dolayi C3 tipi allele kiyasla dezavantajli durumdadir. Allellerin rDNA replikasyon üstünlügü veya baskinlik siralamasi C3>B>C3 rmml veya C3 rmm4 seklindedir [Yaeger, P. C., Orias, E., Shaiu, W. L., Larson, D. D., & Blackburn, E. H. 1989.
The replication advantage ofa free linear rRNA gene is restored by somatic recombination in Tetrahymena thermophila. Molecular and cellular hiology, 9(2), 452-460). Palindromik iki kopya olarak bulunan bu rDNA lokusunun [5'NTS-rDNA genleri-B'NTS) sadece bir kopyasinin bulunmasi ile olusturulan dairesel vektörlerden elde edilen transformant hücrelerin bu vektörün kopyalarini makroçekirdek genomu içinde kararli olarak muhafaza ettigi gösterilmistir (Yu, G. L., ribosomal' DNA plosmi'd vector. Proceedi'ngs of the National Academy of Sciences, 86(21), 8487- 8491). Ayrica, delesyon olmaksizin bütün palindromik rDNA gen lokusunu içeren pMND-1 vektörü, 9.000 kopya sayisina ulasmistir (Blomberg, P., Randolph, C., Yaa, C. H., & Yao, M. C. 1997.
Regulatory sequencesfor the amplificati'on and repli'ccition ofthe ribosomal DNA minichromosome Bu literatür bilgileri isiginda, biyotaklit prensipleri kullanilarak en az 1'er kopya “C3 orijin içeren 'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS” dizilerinin kullanilmasina ihtiyaç duyulmustur. Makroçekirdek bölünmesini takip eden DNA replikasyonu esnasinda allelik baskinlik saglanabilmesi amaciyla, C3 orijin içeren yabani tip Tetrahymena thermophi'la C3.368.1 irkindan [Stock ID: SD0026, Cornell University Tetrahymena Stock Center] genomik DNA saflastirilarak, kaynak olarak kullanilmistir.
C3 orijine sahip yapay kromozomlar, B orijine sahip Tetrahymena thermophila CU428 irkina transforme edilmistir. Böylelikle transformantlar C3>B allelik baskinlik antibiyotik seçilimi ile yönlendirilerek, vejetatif hücre makroçekirdeginde yapay kromozom kopya sayi artisi saglanmistir.
Büyük boyutlu bir dizi olan 10.3 kbç uzunlugundaki "C3 orijini içeren 5'NTS-rDNA genleri-B'NTS” dizisi çogaltilacagindan dolayiI Herculase Fusion DNA Polymerase ll enzimi (Agilent, #600675] ve kaynak DNA olarak da yabani tip Tetrohymena thermophi'la C3.368.1 irkindan saflastirilmis genomik DNA kullanilarak PZR reaksiyonu gerçeklestirilmistir. PZR reaksiyonunun asamalari su sekilde Optimize edilmistir: 2 dakika 92°C baslangiç denatürasyonu, 10 döngü olacak sekilde 10 artacak sekilde] 68°C uzama ve bir kerelik 68°C son uzama. Böylece iki asamali PZR reaksiyonunun ilk asama ürünü üretilmistir. Bu PZR ürünü ikinci reaksiyonda DNA kaynagi olarak kullanilarak, miktari arttirilmistir.
Ikinci PZR asamasi sonrasinda 10.3 kbç uzunlugundaki "C3 orijini içeren 5'NTS-rDNA genleri- 3'NTS” dizisi içeren PZR ürünü jelden saflastirilmis, küt uçlu p]ET1.2/blunt klonlama vektörüne CloneJet PCR Cloning Kit (Thermo, #K1231) ile entegre edilmistir. Klonlanan bölgenin büyüklügü PZR ile, DNA dizisi ise DNA dizi analizi ile dogrulanmistir. Sonrasinda "C3 orijin içeren 5'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS” dizisini içeren DNA parçasini tasiyan p]ET1.2/blunt vektörü içeren E. 0011' klonu üretilerek vektör saflastirilmis ve Xhol-Cfr9l [Thermo, #ER0691 - #ER1171) çiftli enzim kesimi uygulanmis 10.3 kbç'lik DNA parçasi jelden saflastirilmistir. Daha sonra, ayni enzimlerle kesilerek saflastirilmis yapay kromozom ara vektörü [TtAC2.4] ve “C3 orijin içeren 5'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS” dizisi ligasyon islemine alinmistir. Ligasyon sonrasinda olusan vektör TtAC2.5 olarak isimlendirilmistir. Klonlama asamalari sonrasinda klonlama, TtAC2.5*nin hem çiftli Xhol- Cfr91 kesimi, hem de tekli Apal ve Xbal kesimleri ile dogrulanmistir.
TtAC2.5 vektörünün endüstriyel kullaniminin kolaylastirilmasi amaciyla, TtsfGFP ve Ne04 kasetlerinin Xma-Sall enzim kesimiyle [TtAC2.3 vektör yapisinda görülen Neo-ii ile TtsfGFP kasetleri arasinda bulunan] BamHl restriksiyon enzim kesim bölgesinin silinmesi baslatilmistir.
TtsfGFP gen kasetinde bulunan HSP70.2, TtsfGFP geni ve BTU2 dizisinde gerçeklestirilen bazi tasarimsal degisiklikler de bu asamada yapilmistir. Bunlardan ilki HSP70.2 promotorunun 3' ucunda yer alan olasi lRES elementi dizisindeki N-ucuna istemsiz eklenen yapay 11 amino asitlik HSP70 protein dizisini kodlayan bölgenin “ATG” kodonunun G (guanin) bazinin T [timin] bazina mutasyon ile dönüstürülmesidir. Bu islem spesifik bir primer kullanilarak PZR yöntemiyle gerçeklestirilmistir. Ayrica PZR primerleri ile çogaltilma sirasinda HSP70.2 promotor dizisinin 3' ucundaki Pmel enzim kesim dizisinden önce bir A [adenin) bazi eklenmistir. TtsfGFP ileri primerine Prnel dizisi ve geri primerine ise Ascl dizisi yerlestirilmistir. BTU2 dizisinin geri primerine de SfaA] enzim kesim dizisi yerlestirilmistir. Modifiye edilmis HSP70.2 promotoru, TtsfGFP geni ve BTU2 dizilerinin örtüsen PZR ile birlestirilmesiyle TtsfGFP gen kaseti tekrar elde edilmistir. Neo4 kaseti dizisinde bir degisiklik yapilmamistir, ancak ileri primerine BamHl yerine SfaAl restriksiyon enzimi tanima dizisi eklenmistir. TtsfGFP ve Ne04 kasetleri örtüsen PZR ile birlestirilerek, XmaI-Sall enzimleri ile vektöre entegre edilmistir. Bu asamalar sonucunda TtACZ yapay kromozomu [SEQ lD NO: 4) elde edilmistir. TtACZ yapay kromozomunun dizisel dogrulugu DNA dizi analizi yapilarak teyit edilmistir [Sekil 1).
B) Tetrahymena thermophila Yapay Kromozomunun [TtACZ] Vejetatif Hücrelere Biyolistik Silah Yöntemi ile Transformasyonu Tasarlanan kromozom DNA'larinin altin tanecikleri ile kaplanarak biyolistik silah yardimiyla belirli basinç altinda hücre içine gönderilmesi, hücre içinden geçerken de yapay kromozom (TtACZ) vektör DNA'larinm çekirdege transferi saglanir.
Transformasyonu yapilacak vektörler dogrusal ya da dairesel formda 1 ul'de 2 ug DNA olacak sekilde hazirlandiktan sonra, altin partiküllerinin DNA ile kaplanmasi gerekmektedir. Kaplama için altin partiküllerini içeren tüplere hizli bir sekilde sirasiyla lpl dogrusallastirilmis veya dairesel vektör DNA'si, 10 ul 2.5 M CaClz ve 4 uL spermidin eklenmistir. Her eklemenin ardindan yaklasik 3 saniye vorteks islemi yapilmis ve tüm bilesenler eklendikten sonra 4°C'de 10 dakika çalkalama yapilmistir. Çalkalamanin bitiminde, örnekler 41°C sicaklikta ve 10.000 g'de 6 saniye santrifüj edilerek DNA kapli altin partikülleri toplanmistir. Süpernatant, mikropipetle nazik bir sekilde çekilerek uzaklastirilmis ve yikama adimlarina geçilmistir. Kromozom DNA'si ve DNA'ya bagli altin partikülleri %70'lik 100 ul etanol ile yikanip santrifüj edilmistir. Süpernatant tekrar pipetle çekilerek uzaklastirildiktan sonra, peletin üzerine %100'lük 100 pl etanol eklenmis ve ayni islem tekrarlanmistir. Ardindan 10 ul %100'lük etanol, vektör DNA'sina bagli altin partikülleri üzerine eklenerek çözülmüs ve bu karisim biyolistik silahin makrotasiyici haznesinin orta kismina aktarilmistir. Makrotasiyici, alkolün uzaklasmasi için desikatörde bekletilmistir.
Bu islemlerin sonrasinda transform edilecek hücrelerin hazirlanmasi asamasina geçilmistir.
Bunun için, SPP besiyerinde B orijinli Tetrahymena thermophi'la CU428 hücreleri çogaltilmis, açliga alinmislardir. Transformasyon günü, 2)(105 hücre/ml yogunlugunda ve 50 ml hacmindeki aç hücreler, konik dipli bir tüpte 1100 g*de 3 dakika santrifüj edilerek toplanmis ve böylelikle her bir atesleme için 10 milyon hücre elde edilmistir. Santrifüj sonrasi süpernatant uzaklastirilarak her bir atesleme için 10 milyon hücre, 500 pl 10 mM Tris-HCl (pH 7.5] içerisinde çözülmüstür.
Petri tabagina [100 mm] yerlestirilerek sterilize edilmis olan dairesel “whatmann 50” filtre kagidi, 1 ml'lik 10 mM Tris-HCl [pH 7.5) ile nemlendirilmistir. Açlik tamponunda çözülen hücrelerin 500 ul*si filtre kagidinin ortasindan baslanarak 3/4'lük kismina yayilmistir.
Hücreler ve makrotasiyicidaki DNA örnekleri hazir oldugunda biyolistik silahla atesleme adimina geçilmistir. lzopropanol ile islatilmis 900 psi'lik rupture diski tutucu aparata yerlestirilmistir.
Tutucu kisim partikül bombardiman aparatinin içindeki disli helyum portu üzerine döndürülerek monte edilmistir. Makrotasiyici da yerine yerlestirildikten sonra hücreleri içeren petri tabagi cihazin en alt rafina yerlestirilerek atesleme için gerekli sartlar saglanmistir. Kosullar hazir oldugunda atesleme gerçeklestirilmistir. Transforme edilen hücrelerin üzerine 30°C'de 10 ml SPP eklenmis ve diger ateslemeler bitirilinceye kadar, 30°C'de inkübasyona birakilmistir. Biyolistik silahla transformasyon islemlerinin tümü steril kabin içinde gerçeklestirilmistir.
C] Pozitif Transformantlarin Antibiyotik Baskisi ile Seleksiyonu Transformasyondan sonra steril filtre kagidi üzerindeki hücreler, kagidin 1XSPP besiyerinin içine atilmasiyla besiyerine aktarilmistir. Besiyeri 3 saat süre ile 30°C'de çalkalamasiz bekletilerek, hücrelerin toparlanmasi saglanmistir. Bu süre sonunda besiyerine 0,5 tig/ml CdClz ve 100 tig/ml paromomisin eklenmistir. Hücreler dilüe edilerek, 96 kuyucuklu mikroplakanin her bir kuyusuna 100 ul olacak sekilde paylastirilmistir. Bu hücrelerin 30°C'de 6 günlük takibi yapilirken, antibiyotik miktari 3. günde 300 ug/ml'ye, 5. günde ise 600 pg/ml'ye çikarilarak seleksiyon yapilmistir. Bu sürede azalan konsantrasyonda CdClz eklenmistir. Bu islemler ayrica bulk kültürleri için de aynen uygulanmistir. Antibiyotik seleksiyonun 10. gününde ise, antibiyotik miktari 1000 ug/ml'ye çikartilarak seleksiyon sürdürülmüs ve dinamik canlilik gösteren pozitif transformant hücreler cam tüplere aktarilmistir. Tüplenmis hücrelerin aylik pasajlanmasi esnasinda, ”antibiyotikli deney grubuna (Par +)” uygulanan paromomosin baskisi 100 tig/ml düsürülerek, transformant hücreler aylarca bu baskida muhafaza edilmistir. Bu deney grubunun yaninda "antibiyotiksiz deney gurubu (Par -)” için de tüpleme yapilmis, fakat aylik pasajlama sirasinda hücrelere antibiyotik eklemesi yapilmamistir. Ilk 2 ay boyunca, antibiyotik baskisinda olan tüplere 3 günde bir paromomisin ve kadmiyum eklemesi yapilmistir. Haftada bir ise tüm tüplerdeki hücrelere, Pen/Strep ve Amfoterisin eklenmis ve bu hücreler NEFF besiyerine aktarilarak pasajlamalar yapilmistir. Tüp içindeki hücreler ilk 2 aydan sonra aylik pasajlama ile Bulus kapsaminda, antibiyotik baskili ve baskisiz olmak üzere toplam 2 ana deney grubu kullanilmaktadir. Bu gruplar asagida verilmistir.
Paromomisin ile baskilanmis transformant hücreler (Par +l: 1. Dairesel TtACZ 2. Dogrusal TtACZ Paromomisin ile baskilanmamis transformant hücreler (Par -l: 3. Dairesel TtACZ 4-. Dogrusal TtACZ D) TtACZ Yapay Kromozomunun Protein Ekspresyon Vektörü Olarak Kullanilmasiyla Rekombinant TtsfGFP Üretimi Transforme edilmemis Tetrahymena thermophi'la CU428 hücreleri, rekombinant TtsfGFP'nin üretim denemesinin negatif kontrolü olarak kullanilmistir. Transformant hücre hatlarinin modifiye HSP70.2 promotorlari haftalik veya aylik olarak isi soku ile tetiklenmis, TtsfGFP-6xHis rekombinant proteininin üretimi mikroskopik yöntemler ve SDS-PAGE ve western blot analizleriyle takip edilmistir. Takip edilecek hücreler logaritmik büyüme fazina ulasincaya kadar ml veya 25 ml NEFF besiyeri içerisinde çalkalamali etüvde üretilmistir. Inkübasyon sonrasi, hücreler swing rotorlu santrifüj Cihazinda 1100 g'de 5 dk santrifüj edilerek peletlenmistir. Önceden içerisine Pen/Strep ve amfoterîsin eklenen besiyeri 38°C'de isitilmis, peleti çözecek kadar bir hacim çok yavas bir sekilde hücre pelletleri üzerine eklenerek hücreler çözülmüstür. Çözülen hücreler, steril 15 ml veya 25 ml besiyeri içeren genis yüzeyli erlene aktarilmistir.
Hücreler 38°C'lik su banyosunda 3 saat isi sokuna maruz kalmistir. Hücrelerin isik ve floresan mikroskop analizleri, bu 3 saatlik TtsfGFP ürettirme periyodundan sonra gerçeklestirilmistir. Bu amaçla floresan aparatli Olympus Ix53 marka mikroskop, GFP filtresiyle ve Siyah-beyaz 10x-1R kamerasiyla (24. ay sonundaki görüntüleme için] ve Olympus Bx50 marka mikroskop GFP filtresiyle ve DP72 kamerasiyla (5. ay sonundaki görüntüleme için] kullanilmistir (40X büyütme).
In-vi'vo mikroskopik hücre analizleri, hücrelerin 5. ayda [Sekil 2-D] ve 24. ayda (Sekil 2-E) kuvvetli GFP isimalarina sahip olduklarini göstermistir.
TtACZ'nin TtsfGFP-öxHis rekombinant protein üretiminin gösterilmesi için üretilen bu hücrelerin bazilarindan saflastirilan toplam proteinlerin GFP isimasinin gözlemlenmesi amaciyla SDS-PAGE (Shapiro, A. L., Viiîuela, E., & Maizeljr, ]. V. 1967. Moleciilar weight estimati'on ofpolypeptide chains by electrophoresis in SDS-pob/acrylami'de gels. Biochemi'cal and bi'ophysical research communications, 28(5), 815-820) ve western blot analizleri gerçeklestirilmistir. Aylik olarak büyütülmüs hücreler 1100 g'de 5 dk santrifüjleme ile pelletlenmis, Tris-HC] pH 7.5 ile yikanmis, 8000 rpm'de 5 dk santrifüj sonucunda supernatant uzaklastirilmis ve hücre pelletleri protein NaCl, %1 Triton-X-lOO, 2 mM PMSF, 1x Proteaz lnhibitör Kokteyl] tamponu kullanilarak protein izolasyonuna alinmistir. Saflastirilan t0plam proteinler kaynatilmaksizin SDS-PAGE jeli (%5-12) ile GFP isimasi analizine alindiginda; Par+ halkasal TtAC2 (Sekil Z-B, 2 numarali kuyu] ve Par+ dogrusal TtAC2 (Sekil 2-B, 3 numarali kuyu] içeren 5 aylik hücrelerin güçlü GFP isimasina sahip olduklari görülmüstür. Antibiyotik baskisi altinda olmayan transformant hücre deney grubunda ise Par- halkasal TtAC2 (Sekil Z-B, 4 numarali kuyu] ve Par- dogrusal TtAC2 (Sekil 2-B, 5 numarali kuyu) içeren 5 aylik hücrelerin GFP isimasina zayiflamis seviyede de olsa sahip olduklari bulunmustur. Söz konusu saflastirilmis toplam protein örnekleri ayni zamanda western Blot Görüntüleme, TMB kolorimetrik yöntemiyle gerçeklestirilmistir [Sekil 2-C). Saflastirilan toplam proteinler kaynatilarak SDS-PAGE jeline (%5-12) yüklenmistir. Par+ halkasal TtAC2 (Sekil 2-C, 2 numarali kuyu] ve Par+ dogrusal TtAC2 (Sekil 2-C, 3 numarali kuyu) içeren 5 aylik hücrelerde, GFP proteininin varliginin yüksek oranda oldugu görülmüstür. Antibiyotik baskisi altinda olmayan 5 aylik transformant hücre deney grubunda ise, Par- halkasal TtAC2 (Sekil Z-C, 4 numarali kuyu] ve Par- dogrusal TtAC2 (Sekil 2-C, 5 numarali kuyu] içeren hücrelerde GFP varliginin zayif oldugu tespit edilmistir. SDS-PAGE ve Western blot analizlerinde pozitif kontrol olarak, E. coli'de üretilmis 6XHis-TtsfGFP (~31 kDa), protein belirtecinin içine eklenerek kullanilmistir (Sekil 2-B, 1 numarali kuyu ve Sekil 2-C, 1 numarali kuyuda 35 kDa hizasinin altindaki mavi protein bandi). Negatif kontrol olarak ise, transforme edilmemis Tetrahymena CU428 toplam proteini kullanilmis fakat hiçbir isima veya protein bandi görülmemistir (data verilmemistir].
E] Tetrahymena thermophila TtACZ Yapay Kromozomunun Kopya Sayisinin Real-Time PCR Yöntemiyle Belirlenmesi Tetrahymena thermophila genomunda yer almayan fakat bulusa konu olan yapay kromozomlarda bulunan neomisin direnç geni TtACZ vektörlerinin kopya sayisini belirlemek için belirteç gen olarak kullanilmistir. Real-time PZR için, neomisin direnç-belirteç genine uygun Taqman prob (bulucu) ile primerleri tasarlanmistir. Ayrica ayni örneklerde, Real-Time PZR'da kullanilmak üzere, Tetrahymena genomunda tek kopya olarak bulunmasindan dolayi nanogram DNA basina için de Taqman prob ve primerleri tasarlanmistir. Yapay kromozom vektörlerinin kopya sayisinin muhafazasinin belirlenmesi amaciyla Par+ ve Par- deney guruplari için 1 haftalik, 2 aylik ve 7 aylik hücre peletlerînden DNA izolasyonlari, DNA izolasyon kiti (Promega, Wizard Genomic DNA Purification Kit, A1120] kullanilarak gerçeklestirilmistir. Bu yolla Real-Time PZR deneylerinde kullanilabilecek kalite ve konsantrasyonda olup olmadiklari incelenmis, ayrica DNA'larin nanogram miktarlari belirlenmistir. Saflastirilan DNAJIar agaroz jelde kosturularak Real-Time PZR'de kullanilabilirlikleri teyit edilmistir.
Primer3 programi [http://bioinf0.ut.ee/primer3-0.4.0/] kullanilarak Neomisin direnç genine göre tasarlanan Taqman Prob ve primerler asagida verilmistir: Taqman Prob: 5' FAM TCTGGTTTCATCGACTGTGG TAMRA 3' Ileri primer: 5' CTGCTTACCCAATATCATG 3' Katalaz geni için hazirlanan prob ve primerler ise asagida sekildedir: Taqman Prob: 5' FAM AATCCCTGAAAGAGTCGTCCACGC TAMRA 3' Ileri primer: 5' TGACAACCAAAATTCCGTCACTGCA 3' Real time PZR deneyi için yukarida anlatilan prob ve primer konsantrasyonlari finalde 10.000 nM olacak sekilde dilüe edilmistir. Reaksiyon için ise 500 nm konsantrasyonda olacak sekilde kullanilmislardir. Real-time PZR'de TtAC2'nin kopya sayisi hesaplamalarinda temel alinacak "DNA kopya sayisi standart egrisi" olusturmak için baz içerigi ve sayisi bilinen TtACZ vektörü kullanilmistir. Bu standart egriyi olusturmak için 267 ng/ul TtACZ vektöründen 3 bagimsiz dilüsyon yapilmistir. Çizilen standart egrinin R2 degeri 0,989 olup verimliligi %101,7 olarak hesaplanmistir. Deney gruplarinda kullanilacak egri denklemi y:3,282x+39,144 olarak belirlenmistir [Tablo 1].
Katalaz geninin “DNA kopya sayisi standart egrisini" olusturabilmek için vektör boyutu ve baz dizisi bilinen pVGF-katalaz vektörü [267 ng/ul] hazirlanarak 3 bagimsiz dilüsyon yapilmis ve egri olusturma amaciyla Real-time PZR'de kullanilmistir. Katalaz geni standart kopya sayilari; belirlenmistir. Standart egrinin R2 degeri 0,997 olup verimliligi %892 olarak bulunmustur. Bu degerler güvenilir ve kullanilabilir araliktadir. Böylece, deney gruplarinin örneklenmesi sirasinda hücre sayisinin belirlenmesinde kullanilacak denklem; y=3,612x+43,889 olarak belirlenmistir Real-time PZR reaksiyonu, Brilliant III Ultra-Fast QPCR Master Mix (Katalog #600880, Agilent Technologies) kiti ile kurulmustur. Real-time PZR reaksiyonu, 95°C'de 3 dk ön denatürasyon Antibiyotik baskisi altinda olan Par+ halkasal TtAC2 ve Par+ dogrusal TtAC2 içeren hücreler ile antibiyotik baskisi altinda olmayan Par- halkasal TtAC2 ve Par- dogrusal TtACZ içeren hücrelerden sallastirilan genomik DNA'lar ile kalipsiz reaksiyon kontrolleri birlikte Real-time PZR reaksiyonuna alinmistir. Deney grubu genomik DNA'lari 50 ng/ul olacak sekilde dilue edilmis ve reaksiyonda kalip genomik DNA 100 ng/ul olarak kullanilmistir. Gerekli görüldügünde, kontrol amaciyla 50 ng/ul'lik genomik DNA kalip miktarlari içeren reaksiyonlar da kurulmustur. Neo4 ve katalaz genleri için ayri prob ve primerler kullanilarak reaksiyonlar gerçeklestirilmistir.
Reaksiyonlar 3'er tekrarli olarak gerçeklestirilmistir. Katalaz geni ile her örnek için hücre sayisi belirlendikten sonra deney grubu neomisin geni kopya sayisi yani TtACZ kopya sayisi, ortalama deger olarak standart egri denklemleri kullanilarak hesaplanmistir (Tablo 1).
Deney Guruplari 1. Hafta 2. Ay 7. Ay Dogrusal TtAC2 5 601 2735 Dogrusal TtACZ 1933 138 52 TtACZ yapay kromozom vektörü, Par+ ve Par- deney gruplarinda dairesel ve dogrusal formda makroçekirdek genomu içinde muhafaza edilmektedir [Tablo 1]. TtACZ'nin dairesel ve dogrusal formlari kopya sayisi artisi, Par+ ve Par- deney gruplari arasinda farklilasmistir. Antibiyotik baskisi olmayan deney gruplari ilk haftalarda çok hizli bir kopya sayisi artisi gösterirken, zamanla kopya sayisinin azaldigi gözlenmektedir. Antibiyotik baskisi altindaki deney gruplari ise ilk haftalarda yavas bir kopya sayisi artisina sahipken zamanla kopya sayisi artisi ivme kazanmaktadir. Bu durum, transformasyondan sonra hemen antibiyotik baskisi uygulanmasi yerine, C3 allel'in B alleli üzerinde sahip oldugu dogal baskinligina dayanarak hücrelerin ilk haftadan sonra antibiyotik baskisina alinmasi gerektigini göstermektedir. Böylelikle çok daha yüksek TtACZ kopya sayilarina ulasmak mümkündür. Özetle Tablo 1'deki veriler, TtACZ'nin yapay bir kromozom özelliklerine sahip oldugunu ve paromomisin baskisi olmadan uzun süre hücre tarafindan muhafaza edilebilecegini göstermis olup, bu durum endüstriyel kullanim açisindan büyük öneme sahiptir.

Claims (1)

  1. ISTEMLER SEQ ID NO: 4'e sahip Tetrahymena thermophila yapay kromozomu (TtACZ) olup, özelligi SEQ ID NO: 1'e sahip modifiye edilmis bir HSP70.2 promotoru, SEQ ID NO: Z'ye sahip 3'NTS dizisi ve SEQ ID NO: 3'e sahip "C3 orijin içeren 5'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS" dizisi ihtiva etmesidir. Istem 1'e göre sunulan Tetrahymena thermophila yapay kromozomu olup, özelligi ayrica pUC19 vektör iskeleti ihtiva etmesidir. Istem 1'e göre sunulan Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomu olup, özelligi ayrica bir telomer dizisi ihtiva etmesidir. Istem 1'e göre sunulan Tetrahymena thermophila yapay kromozomu olup, özelligi ayrica Neo4 antibiyotik direnç kaseti ihtiva etmesidir. Istem 1'e göre sunulan Tetrahymena thermophila yapay kromozomu olup, özelligi ayrica TtsfGFP belirteç gen kaseti veya homolog ve/veya heterolog genomik DNA, RNA ve/veya proteinler ve/veya türevlerini kodlayan bir DNA dizisi ihtiva etmesidir. Istem 1 ila 5'e göre sunulan Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomu olup, özelligi kromozomun bir kolunda ”C3 orijin içeren S'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS" dizisi (SEQ ID NO: 3), diger kolunda ise 3'NTS (SEQ ID NO: 2), Neo4 kaseti ve TtsfGFP belirteç gen kaseti ihtiva etmesidir. Istem 6'ya göre sunulan Tetrahymena thermophil'a yapay kromozomu olup, özelligi her iki kolundaki transkripsiyon yönünün kromozom merkezinden telomerlere dogru yönlendirilmis olmasidir. Önceki istemlerin herhangi birine göre sunulan bir yapay kromozom olup, özelligi SEQ ID NO: 4'e en az %80 homolog olan bir nükleotid dizisine sahip olmasidir. Önceki istemlerin herhangi birine göre sunulan Tetrahymena thermophii'a yapay kromozomu olup, özelligi dairesel veya dogrusal formda bulunabilmesidir. Istem 9'a göre sunulan Tetrahymena thermophila yapay kromozomu olup, özelligi dogrusal formda telomer dizilerininin muhafazasinin 3'NTS dizileri ile saglanmasidir. Istem 1'de tanimlanan Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomunu üretmek için bir yöntem olup, özelligi asagidaki adimlari ihtiva etmesidir: - Tetrahymena thermophila yapay kromozomu için vektör iskeletinin sunulmasi, - iskelet vektöre modifiye edilmis bir HSP, bir telomer dizisi, bir 3'NTS dizisi [SEQ [D NO: 2], bir Neo4 kaseti ve “C3 orijin içeren 5'NTS, rDNA genleri ve 3'NTS” dizisinin [SEQ ID NO: 3] rDNA minikromozomu biyotaklit edilerek yerlestirilmesi, ve - yapay kromozomun elde edilmesi. Istem 11'e göre sunulan yöntem olup, özelligi iskelet vektöre ayrica TtsfGFP helirteç gen kaseti veya homolog ve/veya heterolog genomik DNA, RNA ve/veya proteinler ve/veya türevlerini kodlayan bir DNA dizisinin yerlestirilmesi adimini ihtiva etmesidir. Istem 11'e göre sunulan yöntem olup, özelligi bahsedilen vektör iskeletinin pUC19 olmasi, böylece yapay kromozomun SEQ ID NO: 4 ile en az %80 homolog olan bir nükleotid dizisine sahip olmasidir. Istem 1'de tanimlanan Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomunu bir üretim sistemi/platformu olarak kullanarak homolog ve/Veya heterolog genomik DNA, RNA ve/Veya proteinleri ve/veya türevlerini rekombinant olarak üretme yöntemi olup, özelligi asagidaki adimlari ihtiva etmesidir: - makroçekirdegin rDNA minikromozomunda C3 orijin alleli disindaki çekinik bir allel içeren bir Tetrahymena thermophila veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücrenin sunulmasi, - makroçekirdek rDNA minikromozomunda baskin C3 orijini ihtiva eden dairesel ve/veya dogrusal Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomunun [TtACZ] C3 orijin alleli disindaki çekinik bir allel içeren bir Tetrahymena thermophi'la veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücrenin makroçekirdegine ekstrakromozomal olarak entegre edilmesi, ve - Tetrahymena thermophila yapay kromozomunda tasinan DNA, RNA ve/veya proteinleri kodlayan bir homolog ve/veya heterolog dizinin kodladigi DNA, RNA ve/veya proteinin ve/veya türevlerinin Tetmhymena thermophila veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücre tarafindan üretilmesi. Istem 14'e göre sunulan yöntem olup, özelligi yöntemin ikinci adiminda yer alan Tetrahymena thermophi'la yapay kromozomunun (TtAC2] C3 orijin alleli disindaki çekinik bir alle] içeren bir Tetrahymena thermophi'la veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücrenin makroçekirdegîne ekstrakromozomal olarak entegre edilmesi isleminin biyolistik silah yöntemi ile gerçeklestirilmesidir. Istem 14'e göre sunulan yöntem olup, özelligi söz konusu Tetrahymena thermophila veya Tetrahymenidae familyasi üyesi bir siliat konak hücrenin kültürize edilmis vejetatif bir siliat hücresi veya konjugasyon yapan iki siliat hücresi olmasidir. Istem 14'te tanimlanan yönteme göre sunulan en az bir homolog 've/veya heterolog dizi tasiyan TtACZ'nin transformasyonu ile olusturulmus transformant Tetrahymenidae familyasi üyesi siliat konak hücre. Istem 1'de tanimlanan Tetrahymena thermophila yapay kromozomunun homolog ve/veya heterolog genomik DNA, RNA ve/veya proteinleri ve/veya türevlerini rekombinant olarak üretmek amaciyla bir üretim sistemi /platformu olarak kullanimi.
TR2019/04291A 2019-03-22 2019-03-22 TETRAHYMENA THERMOPHILA YAPAY KROMOZOMU 2 (TtAC2) VE REKOMBİNANT PROTEİN ÜRETİMİNDE KULLANIMI TR201904291A2 (tr)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
TR2019/04291A TR201904291A2 (tr) 2019-03-22 2019-03-22 TETRAHYMENA THERMOPHILA YAPAY KROMOZOMU 2 (TtAC2) VE REKOMBİNANT PROTEİN ÜRETİMİNDE KULLANIMI
PCT/TR2019/051165 WO2020197518A1 (en) 2019-03-22 2019-12-20 Tetrahymena thermophila artificial chromosome 2 (ttac2) and its use in the recombinant protein production

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
TR2019/04291A TR201904291A2 (tr) 2019-03-22 2019-03-22 TETRAHYMENA THERMOPHILA YAPAY KROMOZOMU 2 (TtAC2) VE REKOMBİNANT PROTEİN ÜRETİMİNDE KULLANIMI

Publications (1)

Publication Number Publication Date
TR201904291A2 true TR201904291A2 (tr) 2020-10-21

Family

ID=69845510

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
TR2019/04291A TR201904291A2 (tr) 2019-03-22 2019-03-22 TETRAHYMENA THERMOPHILA YAPAY KROMOZOMU 2 (TtAC2) VE REKOMBİNANT PROTEİN ÜRETİMİNDE KULLANIMI

Country Status (2)

Country Link
TR (1) TR201904291A2 (tr)
WO (1) WO2020197518A1 (tr)

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20030033617A1 (en) 1996-04-10 2003-02-13 Gyula Hadlaczky Artificial chromosomes, uses thereof and methods for preparing artificial chromosomes
CA2615075A1 (en) 2005-07-13 2007-01-18 Cilian Ag Tetrahymena heat inducible promoters and their use
CA2755978C (en) * 2009-03-20 2022-11-22 Tetragenetics, Inc. Polypeptide expression in ciliates
CN101586119B (zh) 2009-05-15 2011-04-06 中国科学院水生生物研究所 含hsp70启动子和gfp的四膜虫转基因载体及制备方法和应用

Also Published As

Publication number Publication date
WO2020197518A1 (en) 2020-10-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN108138156A (zh) 用于无标记基因组修饰的方法和组合物
JP2004524031A (ja) 合成遺伝子、およびCpGを欠く細菌プラスミド
Heitzer et al. Construction of modular tandem expression vectors for the green alga Chlamydomonas reinhardtii using the Cre/lox-system
IL207851A (en) A method of making a yeast library by electrophoresis of yeast cells
Watson et al. Optimisation of the Schizosaccharomyces pombe urg1 expression system
CN112481309B (zh) Ago蛋白的用途及组合物和基因编辑方法
JP5733609B2 (ja) 藻類を形質転換するために用いられる新規プロモーター
CN113637658A (zh) 基于dCas9-oToV的基因转录系统及其应用
Hallmann et al. Swapped green algal promoters: aphVIII-based gene constructs with Chlamydomonas flanking sequences work as dominant selectable markers in Volvox and vice versa
TR201904291A2 (tr) TETRAHYMENA THERMOPHILA YAPAY KROMOZOMU 2 (TtAC2) VE REKOMBİNANT PROTEİN ÜRETİMİNDE KULLANIMI
US10280428B2 (en) Molecular biology tools for algal engineering
CN110106171B (zh) 长链非编码rna及其在调控植物耐低温中的应用
WO2015118457A1 (en) A modified microorganism having enhanced biomass synthesis capacity and a method thereof
US8691505B2 (en) Promoter for use in transformation of algae
JP4721868B2 (ja) 宿主dnaの欠失対象領域の欠失方法
Chen et al. Multiple-copy-gene integration on chromosome of Escherichia coli for beta-galactosidase production
JP4049364B2 (ja) 多コピー型・ゲノム挿入型の選択両用ベクター
EP3841210A2 (en) Tetrahymena thermophila artificial chromosome 1 (ttac1) and its use for the production of recombinant proteins
KR101920036B1 (ko) 대장균 및 앰피실린 저항성 유전자를 이용한 해독틀 이동 변이 및 종결 돌연변이가 없는 유전자의 선별 방법
Svoboda Cloning a transgene for transgenic RNAi in mouse oocytes
JP2804436B2 (ja) ストレプトミセス属菌および大腸菌の新規の細菌プラスミドシャトルベクター
Yoneji et al. NAR Breakthrough Article Grand scale genome manipulation via chromosome
DK2078076T3 (en) INCREASED EXPRESSION OF Pm PROMO
Marrero Coto Transcription Regulation in the hyperthermophilic crenarchaeon Thermoproteus tenax strain Kra1
JPWO2010061923A1 (ja) アミノ酸配列、dna及び酵母の育成方法