TH72427A - เทคนิคการทดลองหลอดแก้วสำหรับเซลล์ต้นกำเนิด - Google Patents

เทคนิคการทดลองหลอดแก้วสำหรับเซลล์ต้นกำเนิด

Info

Publication number
TH72427A
TH72427A TH401002541A TH0401002541A TH72427A TH 72427 A TH72427 A TH 72427A TH 401002541 A TH401002541 A TH 401002541A TH 0401002541 A TH0401002541 A TH 0401002541A TH 72427 A TH72427 A TH 72427A
Authority
TH
Thailand
Prior art keywords
cells
pass cells
pass
gradient
density
Prior art date
Application number
TH401002541A
Other languages
English (en)
Other versions
TH64281B (th
Inventor
ฟัลก้า นายวาเลนติน
โพรัท นายเยล
เบลคิน นายแดนนี่
ชิโมนี-ซอล์ค นายดัฟน่า
โพโรชอฟ นายสเว็ทลาน่า
Original Assignee
นายจักรพรรดิ์ มงคลสิทธิ์
นางสาวปรับโยชน์ ศรีกิจจาภรณ์
นายบุญมา เตชะวณิช
นายต่อพงศ์ โทณะวณิก
Filing date
Publication date
Application filed by นายจักรพรรดิ์ มงคลสิทธิ์, นางสาวปรับโยชน์ ศรีกิจจาภรณ์, นายบุญมา เตชะวณิช, นายต่อพงศ์ โทณะวณิก filed Critical นายจักรพรรดิ์ มงคลสิทธิ์
Publication of TH72427A publication Critical patent/TH72427A/th
Publication of TH64281B publication Critical patent/TH64281B/th

Links

Abstract

DC60 (01/10/47) กรรมวิธีที่ใช้กับเลือดที่ถูกสกัดได้ถูกคิดค้นขึ้นซึ่งประกอบไปด้วยการนำเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความหนาแน่นน้อยกว่า 1.077 g/ml ต่อมา นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml เซลล์ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml นั้น นำมาเพิ่มจำนวน โดยการเพาะเลี้ยง second-pass cells เป็นเวลาระหว่าง 3-30 วัน กรรมวิธีที่ใช้กับเลือดที่ถูกสกัดได้ถูกคิดค้นขึ้นซึ่งประกอบไปด้วยการนำเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความหนาแน่นน้อยกว่า 1.077 g/ml ต่อมา นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml เซลล์ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml นั้น นำมาเพิ่มจำนวนโดยการเพาะเลี้ยง second-pass cells เป็นเวลาระหว่าง 3-30วัน สิทธิบัตรยา

Claims (6)

ข้อถือสิทธฺ์ (ทั้งหมด) ซึ่งจะไม่ปรากฏบนหน้าประกาศโฆษณา :แก้ไขใหม่ 25/8/2560 1. วิธีการสำหรับใช้กับเลือดที่สกัดออกมา, ซึ่งประกอบรวมด้วย: การนำเลือดเข้าสู่เกรเดียนท์ (gradient) ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่ มีความหนาแน่นน้อยกว่า 1.077 g/ml; การนำ first-pass cells เข้าสู่เกรเดียนท์ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; การเพิ่มจำนวนเซลล์ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml โดยการเพาะเลี้ยง second-pass cells เป็นเวลาระหว่าง 1 และ 30 วัน ในสารเพาะเลี้ยงซึ่งประกอบรวมด้วยหนึ่งสารหรือ มากกว่า ที่ถูกเลือกจากกลุ่มซึ่งประกอบด้วย: ออโตโลกัสเซรัม, VEGF , b-FGF,IGF และเฮปาริน (heparin); เพื่อที่จะใช้ประชากรของเซลล์ที่เพาะเลี้ยงที่มีโปรเจนนิเตอร์เซลล์เม็ดเลือด (hematopoietic progenitor cell) มาก และโดยเฉพาะอย่างยิ่งในเอนโดธีเลียล โปรเจนนิเตอร์เซลล์ (EPCs) ----------------------------------------------------------------------------------------------------------------- (เดิม) 1. วิธีการที่นำมาใช้กับเลือดที่สกัดออกมามีดังต่อไปนี้ : นำเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความ หนาแน่นน้อยกว่า 1.077g/ml; นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; และ เพิ่มจำนวนเซลล์ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074g/ml โดยการเพาะเลี้ยง second- pass cells เป็นเวลา 3-30วัน 2. วิธีการในข้อถือสิทธิ 1 การนำเซลล์เม็ดเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่ง รวมถึง การนำเซลล์เม็ดเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่เหมือนฟิคอล 3. วิธีการในข้อถือสิทธิ 1 การนำเซลล์เม็ดเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่สอง หมายรวม ถึง การนำเซลล์เม็ดเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่เหมือนเพอร์คอล 4. วิธีการในข้อถือสิทธิ 1 การนำเซลล์เม็ดเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่สอง หมายรวม ถึง การนำเซลล์เม็ดเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่เหมือนออพติเพรพ 5. วิธีการที่นำมาใช้กับเซลล์ต้นกำเนิดที่สกัดออกมา มีดังต่อไปนี้: นำเนื้อเยื่อซึ่งประกอบด้วยเซลล์ต้นกำเนิดไปปั่นแยกในgradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการ คัดเลือก first-passcells ที่มีความหนาแน่นน้อยกว่า 1.077 g/ml; นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; นำ second-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สามซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก third-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.068 g/ml; และ เพิ่มจำนวนเซลล์ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074g/ml โดยการเพาะเลี้ยง third- pass cells เป็นเวลา 3-30 วัน 6. วิธีการในข้อถือสิทธิ 5 การปั่นแยกใน gardent ที่สามเหมาะสำหรับการคัดเลือก เซลล์ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.059 และ 1.068 g/ml และการนำ second-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สาม หมายถึงการคัดเลือกเซลล์ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.059 และ 1.068 g/ml 7. วิธีการนำมาใช้กับเลือดที่สกัดออกมา มีดังต่อไปนี้ นำเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความ หนาแน่นน้อยกว่า 1.077g/ml นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; และ อบ second-pass cells บนผิวพื้นที่มีแอนติบอดี้ 8. วิธีการนำมาใช้กับเลือดที่สกัดออกมา มีดังต่อไปนี้: นำเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความ หนาแน่นน้อยกว่า 1.077g/ml; นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; และ อบ second-pass cells บนผิวพื้นที่มีโมเลกุลเร่งการเจริญเติบโตนอกเหนือไปจากคอลลาเจน หรือโฟโบรเนคติน 9. วิธีการในข้อถือสิทธิ 8 การเพาะเลี้ยง second-pass cells หมายถึง อบ second-pass cells บนพื้นซึ่งประกอบด้วยคอลลาเจนและไฟโบรเนคตินอย่างน้อยหนึ่งอย่างนอกจากโมเลกุลเร่ง การเจริญเติบโต 1 0. วิธีการนำมาใช้กับเลือดที่สกัดออกมา มีดังต่อไปนี้: นำเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความ หนาแน่นน้อยกว่า 1.077g/ml; นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; และ เพาะเลี้ยง second-cells เป็นเวลา 1-5 วันในสารเพาะเชื้อที่มีเซรัมน้อยกว่า 5% 1 1. วิธีการที่นำมาใช้กับเลือดที่สกัดออกมา มีดังต่อไปนี้: นำเลือกไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความ หนาแน่นน้อยกว่า 1.077 g/ml; นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองศึ่งเหมาะาหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; และ เพาะเลี้ยง second-pass cells เป็นเวลา 1-5 วัน ในสารเพาะเชื้อที่มีเซรัมมากกว่า 10% 1 2. วิธีการในข้อถือสิทธิ 11 การเพาะ second-pass cellsหมายถึง เพาะ second-pass cells ในสารเพาะเชื้อที่มีเซรัมน้อยกว่า 20 % 1 3. วิธีการนำมาใช้กับเลือดที่สกัดออกมา มีดังต่อไปนี้: นำเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความ หนาแน่นน้อยกว่า 1.077g/ml; นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; ในช่วง low-serum เพาะ second-pass cells ในสารเพาะเชื้อที่มีเซรัมน้อยกว่า 10 % และ ในช่วง high serum เพาะ second-pass cells ในสารเพาะเชื้อที่มีเซรัมมากกว่าหรือ เท่ากับ 10 % 1 4. วิธีการในข้อถือสิทธิ 13 การเพาะ second-pass-cells ในช่วง low-serum หมายถึง เพาะ second-pass cells เป็นเวลาระหว่าง 1-5 วัน 1 5. วิธีการในข้อถือสิทธิ 13 การเพาะ second-pass-cells ในช่วง high-serum หมายถึง เพาะ second-pass cells เป็นเวลาระหว่าง 1-30 วัน 1 6. วิธีการในข้อถือสิทธิ 13 การเพาะ second-pass-cells ในช่วง low-serum ให้กระทำ หลังการเพาะ second-pass cells ในช่วง high-serum 1 7. วิธีการในข้อถือสิทธิ 13 การเพาะ second-pass-cells ในช่วง low-serum ให้กระทำ หลังการเพาะ second-pass cells ในช่วง high-serum 1 8. เทคนิคที่นำมาใช้กับเลือดที่สกัดออกมา มีดังต่อไปนี้ นำเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความ หนาแน่นน้อยกว่า 1.077g/ml; นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; ในช่วงภาวะออกซิเจนต่ำซึ่งเกิดขึ้นอย่างน้อย 2 ชั่วโมงให้เพาะเลี้ยง second-pass cells ใน ภาวะออกซิเจนต่ำ และในช่วงภาวะออกซิเจนไม่ต่ำซึ่งเกิดขึ้นอย่างน้อย 1 วัน ให้เพาะเลี้ยง second- pass cells ในภาวะออกซิเจนไม่ต่ำ 1 9. วิธีการในข้อถือสิทธิ 18 ภาวะออกซิเจนต่ำและไม่ต่ำนั้นเกิดขึ้นในช่วงของการเพาะ เลี้ยงเซลล์ซึ่งใช้เวลาน้อยกว่า 30 วัน และการเพาะเลี้ยง second-pass cells ในภาวะออกซิเจนต่ำ หมาย ถึง เพาะ second-pass cells ในภาวะออกซิเจนต่ำในช่วงสองวันแรกของช่วงเวลาการเพาะเซลล์ 2 0. วิธีการในข้อถือสิทธิ 18 ภาวะออกซิเจนต่ำและไม่ต่ำนั้นเกิดขึ้นในช่วงของการเพาะ เลี้ยงเซลล์ซึ่งใช้เวลาน้อยกว่า 30 วัน และการเพาะเลี้ยง second-pass cells ในภาวะออกซิเจนต่ำ หมาย ถึง เพาะ second-pass cells ในภาวะออกซิเจนต่ำในช่วงสองวันสุดท้ายของช่วงเวลาการเพาะเซลล์ 2 1. วิธีการในข้อถือสิทธิ 18 ภาวะออกซิเจนต่ำและไม่ต่ำนั้นเกิดขึ้นในช่วงของการเพาะ เลี้ยงเซลล์ซึ่งใช้เวลาน้อยกว่า30 วัน และการเพาะเลี้ยง second-pass cells ในภาวะออกซิเจนต่ำ หมาย ถึง เพาะ second-pass cells ในภาวะออกซิเจนต่ำอย่างน้อย 2 ชั่วโมง ในช่วงระหว่างสองวันแรกและ สองวันหลังของช่วงเวลาการเพาะเซลล์ 2 2. วิธีการในข้อถือสิทธิ 18 การเพาะ second-pass cells ในภาวะออกซิเจนต่ำ ให้กระทำ ก่อนการเพาะ second-pass cells ในภาวะออกซิเจนไม่ต่ำ 2 3. วิธีการในข้อถือสิทธิ 18 การเพาะ second-pass cells ในภาวะออกซิเจนต่ำ ให้กระทำ หลังการเพาะ second-pass cells ในภาวะออกซิเจนไม่ต่ำ 2 4. วิธีการที่นำมาใช้กับเลือดที่สกัดออกมา มีดังต่อไปนี้: นำเลือดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความ หนาแน่นน้อยกว่า 1.077g/ml; นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; และ เพาะ second-pass cells ในสารเพาะเชื้อซึ่งประกอบด้วยอย่างน้อยสารใดสารหนึ่งสารดัง ต่อไปนี้ : อิริธโธรพอยอิทินสตาดิน โมเลกุล และแอนตี้ไดอะบีทิค 2 5. วิธีการในข้อถือสิทธิ 24 ยาต้านโรคเบาหวาน หมายถึง โรซิกไลตาโซน และการเพาะ เลี้ยง second-pass cells หมายถึงการเพาะเลี้ยง second-pass cells ในสารเพาะเซลล์ที่มีโรซิกไลดา โซน 2 6. วิธีการที่นำมาใช้กับเลือดที่สกัดออกมา มีดังต่อไปนี้: นำเนื้อเยื่อที่มีเซลล์ต้นดำเนิดไปปั่นแยกใน gradient ที่หนึ่งซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก first-pass cells ที่มีความหนาแน่นน้อยกว่า 1.077 g/ml; นำ first-pass cells ไปปั่นแยกใน gradient ที่สองซึ่งเหมาะสำหรับการคัดเลือก second-pass cells ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074 g/ml; และ เพิ่มจำนวนเซลล์ที่มีความหนาแน่นระหว่าง 1.055 และ 1.074g/ml โดยเพาะเลี้ยง second- pass cells เป็นเวลาระหว่าง3-30 วัน 2 7. วิธีการในข้อถือสิทธิ 26 ประกอบด้วย สารสกัดเซลล์ต้นกำเนิดจากไขกระดูด 2 8. วิธีการในข้อถือสิทธิ 26 ประกอบด้วย การเคลื่อนย้ายเซลล์ต้นกำเนิดออกจากไข กระดูดเพื่อช่วยในการสกัดเซลล์ต้นกำเนิด 2 9. วิธีการในข้อถือสิทธิ 26 ประกอบด้วย สารสกัดเซลล์ต้นกำเนิดจากเลือด 3 0. วิธีการในข้อถือสิทธิ 26 การเพาะ second-pass cellsประกอบด้วย เพาะ second-pass cells ในภาชนะบรรจุที่หนึ่งในช่วงแรกของการเพาะเลี้ยงเซลล์ นำ second-pass cells บางส่วนออกจากภาชนะบรรจุที่หนึ่งเมื่อหมดช่วงแรกของการเพาะ เลี้ยงเซลล์ และ เพาะเซลล์ที่นำออกมาจากภาชนะบรรจุที่หนึ่งในภาชนะบรรจุที่สองในช่วงที่สองของการ เพาะเลี้ยงเซลล์ 3
1. วิธีการในข้อถือสิทธิ 30 การนำ second-pass cells บางส่วนออกมา หมายถึง การเลือก เซลล์เพื่อที่จะเซลล์ที่ติดกับผิวภาชนะบรรจุที่หนึ่งออกมา 3
2. วิธีการในข้อถือสิทธิ 30 การนำ second-pass cells บางส่วนออกมา หมายถึง การเลือก เซลล์เพื่อที่จะเซลล์ที่ไม่ติดกับผิวภาชนะบรรจุที่หนึ่งออกมา 3
3. วิธีการในข้อถือสิทธิ 30 ภาชนะบรรจุที่หนึ่งจะมีโมเลกุลเร่งการเจริญเติบโตอยู่บน พื้นผิว และการเพาะเซลล์ในภาชนะบรรจุที่หนึ่ง หมายถึง เพาะเซลล์ในภาชนะบรรจุที่หนึ่งที่มี โมเลกุลเร่งการเจริญเติบโต 3
4. วิธีการในข้อถือสิทธิ 33 โมเลกุลเร่งการเจริญเติบโตเลือกมาจากรายการที่ประกอบ ด้วยคอลลาเจน ไพโบรเนตติน ปัจจัยการเจริญเติบโต และแอนตี้บอดี้สำหรับรีเซพเตอร์พื้นผิวเซลล์ ต้นกำเนิด 3
5. วิธีการในข้อถือสิทธิ 30 ภาชนะบรรจุที่สองนั้นจะมีโมเลกุลเร่งการเจริญเติบโตบน พื้นผิว และการเพาะเซลล์ในภาชนะบรรจุที่สอง หมายถึง เพาะเลี้ยงเซลล์ในภาชนะบรรจุที่สองที่ มีโมเลกุลเร่งการเจริญเติบโต 3
6. วิธีการในข้อถือสิทธิ 35 โมเลกุลเร่งการเจริญเติบโตเลือกมาจากรายการที่ประกอบ ด้วยคอลลาเจน ไพโบรเนตติน ปัจจัยการเจริญเติบโต และแอนตี้บอดี้สำหรับรีเซพเตอร์พื้นผิวเซลล์ ต้นกำเนิด
TH401002541A 2004-07-05 เทคนิคการทดลองหลอดแก้วสำหรับเซลล์ต้นกำเนิด TH64281B (th)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
TH72427A true TH72427A (th) 2005-11-21
TH64281B TH64281B (th) 2018-08-16

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100835034B1 (ko) 포유동물의 골수 세포 또는 제대혈 유래 세포와 지방조직을 이용한 심근 세포의 유도
CN114317443B (zh) 乳腺癌类器官培养液及其培养试剂组合和培养方法
CN114292816B (zh) 肺癌类器官培养液及其培养试剂组合和培养方法
CN113337458B (zh) 一种提高多能干细胞定向诱导心肌细胞产量及纯度的方法
JP2010539970A5 (th)
CN106636210A (zh) 转录因子组合诱导成纤维细胞转分化为类睾丸间质细胞的方法
WO2005120090A3 (en) In vitro techniques for use with stem cells
JP6463029B2 (ja) ヒト間葉系幹細胞を特異的に認識するモノクローナル抗体並びにこれを用いたヒト間葉系幹細胞の分離及び/または品質評価を行う方法
CN101538553A (zh) 从人类早期流产的胎儿组织分离纯化和培养增殖全能干细胞的方法
CN104774808A (zh) 将脐带间充质干细胞诱导分化成γ-氨基丁酸能神经元的方法
CN106834214B (zh) 一种诱导多能干细胞形成角质形成细胞的诱导培养基及诱导方法
CN110592007B (zh) 一种间充质干细胞及其制备方法和应用
CN102140440A (zh) 用骨髓组织块分离及培养禽类骨髓间充质干细胞的方法
CN104789531B (zh) 一种将脐带间充质干细胞诱导分化成多巴胺能神经元的方法
CN113717933A (zh) Fgf7在制备干细胞扩增与表型维持试剂中的应用
TH72427A (th) เทคนิคการทดลองหลอดแก้วสำหรับเซลล์ต้นกำเนิด
TH64281B (th) เทคนิคการทดลองหลอดแก้วสำหรับเซลล์ต้นกำเนิด
RU2708987C1 (ru) Способ извлечения стволовых клеток костного мозга с применением способа культивирования с субфракционированием и их пролиферации
CN107058225B (zh) 一种复合诱导培养基以及采用该培养基诱导脐带间充质干细胞成神经元样细胞的方法
CN113337460A (zh) 一种绵羊骨骼肌卫星细胞的高效分离和纯化方法
JP2023545340A (ja) 褐色またはベージュ脂肪細胞の幹細胞のin vitroまたはex vivoでの増幅のための方法
CN114703127A (zh) 一种脐带间充质干细胞神经向分化工艺
Hernández-Torres et al. Isolation and Culture of Quiescent Skeletal Muscle Satellite Cells
RU2296155C1 (ru) Штамм культивированных клеток растений serratula coronata l.
KR100512019B1 (ko) 사이클로스포린 a 또는 이의 유도체를 이용한 세포의노화를 억제하는 방법 및 배양배지