SU888861A1 - Способ регенерации растений клевера IN VIтRо - Google Patents
Способ регенерации растений клевера IN VIтRо Download PDFInfo
- Publication number
- SU888861A1 SU888861A1 SU802929693A SU2929693A SU888861A1 SU 888861 A1 SU888861 A1 SU 888861A1 SU 802929693 A SU802929693 A SU 802929693A SU 2929693 A SU2929693 A SU 2929693A SU 888861 A1 SU888861 A1 SU 888861A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- medium
- gamborg
- liquid
- hormones
- agarized
- Prior art date
Links
Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
Изобретение относитс к сельскому хоз йству и может быть использовано iB селекции и семеноводстве растений, в частности в селекции на клеточном уровне и дл ускоренного размножени и оздоровлени селекционного материала , в исследовани х по фитопатологии , физиологии и генетике растени Известны способы регенерации растений из клеток суспензионных культур клевера белого (Trifoeium repens L.) и люцерны-(наиболее близкого к клеверу рода семейства бобовых). В соответствии с этими способами регенерацию растений осуществл ют посредством получени каллусов из проростков клевера белого и листьев люцерны на агаризованных питательных средах с последующей дезинтеграцией каллусной ткани на клетки и клеточные агрегаты в жидких питательных средах размножени образовавшихс клеточных попул ций и формировани дифференцированных структур (почки, эмбриоиды а затем растений-регенерантов 1 и . Однако эти способы оказались неприемлемыми дл клевера лугового (trifptium pratense L- ), что св зано со специфическими требовани ми каждого вида растений к услови м, способствующим регенерации. Кроме того , получение каллусов из проростков приводит к потере исходных форм и затрудн ет оценку селекционного ма териала. Известен также способ регенерации растений клевера лугового из каллусной ткани, полученной из листовых эксплантатов, на агаризованных питательных средах 3. Однако этот способ неприменим дл клеточной селекции и не позвол ет получать большое число регенерантов в расчете на 1 эксплантат (в среднем получают 25 растений). Целью изобретени вл етс увеличение выхода регенерантов. Поставленна цель достигаетс тем, что каллусы получают из листьев посредством культивировани эксплантатов на модифицированной агаризованной среде в которую дополнительно ввод т итаконовую кислоту, каллусную .ткань помещают в жидкую среду Bg с кинетином и повышенной концентрацией тиамина - НСв, а образовавшиес клеточные суспензии кульг
гивируют в жидкой среде В без гормонов , сформировавшиес в cycneHStH проэмбриоиды культивируют на агаризованной среде Bg- без гормонов до .образовани эмбриогеиной ткани, проростков и растений-регенерантов.
Причем итаконовую кислоту ввод ч в агаризованную модифицированную среду Гамборга Bg. в количестве 2--4 мг/л.
Содержание тиамина - НСв в жидкой среде Гамборга В. составл ет 2025 мг/л.
Количество кинетина в жидкой среде Гамборга В составл ет 0,20 ,8 мг/л.
Способ осуществл етс следующим образом.
Семена культивируегвлх сортов и гибридов клевера лугового обрабаты- вают 30 мин в концентрированной серной кислоте (скарификаци и стерилизаци ) , затем промывают стерильной дистиллированной водой до нейтральной реакции и выдерживают в течение ч в темноте при 22±1С. Наклюнувшиес семена помещают на агаризованную среду Bj- с уменьшенной вдвое концентрацией всех вход щих в нее компонентов (1/2 Ъ) и инкубируют в закрытых прозрачных сосудах при
11юминесцентном освещении 8-10 тыс.лк и при фотопериоде 16 ч/сут, температуре 22il°C и относительной влажности воздуха 80+10% до образовани растений с 6-7 листь ми. Часть тройg чатых листьев используют дл получени каллусов, а растени с оставшимис 2-3 листь ми высаживают в почву . .
На листочках, предназначенных
o дл получени каллусов, делают р д надрезов вдоль жилок, помещают на питательную среду Вд-, в которую дополнительно ввод т 6000-8000 мг/л агар - агара или бактоагара, 200300 мг/л нитрата аммони и 2-4 мг/л
s итаконовой кислоты, содержание сахарозы увеличивают до 25000 30000 мг/л, железа (ГГ) сернокислого (РеЗОд- ) до 70-100 мг/л, трилона Б (Ка2.ЭДТА) до 90-130 мг/л
0 и внос т следукедие фитЬгормоны; 2,4-дихлорфеноксиуксусную кислоту (2,4-Д) 5-6 мг/л, кинетин 6-10 мг/ и ci-нафтилуксусную кислоту (НУК) 0,1-0,5 мг/л, рН реды довод т до 5 .5,8-6,0.
Состав среды Eg- (Gamborg et аВ., 1968) при рН 5,5 представлен в табл. 1.
Таблица 1
Материал инкубируют 12-14 дней |при непрерывном освещении люминесцентными лампами (освещенность 8,010 ,0 тыс. лк) г I температуре 22 + 1С и относительной влажности воздуха
95i5%.
В случае по влени на листочках бактериальной или грибной инфекции их удал ют с частью прилегающей к ним Питательной среды.
Образовавшиес каллусы использую Дл получени клеточных суспензий, помеща их в жидкую питательную среду Рг с 0,2-0,8 мг/л кинетина и 20-25 мг/л тиамина - НСЕ, (на каждый мл среды внос т 15-25 мг каллусной ткани). Материал инкубируют на встр хивающих аппаратах с числом колебаний 100-125 мин при освещенности 3-4 тыс о лк и температуре 24+2°С. Через 8-10 суток суспензии субкультивируют путем добавлени к 3-5 объемам свежей среды без гормонов 1-го объема суспензии. Через 2-3 недели в Суспензии образуютс проэмбриоиды (незрелые соматические зародыши), которые пересаживают на агаризованную среду 1/2 В без гормонов . Через 8-10 суток из проэмбриидов образуетс эмбриогенна ткань, которую пассируют на свежую среду того же состава. После 12-14 дней культивировани масса пересаженной
ткани увеличиваетс в 14-16 раз, и в ней развиваютс проростки, которые через 2-3 недели образуют растени регенеранты . Разросшуюс эмбриогенную ткань субкультивируют с 10-12дневным интервалом с целью получени новых проростков, в конце каждого цикла выращивани образовавшиес проростки перенос т на агаризованную среду 1/2 Вр без гормонов. Через 2-3 недели из проростков формируютс растени -регенеранты с 4-5 листь ми и корн ми. Регенеранты пересаживают в почву и выращивают 14-16 дней под прозрачной синтетической пленкой (дл предотвращени десикации), а затем в обычных услови х.
П р и м е р. Проводили регенерацию растений иЗ клеток суспензион80
б,45±0,14 342±24,4 530+10,0
3,60+0,17 180+17,6 330+18,7 . 98
Разность между вариантами с итаконовой кислотой и контролем без итаконовой кислоты достоверна при Р 0,0.1.
Полученные каллусы помещают в жидкую питательную среду с 0,5 мг/л кинетина и 20 мг/л тиамина из расчета 20 мг ткани на 1 мл среды и инкубируют на аппарате АВУ-1 (аппарат универсальный дл встр хивани жидкости в колбах и пробирках) при 100-125 колебани х в минуту и амплитуде колебаний 20-30 мм. В течение 8-10 дней из каллусов образуютс суспензии, содержащие в среднем 300 тыс. клеток/мл.
Дл получени проэмбриоидов из клеток суспензионных культур к 4 объемам свежей среды без гормонов добавл ли 1 объем суспензии. Через 2 недели в суспензии сформировались зеленые проэмбриоиды (10 штук в каждом мл среды), которые после пересаки на среду без гормонов образовали
ных культур клевера лугового сорта ВИК-7. При этом получены следующие результаты: 80% листовых эксплантатов на среде с трем фитогормонами: 5 мг/л 2,4-Д 4- 8 мг/л кинетика J +0,5 мг/л НУК и итаконовой кислотой (3 мг/л) через 2 недели образуют каллусы со средней массой 530±10 мг. Итаконова кислота (ненасыщенна двухосновна карбонова кислота HOOC-CH,j-(J-COOH вл етс продуктом
снг
обмена веществ некоторых плесневых грибов, например AspergiCCuj itaconlcus , в культуре тканей используетс впервые) стимулирует интенсивное
5 развитие каллусов у растений сорта ВИК-7 и у полученных из этого сорта регенерантов (табл. 2).
;Т а б л и ц а
82,2
53,0
50,0 91,7
эмбриогенную ткань. В этой ткани через 2 недели сформировались проростки , а затем растени -регенеранты . Разросшуюс эмбриогенную ткань
5 пересаживают с 10 дневным интервалом на свежую среду 1/2 В5-. В конце кг1Ждого цикла выращивани в ткани формируютс новые проростки (по 150 шт на 500 мг пересаженной ткани), ко0 торые перенос т на среду того же состава. Через 2 недели проростки образуют растени -регенеранты с 4-5 листь ми и корн ми. Последние высаживают в почву и выращивают 2
5 недели под полиэтиленовой пленкой, а затем в обычных услови х. Полученные растени -регенеранты свободны от фитопатогенной инфекции, нормально ростут и развиваютс , цветут и зав зывают семена. Весь процесс
О регенерации от получени каллусов до высадки растений-регенерантог в почву занимает в среднем три мес ца . Выход регенерантов в расчете на 1 эксплантат (листочек) составл ет: без субкультивировани эмбриогенной ткани - 7 тыс. растений, а при 2-кратном субкультивировании 1 млн,
Использование изобретени позвол ет быстро размножать и оздоравливать селекционный материал, обра- батывать мутагенами многочисленные клеточные попул ции и проводить эффективный отбор ценных генотипов методами клеточной селекции, получа из отобранных форм растени -регенеранты .
Claims (4)
1. Способ регенерации растений клевера in vitro, включающий получение каллусов на агаризованной питательной среде с последующей пересадкой их в жидкую питательную среду дл выращивани клеточных суспен-зий с последующим получением из них дифференцированных структур и растеНИИ - регенерантов, о т л и ч а ющ и и с тем, что, с целью увеличени выхода регенерантов, в качесТ ве агаризованной питательной среды . используют модифицированную среду Гамборга В с итаконовой кислотой, образовавшиес каллусы перенос т в жидкую среду Гамборга Bj с повышенной концентрацией тиамина - KGB , в которую в качестве фитогормона
ввод т кинетин, полученные клеточные суспензии пересаживают в жидкую среду Гамборга В5 без гормонов, а образовавшиес из клеток проэмбриоиды выращивают на агаризованной среде , Гамборга Вр- без гормонов с регул рным субкультивированием образовавшейс из них амбриогенной ткани и пересадкой сформировавшихс в этой ткани проростков на среду Гамборга В, без гормонов.
0
2.Способ по п. 1, отличающийс тем, что итаконовую кислоту ввод т в агаризованную модифицированную среду Гамборга BC в количестве 2-4 мг/л.
5
3.Способ по п. 1, отличающ и и с тем, что содержание тиамина-НСб в жидкой среде Гамборга В.. составл ет 20-25 мг/л.
4.Способ по п. 1, отличающийс тем, что количество кине0 тина в жидкой среде Гамборга BS составл ет 0,2-0,8 мг/л.
Источники информации, прин тые во внимание при экспертизе
1.Т.Н. Oswald et ag. СаССus and
5 pgantCet regeneration from cuCtures of &adino cCover and soybean .- PhysioC . PC ant, p. 39, 129134 , 1977.
2.Авторское свидетельство СССР
0 № 721036, кл. А 01 Н 3/00, 1978.
3.Авторское свидетельство СССР № 721035, кл. А 01 Н 3/00, 1978.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU802929693A SU888861A1 (ru) | 1980-05-23 | 1980-05-23 | Способ регенерации растений клевера IN VIтRо |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU802929693A SU888861A1 (ru) | 1980-05-23 | 1980-05-23 | Способ регенерации растений клевера IN VIтRо |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU888861A1 true SU888861A1 (ru) | 1981-12-15 |
Family
ID=20897751
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU802929693A SU888861A1 (ru) | 1980-05-23 | 1980-05-23 | Способ регенерации растений клевера IN VIтRо |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU888861A1 (ru) |
-
1980
- 1980-05-23 SU SU802929693A patent/SU888861A1/ru active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
WILLIAMS et al. | Embryogenesis and plantlet formation in tissue cultures of celery | |
EP0177738A1 (en) | Process for regenerating corn | |
CN112931198A (zh) | 一种菠萝抗寒种质的制备方法 | |
Dunstan et al. | In vitro studies on organogenesis and growth in Allium cepa tissue cultures | |
US4687743A (en) | Sunflower regeneration media, method of use and plants regenerated thereon | |
SU888861A1 (ru) | Способ регенерации растений клевера IN VIтRо | |
CN114424749A (zh) | 一种山麦冬离体快繁方法 | |
US20050003415A1 (en) | Media and methods for promoting maturation of conifer somatic embryos | |
US7598073B2 (en) | Methods for producing high yields of zygotic-like cotyledonary pine embryos utilizing media that include a disaccharide and glucose | |
US7888099B2 (en) | Methods for producing a synchronized population of conifer somatic embryos | |
SU1752284A1 (ru) | Способ клонального микроразмножени гибридов карельской березы | |
Ishii et al. | Somatic embryogenesis of Japanese conifers | |
HU183433B (en) | Process for producing multiplying material of digitalis lanata ehrh in tissue culture | |
US4681849A (en) | Sunflower induction, maintenance and regeneration media, methods of use and plants regenerated therefrom | |
Marcińska et al. | Transfer of the ability to flower in winter wheat via callus tissue regenerated from immature inflorescences | |
SU1701744A1 (ru) | Способ регенерации растений пшеницы в культуре тканей | |
RU2123256C1 (ru) | Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro | |
US7381562B2 (en) | Methods for producing cotyledonary pine embryos utilizing a gibberellin | |
RU2070787C1 (ru) | Способ получения растений-регенерантов rauwolfia vomitoria atz. | |
JP2931675B2 (ja) | シクラメンの不定芽の増殖用培地および増殖方法 | |
Merkle | Maturation of yellow-poplar somatic embryos | |
SU1704715A1 (ru) | Способ размножени гречихи IN VIтRо | |
AU2004202738B2 (en) | Use of abscisic acid in somatic embryogenesis of pine trees | |
SU852275A1 (ru) | Способ регенерации растенийлюцЕРНы | |
SU1541252A1 (ru) | Способ получени растений-регенерантов риса |