RU2123256C1 - Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro - Google Patents
Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro Download PDFInfo
- Publication number
- RU2123256C1 RU2123256C1 RU96116371A RU96116371A RU2123256C1 RU 2123256 C1 RU2123256 C1 RU 2123256C1 RU 96116371 A RU96116371 A RU 96116371A RU 96116371 A RU96116371 A RU 96116371A RU 2123256 C1 RU2123256 C1 RU 2123256C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- embryos
- temperature
- cultivated
- tulip
- isolated
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
Изобретение относится к сельскохозяйственной биотехнологии, предназначено для выполнения работ по селекции и семеноводству тюльпанов. Изолированные зародыши сначала культивируют на агаризованной среде Ван-Гофа, затем на модифицированной среде Мурасиге и Скуга, дополнительно содержащей азотнокислый никель 2,5 мг/л и хлорид алюминия 2,5 мг/л. В качестве регуляторов роста поочередно используют 6-бензиламинопурин, α-нафтилуксусную кислоту, β-индолилмасляную кислоту при последовательной смене температурного и светового режимов. Способ позволяет улучшить развитие гибридных зародышей от межвидовых скрещиваний, увеличить выход луковичек более чем в 74 раза по сравнению с условиями in vivo. 5 табл.
Description
Способ относится к сельскохозяйственной биотехнологии, в частности к способам культивирования изолированных зародышей растений, и может быть использован для выполнения работ по селекции и семеноводству тюльпанов.
При получении гибридов от отдаленных и разногеномных скрещиваний тюльпанов образуются маложизненные или нежизнеспособные семена и растения, при этом наблюдается медленное нарастание вегетативной массы и слабое размножение луковичек в ювенильном периоде, что затягивает селекционный процесс до 20 и более лет.
Известно, что повысить результативность селекционной работы возможно при использовании метода изолированных зародышей в условиях in vitro.
Аналоги способа получения посадочного материала из изолированных зародышей тюльпанов нам не известны. Имеющиеся сведения о размножении сортов тюльпанов из эксплантов различных органов in vitro - цветоноса, базальной части чешуек луковиц, верхушечных почек (C.M. Baker, P.D. Asher, H.F. Wilkins, 1989, A. G. Taeb and P.G. Alderson. 1990) не дают цельного представления о сроках изоляции, режимах выращивания и составе питательных сред на разных этапах культивирования эксплантов от вычленения на искусственную питательную среду до образования микролуковиц, что сдерживает применение метода изолированных зародышей в условиях in vitro в селекционном процессе тюльпанов.
Цель изобретения - улучшение развития и повышение жизнеспособности зародышей межвидовых и полиплоидных гибридов, получение микролуковиц из изолированных зародышей в условиях in vitro с одновременным увеличением коэффициента размножения тюльпанов в ювенильной стадии.
Поставленная цель достигается культивированием изолированных зародышей тюльпанов в условиях in vitro в 4 этапа, каждый из которых отличается использованием определенной питательной среды, температурным и световым режимом.
Исходный материал в виде неполностью вызревших зародышей размером 3-5 мм изолируют от материнского растения и культивируют на питательной среде Ван-Гофа до развития зародышей 6-7 мм; образовавшиеся проростки переносят на питательную среду Мурасиге и Скуга модифицированную, содержащую никель азотнокислый 2,5 мг/л и алюминий хлористый 2,5 мг/л, дополненную регуляторами роста 6-бензиламинопурином (6 БАП) 3 мг/л и α- нафтилуксусной кислотой (НУК) 0,15 мг/л, с увеличением концентрации сахарозы до 60000 мг/л. Культивируют при температуре 23 - 25oC и освещенности 2-3 тыс. люкс до развития достаточного количества вегетативной массы (образования дополнительных побегов). Через 12 - 32 недели (около 8 месяцев) в зависимости от генотипа (комбинации скрещивания, от которой были изолированы зародыши) вегетирующие растения переносят на ту же питательную среду (Мурасиге и Скуга модифицированную) с 6%-ной сахарозой, содержащей в качестве регулятора роста β-индолилмасляную кислоту (ИМК) 0,5 мг/л. Растения культивируют при температуре 4 - 9oC в условиях темноты в течение 9 - 12 недель до закладки микролуковиц (бульбообразующих побегов). В дальнейшем полученные растения с зачатками микролуковиц оставляют на той же среде при исходном световом и температурном режиме до полного формирования микролуковиц, которое продолжается в течение 30 - 150 дней в зависимости от генотипа зародышей.
Пример получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro, осуществляемый в 4 этапа, показан на комбинации Айсберг х св.опыление ((Лавли Серпрайз х Т. Кауфмана х св.опыление).
1 Этап - изоляция зародышей размером 3 - 5 мм от материнского растения на 8 питательных сред и культивирование при температуре 23 - 25oC, освещенности 2 - 3 тыс. люкс. После культивирования в течение 2 - 3 недель степень активности органогенеза устанавливали по характеру образования морфогенных зон и дифференцированной ткани (табл. 1).
Лучшей питательной средой для введения зародышей оказался вариант 8 (среда Ван-Гофа).
2 Этап - перенос развивающихся зародышей 6 - 7 мм на питательную среду Мурасиге и Скуга модифицированную, содержащую азотно-кислый никель 2,5 мг/л, хлорид алюминия 2,5 мг/л, с регуляторами роста 6-БАП от 2 до 3 мг/л и НУК от 0,1 до 0,2 мг/л, с увеличением сахарозы до 4 - 6%, при исходном световом и температурном режиме. Наилучшее нарастание вегетативной массы и образование дополнительных побегов получено с регуляторами 6 БАП 3 мг/л плюс НУК 0,15 мг/л при содержании сахарозы 6% (табл. 2 и 3).
3 Этап - перенос образовавшейся вегетативной массы на свежую среду Мурасиге и Скуга того же состава, содержащей в качестве регулятора β-индолилмасляную кислоту (ИМК) в концентрации 0,2 - 1,0 мг/л. Наибольшее число зачатков микролуковиц (бульбообразующих побегов) в течение около 12 недель получено при ИМК 0,5 мг/л (табл. 4).
4 Этап - продолжение культивирования растений на той же среде, при исходном температурном и световом режимах, до полного формирования микролуковиц.
Предложенный способ дает возможность улучшить развитие гибридных зародышей от межвидовых и разногеномных скрещиваний и увеличить выход луковичек более чем в 74 раза по сравнению с условиями in vivo, намного повысив таким образом эффективность селекционного процесса (табл. 5).
Claims (1)
- Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro, заключающийся в том, что неполностью вызревшие зародыши размером 3 - 5 мм предварительно культивируют на питательной среде Ван Гофа при температуре 23 - 25oC и освещенности 2 - 3 тыс.люкс до развития зародышей 6 - 7 мм, затем переносят на модифицированную среду Мурасиге и Скуга, дополнительно содержащую азотнокислый никель 2,5 мг/л, хлорид алюминия 2,5 мг/л, регуляторы роста 6-бензиламинопурин 3 мг/л, α-нафтилуксусную кислоту 0,15 мг/л и увеличенное до 60000 мг/л количество сахарозы, культивируют при том же температурном и световом режимах до развития вегетативной массы, переносят на среду Мурасиге и Скуга того же состава, содержащую в качестве регулятора роста β-индолилмасляную кислоту 0,5 мг/л и продолжают культивировать в темноте при температуре 4 - 9oC до закладки микролуковиц и затем культивируют в исходном температурном и световом режимах до полного формирования микролуковиц.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU96116371A RU2123256C1 (ru) | 1996-08-08 | 1996-08-08 | Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU96116371A RU2123256C1 (ru) | 1996-08-08 | 1996-08-08 | Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU96116371A RU96116371A (ru) | 1998-11-20 |
RU2123256C1 true RU2123256C1 (ru) | 1998-12-20 |
Family
ID=20184392
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU96116371A RU2123256C1 (ru) | 1996-08-08 | 1996-08-08 | Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2123256C1 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD3899C2 (ru) * | 2009-02-23 | 2009-12-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
MD31Z (ru) * | 2009-02-23 | 2010-01-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
-
1996
- 1996-08-08 RU RU96116371A patent/RU2123256C1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Биотехнология растений. Клеточная селекция. - Киев: 1990, с.37. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD3899C2 (ru) * | 2009-02-23 | 2009-12-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
MD31Z (ru) * | 2009-02-23 | 2010-01-31 | Институт Генетики, Физиологии И Защиты Растений Академии Наук Молдовы | Способ микроразмножения Echinacea purpurea L. Moench in vitro |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Bermejo et al. | In vitro embryo culture to shorten the breeding cycle in lentil (Lens culinaris Medik) | |
Cooke | Homogenization as an Aid in Tissue Culture Propagation of Platycerium and Davallia1 | |
US8921087B2 (en) | Cocoa somatic embryogenesis | |
CN105519442B (zh) | 一种欧李愈伤组织再生体系的培植方法 | |
CA1305322C (en) | Somatic embryogenesis and plant regeneration of cacao | |
Rhimi et al. | Plant regeneration via somatic embryogenesis from in vitro tissue culture in two Tunisian Cucumis melo cultivars Maazoun and Beji | |
JPH1033078A (ja) | ユリ属植物の球根生産方法 | |
RU2123256C1 (ru) | Способ получения микролуковиц тюльпанов из изолированных зародышей в условиях in vitro | |
JPH01165316A (ja) | 培養細胞からのワタの再生方法 | |
JPH0430809B2 (ru) | ||
HU183433B (en) | Process for producing multiplying material of digitalis lanata ehrh in tissue culture | |
Marcińska et al. | Transfer of the ability to flower in winter wheat via callus tissue regenerated from immature inflorescences | |
US20240188502A1 (en) | Methods and compositions for improved plant regeneration from microspore-derived embryos | |
RU2732450C1 (ru) | Способ клонального микроразмножения сортов ирги ольхолистной (Amelanchier alnifolia (Nutt.) Nutt. Ex M.Roem.) | |
RU2027757C1 (ru) | Способ получения растений - регенерантов in vitro | |
KR0170820B1 (ko) | 체세포배의 배양에 의한 재분화된 인삼식물체의 생산방법 | |
RU2229219C2 (ru) | Способ размножения гречихи in vitro с получением селекционно-ценных сомаклонов | |
KR19980020958A (ko) | 인삼자엽 유래의 단일배 배양을 통한 기내유식물체 생산방법 | |
RU2191502C2 (ru) | Способ получения производственной партии маточной элиты семян льна-долгунца | |
SU1750557A1 (ru) | Способ получени полиплоидных форм клевера лугового | |
SU1761057A1 (ru) | Способ микроклонального размножени ели обыкновенной ин витро | |
Kim et al. | Establishment of a qualified ex vitro-acclimatized whole plant reproduction system using secondary somatic embryos in Panax ginseng | |
JP3080784B2 (ja) | フウロソウの大量増殖方法 | |
SU1695855A1 (ru) | Способ выращивани растений кукурузы IN VIтRо | |
SU1720596A1 (ru) | Способ получени регенерантов подсолнечника в культуре соматических клеток |