SU1720596A1 - Способ получени регенерантов подсолнечника в культуре соматических клеток - Google Patents

Способ получени регенерантов подсолнечника в культуре соматических клеток Download PDF

Info

Publication number
SU1720596A1
SU1720596A1 SU904803717A SU4803717A SU1720596A1 SU 1720596 A1 SU1720596 A1 SU 1720596A1 SU 904803717 A SU904803717 A SU 904803717A SU 4803717 A SU4803717 A SU 4803717A SU 1720596 A1 SU1720596 A1 SU 1720596A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
plants
obtaining
sunflower
regenerants
callus
Prior art date
Application number
SU904803717A
Other languages
English (en)
Inventor
Александр Константинович Гапоненко
Ирина Петровна Воронина
Original Assignee
Институт общей генетики им.Н.И.Вавилова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт общей генетики им.Н.И.Вавилова filed Critical Институт общей генетики им.Н.И.Вавилова
Priority to SU904803717A priority Critical patent/SU1720596A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1720596A1 publication Critical patent/SU1720596A1/ru

Links

Landscapes

  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биотехнологии , в частности к культивированию изолированных тканей растений и может быть использовано в селекционной практике дл  создани  новых и улучшени  существующих сортов растений. Целью изобретени   вл етс  повышение выхода растений-регене- рантов и количества зон морфогенеза. Способ предусматривает получение из незрелых зародышей растений регенерантов путем двухэтапного культивировани  на модифицированных питательных средах Му- расиге-Скуга и Гамборга Bs. ы fe

Description

Изобретение относитс  к биотехнологии , в частности к культивированию изолированных тканей растений, и может быть использовано в селекционной практике дл  создани  новых и улучшени  уже известных сортов растений.
Одним из лимитирующих факторов выращивани  изолированных тканей и клеток подсолнечника  вл етс  низка  регенераци  растений.
Известны способы получени  расте- ний-регенерантов подсолнечника путем пр мого и непр мого соматического эмбриогенеза , основанные на подборе типа эксплантата и оптимального состава среды. Было показано вли ние гормонов 6-бензи- ламинопурина (БАП) и 2,4-дихлорфенокси- уксусной кислоты (2,4-Д) на р д эксплантатов синтетического сорта Sannace, а именно на листь , участки котиледонов , апексы побегов, сегменты гипо- котил . Оказалось, что среда (MS) Murashige and Skoog в сочетании с 2,4-Д и БАП и MS с 2,4-Д не вызывает образовани  побегов из каллуса ни дл  одного эксплантата , на среде MS с добавкой 1 мг/л БАП наблюдали регенерацию из глобул рного каллуса, полученного при культивировании
VI
чэ О
ел ю
сегментов гипокотил . Недостаток этого метода в том, что он касаетс  только одного редкого генотипа.
Известен пр мой соматический эмбриогенез и регенераци  растений из незрелых зародышей на среде с повышенным содержанием сахарозы. Через шесть дней начала культивировани  показано образование белых соматических зародышей непосредственно из котиледона зиготических, без образовани  каллуса. Незрелые зародыши на 7-14-й день после опылени  помещали на среды, содержащие MS соли; витамины среды Gamborgs (Bs); различные концентрации сахарозы (3%, 6%, 12%); в качестве добавок - 2,4-Д, дикамба, пиклорам, долил-3-уксусна  кислота (ИУК), и а-наф- тил-уксусна  кислота (НУК). Показано, что образование соматических зародышей не происходило на средах с 3% сахарозы и использованием в качестве добавок ИУК или НУК. Оптимальными  вл лись среды с 6 и 12% сахарозы в сочетании с 1 мг/л 2,4-Д или 3,3 мг/л дикамба. При помещении на данные оптимальные среды зрелых зароды.- шей или тканей асептических проростков (листьев, апексов, гипокотилей) пр мого соматического эмбриогенеза не наблюдалось, Недостатки этого способа в том, что он применим только к определенному типу экс- плантатов, а именно к незрелым зародышам на 7-14 день после опылени  (следовательно, малым гибкость), кроме того , степень регенерации полученных всходов остаетс  еще не очень достаточной.
Из известных способов наиболее близким по своей сущности  вл етс  способ регенерации подсолнечника, применимый к восьми сортам подсолнечника, описываю- щий регенерацию из незрелых зародышей на 4-21-й день после опылени . Культивирование по известному способу осуществл етс  в три этапа. Первый этап - образовани  эмбриогенных каллусов из клеток или тканей путем культивировани  в питательной индуцирующей среде, содержащей соли и витамины MS, аминокислоты, 9% сахарозы, гормон цитокининового типа БАП в концентрации 0,5-1 мг/л. Второй этап - культивирование эмбриогенных каллусов дл  их роста, развити  и прорастани  в среде, содержащей соли и витамины MS, аминокислоты, 3% сахарозы, 0,1-0,5 мг/л БАП. Третий этап состоит в перенесении проростков дл  их роста и развити  на среду , содержащую соли и витамины Bs, 1% сахарозы, гормон ауксинового типа - ИУК в концентрации 0,1-0,2 мг/л.
Недостатки этого способа состо т в необходимости осуществлени  изменений сред между первым, вторым и третьим этапами , что ведет к большей веро тности инфицировани , а также невысокой частоте регенерации.
Целью изобретени   вл етс  повышение выхода растений-регенерантов и количества зон морфогенеза.
Способ предусматривает культивирование эксплантата подсолнечника в питательной индуцирующей среде, содержащей гормоны дл  инициации эмбриогенных каллусов и дальнейшее культивирование эмбриогенных каллусов дл  их роста, развити  и прорастани , позвол ющее получить рас- тени -регенеранты.
Использование способа приводит к множественному образованию побегов из одного зародыша путем непр мого соматического эмбриогенеза.
Способ осуществл етс  следующим образом .
Используют восемь генотипов подсолнечника: сорта Передовик, Надежный, Енисей , Ультраскороспелый, Ржаксинский; инбредную линию 36-29; две гибридные линии М 1 65/1 А х НА 234 А х К 3064.
В качестве эксплантата дл  индукции каллуса используют незрелые зародыши на 9-21-й день после опылени . Изолированные в асептических услови х незрелые зародыши помещают на питательную среду MSc3% сахарозы, дополненную5 г/л КМОз, 100 мг/л инозитола, 500 мг/л казаминовых кислот, 0,5 мг/л БАП и 5 мг/л НУК с дальнейшим получением морфогенетического каллуса . Каллусную ткань выращивают в термостате при t 26-28° С, далее при фотопериоде 16 ч день - 8 ч ночь при t 26-28° С с перенесением каждые 25-30 дней на свежую питательную среду. Затем после роста каллусной ткани отделенные побеги перенос т на среду дл  корнеобразовани , содержащую соли Вб, 0,5% сахарозы, 2 мг/л ИМК, 0,5 мг/л пиридоксина HCI.
П р и м е р 1. Растени  подсолнечника сорта Ржаксинский выращивают в теплице в сосудах с почвой. В момент цветени  каждое растение отмечают этикеткой с указанием даты цветени . На 9-21-й день после опылени  сем нки стерилизуют путем погружени  на 1 мин в 50%-ный этанол, далее на 10 мин в 9%-ный раствор продажного хлорамина Б, затем промывают трижды стерильной дистиллированной водой. Изолированные в асептических услови х зародыши размером 0,1-0,8 см помещают на среду, содержащую соли и витамины MS,
3% сахарозы, 4 г/л КМОз, 90 мг/л инозито- ла, 400 мг/л казаминовых кислот, 0,4 мг/л БАП, 4 мг/л НУК. В течение первых 20 дней клеточные культуры выращивают в термостате при t 26-28° С, далее - при фОтопе- риоде 16 ч день - 8 ч ночь при t 26-28° С. Через 25-30 дней выросший каллус пересаживают на свежую питательную среду, одновременно отдел   образовавшиес  побеги и перенос  их на среду дл  корнерб- разовани , содержащую соли Bs, 0,5% сахарозы , 1 мг/л ИМК, 0,4 мг/л пиридоксин HCI. В каждом пассаже учитывают количество полученных растений-регенерантов и образовавшихс  зон морфогенеза.
П р и м е р 2. Способ осуществл етс  аналогично примеру 1, различие состоит в составе питательных сред дл  индукции каллуса и корнеобразовани . Питательна  индуцирующа  среда содержит соли и вита- мины MS, 3 % сахарозы, 5 г/л КМОз, 100 мг/л инозитола, 500 мг/л казаминовых кислот, 0,5 мг/л БАП, 5 мг/л НУК. Втора  среда содержит соли Bs, 0,5% сахарозы, 2 мг/л ИМК, 0,5 мг/л пиридоксина HCI.
ПримерЗ. В среду дл  индукции каллуса, содержащую соли и витамины MS, 3% сахарозы, добавл ют 6 г/л КМОз, 1tO мг/л инозитола, 600 мг/л казаминовых кислот , 0,6 мг/л БАП и 6 мг/л НУК. Среду дл  корнеобразовани , содержащую соли Bs, 0,5 % сахарозы дополн ют Змг/л ИМК и 0,6 мг/л пиридоксин НС.. Остальные приемы осуществл ют аналогично примеру 1.
П р и м е р 4. Незрелые зародыши сорта Енисей, собранные на 9-21-й день после опылени , когда они достигают размеров 0,1-0,8 см. стерилизуют, изолируют в асептических услови х и далее процесс культивировани  ведут по примеру 2.
Аналогично провод т испытани  с другими генотипами подсолнечника.
Предлагаемый способ ускорил в 1,2 раза по сравнению с известным процесс обра- зовани  зон морфогенеза и зачатков побегов путем непр мого соматического эмбриогенеза . Через 12-14 дней наблюдали образование зон морфогенеза и зачатков побегов на индуцирующей питательной среде. Повысилась частота образовани  морфогенетических линий в 1,5 раза, увеличилось число множественных зон морфогенеза в 4-6 раз.
Предлагаемый способ позволит получить регенерацию подсолнечника путем непр мого соматического эмбриогенеза.

Claims (1)

  1. Формула изобретени  Способ получени  регенерантов подсолнечника в культуре соматических клеток, включающий эксплантацию незрелых зародышей на модифицированную питательную среду Мурасиге-Скуга, получение на ней морфогенетического каллуса, регенерацию побегов, перенос их на модифицированную питательную среду Гамборга Bs дл  корнеобразовани  и адаптацию полученных растений к услови м открытого грунта, отличаю щ и и с   тем, что , с целью повышени  выхода растений-регенерантов и количества зон морфогенеза, получение каллуса и регенерацию побегов осуществл ют в один этап с добавлением в питательную среду 4000-6000 мг/л нитрата кали , 90-110 мг/л инозитола, 400-600 мг/л казаминовых кислот, 0,4-0,6 мг/л 6-бензи- ламинопурина, 4-6 мг/л а-нафтилуксусной кислоты и корнеобразование провод т в присутствии 1-3 мг/л индолилмасл ной кислоты, 0,4-0,6 мг/л пиридоксина HCI.
SU904803717A 1990-03-19 1990-03-19 Способ получени регенерантов подсолнечника в культуре соматических клеток SU1720596A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904803717A SU1720596A1 (ru) 1990-03-19 1990-03-19 Способ получени регенерантов подсолнечника в культуре соматических клеток

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904803717A SU1720596A1 (ru) 1990-03-19 1990-03-19 Способ получени регенерантов подсолнечника в культуре соматических клеток

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1720596A1 true SU1720596A1 (ru) 1992-03-23

Family

ID=21502642

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU904803717A SU1720596A1 (ru) 1990-03-19 1990-03-19 Способ получени регенерантов подсолнечника в культуре соматических клеток

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1720596A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Greco В., Tanzarella O.A., Carrosso G., Blanco A. Callus induction and shoot regeneration In sunflower (Helianthus annuus L) Plant. Sci Lett., 1984, v. 36, № 1, p. 73-78. Murashige T. and Skoog F. A revised medium of rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol. Plant., 1962, v. 15, p. 473-497. Finer I.I. Direct somatic embriogenesis and plant regeneration from, immature embryos of hybrid sunflower (Helianthus annuus L) on a high sucrose - containing medium. Plant. Cell. Reports., 1987, v. 6, №5, p. 372-374. GamborgO. L, Miller R.A., Ojlma K. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean rootcelfs. Exp. Cell. Res., 1968, v. 50, p. 151-158. Патент FR № 2605839. кл. А 01 Н 5/00. 1986. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5008200A (en) Propagating multiple whole fertile plants from immature leguminous
US4666844A (en) Process for regenerating cereals
US4806483A (en) Process for regenerating corn
US4665030A (en) Process for regenerating corn
US4684612A (en) Process for regenerating soybeans
Kawata et al. Micropropagation of passion fruit from subcultured multiple shoot primordia
US4830966A (en) Process for regenerating corn
SU1727514A3 (ru) Способ регенерации растений подсолнечника
EP0171593A1 (en) Sunflower regeneration through embryogenesis and organogenesis
EP0170904A1 (en) Sunflower regeneration through organogenesis
CA1305322C (en) Somatic embryogenesis and plant regeneration of cacao
EP0172377A1 (en) Sunflower regeneration through embryogenesis
WO1993012645A1 (en) Somatic embryogenesis and plant regeneration of cacao
SU1720596A1 (ru) Способ получени регенерантов подсолнечника в культуре соматических клеток
HU203933B (en) Method for regenerating cotton from cell culture
Pniewski et al. Organogenesis and long-term micropropagation of Polish pea cultivars
US4843005A (en) Process for regenerating corn
US4837152A (en) Process for regenerating soybeans
US4681849A (en) Sunflower induction, maintenance and regeneration media, methods of use and plants regenerated therefrom
SU1752284A1 (ru) Способ клонального микроразмножени гибридов карельской березы
CN115843690B (zh) 一种以金银花花药为外植体的再生方法
CN114467753B (zh) 一种银鹿枫香的组织培养方法
SU1729337A1 (ru) Способ первичного семеноводства гибридов кукурузы
WO2000016610A1 (en) A process for the induction of direct in vitro organogenesis in onion
Patil et al. Plant regeneration from leaf sheath cultures of some rabi sorghum cultivars