SU582745A3 - Способ получени туберкулина - Google Patents

Способ получени туберкулина

Info

Publication number
SU582745A3
SU582745A3 SU7301964669A SU1964669A SU582745A3 SU 582745 A3 SU582745 A3 SU 582745A3 SU 7301964669 A SU7301964669 A SU 7301964669A SU 1964669 A SU1964669 A SU 1964669A SU 582745 A3 SU582745 A3 SU 582745A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
tuberculin
proteins
protein
chromatography
inactivated
Prior art date
Application number
SU7301964669A
Other languages
English (en)
Inventor
Цумита Тору
Кувабара Сенси
Original Assignee
Мицуи Фармасьютикалз, Инкорпорейтед, (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Мицуи Фармасьютикалз, Инкорпорейтед, (Фирма) filed Critical Мицуи Фармасьютикалз, Инкорпорейтед, (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU582745A3 publication Critical patent/SU582745A3/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/35Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Mycobacteriaceae (F)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

1
Изобретение относитс  к способам получени  чистых белков, которые могут быть использованы дл  диагностики туберкулеза.
Известен способ получени  белка из туберкулезных бактерий путем отделени  бактериальной массы от жидкост добавлени  буферного раствора и органических растворителей, автолиза бактерий, отделени  нерастворимых продуктов автолиза и концентрировани препарата при помощи упаривани .
..Однако такой способ не обеспечивае высокой степени чистоты целевого продукта.
С целью повышени  степени чистоты целевого продукта по предлагаемому способу органическим растворителем обрабатывают инактивированные клетки K|ycobacterL.uTr tuberculosis штамм Аог5с1ма d В и подвергают их действию нуклеазы, а фильтрат хроматографически очищают и выдел ют целевой продук кристаллизацией .
Способ осуществл ют следующим образом .
Инактивированные клетки МусоЬасterCutn tuburcu Eo&is обрабатывают Органическими растворител ми, напри ер , кетонаьш, спиртами, карбоновыми
кислотами, предпочтительно ацетоном, метанолом или уксусной кислотой. Эти растворители можно использовать вместе с водой. Клетки, обработанные растворителем, подвергают варке с нуклеазами, например с рибонуклеазами , дезоксирибонуклеазами. Водорастворимые белки выдел ют из полученной смеси и подвергают диализу с применением буферов с рН 5,5-7,8, например, буфера (рН 7,0), содержащего трис- (оксиметил)-аминометан и хлористый водород, а также этилендиаминтетрауксускую кислоту (рП 7,2), динатрийфосфат , монокалийфосфат.

Claims (3)

  1. Диализованные белки фракционир уют хроматографией и/или ф льтpoвaниeм через гель; предпочтительнее хроматографи  на колонке с применением ионообменной целлюлозы или фильтрование через гель с применением, мостиковидносшитого декстранового полимера . vп  фракционировани  диализатов используют ионообменную целлюлозу например, аминоэтилцеллюлозу, диэтиламиноэтил (ДЭАЭ)-целлюлозу, триаминозтил (ТАЭ)-целлюлоау или эпихлоргидринтриз;таноламино (ЭХТЭО.ЛА) -целлюло .зу. Диализованные белки элюируют буфер ными смес ми. Кристаллические туберкулиновые белки растворимы в воде, их молекул  . иьай вес составл ет 3000-3500 в зависимости от клеток, примен емых дл  их получени , кожные пробы на тубер кулин показывают, что туберкулиновые белки обладают активностью в 10- 100 раз превьлиающей активность очище ных производных белков (ОПБ) на морс кие свинки, сенсибилизированные штам мом Аойама В или бациллой Кельметта Герена (БКГ), инактивизированных термообработкой микроорганизмов вида Mycobcicterc.Li-m tubcrcutosue. Туберкулиновые пептиды получают гидролизом кристаллических туберкули новых белков, фракционированием гид ролизатов этих белков хроматографие ИЛИ Фильтрованием через гель. Туберкулиновые белки подвергают гидролизу химическими или ферментати ными способами. Химический гидролиз провод т с помощью минеральных кислот , а ферментативный с применением протеолитического фермента, например трипсина, химотрипсина, пепсина, папаина, бактериальных протеиназ, карбопептидаз А и В. Полученные гидролизаты фракциониру ют хроматографией на колонке, бумажн хроматографией, высоковольтным бумажным электрофорезом, фильтрованием через гель. Фильтрование через гель осуществл ют с применением аммониевоацетатного буфера (рИ 5,9) через Сефадекс &-25 или КМ-Сефадекс , пиридино-ацетатного буфера (рН 4,5) через СЗ-Сефадекс Э--50 или пиридино-ацетатного буфера (рН 3,1). Туберкулиновые пептидн представл ю собой белые кристаллы, растворимые 13 воде, с молекул рным весом 50030J )0, Кожные пробы на туберкулин показывают , что туберкулиновые пептиды обладают более высокой, чем ОПБ, активностью , на морские свинки, сеисибилйзированные штаммом Аойайа В или БКГ, микроорганизмов Mycobactcriom tuberculosis инактивированных термообработкой . Пример 1. Культивированные клетки (100 г) штамма Аойама В Муcobacf егСитп ti/bbrcvitosCs инактивируют термообработкой при 120 С в течение 30 мин. Клетки вьщел ют из культуральной среды фильтрованием , затем их разрывают посредством звуковой обработки и обрабатывают ацетоном. Полученный остаток подвергают варке с рибонуклеазой и дезоксирибонуклеазой , и вываренную смесь центрифугируют дл  отделени  водорастворимых беЛков, Полученные водорастворимые белки диализуют с применением 0,001 м раствора буфера на трис-(оксиметил)- аминометане и хлористом водороде (рП 7,0), содержащего 0,0001 М раствор этилендиаминотетрауксусной кислоты. Полученный диализат хроматографируют на ДЭАЭ-целлюлозе. Элюирование провод т в среде, содерх ащей хлористый натрий. Весь активный туберкулин содержитс  во второй белковой фракции. Последующую хроматографию на Сефадексе &- провод т аналогично, и продукт фракционируют на три фракции. Весь активный туберкулин содержитс  в большей фракции. Активный туберкулин .кристаллизуетс  спонтанно при выдерживании раствора при в смешанном растворе того же буфера с очищенным ацетоном. Из 100 г клеток (мокрый вес) штамма Аойама В микроорганизма вида Иус-Оbctcterium tuberauEosLb получают 25 мг кристаллического туберкулинового белка . Туберкулиновый белок, полученный по этому способу, состоит из 89 остатков аминокислот, расположенных в следующем пор дке: НгК -Apr -Лей -Лей -дт-Ам 7 8 9 10 гТ -Пере - Tlfo - - Вал -Аиз-...Цис И то 71 72 73 -..Цис -,..Асп -Гли -Сер -Глу74 89 89 -Кет - ...Ала - Аиз - СООН Кожна  проба на туберкулин показыает , что полученный туберкулиновый елок обладает активностью в 100 раз ревышающей активность ОПВ на морсие свинки, сенсибилизированные штамом В или ЕКГ, инактивированых термообработкой. Пример
  2. 2. Получают белок с ктивностью туберкулина, с молекул рым весом 500 из БКГ по методике, писанной в примере 1, Пор док расположени  аминокислот того туберкулинового белка, состо щео из 135 остатков аминокислот: N-KOHевые и С-концевне аминокислоты, а акже первична  структура в основном акие же, что и у белков штамма Аойма В, инактивированных термообработ ой, Кожные пробы на туберкулин показыают , что активность этого туберкулиового белка почти соответствует акивности белка из штамма Аойама В, нактивированных термообработкой икроорганизмов My cQbCict.CrCi- Tn to bircutosift на морские свинки, сенсибили зированные инактивированными термооб работкой штаммами Аойама В или ЯКГ, Пример 3, Кристаллический туберкулиновый белок, получении по методике примера 1, подвергают ферме тативному гидролизу при в течен 6 ч с применением 1%-ного раствора трипсина при рН 8,4. ДвухразмерныП высоковольтный бумажный электрофорез полученного гидролизата провод т при 75 В/см в пиридино-ацетатном буфере (рН 4,5), после чего хроматографирую на бумаге в смеси бутанола, уксусной кислоты и воды ( 4 ,1 1 : 4 по объему Про вление приводит к отделению некоторых активных пептидов, один из которых представл ет собоГ пентапептид со следующим пор дком расположен аминокислот: 1 г 3 4 5 Н2Н - Асп - Глц - Сер- глу - Mem - СООН Выделен также нонапептид с молекул рным весом- 950. Кожные пробы на туберкулин показывают , что активность этих туберкулиновых пептидов составл ет 1-10 по отношению к активности исходного туберкулинового белка. Пример 4. Кристаллический туберкулиновый белок, полученный по методике примера 1, подвергают гидролизу в 0,5%-ном растворе химотрипсина Полученный гидролизат хроматографируют на колонке, заполненной Сефадексом G-25, причем элюирование про вод т аммониевоацетатным буфером при . рН 5,9. Полученные пептиды с активностью туберкулина затем фракционируют пиридинацетатным буфером (рН 3,1) на колонке, заполненной Довексом 1-Х2. Полученный туберкулиновый пентапептид имеет такую же структуру, как пептид, полученный по методике примера 3. Пример 5. Туберкулиновый белок, полученный по методике примера 2, обрабатывают, аналогичнопримеру 4. Получают такой же туберкулиновый пентапептид , как полученный по методике примера
  3. 3. , Формула изобретени . Способ получени  туберкулина путем обработки клеток Mycobacterium tubcrcofiobLs органическим растворителем, а затем ферментом, отделени  нерастворимых примесей и выделени  целевого продукта из фильтрата, отличающийс  тем, что, с целью повышени  степени чистоты целевого продукта, органическим растворителем обрабатывают инактивированные клетки Му&о bactCriom tubercutosCs штамм Аойама в и подвергают их действию нуклеазы , а фильтрат хроматографически очищают и выдел ют целевой продукт кристаллизацией.
SU7301964669A 1973-03-28 1973-09-19 Способ получени туберкулина SU582745A3 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP3464473A JPS5328966B2 (ru) 1973-03-28 1973-03-28

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU582745A3 true SU582745A3 (ru) 1977-11-30

Family

ID=12420131

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU7301964669A SU582745A3 (ru) 1973-03-28 1973-09-19 Способ получени туберкулина

Country Status (7)

Country Link
JP (1) JPS5328966B2 (ru)
CA (1) CA994267A (ru)
DD (2) DD114595A5 (ru)
DE (2) DE2405907A1 (ru)
NL (1) NL7311641A (ru)
SU (1) SU582745A3 (ru)
ZA (1) ZA734124B (ru)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10249771A1 (de) * 2002-10-24 2004-05-13 AMTEC-Anwendungszentrum für Mikrotechnologien Chemnitz GmbH Verfahren und Vorrichtung zur Entnahme von flüssigen Proben aus einem oder mehreren Druckbehältern

Also Published As

Publication number Publication date
DE2462373C2 (de) 1982-08-26
NL7311641A (ru) 1974-10-01
JPS49118822A (ru) 1974-11-13
DD114595A5 (ru) 1975-08-12
DE2462373A1 (de) 1976-11-11
CA994267A (en) 1976-08-03
ZA734124B (en) 1974-05-29
JPS5328966B2 (ru) 1978-08-17
DD109879A5 (ru) 1974-11-20
DE2405907A1 (de) 1974-10-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Howard et al. Specificity of the autolysin of Streptococcus (Diplococcus) pneumoniae
Ståhl et al. The synthesis of a D-amino acid ester in an organic media with α-chymotrypsin modified by a bio-imprinting procedure
US3943119A (en) Tuberculin active proteins and peptides from the cells of tubercle bacilli
US3708397A (en) Syrup conversion with immobilized glucose isomerase
US3888837A (en) Tuberculin active proteins and peptides from the cells of tubercle bacilli
CN105754892B (zh) 一种微生物谷氨酰胺转氨酶的分离纯化方法
Volesky et al. Microbial enzymes: production, purification, and isolation
Guex-Holzer et al. The isolation and chemical nature of capsular and cell-wall haptens in a Bacillus species
JPH02504465A (ja) オキアミ組織からの活性酵素の単離の改良
FR2520379A1 (fr) Procede de preparation d'un disaccharide-tripeptide et d'un disaccharide-tetrapeptide possedant des proprietes immunostimulantes
SU582745A3 (ru) Способ получени туберкулина
Takumi et al. Autolytic Enzyme System of Clostridium botulinum: II. Mode of Action of Autolytic Enzymes in Clostridium botulinum Type A
JP2657383B2 (ja) 新規な加水分解酵素とその製造方法
Ghuysen et al. Structure of the Cell Wall of Straphylococcus aureus, Strain Copenhagen. V. Isolation of Peptidases Active on the Peptide Moiety of the Cell Walls of Some Gram-Positive Bacteria
EP0444605B1 (en) Angiotensin converting enzyme inhibitor, method for preparing it, composition containing the same and use thereof
Smeaton et al. An inhibitor in Bacillus subtilis of its extracellular ribonuclease
RU2230325C2 (ru) Способ приготовления очищенного препарата ботулинического токсина типа а
SU1232148A3 (ru) Способ получени инсулина человека
Naughton et al. Esteropeptidase and thymotropic activity of a protein isolated from the mouse submaxillary gland
Anderson et al. The action of dilute aqueous NN-dimethylhydrazine on bacterial cell walls
US4157278A (en) Immunostimulatory agents
Kawata et al. Characterization of d-Alanyl-(d)-meso-2, 6-diaminopimelic Acid Endopeptidase from Streptomyces globisporus 1829
US3331751A (en) Protease elaborated by streptomyces moderatus sp.n
RU2088663C1 (ru) Способ получения экзопротеаз возбудителя мелиоидоза
Glitz et al. Characterization of a guanylic acid specific ribonuclease from Aspergillus fumigatus