SU1686000A1 - Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti - Google Patents

Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti Download PDF

Info

Publication number
SU1686000A1
SU1686000A1 SU894768118A SU4768118A SU1686000A1 SU 1686000 A1 SU1686000 A1 SU 1686000A1 SU 894768118 A SU894768118 A SU 894768118A SU 4768118 A SU4768118 A SU 4768118A SU 1686000 A1 SU1686000 A1 SU 1686000A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
bss
strain
restrictase
buffer
producer
Prior art date
Application number
SU894768118A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Геннадий Дмитриевич Серов
Тамара Анатольевна Терещенко
Лариса Ивановна Пучкова
Надежда Ивановна Речкунова
Сергей Харитонович Дегтярев
Original Assignee
Научно-исследовательский конструкторско-технологический институт биологически активных веществ Научно-производственного объединения "Вектор"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-исследовательский конструкторско-технологический институт биологически активных веществ Научно-производственного объединения "Вектор" filed Critical Научно-исследовательский конструкторско-технологический институт биологически активных веществ Научно-производственного объединения "Вектор"
Priority to SU894768118A priority Critical patent/SU1686000A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1686000A1 publication Critical patent/SU1686000A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Изобретение относитс  к биот хноло- гии и генной инженерии, в частности к обна- ружению микроорганизма, способного синтезировать сайт-специфическую рестриктазу , узнающую и расщепл ющую последовательность нуклеотидов СС (A/T)(A/T)GG и названную Bss Tl.The invention relates to biothography and genetic engineering, in particular to the detection of a microorganism capable of synthesizing a site-specific restriction enzyme that recognizes and cleaves the nucleotide sequence CC (A / T) (A / T) GG and called Bss Tl.

Целью изобретени   вл етс  вы вление штамма продуцента Bacillus stearothermophllus, обеспечивающего получение рестриктазы Bss Tl с более высоким выходом.The aim of the invention is to identify the producer strain Bacillus stearothermophllus, providing Bss Tl restriction enzyme with a higher yield.

Штамм бактерий В. stearothermophllus получен в результате поиска и отбора приThe strain of bacteria B. stearothermophllus obtained as a result of the search and selection at

экстремальных услови х культивировани  (68-70°С) продуцентов рестриктаэ среди почвенных микроорганизмов.extreme cultivation conditions (68-70 ° C) of restriction thai producers among soil microorganisms.

Штамм депонирован в ВКПМ ВНИИ генетики под редакционным номером В-4893 (коллекционный номер депозитора 360), а продуцируема  им эндонуклеаза рестрикции названа Bss Tl.The strain was deposited in the VKPM All-Union Scientific Research Institute of Genetics under the editorial number B-4893 (collection number of depositor 360), and the restriction endonuclease produced by it is called Bss Tl.

Морфолого-культуральные признаки. Клетки, выращенные в жидкой питательной среде, представл ют тонкие, с закругленными концами грамположительные подвижные палочки, одиночные или в коротких цепочках. Размер клеток 3-4-0,5-1,0 мкм.Morphological and cultural signs. Cells grown in a liquid nutrient medium are thin, with rounded ends, gram-positive motile rods, single or in short chains. The cell size is 3-4-0.5-1.0 microns.

О 00About 00

о о о оoh oh oh

Через 18-24 ч на плотной крахмало-аммиач- ной среде клетки образуют терминально расположенные овальные споры, расшир ющие ее тело. На рыбном питательном агаре - плоские округлые с неровным краем беспигментные колонии, 2,0-2,5 мм в диаметре , легко снимаютс  бактериологической петлей. Водорастворимый, пигмент в среде не обнаружен.After 18-24 hours on a dense starch-ammonia medium, the cells form terminally located oval spores, expanding its body. On fish nutrient agar, flat pigment-free colonies with a rough edge, 2.0-2.5 mm in diameter, are easily removed by a bacteriological loop. Water-soluble pigment in the environment is not detected.

Строгий аэроб. Клетки в жидкой среде растут диффузно, без образовани  пленки и осадка. Температурные границы роста 40- 70°С. Растет в присутствии 5% хлористого натри , при 10% - не растет. Рост отсутствует также в средах с 0,001% лизоцима и 0,02% азида натри . Тесты на каталазу и оксидазу положительные, на индол, сероводород и ацетоин отрицательные. Восстанавливает нитраты, синтезирует щелочную фосфатазу. Усваивает глюкозу и галактозу с образованием кислоты. Не ферментирует арабинозу, лактозу, сахарозу, ксилозу, ман- нит и глицерин.Strict aerobic. Cells in a liquid medium grow diffusely, without film formation and sediment. Temperature limits of growth 40-70 ° С. It grows in the presence of 5% sodium chloride, with 10% it does not grow. Growth is also absent in media with 0.001% lysozyme and 0.02% sodium azide. Tests for catalase and oxidase positive, for indole, hydrogen sulfide and acetoin negative. Restores nitrates, synthesizes alkaline phosphatase. Absorbs glucose and galactose to form acid. Does not ferment arabinose, lactose, sucrose, xylose, mannitol and glycerin.

Штамм чувствителен к пенициллину, ампициллину, мономицину, тетрациклину, стрептомицину, левомицетину, оксацилли- ну, карбеницилину, гентамицину, устойчив к налидиксовой кислоте. Штамм не патогенен .The strain is sensitive to penicillin, ampicillin, monomitsinin, tetracycline, streptomycin, chloramphenicol, oxacillin, carbenicillin, gentamicin, resistant to nalidixic acid. Strain is not pathogenic.

Культивирование провод т в питательной среде, содержащей 1 % бактотриптока, 0,5% дрожжевого экстракта, 1 % натри  хлористого , рН 7,0 в колбах на качалке со скоростью перемешивани  200-250 об/мин при 68-70°С. Выход биомассы 3,0-3,5 г влажных клеток на 1 л среды. Выход фермента Bss TI не менее 10000 ед. акт,/г влажной биомассы.The cultivation is carried out in a nutrient medium containing 1% bactotrytok, 0.5% yeast extract, 1% sodium chloride, pH 7.0 in flasks on a shaker with a stirring speed of 200-250 rpm at 68-70 ° C. Biomass yield 3.0-3.5 g of wet cells per 1 liter of medium. The output of the Bss TI enzyme is not less than 10,000 units. act, / g wet biomass.

Полученна  рестриктаза BssTI характеризуетс  следующими свойствами: узнает и специфически расщепл ет последовательность нуклеотидов CC(A/TXA/T)GG, оптимальное значение рН дл  действи  рестриктазы 7,5-8.0, оптимальна  температура действи  50-55°С, оптимальна  концентраци  NaCI 50 мМ.The resulting BssTI restrictase has the following properties: it recognizes and specifically cleaves the nucleotide sequence CC (A / TXA / T) GG, the optimum pH value for restrictase is 7.5-8.0, the optimal temperature is 50-55 ° C, the optimal concentration of NaCl is 50 mM .

Определ ющие отличи  предлагаемого штамма В. stearothermophlliis (360) В-4893: высокое содержание рестриктазы Bss TI, составл ющей 10000 ед.акт./г влажной биомассы (в 5 раз выше), отсутствие патоген- ности штамма, использование дл  культивировани  микроорганизмов простой дешевой среды.The defining differences of the proposed strain B. stearothermophlliis (360) B-4893: a high content of Bss TI restriction enzyme of 10,000 units of act. / G of wet biomass (5 times higher), the absence of the pathogenicity of the strain, the use of simple microorganisms cheap environment.

П р и м е р 1. Получение биомассы.PRI me R 1. Obtaining biomass.

Клетки В. stearotnermophllus (360), хран щиес  подслоем вазелинового масла при 4°С, высевают на скошенный питательный агар и инкубируют при 68-70°С в течение 18ч. Затем клетки внос т в колбу с 50 млB. stearotnermophllus cells (360), stored under a layer of vaseline oil at 4 ° C, are seeded on stubble nutrient agar and incubated at 68-70 ° C for 18 hours. The cells are then introduced into a flask with 50 ml.

жидкой питательной среды и выращивают инокул т на качалке со скоростью вращени  200-250 об/мин при 68-70°С 18-20 ч. Полученную культуру из расчета 5-10% исполь .зуют дл  засева 250 мл среды, содержащей 1% бактотриптона, 0,5% дрожжевого экстракта , 1% натри  хлористого. Дальнейшее культивирование провод т 16-18 ч на качалке в этих же услови х. Биомассу собираютliquid nutrient medium and inoculum is grown on a rocking chair with a rotation speed of 200-250 rpm at 68-70 ° C for 18-20 h. The resulting culture at the rate of 5-10% uses 250 ml of medium containing 1% bactotrypton for seeding , 0.5% yeast extract, 1% sodium chloride. Further cultivation was carried out for 16-18 hours on a rocking chair under the same conditions. Biomass collected

центрифугированием в течение 30 мин при 5000 об/мин на центрифуге Mistral.by centrifuging for 30 minutes at 5000 rpm in a Mistral centrifuge.

Выход сырой биомассы 3,5 г/л культу- ральной жидкости.Crude biomass yield of 3.5 g / l culture liquid.

П р и м е р 2. Выделение и очисткаPRI mme R 2. Isolation and purification

рестриктазы Bss TI.restrictase Bss TI.

10 г клеток суспендируют в 30 мг 0,02 М трис-HCI буфера, рН 7,5, содержащего 1х10 3М/ -меркаптоэтанола и 0,1 % тритона Х-100, разрушают на ультразвуковом дезинтеграторе . Обломки клеток удал ют центрифугированием и надосадочную жидкость нанос т на колонку с биогелем А-0,5 М объемом 500 мл, уравновешенную 0,02 М калий- фосфатным буфером, содержащим 1x10 М10 g of cells are suspended in 30 mg of 0.02 M Tris-HCl buffer, pH 7.5, containing 1x10 3M / -mercaptoethanol and 0.1% Triton X-100, destroyed in an ultrasonic disintegrator. Cell debris is removed by centrifugation and the supernatant is applied to a 500 ml A-0.5 M biogel column, equilibrated with 0.02 M potassium phosphate buffer containing 1 x 10 M

/ -меркаптоэтанола, 5x10 М ЭДТА, 0,8 М NaCI, 0,1% тритона Х-100 (буфер А). Фермент элюируют тем же буфером со скоростью 20 мл/ч. Фракции объемом 10 мл собирают и анализируют на присутствие/ -mercaptoethanol, 5x10 M EDTA, 0.8 M NaCI, 0.1% Triton X-100 (buffer A). The enzyme is eluted with the same buffer at a rate of 20 ml / h. Fractions of 10 ml are collected and analyzed for the presence of

фермента. Фракции, содержащие ректрик- тазную активность, объедин ют и диализу- ют против 2 л 0,02 М ка-лий-фосфатного буфера, рН 7,5, содержащего М /3- меркаптоэтанолаибхЮ М ЭДТА (буфер В),enzyme. The fractions containing the recryctase activity are combined and dialyzed against 2 liters of 0.02 M potassium phosphate buffer, pH 7.5, containing M / 3-mercapto ethanol and M EDTA (buffer B),

мен   буфер дважды. Диализат нанос т на колонку объемом 50 мл с ДЕАЕ-целлюлозой, уравновешенную буфером В. Колонку промывают буфером В и адсорбированный фермент элюируют 500 мл градиента NaCIchange buffer twice. Dialysate was applied to a 50 ml column with DEAE cellulose, equilibrated with buffer B. The column was washed with buffer B and the adsorbed enzyme was eluted with 500 ml of NaCI gradient

(0,1-ОМ) в буфере В. Колонку промывают буфером В и адсорбированный фермент элюируют 500 мл градиента NaCI (0,1-ОМ) в буфере В. Фракции, элюированные при 0,40-0,55 М NaCI, содержащие рестриктазу,(0,1-OM) in buffer B. The column is washed with buffer B and the adsorbed enzyme is eluted with 500 ml of NaCI gradient (0.1-OM) in buffer B. Fractions eluted at 0.40-0.55 M NaCI containing restrictase ,

объедин ют и диализуют против 2 л буфера В, мен   его дважды. Фермент после диализа нанос т на колонку с фосфоцеллюлозой Р-11 объемом 20 мл, уравновешенную буфером В. Элюацию фермента провод т 300 млcombine and dialyze against 2 L of buffer B, changing it twice. The enzyme after dialysis is applied to a 20 ml phosphocellulose P-11 column, equilibrated with buffer B. The enzyme is eluted with 300 ml

градиента NaCI (0-1,ОМ) в буфере В. Фракции , содержащие максимальную активность рестриктазы, элюируемые при 0,66-0,7 М NaCI, объедин ют и диализуют против буфера В, содержащего 0,1 М NaCI и 50% глицерина ,NaCl gradient (0-1, OM) in buffer B. Fractions containing the maximum activity of restrictase, eluted at 0.66-0.7 M NaCl, are combined and dialyzed against buffer B containing 0.1 M NaCl and 50% glycerol ,

За единицу активности принимают минимальное количество фермента, необходимого дл  полного расщеплени  1 мкг ДНК фага А в течение 1 ч при 50°С. ФерментныйPer unit of activity, the minimum amount of enzyme necessary for complete cleavage of 1 µg of phage A DNA for 1 hour at 50 ° C is taken. Enzyme

препарат хранитс  при -20°С. Выход фермента 10000 ед./r биомассы, активность 10000 ед./мл.the preparation is stored at -20 ° C. The output of the enzyme is 10,000 units / r of biomass, the activity is 10,000 units / ml.

Дл  определени  последовательности нуклеотидов, узнаваемой рестриктазой Bss TI, провод т гидролиз ДНК фага ре- стриктазами Bss TI и Sty I по отдельности, а также совместный гидролиз этими рестрик- тазами. Наблюдаема  картина полного совпадени  фрагментов, полученных при гидролизе ДНК рестриктазами Bss TI и Sty I порознь и совместно, указывает на то, что рестриктаэа Bss TI  вл етс  изомером Sty I, узнает и расщепл ет последовательность CC(A/TXA/T)GG,.To determine the sequence of nucleotides recognized by the Bss TI restriction enzyme, the DNA of the phage is restricted by the Bss TI and Sty I restriction enzymes separately, as well as the joint hydrolysis with these restrictases. The observed picture of the complete coincidence of fragments obtained during DNA hydrolysis with Bss TI and Sty I restriction enzymes separately and together indicates that the Bss TI restriction enzyme is an isomer of Sty I, recognizes and cleaves the CC sequence (A / TXA / T) GG ,.

00

Полученный штамм обладает следующими преимуществами по сравнению с известным: растет на более доступной, дешевой среде без антибиотиков, обеспечивает повышенный выход рестриктазы BssTI.The resulting strain has the following advantages compared with the known one: it grows on a more affordable, cheap medium without antibiotics, provides an increased yield of BssTI restrictase.

Поскольку рестриктаза Bss TI имеет сайт узнавани  CC(A/TXA/T)GG, идентичный сайту узнавани  Sty I, она может заменить Sty I в экспериментах по фрагментации ДНК А по этим сайтам.Since the Bss TI restriction enzyme has a CC (A / TXA / T) GG recognition site, identical to the Sty I recognition site, it can replace Sty I in DNA fragmentation experiments on these sites.

Claims (1)

Формула изобретени  Штамм бактерий Bacillus stearo- 15 thermophllus ВКПМ В-4893 - продуцент рестриктазы BSSTI.BACKGROUND OF THE INVENTION Bacterial strain Bacillus stearo-15 thermophllus VKPM B-4893 - producing BSSTI restrictase.
SU894768118A 1989-12-11 1989-12-11 Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti SU1686000A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894768118A SU1686000A1 (en) 1989-12-11 1989-12-11 Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894768118A SU1686000A1 (en) 1989-12-11 1989-12-11 Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1686000A1 true SU1686000A1 (en) 1991-10-23

Family

ID=21484142

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894768118A SU1686000A1 (en) 1989-12-11 1989-12-11 Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1686000A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Roberts R.T. Restrictions enzymes and their isoschlzomers. - Nucl. Acids Res., 1988, v. 16, p. 271-313. Mfse K. and NakaJIma K. Purification of a new restriction endonuclease, Sty I, from Escherlchla coll carrejlng hsd mlnlplasmid, - Jene, 1985, v. 33, p. 357-361. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4774179A (en) Process for preparing a 7-aminocephalosporanic acid compound
US5702939A (en) Glucosamine-6-phosphate deaminase and process for producing the same
SU1686000A1 (en) Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti
SU1124889A3 (en) Method of obtaining n-carbamyl phenylglycine derivatives
CN1816623B (en) Novel microorganism, maltose phosphorylase, trehalose phosphorylase, and processes for producing these
US4425432A (en) Propagation of microbial cells on single carbon products
JP3235904B2 (en) Thermostable mannose isomerase, method for producing the same, and method for producing mannose using the same
DK158316B (en) METHOD FOR PREPARING 3-SUBSTITUTED 7-AMINO-3-CEPHEM-4-CARBOXYLIC ACID DERIVATIVES
SU1645300A1 (en) Streptomyces fradiae strain: producer of restrictase sfr 1
US3826715A (en) Novel amylase and process for preparing the same
SU1645293A1 (en) Strain bacteria streptococcus faecalis - is a producer of restrictase sfa n
SU1689400A1 (en) Strain of bacteria flavobacterium balustinum - a producer of restrictase fbei
CA1159783A (en) Process for producing 6-aminopenicillanic acid and 6-aminopenicillanic acid s-oxide
JP3820418B2 (en) Novel chitinase and method for producing the same
RU2077577C1 (en) Strain of bacterium deleya marina - a producer of alkaline phosphatase and a method of alkaline phosphatase preparing
SU1650697A1 (en) The strain of bacteria BacILLUS LI сННI FоrmIS - producing restrictase B @ 13I
US5731184A (en) Process for producing N-acetyl-D-glucosamine deacetylase
JPS6243677B2 (en)
SU1659480A1 (en) Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1
SU1724689A1 (en) Method for preparation of restriction endonuclease, recognizing and splitting the nucleotide sequence 5ъtgatca3ъ
SU1631080A1 (en) Strain of bacteria bacilius megaterium - producer of restrictase bme 361 i
SU1705347A1 (en) Strain of bacteria escherichia coli for @@@-deoxyadenosine preparation
SU1440919A1 (en) Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease
RU2001952C1 (en) Strain of bacterium rhizobium leguminosarum - a producer of restriction endonuclease rle 691
JP3873512B2 (en) Method for producing D-3- (2-naphthyl) alanine