SU1659480A1 - Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1 - Google Patents

Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1 Download PDF

Info

Publication number
SU1659480A1
SU1659480A1 SU894724899A SU4724899A SU1659480A1 SU 1659480 A1 SU1659480 A1 SU 1659480A1 SU 894724899 A SU894724899 A SU 894724899A SU 4724899 A SU4724899 A SU 4724899A SU 1659480 A1 SU1659480 A1 SU 1659480A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
strain
restrictase
enzyme
act
klebsiella pneumoniae
Prior art date
Application number
SU894724899A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ирина Сергеевна Андреева
Галина Николаевна Афиногенова
Юрий Петрович Зернов
Леонид Рудольфович Лебедев
Нина Михайловна Пустошилова
Original Assignee
Научно-Исследовательский Конструкторско-Технологический Институт Биологически Активных Веществ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-Исследовательский Конструкторско-Технологический Институт Биологически Активных Веществ filed Critical Научно-Исследовательский Конструкторско-Технологический Институт Биологически Активных Веществ
Priority to SU894724899A priority Critical patent/SU1659480A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1659480A1 publication Critical patent/SU1659480A1/en

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биотехнологии и генной инженерии. Целью изобретени   вл етс  вы вление штамма Klebslella pneumoniae ВКПМ В-4894 (378), нетребовательного к питательным средам, обеспечивающего более высокий выход рестриктазы, способный узнавать и расщепл ть последовательность нуклеотидов CCGCGG. Штамм получен в результате поиска продуцентов рестриктаз, выделен из воздуха, растет на простой дешевой питательной среде отечественного производства , обеспечивает повышенный выход рестриктазы при более простом экономичном способе выделени  фермента по сравнению с известным. Из 1 г влажной биомассы выдел ют40000 ед акт. фермента с активностью 30000 ед акт/млThis invention relates to biotechnology and genetic engineering. The aim of the invention is the detection of the Klebslella pneumoniae strain VKPM B-4894 (378), which is undemanding to nutrient media, providing a higher yield of restrictase, capable of recognizing and cleaving the sequence of nucleotides CCGCGG. The strain obtained as a result of searching for producers of restriction enzymes, isolated from air, grows on a simple cheap nutrient medium of domestic production, provides an increased yield of restrictase with a simpler, more economical method for isolating the enzyme compared to the known one. From 1 g of wet biomass release 40000 units of the act. enzyme with an activity of 30,000 units of act / ml

Description

сл Сsl C

Изобретение относитс  к биотехнологии и генной инженерии, в частности к получению рестриктазы, способной узнавать и расщепл ть последовательность нуклеотидов CCGCGG.This invention relates to biotechnology and genetic engineering, in particular to the production of a restriction enzyme capable of recognizing and cleaving the nucleotide sequence CCGCGG.

Целью изобретени   вл етс  вы вление штамма Klebsiella pneumoniae ВКПМ В- 4894 (378), нетребовательного к питательным средам, обеспечивающего более высокий выход рестриктазы, способной узнавать и расщепл ть последовательность нуклеотидов CCGCGG.,The aim of the invention is the detection of the Klebsiella pneumoniae VKPM B-4894 (378) strain, which is undemanding to nutrient media and provides a higher yield of restrictase capable of recognizing and cleaving the nucleotide sequence CCGCGG.

Штамм Klebslella pneumoniae 378 выделен из воздуха в результате поиска штаммов - продуцентов рестриктаз.The strain Klebslella pneumoniae 378 isolated from the air as a result of the search for strains - producers of restriction enzymes.

Штамм Klebsiella pneumoniae 378 характеризуетс  следующими признаками.The strain Klebsiella pneumoniae 378 is characterized by the following features.

Морфологические признаки Клетки в виде укороченных палочек часто овальной формы, неподвижные споры не образуют грамотрицательные, как правило имеют капсулу, длина и толщина клеток колеблютс  от 0,5 до 7 мкм и от 0,3 до 1,5 мкм соот- ветственно, располагаютс  клетки единично, парами, редко цепочкамиMorphological features The cells in the form of shortened rods are often oval in shape, the fixed spores do not form gram-negative, as a rule they have a capsule, the length and thickness of the cells vary from 0.5 to 7 µm and from 0.3 to 1.5 µm, respectively, the cells are located single, in pairs, rarely in chains

Культурадьные признаки. На плотных питательных средах образует, как правило, белесые, выпуклые, блест щие колонии, непрозрачные , встречаютс  колонии отличные по морфологии от основного типа - мелкие суховатые, крупные прозрачные, отличающиес  друг от друга консистенцией колонии .Culture signs. On dense nutrient media it forms, as a rule, whitish, convex, luminous colonies, opaque, there are colonies different in morphology from the main type - small dryish, large transparent, differing from each other in texture of the colony.

ОABOUT

сл юthe next

0000

оabout

Оптимальна  температура роста штамма 30-37°С, предел от 12 до 43°С, оптимум рН 7,2.The optimal growth temperature of the strain is 30-37 ° C, the limit is from 12 to 43 ° C, the optimum pH is 7.2.

Физиолого-биохимические признаки. Штамм Klebsiella pneumoniae 378 отличает высока  биохимическа  активность: усваивает глюкозу, лактозу, маннит, сахарозу, дульцит, рамнозу, ксилозу, мальтозу, сорбит , арабинозу, рафинозу, глицерин, крахмал; восстанавливает нитраты, положителен по каталазе, лизиндекарбок- силазе, в реакции Фогес-Проскауэра; усваивает малонат, цитрат; не выдел ет индол, сероводород; отрицателен по уреазе, орни- тиндекарбоксилазе, аргининдегидролазе, в реакции с метиловым красным, по оксидазе, не разжижает желатин. Соотношение Г + Ц 55,4 моль.%.Physiological and biochemical signs. The strain Klebsiella pneumoniae 378 is distinguished by its high biochemical activity: it assimilates glucose, lactose, mannitol, sucrose, dulcite, rhamnose, xylose, maltose, sorbitol, arabinose, raffinose, glycerin, starch; restores nitrates, positive for catalase, lysine decarboxy-force, in the reaction of Voges-Proskauer; absorbs malonat, citrate; does not release indole, hydrogen sulfide; negative for urease, ornithine decarboxylase, arginine dehydrolase, in reaction with methyl red, for oxidase, does not liquefy gelatin. The ratio G + C 55.4 mol.%.

Штамм Klebsiella pneumoniae 378 обладает устойчивостью к пенициллину, эритромицину , олеандомицину, оксациллину. ристомицину, сульфатиазолу, менкомици- ну, чувствителен к тетрациклину, стрептомицину , мономицину, неомицину, левомицетину, канамицину, полимиксину, ампициллину, гентамицину, рифампицину, слабо чувствителен к карбенициллину.The strain Klebsiella pneumoniae 378 is resistant to penicillin, erythromycin, oleandomycin, oxacillin. ristomycin, sulfathiazole, mencomycin, is sensitive to tetracycline, streptomycin, monomitsin, neomycin, levomycetin, kanamycin, polymyxin, ampicillin, gentamicin, rifampicin, is slightly sensitive to carbenicillin.

Штамм хранитс  в жидкой питательной среде с добавлением глицерина до 15% при минус 60°С.The strain is stored in a liquid nutrient medium with the addition of glycerin up to 15% at minus 60 ° C.

Продуцируема  предлагаемым штаммом рестриктаза Крп 378 1 характеризуетс  следующими свойствами: узнает и специфически расщепл ет последовательность нук- леотидов CCGCGG; оптимальное значение рН дл  действи  рестриктазы 7,5-8,5; дл  про влени  активности рестриктазы требуютс  ионы Мд2+, оптимальна  концентраци  10 мМ, оптимальна  концентраци  NaCI в реакционной смеси 50-70 мМ; оптимальна  температура 37°С.Produced by the proposed restriction enzyme strain, CrP 378 1 is characterized by the following properties: it recognizes and specifically cleaves the sequence of nucleotides CCGCGG; the optimum pH for restriction enzyme action is 7.5-8.5; MD2 + ions are required for the activity of restriction enzymes, the optimal concentration is 10 mM, the optimal concentration of NaCl in the reaction mixture is 50-70 mM; the optimum temperature is 37 ° C.

Дл  поддержани  штамма Klebsiella Р378 используют рыбный питательный агар (РПА).To maintain the Klebsiella P378 strain, fish nutrient agar (RPA) is used.

Дл  культивировани  и ферментации К. pneumoniae 378 примен ют питательную среду следующего состава, г/л дистиллированной воды:For cultivation and fermentation of K. pneumoniae 378, nutrient medium of the following composition is used, g / l distilled water:

Пептон10Peptone10

Дрожжевой экстракт5Yeast extract5

NaCI5NaCI5

Глюкоза добавл етс  перед засевом до 1%.Glucose is added before seeding to 1%.

Культивирование провод т при 30 С с хорошей аэрацией (200 об/мин) на качалке в течение 15-16 ч.The cultivation is carried out at 30 ° C with good aeration (200 rpm) on a rocking chair for 15-16 hours.

Выход биомассы: 8-12 г/л культураль- ной жидкости.Biomass yield: 8-12 g / l of culture fluid.

Выход рестриктазы Крп 3781:40000 ед.акт/г биомассы.The output of restrictase Krp 3781: 40000 units of act / g of biomass.

Пример. Культивирование штамма и получение биомассы.Example. Cultivating the strain and obtaining biomass.

Клетки Klebsiella pneumoniae 378 размораживают при 37°С и высевают в жидкую питательную среду, содержащую пептон (10 г), экстракт (5 г), NaCI (5 г) и дистиллированную воду до 1 л. Глюкозу добавл ют перед засевом до 1%. После 24 ч инкубировани  в термостате при 30°СKlebsiella pneumoniae 378 cells are thawed at 37 ° C and seeded into liquid nutrient medium containing peptone (10 g), extract (5 g), NaCI (5 g) and distilled water to 1 l. Glucose is added before seeding to 1%. After 24 h incubation in a thermostat at 30 ° C

0 штамм высевают на плотную среду с РПА дл  получени  отдельных колоний. Выращивают при тех же услови х. Выросшие клетки перенос т петлей с агара в колбы с 50 мл жидкой питательной среды дл  получени The 0 strain is plated on solid medium with RPA to obtain individual colonies. Grown under the same conditions. Grown cells are looped from agar to flasks with 50 ml of liquid nutrient medium to obtain

5 инокул та. Инкубируют на качалке (200- 220 об/мин) 24 ч при 30°С.5 inokul ta. Incubate on a rocking chair (200- 220 rpm) for 24 hours at 30 ° C.

Полученным инокул том засевают объем среды (качалочные колбы по 250 мл среды ), предназначенный дл  ферментации, изThe resulting inoculum is seeded with a volume of medium (250 ml of medium flasks), intended for fermentation, from

0 расчета 1,0 мл инокул та (стационарной культуры) на 100 мл среды. Инкубируют при тех же услови х в течение 20 ч. После охлаждени  клетки собирают центрифугированием при 5000 об/мин. Выход биомассы 9 г0 calculate 1.0 ml of inoculum (stationary culture) per 100 ml of medium. Incubate under the same conditions for 20 hours. After cooling, cells are harvested by centrifugation at 5000 rpm. Biomass yield 9 g

5 влажных клеток на 1 л среды.5 wet cells per 1 liter of medium.

Выделение и очистка рестриктазы. 4 г клеток суспендируют в 10 мл буфера А, содержащего 10 мМ трис-HCI, рН 7.6, 10 мМ 2-меркаптоэтанола, 0,1 мМ ЭДТА, иIsolation and purification of restrictase. 4 g of cells are suspended in 10 ml of buffer A containing 10 mM Tris-HCl, pH 7.6, 10 mM 2-mercaptoethanol, 0.1 mM EDTA, and

0 разрушают на ультразвуковом дезинтеграторе . Обломки клеток удал ют центрифугированием (18000 об/мин, 40 мин при 2°С). Надосадочную жидкость собирают, добавл ют к ней 2 М KCI до конечной концентра5 ции 0,1 М и 10%-ный полиэтиленимин до конечной концентрации 0,1%. Смесь тщательно перемешивают и выдерживают во льду в течение 30 мин, затем центрифугируют (6000 об/мин, 10 мин при 2°С). Надоса0 дочную жидкость отбирают и добавл ют сульфат аммони  до 70%-ного насыщени  (при перемешивании на магнитной мешалке ). Смесь выдерживают во льду в течение 30 мин, затем центрифугируют0 destroy the ultrasonic disintegrator. Cell fragments were removed by centrifugation (18,000 rpm, 40 minutes at 2 ° C). The supernatant is collected, 2 M KCl is added to it to a final concentration of 0.1 M and 10% polyethyleneimine to a final concentration of 0.1%. The mixture is thoroughly mixed and kept in ice for 30 minutes, then centrifuged (6000 rpm, 10 minutes at 2 ° C). The supernatant is removed and ammonium sulfate is added to 70% saturation (with stirring on a magnetic stirrer). The mixture was kept in ice for 30 minutes, then centrifuged.

5 (6000 об/мин, 10 мин при 2°С). Супернатант отбрасывают, осадок раствор ют в 10 мл буфера А и диализу ют против 300 мл буфера А в течение 2 ч, Далее раствор белков нанос т на колонку (2x20 см) с ДЕАЕ-целлюло0 зой (ДЕ-52) и промывают буфером А до исчезновени  УФ-поглощающего материала в элюате. Адсорбированный материал элюируют 400 мл линейного градиента КС) (0-0,8 М) в буфере А. Аликвоты из каждой5 (6000 rpm, 10 min at 2 ° C). The supernatant is discarded, the precipitate is dissolved in 10 ml of buffer A and dialyzed against 300 ml of buffer A for 2 hours. Next, the protein solution is applied to a column (2x20 cm) with DEAE-cellulose (DE-52) and washed with buffer A to disappearance of the UV absorbing material in the eluate. The adsorbed material is eluted with 400 ml of a linear gradient of CS (0-0.8 M) in buffer A. Aliquots from each

5 фракции (по 2 мкл) анализируют на содержание рестриктаэы, инкубиру  30 мин при 37°С с 1 мкг ДНК фага А,и анализируют электрофорезом в геле агарозы. Фракции, содержащие фермент, объедин ют (общий объем 30 мл) и нанос т на колонку (1, см)Five fractions (2 μl each) are analyzed for restriction content, incubated for 30 min at 37 ° С with 1 μg of phage A DNA, and analyzed by agarose gel electrophoresis. The fractions containing the enzyme are combined (total volume 30 ml) and applied to the column (1, cm)

с гидроксилапатитом. Колонку промывают буфером Б, содержащим 10 мМ фосфата кали , рН 7,6, 10 мМ 2-меркаптоэтанола и 0,1 мМ ЭДТА, до исчезновени  УФ-погло- щающего материала в элюате. Адсорбиро- ванный материал элюируют 150 мл линейного градиента фосфата кали , рН 7,6 (0,01-0,6 М) в буфере Б. Аликвоты из каждой фракции (по 2 мкл) анализируют на содержание рестриктазы. Фракции, содержащие рестриктазу Крп 378 1, объедин ют (общий объем 15 мл) и диализуют в течение 16 ч против 150 мл буфера А, содержащего 50%- ный глицерин, и хран т при -20°С.with hydroxylapatite. The column is washed with buffer B containing 10 mM potassium phosphate, pH 7.6, 10 mM 2-mercaptoethanol and 0.1 mM EDTA until the UV absorbing material disappears from the eluate. The adsorbed material is eluted with 150 ml of a linear gradient of potassium phosphate, pH 7.6 (0.01-0.6 M) in buffer B. Aliquots from each fraction (2 μl) are analyzed for restriction enzyme content. The fractions containing CrP 378 1 restriction enzyme are combined (total volume 15 ml) and dialyzed for 16 hours against 150 ml of buffer A containing 50% glycerol and stored at -20 ° C.

Выход продукта 40000 ед.акт. на 1 г биомассы. Полученный препарат имеет концентрацию 30000 ед.акт./мл.The yield of 40000 units of act. per 1 g of biomass. The resulting preparation has a concentration of 30000 units of act. / Ml.

Активность фермента определ ют в 20 мкл реакционной смеси, содержащей 10 мМ трис-HCI, рН 8.0,10 мМ MgCIa, 50 мМ NaCI, 10 мМ 2-меркаптоэтанола и 1 мкгДНК фага А,при 37°С. За единицу активности принимают минимальное количество фермента , необходимое дл  полного специфического расщеплени  1 мкг ДНК фага Я за 1 ч при 37°С.The enzyme activity is determined in 20 µl of the reaction mixture containing 10 mM Tris-HCl, pH 8.0,10 mM MgCl, 50 mM NaCl, 10 mM 2-mercaptoethanol and 1 μg phage A DNA at 37 ° C. Per unit of activity, the minimum amount of enzyme necessary for the complete specific cleavage of 1 µg of phage I DNA per 1 h at 37 ° C is taken.

Полученный ферментный препарат свободен от значительных примесей неспецифических нуклеаз и фосфатаэ. При инкубации 120 ед. акт. фермента с 1 мкг ДНК фага Я в течение 2 ч при 37°С наблюдаетс  стандартный набор фрагментов ДНК. ПриThe resulting enzyme preparation is free from significant impurities of nonspecific nucleases and phosphate. Incubation 120 units. Act. enzyme with 1 µg of phage I DNA for 2 hours at 37 ° C. A standard set of DNA fragments was observed. With

инкубации 5 ед.акт. фермента с 1 мкг ДНК фага Я в течение 1 ч при 37°С фрагменты ДНК сшиваютс  ДНК-лигазой и повторно гидролизуютс  рестриктазой Крп 378 1.incubation 5 units of act. the enzyme with 1 µg of phage I DNA for 1 h at 37 ° C, the DNA fragments are stitched with DNA ligase and re-hydrolyzed with restriction enzyme Krp 378 1.

Дл  определени  последовательности нуклеотидов узнаваемой рестриктазой Крп 378 1 провод т гидролиз ДНК фага Яре- стриктазами Крп 378 1 и Sst II, а также совместный гидролиз этими рестриктазами.To determine the nucleotide sequence recognized by the restriction enzyme CRP 378 1, the DNA of the phage YR restriction enzyme CRP 378 1 and Sst II is hydrolyzed, as well as co-hydrolysis with these restrictases.

Наблюдаема  картина полного совпадени  фрагментов, полученных при гидролизе ДНК рестриктазами Крп 378 1 и Sst II порознь и совместно, указывает на то, что рестриктаза Крп 378 1  вл етс  изошизоме- ром рестриктазы Sst II, узнает и расщепл ет последовательность нуклеотидов CCGCGG.The observed pattern of complete coincidence of the fragments obtained during DNA hydrolysis with Krp 378 1 and Sst II restrictases separately and together indicates that the Krp 378 1 restriction enzyme is an Sst II restriction enzyme, it recognizes and splits the nucleotide sequence CCGCGG.

Полученный штамм по сравнению с известным обеспечивает повышенный выход целевого фермента, составл ющий 40000 ед.акт/г биомассы.The resulting strain, in comparison with the known, provides an increased yield of the target enzyme, which is 40000 ac./g biomass.

Дл  культивировани  предлагаемого штамма используетс  проста  среда из доступных компонентов.To cultivate the proposed strain, a simple medium of the available components is used.

Поскольку рестриктаза Крп 378 1 имеет сайт узнавани  CCGCGG. идентичный сайту узнавани  Sst II и известного, она может заменить эти рестриктазы во всех генно-инженерных работах.Since restriction enzyme CRP 378 1 has a recognition site CCGCGG. identical to the Sst II recognition site and known, it can replace these restrictases in all genetic engineering works.

Claims (1)

Формула изобретени  Штамм бактерий Klebsiella pneumonlaeClaim Formula Bacteria Strain Klebsiella pneumonlae ВКПМ В-4894 - продуцент рестриктазы КрпVKPM B-4894 - producer of restriction enzymes Krp 3781.3781.
SU894724899A 1989-06-20 1989-06-20 Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1 SU1659480A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894724899A SU1659480A1 (en) 1989-06-20 1989-06-20 Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894724899A SU1659480A1 (en) 1989-06-20 1989-06-20 Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1659480A1 true SU1659480A1 (en) 1991-06-30

Family

ID=21463785

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894724899A SU1659480A1 (en) 1989-06-20 1989-06-20 Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1659480A1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110878322A (en) * 2018-09-06 2020-03-13 上海科技大学 Double-plasmid system for Klebsiella pneumoniae gene editing
CN117243885A (en) * 2023-11-15 2023-12-19 北京青藤谷禧干细胞科技研究院有限公司 Stem cell exosome composition for improving skin and preparation method thereof

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Wani Л.А., Stephens R.E., Ambrosto S.M., Hart K.W. A sequence specific endonuclease from Micrococcus radiodurans - Bloch. and Bioph. Acta, 1982, 697, p. t78-184. Патент US №4688631, кл. С 12 N9/22, 1987. *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110878322A (en) * 2018-09-06 2020-03-13 上海科技大学 Double-plasmid system for Klebsiella pneumoniae gene editing
CN110878322B (en) * 2018-09-06 2022-08-02 上海科技大学 Double-plasmid system for Klebsiella pneumoniae gene editing
CN117243885A (en) * 2023-11-15 2023-12-19 北京青藤谷禧干细胞科技研究院有限公司 Stem cell exosome composition for improving skin and preparation method thereof
CN117243885B (en) * 2023-11-15 2024-01-26 北京青藤谷禧干细胞科技研究院有限公司 Stem cell exosome composition for improving skin and preparation method thereof

Similar Documents

Publication Publication Date Title
SU1659480A1 (en) Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1
JPS6322188A (en) Novel l-aminoacylase
SU1532583A1 (en) Strain of paracoccus denitrificans bacteria as producer of endonuclease of restriction pde 12 i
RU2077577C1 (en) Strain of bacterium deleya marina - a producer of alkaline phosphatase and a method of alkaline phosphatase preparing
SU1689400A1 (en) Strain of bacteria flavobacterium balustinum - a producer of restrictase fbei
JPH0669381B2 (en) Carnitine manufacturing method
SU1645293A1 (en) Strain bacteria streptococcus faecalis - is a producer of restrictase sfa n
SU1650697A1 (en) The strain of bacteria BacILLUS LI сННI FоrmIS - producing restrictase B @ 13I
Umar et al. Production of Fibrinolytic Enzyme by Soil Actinobacteria: Production of Fibrinolytic Enzyme by Soil Actinobacteria
SU1440919A1 (en) Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease
SU1095645A1 (en) Method of producing restriction endonuclease
SU1694647A1 (en) Strain of bacteria bacillus brevis - a producer of restrictase bbvi 21
DK157562B (en) PROCEDURE FOR PREPARING AT LEAST TWO DEOXYRIBONUCLEASES
SU1631080A1 (en) Strain of bacteria bacilius megaterium - producer of restrictase bme 361 i
SU1738853A1 (en) Method for preparation of micrococcus luteus vkpm-2836 biomass - a producer of restrictase mlui
RU2001952C1 (en) Strain of bacterium rhizobium leguminosarum - a producer of restriction endonuclease rle 691
RU2021373C1 (en) Strain of bacterium bacillus pumilis producing restriction endonuclease recognizing and cleaving nucleotide sequence 5′- cctnagc- 3′
RU2110573C1 (en) Strain of bacterium photobacterium phosphoreum - a producer of restriction endonuclease recognizing and splitting nucleotide sequence 5'-gg(t/c)(ag)cc-3'
SU1761803A1 (en) Strain of bacteria bacillus alvei - producer of restriction endonuclease bav bii
SU1724689A1 (en) Method for preparation of restriction endonuclease, recognizing and splitting the nucleotide sequence 5ъtgatca3ъ
SU1486512A1 (en) Strain of staphylococcus saprophyticus bacteria as producer of sigh-specific endonuclease of ssr 1 restriction
SU1532584A1 (en) Strain of brevibacterium immotum as producer of endonuclease of restriction bim i
KR880002315B1 (en) Culture method of streptococcus sp.
JPH08275776A (en) New chitinase and its production
SU1678832A1 (en) Strain of bacteria lactobacillus plantarum - a producer of restrictase lpli