SU1440919A1 - Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease - Google Patents
Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease Download PDFInfo
- Publication number
- SU1440919A1 SU1440919A1 SU874215163A SU4215163A SU1440919A1 SU 1440919 A1 SU1440919 A1 SU 1440919A1 SU 874215163 A SU874215163 A SU 874215163A SU 4215163 A SU4215163 A SU 4215163A SU 1440919 A1 SU1440919 A1 SU 1440919A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- strain
- producer
- bacteria
- kurthia zopfii
- buffer
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
4 4i4 4i
О СОAbout WITH
СОWITH
Изобретение относитс к микробиологии , в частности к получению штаммов - продуцентов рестриктаз.This invention relates to microbiology, in particular to the preparation of restriction enzyme producers.
Цель изобретени - вы вление штам- Maj упрощение и удешевление процесса получени его рестриктазы, обладающей способностью узнавать и расщепл ть последовательность нуклеотидов GATC,The purpose of the invention is to identify the strain-Maj simplification and cheapening of the process of obtaining its restrictase, which has the ability to recognize and cleave the GATC nucleotide sequence,
Изобретение предусматривает испольН зование кепатогенного штамма Kurthia Zopfii 9 ВКЛМ В-3668 - продуцента рестриктазы , культивирование провод т в питательной среде LB при в услови х аэрации, клетки разрушают ультразвуком , затем провод т хроматогра- фическую очистку фермента.The invention provides for the use of the kepathogenic strain Kurthia Zopfii 9 of VKLM B-3668 - a producer of restriction enzymes, the cultivation is carried out in a nutrient medium LB under aeration conditions, the cells are destroyed by ultrasound, then the chromatographic purification of the enzyme is carried out.
Используемый штамм Kurthia zopfii 9 выделен в результате поиска штаммов - продуцентов рестриктаз среди микроорганизмов обитающих в Аральском море, и хранитс в ВКПМ ВНИИ генетики под регистрационным номером В-3668.The used strain of Kurthia zopfii 9 was isolated as a result of a search for strains producing restriction enzymes among microorganisms living in the Aral Sea, and is stored in the VKPM VNII of Genetics under registration number B-3668.
Штамм обладает следующими морфоло гическими, культуральными и физиологическими свойствами,The strain has the following morphological, cultural and physiological properties,
В молодых культурах (18-24 ч) - правильные неразветвленные палочки с закругленными концами, встречаютс в цепочках, которые часто параллельны , диаметр палочек около 0,8 мкм, ртинa часто варьирует в зависимости от стадии роста, но обычно 2-8 мкм. Старые культуры (3-7 дней)состо т из кокковидных клеток, образованных при фрагментации палочек; палочки движут с при помощи перитрихальных жгутиков . Эндоспор не образуют, Грамполо- жительные, некислотоустойчивые хемо- органотрофы.Метаболизм дыхательный, не бродильный. Каталазоположительные оксидазоотрицательные . Не восстанавливают нитраты. Не образуют кислоту из углеводов или многоатомньк спиртов , подщелачивают среду.- Строгие аэробы. Температурный оптимум 25- , пределы . Хороший рост в присутствии 4-6% NaCl. Полученна рестриктаза характеризуетс следующими свойствами: узнает и специфически расщепл ет последовательность нуклеотидов GATC; оптимальное значение рН дл действи рестриктазы 7,5-9,0; оптимальна температура действи дл активности рестриктазы требуютс ионы Mg , оптимальна концентраци 5-15 мМ.In young cultures (18-24 h) - regular unbranched sticks with rounded ends, found in chains that are often parallel, the diameter of sticks is about 0.8 microns, the mouth often varies depending on the growth stage, but usually 2-8 microns. Older cultures (3-7 days) consist of cocci-shaped cells formed during the fragmentation of rods; the rods are driven by the peritrichous flagella. Endospores do not form, Gram-positive, non-acid-resistant chemo-organotrophs. Metabolism is respiratory, not fermentative. Catalase-positive oxidative. Do not restore nitrates. Do not form acid from carbohydrates or polyatomic alcohols, alkalinize the medium. - Strict aerobes. Temperature optimum 25-, limits. Good growth in the presence of 4-6% NaCl. The resulting restriction enzyme has the following properties: it recognizes and specifically cleaves the GATC nucleotide sequence; the optimum pH for restriction enzyme action is 7.5-9.0; optimal temperature for restriction enzyme activity; Mg ions are required; optimal concentration is 5-15 mM.
Пример. Получение рестриктазы Kzo 9 1 из Kurthia zopfii 9. Клетки .Kurthia zopfii 9, хран щиес в 50%-ном глицерине в L-бульоне (ЬВ) состава, г: триптон 10, дрожжевой экстракт 3, NaCl 10, вода до 1 л при 20 С, высевают на чашку с L-агаром, После 2 сут инкубировани при 30°С клетки собирают петлей и внос т в 100 мл LB и выращивают до плотности 1,5 при .Example. Receiving restriction enzyme Kzo 9 1 from Kurthia zopfii 9. Cells. Kurthia zopfii 9, stored in 50% glycerol in L-broth (LB) composition, g: tryptone 10, yeast extract 3, NaCl 10, water to 1 l at 20 ° C, plated on a L-agar plate. After 2 days of incubation at 30 ° C, the cells are collected in a loop and added to 100 ml of LB and grown to a density of 1.5 at.
Затем культуру внос т в 2 л LB и вьфашлвают до плотности 2,5 при После охлаждени клетки собирают центрифугированием. ВЬЕХОД биомассы 2 г сырого веса с i л среды.The culture is then introduced into 2 L of LB and extruded to a density of 2.5. After cooling, the cells are harvested by centrifugation. Biomass INPUT 2 g wet weight with i l medium.
00
5five
30thirty
3535
4040
4545
5050
5555
4 г клеток суспендируют в 20 мл 0,02 М буфера , рН 7,5, содержащего 10 MyS-меркаптоэтанол и 0,1%-ный тритон Х-100 и разрушают на ультразвуковом дизинтеграторе. Обломки клеток удал ют центрифугированием (18000 об/мин, 30 мин при ) и надосадочную жидкость нанос т на 30 мл фосфоцеллюлозы Р-11 (Whatman), уравновешенной буфером А (0,02 М К-фосфат, рН 7,5, 0,001 М -меркаптоэтанол, ЭДТА) 5 и затем колонку промывают буфером А до исчезновени УФ-по- глощающего материала в элюате. Адсорбированный материал элюиру;от раствором 1 М NaCl -в буфере А. 60 мл полученного смыва белков с колонки ди- ализуют ночь против 2 л буфера А и затем нанос т на 10 мл ДЕАЕ - целлюлозы (ДЕ-52, VJhatman, Англи ), уравновешенной буфером А, и элюируют 100 мл градиент 0-1,0 М Nad в буфере А. Объем каждой фракции 5 мл. Аликвоты из каждой фракции (1 мкл) инкубируют 1 ч при с 1 мкл ДНК .фаза Л и анализируют в геле агарозы. .Фракции, расщепл ющие ДНК фага (8- П), объедин ют, диализуют 3 ч против 2 л буфера А и нанос т на 4. мл фосфоцеллюлозы Р-1,1 (Whatman, Англи ) и злюируют 40 мл градиент 0-1,0 в буфере А. Объем каждой фракции 2 мл. Фракции, содержащие Kzo 9 1, определ ют так же, как при хроматографии на даАЕ-целлкшозе. Фракции 12-13, со- держагдае Kzo9 1, объедин ют и диализуют против буфера А, содержащего :0,1 М NaCl и 50%-ный глицерин. Полученный препарат фермента (I мл) имеет удельную активность 0000ед/мл..4 g of cells are suspended in 20 ml of 0.02 M buffer, pH 7.5, containing 10 MyS-mercaptoethanol and 0.1% Triton X-100 and destroyed in an ultrasonic disintegrator. Cell debris was removed by centrifugation (18,000 rpm, 30 min at) and the supernatant was applied to 30 ml of Whatman phosphocellulose P-11 (equilibrated with buffer A) (0.02 M K-phosphate, pH 7.5, 0.001 M -mercaptoethanol, EDTA) 5 and then the column is washed with buffer A until the UV absorbing material disappears from the eluate. The adsorbed material was eluted; from a solution of 1 M NaCl —in buffer A. 60 ml of the resulting protein wash off the column was dialyzed overnight against 2 liters of buffer A and then applied to 10 ml of DEAE - cellulose (DE-52, VJhatman, England), equilibrated with buffer A, and eluted with 100 ml gradient of 0-1.0 M Nad in buffer A. The volume of each fraction is 5 ml. Aliquots from each fraction (1 μl) are incubated for 1 h with 1 μl of DNA. Phase L and analyzed in agarose gel. Phage (8-P) DNA cleavage fractions were pooled, dialyzed for 3 hours against 2 liters of buffer A and applied to 4. ml of P-1.1 phosphocellulose (Whatman, England) and 40 ml of 0-1 gradient were applied. , 0 in buffer A. The volume of each fraction is 2 ml. The fractions containing Kzo 9 1 are determined in the same way as in the chromatography on a daAE cellulose. Fractions 12–13, containing Kzo9 1, are combined and dialyzed against buffer A, containing: 0.1 M NaCl and 50% glycerol. The resulting enzyme preparation (I ml) has a specific activity of 0000ed / ml.
3иД3 and D
За единицу активности принимают минимальное количество фермента, необходимое дл полного расщеплени 1 мкг ДНК фага Л в течение 1 ч при .Per unit of activity, take the minimum amount of enzyme needed to completely cleave 1 µg of phage L DNA for 1 hour at.
Ферментный препарат хран т при . Из I г биомассы получают 2500 единиц рестриктазы Kzo 9 1.The enzyme preparation is stored at. From I g of biomass, 2500 units of Kzo 9 1 restrictase are obtained.
Определение последовательности нуклеотидов , узнаваемой рестриктазой Kzo 9 1.Determining the sequence of nucleotides recognized by the restriction enzyme Kzo 9 1.
Дп определени последовательности нуклеотрщов, узнаваемой рестриктазой Kio 9 1, провод т гидролиз ДНК фага д рестритстазаки Kzo 9 I, Sau 3AI по отдельности, а также .совместный гидролиз этими рестриктазами. Наблюдаема картина полного совпадени фрагментов, полученных при гидролизе ДНК рестриктазами Kzo 9 1 и Sau ЗА1 порознь и совместно, указывает на то, что рестриктаза Kzo 9 1 вл етс изошизомером рестриктазы Sau 3AI,узнает и расщепл ет последовательность нуклеотидов GATC.The dp of nucleotide sequence recognition, recognized by the restriction enzyme Kio 9 1, is carried out by hydrolysis of the DNA of phage and restrictase kzo 9 I, Sau 3AI separately, as well as joint hydrolysis by these restrictases. The observed picture of the complete coincidence of the fragments obtained during the hydrolysis of DNA restrictases Kzo 9 1 and Sau 1 separately and together indicates that the restriction enzyme Kzo 9 1 is an isoshizomer of restrictase Sau 3AI, recognizes and splits the nucleotide sequence of GATC.
Рестр1Пчтаза из Kurthia- zopfii. 9 названа Kzo 9 согласно общеприн той номенклатуре.Restr1Ptazas from Kurthia- zopfii. 9 is named Kzo 9 according to the generally accepted nomenclature.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874215163A SU1440919A1 (en) | 1987-03-23 | 1987-03-23 | Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874215163A SU1440919A1 (en) | 1987-03-23 | 1987-03-23 | Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1440919A1 true SU1440919A1 (en) | 1988-11-30 |
Family
ID=21292795
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874215163A SU1440919A1 (en) | 1987-03-23 | 1987-03-23 | Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1440919A1 (en) |
-
1987
- 1987-03-23 SU SU874215163A patent/SU1440919A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Gelinas К.Е., Myers P.А., ВоЪerts R.I. Tvo seguence. - specific endonucleases from Moraxella bovis.I. Mol. Bid.- 1977, v.l44, 169-179. Sussenbach I.S.Monfort C.M. A restriction endonuclease from Sta- phylococcus auerus. Kucl. Acids Res, 1976, ,v. 3, p. 3193-3202. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Shaikh et al. | Production of β-galactosidase from thermophilic fungus Rhizomucor sp | |
JPS6018397B2 (en) | How to convert D-glucose to D-fructose | |
SU1440919A1 (en) | Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease | |
US4420562A (en) | Method for producing creatinase | |
Alessandro et al. | Partial purification and characterization of a yeast extracellular acid protease | |
US6001635A (en) | Sphingobacterium multivorum, mOL12-4s, produces deaminoneuraminidase and method for producing the same | |
US4010072A (en) | Process for preparing L-tartaric acid | |
Umar et al. | Production of Fibrinolytic Enzyme by Soil Actinobacteria: Production of Fibrinolytic Enzyme by Soil Actinobacteria | |
SU1659480A1 (en) | Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1 | |
JPS6362195B2 (en) | ||
SU1532583A1 (en) | Strain of paracoccus denitrificans bacteria as producer of endonuclease of restriction pde 12 i | |
JPH0928375A (en) | Trehalose phosphorylase and its preparation | |
RU2077577C1 (en) | Strain of bacterium deleya marina - a producer of alkaline phosphatase and a method of alkaline phosphatase preparing | |
JPS6243671B2 (en) | ||
SU1645300A1 (en) | Streptomyces fradiae strain: producer of restrictase sfr 1 | |
SU1631080A1 (en) | Strain of bacteria bacilius megaterium - producer of restrictase bme 361 i | |
JPH0669381B2 (en) | Carnitine manufacturing method | |
SU1532584A1 (en) | Strain of brevibacterium immotum as producer of endonuclease of restriction bim i | |
SU1650697A1 (en) | The strain of bacteria BacILLUS LI сННI FоrmIS - producing restrictase B @ 13I | |
SU1645293A1 (en) | Strain bacteria streptococcus faecalis - is a producer of restrictase sfa n | |
SU1689400A1 (en) | Strain of bacteria flavobacterium balustinum - a producer of restrictase fbei | |
SU1017730A1 (en) | Process for preparing glutamate dehydrogenase | |
JPH08131182A (en) | Production of trehalose | |
SU1620484A1 (en) | BACTERIA STRAIN BACILLUS CEREUS - A PRODUCER OF RESTRICTASE Bce 831 | |
SU1659479A1 (en) | Strain of bacterium bacillus licheniformis - is a producer of restrictase bli 49 i |