SU1602394A3 - Способ получени цианидгидратазы - Google Patents
Способ получени цианидгидратазы Download PDFInfo
- Publication number
- SU1602394A3 SU1602394A3 SU874202067A SU4202067A SU1602394A3 SU 1602394 A3 SU1602394 A3 SU 1602394A3 SU 874202067 A SU874202067 A SU 874202067A SU 4202067 A SU4202067 A SU 4202067A SU 1602394 A3 SU1602394 A3 SU 1602394A3
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- cyanide
- microorganism
- ions
- cultivation
- fact
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F3/00—Biological treatment of water, waste water, or sewage
- C02F3/02—Aerobic processes
- C02F3/12—Activated sludge processes
- C02F3/1205—Particular type of activated sludge processes
- C02F3/1231—Treatments of toxic sewage
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F3/00—Biological treatment of water, waste water, or sewage
- C02F3/34—Biological treatment of water, waste water, or sewage characterised by the microorganisms used
- C02F3/342—Biological treatment of water, waste water, or sewage characterised by the microorganisms used characterised by the enzymes used
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
- C12N1/145—Fungal isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/88—Lyases (4.)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
- C12R2001/77—Fusarium
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02W—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES RELATED TO WASTEWATER TREATMENT OR WASTE MANAGEMENT
- Y02W10/00—Technologies for wastewater treatment
- Y02W10/10—Biological treatment of water, waste water, or sewage
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Water Supply & Treatment (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Hydrology & Water Resources (AREA)
- Environmental & Geological Engineering (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Virology (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Botany (AREA)
- Mycology (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биотехнологии. Цель изобретени - повышение активности целевого продукта. Способ получени фермента цианидгидратазы включает непрерывную культивацию штамма микроорганизма при определенных температурах, PH и скорости разбавлени , а также непрерывном введении в культуру цианид-ионов и/или цианистоводородной кислоты в концентрации не менее 15 мм. Фермент стабилен в течение до 130 дней. Предпочтительным микроорганизмом вл етс штамм FUSARIUM LATERITIUM NEES CMI 300533, депонированный в соответствии с Будапештским соглашением в Микологическом институте здравоохранени , KEW, RICHMOND, SURREY, Великобритани . 6 з.п.ф-лы. 2 табл, 1 ил.
Description
Изобретение относитс к биотехнологии и касаетс получени цианид- гидратазы № 4.2.1.66 (известный также под названием формамидгидролиа- за).
Цель изобретени - повышение активности целевого продукта.
Способ заключаетс в подборе условий ферментации продуцирующего фермент микроорганизма и добавлении в продессе культивировани к культуре цианид-ионов и/или цианистого водорода, что обеспечивает преврапгение их в цианистоводородную кислоту5и предусматривает использование таких бактериальных микроорганизмов и грибков, как Stemphylum loti АТСС 11718, Мусо- leptodisciis terrestris CBS 231 53, Fusarium raoniforme CBS 16182, Hel- minthosporiun sorghicola CBS 2.49.40,
Peniconia .circinata CBS 263 37, Glo- merella tucamanensis CBS 132.37.
Предпочтительным штаммом вл етс Fusarium latiritium Nees
CM1 3005333, непатогенный no отношению к пшенице и обладающий следую- характеристиками.
Морфологические характеристики. Среда (I) Potato Sucrose Agar (PSA). 250 г промытого и нарезанного картофел помещают в котел и выдерживают в не.м при давлении 15 фунтов на 1 KB, дюйм в течение 15 мин. Отвар процеш вают через два сло муслина, добавл ют к мутному фильтрату 2% глюкозы и 2% агара, выдерживают сре- дУ в автоклаве и диспергируют.
(2) Czapek-Dox (моди|5ицированный) агар (Oxoid)(СПА).
05
о
tsD
СО СО 4
Ы
Oxoid - зарегистрированный тованый знак.
Услови культивации:25 С, несколько недель.
Скорость роста: 4,0 см за 3 дн , 3,0 см за 3 дн соответственно.
Характеристика роста: хлопьевид- ноопушенно разрастаюпр1ес колонии с белым возДугага 1м мицелием. Субстрат на PSA серовато-розовый с п тнами малинового цвета, переход щего в желтый , несколько более бледный на CDA. Иногда образуетс пигмент темно-красного цвета, в частности при старении Через одну-две недели воздушный мицелий приобретает коричневую окраску и разрушаетс . Колони при этом становитс довольно слизистой, образуютс спосодохии,, от розового до коричневого цвета на PSA и оранжево-розового на CDA.
Выделение жидкости не происходит. Цвет образующегос пигмента обычно такой же, как и мицели .
Конидии. Микроконидии в случае этого организма не образуютс . Мик- роконидйи образуютс из однолатераль ных фиалид .или мультиразветвлен- ных конидиофор с короткими фиалида- ми. В более старых культурах конидио форы аггрегируют с образованием спо- .Р.ОДОХИЙ, в частности, на CDA. Форма конидий может измен тьс от серповидной до.искривленной fusoid. спинно- брюшной, q количеством перегородок 3-5, обычно 5 в более молодых, культурах . Размер спор находитс в пределах (25-30)х(2,5-4,0) мкм.
Опорна клетка часто имеет ножку в частности в случае спор с более чем 5 перегородками., В мицелии попадаютс набухшие клетки, иногда встречаютс хламидоспоры, интеркал рные, одиночные или звень ми,
Грибки могут расти двух различных формах, шарообразной или гра- нулообразной, а также в дисперсной форме, когда они представл ют собой диффузные волокнистые пр ди,диспергированные в питательной среде. При использовании дл обработки материалов важно, чтобы грибки росли в дисперсной , а не в шарообразной или гранулообразной форме. Поскольку ро в гранулообразной форме тормозитс за счет диффузии питательных вещест и газов через гранулы, процесс культивации в этом случае вл етс не
j 0
5
Q
5
5
0
5
эффективным. Услови культиванд и предлагаемого способа должны быть благопри тными дл роста грибков в дисперсионной форме.
Грибковый штамм может быть выращен в услови х кислородного или углеродного контрол . Предпочтительными вл ютс услови , корда эффективный рост осуществл етс при одновременном кислородном и углеродном контроле . В качестве питательной среды используют среду определенного состава: , а именно содержащую помимо источника углерода минеральные соли без добавок каких-либо неопределенных органических материалов, таких как дрожжевой экстракт.
В качестве источника углерода дл осуществлени предлагаемого способа можно использовать любой подход щий источник. Предпочтительно использовать дл этой цели глюкозу. Источником азота вл ютс сульфат и гидроокись аммони , а источником фосфора г- .фосфат кали и фосфорна кислота. Основные компоненты питательной среды используемой при осуществлении предлагаемого способа, содержатс в ней в следующих количествах, г: HjPO 10-20 Ml-t
K2.S04.800-1400
MgS04-7H.2.f 700-1200 Глюкоза «Н 10000-40000 (NH4)2S04 500-3000 Микроэлементы 0,1-20 Оптимальна питательна среда, вводима в культуру в стащюнарных услови х, имеет следующий состав, ,
1,1 М Н РОф320 МП/20 л
Шкроэлементы и
биотин10 МП/20 л
K S0420/20
MgSO. 18/20
Глюкоза«Н О223/20
(NH)2S0450/20
Состав раствора микроэлементов и биотина.(в растворе на 1 л), г: FeClj-eHj O9,6
CuS04 5H.2,03,6
MnS04 4H2030,0
,0
Биотин, г0,52
Л 1анид-ионы или цианистоводород- на кислота ввод тс в культуру отдельно или вмес;те с другими питательными веществами на стадии культивации
предлагаемого способа, Предпочтител
но цианиды, добавл ют к питательной среде, вводимой в культуру, в виде 1 1анидов щелочного металла, например циа нида кали или натри . В начале стадии культивации цианиды добавл ют в неболыштх количествах, торые затем, по мере приспособлени к ним клеток грибка в культуре, постепенно увеличивают и в у се устано- вивишхс стационарных услови х ввод т в концентрации как минимум 15 ммоль в расчете на общее количесво питательной среды в культуре (т. в расчете на суммарное количество всех жидких питательных веществ в культуре), предпочтительно в количестве 10, наиболее предпочтительно 4-6 ммоль/г сухих клеток. Обнаружено , что с ростом концентрации цианид-ионов в питательной среде, вводмой в культуру в стационарны-х услови х , увеличиваетс активность фермента 1щанидгидратазы, причем величина его активности линейно зависит от концентратами цианид-ионов. Так, например, активность ферманта, выраженна в микромол х образую цегос в 1 мин на 1 л культуры формамида, при небольшом содержании (20 ммоль) равна 220.
Предпочтительным вл ютс следую и«ие услови культивации предлагаемого способа: скорость разведени 0,05-0,1 ч- , рН 5,0-5,0 предпочтительно 5,5; те тература 28-32 0, предпочтительно 30-32°С. В этих ч сло ви х активность получаемого фермантл максимальна.
}.
В процессе культивации, культура неггрерывно отводитс из ферментатора , в котором проводитс культиваци . Клетки, содержащие фермент цианид гидратаз у, отдел ют от выводимой из ферментатора культуры люб),1м под- ход 1 1 1м способом, предпочтительно путем фильтрации. Отделенные клетки могут 6i,iTb в -1су1чены и подвергнуты затем дальнейшей обработке, например экструзии, дл получени со- держагчего пиарпгл.гидратаз у кпеточного материала в любо; нужной форме, например , в виде агрегатов или порошка . Фермент может быть также отделен от клеток и использоватьс в чистом виде. Обычно в этом нет необходимости , поэтому, как правило, фермент не отдел ют от клеток.
10
20
4
Содержатц;ий цианидгидратазу материал , полученный по предлагаемому способу, может использоватьс дл обработки цианидсодержащих сточных вод. Полученный предлагаемым способом фермент обладает высокой стабильностью (период полураспада его, например, может составл ть до 130 дней) и высокой активностью. Высокостабильный ферментосодержащий материал может быть получен, если стадию культивации предлагаемого способа проводить в услови х кислородного или одновременно кислородного и углеродного контрол . Фермент, содержащий материал с высокой активностью, может быть получен при проведении стадии культивации предлагаемого способа при 30-32°С.
Пример 1. Цианидгидратазу получают путем культиващш гатамма Fusarium СМ1 300533 в присутствии HCN непрерывным способом, ввод в 25 культуру питательную среду указанного состава на глюкозе. Культивацию провод т в стационарных услови х при различных температурах, рН 5,5 и сксг- рости разбавлени О,10 Полученные результаты сведены в табл. 1, из которой видно, что максимальна активность фермента достигаетс при температуре культивации 30-32 0, а при более низких температурах получаема активность вдвое меньше мак- 5 симальной. При температуре выше 34°С роста культуры не происходит. Активность фермента выражена в микромол х формамида, получаемого в минуту из 100 ммоль натри при рН 8,5.
П р и м е р 2. Пиаш-щгидратазу получают путем культивации штамма Fusarium latiritiura СМ1 300533 в присутствии HCN непрерьшным способом , ввод в культуру питательную среду указанного состава на глюкозе. Культива1Д1ю провод т в стационарных услови х при различной скорости окислени и посто нных рН (5,5), температуре (30°С) и скорости разбавлени (0,10 ч). Образующийс фермент подвергают сублимационной сушке и хран т при 4°С над. силикагелем. Стабильность полученного фермента контролируют путем анализа аликвотных 5 проб через определенные промежутки времени.
Полученные результаты сведены в табл. 2, из которой видно, что ста30
40
5
10
15
20
25
бильность фермента при хранении возрастает , если культиваци проводитс при одновременном кислородном и углеродном контроле.
Примерз. Индукционный профиль цианидгидратазы определ ют путем культиватщи штамма Fisarium СМ1 300533 непрерывным способом, ввод в культуру питательную среду, указанного состава на глюкозе. Культивацию провод т в стационарных услови х при различных концентраци х HCN, поддержива посто нными рН (5,5), температуру () и скорость разбавлени (0,10 ч ).
На чертеже приведен график линейной зависимости между индукп рован- ной активностью и концентраи ей цианида .
Линейность сохран етс До концентрации цианида в питательной среде как минимум 24 ммоль..На графике по оси ординат отложена номинальна концентраци цианида, а по оси абсцисс обща активность.
П р и м е р 4 .Штамм Fusarium СМ1 300533 Bbipвшивают непрерывным способом в емкости объемом 6000л с использованием питательной среды указанного состава; зо содержащей в качестве источника углерода глюкозу. Скорость роста контролируют концентрацией глюкозы. рН поддерживают в пределах 5,0 и 5,8, скорость разбавлени составл ет 0,08- ,, 0,1 ч, температура 30-32 с. Цианид натри добавл ют к питательной среде в количестве 61,5-73,5 ммоль. Культивацию провод т в услови х кислородного голодани , дл чего уменьшают интенсивность аэрировани . В результате происходит образование этанола в количестве 0,81 г/л. За 140 ч получено 12,2-14,3 г/л биомассы с активностью гр анидгидратазы 81,0 - 122,4 ед. т.е. 81.,0-122.,4 мкМоль формамида в 1 мин на 1 мг сухого веса (дл анализа брали 120 ммоль раствора цианида при рН и температуре 20°С).
16023948
Claims (7)
1. Способ получени циапидгидра- тазы, предусматривающий непрерывное культивирование в услови х аэрации продугц рующего фермент микроорганизма в водной питательной среде, содержащей источник углерода, приемпемый дл данного микроорганизма, неорга- тшческие питательные вещества и раствор микроэлементов, при непрерывной подаче источника 11 {анид-ионов и/или цианистого водорода с послед уюпд;им вьиелением клеток, содержаний циа- нидгидратазу, отличающей- с тем, что, с целью повьш1ени активности целевого продукта, культивирование ведут при 28-32°С, рН 4,5-7,5 и скорости разбавлени среды в интервале 0,05-0,11 ч а минимальную концентрацию 1щанид-ионов и/или цианистого водорода, ввод т в питательную среду, устанавливают не менее 15 ммоль.
2,Способ по п. 1,отличаю- Ш и и с тем, что продуцируюпр м фермент микроорганизмом вл етс штамм Fusarium latiritium Nees CMI 300. 533.
3.Способ по п. 1, отличающ и и с тем, что источник и11анид- ионов и/или.цианистого водорода добавл ют к культуре в количестве, эквивалентном 2-10 ммоль/г сухих клеток.
4.Способ.по п. 1, о т л и ч а ю- ш и и с тем, что источник цианид- ионов и/или цианистого водорода добавл ют в концентрации 4-6 ммоль/г сухих клеток.
5.Способ по п. 1, отличающийс тем, что в качестве источника углерода используют глюкозу.
6.Способ по п. 1,отличаю- дс Щ и и с тем, что культивирование
ведут при рН предпочтительно 5,0-6,0.
7.Способ по п. 1, о т л и ч а ю- щ и и с тем, что культивирование осуществл ют предпочтительно при
40
30-32 0.
7.Спо щ и и с осуществл
30-32 0.
1602394
10 таблица 1
Оксигенаци
Таблица2
Период полураспада, дн.
Аэробные услови Средн анокси Жестка анокси
21 63 90
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB8604068A GB8604068D0 (en) | 1986-02-19 | 1986-02-19 | Cyanide hydratase |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1602394A3 true SU1602394A3 (ru) | 1990-10-23 |
Family
ID=10593311
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874202067A SU1602394A3 (ru) | 1986-02-19 | 1987-02-18 | Способ получени цианидгидратазы |
Country Status (16)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0234760B1 (ru) |
JP (1) | JPS62224288A (ru) |
KR (1) | KR870008021A (ru) |
CN (1) | CN87100788A (ru) |
AT (1) | ATE80658T1 (ru) |
AU (1) | AU604675B2 (ru) |
BR (1) | BR8700711A (ru) |
CA (1) | CA1321967C (ru) |
DE (1) | DE3781701T2 (ru) |
DK (1) | DK82387A (ru) |
FI (1) | FI870674A (ru) |
GB (2) | GB8604068D0 (ru) |
MY (1) | MY101147A (ru) |
NZ (1) | NZ219330A (ru) |
SU (1) | SU1602394A3 (ru) |
ZA (1) | ZA87777B (ru) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0233719A3 (en) * | 1986-02-19 | 1988-07-06 | Zeneca Limited | Production of cyanide hydratase |
GB9117379D0 (en) * | 1991-08-12 | 1991-09-25 | Ici Plc | Purification of labile compounds |
JPH0742705A (ja) * | 1993-07-30 | 1995-02-10 | Yutani Heavy Ind Ltd | 作業機械の油圧装置 |
FR2737485B1 (fr) * | 1995-08-02 | 1997-09-05 | Pechiney Aluminium | Procede et dispositif de traitement d'effluents contenant des cyanures |
GB2314078B (en) * | 1996-06-14 | 2000-06-07 | British Gas Plc | Biodegradation of iron cyanide complexes |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0061249B1 (en) * | 1981-03-20 | 1985-05-08 | Imperial Chemical Industries Plc | Effluent treatment |
EP0233719A3 (en) * | 1986-02-19 | 1988-07-06 | Zeneca Limited | Production of cyanide hydratase |
-
1986
- 1986-02-19 GB GB8604068A patent/GB8604068D0/en active Pending
-
1987
- 1987-01-30 EP EP19870300839 patent/EP0234760B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1987-01-30 DE DE19873781701 patent/DE3781701T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1987-01-30 GB GB8702137A patent/GB8702137D0/en active Pending
- 1987-01-30 AT AT87300839T patent/ATE80658T1/de not_active IP Right Cessation
- 1987-02-03 ZA ZA87777A patent/ZA87777B/xx unknown
- 1987-02-05 AU AU68548/87A patent/AU604675B2/en not_active Ceased
- 1987-02-16 MY MYPI87000156A patent/MY101147A/en unknown
- 1987-02-17 KR KR870001296A patent/KR870008021A/ko not_active Application Discontinuation
- 1987-02-17 BR BR8700711A patent/BR8700711A/pt not_active Application Discontinuation
- 1987-02-18 DK DK82387A patent/DK82387A/da not_active Application Discontinuation
- 1987-02-18 NZ NZ21933087A patent/NZ219330A/xx unknown
- 1987-02-18 FI FI870674A patent/FI870674A/fi not_active Application Discontinuation
- 1987-02-18 JP JP62035455A patent/JPS62224288A/ja active Pending
- 1987-02-18 SU SU874202067A patent/SU1602394A3/ru active
- 1987-02-19 CN CN198787100788A patent/CN87100788A/zh active Pending
- 1987-02-19 CA CA 530150 patent/CA1321967C/en not_active Expired - Fee Related
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ЕР 0061249, кл. С 02 F 1/58, опублик. 1982. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB8604068D0 (en) | 1986-03-26 |
MY101147A (en) | 1991-07-31 |
FI870674A0 (fi) | 1987-02-18 |
FI870674A (fi) | 1987-08-20 |
NZ219330A (en) | 1989-01-06 |
EP0234760A2 (en) | 1987-09-02 |
ATE80658T1 (de) | 1992-10-15 |
ZA87777B (en) | 1987-10-28 |
AU6854887A (en) | 1987-08-20 |
AU604675B2 (en) | 1991-01-03 |
DE3781701D1 (de) | 1992-10-22 |
EP0234760A3 (en) | 1988-06-29 |
DE3781701T2 (de) | 1993-03-18 |
CN87100788A (zh) | 1987-09-16 |
DK82387A (da) | 1987-08-20 |
CA1321967C (en) | 1993-09-07 |
KR870008021A (ko) | 1987-09-23 |
DK82387D0 (da) | 1987-02-18 |
GB8702137D0 (en) | 1987-03-04 |
JPS62224288A (ja) | 1987-10-02 |
BR8700711A (pt) | 1987-12-22 |
EP0234760B1 (en) | 1992-09-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR850004268A (ko) | 폴리-d-(-)-3-하이드록시부티르산의 제조방법 | |
US4745064A (en) | Process for the degradation of s-triazine derivatives in aqueous solutions | |
Adlercreutz et al. | Oxygen supply to immobilized cells: 1. Oxygen production by immobilized Chlorella pyrenoidosa | |
CA2011845A1 (en) | Biosynthesis of hyaluronic acid | |
SU1602394A3 (ru) | Способ получени цианидгидратазы | |
KR850004267A (ko) | 폴리-d-(-)-3-하이드록시부티르산의 제조방법 | |
SU615870A3 (ru) | Способ получени биомассы микроорганизмов | |
Garcia-Garibay et al. | Studies on the simultaneous production of single cell protein and polygalacturonase from Kluyveromyces fragilis | |
AU604676B2 (en) | Production of cyanide hydratase | |
KR970009160B1 (ko) | 리보플라빈을 생성하는 미생물 균주, 이들의 선택 및 발효를 위한 방법 | |
CN112694991B (zh) | 一种产维生素b12的菌株及其应用 | |
Nagatsuka et al. | Effects of oxygen tension on growth, respiration, and types of bacteria isolated from soil suspensions | |
JP3004509B2 (ja) | 微細藻からのエタノール製造方法及び装置 | |
EP0754222A1 (en) | Modification of filamentous microorganisms | |
SU671738A3 (ru) | Способ получени биомассы микроорганизмов | |
Tsuchiya et al. | Medium optimization for a methanol utilizing bacterium based on chemostat theory | |
US5219750A (en) | Production of cyanide hydratase | |
US4707449A (en) | Pichia pastoris yeast strains of enhanced tryptophan content | |
CN110438020A (zh) | 一株高效除磷酵母菌及其在生活污水处理中的应用 | |
Chauhan et al. | Eucalyptus kraft black liquor enhances growth and productivity of Spirulina in outdoor cultures | |
KR0134131B1 (ko) | 세파로스포린 c를 생산하는 미생물 및 이를 이용한 세파로스포린 c의 제조방법 | |
US3783102A (en) | Production of l-asparaginase | |
GB1423642A (en) | Process for culturing methanol-utilizing yeast | |
JPS59177198A (ja) | 微生物によるマンガンの除去法 | |
Earle et al. | Role of purple sulfur bacteria in swine waste reclamation |