SU1518370A1 - Штамм культивируемых клеток кожи и мышц эмбриона человека дл изготовлени диагностических препаратов - Google Patents

Штамм культивируемых клеток кожи и мышц эмбриона человека дл изготовлени диагностических препаратов Download PDF

Info

Publication number
SU1518370A1
SU1518370A1 SU884360224A SU4360224A SU1518370A1 SU 1518370 A1 SU1518370 A1 SU 1518370A1 SU 884360224 A SU884360224 A SU 884360224A SU 4360224 A SU4360224 A SU 4360224A SU 1518370 A1 SU1518370 A1 SU 1518370A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
strain
cells
human embryo
muscles
skin
Prior art date
Application number
SU884360224A
Other languages
English (en)
Inventor
Любовь Леонидовна Миронова
Нина Константиновна Преображенская
Валентина Николаевна Мартынова
Галина Петровна Крючкова
Владимир Иванович Стобецкий
Валентина Яковлевна Кармышева
Светлана Ивановна Кудинова
Валентина Дмитриевна Попова
Галина Александровна Алпатова
Original Assignee
Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР
Институт вирусологии им.Д.И.Ивановского
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР, Институт вирусологии им.Д.И.Ивановского filed Critical Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов АМН СССР
Priority to SU884360224A priority Critical patent/SU1518370A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1518370A1 publication Critical patent/SU1518370A1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биотехнологии и может быть использовано дл  вирусологических исследований и оценки антивирусного действи  химиопрепаратов. Цель изобретени  - получение нового штамма культивируемых диплоидных клеток кожи и мышц эмбриона человека, используемого дл  изготовлени  диагностических препаратов и размножени  вирусов. Штамм получают трипеннизацией кожно-мышечных лоскутов 10-недельного эмбриона человека и адаптацией полученных клеток к стабильным услови м культивировани . Штамм обозначают М-23, он хранитс  во Всесоюзной специализированной коллекции клеточных культур Института медицинской генетики АМН СССР под номером Д-3 (15/2/7). Штамм способен к прививкам без снижени  пролиферативной активности до 41 пассажа. Процент диплоидных клеток колеблетс  в пределах от 90,2 до 93,2, полиплоидных - от 0,6 до 1,9. Штамм обеспечивает накопление специфического антигена ИМВ в титре 1:32, используемого в РСК, и служит в качестве тест-системы дл  диагностики цитомегаловирусной инфекции. Штамм пригоден дл  накоплени  биомассы вируса полиомиелита.

Description

Изобретение относитс  к биотехнологии и может быть использовано дл  вирусологических исследований и оценки антивирусного действи  химиопрепа- ратов.
Цель изобретени  - получение нового штамма культивируемых диплоидных клеток кожи и мышц эмбриона человека , используемого дп  изготовлени  диагностических препаратов и размножени  вирусов.
Штамм получают следутоцим образом.
Исходной тканью служат кожно-мы- шечные лоскуты 0-недельного эмбриона человека, выделенного путем аборта от здоровой женщины 30 лет, в анамнезе которой не было онкологических, венерических, генетических заболеваний и врожденных аномалий, а также гепатита и туберкулеза.
Первичную культуру клеток эмбриона человека готов т с помощью метода
1чад 1цей трипсиниэации измельченных кусочков ткани 0,25%-ным раствором трипсина при чередующихс  контактах с питательной средой.
Клети ресуспендируют в среде Игла №М с 10% СКРС и эксплантируют 10 по луторалитровьгх матрасов с концентрацией клеток 9 « О /мл. Сосуды с клетками инкубируют при 37 С. В первичной культуре монослой формируетс  за 9 сут. Затем провод т первое суб- кч льтивирование, а все последующие по четкому графику два раза в неделю так, что интервал между пересевами клеток посто нно составл ет 3-4 суТо Используют среду того же состава, Отделение клет.ок от стекла осуществл ют 0,25%-ным раствором трипсина при кратковременном контакте их с ферментомс Кратность рассева клеток Б фазе активного роста составл ет 1:2 1:3,, Полученный штамм обозначают М-23.
Ш Т амм М-23 хранитс  во Всесоюзной специализированной коллекции клеточных культур Института медицинской генетики АМН СССР под номером ДЗ (15/2/7).
Штамм М-23 характеризуетс  следующими признаками.
Культуральные свойства.
Жизненный цикл штамма 55±3 пассажа ,
роста становление 1-2 пас-- caw, активный t: OCT 3-41, старение 4 .- 58 пассажей .,
Кра гнссть р ггева в первых двух -t. i ; 1; реже 1:2, третьей - 1:1, : 1 j на уро н х последующих пассажей 1;1, посевна  доза 75-100 10 в i МП среды Игла MEM с 10% СКРС. Отделение клеток от стекла провод т Япт л уром трипсина. Количество клеток в монослое 1,5-литро- вого матраса 35 ч5 мин.
обпадает высокой пролифера- тивной активностью и способен сохран тьс  на стекле в виде моносло  без cMeHbJ среды не менее 2 кед.
При криоконсервации примен ют 80% среды Игла MEM, 10% СКРС, в качестве криопротектора используют 10% глицерина |;ри концентрации клеток 2-3 «IO /мл, Жизнеспособными после восстановлени  остаютс  75±5% клеток
Банк посевных клеток состоит из 200 ампуц, содержащих 0,7 млрд. клеток на уровне 7 пассажа.
Изучение изоферментов в клетках niTaNfMa М-23 вы вл ет энзимограмму человека и глюкозо-6-фосфатдегидрогенаЗУ медленного типа.
Морфологические признаки. Первична  культура состоит из фибробластоподобных и эпителиоподоб- ных клеток с преобладанием первых.
При вступлении культуры в фазу активного роста эпителиоподобные клетки исчезают и под малым увеличением микроскопа наблюдают мономорфную культуру с характерным дл  фибробластов
ориентированным расположением клеток Такой вид культура тер ет л третьей фазе.
I lTatiM М-23 изучают с помощью цитологических и цитохимических методов
на уровне II и 25 пассажей. На фиксированных и окрашенных гематоксилином и эозином препаратах установлено, что культура образует ровный монс- слой,состо щий из веретенопицных однородных фибробластов, ориентированных в потоки по длинной оси клеток. Ядра клеток удлиненные, овальные, содержащие 1-3  дрьш;ка и мелкие глыб- ки хроматина.
Вь.сока  митс,тическа  активность наблюдаетс  в первые сутки лосле посадки , по мере формировани  моносло  количество дел щихс  клеток снг1Жаетс;  до единичных, что свидетельствует о
выраженной митотической, а также контактной ингибиции„
Многослойнос ти культуры не отмечено , Клетки штамма свободны от онко генной потенции,
На гистохимических препаратах наблюдаетс  обычное содержание ДОК и РНК, Кисла  и щелочна  фосфотазы присутствуют в виде мелких глыбок, редко разбросанных по цитоплазме, Гликоген обнаруживают также в виде мелких глыбок,
Никаких признаков контаминации .культуры (внутри дерных и цитоплазма- тических включений, вакуолизации, образование симпластов, патологических митозов) не вы влено.
Кариологическа  характеристика,
Кариологический анализ провод т
на /ровне 10, 20, 30, 40 пассажей по
1000 метафаз, .
Процент диплоидных клеток колеблетс  .от 90,2 до 93,2, процент полиплоидных - от 0,6 до 1,9. Послед- кий показатель на ,I ниже допустимо5
го ВОЗ предела дл  диплоидных клеток человека, используемых дл  изготовлени  медицинских вирусных вакцин, в св зи с этим штамм может быть применен в вакцинном производстве.
Контроль штамма М-23 на посторонние контаминанты.
При обследовании клеток штамма М-23 на стерильность (наличие грибов , бактерий, микоплазм) получены отрицательные результаты на уровне 1-10 пассажей.
При обследовании культуральной жидкости и самих клеток на уровне 10, 20, 30, 40 пассажей в чувствительных клеточных системах, а также в реакци х гемадсорбции вирусы контаминанты не вы влены,
При обследовании штамма М-23 на уровн х 12, 21, 31, 41 пассажей в опытах на взрослых и новорожденных мьшах, кроликах, морских свинках, куриных эмбрионах, иммунодепрессиро- ванных Mbmiax линии СВА посторонних агентов,-в том числе и онкогенных, не обнаружено. На фиксированных и окрашенных препаратах культуры штамма М-23 патологических изменений не вы влено.
Чувствительность к вирусам,
Штамм М-23 чувствителен к полио- и цитомегаловирусу. Вирусом полиомиелита заражают культуру на уровне 8, 9, 12 пассажей Накопление вируса всех трех типов в высоких титрах зарегистрировано без адаптации. На уровне восьмого пассажа титр вируса I типа - 7,71; II - 7,64, III - 7,87 Аналогичные результаты дл  дев того пассажа - 7,62; 7,34; 7,96; дл  двенадцатого пассажа - 7,89; 7,70;. 7,55 Ig БОЕ/МЛ.
Титр штамма Ad-169 цитомегаловиру сов колеблетс  от 10 до
Штамм М-23 используют в качестве тест-системы дл  диагностики цитоме- галовирусной инфекции.
Пример . В культуральный сосуд со штаммом М-23 диплоидных клеток кожи и мышц эмбриона человека на уровне двадцатого пассажа ввод т смесь растворов 0,25% трипсина и 0,02% версена (1:5), подогретого до 37°С. Монослой ополаскивают и жидкость удал ют. Сосуд с культурой оставл ют до отслоени  клеток от стекла при 37°С. Затем в него ввод т среду роста (Игла MEM) с 10% СКРС
706
ло концентрации I 20 Ч О VMH йтпесь п объеме 1 мл внос т в пробирки со стеклом. Клетки инокулируюг в стате при (, в Т , ут до фор.чиронани  М(л;опо 1.
Удал ют ростовун) срепу и в четыре пробирки с клетками нног т пробы мочи больного с подотрением на цитомегаловирусную инфекцию Ггю О,2 мл
в каждую). Через 40 мин после контакта культуры трижды проминают питательной средой н добавл ют пов,тер- живающую среду. В течение 10 дней
культуру ежедневно микроскопируют. На седьмой день регистрируют специфические изменени  клеток, выражаю- гциес  в их округлении и изменении структуры . дер. На восьмой день культуры двух пробирок фиксируют и окрашивают дп  цитологического анализа, а. клетки двух других пробирок отдел ют от стекла и взвешипагот р 2 мл среды. Полученную клеточную взвесь ввод т
в четыре пробирки с монослойной культурой .штамма М-23, по 0,3 мл в каждую. Контакт с зараженными клетками продолжаетс  iO ми:-;. Вс остальные процедуры провод т аналогично
описанному. Дл  ппделеии  вируса требуетс  п ть сокультквир лрaiJHi i. На последнем пассаже 11рои3 5од;-т -сбор виругосодержащей жидг огтт, опреде-л - ют титр вируса, идентиф1-:цируют ев ежеиаолированиый штамм ЦМВ п реакции
немтрсшизации со специфической иммунной сывороткой, полученной при гипер- иммунизацин кроликов эт. шонн1-.1М штаммом Ad-169. Устанопл ч ПгГЙ штамм обозначают ЦМВ-493. Из культуры п того пассажа готов т цитопог ичегкир препараты , которые окрашивают гем токси- лином и эозином. При микроскопирова- нии в них вы вл ют характерные дл 
ЦМВ внутри де1)ные включени  - сови- ньш глаз.
Аналогичный штамм ЦМВ-493 с помощью тех же процедур рыгт.елен из слюны больного, которьш также идентифицирован как ЦМВ.
Пример 2, Купьтуру клеток штамма М-23 на уропне тридцатого пассажа готов т по способу, списанному в примере 1 , клеточную в весь внос т в 1,5-литровые матрасы.Кл,-тки инкубируют в термостате при в течение 3 сут до формиро аии  М-М1ОГЛОЯ.
Среду роста из матраса удал ют и внос т штамм Ad-169 цитомегалови- русов в виде цельной вирусосодержащей жидкости в объеме 10 чп при титре 5 Ig ТЦД /мл. Контакт вируса с клетками - 1 ч при 37 С. Затем в каждый матрас ввод т 100 мл поддерживающей |среды и инкубируют при до момента равити  цитопатических изменений в 80% клеток. Среду удал ют, клеточный слой однократно промывают питательной средой и добавл ют 10 мл глицинового буфера, рН 9,5. Матрас с клетками помещают на 12 ч при 4 С, После этого взвесь клеток перенос т в пробирку и центрифугируют при
2000 об/мин в течение 10 мин. В качестве антигена используют надосадоч- ную жидкость. Провод т предварительн титрование антигена с эталонной сывороткой в присутствии комплемента. Титр антигена 1:32. Основную реакцию став т с разведением 1:16.
П р и м е р. 3. Культуру клеток штамма М-23 на уровне 27 пассажа готов т по способу, описанному в примере 1 .
Дл  оценки антивирусного действи  ацикловира используют концентрации 0,25-250 мкг/мл.
В пробирку с монослоем внос т по 0,1 МП неразведенного ЦМВ с титром 5 Ig , адсорбцию вируса осуществл ют в течение 1 ч, затем его удал ют, культуру промывают питательной средой и ввод т поддерживающую среду, содержащую ацикловир в указанных концентраци х.
Учет результатов провод т ежеднев но в течение 13 сут. Ингибирующее действие црепарата установлено с дозой 250 мкг/мл: специфическое поражение клеток в контроле отмечено на вторые сутки, с ацикловиром - на шее тые, В последующие дни цитопатически изменени  нарастают и к тринадцатым суткам регистрируют поражение клеточного пласта, аналогичное контролю.
На основании полученных результа- тов допустим, что ацикловир обладает ограниченной способностью подавл ть репродукцию ЦМВ.
ПримерА. В культуральный сосуд с диплоидными клетками кожи и мышц эмбриона человека М-23 на уровне 21 пассажа ввод т 0,25%-Hbni раствор трипсина, подогретого до . Через 5-7 с раствор удал ют, а сосуд с клетками помещают в термостат при 37 С на 2-3 мин.. Затем внос т небольшое количество питательной среды и энергичным встр хиванием заканчивают процесс отделени  клеток от стекла. После этого в клеточную взвесь добавл ют среду роста - Игла MEM - с 10% СКРС - и разливают на два сосуда. Эти культуры двадцать второго пассажа инкубируют при в течение 3 сут до момента формировани  плотного моносло .
Дл  заражени , используют штамм ЦМВ-493 на уровне п тнадцатого пассажа с титром 4 Ig . На седьмые сутки 80-90% клеток подвергаютс  специфической дегенерации, и титр ЦМВ равен 6 Ig ТЦЛ,-,/мл.
Пример 5. Культуру клеток штамма М-23 на уровне двенадцатого пассажа получают по способу, описанному в примере А, и заражают вирусом полиомиелита (штамм Сэбина, тип 1) из расчета 1 БОЕ на клетку. Культуру инкубируют при 34°С, Сбор вируса провод т на третьи сутки. Титр вирус в первичной культуре клеток почек африканских зеленых мартьш1ек равен 7,89 Ig БОЕ/МЛ.
П р и м е р 6, Культуру клеток штамма М-23 на уровне двенадцатого пассажа получают по способу, описанному в примере 1, и заражают вирусом полиомиелита (штамм Сэбина тип 11) по способу, описанному в примере 5. При этом титр вируса составл ет 7,7 Ig БОЕ/МЛ.
Пример 7. Культуру клеток штамма М-23 на уровне дев того пассажа получают по способу, описанному в примере, 1, и заражают вирусом полиомиелита (штамм Сэбика, тип III) по способу, описанному в примере 5, При этом титр вируса составл ет 7,96 Ig БОЕ/мЛо

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    Штамм культивируемых клеток кожи и мьш1Ц эмбриона человека BQKK-Д NД-3 (15/2/7) дп  изготовлени  диагностических препаратов.
SU884360224A 1988-01-07 1988-01-07 Штамм культивируемых клеток кожи и мышц эмбриона человека дл изготовлени диагностических препаратов SU1518370A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884360224A SU1518370A1 (ru) 1988-01-07 1988-01-07 Штамм культивируемых клеток кожи и мышц эмбриона человека дл изготовлени диагностических препаратов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884360224A SU1518370A1 (ru) 1988-01-07 1988-01-07 Штамм культивируемых клеток кожи и мышц эмбриона человека дл изготовлени диагностических препаратов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1518370A1 true SU1518370A1 (ru) 1989-10-30

Family

ID=21348312

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU884360224A SU1518370A1 (ru) 1988-01-07 1988-01-07 Штамм культивируемых клеток кожи и мышц эмбриона человека дл изготовлени диагностических препаратов

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1518370A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE4406072A1 (de) * 1994-02-24 1995-08-31 Univ Ludwigs Albert Verfahren zur Herstellung von humanen, klonogenen Fibroblasten und so erhaltene Fibroblasten

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР № 764391, кл. С 12 N 7/00, 1980. Авторское свидетельство СССР № 1317021, кл. С 12 N 5/00, 1987. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE4406072A1 (de) * 1994-02-24 1995-08-31 Univ Ludwigs Albert Verfahren zur Herstellung von humanen, klonogenen Fibroblasten und so erhaltene Fibroblasten

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100968141B1 (ko) 세포 배양물에서 바이러스의 증식 방법
Weller et al. The etiologic agents of varicella and herpes zoster: Isolation, propagation, and cultural characteristics in vitro
Holmes et al. On the role of the response of the cell membrane in determining virus virulence: Contrasting effects of the parainfluenza virus SV5 in two cell types
Rapp et al. Synthesis of SV40 tumor antigen during replication of simian papovavirus (SV40)
Osborn et al. Enhancement of infectivity of murine cytomegalovirus in vitro by centrifugal inoculation
US10329536B2 (en) Methods for producing an active constituent of a pharmaceutical or a diagnostic agent in an MDCK cell suspension culture
Wong et al. Changing viral susceptibility of a human cell line in continuous cultivation: I. Production of infective virus in a variant of the Chang conjunctival cell following infection with swine or N-WS influenza viruses
Plummer et al. COMPARATIVE STUDIES OF TYPE'AND TYPE &" herpes simplex" viruses.
JP2011212020A (ja) 細胞培養におけるインフルエンザウイルスの複製の方法、および本方法によって入手可能なインフルエンザウイルス
US3699222A (en) Production of viral interfering substances
US3959466A (en) Highly attenuated cytomegalovirus vaccine and production thereof
Yates et al. Isolation and characterization of an avian adenovirus-associated virus
Pauli et al. Increase of virus yields and releases of Borna disease virus from persistently infected cells
CN110093307A (zh) 适应无血清悬浮培养的bhk-21-sc细胞株和用该细胞株制备疫苗抗原的方法
JPS62115279A (ja) ネコ鼻腔気管炎ウイルスの大量生産方法
Underwood et al. Studies on Measles Virus in Tissue Culture: I. Growth Rates in Various Cells and Development of a Plaque Assay
Vaheri et al. Growth of rubella virus in BHK21 cells. I. Production, assay, and adaptation of virus.
Goldberg et al. Susceptibility of differentiating muscle cells of the fetal mouse in culture to coxsackievirus A13
CA1039651A (en) Attenuation of cytomegalovirus
SU1518370A1 (ru) Штамм культивируемых клеток кожи и мышц эмбриона человека дл изготовлени диагностических препаратов
Frank et al. Rhesus Leukocyte-associated Herpesvirus. I. Isolation and Characterization of a New Herpesvims Recovered from Rhesus Monkey Leukocytes
CN105121634A (zh) 具有提高的病毒生产能力的细胞系及其生产方法
Tannock et al. Evaluation of chicken kidney and chicken embryo kidney cultures for the large-scale growth of attenuated influenza virus master strain A/Ann/Arbor/6/60-ca
US3143470A (en) Rabies virus propagation in embryonic cells maintained in a medium containing pancreatic digest of casein
Noronha-Blob et al. Viral interference-mediated selection of a plaque-type variant of influenza virus